Just's botanischer jahresbericht. Systematisch geordnetes repertorium der botanischen literatur aller länder

•M

' *'''' ' ■■''"■' ;"

Trnm.'

m~

*£

•***£•

' > J

r<si

w*

&, M*

k/>

•fsÄ-

x . A

L? " <

i^r;-^

l ' ' UZT iL

Just's

Botanischer Jahresbericht

Systematisch geordnetes Repertorium

der

Botanischen Literatur aller Länder

Begründet 1873

Unter Mitwirkung von

J. Boldin gh in Utrecht, C. Brick in Hamburg, 0. Brunner in Hamburg, C. De
Bruyker in Gent, K. v. Dalla-Torre in Innsbruck, G. Denys in Hamburg, K.
Domin in Prag, A. Eichinger in Halle, K. Fedde in Glogau, B. Fedtschenko in
St. Petersburg, W. Gotha n in Berlin, H. Harms in Dahlem, W. Herter in Berlin,
F. Hock in Perleberg, 0. Hörich in Berlin, G. Lakon in Tharandt, E. Lemmer mann
in Bremen, B. Lynge in Kristiania, A. Luisier in San Fiel (Portugal), M. Möbius
in Frankfurt a. M., R. Muschler in Steglitz, F. W. Neger in Tharandt, R. Otto in
Proskau, H. E. Petersen in Kopenhagen, R. Pilger in Berlin, Cl. Pollak in Wien,
H. Potonie in Berlin, E. Riehm in Dahlem, H. Schnegg in Weihenstephan, C.
K. Schneider in Wien, K. J. F. Skottsberg in üpsala, R. F. Solla in Pola,
P. Sorauer in Schöneberg-Berlin, P. Sydow in Schöneberg-Berlin, Z. v. Szabö
in Budapest, F. Tessendorffin Steglitz, E. Ulbrichin Dahlem, A. Voigt in Hamburg,
A. Weisse in Zehlendorf -Berlin, H. Winkler in Breslau, A. Zahlbruckner in Wien

herausgegeben von

Dr. F. Fedde

IhHitseh-Wilmersdorf-Berlin.

Sechsunddreissigster Jahrgang (1908)

Dritte Abteilung.

Allgemeine und spezielle Morphologie und Systematik der

Siphonogamen 1908. Entstehung der Arten, Variation und

Hybridisation 1907-1908. Berichte über die pharmakoguostische

Literatur aller Länder aus den Jahren 1907 und 1908.

Autorenregister. Sachregister.

Leipzig

Verlag von Gebrüder Borntraeger

1912

Für den Inhalt der einzelnen Berichte sind die Herren Mitarbeiter

selbst verantwortlich.
Nachdruck von einzelnen Referaten nur mit Quellenangabe gestattet.

5 f 7 V-

Druck von A. W. Hayn's Erben (Curt Gerber), Potsdam

Vorrede.

Trotzdem schon vor Jahresfrist dieser Band fast ganz fertiggestellt
war. gelang es mir doch nicht, wegen der Säumigkeit einiger Referenten
ihn zur gewünschten Zeit abzuschließen. Ich habe mich daher für die
Zukunft entschlossen, im Notfalle die Referate von zwei oder drei Jahren
zusammenzulegen, wie dies jetzt schon regelmäßig für die ..Entstehung
der Arten usw.1- geschieht, die alle zwei Jahre erscheinen. Dadurch
wird die Fertigstellung der Bände mit dem so notwendigen Register be-
schleunigt werden. Band XXXVII (1909) wird also am Ende September
1912 fertiggestellt sein.

Bemerkt sei noch, daß die ..Berichte über die pharmakognostischc
Literatur" in diesem Bande zum letzten Male erscheinen. Die botanisch
besonders wichtigen Arbeiten der Pharmakognosie erscheinen in den
betreffenden Abschnitten, in die sie gehören, meist wohl in „Morphologie
der Gewebe" und ..Chemische Physiologie".

F. Fedde.

Inhaltsverzeichnis

Seite

Vorrede III

Verzeichnis der Abkürzungen für die Titel von Zeitschriften .... VII

XX T. Allgemeine und spezielle Morphologie und Systematik der Siphono-

gamen 1908. Von Camillo Karl Schneider 1—354

1. Handbücher, Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines). ... 1

2. Nomenclatur 17

3. Technische Hilfsmittel 19

4. Keimung 20

5. Allgemeine Biologie 21

6. Allgemeine Morphologie 40

7. Allgemeine Systematik 46

8. Spezielle Morphologie und Systematik auf die einzelnen
Familien bezogen 59

Autorenverzeichnis 346

XXII. Entstehnng der Arten, Variation und Hybridisation. (11M»7 — 1908 )

Von R. Pilger 355—414

XXIII. Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder aus

den Jahren 1907 und 1008. Von Dr. Pleno M uschier . . 415—692

XXIV. Ptlanzengeographie von Europa 1908- Von F. Tessendorff.

Erscheint mit 1909 zusammen im nächsten Jahrgang (1909).

XXV. Schizomyeeten 1908. Von W. Heiter.

Erscheint mit 1909 zusammen im nächsten Jahrgang (1909).

Autorenregister. Von P. Sydow . . . . . . ... 694 744

Sach- und Namenregister. Von P. Sydow 745—982

■<zM&

Verzeichnis der Abkürzungen für die Titel von Zeitschriften.

Act. Hort. Petrop. = Acta horti Petro-

politani.
Allg. Bot. Zeitsehr. = Allgemeine Bota-
nische Zeitschrift, ed. Kneucker.
Amer. Bot. = The American Botanist.
Ann. of Bot. = Annais of Botany.
Ann Mycol. — Annales mycologicae.
Ann. Sog. Bot. Lyon = Annales de la

Society Botanique de Lyon.
Aren. Pharm. = Archiv für Pharmazie,

Berlin.
Belg. hortic. = La Belgique horticole.
Ber. D. Bot. Ges. = Berichte der

Deutschen Botanischen Gesellschaft.
Bot. Centrbl. = Botanisches Centralblatt.
Bot. Gaz. = The Botanical Gazette.
Bot. Mag. = The Botanical Magazine.
Bot. Mag. Tokyo = Botanical Magazine

Tokyo.
Bot. Not. = Botaniska Notiser.
Bot. Tidssk. = Botanisk Tidsskrift.
Bot. Zeit. = Botanische Zeitung.
Bryol. = The Bryologist.
Bull. Ae. Geogr. bot. = Bulletin de

1 Academie internationale de Geographie

botanique.
Bull. Mus. Paris = Bulletin du Museum

d'Histoire Naturelle de Paris.
Bull. N. Y. Bot. Gard. = Bulletin of

the New York Botanical Garden.
Bull. Soo. Bot. France = Bulletin de

la Societe Botanique de France.
Bull. Soc. Bot. Lyon = Bulletin mensuel

de la Societe Botanique de Lyon.

Bull. Soc. Bot. It. = Bulletino della So-

cieta botanica italiana. Firenze.
Bull. Soc. Linn. Bord. = Bulletin de la

Societe Linneenne de Bordeaux.
Bull. Soc. Bot. Moscou = Bulletin de

la Societe imperiale des naturalistes de

Moscou.
Bull. Torr. Bot. Cl. = Bulletin of the

Torrey Botanical Club, New York.
C. R. Ac. Sei. Paris = Comptes rendus

des seances de f Academie des sciences

de Paris.
Engl. Bot. Jahrb. = Englers Jahrbücher

für Systematik, Pflanzengeschichte und

Pflanzengeographie.
Fedde, Rep. spec. nov. = Repertorium

specierum novarum regni vegetabilis ed.

F. Fedde.
Gard. Chron. = The Gardeners' Chronicle.
Gartenfl. = Gartenflora.
Jahrb. wiss. Bot. = Pringsheims Jahr-
bücher für wissenschaftliche Botanik.
Journ. de Bot. = Journal de botanique.
Journ. hört. Soc. = The Journal of the

Royal Horticultural Society.
Journ. of Bot. = The Journal of Botany.
Journ. of Myc. = Journal of mycology.
Journ. Linn. Soc. Lond. = Journal of

the Linnean Society of London, Botany.
Journ. Microsc. Soc. = Journal of the

Royal Microscopical Society.
Meded. Plant . . . Buitenzorg = Mede-

deelingen uit's Land plantenuin te

Buitenzorg.

vnr

Verzeichnis der Abkürzungen für die Titel von Zeitschriften.

Minnes. Bot. St. = Minnesota Botanical
Sl adii

Mlp. = Malpighia, Genova.

Math. Term. Ert. = Mathematikai es
Termeszetud Ertesitö. (Math. u. Natur-
wiss. Anzeiger herausg. v.d. üng. Wiss.
Akademie.)

Monatsschr. Kaktkd. = Monatsschrift
für Kakteenkunde.

Mon. Jard. bot. Tiflis. = Moniteur du
Jardin Botanique de Tiflis.

Naturw. Wochenschr. = Naturwissen-
schaftliche Wochenschrift.

Növ. Közl. = Növenytani Közlemenyek
(Botanische Mitteilungen).

Nuov. Giorn. Bot. It. = Nuovo giornale
botanico italiano, nuova serie. Memorie
della Societä botanica italiana. Firenze.

Nuov. Not. = La Nuova Notarisia.

Östr. Bot. Zeitsehr. = Österreichische

Botan. Zeitschrift.

Österreichische

Osterr. Gart. -Ztg.

Garten-Zeitung.
Ohio Nat. = Ohio Naturalist.
Orch. Rev. = The Orchid Revier.
Philipp. Journ. Sei. = The Philippine

.Journal of Science.
Proc. Amer. Acad. Boston = Procee-

dings of the American. Academy of Arts

and Sciences, Hoston.
Proe. Acad. Nat. Sei. Philadelphia =

Proceedings of the Academy of Natural

Sciences of Philadelphia.

Proe. Calif. Ae. Sei. = Proceedings of
the California Academie of Sciences.

Rend. Acc. Line. Roma = Atti della R,
Accademia deiLincei,Rendiconti.Roina.

Rev. hört. = Revue horticole.

Sitzb. Akad. München = Sitzungs-
berichte der Königl. Bayerischen Aka-
demie der Wissenschaften zu München.

Sitzb. Akad.Wien= Sitzungsberichte der
Akademie der Wissenschaften zu Wien.

Sv. Bot. Tidsk. = Svensk Botanisk
Tidskrift.

Sv. Vet. Ak. Handl. = Kongliga Svenska
Vetenskaps - Akademiens H andlingar.
Stockholm.

Term. Füz. = Termeszetrajzi Füzetek az
allat-, növeny-, asvany-es földtan köre-
bol. (Naturwissenschaftliche Hefte etc.
herausgeg. vom Ungarischen National-
Museum, Budapest.)

Trans. N. Zeal. Inst. = Transactions
and Proceedings of the New Zealand
Institute, Wellington.

Ung. Bot. Bl. = Ungarische Botanische
Blätter (Magyar Botanikai Lapok).

Verh. Bot. Ver. Brandenburg = Ver-
handlungen des Botanischen Vereins der
Provinz Brandenburg.

Verh. Zool -Bot. Ges. Wien = Verhand-
lungen der Zoologisch - Botanischen
Gesellsch. zu Wien.

Vidensk. Medd. = Videnskabelige Med-
delelser fra Naturhistorisk Forening i
Köbenhavn.

- —■ *-^-o- ö »0-& *

XXI. Allgemeine und spezielle Morphologie und
Systematik der Siphonogamen 1908 *).

Referent: Camillo Karl Schneider.

I. Handbücher, Lehrbücher. Unterricht (Allgemeines). Ref. 1 — 93.
IL Nomenclatur. Ref. 94—113.

III. Technische Hilfsmittel. Ref. 114—122.

IV. Keimung. Ref. 123—132.

V. Allgemeine Biologie. Ref. 133—225.
VI. Allgemeine Morphologie. Ref. 226— 250.
VII. Allgemeine Systematik. Ref. 251—314.
VIII. Spezielle Morphologie und Systematik auf die einzelnen Familien be-
zogen. Ref. 315 — 1956.
Autorenverzeichnis siehe am Schluss.

I. Handbücher, Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines).

1. Aigremont. Volkserotik und Pflanzenwelt, Bd. I. Halle a. S.,
Trensinger 1908, 165 pp.

Nicht gesehen.

2. Anders, G. Lehrbuch der allgemeinen Botanik. Leipzig 1908/09.
8°, XI, 460 pp., 284 Abb.

Nicht gesehen.

3. Bailey, L. H. Beginners botany. New York, The Macmillan Co..
1908, 80, VIII, 208 pp.. 302 fig.

Nicht gesehen.

4. Balfour. Trees of Western America. (Trans, roy. Scottish arboric.
Soc, XXI, 1908, p. 121 — 130.)

Nicht gesehen.

*) Man beachte, dass die Geschichte der Botanik einschliesslich Bio-
graphien, Bibliographie, Botanische Gärten und Institute, Herbarien und Nekro-
loge als eigenes Referat erscheint. Ferner sei darauf hingewiesen, dass über
Embryoent Wickelung usw. unter Anatomie, bzw. unter V berichtet wurde
und über Befruchtung usw. (Blütenbiologie) unter Dalla Torres Hauptreferat
„Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen" nachzulesen ist.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 25. 4. 10.] 1

2 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [2

5. Beiklie, J. Plantelaere. Ohristiania 1908, 8°, 238 pp.. ill.
Nicht gesehen.

6. Beule. Precis de botanique pharmaceutique. Tome II. Botanique
phanerogamique. Paris 1908. 8°, avec 793 fig.

Nicht gesehen.

7. Bergen, J Y. Essentiales of botany. Boston, Ginn and Oy., 1908,
120, IX. 380 pp., 15 pl., 248 fig.

Kurzes Lehrbuch für Mittelschulen.

8. Berlin, N.J. Läsebok i naturlära. 10 uppl. Förstadelen, 1907.
Nicht gesehen.

9. Borzi, A. Sülle condizioni della indagine scientifica di
fronte al supremi problemi della botanica moderna. (Atti Soc. ital.
Progr. Scienze, I [Parma, 1907], p. 195-203, in S °, Koma 1908.)

Ref. nicht eingegangen.

10. Bridges, S. J. and Dieks, A. J. Plant study iu school, field and
garden. London, 1908, 8°, 388 pp.

Nicht gesehen.

11. Britton, N. L. and Shafer, J. A. North American trees. Being
descriptions of the trees growing independently of cultivation in North America,
north of Mexico and the West-Indies. New York, H Holt & Co., 1908, 40,
X, 894 pp., 781 fig.

Vgl. auch unter „Pflanzengeographie". Die Figuren stellen teils photo-
graphische Habitusbilder dar, teils sind sie aus der Flora von Britton and
Brown übernommen. Wesentlich Neues bietet das Buch nicht.

12. Biisgen, 31. Der deutsche Wald. Leipzig. Quelle & Mayer, 1908,
8°, VIII, 176 pp., zahlr. Abb. u. 2 Taf.

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

13. Bnnyard, G. Handbook of hardy Trees and Shrubs. Populär
guide to the most useful park-trees etc. London 1908, 8°, 160 pp., ill.

In erster Linie von gärtnerischem Interesse.

14. Bnsemann, L. Der Pflanzenbestimmer. Eine Anleitung ohne
Kenntnis des künstlichen oder eines natürlichen Systems die in Deutschland
häufiger vorkommenden Pflanzen zu bestimmen. 11 farbige, 6 schwarze Tafeln,
367 Textabb. u. dem Pilzmerkblatt des Kaiser! Gesundheitsamtes, IV, 157 u.
8 pp., 8 0, Stuttgart 1908.

Vergleiche unter „Pflanzengeographie von Europa".

15. Commenda, H. Die Mittelschulreform und der naturwissen-
schaftliche Unterricht. (XXXVII. Jahrber. Ver. Naturkde. Österr. ob der
Enns-Linz, 1908, p. 26— 2S.)

Referierender Vortrag.

16. Conpin, H., Jodin, H. et Dauphine, A. Atlas de botanique micro-
scopique. Paris 1908, 8°, 126 pp., ill.

Nicht gesehen.

17. Conpin, H. et Bondret, E. Botanique accompagnee de nombreux
dessins, photogravures, tableaux synoptiques, resumes, lectures, 1. cycle. Paris
1908, 8°, 411 pp.

Mittelschullebrbuch.

18. Cozzi, C 1 fiori nell' arte. (Boll. del Natmalista, XXVIII, p. 21
bis 23, in 4 0, Siena 1908.)

Referat nicht eingegangen.

3| Handbücher, Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines). 3

19. Demcker, Rob. Die schönsten und grössten Bäume des nord-
amerikanischen Waldes. (Mitt. Deutsch. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 166
bis 171.)

Behandelt werden Ulmus americana L., fulva Mchx.. racemosa Thom.,
alata Mchx., Tilia americana L., T- pubescens Ait., T. heterophylla Vent., Pavia
glabra W., Aesculus flava Ait., A- pallida W., A. discolor Pursh, A. parviflora
Walt., Nyssa mvdtiflora Wangh.. unifiora Wangh., aquatica L. und Gleditschia
triacanthos L.

20. Drabble, E. Elementary Botany. London 1908, 8°, 240 pp., ill.
reicht gesehen.

21. Ehvos, H. J. and Henry, A. The Trees of great Britain and
Ireland (Arboretum Britanicum). (5 volumes.) Vol. III. Edinburgh 1908, 4°,
p. 451 — 711, with col. frontispiece and atlas of 81 pl.

Dieser dritte Band des ausgezeichneten und prächtig ausgestatteten
Werkes behandelt die Gattungen Cedrus (4 Arten besprochen), Libocedrus (6),
Cunninghamia (1), Liquidambar (2), Xyssa (3), Sassafras [2), Corylus (1), Carpinus
und Ostrya (8), Nothofagus (6), Arbutus (4), Sciadopitys (1), Pinus silvestris in
allen Formen, Carya (6), Platanus (2), Acer (15) und Sequoia (2). Wir werden
später nach Abschluss des Werkes noch ausführlich darauf zurückkommen.

22. Emerson, A. J. and Weed, C. M. Our trees. How to know them,
Philadelphia, J. B. Lippincott Co., 1908, 295 pp., 140 fig.

Mehr populäres Handbuch.

23. Evans, E. Plants and their ways. An introduction to the study
of Botany and Agricultural Science. London 1908, 171 pp.

Nicht gesehen.

24. Farrer, R. Alpine and Bog-Plants. London 1908, 8 0, ill.
Wertvolles Kulturhandbuch für Alpenpflanzenliebhaber, das auch dem

Biologen vieles bietet.

25. Fedde, Friedrich. Repertorium novarum specierum regni
vegetabilis. Centralblatt für Sammlung und Veröffentlichung von Einzel-
diagnosen neuer Pflanzen. Fasciculus VI, Berlin 1908/09, VIII, 401 pp.

X. A.

Die einzelnen Arbeiten sind bei den betreffenden Familien zitiert, mit
Ausnahme der folgenden, die Arten verschiedener Familien umfassen :

Maire, M. et Petitmengin, M. Etüde des Plantes vasculaires recoltees
en Grrece 1904. (Ex: Mat. p. servir ä l'etude d. 1. flore et d. 1. geogr. bot. de
lorient, läse. 2, 1907, 46 pp.)

Ha v ata, B. Species novae in regionibus alpinis Formosae insulae
indigenae. (Ex: Tok. Bot. Mag., XX, 1906, p. 13-22.)

[Fedde, Fr.] Vermischte neue Diagnosen.

Fomin, A. Plantae novae Caucasi. (Ex: Mou, Jard. Bot. Tiflis, Livr. I,
1905, p. 5 — 19.)

Pojero, Lojacono. Plantae novae Siculae. (Ex: Malpighia, XX, 1906,
p. 290—300.)

Rechinger, K. Plantae novae paeificae, III — IV. (Neue Arten von
Elatostema, Teniostoma, Coprosma, Psychotria-)

[Fedde, Fr.] Neues aus Charles V. Piper, Flora of the State of
Washington. (Ex: Contr. Unit. Stat. Herb., XI, 1906, G37 pp.)

Heimerl, A. Plantae novae Wettsteinianae. (Ex: Denkschr. Akad.

Wien. LXXXIX, 1908, p. 227—245.)

1*

4 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [4

[Fedde, Fr.] Cactaceae atque aliae succulentes novae. (Ex: Monatsschr.
f. Kakteenk., XVII, 1907.)

Litwinow, D. Plantae Turcomaniae (Transcaspiae) novae. (Ex: Trav.
Mus. Bot. St. Petersbourg, III, 1907, p. 94—125.)

Le v e il le , II . Decades plantarum novarum, XI— XV. (Originaldiagnosen
neuer Arten von: Epilobium, Rubus, Hypericum, Ficus, Polygonum, Euphorbia,
Asphoäelm, Iris, Streptolirion, Ypsilandra, Allium, Lilium, Carex, Disporum,
Tovaria, Paris, Rhamnus, Ophiopogon, Corydalis.)

Penther, Arnold et Zederbauer, Emerich. Neuheiten von der
Heise nach dem Erdschias Dagh (Kleinasien) 1902. (Ex: Ann. Hofm. Wien,
XX, 1907, p. 359—464.)

Schinz, Hans. Plantae Menyharthianae novae, IL (Ex: Denkschr
Akad. Wien, LXXVIII, 1905, p. 307-445.)

Hayek, August von. Plantae novae Stiriacae, III. (Aus: Schedae
ad fl. stir. exsicc, Lief. 13—14, 1908, No. 601—700.)

Hayek, August von. Neue Arten aus: A. v. Hayek, Flora von Steier-
mark, I, Heft 1, 1908, p. 1—80.

Cortesi, F. Rubiaceae, Urticaceae, Rosaceae atque Crassulaceae novae in
Ruwenzori Africae monte collectae. (Ex: Ann. di Bot., 1907, VI, p. 152,
535—537.)

Matsumura, J. et Hayata, B. Novae species ex „Enumeratio plan-
tarum in insula Formosa sponte crescentium. (Ex: Journ. Coli. Sei. Tokyo,
XXII, 1906, p. 704, 18 tab.)

Jennings, Otto E. Plantae novae Pennsylvanicae. (Ex: Ann. Carnegie
Mus., III, 1906, No. 4.)

Fries, Robert. Zur Kenntnis der Pharjerogamenflora der Grenzgebiete
zwischen Bolivia und Argentinien, V. (Ex: Arkiv för Bot., VIII, 1908, No. 8,
51 pp.)

26. Fedde, Friedrich. Repertorium novarum specierum regni
vegebabilis. Centralblatt zur Sammlung und Veröffentlichung von Einzel-
diagnosen neuer Pflanzen, V, Berlin-Wilmersdorf, 1908, 8°, VIII, 420 pp.

N. A.

Die einzelnen Arbeiten sind bei den Familien verzeichnet, mit Ausnahme
folgender, die Vertreter mehrerer Familien enthalten.

Fedde, Fr. Species novas in Gardeners Chronicle, 3. ser., XL, 1906,
descriptas.

Leveillr, IL Decades plantarum novarum, IV/V. (Originaldiagnosen
neuer Arten von: Epilobium, Linum, Aconitum, Boottia, Hydrocharis und diversen
Farnen.)

[Fedde, Fr.| Plantae novae Siculae a Lojacono Pojero descriptae.
(Ex: Malpighia, XX, 1906, p. 180-216.)

[Fedde, Fr.] Vermischte neue Diagnosen.

Greene, Edward L. Novitates Boreali -Americanae, I. (Original-
diagnosen von Rhus und Convallaria).

Maiden, J. H. et Betche. Species novae in Horto Botanico Sydneyano
a J. H. Maiden et E. Betche (I — II) descriptae. (Aus: Proc. Linn. Soc. N. S.
Wales, XXIX, 1904, p. 734—750 et XXX, 1905, p. 354—375.)

[Fedde, Fr.) Plantae anno 1907 in „Botanical Magazine" denuo
descriptae.

?U Handbücher, Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines). 5

Leveille, H. Decades plantarum novarum, VI. (Originaldiagnosen
von Sedum, Epüobium, Rhododendron, Lonicera, Allomorpha, Asarum.)

Luisier, A. Plantae novae Maderenses a Menezes descriptae. (Ex:
ßroteria, IV, 1905 et As Gramin. do Archip. da Madeira, 1906.)

Bechinger, Karl. Plantae novae pacificae, II. (Originaldiagnosen
von Arten von Paratrophis, Pteris, Cyrtandra, Hoya.)

Terraciano, Nie. Plantae novae vasculares in agro Murensi sponte
nascentes. (Ex: Nuov. Giorn. Bot. Ital., XIV, 1907, p. 117—120.)

Brockmann- Jerosch, H. Neue Arten und Formen aus dem Gebiet
des Puschlav. (Ex: Die Pflanzengesellschaften der Schweizer Alpen. I. Teil.
Die Flora des Puschlav. Leipzig 1907.)

Baker, R. T. Plantae novae australienses. (Ex: Proc. Linn. Soc. N.
S. Wales, XXXI, 1906, p. 711—721.)

Thellung, A. Neuheiten der Adventivflora von Montpellier. (Original-
diagnosen neuer Formen und Arten von Bromus, Solanum und Crupina)

Bornmüller, J. Species et varietates nonnullae novae e flora Phrygiae.
(Originaldiagnosen neuer Arten von Scabiosa, Serratida, Convolvulus, Salvia.)

Britton, N. L. Plantae novae bahamenses, I. (Ex: Bull. N. Y. Bot.
Gard., III, 1905, p. 441—453.)

Leveille, H. Decades plantarum novarum, VII. (Originaldiagnosen
von Carex- und Epilobivm- Arten und Formen.)

Gave, P. Novae species Florae Sabaudiae. (Originaldiagnosen von
Formen von Senecio, Bibes, Nymphaea, Orchis, Helleborus.)

Murbeck, Sv. Species novae Africae boreali-occidentalis, imprimis

Tunesiae. (Aus: Lunds Univ. Arsskr., N. F., Afd. 2, Bd. I, No. 4, Bd. 2, No. 1

und Kgl. Fys. Sällsk. Handl., N. F., 1905, Bd. XVI, No. 4, Bd. XVII, No. 1.)

Nelson, Aven. Plantae novae occidentali-americanae. (Ex: Proc. Biol.

Soc. Wash., XX, 1907, p. 33-40.)

Pax, F. Einige neue Pflanzen der bolivianischen Flora. (Original-
diagnosen neuer Arten von Qaimardia, Cotoneaster, Apopetalum, Acalypha, Buddleia.)
Greene, Edward L. Novitates Boreali-Americanae, II. (Neue Arten
von Antennaria und Arabis.)

Sommier, S. Additamenta Florae italianae. (Ex: Bull. Soc. Bot. Ital.
1902, p. 208—213, 1907, p. 38.)

Fedde, Fr. Species novae ex „Hooker Icones plantarum", XXXIX,
1906, p. 2801—2825.

[Fedde, Fr.] Neue Arten aus: Komarow, Flora Manshuriae, II. (Ex:
Act. Hort. Petrop., XXV, 1907, p. 335-353.)

Leveille, H. Decades plantarum novarum, VIII— X. (Originaldiagnosen
von neuen Arten von Hypericum, Rubiis, Pieris, Euphorbia, Ficus, Polygonatum
Asparagus, Lilium, All/um, Tofteldia, Aletris, Ophiopogon.)

Nelson, A. et Kennedy, P. B. Plantae novae Montrosenses. (Ex:
Proc. Biol. Soc. Wash., XIX, 2, 1906, p. 35—40.)

Schinz, Hans. Plantae Menyharthianae novae. (Ex: Schinz, Plantae
Menyharthianae in Denkschr. Akad. Wien, LXXVIII, 1905, p. 367—445.)

Hochreutiner, B. P. G. Species novae Catalogi Bogoriensis novi.
(Ex: Bull. Inst. Bot. Buitenzorg, XIX, 1904, p. 1—48.)

Stapf, Otto. Plantae novae ex Liberia enascentes modo seeundum
materialia Herbarii Regii Kewensis descriptae et in Sir Harry Johnstons
„Liberia", Appendix IV, 1905, p. 570—669 publicatae.

6 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogaineu. [6

Thellung, A. Neues aus der Adventivflora der Schweiz. (Ex: Viertel-
jahrsschr. naturf. Ges. Zürich., LH, 1907, p. 334-473.)

Valeton, Th. Plantae novae papuanae. (Ex: Bull. Dep. Agric. Indes
Neerl., X, 1907.)

27. Fischer, E. Taschenbuch für Pflanzensammler. 13. Aufl. Leipzig
l'.ios. 12 0, 344 pp., 3 kol. Taf. u. Fig.

Siehe „Pflanzengeographie".

28. France, II. H. Der Bildungswert der Kleinwelt. Gedanken
über mikroskopische Studien. 5. Tausend. Stuttgart 1908, gr. 8 0, 45 pp.,
1 Taf. u. Fig.)

Nicht gesehen.

29. Furlani, J. Lebenswerdung und Lebenserhaltung. (Jahrber.
d. k. k. Staatsgymnas. Nikolsburg, XXXV, 1908, 16 pp., 2 Taf.)

Allgemeine Betrachtungen, die nichts Neues enthalten, über die Frage
der Urzeugung, bzw. der Entstehung des Lebens und der Fortpflanzung.

30. Ganong, \Y. F Natüre courses and Science courses. (Nature-
Study Eev., IV, 1908, p. 242—246.)

Nicht gesehen.

31. Gentil. Louis. Liste des plantes eultivees dans les serres
chaudes et coloniales du .1 ardin botanique de l'Etat a Bruxelles.
Bruxelles, Weissenbruch, 191)7. 196 pp., 2 tab.

Die beiden Tafeln geben Ansichten aus dem neuen grossen Gewächs-
haus für Farnkräuter. Es werden kultiviert im Garten 1000 Gattungerj,
3200 Arten und 370 Varietäten und zahlreiche Gartenformen. Im ganzen finden
sich in der Liste 5700 Namen und Synonyme. F. Fedde.

32. Geremicca, M. La botanica e le scienze mediche: prolucione
al cmsm di Botanica per l'anuo 1906—1907. (14 pp. in 8°.) Napoli. tip.
Priore, 1907.

Referat nicht eingegangen.

33. Gordon, George. Beautiful flowering trees andshrubs. (Journ.
R. Hort. Soc. London, XXIV. 1908, p. 4—14, 7 fig.)

Die Abbildungen zeigen blühende Exemplare von Magnolia Lennei,
Cerasus avium l'l. pl., Laburnum alpinum Parksii, Syringa „Rubra de Marly",
Viburmim tomentosum plicatum, Philadelphias Gordonianus und frühblühende harte
Azaleen.

34. Gravis, A. Les sciences botaniques. Bruxelles, Schepens & Cie.,
1907, 34 pp., 21 photograv.

Nicht gesehen.

35. Gravis, A. L'enseignement de la Botanique. (Arch. Inst. Bot.
Liege, IV, 1907, p. 1—2;;.)

Verf. bringt Vorschläge für den Unterricht in der Botanik zunächst für
die Elementarstufen. Die Stadtverwaltung von Liege lässt jährlich öffent-
liche botanische Kurse abhalten. In diesen müsse Anatomie und Phvsiologie
beiseite bleiben. Für jedermann verständlich seien Organographie, Biologie
und Systematik. Dass man oft hört, es sei schwierig, die Pflanzen kennen zu
lernen, beruhe darauf, dass den Betreffenden die Methode fehle. Sie hätten
nicht gelernt zu beobachten, zu vergleichen und das auszudrücken, was sie
gesehen und verstanden hätten. Aus Büchern könne man nicht Botanik lernen.
Er zitiert Rousseaus und St. Hilaires Ansichten über diese Fragen.

7| Handbücher, Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines). 7

An der Universität werden Vorlesungen aus vier Gebieten für das
Kandidaturexamen gehalten: 1. Grundbegriffe der Cytologie, 2. Die wichtigsten
Typen der pflanzlichen Organisation, 3. Angiospermae, 4. Grundbegriffe der
Physiologie. Es fehlen Pteridophyta, Pflanzengeographie und Palaeobotanik
Für das Doktoratsexamen werden neben der Kenntnis dieser Disziplinen ein-
gehendere Kenntnisse in Anatomie und Physiologie sowie Geschichte der
Botanik verlangt. Es fehlt leider auch hier als Unterrichtsfach „wissenschaft-
liche Pädagogik".

Dem Aufsatze ist ein Inhaltsverzeichnis der Vorlesung des Verf. für die
Kandidatur beigegeben. . Herter.

36. Green, S. B. Principles of american forestry. New York
1907, 8«, XIII, 324 pp., 73 01.)

Forstbotanisch.

37. Harvey, Nathan A. The Study of Types in fche Presentation
of Botany and Zoology in secondary Schools. (X. Rep Mickig. Acad.
Sei, Ann. Arbor., 1908, p. 145—152.)

Nicht gesehen.

38. Hochrentiner, B. P. G. Catalogus bogoriensis novus. Index.
Fase. I et II. (Typ. Inst. bot. bogoriensis, 1308, 8°, 22 pp.)

Siehe „Pflanzengeographie".

39. Hock, F. Lehrbuch der Pflanzenkunde für höhere Schulen und
zum Selbstunterricht. Mit besonderer Rücksichtnahme auf die Lebensverhält-
nisse der Pflanzen vollkommen neu bearbeitet auf Grundlage der 4. Aufl. von
„Dalitzsch-Ross, Pfianzenbuch". Esslingen, J. F. Schreiber, 1908. Teil I:
Unterstufe. 112 pp. mit 65 Textabb. u. 6 Tafeln. Teil II: Oberstufe. 220 pp.
mit 156 Textabb., 19 Tafeln u. 2 Karten.

Das Buch (1. Teil) enthält zunächst kurz auf acht Seiten die Grund-
begriffe vom Bau und Leben der Samenpflanzen. Es folgen dann systematisch
geordnet einzelne besonders wichtige Pflanzen in längeren Beschreibungen.
Den Schluss bildet dann wieder eine Zusammenfassung der allgemeinen bota-
nischen Begriffe.

Im zweiten Teile folgt dann eine Übersicht über das System mit Hervor-
hebung der besonders wichtigen Typen, eine kurze Anatomie, sowie einiges
über die Lebensvorgänge bei den Pflanzen (Erhaltung der Einzelpflanze und
Erhaltung der Art), sowie etwas über teratologische undKrankheitserscheinungen.
Den Schluss nimmt dann eine Pflanzengeographie ein, wobei auch auf die
Palaeontologie etwas eingegangen wird. Die einzelnen Pflanzenreiche der
Erde werden kurz geschildert und an der Hand von recht lehrreichen Ab-
bildungen besprochen. Endlich werden allgemeine Ergabnisse aus der Pflanzen-
verbreitung gewonnen, wie Pflanzenformen und Bestände, Höhen- und Tiefen-
schichten, allmähliche Entwickelung der Pflanzengruppen auseinander usw.
Die Abbildungen sind recht gut ausgewählt, nur scheint mir die Reproduktions-
technik der Vegetationsansichten verbesserungsbedürftig zu sein.

F. Fedde.

40. Hooker, J. D. and Jackson. B. D. Index Kewensis Plantarum
Phanerogamar um. Supplementum III, nomina et Synonyma omnium generum
et specierum ab initio anni 1901 usque ad finem anni 1905 complectens. Ductu
et consilio D. Prain confecerunt Herb. Hortii Regii botanici Kewensis Curatores.
Oxonii 1908, 4 *>, 193 pp.

Siehe auch unter Prain.

8 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [8

41. Icones bogorienses. Jardin Botanique de Buitenzorg, vol. III, Fase. 3,
pl. CCLI-CCLXXV, Leiden.. E. J. Brill, 1908. N. A.

Siehe Tafeln bei den betreffenden Familien und „Index nov. gen. et spec".

42. Kny, L. Botanische Wandtafeln mit erläuterndem Text.
XL Abt., Text zu Taf. OVI— CX. Berlin, P. Parey, 1908, 8», p. 471-493, Ol.

Von Phanerogamen behandeln Tafel 106 und 107 Dionaea muscipida,
108 Centaurea jacea. -Die Darstellungen sind farbig.

43. Kraenier, H. Botany and pharmacognosy ed. 3. Philadelphia
and London 1908, p. I— VIII, 1-850, f. 1-328.

Nicht gesehen.

44. Kraepelin, K. Leitfaden für den botanischen Unterricht an
mittleren und höheren Schulen. 7. Aufl. Leipzig und Berlin, 1908, 8°, VII,
318 pp.

Nicht gesehen.

45. Kronfeld, E. M. Der Weihnachtsbaum. Botanik und Ge-
schichte des Weihnachtsgrüns. Oldenburg und Leipzig 1906, 233 pp.,
25 Abb.

Verfasser gibt eine Darstellung der Verwendung lebender Pflanzen bei
Weihnachtsgebräuchen mit Bezugnahme auf Botanik, Glauben, Sitte, Dichtung
und Kulturgeschichte.

46. Laurie, Charlotte L. Introduction to Elementary Botany.
London 1907, p. VIII and 84.

Nicht gesehen.

47. Lehmann, A. Unsere Gartenzierpflanzen. Eine Anleitung zur
Bestimmung, Kultur und Verwendung der Holzgewächse, Stauden und ein-
jährigen Pflanzen unserer Gärten. Zwickau Sa. 1907, 8°, XXXII, 719 pp.,
17 Tafeln.

Nur von gärtnerischem Interesse.

48. Liebus, Ad albert. Der moderne Naturgeschichtsunterricht
an unseren Mittelschulen. (Lotos, LVI, 1908, Prag, p. 77—86.)

Kurzer, rein schultechnischer Aufsatz. Fedde.

49. Liversidge, M. A. Elementary Botany. London 1907, p. 128.
Nicht gesehen.

50. Lotsy, J. P. Vorlesungen über Descendenztheorien mit
besonderer Berücksichtigung der Botanischen Seite der Frage. II. Teil. 8°,
p. 1— VI, 381-799, 101 Textf., 13 Tafeln.

Siehe im descendenztheoretischen Teile des Just.

51. Lowson, T. M. Textbook of botany. 4 edit. London 1908, 8<>,
539 pp., ill.

Nicht gesehen.

52. Lnndgreen, F. Die Benutzung der Pflanzenwelt in der alt-
testamentlichen Religion. (Giessen, 80, 1908, XXIII, 191 pp. Beihefte
zur Zeitschr. f. d. alttestamentl. Wissenschaft, XVI.)

Nicht gesehen.

53. Maillefer. A. La Botanique. (Bull. Soc. Vaudoise sei. nat.
Lausanne, XLV, 1908, p. 189—2(16.)

Nicht gesehen.

54. Maxwell, W. J. Notes on trees. (Trans, and Journ. Dumfries and
Galloway nat. Hist. and ant. Soc, XIX, 1908, p. 41—44.)

Nicht gesehen.

9| Handbücher. Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines). 9.

54. Neuweiler, E. Pflanzen reste aus der römischen Niederlassung
Vindonissa. (Vierteljahrsschr. Naturf. Ges. Zürich, LIII, 1908, p. 393—407.)

Verf. gibt an: 1. Sämereien von Nutzpflanzen: Hordetim sp.,
Juglans regia, Corylns avellana, Castanea ce*ca, Prunus persica, P. cerasus, P.
domestica, P. spinosa, Sambucus nigra, S. ebnlus, Daums carota, Comus mas,
Mat r ica ria cham om illa ■

2. Sämereien von Unkräutern und anderen wildwachsenden
Pflanzen: Scirpns sp., Carex sp., Rnmex obtusifolius, R. conglomcratas, Polygonum
5 Arten, Chenopodium album, Stellaria yraminea, Arenaria serpyllifolia, Ranunculus
acer, R. repens, Potentilla sterilis, Linum catharticum, Hypericum perforatum,
Ajuga reptans, Brunella vulgaris, Stacliys silvatica, St- officinalis, Satureja
calamintha, Alectorolophus spec, Pedicularis palustris, Galiwm aparine, G- mollugo,
Plantago lanceolata, Valerianella dentata, Cirsium sp.

3. Holz- und Kohlenreste. — 4. Moose.

55. Petersen, 0. GL Forstbotanik paa grundlag af forelaesninger ved
den kgl. Veterinaer-og Landbohöiskole. Kobenhavn, Gyldendal 1908, 8°, med.,
230 fig.

Nicht gesehen.

56. Phytian, J. C. Trees in nature, myth and art. Philadelphia,
1908, 80.

Nicht gesehen.

57. Plüss, B. Unsere Beerengewächse. Nebst Anhang: Unsere Gift-
pflanzen. 2. Aufl. Freiburg i. B., Herder, 1908, kl. 8°, 120 pp., 123 Abb.

Nur gärtnerisch von Bedeutung.

58. Pokorny. Naturgeschichte des Pflanzenreichs für höhere Lehr-
anstalten. 22. Aufl. Bearbeitet von M. Fischer. Wien 1908, gr. 8°, 284 pp.,
36 färb. Taf., 399 Fig.

Dem Stande der Kenntnisse angepasste Neuauflage.

59. Praill.D. Index kewensis plantarum phanerogamarum. 3.Supp.,
1901—1905. Oxford, Clarendon Press., 1908, 193 pp.

Dieses dritte Supplement umfasst die Jahre 1901—1905 und bildet eine
sehr erwünschte Ergänzung. Bei den Zitaten fehlen auch jetzt noch die so
notwendigen Jahreszahlen.

60. Rechinger, Lily und Karl. Streifzüge in Deutsch-Neuguinea
und auf den Salamonsinseln. Berlin 1908, 8°, XII, 108 pp., 27 Tafeln,
3 Abb. im Text.

Botanisch in erster Linie von pflanzengeographischem Interesse, man
vgl. daher unter „Pflanzengeographie". Wertvoll sind die guten Habitus- bzw.
Vegetationsbilder, von denen wir folgende besonders hervorheben:

Tafel 1: Eucalyptus Naudiniana F. v. M., 4. Calamus-Dickicht: schlingende
Mucuna mit Blüten und Früchten, 7. Plumeria acuminata Ait. (Habitus),
8. Blütenstand derselben Art, 15. Bestand von Alpinia, 16. Licuala -Pflanzen,
17. Wurzelpelz von Grammatophijllum und Ficus-Stämme, 18. Calophyllum
inophyllum, 20. Avicennia mit Atemwurzeln, 22. Pandanus-Dickicht, 23. Piper
subpeltatum, 26. Ficus chrysolaena Schum. usw.

61. Richards, H. M. Botany. New York, The Columbia Univ. Press.,
1908, 80, 36 pp.

Nicht gesehen.

62. Richards, Herbert Manie. Botany. Torreya, VIII, 1908, p. 41—50,
65—70. 93-100, 125—130.)

10 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogaraen. [JQ

Verf. behandelt in einer Vortragsreihe eingehend die Gebiete der
Botanik. Sein Standpunkt ergibt sich nicht zuletzt aus den folgenden Schluss-
worten:

„Man's attitudc towards the unknown — his philosophy in short —
must influence his attitude towards botany as it will towards any science;
and since philosophy, like other lines of intellectual activity, changes and
progresses. man's attitude towards science is not a fixed or rigid one. But
it is not likely that philosophy will ever tend to discourage investigation,
and investigation is the keynote of scientific progress. Un(piestionably, the
world demands research, and any fact no matter how humble, if accurately
established, helps on the cause. Perhaps the time will come when our know-
ledge of to-day will seem as crude as that of yesterday now seems to us.
Let not that concern us, except to turge us to do what we may in hastening
this time, knowing that is where real progress lies, and knowing too that
there is ample work that can and must be done."

63. Rikli, M. Fortschritte der Schweizerischen Floristik. VI. Ge-
spflanzen. (Ber. Schweiz. Bot. Ges., XVII, 1908, Bern, p. 121—207.)

Siehe unter „Pflanzengeographie von Europa".

64. Roda, 6. La Botanica ricreativa e le meraviglie della vege-
tazione. IL edizione (300. pp. in-8°, figg.). Torino 1908.

lief, nicht eingegangen.

65. Ross, 11. Leitfaden der allgemeinen Botanik, Pilzkunde und
Hefereinzncht für Brauer. München 1908, 8°, VIII, 154 pp., 34 Abb.

Vgl. darüber im Abschnitt Pilze, da das Buch in erster Linie die für die
Brauerei in Betracht kommenden Pilzgruppen behandelt.

66. Rothe, K. C. Der moderne Naturgeschichtsunterricht. Bei-
trüge zur Kritik und Ausgestaltung von A. Ginsberger, P. Kammerer,
F. Kossmat, W. A. Lay, L. v. Portheim, K. C. Rothe, A. Umlauft, E. Walther,
F. Werner. Wien 1908, 8°, 235 pp., 12 Abb.

Der Inhalt ist ausserordentlich reichhaltig und bietet eine Fülle inter-
essanter Anregungen und Zusammenstellungen.

67. Sargent, ('. S. Trees and shrubs. Vol. II, part. 2, p. 57—116,
Tafel 126-150. Boston and New York, Houghton, Mifflin & Cy ., 1908.

N. A.
Die Tafeln sind bei den Familien bezeichnet. Besonders wichtig ist die
Rehdersche Bearbeitung der chinesischen Viburnum.

68. Schmeil, 0. Botanische Wandtafeln. Taf. 10—11 Meerestange,
Hundrose, Leipzig 1908, 2 Farbendrucktafeln in-fol. m. Text in-8.

Tafel 11 betrifft Rosa canina.

69. Schneider, M. Botanik für Lehrer- und Lehrerinnenbildungs-
anstalten. 5. Aufl. Wien (A. Holder) 1907, 8°, p. 252. 343 Abb.. eine Karte.

.Nicht gesehen.

70. Schoenichen, Walter. Natur und Schule in den Vereinigten
Staaten von Nordamerika. (Wissenschaftliche Beilage zum Jahresbericht
des Helmholtzrealgymnasiums zu Schöneberg, Ostern 1908, 87 pp. mit 23 Ab-
bildungen.)

Verf. fasst die auf einer Reise durch die östlichen Vereinigten Staaten
gesammelten Eindrücke zum Schlüsse folgendermassen zusammen:

..Ausgestaltung des naturkundlichen Unterrichtes zu einer Schule der
Beobachtungskunst.

11 1 Handbücher, Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines). H

Bevorzugung lebender Objekte als Substrat für diese Beobachtungskunst.

Verwendung der üublettenbestände der Museen für die Zwecke der
Schule.

Die vorbildliche Zeichenfertigkeit der Lehrer.

Übung der Schüler in den freieren Arten des Zeichnens, d. h. nach der
Natur und aus dem Gedächtnis.

Häufiger Besuch von Museen und anderen öffentlichen Bildungs-
instituten.

Abhaltung von Projektionsvorträgen für Schüler in den Museen.

Ausgestaltung der Museen zu Volksbildungsanstalten nach didaktischen
Grundsätzen.

Einrichtung besonderer Museen für Kinder oder von Chiidren Booms
in den bereits bestehenden Museen.

Ausgestaltung der zoologischen Gärten nach biologischen Grundsätzen.

Betonung der Exkursionen in die freie Natur als eines integrierenden
Gliedes des Naturkundeunterrichtes.

Anleitung der Schuljugeud zum Beobachten der Singvogel.

Ausgestaltung der Schulgärten zu Arbeitsstätten für die Schuljugend.

Anregung der Schulkinder zu häuslicher Blumenpflege durch Verteilung
von Samen.

Einrichtung der Schulgärten nach wirtschaftlichen und handelsgeographi-
schen Gesichtspunkten.

Abhaltung mikroskopischer Kurse an den höheren Schulen.

Auswahl der gewöhnlichsten Objekte und Prozesse für den Naturkunde-
unterricht der Volksschule ohne Rücksicht auf ein wissenschaftliches System.

Unterstützung des Naturkundeunterrichtes durch andere Lehrfächer wie
Zeichnen, Erdkunde, Lektüre.

Behandlung der Abstammungslehre in den höheren Schulen.

Eorderung genauer Kenntnis der heimischen Natur für den Lehrer der
Naturkunde.

A'orbereitungen der Lehrer für Naturkunde durch Vorlesungen über die
Methodik ihres Uaches sowie durch praktische Übungen im Zeichnen, Experi-
mentieren und Unterrichten. Fedde.

71. Schönland, S. Some aspect of recent progress in [iure and
applied natural science. (Rept. South African Ass. Advanc. Sc, 1908,
p. 143—154.)

Nicht gesehen.

72. Schulz, P. F. F. Unsere Zierpflanzen. Eine zwanglose Auswahl
biologischer Betrachtungen von Garten und Zimmerpflanzen, sowie Park-
gehölzen. Leipzig, Quelle & Meyer, 1909, S<>, VIII, 210 pp., 12 Taf. (5 färb.),
Zahlr. Abb. (08 photogr.).

In erster Linie gärtnerisch wichtig.

72a. Shirasawa, Homi. Iconographie des Essencs forestieres du
Japon. Tome II, 74 planches col. in gr. 8°, Tokio 1908. Text in 8°. Japanisch.

Die sehr exakt ausgeführten Tafeln dieses zweiten Bandes der wert-
vollen Iconographie sind am Kopfe der betreffenden Familien verzeichnet.
Der Text ist durchweg japanisch gehalten.

73. Skärman, J. A. 0. Kurs i botanik. Afsedd för realskolans sjätte
klass (Supplement tili B. J. Torsells inledning tili botaniken), 8:039 s., 1907.

Nicht gesehen.

12 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [12

74. Smalian, Karl. Grundzüge der Pflanzenkunde. Für höhere
Lehranstalten. Ausgabe A. für Eealanstalten. Zweite Auflage. Leipzig,
G. Freytag, 1908, Wien, F. Tempsky, 288 pp., mit 344 Abbildungen und 36
Farbentafeln, geb. 4 Mk. oder 4,80 Kronen.

Kryptogamen und Phanerogamen wurden in der Neuauflage vereint,
damit ein Nachschlagen der früheren möglich wäre. Dagegen ist Pflanzenphysio-
logie und Anthropologie in einem besonderen Bändchen für die Oberstufe zu-
sammengestellt worden. Sonstige Änderungen sind geringfügiger.

F. Fedde.

75. Strasburger, E. Das kleine botanische Prakticum. 0. Aufl.
Jena, G. Fischer, 1908, mit 128 Fig.)

Entsprechend dem Fortschritt unserer Erfahrungen angepasste Neu-
auflage.

76. Strasburger, E., Noll, F., Schenck, H. und Karsten, G. Lehrbuch der
Botanik für Hochschulen. Jena, G. Fischer, 1908, 9. Aufl., 8°, VII, 628 pp.,
782 zum Teil färb. Abb.

Auch diese Neuauflage ist gleich den früheren eingehend revidiert

worden.

77. Strasburger, E., Noll, F., Schenk, H. and Karsten, G. Textbook of
Botany. 3. english edit. revised on the 8. german edit. by W. H. Lang.
London and New York, Macmillan, 1908, 8«, X, 746 pp., 779 fig.

78. Sudworth, G. B. Forest trees of the pacific slope. Washington,
Forest Service U. S. Dept. Agric, 1908, 8°, 441 pp , 2 pl , 207 fig.)

Nicht gesehen.

79. Thonner, Franz. Die Blütenpflanzen Afrikas. Eine Anleitung
zum Bestimmen der Gattungen der afrikanischen Siphonogamen. Berlin 1908,
8°, 672 pp., 150 Tafeln und eine Karte.

Dies Buch ist besonders der Tafeln halber sehr wertvoll, die bei den
einzelnen Familien verzeichnet sind. Vgl. sonst unter „Pflanzengeographie".

80. lellenberg, E. Taschenbuch und Repetitorium der allge-
meinen Botanik, nebst tabellarischem Anhang: Systematik. Berlin
1908, 8°.

Nicht gesehen.

81. Vilmorin-Amlrieux et Cie. Les fleurs de pleine terre. 5. edit.
Paris Villmorin-Andrieux and Cie., 190!), 8°, VI, 1375 pp., ill. de plus de
1800 grav.

In erster Linie gärtnerisch bedeutsam, doch sind die Beschreibungen
auch botanisch wertvoll, die Abbildungen dagegen minderwertig.

82. Voigt, Albert. Lehrbuch der Pflanzenkunde für den Unter-
richt an höheren Schulen, sowie für die erste selbständige Fortbildung
der in den Anfangsgründen der Pflanzenkunde geschulten Jugend. III. Teil.
Anfangsgründe der Pflanzengeographie, oder Ökologisch-pflanzen-
geographische Heimatskunde mit Ausblicken auf die fremdländische Pflanzen-
welt und mit Berücksichtigung wichtiger Kulturpflanzen. Hannover und
Leipzig, Hahnsche Buchhandlung, 1908, 371 pp , mit 44 Textabbildungen. —
Hierzu die Geleitschrift:

Voigt, Albert. Die Pflanzengeographie in den botanischen Schul-
büchern. 23 pp.

Es ist dies das erste Mal, dass ein Verf. mit einer von dem übrigen
Stoffe gesonderten ökologischen Pflanzengeographie für Schulen hervortritt,

13] Handbücher, Lehrbücher, Unterricht (Allgemeines). 13

einem Unterrichtszweige, der leider bisher wohl auf den meisten Schulen
völlig vernachlässigt worden ist. Es ist aber eine andere Frage, ob trotz der
Einführung biologische Kurse in den oberen Klassen der höheren Lehranstalten
zu einer so eingehenden Behandlung des Stoffes Zeit sein dürfte. Gut ist es
jedenfalls, dass mit diesem Werke ein Buch erschienen ist, das man nicht nur
Schülern, sondern auch angehenden Volkschullehrern und Studenten empfehlen
kann, wenn sie sich in bequemer Weise über das einschlägige Gebiet unter-
richten wollen.

Im ersten Teil werden die allgemeinen physikalischen Einflüsse auf die
Pflanze behandelt, wie Licht, Wärme, Wind, Luftfeuchtigkeit und Nieder-
schläge, Luft und Wasser im Boden, chemische Stoffe im Boden, während der
zweite Teil den Feuchtigkeitsverhältnissen im besonderen gewidmet ist.
Wie diese verschiedenen physikalischen Bedingungen wirken in ihrer Ver-
teilung in den einzelnen Gegenden Mitteleuropas, zeigen uns die folgenden
Kapitel: Mitteleuropäische Wälder, offne Fluren Deutschlands und seiner
Nachbarländer vom Tieflande bis zum Berglande, die Pflanzenwelt des Hoch-
gebirges. Es wird Sache der Geographen sein, auch seinerseits aus diesen
Kapiteln das viele Wissenswerte im Unterrichte zu verwenden und vor
allen Dingen die Schüler darauf hinzuweisen. Den Schluss bildet das Kapitel:
Kulturland. Unkräuter und Kulturpflanzen, in dem nach einer kurzen Be-
sprechung des Einflusses der Kultur auf die wilde Pflanzenwelt und der
Unkräuter eine Übersicht über die wichtigeren Nutzpflanzen in systematischer
Anordnung gegeben wird. Zusammenfassend kann man nur sagen, dass der
Verfasser die neueren Forschungsergebnisse des Gebietes, besonders die
Schimper und Warmings in leicht fasslicher und übersichtlicher Weise
verarbeitet hat. F. Fedde.

83. Warburg, 0. und Someren Brand, J. E. van. Kulturpflanzen der
Weltwirtschaft. Leipzig, R. Voigtländer o. J., 1908, 4°, XIV, 411 pp., 653
schwarz und 12 färb. Abb.)

Das ausgezeichnet ausgestattete Werk ist populärer Natur und bringt
Schilderungen von Baumwolle, Kaffee, Kakao, Mais, Reis, Tabak, Tee, Wein,
Weizen, Zucker usw.

84. Ward, H. M. Trees, a handbook of forest-botany, IV. Frnits.
Cambridge, Univ. Press, 1908, 8°, 161 pp., 147 fig., 1 pl.

Dieser vierte Band behandelt die Früchte.

85. Wason. Plants used in Paper-making. (Bombay N. Hist. Soc.
Jonrn., XVIII, 1908, p. 703—704.)

Wiederabdruck aus „The Field".

86. Weed, C. M. Wild Flower Families. The haunts. characters.
and family relations hips of the herbaceous wild flowers, with suggestions for
their identification Philadelphia and London J. B. Lippincott Company, 1908,
120, 214 pp., 84 fig.

„A stimulating aid to nature study in the Eastern United States, with
a wealth of original illustrations, chiefly from photographs of freshly gathered
specimens."

Nach Trelease, im Bot. Centrbl.

86a. Wessberge. Die wichtigsten Baumarten unserer städtischen
Gartenanlagen. Aachen 1908, 8°, 94 pp., ein Plan, 15 Tai., eine färb. Karte.

Gärtnerisch.

14 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [14

87. Westeil, Percival, W. and Cooper, ('. S. The Young Botanist.
With eight colonred, and sixty-three black and white plates, drawn from
nature. by C. F. Newall. London 1908, 40 -f 200 pp.

Nicht gesehen.

88. Wettstein, R. von. Der naturwissenschaftliche Unterricht an
den österreichischen Mittelschulen. Herausgegeben unter Mitwirkung
von J. Brunnthaler, K. Fritsch, H. Launer, P. Purtscheller und E. Witlaczil.
Wien, F. Tempsky, 1908, 8", 103 pp.

B9. Wettstein, II. von. Handbuch der systematischen Botanik.
II. Bd.. 2. Teil. 2. Hälfte. Leipzig und Wien, F. Deuticke, 1908, p. 395—578,
Fig. 393—496.

Mit der Herausgabe dieses Teiles ist nunmehr das gesamte Werk endlich
abgeschlossen. Der erste Teil des IL Bandes p. 1 — 100, Fig. 127 — 227 erschien
1903. die erste Hälfte des 2. Teiles dieses Bandes folgte 1907 (p. 161—394,
Fig. 228— 392).

Das Buch ist nicht nur ausgezeichnet ausgestattet, sondern auch über-
sichtlich gegliedert und klar und fasslich geschrieben.

Band I (erschienen im März 1901) umfasst:

A. Allgemeiner Teil.

Aufgaben der systematischen Botanik. — Geschichtliche Entwicklung
der systematischen Botanik. — Prinzipien der phylogenetischen Systematik.

— Systematische Einheiten. — Monophyletische und polyphyletische Ent-
wicklung. — Methoden der phylogenetischen Systematik. — Die Entstehung-
neuer Formen im Pflanzenreich als Voraussetzung der phylogenetischen Ent-
wickeln ng.

B. Spezieller Teil.
Allgemeine Übersicht der Pflanzenstämme. — I. Myxophyta. — II. Schizo-
phyta. - - III. Zygophyta- — IV. Euthallophyta — V. Phaeopihyta. — VI. Rhodo-
phyta. — Namen- und Sachregister.

Der Inhalt von Band II gliedert sich wie folgt:

VII. Stumm, Cormophyta. — Der entwickelungsgeschichtliche Zusammen-
hang der Cormophyten. Die Homologien zwischen den Gruppen der
Cormophyten. — Die Ursachen der Veränderung der homologen Organe der
Cormophyten.

I. Abteilung: Archegoniatae. — 1. Unterabteilung: Bryophyta. — 1. Klasse:
Musci. — 2. Klasse: Hepaticae. 2. Unterabteilung: Pteridophyta. —
1. Klasse: Füicinae. — 2. Klasse: Equisetinae. — 3. Klasse: Lycopodinae.

II. Abteilung: Anthophyta. 1. Unterabteilung: Gymnospermae. —

1. Klasse: Cycadinae. — 2. Klasse: Bennettitinae- — 3. Klasse: Cordaitinae.

— 4. Klasse: Ginkgoinae. — 5. Klasse: Coniferae. — 6. Klasse: Gnetinae.

2. Unterabteilung: Angiospermae. — Allgemeine Morphologie. — Phylogenie
der Angiospermen. Die Ableitung des Befruchtungsvorganges der Angio-
spermen von dem der G3^mnospermen. — Die Entwickelung der Blüte der
Angiospermen aus derjenigen der Gymnospermen. — Leitende Gesichtspunkte
bei der systematischen Anordnung der Angiospermen. — Übersicht der syste-
matischen Hauptgruppen der Angiospermen.

1. Klasse: Dicotyledones. — 1. Unterklasse: Choripetalae, Monochlamydeae,
Dialypetaleae. - - 2. Unterklasse: Synpetalae. — 2. Klasse: Monocotyledones.

15]

Handbücher, Lehrbücher, Unterricht Allgemeines).

15.

Übersicht der Reihen der Angiospermen und ihrer entwickeluugs-

geschi entliehen Beziehungen.

Namen-

Berichtigungen.

und Sachregister.

ohne klare genetische Beziehung.

Es ist unmöglich, all die bemerkenswerten Einzelheiten anzuführen, die
in den verschiedenen Kapiteln enthalten sind. Besonders wichtig erscheinen
die einleitenden Abschnitte bei Cormophyta xind Angiospermae. Hier sucht Verf.
im Kapitel über „Die Entwickelung der Blüte der Angiospermen aus derjenigen
der Gymnospermen" eine neue, sehr ansprechende Hypothese zu entwickeln.
Die Monocotyledonen lässt Verf. den Dicotyledonen folgen, da sie nach seiner
Ansicht sich von diesen ableiten lassen, wobei aber ihre Abzweigung sehr
früh (Polycarpicae) erfolgt ist.

Im allgemeinen hält sonst Verf. das Engler-Prantlsche System fest,
weicht aber hier und da in seiner Auffassung der genetischen Zusammenhänge
nicht unwesentlich ab. Wir erkennen seine Ansicht am besten in der „Über-
sicht der Reihen der Angiospermen und ihrer mutmasslichen entwickelungs-
geschichtlichen Beziehungen", die wir im folgenden wiedergeben :

1. Klasse. Dicotyledones.
1. Unterklasse. Choripetalue.
Entwickelungsstufe : Monochlamydeae.
Verticillatae. — Genetische Beziehungen zu den Gymnospermen.
Wagales. I Reihen mit ursprünglichen Merkmalen, einander

Myricales. ) nahestehend, keine direkten Beziehungen zu
Juglandales. ) Reihe 1.

Salicales. — Isoliert stehend. Morphologisch den Reihen 2 — 4- sich
nähernd, aber

Urticales. — Wahrscheinlich
Reihen 2—4.

Proteales- — Relativ ursprüngliche Merkmale
1 — (5 in keiner direkten Beziehung stehend;
nach anderer Richtung zeigend.

Santalales. — Sicher in Beziehung zur Reihe 7 stehend.
Piperales- — Isoliert stehend. Genetische Beziehung ungeklärt.
Hamcunelidales. — Übergangsreihe zwischen den Movoclilamijdcar
und Dialypetaleae. Beziehungen einerseits zu Reihe 6, anderseits
zu Reihe 14.

Tricoccae. — Übergangsreihe zwischen den Monochlamydeae und
Dialypetaleae. Beziehungen einerseits zu Reihe (». anderseits zu
den Reihen 18-21.

Centrospermae. — Übergangsreihe zwischen den Monochlamydeat
und Dialypetaleae Beziehungen einerseits zu Reihe 6, anderseits
mit den dialypetalen Caryophyllaceae abschliessend.
2. Entwickelungsstufe: Dialypetaleae.

14. Reihe. Polycarpicae. — Beziehungen zur 11. Reihe.

15. Reihe. RJtoeadales- — Beziehungen zur 14. Reihe deutlich.

16. Reihe. Parietales. — Beziehungen zur 15. Reihe deutlich.

17. Reihe. Guttiferales. — Beziehungen zur 14. Reihe.

18. Reihe. Columniferae. — Beziehungen zur 12. Reihe sehr wahrscheinlich.

19. Reihe. Gruinahs. — Beziehungen zur 18. Reihe deutlich.

1. Reihe.

2. Reihe.

3. Reihe.

4. Reihe.

5. Reihe.

6. Reihe.

7. Reihe.

genetische

Beziehungen

zu

den

Mit den Reihen
eine Entwickelunu

8.

Reihe.

9.

Reihe.

11.

Reihe.

12.

Reihe.

13.

Reihe.

16 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. 1 16

20. Reihe.

Terebinthales. — Analoge Abstammung wie die der 18. und 19. Reihe
wahrscheinlich.

21. Reihe. Celastrales. \ „ . . .... r) ., -. .->■ <

Beziehungen zur 20. Reihe deutlich.

22. Reihe. Rhamnales. \

23. Reihe. Rosales. — Beziehungen zur Reihe 14 deutlich.

24. Reihe. Myrtales. — Beziehungen zur 23. Reihe deutlich.

LT». Reihe. Umbelliflorae. — Beziehungen zum Typus der Reihen 20, 21 und 22
wahrscheinlich.

2. Unterklasse. Synpetalae.

1. Reihe. Plumbaginales. — Beziehungen zur 13. Reihe der Choripetalae

deutlich.

2. Reihe. Bicornes. — Beziehungen zur 17. Reihe der Choripetalae sehr wahr-

scheinlich.

3. Reihe. Primulales. — Beziehungen zur 17. Reihe der Choripetalae sehr

wahrscheinlich.

4. Reihe. Diospyrales. — Beziehungen zu den Reihen 18—22 unter den Chori-

petalae möglich.

5. Reihe. Convolvulales. — Beziehungen zum Typus der Reihen 18—22 unter

den Choripetalae wahrscheinlich.

6. Reihe. Tubiflorae. Beziehungen zur 23. Reihe der Choripetalae.

7. Reihe. Contortae. - - Beziehungen zur 6. Reihe des Synpetalae.

8. Reihe. Ligustrales. — Beziehungen zur 21. Reihe der Choripetalae sehr

wahrscheinlich.

9. Reihe. Rubiales. — Beziehungen zur 25. Reihe der Choripetalae sehr wahr-

scheinlich.
10. Reihe. Synandrae. — Beziehungen zu Familien der 16. Reihe der Chori-
petalae sehr wahrscheinlich.

II. Klasse. Monocotyledones.

1. Reihe. Helobiae. — Beziehungen zur 14. Reihe der Choripetalae sehr wahr-
scheinlich.

Liliifforae. — Beziehungen zur vorigen Reihe deutlich.
Enantioblastae- — Beziehungen zur vorigen Reihe deutlich.
Ghtmiflorae. — Beziehungen einerseits zur Reihe der Liliiflorae,
anderseits zu der der Enantioblastae.

5. Reihe. Scitamineae. - Beziehungen zu dem durch die 2. Reihe der Mono-
cotyledonen vertretenen Typus sehr wahrscheinlich.
Gynandrae. — Ebenso.

Spadiciflorae. — Beziehungen zu dem durch die Liliifloren vertretenen
Typus wahrscheinlich.

90. Wildeinan, Eni. de. Plantae novae vel minus cognitae ex
herbario Horti Thenensis, II. 1. Livr., 1908. pl. LVII— LXXI. N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und Tafeln bei den einzelnen Familien.

91. Wildeinan, Em. de. Les plantes tropicales de grande eulture.
Tome I: Cafeier, Cacaoyer, Vanillier, Colatier, Bananier. 1 vol., gr. in-8 °,
400 pp., 64 Textf., 22 Tafeln, Brüssel 1908.

Die einzelnen Artikel enthalten viele auch botanisch wertvolle Hinweise.
Vgl. im agrikulturbotanischeu Teile des Just.

92. Willis, J. C. Manual and dictionary of the flowering plants
and ferns. 3. edit. Cambridge 1908, 8 0, 724 pp.

Nicht gesehen.

2. Reihe.

3. Reihe.

4. Reihe.

6. Reihe.

7. Reihe.

171 Noiuenolatur. 17

93. Wood, J. M. Natal Plants. Etided by the author and the Natal
Government Herbarium. Vol. V, Part 4. Durban 1908, 4 °, 25 pl. with text.

Die Tafeln sind bei den einzelnen Familien verzeichnet.

II. Nomenclatur.

94. Britten, James. Amateur-Noraenclature. (Journ. of Bot., XLVI,
1908, p. 376-380.)

Polemik mit A. J. Ewart über nomenclatorische Fragen, auf deren
Einzelheiten hier nicht eingegangen werden kann.

95. Bnrtt-Davy, J. Tbe generic names of South African plants
retained under Article 20 of the Vienna Rules of botanical nomenclature.
(Rept. South African Ass. Advanc. Sc, 1908, p. 237—245.)

Namensänderungen auf Grund der Wiener Regeln.

96. Butler, C. Pronouncation of plant names. (Gard. Chron., 3. ser.,
XL1V, 1908, p. 234, 267, 283, 309, 341, 373, 390, 414-415, 434—435.)

Namenliste mit Angabe der Accente.

97. Cheeseman, T. P. Notes on Botanical Nomenclature; with
Remarks on the Rules adopted by the International Botanical Congress of
Vienna. (Trans. New Zeal. Inst. Well., XL, 1907, p. 447—465.)

Verfasser behandelt verschiedene Paragraphen eingehend und gibt zum
Schluss einen Index solcher Namen neuseeländischer Farne, die auf Grund
der Wiener Regeln geändert werden müssen.

98. (iiffoi'd, J. The names of mahagony. (Forestry and Irrigation,
XIV, 1908, p. 196—198.)

Verzeichnis der verschiedenen botanischen Quellen von Nutzhölzern, auf
die der Name Mahagoni angewendet wird.

99. Gravisi, (i. Nomi locali istriani derivati da nomi di piante
(Pagine istriane, VI, p. 107—114, in-8 °, Capodistria 1908.)

Referat nicht eingegangen.

100. Hall, H. M. Nomenclature of the wild sages. (Pacific Rural
Press., LXXV, 1908, p. 116.)

Nicht gesehen.

101. Harms, H. Über die Frage der sog. „totgeborenen Namen"
(noms mort-nes). (Verh. Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. LH — LIX.)

Auszug aus einem Vortrag. Man vgl. das Referat über Hayeks Arbeit
(No. 102), da Verf. der gleichen Ansicht wie Hayek ist.

102. Hayek, A. von. Zur Frage der totgeborenen Namen" (noms
mort-nes) in der botanischen Nomenclatur. (Mitt. Naturw. Ver. Univ.
Wien. VI, 1908, p. 57-65.)

Verf. nimmt Stellung zu dem Run Ischreiben von Schinz und Thellung
(vgl. Ref. 112). Er erklärt sich aus folgenden Gründen gegen das Prinzip:

1. Das Prinzip der totgeborenen Namen kompliziert die Durchführung der
Nomenclaturregeln in ganz überflüssiger Weise, bringt nur Unklarheit
und Verwirrung und lässt überdies den persönlichen Ansichten Ein-
zelner darüber, welche Namen als totgeboren anzusehen sind, einen

ausserordentlich grossen Spielraum.

2. In den Nomenclaturregeln ist ein die totgeborenen Namen betreffender

Passus nicht nur weder implicite noch explicite enthalten, sondern der
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 29.4.10.) 2

Itf C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [ 18

Wiener Nomenclaturkongress 1905 hat die Anträge, welche die Unter-
drückung dieser „noms mort-nes" fordern, direkt abgelehnt.
Diese seine Bedenken illustriert Verfasser durch Vorführung einiger
Beispiele.

103. Henriqnes, J. A, Reglas internacionaes de nomenclatura
botanica, adoptadas no Congresso de Vienna em 1905 (traduccao). (Bol. Soc.
brot. Coimbra, XXIII, 1908, p. 176-199.)

Erläuterung der Wiener Regeln.

104. Herand, A. Nouveau dictionnaire des plantes medi cinales.
4. edit. Paris 1908, 8°, 653 pp., 292 Fig.

Nicht gesehen.

105. Janchen, Erwin. Einige durch die internationalen Nomen-
claturregeln bedingte Änderungen in der Benennung mittel-
europäischer Pflanzen. (Mitt. Naturw. Ver., V, 1907, p. 83-100, 105—107.)

106. Janchen, Erwin. Nachträge und Berichtigungen zu obigem.
(Mitt. Naturw. Ver., V, 1907, p. 108-112.)

107. Janchen, Erwin. Zur Nomenclatur von Gattungsnamen.
(Östr. Bot. Zeitschr., LVIII, 1908, p. 466—470.)

Verf. macht Vorschläge zur Erweiterung der vom Wiener Kongress
acceptierten „Ausnahmsliste" und führt eine Anzahl gebräuchliche Gattungs-
namen an, deren Erhaltung er trotz des Prioritätsgesetzes empfiehlt.

108. Kanngiesser, F. Die Etymologie der Phanerogamennomen-
clatur. Eine Erklärung der wissenschaftlichen deutschen, französischen,
englischen und holländischen Pflanzennamen. Gera, F. von Zezschwitz, 1908,
8 0, XII, 191 pp.

Nicht gesehen.

109. Lyons, A. B. Plant names, scientific and populär. Detroit,
Michigan, 1908, 8°.

Nicht gesehen.

110. Palla, Ed. Gegen den Artikel 36 der internationalen
Regeln der botanischen Nomenclatur. (Östr. Bot. Zeitschr., LVIII, 1908,
p. 55—60.)

Artikel 36 der Wiener Regeln besagt, dass ab 1. Januar 1908 nur solche
tarnen gültig sein sollen, denen eine lateinische Diagnose beigegeben ist.
Verf. hält diesen Artikel zunächst für in Widerspruch mit Artikel 3 stehend,
wonach die Regeln der Nomenclatur weder willkürlich noch aufgedrungen
sein dürfen. Er betont, dass ein Pflanzensystematiker wohl die Morphologie,
Anatomie und Physiologie beherrschen soll, dass man ihm aber die Kenntnis
einer toten Sprache nicht aufzwingen darf.

Verfasser weist darauf hin, dass bei den Zoologen der Gebrauch der
deutschen, englischen, französischen, italienischen und lateinischen Sprache für
Diagnosen empfohlen wird, dass aber eine Regel für den Gebrauch einer
bestimmten Sprache niemandem aufgezwungen werden kann.

Zum Schluss weist er darauf hin, dass es für Plagiatoren sehr leicht sei,
solche Diagnosen, die nicht lateinisch publiziert sind und daher als ungültig
anzusehen wären, einfach zu übersetzen, worauf man die Plagiate acceptieren
müsste. Verf. wünscht, dass der Brüsseler Kongress 1910 diesen Artikel 36
aufhebe.

19] Technische Hilfsmittel. 19

111. Peckolt, Tli. Volksbenennungen der brasilischen Pflanzen
und Produkte derselben in brasilianisch-portugiesischer und Tupi-
sprache. Milwaukee 1908, 8 <>, 252 pp.

Nicht gesehen.

112. Schinz, Hans und Thelhing, A. Begründung vorzunehmender
Namensänderungen in der 2. Auflage der „Flora der Schweiz" von
Schinz und Keller. (Vierteljahrsschr. naturf. Ges. Zürich, LIII, 1908,
p. 493—593)

Verff. bringen zunächst einen „Bericht über eine Enquete, betr. die tot-
geborenen Namen' in der botanischen Nomenclatur". Sie verstehen darunter
solche Namen, „deren Aufstellung von Anfang an unter Verletzung einer Regel
(speziell der Art. 48 und 50) erfolgt ist, die daher keinen Anspruch auf Berück-
sichtigung machen können und namentlich nicht zur Bildung neuer Kombi-
nationen herangezogen werden können".

Verff. erörtern dann, dass sie das Prinzip der totgeborenen Namen ver-
treten, weil es nach ihrer Auffassung „ein direkter Ausfluss der Art. 15 und 56
der Wiener Regeln ist". Sie weisen aber darauf hin, dass verschiedene Artikel
derselben verschiedene Interpretationen von seiten der Autoren erfahren.

Dann wenden sich Verff. gegen Hayeks Thesen (siehe oben Ref. 102).
Sie halten dafür, dass „die Berechtigung (bzw. Gültigkeit) eines spezifischen
Epithetons unabhängig ist von der Berechtigung des Gattungsnamens, in Ver-
bindung mit welchem es publiziert wurde". Des weiteren diskutieren die
Verff. Antworten von anderer Seite und definieren schliesslich den Begriff tot-
geboren wie folgt: „Als ,totgeboren' sind zu bezeichnen diejenigen Namen,
deren Aufstellung den Nomenclaturregeln (speziell der Art. 15, 48 und 50 der
Wiener Regeln) nicht entspricht, die daher nach Art. 15 nicht als .gültig' zu
betrachten sind und folglich in den in Art. 56 vorgesehenen Fällen nicht zur
Bildung neuer Kombinationen herangezogen werden dürfen."

Dann folgt das Verzeichnis der Namensänderungen.

113. Zimmermann, K. von. Volkstümliche Pflanzen- und Tier-
namen. (Mitt. Nordböhm. Exkurs. Klubs, XXXI, 1908, p. 113—148.)

Nicht gesehen.

III. Technische Hilfsmittel.

114. Behrens, W. Tabellen zum Gebrauch bei mikroskopischen
Arbeiten. 4. verb. Aufl., herausgegeben von E. Küster. Leipzig, S. Hirzel,
1908, 8°, VIII, 245 pp.

115. Johnson, T. Elektrische Samenprüfung. (Jahrb. Ver. angew.
Bot., V, p. 102—112, 4 Fig.)

116. Klincksieck, P. et Valette, Th. Code des couleurs, ä l'usage
des naturalistes, artistes, commercants et industriels. Paris, P.
Klincksieck, 1908, 8°. 86 pp., dont 48 avec 720 types de couleurs.

117. Mitscherlich, E. A. Ein registrierendes Photometer. (Landw.
Versuchsstat., LXVIII, 1908, p. 467—478.)

118. Moffat, E. Light filters for photomicrography. (Journ. Roy,
Microsc. Soc, 1908, p. 20—22.)

119. Moll, J. W. Die Fortschritte der mikroskopischen Techni k
seit 1870. (Progr. Rei Botanicae, 1908, II, p. 227—291.)

9*

20 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [20

Der Inhalt gliedert sich wie folgt:
Einleitung.

Kapitel 1. Allgemeine Übersicht über die Mikrotechnik um das Jahr 1870
und die Entwickelung derselben seit dieser Zeit.
§ 1. Der Arbeitsraum und die Beleuchtung.
§ 2. Das Mikroskop und seine Nebenapparate.

§ 3. Apparate, Methoden und Hilfsmittel zur Darstellung mikro-
skopischer Präparate.
§ 4. Die weitere Behandlung der mikroskopischen Präparate.
Kapitel II. Einige wichtige spezielle Methoden der modernen Mikrotechnik.

A. Die der Technik auf dem Gebiete der tierischen Histologie entlehnten
Methoden.

Einleitung.
§ 5. Die Fixierungsmethoden.
§ 6. Die Färbungsmethoden.
§ 7. Die Mikrotomtechnik.

Das Mikrotom.

Die Einbettungsmethoden.

Die Paraffineinbettung.

Die Schnittbänder.

Das Abziehen der Messer zur Erzielung sehr dünner Schnitte.

Die Methode der mikroskopischen Präparate zweiter Ordnung.

Die Celloidineinbettung.

B. Die spezifisch botanischen Methoden.

§ 8. Die plasmolytische Methode von de Vries.
§ 9. Die Erhitzungsmethode van Wisselinghs.
§ 10. Die Lösungsmethode van Wisselinghs.
§ 11. Die Methode Gerassimoffs und die Zentrifugalmethode.
Zusammenfassung.

120. Pierce, G. J. A new respiration calorimeter. (Bot. Gaz.,
XLVI, 1908, p. 193—202.)

121. Pollacci, G. Nuovo metodo per la conservazione di organe
vegetali. (Atti Ist. Univ. Pavia, 2, XI, 1908, p. 308—309.)

122. Scala, A. C. La tecnica de la doble coloraciön diferencial
en histologia vegetal. (Rev. Mus. da Plata, XV, 1908, p. 221—225.)

IV. Keimung.

123. Brown, Edgar and Goss, Willard L. The Germination of Vege-
table Seeds. (U. S. Dept. Agric. Washington; Bur. of PI. Industry, Bull.
131, pt. I, 1908, p. 5—10.)

Verf. vergleicht die Keimfähigkeit des sog. „Commission seeds" mit der-
jenigen der Samen, die in „the Congressional seed distribution" verteilt wurden
und findet, dass die ersteren um 25,7 % weniger keimfähig sich erwiesen.

124. Buchet, S. et Gatin, C.-L. Un cas de polyembryonie chez le
Triglochin palustre L. et une germination anormale de V Arisarum vulgare
Targ.-Tozz. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 164—169, Fig. 1—6.)

Im ersten Falle handelt es sich um einen Samen von Triglochin, der
zwei Embryos besass, die sehr ungleich gross waren.

21 1 Allgemeine Biologie. 21

Bei Arisarum wurde ein Keimling beobachtet, dem der Cotyledon fehlte,
dieser war nur durch einen zackigen Rand der Cotyledonarscheide angedeutet.
Die physiologische Rolle der Cotyledonspitze als Saugorgan hatte die Spitze
des ersten Laubblattes übernommen.

125. Gnilliermond, A. Recherches cytologiques sur la germi-
nation des grains de quelques graminees et contribution a l'etude des
graines d'Aleurone. (Arch. anat. micr., X, p. 141 — 226, pl. I — VII.)

Siehe „Morphologie der Zelle" und „Chemische Physiologie".

126. Heinricher, E. Die Samenkeimung und das Licht. (Ber. D.
Bot. Ges., XXVIa, 1908, p. 298—301.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

127. Heinricher, E. Beeinflussung der Samenkeimung durch das
Licht. (Wiener Festschr., Wien 1908, p. 262—279.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

128. Hill, T. G. and Fraine, E. de, On the seedling structure of
Gymnosperms. I. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 689—712, 1 pl., 8 fig.)

Siehe „Anatomie".

129. Knpffer, K. R. Über Keimbildung ohne Befruchtung bei
Pflanzen. (Korresp.- Blatt Naturf.-Ver. Riga, LI, 1908, p. 129—131.)

Berichtender Vortrag. Fedde.

130. Lopriore, G. Studi anatomo-fisiologici sui semi del Nespolo
del Giappone. (Atti Accad. Gioenia Sc. Nat., ser. 5, vol. I, 29 pp. in-4,
Catania 1908.)

Referat noch nicht eingegangen.

131. Macchiati, L. Sulla germinabilita dei vecchi semi e dei
semi mutilati. (Bull. Soc. bot. ital., 1908, p. 141 — 151.)

Referat noch nicht eingegangen.

132. Modilewsky, Jakob. Zur Samenentwickelung einiger Urtici-
floren. (Flora, XLVIII, 1908, p. 423—470, m. 71 Textabb.)

Siehe unter „Morphologie der Zelle".

V. Allgemeine Biologie.

133. Adams, J. Studies in plant life. Dublin 1907, V u. 179 pp.
Nicht gesehen.

134. Bailey, L. H. and Coleman, W. M. First course in biology.
New York, Macmillan Cy.( 1908, 12°, XXV, X, 164 pp., 132 ff.

Nicht gesehen.

135. Begttinot, A. Sul prevalente sviluppo omoblastico in alcune
alofite. (Bull. Soc. bot. Ital., p. 29—30, Firenze 1908.)

Viele Halophyten im Bereiche der Lagunen Venedigs zeigen eine vor-
waltend homoblastische Entwickelung ihrer Laubblätter: ältere Pflanzen ent-
wickeln Blätter, welche den Primordialblättern ganz ähnlich sehen, weil sie
durch Nahrungsmangel und hauptsächlich durch Überschuss von Chlornatrium
in ihrer normalen Entwickelung gehemmt werden. Die gemachten Beob-
achtungen wurden auch experimentell an Taraxacum salinum, T. paludosinii,
Sonchus maritimus, Atriplex lüorale, Artemisia coerulescens u. a. verfolgt durch
Übertragung und fortgesetzte Kultur derselben in einem nahezu salzfreien
Boden. Nähere Versuchsergebnisse sollen noch später mitgeteilt werden.

22 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [22

Auch an dem Samen von Spergularia beobachtete B. die Ausbildung
eines breiteren Flügels, sobald dio Pflanzen auf salzreicherem, daher minder
nahrhaftem Boden wachsen. Er vermutet, dass in analoger Weise auch das
Sameneiweiss aus den Samen der ruderalen Chenopodiaceen, und bei vielen
"Wasserpflanzen, verschwinde mit der Verminderung der Nährstoffe.

Baccarini gibt zu, dass der Halophytismus eine Reduktion der Blatt-
spreiten bedingen könne, hält dagegen die Ausbildung des Samenflügels nicht
für eine Folge der gleichen Verhältnisse, solange wenigstens die Natur und
der Ursprung des Flügels in Relation mit den Nährgeweben der Samen nicht
genau nachgewiesen sein werden.

Beguinot bezieht sich, wiederum, auf das Vorkommen eines Flügel-
saumes bei den Samen von zwerghaften P1a7itago-Formen. Solla.

136. Blum. Beobachtungen über eigentümliche Stammbildungen
bei Urwald bäumen. (Naturw. Zeitschr. f. Land- u. Forstw., VIII, 1908,
p. 197-199, 2 Textfig.)

Verf. schildert eine merkwürdige Fichte, die dadurch zustande kam, dass
das Samenkorn auf den Rand eines Stockes gefallen war und sich hier ent-
wickelte. „Der Wurzelstrang, der von der Keimungsstelle sogleich am Stock-
rande nach abwärts streben konnte, war den anderen Strängen, die erst den
Umweg über die horizontale Stockabschnittsfläche machen mussten, weit vor-
aus; er hatte den Erdboden um vieles eher erreicht und kam dadurch und
infolge der geraden Fortsetzung vom Stamme zu besserem Gedeihen; zur Zeit
der Beobachtung hatte er genau die .Stärke des Stammes und unterschied sich
auch sonst äusserlich nicht von ihm; seine im Boden ansetzenden Verzwei-
gungen haben die Funktionen der Wurzel allein übernommen und die Tätig-
keit der anderen Stränge ausgeschaltet, so dass diese kümmern und voraus-
sichtlich bald absterben werden. Wenn dann in ferner Zeit die Abbruchstellen
überwachsen sein werden, wird niemand ahnen, auf welche merkwürdige Weise
der Stamm gebildet worden ist; dass er nämlich von der Keimungsstelle aus
ein zweiseitiges Längenwachstum hatte, vielmehr dass sein unteres 1,2 m
langes Stück überhaupt kein Stammstück, sondern ein Wurzelstück ist.

137. Blunier, J. 0. Some effects of Frost in the Southwest.
(Torreya, VIII, 1908, p. 25—26.)

Über die Wirkung eines strengen Frühjahrsfrostes auf die Entwickelung
von Blüten und Früchten.

138. Bohlin, K. Lärobok i biologi för realskolan. II. Botanik.
8: 04 + 120 s. + 10 t., 1907. - - Växternas lifsföreteelser. Särtryckur
Lärob. i. biol. 2 s. 85—11.").

Nicht gesehen.

139. Brissemoret, A. et Combes, R Contribution k l'etude du röle
biologique des quin on es. (C. R. Soc. Biol. Paris. LXV, 1908, p. 497.)

Nicht gesehen.

140. Brookland, T. H. Observations on Seedlings of North
American phaenogamous plants. (Ottawa Nat, XXII, 1908, p. 165 bis
174, 1 pl.)

Nicht gesehen.

141. Brotherus, V. F. Pflanzenphänologische Beobachtungen in
Finnland 1905 und 1906. Helsingfors, Druckerei der Finnischen Literatur-
gesellschai't 1907/08.

Die Beobachtungen, die. wie in den vorhergehenden Jahren, den An-

23 1 Allgemeine Biologie. 23

fang der Blüte, den Anfang der Fruchtreife, Laubentfaltung und allgemeine
Laubverfärbung umfassen, sind im Jahre 1905 an 44, im Jahre 1906 an 42 Sta-
tionen, von den südlichen Teilen des Landes bis (59° n. Br. (Inari) gemacht
worden. Nach Grevillius im Bot. Centrbl., CIX, 1908, p. 97.

142. Brunn, Julius. Geschichtliches über Mimosa und andere
Sensitive. (Jahrb. Schles. Ges., LXXXVI, 1908, Prakt. Obst- u. Gartenbau,
p. 19-31.)

Interessante Zusammenstellung bekannter Tatsachen. Betrifft Mimosa
pudica, Biophytum, Dionaen u. a. Wertvoll ist auch die Literaturübersicht.

143. Buclioltz, F. Über anormalen Generationswechsel bei
Pflanzen. (Korresp.-Blatt Natf.-Ver. Riga, LI, 1908, p. 137—138.)

Berichtender Vortrag.

144. Burck, W. Over de biologische beteekenis der nectaraf-
scheiding in de bloem. (Versl. kon. Ak. Wet., Amsterdam 1908, p. 473
bis 488.)

Nicht gesehen.

144a. Burck, W. Darwins Kreuzungsgesetz und die Grund-
lagen der Blütenbiologie. (Biol. Centrbl., XXVIII, 1908, p. 177-195.)
Siehe im blütenbiologischen Teile des Just.

145. lim kill. J. H. Notes on the Pollination of Flowers in India. Note
No. 6. The Spring Flora of the Simla Hills. (Journ. a. Proc. As. Soc,
Bengal, n. s, IV, 1908, p. 197-231, Fig. 15—16.)

Siehe „Blütenbiologie". Enthält zahlreiche interessante Details.

146a. Burkill, J. H. No. 5. — Some Autonome Observations in
the Sikkim Himalaja. (Journ. a. Proc. As. Soc, Bengal, n. s, IV. 1908,
p. 179—196.)

Siehe ebenda.

146b. Candolle, A. de. Biologie des capsules monospermes. (Arch.
Sei. phys. et nat, 4e ser., XXV, 1908, p. 228—249.)

Über diese Arbeit berichtet Boubier im Bot. üentrbl., CVIII, p. 289—291
wie folgt:

Der Autor hat sich die Frage gestellt, zu wissen, welches das biologische
Kennzeichen der monospermen Früchte oder Kapseln ist, die sich zur Zeit der
Reife öffnen, um ihren einzigen Samen zu entlassen, was ein relativ seltener
Fall ist, da die monospermen Früchte meist nicht aufspringen. Aus der syste-
matischen Revision des Verf. ergibt sich, dass es in 14 angiospermen Familien
Arten mit monospermen Kapseln gibt.

Bei den Gramineen, Chenopodiaceen, Loranthaceen, Euphorbiaceen,
Leguminosen und Convolvulaceen bilden solche Kapseln Anomalien. Die
ersten drei Familien sind im allgemeinen charakterisiert durch nicht auf-
springende monosperme Früchte, die drei letzten durch polysperme Früchte.
Bei den Rutaceen und Marantaceen dagegen bilden sie Gruppen von gewisser
Bedeutung und umfassen variable und zahlreiche Typen. Bei den Lacistema-
ceen und Connaraceen spielen sie eine vorherrschende Rolle. Die Myristicaceen
schliesslich haben nur diese eine Art der Fruktifizierung mit Ausschluss jeder
anderen. Ferner findet man noch monosperme Kapseln bei den Centrolepideen,
den Magnoliaceen und Plumbagineen.

Alle diese Fälle gruppieren sich in zwei Kategorien. Bei den einen ist
die Monospermie notwendig, denn die Frucht leitet sich von einem eineiigen
Ovar ab.

24 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [24

Bei den anderen ist sie accidentell, infolge Abort von einem oder
mehreren Ovula, die in einem ursprünglich mehrreihigen Ovar enthalten sind.
Man kann biologisch diese beiden Kategorien nicht vergleichen, denn es bleibt
möglich, dass unter günstigen Bedingungen die der zweiten Kategorie mehrere
Samen ausreifen würden. Dies führt den Autor dazu, zuzulassen, dass gewisse
dieser Pflanzen einst polysperme Kapseln gehabt haben und dass die
Monospermie eine sekundäre Erwerbung infolge einer Änderung der um-
gebenden Bedingungen ist.

Verf. betont dass die Annahme, dass notwendigerweise monosperme
Kapseln von polyspermen sich ableiten, unkontrollierbar ist und dass im Gegen-
teil bei Gruppen wie den Myristicaceen, Chenopodiaceen und Gramineen, die
nur monosperme Früchte besitzen, kein ernster Grand vorliegt, diese Hypothese
zu stützen.

Was die biologische Bedeutung des Aufspringens der monospermen
Kapseln betrifft, so sind die Daten, über die man verfügt, noch sehr unvoll-
ständig, da die meisten dieser Pflanzen exotische sind.

Man kann allenfalls versichern, dass für gewisse Gruppen das Auf-
springen vorteilhaft ist, während es für andere keinen Nutzen zu haben
scheint. In Hinsicht der Reifung kann das Aufspringen Vorteile haben, wenn
die Früchte sich lange vor der Samenreife öffnen oder wenn die Samen einige
Zeit ausserhalb der Frucht aufgehängt bleiben, wie es bei den Magnoliaceen,
Xanthoxyleen und Macaranga der Fall ist.

In Hinsicht der Dissemination kann die Dehiscenz mehr oder wenig wichtig
sein. Man findet z.B. bei den Loranthaceen typische Exemplare, welche den Samen
im Moment des Aufspringens des Pericarps weit herausgeschleudert zeigen. Das
gleiche ist bei gewissen Rutaceen der Fall. Anderseits muss man angeben, dass
man bei den monospermen Kapseln keinen Fall kennt, wo der Samen dem Transport
durch physische Agentien angepasst oder mit Vorrichtungen versehen ist, die
ihnen erlauben, sich im Fell von Tieren anzuhängen. Das Aufspringen der
Frucht würde unnütz erscheinen in den Fällen, wo die Samen von Vögeln
transportiert werden. Schliesslich ist das Aufspringen vielleicht selbst schädlich
in anderen Fällen, wie z. B. bei den asiatischen Neuropeltis, bei Hablitzia
tamnoides, bei gewissen Spatholobus und Butea-

Für Früchte, die der Verbreitung durch den Wind angepasst sind, wäre
es begreiflicherweise ungeeignet, wenn der Same ausfallen könnte, bevor
sie sich vom Pedunculus abtrennen.

Man muss jedenfalls gegen die Übertreibungen der Naturforscher sich
wenden, die sich nur von einem teleologischen Prinzip leiten lassen und überall,
bis in die unbedeutendsten Details den Organismen nützliche Anpassungen
sehen.

147. Cavers, P. Life histories of common plants. Cambridge,
Univ. Tutorial Press, Ltd., 1908, 363 pp.

Nicht gesehen.

147 a. Coaz. Baum- und Waldbilder aus der Schweiz. (Herausgeg.
vom schweizerischen Departement des Innern, Abt. Forstwesen, 1. Ser., Bern,
A. Francke, 1908, 20 Tafeln.)

Die Tafeln zeigen die Linde von Freiburg, die Ulme von Bissone
(Kanton Tessin), den Bergahorn im Melchtal, die Esche von Morillon bei Bern,
die Zigeunereiche bei Ramsen, die Rotbuche bei Flims, die Schwarzpappel in
Siebnen (Kanton Schwyz), die Linde von Scharans, die Akazie von Bern, den

25] Allgemeine Biologie. 25

Wallnussbaum in Gwatt bei Thun, die Lärche von Blitzingen, die Fichte von
Stiegeischwand bei Adelboden (Kanton Bern), die Nordmannstanne bei Genf,
die Zeder von Beaulieu, die Bettlereiche im Gwatt (2 Taf.), die Hängefichte
von Richisau ; die Arve von Muottas da Celerina (Oberengadin), die Säulen-
fichte an der Ofenbergstrasse, die chilenische Araucaria im sog. Weinberg
ob St. Margareten im Rheintale.

148. Coupin, H. Surla deuxieme floraison printaniere de Tanne e,
19 08. (C. R. Soc. Biol. Paris, LXV, 1908, p. 316.)

Nicht gesehen.

149. Darwin, C. Insectivorous plants. Cheap edition. London 1908,
80, 392 pp., ill.

Volksausgabe des bekannten Werkes.

150. Deane, A. The disperal of seeds. (Ann. Rept. and Proc, Belfast
Nat. Field Club, VI, 1908, p. 98—101.)

Siehe im blütenbiologischen Teile des Just.

151. Dobbin, F. By the pondside. (Amer. of Bot., XIV, Juli 1908,
p. 38—40.)

Nicht gesehen.

152. Engler, A. Die Pflanzenwelt Afrikas, insbesondere seiner
tropischen Gebiete, Grundzüge der Pflanzenverbreitung in Afrika und <lie
Charakterpflanzen Afrikas. II. Bd. Charakterpflanzen Afrikas (insbesondere
des tropischen). Die Familien der afrikanischen Pflanzenwelt und ihre Be-
deutung in derselben. 1. Die Pteridophyten, Gymnospermen und monocoty-
ledonen Angiospermen. Die Vegetation der Erde, Bd. IX, XI -4- 460 pp.,
16 Bild., 316 Fig. Leipzig, W. Engelmann.

Dieser Band ist biologisch von speziellem Interesse. Vgl. die Tafeln
bei den Familien. Sonst unter „Pflanzengeographie".

153. Faust, Fr. Schleuderer und Ballisten. Studien über Ver-
breitung der Pflanzensamen. (Naturw. Rundschau, N. F., VII, 1908, p. 669
bis 696, 21 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

154. Fortier, E. Notes teratologiques. Vinca minor L. et Cardami ne
pratensis L. (Bull. Soc. Annis Sc. nat. Rouen, XLIII, 1908, p. 30-32 et 38—40.)

Siehe „Teratologie".

155. Fortier Des causes qui influent sur l'epoque de la floraison
des arbres ä fruits. (Bull. Soc. nation. Agric. France, LXVII, 1907, p. 235
bis 242.)

Nicht gesehen.

156. France, R. H. Das Leben der Pflanze (8 Bände). Bd. III.
Floristische Lebensbilder. Teil I. Naturgeschichte der Algen, Pilze und Moose.
1. Hälfte. Stuttgart 1908, 8°, 290 pp., 15 Taf. u. Fig.

Siehe in den Abschnitten über Kryptogamen.

157. Francis, L. Recherches sur les plantes aquatiques. (Ann.
Sei. nat., ser. 9, VII, 1908, p. 25—110, 67 Fig.)

Diese Arbeit gliedert sich in zwei Teile, deren erster Teil die „Rolle der
untergetauchten Stolonen bei der Vermehrung einiger Wasserpflanzen" be-
handelt. Über den zweiten vergleiche man unter „Anatomie".

Die im ersten Teile besprochenen Pflanzen sind: Mentha aquatica, Lysi-
machia vulgaris, Lycopus europaeus und Stachys palustris.

26 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [26

Alle diese Arten besitzen Stolonen oder ordinäre Rhizome, die, im Wasser
entwickelt, dem Einfluss dieses Milieus unterliegen. Ihre Plastizität ist sehr
gross, z. B. bei Mentha. Die näheren Details wolle man im Original ver-
gleichen.

158. Fruhwil'tli, C. Die Züchtung der landwirtschaftlichen
Kulturpflanzen. Bd. II. Züchtung von Mais, Futterrüben u. a. Rüben,
Ölpflanzen und Gräsern. 2. Auflage. Berlin, P. Parey, 1908, 80, XV, 228 pp.,

39 Fig.

Siehe im descendenztheoret. Teile des Just.

159. Ganlhofer, K. Über die anatomische Eignung der Sonnen-
und Schattenblätter zur Lichtperzeption. (Ber. D. Bot. Ges., XXVla,
1908, p. 484—494, eine Taf.)

Siehe unter „Anatomie".

160. Goebel, K. Morphologische und biologische Bemerkungen.
18. Brutknospenbildung bei Drosera pygmaea und einigen Monocotylen.
(Flora, LXLVIII, 1908, p. 324-335, 10 Textf.)

Die Brutknospen liegen im Zentrum der Pflanze und erinnern an die
Brutknospenbecher einer Marchantia infolge der borstenähnlich aufgerichteten
Spitzen der Stipulae der Laubblätter. Die Brutknospen sind von fast herz-
förmigem Umriss und dorsiventral.

Ihre Oberseite zeigt an der Basis eine Einsenkung, wo schon vor dem
Abfallen der Brutknospe die Anlage zu der daran sich entwickelnden Pflanze
sichtbar ist. Der Brutknospenkörper besteht hauptsächlich aus Chlorophyll-
gewebe, ist reich an Stärke und besitzt beiderseits Stomata.

Die Keimung kann unmittelbar nach dem Abfallen vor sich gehen und
es entwickelt sich an der Basis der Brutknospe zunächst ein schildförmiges
Blatt und an dessen Basis ein einseitiger Gewebehöcker, der „Wurzelhaare"
hervorbringt. Erst später tritt in Verbindung damit eine Wurzel auf.

Jede Brutknospe steht einzeln auf hyalinem Stiele, der eine deutlich
vorgebildete Abbruchstelle hat. Unter dieser liegen turgeszierende Zellen,
die gegen die Brutknospe drücken und so eine Spannung im dünnen Stiel-
teil erzeugen, die schliesslich zur Durchreissung und zur Ablösung der Brut-
knospen führt.

Morphologisch sind diese als aus einer Blattanlage hervorgegangene
Körper anzusehen.

Verf. weist dann noch auf einige Fälle blattbürtiger Knospen bei Mono-
cotylen hin und zwar bei Alliuvn magicum, A. nigrum und Ornithogalum
cauäatum-

160a. Goeliel, K. Nachtrag zu obiger Abhandlung. (Flora, LXLVIII,
1908, p. 501—502.)

Ergänzt die Angaben über Ornithogalum.

161. Goiran, A. Un caso singolare di fioritura e fruttificazione
fuori stagione. (Bull. Soc. bot. ital., 1908, p. 131 — 132.)

Referat nicht eingegangen.

162. Griffon, E. Biologie vegetale. Paris, 1908, 12°, 111.
Nicht gesehen.

163. Heering, W. Leitfaden für den biologischen Unterricht in
den oberen Klassen der höheren Lehranstalten. Berlin, Weidmann,
1908, 319 pp., mit 206 Abbildungen.

27] Allgemeine Biologie. 27

Die Einleitung bildet eine kurze Geschichte der Zellenlehre und eine
Besprechung der Aufgaben der Biologie. 1. Kapitel: Die Einzelligen und ihr
Leben, besprochen an Tieren und Pflanzen. 2. Kapitel: Die Fundamental-
eigenschaften der Zelle. 3. Kapitel: Der Aufbau der vielzelligen Pflanzen
und ihre Lebenserscheinungen im allgemeinen. 4. Kapitel: Der Einfluss der
physikalisch-chemischen Bedingungen des Standorts auf den Bau der Pflanzen.
5. Kapitel: Das Zusammenleben der Pflanzen. 6. Kapitel: Wechselbeziehungen
zwischen Pflanzen und Tieren. Kapitel 7 und 8 sind rein zoologisch. Im
Kapitel 9 wird die natürliche Verbreitung der Lebewesen besprochen, wobei
dann näher auf die „Lebensreiche" der Erde eingegangen wird, von denen 11
unterschieden und in bezug auf Pflanzen- und Tierwelt kurz besprochen werden.
Kapitel 10 — 12 nimmt dann mehr auf den Menschen Bezug. F. Fedde.

164. Heineck. Die Übertragung des Pollens bei Daphne mezereum
und Syringa vulgaris. (Naturw. Wochenschr., N. F.. VII, 1908, p. 491—492.)

Siehe „Blütenbiologie".

165. Hertwig, 0. Die Entwickelung der Biologie im neunzehnten
Jahrhundert. Vortrag auf der Vers, deutsch. Naturf. zu Aachen am
17. Sept. 1900, 2. Aufl. Jena, G. Fischer, 1908, 8°, 46 pp.

Allgemeines.

166. Hildebrand, Friedrich. Das Öffnen und Schliessen der Blumen.
(Naturw. Wochenschr, N. F., VII, 1908, p. 513—517; 3 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

167. Hildebrand, Friedrich. Einige weitere biologische Betrach-
tungen. (Beih. Bot. Centrbl., XXIV, 1, 1908, p. 83—95.)

Verf. berichtet über:

1. Der Besuch der Insekten bei Mercurialis anniia und anderen windblütigen
Pflanzen. Man vergleiche darüber unter „Befruchtungs- und Aussäungs-
einrichtungen".

2. Das Aufgehen der Blüten von Ipomoea grandiflora. Vgl. ebenda.

3. Über die Wirtspflanzen von Cuscuta enropaea und Cuscuta lupuliforuüs.
Verf. zählt die Pflanzen auf, auf denen er jede Art beobachtete und es

ergibt sich, dass beide Arten sehr viele verschiedenartige Pflanzen befallen

168. Holt, W. P. The Claims of Natural History in Biological.
Courses of secondary Schools. (X. Rep. Michig. Acad. Sei. Ann. Arbor..
1908, p. 153—158.)

Nicht gesehen.

169. Hall, T. G. Observations on the osmotic properties of the
root hairs of certain salt marsh plants. (New Phytol, Vil, 1908, p. 133
bis 142, fig. 21—24, 4 tables.)

Siehe „Physiologie".

170. Janelli, G. Siracnsa. I caratteri sessuali secondarii nelle
piante. (Malpighia, XXII, 1908, p. 311—332.)

Ref. noch nicht eingegangen.

171. Jnnielle, H. L'Angalora et le Kompitso, Lianes ä caout-
chouc du sud-ouest de Madagascar. (Le Caoutchouc et la Gutta-percha,
1908, 15 pp., 7 fig.)

Nicht gesehen.

172. Kammerer, Paul. Ausnützung dütenförmig gedrehter junger
Blätter von Canna, Mttsa und Aspidistra durch kleinere Tiere. (Östr.
Bot. Zeitschr, LVIII, 1908, p. 19—27.)

28 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. J28

Um den Laubfrosch (Hyla arborea) ausserhalb von Teichen und Tümpeln
nach Art der tropischen Baumfrösche zum laichen zu bringen, benutzte Verf. die
im Jugendzustand eng dütenförmig zusammengerollten Blätter der genannten
Pflanzenarten, in dem er Wasser in diese Düten goss. Durch wiederholtes Ein-
giessen gelang es, kleineWasserreservoire zu schaffen, da die ineinandergewickelte
innere und äussere Blattfläche sich durch Adhäsion der zwischen sie ein-
dringenden Feuchtigkeit und durch den nach aussen gerichteten Druck des
Wassers in der Düte fest aneinander legen. Ein derartig ständig mit Wasser
gefülltes junges dütenförmiges Blatt braucht viel mehr Zeit zu seiner Entrollung,
worüber Verf. genaue Tabellen gibt. Aber diese Hinausschiebung des Über-
gangs aus dem zusammengerollten in den ausgebreiteten Zustand ist nicht
durch Wachstumsverzögerung bedingt, es tritt im Gegenteil anfangs sogar
Beschleunigung ein, die sich in ansehnlicher Vergrösserung der Düten kund-
gibt. Diese Beschleunigung erklärt sich wohl aus der Wasseraufnahme ins
Gewebe, die die Zellvermehrung begünstigt und aus dem Lichtmangel im
Innenraum der Düte.

Nach Verf. kann man diese über den normalen Termin des Entrollens
hinaus beibehaltene Dütenform der genannten Pflanzenblätter als partielle
Neotenie auffassen, denn die Ursachen sind hier die gleichen, wie in den
meisten Fällen tierischer Neotenie.

173. Kanngiesser, Friedericli. Zur Lebensdauer der Holzpflanzen.
(Flora, LXLIX, 1908, p. 414—435.)

Sammlung von Angaben über die Grössenverhältnisse starker Bäume,
und zwar über:

A. Coniferen: Abies pectinata, Juniperus communis, Larix europaea, Picea
excelsa, Pinus silvestris, Taxus baccata.

B. Choripetalen: Alnus glutinosa, A. incana, Carpinus Betulus, Corylus
avellana, Fagus sylvatica, Populus alba, nigra, nigra pyramidalis, tremula; Quercus
pedunculata, Q. sessiliflora; Salix alba, caprca, fragilis; Ulmus, Tilia, Acer cam-
pestre, A. pseudoplalanus, A. platanoides, Buxus sempervirens, Evonymus europaea
Hex aquifolium, RItamnus cathartica, Vitis vinifera, Daphne mezereum, Hippophae
rhamnoides, Cornus sanguinea, Crataegus oxyacantha, Pirus communis, P. malus,
Prunus avium, P. cerasus, P. Mahaleb, P. padus, P. spinosa, Rosa, Sorbus aucu-
paria, S. torminalis, Spartium scoparium, Calluna vtdgaris, Erica camea, Rhodo-
dendron ferrugineum, Vaccinium myrtillus, Fraxinus excelsior, Lycium barbarum,
Lonicera periclymenum, L. xylosteum.

174. Kindermann, V. Die Verbreitungsmittel der Pflanzen in
ihrer Beziehung zum Standort. (32. Jahrber. Realschule Karolinental,
1908, p. 3—34.)

Im wesentlichen nur Zusammenstellung bekannter Tatsachen. Eigene
Beobachtungen finden sich besonders in den Abschnitten über die Ursachen
und die Dauer der Schwimmfähigkeit.

175. Kimlermann, V. Zwillings fruchte. (Lotos, Prag, LV1, 1908,
p. 162—168, 5 Abb.)

Siehe „Teratologie".

175a. Kirchner, 0. v., Loew, E. und Schroeter, C. Lebensgeschichte
der Blütenflanzen Mitteleuropas. Stuttgart, 8°, Lief. 8 — 9.
Man vgl. unter Araceae und Gramineae.

29] Allgemeine Biologie. 29

17(5. Koslowski, W. Bau und Leben der Pflanze. (Polnisch.)
Warschau 1908, 8°, 302 pp., 171 Fig.
Nicht gesehen.

177. Kradolfer, E. Wie die Pflanze die Erde erobert hat. Leipzig
1908, kl. 8«, 144 pp., 20 Abb.

Nicht gesehen.

178. Krüger, W. Über ungeschlechtliche Fortpflanzung und
das Entstehen weiblicher Individuen durch Samen ohne Be-
fruchtung bei Mercurialis annva und anderen diöcischen Pflanzen.
(Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 333—342, 3 Textfig.)

Verf. weist experimentell nach, dass bei dieser Art ohne Befruchtung-
Samen erzeugt werden, die aber nur weibliche Individuen liefern.

179. Landsberg, B. Streifzüge durch Wald und Flur. Leipzig 1908,
4. Aufl., 8», XIV, 273 pp., 88 ill.

Nicht gesehen.

ISO. Lanterbaeli. Winterschutz immergrüner Gehölze, haupt-
sächlich Laubgehölze. (Jahrb. schles. Ges. vaterl. Kultur, LXXXV, 1908,
p. li— 18.)

Von gärtnerischem Interesse.

181. Lindiiian, C. A. M. Einige sterile Blütenpflanzen auf einem
schwedischen Moor. (Bot. Not., 1908, p. 55—67, Fig.)

Betrifft vor allem Carex lasiocarpa Ehrh., der in seinem biologischen
Verhalten eingehend geschildert wird, sowie Calamagrostis lanceolata und
epigejos. Vgl. sonst unter „Pflanzengeographie".

182. Lynch, Irwin. Succulent plants. (Journ. of the R. Hort. Soc.
Lond., XXXIII, 1908, p. 451 -481, fig. 71—81.)

Die Figuren zeigen Pflanzen von:

Semperdvum, Ceropegia dichotoma, Mamillaria gracilis, M. Sclimidtii,
Leuchtenbergia principis, Asiropliytum myriostigma, Echinops multiplex, Opuntia
cantabrigiensis, O. robusta etc., Cotyledon coruscans, C Eckloniana, C reticulata,
Kleinia ficoides, Stapelia giganiea, Echidnopsis cereiformis und Euphorbia
ma miliaris.

183. Marchand et Bouget. Observations faites au J ardin botanique
alpin du Pic du Midi (altitude 2,850 metres). Sur un mode de repro-
duction speciale a la zone alpine superieure. (Assoc. franc. lavancem.
Sei., XXXVI. 2, Reims 1907, p. 460-464.)

Nicht gesehen.

184. Massart, Jean. Essai de Geographie Botanique des districts
littoraux et alluviaux de la Belgique. (Bull. Soc. R. Bot. Belgique,
XLIV, 1907, p. 59-129, 192-269, XLV, 1908, p. 205-320.)

Noch nicht beendet. Bisher nur pflanzengeographisch.

185. Mignla, W. Pflanzenbiologie. Leipzig, Quelle & Meyer, 1908/09.
80, VIII, 352 pp., 13 Fig., 8 Taf.)

In der Einleitung bespricht Verf. die verschiedenen Entwickelungs-
theorien. Dann behandelt er in sieben Abschnitten folgende Kapitel: Die
Arten der Fortpflanzung der Gewächse; die Verbreitung der Pflanzen; be-
sondere Einrichtungen zum Schutz (bei Eintritt ungünstiger Lebensbedingungen,
gegen parasitische Pilze und gegen Tierfrass); Anpassung der Pflanzen an
Klima und Boden; Pflanzengesellschaften (Wald, Heide, Moor usw.); Biologie
der Ernährung (normale, anormale; Parasitismus. Saprophytismus, Mikorrhiza,

30 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [30

insektenfressende Pflanzen); Symbiose und Genossenschaftsleben (die Flechten,
die Knöllchenbakterien der Leguminosen, Symbiosen zwischen Algen und
niederen Tieren, Pflanzen und Ameisen).

186. Nadsoii, G. A. Zur Lehre von der Symbiose, I. Das Absterben
vnn Eichensämlingen im Zusammenhange mit der Mycorrhiza. (Bolezni
rastensij [Jahrb. f. Pflanzenkrankh.], St. Petersburg, II, 1908, p. 26—40
[russisch|, deutsches Resümee, p. 11 — 12, 4 Abb.)

Siehe „Pflanzenkrankheiten".

187. Nash, George V. A Tragedy of the Forest. (Torreya, VIII, 1908,
p. 255—257, 3 Fig.)

Biologische Plauderei. Die Abbildungen zeigen eine Clusia, wie sie
allmählich den Stützbaum mehr und mehr umstrickt, bis dieser von dem
lOpiphyten erwürgt wird.

188. Nash, George V. The story of the Mangrove. (Torreya, VIII,
1908, p. 73-78, 4 Fig.)

Verf. schildert kurz die allgemein bekannten Charakterzüge dieser
Formation.

189. Nelson, Julius. Biology in High Schools. (Torreya, VIII, 1908,
p. 174—179.)

Allgemeines.

190. Nieotra. L. La biologia generale. (Rendic. e Mem. Acc. Zelanti,
3. IV, p. 75-92, 1904/05, paru 1908.)

Referat nicht eingegangen.

191. Olllendorf, 0. Beiträge zur Anatomie und Biologie der
Früchte und Samen einheimischer Wasser- und Sumpfpflanzen.
Erlangen 1907, 8», 110 pp.. 2 Taf.

Siehe „Anatomie 1908".

192. Ortlepp, K. Parthenogenese bei Tieren und Pflanzen. (Die
Gegenwart, 1908, 39, p. 199—201.)

Nicht gesehen.

193. Peacock, B. W. Edible trees and shrubs. (Agric. Gaz. N. S.
Wales, XIX, 1908, p. 101 — 114, ill.)

Nicht gesehen.

194. Peters, Hermann. Die Pflanzen in ihrer Beziehung zu dem
Kulturleben. (Jahrb. Naturhist. Ges. Hannover, LV— LVII [1904—1907], 1908,
p. 34—35.)

Nicht gesehen.

195. Pfeffer, W. Entstehiing von Schlaf bewegungen bei
Pflanzen. (Biol. Centrbl., XXVIII, 1908. p. 389-415.)

Siehe unter „Physiologie".

196. Pieper, G. B. Beiträge zur Methodik des biologischen
Unterrichts. Leipzig und Berlin 1908, 8°, IV, 96 pp.

Nicht gesehen.

197. Przibram, H. Anwendung elementarer Botanik auf bio-
logische Probleme. Leipzig, W. Engelmann, 1908, 8°, 84 pp., 6 Fig.

Nicht gesehen.

198. Bannkiaer, C. Vejledning i Universitetets botaniske have,
navulig dennes biologiske grupper. Kjöbenhavn 1907, 8°, 56 pp.,
3 Karten.

Nicht gesehen.

31] Allgemeine Biologie. 31

199. Ray, Julien. Sur le passage du saprophy tisrae au Para-
sitisme. (Associat. franc. l'avancem. Sei., XXXV, 1906, Lyon, p. 445 — 447 )

Nicht gesehen.

200. Rosen. Über die Blütenformen der Phanerogamen, eine
biologische Betrachtung über das System. (Jahrb. schles. Ges. vaterl. Kultur,
LXXXV, 1907, p. 4-14.)

Allgemeines.

201. Rassel, W. Sur quelques plantes calciphiles adoptees ä
des terres pauvres en chaux. (C. R. Ass. franc. Avanc. Sc. Reims [Paris],
XXXVI, 1907 [1908], p. 521.)

Nicht gesehen.

202. Sänrich, P. Die unterrichtliche Behandlung der heimische n
Wasserpflanzen. (Zeitschr. Lehrmittelw. u. pädagog. Lit., IV, 1908, p. 97
bis 102, ill.)

Nicht gesehen.

203. Sänrich, P. Das Leben der Pflanzen. Bd. I. Im Walde.
2. Aufl. Leipzig 1908, 8 o, 418 pp.

Nicht gesehen.

204. Schelle. Dendrologische Mitteilungen. (Mitt. D. Dendrol.
Ges., XVII, 1908, p. 142—149.)

Verf. gibt zunächst kurze, z. T. botanisch ganz belanglose Hinweise auf
verschiedene Gehölze.

Dann spricht er über Pflanzeneinbürgerung, über einen Hexenbesen auf
Pinus silvestris und über Fruchtblattumstülpung bei der Fichtenblüte (Picea)-

205. Schmitt, C. Der biologische Schulgarten. Freising 1908, 8°,
106 pp.

Nicht gesehen.

206. Schmitt, C. Bilder aus dem Pflanzenleben. Botanische
Plaudereien. Freising 1908, 8«, 113 pp.

Nicht gesehen.

206a. Schröter, C. Das Pflanzenleben der Alpen. 4., 5 und
6. (Schluss-) Lief. Zürich 1908, 8«, p. I— XVI u. 345—807, ill.

Vgl. auch unter „Blütenbiologie" und vor allem „Pflanzengeographie
von Europa".

Allgemein biologisch wichtig ist folgende Zusammenfassung der
charakteristischen, mit dem Klima der alpinen Region in Zusammenhang zu
bringenden Eigenschaften und Lebenserscheinungen:

§ 1. Äusserer und innerer Bau.

1. Starke Entwickelung der unterirdischen Organe: durch Kulturen als
direkte Folgen des Alpenklimas nachgewiesen; direkt begünstigt durch
die dunkle Wärme des Bodens: vorteilhaft für die kurze Vegetationszeit
durch die Ermöglichung starker Speicherung und damit rascher
Entwickelung: Schutz gegen die starke Wind Wirkung und gegen
Trockenheit.

2. Niederer gedrängter Wuchs der oberirdischen Teile, hervorgerufen durch

a) geringere Zahl der Internodien,

b) geringere Streckungen derselben,

c) tieferen Aufsatz der Verzweigung,

d) Anschmiegen an den Boden.

32 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [32

Dieser „Nanismus" ist

(c) induziert, d. h. der Ausdruck einer „doppelten Anpassung
(de Vries), eine „reversible Paravariante" (Detto), d. h. er wird bei
demselben Individuum durch die alpinen Bedingungen hervor-
gerufen, durch Ebenenbedingungen wieder rückgängig gemacht.
Es kommt dabei die wachstumshemmende Wirkung des starken
Alpenlichts, die Kälte der Nacht und (für das Anschmiegen an
die Erde) die Veränderung der geotropischen Richtung durch
niedere Temperaturen in Betracht — so namentlich bei den von
Bonnier untersuchten höhenvagen Arten. Stellt mau die Exemplare
der Ebenenkulturen nachts in Eiskasten, so bleiben sie eben-
falls klein,

ß) „angeboren", d. h. eine erbliche konstante Charaktereigenschaft
der Pflanze, die bei Kultur in der Ebene nicht verschwindet: ob
sie als Mutation oder durch Vererbung erworbener Eigenschaft
entstanden ist, ist nicht entschieden : sie ist im alpinen Klima
vorteilhaft

a) gegen den Schneedruck,

b) gegen die Wind Wirkung,

c) zur Ausnützung des Schneeschutzes gegen Frost und gegen vor-
zeitiges Treiben,

d) zur Ausnutzung der Bodenwärme und der grösseren Feuchtigkeit der
tieferen Luftschichten.

So bei den meisten typischen Alpenpflanzen. Als besonders
häufige Wuchsformen wären zu nennen: Spaliersträucher, Rosetten-
pflanzen und Polsterpflanzen.
3. Blattbau. Ein allgemeiner durchgreifender Unterschied im Blattbau der
Alpenpflanzen gegenüber dem der Ebenenpflanzen existiert nicht. Das
ist auch nicht zu erwarten, wenn man bedenkt:

a) die ausserordentliche Mannigfaltigkeit der Heimatsgebiete der Alpen-
pflanzen (Alpen, Arktis, Steppen, Mediterrangebiet, Waldgebiet anderer
Gebirge),

b) die grosse Mannigfaltigkeit der erblich mitgebrachten Blattypen, aus
43 verschiedenen Familien,

c) die sehr verschiedene „Plastizität" oder Anpassungsfähigkeit ver-
schiedener Arten und ihr sehr verschiedenes erdgeschichtliches Alter,

d) die enorme Mannigfaltigkeit der Standortsbedingungen, welche viel-
fach den Einfluss des alpinen Gesamtklimas übertönen können.

Unter dieser Einschränkung können wir folgende Einflüsse der alpinen
Gesamtbedingungen auf die Ökologie des Blattes konstatieren :

A. Bei regionen vagen Formen, als direkter Einfluss der alpinen Be-
dingungen durch Auslösung der „doppelten Anpassung" bei Kultur oder an
wildwachsenden Exemplaren konstatiert (natürlich überall nur bei reaktions-
fähigen Arten, welche die Anlagen der betreffenden Eigenschaft schon
besitzen):

a) Kleinere Blattflächen,

b) grössere relative oder absolute Dicke des Blattes,

c) stärkere Entwickelung der Palisaden; Tendenz zur Entwickelung
isolateralen Blattbaues mit beidseitigen Palisaden,

d) dunkler grüne Färbung,

331 Allgemeine Biologie. 33

e) lockeren Bau des Schwammgewebes,

f) mehr Spaltöffnungen,
g) stärkere Behaarung,

h) stärkere Entwickelung der Cuticula (Bonnier und Leist entgegen
Wagner).

Diese Veränderungen vollziehen sich im gleichen Sinne, aber etwas
weniger ausgesprochen, wenn man Exemplare vergleicht, bei denen die einen
caeteris paribus am Licht, die anderen im Schatten wuchsen. Bonnier hat
solche Versuche sowohl in der Ebene als in den Alpen ausgeführt: die zwei
Hälften eines Individuums nebeneinander im gleichen Boden unter gleicher
Feuchtigkeit kultiviert, das eine im Licht, das andere im Schatten: das Licht-
exemplar zeigte die nämlichen Abweichungen vom Schattenexemplar, wie das
Alpenexemplar vom Ebenenexemplar, aber etwas schwächer. Trockenheit der
Luft wirkt im gleichen Sinne (Lothelier, Bonnier); die Wirkungen der beiden
Faktoren summieren sich also, um im Alpenklima die Gesamtwirkung hervor-
zubringen.

B. Bei Bewohnern xerophytischer Standorte finden sich mannigfaltige
Schutzmittel gegen Trockenheit. Die Prozentzahl der Xerophyten ist in der
Alpenflora der Schweiz grösser als in der Gesamtflora. Unter den 420 Alpen-
pflanzen der Jeroschschen Liste zähle ich 113 Xerophyten, also über ein Viertel:
unter den 2453 Blütenpflanzen der Schweizer Flora 412 Xerophyten, also ca. ein
Sechstel. Diese gesteigerte Anpassung an Trockenheit beruht einerseits auf
dem Fehlen oder Zurücktreten zahlreicher hygrophy tischer Standorte der
Ebene: Wald, Gebüsch, Sumpf und dem Herrschendwerden der Gesteinfluren,
anderseits auf dem Einfluss der starken Evaporationskraft.

Folgendes sind die xerophytischen Anpassungen im Blattbau:

a) Verstärkung der Cuticula (Lederblatt), '

b) Bergung der Spaltöffnungen (Rollblatt, Faltblatt),

c) Verkleinerung der verdunstenden Oberfläche (Nadelblatt, Rollblatt.
Faltblatt, Binsenblatt),

d) starke Haarbekleidung,

e) Wachsüberzug,

f) verschleimte Zellen in der Epidermis und Schleimerguss in die Inter-
zellulare,

g) Wasseraufnahme durch das Blatt,
h) Wasserspeicherung durch Succulenz,
i) Bildung windstiller Räume durch gegenseitige Deckung der lebenden

Blätter und durch Anpressen der Blätter an den Stengel,
k) Bildung schützender Decken durch abgestorbene Blätter oder

Blatteile.
Es fehlen dagegen folgende anderwärts vorkommende Trockenschutz-
einrichtungen: Kantenstellung, Kompasspflanzen, blattlose Sprosse, Salzkrusten,
lackierte Blätter, Reduktion der Spaltöffnungen und Interzellularen (die im
Gegenteil sich mehren, in Anpassung an die verstärkte Assimilation).

Viele Arten zeigen eine förmliche Häufung von Schutzeinrichtungen
gegen Trockenheit, so besonders die Polsterpflanzen; von den xerophytischen
Saxifragen (opposüifolia, Rudolphiana, retusa, cam'a-Gruppe, aizoon -Gruppe)
sagt Lasniewski: „Dem Standort entspricht auch der entschieden xerophile
Bau dieser Pflanzen. Ihre Blätter sind klein und in Rosetten gedrängt.
Die exponierten Stellen der Blätter haben starken epidermalen Schutz, die
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt, [Gedruckt 13. 5. 10.] 3

34 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [34

Spaltöffnungen befinden sich in geschützter Lage und zwar sind sie nicht
an eine bestimmte Blattfläche gebunden, sondern verschieden, je nach der
Blattform und Blattlage, doch immer in den durch die Stellung der Blätter in
der Rosette gebildeten windstillen Räumen geborgen."

C. Die Regenbeständigkeit ist häufig grösser als bei Exemplaren der-
selben Art in der Ebene (Weinzierl).

D. Als Schutzmittel gegen Tierfrass sind beobachtet:

a) Grosse Lebenszähigkeit und Regenerationsfähigkeit,

b) chemischer Gehalt an unangenehmen Stoffen,

c) mechanische Schutzmittel (Stacheln und Dornen, aber sehr spärlich).

§ 2. Lebenserscheinungen.

I. Lebensdauer.

a) Einjährige Alpenpflanzen sind selten,

b) einjährige Ebenenpflanzen werden in den Alpen oft mehrjährig,

c) viele haben immergrüne Blätter. Das sind Anpassungen an den
kurzen Alpensommer.

II. Periodische Erscheinungen.

a) "Viele treiben und blühen sehr früh, begünstigt durch hohe Luft-
temperatur zur Zeit der Schneeschmelze; vorteilhaft zur Ausnützung
der kurzen Vegetationsperiode.

b) Manche haben kürzere Reifezeit als in der Ebene (fruchten rascher);
wohl eine Wirkung der starken Insolation: bei den meisten der
beobachteten aber tritt eine "Verlängerung der Reifezeit ein.

c) Überwinterungsform : Wir sind noch sehr unvollkommen bekannt mit
der Art und Weise, wie die Alpenpflanzen überwintern. Hier liegt
noch ein schönes Studienfeld vor. Es sind die Schutzmittel der
Knospen zu studieren, die Art des Reservematerials, der Modus des
Austreibens im Frühjahr, die Beziehungen zum Standort und zur
Höhe über Meer, und die Einreihung in die Raunkiaerschen Typen.

Es möge hier nur einiges gestreift werden:

Die alpinen Holzgewächse überwintern bald mit Knospenschuppen
(Alnus, Rhododendron, Salix), bald mit nackten Knospen (Dryas, Loiseleuria).

Die Polsterpflanzen überwintern sämtlich mit nackten Knospen, die
durch immergrüne Herbstblätter gebildet werden; die Saxifragen, Semperviven
und Sedum-Arten haben ebenfalls keinen sichtbaren Winterschutz. Bei den
Primeln bilden die Basen der Herbstblätter eine Knospenhülle, ebenso liegen
bei den Gramineen und Cyperaceen die Knospen tief verborgen in den alten
Blattbasen. Zahlreiche alpine Stauden sind „Cryptophyten" (geophile Pflanzen)
mit völlig unterirdischen Winterknospen: so alle Zwiebel- und Knollenpflanzen:
von den „Rhizompflanzen" die AnemoneD, Polygonum viviparum, Carex incurva,
manche Gramineen usw.

207. Schabe, Th. Ergebnisse der phänologischen Beobachtungen
in Schlesien im Jahre 1908, verbunden mit einer Übersicht der phäno-
logischen Beobachtungsergebnisse aus den Jahren 1899 — 1908. (Jahrb. Schles.
Ges., LXXXVI, 1908, Zool.-Bot. Sekt., p. 66—75.)

208. Schulz, G. E. F. Natururkunden. Biologisch erläuterte photo-
graphische Aufnahmen freilebender Tiere und Pflanzen. Berlin 1908.

Botanisch wichtig sind von den bisher erschienenen Heften Heft 2.
Pflanzen 1. Reihe, 16 pp., 20 Tafeln; Heft 3. Pflanzen 2. Reihe, wie voriges,
und Heft 4. Pilze 1. Reihe, wie voriges.

35] Allgemeine Biologie. 35

Die Bilder sind zumeist sehr gute Photographien und der Text ist knapp
gehalten, wobei vor allem biologische Daten gegeben werden.

Heft 2 und 3 umfassen folgende Tafeln:

Heft 2. 1. Polystichum Thelipteris Roth., 2. Lijcopodium inundatum L.,
3. Linaria vulgaris Mill., 4. Menyantkes trifoliata L., 5. Elymus arenarius L., 6.
Orchis latifolia L., 7./8. Belli* perennis L., 9. Lemna minor L., 10. Monotropa
Hypopitys L., 11. Erodium cicutarium LHer., 12. Urtica dioica L., 13. Calla
palustris L., 14. Saponaria officinalis L., 15. Ranunculus Lingua L., 16. Veronica
spicata L., 17. Sphagnum, 18. Lythrum Salicaria L., 19./20. Matricaria inodora L.

Heft 3. 1. Nymphaea alba L. und Nuphar luteum Sm., 2. Parnassia pa-
lustris L., 3. Euphorbia helioscopia L., 4. Lysimachia vulgaris L., 5./6. Erythraea
linear iifolia. 7. Achillea Pfarmiea L., 8. Stratiotes aloides L., Hydrocharis Morsus
ranae L, Lemna polyrrhiza L., 9./10. Senecio vernalisW.etK., 11. Ononis repens
L.. 12. Mentha aquatica L., 13. Hottonia palustris L., 14. Weiw^aeriwena canescens
Beruh., 15. .Aster Tripolium L., 16. Hypericum humifuscum L., 17. Stachys
palustris L., 18. Scutellaria galericulata L., 19. Silene nutans L., 20. Pteridium
aquilinum Kuhn.

209. Sknbniewsky, Ch. Recherches sur les bourgeons actifs et
les bourgeons dormants. These, Paris 1908, 88 pp.

Nicht gesehen.

210. Stauseh. K. Die Wasserpflanzen. 2 Teile. Braunschweig 1908,
8 0. 28 u. 27 pp.. 70 Fig.

Nicht gesehen.

211. Steinbrinck, C. und Scliinz, H. Über die anatomische Ursache
der hy grochastischen Bewegungen der sog. Jerichorosen und
einiger anderer Wüstenpflanzen (Anastatica, Odontospermum, Geigeria
Fagonia, Zygophyllum). (Flora, LXLVIII, 1908, p. 471—500, 11 Textfig.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

Zum Schluss wird noch die Frage aufgeworfen, welches die wahre
Jerichorose sei, und Verff. glauben, dass Anastatica hierochuntica L. und nicht
Odontospermum pygmaeum Asch, et Schweinf. als solche unbedingt anzu-
sehen ist.

212. Stoward, Frederick. On Endospermic Respiration in Certain
Seeds. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 415—148.)

Siehe „Chemische Physiologie".

213. Terracciano. Contributo allo biologia della propagazione
agamica nelle fanerogarne. Firenze 1907, p. 1-45.

Neues bietet der Autor hier durchaus nicht. Es ist das bekannte Phä-
nomen unzähliger Pflanzen, sich ungeschlechtlich zu vermehren. Verf. meint,
dass dies nicht als eine Herabminderung des Organismus oder als Rückschlag
zu den ursprünglichen Verhältnissen oder als plötzliche Anpassung zu erklären
sei, sondern dass dies vielmehr als Ausfluss vieler der Pflanze innewohnender
Kräfte gedeutet werden müsse, die darauf hinauszielen, eine möglichst sichere
und nützliche Fortpflanzung ohne Altersgrenze zu erreichen. Um Anpassungen
an äussere Bedingungen zu studieren, sind Individuen, bei denen die sexuelle
Vermehrung mehrere Generationen hindurch von solchen mit rein ungeschlecht-
lichem Charakter abgelöst wird, viel geeigneter, denn, meint Verf., infolge der
vielen unserer Beobachtung völlig verschlossenen Vorgänge der sexuellen
Fortpflanzung spielen soviel innere Faktoren an der Formveränderung mit,
dass wir den Einfluss der exogenen Bedingtheiten nicht beobachten können;

3*

36 C. K. Schneider: Morphologie und Systemtik der Siphonoganien. |"3g

während bei vegetativer Vermehrung die neuen Individuen mit allen Eigen-
schaften der Eltern im MomeDt der Bildung und Loslösung versehen sind.
Irgendwelche Anhalte für diese Behauptungen fehlen überall.

Sehen wir von den künstlich hervorgerufenen vegetativen Fortpflanzungs-
prozessen ab. so haben wir zwei verschiedene monogene Vermehrungen zu
unterscheiden: erstens solche, die sich allmählich von der Mutterpflanze los-
lösen und sich mit der Zeit individualisieren oder Charaktere mitbekommen
haben, die ihnen ein längeres Leben sichern. Sie sind als Pianoblastiden zu
bezeichnen und zerfallen in zwei Sorten. 1. die hypo- und epigäischen Zwiebeln
und Knollen. Vor dem Treiben machen sie eine Ruheperiode durch, nachdem sie
sich von der Mutterpflanze losgelöst haben; 2. in die nährarmen Blattknospen,
die unfähig sind, fern der Mutter eine Ruheperiode zu ertragen und ihre Vege-
tation fortzusetzen.

An diese Vermehrungsart schliesst sich die zweite, bei welcher gewisse
bestimmte Organe oder Organteile sich derart differenzieren, dass sie nach
einer Ruhepause eine neue Pflanze bilden können.

Hierauf bespricht Verf. die Wurzeln, Blätter und Rhizome in Anbetracht
ihres Anteiles an der ungeschlechtlichen Vermehrung. Dann werden die Knoll-
bildungen au oberirdischen Organen besprochen, wie sie bekannt sind von
Senecio Kleinia, S. articulatus, Cissus quadrangularis, C- rotundifolia, Euphorbia
Jiegis Juben usw. Sehr lange verweilt der Autor bei den Kakteen und hier
vor allem bei dem Genus Opuntia, von denen er untersucht hat O. fruticom,
columnans, articulata, cladodica- Bei all diesen können drei Organe zur Fort-
pflanzung dienen:

1. die Kurztriebe, welche fast ohne Dornen sind, sehr leicht abfallen und
fern von der Mutterpflanze keimen;

2. die echten Pianoblastiden, die rund oder ellipsoid zur Erde fallen oder
von vorüberlaufenden Tieren im Fell mitgeschleppt werden;

3. die Früchte, welche taub sind und Knospen treiben.

In einer folgenden Schrift verspricht der Verf. anatomische Aufschlüsse
zu geben. Reno Muschler.

214 Trincllieri, lüulio. Intorno a due piante cauliflore. (Malp, XXI.
1907, p. 263—275.)

Als weitere stammbürtige Blüten tragende Arten beobachtete Verf. im
Botanischen Garten zu Catania: Firns coronata Reinw. Blum., aus Java ge-
bürtig. Die Blutenstände dieser Pflanze kommen in grosser Zahl vereinzelt
oder zu drei bis fünf vereinigt, auch am Hauptstamm und an blattlosen
Stellen der Äste vor. Angenommen, dass die Kauliflorie den Schutz der Re-
produktionsorgane vor übermässiger Feuchtigkeit bedinge, findet Verf. dem-
entsprechend, dass die Sykonen mit weissen Haaren dicht besetzt sind, und
dass die rauhen Blätter in eine ausgesprochene Träufelspitze enden.

Ferner bei Halleria lucida L. aus dem südlichen und tropischen Afrika.
Die grösste Blütenzahl kommt an den entblätterten Zweigteilen vor; die
Blüten mit 4— 5 zipfligem Kelch sind (entgegen Bentham, in DeCandolle,
Prodromus, p. X) gerade die häufigsten. Die Früchte (nicht aufspringende
Beeren) hängen an laugen Stielen herab, sind beinahe kugelig und an der
Oberfläche vollkommen glatt, in eine fadenförmige Spitze, dem persistenten
Griffel, ausgezogen, woran das Regenwasser abträufeln kann. Das Korkgewebe
des Stammes dieser Pflanze zeigt die Eigentümlichkeit, dass es sich mit Wasser
stark imbibiert. Diese Beobachtung veranlasste den Verf. zu vergleichenden

37] Allgemeine Biologie. 37

Studien über die Aufnahmsfähigkeit des Korkes verschiedener (24) Bäume für
Wasser. Das Ergebnis lautet: unter gleichen Umständen vermag der Kork
von Halleria im Freien viel mehr Wasser aufzunehmen als der Kork einer
anderen Pflanze; ebenso, wenn der Kork vorher im Exsiccator (bei ca. 80°)
vollständig getrocknet wird; auch gibt derselbe, mit Wasser vollgesogen, viel
langsamer die Flüssigkeit ab, als andere Pflanzen unter denselben Bedingungen.
Der Grund dafür liegt in dem eigentümlichen Baue des Korkgewebes von
Halleria lucida, welches von zahlreichen Interzellularen durchsetzt ist, die zur
Speicherung des Wassers dienen. — Der reichliche Wasservorrat dieser Pflanze
vermag, am Stamme und an den Ästen, die schlafenden Knospen zur Ent-
wicklung zu bringen, wodurch die Kauliflorie zutage tritt. Solla.

215. Trinchieri, Giulio. Contributo allo studio della caulifloria.
(Atti Accad. Gioenia di scienze naturali, vol. XIX, Memoria XXI, 16 pp.,
Catania, 1906.)

Als Beitrag zu dem Vorkommen stengelbürtiger Blüten bzw. Früchte
(vgl. Busalioni in Malp., 1904) führt Verf. einige von ihm selbst beobachtete
Fälle an. Ein Exemplar von Ficus capensis Thnbg. im Botanischen Garten zu
Catania hatte (im Mai) den grössten Teil seines Stammes mit dichtgedrängten
Blütenständen bedeckt, von denen die Mündungen bodenwärts gerichtet waren,
zum Schutze gegen den Regen. — In demselben Garten trieb (im Juli) ein
Exemplar von Jasminwm Sambac Ait. zahlreiche Blüten auf den älteren und
laublosen Zweigen. Dieser Fall bei einer alten Gattung, welche in das Eozän
hinaufreicht und in den tropischen Zonen der Regenwälder heimisch ist, wird
als ererbte Anpassungserscheinung, wahrscheinlich auch mit der Kletternatur
der Pflanze, in Zusammenhang gebracht.

Als Folge traumatischer Einwirkung (ergiebige Beschneidung) beobachtete
Verf. Kauliflorie an einem jungen Exemplare von Citrus meclica L. var.
Limonum L. im Botanischen Garten zu Sassari, wobei die Blüten teratologisch
ausgebildet waren; ferner bei C. Aurantium L. var. Limetta Risso zu Catania,
welches Bäumchen in der Nähe eines Bewässerungskanals gedieh, so dass
seine Wurzeln reichlich mit Wasser versorgt wurden.

Ob jedoch traumatische Vorgänge das Auftreten von Kauliflorie hin-
reichend erklären, wagt Verf. nicht zu behaupten. Viel wichtiger erscheint
ihm dabei das anatomisch-morphologische Verhalten. Die Blüten gelangen
nämlich durch die Ausbildung schlafender Knospen zur Entwickelung, welche
mittelst eines starken Markstrahles (rayon medullaire gemmaire von Prunet.
1891) mit dem Mark des Stammes in Verbindung stehen und dadurch reichliche
Wasserzufuhr erhalten. Die stammbürtigen Früchte erweisen sich dement-
sprechend stets wasserreich. Die Beschneidung der Bäume würde nur die
Transpirationsmenge herabsetzen, wodurch die Ansammlung von Wassermengen
in dem Stamme die Knospenentwickelung fördert. — In der eigentlichen Heimat
der kaulifloren Gewächse hat sich daraus eine Anpassung hervorgebildet.

Solla.

216. Trinchieri, G. Un nuovo caso di caulifloria. (Bull, dell' Orto
botanico, t. II, Napoli 1908, p. 255—259, m. einer Taf.)

Kauliflorie zeigte auch ein Exemplar von Citrus Bigaradia Riss. var.
multiforme, welches in einem entlegeneren Teile des Botanischen Gartens zu
Neapel wuchs. An seinen laubfreien Stämmen kamen, zusammengedrängt,
über 50 Früchte, mit ihren charakteristischen abnormen Formen, vollkommen
zur Entwickelung.

38 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [3g

Der Baum war im vorangehenden Frühjahre reichlich beschnitten und
eines Teiles seines krebskranken Holzes befreit, gleichzeitig war der Boden
bearbeitet und gut gedüngt worden; hierzu kam noch, dass die Frühlingszeit
sehr regenreich verlaufen war. Diese Umstände würden mitbegründen, dass
die Kauliflorie einer Entwickelung „schlafender Augen'-' gleichwertig sei.

Solla.

218. Voigt. Über die Lebensgeschichte einiger Sumpf- und
Wasserpflanzen auf Grund eigener Untersuchungen und neuerer
Literatur. (Jahrb. Naturh. Ges. Hannover, LV— LVII, 1904—1907, 1908, p. 81.)

Nicht gesehen.

219. Wagner,)!. Biologie unserer einheimischen Phanerogamen.
Ein schematischer Überblick und eine übersichtliche Zusammenstellung der
für den Schulunterricht in Betracht kommenden pflanzenplrysiologischen Stoffe.
Schmeil und Schmidt, Sammlung naturw.-pädagog. Abhandlungen, III, Heft 1,
Leipzig, B. G. Teubner, 1908, XII u. 190 pp.)

Kurze Besprechungen bei „Chemischer Physiologie" und „Blütenbiologie".
Ein vorzügliches Hilfsbuch für den Lehrer. F. Fedde.

220. Ward, J. J. Life-histories of familar plants. Cassel & Co..
1908, XX, 204 pp., ill.

Nicht gesehen.

221. Warnung, E. Plantelivet. Laerebog i Botanik, 4. udg. ved. 0.
Raunkiaer og E. Warming Kjöbenhavn, 1908, 8°. 148 pp., 250 Fig.

Neurevedierte Ausgabe.

222. Warming, Eng. Plante rigets Livsformer. (Lebensformen des
Pflanzenreichs.) (Universitetets Festskrift, 1908, 86 pp., Kjöbenhavn.)

Der Verf. gibt zuerst eine historisch-kritische Darstellung der Versuche,
die im Laufe der Zeit gemacht worden sind, um die Formen des Pflanzen-
reiches in ein biologisches (ökologisches) System zu ordnen.

Die Forscher, die solche Systeme aufgestellt haben, sind Humboldt,
Grisebach, Hanns Reiter. Warming, Drude, Ernst Krause und vor kurzem
Raunkiaer.

Warming definiert die Lebensform als die Form, mit welcher die Pflanze
in Relation zu den äusseren Faktoren tritt.

Die Lebensform ist ein Ausdruck der Aussenwelt. Warmm«; benutzt
mit Vesque das Wort Epharmonie mit Rücksicht auf die Anpassung der Vege-
tationsorgane zu den äusseren Faktoren. Was die Kausalität der Epharmonie
und die Vererbung erworbenen Eigenschaften betrifft, steht der Verf. bekannt-
lich auf dem Standpunkte des Neu-Lamarckismus, welchen Standpunkt er sehr
eingehend verteidigt. Im Schlüsse der Abhandlung gibt er eine neue Über-
sicht über die Pflanzenformen.

Warming sondert zuerst zwischen Heterophyten (Saprophyten, Parasiten)
und Autophyten. Die Antophvten werden in fünf Klassen geteilt: Wasser-
pflanzen, lichenoide Pflanzen, muscoide Pflanzen (mit Unterabteilungen),
Lianen und autonome Landpflanzen. Mit Rücksicht auf die letzteren wählt
Warming wie im Jahre 1884 die Dauer der Vegetationsorgane als leitendes
Prinzip. Er stellt folgende Unterabteilungen auf.

I. Hapaxanthen (nur einmal blühende Pflanzen).
II. Pollakanthen (mehrjährige Pflanzen).

Hierher gehören:

39] Allgemeine Biologie. 39

1. Redivive Kräuter (Stauden, Krauses Zeitstauden). Dieselben sind:
Zwiebel und Knollenpflanzen, Pflanzen mit vielköpfigen Rhizomen,
mit horizontalen Rhizomen oder Ausläufer.

2. Rosettenpflanzen. Kräuter mit langen oder runden Blättern,
Bäume wie Pandanus, Yucca u. a.

:>. Kriechpflanzen. Die plagiotropen Sprosse sind die wichtigsten
Vegetationsorgane. Ex. Linnaea borealis, Lysimachia nummularia,
Ipomaea, Menyanthes, Arctostaphylos uva ursi-

4. Pflanzen mit aufrechten, lange dauernden Langtrieben.
Hierher gehören:

a) Formen wie Arabis alpina.

b) Polsterpflanzen.

c) Halbsträucher. Ex. Artemisia Absinthium.

d) Ausläufersträucher. Ex. Vaccinium Myrtillus-

e) Ritbus- Arten (Schösslingssträucher nach Drude),
f) Arten von Acantltaceae, Piper aceae u. a.

g) Weichstengelpflanzen. Ex. Begonia, Araceen, Gunnera.
h) Stengelsukkulenten.

i) Holzpflanzen. Bambusa, Sträucher, Bäume.
Schliesslich gibt Warming eine Übersicht über die Blattformen, die in
den oben erwähnten Typen vorkommen. H. E. Petersen.

223. Weiss, F. E. The dispersal of fruits and seeds by ants.
(New Phytolog., VII, 1908, p. 23—28, 2 Fig.)

Siehe im blütenbiologischen Teile des Just.

224. White, Charles A. The phenogamous parasites. (Americ.
Naturalist, XLII, 1908, p. 12-33, 9 Fig.)

Populäre Betrachtungen über die Hauptcharakterzüge der bekannten
Gruppen phänogamer Parasiten, repräsentiert durch I. Viscum album, II. Phora-
dcndron flavescens, III. Lathraea squamaria, IV. Cuscuta und Cassytha, V. Oro-
banchaceae, VI. Rafflesia, VII. Balanophora.

225. White, Charles A. The aggregate origin of parasitic plants.
(Americ. Naturalist, XLII, 1908, p. 98—108.)

Resümierend sagt Verf.:

1. Die besprochenen phänogamen Parasiten (vgl. oben) gliedern sich in
sieben Gruppen, die differieren „in character from root pilfering by
means of a few haustoria to dominant rapacity", extreme Deformation
der somatischen und embryonalen Struktur und aberrante Methoden
der Keimung.

2. Die Art des Parasitismus jeder Gruppe ist bei jedem Vertreter die
gleiche, möge auch die systematische Verwandtschaft eine noch so ver-
schiedene sein, und die Art ist ungleich der jeder anderer Gruppe.

3. Alle diese parasitischen Gewohnheiten und Strukturen sind völlig ver-
erbbar und immer mit systematischen Merkmalen der betreffenden Art
verknüpft, aber sie sind nie systematisch correlativ mit ihnen.

4. Keine der sieben Formen des Parasitismus zeigt irgendeine Tendenz
zu normalen Bedingungen zurückzukehren, komplexer zu werden oder
von einer Form in eine andere überzugehen.

5. Die normale Blüte und Fruchtung der Parasiten zeigt an, dass sie von
normalen Phänogamen sich ableiten; man entdeckt aber keine Spur
von Übergangsformen zwischen selbst den extremsten Fällen von

40 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [40

Parasitismus und normalen Pflanzen. Die geographische Verbreitung
aller der bekannten Arten von phänogamen Parasiten, ausgenommen der
von Gruppe III, ist meist weltweit. Man kann nach allem vermuten,
dass diese Parasiten durch plötzliche und aggregate Mutation als solche
entstanden, ähnlich, aber nicht identisch mit der phylogenetisch
aggregaten Mutation, die man bei Lycopersicum und Gossypium beob-
achtet hat.

VI. Allgemeine Morphologie.

226. Bnscalioni, L. Kapporti fra la gamopetalia e la fillotassi.
Nota preventiva. (Boll. Accad. Gioenia Sc. Nat., ser. II, no. 2, in-8°, p. 31
bis 32, Catania 1908.)

Referat noch nicht eingegangen.

226a. Eriksson, Johan. Studier öfver submersa Växter. (Svensk.
Bot. Tidskr., II, 1908, p. 175—200.)

Verf. gibt folgendes deutsche Resümee:

Im vorigen regnerischen Sommer hatte der Botaniker eine ausgezeichnete
Gelegenheit, untergetauchte Pflanzen zu studieren. Mehrere neue nicht vorher
beschriebene submerse Formen wurden von mir besonders auf der Insel Öland
gefunden. Es waren dies: Agrostis alba, Braya supina, Centaurea jacea, Carda-
mine pratensis, Galium boreale, G. palustre, Inula britannica, Juncus lamprocarpus,
Litorella lacustris, Plantago maritima, P. major, Potentilla anserina, P. reptans,
Ranunculus repens, B. flammula, Teucrium scoräium, Veronica scutellata. Später
im Herbste fand ich daselbst auch Herniaria glabra, Leontodon autumnalis,
Mentha austriaca, Taraxacum officinale in untergetauchtem Zustande. In der
Provinz Blekinge fanden sich Agrostis canina, A. stolonifera, Hydrocotyle vulgaris,
Juncus lamprocarpus, J. supinus, Peplis portida, Polygonum persicaria, P. aviculare,
Ranunculus fiammida u. a. m. in ihren Wasserformen. Von besonderem Inter-
esse sind Agrostis canina, Hydrocotyle vulgaris, Inula britannica, Leontodon autum-
nalis, Mentha austriaca, Plantago major, Polygonum aviculare, P. persicaria, Poten-
tilla anserina, P. reptans, Taraxacum officinale, Veronica scutellata, deren Wasser-
formen auch, soweit ich weiss, nicht früher beschrieben worden sind.

Hydrophile Anpassungen morphologischer Natur. Das Blatt.
Die submersen Wasserbehälter gehören, wie Schenk gezeigt hat, 3 Typen an:
a) das haarfein geteilte, radiäre Blatt, b) das Bandblatt, c) das breite durchsichtige
Blatt, mehreren Potamogeton-Arten charakteristisch. Die mehr zufällig sub-
mersen Blätter streben sich einer von diesen Kategorien unterzuordnen, wenn
sie nicht bald vermodern und abfallen, oder auch gar nicht zur Entwickelung
kommen, wie es bei mehreren Xerophyten der Fall ist (Centaurea jacea, Cynan-
churn vincetoxicum, Herniaria glabra, Mentha austriaca, Polygonum aviculare).

Verlängert und verschmälert werden die Blätter sehr deutlich bei Inula
britannica, Leontodon autumnalis, Plantago major, Potentilla anserina (Blattstiel)
Taraxacum officinale.

Eine sehr deutliche Verdünnung des Blattes, wodurch die Lamina durch-
sichtig wird, fand sich besonders bei Plantago major, Polygonum persicaria,
Teucrium scordium und Veronica scutellata; bei den zwei letzten war auch
Dilatation der Lamina bemerkbar. Die Verdünnung ist besonders von der
Verminderung der Mesophyllager hervorgerufen.

Eine eigenartige Anpassung fand sich bei Potentilla reptans, bei welcher

4i I Allgemeine Morphologie. 41

die Blattstiele sich bei höherem Wasserstand verlängern, um die Blattflächen
über Wasser zu halten.

Von Kryptogamen fand ich Polytrichum commune, das nennenswert ist,
weil die untergetauchten Blätter eine andere Lichtlage als die Luftblätter
hatten. Dasselbe habe ich später (in diesem Frühjahr) auch an Ranunadus
flamm ula und R. repens gesehen.

Haare, Blattzähne und kürzere Lappen streben bei untergetauchten
Exemplaren zu verschwinden.

Der Stamm wird in grösserem oder kleinerem Grade verlängert. An
Formen, die in sehr tiefem Wasser wachsen, entwickelte sich oft ein Hebe-
stengel, aus eigenen sehr verlängerten Internodien bestehend, z. B. bei Ranun-
cultis flammula, Juncus-Arten. Die Verlängerung des Stammes und der Blätter
wird durch die geschwächten Lichtverhältnisse hervorgerufen.

Eine äusserst reichliche Sprossbildung von den Knoten findet sich bei
vielen submersen Pflanzen.

Die Wurzel. Die untergesenkten Land- und Sumpfpflanzen zeigen im
Gegensatze zu den eigentlichen Hydrophyten eine sehr reichliche Bildung von
Nebenwurzeln, wie man besonders an Agrostis stolonifera, Hydrocotyle vulgaris,
Peplis portula, Ranunculus flammula, Teucrium scordium, Veronica scutellata sehen
kann. Bei dem submersen Grase Agrostis canina sind diese Wurzeln negativ
geotropisch (oder richtiger vielleicht aerotropisch).

Hydrophile Anpassungen anatomischer Natur. Die Anatomie
der Submersen ist bis jetzt nur in allgemeinen Zügen von mir untersucht. Die
Wurzeln wie der untergetauchte Stamm sind im allgemeinen von lakunöser
Struktur (Aerenchym), der veränderten Respirationsverhältnisse wegen. Zu-
weilen führen auch die Wurzeln Chlorophyll, wie bei Menyanthes trifoliata,
Veronica scutellata (zuweilen). Die mechanischen Elemente werden reduziert
oder verschwinden ganz, so die Collenclrymstränge bei Plantago major f. sub-
mersa und die subepidermalen Collenchymbündel bei Galium palustre, die sehr
schwach entwickelt sind. Auch die Gefässbildung ist wahrscheinlich reduziert,
blieb aber bis jetzt ununtersucht. Die Differenzierung im Mesophyll ist wenig
ausgeprägt: die Palisaden werden verkürzt, sind gewöhnlich beinahe isodia-
metrisch. Die Aussenwand der Epidermiszellen ist immer verdünnt. Die Epi-
dermis führt wenigstens zuweilen Chlorophyll. Die Spaltöffnungen entwickeln
sich auch an den unter der Wasseroberfläche gebildeten Blättern.

227. Goebel, K. Über Symmetrieverhältnisse in Blüten. (Wiesner
Festschr., Wien 1908, p. 151—166, 11 Textfig.)

Vgl. hierüber unter „Physikalischer Physiologie".

228. Goebel, K. Einleitung in die experimentelle Morphologie
der Pflanzen. Leipzig und Berlin 1908, 8°, VII, 260 pp., 135 Abb.

Das Buch behandelt die bisherigen Ergebnisse der experimentellen
Pflanzenmorphologie und wird unter „Physikalischer Physiologie" besprochen.

229. Gaillauniin, A. A propos de la transformation des petales
en etamines chez un Lis et d'une feuille anormale de Caoutchouc.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 558—561, Fig. 1—2.)

Betrifft Lilium auratum und Ficus elastica. Siehe „Teratologie".

230. Henslow, G. Phyllotaxis: or, the arrangements of leaves in
accordance with mathematical laws. (Journ. R. Hort. Soc. London, XXXIII,
1908, p. 36—48.)

42 C K- Schneider: Morphologie und Systematik der Sipbonogamen. [42

Vorlesung über die Haupttatsachen und Prinzipien der Blattstellungs-
lehre.

231. Henslow, (i. On the Origin of Di-trimerous Whorls among
the Flowers of Dicotyledons. (Trans. Soc. Linn. Lond., ser. 2, VIT, 1908.
p. 153—162, 2 Textfig.)

The di-trimerous whorls occuring in the flowers of Dicotyledons have
been derived from the 2 5 phyllotaxis, the two circles of three members each
corresponding to a Single cycle of the 2 5 divergence. In Monocotyledons
each ternary whorl corresponds to a single cycle of the l/3 divergence.
Examples are quoted from the Ranunculaceae, Berberidaceae, Polygonaceae and
other Orders.

Nach Wilson im Bot. Centrbl., CVIII, p. 628.

232. Hus. Henri. Fasciation of known causation. (Amer. Natural.,
XLII, 1908, p. 81—97.)

Siehe „Teratologie".

233. Iterson, G. van. Mathematische und mikroskopisch-ana-
tomische Untersuchungen über Blattstellungen nebst Betrachtungen
über den Schalenbau der Miliolinen. Jena 1907, 331 pp., 110 Textf., 16 Taf.

Nicht gesehen.

234. Kenter, J. Morphologisch-biologisches Skizzenbuch für
Schüler mittlerer und höherer Lehranstalten. Anleitung zur Beobachtung des
Pflanzenlebens. Arnsberg 1908, 8 °, 160 pp.

Nicht gesehen.

235. Kobler, J. Beiträge zur Anatomie und Entwicklungs-
geschichte des Markes einiger Dicotylen. Diss. Freiburg (Schweiz),
1908, 8°, 68 pp., 2 Tab.

Siehe „Anatomie".

236. Kühlhorn, J. Zur Kenntnis des Baues der Laubblätter der
Dicotyledonen. Diss. Göttingen, 1908, 132 pp., 8°.

Siehe „Anatomie".

237. Lignier, 0. Essai sur l'evolution morphologique du regne
vegetal. (O. R. Assoc. frane. l'avancem. sei. Clermont-Ferraud, 1908, p. 530
bis 542.)

Vgl. hierzu unter Paläontologie und auch das Referat von Zeiller im
Bot. Centrbl., CXI, 1909, p. 504—505. Hier sei nur hervorgehoben, dass
Lignier die Monocotyledonen von den Dicotyledonen ableitet, von denen sie
sich sehr frühzeitig abgezweigt haben sollen.

238. Maemillan, H. F. Tropical fruits in Covent Garden. (Gard.
Chron., 3. ser., XLIV, 1908, p. 443—445, Fig. 177—181 u. tab. nigra).

Verf. bespricht: Mangifera indica, Persea gratissima, Citrus decumana var ,
Punica granatum, Diospyros Kaki, Anona Cherimolia, Passiflora edulis, P- lauri-
folia, Monstera deliciosa. Psidium guava. Bertholletia excelsa, Caryocar nueiferum,
Anacardium occidentale, Arachis hypogaea. Nephelium Litclti, JV. lappaceum,
Pliotinia japonica, Durio zibethinus, Garcinia mangostana, Achras Sapota, Carica
Papaya, Cyphomandra betacea, Psidium Cattleyanum, Artocarpus incisa, A. integri-
folia, Passiflora quadrangidaris, Dillenia indica-

239. Martelli. Valentino. Note botanometriche. (Ann. di Bot., VI.
p. 469—522, Roma 1908.)

43] Allgemeine Morphologie. 43

Von dem Gesichtspunkte ausgehend, dass wohl die wenigsten Pflanzen
eine Blattstellung so genau aufweisen, wie sie durch eine mathematische
Formel (bzw. einen Bruch) bezeichnet wird, schlägt sich Verf. auf die Seite
der Gebr. Bravais, welche behaupten, dass die zerstreuten Blätter nicht in
Orthostichen, sondern in Spiralreihen vorkommen.

Er stellt deswegen einige geometrische Betrachtungen zunächst an und
geht dann zur Erörterung des Hauptsystems über, worauf er die übrigen
Blattstellungssysteme diskutiert und gelangt zu den folgenden Grundsätzen:
Die zerstreuten Blätter sind meistens in Schneckenlinien, nicht in Vertikal-
reihen, angeordnet, wodurch die Divergenz von einem irrationalen Winkel
dargestellt wird. Ihr Wert ist, für zwei beliebig übereinander vorkommende
Blättern, ein annähernder, keineswegs ein exakter, wie wir teils aus Unvoll-
kommenheit unserer Sinne, teils infolge von Verschiebungen der Insertions-
punkte, leicht annehmen. Bei kurzen Internodien sind derartige Verschiebungen
weniger leicht möglich und auch nicht sehr auffallend, wohl aber bei Organen
mit langen Internodien.

In jedem Blattstellungssystem hat man eine Reihe von Blättern, welche
sich allmählich der genetischen Spirale nähern, die durch den Ausgangspunkt
geht. Diese Blätter, auf der Grundspirale fortlaufend numeriert, entsprechen
gewöhnlich der typischen Serie zweiter Ordnung, nämlich:

1 . n, 2n -\- 1 , 3n -f- 2, 5n -4- 3, 7n -f- 5 . . .
Ist n = 2, dann erhält man das gewöhnliche System mit der Divergenz
= 137° 30' 28"; es können aber auch andere Serien auftreten, die man aus
jener bzw. aus den von ihr abgeleiteten entwickeln kann.

In jedem System wird die genetische Divergenz durch einen fortgesetzten
periodischen Bruch ausgedrückt, dessen successive Näherungswerte die aproxi-
mativen Divergenzen für zwei übereinander liegende Blätter ausdrücken,
keineswegs aber — wie man bisher getan — als Indices von bestimmten
Blattstellungen anzusehen sind. Solla.

240. Noll, F. Vorläufiger Abschluss der Versuche über die
Bestimmung des Geschlechtes bei diöcischen Pflanzen. (Sitzb.
nath. Ver. preuss. Rheinlande u. Westfalens, 1907 [1908], 2. Hälfte, p. 68—91.)

Siehe im blütenbiologischen Teile des Just.

241. Noury, E. Note sur un cas de syncarpie presente par une
pomme ä cidre. (Bull. Soc. Amis Sc. nat. Rouen, XLIII, 1908, p. 12 — 13.)

Siehe „Teratologie".

242. Ono, K. Studies on some extranuptial nectaries. (Journ.
Coli. Sei. Tokio, XXIII, 1907, Art. 3.)

Verf. gibt eine Zusammenstellung der hauptsächlichsten bis 1904 er-
schienenen Arbeiten über extranuptiale Nektarien.

Diese treten in zwei Typen auf, deren erster durch Polygonum sacha-
linense und deren zweiter durch Prunus yedoensis repräsentiert wird. Die
Nektarien des ersten Typus entwickeln sich aus Epidermiszellen, während die
des zweiten aus einer Gruppe von Zellen entstehen, die teils epidermal, teils
hypodermal sind, ßlattspreitennektarien sitzen an der Unterseite der Spreite,
Blattstielnektarien an der Oberseite des Blattstieles. Die Nektarien bestehen
aus zwei Teilen: Sezernierenden Zellen, die den Nektar an der Oberfläche der
Honigdrüse abscheiden, und Subglandularzellen, die zu der Secretion nicht in

44 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [44

anmittelbarer Beziehung stehen. Die äusseren Umstände sind von geringem
Einfluss auf die Secretion, verglichen mit den inneren Bedingungen des
Nectariums selbst; die Feuchtigkeit scheint noch die grösste Bedeutung zu
haben. Die Nektarien des zweiten Typus sezernieren lebhafter als die des
ersten Typus. Ameisen werden von den extranuptialen Nektarien angezogen.

243. Passy, P. La Variation de la forme dans les fruits. (Journ.
Soc. nation. Hortic. France, IX, 1908, p. 40—42.)

Nicht gesehen.

244. Pauchet, Leon. Recherches sur les Cupuliferes. (Ann. Sei.
Nat., ser. 9, VIII, 1908, p. 301-352, Fig. 1—41.)

Im Resümee sagt Verf. über die Ergebnisse:

Die vergleichende Untersuchung der Bractee, Knospenschuppe und
Cupula zeigt, dass diese successive Modifikationen sind, die das Blatt hervor-
bringt nach Massgabe seiner Differenzierung in ein Schutz- und Stützorgan.
Bei der gleichen Art notierte man im Laufe dieser Differenzierung einen
prädominierenden Zuwachs der Bractee in bezug auf ihre innere Seite; die
Bildung von perivasculärem Sklerenchym, zuerst beschränkt (Bractee), im Bogen
entwickelt um die Bündel (Knospenschuppen), schliesslich einen vollständigen
Ring bildend (Cupula).

Bei Carpinus wie bei Corylus gibt es eine Zone der Lokalisation von
Kalkoxalatkristallen unter der Epidermis und je nach der Art in wechselnden
Tiefen. Bei den Fageen findet sich diese Zone zwischen den Gefässen lokalisiert
und nicht mehr unter der Epidermis.

Die Cupula von Fagus süvatica, ebenso wie die von Castanea vulgaris
wird durch die Verschweissung, Seite an Seite, der vier Bracteen der sekun-
dären Blüten gebildet, mit denen sich vereinigen acht Stipulae oder Bracteolen,
die unter sich alternieren und den Bracteen dieser Blüte opponiert sind. In
der Cupula von Fagus findet ein üedoublement des innersten Bündels statt.

Der Blattursprung der Cupula ist also nicht zweifelhaft.

Durch ihr zelluloses Parenchym, in dem Sklerenchymgruppen verstreut
sind, unterscheiden sich Castanea und Quercus von Fagus, deren Parenchym
ganz sklerifiziert ist.

Die Entwickelung der Anthere vollzieht sich bei den beiden Gruppen in
identischer Weise. Bei allen untersuchten Arten ergibt die Teilung der sub-
epidermalen Schicht vier Schichten, von denen nur eine, die mechanische
Schicht, bis zur Reife persistiert. Diese zeigt bei allen Arten gemeinsame
Merkmale: kleine senkrecht zu den Scheidewänden und im tangentiellen Sinne
disponierte Zellulosestreifen; die Epidermis hat, sobald sie verholzt (Corylus,
Castanea) Einfluss auf das Aufspringen, welches invers wird. Sobald die Epi-
dermis zellulös bleibt, findet die Dehiscenz durch einfaches Aufspreizen der
beiden primitiv im Kontakt befindlichen Klappen statt (Carpinus, Castanea,
Fagus). Es liegt hierin kein differentieller Charakter der zwei Gruppen, aber
diese Unterscheidung wird evident, wenn man die Griffel studiert.

Die Griffel der Coryleen zeigen folgende Merkmale: Fehlen eines Gefäss-
svstems, zelluloses Parenchym mit Gängen, Epidermis mit radial verlängerten
Zellen, mitten durch welche sich der Pollenschlauch entwickeln kann, Zellen,
die sich derart resorbieren können, dass sie einen Zentralkanal ergeben (Leitungs-
gewebe). Der Griffel der Fageen zeigt ein gut differenziertes Gefässsystem,

451 Allgemeine Morphologie. 45

einen perivasculären Sklerenchymbogen, ein in der unteren Partie jedes Griffel-
zweiges gelegenes Leitungsgewebe. Bei Castanea bestimmen die verschiedenen
unvollkommen verschweissten Narbenzweige mehrere Leitungsfissuren; diese
Leitungsfissuren des zentralen Griffels korrespondieren hier nicht mit denen
der Griffelzweige, wie dies bei Fagus und Querem statthat.

Bei den Ovula der Cupuliferen begünstigen zwei Hauptursachen die Be-
fruchtung: einmal die Art der Befestigung und zum andern die mehr oder
weniger vorgeschrittene ßeife.

Bei den Coryleen bemerkt man, dass die Ovula im allgemeinen auf der
Placenta nicht an zwei streng opponierten Punkten inseriert werden: das eine
A zeigt einen der Basis der Griffel mehr genäherten Insertionspunkt, als den
des Ovulum B, welches zum andern Oarpell gehört. Ausserdem präsentiert
dieses Ovulum A seinen Nabel fast der Chalaza opponiert, wenn der Nabel von
B sich ein bisschen höher im Verhältnis zu einer Chalaza findet. Das Ovulum A
zeigt eine frühere Beife als das opponierte Ovulum; es wird alsdann zuerst
befruchtet durch den Pollenschlauch, der mit Vorliebe den kürzesten "Weg ver-
folgen wird, um bis zum Nucellus zu gelangen (Chalazogamie). Die eine An-
regung zur Entwickelung bewirkende Befruchtung wird infolgedessen das Ver-
kümmern des befruchteten oder nicht befruchteten B zur Folge haben. Bei
Fagus zeigen die Ovula dieselbe Disposition, wie bei Corylus.

Die Entwickelung des Embryo vollzieht sich bei den Coryleen und
Fageen in identischer Weise. Der immer auf einige Zellen reduzierte Suspensor
verschwindet meist einige Wochen nach der Befruchtung (ausgenommen bei
Quercus). Die Embryone der Coryleen sind nicht immer axial. Wenn der
Embryo in Rücksicht auf den Nucellus exzentrisch ist, so rührt das daher, dass
die Befruchtung bis zu einem unteren Embryosack gereicht hat, dessen Oosphäre
selbst eine exzentrische Lage einnimmt (Carpinus).

Die anatomische Untersuchung des Embryo zeigt, dass das Gefäs^-
system sich bei Corylus, Carpinus und Fagus nicht vor der Keimung differen-
ziert. Nicht so ist es bei Quercus und Castanea. Einen Monat vor der Reife
zeigen die Cotyledonen dieser Arten eine sehr deutliche Differenzierung ihrer
Gefässelemente. Der Bast und das Holz sind superponiert im Cotyledon und
im Cotyledonarstiel. Unabhängig von diesen aus procambialem Gewebe hervor-
gegangenen Gefässen gibt es andere, die sich zwischen den Zellen des cotvledo-
naren Parenchyms differenzieren. Sie sind transitorisch und verschwinden
durch Regression vom fünften zum zehnten Tag nach der Keimung. Ihre
Bildung scheint eine Folge der Digestionsphänome zu sein, die in den Cotyle-
donen vor der Reife sich vollziehen.

Die Hypocotylachse zeigt Siebröhren, die zuerst erscheinen, dann Holz
mit alternierender Struktur (Protoxylem) und schliesslich Metaxylem mit in
Beziehung zum neugebildeten Bast superponierter und schiefer Struktur. Das
Protoxylem verschwindet einige Tage nach der Keimung.

Die Embryone von Castanea vulgaris und Quercus robur zeigen eine frühe
Differenzierung ihrer Gefässelemente; ihre Entwickelung ist in den Cotyledonen
basifug.

Die Untersuchungen zeigen, dass die Gruppe der Coryleen sehr homogen
ist und Corylus Avellana und Carpinus Betulus unter sich viel engere Be-
ziehungen zeigen, als dies bei den Fageen der Fall ist. Hier zeigt Fagus
silvatica sehr markierte Kennzeichen und Quercus robur und Castanea vulgaris
haben untereinander eine viel grossere Analogie.

46 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [4ß

245. Schulze, E. Zur phytomorphologischen Nomenclatur. (Zeit-
schrift Naturw. Halle a. S., LXXIX, 1907, p. 462-469.)

246. Schuster, Walter. Die ßlattaderung des Dicotylenblattes
und ihre Abhängigkeit von äusseren Einflüssen. (Ber. D. Bot. Ges.,
XXVI, 1908, p. 194—237, Tafel VIII— XI, 6 Textfig.)

Siehe im physiologischen Teile des Jahresberichtes.

247. Schwendt, E. Zur Kenntnis der extrafloralen Nektarien,
Göttingen 1908, 8 <\ 48 pp., 2 Taf.

Bereits 1907 publiziert, vgl. Just, 1907, No. 183.

248. Theorin, P. 6. E. Anmärkningar om nägra växtarters
Trichomer. (Ark. f. Bot., 1908, VII, No. 9, 56 pp., eine Tafla.)

249. Tropea, Calcedonio. >Su alcuni casi di eteromericarpia. (Mal-
pighia, XXI, 1907, p. 284—285.)

Bei Palermo beobachtete Verf. Exemplare von Thapsia garganica L.,
welche teils grössere, flache mit breitem Flügel versehene Diachänen, teils
solche, die kleiner, mehr spindelförmig und völlig flügellos waren, besassen.
Ein ähnliches Verhalten zeigten Herbarexemplare von Th. villosa L. Die Dia-
chänen von Elaeoselinwn Asclepium Bert, sind gross, geflügelt oder um */T
kleiner und flügellos; E. meoides zeigt Früchtchen mit vier, zwei oder keinen
Flügeln. Ähnliche Differenzen findet man auch bei Laser/>itium thapdoides Desf.
und L. gallicum ß angustifolium, bei welchen sogar Übergänge bemerkt werden,
während die Früchtchen von L. Siler L. (Herbarexemplare) geflügelt oder
ungeflügelt sind. ■

Diese Fälle von Heteromerikarpie kommen auf derselben Pflanze gleich-
zeitig vor oder lassen sich an verschiedenen Pflanzen wahrnehmen.

Solla.

250. Worsdell, W. C. A study of the vascular System in certain
Orders of the Ranales. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 651—682, 2 pl., 4 fig.)

Siehe „Anatomie".

VII. Allgemeine Systematik.

251. Allan, J. A. Another aspect of the species question. (Americ.
Natural., XLII, 1908, p. 592—600.)

Bemerkungen zu der durch die unten referierten Arbeiten angeregten
Debatte, besonders vom zoologischen Standpunkte.

252. Anonym. New plants of Ghent. (Gard. Chron., ser. 3, XLIII,
1908, p. 257—258, fig. 112-115, 120, 123. 124, 130 u. 4 Tafeln.)

Betrifft: Bromelia tricolor, Philodendron Ilsemani, Pereskia Godseffiana,
Encephalartos Woodii, Ptyehoraphiu Siebertiana, Pinanqa Micholitzii, Cocos nucifera
var. aurea, Anthurium Laucheanum, A. Sanderi, Nephrodinm gracillimum, Caladium
„Centenaire" und Codiaeum „Fred Sander".

253. Arber, E. A. Newell. Studies in the Evolution of the Angio-
sperms. The relationship of the Angiosperms to the Gnetales. (Ann. of Bot.,
XXII, 1908, p. 489—515, 3 figs.)

Siehe im descendenztheoretischen Teile und unter „Palaeontologie".

254. Arher, E. A. N. und Parkin, J. D e r U r s p r u n g der Angiospermen.
Autorisierte Übersetzung aus dem Englischen von Otto Porsch. (Östr. Bot.
Zeitschr., LVIII, 1908, p. 89—99, p. 133—161, Fig. 1 — 3, p. 184—204, Fig. 4.)

47 1 Allgemeine Systematik. 47

Die am Schluss gegebene Zusammenfassung der Resultate dieser wert-
vollen Arbeit lautet wie folgt:

Ein allgemeiner Überblick über die rezenten Angiospermen hat uns zu
dem Schlüsse geführt, dass die apetalen Familien ohne Perianth wie die
Piperales, Amentiferen und Pandanales keineswegs als ursprüngliche Angio-
spermen betrachtet werden können. Wir weichen hiei in von der herrschenden,
namentlich durch Engler vertretenen Ansicht vollständig ab. Englers Theorie
wird aus drei Gründen beanstandet. Erstens setzt sie voraus, dass das Perianth
de novo entstehen und ein Organ sui generis sein muss. Im Gegensatze hierzu
vermuten wir, dass das Perianth eine alte Bildung ist, welche bereits die
Fruktifikation der unmittelbaren Vorfahren der Angiospermen besass. Zweitens
stehen die sogenannten ursprünglichen Blüten der obenerwähnten Familien
ausnahmslos in komplizierten und hochentwickelten Inflorescenzen, die wir
nicht als ursprünglich betrachten können. Drittens ist diese Theorie phylo-
genetisch unfruchtbar, denn sie liefert keinen Schlüssel zu den Vorfahren der
Gruppe, wenn ihr auch das Verdienst der Einfachheit nicht abzusprechen ist;
ebensowenig bestrebt sie sich, die rezenten Angiospermen in eine Entwickelungs-
linie mit den fossilen Pflanzen früherer Perioden zu bringen. Nach unserer
Ansicht ist die ursprüngliche und typische Angiospermenfruktifikation eine
spezielle Form des amphisporangiaten Zapfens, ausgezeichnet durch die be-
sondere Aneinanderreihung der Mega- und Mikrosporophylle und den Besitz
eines ausgesprochenen Perianths. Einen Strobilus mit diesen Merkmalen be-
zeichnen wir als Anthostrobilus. Das Wort „Blüte", welches nach unserer
Meinung auf die Angiospermen beschränkt werden sollte, wird in sehr ver-
schiedenem Sinne gebraucht. Die Blüte der Vertreter dieser Gruppe ist als eine
spezielle Form des Anthostrobilus zu betrachten und kann als Eu-Anthostrobilus
unterschieden werden, dessen ausschlaggebende Charaktere der Besitz des-
jenigen Spezialtyps eines Mikrosporophylls, den wir als Staubblatt bezeichnen,
und geschlossene Fruchtblätter sind. Nach unserer Ansicht ist unter den
Gymnospermen eine ursprünglichere Form des Anthostrobilus zu finden, bei
dem aber die Megasporophylle nicht geschlossen sind und die Mikrosporo-
phylle noch nicht die als Staubblätter zu bezeichnende Form besitzen. Wir
bezeichnen diesen letzteren Typus als Pro-Anthostrobilus. Dies ist die Zapfen-
form, wie sie die mesozoischen Bennettiten besassen und unserer Meinung
nach auch die hypothetischen direkten Vorfahren der Angiospermen oder, wie
wir sie hier nennen, die Hemiangiospermen.

Auf dem Boden der Strobilustheorie der ursprünglichen Angiospermen-
fruktifikation ist es unter Berücksichtigung der Beweise der Phytopaläontologie
möglich, die Abstammung der rezenten Angiospermen in den Hauptumrissen
zu verfolgen. Die direkten Vorfahren dieser Gruppe, die Hemiangiospermen,
sind uns im fossilen Zustande derzeit noch unbekannt. Doch vom Standpunkte
dieser Theorie aus erkennen wir im Pro-Anthostrobilus der mesozoischen
Bennettiten, der nach unserer Ansicht nahen Verwandten der Hemiangio-
spermen, Charaktere, die uns instand setzen, bis zu einem gewissen Grad die
fehlende Fruktifikation der Vorfahren zu ergänzen. Bei dieser Aufgabe werden
wir von dem Gesetz der korrespondierenden Entvvickelungsstadien unterstützt,
welches besagt, dass gleichwertige Entwickelungsstadien der verschiedenen
Organe einer und derselben Samenpflanze nicht zeitlich zusammenfallen.
Dieses Gesetz hat sich namentlich bei der Betrachtung der Entstehung des

48 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [48

angiospermen Belaubungstypus bewährt, welcher nach unserer Meinung durch
einen Wechsel im Verzweigungstypus eingeleitet wurde.

Wir betrachten die Angiospermen als eine im wesentlichen monophyle-
tische Gruppe, wobei die Monocotylen in einer sehr frühen Periode von dem
Dicotylenstamme, und zwar wahrscheinlich von der Formenreihe der Ranales
abzweigten. In diesen beiden Gruppen war Entomophilie ein ursprüngliches
Merkmal. Wir glauben, dass der Wechsel von der allgemein angenommenen
Anemophilie der mesozoischen Hemiangospermen und der Bennettiten zur
Entomophilie durch Übertragung der Vorrichtung des Pollensammeins vom
Megasporangium auf das Megasporophyll und damit zusammenhängend die
Bildung eines Ovariums die „treibende Kraft" bildete, welche nicht nur die
Angiospermen ins Leben rief, sondern auch den Grundstein zu ihrer gedeih-
lichen Weiterentwickelung legten.

Falls sich diese Schlussfolgerungen bewähren, dann ist es schon jetzt
möglich, die Abstammungslinie der Angiospermen in eine zurückliegende
geologische Epoche zu verfolgen. Dies mag aus folgender Tabelle ersicht-
lich sein:

ö. Angiospermen: mesozoisch und tertiär (rezent). — Eu-Anthostrobilaten,
4. Hemiangiospermen (fossil unbekannt): mesozoisch. — Pro-Anthostrobilaten.

3. Pteridospermen J

n TT , ,. ... ,. , ,r c ■< ( paläozoisch. — JNicht strobuate V or-

2. Heterosporer iarnahnlicher Vorfahr v l

1. Homosporer farnähnlicher Vorfahr \

Nummer 1, 2 und 4 sind fossil unbekannt, doch wird zu No. 1 und 2
der Schlüssels von den Pteridospermen (No. 3) und zu No. 4 von den Bennet-
titen geliefert. Nummer 3 — 5 waren Spermophyten.

Diese Abstammungstheorie gestattet uns, noch weiter zu gehen.

Es ist aller Grvind zu der Annahme vorhanden, dass bei den homo- und
heterosporen ursprünglichen farnähnlichen Vorfahren die Sporophylle locker
verteilt und nicht in begrenzten Zapfen aneinandergereiht waren. Dieser Zu-
stand blieb noch ein Charaktermerkmal der farnähnlichen Samenpflanzen oder
Pteridospermen. Von diesem paläozoischen Formenkomplex entwickelten sich
jedoch wahrscheinlich auf zweifachem Wege im Mesozoicum strobilate Ab-
stammungslinien. Bei der einen waren die gleichen Sporophylle in mono-
sporangiaten Zapfen aneinandergehäuft. Bei den anderen wurden die männ-
lichen und weiblichen Sporophylle in einem amphisporangiaten Zapfen ver-
einigt, wobei die Sporophylle wenigstens eine Zeitlang ihre ursprüngliche
farnwedelähnliche Form beibehielten, wie an den männlichen Organen der
Bennettiten deutlich zu sehen ist. Die monosporangiaten Strobilaten führten
zu den modernen Cycadeen. Diese Folgerung wird durch die Tatsache be-
kräftigt, dass in der Gattung Cycas selbst bloss die männlichen Sporophylle
in Zapfen vereinigt sind. Die weiblichen können als mehr oder weniger in
ihrem ursprünglichen Zustand verblieben betrachtet werden, namentlich rück-
sichtlich ihrer Verteilung am Stamme. Dieser Fall wäre schwer mit der An-
nahme vereinbar, dass der monosporangiate Zustand sich bei den rezenten
Cycadeen von einem ursprünglichen amphisporangiaten Strobilus ableitet.
Anderseits führten die amphisporangiaten Strobilaten zur Entstehung anderer
Formenreihen wie der Bennettiten und Angiospermen im Sinne der folgenden
Tabelle.

49]

Allgemeine Systematik.

49

Tabelle der Verwandtschaftsbeziehungen der Angiospermen
Gegenwart

Tertiär

Mesozoicum

Formenkreis der Ranales

CD

cc

CS

Ol

CD

"~H

+=

cö

TS

CS

CD

a

u

CD

Eu-anthostrobilateae

pq

Pro-anthostrobilateae

CD
cö
CD

s

S-.
CD
D^
CO

o

CD

bC
Ö
03

"|

CD

a

Paläozoicum

Monosporangiateae

CD
C8
CD

a

S-.
CD

cc
O

•p-H
(H
CD

Oh

Diplosporangiateae

255. Arthur, J. C. Tbe physiologic aspect ofthe species question.
(Americ. Natural., XLII, 1908, p. 243— 248.)

Siehe „Physiologie".

256. Beissner, L. Kleine Mitteilungen über neuere Laubgehölze.
(Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 136-142.)

Betrifft: Fraxinus excelsior L. leucocarpa und albovariegata, Exochorcla
spec. aus N.-Schensi, Hex Sieboldi Miq., Qnercus sessiliflora mespilifolia Walk.,
Paeonia arborea lutea saperba, Dipclta ventricosa, Ribes Grossularia X nigrum
= R. Schneiden Maurer, Rhododendron kamtschaticum Pall., Stuartia virginica
Cav., Arctostaphylos Manzanita Parry, Calycanthus praecox L., Fagus silvatica
Uohanii Masek, XCytisus kewensis-

Ausserdem bespricht Verf. die Aufnahme des Namens Psedera Raf. für
Quinaria bzw. Parthenocissus und wendet sich gegen diese Neubenennung, die
jedoch den Wiener Regeln gemäss gültig ist.

257. Bellini, Raffaello. Criteri per una nuova classificazione delle
Personatae. (Ann. Bot., VI, Roma 1907, p. 131-145.)

Bei den schwankenden morphologischen Merkmalen zur Unterscheidung

der Vertreter der Personaten greift Verfasser die Charaktere, welche von den

Nektarien geboten werden und die Lebensweise der Pflanzen als stichhaltiger

heraus und baut darauf ein neues Klassifikationsschema. Er fasst diese Familie

Botanischer Jahresbericht XXXV l (1908) 3. Abt. [Gedruckt 24. 5. 10.] 4

50 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [50

im Sinne Jussieus (1789) auf und beschreibt zunächst die typischen morpho-
logischen Eigenheiten derselben.

Bezüglich der Nektarien stellt er folgende vier Typen auf:
1 . Dieselben stellen eina hypogyne Scheibe oder eine vordere Drüse dar,

begleitet von Honiggrübchen und Wegweisern, die einen und die anderen

in mannigfaltiger Ausbildung.

2. Die Nektarien sind auf ein fünftes abortiertes Staubgefäss zurückzu-
führen, wie bei Collinsia und Tondlia mit schmetterlingsartiger Blüte:
auch hier kommt in einer Auftreibung der Kronenröhre ein Honig-
grübchen vor.

3. Am Grunde der längeren Staubgefässe ist eine meist verschieden ge-
färbte Fläche zu sehen, welche sich als Nectarium darstellt. Die Blüten
sind bilateral symmetrisch gebaut: Chelone barbata, Pentstemon u. a.

4. Die Nektarien kommen auf Blumenblättern in Grübchen vor: Calceolaria
oder fehlen ganz: Verbascum (mit einzelnen Ausnahmen).

Die Arten von Digitalis und Pentstemon sind proterandrisch, andere
Gattungen sind ausgesprochen proterogyn.

Fast alle Binanthaceen sind Schmarotzer und leben auf den Wurzeln
vorwiegend der Gräser; die echten Schmarotzer (nur wenige) sind nicht grün;
in den ersten Entwickelungsstadien führen die anderen chlorophyllführenden
Gattungen ein selbständiges Leben.

Das Schema für die Klassifikation stellt sich folgendermassen dar:

Fam. Personatae.

Unterfam. I. Scrophulariaceae, nicht schmarotzend.

1. Nektarien fehlend, oder flach ausgebreitet . I. Trib. Verbasceae.

2. Nektarien in Grübchen IL Trib. Hemimerideae.

3. Nectarium abnorm,

auf Blumenblättern III. Trib. Calceolariaceae.

als Verdickung an der Basis der Staub-
fäden IV. Trib. Cheloneae.

an Stelle eines fünften Staubgefässes . . V. Trib. Collinsieae.

4. Nectarium ringförmig, unterweibig

a) Honiggrübchen röhrig,

Wegweiser behaart oder aderig . . . VI. Trib. Veroniceae.

Wegweiser behaart oder zweirippig . VII. Trib. Mimideae.
Wegweiser punktiert, nervenähnlich,

oder auch fehlend VIII. Trib. Digitaleae.

Blütenbau veilchenähnlich IX. Trib. Gratioleae.

Blütenbau schmetterlingsartig .... X. Trib. Schizantheae.

b) Honiggrübchen gespornt XL Trib. Linarieae.

c) Honiggrübchen sackartig XII. Trib. Antirrhineae.

Unterfam. IL Rhinanthaceae, Schmarotzerpflanzen; unterweibiges Nec-
tarium in einer vorderen Drüse.

1. Halbschmarotzer, Blumenkrone zweilippig

oder flach, Antherenhälften divergierend . . XIII. Trib. Gerardieae.

2. Halbschmarotzer, Blumenkrone rachenförmig,

Antherenfächer gleich (oder ungefähr gleich) XIV. Trib. Pedicularineae.

3. Echte Schmarotzer XV. Trib. Orobancheae.

Es folgen die knappen Diagnosen jeder einzelnen Tribus mit Anführung

der dazu gehörigen Gattungen. Solla.

51] Allgemeine Systematik. 51

2.">8. Bessey, Charles E. The taxonomic aspecfc of the species
question. (Americ. Naturalist. XL1L 1908, p. 218-223.)
Verf. resümiert wie folgt:

1. Taxonomy is a means, not an end; it does not exist for the taxonomists
alone, but for the whole body of botanists.

2. The first purpose of Classification is to include all individual plants in
as small a number of species as possible.

3. That Classification of the plants of the world most fully accomplishes
its purpose which gives an adeqnate picture of the whole in the sim-
plest form.

4. Species have been invented in order that we may refer to great numbers
of individuals collectively, instead of singly; therefore the number of
species must be far less than the number of individuals.

5. Since we make use of species for the purpose of saving labor in making
the aquaintance of plants, it follows that those species whose limitations
are so faint or vague that we apprehend them with difficuity have no
reason for existence.

6. Scientific Classification does not require that every difference in structure
and habit be made the basis of a separata species. There must be room
left for individual Variation, otherwise we should have as many species
as there are individual variations.

7. The (taxonomist should look for resemblances rather than for differences,
so that he may make fewer rather than more species.

8. Species must be so made as to be unterstood and appi-eciated by the
botanists for whom they are described. A species has no legitimate
reason for existence whose limits are perceptible only to its maker.

9. Experience must teil us what limitations of species are most con-
venient.

10. In making a species the guiding principle must be that it shall be

recognizable from its diagnosis.
ILA diagnosis should be brief enough to be remembered readily, for this

reason Linne's twelve-word diagnoses are worthy of imitation.
12. Long and complex descriptions should never be used for the limitation

of species, and when such long and complex descriptions are found to

be necessary this is a sufficient indication that the species should not

be made.

259. ßriquet, John. Decades plantarum novarum vel minus
cognitarum. Decades 2—4. (Annuaire Jard. Bot. Geneve, XII, 1908, p. 175.
to 193.) N. A.

Betrifft: Ranwiculaceae mit Ranunculvs; Geraniaceae mit Geranium;
Rubiaceae mit Galiinn.

260. Britton, N. L. The taxonomic aspect of the species question..
(Americ. Naturalist, XLII, 1908, p. 225—242.)

Verf. fasst seine Vorschläge wie folgt zusammen:

1. The individual is the taxonomic unit, usually undesignated.

2. Similar individuals constitute a race.

For general taxonomic purposes races need not be designated:
the conception and description of the species is broad enough to include
all races of which it is composed. There will never be complete uni-
formity of agreement as to the distinction between races and species,

4*

52 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [52

any more than there will ever be complete agreement as to the limitations
of genera. It is futile in sciences to attempt to lay down principles
which interfere with individual judgments. For special purpose the
races may be designated numerically, as, Quercus alba, race 2: OenotJiera
biennis, race 12: Bursa pastoris, race 17: Draba verna, race 104; There
are doubtless many instances where the species is composed of only one
race, just as we have monotypic genera composed of but one species.

3. Similar races constitute a species, the species designated binomially.

4. Similar species constitute a genus, the genus designated monomially.

261. Brittoii, Nathaniel Lord. Studies in West Indian plants, II.
(Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908, p. 561—569.) N. A.

Betrifft: 7. Harrisia, a new genus of Cactaceae. — 8. Potomorphe peltata
Miq. (Piper peltatum L.). — 9. The genus Stegnosperma Benth. — 10. Unde-
scribed Species from Jamaica (Dorstenia, Trichila). — 11. Additions to the list
of Jamaica sedges.

262. Britton, N. L. Studies of West Indian plants. (Bull. Torr.
Bot. Ol., XXXV, 1908, p. 337—345.) N. A.

Betrifft:

1. The Jamaican species of Hcrnandia-

2. The genus Cassipourea in Jamaica.

3. The genus Terebinthus P. Br. in the West Indies.

4. Passiflora ciliata Ait.

5. Bidens pilosa L.

6. The genus Malache B. Vogel.

263. Clements, Frederic E. An ecological view of species question.
(Americ. Naturalist, XLII, 1908, p. 253—264.)

Verf. schliesst seine Betrachtungen mit folgenden bezeichnenden Worten:
In concluding, the ecologist will confess frankly that he does not know
what a species is. On the other hand, he is certain that he knows some of
the things it is not, and that the species of the deseriptive botanist comprise
several widely different things. Just what these are and what their relation
to species, if there are such, is a matter to be decided by experiment alone.
The question of what a species is can not even be answered provisionallv
untill a sufficientiy large number of experiments have been made to indicate
the regulär procedure in the origin of plant forms and to reveal the principles
that control it.

264. Cook , 0. F. Origin and Evolution of Angiospermae throughApo-
spory. (Proc. Washingt. Acad. Sei., IX, 1907, p. 159—178.)

Nicht gesehen.

265. Costantin, J. et Poisson, II. Sur le Tsitsirj- de Madagascar.
(Assoc. franc. l'avancem. Sei., XXXVI, 1 part., Reims 1907, p. 230—231.)

266. Costantin, J. et Poisson, H. Sur le „Tsitsiry" de Madagascar
(Assoc. franc. l'avancem. Sei., XXXVI, 2, Reims 1907, p. 433—440.)

Nicht gesehen.

268. Cowles, H. C. An ecological aspect of the coneeption of
species. (Americ. Naturalist, XLII, 1908. p. 265—271.)

Verf. kennzeichnet seine Stellungnahme durch folgende Schlussworte:

Taxonomy must be scientific. It rnust require fore its devotees a
training as rigid as that required by professional workers in morphology,
physiology or ecology. Species-making by taxonomic tyros must be abandoned

53] Allgemeine Systematik. 53,

The requirement of Latin diagnoses, though regretted by many of us, may
be of help in cheeking the voluminous contributions of amatenrs. In the fnture
it must be recognized tbat the final thest of the validity of species is experi-
raental, and taxonomists must work no less in the herbarium, but more in the
field and in the garden. If the taxonomists of the future fail in these respects,
a hard bnt certain fate awaits them. The world of morphologists, physio-
logists and ecologists has borne with them patiently and long, and has de-
ferentially abided by the specific determinations of the taxonomists. The
recent ebullitions of the taxonomic radicals have evoked in botanists in general
successively dissatisfaction, contempt and rage. The things will not be endured
much longer; a little more and the sinning taxonomists will be „east out
into the outer darkness where there shall be wailling and guashing of teeth".

269. Dallimore, W. Holly, yew and box, with note on evergreens.
London, 1908, 8<>, 298 pp., ill.

Nicht gesehen.

270. Dode, L. A. Arbores et frutices novi. (Bull. Soc. Bot. France,
LV, 1908, p. 648—656, 2 Fig.) N. A.

Betrifft die Gattung Phellodendron mit einigen neuen Arten, sowie solche
von Zizyphus, Robinia, Camptotheca und Salix.

271. Ernst, A. Zur Phylogenie des Embryosackes der Angio-
spermen. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908, p. 419-438, tab. VII.)

Siehe „Descendenz" usw.! und „Morphologie der Zelle-.

272. Fonillade, A. Tableaux analytiques de quelques genres
difficiles. (Bull. Soc. Bot. Deux-Sevres, XX. 1908, p. 114—134.)

Betrifft: Ranunculus (Sect. Batrachium), Fumaria, Viola, Rosa (Haupt-
typen) und die Formen von R. canina.

273. Fl'itsch, Karl. Über die Verwertung vegetativer Merkmale
in der systematischen Botanik. (Mitt. Naturw. Ver. Steierm., XLIV,
1907 [1908], p. 1—19.)

Verf. spricht als Resultat seiner Erwägungen folgende Sätze aus:

1. Es gibt keine Merkmale, welche immer und in allen Gruppen des
Pflanzenreiches von gleich hohem Werte sind; es gibt aber auch keine,
welche niemals für den Zweck der systematischen Gruppierung heran-
gezogen werden könnten.

2. Es soll und kann nicht geleugnet werden, dass für die grösseren Ab-
teilungen des Systemes, namentlich für die Hauptstämme des Pflanzen-
reiches, die aus der Art der Fortpflanzung sich ergebenden Merkmale
wichtiger sind als die vegetativen; es können aber auch diese mit Er-
folg verwertet werden.

3. Eine wahrhaft natürliche Systematik muss alle an der Pflanze wahr-
nehmbaren Merkmale — die reproduktiven und die vegetativen, die in
der äusseren Gliederung und die im inneren Bau liegenden — berück-
sichtigen. Welche Merkmale den Ausschlag zu geben haben, muss in
jedem einzelnen Falle sorgfältig geprüft werden.

273. Fritsch, K. Gesneriaceae und Caprifoliaceae von der botanischen
Expedition der kais. Akad. d. Wiss. nach Südbrasilien 1901. (Denkschr. kais.
Akad. Wiss. Wien, 1908, 4«, 8pp., 2 Tai.)

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie". Die Tafeln
zeigen Hypocyrta nervosa Fritsch und Wettsteinii Fritsch sowie Sinningia
Schiffneri Fritsch.

54 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [54

273 a. Gagnepain, F. Lardizabalaceae, Berberidaceae, Nymphaeaceae, Fv-
mariaceae, Cruciferae, in Lecomte Flore de l'Indo-Chine I, 1908, p. 155
bis 171, fig. 16. N. A.

Vgl. „Pflanzengeographie" und „Index nov. gen. et spec".

274. Gatin, C. L. Anatomie et developpement d'embryon chez
les palmiers, les musacees et les cannacees. (C. R. Acad. Sei. Paris,
CXLIV, 1908, p. 938-9-10.)

Siehe „Anatomie".

275. Gibbs, Vicary. Rare shrubs in the open air. (Journ. R. Hort.
Soc. Lond.. XXXIII, 1908, p. 347—363, Fig. 42-48.)

Die Figuren zeigen folgende Arten in Habitusbildern: Spiraea bracteato,
Paeonia Montan, Olearia stellulata, Pittosporum tenuifolium, Sambuciis nigra föl.
rar., Vibnrnum tomentosum plicatum.

276. Göschke, Franz. Ausländische Bäume in unseren Gärten.
(Jahrb. Schles. Ges., LXXXVI, 1908, Sect. Obst- und Gartenbau, p. 7—17.)

Vgl. auch unter „Pflanzengeographie von Europa".

277. GraebeEer. Kleine dendrologische Mitteilungen. (Mitt.
Deutsch. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 149—152)

Betrifft eine Populus canadensis bei Karlsruhe (Baden), von der Verf. ein
Exemplar mit folgenden Massen beschreibt:

Höhe 39,50 m; Stammumfang am Boden 11,00 m, in 1 m Höhe 7,2 m.
in 4,5 m Höhe 5,12 m. Alter 96 Jahre.

Ferner Prunus laurocerasus, lusüanka und diverse kurze Hinweise.

278. Hallier, Hans. On the origin of Angiosperms. (Bot. Gaz., XLV,
1908, p. 196-198.)

Auszug aus der grossen, unter Julianaceae referierten Aibeit.

279. Handel-Mazzetti, H. von. Commelinaceae, Amaryllidaceae, Iridaceae usw.
(Ergebn. bot. Exp. k. Akad. Wiss. nach Süd-Brasilien 1901, I. Bd.: Denkschr.
k. Akad. Wiss. Wien, LXXIX, 1908, mit einer Taf.)

Vgl. „Pflanzengeographie" und „Index nov. Gen. et spec."

280. Harper, Roland 31. Some native weeds and their probable
origin. (Bull. Torr. Bot. Club XXXVI, 1908, p. 347—360.)

Siehe „Pflanzengeographie".

281. Heimerl, A. Chenopodiaceae, Amarantaceae, Phytolaccaceae, Basellaceae,
Portulaceae, Nyctaginaceae, Caryophyllaceae, Polygonaceae. Ergebn. bot. Exp.
kais. Akad. Wiss. nach Südbrasilien, 1901, I. Bd. (Pteridophyta und Antophyta),
hrsg. von K. von Wettstein. (Denkschr. k. Akad. Wiss. Wien, LXXIX, 1908,
19 pp.)

Siehe „Pflanzengeographie" und „Index nov. gen. et spec", sowie bei
den Familien.

282. Heller, A. A. Aspects of the Species Question. (Muhlen-
bergia, IV, 1908, p. 89—107.)

Kritische Referate über die Artikel von Bessey, Britton usw.

283. Hill, A. W. The Origin of Monocotyledons. (Ann. of Bot.,
XXII, 1908, p. 713—714, 1 fig.)

Siehe im descendenztheoretischen Teile.

284. Hoclireutiner, B. P. G. Sertum madagascariense. (Annuaire
Jard. Bot. Geneve, XII, 1908, p. 35—135, 23 Textfig.) N. A.

Vgl. „Pflanzengeographie".

55] Allgemeine Systematik. 55

Sehr wichtig sind systematisch die Untersuchungen über die Gattungen:
Dülenia, Nvacia, Pyrostria, Ixora.

285. Janchen, Erwin. Die europäischen Gattungen der Farne und
Blut enpf lanzen nach dem Wettsteinschen System. Wien 1908, 49 pp.
Preis 1 Krone.

Das Büchlein soll zum Ordnen europäischer Herbarien dienen; Gattungen
und Familien sind deshalb fortlaufend numeriert. F. Fedde.

286. Johnson, D. S. Aspect of the Species question, introductory
remarks. (Amer. Nat., XLII, 1908, p. 217.)

Vgl. die Ref. 260, 268 usw.

287. Jordan, David Starr. The law of geminate species (Americ.
Naturalist, XLII, 1908, p. 73—80.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile des Just".

288. Keissler, K. von. Lythraceae, Oenotheraceae, Thymelaeaceae, Oxalidaceae,
Geraniaceae, Wiamnaceae. (Ergebn. bot. Exp. k. Akad. Wiss. Süd-Brasilien, 1901,
Bd. I, Wien 1908, 8 pp.)

Siehe „Pflanzengeographie" und „Index nov. gen. et spec".

289. Kersten, H. Über die Begriffe der natürlichen, der syste-
matischen und der generellen Verwandtschaft der Organismen.
(Zeitschr. Naturw. Halle a. S., LXXIX, 1907, p. 272—293.)

290 Krieger, Hermann. Der Darwinismus in der Botanik. (Ham-
burger Fremdenblatt, 16. September 1908, No. 218, 2. Beilage, p. 91.)

Etwas überschwängliche Besprechung der Hallierschen Arbeit über
Juliania mit kurzer historischer Einleitung, in der auf die Fortschritte des
natürlichen Systemes im Laufe der Jahre hingewiesen wird.

F. Fedde.

291. Lignier, 0. Le fruit des Bennettitees et l'ascendance les
Angiospermes. (Bull. Soc Bot. France, Mem. 13, 1908, p. 1 — 17.)

Siehe „Paläontologie'1.

292. MacDougal, D. T. The physiological aspect of the species
question. (Americ. Natural., XLII, 1908, p. 249—252.)

Siehe „Physiologie".

293. Macmillan, H. F. Some beautiful tropical trees and their
üses. (Journ. Bombay Nat. Hist. Soc, XVIII, 1908, p. 887—892.)

Abdruck aus „The Tropical Agric. a. Mag. of the Ceylon Agr. Soc,
June 1908.

Betrifft vor allem Leguminosen, Bignoniaceen, Sterculiaceen.

291. Maiden, J. H. and Betclie, E. Notes from the Botanic Gardens,
Sydney. (Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, XXXIII, 1908, p. 304—319.) N. A.

Neue Formen aus folgenden Familien und Gattungen. Vgl. auch „Index
nov. gen. et spec'.

Dilleniaceen: Hibbertia. Sapindaceen : Cupaula. Leguminosen: Bossiaea.
Pultenaea. Labiaten: Prostanthera. Cyperaceen: Scirpus.

295. Mattei, G. E. Piante messicane fiorite nelR. Orto botanico,
da semi originali. Nota Ia. (Bollett. R. Orto botan. e Giard. colonialo
Palermo, VI, p. 146—151, 1907.)

Folgende von H. Ross aus Mexiko eingesandte Samen gingen zu
Palermo auf, und die sich entwickelnden Pflänzchen gelangten auch zur Blüte:
Jjepidium Menziesii DO, Abutilon crispum Don., Tribulus cistoideus L., Astragalus

56 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [5ß

Hartwegi Benth., Cassia bauhinioides A. Gr., Crotalaria lupulina Raf., C. sagittalis
L., Desmodium paniadatum (L.) DC, Sesbania cassioides G. Don., Bidens bi-
pinnata L., Cosmos caudatus H. B. K., Encelia adenophora Green, Milleria quinque-
folia L., Tithonia tagetiflora Dsf., Verbesina encelioides Bth. et Hook., Heliotropium
curassavicum L., Salvia angustifolia Cav., S. leptostaehys Bnth., S. hirsuta Jacq.,
Boerhaavia erecta L., B. viscosa Lag. et Rodr., Euphorbia dentata Mich., E.
hincifolia Schi., Muehlenbergia calamagrostidea H. B. K., Triodia pulchella H. B. K.

Solla.

296. Mübins, M. Über den Ursprung der Angiospermen. (Naturw.
Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 825—828.)

Referat der Arbeit von Hallier, siehe unter Julianaccae-

297. Nicotra, L. Ontogenia e dignita sistematica delle piante
vascolari. (Atti Istit. Botan. di Pavia, vol. XI, p. 299—303, Milano 1908.)

Ist aus dem Jahr 1905; vgl. Just, Bot. Jahrb., XXXIV. Solla.

298. Nicotra, L. Sistema l'ondamentale della botanica. (Vol. in-8°
di 321 pp., con 2 tav., Messina, A. Trimarchi, 1908.)

Ref. nicht eingegangen.

299. Othmer, B. Schöne Blatt- und Blütenstauden. (Gartenwelt,
XIII, 1908, p. 409—413, 6 Abb.)

Die Abbildungen zeigen Habitusbilder von Telekia spetiosa, Chrysanthemum
macrophyllum, Heracleum Mantegazzianum, Molopospermum cicutarium, Polygonum
Weyrichii und Gunnera scabra-

300. Othmer, B. Alte und neue schöne Alpenpflanzen. (Garten-
welt, XIII, 1908, p. 445—447, 5 Abb.; p. 460—461, 3 Abb.; p. 469-470, 492 bis
495, 11 Abb.)

Die Abbildungen zeigen Habitusbilder von: Campamda mirabilis, C Wald-
steiniana, C. barbata, C. turbinata und Edraianthus Pumilio; Acantholimon
androsaceum, Thymus heterotriclios ; Dianthus Bequieni, Saxifraga Grisebachi, S.
porophylla, S. Burseriana, S. Cotyledon, Androsace helvetica, Helianthemum vulgare,
H. pilosum, Adenostyles alpina, Senecio incanus.

301. Pieper, Q. R. Systematische Übersicht der Phan erogamen.
Leipzig 1908, 36 pp., S<>.

Nicht gesehen.

302. Pilger, R. System der Blütenpflanzen, mit Ausschluss der
Gymnospermen. Leipzig 1908, 140 pp., 31 Fig.

Nicht gesehen.

303. Rehder, Alfred. Einige neue und kritische Gehölze. (Mitt.
Deutsch. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 157—163.) N. A.

Betrifft:

Ulmus glabra Huds. Verf. betont von neuem, dass dieser Name der
älteste für JJ. scabra Mill. ist und dass, wenn man den Namen glabra gebraucht,
man nur glabra Huds. und nicht glabra Mill. (= campestris L.) anwenden darf.
Ferner Hydrangea cinerea Small. f. steril/s f. nov. ; Sorbaria assurgens sp. nov. ;
Prunus Sargentii sp. nov.; Prunus pennsylvanica L. f. var. saximontana v. nov.;
Hex crenata Thbg. f. microphylla f. nov., f. typica, f. Kusnetzo f fii Loes., f. longi-
folia, f. variegata, f. luteo-variegata und var. nummidaria (Fr. et Sav.) Yatabe;
Lonicera Korolhoivi Stapf, var. floribunda Nich. ; X L. amoena; L. amoena Zbl.
var. Arnoldiana var. nov.

57] Allgemeiao Systematik. 57

304. Revue de l'Horticulture Beige et Etrangere, XXXII. Gand
1906. Tafeln (die farbigen sind mit * bezeichnet).

■Xicotiana Sanderae. 8 Var. *Maranta ii/signis. * Epiphyllum delicatum.
*Ficus Dryepondtiana Hort. *Azalea. 1. Haerensiana. 2. „Louise Cuvelier."
Picea pungens glauca Koster. ^Rhododendron „Pink Pearl". *Lobelia „Kathleen
Mallard". "Iris Lortetii. Deutzia discolor var. major. Rose Mrs. E. G. Hill.
Jasminum nitidum. Geranium „Reformator". 'Erables panaches. I. Acer
polymorphem laciniatwn purpureum, II. A. japonicum ficifolium, III. A. Negundo
californicum aureum, IV. A. pseudoplatanus var. Leopoldi. V. J. negundo var.
aureomarginatum elegant, VI. .4. platanoides var. Schwedleri. Vitis Henryana.
*Pentstei)ion hybr. ä grandes fleurs. Rose Souvenir de Maria de Zayas.* Daldia
k collerette var. Maurice Rivoire. Rose Reine Marguerite dTtalie. Lonicera
tragophylla (nicht Fitfis flexuosa var. WtTsoni wie irrtümlich aufgedruckt).
:;:Chrysantheme Mme M. Th. Charvet. Herter.

305. Revue de l'Horticulture Beige et Etrangere, XXXIII.
Gand 1907.

Tafeln: :iPeche La France. Rose Souvenir de Maria Zozaia. *Moraea
bicolor. Pteris lucida medio-picta (Hort.). Ceratolobus concolor Bl. *Cymbidium
insigne (Rolfe). Begonia incomparabilis. *Azalea indica var. Perle de Loochristy.
*Azalea indica var. Deutsche Perle. Medinilla magnifica Lindb. -Romme
„Eriandise". Tropaeolum majus var. 1. naine. Roi Theodore ameliore. 2. grande
Faiiy Queen. 3. saine Perle. Dimorphotheca Ecklonis. "Acacia podalyriaefolia
A. Cunn. *Varietes d'Oeillets anglo-americain 1. Cardinal. 2. Mrs. T. W. Lawson.
3. Harlowarden. *Poire tardive de Solesmes. Nephrolepis exaltata var. Whitmani.
"'Odontioda Vuylstekeae. Senecio Wilsonianus. *Abutilon Lemoinei var. Mme Victor
Heursel. "Aconitum sinensis bicolor- Rhododendron „Sir John Broughton".
Rhododendron „Princesse Hortense" en touffe. "Rhododendron Mme Aug. Boelens,
Clematis montana rubens. *Fraise Laxton's „Bredforcl Champion". *Sahria
princeps. Begonia elatior. *Rosier sarmenteux ,,Lady Gay". Buddleya varia-
bilis var. magnifica. Nepenthes Chelsoni excellens (N. Rafflesiana X N. Chelsoni).
*Cattleya Trianae „Memoria Lindeni". Nephrolepis Edmontonensis- *Croton
Pennincki. "Chrysanthemum Robinsoni. *Polypodium Knighti. Aconitum Hems-
leyanum. Artemisia lactiflora. -Peche Louis Grognet. Rosier Wichuraiana et
hybrides. *Scabiosa tartarica. Viburnum Carlesii. Rubus innominatus. Rubus
flagelliflorus. "Dendrobium Bronckarti (DeWildeman). Deutzia gracilis candelabrum
(Lern.). Hydrangea arborescens grandiflora. Senecio clivorum. Trune „Jubile"
Prunus cerasifera X P- Burbank. Fruit du Cognassier Van Deman. Ampelopsis
Loicii. *Chrysantheme „Dora Stevens". Herter.

306. Revue de l'Horticulture Beige et Etrangere, XXXIV.
Gand 1908, 438 pp. Tafeln. Die farbigen sind mit * bezeichnet.

*Tacsonia Van Yolxemii. * Begonia erecta viridis fl. pl. Astible hybride ä
fleurs roses (Lern.). "Begonia Hybrides de Rex. *Poire „Beurre Dumont".
*Pomme Reinette doree. *Rose The Mme. Jules Gravereaux. Lyon-Rose.
*Azalea indica Vuylstekeana- Dahlia Pivoine. Geisha. Bertha von Suttner (1908).
Hugo de Vries. Andrew Carnegie. *Croton Fred. Sander. *Dendrobium regium
(Prain). "Cattleya Princesse Clementine. Curcidigo recurvata fol- rar. Eugenia
Glazioviana- Maranta insignis. Alocasia macrorhiza. Dracaena „Senateur
Verbeke". Älpinia Sanderae. * Rhododendron Mme. Linden. Croton Fred.
Sander. Encephalartos Woodii. Dendrobium nobile de M. Verdonck. Anthurium
Scherzeri-Andreanum- Anthurium Sanderi. *Lilas J. de Messemacker. Acacia

58 U- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Sipkonogauien. [58

verticillata. A. Bertianio. *Poire Amelie le Clercq. Davidia involucrata. Dahlia
Schneewittchen. Dahlia La Eiante ou H. Hornsveld (1908). Dahlia Königin
Wilhelmina (1906). Dahlia Pivoine Roem van Baern (1906). *Pivoines
herbacees: Duchesse de Nemours, Mme. Millord, La Coquette. Cattleya
Schroederae. *Hydrangea arborescens grandiflora. *Cineraire „Vieux Rose". La
Ballade de Pendus (Briophyllum). *Poire „Nee plus Meuris". *Nectarine
precoce de Croncels (Baltet). Cattleya Loddigesii. Beqonia pallida (Lern.).
*Ornithogalum lacteum. Begonia hybrida gigantea „Princesse Royale". *Gloriosa
Bothschildiana. Polygonum Baldschuanicum. *Gloxinia var. marmorata grandiflora.
Radis ä forcer „Riesenbutter". *Peche Louis Grognet. Kentia Forsteriana.
-Chrysantheme „Leslie Morisson". Chrysantheme Madeleine Cochet. *Com-
melinacee a feuille panachee (Pollia condensata Olarke var. variegata Hort.).

H e r t e r.

307. Sargant, Ethel. The reconstruetion of a Race of Primitive
Angiosperms. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 121—186, 21 figs.)

Siehe unter „Palaeontologie" und im descendenztheoretischen Teile des
Jahresberichts.

308. Schinabeck. Einige interessante und seltenere Gehölze.
(Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 190, Abb.)

Die Abbildungen zeigen eine Pflanze von Cytisus sessilifolius und eine
solche von Ononis fruticosa.

309. Schneider, Numa. Trois belles plantes de la Nouvelle-
Hollande. Leschenaidtia biloba major, Boronia heteropliylla et Pimelea decussata-
(Rev. Hort., LXXX, 1908, p. 36—39, kol. Tafel.)

Die Tafel zeigt Blütentriebe.

310. Sohweriu, F. von. Zehn neue Gehölzformen. (Mitt. D. Dendrol.
Ges., XVII, 1908, p. 216.) N. A.

Es handelt sich um neue Gaitenformen von Acer neglectwm, A. pseudo-
platanus, Mahonia aquifolium und Parthenocissus tricuspidata.

311. S|»renger, C. Neue und seltene Gehölze. (Mitt. D. Dendrol.
Ges., XVII, 1908, p. 152-155.) N. A.

Betrifft: Ailantlms Giraldii Dode, AU. sutchuenensis Farges, AU. Vilmoriniana
Dode, Juglans regia var. coreyrensis Spr., Popuhis subintegerrima Lge., Pop.
Comesiana Dode, Quercus Hex var. fagifolia Spr., Salix Bonplandiana IL B. K.,
Salix Bakeri, S. persica, Viburnum Tinus L. var. macrophyllum Spr.

311a. Urban, Ign. Nova genera et species, III. In Symbolae Antill.,
V, 1908, p. 353-555, illustr. N. A.

Umfasst neue Arten aus folgenden Familien und Gattungen. Vgl. auch
Index nov. gen. et spec.

Rosaceen: Licania, Hirtella. Connaraceen: Roitrea. Leguminosen:
Pithecolobium, Cassia, Peltophorum, Swartzia, Ormosia, Lonchocarpits, Herpyza,
Erythrina, Mucuna, Galactia, Canavalia, Rhynchosia. Oxalidaceen: Oxalis.
Simarubaceen: Castela, Picrasma, Alvaradoa. Meliaceen: Trichilia. Polygalaceen :
Phlebotaenia. Euphorbiaceen: Phyllanthns, Croton, Ägrithamnia, Acalypha,
Euphorbia, Grimmeodendron. Buxaceen: Buxits. Anacardiaceen : Comocladia,
Metopiui». Oelastraceen: Maytenus, Schaefferia. Icacinaceen: Poraqueiba-
Sapindaceen: Allophyhis. Rhamnaceen: Zizyphus, Rhamnodium- Tiliaceen:
Carpodiptera, Triumfetta. Malvaceen: Äbutilon, Sida, Paronia, Hibiscus. Ster-
culiaceen: Ayenia. Ochnaceen: Ouratea. Guttiferen: Clusia, Chrysochlamys,

59] Gyninospermae. Coniferales. 59

Rheedia. Violaceen: Hybanthits- Flacourtiaceen: Xylosma, Samyda. Myrtaceen :
Psidium, Calyptranthes, Eugeuia. Melastomataceen: Aeiotis, Tetrazygia, Miconia,
Pachyanthus, Mecraniuvn, CUdemia. Araliaceen: Sciadophyllum, Gilibertia.
Umbelliferen : Tiedemannia. Ericaceen: Lyonia, Vaccinium, Thibandia. Theo-
phrastaceen: Jacquinia- Myrsinaceen: Ardisia, 11 allenia- Sapotaceen: Mimusops.
Loganiaceen: Buddleia. Apocynaceen: Aspidosperma, Sfrempeliopsis, Tabernae-
montana, Echites, Prestonia. Asclepiadaceen: Metastelma, Poicilla. Convol-
vulaceen: Ipomaea. Borraginaceen: Cordia, Bochefortia, Tournefortia, Helio-
tropium. Verbenaceen: Verbcna, Callicarpa, Aegiphila. Solanaceen: Solanum,
Cestrum, Brunfelsia. Serophulariaceen: Scrophidaria. Bignoniaceen: Wunsch-
mannia, Tabebuia, Tecoma. Gesneraceen: Alloplectus, Gesneria- Acanthaceen:
Psilanthele. Rubiaceen: Rondeletia, Casasia, Hamelia, Catesbaea, Guettarda,
Machaonia, Eriihalis, Phialanthus, Psychotria, Mitracarpus. Carapanulaceen:
Lobelia. Compositen: Eupatorium, Chaenoeephalus, Anastraphia.

312. TVilliston, S. W. What is a species? (Amer. Naturalist, XLII,
1908, p. 184—194.)

Siehe im descendenztheoretischen Teile des Just.

313. Winkler, Hubert. Neue Kameruner Phanerogamen aus ver-
schiedenen Familien. (Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908, p. 274 — 286, eine
Textf.) N. A.

Neue Arten von Limnophyton, Costus, Peperomia, Ficus, Elatostema,
Kolobopeialum, Bapliia, Eriander, Canarium, Salacia, Scaphopetalum, Ouratea.
Begonia, Engenia, Diospyros, StrycJn/ox, Stachytarpheta, Solanum, Wahlenbergia.

314. Zahn, E. Neue Kautschuk liefernde Pflanzen. (Gartenflora,
LVII, 1908, p. 95-97, 382—384.)

Auszug einer Arbeit von A. Chevalier in Journ. Agric. trop., No. 78
vom 31. Dez. 1907. Verf. vergleicht die von Chevalier hier beschriebene
Manihot Teissomnieri mit M. piauhiensis Ule.

Im 2. Teile fügt Verf. Aufkläiungen Chevaliers aus Journ. d'Agric.
Trop., No. 82, 1908 hinzu, aus denen die Verschiedenheit der beiden Arten
hervorgeht. Chevalier bildet die neue Gattung Hotuima und somit heisst
seine Art jetzt H. Teissomnieri Chev.

VIII. Spezielle Morphologie und Systematik, auf die
einzelnen Familien bezogen.

A. Gymnospermae.

Coniferales.

Neue Tafeln:
Abies sachalinensis Mast., in Miyoshi, 1. c, tab. 68 (Habitusbild).
A. umbellata Mayr, in Shirasawa, Iconogr. ess. for. Japon, II, 1908, tab. 2.

fig. 1-17.
Callitris cupressioides Schrad., in Thonner, Blütenpflz. Afrikas, 1908, tab. 2.
Cunninghamia Konishii Hayata, in Journ. Linn. Soc. London, XXXIII, 1908,

pl. 23.
Juniperus procera Höchst., in Engler u. Drude, Vegetat. d. Erde, IX, II, 1908,

tab. IV.
Larix Griffithi Hk. f., in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8181.

ßO C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [QQ

Larix kurilensis Mayr, in Shirasawa, 1. c, pl. I, fig. 1 — 16.
Picea ajanensis Fisch., in Shirasawa, 1. e, tab. 3, fig. 1—18.
P. Glehnii Mast., 1. c, fig. 19—42.
P. polita Carr., 1. c, fig. 18-29.

Pintis formosana Hayata, in Journ. Linn. Soc. London, XXXVIII, 1908, tab. 22.
P. parviflora S. et Z., in Shirasawa, 1. c, tab. 2, fig. 30—42.
P. pwmila Pall., 1. c, tab. 1, fig. 17—31.

P. pumila -Reg., in Miyoshi, Atlas Jap. Vegetat., sect. X, 1908, tab. 63 (Vegeta-
tionsbild).
Pseudolarix Fortunei Mayr, in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8176.
Tsuga diversifolia Max., in Shirasawa, 1. c, tab. 4, fig. 1 — 15.
P. Sieboldi Carr., in Shir., 1. c, fig. 16-31.

315. Anderson, Mary Perle. The cedar of Lebanon [Cedrits Libani].
(Torreya, 1908, VIII, p. 287—292, Fig. 1.)

Allgemeine historische und sonstige Betrachtungen. Die Abbildung
zeigt das Exemplar im Jardin des plantes in Paris.

316. Baker, R. T. and Smith, H. G. The pines of Australia. Part I.
(Abstr. Proc. Roy. Soc. N. S. Wales, Aug. 5, 1908, p. III— V.)

Nach dem Autoreferat im Bot. Oentrbl., CXI, 1909, p. 76—77 behandeln
Verff. die Systematik, Morphologie, Anatomie und Biologie von Callitris glauca-
Vor allem handelt es sich aber um chemisch-physiologische Untersuchungen.
Wir werden nach Erscheinen der weiteren Teile auf diese Arbeiten zurück-
kommen.

317. Bayer, Ang. Zur Deutung der § Blüten der Cupressineen
nebst Bemerkungen über Cryptomeria. (Beih. Bot. Centrbl., 1908, XXIII,
I, p. 27-43, Taf. IV.)

Verf. gibt folgendes Resümee:

1. Die Eichen der Blütenzapfen von Juniperus, Thuya, Chamaecyparis gehören
zu den Schuppen, hinter welchen sie stehen ; die letzteren stellen ihre
mütterlichen Fruchtblätter vor.

2. Fruchtschuppen von Juniperus, Thuya, Chamaecyparis sind sowohl in der
Jugend als auch in der Fruchtzeit ganz einfacher Natur, sie sind ein-
fache fertile Phyllome (Carpelle). Die Eichen stehen demnach auf der
Blütenachse erster Ordnung.

3. Nach der Befruchtung beginnt ein starkes interkalares Gewebewachstum
an der Basis der Fruchtblätter, wodurch ihr innerer Teil wulstartig
emporwächst und die Spitze des Fruchtblattes nach aussen ablenkt.

4. Die „Fruchtschuppe" von Cryptomeria ist aus einer Stützbractee und
aus einigen (2 — 6, gewöhnlich 5) fertilen Schuppen eines axillaren
Sprosses, dessen Achse verkümmert war, zusammengesetzt. Diese der
Stützbractee angewachsenen fertilen Phyllome (Carpelle) bilden auf der
Innenseite der Stützbractee einen Wulst, welcher in so viele Zähne kamm-
artig gespalten erscheint, aus wie vielen Fruchtblättern er entstanden
ist. — Die Eichen stehen hier demnach auf der Blütenachse zweiter
Ordnung.

318. Beissner, L. Mitteilungen über Coniferen. (Mitt. D. Dendrol.
Ges., XVII, 1908, p. 57—66.)

Bemerkungen über: Phnis Mastersiana Hay., morrisonieola Hay., Tsuga
formosana Hay., Juniperus morrisonieola Hay., Cunninghamia Konishü Hay.,
Chamaecyparis formosana Mats., Keteleeria formosana Hay., Abies maroccana Trab.,

61] Coniferales. 61

Picea excelsa f. argenteo-spica, P. Schrenkiana globosa, P. spinulosa Griff., Arau-
caria excelsa (angebliche pendula-Yorm), Taxodium heterophyllum Brogn. und
seine Verwechselung mit T. distichum pendulum Carr., Chamaecyparis Law-
soniana und pisifera (Gartenformen), Cupressus arizonica Greene, Juniperus fragrans
Knight (ist die $ Pflanze von ,T. occidentalis Hook., die $ ist J. occid. var. Burkei),
J. thurifera.

Ferner bespricht Verf. die interessantesten Coniferenbastarde. nämlich
A. insignis Carr. (wohl A. Nordmanniana X Pinsapo), A. Nordmanniana speciosa
Hort, (derselbe Bastard); ferner A. eephalonica Lk. X A. Pinsapo Boiss. = A.
Yihttorini Mast.

In der anschliessenden Diskussion bespricht Prof. Koehne noch Taxodium
imbricarium und Hinweis auf Harpers Arbeiten 1902 und 1905.

319. Berg, Fr. Die Pseudotsuga Douglasii in Europa. (Mitt. D. Dendrol.
Ges., XVII, 1908, p, 79—84.)

Verf. beschreibt die Herkunft der Art und ihrer Formen und die Gebiete.
von wo die Sämereien für unsere Zwecke (forstlicher Anbau) am besten zu
sammeln wären.

320. Brandel, J. W. Coniferous oils of the Northwest. (Pharm.
Rev., XXVI, 1908, p. 248-251.)

Siehe „Chemische Physiologie".

321. Burgerstein, Alfred. Vergleichende Anatomie des Holzes der
Coniferen. (Wiesner-Festschr. Wien, 1908, p. 101 — 112.)

Siehe „Anatomie".

322. Bnrlingame, L. Lancelot. The staminate cone and male
gametophyte of Podocarpus. (Bot. Gaz., XLVI, 1908, p. KU — 178, 9 figs..
pls. VIII— IX.)

Siehe „Anatomie".

323. Chrysler, M. A. Thyloses in tracheids of Conifers. (New
Phytol., VII, 1908, p. 198, 204, pl. V.)

Siehe „Physiologie".

324. Clark. J. Dwarf Conifers. (Gard. Chrom, ser. 3, XLIII, 1908,
p. 179—180.)

Besprechung niedriger Gartenformen.

325. Costanzo, G. e \egro, C. Ionizzazione prodotta dalle foglie
della Conifere. (Mem. Pontif. Acc. Nuovi Lincei, XXV, 1907, p. 177—186.)

Siehe unter „Physiologie".

320. Cutling, E. M. On the meaning of the various forms of the
male gametes in the Pines [Pinus] and allied Conifers. (New Phytol.,
VII. 1908, p. 171 — 176.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

327. Dengler. Das Wachstum der Kiefern aus einheimischen
und nordischem Saatgut in der Oberförsterei Eberswalde. (Zeitschr.
Forst- u. Jagdwes., XV, 1908, p. 137-152, 206-219.)

Verf. sagt: Um zum Schluss die Ergebnisse der Untersuchungen kurz
zu wiederholen, so haben sie den Beweis erbracht, dass die drei fremden, hier
nordischen Provenienzen,

1. sowohl im Längen- wie im Dicken Wachstum ganz erheblich hinter den

einheimischen zurückgeblieben sind;
1'. dass diese Differenzen nicht nur durch Wuchsstockungen der ersten

Jahre hervorgerufen sind, sondern im allgemeinen durch 21 Jahre hin-

(}2 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [62

durch sich auch im durchschnittlich jährlichen Betrage noch bedeutend
vergrössert haben, so dass auf einen Ausgleich für die nächste Zeit
sicher nicht, wahrscheinlich aber überhaupt niemals zu hoffen sein wird;

3. dass der Bestandsschluss infolge der geringen Astentwickelung und
Benadelung in Verbindung mit dem zurückbleibenden Längenwachstum
bei den nordischen Kiefern ein beträchtlich schlechterer ist, was sich
auch im Bodenzustand durch Verheidung geltend macht;

4. dass auch die Stammform bis jetzt eine etwas schlechtere als bei den
einheimischen Kiefern ist:

5. dass das Holz der nordischen Provenienzen dagegen ein etwas höheres
spezifisches Gewicht, wahrscheinlich im direkten Zusammenhang mit der
grösseren Engringigkeit zeigt;

6. dass die durchschnittliche Grösse der Gesamtbenadelung bei diesen be-
deutend hinter der der einheimischen zurückbleibt;

7. dass die einzelnen Nadeln bei den nordischen Kiefern zwar kürzer, aber
im Verhältnis dazu breiter und dicker sind;

8. dass als biologische Eigentümlichkeit sich bei einem grossen Teil der
nordischen Kiefern eine auffallend frühe Mannbarkeit eingestellt hat.

328. Förster, H. Erfahrungen mit ausländischen Bäumen in
einem süddeutschen Reviere. (Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 70
bis 79.)

Betrifft meist Coniferen und ist vor allem forstlich wichtig.

329. [Gibson, H. H.] American forest trees — 44. Shortleaf or
yellow pine, Pinus echinata Mili., P. mitis Mchx. (Hardwood Record, XXIII,
ü, 1907, p. 16—17, ill.)

Nicht gesehen.

330. [(iibson, II. H.] American forest trees — 73. Balsam fir,
Ab/es balsamea Linn. (Hardwood Record, XXVI, 1908, p. 16 — 17, ill.)

331. [Gibson, H. H.] American forest trees — 54. White cedar,
Chamaecyparis sphaeroidea Spach, Ch- thyoides Britt. (Hardwood Record, XXIV,
1907, 4, p. 16—17, ill.)

332. [Gibson, H. H.] American forest trees — 59. White cedar
or arborritae, Thuja occidentalis Linn. (Hardwood Record, XXIV, 1907, 9,
p. 16—17, ill.)

333. [Gibsou, II. II.] American forest trees — 60. Tamarack,
Larix laricina K o ch , L. americana Mchx. (Hardwood Record, XXIV, 1907, 10,
p. 16—17, ill.)

334. [Gibson, H. 11. J American forest trees — 64. Redwood,
Seqaoia sempervirens Endl. (Hardwood Record, XXV, 2, 1907, p. 16—17, ill.)

335. [Gibson, H. H.] American forest trees 65—67. Douglas
fir, Pseudotsuga taxifolia Britt. ■ — Noble fir or Oregon Larch, Abies nobüis
Ldl. — Western or Pacific Coast cedar, Thuja plicata Don., Thuja gigantea Nutt.
(Hardwood Record, XXV, 3-5, 1907, p. 16—17, ill.)

336. [Gibson, II. IL] American forest trees — 75. Picea canadensis
Mill. (Hardwood Record, XXVI, 3, 1908, p. 16—17, ill.)

Nicht gesehen.

337. Goeze, E. Die Coniferen unserer Gärten und Parks, nach
ihren Heimatländern, sowie nach dem Jahre ihrer Einführung
geordnet. (Östr. Gartenztg., III, 1908, p. 182 — 188, 214—219.)

Interessante Tabelle.

531 Coniferales. ß3

338. Graebner, P. Revision der Voss'schen Conif erennomen-
clatur in Mitt. D. Dendrol. Ges., 1907. (Mitt. D. Dendrol. Ges , XVII, 1908,
P. 66 - 69.)

Verf. weist Voss viele unkorrekte Namensänderungen nach und gibt
eine Menge Details, auf die hier aus Mangel an Raum nicht eingegangen
werden kann.

339. Griffin, E. M. The development of some New Zealand
Conifer leaves with regard to transfusion tissue and to adoptation
to environment. (Trans, and Proc. New Zealand, Inst, XL, 1908, 43 — 72.)

Siehe „Anatomie".

340. Guiiiier, P. et Maire, R. Remarques sur quelques Abies medi-
terraneens. (Bull. Soc. Bot. France. LV, 1908, p. 183—193, 3 Textfig.)

Die Verff. geben folgendes Resümee:

1. Die Blattstruktur der Abies variiert sowohl in bezug auf die äussere wie
innere Morphologie nach der Region des Baumes, wo sich die Blätter
entwickeln. Die extremen Typen werden durch die Blätter der Zapfen
tragenden Zweige und die der niedrigen sterilen Triebe dargestellt. Man
muss daher bei der Beschreibung angeben, von welchem Teile des
Baumes ein Blatt stammt.

2. Die histologischen Blattcharaktere dürfen nur mit grosser Vorsicht für
die Klassifizierung der Abies verwendet werden. Man darf keine Abies-
Art auf sterile Zweige begründen, besonders wenn es sich um Gruppen
handelt, deren Arten sich nahestehen.

3. Abies Pinsapo, die sich durch alle ihre anderen Merkmale den mediterranen
Tannen anschliesst, entfernt sich davon nicht, wie Bertrand glaubte,
durch die Lage ihrer Blattsecretgänge.

4. Bei Abies maroccana Trabut, welche nach ihrem Autor von Pinsapo be-
sonders durch die Lage der Secretgänge in Kontakt mit dem Hypoderm
abweicht, scheinen diese Merkmale beim Fehlen der Zapfen nicht genügend,
um sie von letzterer spezifisch zu trennen.

5. Im Gegensatz zur Ansicht Fedtschenkos betrachten die Verff. bei den
Tannen die Zapfen als diejenigen Merkmale, welche viel stabilere Charaktere
darbieten als die vegetativen Organe.

6. Die Identifizierung der Tannen des Bithynischen Olymp und des Berg
Ida zeigt, dass das Bereich der Abies Nordmanniana sich westlich bis
zum Ägäischen Meer erstreckt, wogegen Abies alba nicht über den Helles-
pont hinausgeht, wie man bisher glaubte.

7. Aus vorhergehender Feststellung ergibt sich, dass wahrscheinlich die
Differenzierung von Abies Nordmanniana (die kaum eine Subspecies von
alba ist) sehr jungen Datums ist. Die Bereiche beider Tannen sind in
Wirklichkeit durch das Schwarze Meer, den Hellespont und das Ägäische
Meer getrennt. Die Entstehung dieser Meere ist postglacial.

341. Hayata, Bnnzo. On some new species of Coniferae from the
Island of Formosa, (Journ. Linn. Soc. Lond., XXXVIII, 1908, p. 297—300,
pl. 22-23.) N. A.

Siehe Tafeln am Kopfe der Familie und „Index nov. gen. et spec".

342. Hayata, B. New Conifers from Formosa. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIII, 1908, p. 194.) N. A.

Neue Pinus, Tsuga, Juniperus, Cunninghamia, Chamaccyparis und Keteleeria.
Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

64 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [64

343. Haydon, W. T. The seed production of Pinus silvestris- (Proc.
and Trans. Liverpool biol. Soc, XXII, 1908, p. 1—32, 16 figs.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

344. Herty, Ch. H. and Dickson, W. S. The volatile oils of Pinus
serotina. (Journ. am er. ehem. Soc, XXX, p. 872 and Journ. Elisha Mitchell sc.
Soc, XXIV, 1908, p. 101—103.)

Siehe „Chemische Physiologie".

34."). Hesselman, Henrik. Material för studiet af skogshädens
raser. 9. Beständsbildende ormgran (Picea excelsa Link. f. virgata Jacq.).
(Über hörst- und bestandbildende Schlangenfichte.) (Skogsvärdsför.
Tidskr., 1908, p. 195 • 22G und XIX— XXII, Fig. 1—8.)

Aus dem deutschen Eesümee sei folgendes hervorgehoben:
Durch eine briefliche Mitteilung von dem Forstmeister Gunnar Esseen
in Falun wurde unsere Versuchsanstalt davon unterrichtet, dass im Kirchspiel
Orsa in Dalekarlien bei dem Dorfe Hornberga ein ganzer Bestand von Schlangen-
lichten sich findet. Dieser wurde von dem Verf. im Juli und November 1907
und im September 1908 näher untersucht. Der Schlangenfichtenbestand von
der Grösse eines Hektares wächst auf einem Abhang nach Osten in unmittel-
barer Nähe des Dorfes. Der Platz ist eine bewaldete Weide. Bei dem Zählen
der Schlangenfichten wurden diese wegen ihrer grossen Variabilität in drei
Gruppen, deren Bedeutung weiter unten erläutert werden wird, eingeteilt. Die
Zählung ergab folgendes Resultat:

Höhe Schlangenfichten Hängefichten Zwischenformen
0—1 m 32 5
1— 3 m 112 65
3—6 m 52 1 31
6m + 47 20 30

Summe 243 21 131

Bei dem Dorfe Viborg, eine halbe Meile südw. von der Eisenbahnstation
Orsa aus, wurde im September 1908 ein anderer Schlangenfichtenbestand ent-
deckt. Dieser besteht aus 100 Schlangenfichten, die meistens noch ziemlich
niedrig sind. Die Schlangenfichten finden sich auch hier auf einer schwach
bewaldeten Weide in unmittelbarer Nähe des Dorfes. Zwischen Viborg und
dem Kirchdorfe Orsa kommen einzelne Schlangenfichten vor, wie auch an
mehreren anderen Plätzen im Kirchspiel Orsa. Zwischen Orsa und Mora-Noret
entdeckte Dr. Sylven eine Gruppe von sechs ausgeprägten Schlangenfichten und
vier Zwischenformen. Im Sommer 1906 fand Kurt Landgraff bei dem See Snotteu
in dem Kirchspiel Ore nicht weit von Orsa eine völlig astlose Fichte. Da auch
von anderen Punkten in der Nähe von Orsa her Schlangenfichten bekannt
sind, dürften das Kirchspiel Orsa und die Umgegend in bezug auf das reich-
liche Vorkommen von Schlangenfichten kaum von einer anderen Gegend über-
troffen werden. Horste oder Bestände von Schlangenfichten gehören zu den
grössten Seltenheiten.

Die hörst- oder bestandsweise auftretende Schlangenfichte kommt in
Schweden nur auf Weiden oder in sonst sehr lückigen Wäldern vor. In ge-
schlossenen Fichtenwäldern findet man nur ganz vereinzelte Individuen. Das-
selbe scheint für die übrigen Lokalitäten, wo die Schlangenfichte horstweise
auftritt, zu gelten.

Die Schlangenfichten bei Hornberga zeigen eine sehr grosse Variation.
Kein Baum ist dem anderen völlig ähnlich. Die Verzweigung ist mehr oder

g5] Coniferales. 65

weniger reduziert, die Nadeln wechseln in bezug auf Form, Grösse und An-
ordnung, die Zapfen hinsichtlich der Grösse und der Form der Schuppen.

Manche Fichten nähern sich sehr der völlig unverzweigten Fichte, die
zuerst von Loudon unter dem Namen f. monstrosa beschrieben wurde. Eine
weit reichere Verzweigung zeigen andere. Der Hauptstamm ist ziemlich reich
mit Zweigen erster Ordnung besetzt; nur einige Jahressprosse entbehren völlig
Zweige erster Ordnung, sonst stehen sie beisammen in einer Zahl von 2 — 5.
Die Zweige erster Ordnung sind sehr schwach verzweigt; im unteren Teil der
Krone kommen jedoch Zweige dritter und, obwohl schwach entwickelte, von
vierter und fünfter Ordnung vor. Die Höhe des Baumes ist ungefähr 5 m, der
Durchmesser bei Brusthöhe 10,5 cm; Alter mindestens 50 Jahre.

Ausser Schlangenfichten gibt es bei Hornberga auch Hängefichten {Picea
excelsa Link. f. viminalis Sparrm.). Nach den meisten Autoren soll die Hänge-
fichte von der Schlangenfichte gut verschieden sein. Nach der grossen Variation
der Schlangenfichten bei Hornberga zu urteilen, ist jedoch die Hängefichte
nur eine Form in einer Serie von Fichten mit Knospenreduktion, zu welcher
auch eine Reihe verschieden gestalteter Schlangenfichten, wie gewisse normal
verzweigte Fichten mit hängenden Zweigen höherer Ordnung sich zu den
übrigen normal verzweigten Fichten verhalten.

]n bezug auf Form, Grösse und Stellung der Nadeln variieren die
Schlangenfichten bei Hornberga ganz bedeutend. Es gibt Schlangenfichten,
die ziemlich lange, und solche, die ganz kurze Nadeln haben. Bei einer sehr
ausgeprägten jüngeren Schlangenfichte im Bestände bei Hornberga sind die
Nadeln sogar nur 9,6 mm lang, andere haben 10,9 mm, während die Zweige
erster Ordnung 17,5 mm lange Nadeln haben. Bei den jüngeren Bäumen ist
die Nadelstellung ausgeprägt radiär, bei den älteren, dorsiventral, indem sich die
Nadeln der Unterseite aufwärtskrümmen. Die niedrigsten Zweige, die sehr
dicht an der Basis der Stämme stehen, sind dorsiventral gebaut in derselben
Weise, wie die beschatteten Zweige bei einer normal verzweigten Fichte. Die
Nadeln dieser Zweige sind kurz und ausgeprägt rhombisch gebaut, indem sie
von den Seiten zusammengedrückt sind.

Die Schlangenfichten können also mit ganz verschiedenen Zapfenformen
auftreten. Wenn man die Zapfenform als Rassencharakter betrachtet, können also
botanisch verschiedene Fichtenformen als Schlangenfichten auftreten. Dies ist
jedoch nicht besonders eigentümlich, da schlangenähnliche Verzweigungsformen
bei verschiedenen Arten der Unter familie Abietineae auftreten. Von folgenden
Arten sind solche bekannt, nämlich Abies alba Mill., Abies balsamea Mill., Larix
decidua Mill., Pinus nigra Arnold, Pinus sylvestris L., Pseudotsuga Douglasii Carr.
Die Schlangenformen zeichnen sich durch zahlreiche und lange Nadeln, lange,
oft unregelmässig gerichtete Zweige und eine Neigung zu radiärer Blattstellung
aus. Diese Charaktere stehen wahrscheinlich in Korrelation zur Knospen-
reduktion.

In welcher Relation stehen nun die Schlangenfichten zu den normal ver-
zweigten Fichten? Möglicherweise sind sie Elementararten, die. wie der Bestand
bei Hornberga andeutet, erblich sind. Aber eine andere Betrachtungsweise
ist nicht unwahrscheinlich. Die mehr ausgeprägten Schlangenfichten haben
oft völlig teratologischen Charakter. Diese sind durch eine Reihe Übergangs-
formen mit den normal verzweigten Fichten verbunden. Weiter zeigen sie oft
eine grosse Labilität, Rückschlagserscheinungen sind ziemlich gewöhnlich. In
einer Schlangenfichtenkrone können nämlich dann und wann einige Zweige
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 21. 5. 10.] 5

66 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [66

normale Verzweigung zeigen; eine Schlangenfichte kann oft im unteren Teil
normal, im oberen Teil schlangenähnlich sein.

Die Labilität, die grosse Variation in bezug auf Knospenreduktion, der
teratologische Charakter der mehr ausgeprägten Formen hat bei mir den Ge-
danken erweckt, ob die Schlangenfichte nicht eher als eine Bildungsabweichung
zu betrachten wäre denn als eine besondere Elementarart oder Varietät. In
Übereinstimmung mit anderen, von De Vries näher untersuchten Bildungs-
abweichungen würde sie mit den normal \ erzweigten Fichten eine Mittelrasse
bilden. Diese Frage kann jedoch erst durch das Studium der Erblichkeit der
Schlangenfichte gelöst werden.

346. Hickel, R. Notes pour servir ä la determination pratique
des Abietinees, suite. (Bull. Soc. Dendrol. France, 1908, p. 5—10, illustr.,
p. 179—185, 201—208.)

Verf. setzt seine Darlegungen fort (vgl. 1907, No. 250) und gibt zunächst
einen Schlüssel zur Bestimmung der Arten auf Grund der Zapfen. Dann
folgen die sehr guten Beschreibungen der Arten.

347. Hill, T. G. and Fraine, E. de. On the seedling Structure of
Gymnosperms, I. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 689-702, pl. XXXV, 8 figs.)

Siehe „Anatomie".

348. Ilinnnelbaar, W. Die Mikropylen verschlusse der Gymno-
spermen mit besonderer Berücksichtigung derjenigen von Larix
decidua Mi 11. (Akad. Wien, 1908, 22 pp., m. 2 Fig. u. 2 Taf., gr. 80.)

Siehe „Anatomie".

349. Hinimlbanr, W. Über Mikropy lenverschluss bei Gymno-
spermen. (Verh. Zool.-Bot. Ges. Wien, LVIII, 1908, p. [4]— [6].)

Kurzer Auszug aus einem Vortrag. Siehe sonst oben.

350. Jeffrey, Edward C. Traumatic Ray-Tracheids in Cunninghamia
sinensis. (Ann. of Bot., XXII, 1908. p. 595—602, pl. XXXI.)

Siehe im physiologischen Teile des Just.

351. Jolyet, A. Observations sur un cas de resistence & la
sicher esse du Sapin de Douglas [Pseudotsuga Douglasii] (Bull. Soc.
Dendrol. France, 1908, p. 138—139.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

352. Jonin, E. Einige Worte über Torreya- Arten. (Mitt. D. Dendrol.
Ges., XVII, 1908, p. 192.)

Kurze Mitteilung, vor allem über Sämlinge von T. nucifera.

353. Jugowiz, R. Über die aufrechtwachsende Krummholzkiefer,
die Spirke, im allgemeinen und über ein Vorkommen der Spirke in der Schweiz
im besonderen. (Österr. Vierteljahrsschr. Forstw., N. F., XXVI, 1908, p. 121
bis 132, 7 Abb.)

Siehe „Pflanzengeographie".

354. Kildahl, N. Johanna. Affinities of Pliyllodadus. (Bot. Gaz., XLVI,
1908, p. 464—465.)

Verf. führt an, weshalb ihr Pliyllodadus zu den Podocarpineae zu gehören
scheint, was bereits Strassburger 1872 tat, und dass er weder den Taxineae ein-
zureihen ist, wie es in Engler-Prantls Pflanzenfamilien geschieht, noch mit
Pilger als Vertreter einer eigenen G nippe angesehen werden kann.

355. Kildahl, N. Johanna. The morphology of Phyllocladus alpinus.
(Bot. Gaz., XLVI, 1908, p. 339-348, plates XX— XXIII.)

Siehe „Anatomie".

67] Coniferales. 67

356. Knrdiani, S. Zur Frage über die Rassen der Pinus silvestris-
(Centrbl. ges. Forstw., XXXIV, 1908, p. 229—232.)

Wenn wir unsere obigen Ausführungen kurz zusammenfassen, dann er-
gibt sich, sagt Verf. am Schluss, folgendes:

1. Normale keimfähige Samen jeder einzelnen Kiefer haben gleiche Färbung.

2. Die Farbe der Samen wird nicht von äusseren Einflüssen bedingt.

3. Sie befindet sich auch in keiner Beziehung zum Alter der Bäume.

4. Die grosse Mannigfaltigkeit in der Färbung der Samen ist als Resultat
der Kreuzung von schwarz-braun- und hellsamigen Kiefern zu betrachten.

5. In den von uns erwähnten drei Forsten sind die schwarzsamigen Kiefern
am meisten verbreitet, darauf folgen die buntsamigen und zuletzt die
braun- und hellsamigen.

6. Die Unterschiede zwischen verschiedenen Kiefern in bezug auf die
Färbung ihrer Samen sind so bedeutend, dass sie auf das Vorhanden-
sein verschiedener Rassen hinweisen. Bis zur näheren Aufklärung dieser
Frage möchten wir folgende Einteilung der Kiefer in vier Gruppen oder
Rassen vorschlagen: a) Kiefern mit schwarzen Samen, Pinus silvestris L-
seminibus atris; b) Kiefern mit braunen Samen, Pinus silvestris L. seminibus
brunneis; c) Kiefern mit hellen Samen, Pinus silvestris L. seminibus pallidis
und d) Kiefern mit fleckigen Samen, Pinus silvestris L. seminibus macu-
latis und

7. in nördlichen Gegenden ist aller Wahrscheinlichkeit nach die hell-
samige Rasse der Kiefer am meisten verbreitet, in südlichen dagegen
die schwarzsamige.

357. Lewis, J. M. The Behaviour of the Chromosomes in Pinus
and Thuja. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 529—536, pls. XXIX— XXX.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

358. Masters, T. M. On the distribution of the species of Coni-
fers in the several districts of China, and on the occurrence of the
same species in neighbouring Countries. (Journ. Linn. Soc. London,
XXXVIII, 1908, p. 198—205.)

Siehe „Pflanzengeographie".

359. Menezes, C. A. Juniperus Oxycedrus L. subsp. maderensis Menezes
n. subsp. (Bull. Acad. Int. Geogr. Bot., XVIII, 1908, p. XII) N. A.

360. Miyake, Küchi. The development of Gametophytes and
Embryogeny of Cunninghamia. (Tokio Bot. Mag., XXII, 1908, p. 45 — 50,
14 Textfig.)

Siehe „Anatomie".

361. Mottet, S. Picea morindoides. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 516
bis 520, Fig. 203-206.)

Eingehende Schilderung der Art. Die Figuren zeigen eine Pflanze, sowie
Nadel- und Fruchtdetails (auch von P. morinda).

362. Müller, Karl. Hexenbesen auf Pinus silvestris. (Naturw. Wochen-
schrift, N. F., VII, 1908, p. 134—136, 3 Fig.)

Siehe unter „Teratologie".

363. Neumann, Richard. Aus Leben, Sage und Geschichte der
Eibe in allgemeinverständlicher Darstellung. (Abh. z. Jahresb. des Bautzner
Gymnasiums, Bautzen 1908, 31 pp., m. 2 Taf.)

Nach kurzer Einleitung, in der hauptsächlich die Gründe des VerSchwindens
der Eibe angeführt werden, wird zunächst von der Giftigkeit des Baumes ge-

68 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [ßg

handelt in historischer Übersicht von Theophrast an bis zu Skakespeare, worauf
dann auf die neueren Untersuchungen über diese Giftigkeit eingegangen und
besonders das Toxin in seinen Wirkungen besprochen wird. Danach sind am
giftigsten die Nadeln, giftig ist ferner die Rinde, wenig giftig sind die Samen.
Das Gift ist für die Pflanze biologisch wichtig als Schutzmittel, wenn auch
zum Teil übertriebene Meinungen darüber verbreitet waren, so dass der Eiben-
baum als Heilpflanze gebraucht wurde und überhaupt im Zauberglauben des
Volkes eine bedeutende Rolle spielte. Den Schluss bildet die Verwendung
der Eibe in Garten und Park als Nutzholz wegen seiner Festigkeit und Zähig-
keit, weshalb es besonders früher eine bedeutende Rolle als Handelsartikel
bildete. F. Fedde.

364. Nicolosi-Roncati, F. La polinuclearita nella microspora della
Dammara robusta 0. Moore. N. P. (Bull. Orto bot. Napoli, II, 1908, 4 pp.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

364a. Noren, C. 0. Zur Kenntnis der Entwickelung von Saxegothea
conspicua Ldl. (Sv. Bot. Tidskr., II, 1908, p. 101—122, 3 Tafeln, 3 Textfig.,
schwed. Resümee.)

Die Zusammenfassung des Verf. lautet:

Die Pollensäcke haben eine drei- bis vierschichtige Wand und eine ein-
schichtige, aus der äussersten Zellschicht des Archespors hervorgehende
Tapete.

Die Pollenkörner haben keine Luftsäcke. Ihre Wand ist ringsum von
gleicher Dicke. Sie enthalten reichlich Stärke in Form von grossen Körnern.

Im Pollenkern bilden sich zwei Prothalliumzellen. Von diesen teilt sich
die zweite immer, oft auch die erste. Die Prothalliumzellen und ihre Derivate
persistieren bis zur Pollination.

Die folgenden Teilungen im Pollenkorn verlaufen nach dem gewöhn-
lichen Schema, so dass also das Pollenkorn bei der Reife drei bis vier
Prothalliumzellen, die generative Zelle, den Stielkern und den Schlauchkern
enthält.

Die Elemente werden schliesslich frei und liegen im Pollenkorn zer-
streut, und beim Keimen wandern sie alle, vielleicht mit Ausnahme der ersten
Prothalliumzelle oder ihrer Derivate, in den Pollenschlauch über.

Die Samenanlagen sitzen an der Basis der Carpide, nach aussen von
Epimatium, das schon von Anfang an mit der Samenanlage innig verbunden
ist, umgeben. Die Mikropyle wird schliesslich durch sekundäres Wachstum des
Carpides einwärts gegen die Achse des Zapfens gerichtet.

Der Nucellus wird niemals wie bei den übrigen Coniferen vom Integument
ganz umschlossen, sondern ragt aus der Mikropyle hervor und erweitert sich
an der Spitze knopfförmig.

Diese Einrichtung kann physiologisch als eine Narbe betrachtet werden,
da durch sie die sonst auf Grund der Lage der Samenanlage hier etwas
schwierige Pollination bedeutend erleichtert wird.

Im schmälsten Teil des Nucellus, unter der „Narbe" treten collenchym-
und tracheidenähnliche Wandverdickungen in den Nucelluszellen auf, die
diesen Teil die nötige Stärke geben.

Der Verschluss des Mikropylarkanals nach vollzogener Pollination, der
bei den übrigen Coniferen durch sekundäres Wachstum gewisser Integument-
zellen bewirkt wird und als Schutzeinrichtung für den keimenden Pollen auf-
zufassen ist, kann natürlich bei Saxegotliaea nicht in Frage kommen. Ein nicht

ß9 1 Coniferales. 69

weniger effektiver Schutz wird statt dessen hier in der Weise bewirkt, dass
der „Pollinationskanal" zwischen den Carpic'en durch basales Wachstuni der
letzteren geschlossen wird.

Die Embryosackmutterzelle ist durch ein mehrzelliges, nicht immer
scharf ausgeprägtes Archespor umgeben.

Bei den Tetradenteilungen werden möglicherweise nur drei Zellen
gebildet.

Die Struktur der Embryosackwand ist von gewöhnlichem Coniferentypus,
aber ausserordentlich zart und fein.

Durch Saxegothea werden die Podocarpeen und die Araucarieen näher
miteinander verbunden als bisher angenommen worden ist.

365. Przibram, Hans. Wiederaufnahme des Wachstums von
Strünken der Sequoia s&mpervirens Endl. (Wiesner-Festschr., Wien 1908,
p. 525—527, 2 Textfig.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

366. Rothrock, J. T. Larch tamarack, lackmatack, Larix americana.
(Forest Leaves, XI, 1908, p. 104, Ol.)

Nicht gesehen.

367. Rywosch, S. Einiges über die Harzgänge in den Blättern
der Gattung Picea. (Engl. Bot. Jahrb., XLI, 1908, p. 373—376.)

Verf. stellte fest, dass stets beide reguläre Harzgänge vorhanden sind
und dass diese immer der morphologischen Unterseite genähert liegen. Sehr
selten sind dagegen accessorische Gänge.

368. Schelle, E. Die winterharten Nadelhölzer Mitteleuropas.
Stuttgart, E. Ulmer, 1908, 8°, VIII, 356 pp., 173 Abb., eine Tai., eine Karte.

Ein Kulturhandbuch, worin auch die Literatur der letzten Zeit berück-
sichtigt wird. In erster Linie für den Gärtner und Forstmann wertvoll,
während botanisch Verf. nur kompilatorisch tätig war.

369. Schwappach, A. Die Kiefer. Wirtschaftliche und statistische
Untersuchung. Neudamm 1908, 8°.

Nicht gesehen.

370. Schwappach, A. Ermittelungen über die Qualität des Holzes
von Pseudotsuga Douglas!. (Zeitschr. f. Forst- u. Jagdwesen, XL, 1908, p. 322
bis 325.)

Forstlich.

371. Schwerin, Fritz von. Notizen über das Gedeihen einiger
Coniferen. (Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 84—95, m. Abb.)

Hervorgehoben seien die Bemerkungen über: Picea omorica Panc. (Jugend-
und Altersform), Pseudotsuga Douglasii Carr. mit bläulicher Form caesia und
Ps. glauca mit grüner Form laeta, Abies Nordmanniana (Glockenform), Larix
occidentalis Nutt.

372. Spitzenberg, G. K. Über Missgestaltungen des Wurzel-
systems der Kiefer und über Kulturmethoden. Neudamm, 1908, 8°.

Nicht gesehen.

373. Stiles, W. The anatomy of Saxegothea consjiicua Ldl. (New
Phytol., VII, 1908, p. 209-221, fig. 28—32.)

Siehe „Anatomie".

374. Stirling-Maxwell, J. The mountain Pine. (Trans, rov. scottish
arbor. Soc, XXI, 1908, p. 10-15, 5 pl.)

Nicht gesehen.

70 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [70

375. Sylven, N. Material för studiet af skogsträdens raser. 4— 8. (Material
zur Erforschung der Rassen der schwedischen Waldbäume. 4—8.)
(Mitt. forstl. Versuchsanst. Schwedens, 1908, 5, 24, IV pp., ill., deutsch. Res.)

Verf. behandelt:

4. Schlangenfichten im nördlichen Västergötland (Picea excelsa [Lam.J Lk.
var. virgata ]Jacq.].

5. Dichotypische Fichte aus Forserum in Smäland. Wohl eine vegetative
Mutation.

6. Säulenähnliche Fichte aus Hassle im nördlichen Västergötland, wohl zu
P. excelsa f. columnaris Carr. zu rechnen.

7. Eine neue Form der Fichte mit abnormer Chlorophyllbildung.

8. Tabulaeformis-artige Fichten aus Holaveden.

376. Sylven, N. Om könsfördelningen hos tallen. [Über die Geschlechts-
verteilung* bei der Kiefer.] (Skogsv. Foren. Tidskr., 1908, 14 pp., 8 Fig.,
deutsches Resümee.)

Siehe im Blütenbiologischen Teile des Just.

377. Taylor, A. D. Suggestions for identifiying the conifers.
(Park et Cementery, XVIII, 1908, p. 365-366, 3 fig.)

Nicht gesehen.

378. Thomas, Fr. Die Tambacher Cypressenfichte. (Aus den
Coburg-Gothaischen Landen, Heimatblätter, 1908, p. 58—60, eine Abb.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

379. Tompson, Robert Boytl. Note on the Pollen of Microcachrys. (Bot.
Gaz., XL VI, 1908, p. 465-466.)

Die Pollenflügel von Microcachrys bilden gleichsam einen Übergang
zwischen Saxegothea auf der einen und Dacrydium und Podocarpus auf der
anderen Seite.

380. W[agner, Rudolph]. Die Pinsapo -Tanneundih re Heimat. (Österr.
Gartenztg., III, 1908, p. 288—295, Fig. 27.)

Vgl. „Pflanzengeographie''.

381. Wieland, G. R. Accelerated Cone Growth in Pinus [rigida].
(Am. Journ. Sei., 4. ser., XXV, 1908, p. 102—104, eine Fig.]

Siehe „Teratologie".

382. Wilhelm, Karl. Über einen merkwürdigen Fichtengipfel.
(Wiesner-Festschr., Wien 1908, p. 528-534, 2 Textfig., Taf. XII.)

Siehe „Teratologie".

383. Zang, W. Die Anatomie der Kiefernadel und ihre Ver-
wendung zur systematischen Gliederung der Gattung Pinus. Diss.,
Giessen 1908, 46 pp., m. 5 Taf., 8".)

Siehe „Anatomie".

384. Zederbauer, E. Die Farbe des Weissföhrensamens als syste-
matisches Merkmal. (Centrbl. ges. Forstwes., XXXIV, 1908, p. 394—396.)

Verf. sagt: Es ist vom waldbaulichen Standpunkte nicht zweckmässig
und ökonomisch, die Farbe oder Gestalt der Samen, Samenflügel oder Zapfen-
schuppen der Föhren zur Aufstellung von Varietäten zu benutzen. Sie stehen
zueinander und zu anderen Eigenschaften nicht in bestimmter Korrelation,
sondern soweit mein Untersuchungsmaterial (je 100 Individuen von vier an-
geführten Arten) zeigt, können z. B. schwarze Samen mit verschiedenen Eigen-
schaften der Samenflügel, Zapfen, Wachstumsfähigkeit und anderen vegetativen
Merkmalen in Kombination treten, natürlich bei einem Individuum immer

71J

Coniferales. Cycadales.

71

gleich. Das Auftreten derselben Variationsrichtungen bei vier ähnlichen Arten
drängt mich zur Ansicht, dass diese Abänderungsfähigkeit ihnen eigentümlich
ist, wie eine bestimmte Wachstums- und Vermehrungsweise. Es ist eine in
ihnen liegende charakteristische Eigenschaft, die nicht in jedem Individuum,
sondern in verschiedenen Individuen einer Art zum Ausdruck kommt.

Sollte es daher doch gelingen, die Farbe des Weissföhrensamens in be-
stimmter Korrelation mit anderen Eigenschaften, insbesondere waldbaulich
wertvollen, zu finden, so dass bestimmte Rückschlüsse gemacht werden
können, so wäre ein weiterer wertvoller Schritt in der Rassenfrage der Weiss-
föhren getan.

385. Zederbauer, E. Die Keimlinge von Pseudotsuga macrocarpa May r.
(Centrbl. ges. Forstwes., XXXIV, 1908, p. 199—200, Fig. 14.)

Verf. gibt folgende Gegenüberstellung.

P. Douglasii

P. macrocarpa

Cotyledonen

5 bis 8, meist 6 oder 7, 15

7 bis 15, meist 10, 40 bis

bis 20 cm lang, zugespitzt,

50 cm lang, zugespitzt,

dreikantig, oben mit einer

dreikantig, oben mit einer

Mittelkante und beider-

Mittelkante und beider-

seits von dieser einen

seits von dieser einen

kaum sichtbaren weissen

deutl. sichtbaren weissen

Streifen, unten grasgrün

Streifen, unten grasgrün

und glatt

und glatt

Nadeln

zweiflächig, einspitzig,

zweiflächig, einspitzig

glatt, oben grün, unten

glatt, oben grün, unten

mitzwei weissen Streifen,

mit zwei weissen Streifen,

1 bis 1,5 cm lang

2 bis 3 cm lang

Stengel der

einjährigen

2 bis 4 cm hoch, schwach

4 bis 13 cm hoch, schwach

Pflanze

behaart

behaart

Wurzel der

einjährigen

5 bis 15 cm lang

10 bis 25 cm lang

Pflanze

Bildung der

Knospen

Anfang September

Ende September und Ok-
tober, leidet von Früh-
frösten und erfriert in
Mitteleuropa während
des Winters

386. Zimmermann, A. Tropische Nutzhölzer. III. Die japanische
Ceder [Cryptomeria japonica]. (Der Pflanzer, IV, 1908, p. 29—31.)

Cycadales.
Neue Tafeln:
Encephalarfos Lemarinelianus De Wild, et Dur., in Thonner, Blutenpflanzen
Afrikas, 1908, tab. 1.

387. Dorety, Helen A. The embryo of Ceratozamia: A physiological
study. (Bot. Gaz., XLV, 1908, p. 412—415, 7 figs.)

Siehe „physikal. Physiologie".

72 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |72

388. Dorety, Helen A. The seedling of Ceratozamia. (Bot. Gaz., XLVI,
1908, p. 202—220, 2 figs., pls. XII— XVI.)

Siehe ,. Anatomie".

389. Karzel, Rndolf. Die Verholzung der Spaltöffnungen bei
Cycadeen. (Wiesner-Festschr., Wien 1908, p. 510—516, 7 Textf.)

Siehe „Chemische Physiologie".

390. Linshauer, Karl. Über einen Fall vorzeitigen Blühens bei
Zamia integrifolia. (Östr. Gartz., III, 1908, p. 178—182, Fig. 18.)

Siehe „Physiologie".

391. Matte, H. Sur le developpement morphologique et ana-
toinique de germination des Cycadees. (Mem. Soc. Linn. Normandie,.
XXIII, 1908, 60 pp., 2 pl.)

Siehe „Anatomie".

392. Pearson, H. H. W. Some South African Cycads: their Habitatsr
Habits, and Associates. (Rep. Brit. Assoc. advanc. sei., LXXVI, 1906,
p. 738-739.)

Besprechung siehe „Pflanzengeographie". Fedde.

393. Seward, A. C, Gregory, K. P., Scott, D. H. and Lang, W. H. Research
on South A frican Cycads — Interim Report of the Committee. (Rep.
Brit. Assoc. advanc. sei., LXXVI, 1906, p. 431—432.)

Besprechung siehe „Pflanzengeographie". Fedde.

394. South, F. W. and Compton, R. H. On the anatomy of Dioon edule
Ldl. (New Phytol., Yll, 1908, p. 222—229, fig. 35-40.)

Siehe „Anatomie".

395. Thiessen, Reinhardt. The vascular anatomy of the seedling
of Dioon edule. (Bot. Mag., XL VI, 1908, p. 357—380, plates XXIII— XXIX.)

Siehe „Anatomie".

Ginkgoales.

396. Salfeld, H. Über Ginkgo biloba und ihre ausgestorbenen Ver-
wandten. (Jahrb. Nat. Ges. Hannover, 1908, p. 164—168.)

Siehe unter „Paläontologie".

397. Schwerin, Fritz von. Ginkgo oder Ginkgo. (Mitt. D. Dendrol. Ges.,
XVII, 1908, p. 208.)

Verf. führt an, dass in Japan der Name Ginkgo unbekannt ist, die-
Pflanze heisst dort Itscho, aber in China Ging-cho = Ginkyö. Wahrscheinlich
dürfte Ginkgo die rechte Schreibweise sein.

398. Shaw, F. J. F. A contribution to the anatomy of Ginkgo
biloba. (New Phytol., XII, 1908, p. 85—92, fig. 16—18.)

Siehe „Anatomie".

399. Sprecher. Recherches sur l'origine du Systeme secreteur
du Ginkgo biloba L. (Beih. bot. Centrbl., 1, XXIV, 1908, p. 68—82, 2 Taf.,
19 Abb.)

Siehe „Anatomie".

Gnetales.

400. Conlter, John M. The Embryo sac and Embryo of Gnetum
Gnemon. (Bot. Gaz., XL VI, 1908, p. 43—49, pl. VII.)

Siehe „Anatomie".

73] Ginkgoales. Guetales. Ephedraceae. Alismataceae. Amaryllklaceae. 73

401. Henriques, J. A. Tumboa Bainesii Hook. (Trabalhos Ac. Sc. Por-
tugal, 1, I, 1908, p. 91—95.)

Nicht gesehen.

402. Hill, T. G. The germination of Gnetum Gnemon L. (Journ. FL
Hort. Soc. London, XXIV, 1908, p. 41—42, fig. 11.)

Verf. stellte folgendes fest:

1. Her Fuss ist eine auffällige Struktur, die Gefässgewebe enthält und bei
Gnetum in grösserer Ausdehnung als bei Welwitschia oder Ephedra ent-
wickelt ist.

2. Die Hauptwurzel wächst zuerst sehr langsam und stellt nicht mehr als
eine nagelartige Struktur dar. Später wächst sie rapid und bildet eine
deutliche Pfahlwurzel.

3. Die Cotyledonen sind zuerst sehr klein; nach einiger Zeit entwickeln
sie sich beträchtlich und ähneln Laubblättern. Sie sind oft ungleich in
Grösse.

403. Pearson, H. H. W. Further observations on Welwitschia. [Ab-
stract.] (Proc. roy. Soc. London, B, LXXX, 1908, p. 530—531.)

Nicht gesehen.

Ephedraceae.

404. Cavara, F. Una rivendicazione di priorita di alcune pricerche
scientifiche. [Handelt über Ephedra, Empusa usw.] (Rend. Ac. Sc. fis. e
mat. Napoli, 1908, 4/7, 4 pp.)

Nicht gesehen.

B. Angiospermae.

Monocotyledones.

Alismataceae.

Neue Tafeln:
Limnophytum obtusifolium Miq., in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 6.
Sagittaria heterophylla Pursh var. iscana Hiern, in Journ. of Bot., XLVI, 1908,

plate 494.

405. Blackader, E. H. The flowering-rush [Butomus umbellatus] '.-
(Ottowa Nat., XXII, 1908, p. 187.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

406. Hiern, W. P. Sagittaria heterophylla Pursh in Devon. (Journ. of
Bot., XLVI, 1908, p. 273—278, pl. 494.) N. A.

Die Tafel zeigt var. iscana Hiern var. nov.

Amaryllidaceae.

Neue Tafeln:
Agave Watsoni Drum, et Wright in Bot. Mag., CXXXIV, 1906, tab. 8214.
Alstroemeria campanißora Hand.-Maz. in Wettstein et Schiffn., Ergeb. bot. Exped..

Süd-Brasilien, 1908, tab. XIX, fig. 2—6.
Crinum abyssinicum Höchst, in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 19..
C Vassei in Eev. hortic, LXXX, 1908, tab. col. ad p. 132.

Haemanthus Katharinae in Gard. Chron., ser. 3, XLIII, 1908, tab. nigra ad p. 73.
Narcissiis pseudonarcissus L. in Karst, et Schenk, Vegetationsb., V, 1908, tab. 14 B

(Vegetationsb.).

74 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [74

407. Anonym. Zepltyrantiies aurea. (Gard. Chron., ser. 3, XLIII, 1908,
p. 405, Fig. 181.)

Die Figur zeigt eine Blüte.

408. Bois, D. Production de bulbilles floraux chez V Agave Weber i.
<Rev. hortic, LXXX, 1908, p. 149-150, fig. 47.)

Verf. bildet transformierte Stamina ab.

409. Bois, D. Crinam Vassei. (Rev. hortic, LXXX, 1908, p. 132—133,
tab. col.)

Die Tafel zeigt blühende Pflanze und Blüte.

410. Braun, K. Die Agaven, ihre Kultur und Verwendung.
Nachträge und Verbesserungen. (Der Pflanzer, IV, 1908, p. 49—64. Fort-
setzung folgt.)

Siehe „Agrikulturbotanik".

411. Cllifflot, J. Floraison de V Agave coccinea Roezl. et sur les
anomalies qu'elle präsente. (Associat. franc. l'avancem. Sei., XXXV, 1906,
Lyon, p. 437—440.)

Siehe „Blütenbiologie". Fedde.

412. Correvon, Henri. The flower industry et Nice. (Gard. Chron.,
ser. 3, XLIII, 1908, p. 379—380, Fig. 173.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze von Agave ferox im „Parc
aux Roses".

413. Darlington, H. R. Yellow-Stripe in Daffodils. (Journ. R. Hort.
Soc. Lond., XXIV, 1908, p. 161—166.)

Das Phänomen ist nur auf wenige Gartensorten von Narcissus beschränkt,
zeigt sich in wechselnder Form und kann verschiedene Ursachen haben.

414. Endlich, R. Der Ixtle (Agave spec.) und seine Stammpflanzen.
<Beih. Tropenpflanzer, IX, 1908, p. 221—283, 7 Abb.)

Siehe „Agrikulturbotanik".

415. Fiet, A. Doryanthes Palmeri. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 222—223,
Figur.)

Die Abbildung zeigt blühende Pflanze.

416. Heim, F. Sur le pretendu bouturage des feuilles de Clivia
Lindl. (Amaryllid.). (Notes de Bot. pure et appl., 1908, 2 pp.)

Nicht gesehen.

417. Heineck. Verlauf des Blütenlebens von Clivia nobilis Ldl.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 92—93, eine Fig.)

Siehe unter „Blütenbiologie".

418. Hoch, Hermann. Agave Verschaffeltii. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII,
1908, p. 14.)

Über eine blühende Pflanze.

419. Lary de Latour, Er. de. Sur des particularites cytologiques
du developpement des cell ules-me res du pollen de V Agave attenuata.
(C. R. Acad. Sei. Paris, CXLVI, 1908, p. 833—836.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

420. Othmer, B. Crinam Kirkii Bak. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 365,
2 Textfig.)

Die Abbildungen zeigen Blütenstand und blühende Pflanze.

421. Othmer, B. Crinum Moorei Hook. f. (syn. C. Makoyanum Carr.)
und C. Macowani Bak. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 67, 2 Fig.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen beider Arten.

75] Ainaryllidaceae. Aponogetonaceae. Araceae. 75

422. Perriraz, J. Etüde biologique et biometrique sur Narcissus

angustifolius Gurtis. (Bull. Soc. Vaudoise sei. nat. Lausanne, XLV, 1908,
p. 153-176.)

Besprechung siehe bei „Blütenbiologie". Pedde.

423. Recenti, A. Eucharis amazonica. (Boll. Soc. tose. Ortic, XXXIII,
p. 324—327, 8°, Firenze 1908.)

Referat nicht eingegangen.

424. Rouy, G. Notices floristique (suite). Un peu de biblio-
graphie, III. 8. Narcissus capax Roem. et Schultes. (Bull. Soc. Bot. France,
LV, 1908, p 148-154.) N. A.

Vgl. „Pflanzengeographie von Europa".

Narcissus reffexus Brot. sens. ampl. gliedert sich wie folgt:

subspec. 1. N. Broteroi Rouy (N- reflexus Brot. s. str.) mit der Rasse

N- Loiseleurii Rouy (N. reflexus Lois.).
subspec. 2. N- capax (R. et Seh.) Rouy (JV. calathinus Lois., non L.)
mit der Rasse N. pulchellus (Salisb.).

425. Trelease, William. Variegation in the Agaveae. (Wiesner- Fest-
schrift, Wien 1908, p. 332—356, Taf. VI— XII, 11 Textfig.)

Verf. zählt die bisher bekannten buntblätterigen Formen von Agave und
Fourcroya auf, bespricht die Art und den mutmasslichen Ursprung der Varie-
gation und gibt eine genaue Quellenliste usw.

Man vergleiche auch im „Physiologischen Teile" des Jahresberichts.

426. Trelease, William. Agave rigida — Ficrcroya rigiäa — Agave angusti-
folia- (Rep. Miss. Bot. Gard., XIX, 1908, p. 273—287, pl. 29—35.)

Verf. klärt diese Arten genau.

427. Trincliieri, G. Osservazioni sopra anomalia fiorali di Crinum
Cooperi Herb. (Rend. r. Acc. Sc. fis. et mat. Napoli, 1908, p. 10.)

Aponogetonaceae.

Neue Tafel:
Aponogeton leptostachyus E. Mey. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 5.

Araceae.

Neue Tafeln:
Anthurium Scherzerianum rot undispathum in Rev. hortic, LXXX, 1908, tab. col.

ad p. 496 (flores).
Mydrosme grata Schott in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 12.
XPhilodendron Corsmianum Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8172.

428. Bornmüller, J. Über eine neue Biarum-Art aus der Flora
Persiens [B. platyspathum]. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 57—58.) N. A.

428a. Cook, Theodore. Araceae in the Flora of the Presidency of Bombay,
II, 1908, p. 816-831.

Umfasst Vertreter der Gattungen : Pistia, Cryptocoryne, Lagenandra,
Arisaema, Typhonium, Theriophonum, Sauromatum, Amorphopliallus, Ariopsis,
JRemusatia, Pothos.

429. Engler, A. und Krause, K. Additamentum ad Araceas-Pothoideas,
Araceae Monsteroideae et Araceae-Calloideae- (Pflanzenreich, Heft 37 [IV, 23 B.],
1908, 160 pp., 60 Fig., eine Tafel) N. A.

Der Nachtrag zu den Pothoideen betrifft die neue Gattung FpApremnopsis
mit E- media Engl. {Scindapsus medius Zoll, et Mor.).

76 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik, der Siphonogamen. I 7Q

Die Monsteroideae stehen den Pothoideae am nächsten. Sie gliedern sich,
wie folgende Übersicht lehrt, in zwei Tribus, von denen wegen des Perigons
die Späth! phylleae wohl als älter anzusehen sind, doch dürften die Monstereae
nicht von diesen abstammen, sondern beide von einem ausgestorbenen Stamm
abzuleiten sein.

Tribus I. Monstereae: Oaulis et petioli cellulis spicularibus intercellularibus
numerosis instructi. Flores achlamydei. Spatha a spadice post anthesin
decidua. Plerumque scandendes. Hierher die Gattungen : Raphidophora Hassk.,
Afroraphidophora Engl., Epipremnum Schott, Scindapsus Schott, Stenospermatium
Schott, Rhodospatha P. et Endl., Anepsias Schott, Monstern Adans., Alloschemone
Schott, Amydrium Schott.

Tribus II. SpatJiiphylleae: Oaulis et petioli cellulis spicularibus paucis
instructi. Flores perigoniati 3- (etiam 2 — 4-) meri. Spatha persistens. Semina
albuminosa. Herbae perennes caudice hypogaeo vel paullurn epigaeo, internodiis
abbreviatis. Folia longe petiolata: Hierher nur Spathiphyllum Schott und
Holochlamys Engl.

In gewohnter Weise werden in den einleitenden Abschnitten behandelt:
Die Vegetationsorgane und deren anatomisches Verhalten (Keimung, primäre
Achse, Sprossverkettung, Wurzeln, Stellung der Blätter und Wurzeln, Aus-
bildung der Sprosse, Gestalt der Blätter, Anatomie von Stengel und Blatt),
Bliitenverhältnisse, Bestäubung, Frucht und Same. Hinsichtlich der geo-
graphischen Verbreitung sei hervorgehoben, dass die Monsteroideae eine durch-
aus tropische und zwar megatherm tropische Unterfamilie ist. Die Gruppe der
Monstereae ist im Monsungebiet mit 95 Arten, im tropischen Amerika mit
61 Arten entwickelt und in Afrika mit zwei Arten auf den äquatorialen Westen
beschränkt. Die SpatJiiphylleae finden sich nur im tropischen Amerika und
dem östlichen Teile des Monsungebietes, Celebes, Philippinen, Neuguinea; in
Afrika fehlen sie gänzlich.

Die Gattungen und Arten sind in der üblichen Weise ausführlich be-
schrieben und besprochen.

Die Calloideae scheinen innerhalb der Araceae annähernd in der Mitte
zwischen den Pothoideae und Philodendroideae zu stehen. Sie gliedern sich
wie folgt:

Tribus I. Symplocarpeae: Flores perigoniati. Semina exalbuminosa. Nervi
laterales numerosi IL et III. reticulati. Hierher: Lysichitum Schott, Synaplo-
carpus Salisb. und Orontium L.

Tribus IL Calleae: Flores nudi. Semina albuminosa. Nervi laterales
numerosi L, IL et III. paralleli. Nur Calla.

Sonst sei hervorgehoben, dass systematisch das gleichmässige Auftreten
von Milchsaftschläuchen in dieser Unterfamilie bedeutsam ist. In den Blüten-
verhältnissen weicht Orontium von den anderen Gattungen dadurch ab, dass
der Kolben schon frühzeitig aus der Spathe heraustritt und infolge starken
nachträglichen Wachstums sich weit über diese erhebt.

Die Blüten der Calloideen sind fast stets zwitterig und zwei- bis drei-
gliedrig. Der Fruchtknoten besteht ans drei Carpellen, die ein meist ein-
fächeriges Ovar einschliessen. Die Zahl der Samenanlagen schwankt.

Bei Calla palustris und Symplocarpus foetidus wurde Proterogynie fest-
gestellt.

Die Früchta sind stets Beerenfrüchte.

771 Araceae. 77

Geographisch sind die Calloideen auf die nördliche gemässigte Zone
beschränkt und finden sich mit Ausnahme des nur nordamerikanischen Orontium
in der Alten und Neuen Welt.

430. Ganlhofer, K. Über den Geotropismus der Aroideenluft-
wurzeln. Erwiderung. (Flora, XCIX. 1908, p. 286—288.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

431. Gow, James Ellis. Embryogeny of Arisaema triphyllüm. (Bot.
Gaz., XLV, 1908, p. 38—44, 24 figs.)

Siehe „Anatomie".

432. Gow, James Ellis. Studies in Araceae. (Bot. Gaz., XLVI, 1908,
p. 35—42, pl. IV— VI.)

Siehe „Anatomie".

433. Gueguen, F. Enations hypophylles du Colocasia esculenta
Schott. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 26-32, 5 Textfig.)

Verf. konstatierte, dass gewisse Pflanzen dieser Art foliare Enationen
trugen, die aus kammartigen Gebilden bestanden, welche an der Blattunter-
seite und meist im Niveau der Nerven angeheftet waren. Diese Kämme, welche
von der Knospe ab hervortreten und das Maximum ihrer Entwicklung gegen
die Spitze der höchstentwickelten Blätter erreichen, haben die allgemeine
Struktur und die Orientierung überzähliger Spreiten. Die Pflanzen, welche sie
tragen, haben an den Rändern lebhaft rosa gefärbte Blattscheiden und ent-
behren der Tuberkeln an der Basis; sie sind gewöhnlich viel wüchsiger als die
normalen Stücke.

Das Hervortreten dieser Anomalien scheint eine Folge der Üppigkeit
der Pflanze zu sein. Ihr geringer Umfang im Verhältnis zu dem des Blattes,
unter dem sie inseriert sind, scheint nicht darauf zu deuten, dass sie für die
Pflanze, die sie produziert, nützlich sind.

434. Hoeck, F. Araceae in Kirchner 1. c. (Ref. No. 175 a), p. 132, Fig. 1 — 17
(noch nicht abgeschlossen).

Behandelt in gewohnter Weise die Eebensgeschichte der Gattungen und
Arten: Acorus calamus und Calla palustris.

434a. Mücke, M. Über den Bau und die Entwickelung der
Fr üchte und über dieHerkunft von Acorus calamus L. (Bot. Ztg., LXVI,
1908, p. 1—23, 6 Textfig., Taf. I.)

Die Resultate fasst Verf. wie folgt zusammen:

1. Acorus calamus hat seine Heimat im heissen Ostasien und ist um die
Mitte des 16. Jahrhunderts nach Deutschland bzw. Westeuropa ein-
geführt worden.

2. Acorus besitzt ein einschichtiges Perisperm, dessen dünnwandige Zellen
einen sehr eigentümlichen, eiweissartigen Zellinhalt einschliessen. Dieses
Perisperm geht aus der äusseren Zellage des zweischichtigen Nucellus
hervor, dessen aus eigenartig gestalteten und angeordneten Zellen be-
stehendes Binnengewebe vom heranwachsenden Embryosack resorbiert
wird.

3. Pollen und Ovula erfahren bei Acorus calamus eine Entwickelungs-
hemmung, wodurch eine Samenbildung ausgeschlossen ist.

4. Acorus gramineus besitzt im Gegensatz zu Acorus calamus normal ent-
wickelte Pollenkörner und Ovula; infolgedessen vermag diese Pflanze
keimfähigen Samen zu liefern.

78 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik, der Siphonogainen. I 78

5. Indische und europäische Kalniuspflanzen weisen gewisse Differenzen
in ihrem Habitus und Verhalten unter verschiedenen Kulturbedingungen
auf.

6. Der Grund der Entwickelungshemmung bei Acorus calamvs dürfte in den
ungünstigen klimatischen Verhältnissen der neuen Heimat der Pflanze
zu suchen sein.

435. W., H. Anthurium. (Gard. Chrom, 3. ser., XLIV, 1908, p. 180—181,
Fig. 75—76.)

Die Abbildungen zeigen Pflanzen von A. Warocqueanum und A. Veifchi.

Bromeliaceae.

Neue Tafeln:
Puya violacea Mez in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8194.
Tillcmdsia Blokii Hemsl. in Bot. Mag. CXXXIV, 1908, tab. 8192.

436. Gage, A. T. A case of lateral floral prolification of the
inflorescence of the Pineapple (Ananas sativus Schult, f.). (Journ.
asiat. Soc. Bengal., III, 1908, p. 593.)

Siehe „Teratologie".

437. Girasoli, C. Sülle ceneri della Tillandsia circinalis. (Atti R.
Istit. Incoragg. Napoli, LIX, 1907. p. 17—19.)

Nicht gesehen.

437 a. Ule, E. Bromeliaceae in Beitr. z. Flora von Bahia. (Engl. Bot.
Jahrb. XLI, 1908. p. 191—199, 1 Fig.) N. A.

Neue Arten von : Sincoraea, Cryptanthopsis, Bromelia, Nidulo.rium, Hohen-
bergia, Aechmea, Dyckia, Encholirion.

Burmanniaceae.

438. Cheeseniann, T. F. Baynisia Hillii Cheesm., a new speciesof
Burmanniaceae from New Zealand. (Kew Bull., 1908, p. 419— 421.) N. A.

439. Gagnepain, F. Burmanniaceae in Lecomte Flora gen. de LTndo-
Chine, VI, 1908, p. 18—25, fig. 7.) N. A.

Umfasst 9 Arten von Burmannia.

Butomaceae.

Cannaeeae.

440. Gatin, C.-L. Recherches anatomiques sur l'embryon et la
germination des Cannacees et des Musacees. (Ann. Sei. Nat., ser. 9,
VIII. 1908, p. 113-146, Fig. 1—34.)

441. Gatin, C.-L. Anatomie et de veloppement d e l'embryon chez
les Palmiers, les Musacees et les Cannacees. (C. R. Acad. Sei. Paris,
CXLVI, 1908, p. 938—939.)

Siehe „Anatomie".

Commelinaceae.

Neue Tafel:
Aneilema beninente Kunth in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 16.

441a. Fries, ltob. E. Nägra drag ur Spironema fragrans blommans
biolog i. (Einige Mitteilungen über die Biologie der Spironema
fragrans-Blüte. (Sv. Bot. Tidskr., II, 1908, p. 277—303, 10 Textfig.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just

79] Broineliaceae. Burmanniaceae. Cannaceae. Commelinaceae. Cyperaceae. 79>

442. Gallagher, W. J. The cytology of Bhoeo discolor (Tradescantia
discolor). (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 117.)

Vgl. „Morphologie der Zelle".

Verf. sagt, dass die Inflorescenz: is a compact double scorpioid cyme,
which facilitates the assemblage of sets of consecutive stages.

443. Heineck. Der Verlauf des Blütenlebens von Tradescantia
virginica L. (Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 474—477, 7 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

444. Othmer, B. Cochliostema Jacobinianum C. Koch et Lind. (Garten-
welt, XIII, 1908, p. 722—723, Abb.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

445. Uie, E. Commelinaceae in III. Beitr. zur Flora der Hylaea. (Verh.
Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. 69—72) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

Corsiaceae.

Cyelanthaceae.

Cyperaceae.
Neue Tafel (vgl. auch Kef. No. 448).
Kyllinga alba Nees in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 9.

446. Clarke. C. B. New Genera and Species of Cyperaceae. (Bull.
Bot. Gard. Kew add., ser. VIII, 1908, 196 pp.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec."

447. Clarke, C. B. The Cyperaceae of Costa Rica. (Contr. U. St. Xat.
Herb., X, 1908, p. 443-471.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

448. Clarke, Charles Baron. Illustrations of Cyperaceae. London,
William and Norgate, 1909, CXLIV. tab., 12 sh 3 d.

Zum Teil auf dem Wege des Umdruckverfahrens, zum Teil durch Litho-
graphie wurden unter Beihilfe geschickter Künstler die 144 Tafeln hergestellt
die immer gerade die typischsten Arten der Gattungen darstellen. Der Text,
eigentlich nur Erklärungen der Tafeln, ist auf das Knappste: Name mit Autor,
Figurenerklärung; die Tafeln mit ihren Figuren sollen durch sich selbst wirken,
und das tun sie auch. Abgebildet sind Kyllinga brevifolia, squamulata,
eximia (tab. I.), monocephala, odorata, macrocephala (tab. II), Pycreus latespicatus
(tab. III), angulatus (tab. IV), Juncellus putttulatus (tab. V), Cyperus cephalotes
(tab. VI), nudicaulis, niveus (tab. VII), ochrocephalus, Atkinsoni (tab. VIII), triner-
vis, reduncus (tab. IX), pulcherrimus, podocarpus, Gardneri (tab. X), canns, ochra-
ceus (tab. XI), disjunctns, fertilis (tab. XII), midtispicatus, turgidulus (tab. XIII),
Iria, Thomsoni (tab. XIV), Babakensis, Buckleyi (tab. XV), usitatus, scariosus
(tab. XVI), tegetum, Berlandieri, subidatus (tab. XVII), Zollingeri, Tonkinensis
(tab. XVIII), stoloniferus, setigerus (tab. XIX), elephantinus. platyphyllus, giganteus
(tab. XX), Mariscus Dregeanus, coloratus (tab. XXI), paniceus, cyperinus, radi-
catus (tab. XXII), pictus, Sieberianus et var. ß evolutior, p>seudo-flavus (tab. XXII I),
ovularis et var. robusta, uniflorus (tab. XXIV), tetragonus, Jacquinii. Panamensis,
Swartzii (tab. XXV), ischnos, Mai/imae, Urbani (tab. XXVI) MiitisiL rufus,
bno/neus, decompositus (tab. XXVII), riparius, Rehmann ianus. Cooperi, flabelli-
formis, longus, si/uarrosus (tab. XXIX), setiglumis, Tabina, Lincastriei/sis, fulvus
(tab. XXX), Torulinium confertum, Michauxianum (tab. XXXI), Courtoisia

8Q C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [$Q

assimilis (fcab. XXXII), Eleochäris plantaginea, interstinda, mitrata, elaia
(tab. XXXIII), sphacelata, plantaginea var. gigantea (tab. XXXIV), fistulosa,
spiralis, nvda, Sellowiana (tab. XXXV), debilis, atropurpurea, Neo-Zelandica,
Savatieri, simulans (tab. XXXVI), Wolfii, arenaria, subvivipara, tetraquetra,
minima (tab. XXXVII), nigrescens, pachysfyla, grandis, melanocarpa (tab. XXXVIII),
tenuis, acuminata, Berlandieri, geniculata (tab. XXXIX), Fimbristylis tetragona
acuminata, polytnchöides, pteryosperma, Kivgii, cardiocarpa (tab. XL), clavinux
dipsacea, squarrosa, Fordii, aestivalis (tab. XLI), diphylla, podocarpa, rigidida,
ferruginea, Vahl/'i, Hookeriana (tab. XLII), exilis, quinqumigularis, cymosa, tri-
stachya, Cubensis (tab. XLII1), cyperoides, Adinoschoenus var. Tlwaursii, Bulbo-
stylis striatella (tab. XLIV), lanata, Warei, vestita, Fendleri (tab. XLV), Scirpus
wpillifolius, Clintoni, sororius, spadiceus, nanus (tab. XLVI), arenarius, basilaris,
costatus, varius, membranaceus (tab. XLVII), cubensis, blepharolepis, quinquefarius
erectus, supinus (tab. XLVIII), articulatus, macranthus, triqueter, grossus und var.
kysoor (tab. XLIX), Fimbristylis anomala (tab. XLIX), Scirpus littoralis
(tab. L), suhcapitavs, Caricis var. sikhimensis, criniger, polystachyux (tab. LI),
Ternatensis, semisitbterraneus, humillimus, sqtiarrosus, Isolepis (tab. LH), frondosus,
spathaceus (tab. LIII), Ficinia radiata, ixiöides (tab. LIV), lateralis, Zeyheri,
sylvatica, tribradeata, Ecklonea, pinguior (tab. LV), Compasbergensis, ramosissima,
longifolia (tab. LVI), Eriophorum alpiymm, comosum, mierostacJtyum (tab. LVII),
Fuirena scirpo'ides, pubeseens, incompleta, Wallichiana und var. evoluta (tab.
LVIII), nuces cum setis (tab. LIX), Lipocarpha pulcherrima, argentea, albieeps
(tab. LX), Ascolepis eriocauloides, data, capensis (tab. LXI), Dulichium
spathaceum (tab. LXII), Dichromena Minarum, pubera, ciliata. repens (tab. LX1II),
Mhyncliospora Wallidnana, Wightiana, tenuifolia, exserta (tab. LXIV). armeri-
oides, longisetis, pterochaeta, pterocarpa, trichochaeta (tab. LXV), elatior, rigida, Itispi-
dula, subplnmosa, hirta und var. Lindenii, albieeps (tab. LXVI), Malasica, cyper-
oides, aberrans (tab. LXVII), scutellata, gigantea, scaberrima, triflora, Hookeri,
amazonica, viridi-lutea, racemosa, dissitiflora (tab. LXVIII), hemieephala, patuli-
glmna, ciliolata, polyphylla, niacrochada (tab. LXIX), scirpioides, menostaehya,
eximia, Candida, hirsuta, micrantha, longispicata, divergens, pusilla (tab. LXX),
Barteri, aureaeformis, juneiformis, gracillima, lenerrima, tenella (tab. LXXI),
oligantha, hmata, alba, fusca (tab. LXXII), ciliata, prolifera, Paraensis, thyrsoides,
glauca und var. diinensis, Qriffithii, Sikkimensis (tab. LXXIII), Pleuro-
staehys strida, Urvillei, tenuiflora (tab. LXXIV), Cyathochaete avenacea
(tab. LXXV), Carplia alpina, deusta, glomerata (tab. LXXVII), deusta, capitel-
lata, Aubertii, Ecklonea capensis (tab. LXXVII), Schoenus cruentus, curvifolius,
pileiostimone-as. grandiflorus, calostacliyus, comosus (tab. LXXVIII), arundinaceus,
Hornei, paueiflorus, odontocarjms, sculptus (tab. LXXIX), axillaris, tenuissimus
(tab. LXXX), Phylloscirpus andesinus (tab. LXXXI), Macrochaetium
Dregei, Tetrariopsis odandra (tab. LXXXI), Cladium jamaicense, triglome-
ratum, undulatum (tab. LXXXII), Maingayi, restioides (tab. LXXXIII), ensifolium,
Sindairii (tab. LXXX1V), Vincentia aneeps, Deplanchei, riparium var. crassa (tab
LXXXV), Lepidosperma lineare, laterale, coneavum, striatum (tab. LXXXVI).
Tricostularia Neesii var. elatior, paueifiora, Microschoenus Duthiei (tab.
LXXXVII), Costularia paludosa, recurva, Epischoenus quadrangularis (tab.
LXXX VIII), Tetraria crinifolia, cuspidata (tab. LXXXIX), circinalis, fimbriolata
sylvatica, robusta, pieta (tab. XC), secans, thermalis, eximia, Boltloellii (tab. XCI),
coynpar, Thuarii (tab. XCII), pundoria, Mac-Oivanii (tab. XCIII), Mesomelaena
stygia, Gymnoschoenus adustus (tab. XC1V), Reedia spathacea (tab. XCV),

81] Cyperaceae. 81

Gahnia aspera, Gaudichaudii, javanica. Radula (tab. XOVI), psittacorum, melano-
carpa, pauciflora, tetragonocarpa (tab. XCVI1), setifolia (tab. XOVIII), Caustis
dioica (tab. XCIX), recurvata, pentandra, flexuosa (tab. C), Evandra pauciflora,
aristata, Arthrostylis aphylla (tab. CI), Oreolobus Pumilio, furcatus, Remirea
maritima (tab. CII), Hypolythrum pangens, strictum (tab. CHI), proliferum,
vitiense, africunum (tab. OIV), nudum, sphaerostachyum, supervacuum, condensatum
(tab. OV), laiifolimn, Wrightianum, turgidum (tab. CVI), micranthum, Jenmani,
TlioracostaehyumBancanum (tab. CV1I), floribundum, hypolytroides, Mapania
africana (tab. CVIII), palustris (tab. CIX), Wallichii, longiflora, longa (tab. CX),
sylvatua (tab. CXI), oblonga (tab. CXII), Schomburgkii, pycnocephala (tab. CXIII),
superba, Mannii (tab. CXIV), longifolia, baccifera (tab. CXV), Diplasia karatae-
folia, Scirpodendrum costatum (tab. CXVI), Mapaniopsis effusa (tab. CXVII),
Exocarya scleroides, Lepironia mucronata (tab. CXVIII), Chorisandra
sphaerocephala, enodis, multiarticulata, Cymbaria (tab. CXIX), Chrysithrix ca-
pensis, junciformis (tab. CXX), Scleria pergracilis, Liebmanni, distans (tab.
CXXI), catophylla, bulbifera, Purdiaei (tab. CXX1I), lithosperma und va.v.Roxburghii
(tab. CXXII1), corymbosa, Ridleyi (tab. CXXIV), pauciflora, Mackaviensis (tab.
CXXV). Motleyi (tab. CXX VI), biflora, flaccida (tab. CXX VII), Eookeriana (tab.
CXXVIII), sumatrensis, multifoliata (tab. CXXIX), stipidaris (tab. CXXX), mitis,
racemosa, testacea, verrucosa (tab. CXXXI), laüfolia, myriocarpa, angusta (tab.
CXXXII), cymosa, Merkeliana (tab. CXXXIII), Diplacrum africanum, caricinuni,
pygmaeum (tab. CXXXI V), longifolium var. robustior (tab. CXXXV), Hoppia
irrigua, microcephala (tab. CXXXVI), Lagenocarpus albo-niger, guianensis,
tremulus, rigidus var. Burchelli (tab. CXXXVII), Cryptangium Clausseni, lepto-
cladum (tab. CXXXVIII), Calyptrocarya fragifera, Everardia montana (tab.
CXXXIX), Eriospora pilosa, Reh manniana (tab. CXL), Schoenoxiphium
rufum, Sickmannianum, Ecklonü (tab. CXLI), Kobresia seticulmis, Hookeri,
Duthiei, sclioenoides (tab. CXLII), Royleana, laxa, macrantha (tab. CXLIII),
Carex sitchensis, atrata, picta, crinita (tab. CXLIV). Es ist ganz zweifellos,
dass die deutlichen und klaren Abbildungen allen denen, die sich mit dem
Studium der schwierigen Familie beschäftigen müssen, beim Erkennen der
Formen eine bedeutende Erleichterung gewähren werden. Bedauerlich ist nur
die recht kurze Behandlung der Gattung Carex- F. Fedde.

449. Cook, Theodore. Cyperaceae. (The Flora of the Residency of Bombay,
II, 1908, p. 851—906.)

Umfasst Vertreter der Gattungen : Cyperus, Kyllinga, Courtoisia, Fimbristylis,
Stenophyllus, Eleocharis, Scirpus, Eriophorum, Fuiretia, Hypolytrum, Rhynchospora,
Remirea, Scleria. Carex.

450. Fernald, M. L. Preliminary lists of New England plants.
— XXI. Cyperaceae. (Rhodora, X, 1908, p. 135—144.)

Siehe „Pflanzengeographie".

451. Figert, E. Carex paniculata X diandra f. robusta n. hybr. (Allg.
Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 149—150.) N. A.

452. Holm, T. Studies in the Cyperaceae. XXVI. Remarks on the
structure and affinities of some Dewey's Carices. (Amer. Journ. Sc, 4, XXVI,
1908, p. 478-492. 24 fig.)

Verf. gibt im Bot. Centrbl., CX, p. 204 '205 folgendes Autorreferat:
Dewey ist der Autor von etwa 80 Carex-A.rten, und einige davon sind
in späterer Zeit falsch aufgefasst worden. Seine Diagnosen waren nicht immer
so vollständig oder exakt, als sie sein sollten, und ausserdem sind verschiedene
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. (Gedruckt 6. 6. 10.1 6

g2 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [82

seiner Arten nur ärmlich in den Herbarien vertreten oder fehlen ganz. Zudem
werden in verschiedenen Herbarien diverse Exemplare fälschlich Dewey zu-
geschrieben, woraus sich weitere Schwierigkeiten ergeben, da gewisse amerika-
nische Autoren solche Exemplare als authentisch betrachteten, selbst wenn die
Diagnose lehrte, dass die Identifikation ganz falsch war. Dies gilt z. B. von
Material von C- Barbarae und petasata, von denen authentische Exemplare
sehr spärlich sind oder in Amerika fehlen, während andere vor Dewey selbst
so bezeichnet wurden, aber sicher zu anderen Arten gehören. Was C. Barbarae
betrifft, so ist die Diagnose klar genug, aber die Art scheint sehr selten zu
sein und ist nur aus Kalifornien bekannt. Verf. gibt eine genaue Beschreibung
mit Zeichnungen der Squamae und des Perigynium, ausserdem werden die
Arten besprochen, mit denen jene verwechselt wurde, wie z. B. C. nebraskensis,
dives, laciniata, amplifolia usw.

Eine andere Art Deweys ist C- magnifica, die viele Jahre mit sitchensis
verwechselt wurde. C. Schottii Dew. wurde häufig als Synonym zu C. Barbarae
gezogen, ist aber distinkt und wurde von Bailey als C. obrupta beschrieben.
C petricosa Dew. wurde nicht wiederentdeckt bis vor kurzem in den Bergen
von Alberta, Kanada. Es ist eine ausgezeichnete Art und gehört zur grex
Stenocarpae. Deweys C- mirata wurde teilweise unterdrückt und zu C. tricho-
carpa gezogen, ist aber in Wirklichkeit C- exsiccata Bailey, ein Verwandter von
C vesicaria. C. petasata Dew. endlich ist in Bootts Herbarium gut vertreten,
während in Torreys Herbar er unrichtig bestimmt oder mit C. lagopina, festiva
und Liddoni verwechselt wurde.

453. Holm, T. The history of Caricography. (The Ontario nat. Sc.
Bull., IV, 1908, p. 105-111.)

Über diese Arbeit berichtet Verf. im Bot. Centrbl., OVIII, p. 389—390
wie folgt:

Der Name Carex wurde schon von Virgil für eine Pflanze verwendet,
deren wahre Natur nicht sichergestellt worden ist. In der Botanischen Literatur
des 1 6. und 17. Jahrhunderts kommt der Name Ca rex nicht vor, obgleich den Schreibern
jener frühen Periode einige Arten der Gattung nicht ganz unbekannt waren. Cype-
raceae, Gramineae und andere Pflanzen mit grasartigen Blättern und mehr oder
weniger unansehnlichen Blüten wurden damals meist kritiklos miteinander zu einer
»huppe vermengt und als eine Art von Gras beschrieben, so dass sie gewöhn-
lich unter der Bezeichnung „Gramen" figurieren. Keine Carex-Arten werden
genannt in den Werken von Turner (1551), Tragus (1552), Dodonaeus (1583),
Camerarius (1586) oder Thalius (1538), wogegen Gerard (1597) einige wenige
Arten als Gramen und Cyperus beschreibt, so C. leporina (Gr. sylvaticum), C-
hirta (Gr. exile hirnus), C. piallescens (Gr. cyperinum) und C. riparia (Cyperus
typhinus).

Im 17. Jahrhundert findet wir einige Arten beschrieben von Dalechamps
(1615) als „Gramen cyperoides" und bei Tabernaemontanus (1625) als „Gramen"
zusammen mit Arten von Gramineen, Luzula, Stellaria, Armeria usw. Ferner
gibt es „Gramen" bei Parkinson (1640) und Ray (1688).

Tournefort (1700) hat Carex und Eriophorum als ,, Cyperoides'- unter-
schieden von ,, Gramen".

Erst im 18. Jahrhundert wurde Carex Genusname durch Ruppius (1726)
and Micheli (1729), bis endlich Linne den Versuch machte, 40 Arten von Carex
zu beschreiben und zu klassifizieren. Linnes Einteilung, obgleich künstlich,

83] Cyperaceae. 83

ist noch im Gebrauch und wurde der Grund der drei grossen Sektionen: Mono-,
Homo- und Heterostachyac.

Fast ein Jahrhundert nach Linne stellte Beauvais (1819) das Genus
Vignea auf. das jetzt nur als Sektion behalten wird. Im Anfang des 19. Jahr-
hunderts begannen Spezialisten das Studium von Carex, wie Booth, Carey,
Dewej, Kunth, Schkuhr und Wahlenberg. Tuckermann (1843) hat zuerst die
Arten in natürlicher Weise arrangiei-t, gab aber keine Gruppendiagnosen.
Dann haben wir in Drejers posthumem Werk „Symbolae caricologicae" eine
ausgezeichnete natürliche Klassifikation.

Die äussere Morphologie der Rhizome wurde erklärt durch Wydler (1844),
A. Braun (1853), Celakovsky (1864), wogegen Kunth (1835) eine Erklärung des
Utricuhis gab, welcher nach ihm, Roeper und Eichler ein einzelnes Vorblatt
darstellen sollte, wogegen Schumann (1890) zeigte, dass bei einigen Arten zwei
Blattprimordien entwickelt werden.

Die Anatomie behandelten Schwendener (1874—1889), Laux (1887),
Marzel (1891) u. a.

Die geographische Verbreitung ist nur von wenigen Autoren besprochen
worden.

414. Lambert, L Sur quelques Carex du Berry. (Bull. Acad.
Geogr. bot., XVIII, 1908, p. 339—342.) N. A.

Die neuen Formen siehe im „Index nov. gen. et spec.".

455. Leveille, H. Carex japonica et Carex Morowii. (Bull. Acad. Geogr.
bot, XVIII. 1908, p. 447—448.)

456. Leveille. H. Carices novae Coreanae. (Rep. spec. nov., V, 1908,
p. 239—241.) X. A.

457. Maokenzie, Kenneth Kent. Notes on Carex — IV. (Bull. Torr. Bot.
Club. XXXV. 1908, p. 260—270) N. A.

Betrifft Carex phaeocepJtala Piper, C. leporina, C. scirpoidea Mchx., sowie
einige neue Arten. Vgl. „Index nov. gen. et spec".

458. Palla, Ed. Neue Cyperaceen. III. Heleocharis Usterii. IV. Cyperus
columlnensis, Fimbristylis mexicana, Chlor oey per us mexicanus. (Ostr. Bot. Zeitschr.,
LVIII, 1908, p. 60, 389—392.) X. A.

459. Palla, Ed. Über Hemkarpha. (Östr. Bot Zeitschr., LVIII, 1908,
p. 417—422, tab. X.)

Verf. hatte Gelegenheit, zwei Arten zu untersuchen und stellte definitiv
fest, „dass Hemicarpka tatsächlich eine Chlorocy.peree ist und der Bau ihrer
.Ahrchen'-Spindel genau übereinstimmt mit dem Bau der Köpfchenspindel
von Lipocarpha, Platylepis und Kyllingia". ^Hemicarpha besitzt mit einem Vor-
blatt versehene, deckblattlose, einblütige, zu Köpfchen angeordnete Ährchen".
Verf. stimmt somit mit Holm (1899) überein.

459 a. Palla, E. Cyperaceae. in Rechinger, Bot. u. Zool. Ergebn. Wissen-
schaftl. Forschungsr. Samoa. (Denkschr. Akad. Wien, LXXXIV, 190S, p. 450
bis 455.)

Vgl. ..Pflanzengeographie".

460. Rover, Eugene. Monographie des Cyperacees de la Haute-
Marne. (Bull. Soc. Sei. Nat Haute-Marne, IV, 1907, No. 13—17.)

Nicht gesehen. Vgl. „Pflanzengeographie v. Europa".

461. Williams. Frederic X. The european varieties of Carex canescens.
(Journ. of Bot, XLVI, 1908, p. 369—376.) X. A.

Siehe „Pflanzengeographie von Europa-'.

6*

34 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [34

Dioscoreaceae.

Neue Tafel:
Dioscorea dumetonim Pax in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 21.

462. Prain, D. et Bnrkill, J. H. Dioscorearum novarum descriptiones
quaedem. (Journ. and Proc. asiatic. Soc. Bengal, N. S., IV, 1908, p. 447 — 457.)

N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

402a. Reiche, Karl. Zur Kenntnis der Dioscoreaceen-Gattung
Epipetrum Phil. (Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908, p. 178—190.) N. A.

Verf. behandelt nach einer kurzen Einleitung zunächst die „Morphologie
der äusseren lind inneren Gestaltung". Die Samen keimten schon nach vier
Wochen. Die Primärwurzel stirbt nicht ab, sondern gibt einer die Stamm-
knospe tragenden Knolle Entstehuni;-. Wenn diese etwa erbsengross ist,
stirbt der über ihr befindliche Teil der Wurzel und das Priniärblatt ab. Im
Innern zeigt sie ein mehrschichtiges Periderm, auf das, durch Parenchym-
lagen getrennt, ein zartes Cambium folgt; der Rest ist mit Grimdparenchym
gefüllt, das nach allen Richtungen von Gefässbündeln durchzogen wird.

Der Stengelbau ist der für die Familie typische. Im Blattbau zeigen
sich, besonders bei E. Iiumile, Komplikationen. Zahlreiche Epidermiszellen
der Oberseite ragen warzenförmig hervor, und Verf. will noch untersuchen,
ob hier etwa eine Art Lichtsinnesorgane vorliegen. Das Mesophyll zeigt eine
Palissadenschicht und kugelige Schwammparenchymzellen, zwischen denen
tonnenförmige, chlorophyllfreie Zellen mit Raphidenbündeln liegen, wie sie in
allen Geweben der Pflanze sich finden. Spaltöffnungen sind beiderseits vor-
handen, ihnen fehlen Nebenzellen, sie besitzen aber etwas eingesenkte, aus
vier bis sechs in zwei Stockwerken angeordneten Zellen bestehende, ellipsoidische,
am Grunde stielartig verschmälerte Trichoine.

Die (5 Blütenstände sind Schraubein mit lang und dünn gestielten
Einzelblüten, die £ Blüten stehen zu ein- bis drei-köpfig gedrängt am Ende
der Inflorescenzachse oder einzeln. Die Blüte zeigt das bekannte Dioscoreaceen-
Schema. Bezeichnend ist, dass in den <$ Blüten der obere Griffel und Narben
umfassende Teil der Gynaeceums, dessen unterer Teil (Fruchtknoten) gänzlich
unterdrückt ist, so stark entwickelt ist, dass das $ Perigon unterständig wird.

Verf. behandelt dann noch kurz Ökologie, geographische Verbreitung
und die Systematik und gibt folgenden Artenschlüssel:

Lamina suborbicularis. Folia alterna.

Lamina pellucide punctata epidermide papulosa exornata E. hutnile
Lamina crasse opaca papillis destituta. Oaulis intricato-ramosus.
E. polyanthes.

Lamina latior quam longior. Folia fasciculata. E. bilobum.

Eriocaulaceae.

Neue Tafel:
Mesanthemum radicans Koern. in Thonner, Blütenpflanzen, 1908, tab. 15.

463. Beauverd, Gustave. Eriocaulonaceae in Plantae Brasilienses etc.,
suite VII. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 283—299, Fig. IX -XII.)

Eriocaulon-, Paepalanthus- und Leiothrix- Arten. N. A.

464. Beauverd, Gustave. Eriocaulonacees du Bresil. (Bull. Herb.
Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 987-988, Fig. 1.) N. A.

Zwei neue Eriocaalon-Avten.

^5| Dioscoreaceae. Eriocaulaceae. 85

465. Cook, Theodore. Eriocaulaceae in The Flora of the Presidency of
Bombay, II, 1908, p. 841—851.

Umfasst 15 Arten.

466. Lecomte, Henri. Procedes de dissemination des fruits et
des graines chez les Eriocaulacees. (Journ. de Bot, 2. ser., 1, 1908,
p. 130—136, Fig. 1—3.)

Siehe „Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen".

467. Lecomte, Henri. Especes nouvelles d'Eriocaulon de l'Indo-
Ohine. (Journ. de Bot., XXI [ser. 2, I], 1908, p. 101 — 109, Fig. 1—3.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

Verf. bespricht zunächst die Nektarien und Blütenschäfte.

Die als Drüsen bezeichneten Nektarien stellen sich bei genauer Unter-
suchung als eine Art dicker eiförmiger vielzelliger Haare dar, die auf der
Oberfläche einer Petale angeheftet sind. Die Zellen sind viel kleiner als die
des Blattparenchyms und stark konvex nach aussen. Jede Zelle enthält einen
voluminösen Kern mit einem tiefbraun gefärbten protoplasmatischen Inhalt.
Diese Nektarien finden sich nicht nur auf den Petalen der $ Blüten, sondern
auch, oft sehr reduziert, auf den petaloiden Lappen der (J Blüten. Die
Nektarien scheiden eine zuckerartige Masse aus, welche wohl zur Anlockung
von Insekten dient.

Wichtig für die Systematik scheint die Blütenschaftstruktur. Äusserlich
zeigen diese Schäfte Kippen, deren Zahl jedoch bei derselben Art schwanken
kann. Die Struktur, welche im Querschnitt zutage tritt, erscheint dagegen
sehr bezeichnend. Verf. deutet jedoch nur auf einzelnes hin, ohne eine allge-
meine vergleichende Untersuchung zu unternehmen.

468. Lecomte, Henri. Les Eriocaulacees de Madagascar. (Bull. Soc.
Bot. France, LV, 1908, p. 570—573, 643-648.) N. A.

Siehe „ Pflanzengeographie ".

469. Lecomte, Henri. Eriocaulacees d'Afrique. (Bull. Soc. Bot.
France, LV, 1908, p. 594-602, Fig. 1—2.) N. A.

Neue Arten von: Paepalanthus, Syngonanthus, Mesanthemum.

470. Lecomte, Henri. Eriocaulacees de Chine et d'Indo-Chine de
l'Herbier du Museum. (Journ. de Bot., XXI [ser. 2, 1], 1908, p. 86—94.)

Verf. gibt folgende Übersicht der Arten:

A. Especes appartenant au type dimere: longifolhun, nipponicum.

B. Especes appartenant au type trimere.

a) Tige allongee, couverte de feuilles setaeees sur toute sa longueur
setaceum, intermedium.

b) Tige un peu allongee, feuillee au sommet seulement, antheres jaunes

miserum-

c) Tige tres courte.

-4- Antheres claires fluviatile.
-j- Antheres sombres.

O Hampes velues austräte.
O Hampes glabres.

Q Un sepale enroule sur lui-meme nautilifonne.
G Pas de sepale enroule.

A Petales glanduleux: gracile, Hookerianum, Brownianum, quin-

quangulare, nigrum, alpeitre, Burguerianwm, Henryanum.
A Pas de glandes: Colletlii, ubonense, orgzetorum.

86 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. jgß

C. Especes typiquement trimeres, avec reduction du nombre des sepales ou
des petales, on absence de i'un ou de l'autre.
-f- Anthures claires.
O Des petales Boni.
O Pas de petales Sieboldianum.
-j- Antkeres sombres.

O Bractees florales longues et aigues echinulatum.
O Bractees florale non longue et aigues Duthiei, truncatum, sexangulare,
odoratum, nigrum.

Gramineae.
Neue Tafeln:

Andropogon Buchanani Stapf in Wood, Natal plants, V, 1008, pl. 468. A. distachyus
L. in Wood, 1. c, pl. 465. A. pertusus Willd. var. cap>ensis Hack, in Wood,
1. c, pl. 466. A. Schimperi Höchst, in Wood, 1. c, pl. 467. A. Schlechten
Hack, in Wood, 1. c, pl. 499. A. Irans vaalensis Stapf in Wood, 1. c,
pl. 496. Agrostis suavis Stapf in Wood, 1. c, pl. 497. Aristida barbicollis
Irin, in Wood, 1. c, pl. 401. A. bipartita Trin. and Rupr. in Wood, 1. c,
pl. 483. A- congesta Trin. and Rupr. in Wood, 1. c, pl. 484. .4. vestita
Thb. in Wood, 1. c, pl. 402. Arundinaria alpina K. Schum. in Ann.
Mus. de Oongo, II, fasc. III, 1908, tab. LXXXI— LXXXIII. A. alpina
K. Schum. in Engler-Drude, Veget, d. Erde, IX, II, 1908, tab. VI (Vege-
tationsbild). Brachypodium flexum Nees in Wood, 1. c, pl. 462. Briza
minor L. in Wood, 1. c, pl. 494. Bromus leptocladus Nees in Wood, 1. c,
pl. 459. B. maximus Desf. in Wood, 1. c, pl. 458. B. natalensis Stapf
in Wood, 1. c, pl. 460. B. unioloides H. B. K. in Wood, 1. c, pl. 461.
Calamagrostis Huttonae Hack, in Wood, 1. c, pl. 482. Chloris gayana Kth.
in Wood, 1. c, pl. 437. Gh. Gayana Kunth in Thonner, Blütenpflanzen
Afrikas, 1908, tab. 8. Ch. petraea Thb. in Wood. Natal plants, V, 1908,
pl. 438. Ch. pycnothrix Trin. in Wood, 1. c, pl. 435. Ch. virgata Svvartz
in Wood, 1. c, pl. 436. Crossotropis grandiglumis liendle in Wood, 1. c,
pl. 443. Ctenium concinnum Nees in Wood, 1. c, pl. 433. Cynodon
dactylon Pers. in Wood, 1. c, pl. 430. Cyperus Papyrus L. in Engler-
Drude, Vegetat. der Erde, IX, II, 1908, tab. IX (Vegetationsbild).
Dactyloctenium aegyptiacum Willd. in Wood, Natal plants, V, 1908, pl. 441.
Digitaria debilis Willd. in Wood, 1. c., pl. 469. D. flaccida Stapf in
Wood, 1. c, pl. 470. Diplachne biflora Hack, in Wood, 1. c, pl. 411.

D. Eleusine Nees in Wood, 1. c, pl. 489. D. fusca Beauv. in Wood,
1. c, pl. 410. Ehrharta calycina Sm. in Wood, 1. c, pl. 447. E. erecta
Lam. var. natalensis Stapf in Wood, 1. c, pl. 446. Eleusine corocana
Gaertn. in Wood, 1. c, pl. 410. E. indica Gaeitn. in Wood, 1. c, pl. 439.
Eragrosiis aspera Nees in Wood, 1. c, pl. 424. E- Atherstonei Stapf in
Wood, 1. c, pl. 426. E. brizoides Nees in Wood, 1. c, pl. 422. E. caesia
Stapf in Wood, 1. c, pl. 412. E. chalcantha Trin. in Wood, 1. c, pl. 418.

E. Chapellieri Nees in Wood, 1. c, pl 417. E. chloromelas Steud. in
Wood, 1. c, pl. 414. E. ciliaris Link, in Wood, 1. c, pl. 428. E. cur-
vula Nees var. valida Stapf in Wood, 1. c, pl. 413. E. gangetica Steud
in Wood, 1. c, pl. 419. E. gummiflua Nees in Wood, 1. c, pl. 425.
E- heteromera Stapf in Wood, 1. c, pl. 490. E. Lappula Nees in Wood,
1. c, pl. 423. E. major Host, in Wood, 1. c, pl. 420. E. namaquensis
Nees var. robusta Stapf in Wood, 1. c , pl. 429. E. nebulosa Stapf in

g7| Urainineae. 87

Wood, 1. c. pl. 415. E. plana Nees in Wood, 1. c, pl. 41(3. E. paten-
tissima Hack, in Wood, 1. c, pl. 427. E. siqwba Peyr. in Wood, 1. c.
pl. 421. Festuca costota Nees in Wood, 1. c, pl. 456. F. rubra L. rar.
shnpliciuscida Hack, in Ark. f. Bot., VII. 1908, No. 2, tab. 2. fig. 2.
F. scabra Vahl. in Wood. Natal plants, V, 1908, pl. 457. Finqerhuthia
sesleriaeformis Nees in Wood, 1. c, pl. 451. Harpechloa capensis Kth. in
Wood. 1. c, pl. 434. Hierochloe pusilla Hack, in Ark. f. Bot., VII, 1908,
No. 2, tab. 1, fig. 1, Tab. 7, fig. 1. Holcus lanatus L. in Wood, Natal
plants, V, 1908, pl. 481. Ischaemum Franksae J.M.Wood in Wood, I.e.,
pl. 500. Leersia hexandra Sw. in Wood, 1. c, pl. 445. Leptocarydion
Vulpiastrum Stapf in Wood, 1. c, pl. 442. Lolium multifiorum Larn. in
Wood, 1. c, pl. 495. L- temulentum L. in Wood, 1. c, p. 463. Macrochloa
tenacissima Kth. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 36
( Vegetationsb.). Melka racemosa Thb. in Wood, Natal plants, V, 1908,
pl. 450. Microchloa altera Stapf var. Nelsoni Stapf in Wood, 1. c, pl. 432.
M. caffra Nees in Wood, 1. c, pl. 431. Olyra latifolia L. in Wood, 1. c,
pl. 464. Oxytenanthera abyssinica Mnnro in Engler-Drude, Vegetat. der
Erde, IX, II, 1908, tab. VII (Vegetationsbild). Panicum arrectum Hack,
in Wood, Natal plants, V, 1908, pl. 471. P. capillare L. in Wood, 1. c.
pl. 498. P chusqueoides Hack, in Wood, 1. c, pl. 478. P Crus-galli L.
in Wood. 1. c, pl. 473. P. cwvatum L. in Wrood, 1. c, pl. 475.
P hyineniochünm Nees var. glandulosum Nees in Wood, 1. c, pl. 476.
P. miliare Lam. in Wood, 1. c, pl. 474. P. perlaxum Stapf in Wood,
1. c, pl. 477. P pyramidale Lam. in Wood, 1. c, pl. 472. P. stagnium
Koen. in Wood, 1. c, pl. 492. Pennisetum typhoideum Rieh, in WTood.
1. c, pl. 480. Perotis latifolia Ait. in Wrood, 1. c, pl. 403. Plialaris
arundinacea L. in Wood, 1. c, pl. 449. Fh. minor Retz. in Wood, 1. c,
pl. 448. Poa annua L in Wood, 1. c, pl. 455. P. binata Nees in Wood,
1. c, pl. 454. P Dusenii Hack, in Ark. f. Bot., VII, 1908, tab. 3, fig. 1,
Tab. 7, fig. 3. P subenervis Hack, in Ark., I. c, tab. 2, fig. 3, Tab. 7, fig. 2.
P litorosa Kew Bull., 1908, tab. ad p. 237 (Habitusbild). P trivialis L.
in Wood, Natal plants, V, 1908, pl. 453. Pogonarthria falcata Rendle in
Wood, 1. c, pl. 409. Potamophila prehensilis Bth. in Wood, 1. c, pl. 444.
Sasa kurilensis Mak. et Shib. in Myioshi, Atlas Jap. Veget., set. X, 1908,
tab. 73. Setaria aurea A. Br. in Wood, Natal plants. V. 1908, pl. 479.
Sporobokis centrifugum Nees in Wood, 1. c, pl. 406. Sp. festirus Höchst,
var. stuppeus Stapf in Wood, 1. c, pl. 405. Sp. fmbriatus Nees in Wood,
1. c, pl. 486. Sp. indicus R. Br. in Wood, 1. c, pl. 408. Sp. pungens
Kth. in Wood, 1. c, pl. 487. Sp. Rehmanni Hack, in Wood, 1. c , pl. 407.
Sp. subtilis Kth. in Wood, 1. c, pl. 488. Stiburus alopecuroides Stapf in
Wood, 1. c. pl. 452. Stipa Dregeana Steud. in Wood. 1. c. pl. 485.
S. hirtiflora Hack, in Ark. f. Bot, VII, 1908, tab. 3, fig. 7, Tab. 7. fig. 4
et 5. Tragus racemosus All. in Wood, Natal plants, V, 1908, p. 404.
Triraphis Rehmanni Hack, in Wood, 1. c, pl. 491. Yidpia Myi<ros Gmel.
in Wood, 1. c. pl. 493.

471. Ball, C. R. and Leidigh. A. H. Milo (Sorghum-variety) as a
dryland grain crop. (Bull. Dept. Agric. Washington, 1908, 23 pp., 9 fig.)

Siehe Agrikultur.

472. Begninot, A. Revisione delle Glyceria della sezione Atropis
appartenenti allaflora italiana. (Bull. Soc. Bot. Ital., 1908, p. 50—67.) X. A.

88 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [88

Bei der Unsicherheit der Angaben über das "Vorkommen von Glgceria-
Arten in Italien unternahm Verf. eine Eevision der zur Sekt. Atropis der ge-
nannten Gattung gehörigen Arten an der Hand von 10 Herbarien und fand,
dass alle Angaben sich auf eine einzige, polymorphe Art zurückführen lassen,
G. distans (L.) Wahlb. Die Gliederung derselben wäre:
Glyceria R. Br.

sect. Atropis Trin. ap. Rupr.

sp. G. distans Wahlb. Fl. Ups. (1820). p. 36.
subsp. I. G. distans Wahlb. s. strict.
subsp. II. G. psendodistans Crep.
subsp. III. G. Borreri Bab. mit

var. a) typica (G. permixta Guss. p. p.), n. var. b) parviflora
Beg. (Gr. permixta Guss. p. p.), n. var. c) midtiftora Beg.,
n. var. d) Summiert Beg. (Gr. festucaeformis Somm., G.
maritima Somm.);
subsp. IV. G. Gussonei Nym.
subsp. V. G- Parlatorei Beg. n. subsp.
subsp. VI. G. festucaeformis Heyn, in Reichb., mit

var. a) typica, var. b) convoluta Beg. (sub Poa Hornm., sub
Festuca Knth.), n. var. c) sardoa Beg. (Gr. distans Genn.,
Festuca psendodistans Aschrs. et Grbn.).
Zu jeder der einzelnen Formen werden die typischen Herbarbelege für
die verschiedenen Provinzen Italiens angeführt. — Auszuschliessen ist aus der
Flora Italiens: subsp. G. maritima Wahlb. Fl. Gothol. (sub Poa Huds.).
Aus den Betrachtungen ergibt sich weiter:

1. G. distans, typisch, ist in Italien nur vereinzelt, besonders in Oberitalien
sporadisch, aber doch vertreten.

2. Gr. psendodistans ist nur von zwei Standorten in Istrien bekannt. Ihre
Beziehungen zu G. Borreri wären noch näher zu untersuchen.

3. G- Borreri und Gf. festucaeformis sind die beiden in Italien am meisten
verbreiteten Unterarten, welche darum auch eine grosse Anzahl von
Formen (Varietäten) aufweisen.

4. G. Gussonei Pari., bisher bloss aus Sizilien bekannt, ist mit Gr. festucae-
formis sehr affin, dagegen ist G- permixta Guss. zum Zyklus von Gr. Borreri
Bab. zu beziehen. Nähere Untersuchungen sollten klarlegen, ob auf
Sizilien nicht noch andere Unterarten, bzw. der Typus, vorkommen.

5. G- Parlatorei, mit G. distans verwandt, und anderseits mittelst G. convo-
luta an G. festucaeformis anknüpfend, ist in Mittel- und Süditalien ver-
breitet. Solla.
Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

473. Beguinot, A. Sülle Glyceria del gruppo Atropis nella flora
italiana. (Bull. Soc. Bot. Ital., p. 29, Firenze 1908.)

Siehe oben.

474. Bennett, A. Calamagrostis strigosa Hartm. (Ann. scottish nat. Hist.,
1908, 66, p. 124.)

Nicht gesehen.

475. Blaringhem, L. Recherches sur les hybrides d'Orges [Hor-
deum]. (C R. Acad. Sei. Paris, XXL VI, 1908, p. 1293—1295).

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

89] Gramineae. g9

476. Blauvv, A. H. Onderzoekingen omtreut de betrekking tus-
schen lichtsterke en belichtingstijd bj phototropische krommingen
san kiemplantjes van Arena sativa. (Versl. kon. Ak. Wet. Amsterdam.
1908, p. 203—207.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

477. Böhmer, G. Über die Systematik der Hafersorten sowie über
einige züchterisch wichtige Eigenschaften der Haferrispe. Diss. Giessen,
1908, 88 pp.

Siehe Agrikulturbotanik und im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

478. Bolin, P. Svenska Gräsarters Frön afbildade och i en
skematisk översigt beskrifna. Stockholm, 1907, 8°, 22 pp., 19 Taf.

Nicht gesehen.

479. Broili, J. Das Gerstenkorn im Bilde. Stuttgart, E. Ulmer.
1908, 56 pp., 24 Abb.

Nicht gesehen.

480. Bruschi, Diana. Researches on theVitality and Self-digestion
of the Endosperm of sorae Graminaceae. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 449
bis 463.)

Siehe im „Physiologischen Teile" des Jahresberichtes.

481. Burtt-Davy, J. Para grass (Panicum muticum). (Transvaal agric.
Journ., VIT, 1908, p. 70.)

Nicht gesehen.

482. Chase, Agnes. Notes on the cleistogamy of grasses. (Bot.
Gaz., XLV, 1908, p. 135—136, 5 fig.)

Siehe unter „Befruchtungs- und Ansäungseinrichtungen".

483. Chase, Agnes. .Notes on genera of Paniceae. TU. (Proc. biol.
Soc. Washington, XXI, 1908, p. 175—188, 1 pl., 5 fig.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

484. Chase, Agnes. Panicearum genera ac species aliter disposita. II.
(Rep. spec. nov., V, 1908, p. 305-306.)

Ex: Proc. Biol. Soc. Wash., XXI, 1908, p. 1-10.

485. Chiovenda, E. Poaceae novae in Ruwenzori Africae monte
collectae. (Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 179—180.)

Ex: Ann. di Bot., V, 1907, p. 147—148.

486. Chiovenda, Emilio. Graminaceae somalienses novae. (Rep. spec.
nov., VI, 1908, p. 5—7.)

Ex: Ann. di Bot. ed. Pirotta, V, 1906, p. 59—68.

487. Cook, Theodore. Gramineae. (The flora of the Presidency of Bombay,
II, 1908, p. 907—1052.)

Gmfasst Vertreter von 72 Gattungen.

488. Dix, W. Über die Entstehung eines Squarehead bei Tritkum
twrgidum, Weizen. III. (Landw. Ztg., 1908, p. 837—838, 2 Abb.)

Auffindung einer Knospenvariation: keulige Ähre bei Triticum turgidum,
hohe Erbzahl.

489. Donnues, H. Drei deutsche Hafersorten und einige Be-
sonderheiten des Rispenhafers. Breslau 1908, 8°, 152 pp., 7 Taf.

Siehe Agrikultur.

490. Evans, G. Varieties of wheat grown in the Central Pro-

90 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [90

vinces and Bear. (Dept. Agric. Central Provinces and Bear, 1908, 29 pp.,
2 pl., 1 map.)

Siehe Agrikultur.

491 . Fernekess, K. Die Haferrispe nach Aufbau und Verteilung
der Kornqualitäten (Korngewichte und Spelzengehalte). Diss.
München, Techn. Hochschule, 1908, 8°, 106 pp., 5 Taf.

Siehe Agrikultur usw.

492. Fruhwirth, C. Der Ackerfuchsschwanz (Alopecurus agrestis L.).
(Arbeiten der Deutschen Landwirtschaftsgesellschaft, Heft 136: Die Bekämpfung
des Unkrautes, 2. Buch, Berlin 1908, 22 pp., mit 2 Textabbildungen und
6 Bildertafeln.)

Die Ackerbauabteilung der Deutschen Landwirtschaftsgesellschaft gibt
die Geschichte, Beschreibung und Bekämpfung der einzelnen Unkräuter Deutsch-
lands in kleinen Heften heraus. Den Anfang bildet die botanische Beschreibung
und das Leben der Pflanze. Weiter werden die Ansprüche an die Wachstums-
bedingungen geschildert, sodann die örtliche Verbreitung der Pflanze. Es
folgt dann der Einfluss, den die Hauptfrüchte und deren Anpflanzung auf
die Verbreitung und Entwickelung des Ackerfuchsschwanzes ausüben. Den
Schluss bilden Bekämpfung, Verwendung und Ergebnisse. F. Fedde.

493. Frahwii'tl), C. Die systematische Einteilung und Benennung
der Getreidesorten für praktische Zwecke. (Fühlings landw. Ztg., LVII,
1908, p. 121—132.)

Siehe Agrikultur.

494. Güthrie-Smith, H. The grasses of Futira. (Trans, and Proc.
New Zealand Inst., XL, 1908, p. 506-519.)

Vgl. Pflanzengeographie.

495. Hackel, E. Une nouvelle Graminee coreenne [Festuca Fauriei
Hack.]. (Bull. Acad. Int. Geogr. Bot., XVIII, 1908, p. 348.) N. A.

496. Hacke], Eduard. Gramineae novae turkestanicae. (Rep. spec.
nov, VI, 1908, p. 51—54.)

Ex: Act, Hort. Petrogr., XXVI, 1906, p. 55—60.

497. Hackel, Eduard. Gramineae novae. V. (Rep. spec. nov., VI, 1908,
p. 153-161) N. A.

Originaldiagnosen.

498. Hackel, Eduard. Gramineae novae. III. (Paspalum Usterii Hack.),
IV (Phalaris stenoptera Hack.). (Rep. nov. spec, V, 1908, p. 1-2, 333—335.)

N. A.

499. Hackel, E. Gramineen, In: K. Rechinger, Bot. u. Zool. Ergeb-
nisse einer wiss. Forschungsreise nach den Samoainseln, dem Neuguinea-
Archipel und den Salomonsinseln. (Denkschr. kais. Akad. Wiss. Wien, LXXXI,
1907, p. 300—305.)

Vgl. ..Pflanzengeographie". Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

500. Hitchcock, A. S. Types of american grasses: A Study of the

American Species of Grasses described by Linnaeus, Gronovius'Sloane, Svvartz,

and Michaux. (Oontr. U. St. Nat. Herb.. XII, 1908, p. 111 — 150, IV u. V pp.)

N. A.
Umfasst nach der Einleitung:

1. The American Grasses described by Linnaeus.

2. The grasses of Gronovius Flora Virginica.
:'>. The grasses of Sloane's History of Jamaica.

91] Gramineae. 91

4. The West Indian Grasses described by Swartz.

5. The grasses of Michaux's Flora Boreali-Americana.

6. List of new names and those replacing names in current use.

501. Hitcheock, A. S. Agrostis genus novis speciebus Americae
septentrionalis auctum. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 356 — 359.)

Ex: U. S. Dept. of Agric, Bureau of Plant Ind. — Bull. no. 68. 1905.

502. Holm. Theo. Studios in Gramineae: IX. The Gramineae of the
alpine region of the Rocky Mountains of Colorado. (Bot. Gaz., XLV1.
1908, p. -422—144, 5 figs., pl. XXX.)

Siehe „Anatomie".

503. Holmberg, Otto R. Studier öfver Släktet Atropis, 1—2. (Bot.
Not, 1908, p. 245—256.)

Betrifft A- suecica sp. nov. und A- distans (L.) Grisb. X suecica Holmb.
= A. elata Holmb. und Formen.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

504. Houzeau de Lehaie, Jean. Rapport sur le de veloppement des
Bambous en Belgique en 1907 et leur etat en avril 1908. (Bambou, II.
1908, p. 271—294, planche XVI— XXVI.)

Viele interessante Details mit Abbildung von Kulturpflanzen.

505. Houzeau de Lehaie, Jean. A la recherche de Phyllostachys nidu-
laria Munro. (Bambou, II, 1908, p. 267—268.)

Verf. konnte diese Art noch nicht klären und verspricht weitere Unter-
suchungen.

506. Houzeau de Lehaie, Jean. Contribution ä l'etude du processus
de la Vegetation chez les Bambusacees, fin. (Bambou, II, 1908, p. 263
bis 267.)

Verf. sagt zum Schluss dieser Betrachtung über die Blütenentwickelung:
Voici d'ailleurs la repartition de quelques especes entre les 5 modalites
que nous avons pu observer jusqu'ici.

1. Epis terminaux, floraison en masse. ä longs internales, plantes non
monocarpiennes: les Phyllostachys (sans doute toutes les especes et
varietes), les Arundinaria japonica, macrosperma, marmorea, Simoni, et
varietes.

2. Epis terminaux, floraison en masse, ä longs intervalles, plantes mono-
carpiennes: tous les Arundinaria cespiteux asiatiques tels que A. falcata

(type) (I), Falconeri. gracilis, Hookeriana. intermedia, khasiana, etc

Bambusa spinosa arundinacea.

3. Epis axillaires, floraisons sporadiques annuelles. plantes non mono-
carpiennes: tout le genre Sasa (especes et varietes).

4. Epis terminaux, floraisons sporadiques, annuelles plantes non mono-
carpiennes: Arundinaria auricoma.

5. Epis axillaires floraisons sporadiques, ä intervalles plus ou moins longs,
plantes non monocarpiennes: Dendrocalamus macroculmis, Bambusa vulgaris,
Arundinaria variabilis et ses varietes.

507. Houzeau de Lehaie, Jean. L'Introduction, l'acclimatation et la
culture des Bambous äl'Ouest de l'ancien continent et notamment
en Belgique. (Bambou, II, 1908, p. 227—262, planches V— XV.)

Der Inhalt gliedert sich wie folgt. Die Tafeln zeigen diverse Habitus-
und Gartenbilder.

Chapitre I. lntroduction. — Definitions.

92 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [92

Chapitre II. Notice historique. — Importations. Soins de culture donnes
ä l'epoque des premieres introductions. — Premiers essais de vulgarisation. —
Action des livres et de la presse periodique.

Chapitre III. Collections d'institutions et de jardins publics.

Chapitre IV. Quelques collections particulieres et collections d'horti-
culteurs.

Chapitre V. Cultures dans un but commercial.

Chapitre VI. Notions sur le climat de la Belgique.

Chapitre VII. Expose de nos essais en Belgique. — Nos importations.
— Principes de culture en Belgique. Notions de biologie.

Chapitre VIII. Conclusion.

508. Icllimnra, T. An analytical key to gener a and species of
Japanese Graminae. (Bot. Mag. Tokyo, XXII, 1908, p. [345], [386] und [416].
Japanisch.)

509. Jowitt, J. F. Note on Dr. Otto Stapf's Nomenclature of
Cymbopogon Xardus Rendle, and C. confertiflorus Stapf. (Ann. Bot. Gard.
Peradeniya, IV, pt. IV, p. 185—193.)

Verfasser gibt viele Details zu Stapfs Darlegungen und verzeichnet die
Unterschiede der .Sorten „Maha-pangiri", „Lana-batu" und „Mana".

510. KaAvamura, S. Über die Flecken- und Buntbambuse. (Journ.
Coli. Sc. imp. Univ. Tokyo, XXIII, 1907, 11 pp., 5 Taf.)

Siehe „Pflanzenkrankheiten".

511. Kiessling, L. Einige Beobachtungen über Weizen Variationen.
(Fühlings landw. Ztg., LVII, 1908, p. 737—759.)

Siehe „Agrikultur".

512. Kneucker, A. Bemerkungen zu den „Oranüneae exsiccatae".
XXIII u. XXIV. Lief. 1908. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 62—64. p. 77
bis 79, 93—94, 137—138, 160—161.) N. A.

513. Koorders, S. H. Bijdrage No. 1 tot de Kennis der Flora van
Java. § 6. N ädere gegevens over Oreiastachys Pullei Gam ble. (Verslag
van de Gewone Vergad. Wis-en Natuurk. Afd. Kgl. Akad. v. Vetensch. Amster-
dam, XVII [1908], p. 127—129.)

Vgl. unter „Pflanzengeographie".

514. Koorders, S. H. Over Oreiostachys Gamble, een door Dr. A. Pulle
in Java op 1600 meter zeehoogte verzameld nieuw geslacht der
Gramineae — Bambuseae. (Verslagen der Afdeeling Natuurk., Dl. XVI, Jahrg.
1907/08, pp. 653-658.) N. A.

515. Krogiiiann. Über die Bestimmung des Tausendkorn-
gewichtes und des Spelzanteiles bei Hafer [Avena]. (Fühlings landw,
Ztg., 1908, p. 258-262.)

Siehe „Agrikultur".

516. Kuntz. Bastard oder Zwischenform oder selbständige Art
von Calamagrostis Epigeios? oder ?. (Beih. Bot. Centrbl., XXIII, 2, 1908, p. 334
bis 340, tab. XIX.)

Siehe „Varietäten, Descendenz usw.".

517. Leeke, Panl. Neue Arten der Gattung Pennisetum. (Rep. spec.
nov., V, 1908, p. 66—76.)

Aus Leeke: Untersuchungen über Abstammung und Heimat der Neger-
hirse. Zeitschr. f. Naturw., LXXIX, 1907, p. 1—108.

93 1 Gramineae. 93

518. Leeke, Paul. Untersuchungen über Abstammung und Heimat
der Negerhirse (Pennisetum americanum [L.] K. Schum.). (Verh. Bot. Ver.
Brandenburg, L, 1908, p. LXX— LXXIII.)

Referat des Autors über seine 1907 unter No. 424 behandelte Arbeit.

519. Lindhard, E. On amphicarpy in Sieglingia decumbens (L.) and
Danthonia breviaristata Beck. (Bot. Tidsskr., XXIX, 1, 1908, p. 26—31.)

Besprechung siehe „Blütenbiologie". Fedde.

520. Lolli. A. Osservazioni su una varieta di Mais ramificato.
(Staz. sper. agr. ital., XLI. 1908. p. 761— 767, 1 tav.)

Ref. nicht eingegangen.

521. Maiden, J. H. Useful Australian plants. Chloris dicaricata R.
Br. (Agric. Gaz. N. S. Wales, XIX, 1908, p. 682, ill.)

522. Maiden, J. H. Useful Australian plants. Eriachne obtusa R. Br.

variety glabrata : new variety. (Agric. Gaz. N.S.Wales. XIX, 1908. p. 836
bis 837, 1 pl.) N. A.

Nicht gesehen.

523. Mattei, 6. E. et Tropea, C. Graminacee proviste di nettarii
estranuziali [N. P.]. (Boll. R. Orto bot. e Giard. col. Palerma, VII. 1908,
p. 113—117.)

Ref. noch nicht eingegangen.

524. Montemartini, Luigi. La spiga del grano in rapporto colla
selezione. (Atti Istit, bot. di Pavia, 1908, XIII, p. 321—355.)

Unter Berücksichtigung der vorhandenen einschlägigen Literatur unter-
nimmt Verf. an acht Varietäten von Weizen verschiedener Herkunft und mit-
unter verschiedener Ernte das Verhalten der Körner von ungleicher Grösse
zu prüfen. Zunächst bestimmt er das absolute, dann (mittelst Chlorcalcium)
das spezifische Gewicht der Körner, aus dem Verhältnisse dieser zwei Werte
berechnet er das Volumen und misst auch bei den begrannten Varietäten die
Länge der Grannen. Auch die Dicke der Kleberschichten wurde aus mittleren
Querschnitten entnommen, wogegen die Grösse des Embryo unberücksichtigt
blieb : schiesslich wurde die Keimdauer (in Stunden) ermittelt. Die erhaltenen
Werte sind in 12 Tabellen zusammengestellt.

Die Deutung der erhaltenen Werte führt zur Erkenntnis, dass das Ge-
samtgewicht aller Karyopsen eines Ährchens in der Ähre, von der Basis an
bis zu einer gewissen Höhe zu-, dann aber, nach der Spitze zu, wieder ab-
nimmt. Dementsprechend ist auch die Zahl der reifen Körner in den einzelnen
Ährchen verschieden, so dass die schwersten der letzteren auch die körner-
reicheren sind. Das fruchtreichere Ährchen entpricht der grösseren Tätigkeit
und der grössten Ertragsfähigkeit der Ähre. Dasselbe befindet sich regel-
mässig zwischen dem unteren Drittel und der Hälfte der Ähre mit vorwiegen-
der Tendenz, die Mitte der Ähre einzunehmen.

Es ergibt sich aber anderseits, das nicht immer die schwersten Körner
in dem ertragreicheren Ährchen vorkommen ; dasselbe gilt auch von den
grösseren Körnern, welche nicht immer die spezifisch schwereren sind, auch
nicht immer rascher als die kleineren keimen, sondern oft nur abnorme Pro-
dukte von anormalen oder kranken Ährchen und Ähren sind. Solla.

525. Mottier, D. M. A peculiar monstrosity in the seedling of
Zea May*. (Proc. Indiana Ac. Sc, 1905, p. 208.)

Nicht gesehen.

94 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [94

52(5. Nash, George, V. Two new grasses from the West Indies
[Panicum Grisebachü sp. nov. und Pharm parvifolius sp. nov.J. (Bull. Torr.
Bot. Club, XXXV, 1908, p. 301—302.) N. A.

527. Nilsson-Ehle, Hermann. Einige Ergebnisse von Kreuzungen
bei Hafer und Weizen. (Bot. Not, 1908, p. 257-294.)

Siehe „Variation, Descendenz" usw.

528. Nilsson-Ehle, H. Om olika angrepp af haf realen (Heterodera
Schavhti) pä olika kornsorter. (Über ungleiche Angriffe seitens
Heterodera Schachti auf verschiedene Gerstensorten.) (Sveriges Utsädes-
för. Tidskr., 1908, 3/4, p. 171 — 173.)

Siehe „Pflanzenkrankheiten".

529. Nilsson-Ehle, H. Om hösthvetesortes urartning och ätgär-

der för vidmakthällande af vederbörtig konstans hos desamma.

(Entartung der Winterweizensorten und Massnahmen zur Erhaltung

derselben bei genügender Konstanz). (Sveriges Utsadesför. Tidskr.,

1908, 3/4, p. 159—164.)

Siehe „Descendenz" usw.

530. Nilsson-Ehle, H. Nägot om nuvarande principer vid höst-
hvete förädlingen pä Svalöf. (Über die gegenwärtigen Gesichts-
punkte bei der Veredelung des Winterweizens bei Svalöf.) (Sveriges
Utsadesför. Tidskr., 1908, 3/4, p. 165—170.)

Siehe „Agricultur" usw.

531. Olilmer, TV. Über den Einfluss derDüngung und der Boden-
feuchtigkeit bei gleichem Standraum auf die Anlage und Aus-
bildung der Kolbenform beim Göttinger begrannten Squarehead-
Winterweizen. Diss. Göttingen, 1907, 8°, 105 pp., 2 Fig., 6 Tat'.

Siehe „Agricultnr".

532. Petrak, Franz. Zar Nomenclatur von Tragus racemosus All.
(Ung. Bot. Bl., VII, 1908, p. 295—297.)

Als Autor ist nicht Desfontaines (1800) sondern Allioni (1785) zu
zitieren. Synonym sind: Nazia racemosa L., Phalaris muricata Forsk., Cenchrus
linearis Lam., Lappago racemosa Schreb. und Tragus muricatus Moench,

533. Petrie, D. Description of a New Native Grass [Poa astoni
11. spj. (Trans. N. Zeal. Inst. Well., XXXVIII, 1905 [1906], p. 423-424.)

N. A.

534. Pilger, H. Gramineae andinae. IV. (Engl. Jahrb., XLU, 1908,
p. 60-72.) N. A.

Neue Arten von ('alamagrostis. Siehe „Index nov. gen. et spec".

53"). Renale, A. B. Poa szechuensis nom. nov. (Journ. of Bot., XLVI,
1908, p. 173.) X. A.

So muss jetzt P. graällima Rendle 1904, non P. gracillima Vasey 1893
heissen.

536. Saint- Yves, A. Nur quelques caracteres du Festuea Borderii
Rieht. (PI. Eur., I, 97 [1890], Festuea ovina subsp. [vel spec.?], VI Borderii
Hack., Mon. Fest, eur., p. 113, 3 Fig.)

Verf. schliesst F. Borderii aus der ovina- Gruppe aus und betrachtet sie als
gute Art. Hack eis analytischer Schlüssel ist wie folgt abzuändern:

I

95] Gramineae. 95

\ Vagiaae innovationum basin versus incrassatae, etc. 2.

i Vaginae basi non incrassatae. 3t>is.

•^bis \ Vaginae in parte integra profunde implicato sulcatae. F. excarata.

I Vaginae in parte integra absque sulco. 4.

Dans l'espece collective excarata on aurait:
, Ovarium glabrum. F. scaberrima.
1. i Ovarium vertice parcissime hispidulum. 2.

Vaginae a basi ad medium usque integra. Fasciculus sclerenchymati-
cus medianus cum nervo confluens. F. amethi/stina.
'2. j Vaginae a basi fere ad os usque integrae. Fasciculus sclerenchy-
maticus medianus cum nervo confluens. F. Borderii.

537. Sehvveinfurth, G. Über die von A. Aaronsohn ausgeführten.
Nachforschungen nach dem wilden Emmer (Triticum dicoccokles Kcke.)
(Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 309—324.)

Siehe „Pflanzengeographie".

538. Shull, G. H. The composition of a field of maize. (Amer.
Breeders' Ass., IV, 1908, 6 pp.)

Siehe „Variation, Descendenz" usw.

539. Smyth, Walter. Ornamental grasses (Gramineae). (Journ, R.
Hort. Soc. Lond., XXXIIL 1908, p. 107—113.)

Aufzählung gärtnerisch wichtiger Arten.

540. Stapf, Otto. Spartina Townsendii. (Journ. of Bot, XLVI, 1908,
p. 76—81, eine Textfig.)

Abdruck aus Gard. Chron., 18. Januar 1908.

541. Tedin, H. Über die Merkmale der zweizeiligen Gerste,
ihre Konstanz und ihren systematischen Wert. (Deutsche landw.
Presse, 1908, p. 831 und p. 841—842.)

Siehe „Descendenz" usw.

542. Tribolet, M de. Sur la floraison des bambous. (Bull. Soc.
Neuchateloise sei. nat., XXXIV [1905—1906], p. 296.)

Siehe im „Blütenbiolog. Teile des Just".

543. Tarner, Fred. Australian Grasses. (Kew Bullet., 1908, p. 21— 29.)
Verf. bespricht in einem Artikel im „Sydney morning Herald", der hier

abgedruckt wird, in der Hauptsache folgende Gräser: Andropogon sericeus,
Anthistiria imberbis, Astrebla tritieoides, Chloris truncata, Polliaia fulva und
Danthonia semiannularis.

544. Volkart, A. und Kirchner, 0. Gramineae in Kirchner, Loew,
Schröter (Ref. No. 175 a), Lief. 9, p. 1—96, 46 Fig.

Beginn der Bearbeitung, umfasst in gewohnter Weise die Lebens-
geschichte. Im vorliegenden geben die Verff. zusammenfassende Darlegungen
über das morphologische und ökologische Verhalten im allgemeinen.

545. Wein, K. Poa Ghaixi X pratensis m., n. hybr. = Poa ivippraensis m.
(Allg. Bot. Zeitschr, XIV, 1908, p. 181—183.) N. A.

Verf. unterscheidet ausserdem von P. Chaixi noch var. straminea und
var. glabra.

546. Weinzierl, Th. v. Zur Mechanik der Embryoentfaltung bei
den Gramineen (ein Beitrag zur Mechanik und Biologie der Keimung).
(Wiesner-Festschr., Wien 1908, p. 379—395, 2 Textf, Tafel XIII— XVII.)

Siehe „Physik. Physiologie".

96 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. \QQ

547. Weilt, F. A. F. C On the investigati vus of Mr. A. H. Blauw
on the relation between the intensity of light and the length of
illumination in the phototropic curvatures in seedlings of Avena
sativa. (Kon. Ak. Wet. Amsterdam, Proc. Meet. Sept. 26, 1908, p. 230—234.)

Siehe „Physik. Physiologie".

548. Zimmermann, A. Über die Ausnützung der in Deutsch-Ost-
afrika einheimischen und angebauten Bambusa- Arten zur Papier-
fabrikation. (Der Papierfabrikant, 1908, 8 pp., 4 Abb.)

Haemodoraceae.

Hydrocharitaceae.

Neue Tafeln:
Blyxa lancifolia in Lecomte Fl. gen. de Flndo-Chine, VI, 1908, tab. I,

fig. 23-30.
Enhydrias angustipetala in Lecomte 1. c. fig. 13 — 22.
Oligolobos Balansae in Lecomte 1. c. fig. 1—6.

Ottelia alismoides Pers. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 7.
O. condorensis in Lecomte Fl. gen. de l'Indo-Chine, VI, 1908, tab. I, fig. 712

549. Gagnepain, F. Hydrocharitaeeae, in Lecomte Flore gen. de l'Indo-
Chine, VI, 1908, p. 1-18, fig. 1—6. N. A.

Umfasst die Gattungen: Halophila, Hydrilla, Lagarosiphon, Vallisneria,
Hijdrocharis, Boottia, Oligolobos, Ottelia, Blyxa, Enhydrias. Vgl. auch unter
„Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

550. Gagnepain, F. Une Hydrocharitacee nouvelle [Oligolobos tri-
fiorus], (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 34—35.) N. A.

551. Rydberg, Per Axel. Notes on Philotria Raf. (Bull. Torr. Club,
XXXV, 1908, p. 457—465.) N. A.

Es handelt sich um Elodea Mchx., welchen Namen Verf. wegen des
älteren Elodes Adans. nicht anwendet. Verf. klärt die Angaben älterer Autoren,
wie Nuttall und Torroy und bespricht die bisher bekannten Arten. Folgender
Schlüssel dürfte von allgemeinem Interesse sein.

Leaves oblong or ovate-oblong. mostly obtuse; staminate flowers
unknown P. canadensis.

Leaves linear or oblong, mostly acute; hermaphrodite flower unknown

Staminate spathe sessiie.

Leaves oblong or lance-oblong, 2—3 mm wide, spathe of staminate
flowers 5—6 mm long: anthers 2 — 2,5 mm long. P. Nuttallii.

Leaves linear, 1 mm, wide or less; staminata spathe 2 — 3 mm long;
anthers about 1 mm long.

Leaves 1 cm long or more; sepals and petals 1,52 mm long. P.
(tngustifolia.

Leaves 5 — 8 mm long; sepals and petals 1 — 1,5 mm long. P. minor.

Staminate spathe peduncled.

Staminate spathe ovoid, abruptly contracted at the base; sepals 2,5 mm
long; petals present. P. linearis-

.Staminate spathe obovoid, tapering at the base; sepals of the staminate
flowers 5 mm long; petals lacking. P. Planchonii.

97] Hypoxidaoeae. Iridaceae. 97

552. Veres. Mihäly. Adatok a Stratiotes aloides L. ismeret eher. (Bei-
träge zur Kenntnis der Stratiotes aloides L.) Inaug.-Diss.. Budapest 1908,
Athenaeum. 8°, p. 1-40, Tafel 1—3. Magyarisch.

Siehe ..Anatomie".

Hypoxidaceae.

Iridaceae.

Neue Tafeln:
Herbertia amatorum C. H. Wright in Bot. Mag., UXXXIV, 1908. tab. 8175.
Iris arenaria in J.ourn. -Russe de Bot. Petersbourg, 1908, tab. ad p. 180.
I. germanica „Varietes ä grandes fleurs" in Rev. Hortic. LXXX, 1908, tab. col.

ad p. 5-14 (flores).
I. tectorum Maxim, var. alba in Gartenfl., LVII, 1908, tab. col. 1571.
Lapeyromia Fabricii Ker. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 22.
Moraea iridioides in Gard. Chron., 3. ser.. XLI1I, 1908, tab. nigra ad p. 82.

553. Anonym. Xlris „Amethyst". (Gard. Chron., 3. ser., XLII1, 1908,
p. 386, Fig. 175.)

Es handelt sich um I. sindj arensis X I persica purpurea. Die Figur
zeigt eine blühende Pflanze.

554. Arnott. Iris Warleyensis. (Garden, LXXII, 1908. p. 635, Fig.)
Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

555. Beguinot, AngustO. Revisione monografica del genere Romulea
Maratti. (Malpighia, XXI, p. 49 ff . [zusam. 190 pp.], 1907.)

Die von Maratti 1772 aufgestellte Gattung Romulea hat mannigfaltige
Begrenzungen erfahren, welche selbst in Bakers „Handbuch der Irideen"
(1892) nicht endgültig abgeschlossen erscheint, wie es häufig bei Gattungen,
die äusserst polymorph und durch starke Affinität mit anderen verbunden
sind, der Fall ist. Eine Übersicht der revidierten und genauer festgestellten
Arten ist auf p. 53 — 54 gegeben (vgl. auch Engl. Bot. Jahrb.. XXXVIII, p. 322).
Die vorliegende Revision wurde bereits 1897 begonnen, später allerdings
unterbrochen, und ist auf geeigneten Kulturen aus Samen und auf einer
kritischen Durchsicht eines reichlichen Herbarmaterials (p. 54—56) in erster
Linie gegründet.

Die Arbeit gliedert sich folgend ermassen:

1. Biologie der Keimung und der Entwickelung der Pflanze:

2. äussere und innere Morphologie,

a) des jungen Pflänzchens,

b) der ausgebildeten Pflanzenorgane, einschliesslich der Blütenteile;

3. Blütenbiologie, Befruchtungsvorgänge und Embryohildung: Biologie der
Samenausstreuung.

Die Ergebnisse dieser Studien werden vom Verf. selbst in den folgenden
Hauptpunkten zusammengefasst. Die Keimung ist bei allen Arten unter-
irdisch; die blütentragende Pflanze ist erst die zweite oder selbst dritte
Generation. — Das Wurzelsystem wird anfangs von einer Hauptwurzel ge-
geben, welche bald verschwindet und von einer knolligen Wurzel ersetzt
wird, welche sich entleert und ihrerseits aufhört, sobald die Vegetationsspitze
sich zum Knollen ausgebildet hat. — Die Bildung knolliger Wurzeln erfolgt
Jahr für Jahr, sobald sich die Vegetationstätigkeit wieder einstellt und geht
der Bildung der Knollen voran. — Die knolligen Wurzeln speichern nicht nur
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3 Abt. [Gedruckt 27. 6. 10.] 7

98 C. K. Schneider: Morphologie und Systemtik der Siphonogatuen. [9^

Reservestoffe auf. sondern sie ziehen die Knollen tiefer in den Boden hinab.
Der Knollen ist ein verkürzter Wurzelstock mit unbegrenztem seitlichen
V/achstum; da jedoch derselbe auch von Niederblättern umgeben wird, so
entspricht er der Bezeichnung Zwiebelknollen. — Das Pflänzchen entwickelt
ein Keim-, ein Scheiden- und ein primäres Laubblatt; letzteres ist auf der
Rückenseite mit zwei Rinnen versehen, welche die Spaltöffnungen in sich
bergen. — Die ausgewachsene Pflanze entwickelt nach aussen mehrere Blatt-
scheiden, nach innen einige Laubblätter, welche am Knollen angebracht sind
und vier symmetrische Rinnen besitzen. An den Verzweigungen des Schaftes
kommen sehr kurze zungenförmige Hochblätter vor. Andere zwei Hochblätter
bilden eine Spatha rings um je eine Blüte. — Die Anatomie der Haupt- und
der knolligen Wurzeln ist nahezu die gleiche bei allen untersuchten Arten:
die Hauptwurzel ist tetrarch mit wenigen Markgefässen im Zentrum, die
knolligen Wurzeln sind polyarch, besitzen einen Ring von Markgefässen und
im Zentrum einen Markzylinder. — Das ausgewachsene Laubblatt hat einen
bilateralen Scheidenteil und eine reitende isolaterale Spreite; letztere besitzt
auf der Aussenseite vier, die Spaltöffnungen führende Rinnen. Das Mesophyll
ist homogen und wird von dreierlei Strängen, nämlich von Gefässbündeln,
Mestomsträngen und prosenchymatischen Faserbündeln durchzogen; die
letzteren haben mechanische Bedeutung und sind bei einigen Kap-Arten mittelst
eines sklerenchymatischen Hypoderms mit den Gefässbündeln verbunden. Bei
einigen mediterranen und Kap-Arten funktioniert die Oberhaut als Wasser-
gewebe. — Der Typus sämtlicher Arten ist xeromorph: nur bei einigen Arten
vom Kap treten auch Merkmale für eine Neigung zur Hygrophilie auf. Dieses
Merkmal lässt sich vielfach systematisch verwerten. — Der Schaft ist selten
einfach: viel häufiger ist er mehr oder minder verzweigt. — Das Perigon, im
Grunde bei allen typisch, variiert oft für dieselbe Art, nach Grösse und Farbe
sehr stark. — Kleinblütige und blassgefärbte Pflanzen (besonders bei R. Bul-
tocodium und R. nivalis) sind meist gynodiöcisch wegen Atrophie des Pollens.

— Bei kleinen und mittelgrossen Arten ist des öfteren der Stempel so gestellt,
dass eine Selbstbefruchtung einzig möglich ist; dieselbe erzielt auch normale
fertile Samen. - - Auch die Griffellänge ist verschieden. Eine Varietät von
R. Bulbocodium aus Algier zeigt kurzgriffelige Formen, welche gynodiöcisch
sind, während die langgrifl'eligen, stets zwitterigen Formen sich nur als männ-
liche Pflanzen verhalten. Dagegen kommt bei Individuen der genannten Art
in Italien vor, dass langgriffelige Formen durch Selbstbefruchtung gute Samen
erzeugen. — Das Nectarium ist verborgen nach dem Typus von Septaldrüsen.

— Die Entwickelung des Embryosackes und der Eizelle erfolgt bei allen Arten
ungefähr gleich und nach dem allgemeinen Typus der Irideen. — Die mittlere
Schichte der Samenschalen zeigt mehrere Zellreihen im Gegensatze zur Gattung
Crocus, welche ihrer nur zwei besitzt. — Nach erfolgter Befruchtung verlängert
sich der Stamm durch interkalares Wachstum, während die Fruchtstielchen
karpotropische Bewegungen ausführen.

In dem speziellen Teile werden historische und bibliographische Notizen
über die Systematik der Romulea-Arten und deren geographische Verbreitung
mitgeteilt. Dabei führt Verf. eine chronologische, kritische Durchsicht von
226 grösseren und kleineren Abhandlungen, von Theophrast angefangen bis
auf des Aut. „Diagnoses" (1907) vor. Daran schliesst sich die Aufzählung der
Exsiccata, in welchen Romulea-Arten ausgegeben worden sind, mit kritischer
Richtigstellung der irrig benannten Arten. Darin sind durch ein * die neuen

99] Iridaceae. 99

Arten oder Varietäten hervorgehoben. Die Exsiccatenwerke sind geographisch
geordnet. Solla.

556. Begninot, Angnsto. Revision e delle Romulea dell' erbario
Delessert. (Annuaire du Conserv. et du Jard. bot., 11 me e 12me an., Geneve
1908, p. 144—163.) N. A.

Das Herbar Delessert (Genf) umfasst in drei Paketen 35 Romulea-
Arten mit zahlreichen Varietäten, zusammengetragen von den verschiedensten
floristischen Erforschungen Europas, des Orients, Nordafrikas, des Kaplandes,
Abyssiniens usw. Eine genaue Revision des Materials führte zur Richtig-
stellung mehrerer Angaben und zur Erkennung einzelner Pflanzen, welche in
den Exsiccatensammlungen nur numeriert, aber nicht benannt erscheinen.
Darunter wird R. Bachmanni, eine neue Art ausführlich beschrieben, worüber
Verf. schon 1907 (Malpighia, p. 113), die Blattanatomie betreffend, Mitteilungen
gemacht hatte. Ausserdem erscheinen hier die Diagnosen einiger neuer
Varietäten, wie von R. Bulbocodium Seb. et Maur. n. vai\ rt pygmaea Beg. aus
Kreta, n. var. # syriaca Beg. aus Syrien, von R. rosea Eckl. n. var. ß hirsuta
Beg. vom Kap, zu R. bulbocodioides Bak. n. var. minor Beg. vom Kap. — R.
Leichtliniana Heldr. fasst Verf. als Var. (C) von It\ Bulbocodium (L.) Seb. et
Maur. auf. Solla.

557. Dykes, W. R. Notes on Irises. (Gard. (Jhron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 3.)

Betrifft: Iris tectorum alba, I. olbiensis X Korolkowi und I. vaga.

558. Fitzherbert, S. W. Watsonia 0'Brieni. (Garden, LXXII, 1908,
p. 17, Fig.)

Die Abbildung zeigt ein blühendes Exemplar.

559. Fitzherbert, S. W. A rare plant in g ar de ns (Witsonia corymbosa).
(Garden, LXXII, 1908, p. 375, Fig.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

560. Grignan, G. T.- Le Gladiolus primulinus. (Rev. tfortic, LXXX,
1908, p 8-10, fig. 1.)

Beschreibung und Abbildung eines Blütenzweiges.

561. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie der Gattung Gladiolus.
< Natur w. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 328—329, 2 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

562. Holm, Theo. Sisyrinchium: anatomical st u dies of North
American species. (Bot. Gaz., XLVI, 1908, p. 179—192, plates X— XIa.)

Siehe „Anatomie".

563. Kanzleiter, Heinrich. Gladiolus L. und seine Züchtungen.
(Gartenflora, LVII, 1908, p. 225—229, tab. col. 1572.)

Gärtnerische Darlegungen. Die Tafel zeigt Züchtungen der Gärtnerei
Pfitzer.

564. M[allett], G. B. Japanese Irises. (Gard. Uhron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 125—126, Fig. 49.)

Die Abbildungen zeigen Blütendetails von Iris gracilipes, laevigata und
tectorum.

565. Pampanini, R. Un Iris probabilimente ibrida dell' I. illyrica
Tomm. e dell' I. pallida Lam. ed una nuov-e varietä di quest' ultima
(Bull. Soc. Bot. Ital., 1908, p. 135—137.)

Referat noch nicht eingegangen.

100 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [100

566. Pax, F. Romulea Bulbocodium und Tamarix spec. ( Jahrb. schles.
Ges. vaterl. Kultur, LXXXV. 1908, p. 24.)

567. Porter, A. E. A rare and beautifulJräfGratesi,). (Garden, LXXII,
1908, p. 422, Fig.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

568. Raflill, C. P. Libertia grandiflora- (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 2, fig. 1.)

Die Abbildung zeigt blühende Pflanzen.

569. Smith, Thomas. The cushion Iris es. (Garden, LXXII, 1908,
p. 349—350, Fig.)

Die Abbildung zeigt Iris iberica.

570. Sprenger. ('. Iris tectorum Maxim, rar. alba. (Gartenflora, LVlI,
1908, p. 169, tab. col. 1571.)

Kurzer Hinweis.

571. Tubergen, ('. G. van. Einiges über die neuen Reg elio-cy eins Iris
und deren Kultur. (Gartenwelt. XIII, 1907/08, p. 1—4, 3 Textf.)

Es handelt sich um Hybriden von Arten der Onocyclüs- mit der Regelio-
Gruppe. Die Abbildungen zeigen solche Blüten.

572. Vilmorin. Pli. de. Les Varietes ä grandes fleurs de V Iris
germanica (I germ. macrantha). (Rev. Hortic. LXXX, 1908, p. 544 — 546,
tab. col.)

Juncaceae.

Nene Tafeln:
Juncus Sorrentinii in Bull. Soc. Bot. France. LV, 1908, pl. IL
J. fasciculatus 1. c. pl. IL
Prionium serratum Drege in Thonner. Blütenpflanzen Afrikas, 1908. tab. 17.

573. Greshoff, M. Een nieuwe natuurlyke groep van blauwzuur
planten: de Juncaginaeeae. (Pharm. Weekbl., 1908, 40 pp.. 1165—1171.)

Nicht gesehen.

574. Husnot, J. Joncees. Descriptions et figures des Joncees.
de France, Suisse et Belgique. (Cahan par Athis [Orne] chez l'auteur,
1908, 28 pp., 7 Taf.)

Die neuen Arten siehe Fedde, Rep. nov. spec. VIII (1910).

575. Husnot, T. Notes sur quelques Joncees. (Bull. Soc. Bot.
France, LV, 1908, p. 48—55.) N. A.

Verf. behandelt zunächst den Formenkreis von Juncus bufonius mit var.
((■ typieus, ß. major Pari., y. foliosus (Desf.j, d. ambiguus (Guss.), t. hybridus
(Brot.), f. Sorrentinii (Pari.). Ferner J. fasciculatus Schousb., sphaerocarpus
Nees und Luzula lactea Mey.

576. Kükenthal, G. Luzula lutea X spadicea = Luzula Bommülleriana
Kükenthal hybr. nov. (Mitt. Thür. Bot. Ver., XXIII, 1908, p. 90—92.)

N A.

577. Spence, 31. Note on Juncus effusus var. spiralis. (Trans, and Proc.
bot. Soc. Edinburgh. XXIII. 1908, p. 233—234.1

Nicht gesehen.

578. Thompson, H. Stuart. Note sur les Juncus bicephalus Viviani et
J. bufonius var. fasciculatus Koch. (Bull. Herb. Boiss.. ser. 2. VIII, 1908,
p. 75—76.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

101] Juncaceae. Leinnaceae. Liliaceae. 101

Lemnaceae.

579. Bierberg. W. Die Absorptionsfähigkeit der Lemnaceen-
wurzeln. (Flora, LXLIX, 1908, p. 284-286.)

Siehe „Physikal. Physiologie".

Liliaceae.

Neue Tafeln:
Agare rigida in Miss. Bot. Gard. Rep. XIX, 1908. pl. 29.
.4- angustifolia und var. marginata in Miss. 1. c. pl. 30—35.
Aloe dichotoma L. f. in Engler-Drude, Vegetat. d. Erde, IX, II, 1908, tab. XV

(Habitusbid).
Asphodelu8 madei remis Simon in Bull. Soc. Bot. Deux-Sevres, XXI, 1908, pl. XL
Dracaena Perrotteti Bak. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 18.
Gagea Alexeenkoana Mise, et var. minor Mise., G. reticulata R. et Seh. et G. sul-

furea Mise, in Act. Hort. Bot. Cniv. Jurjev. IX, 1908, tab. I, fig. 1—4.
Lilium japonieum (L- Krameri) in Gard. Chron., ser. 3, XLIII, 1908, tab. nov.

gen. ad p. 316.

580. Andrews, F. M. Some monstrosities in Trülium. (Proc. Indiana

Ac. Sc., 1905, p. 187—188.)
Siehe „Teratologie".

581. Aznavonr, G. V. Un nouveau Merendera [Manissa dijani] d'Ana-
tolie. (Bull. Herb. Boiss., ser. ?, VIII, 1908, p. 248—250, Fig.) N. A.

582. Beauverd, Gustave. Nou velles especes peniguayennes du genre
Nothoscordum Kunth. (Bull. Herb. Boiss., ser. 2, VIII, 1908, p. 993—1007,
Fig. 1—5.) N. A.

Vgl. „Index nov. gen. et spec." Verf. gibt zum Schluss folgende
Gliederung der Gattung in zwei Sektionen:

§ 1. Lniflorum, distinguee par son scape uniflore et comprenant eine]
especes bres nettement caracterisees, les X- canescens, X. subsessile, X. Ostenii,
X- Lloydiflorum et X. uniflorum.

§ 2. Umbelliflorum ä inflorescence normale ombellee; les caracteres
tires des feuilles conduisent aux sous-sections suivantes:

a) Xudum: sans feuille pendant lanthese, avec une espece: X- nudum;

b) Liberum: limbe des feuilles peraissant libre jusqu'a la base, leur gaine
restant incluse dans le bulbe on ne le depassant que tres peu au sommet;
4—5 especes: JV. sessile, X. macrantherum (semper?), A. bonariense, X. Gaudichau-
dianum, X. grossibulbum.

c) Vaginafitm: gaines des feuilles excedant le sommet du bulbe, au
dessus duquel elles forment un long col; 7 especes; X. scabridulum, X. Mina-
rum, X. gramineum, X. bivalve, X. andicola, X- Sellowianum et X. inodorum.

Dans cette derniere sous-section, les especes ä fleurs jaunes se distin-
guent nettement les unes des autres, par des caracteres differentiels bases
principalement sur les dimensions constantes du bulbe et du scape, la con-
formation des feuilles et des ovaires, et la longueur du style comparee aux
etamines; chez les especes ä ileurs blanches, les characteres sont moins tranches,
et ce n'est qu'a, defaut d'echantillons intermediaires <pie nous avons renonce
ä sviivre O. Kuntze qui preconisait leur Subordination au JV. bivalve ä titre de
simples varietes.

583. Beanverd, G. Un nouveau Tulbaghia [Simmleri] du Transvaal.
(Bull. Herb. Boiss., ser. 2, VIII, 1908, p. 1)88—989, Fig. 2). N. A.

102 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [102

584. Berger, A. Liliaceae-Äsphodeloideae-Aloineae. (Das Pflanzenreich,
IV, 38, III, II [33. Heft], 347 pp., 141 Fig., eine Tai, Leipzig, 1908.) N. A.

Die schwierige TTnterfamilie der Aloineen wird hier in sehr eingehender
Weise behandelt. Sie gliedert sich in 2 Gruppen:

I. Kniphofiinae: herbaceae, rarius breviter truncatae, foliis longe et anguste
linearibus, parum carnosis, saepissime acute carinatis, minutissime denticulatis
vel integris. Pedunculus subnudus; racemus -£ densus, floribus breviter pedi-
oellatis, bracteis scariosis parvis. Capsula parva, chartacea, breviter acutata. —
Hierher: Kniphofia Moench und Notosceptrum Benth.

IL Aloinae: Plerumque succulentae, acaules, frutescentes usque alte
aborescentes, Folia carnosa et saepius aculeata, aloiformia (in Cliortolirion et
Leptoaloe kniphofioidea, anguste linearia et parum carnosa). — Hierher: Chamoealoe
Berg., Chortolirion Berg., Apicra Willd., Haworthia Duval., Gasteria Duv.. Aloe L.
und LomatopJtyllum Willd.

Die Aloineen stehen zu den Asphodelineen und Anthericineen der
Liliaceae-Asphodelokleae in naher verwandtschaftlicher Beziehung. Über die Ab-
stammung und Verwandtschaft der Aloineengattungen und Untergattungen
liess sich nicht viel- ermitteln. Verf. gibt ein Schema der anzunehmenden
Verwandtschaftsverhältnisse.

Die geographische Verbreitung erstreckt sich hauptsächlich auf die Ost-
seite des afrikanischen Kontinents und die dazu gehörigen arabischen und in-
sularen Gebiete.

Die Ausbildung der Vegetationsorgane ist eine sehr mannigfaltige. Die
Blätter der Sämlingspflanzen oder jungen Sprosse weichen oft in hohem Grade
von denen der ausgewachsenen Individuen ab. Die Stämme sind nur bis
zum Eintritt der Blühbarkeit monopodial, alsdann wird der Sprossaufbau ein
sympodialer. Die Blattform ist sehr verschieden und charakteristisch für die
Gattungen.

In anatomischer Hinsicht sind zu erwähnen die sog. Aloezellen der Leit-
bündel, die nur Apicra, den Kniphofien und einigen Haworthien fehlen, wo
sie durch Sklerenchymzellen ersetzt sind. Ferner die Perlwarzen, die biologisch
der Herabminderung des Lichtes dienen. Dagegen zeigen einige Haworthien
Einrichtungen, die eine möglichst reiche Ausnutzung des Lichtes gestatten.

Die Blütenstände werden terminal angelegt, aber durch den Spross des
zunächst stehenden jungen Blattes zur Seite gedrückt. Die Anordnung der
Blüten ist durchweg traubig oder fast ährig, das Aufblühen erfolgt gewöhn-
lich zentripetal.

Die Blüten sind durchweg zwitterig und für Tierbesuch (Immen und
Vögel) eingerichtet. Sie sind proterandrisch. Verf. weist auf viele interessante
blütenbiologische Details hin.

Zu erwähnen ist ferner die grosse Neigung zu Bastardbildung, wodurch
die Artumgrenzung sehr erschwert wird.

Verf. behandelt auch die Kultur und den Nutzen der Aloineen, von denen
viele wertvolle Zierpflanzen sind und auch in der Pharmacognosie eine Eolle
spielen.

Der spezielle systematische Teil ist sehr gründlich durchgearbeitet und
vor allem die Behandlung der Gattung Aloe mit über 170 Arten bemerkens-
wert, die hier ganz neu gegliedert wird.

585. Bernätsky, J. Über die Convallarieen und Ophopogo-
noideen. (Növ. Közl., VII, 1908, p. 51—54. Ungarisch.)

103] Liliaceae. 103

Aus dem Auszug im Beibl., 1. c, p. (7)— (13) sei folgendes hervor-
gehoben: Was nun zunächst den Stengel anbelangt, so finden wir auf dem
der Convallarieen keine Laubblätter wie bei den Parideen und Polygonateen,
höchstens grüne Hochblätter. Ausserdem ist der Stengel zumeist kurzlebig;
er hat zumindest nicht einen ganzen Sommer hindurch eine Menge Laubblätter
zu tragen wie die meisten Polygonateen. Demzufolge kann ein gewisser
Unterschied im anatomischen Bau des Stengels der Convallarieen und den der
Parideen und Polygonateen schon a priori angenommen werden. Tatsächlich
sind auch gerade die wasserleitenden und die mechanischen Gewebe und
Elemente der Convallarieen bedeutend schwächer. Im allgemeinen sind die
Zellen und Gewebe im Stengel der Convallarieen wenig differenziert. Der
grösste Teil wird von holzparenchymartigen Zellen eingenommen, denen keine
exklusive physiologische Leistung zukommt.

Bei den Ophiopogonoideen finden wir im Gegensatz zu den Convallarieen
allerdings ein mechanisches Gewebe, das aber recht unvollkommen ausgebildet
ist. Die wasserleitenden Elemente sind auch hier eng und schwach.

Das Blatt der Convallarieen und Ophiopogonoideen unterscheidet sich
von dem der Parideen und Polygonateen durch mehrere Merkmale. Erstens
fehlt hier das eigenartige Wassergewebe längs der Hauptnerven, das bei den
Parideen und Polygonateen zu finden ist, ferner sind die Längswände der
Epidermiszellen nie gewellt oder zick-zackfürmig gekrümmt und endlich
kommt die Höhe und Breite der Scbliesszellen jenen der gewöhnlichen
Epidermiszellen gleich, was für die Parideen und Polygonateen nicht zutrifft.
Auch müssen noch die mittleren Mesoplvyllzellen im Blatte der Convallarieen und
Ophiopogonoideen erwähnt werden, die sich durch ausserordentliche Grösse
und Chlorophyllmangel auszeichnen und bald mehr, bald weniger auffallen,
bei den Parideen und Polygonateen aber niemals zu finden sind.

Die Convallarieen und Ophiopogonoideen werden auf Grund der
anatomischen Struktur des Blattes am besten in einer Gruppe vereinigt, die
folgendermassen in drei Untergruppen eingeteilt werden kann:

1. Convallarinae mit dem einfachsten anatomischen Bau des Blattes, ohne
besonders auffallende mechanische Gewebe, mit einfachen Epidermis-
zellen; das Gewebe zwischen Leitbündel und Epidermis gleicht dem
übrigen Mesophyll.

2. Aspidistrinae. Der Hauptnerv enthält mehr als ein Leitbündel.

3. Ophiopogoninae- Ähnlich wie die Convallarinae, aber mehr differenziert
(namentlich Hypoderma längs der Nerven; teilweise verholztes Leptom:
einige Mesophyllreihen palisadenartig; äussere Zellwand der Epidermis-
zellen zumeist höckerartig verdickt).

Das Blatt von Convallaria majalis gleicht in einigen Beziehungen viel
mehr den europäischen Parideen und Polygonateen als den übrigen Conval-
larieen und zwar hauptsächlich darum, weil die Zellen im allgemeinen gross
und dünnwandig sind und somit das ganze Blatt verhältnismässig zart gebaut
erscheint. Dies ist aber wohl weniger mit systematischen als mit biologischen
Umständen in Zusammenhang zu bringen, indem nämlich das Blatt von Con-
vallaria majalis gleich denen der europäischen Parideen und Polygonateen
bloss sommergrün, dasjenige der übrigen Convallarieen aber immergrün und
somit derber gebaut ist.

Am Rhizom hat man lange und kurze Triebe zu unterscheiden. Onto-
genetisch treten in der Regel zuerst lange und erst später kurze Triebe auf.

1Q4 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [104

Anatomisch hat man darauf zu achten, ob man einen kurzen oder einen langen
Trieb vor sich hat, weil zwischen beiden ein manchmal ganz ansehnlicher
Unterschied zutage tritt. Im allgemeinen je länger der Trieb, desto mehr
collateral das Gefässbündel, desto vorherrschender die Gefässe statt der
Tracheiden; im Kurztrieb sind die Gefässbündel zumeist konzentrisch gebaut
und statt der Gefässe finden sich mehr Tracheiden. Ferner kommt der
Stereomring oder die Endodermis im Kurztrieb am schwächsten zur Aus-
bildung. Systematisch bietet das Rhizom weniger Anhaltspunkte als das
Blatt. Die Wurzel der Convallarieen unterscheidet sich wieder von dem der
Parideen, Polygonateen und auch der Asparageen dadurch, dass die Hadrom-
elemente verhältnismässig eng sind, das Markgewebe einen grossen Raum
einnimmt und das Pericambium grosse weitlumige Zellen aufweist. Die
Ophiopogonoideen ähneln in allen diesen Beziehungen entschieden den Con-
vallarieen durch besondere dickwandige Zellen im Mark oder in der Nähe der
Endodermis aus.

Das auf morphologischem und pflanzengeographischem Wege gefundene
Resultat, dass die Ophiopogonoideen mit den Convallarieen zumindest so nahe
verwandt sind wie letztere mit den Parideen, Potygonateen und Asparageen,
wird somit durch die anatomischen Befunde bekräftigt.

586. Bornmüller. J. Ein neues Ornithogalum aus der Flora des
assyrischen Kurdistan [0- kurdicum n. sp.]. (Rep. spec. nov., V, 1908,
p. 135.) N. A.

587. Buzek, E. CMorogalum pomeridianum- (Amer. Bot., XIV, 1908,
p. 103-104.)

Nicht gesehen.

588. Cabanes, 6. Une corbeille de Tulipes ä hampe bimultiflore.
(Bull. Soc. Etüde Sc. nat. Nimes, XXXV, 1907 [1908], p. 42—45.)

Nicht gesehen.

589. Clnte, W. N. A remarkable change of color in Trillmm. (Am.
Bot.. XIV, 1908, p. 33—35, ill.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

590. Deane, Walter. Some teratological forms of Trillmm undu-
latum. (Rhodora, X, 1908, p. 21—24.)

Siehe „Teratologie".

591. Deane, Walter. More teratological forms of Trillium undu-
latum. (Rhodora, X, 1908, p. 214-216)

Siehe „Teratologie".

592 Densmore, Hiram D. The origin, strueture and Function of
the polar caps in Smilacina amplexicaulis Nutt. (Univ. Calif. Publ. Bot.,
III, No. 2, p. 303—330, pls. 4—8, 1908.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

593. Ewart, A. J. and Tovey, J. R. The onion weed. (Journ. Dept.
Agric. Victoria, VI, 1908, p. 208, 1 col. pl.)

Nicht gesehen.

594. Fedtschenko, O.A. Bemerkung über die geographische Ver-
breitung der Gattung Eremurus. (Bull. Jard. imp. bot. Petersbourg, VII,
1907, p. 65—68.)

Besprechung siehe „Pflanzengeographie". Fedde.

lob] Liliaceae. 105

595. Gurke. M. Eine neue Monographie der Aloineen. (Monats-
schrift Kakteenk., XVIII, 1908, p. 181 — 184.)

Über Bergers unter No. 584 referierte Arbeit.

"»96. Harshberger. John W. The water-storing tubers of plants.
(Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908, p. 271—276, pl. XVII.)

Vgl. unter „Farne". Ausserdem kurze Notiz über die Knollenwurzeln
von Asparagus Sprengeri, die als Wasserreservoire anzusehen seien.

597. Hansmann, Emmerich. Anatomische Untersuchungen an
Nolina recurvata Hemsley. (Beih. Bot. Centrbl., XXIII, II, 1908, p. 43—80,
14 Textfig.)

Siehe „Anatomie".

598. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie von Aspidistra elatior ßl.
(Naturw. Wochenschr., N. F.. VII, 1908, p. 110-111. 4 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

599. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie von Colchicum auhimnalc L.
(Naturw. Wochenschr., N. F.. VII, 1908, p. 155-156.)

Siehe „Blütenbiologie".

600. Heinricher, E. Über Androdiöcie und Andromonöcie bei
Lilium croceum Chaix und die systematischen Merkmale dieser Art.
(Flora. LXLVIII, 1908, p. 363—378, mit drei Textfig.)

Die Ergebnisse fasst Verf. wie folgt zusammen:
\. Der Mangel von Bulbillen ist für Lilium croceum nicht kennzeichnend;
an manchen Standorten bildet dasselbe konstant Bulbillen aus, an anderen
scheint die Bulbillenbildung seltener zu erfolgen und an wieder anderen
dürfte sie vollends fehlen.

2. Die Art ist aber durch Androdiöcie und Andromonöcie von dem, wie
es scheint, stets zwitterigen Lilium bulbiferum unterschieden.

3. Die männlichen Pflanzen von Lilium croceum sind immer schwächer als
die zwitterigen oder andromonöcischen.

4. Die Blüten der männlichen Pflanzen und die männlichen Blüten der
andromonöcischen enthalten stets einen Rest des Gynaeceums. Seiner
Stärke nach wechselt derselbe in weiten Grenzen.

5. Auch die Farbe der Blüten, die ja zur Benennung der Art benutzt
wurde, sowie die Zeichnung der Perianthblätter ist bei L. croceum gegen-
über L bulbiferum verschieden.

6. Da letzteres Merkmal an Herbarpflanzeu vor allem unbrauchbar ist und
zweifellos eine Verwechselung der beiden Arten L. croceum und L. bulbi-
ferum häufig stattgefunden hat, ist es wichtig, auf einen anderen Unter-
schied aufmerksam zu machen. Dieser ist gegeben in den stark glänzen-
den Blättern des L. bulbiferum und den mattglänzenden des L. croceum.
Das genannte Merkmal, durch einen verschiedenen Bau der Epidermis
der Blattoberseite bedingt, kann, wo etwa die makroskopische Unter-
suchung nicht zu klarer Entscheidung führen sollte, bei einer anatomischen
Prüfung stets zur sicheren Entscheidung benutzt werden. Die Oberhaut
der Blätter von L. bulbiferum besteht aus gleichartigen Zellen, während
jene von L. croceum eine bemerkenswerte Differenzierung aufweist; in
die Grundmasse der Epidermiszellen erscheinen streifenweise parallele
Züge von kurzen und derben, stark papillösen Zellen eingeschaltet.

7. Die Zahl der angeführten unterscheidenden Merkmale lässt Lilium cro-
ceum als wohlunterschiedene Art bezeichnen.

106 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. [106

8. Mehrere Lilhim- Arten (L. eroceum, L- bulbiferum, L. Martagon) entwickeln
am Sprosse oberhalb der Zwiebel einen Kranz von Adventivwurzeln.
An kräftigen, blühenden Exemplaren stets vorhanden, besitzen diesen
Wurzelkranz manchmal auch schon die nicht blühreifen Erstarkungs-
triebe.

601. Holm. Th. Medicinal plants of North America. 16. Medeola
virginiana L. (Mercks Eep., XVII, 1908, p. 147— 148, 12 fig.)

Siehe „Anatomie".

602. Holm, Tli. Medicinal plants of North America. 6. Erythronmm
americanwm Ker. (Mercks Eep., XVI, 1907, p. 223—225, fig. 1—12.)

Siehe „Anatomie".

603. l[rwing], W. Tulipa saxatüis. (Garden, LXXII, 1908, p. 214, Fig.)
Die Abbildung zeigt blühende Pflanzen.

604. I[rwing], W. Erythroniums. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII. 1908,
p. 212—213, fig. 94—96.)

Die Figuren zeigen blühende Pflanzen von Erythronium giganteum, E.
Hendersoni und E. Hartwegi.

605. Lindinger, Leonliard. Was ist Semele androgyna (L.) Kunth var.
laciniata BornmtLUer? (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 166 — 168.)

Diese Semele ist keine Varietät, sondern eine monströse Form f. montrosa
laciniata. Die blatt artigen Organe entsprechen einem aus mehreren Internodien
bestehenden Flachspross.

606. Lindinger, Leonhard. Die Struktur von Aloe dichotoma L. mit
anschliessenden allgemeinen Betrachtungen. (Beih. Bot. Centrbl..
XXIV, 1. 1908, p. 211-23:5. tab. VII— X.)

Siehe „Anatomie".

607. Loew, E. Der Sprossaufbau und die damit zusammen-
hängenden Lebenseinrichtungen von Allium Victoriaiis L. und der
Laucharten der Sektion MMzirideum. (Verh. Bot. Ver. Brandenburg. L,
1908, p. 1—16, 24 Fig.: p. 52—68, 29 Fig.)

Als Hauptresultat dieser eingehenden Arbeit hebt Verf. hervor, dass die
Arten dieser Sektion in zwei ökologisch verschiedene Gruppen zerfallen,
nämlich:

1. eine Gruppe, bei der der Verjüngungsprozess mit einer vielfachen Nieder-
blatthülle beginnt (.4. Victoriaiis, A. strictum) und

2. eine zweite, bei der der Verjüngungsprozess vorwiegend oder ganz aus
Laubblättern besteht; die Assimilation derselben tritt hier in der Begel
schon frühzeitig ein, so dass der Spross bis zur Blütezeit des Mutter-
sprosses zu einer je nach Umständen wechselnden Länge auszutreiben
vermag (A. angulosum und Verwandte A. ochroleucum, A. suaveolens). Nur
ausnahmsweise wurde in dieser Gruppe ein mit einem Niederblatt be-
ginnender Verjüngungsspross und ein Ruhezustand desselben — während
der Blütezeit des Muttersprosses beobachtet (A. petraeum).

Über das ökologische Verhalten von A- narcissiflorum Vill., insubricum
Boiss. et Beut, und A. dbligum wagt Verf. noch nicht zu entscheiden.

608. Loew, E. Der Blühvorgang von Colchicum autumnale L. und
C. byzantinum Ker-Gawl. ( Ber. D. Bot. Ges., XXVI, 1908, p. 1—18,
4 Textfig.)

Siehe unter „Befruchtungs- und Aussäuneseinrichtungen".

107] Liliaceae. 107

609. Mackenzie. Kenneth K. The pine-barren Bellwort [Uvularia
nitida]. (Torreya, VIII. 1908, p. 13—14.) N. A.

Verf. vergleicht die Arten Uvularia nitida, sessilifolia und puberula.

1)10. Mallett, U. B. The g e nus Phormium. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 148.)

Vorzüglich Gärtnerisches.

611. Mallelt, (i. B. Muscari i^Grape Hyacinths). (Garden, LXXII,
1908, p. 141, 153—154.)

Besprechung der Formen.

612. Miscenko, F. Über die Gagea der Flora der Krim und des
Kaukasus. (Act. Hort. Bot. Univ. Jurjev, IX, 1908, p. 57 — 87, eine Tafel.
Russisch.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und unter „Pflanzengeographie", sowie
Fedde, Rep. nov. spec.

613. Ortlepp, Karl. Der Einfluss des Bodens auf die Blüten-
füllung der Tulpen. (Flora, LXLVIII, 1908, p. 406—422.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

614. Othmer, B. Gonioscypha eucomioides. (Gartenwelt. XIII, 1908, p. 750,
Abbild.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

615. Pampanini, R. La Yucca australis Trelease. (Bull. Soc. tose.
Ortic, XXXIII, p. 62—67, in 8°, Firenze 1908.)

Referat noch nicht eingegangen.

616. Pampanini, R. Ancora a proposito della Yucca australis Tre-
lease. (Bull. Soc. tose. Ortic, XXXIII, 1908, p. 175.)

617. Plemper van Baien, B. A. Tulpeneenbladen of -dieven [„Tulip-
thieves" and „Oneleaves"]. (Med. Rijks hoog. Land-, Tum- en Boschb., School
Wageningen. I, 1908, p. 147 — 158, with english abstract.)

Nicht gesehen.

618. Purpus, A. Beaucarnea Pwyusi Rose. (Möllers deutsche Gärtner-
zeitung, XXIII, 1908, p. 223, eine Abb.)

619. Purpus, A. Yucca valida Brand egee. (Monatsschr. Kakteenkunde,
XVIII, 1908, p. 38, eine Abb.)

Die Abbildung zeigt eine grosse Pflanze bei Zacatecas in Mexiko.

620. Rade, K. Cordylinen und Dracaenen. (Gartenwelt, XIII, 1908,
p. 228—232, mit 12 Textfig.)

Die Abbildungen zeigen junge Pflanzen von Cordyline indivisa Doucetti,
( '. Bruanti, C. cannaefoUa, C. elegantissima, C Dallieri, Dracaena arborea,
D. fragrans, D. Draco, D. Rothiana, D. Bumphii, I). Goldieana. D. marginata.

621. Rose, J. N. Dasylirion genus atque affinis novis speciebus
mexicanis et centrali-americanis aueta. (Rep. spec. nov., V, 1908,
p. 113—116.)

Ex: Contr. Unit. St. Nat. Herb.. X, pt. 3, 1906, p. 87—92.

622. Rysselberghe, H. van. La eulture des oignons ä fleurs en
Hollande. (Rev. Hortic. beige et etrangere, 1908, 20, p. 344—346.)

L'auteur s'oecupe, notamment, de lappropriation des dunes en terrains
de eulture, de la preparation du sol, de la rotation des eultures, de l'acclimate-
ment de Liliu/m auratum et d'une nouvelle methode de multiplication artifi-
cielle des Jacinthes. — Henri Micheels im Bot. Centrbl., LIX, 1909, p. 269.

108 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [108

623. Schneider, J. M. Der Öffnungsmechanismus der Tulipa-
Anthere. (Ber. D. Bot. Ges.. XXVI, 1908, p. 394-398.)

Eine vorläufige Mitteilung von hauptsächlich physiologischem Inhalte.

1)24. Siehe. Walter. Scilla cilicica n. sp. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 194. Fig. 81.) N. A.

Die Abbildung zeigt Blütenstand und Blätter.

625. Simon, Eng. Une Asphodele nouvelle: Asphodelus Madeirensis
Simon (Contribution ä l'etude monographique du genre Asphodelus).
(Bull. Soc. Bot. Deux-Sevres, XX, 1908, p. 47—55, pl. XL) N. A.

Eingehende Besprechung dieser Neuheit und der verwandten A. fistu-
losus und tenuifolius-

026. Sykes, 31. G. Nuclear division in Funkia. (Arch. Zellforsch., I,
p. 381—399, 2 pl.)

Siehe „Anatomie der Zelle".

(i:!7. Trelease, William. Additions to the Genus Yucca: Species
novae. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 245—246.)

Ex: Rep. Miss. Bot. Gard., XVIII, 1907, p. 225—230.

628. Vigier, A. La formation de bulbilles chez les lis. (Rev.
Hortic, LXXX, 1908, p. 10.)

Verf. beschreibt, wie man die Bildung der Bulbillen künstlich veran-
lassen kann, indem man die Terminalknospe des Stengels zerstört und diesen
als Steckling behandelt. Es gelang bisher nur bei Lilium candidum.

629. W. Rare Indian Lilies. (Gard. Chron, 3. ser., XLIII, 1908,
p. 115.)

Betrifft Lilium nepalense, polyphylhwi und Lowii.

630. W., C. H. Asparagus filicinus. (Gard. Chron , 3. ser., XLIV, 1908,
p. 122. Fig. 47—48.)

Die Abbildungen zeigen Triebe von A. filicinus und var. Giraldii.

Marantaceae.

^eue Tafel:
Clinogyne arillata K. Schum. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 25.

631. Gagnepain, P. Marantaceae in Lecomte Flore gen. de l'Indo-Chine,
VI, 1908, p. 121 — 128, fig. 12— 13. j N. A.

Umfasst Vertreter von Schumannianthus, Donax, Halopegia, Stachyphrynium,
Phryn in m, Maranta.

Musaeeae.

(Vgl. auch No. 440, 441.)
Neue Tafel:
Strelitzia augusta Thbg. in Engler-Drude, Vegetat. d. Erde. IX, III, 1908
tab. XVI (Vegetationsbild).

Orchidaceae.

Neue Tafeln:

Aceras anthropophora in Camus, Ref. No. 077, pl. 16, fig. 435—441. Ana-
camptis pyramidalis in Camus. 1. c, pl. 15, fig. 421 — 428. Barlia longibracteata
in Camus, 1. c, pl. 15, fig. 404—410. Brasso-Laelia „Edward VII." in Orchis,
I, 1906. tab. 5. Bidbophyll u in Binnendijkii J. J. 8m. in Bot. Mag., CXXXIV,
1908, tab. 8187. B. Fascinator Rolfe in Bot. Mag., 1. c. tab. 8199. B. galbinum
Ridl. in Bot. Mag., 1. c, tab. 8216. B- Medusae in Orchis, I, 1907, tab. 11.

109] Marantaceae. Musaceae. Orchidaceae. 1Q9

Calypso borealis in Camus, I. c, pl. 28, fig. 972 — 973. Catasetum monodon Krzl.
in Orchis, I, 1906, tab. 6. XCattleya „Iris" in Orchis, I, 1907, tab. 10. C. la-
biata Trianae Backhouseana in Orchis, I, 1906, tab. I. C. labiata Warsceiviczii
in Orchis, I, 1906, tab. 7. Cephalauthera ensifolia in Camus, 1. c, pl. 32, fig. 114
bis 122. C. pallens, 1. c, pl. 32, fig. 1129—1136. C. rubra, 1. c, fig. 1123—1128.
Cephalopactis speciosa. I.e., pl. 30, fig.1059 — 1062. Cltamaeorchis aljnna in Camus,
1. c, pl. 15, fig. 429—434. Coeloglossum viride in Camus. 1. c., pl. 23, fig. 748
bis 756. Coelogync perakensis Rolfe in Bot. Mag.. 1. c, tab. 8203. Corallorhiza
innata in Camus, 1. c. pl. 31, fig. 1098—1101. Cottonia macrostaehya Wight in
Journ. Bombay Nat. Hist. Soc., XVIII, 1908, tab. VI. Cycnoches chlorochüon
Klotzsch in Orchis, I, 1906. tab. 8. Cymbidium bicolor Ldl. in Journ. Bombay
Nat. Hist. Soc, XVIII, 1908, tab. V. Cynorchis Lowiana in Gard. Chron., 3. ser.,
XLIII, 1908, tab. nigra ad p. 1S4. Cypripedium Calceolus in Camus, 1. c, pl. 32,
fig. 1102—1110. C. debile Echb. f. in Bot. Mag., CXXXIV. 1908, tab. 8183.
C macranthos in Camus, 1. c, pl. 32, fig. 1111 — 1113. Dendrobium Brymerianum
rGatton Park Varietv" in Gard. Chron.. 3. ser.. XLIV, 1908, tab. nigra ad p. 110.
D- Phalaenopsis Schroederianum in Orchis, I. 1906, tab. 9. Epidendrum falcatum
( Parkinsonianum) in Gard. Chron., 3. ser., XLIV. 1908, tab. nigra ad p. 378.
Epipactis atrorubms in Camus, 1. c, pl. 29, fig. 1024—1027. E- microphylla,
1. c, pl. 29, fig. 1019—1023. E. viridiflora, 1. c pl. 29. fig. 1028—1032.
E. latifolia in Camus, 1. c, pl. 30, fig. 1039—1046. E. palustris, 1. c, pl. 30,
fig. 1052—1058, var. viridiflora, 1. c. fig. 1062-1067. E. sessiliflora, 1. c, pl. 30,
fig. 1047-1051. Epipogon aphyllum in Camus, 1. c, pl. 28, fig. 990— 996. Eria
hyazinthina Ldl. in Bot. Mag., 1. c, tab. 8229. Gennaria diphylla in Camus,
1. c, pl. 14, fig. 392 — 395. Goodycra repens in Camus, 1. c, pl. 31, fig. 1076
bis 1082. Gymnadenia cucidlata in Camus, 1. c. pl. 26, fig. 894— 900. G. Fri-
valdii in Camus, 1. c, pl. 26, fig. 897 — 898. XG. intermedia in Camus, 1. c,
pl. 26, fig. 901—904. G. odoratissima. 1. c, fig. 905—912. G. conopea, 1. c,
fig. 918 — 932. G. deyisiflora, 1. c, fig. 913—917. XGym.-Nigritella braehystaehya
in Camus, 1. c, pl. 27, fig. 962 — 964. 'XGym.-Nigritella micrantha, 1. c, fig. 950
bis 954. XGym.-NigritellaHexifleri, I.e., fig.959— 961. XGym.-Nigritella suaveolens,
1. c, fig. 962—964. Herminium monorchis in Camus, 1. c, pl. 28, fig. 997 — 1005.
Laelia aneeps Sanderiana in Gard. Chron.. 1. c, ad p. 217. L- aneeps Williamsi
in Orchis. I, 1906, tab. 3. Laelia „Docteur Delac" (Lael. grandis tenebrosa X
L. praestans) in Eev. Hortic, LXXX, 1908. tab. col. ad p. 228 [der Name Laelio-
Cattleya auf der Tafel ist ein Druckfehler!]. Laelio-Cattleya Wellsiana (Cattleya
Trianae X Laelia purpurata) in Gartenfl., LV.II, 1908, p. 617, tab. col. 1578.
Limodorum abortivum in Camus, 1. c, pl. 31, fig. 1068 — 1074 und 1083— 10S5.
Liparis Loeselii in Camus, 1. c, pl. 28, fig. 974 — 977. L. tabularis Rolfe in
Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8195. Listera cordata in Camus, 1. c, pl. 29,
fig. 1014—1018. L. ovata, 1. c, pl. 29, fig. 1006-1013. Listrostaehys resicata
Echb. fil. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 26. Loroglossvm hir-
cinum in Camus, 1. c, pl. 15, fig. 411 417. Malawis pahidosa in Camus, 1. c,
pl. 28, fig. 978— 982. Microstylis monophyllos in Camus, 1. c. pl. 28, t. 9S3— 989.
Miltonia Warsczewiczii in Gartenfl., LVII. 1908, tab. col. 1574. Neotinea intaeta
in Camus, 1. c, pl. 15, fig. 396 — 403. Neottia nidus-avis in Camus, 1. c, pl. 29.
fig. 1033—1038. Nigritella angustifolia in Camus. 1. c, pl. 27, fig. 933 945.
iV. rubra, 1. c, fig. 946 — 94y. XOdontoglosmm Yaylsteckeae (Vochlioda Noetzliana
X Od. Pescatorei), Gartenflora, LVII, 190S, tab. col. 1569. fig. 1 (Blüte). XO.
eximium (O. ardentissimum X crispum) in Gartenflora, LVII, 1908, tab. col.

HO C- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [HO

1569, fig. 2 (Blüte). XO. Rolfeae (0. Pescatorei X Earryanum) in Gartenflora,
1. c, fig. 3. XO- Harryo-crispum, in Gartenflora, 1. c, fig. 4. XO. ardentissi-
mum „Imperatrice Auguste Victoria" (0. Pescatorei X 0. crispum) in Garten-
flora, LVII, 1908, tab. col. 1569, fig. 5 (Blüte). 0. Pescatorei „Westonbirt
Variety" in Gard. Chron., 3. ser, XLIV, 1908, tab. nigra ad p. 249. Oncidium
iridiflorum in Rep. Miss. Bot. Gard., XIX, 1908, Tafel ad p. 19. O. tigrinum
splendidum in Orchis, I, 1906, tab. 2. Ophrys Albertiana in Camus, 1. c, pl. 25,
fig. 867. O. apifera in Camus, 1. c, pl. 24, fig. 781—788. O. apifera var. aurita
1. c, pl. 27, fig. 958. O. arachnites in Camus, 1. c, pl. 24, fig. 791—800. O.
arachnitiformis in Camus, 1. c, pl. 24, fig. 772, 780. O. arachnitiformis in
Camus, 1. c, pl. 32, fig. 1136— 1137. O. aranifera in Camus, 1. c, pl. 24,
fig. 757 — 765; var. specularia, 1. c, fig. 773. Q. aranifera X arachnites, 1. c.,
pl. 25, fig. 823 825. O. aranifera X muscifera, 1. c, pl. 25, fig. 827—828,
8:54—839. O. atrata in Camus, 1. c, pl. 24, fig. 7568—7569. X O. Barlae (var.
bilineata Barla), 1. c, pl. 25. fig. 882 883. XO. Battandieri, 1. c, pl. 25, fig.
863. O. Bertoloni, 1. c, pl. 25, fig. 870— S74, O. bombylißora, 1. c, pl. 25,
fig. 854—860. O- ferrum-equinum, 1. c, pl. 25, fig. 869. (). fusca, 1. c, pl. 25,
fig. 840—843. O. funerea, 1. c, pl. 25, fig. 844— 846. XO. Grampinii in Camus,
1. c, pl. 14, fig. 390—391. 0. integra, 1. c, pl. 27, fig. 457. 0. iricola, 1. c,
pl. 25, fig. 847. 0. litigiosa in Camus, 1. c, pl. 24, fig. 766 — 767 ; var. virescens,
1. c, fig. 771. O. lutea, 1. c, pl. 35, fig. 829—933. XO. Luizeüi, 1. c, pl. 25,
fig. 868. XO. minuticana, 1. c, pl. 25, fig. 865. Q. muscifera in Camus, 1. c,
pl. 25. fig. 810—821. XO. Nouletii in Camus, 1. c, pl. 25, fig. 866. XO. Sara-
toi. 1. c, pl. 25, fig. 879—881. 0. scolopax in Camus, 1. c, pl. 24, fig. 801—809.
XO. semibombyli flora, 1. c, pl. 25. fig. 801- 8(52. 0. speculum, 1. c, pl. 25, fig.
848—85:5. 0. subfusca, 1. c., pl. 25, fig. 864. 0. tenthredinifera in Camus, 1. c,
pl. 24, fig. 775 — 777. Ophrys Tommasinii in Camus, 1. c, pl. 27, fig. 955. 0-
TroUii, 1. c, pl. 27, Fig. 956. Orchi-Aceras Bergoni in Camus, ]. c, pl. 10,
fig. 442. O.A. spuria, 1. c, fig. 443—444. O.-A. Weddellii, 1. c, fig. 445—447
O.-A. Henriquesea in Camus, 1. c, pl. 14, fig. 371 — ;572. O.-A. Wellwüschii
in Camus, 1. c, pl. 14, fig. 373—374. Orchi Coeloglossum Eräingeri in Camus,
f. c, pl. 14, fig. 381. X Orchi. -Gymnadenia Klingeana in Camus, 1. c, pl. 23,
fig. 735—742. XO.-G. Legrandiana in Camus, 1. c, pl. 26, fig. 884—887. XO.-G.
Regelii, 1. c, fig. 888-890. XO.-G. Lebrunii, 1. c, fig. 891—893. XOrchi-Plat-
anthera Chevalieriana in Camus, 1. c, pl. 23, fig. 74:5—745. Orchis acuminata in
Camus, 1. c, pl. 18, fig. 528— 5:51. XO. alata in Camus, 1. c, pl. 21, fig. 662—663.
XO. alatoides in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 620 621. XO. ambigua in Camus, 1. c,
pl. 21, fig. 668—670. 0. anatolica in Camus, 1. c, pl. 21, fig. 656—659. 0
Arbostii in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 629—631. XO. Barlae in Camus, 1. c,
pl. 20, fig. 014— 617. XO. Beyrichi in Camus, 1. c, pl. 18, fig. 525—527. XO.
Bonnieriana in Camus, 1. c, pl. 14, fig. 388— 389. XO. Bornemanniae in Camus,
1. c. pl. 13, fig. 367— 368. XO. Bornemanni in Camus, 1. c, pl. 13. fig. 369
bis .570. XO. Boudieri in Camus, 1. c, pl. 20, fig. Ii22— 622'. XO. Caccabaria
in Camus, 1. c, pl. 13, fig. 359. XO. Camusi in Camus, 1. c, pl. 16, fig. 448
bis 450. XO. Canuti in Camus 1. c, pl. 18, fig. 543-545. XO. carnea in
Camus, 1. c, pl. 23, fig. 746—747. 0. Champagneuxii in Camus, 1. c, pl. 17,
fig. 486. XO. Chatani in Camus, 1. c, pl. 18, fig. 516—517. 0. cordigera in
Camus, 1. c, pl. 21, fig. 660—661. 0. coriophora in Tarnus, 1. c, pl. 16, fig. 462
bis 466. XO. Dietrichiana iu Camus, 1. c, pl. 18. fig. 542. XO. dubia in
Camus, 1. c, pl. 18, fig. 520—522. 0. elodes in Camus. 1. c, pl. 22. fig. 701— 704.

ll\] Orebidaceae. 111

0- fallax in Camus, 1. c, pl. 19, i'ig. 582—584. 0. fragrans in Camus, 1. c, pl. 16,
fig. 456-461. XO. Franchetii in Camus, 1. c. pl. 18, fig. 508—510. XO.
Gennari in Camus, 1. c, pl. 14, fig. 382 — 385. XO. Grenieri in Camus, 1. c,
pl. 18, fig. 519. XO. Heraclea in Camus, 1. c, pl. 13, fig. 360. 0. iberica in
Camus, 1. c, pl. 21, fig. 655. O- incarnata in Camus, 1. c, pl. 22, fig. 691 — 700.
O- integrata in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 665 — 667. XO. intermedia in Camus. 1. c,
pl. 20. fig. 602—605. O. italica in Camus, 1. c, pl. 14, fig. 375—376. XO.
Jacquini in Camus, 1. c tab. 18, fig. 523—524. 0. latifolia in Camus, 1. c,
pl. 22, fig. 705—713. 0. laxifiora in Camus, 1. c, pl. 19, fig. 566. 0. laxiflora
in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 589—597. XO. Loguei in Camus, 1. c, pl. 27, fig.
652 — 654. 0. longicornu in Camus, 1. c, pl. 17, fig. 473 — 473'. 0- maculata in
Camus, 1. c, pl. 22, fig. 671—687. 0. mascula in Camus, 1. c, pl. 19, fig. 555
bis 568. 0. militaris in Camus, 1. c, pl. 18, fig. 502—506. 0. Mario in Camus,
1. c, pl. 17. fig. 474—482. 0. olbiensis in Camus, 1. c, pl. 19, fig. 549—554.
XO. olida in Camus, 1. c, pl. 16, fig. 451. 0. pallens in Camus, 1. c, pl. 18,
fig. 546-548. O. palustris in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 598 — 601. 0. papilionacea
in Camus, 1. c, pl. 17, fig. 465—470. 0- patens in Camus, 1. c, pl. 19, fig. 569
bis 572. 0. pauciflora in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 610 — 613. 0. Pauliana in
Camus, 1. c. pl. 16, fig. 452. O. picta in Camus, 1. c. pl. 17, fig. 483—485. 0.
prorincialis in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 606 — 609. 0. purpurea in Camus, 1. c,
pl. 18, fig. 489—501. 0. quadripundata in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 623—626.

0. romann in Camus, 1. c, pl. 27, fig. 643—648. XO. Kouyana in Camus, 1. c,
pl. 14, fig. 386—387. 0. rubra in Camus, 1. c„ pl. 17, fig. 471—472. 0. saccata
in Camus, 1. c. pl. 19, fig. 573—577. O. salina in Camus, 1. c, pl. 21, fig. 650
bis 651. 0. sambucina in Camus 1. c, pl. 21, fig. 632 — 642. 0. sancta in
Camus, 1. c, pl. 16, fig. 453—455. 0. Simia in Camus. 1. c. pl. 18, fig. 511
bis 515. 0. Spitzelii in Camus, 1. c. pl. 19, fig. 5/8—581. XO. subulata in
Camus, i. c, pl. 21, fig. 664. 0- taurica in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 627 — 628.
XO- Timbali in Camus, 1. c, pl. 20, fig. 618—619. 0. Traunsteineri in Camus,

1. c, pl. 22, fig. 688— 690. 0. tridentata in Camus, 1. c. pl. 18, fig. 5:^2—535. XO-
Uechtritziana in Camus, 1. c, pl. 17. fig. 487 — 488'. 0. ushdata in Camus, 1. c,
pl. 18, fig. 536—541. XO. Weddellii in Camus, 1. c, pl. 18, fig. 518. XO.
Yvesii in Camus, 1. c, pl. 13, fig. 361. Orehi-Serapias Nouletii in Camus, 1. c,
pl. 12, fig. 333—335. O.-S. Barlae in Camus, 1. c, pl. 12, fig. 336—337. O.-S.
purpurea in Camus, 1. c, fig. 349 — 350. O.-S. Touimasinü in Camus. 1. c, pl. 13,
fi^. 362—366. Paphiophyllum glaueophyllum in Orchis, 1, 1907, tab. 12. Phalae-
nopsis amabilis var. Kimestadtiana alba in Orchis, I, 1906, tab. 4. Piatanthera
bifolia in Camus, 1. c, pl. 23, fig. 714—720. P. moniana in Camus, 1. c,
pl. 23, fig. 721—726. XP- hybrida in Camus, 1. c. pl. 23, fig. 727—728. Pla-
tanthera algeriensis in Camus. 1. c, pl. 23, fig. 729 — 730 u. 748 — 749. P. tipvr
loides in Camus, 1. c, pl. 23, fig. 731—732. P. obtusata in Camus, 1. c, pl. 23,
fig. 733 — 734. Polystachya Latvrenceana Kränzl. iu Bot. mag., 1. c, tab. 8211.
Bhynchostylis retusa Bl. in Journ. Bombay Nat. Hist. Soc, XVIII, 1908, tab.
VII. X Serapias Alberti in Camus, 1. c, pl. 12, fig. 329— 332. Y.S- ambiqua in Camus,
1. c. pl. 12, fig. 338—340. S. eordigera in Camus, 1. c, pl. 11, fig. 320-323.
X& intermedia in Camus, 1. c, pl. 12, fig. 347—348. S. lingua in Camus, 1. c,
pl. 11. fig. 304 — 309. S. longipetala in Camus, 1. c, fig. 312 — 315. S- neglecta
in Camus, 1. c, fig. 316—319. XS. Laramberguci in Camus, 1. c, pl. 12, fig.
341—343. X-s'- meridionalis in Camus, 1. c, pl. 12, fig. 344—346 et pl. 14, fig.
377 — 379. S. neglecta X lingua forma in Camus, 1. c, pl. 14, fig. 380. S. occulata

112 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [112

in Camus, 1. c, pl. 11, fig. 324— 328. S. olbia in Camus, 1. c, pl. 13. fig. 351
bis 358. Spiranthes aestivalis in Camus. 1. c, pl. 31, fig. 1087 — 1090. S. aututn-
nalis, 1. c pl. 31, fig. 1091 — 1095 u. 1097. S. Romanzowiana, 1. c, fig. 1096
Traunsteinera globosa in Camus, 1. c, pl. 15, fig. 418 — 423. Trizevxis falcata in
Miss. Bot. Card. Rep. XIX, 190S, Tafel u. p. 11.

032. Aggs, H. Gurney. Cataxetmu fimbriatum. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 335-331;.)

Über Vorkommen.

633. Aggs, H. Gurney. Habitats of Brasilian Orchids. (Orchid Rev.,
XVI, 1908, p. 21—22.)

Betrifft Cattleya- und Laelia-Arten.

034. Arnes, Oakes. Orchidaceae. Illustrations and studies of the
family Orchidaceae issuing from the Arnes Botanical Laboratory North Easton,
Massachusetts. Fase. II. Boston and New York, Houghton, Mifflin and Comp.,
1908, 288 pp., with 9 tab. and illustr. i. the text. N. A.

Wieder ein neuer Band dieser musterhaften und kostbaren Publikation.
Die Einleitung bildet eine kritische Besprechung von Pfitzer-Kränzlin, Coeloginae
im Pflanzenreich. Eine Anzahl von Arten aus Band I werden neu beschrieben
und mit Tafeln versehen, auch wird eine Anzahl von Arten von Dendrochüwm
abgebildet. Den Hauptteil der Arbeit nimmt eine Bearbeitung von Orchideen
von den Philippinen ein, meist neuen Arten (siehe Index nov. spec), die fast
alle mit kleinen Blütenskizzen versehen sind. Den Schluss bilden eine Anzahl
neuer Arten aus Amerika, meist aus Mexiko und Guatemala. Schliesslich
findet noch der Index von Band I und IL Platz. F. Fedde.

635. Arnes, Oakes. Notes on Habevaria. (Rhodora. X, 1908, p. 70— 71 )

N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

636. Anonym. Orchid Notes and Gleanings. (Gard. Chron.. 3. ser.,
XLIV, 1908, p.4— 5, 42-43, 179, 210-211, 228, 258, 261, 291, 323, 374. 388. 425.)

Betrifft: Odontoglossum amabile Fowlerianum (Fig. 4) = O. crispum
punetatum violaceum X O. crispo-Harryanurn, Dendrobium amoenum, Cattleya
Warscewiczii „Frau Melanie Beyrodt", Odontioda Charlesworthii. — Odontoglossum
„Queen Alexandra" var. Crawshayanum (O. triumphans X Harryanum (Fig. 15),
Dendrobium hercoglossum, Bartholina pectinata, Vancla pxmiila (Fig. 16). — Holo-
tJirix villosa, Arachnanthe moschifera, Cirrhopetalum Macraei. — Oncidium
spilopterum, Catasetum Claesianum (Fig. 90). — Epidendrum Lambeauanum
(Fig. 99). — Cattleya ..Venus"' (C. „Iris" X C. Dowiana aurea (Fig. 112). —
Cypripedium aetaeus „Bianca" (Fig. 114). — Brasso-Laelia „Rosslyn" (Brassavola
Digbyana = Laelia „Latona"). — Dendrobium bicaudatum, Bulbophyllum lern'
niscatoides. — Sophro- Cattleya „Doris" (Fig. 150). — Vanda caerulea Chart esivorthi,
Tricliücentrum albopurpureum. — Odontoglossum „Leonidas" (Hallio-crispum X
triumphans), O. „Nemea" ( Wattianum Craioshayanum X triumphans), O. „Oxus"
(triumphans X Wilckeanum), Bulbophyllum virescens, Cypripedium ..Dreadnought"
(Fig. 162). — Cypripedium sanaetaeus etoniense (Fig. 171). -- Epidendrum costatum
(Fig. 173).

637. Anonym. Orchid Notes and Gleanings. (Gard. Chron.. 3. ser.,
XLIII, 1908, p. 18—19, fig. 13—14; p. 74. fig. 35: p. 114. fig. 45: p. 131, fig.
52—53; p. 162, fig. 67: p. 178—179, 194, fig. 81; p. 328-329, fig. 147—148;
p. 342, 362, 414. fig. 183 .

U3l Orchidaceae. 113

Betrifft: Odontoglossum crispum „Memoria Battle of Waterloo", Stanhopea
oculata, Cypripedium stanis (C Williamsianum X insigne Sanderae), C. eustacia-
num (C superbiens X argus). — Cypripedium Mimos „Youngs Variety" (C- Spiceri-
anuvn X Arthurianum [Fairrieanum X insigne]). — Diacro-Cattleya Colmaniae
(Diacrium bicomutum X Cattleya intermedia nivea). — Vanda Watsoni. — Den-
drobium Madonnae. Odontoglossum crispum rotundum. — Cattleya Trianae

„J. Gurney Fowler". — Dendrobium criniferum. — Odontoglossum Lairesseae. —
Odontoglossum crispum „Lynwood", 0. eximium „Centenary" (ardentissimum X
■crispum blotched Variety) und 0. Fascinator. — Catasetum discolor with male
and female flowers. — Cypripedium ventricosum album.

638. Anonym. Bulbophyllum orthoglossum. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 406, fig. 182.)

Die Figur zeigt einen Trieb mit Blüte.

639. Anonym. Odontoglossum percultum var. „J. R. Roberts". (Gard.
•Chron., 3. ser., XLIII, 1908, p. 395, fig. 177.)

Die Figur zeigt eine Blüte.

640. Anonym. M. Vuylstekes Odontoglossum. (Gard. ühron., 3. ser.,
XLIII, 1908, p. 362, fig. 164—166.)

Die Figuren zeigen Blüten von XO- maculatissimum, O. egregium „Mme.
Jule Hye de Crom" und XO. ardentissimum „Mme. Vuylsteke".

641. Anonym. Neue Odontoglossum -Hy briden aus dem Gartenbau-
Etablissement von Ch. Vuylsteke, Loochristi, Gent (Belgien).
(Gartenflora, LV1I, 1908, p. 57—59, tab. col. 1569.)

Siehe oben unter Tafeln.

642. Anonym. Paphiopedilum X Harrisianum abnormal. (Orchid Rev.,
XVI, 1908, p. 87.)

Über eine abweichende Blüte, die an dieser Hybride plötzlich auftrat.

643. Anonym. Cattleya X Fabia var. Vigeriana. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 89, Fig. 16.)

Ist C. Dowiana aurea $ X C labiata flammea S- Die Abbildung zeigt
eine blühende Pflanze.

644. Anonym. Hybridising with mixed pollen. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 97—98.)

Über Befruchtung von Laeliocaitleya Cappei mit gemischten Pollen von
Laelia flava und Cattleya Mendelii.

645. Anonym. Lycaste Skinneri alba. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 113,
fig. 19.)

Die Figur zeigt schöne Blütenpflanze.

(546. Anonym. The Hybridist. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 125, 158
bis 159, 185—186, 247-248, 317—318, 348.)

Betrifft: Laelia Groganii (L. flava X crispa), Odontoglossum Clytie (O.
Edivardii X O. nobile), Odontoglossum Eleanor (O. cirrhosum X Uroskinneri),
Odontioda Lutetia (CocJdioda Noetzliana X Odontoglossum luteopurpureum), Odon-
toglossum gemmatum (O. X elegans X Harryanum), O. Hiawatha (O. X elegant
X Harry anum); Odontoglossum Arlequin (O. X Fascinator X O. triumpJians),
■O. nethernense (O- Hunneivellianum X O- nobile), Paphiopedilum villoso-Roth-
schildianum var. Gaiety (P. villosum X P- Rothschildianum). ■ — Odontioda
■Charlesivorthii (Odontoglossum Harryanum X Cochlioda Noetzliana), Odontioda
St.-Fu seien (Cochl. Noetzliana X Odontogl. X Adrianae), Odontogl. Nerissa
(O. naevium $ X O. crispum <$). Odontogl. Andinella (O. X Andersonianum $ X
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 30. 6. 10.1 8

114 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |H4

0. Hunnewellianum S), Odontogl. hibernacum (0. Hallii $ X O. hastilabium $).
— Odontioda Tltwaitesii (Cochlioda vulcanica X Odontogl. Harry anum), Laelia
Rogersii (L. Cowanii X Dayana). — Epicatüeya Pearl (Cattleya Harrisoniana $
X Epidendrum ciliare 3). — Brassocattteya Dante (Cattleya Grossii X Brassa-
vola Digbyana), Brassolaelia Oecilia (Laelia pumila $ X Brassavola Digbyana $),
Cattleya Ereya (C. X Mantini X C Doumiana aurea).

647. Anonym. Habenaria carnea. (Orchid Rev., XVI, 1908. p. 304—305,
fig. 40.)

Blühende Pflanze abgebildet.

648. Anonym. Coelogyne Mooreana. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 329— 330,
fig. 42.)

Blühende Pflanze abgebildet.

649. Anonym. Cattleya Bowringiana. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 337,
fig. 43.)

Blütenstand abgebildet.

650. Anonym. Vanda Watsoni. (Orchid Rev., XVI. 1908, p. 354, Abbildung
vis ä vis Titelseite.)

651. Anonym. Vanda coerulea Charlesworthii. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 361-362, fig. 44.)

Blütenstand abgebildet.

652. Anonym. Dendrobium Phalaenopsis. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 146
bis 147, fig. 21.)

Blühende Pflanze abgebildet.

653. Anonym. Odontoglossum X maculatissimum. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 169, fig. 22.)

Blüte abgebildet. Eltern: O. maculatum X O. X ardentissimum.

654. Anonym. Laelio-Cattleya X Oliveri. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 187
bis 188.)

Ursprung noch nicht ganz sicher.

655. Anonym. Cattleya Lueddemanniana alba. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 201—202, fig. 26.)

Blüte abgebildet.

656. Anonym. Odontoglossum X egregium var. Madame Jules Hye de
Crom. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 209, fig. 27.)

Blüte abgebildet.

657. Anonym. Malforrned Orchids. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 221.)
Betrifft teratologische Fälle bei Cattleya intermedia, Odontoglossum crispum

und Millonia vexillaria.

658. Anonym. Odontoglosswn crispum „Queen of the Earth". (Orchid
Rev.. XVI, 1908,' p. 232—231, fig. 28-29.)

Zeigt Blüten einer Pflanze von 1906 und 1908, die sehr deutliche
Differenzen zeigen.

659. Anonym. Spathoglottis X Colmaui and its parents. (Orchid Rev.,
XVI. 1908, p. 241—242, fig. 30—31.)

Ist Spathoglottis X aureo-Vieillardii X £• aurea Gatton Park var.

660. Anonym. MasdevalUa coccinea. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 253.)
Es werden interessante Bemerkungen von Reichenbach fil. von 1868

reproduziert.

115] Orchidaceae. 115

661. Anonym. Paphiopediho» X Thalia var. Mrs. F. Wellesley.
(Orchid Rev, XVI, 1908. p. 273, fig. 37.)

Blüte abgebildet.

662. Anonym. Oattleya labiata [var. Roehrsiana]. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 281, fig. 38.)

Blütenstand der Form abgebildet.

663. Anonym. Orchis maculata. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 285.)
Wiedergabe einer Notiz von J. Ward im Strand Magazine.

664. Anonym. Miltonia vexillaria, Westonbirt Var. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 9, fig. 1.)

Die Abbildung zeigt einen Blütenstand.

665. Anonym. Dendrobiums. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 23—27.
fig. 2— 5 und p. 67—70. fig. 10—13.)

Die Figuren zeigen blühende Pflanzen oder Blüten von D thyrsiflorum,
Brymerianum, Harveyanum, Hildebrandii, nobile, Bensonae, atrooiolaceum, lin-
guiforme.

666. Anonym. Odontioda Devossiana. i Orchid Rev., XVI, 1908, p. 41 , fig. 6.)
Die Abbildung zeigt Blütenstand der Hybride Odontoylossum Edwardii

X Cochlioda Noetzliana.

667. Anonym. Paphiopedilum callomm. Disepalous. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 49, fig. 7.)

Zeigt eine normale Blüte und eine mit zwei Sepalen.

668. Anonym. XChondropetalum Fletcheri. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 56—57, fig. 8-9.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen von dieser Art und Chondro-
rhynclia Chestersoni. Diese letzte und Zyyopetalum Mackayi sind tue Eltern
der ersten.

669. Ascherson, P. Wer ist der Autor von Orchis incarnata var.
ochroleuca? (Archiv Ver. Freunde d. Naturgesch. Mecklenburg, LXI, 1907,
p. 123-125.)

Xicht gesehen.

670. Bailey, W. W. Some wild orchids. (Amer. Bot., XIV, 1908,
p. 1 — 2, with plate of Calopogon pulchellus-)

Nicht gesehen.

071. Bartsch, G. Cattleya Skinneri Ldl. (Orchis, I, 1900, p. 20, fig. 10.)

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze.

672. B[ehnick], E. B. Epidendrum paniculatuni R. et P. (Gartenwelt, XIII,
1908, p. 98, Fig.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

673. Bfehnick], E. B. Aagraeeum caudatum Ldl. (Orchis, I, 1906, p. 20,
fig. 11.)

Die Abbildung zeigt blühende Pflanze.

074. Bernard, N. La culture des Orchidees dans ses rapports
avec la symbiosa. (Gand, E. Sacre, 1908, 20 pp., ill)

Siehe im mycologischen Teile des Just.

675. Blossfeld, Robert. Über Orchideenvarietäten und ihre Be-
wertung. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 336-341, 8 Fig.)

Die Abbildungen zeigen Blüten von Odontoglossum crispum Karthausi,
O. Pescatorei Veitchi, Cattleya Hardyana „Rexa, C- „Enid Karthausi", C. Gas-
kelliana alba und C Gaskelliava Karthausi, sowie C „Ella Varietät Potsdam".

8*

116 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [116

676. Bremen. Ein merkwürdiger Blütenstand bei Cattleya labiata
Warscemczii. (Orchis, I, 1906, p. 52 — 53, fig. 27.)

677. Camus, E. G. et Bergon, P. Monographie des Orchidees de
l'Afrique septentrionale, de FAsie Min eure et des Provinces
ßusses Transcaspiennes. (Paris 1908, 550 pp., 32 pl.)

Vgl. „Pflanzengeographie von Europa". Das Werk ist wertvoll vor
allem wegen der oben unter Tafeln verzeichneten farbigen und schwarzen
Abbildungen. Die billigere Ausgabe hat nur schwarze Tafeln.

678. Cogniaux, Alfred. Orchidaceae novae Brasiliae atque terrarum
adjacentium. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 312 — 317.)

ex: Bull. Soc. Roy. Bot. Belg., XLIII, 1906, p. 266—356.

679. Cogniaux, Alfred. Orchidaceae novae Brasiliae atque terrarum
adjacentium. (Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 55 — 63.)

ex: Bull. Soc. Roy. Bot. Belg., XLIII, 1906, p. 266—356.

680. [Connell, E.] Orchid Culture in Java. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 36-37.)

Ein Brief des Verf., worin er einige interessante Beobachtungen über
Insekten, die Orchideen befruchten, erwähnt.

681. Crawshay, B. de. Orchid notes and Gleanings. (Gard. Chron.,
3. ser., XLIII, 1908, p. 211, 275, 328).

Betrifft: Odontoglossum ardentissimum, Laelia anceps Roeblingiana und
Odontioda Keighleyense (Cochlioda Noetzliana X Odontoglossum cirrhosum).
yCOdontoglossiim Carmania (O. Harryanum X O- Lucasianum TJtompsoni). —
Odontoglossum „Vulkan" (O- Vuylstekei X crispum).

682. Dammer, U. Kurze Übersicht über die Gattungen und
Arten der Üy pripedilinen. (Orchis, I, 1906, p. 50 — 52, 57- — 60, 65 — 67,
76—78, 81—82.)

683. Dammer, U. Cattleya labiata Warscewiczü. (Orchis, 1, 1906, p. 53,
tab. 7.)

684. Dammer, U. Cycnoches chlorochilon Klotz seh. (Orchis, I, 1906,
p. 60-61, tab. 8)

685. Dammer, U. Über die geographische Verbreitung und die
Standorts Verhältnisse der Masdevallia '-Arten. (Orchis, I, 1906, p. 69 — 70.)

686. Dammer, IL Die Arten der Gattung Amblestoma. (Orchis, I.
1907, p. 83—84, fig. 38.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze von A. tridaetylum und
Blütendetails.

687. Dammer, U. Dendrobium Phalaenoyms Fitzg. COrchis, I. 1907, p. 85,
fig. 39.)

Die Abbildung zeigt Blütendetails.

688. Diels, L. Die Orchideen. Osterwieck (Harz), 1908, kl. 8°, 107 pp.,
4 färb., 4 schwarz. Taf. u. 30 Abb.

Dies Büchlein zählt zur Sammlung naturwissenschaftlicher Monographien,
die unter dem Titel „Die Natur" erscheint. Es behandelt die so interessanten
morphologischen und biologischen Eigenheiten der Orchideen in anschaulicher
Weise. Und zwar werden in den einzelnen Kapiteln besprochen: Wuchsform
und Lebensweise, Blüte (Bau, Bestäubung), Fruchtbildung, Keimung, geo-
graphische Verbreitung, systematische Gliederung sowie Geschichte der Orchi-
deenkunde in Wissenschaft und Gartenbau.

[ t 7 1 Orchidaoeae. 1 1 7

689. Druce, G. Helleborine Hill v. Epipactü Ad ans. (Journ. of Bot.,
XLV1. 1908, p. 8—10.)

Verf. weist nach, dass Helleborine Hill an Stelle von Epipactis Adanson
zu treten habe.

690. Eaton, A. A. Epipactis, Serapias atque Serapiastrum. Commu-
tationes nomenclatoriae. (Rep. nov. spec. VI, 1908, p. 40—44.)

ex: Proc. Biol. Soc. Wash., XXI, 1908, p. 63—68.

691. Eaton, A. A. Nomenclatorial studies in three orchid genera.
'Proc. biol. Soc. Wash., XXI, 1908, p. 63—67.) N. A.

66 neue Kombinationen, die Epipactis, Serapias und Serapiastrum betreffen.
Siehe „Index nov. gen. et spec."

691a. Piiiet, E.-E. Orchidees nouvelles ou peu connues IL
(Bidl. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 333-343, Fig. 1—2. N. A.

Betrifft Arten von: Microstylis, Oberonia, Oreorchis und Liparis-

692. Fürstenberg, Max von. Seltenere Orchideen aus meiner
Sammlung. (Orchis, I. 1906, p. 4—5, 17—18.)

Betrifft: Coelogyne barbata Ldl.; elata Ldl., Dendrobium aemulum R. Br.,
D. Fytochianum Bat., D- cymbidioides Ldl., Masdevallia macrura Rchb. f., M.
simula Rchb. f., M. )>mscosa Rchb. f., Odontoglossum astranthum Rchb. f.

693. Gammee. G. A. The Orchids of the Bombay Presidency.
(Journ. Bombay Xat. Hist. Soc, XVIIT, 1908, p. 586—590, pl. V— VI, p. 833
bis 834, pl. VII.)

Siehe Tafeln am Kopfe der Familie.

694. Grignan, G- T. La transmission de l'Albinisme chez les
Orchidees. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 429—430.)

695. Guttenberg, H. von. Über den Bau der Antennen bei einigen
Catasetvm- Arten. (Sitzb. kaiserl. Akad. Wiss. Wien, 1, CXVII, 1908, 22 pp.,
2 Tafeln.)

Siehe „Anatomie".

696. Hemsley, W. Botting. AnotherSpecimen of Piatanthera chlorantha
with three Spurs. (Journ. Linn. Soc. London, XXXVIII, 1908, p. 391—394,
2 Textfig.)

Siehe „Teratologie".

697. Hennis, Wilhelm. Phalaenopsis Lindeni. (Orchis, I, 1907, p. 82 — 83,
fig. 37.)

Die Abbildung zeigt Blütenstand und Blütenanalysen.

698. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 13. Cypri-
pedium pubescens Willd. (Mercks Rep., XVII, 1908, p. 00—62, 9 figs.)

Siehe „Anatomie".

699. Ijrwing], W. Hybrid between Orchis latifolia and maculata.
(Gard. Chrom, 3. ser., XLIV, 1908, p. 194, fig. 82.)

Die Abbildung zeigt blühende Pflanzen.

700. Jörgensen, E. Orchis maculatus L. X Coeloglossum viride (L.) Hartm.
(Bergens Mus. Aarbog, 1908, 8, 13 pp., 5 figs.)

701. Kjränzlin], F. Xeue und seltene Arten [Lycaste Hennisiana].
(Orchis, I, 1906, p. 33.) N. A.

702. Kränzlin. Fr. Orchidaceae novae bolivienses. (Rep. spec. nov.,
VI, 1908, p. 18—23.) N. A.

Hg C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. [HS

703. Kl'änzlin, Fr. Namensänderungen. (Rep. spec. nov., VI, J908.
p. 65.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

704. Kl'änzlin, Fr. Orchidaceae quaedam Tibeticae. (Rep. spec. nov.
V, 1908, p. 196—200.) N. A.

705. Kristofowic, A. Über Orchis Comperiana Stev. (Bull. Jard. Imp. .
Bot. Petersbourg, VIII, 1908, p. 1 — 5, russisch, mit ganz kurzem deutschen
Resümee, eine Textf.)

Verf. beschreibt die Art und bespricht die systematische Stellung, geo-
graphische Verbreitung usw.

706. Ledien, F. Coryanthes maculata Hook. var. (Orchis, I, 1906, p. 5,
fig. 2 et p. 17—18, fig. 9.)

Die Figuren zeigen eine Blüte in natürlicher Grösse und im Längs-
schnitt.

707. Ledien, F. Maxillaria Sancleriana Rchb. (Orchis, I, 1906, p. 41,
fig. 18.)

Die Figur zeigt eine Blüte.

708. Le Gendre, Ch. Genre Spiranthes Richard. (Rev. sc. Limousin,
XVI, 1908, p. 290—295, 2 cartes.)

Nicht gesehen.

709. M. Hardy lad y 's Slippers (Cypripedium). (Garden, LXXII, 1908.
p. 10, 29, 83.)

Besprechung der Freilandarten.

7 1 0. Magnus, C. Bildungsabweichungen einiger Blüten von Cypri-
pedium. (Orchis, I, 1907, p. 74—75, fig. 32—35.)

Siehe „Teratologie".

711. Magnus, C. Anormale Spaltungen im Sepalen-Kreise bei
Cypripedium insigne vel äff. (Orchis, I, 1907, p. 85—86, fig. 40—41.)

Siehe „Teratologie".

712. Miethe, E. Cynorehis purpurascens Thou. (Gartenwelt, XIII, 1908,
p. 97—98, 2 Textf.)

Die Abbildungen zeigen Blüte und blühende Pflanze.

713. Moore, F. W. Lesser known Orchids. (Journ. R. Hort. Soc.
Lond., XXXIII, 1908, p. 378—394, fig. 52—61.)

Die Figuren zeigen Blüten bzw. Pflanzen von: Gongora semilis, Bulbo-
phyllum miniatum, B. dichromum, Eulophiella Peetersiana, Arachnantlie annamensis,
Epidendrum vesicatum, Cymbidium grandiflorum, Dendrobiiim cymbidioides und
triflorum, D. lingniforme, MasdevaJlia velifera-

714. Murr, J. Zur Kombination Ophrys aranifera Huds. X Bertoloni
Moretti. (Ung. Bot, BL, XXII, 1908, p. 198—199.)

715. Nestler, A. Das Hautgift der Oypripedien. (Wiesner-Festschr.,
Wien 1908, p. 200—206.)

Siehe „Chemische Physiologie".

716. Oertel, 6. G. Eine dankbare und schöne Orchidee. (Orchis,
I, 1900, p. 52, fig. 25—26.)

Es handelt sich um Paphiopedilum oenantlium superbum und die Ab-
bildungen zeigen eine blühende Pflanze und eine Blüte.

717. Othmer, B. Coelia Baueriana Ldl. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 400,
Abbildung.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

119] Orchidaceae. 119

718. Othmer, B. Epidendrum. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 74, 3 Fig.)
Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen von E- fragrans Sw., gluma-

caum Ldl. und E. radiatum Ldl.

719. Putzer, E. Der morphologische Aufbau der Orchideen.
(Orchis, I, 1906, p. 9—11, fig. 1—4.)

Ganz Alloemeines.

720. Porsch, 0. Die descendenztheoretische Bedeutung sprung-
hafter Blütenvariationen und korrelativer Abänderung für die
Orchideenllora Süd-Brasiliens. (Zeitschr.indukt. Abstamm.- u. Vererbgsl.,
I, 1/2, p. 70.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

721. Robinson, W. The biology of the propagative buds of Malaxis
paludosa. (Naturalist, 1908, G21, p. 367—369, 1 pl.)

Nicht gesehen.

722. Rolfe, R. A. Cycnoch.es maculatum. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 370
bis 371.)

Besprechung.

723. Rolfe, R. A. Dendrobium criniferum- (Orchid Bev., XVI, 1908,
p. 254—255.)

Besprechung der Art und Verwandter.

724. Rolfe, R. A- Liparis atrosanguinea ; Coryanthes splendens- (Orchid
Rev.. XVI, 1908, p. 272, 274.)

Besprechung der Arten.

725. Rolfe, R. A. Catasetum fimbriatum. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 283.)
Besprechung der Art und Formen.

726. Rolfe, R. A. Cattleya X Claesiana. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 287, 295.)

Ursprung noch unklar. Ob C. intermedia X C Harrisoniana? In der
zweiten Note wird die frühere Annahme C. Loddigesii X Harrisoniana für
richtig gehalten.

727. Rolfe, R. A. Odontoglossum crocidipterum. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 295.,

Notiz über die seltene Art.

728. Rolfe, R. A. Cycnoches Egertonianum. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 296-299, fig. 38—39.)

Betrifft die verschiedenen $ und <J Blüten, wie sie auf selber Pflanze
auftreten.

729. Rolfe, R. A. Goweriia lagenophora. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 316
bis 317.)

Erläuternde Notizen.

730. Rolfe, R. A. Pleurothallis leptoüfolia. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 360.)

Kurze Besprechung.

731. Rolfe, R. A. Odontoglossum X Crawshayanum Thompsons var.
and 0- Hallii nigrum. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 177—178, fig. 24—25.)

Blüten abgebiltet.

732. Rolfe, R. A. Cypripedium Thunbergii. (Orchid Rev., XVI, 1908.
p. 186—187.)

Besprechung der meist verkannten Art von Blume.

120 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [120

733. Rolfe, R. A. Epidendrum Pentotis. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 189.)
Hiermit ist synonym E. fragrans var. megalanthtim Ldl. = E. confusum

Rolfe.

734. Rolfe, R. A. Bulbophyllum mirum J. J. Smith. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 190.)

Beschreibung der Art.

735. Rolfe, R. A. Bromheadia Finlaysoniana Rchb. f. (Orchid Rev., XVL
1908, p. 200, 351.)

Beschreibung.

736. Rolfe, R. A. Cattleya X O'Brieniana. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 231.)

Ist C. dolosa X C. Loddigesi.

737. Rolfe, R. A. Bletia coccinea; Miltonia Roezlii; Epidendrum costatum;
Catasetum spinosum. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 248—253, fig. 33.)

Beschreibungen. Abgebildet Miltonia Roezlii.

738. Rolfe, R. A. Dendrobium delicatum. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 88, 112)

Verf. behandelt diese noch etwas mysteriöse Art und ähnliche Formen.
In der zweiten Notiz wird delicatum als O- speciosum $ X O. Kingianum $ be-
zeichnet.

739. Rolfe, R. A. Orchids: their structure, developement, and
fertilisation. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 90-92, 99—101, 131—134, 215
bis 219.)

Notes of a lecture.

740. Rolfe, R. A. Angulocaste Bievreana. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 92
bis 93.)

Hybride Anguloa Bickeri X Lycaste Skinneri var. pallida.

742. Rolfe, R. A. Inheritance of Albinism in Orchids. (Orchid
Rev., XVI, 1908, p. 102-106, fig. 17—18; p. 228-230, 265—268, fig. 34-36;
p. 336.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

743. Rolfe, R. A. Angraecum hyaloides. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 137
bis 138, fig. 20.)

Blühende Pflanze abgebildet.

744. Rolfe, R. A. Chytroglossa Marileoniae. (Orchid Rev., XVI, 1908,
p. 159.)

Kurze Besprechung.

745. Rolfe, R. A. Bisa longicormi. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 165—166.)
Besprechung des Vorkommens.

746. Rolfe, R. A. The genug Porpax. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 7—8.)
Kurze Hinweise.

747. Rolfe, R. A. Paphiopedilum X Frankeanum. (Orchid Rev., XVI,
1908, p. 29.)

P. Curtisü X foMswm-Kreuzung.

748. Rolfe, R. A. Laelio-Cattleya Isaacsii. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 29
bis 30.)

Vielleicht eine Hybride Laelia Boothiana X Cattleya Harrisoniana.

749. Rolfe, R. A. Laelia X Adrienne. (Orchid Rev., XVI, 1908, p. 31.)
Hybride zwischen L- pumila X Jougheana.

1211 Orchidaceae. 121

750. Rolfe. R. A. Albinism and Mendels „Laws" of inheritance.
(Orchid Rev.. XVI, 1908, p. 58-01.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

751. Rolfe, R. A. XDiacattleya Colmaniae. (Orchid Rev.. XVI, 1908,
p. 80—83, fig. 14—15.)

Die Eltern sind Diacrhim bicornutum £ und Cattleya intermedia var.
nivea $. Diacrium und die Hybride werden abgebildet. Verf. zählt dann die
bekannten bigeneren Hybriden auf.

752. Rolfe, R. A. New Orchids. Decade 31— 32. (Kew Bullet., 1908,
p. 68-73, 412—41(5.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

753. Royer, Eugene. Nouveaute Botanique. (Bull. Soc. Sei. Nat.
Haute-Marne, IV, 1907, No. 17.) N. A.

Betrifft Orchis Ludet Royer = O- Morio X sambucina-

754. Sandhack, Herrn. A. Vanda Denisoniana Benson et Rchb. f.
(Gartenvvelt. XIII, 1908, p. 223, 2 Textfig.)

Die Abbildungen zeigen Pflanze und Blütenstand.

755. Sargent, 0. H. A new Pterostylis. (Journ. W. Australian nat. Hist.
Soc. IV, 1907, p. 24-25.)

756. Sargent, 0. H. The pollination of Caladenia Barbarossae. (Journ.
W. Australian nat. Hist. Soc, IV, 1907, p. 6—12.)

Siehe im ..Blütenbiologischen Teile" des Just.

757. Schlechter, R. Über eine neue Bifrenia [Fürstenbergiana]. (Orchis,
I, 1906, p. 25, fig. 12.) N. A.

Die Figur zeigt Blütendetails.

758. Schulz, G. Sobralia macrantha im Zimmer. (Orchis, I, 1906, p. 30
bis 31, fig. 14—15.)

Die Figuren zeigen blühende Pflanze und Blüte.

758a. Schuster, Julius. Über einen monströsen Orchis purpureus-
(Mitt. Bayr. Bot. Ges.. IL 1908, p. 129—130.)
Siehe „Teratologie".

759. Schweizer, Th. Maxillaria Sanderiana. (Gartenwelt, XIII, 1908,
p. 400—401, Abb.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

760. Smith, J. J. Orchidaceae Javanae. (Rep. nov. spec, V, 1908,
p. 289-305.)

Ex: Bull. Dep. Agric Indes Neerl., XIII, 1907, p. 1—78.

761. Smith, J. J. Vorläufige Beschreibung neuer papuanischer
Orchideen. (Bull. Dept. Agric. Indes neerland., 1908, 19, 39 pp.) X. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec". Es handelt sich um Vertreter der
Gattungen: Agrostophyllum, Appendieida, Bulbojrfiyllum, Ceratostylis, Corysanthes,
Dendrobium, Dipodiunu Epiblastus, Eria, Eulophia, Geissanthera, Glomera,
Habenaria, Hetaeria, Lecanorchis, Liparis, Mediocalcar, Microstylis, Oberonia,
Phreatia, Plocoglottis, Podochilus, Pogonia, Saccolabium, Sarcanthus, Taeniophylhtm,
Thrixspermum, Tropidia, Vanda, Vrydaggynea.

762. Smith, J. J. Die Gattung Glossorrhyncha Ridl. (Bull. Dept.
Agric. Indes neerl., 1908, No. XV, p. 27-29.) N. A.

Verf. zieht die Gattung ein und stellt alle Arten zu Glomera. Diese
gliedert er in:

Sektion I. Capitatae: Blüten in köpfchenähnlichen Blütenständen.

122 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [122

Sektion IL Uniflorae: Blütenstände einblütig. Bei dieser Sektion scheint
der Sporn stets verhältnismässig länger zu sein.

762a. Smith, J. J. Neue Orchideen des malaiischen Archipels. IL
(Bull. Dept. Agric. Indes neerl., 1908, No. XV, p. 1—26.) N. A.

Vgl. „Index nov. gen. et spec". Es handelt sich um Vertreter der
Gattungen: Tropidia, Coelogyne, Dendrochüum, AgrosiopJtyllum, Ceratostylis,
Dendrobium, Eria, Bidbophyllum, Appendicula, Sarcanthus, Trichoglottis, Sacco-
labium-

763. Sommier, S. Intorno alla Piatanthera bifolia var. tricalcarata
So mm. (Bull. Soc. Bot. Ital., 1908, p. 21—23.)

Ref. noch nicht eingegangen.

764. W[agner], R[udolf]. Die Gattung Coryanthes Hook. (Öster.
Gartenztg., III, 1908, p. 66-68, 120—123, 138—140, 3 Textfig.)

Allgemeine Darlegungen. Die Abbildungen zeigen Blüten von C. macu-
lata Hook, und leucocorys Rolfe.

765. W[ellesley, Francis]. The twenty best Hybrid Cypripedium.
(Orchid Rev., XVI, 1908, p. 353-354.)

Aufzählung der Namen.

766. Wildeman, E. de. Über neue Arten und Formen aus Brasilien.
.(Orchis, I, 1906, p. 25, fig. 13.) N. A.

Betrifft die neuen Maxillaria Bi.noti und M. Ferdinandiana var. luteol-a.

767. Wildeman, E. de. Eine monströse Blüte von Cymbidhmi Lowii.
(Orchis, I, 1906, p. 35, fig. 16—17.)

Es handelt sich um einen Fall von Synanthie.

768. Wildeman. E. de. Zur Kenntnis einiger Odontoglossum- Arten.
(Orchis. I, 1906, p. 50, fig. 22—24.)

Betrifft O. Williamsianum Rchb., Schlieperianum Rchb. und grande Ldl.

769. Witt, Otto N. Hybridising with stored pollen. (Orchid Rev.,
XVI, 1908, p. 35—36.)

Siehe „Varietäten, Descendenz" usw.

770. Zimmermann, W. Orchis coriophora X morio. (Mitt. badisch. Landes-
vereins Naturk., 1908, No. 228—230.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

771. Zodda, G. Ophrys lutea iCay. for 'ma pallens mihi. (Boll. del Natura-
lista, XXVIII, p. 77—78, in 4«, Siena 1908.) N. Ä.

Descrizione della nuova forma, raccolta dall' A. presso Messina.

Palmae.

Neue Tafeln:
Borassus flabellifer L. var. Aethiopium Warb, in Engler-Drude, Veget. der Erde,

IX, II, 1908, tab. XI (Vegetationsbild).
Calamus formosus Becc. in Miyoshi, Atl. jap. Vegetat., sect. X, 1908, tab. 81

(Vegetationsbild).
Chamaerops humüis L. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 38

(Vegetationsbild).
Hyphaene Bussei Damm, in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 44

(Vegetationsbild).
H. coriacea Gaertn. in Engler-Drude, Veget. der Erde, IX, II, 1908, tab. XII

(Habitusbild).

123 1 Palmae. 123

Phoenix rcclinata Jacq. in Engler-Drude, Veget. der Erde, IX, II, 1908, tab. X

(Vegetationsbild).
Raphia Laurentii de Wild, in Tbonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 10 — 11.

B. Monbuttorum Drude in Engler-Drude, Veget. der Erde, IX, II, 1908, tab. XIII

(Vegetationsbild).
Calciums acantkospatlius Griff, in Ann. R. Bot. Gard. Calcutta, XL 1908, pl. 105.
C adspersus Bl., 1. c, pl. 145. C. akimensis Becc, 1. c, pl. 25 A. C- albus Pers.,
1. c, pl. 199. C- andamanicus Kunz., 1. c, pl. 163 — 164. C- aquatilis Ridley,
1. c, pl. 168 — 169. C- arborescens Griff., 1. c, pl. 7. C- arnensis Becc, 1. c,
pl. 209. C. asperrimus Bl, 1. c, pl. 186. C. australis Mart., 1. c, pl. 72. C
axillaris Becc, 1. c, pl. 181. C. bacularis Becc, 1. c, pl. 107. C. barbatus Zipp,
1. c, pl. 87. C. Barterii Becc, 1. c, pl. 20. C. Blanco Knuth, 1. c, pl. 64.

C. Blumei Becc, 1. c, pl. 137. C- Bonsigonü Pierre, 1. c, pl. 139. C. brachy-
stachys Becc, 1. c, pl. 222. C- Brandis Becc, 1. c, pl. 102. C. bubuensis Becc,
1. c, pl. 183. C. Burckianus Becc, 1. c, pl. 18. C. caesius Bl, 1. c, pl. 189.
C caryotoides Allen Cunn, 1. c, pl. 56. C- castaneus Griff., 1. c, pl. 16. C. cili-
aris Bl, 1. e, pl. 129. C. concinnus Mart, 1. c, pl. 60. C. coniorostris Becc,
1. c, pl. 220. C. corrugatus Becc, 1. c , pl. 43. C. Cumingianus Becc, 1. c,
pl. 142. C. Cuthberstonü Becc, 1. c, pl. 148. C. deerratus Mann et Wendl,
1. c, pl. 19. C. Delessertianus Becc, 1. c, pl. 101. C. delicahdus Thw, 1. c,
pl. 82. C- densiflorus Becc c, 1. c pl. 157. C. Diepenhorstii Miq, 1. c, pl. 126.
C Diepenhorstii (Miq.) var. singaporensis Becc, 1. c, pl. 127. C. didytnocarpus
Warb, 1. c, pl. 213. C. digitatus Becc, 1. c, pl. 28 — 29. C. dilaceratus Becc,
1. c, p. 15. C. dimorphacantlms Becc, 1. c, pl. 219. C. dioieus Lour, 1. c,
pl. 51. C. discolor Mart, 1. c, pl. 228. C- donguaiensis Pierre, 1. c, p. 8. C
Doriaei Becc, 1. c. pl. 191. C. erectus Hoxb., 1. c, pl. 1. C. erectus birmanicus
Becc, 1. c, p. 3. C. erectus sehizospathus (Griff.) Becc, 1. c, pl. 2. C. erio-
eanthus Becc, 1. c, pl. 187. C. exilis Griff, 1. c, pl. 130. C. Faberii Becc.
1. c, pl. 99. C. falabensis Becc, 1. c, pl. 22. C. Feanus Becc, 1. c, pl. 106,
C ferrugineus Becc, 1. c, pl. 225. C. fertilus Becc, 1. c, pl. 226. C- filiformis
Becc, 1. c, pl. 42. C. filipendulus Becc, 1. c, pl. 45. C. flabellatus Becc, 1. c,
pl. 37. C- Flagelhim Griff, 1. c, pl. 4 — 5. C. Flayellum karinensis Becc, 1. c,
pl. 6. C- floribundus Griff, 1. c, pl. 47. C. floribundus (Griff.) var. depauperatus
Becc, 1. c, pl. 48. C. formosanus Becc, 1. c, pl. 172 et 172 A. C. Gamblei
Becc, 1. c, pl. 123. C- giganteus Becc, 1. c, pl. 197. C. Godefroyi Becc, 1. c,
pl. 96. C. gogolensis Becc, 1. c, pl. 93. C. qonospermus Becc, 1. c, pl. 46,
C gracilis Roxb, 1. c, pl. 124. C. Griffithianus Mart, 1. c, pl. 17. C. Guraba
Harn, 1. c, pl. 114 — 115. C- Harmandi Pierre, 1. c, pl. 229. C- Hartmanni
Becc, 1. c, pl. 231. C- Henryanus Becc, 1. c, pl. 223. C heteracanthus Zipp,
1. c, pl. 140. C. heteroidens Bl, 1. c, pl. 77. (7. heteroidens var. pallens (Bl.)
Becc, 1. c, pl. 78. C. Helf'erianus Kurz, 1. c, pl. 83. C. Heudelotii Becc, 1. c,
pl. 21. C. liispidulus Becc, 1. c, pl. 131. C. Hollrungii Becc, 1. c, pl. 210.
C. Hookerianus Becc, 1. c, pl. 70. C. horrens Bl, 1. c, pl. 95. C. Huegelianus
Mart, 1. c, pl. 122. C. hypoleucus (Kurz.) Becc, 1. c, p. 119. C. inermis T. And,
1. c, pl. 195. C- insignis Griff, 1. c, pl. 152. C. interruptus Becc, 1. c, pl. 49.
C. interruptus var. docilis Becc, 1. c, pl. 50. C. javensis Bl. var. acicularis Becc,
1. c, pl. 41. C. javensis var. pjolgpJiyllus et sublevi» Becc, 1. c, pl. 40. C. javensis
tenuissimus Becc, 1. c, pl. 39. C. javensis var. tetrastichus Becc. et var. inter-
medius Becc, 1. c, pl. 38. C. kandariensis Becc, 1. c, pl. 144. C. khasianus
Becc, 1. c, pl. 192. C. Kingianus Becc, 1. c, pl. 53. C. Kunzeanus Becc, 1. c.

124 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [124

pl. 226. C. latifolius Roxb., 1. c, pl. 176. C. latifolius (ßoxb.) var. marmoratus
Becc, 1. c, pl. 177. C. Lauterbachi Becc, 1. c. pl. 227. C. Leprieurii Becc,
1. c, pl. 23—24. C. leptospadix Griff., 1. c, pl. 14. C. leucotes Becc, 1. c, pl. 120
C. Lobbianus Becc, 1. c, pl. 221. C. longisetus Griff., 1. c, pl. 9. C. luridvs
Becc, 1. c, pl. 80. C. Macgregorii Becc, 1. c, pl. 230. C. mairochlamys Becc,
1. c, pl. 91 — 92. C. macrosphaerion Becc, 1. c, pl. 201. C Manan Miq., 1. c.f
pl. 196. C. manillensis H. Wendl., 1. c, pl. 226. C. marginatus Mart., 1. c,
pl. 128. C. Martianus Becc, 1. c. pl. 151. C niatlanensis Becc, 1. c, pl. 202.
C melanacanthus Mart., 1. c. pl. 125. C. melanoloma Mart., 1. c. pl. 214. C-
Merrillii Becc, 1. c, pl. 167. C Metzianus Schlecht., 1. c, pl. 67. C. Meyenianus
Schauer., 1. c, pl. 63. C. microcarpus Becc, 1. c, pl. 218. C. microsphaerion
Becc. 1. c, pl. 204. C minahassae Warb., 1. c, pl. 147. C. mollis Blanco, I.e.,
pl. 61 — 62. C. Mosdeyanus Becc, 1. c, pl. 171. C. Moti Bailey, 1. c, pl. 73,
C. mucronatus Becc. 1. c, pl. 185. C Muellerii H. Wendl., 1. c, pl. 54—55,
C. muricatus Becc. 1. c, pl 33. C. myriacanthus Becc, 1. c, pl. 85. C. myrian-
thus Becc, 1. c, pl. 118. C. nambariensis Becc, 1. c, pl. 193 — 194. C. neglectus
Becc, 1. c, pl. 182. C. nematospadix Becc, 1. c, pl. 71. C. nicobarieus Becc,
1. c, pl. 84. C. nitidus Mart., 1. c, pl. 116. C. opacus BL, 1. c, pl. 79. C- optimus
Becc, 1. c, pl. 188 — 188A. C. ornatus (BL) var. mitis Becc, 1. c, pl. 154. C
omatus (Bl.) var. sumatranus Becc. 1. c, pl. 153. C. ovoidens Thw., 1. c, pl. 161.
G. Oxleyanus Teysm. et Binn., 1. c, pl. 203. C. paehystaehys Warb., 1. c, pl. 212.
C paehystemonus Thw., 1. c, pl. 27. C- pallidulus Becc, 1. c, pl. 200. C- palu-
stris Griff., 1. c, pl. 173. C. palustris (Griff.) var. amplissimus Becc, 1. c, pl. 174.
C- palustris (Griff ) var. cochinchinensis Becc, 1. c, pl. 175. C. papuanus Beccr
]. c, pl. 44. C. paspalanthus Becc, 1. c, pl. 111. C paspalantJrus peniyisularis
Becc, 1. c, pl. 112. C. paspalanthus penins. (sterilis) Becc, 1. c, pl. 113. C.
perakensis Becc, 1. c, pl. 108. C- Perrottetii Becc, 1. c, pl. 25. C. pilosellus
Becc, 1. c, pl. 132. C. platyspathus Mart., 1. c. pl. 117. C. platyacanthus Warb.,
1. c, pl. 198. C. plicatus Bl., 1. c, pl. 146. C. polydesmus Becc. 1. c, pl. 191 A.
C polystaehys Becc, 1, c, pl. 162. C. pseudo-tenuis Becc, 1. c, pl. 69. C. pseudo-
rivalis Becc, 1. c, pl. 68. C. pygmaeus Becc, 1. c, pl. 86. C. radiatus Thw.,
1. c, pl. 30. C. radulosus Becc, 1. c, pl. 35. C. ralumensis Warb., 1. c, pl. 89
bis 90. C. ramosissimus Griff., 1. c, pl. 109 — 110. C. ramidosus Becc, 1. c,
pl. 205. C. Eeinwardtii Mart., 1. c, pl. 7(>. C. Bheedei Griff., 1. c, pl. 226. C.
rliomboideus BL, 1. c, pl. 134. 0. Ridleyanus Becc, 1. c, pl. 158. C. rivalis
Thw., 1. c, pl. 65 — 66. C. rotang Linn., 1. c, pl. 97. C. rudentum Lour., 1. c,
pl. 13. C. ragosus Becc, 1. c, pl. 36. C. ruvidus Becc, 1. c, pl. 31. C. Saben-
sis Becc, 1. c, pl. 81. C. salicifolius Becc, 1. c, pl. 103. C. sarawakensis Becc,
1. c, pl. 133. C. scabridvlus Becc, 1. c, pl. 32. C. schisloacanthus Bl., 1. c,
pl. 52. C. Schiveinfurthii Becc, 1. c, pl. 26. C. Seipionum Lour., 1. c, pl. 155
bis 156. C. serrulatus Becc, 1. c, pl. 75. C. siamensis Becc, 1. c, pl. 59. C.
simplex Becc, 1. c, pl. 190. C siphonospathus Mart., 1. c. pl. 215—216. C. si-
])honospathus (Mart.) var. oligolepes (minor) Becc, 1. c, pl. 217. C. spathulatus
Becc, 1. c, pl. 149. C. spathulatus robustus Becc, 1. c, pl. 150. C- speetabilis
(Bl.) var. sumatramis Becc, 1. c, pl. 138. C. spinifolius Becc, 1. c, pl. 178
bis 179. C- subinervis H. Wendl., 1. c, pl. 208. C. symphysipus 1. c, pl. 141.
C tenuis Roxb., 1. c, pl. 94. C- tetradaetylus Hance, 1. c, pl. 104 — 104A.
C. Thwaitesii Becc, 1. c, pl. 10 — 11. C. Thwaitesii canaranus Becc, 1. c, pl. 12.
C- ihysanolepis Hance, 1. c, pl. 224. C. tomentosus Becc, 1. c, pl. 135. C.
tomentosus var. Korthalsiaefolius Becc, 1. c, pl. 136. C. tonkinensis Becc, 1. c,

125] Palmae. 125

pl. 1Ü0. C. travancoricus Bedd., 1. c, pl. 121. C. trispermus Becc, 1. c, pl. 180.
C unifarius H. Wendl., 1. c, pl. 20(i. C- unifarius (H. Wendl.) var. pentong
Becc, 1. c, pl. 207. C- vestitus Becc, 1. c, pl. 88. C. Yidalianus Becc, 1. c,
pl. 211. C viminalis (Willd.) var. andamanicus Becc, 1. c, pl. 58. C- viminalis
faseicnlatus Becc, 1. c, pl. 57. C. viridispinus Becc, 1. c, pl. 184. C. ätiensis
Warb., 1. c, pl. 143. C Walkerii Hauce, 1. c, pl. 98. C Warburgii K. Schum.,
1. c, pl. 170. C- zebrinus Becc, 1. c, pl. 74. C. zeylanicus Becc, 1. c, pl. 159
bis 160. C. Zollingerii Becc, 1. c. pl. 165—166. C. zonatus Becc, 1. c, pl. 34.

772. Anonymus. The giant talipot palm. (Trop. and subtrop. America,
I, 1908, p. 154-155, 2 fig.)

Nicht gesehen.

77">. Anonymus. La Phoenix canariensis e la Cocciniglia rossa
della Florida. (Italia agric, XLV, 1908, p 204, 1 tav.)

Nicht gesehen.

774. Beccari, Odoardo. Asiatic Palms — Lepidocaryeae. Parti. — The
Species of Calamus. (Ann. R. Bot. Gard. Calcutta, XI, 1908, I— III, 518 pp.,
with 238 plates.) N. A.

Diese ausserordentlich eingehende Arbeit gliedert sich wie folgt:
I. Einleitende Bemerkungen :

1. Biologische und allgemeine Noten; 2. Bedornung; 3. der Stamm
4. die Blätter; 5. die Blattscheiden ; 6. die Blattscheidenflagella; 7. die Ochrea
8. der Blattstiel: 9. die Rachis; 10. die Cirri; 11. die Spadices: 12. die Spathen
13. die Teilinflorescenzen: 14. die Ährchen; 15. die Blüten: 16. das Frucht
perianth: 17. die Frucht; 18. der Samen: 19. extraflorale Nektarien; 20. Calami
in Kultur: 21. Nutzen, Handel und Vorkommen von Calamus; 22. Note über
die Arten von Calamus auf den Philippinen; 23. Identifikation von Loureiros
Oochinchina-CViZaw/: 24. Note über Roxburghs. Arten von Calamus: 25. Note
über Rumphs Arten von Calamus und Daemonorops: 26. Note über das Publi-
kationsdatum der Arten von Calamus und Daemonorops, die von Martius,
Griffith und Blume benannt wurden; 27. über die Klassifikation der Calamus-
Arten; 28. diagnostische Charaktere von Calamus und Daemonorops: 29. Calamus
oder Palmijuncus: 30. geographische Verbreitung.

IL Definition der Gattung.

III. Anomale oder nicht häufige Charaktere.

IV. Systematische Übersicht.
V. Synopsis der Arten.

VI. Beschreibung der Arten.
VII. Begleitender Text zu Tafel I— IL
VIII. ..Nomina nuda".
IX. Index der Arten.

X. Index der Tafeln (siehe oben am Kopfe der Familie).
Bei der Wichtigkeit der Arbeit und der Seltenheit dos Werkes scheint
es geboten, im folgenden die Systematische Übersicht der Arten im Original-
text wiederzugeben.

Groups I — X. — Leaves never cirriferous.

XI — XIII. — Leaves shortly cirriferous with diminutive leaflets
at their summit or very exceptionally not cirriferous.
„ XIV— XV. — Leaves distinctly cirriferous.
Group XVI. — Anomalous.

126 C- &• Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogaraen. M26

Group I. — Leaves not cirriferous (viz., with rachis not prolonged into
a filiform aculeate appendix). Leaflets many, elongate. Primary spathes
elongate-tubular, dilated and hacerate in their upper part. Spadix with the
partial inflorescens and spikelets provided with a pedicellar part which remains
included in their respective spathes. Fruiting perianth explanate (not forming
a pedicel to the fruit). Involucrophorum of the female spikelets Short, not
pedicelliform. Seed with ruminate albumen: embryo basilar or nearly so.

A. — Stem erect. Leaf-sheaths not flagelliferous.

1. C. erectus.

B. Scandent. Leaf-sheaths flagelliferous.

2. C. flagellum.

Group IL — Leaves not cirrifereous. Leaflets numerosus, elongate.
Primary spathes elongate-tubular, more or less lacerate in their upper part.
Fruiting perianth explanate. Involucrophorum short, not pedicelliform. Seed
(where known) with equable albumen and basilar embryo.

A. — Spikelets not inserted at the bottom of their respective spathes
and therefore not or very shortly pedicellate.

f Not scandent. Spadix not flagelliform, and armed only with straight
spines (not clawed).

3. C- arborescens, 4. dougnaiensis.

ff Scandent. Spadix flagelliform, clawed on the axial parts between
the partial inflorescences.

5. C- longisetus, 6. Thwaitesn, 7 rudentum. 8. leptospadix-

B. — Spikelets inserted at the bottom of their respective, spathes and
provided with a distinct pedicellar part. Not scandent, Spadix not flagelliform.
Leaf-sheaths not flagelliferous.

(The species of this group appear related to those of group XIV, which,
however, have cirriferous leaves.)

9. 0. dilaceraüis, 10. castaneus, 11. Grifft thianus, 12. Burckianus.

Group III. — Leaves not cirriferous narrow elongate. Leaf-sheaths
flagelliferous. Spathes (primary and secondary) elongate-tubular, strictly
sheathing. Spadix elongate flagelliform. Spikelets not inserted at the bottom
of their respective spathes by means of a pedicellar part. Involucrophorum
almost stalked, attached to the bottom of its own spathel (not laterally adnate
to the base of the spathel above its own) Fruiting perianth explanate. Seed
with equable albumen and basilar embryo; all African.

13. C. deerratus, 14. Barterii, 15. Heudelotii, 16. falatensis, 17. Leprieurii,
18. Perrot tetü, 19. akimensis, 20. Schweinfurthii.

Group IV. Leaves not cirriferous. Leaflets very few, pinnate, digi-

tate or radiate. Primary spathes very narrow and elongate-cylindraceous, very
closely sheathing. Leafsheaths flagelliferous. Spadices (male and female)
simply decompound, very slender and flagelliform; partial inflorescens and
spikelets inserted at the mouth of their respective spathes (not with a pedi-
cellar part). Fruiting perianth explanate. Involucrophorum not pedicelliform.
Seed with equable albumen and basilar embryo.

21. G. pacliy stem onus, 22. digitatus, 23. radiatus.

Group V. — Leaves not cirriferous, pinnate (simple and furcate in C.
ffabellatus). Leaf-sheaths provided in the scandent species (when not bearing
spadices) with a long-clawed flagellum; in the non-scandent species the fla-
gellum rudimentary or none. Primary spathes very elongate tubulär, closely

127J Palmae. 127

sheathing sometimes split longitudinally in their upper part, but never entirely
opened longitudinally and laminar. Spikelets inserted at the mouth of their
respective spathes. Involucrophorum not pedicelliform. Seed (where known)
not ruminate; embrvo basilar.

A. Secondary spathes, spathels and involucra conspiciously scabrid.

24. C. ruvidus, 25. scabridulus, 26. muricatus, 27. zonatus. 28. C. radulosus,
29. rugosus.

E. — Secondary spathes, spathels and involucra not or very slightly
scabrous.

(1) Fruiting perianth (where known) explanate or subcallous at the baseT
not or slightly pedicelliform (distinctly pedicelliform in (J. dioicus).

t Leaves simply furcate.

30. C. flabellatus.

fj Leaves pinnate with few often broad lanceolate or elliptic or more
rarely elongate, 3 — 5-costulata leaflets, all the costae reaching the apex.

* The two terminal leaflets higbly connate, acute or acuminate.

31. C. javensis, 32. filiformis, 33. corrugatus, 34. papuanus, 35. filipendulus,
36. gonospermus, 37. floribundus, 38. interruptus.

** The two terminal leaflets slightly connate or free at the base, acute
or acuminate.

39. C. dioicus, 40. C- schistoacanthm, 41. Kingianus, 42. Muetterii.

*** Leaflets truncate and praemorse at the apex: the two of the terminal
pah* highly connate.

43. C. caryotoides-

j jy Leaves with numerous leaflets, these narrow, often fascicled, usually
gradually decreasing towards the apex, the two of the terminal pair the
smallest and free at the base.

* Fruiting perianth entirely explanate.

44. C. minimalis, 45. siainensis, 46. concinnus, 47. mollis, 48. Meyenianus,
49. Blancoi, 50. rivalis, 51. Metzianus, 52. pseudo-rivalis, 53. pseudo-tenuis,
54. Hookerianus, 55. nematospadix, 56. australis, 57. Moti, 58. radicalis, 59. zebrinus*
60. semdatus.

** Fruiting perianth slightly callous at the base and more or less pedi-
celliform.

O Ocrea not extraordinarily large.

61. C- Reimvardtii, 62. heteroidens, 63. opacus, 64. luridus, 65. sabensis,
66. delicatulm, 67. Helfer ianus, 68. nicdbarieus. Apparently related to the species
of this group are the following: — 69. C. myriacanthus, 70. pygmaeus,
71. barbat us.

OO Ocrea elongate, very large.

72. C. vestitus, 73. ralumensis, 74. macrochlamys, 75. gogolensis.

Fruiting perianth distinctly pedicelliform.

f Leaflets numerous, narrow, equidistant, gradually becoming smaller
towards the apex of the leaf.

76. C. tenuis, 77. horrens, 78. Godefroyi, 79. Rotang, 80. Walkerii, 81. Fabern,
82. tonkinensis, SS.Delessertianus.

ff Leaflets not very numerous, and distinctly fascicled.

84. C. Brandisii, 85. salicifolius, 86. tetradactylus. (C. salicifolius perhaps
better placed in Group XIII by its diminutive terminal leaflets.)

ff-j" Leaflets more or less inequidistant, but not fascicled, many-nerved.

J28 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. M28

87. C. acanthospathus, 88. Feanus.

Group VI. — Leaves not cirriferous. Leaflets elongate. Primary spathes
very long, tubulär and closed at first, later longitudinally split and open,
loriform or laminar. Involucrophorum not pedicellate. Seed (where known)
not alveolate, with equable albumen. In C. bacularis the spathes simply
partially split longitudinally.

f Not scandent.

89. C. bacularis, 90. perakensis, 91. ramosissimus.
yf Scandent.

92. C. ptaspalanthus, 93. Guruba, 94. nitidus, 95. platyspathus, 96. myrian-
thus, 97. hypoleucus, 98. leucotes.

Group VII. Leaves not cirriferous. Leaflets elongate. Leaf-sheaths
flagelliferous, Primary spathes at first tubulär, later more or less split longi-
tudinally and partly laminar. Involucrophorum distinctly pedicellate. Fruiting
perianth pedicelliform.

99. C. travancoricus, 100. Rheedei.

Group VIII. - - Leaves not cirriferous. Leaflets elongate. Leaf-sheaths
flagelliferous. Primary spathes tubulär, strictly sheathing, not split or lacerate.
Involucrophorum distinctly pedicellate. Fruiting perianth pedicelliform. Seed
with deeply ruminate albumen.

101. C. Huegelianus, 102. Gamblei.

Group IX. — Leaves not cirriferous. Leaflets elongate and narrow.
Leafsheaths flagelliferous Primary spathes strictty sheathing. Involucrophorum
in the female spikeJets not pedicelliform. Fruiting perianth pedicelliform.
Seed deeply ruminated.

103. C. gracilis, 104. uielanacanthus, 105. Diepenhorstii, 1013. marginatus.

Group X. — Leaves not ciniferous. Leaflets numerous elongate and narrow
Leafsheaths flagelliferous Primary spathes strictly sheathing. Involucrophorum
distinctly pedicelliform. Fruiting perianth pedicelliform. Seed plicate-cerebri-
form, or with many deep plicae, radiating from the centre of one face to the
centre of the other.

107. C- ciliaris, 108. exilis, 109. hispidulus, 110. pilosellus, 111. sarawakensis.

Group XL — Leaves not or very rudimentarily cirriferous. Leaf-sheaths
flagelliferous. Leaflets broad and short, radiateh7 mairy-nerved; only their
mid-costa reaching the apex, the other nerves evanescent at different levels,
the two terminal completely free, often with a very short or rudimentary cirrus
interposed. Spathes tubulär, closely sheathing. Involucrophorum not pedicelli-
form. Fruiting perianth subpedicelliform. Seed (where known) superficialis
ruminated; embryo basilar.

112. C- rhomboideus, 113. tomenlosms, 114. Blumei, 115. spectabilis, Uli.
Bousigonii.

Group XII. — Leaves more or less prolonged into a sometimes
abortive cirrus (in C. Cuthbertsonii not cirriferous). Leaf-sheaths not flagelli-
ferous (always?). Leaflets usually many-nerved. Male spikelets with his
eriate, subsecund (not flatly bifarious) fiowers. Involucrophorum distinctly
pedicelliform. Seed (where known) not or slightly ruminated.

117. C. Jieteracantlius, 118. sympjhysipus, 119. Cumingianus, 120. nitensis,
121. kandariensis, 122. adspersua, 123. plkatus, 124. Minahassae, 125. Carra, 12li.
equestris, 127. Cuthbertsonii.

129] Palmae. 129

Group XIII. — Leaves of the young plant not prolonged into a cirrus,
of the adult one shortly or subchriferous, viz., with diminutive leaflets at their
summit. Leaflets lanceolate or elliptic with 3 or more primary nerves, these
all reaching the apex. Leaf-sheaths flagelliferous. Spadix flagelliform. Primär}7
spathes elongate, tubulär, narrow. Involucrophorum not or very shorthv
pedicelliform. Fruiting perianth pedicelliform. Seed with a non-ruminate
albumen or with superficial intrusions of the integument or distinctly
ruminate.

128. C. spathulatus, 129. Martianus, 130. insignis, 131. ornatus, 132. Sciino-
num, 133. demiftorus, 134. Ridleyanus.

Group XIV. — Leaves prolonged into a long and clawed cirrus. Leaf«
sheaths not flagelliferous. Spadix not flagelliferous at its apex, usually shorter
than the leaves. Primary spathes jelongate-tubular, closely sheathing. Male
spadix ultra decompound. Female-spadix simplex decompound, differing consi-
derably from the male one. Male and female spikelets stalked or inserted at
the base of their respective spathes by means of a distinct pedicel. Fruiting
perianth explanate. Seed with ruminate or equable albumen (see Group II, B.).

135. C- zeylaniciis, 136. ovoidens, 137. polystachys, 138. andamanicus, 139.
Zollingerii, 110. Merrülii, 1-41. aquaUlis, 142. Warlrurgii.

Group XV. — Leaves prolonged into a long and charved cirrus. Leaf-
sheaths not flagelliferous. Spadices usually shorter than the leaves, not or
slightly flagelliferous at the apex. Spikelets not stalked, inserted near the
mouth of their respective spathes. Fruiting perianth pedicelliform or almost
explanate. Sed with more or less superficial intrusions of the integument or
distinctly ruminate; embryo basilar or slightly shifted to one side.

A. — Fruiting perianth not pedicelliform or subpedicelliform, viz.. with
the calyx split not quite to the base.

113. C. Moseleyanus, 141. formosanus, 145. polydesmus, 14(3. Rumphii, 147.
palustris, 148. latifolius, 149. spinifolius, 150. trispermus, 151. manülensis, 152.
axillaris, 153. neglectus, 154. bubuensisx 155. irridisp'nms, 156. mucronatus, 157.
asperrimus.

B. — Fruiting perianth distictly pedicilliform.
(1) Primary spathes very closely sheathing.

y Male spikelets very different from the female ones.

* One female flower at each spathed accompanied as usual by a
neuter one.

G Involucrophorum sessile.

158. C. eriocanthus, 159. optimns, 160. caesius, 161. simplex, 162. Dorioei,
103. kliasianns, 164. nambariensis, 165. inennis, 166. Manan, 167. giganteus, 168.
platyacanthus, 169. albus, 170. pallidus, 171. macrospliaerion, 172. matanensis, 173.
Oxleyanus, 174. microsphaerion, 175. ramidosus.

OO Involucrophorum more or less stalked.

176. C. unifarius, 177. subinermis, 178. pisicarpus, 179. arnensis, 180.
Hollrungii.

** Often two female flowers at every spathel.

181. C. Vidalianus, 182. pachystachys, 183. didyniocarpu.s.

ff Male spikelets very similar to the female ones.

184. C. melanoloma.

(2.) Primary spathes loosely sheathing and often more or less inflate.

185. C. siphonospathus, 186. microcarpus, 187. dimorphacanthus.
Botanischer Jahresbericht XXXVI (19031 3. Abt. (Gedruckt 9.7.10.) 9

130 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [130

Group XVI (Subgenus). — Leaves subimparipinnate or subcirriferous.
Male and female spadices contracted, similar. Lowest primary spatbe tubulär
at the base and somewbat dilated and elongate — auriculiform upwards.
Partial inflorescences very few, usually only one, very dense with approximate
and very closely-packed flowers. Fruiting perianth campanulata, split down
to the base. Seed deeply ruminate, with basilar embryo.

188. C. comrostris, 189. Lobbianus, 190. brachystachys.

Species of doubtful Position.

191. C. Henryamts, 192. thysanolepis, 193. ferrugineus, 194. Kunzeanus,
195. Lauterbachii, 196. ferülis, 197. Macgregorii, 198. Hartmannii, 199. discolor,
200. acidus, 201. Harmandi.

775. Beccari, C. Le Palme „Dum" od „Hyphaene" e pin special-
mente quelle dell' Africa italiana. (Agric. colon., II, 1908, p. 137 — 183,
3 tav., 2 fig.)

Nicht gesehen.

776. Beccari, 0. Palmae novae Antillanae. (Eep. spec. nov., VI, 1908,
p. 94—96.) N. A.

Originaldiagnosen von Arten von Sabal, Thrinax und CoccotJirinax.

777. Bjehnick], E. B. Malortiea Tuerckheimi IL Damm. (Garten weit, XIII,
1908, p. 99, Fig.)

Die Abbildung zeigt zwei Pflanzen.

778. Bnrkill, J. Henry. The Indian Doum (Hyphaene indica) Palm.
(Journ. Bombay Nat. Hist. Soc, XVIII, 1908, p. 929—930, 2 Fig.)

Die Figuren zeigen Fruchtlängsschnitte von dieser Art und H- thebaica.

779. Crnsius, C. Seltene Palmen. (Gartenwelt, 1908, p. 205—206,
13 Abb.)

Die Abbildungen zeigen junge Pflanzen von Areca rubra, A.Wendlandiana,
Caryota sobolifera, Didymosperma porphyrocarpon, Hyophorbe V erschaff elti, Kentia
Canterburyana, Livistona Mariae, L. Jenkinsiana, Pinanga Kuhlii, P. decora,
Ptychosperma Alexandrae, Daemonorops periacanthus und Chamaedorea Ernesti
Augusti.

780. Field, F. A branchin g Date Palm (Phoenix silvestris). (Journ.
Bombay Nat. Hist. Soc, XVIII, 1908, p. 699—700, eine Fig.)

Die Abbildung zeigt einen Baum mit 14 Zweigen bzw. Köpfen.

781. (iatin. C.-L. Transformation diastasique du mannose en
glucose au cours de la germination du Borassus flabelliformis L. (Bull.
Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 383—386.)

Siehe „Chemische Physiologie".

782. Mac Millan, H. F. Flowering of Dendrocalamus giganteus, the
„Giant Bamboo". (Ann. Bot. Gard. Peradeniya, IV, pt. IV, 1908, p. 123—129,
pl. in— VI.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

783. Möbins, M. Die Perianthblätter von Cocos nndfera. (Ber. D.
Bot. Ges., XXVIa, 1908, p. 115—124, Tab. I.)

Siehe „Anatomie".

784. Parish, S. B. The flowers of Washingtonia. (Bot. Gaz., XLVI,
1908, p. 144—147, 5 figs.)

Verf. schildert die von Beccari (1907) angeführten Blütencharaktere bei
Washingtonia und ergänzt sie durch eigene Beobachtungen.

1311 Paluiae. Pandanaceae. Pontederiaceae. Potamogetonaceae. 131

785. Verrill, A. H. America's tropical trees. The palms. (Trop.
and subtrop. America, I, 1908, p. 147 — 153, illustr.)

Nicht gesehen. Soll eine populäre, gut illustrierte Abhandlung sein.

786. Wagner, R. Zur Morphologie des weiblichen Blütenstandes
von Cliamaedorea Ernesti-Auqusti H. Wen dl. (Verh. Zool.-Bot. Ges. Wien,
LVIII, 1908, p. [197]— [203], eine Textfig.)

Verf. beschreibt einen Fall von Metatopie und weist darauf hin, dass
auch noch bei anderen Arten der Gattung Metatopien vorkommen.

787. Zobeide. Dates and Date-Marks. (Journ. Bombay Nat. Hist.
Soc, XVIII, 1908, p. 700—703.)

Wiederabdruck einer Plauderei aus „The Pioneer" 23. November 1907.

Pandanaceae.

Neue Tafeln:
Pandanus Candelabrum Beauv. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 3.
P. EouUetii Carr. in Bot. Mag., OXXXIV, 1908, tab. 8197.

788. Campbell, Donglas H. The Embryo-sac of Pandanus. Preliminary
note. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 330.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

789. Merrill, E. D. Philippine Freycinetia. (Philippine Journ. Sc. C.
Bot., III, 1908, p. 307—315.)

Siehe „Pflanzengeographie".

Pontederiaceae.

790. Smith, R. Wilson. Endosperm in Pontederiaceae. (Bot. Gaz., XLV,
1908, p. 338—339, 4 figs.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

Potamogetonaceae.
Neue Tafel:
Potamogeton javanicus Hassk. in Thonner. Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 4.

791. Bennett, Arthur. Notes on Potamogeton. (Journ. of Bot., XL VI,
1908, p. 160—163, 247—251.) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie" und „Index nov. gen. et spec".

792. Cook, Melville, Thnrston. The development of the embryo-
sac and embryo of Potamogeton lucens. (Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908,
p. 209—218, pl. 9—10)

Siehe „Anatomie".

793. Fernald, M. L. Notes on Potamogeton pennsylvanicus Cham.
(Naturalist, 1908, p. 375—376.)

Nicht gesehen.

794. Graves, A. H. The morphology of Ruppia maritima. (Trans.
Connecticut Ac. Arts and Sc. New Haven, XIV, 1908, p. 65—170, 31 Fig.,
15 Taf.)

Über diese Referenten unzugängliche Arbeit berichtet Chrysler im
Bot. Centrbl., CXIII, 1910, p. 291 wie folgt:

Die Arbeit gibt eine eingehende Übersicht der vegetativen und repro-
duktiven Teile der Pflanze, wobei Verf. das bisher darüber bekannte zusammen-
fasst und Lücken unserer Kenntnisse ergänzt. Die Morphologie von Gametopbyt
und Embryo zeigt keine Merkmale von besonderem Interesse. Auch die Öko-
logie der vegetativen Organe wird behandelt und Verf. kommt zum Schluss,

9*

132 0. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |132

dass die hydrophytischen Modifikationen besser betont sind als die halo-
phy tischen.

Hinsichtlich der Verwandtschaft wird die Gattung als enger verwandt
mit Potamogeton, Zannichellia und Althenia betrachtet, als mit den anderen
Mitgliedern der Familie, obgleich der Embrj'O sehr dem von Zostera ähnelt.

Ruppia dürfte abzuleiten sein von Formen, die denen der jetzigen
untergetauchten Potamogeton ähneln und ist als reduzierte Form anzusehen.

795. Hagström, 0. New Potamogetons. (Bot, Not., 1908, p. 97— 108,
mit 14 Fig.) N, A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".
Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

796. Ostenfeld, ('. H. Aalegraessets (Zostera marina) Vaekstf orhold
og Udbredelse i vore Farvande, 61 pp., 9 Fig. (Wuchs und Ver-
breitung der Zostera marina in den dänischen Fahrwässern.) (ßeretning
til Landbrugsministeriet fra den danske biologiske Station, XVI, Kjöben-
havn 1908.)

In erliegender Arbeit behandelt der Verf.:

1. den Bau und den Wuchs der Zostera marina,

2. die äusseren Bedingungen für das Gedeihen dieser Pflanze,

3. ihre Verbreitung in den dänischen Fahrwässern,

4. die Zostera-Zone als Heimatsort für verschiedene Tiere und Algen,

5. die Verbreitung der Anhäufungen von totem Meeresgrase und

6. gibt er eine kurze Schilderung der anderen marinen Blütenpflanzen,
die in den betreffenden Fahrwässern vorkommen.

Da diese Arbeit wesentlich für Nichtbotaniker bestimmt ist, ist die Dar-
stellung mit Rücksicht auf die Beschreibung der Zostera marina eine populäre;
in betreff der anderen Materien bietet die Abhandlung rein Wissenschaftliches.
Hervorzuheben ist besonders die Untersuchung des Verfs., um zu klären,
inwieweit es mit Rücksicht auf diese Pflanze eine Relation zwischen Form und
Standort gibt.

In dieser Beziehung sind die Hauptresultate die folgenden:

Die Zostera marina kommt auf verschiedenen Bodenarten vor, die von
sandiger oder schlammiger Natur sind, in seichtem Wasser und tiefer, doch
nicht tiefer als bis ca. 11,3 m.

Auf Sandboden, d. h. nahe am Strande an geschützten und offenen
Küsten und weiter an den letzten bis in eine Tiefe von 11,3 m scheint die
Zos/era-Vegetation während des Jahres ganz unverändert zu bleiben. Auf
schlammigem Boden stellt die Sache sich ganz anders. Die Vegetation ist
hier bedeutend kräftiger entwickelt im Frühling und Sommer als im Herbste
und Winter. Die Blätter, die in den letzten Jahreszeiten entwickelt werden,
sind kürzer als die des Sommers und des Frühlings. Die Blätter der Sand-
bodenform (im seichten Wasser oder tiefer) sind immer kürzer und schmäler
als die der Schlammbodenform, die in den dänischen Fahrwässern nur auf
geschützten Stellen (Fjorden) vorkommt. Jedes Jahr werden vier bis sechs
neue Blätter gebildet. Die Messungen, auf denen die Resultate sich stützen,
sind in Tabellen beigefügt. Im Texte finden sich weiter zwei Karten und
sieben Figuren, Abbildungen von den verschiedenen Formen. Eine vorläufige
Mitteilung in betreff dieser Arbeit hat der Verf. in Bot. Tidsskrift, Bd. 27,
1905 in englischer Sprache gegeben. H. E. Petersen.

1331 Potamogetonaceae. Restionaeeae. Triuridaceae. Zingiberaoeae. 133

Restionaceae.
Neue Tafel:
Eestio compressus Rottb. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 13.

Scheuchzeriaceae.

Seitaminaceae.

797. Ridley, Henry N. Burbidgea schizocheila. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 340.)

Kurze Bemerkungen.

798. Ridley, H. N. Heliconia. (Gard. Chron., 3. ser.. XLIV, 1908, p. 13.)
Auszug aus einem Artikel des Verf.s in Agric. Bull. Straits a Fed. Malay

States, 1. April 1908.

Sparganiaceae.

Stemonaceae.

Taoeaeeae.

Triuridaceae.

798. Hemsley, W. Botting. Triuridaceae novae, (Rep. spec, pl. VI, 1908,
p. 16-17.)

Ex: Ann. of Bot., XXI, 1907, p. 71—77, pl. IX— X.

Typhaceae.

Velloziaceae.

Neue Tafel:
Barbacenia aequatorialis Rendle in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908,
tab. 20.

Xyridaceae.

Neue Tafel:
Xyris angusüfolia De Wild, et Dur. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908,
tab. 14.

799. Heimerl, Anton. Xyridaceae novae. (Rep. spec. nov., VII, 1908,
p. 209—213.)

Ex: Ann. Hofmus. Wien, XXI, 1906, p. 61—71.

800. .Malme, Gast. 0. A : n. Xyrides novae austro-americanae. (Rep.
spec. noc, V, 1908, p. 101 — 103.) N. A.

Zingiberaceae.

Neue Tafeln :
Aframomum Laurentii K. Schum. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908,

tab. 24.
Amomum pavieanum in Lecomte, Flore gen. de l'Indo-Chine. VI, 1908, pl. II,

fig. 20-23.
A. trilobum, 1. c, fig. 24—30.
Curcuma Pierreana, 1. c, fig. 18 — 19.
Gagnepainia Godefroyi, 1. c, pl. III, fig. 1 — 6.
Gastrochilus Thorelii, 1. c, pl. II, fig. 11 — 17.
Kaempferia cochinchinensis, 1. c, pl. III, fig. 21 — 29.
E. fissa, 1. c, fig. 13—20.
K. Kirkii var. elatior Stapf, in Bot, Mag., CXXXIL, 1908, tab. 8188.

134 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [134

Stablianthus Thorelii in Lecomte, Flore gen. de lTndo-Chine, VI, 1908, pl. III,

fig. 7—12.
Zingiber Eberhardüi, 1. c, fig. 30 — 38.
Z. leptostachyum Val. in Ic. Bogor., III, 1908, tab. CCLXXV.

801. Gagnepain, F. Zingiber aceae in Lecomte, Flore gen. de l'Indo-Chine,
VI, 1908, p. 25—121, fig. 8—11.) N. A.

Umfasst Vertreter von: Globba, Gagnepainia, Stahlianthus, Kaempferia,
Gastrocliilus, Curcuma, Hedychium, Siliquamomum, Zingiber, Alpinia, Geostachys.
Amomum, Costus.

802. Gagnepain, F. Zingiberacees et Marantacees nouvelles de
l'herbier du Museum. (2le Note.) (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, sess.
extr. p. XXXVI— XLIII.) N. A.

Zingiber aceae : Arten von Aframomum, Globba und Renealmia.
Marantaceae: Arten von Ataenidia und Calathea.

803. Gagnepain, F. Zingiberacees nouvelles de l'herbier du
Museum. (20* Note.) (Bull. Soc, Bot. France, LV, 1908, p. 430-436.) N. A.

Betrifft: Alpinia-, Guillania- und Tapeinochilus-Arten.

804. Othiuer, B. Redychium. (Garten weit, XIII, 1908, p. 649—651, 4 Abb.)
Die Abbildungen zeigen Blütenstände oder Pflanzen von R, Gardnerianum,

coccineum und coronarium.

Dicotyledones.

Acanthaceae

Neue Tafeln:
Anisote diversifolius Balf. f. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8219.
Crossandra Greenstockii Sp. Moore in Wildeman, PI. nov. Hort. Then., II, 1908,

pl. LXV.
Justicia matammensis (Schweinf.) Lindau in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908,

tab. 142.
Ptyssiglottis maxima Val. und var. maculata Val. in Icones bogor., III, fasc. 3,

1908, tab. CCLI.
P. Ralleri Val., 1. c, tab. CCLII.

Ruellia flagelliformis Roxb. in Icones bogor. III, fasc. 3, 1908, tab. OOLIII.
JB. napifera Zoll., 1. c, tab. CCLIV.

Rungia Blumeana Val., 1. c. und var. Mrsnta Val., 1. c, tab. CCLV.
HJ. salaccensis Val., 1. c, tab. CCLVI.
R. sarmentosa Val., 1. c, tab. CGLV1I.

805. Beddome, R. H. Acanthaceae. With Annotated List of the
Species known to have been in Cultivation. (Journ. R. Hort. Soc.
Lond., XXIV, 1908, p. 54—96.)

In erster Linie gärtnerisch bedeutungsvoll.

806. Clarke, C. B. Acanthaceae in King a. Gamble, Materials for a
Flora of the Malayan Peninsula. (Journ. As. Soc. Bengal, LXXIV, 1908,
p. 626—698.) N. A.

Umfasst 35 Gattungen.

807. Lindau, G. Acanthacea peruviana. (Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908,
p. 173.) N. A.

Nur Siphonoglossa peruviana n. sp.

135]

Dicotyledones. Aoanthaceae.

135

808. Tiegheni, Ph. Van. Relation entre la production des cysto-
lithes et la conformation de la region stelique du petiole dans le
■nouvelle famille des Acanthacees. (Journ. de Bot., 2. ser., I [XXI],
1908, p. 25—28.)

Die Beziehungen zwischen dem Vorhandensein oder Fehlen von Cysto-
lithen und der Blattstiel- und Blütenstruktur drückt Verf. in folgender Über-
sicht aus:

Acanthacees

1

unilabie Ovula ä

Pas de

crochet et nodule

cystolithes.

nourricier. Em-

Petiole

Corolle

bryon renverse

Acanthees.

ä anneaux

imbriquee

bilabiee. Ovule

Acan-

sans crochet, ni

thoidees

nodule nourricier

■

*■ Embryon dresse.

Aphelandr

*

imbri- (

biovules

n \ multio-
Car-

n vules
pelles l

Des

Justiciees.
Androgra-

cystolithes.

plidees.

Petiole

Corolle

ä arcs.

tor- [ biovules
duc. j multio-

Justicioides

Barleriees.

Car- vules

Ruelliees.

.

pelles V

809. Tiegheni, Ph. Van. Structure du pistill et de l'ovule du fruit
•et de la graine des Acanthacees. Dedoublement de cette famille. (Ann.
Sc. Nat., 9. ser., VII, 1908, p. 1—24.)

Siehe „Anatomie".

810. Tieghem, Ph. Van. Structure de l'ovule et direction de
l'embryon dans la graine des Acanthacees. (Journ. de Bot., XXI.
2. ser./l, 1908, p. 1—11.)

Siehe „Anatomie".

811. Tiegheni, Ph. Van. Restauration du genre Hexacentris dans la
famille nouvelle des Thunbergiacees. (Ann. Sc. Nat., 9. ser., VII, 1908,
p. 111—116.)

Verf. behandelt die Unterschiede dieser Gattung gegenüber Thunbergia,
wozu sie von neueren Autoren gezogen wurde und gibt folgende Übersicht
der Merkmale der vier nächstverwandten Gattungen:

A. Pollen sphörique.

I. Anthere ä dehiscence longitudinale.

a) Petiole ä arc median Thunbergia.

b) Petiole ä anneau median Hexacentris-
II. Anthere ä dt'hiscence poricide Pseudocalyx.

B. Pollen discoi'de, en roue dentee Meyenia-

Ainsi retabli, le genre Hexacentre se trouve defini ä la fois, ä l'exterieur
par l'inflorescence en grappe, le calice tronque et les antheres eperonnees, ä
l'interieur par la structure de la tige, dont le bois secondaire renferme des
bandes criblees tangentielles, localisees exclusivement dans les intervalles des
faisceaux libero-ligneux oü elles vont se superposant par les progres de Tage,

136 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |136

et par la structure du petiole de la feuille, dont la meristele mediane est
reployee et fermee tout du long en un cylindre qui simule une Stele. II se
compose d'especes, toutes asiatiques, dont les unes formaient le genre primitif
de Nees (H. coccinea, dentata, acuminata), tandis que les autres etaient con-
servees par lui dans le genre Thunbergie, parce que les fleurs y sont souvent
solitaires (H. yrandiflora, cordifolia), motif pour lequel M. Lindau les a placees
aussi plus tard dans sa section Euthunbergia. II faut y ajouter quelques
especes posterieurement decrites (H. laurifolia, mysorensis, Harrisii etc.) et peut-
etre, d'apres M. Eadlkofer, les H. bicolor (VVight) et H. smilacifolia (Kurz).

Quant au genre Thunbergie, desormais restreint et rendu par lä plus
homogene, il comprend encore trois sortes d'especes, quelques-unes asiatiques,
la plupart africaines, que, d'apres la fleur, M. Lindau a groupees en trois
sections. La plupart ot les fleurs solitaires axillaires: avec stigmate bilobe,
c'est la section Thunbergiopsis. Quelques autres ont les fleurs en grappes-
axillaires et le stigmate en entonnoir: c'est la section Psciidohexacentris.

Aceraceae.

Neue Tafeln:
Acer cissifolium Koch in Shirasawa, Iconogr. Ess. For. Japan, II, 1908, tab. 41,.

fig. 1—13.
A. distylum S. et Z., 1. c, fig. 14—26.
A. Ginnala Max., 1. c, tab. 44, fig. 11—19.
A. micranthum S. et Z., 1. c, tab. 44, fig. 1—10.
A. Miyabei Max., 1. c, tab. 45, fig. 10 — 18.
A. neglectum Lange var. Friderici Schwer, und var. Annae Schwer, in MitL

Deutsch. Dendrol. Ges., XVII, 1908, tab. col.
A. parviflorum Fr. et Sav. in Shirasawa, 1. c, tab. 42, fig. 10 -22.
A- Sieboldianum typicum Maxim., 1. c, tab. 45, fig. 1 — 9, var. micropyrum Max.,.

1. c, tab. 42, fig. 1—9.
A. spicatum var. ukurwnduense Max., 1. c, tab. 43, fig. 1 — 12.
A. Tschonoskii Max., 1. c. tab. 43, fig. 13—21.

812. Clark, J. Japanese Maples [Acer]. (Gard. Chron., ser. 3, XLIV,.
1908, p. 273—274.)

Kurze Besprechung von Gartenformen von A. palmatum und japonicum.

813. [öibson, H. H.] American forest trees — 76. Boxelder, Acer
Negundo Linn. (Hardwood Record, XXVI, 4, 1908, p. 16, 111.)

814. Koorders, S. H. Over de geographische verspreiding, de
standplaats voorwaarden en de verspreidings middelen der in de
hoogste bergstreken van Java wildgoeiende Aceraceae- (Verslagen der
Afdeeling Natuurk, Dl. XVI, A« 1907/08, p. 803—808.)

Besprechung siehe „Pflanzengeographie". Fedde.

815. Schwerin, Fritz von. Herbstrote Ahorn e. (Gartenwelt, XIII,.
1907/08, p. 17—18, 6 Textfig.)

Die Figuren zeigen Blätter von A. rubrum, Ginnala- und saccharmn-
Formen.

816. Simonkai, L. Conspectus Acerorum in Hungaria terrisque
Balkani - Septentrionalis Hungariae adjacentibus, spontaneorum
et cultorum. (Növ. Közl., VII, 1908, p. 141 — 182, ungarisch, 12 Abb.. deut-
sches Resümee, Beibl. p. [29] — [30].) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie von Europa" und „Index nov. gen. et spec".

137) Aceraceae. Adoxaceae. Aizoaceae. 137

817. W., W. C. Acer pseudoplatanus. (G-ard. Chron., no. 3, XLIII, 1908,
p. 414—415.)

Betrifft das Vorkommen abnormaler Sämlinge.

Adoxaceae.

817a. Eicliinger, Alfons. Vergleichende Entwickelungsgeschichte
von Aäoxa und Chrysoplenium. (Mitt. Bayer. Bot. Ges., I, No. 6, 1908, p. 81
bis 93, Schlnss.)

Bereits 1907 unter „Anatomie" referiert.

Aizoaceae.

Neue Tafel:
Trianthema pentandrum L. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 44.

818. Berger, A. Mesembryanthemum und Portulacaceen. Beschreibung
und Anleitung zum Bestimmen der wichtigsten Arten, mit kurzen Angaben
über die Kultur. Stuttgart, E. Ulmer, 1908, kl. 8°, VII, 328 pp., 67 Abb.

Im ersten Teil des Büchleins behandelt Verf. die Gattung Mesembryan-
themum, die über 300 Arten zählt und in der Hauptsache in Südafrika auftritt,
besonders westlich vom grossen Fischfluss und südlich vom Orangefluss. Die
Morphologie wird besprochen und im speziellen Teile werden 315 Species kurz
und gut beschrieben. Diese gliedert Verf. in folgende acht Sektionen, die
ihrerseits wiederum in 74 Gruppen zerfallen. Das Buch stellt eine wesentliche
Bereicherung unserer Kenntnisse dar und gibt endlich wirkliche Grundlagen
für ein natürliches System der schwierigen Gattung:

AA. Ganze Pflanzen mit Papillen besetzt (oder die Blätter flach und
laubartig bei einjährigen oder staudigen, nicht papillösen Pflanzen).

aa) Blätter flach. 1. Herbacea.

bb) Blätter stielrund oder halbstielrund. II. Papulosa-

BB. Pflanzen nicht papillös (höchstens in seltenen Fällen die allerjüngsten
Teile oder die Kelche undeutlich papillös).

aa) Pflanzen stammlos, mehr oder weniger rasenbildend, meist sehr stark
succulent. VIII. Siibacaulia.

bb) Pflanzen als mehr oder weniger reichverästelte Halbsträucher oder
Sträucher anzusprechen.

AA. Blätter kreuzgegenständig.

na) Blätter im Querschnitt mehr oder weniger rund. IV. Teretinscida.

ßß) Blätter im Querschnitt dreikantig.

LI. Blätter am Grunde verwachsen.

1.1. Blätter mehr oder weniger beilförmig. VI. Dolabrata-

2.2. Blätter nicht beilförmig, am Grunde zu langer, weit herablaufender
Scheide verwachsen. III. Perfoliata-

II. II. Blätter am Grunde kaum oder nicht verwachsen, im Querschnitt
mehr oder weniger dreikantig. V. Triquetra.

BB. Blätter spiralig gestellt und schöpf förmig die Stämmchen krönend.
VII. Cephalophylla-

819. Berger, Alwin. Über Mesembryanthemum truncatellum Haw. und
verwandte Arten. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 163—165.)

Diese Art ist nicht in Kultur. Was als solche geht, ist teils M. Hookeri,
teils M- Wettsteini oder M. pseudotruncatellum.

820. Müller, K. Beiträge zur Systematik der Aizoaceen. Diss.
Halle, 1908, 45 pp., m. 33 Fig., 8°. (Erschienen in Engl. Bot. Jahrb., XLII,
1908, Beibl. 97, p. 54—94.)

138 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. [138

Verf. gibt folgendes Resümee:

Fasse ich die Resultate vorstehender Ausführungen nochmals kurz zu-
sammen, so hat sich ergeben, dass die Aizoaceen mit den übrigen Centro-
spermen das im Grundplan vierkreisige Diagramm gemeinsam haben. Im
Normalfall verteilen sich diese Kreise so, dass ein Perianth-, zwei Staminal-
und ein Gynocealkreis vorhanden sind. Damit ist der Anschluss an die Phyto-
laccaceen, von welchen Eichler unsere Familie wesentlich durch dreikreisigen
Blütenbau unterscheiden wollte, mit Sicherheit festgestellt.

Als Charaktei-e für niedrige phylogenetische Entwickelung innerhalb
der Aizoaceen halte ich zunächst basale Stellung der Ovula, wie sie sowohl
den Phytolaccaceen, wie den niedrigen Caryophyllaceen, als auch bekanntlich
den Amarantaceen und Chenopodiaceen eigen ist, aufzuweisen. Auch bezüglich
der Portulacaceen hat die Arbeit von Franz ergeben, dass diese Ovularstellung
die primäre ist.

Mit dieser basilären Ovularstellung ist in der überwiegenden Mehrzahl
der Fälle die Einzahl der Ovula pro Carpellfach verbunden, ein Merkmal,
welches andere Autoren veranlasst hat, die damit versehenen Formen den
Phytolaccaceen zuzuweisen.

So ergänzen sich diese beiden Merkmale in zufriedenstellender Weise
und zeigen, dass sie Kriterien für phylogenetische Unterabteilungen innerhalb
der Familien der Aizoaceen darstellen.

Als derartig niedrigstehende, mit den Phytolaccaceen nächst verwandte
Formenkreise können wir die Gisekieae, charakterisiert durch ihre apocarpen
Früchte, welche sich durch dieses Merkmal an die Phytolaccaceen anschliessen.
sowie die Limeeae, welchen bei einovulatem Carpell mit basaler Insertion
der Ovula der Arillus fehlt und über deren Einbeziehung zu den Phytolaccaceen
Walter noch in seiner ersten Publikation zweifelhaft war, bezeichnen.

Die Ovularrichtung gestattet, diese Limeeae noch weiter in Limeinae
und Adenograminae zu scheiden.

Im Innenwinkel der Oarpellfächer in die Höhe gerückte oder direkt
apicale Plazentation unterscheidet die höheren, abgeleiteten Aizoaceen von
den im vorstehenden charakterisierten niederen Unterfamilien.

Hier habe ich gefunden, dass zunächst das Merkmal der Funicular-
entwickelung zu natürlichen Gruppen führt: die Mesembryanthemeae, welche
ich nach Insertion des Fruchtknotens und anderen Blütenmerkmalen in
Mesembryantheminae und Aizoinae trenne, unterscheiden sich durch ihre faden-
förmigen Funiculi ohne weiteres von den Mollugineaceae und Tetragonieae.

Bei diesen beiden letztgenannten Gruppen erlauben die stets kurzen
Funiculi, die Zahl der Ovula pro Carpellfach, Richtung der Mikropyle, sowie
Vorhandensein oder Fehlen der Nebenblätter leicht, die Mollugineae von den
Tetragonieae zu unterscheiden.

Die Resultate meiner Arbeit bezüglich Gliederung der Aizoaceen werden
in der folgenden Tabelle kurz zusammengefasst:

I. Frucht apocarp; eine Samenanlage pro Carpellfach, basal inseriert;
Mikropyle nach unten und aussen, Nebenblätter fehlend; Markstrahlen vor-
handen, Raphiden vorhanden. Gisekieae: Gisekia L.

IL Frucht syncarp.

A. Basale oder bei einer Samenanlage pro Carpellfach manchmal mediane
Insertion.

139] Aizoaoeae. Amarantaceae. Anacardiaceae. 139

1. Arillus vorhanden: Blumenblätter durch Metamorphose des äusseren
Staminalkreis vorhanden: Mikropyle nach aussen und unten; Markstrahlen vor-
handen; Nebenblätter fehlend; spiralige Blattstellung:

Orygieae: Macarthuria Hueg., Orijgia Forsk.

2. Arillus fehlt: pro Carpellfach stets ein Ovulum:

Limeeae: a) Mikropyle nach unten und aussen; Nebenblätter fehlend:

Limeinae: «) Äusserer Staminalkreis in Reduktion oder Metamorphose
tretend; Blätter wechselständig: Limeum L., Semonvillea Gray.

ß) Innerer Staminalkreis abortiert; Blätter gegenständig: Acrosanthes
Eckl. et Zeyh.

b) Mikropyle nach oben; Nebenblätter vorhanden:

Adenogramminae.

a) Eine Samenanlage, basal inseriert an langem Funiculus in einem
Carpellfach : Adenogramma Reichb.

ß) Je eine Samenanlage, median an sehr kurzem Funiculus in zwei
Carpellfächern: Polpoda Presl, Psammotropha Eckl. et Zeyh.

B. Apical, oder nur bei oo Samenanlagen mediane bis basale Insertion
derselben.

1. Funiculi fadenförmig: Mesambryanthemeae.

a) Fruchtknoten unterständig: Blumenblätter vorhanden: Mesembryanthe-
minae: Mesembryanthemum Dill.

b) Fruchtknoten oberständig; Blumenblätter fehlen: Aizoinae: Aizoon L.,
Glinus L., Galenia L., Plinthus Fenzl.

2. Funiculi kurz:

a) Samenanlagen pro Carpellfach mehrere; Mikropyle nach aussen;
Nebenblätter: Mollugineae.

«) Ohne Arillus; deutlich apicale Insertion der Samenanlage: Mikropyle
nach oben; Kapsel septicid; Einzelkristalle vorhanden: Mollug ininae: Mollugo~L.,
Pharnaceum L., Bypertelis E. Mey., Coelanthum E. Mey.

ß) Mit Arillus: mediane Insertion der Samenanlage: Mikropyle nach
unten; Kapsel mit Deckel sich öffnend; Einzelkristalle fehlend: Sesuriinae-.
Sesuvium L., Trianthema Sauv., Cypselea Turp.

b) Samenanlagen pro Carpellfach eine; Mikropyle nach innen und oben;
Nebenblätter fehlen: Tetragonieae: Tetragonia L.

821. Raffill, C. P. Mesembryanthemum pyropeum. (Card. Chron., 3. ser.,
XLIII, 1908, p. 43, fig. 21.)

Die Figur zeigt blühende Pflanze.

Amarantaceae.
Neue Tafeln:

Achyranthes angustifolia Benth. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 41.

Anacardiaceae.

Neue Tafeln:

Lannea Schimperi Engl, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 82.
Protorhus Beckeli in Ann. Mus. Col. Marseille, XV, 1907, tab. ad p. 19.
Semecarpus rostrata Val. in Icon. Bogor., III, 1908, tab. CCLIX.
S. Thorelii H. Lecomte in Fl. gen. de lTndo-Chine, II, 1908, pl. I.

822. [Bean], W. J. Rhus Toocicodendron. (Kew Bullet., 1908, p. 455—456.)
Populäres über die Giftigkeit usw.

140 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [140

823. Bois, D. Les Sumacs [Uhus] veneneux. (Rev. Hortic, LXXX,
1908, p. 269-270.)

Auszug aus: Bullet. Soc. Nat. d'Acclimat. de France.

824. Greene, E. L. Is Rhus glabra in Canadat (Ottowa Nat., XXII,
1908, p. 179—181.)

Nicht gesehen.

825. Holmes, E. 31. Rhus toxicodendron. (Pharm. Journ., LXXXI, 1908,
p. 231—232, 3 fig.)

Siehe „Chemische Physiologie".

826. Lecomte, H. Deux Anacardiacees [S. Orindeia] nouvelles du
Oongo francais. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 180—182.) N. A.

827. Lecomte, H. Anacardiaceae in Fl. gen. de l'Indo-Chine, I, 1908,
p. 6—41, fig. 3—6.

Behandelt Vertreter von 14 Gattungen.

828. Maiden, J. H. „Poison Joy" [Rhus radicans]. (Roy. Soc. N, S.
Wales Abstr. Proc. Nov. 4, 1908, p. III.)

Nicht gesehen.

829. Majima, R. and S. Cho. Über den Hauptbestandteil des
japanischen Lacks. (Journ. Coli. Sc. imp. Univ. Tokyo, XXV, 1908»
p. 1-17.)

Siehe „Chem. Physiologie".

830. Mottet, S. Smodingium argutum. (Revue Hortic, LXXX, 1908,
p. 384—385, fig. 142.)

Ein Blattzweigstück wird abgebildet.

831. Sprenger, C. Briefe aus Sizilien. Sumach. (Gartenflora, LVII,
1908, p. 108-109.)

Plauderei über Rhtis Coriaria L.

832. Wiechowski, Wilhelm. Pharmakognosie des Laubblattes von
Mangifera indica L. (Lotos, Prag, LVI, 1908, p. 141 — 150.)

Siehe „Pharmakognosie". Fedde.

Ancistrocladaeeae.

Anonaeeae.
Neue Tafeln:
Anona senegalensis Pers. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 49.

833. Bagshawe, A. G and Baker, E. G. Uganda Anonaeeae. (Journ. of
Bot., XLVI, 1908, p. 219-222.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie0.

834. Diels, L. Anonaeeae africanae, IL (Engl. Bot. Jahrb., XCI, 1908,
p. 328—329.) N. A.

Neue Arten von: Isoloma, Popowia, Uvaria.

835. Toni, J. B. de. Sur le Griffithsia acuta Zanard. Herb. (Associat.
franQ. l'avancem. Sei., XXXIV Session, Cherbourg 1905, p. 402—405.)

Nicht gesehen.

Apocynaceae.

Neue Tafeln:
Adenium obesum R. et Seh. in Karsten et Schenck, Vegetationsb., V, 1908,

tab. 43, fig. 1 (Habitus).
Clitandra Arnoldiana De Wild, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 130.

141] Ancistrocladaceae. Anonaceae. Apocynaceae. 141

Culcasia scandens Beauv. in Engler-Drude, Vegetat. d. Erde, IX, II, 1908, tab.

XIV (Vegetationsbilder).
Landolphia chylorrhiza Stapf, Journ. of Bot., XLVI, 1908, plate 492.
Plectaneia rhomboidale Jum. et Perr. in Ann. Mus. Col. Marseille, 2. ser., VI,

1908, pl. 1.
P. elastiea J«m. et Perr., 1. c, pl. 2.
Strophanthus Eminii Asch, et Pax in Karst, et Seh., 1. c, tab. 43, fig. 2

(Habitus).
TonduAa stenophylla Pitt, in Contr. U. St. Nat. Herb., XII, 1908, pl. IX.

836. Anonym. Drei neue Kautschuk liefernde Pflanzen. (Garten-
flora, LVIT, 1908, p. 45-46.)

Auszug aus Notizbl. Bot. Garten Berlin-Dahlem, No. 41.

838. Baudon, A. Le Caoutchouc des Herbes au Congo francais.
(Ann. Mus. Col. Marseille, XVI, 1908, p. 241—256.)

Betrifft Landolphia Thollonii und Carpodinus lanceolata.
Siehe „Chem. Physiologie".

839. Borzi, A. Notizie sulla Funtumia elastiea (Preuss.) Stpf.
(Bollett. Pt. Orto botan. e Giard. colon. Palermo, VI, p. 78—82, 1907.)

Die Wichtigkeit von Funtumia elastiea Stpf. als kautschukliefernde
Pflanze wird, auf Grund der Angaben Wildemans u. a., hervorgehoben und
deren Kultur im Somaliland, längs des Ginba, als vorteilhaft hingestellt.

Samen dieser Pflanze gelangten in Palermo im Mai (zwischen 14 — 20° C)
binnen zwei Wochen zur Keimung; die Cotylen verbleiben in der Samenhülle
bis das hypokotyle Achsenglied eine Höhe von 3—5 cm vom Boden erreicht
hat, dann entfalten sie sich frei zum Lichte. Im Laufe von drei Monaten er-
reichen die Keimpflänzchen eine Höhe von 4 dm. Solla.

840. Bruno A. Sulla composizione chimica delle ceneri della
corteccia di Nerium Oleander L. Nota riassuntiva. (Boll. Soc. Nat.
Napoli. XXI, 1908, p. 103—110.)

Siehe „Chemische Physiologie".

841. Costantin et Bois. G enus Pachypodium speciebus novis au c tum.
(Rep. spec. nov., V, 1908, p. 246-250.)

Ex: Ann. Sei. nat., 9. ser., VI, 1906, p. 307—330.

842. Fawcett, W. Adeaium obesum in Jamaica. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIII, 1908, p. 226, fig. 99 )

843. Gamble, J. Sykes. Apocynaceae in King a. Gamble, Materials for
a Flora of the Malayan Peninsula, No. 19. (Journ. As. Soc. Bengal.. LXXIV,
p. 387—505.) X. A.

Umfasst 31 Gattungen.

844. Gilg, E. Welche Strophanthus- Art verdient als offiziell in
das neue Arzneibuch aufgenommen zu werden? (Ber. deutsch, pharm.
Ges.. XVIII, 1908, p. 284—297.)

Siehe „Chemische Physiologie".

845. Gilg, Ernst. Über die Kautschuklianen Carpodinus landolphioi-
des (Hall, f.) Stapf und Landolphia Dawei Stapf. (Notizbl. Bot. Mus. Berlin-
Dahlem, V, 1908, No. 43, p. 69—72.)

Hauptsächlich Referat über Stapfs Arbeit 1904.

846. Jumelle, Henri et H. Perrier de la Bathie. Le genre Plectaneia de
Madagaskar. (Ann. Inst. Col. Marseille, XVI [2. ser., VI vol.], 1908, p. 35— 65,
9 Fig., 2 pl.) X. A.

142 & K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [142

Die Verff. besprechen zunächst die zwei bisher bekannten Arten P.
Thouarsii R. et Seh. und P. Hüdebrandtii K. Seh. und beschreiben dann ein-
gehend die zwei neuen, unter den Tafeln oben angezeigten Species.

847. Müller, Rudolf. Über das Acocanthera [Deflersii Schwein f. ] Holz
und das Herzgift Ouabin. (Zeitschr. Allg. Österr. Apoth.-Ver., XLVI, 1908,
p. 319-321, 331—333, 343—345.)

Siehe „Chemische Physiologie".

848. Pittier de Fäbrega, H. Tonduzia, a new genus of Apocynaceae
frorn Central America. (Contr. ü. St. Nat. Herb., XII, 1908, p. 103—104,
Fig. 5-6, pl. IX.) N. A.

Nahe verwandt mit Aspidosperma, wovon es abweicht durch seine langen,
zylindrischen Follikeln, seinen kurzen umbilicalen Ring, seine gefranzten und
nicht geflügelten Samen und einige minder wichtige Charaktere.

849. Stapf, Otto. Some suf fr utescent Apocynaceae from Angola.
(Journ. of Bot., XLVI, 1908, p. 209—212, pl. 482.) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie".

850. Stapf, Otto. Polyadoa and Holalafla. (Bullet. Kew, 1908, p. 302
bis 303) N. A.

Betrifft Polyadoa umbellata, deren Frucht Verf. beschreibt. Ausserdem
bespricht er die Unterschiede von Polyadoa gegen Pleocarpa, Hunteria und
Picralima.

Die vom Verf. aufgestellte Gattung Hohdafia hat sich jetzt, nachdem
näheres über die Früchte und Samen bekannt wurde, als von Alafia nicht
mehr abtrennbar erwiesen.

851. Tuiiiiiaiin. 0. Mikroskopisch-pharmakognostische Beiträge
zur Kenntnis einiger neuerer Arzneidrogen. (Pharmaceut. Centralh.,
1908, p. 299-306, Fig. 1—6.)

Betrifft: Apocynum cannabinum.
Siehe „Anatomie".

852. Vogler, P. Variationsstatistische Untersuchungen an den
Blättern von Yinca minor L. Ein Beitrag zur Theorie des Flächenwachstums
der Blätter. (Jahrb. St. Gallischen naturw. Ges., 1907 [1908], p. 1—31, 9 Fig.)

Siehe „Descendenz, Variation" usw.

Aquifoliaceae.

Neue Tafel:
Hex crenata Thbg. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon, II, 1908, tab. 38,
fig. 1—15.

853. Anonym. Fasciation in a Holly [Hex], (Gai-d. Chron., 3. ser.,
XLIIL 1908, p. 50, fig. 24.)

Verbänderter Trieb.

854. Loesener, Th. Über die Ergebnisse meiner monographischen
Studien über Aquifoliaceen, insbesondere über Hex. (Verh. Bot. Ver.
Brandenburg, L, 1908, p. XVIII— XXVII.)

Auszug aus einem Vortrag, in dem Verf. die Resultate seiner unten
referierten Monographie kurz niederlegt.

855. Loesner, H. Monographia Aquifoliacearum, pars II. (N. Acta Ac.
Leop. Carol. Halle, LXXXIX, 1908, p. 1—314, 11 Abb., 3 Karten.) N. A.

Der Inhalt dieses 2. Teiles gliedert sich wie folgt:

1431 Apocynaceae. Aquifoliaceae. 143

1. Kapitel: Stellung der Familie im System.

2. Kapitel: Umgrenzung und Einteilung der Familie.

3. Kapitel: Geographische Verbreitung der Gattungen.

4. Kapitel: Morphologie, Einteilung und geographische Verbreitung der

Untergruppen der Gattung Hex.

1 . Untergattung Bryonia.

2. Untergattung Yrbonia-

3. Untergattung Euilex.

A. Reihe Lioprinus.

B. Reihe Paltor ia.

C. Reihe Aquifolium.

D. Reihe Thyrsoprinus.

4. Untergattung Prinus.

5. Kapitel: Zusammenfassende phylogenetische Erwägungen.

6. Kapitel: Biologie.

7. Kapitel: Über das Verhalten der Gattung Hex in den verschiedenen

Florengebieten.
I. Nördliches extratropisches oder boreales Florengebiet.
II. Das paläotropische Florenreich.
III. Das zentral- und südamerikanische Florenreich.

8. Kapitel: Beziehungen der Aquifoliaceen zum Menschen, über Nutz

pflanzen usw., insbesondere über Mate.

9. Kapitel: Teratologisches.

10. Kapitel: Nachträge und Verbesserungen zu Teil I.

11. Kapitel: Systematische Aufzählung der Arten.
Alphabetisches Register.

Hinsichtlich der Stellung der Familie im System verbleibt Verf. bei
seiner alten Auffassung, wonach sie sich eng an die Celastraceen anschliesst,
er lehnt sowohl Van Tieghems wie auch Halliers neuere Ansichten ab, wonach
die Aquifoliaceen den Solanaceen anzureihen, bzw. bei Umbellifloren unter-
zubringen wären.

Verf. gibt folgende Gruppierung der Familie und der Gattungen:

I. lliceae Dumort.

Blätter einfach, wechselständig, ausdauernd oder seltener abfallend.
Inflorescenzen einblütig oder meistens gabelig verzweigt, seltener zu traubigen
oder rispigen Gesamtinflorescenzen vereinigt, einzeln in den Achseln von
Laubblättern oder von Niederblättern oder büschelig in den Achseln von
Laubblättern vereinigt. Blumenkrone meist radförmig, Blumenblätter abge-
rundet, in der Knospenlage sich dachig deckend, selten durch Reduktion
lanzettlich oder fast linear und gänzlich frei und sich nicht deckend, dann
aber jedenfalls ohne ein innen gebogenes Anhängsel.

1. Kelch und Blumenblätter deutlich, die letzteren abgerundet und in der
Knospenlage sich dachig deckend. Frucht mit deutlichem Kelch.
Ilex L.

2. Blumenkrone und besonders der Kelch reduziert, letzterer bisweilen fast
fehlend, Blumenblätter lanzettlich oder linear, frei, sich gar nicht oder
nur undeutlich in der Knospenlage deckend. Kelch an den Früchten
undeutlich. Strauch mit, Lang- und Kurztrieben und mit sommergrünem
Laub. Nemopanthus Raf.

144 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [144

II. Phellineae Loes.

Blätter einfach, wechselständig', bisweilen fast quirlig, ausdauernd, oft
an den Enden der Zweige mehr oder weniger dicht zusammengedrängt.
Inflorescenzen traubig oder rispig, oft, besonders die $, zu umfangreichen,
reich verzweigten Gesamtrispen vereinigt. Blumenblätter frei, mehr oder
weniger dickfleischig, nach der Spitze verschmälert und in ein nach innen
gebogenes Zipfelchen verschmälert, in der Knospenlage klappig.

Einzige Gattung Phelline Labill.

Die PhyJogenie der Gattung Hex wird sehr eingehend auf Grund der
Morphologie, Anatomie und pflanzengeographischen Verbreitung behandelt.
Verf. sagt zum Schluss: Überblicken wir noch einmal die Verbreitung der
Sektionen von Euilex im ganzen, so sehen wir, dass die gegenwärtige Haupt-
entwickelung in den Tropen liegt, in der Alten Welt, wie in der Neuen. Es
scheint hier besonders die Aquilifolimn-Reihe jetzt auf dem Höhepunkt ihrer
Entwickelung zu stehen. Die phylogenetisch ältere Lioprinus-Reihe dagegen
ist in den Tropen schwächer vertreten, wo sie kaum mehr Arten als in den
subtropischen und gemässigten Ländern der nördlichen Halbkugel aufweist.
Hier treten dafür anderseits die Aquifoliwmrhxteii nicht so in den Vordergrund
wie in den Tropen; in der Neuen Welt können sie sogar nicht einmal mit
der sonst an Artenzahl viel geringeren Lioprinus-Reih.e in Wettbewerb treten.

Die Verbreitung der Untergattung Prinus ist nördlich temperiert und
reicht kaum bis in die Tropen hinein.

Der Ursprung der Gattung Hex würde jedenfalls also wohl auf der
nördlichen Halbkugel zu suchen sein und auf eine Zeit und Gegend milden
Seeklimas weisen. Vielleicht ist die Gattung schon während der jüngeren
Kreidezeit entstanden, hat sich dann während des älteren Tertiärs zirkumpolar
und später über das atlantische Nordamerika und in Ostasien verbreitet und
gelangte bereits während der Tertiärzeit, zum Teil durch Vermittelung von
Vögeln usw. (durch sogenannte endozoische Verbreitung), in die Tropen beider
Erdhälften, wo sie zu einer neuen Entwickelung erblühte, von der uns gegen-
wärtig besonders die Aquifolium-Reihe Zeugnis gibt. In der Neuen Welt
erfolgte die Wanderung zweifellos über West-Indien und nicht über das
kontinentale Mittelamerika. Wie dies aber sonst im einzelnen vor sich ge-
gangen sein mag, würde sich nur an der Hand eines einigermassen reich-
haltigen und sicher bestimmten paläontologischen Materials feststellen lassen.

Wegen der neuen Arten usw. vgl. „Index nov. gen. et spec".

Araliaeeae.

Neue Tafeln:
Cussonia spicata Thunb. in Thonner, Blüten pfl. Afrikas, 1908, tab. 119.
Fatsia papyrifera Benth. et Hook, in Miyoshi, Atl. jap. Veget., sect. X, 1908,

tab. 75 (Vegetationsbild).
Stilbocarpa polaris, Kew Bull., 1908, pl. ad p. 249, fig. 5, Habitusbild.

856. Harms, H. Beschreibung einer neuen, von Oberstabsarzt
Dr. Kraemer auf den Karolinen gefundenen Araliacee [Scheftlera
Kraemeri Harms n. sp.]. (Notizbl. Bot. Garten Berlin-Dahlem, V, 1908, No. 43,
p. 73-74.) X. A.

857. Harms. Verzeichnis der neuen Namen und Beschreibung
der neuen Gattungen aus: Rene Viguier, Recherches anatomiques
sur la Classification des Araliacees. (Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 45 — 48.)

145] Araliaceae. Aristolochiaceae. Asclepiadaoeae. 145

858. Harms, H. Araliaceae peruvianae. (Engl. Bot. Jahrb., XML 1908,
p. 148—162.) N. A.

Neue Arten von Schefflera, Oreopanax, Gilibertia, Didymopanax.

859. Harms, H. Araliaceae in Ule, Beitr. Fl. Bahia. I. (Engl. Bot. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 237-238.) N. A.

Neu Pentapanax TJlei n. sp.

860. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie von Aralia (Veitchii?).
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 605.)

Siehe „Blütenbiologie".

861. Heineck. Der Verlauf des Blütenlebens bei Hedera helix L.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 620-622, 3 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

862. Schelle, E. Ein neuer (?) Acanthopanax- (Mitt. D. Dendrol. Ges.,
XLII, 1908, p. 217-218.) N. A.

Verf. beschreibt die als Acanthopanax ricinifolium verbreitete Form neu
als A. acerifolium.

Aristolochiaceae.

Neue Tafeln:
Aristoloehia bracteata Retz. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas 1908, tab. 38.
Bragantia macrantha Val. in Icon. Bogor., III, 1908, tab. CCLX.
Thottea borneensis Val. in Icon. Bogor., III, tab. CCLXI.

863. Heineck. Wie kommen die Fliegen aus der Perigonröhre
in den Kessel der Aristoloehia sipho und wie gelangen sie wieder —
nach der Bestäubung — ins Freie. (Naturw. Wochenschr., N. F.. VIT.
1908, p. 58-61, 3 Fig.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

861. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 8. Aristoloehia
Serpentaria L. (Mercks Rep., XVI, 1907, p. 276—279, fig. 1—15.)
Siehe „Anatomie".

»

Asclepiadaoeae .

Neue Tafeln:
Cryptostegia albicans Jum. et Perr. in Ann. Mus. Ool. Marseille, XVI, pl. III.
C madagascariensis Boj. in Ann. Mus. Col. Marseille, XVI, pl. IV.
Hoya densifolia Val. in Icon. Bogor. III, 1908, tab. COLXII.
Pentopetia brinensis Jum. et Peir. in Ann. Mus. Col. Marseille, XVI, pl. I.
P. elastica Jum. et Perr. in Ann. Mus. Ool. Marseille, XVI, pl. IL
Raplnonacme utilis Brown and Stapf in Kew Bulletin, 1908, plate to face,

page 215.
R. utilis Br. et Stapf in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8221.
Secamone bicolor Decne. in Ann. Mus. Col. Marseille, XVI, pl. V.
Sivynnertonia cardinea in Journ. of Bot., XL VI, 1908, plate 495 A.
Tacazzea venosa (Höchst.) Decne. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 131.

865. Anonymus. Bitingia rubber from Raplnonacme utilis. (Bull. imp.
Inst., VI, 1908, p. 390—393.)

Siehe „Pharmakognosie".

866. Anonym, hoya carnosa. (Gard. Chron., 3. ser., XCIV, 1908, p. 305,
Fig. 130.)

Die Abb. zeigt Früchte und Samen.
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 11. 7. 10.] 10

146 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonugamen. [I4f>

867. Berger, A. Asdepiadaceae in Schinz, ßeitr. zur Kenntnis der afrik.
Flora, XXII. (Vierteljahrschr. Naturf. Ges. Zürich, LIII, 1908, p. 490—492.)

Neue Stapelia- Arten. N. A.

868. Brown, N. E. Notes upon Stapelias. (Gard. Chron., 3. sei., XLIVr
1908, p. 168-169, Fig. 65—69, 187—188, Fig. 77—80, 196—197, Fig. 85—87.)

Die Abb. zeigen Pflanzen und Details von: St. Hanburyana, bella, Bayfteldii>
hirsuta var. unguipetala, var. depressa; St. gigantea, glabriflora, Pillansii, flavi-
formis; St. longidens, olivacea und Huernia brevirostris.

869. Brown, N. E. Asdepiadaceae in Flora capensis, IV, 1909, p. 673 — 864.

N. A.

870. Gamble, J. Sykes. Asdepiadaceae in King a. Gamble, Materials for
a Flora of the Malayan Peninsula. (Journ. As. Soc. Bengal, LXXIV, 1908,
p. 505—596.) N. A.

871. (dabisz, J. Morphologische und physiologische Unter-
suchungen an Ceropegia Woodii Schlechter. (Zürich, 1907, 8°, 76pp., 3 Taf.,
26 Fig.; erschienen in Beih. Bot. Zentrbl., XXIII, I, 1908, p. 65—136, tab. IX
bis XI, 30 Textf.)

Siehe unter „Anatomie".

872. Jnmelle, Henri et Perrier, H. de la Batliie. Notes biologiques sur la
Vegetation du Nord-Ouest de Madagascar; Les Asclepiadacees. (Ann. Mus.
Col. Marseille, XVI, 1908, p. 131—239, pl. I— V.) N. A.

Der erste Abschnitt: „vue d'ensemble sur la Vegetation du Boina et de
l'Ambongo" ist rein pi'lanzengeographischer Natur. Ebenso Kapitel II: „l'an-
cienne foret malgache". Man vgl. unter „Pflanzengeographie".

Kapitel III behandelt: „Les Asclepiadees du Nord-Ouest". (Man vgl.
oben die Tafeln und „Ind. nov. gen. et spec")

Die neuen Arten siehe Fedde, Rep. nov. spec. X.

Zum Schluss dieses Kapitels sagen Verff. resümierend folgendes:

Hinsichtlich der Tracht sind nur zwei Arten wirklich aufrecht, der
Halbstrauch Gomphocarpus fruticosus und der Strauch Menabea venenata- Alle
anderen sind Lianen oder kriechende Pflanzen oder mehr oder weniger krautig
und windend.

Pycnoneurum sessiliflorum hat einen einfachen, aufrechten, 40 — 60 cm
langen Stengel. Secamone ligustrifolia ist an ihrer Basis ein Strauch, aber ihre
Zweige neigen zum Klettern. Blattlos sind Cynanchum arenarium, Sarco-
stemma viminale, S. implicattim, Decanema Bojerianum und D. grandiflorum.

Pycnoneurum sessiliflorum hat eine verlängerte rübenförmige Knolle,
Ceropegia scabra eine scheibenförmige Knolle und Ceropegia contorta und peti-
olata sind an der Basis auch leicht knollig; Tylophora Bojeriana hat eine
fleischige Hauptwurzel.

Fast alle Arten enthalten eine weisse klebrige Latex. Die Milchsäfte
von Cryptostegia madagascariensis, Marsdenia verrucosa, Pentopetia elastica geben
durch (Joagulation Kautschuk. Pentopetia [madagascariensis und Tylophora Boje-
riana sind ohne Latex.

Hinsichtlich der bewohnten Örtlichkeiten gibt es auch grosse Verschieden-
heiten. Viele Arten scheinen sich in den trockenen Wäldern zu gefallen, be-
sonders Camptocarpus mauritianus und C. Bojeri, die meisten Pentopetia, Crypto-
lepis albicans, Decanema Bojerarium und fast alle Secamone, Pergularia africana,
Gymnema rufescens usw. Die letztere findet sich besonders an den Bändern

147] Asclepiadaceae. 147

der Gehölze. Das gleiche gilt für Marsdenia truncata, die auf allen Terrains
wächst, und von Toxocarpus sulfureus.

Es sind besonders in den trockenen, offenen Geländen Pycnoneurum sessili-
florum, Cynanchutn arenarium, Sarcostemma implicatum, eine Felsenpflanze,
Taxocarpus ankarensis und Menabea venenata-

Dagegen kennen wir Secamone bracJiystigma in den leuchten Wäldern
des Alluvialterrains und Secamone petiolata in den zur Regenzeit überschwemmten
Grenzwäldern des Jabohazo, Toxocarpus tomentosus in den feuchten sandigen
Wäldern und Tylophora Bojeriana in Wäldern, wo immer eine gewisse Feuchtig-
keit herrscht. Cryptostegia madagascariensis findet sich in allen Terrains nahe
an Gewässern.

In den steinigen kalkigen Wäldern von Ambongo trifft man Ceropegia
saxatilis und albisepta; in den Sandwäldern C. contorta in den Basaltwäldern
C. petiolata. In Uferwäldern des Betsiboka findet man C. breviloba, in den
Gneisfelsenwäldern des Haut-Bemarivo C. scabra.

Besonders häufig bei Wohnstätten ist Leptadenia madagascariensis, ebenso
an Flussufern auf Sand.

Halophyten sind Microstephanus cernuus und Pentatropis madagascariensis.

873. Jnmelle, H. et Perrier, H. de la Bathie. Une nouvelle Asclepiadee
ä caoutchouc, ä Madagascar. (Le Caoutchouc et la Gutta-percha, 1908,
10 pp., 1 fig.)

Pentopetia elastica, Diagnose siehe Fedde, Rep. nov. spec. VII (1909).
p. 391. Fedde.

874. Jumelle, H. Le Cryptostegia qrandiflora dans le sud ouest de
Madagascar. (Le Caoutchouc et la Gutta-percha, 1908, 13 pp., 2 fig.)

Kurze Beschreibung der allgemeinen Vegetationsverhältnisse und des
Nutzens. Fedde.

875. Malme, Gustav 0. A. Contributions ä l'etude des especes
Paraguayennes du genre Oxypetalum R. ßr. I. Section Txueedioides. (Bull.
Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 98—106.) N. A.

Der vom Verf. wie folgt charakterisierten Sektion gehören neun Arten
an, darunter fünf neue.

Sect. Scliizostemma Decaisne in DC. Prodr., VIII (1844), p. 506 (p. p. min.).

Sect. Lyrodns Fournier in Flor, brasil. fasc, 35 (1885), p. 265 (p. p. min.).

Herbae (v. suffrutices) erectae, foliis angustis, linearibus, lanceolato-
linearibus v. raro lanceolatis (aeque ac caule) glabris v. pilis brevibus, plus
minusve adpressis, raris ornatis, floribus parvis, caudiculis retinaculi subhori-
zontalibus, semper dente munitis.

Sectio habitu, caule gracili, foliis angustis, indumento parco v. fere defi-
ciente facile dignota; quoad squamas coronae, retinaculum, pollinia rostrumque
styli valde varians.

Quam speciem (0. lineare Decaisne) cognitam habuit oculatissimus De-
caisne Ticeediis, quas habitu in memoria satis revocat, affinem esse censuit.
Unde sectionis nomen.

876. Stapf, Otto. EcandaRubber (Raphionacme utilis Brown etStapf).
(Kew Bulletin, 1908. p. 209—215, with plate.) N. A.

Technisches und Beschreibung der Art.

877. Wagner, R. Untersuchungen über den Bau der Dolden von
Stephanotis floribunda Brongn. (Sitzb. Akad. Wien, CXVII, 1908, p. 53—85,
17 Fig.)

10*

148 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [148

In Östr. Bot. Zeitschr., 1908, p. 126 findet sich folgendes Autorreferat:
In der artenreichen Familie der Asclepiadaceen treten sehr häufig, geradezu
vorwiegend, Blütenstände von Doldenform auf, die sich aber bisher der Analvse
entzogen haben. Wegen der Beurteilung anderer Familien erschien es daher
desto wünschenswerter, über den Aufbau dieser Gebilde Näheres zu erfahren.
Verf. hat 50 Blütenstände der auf Madagaskar heimischen Steplianotis floribunda
Brongn. analysiert und eine ganze Reihe anscheinend recht verschiedener
Bildungen gefunden, die sich indessen auf einen Typus, nämlich den des
Pleiochasiums, zurückführen lassen. Aus zwei, selten drei der Terminalblüte
vorangehenden Bracteen entwickeln sich Partialinflorescenzen erster Ordnung,
deren unterste stets die komplizierteste ist und ein Schraubelsympodium dar-
stellt, das im besten Falle bis zur Quartanblüte vorrückt und sich durch fast
konstante Entwickelung einfacher ß- Achselprodukte auszeichnet; selten wird
die oberste Bractee steril, so dass ein unterbrochenes Monochasium zustande
kommt. In einigen Fällen konnte auf Atavismen hingewiesen werden; häufig
ist die Reduktion von Bracteen, die höheren Sprossgenerationen angehören,
doch liess sich keine bestimmte Regel festlegen. Die zum Teil ziemlich ver-
wickelten Verhältnisse werden durch eine grössere Anzahl Diagramme er-
läutert.

Balanophoraceae.

878. Heinriche!', E. Ph. van Tieghems Anschauungen über den
Bau der Balanophora -Knolle. (Sitzb. Akad. Wien, 1, CLVII. 1908. 3, p. 337
bis 34(5.)

Siehe „Anatomie".

879. Strigl, M. Der Thallus von Balanophora anatomisch-physio-
logisch geschildert. (Sitzb. Akad. Wien, 1, CXVI1, 1908, p. 1127— 1175,
3 Tafeln.)

Siehe „Anatomie".

Balsaminaceae.

Neue Tafeln:
Impatiens Abbaus Hk. f. in Icones plant., XXIX, 1908, tab. 2861.
I. arguta var. Bulleyana Hk. f., 1. c, tab. 2875.
I. ätherosepala Hk. f., 1. c, tab. 2868.
I. attopenensis Hk. f., 1. c, tab. 2853.
1. Aureliana Hk. f., 1. c, tab. 2851.
I. Balansae Hk. f., 1. c, tab. 2862.
I. Boni Hk. f., 1. c, tab. 2860.

I. capensis Thbg. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, tab. 88, 1908.
I. Capusii Hk. f. in Icones plant., XXIX, 1908, tab. 2864.
I. claviger Hk. f., 1. c, tab. 2863.
I. cyanantha Hk. f., 1. c, tab. 2866.

I. Delavayi Franch. in Nouv. Arch. Mus. Paris, X, 1908. pl. 4.
I. dicentra Franch., 1. c, pl. 5.

I. Gauphiana Hk. f. in Icones plant., XXIX, 1908, tab. 2873.
I. Harmandi Hk. f., 1. c, tab. 2858.
I. indo-chinensis Hk. f., 1. c, tab. 5854.
I. Lanessoni Hk. f., 1. c, tab. 2855.
J. lasiopliyton Hk. f., 1. c, tab. 2871.
I. Lecomtei Hk. f. in Nouv. Arch. Mus. Paris, X, 1908, pl. 6.

149] Balanophoraceae. Balsaminaceae. Basellaceae. Begoniaoeae. 149

Impatiens lepida Hk. f. in Icones plant., XXIX, 1908, tab. 28(57.

I. leptocaulon Hk. f. 1. c, tab. 2872.

1. Leveillei Hk. f., 1. c, tab. 2865.

I. margaritifera Hk. fl. in Nouv. Arch. Mus. Paris, X, 1908, pl. 2.

I. Martinii Hk. f. in Icones plant., XXIX, 1908, tab. 2870.

I. Morset Hk. f., 1. c, tab. 2874.

I. Oliveri in Rev. Hortic, LXXX, 1908, tab. col. ad p. 180 (ramul. florif.).

I. piufanensis Hk. f. in Icones plant., XXIX, 1908, tab. 2869.

I. procumbens Franch. in Nouv. Arch. Mus. Paris, X, 1906, pl. 3.

I. semonnensis Hk. f., 1. c, tab. 2852.

/. Spireana Hk. f., 1. c, tab. 2859.

I. verrucifer Hk. f., 1. c, tab. 2856.

I. zygosepala Hk. f., 1. c, tab. 2857.

880. Cayenx, Henri. Mouvements observes apres la fecondation
chez certaines especes d' Impatiens. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 450,
fig. 170.)

Verf. beschreibt, dass bei Impatiens comorensis die Blüte nach erfolgter
Befruchtung im Laufe von ca. 10 Stunden die Blütenhülle abwirft, worauf
das nackte Ovar ca. 24 Stunden in der gleichen Stellung bleibt. Dann senkt
sich die Blüte mit Stiel im Laufe von 6 Tagen bis unter das Achselblatt, wo
die junge Frucht 12 Stunden bleibt, um dann während 12 Tagen bis fast in
die erste Stellung wieder zurückzukehren, worauf das Aufspringen der reifen
Frucht erfolgt.

881. Cayeux, Henri. Les Hybrides du genre „Impatiens"'. (Rev.
Hortic. LXXX, 1908, p. 425—428, fig. 163-164.)

Betrifft X-f- comoricana (I- anaicoma X I- comorensis).

882. Hooker, J.-D. Les especes du genre Impatiens Jans l'Herbier
du Museum de Paris. (Nouv. Arch. Mus. Paris, X, 1908, p. 233—272, pl. II
bis VI ) N. Ä".

Vgl. die Tafeln oben und „Index nov. gen. et spec".

883. Mottet, S. Impatiens Oliveri. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 180
bis 181, tab. col.)

Basellaceae.

Siehe hierzu E. Franz unter Portulacaceael

Begoniaceae.

Neue Tafeln:

Begonia Bruneelii De Wild., Ann. Mus. Congo, II, fasc. 3, 1908, tab. LXXVIII

fig. 1.
B romeensis De Wild, 1. c, fig. 2.

B. cathagana Hemsl. n. spec in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8202.
B. Favargeri Rechinger in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 108.
Hillebrandia sanäwicensis, Gard. Chron, 3. ser, XLIV, 1908, tab. nigra ad

p. 412.

884. Candolle, C. de. Begoniaceae novae. (Bull. Herb. Boiss, 2. ser.,
VIII, 1908, p. 309—328, eine Textfig.) N. A.

Neue Arten der Gattung Begonia und Semibegoniella C. DC. n. gen.

885. Hildebrand, Friedrich. Über zwei eigentümliche Blüten einer
Knollenbegonie. (Ber. ü. Bot. Ges., XXVIa, 1908, p. 588—589, eine Textf.)

Siehe „Teratologie".

150 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [150

886. Hildebrand, Friedrich. Über weitere zygomorphe Blüten
einer Knollenbegonie. (Ber. D. Bot. Ges., XXVla, 1908. p. 16—19
eine Textfig.)

Siehe „Teratologie".

887. Kranss, 0. Begonia phyllomaniea. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 378
bis 379, Abb.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

Berberidaceae.

Neue Tafeln:

Berberis acuminata Franch. in Bot. Mag., ÜXXXIV, 1908, p. 8185.

B- yunnanensis Franch., 1. c , tab. 8224.

B- Thunbergii DC. in Shirasawa, Iconogr. essences forest. Japon, II, 1908,

tab. 17, fig. 18-31.
Epimeduim elonqatum Korn., Act. Hort. Petrop., XXIX, 1908, tab. III.

888. Dauphine, Andre. Sur un cas de cohesion foliaire chez les
Mahonia. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908. p. 696—300, fig.)

Siehe „Teratologie".

889. Gagnepain, F. Mahonia et Barclay a nouvelles de l'Asie dans
l'herbier du Museum. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 84—88.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

890. Gagnepain, F. Les Mahonia asiatiques de l'herbier du Museum.
(Bull. Mus. nation. Hist. nat., 1908, 2, p. 132—135.)

Siehe „Pflanzengeographie".

891. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 7. Podophyllum
peltatum L. (Mercks Pep., XVI, 1907, p. 250-252, fig. 1 — 12.)

Siehe „Anatomie".

892. Hutchinson, J. Mahonia arguta Hutch. n. sp. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLJII, 1908, p. 82.) N. A.

893. Komarov, V. L. Revisio critica specierum generis Epimeäium
L. (Act. Hort. Petrop., XXIX, 1908, p. 125—151, tab. III, russisch.) N. A.

Verf. behandelt eingehend die 19 Arten, welche sich in die Subgenera
Euepimedinm Franch. et Vancouveria Franch. gliedern. Das weitere erhellt
aus der im folgenden wiedergegebenen lateinischen Bestimmungstabelle :
\ Folia omnia radicalia, scapus aphyllus — 2.
I Caulis floriferus foliatus — 7.
Flores trimeri, foliola apice angulata margine inermia, sepala reflexa
calcar nulluni, racemus compositus paniculatus, pedicelli glandulosi

- 3.
Flores dimeri, foliola apice breviter acuminata margine ciliato-dentata,

sepala patentia. racemus simplex, pedicelli glabri — 5.
Folia tenuia membranacea margine piano minhne indurato — E-

hexandrum M. D.
Folia subcoriacea firma, margine cartilagineo crenulata vel crispata

— 4.

! Racemus 5 — 18 florus dense glandulosus; flores aurei — E. chry-
santhum M.
Racemus paniculiformis 25 — 35 florus, glaber — E. parciflorum M.
! Folia constanter trifoliolata, calcar ad 4 mill. longum — E. Perral-
derianum Coss.
Folia biternatim secta vel pinnata trisecta — 6.

151]

Berberidaceae.

151

10.

n.

12.

13.

U.

15.

16.

\

I

Sepala interiora ovato-subrhombea sulphurea, petala minima calcare

brevissimo sacciforme aurantiaco — E. pinnatum Fisch.
Sepala interiora obovata angustiora, petala calcare 2 — 3 mill. longo

— E- Colchicum Boiss.

Caulis floriferus monophyllus — 8.

Caulis floriferus dipbyllus, foliis suboppositus — 11.

Caulis floriferus, 3—5 foliatus, foliis alternis — 17.

Calcar sepalis multo longius, circa 2 cm longum, foliola evoluta
ampla membranacea setoso-dentata glaberrima — E. macran-
thum M. D.

Calcar sepalis multo brevius obtusum vel nullum (nectaria tunc
foveolata), foliola evoluta mediocria vel parva — 9.

Foliola parva margine saepissime integro cartilagineo, saepissime in
folio bina, pedicelli glabri, sepala interiora membranacea ovata
obtusa saepissime alba, rarius rosea vel lilacina — E. diphyllum Lodd.

Foliola breviter acuminata margine setoso-dentata terna vel quina
subpinnata; sepala interna pallida ovato-oblonga, nectariis cucul-
latiis brevibus — 10.

Folia juvenilia subtus parce pilosula adulta glabra — E. alpinum L.

Folia adulta subtus puberula, venis primariis ad basin pilis spissis
obtectis — E. pubigerum M. D.

Flores parvi, calcare brevi vel subnullo (nectariis saccatis in sicco
semper obsoleto — 12.

Flores in genere majores vel mediocres, calcare tenui elongato — 14.

Folia subtus plus minusve dense puberula saepe subtomentosa, nectaria
cucullata — E. pubescens Maxim.

Folia subtus glabra vel pilis brevibus sparsis obsolete obtecta, calcar
horizontale conico cylindricum breve — 13.

Folia plerumque ternata, foliola ovato-lanceolata acuta vel acuminata.
racemus glaber angustus, flores parvi, sepala interiora tenuissima
hyalina brevia, ovato-deltoidea acuta, calcar obtusum calyci aequi-
longum — E. sinensis Sieb.

Folia biternata, foliola cordata vel cor dato- ovata, racemus laxus
saepius amplus, pedicelli glandulosi, sepala interiora alba ovato-
oblonga acuminata, calcar iis duplo longius — E- brevicorum Maxim.

Calcar sepala interiora multo superans — 15.

Calcar sepalis interioribus brevius — 16.

Folia trifoliolata vel (radicalia) interdum simplicia, foliola longe acu-
minata subtus breviter puberula, racemus simplex pauciflorus
(floribus 10 — 15), pedicelli elongati glabri, calcar sepalis interioribus
subduplo longius — E. acuminatum Franchet.

Folia saepius 5 foliolata, foliola obtusiuscula vel breviter acuminata.
pedicelli rufo lanuginosi (nee glandulosi), flores mediocres — E-
Davidi Franchet.

Foliola e basi profunde cordata lanceolata acuminata, peduneuli
glandulosi calcar sepalis plus duplo brevius patens vel reflexum

— E. Fargesii Franchet.

Foliola e basi anguste cordata ovata obtusa vel acutiuscula (sed non
acuminata), calcar sepalis fere dimidio brevius curvatum — E.
sutchuevense Franchet.

152 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [152

]'

Foliola basi aperte cordata, racemus laxus, calcar cylindricum, ob-

tusum breve — E. elatum M. D.
Foliola basi anguste cordata, racemus elongatus, pedicelli plus minus

adpressi, calcar sepala duplo superans — E. elongatum Korn,

894. Schneider, CK. Berberides andinae. (Engl. Bot. Jahrb.. XLII, 1908,
p. 81—85.) N. A.

Neue Arten von Berberis-

895. Schneider, Camillo Karl. Weitere Beiträge zur Kenntnis der
Gattung Berberis (Euberberis). (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 192
bis 204, 258— 266.) N. A.

Vgl. „Index nov. gen. et spec." Verf. gibt ergänzende Hinweise be-
sonders zu den Arten der nördlichen Hemisphäre.

896. Schneider, €amillo Karl. Zwei neue Berberis aus Thibet. (Rep„
spec. nov., VI, 1908, p. 267—268.) N. A.

Vgl. „Ind. nov. gen. et spec."

Betulaceae.

Neue Tafeln:
Alnus firma S. et Z. und var. multinervia Rgl. in Shirasawa, Iconogr. Ess.

forest., Japon. II. 1908, tab. 12.
A. glutinosa var. japonica Matsum , 1. c, tab. 13, fig. 13 — 21.

A. incana var. emarginata Matsum., 1. c, tab. 13, fig. 22 — 30; var. hirsuta Spach>

1. c, fig. 1—12.
.4. viridis var. sibirica Rgl-, 1. c, tab. 14, fig. 8—15.
Betida alba L. var. vxdgaris DC., 1. c, tab. 11, fig. 19 — 37.

B. corylifolia Rgl., 1. c, tab. 14, fig. 1 — 7.

B. Ermanni var. nipponica Maxim., 1. c, fig. 16 — 23.

-B. tortuosa Ledeb. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 28

(Vegetationsb.).
Carpinus yedoensis Maxim, in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest., Japon II, 1908,

tab. 11, fig. 1 — 18.

897. Briqnet. John. Alnus Alnobetula Hart, ou Alnus viridis DC? Un
point de Nomenclature. (Annuaire Cons. et Jard. Bot. G6neve, XI — XII,.
1908, p. 29—30.)

Verf. weist nach, dass Betula viridis zuerst von (Jhaix im ersten.
Bande von Villars Hist. pl. Danph, p. 374, im Jahre 1786 beschrieben wurde
und nicht erst im 7. Bde. 1789. Mithin ist der Name viridis älter als Alno-
betula von Ehrhart 1788 und muss angewendet werden.

898. Callier. Alnus Rpaethi Callier. (Mitt. Deutsch. Dendrol. Ges., XVII,
1908, p. 215/16.) N. A.

Mit A. japonica S. et Z. nächstverwandt.

899. [Gibson, H. H.] American forest trees — 74. Yellow birch,
Betula lenta Mchx. (Hardwood Record, XXVI, 2, 1908, p. 16—17, ill.)

Nicht gesehen.

900. Kindberg, N. C. Om släktet Bettda. (Bot. Not., 1908, p. 139— 140.)
Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

901. Missbach. Robert. Betula carpatica Willd., Betula nana L. und
ihre Bastarde im höchsten Erzgebirge. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908v
p. 120-123.) N. A.

1531 Betulaceäe. Bignoniaceae. Bixaceae. 153

Die Hybride wird als B. Seideliana n. hybr. mit a) forma supercarpatica
und b) forma supernana beschrieben.

Bignoniaceae.

Neue Tafeln:
Catalpa b'ujnonioides in Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908, tab. nigra ad p. 11

(blühender Baum) et tab. nigra ad p. 313 (Baum mit Früchten).
€■ Kaempferi S. et Z. in Shirasawa Iconogr. Ess. for. Japon, II, 1908, tab. 71.
Kigelia aethiopiea Decne. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 138.

902. Annibale, E. Contributo allo studio delle Bignoniacee
mirmecofile ed acarofile. (Boll. Soc. Nat. Napoli, XXI, 1908, p. 61 — 67.)

Referat noch nicht eingegangen. Vgl. im „Blütenbiologischen Teile"
des Just.

903. Brown, J. P. Another type of Catalpa- (Arboriculture, VII, 1908,
p. 6, 1 pl.)

Nicht gesehen.

904. Brown, J. P. Origin and distribution of Catalpa speciosa*
(Arboriculture, VII, 1908, p. 13, with map.)

Nicht gesehen.

905. [Gibson, H. H.] American forest trees — 46. Hardy catalpa,
Catalpa speciosa Warder. (Hardwood Becord, XXIII, 8, 1907, p. 16—17, ill.)

Nicht gesehen.

906. Maillefer, Arthnr. Sur la biologie fl orale du genre Incarvillea.
(Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 93—97, 2 Fig.)

Siehe unter „Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen".

907. Merrill, E. D. The genus Badermachera Hassk. in the Philip-
pines. (Philippine Journ. Sc. C. Bot., III, 1908, p. 331—338.)

Siehe „Pflanzengeographie".

908. Perriraz, J. Biologie de la fecondation chez Bignoniaradicans*
B- grandiflora et Cobaea scandens- (Bull. Soc. Vaud. sc. nat., XLIV, 1908,
p. 73-82.)

Besprechung siehe bei Dalla Torre „Blütenbiologie". Fedde.

909. Sprague, Th. A. Bignoniaceae in Ule, III. Beitrag zur Flora der
Hylaea. (Verh. Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. 119—123.) N. A.

910. Spragne, Th. A. Bignoniaceae peruvianae. (Engl. Bot. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 175-177.) N. A.

Neue Arten von Arrabidaea, Tynnanthus und Stenolobium.

911. Stone, W. G. M. Soine more Catalpa talk and some object
lessons. (Arboriculture, VII, 1908, p. 144—149, 7 fig.)

Nicht gesehen.

Bixaceae.

912. Gagnepain, F. Bixacees et Pittosporacees asiatiques. (Bull.
Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 521—527.) N. A.

Betrifft neue Arten von: Bixaceae: Flacourtia, Hydnocarpus, Scolopia*
Taractogenes, Xylosma.

Pittosporaceae : Pittosporum.

913. Gagnepain, F. Un arbre oleifere d'Indo-Chine: l'huile de
Chaulmoogra et le faux Chaulmoogra. (Journ. de Bot., 2. ser., I [XXI],.
1908, p. 137—144.)

154 C- K. Schneider: Morphologie nnd Systematik der Siphonogauien. [154

Verf. zeigt zunächst, dass Gynocardia odorata es nicht ist, deren Samen
das Chaulmoogra-Oil des Handels liefern. Er beschreibt sie eingehend. Die
Chaulmoogra-Samen gehören der Gattung Taractogenos und zwar nach Prain
T. Kurzii King. Wahrscheinlich wird aber das Oil nicht nur von einer Art
geliefert. Eine minderwertige Qualität, das sog. falsche Ohaulmoogra stammt
von Hydnocarpus anthelmintica Pierre, die Verf. ebenfalls eingehend beschreibt.

Bombacaoeae.

Neue Tafeln:
Adansonia Stanburyana Hochr. in Annuaire Cons. et Jard. Bot. Geneve, XIII,

1908, tab. I— IL
A- digitata L. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 42 (Habitus).
Bombax lukayensis De Wild, et Dur. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908,
tab. 94.

914. Hochrentiner, B. P. 0. Un nouveau Baobab et Revision du
genre Adansonia [Stauburyana]. (Annuaire (Jons, et Jard. Bot. Geneve, XII,
1908, p. 136—143, 2 Taf.) N. A.

Sehr wertvoll ist der im folgenden wiedergegebene analytische Schlüssel
für alle Sektionen und Arten:

Tube staminal court, ne depassant guere deux fois la longueur de
l l'ovaire. Fleurs rouges brevement pedonculees 2 — 4 cm (Brevi-
] tubae) — 2.
Tube staminal long, + 5 fois la longueur de l'ovaire. Fleurs rouges

ou blanches, pedoncule moyen (3-6 cm) ou tres long (30—40 cm)

dans un cas seulement tres court (A. madagascarensis) — 3.
Stigmate 5-lobe, papilleux sur sa surface superieure seulement.

Fruit fusiforme, aque formant pointe au sommet. A. Za Baillon

in Grandidier Hist. PI. de Madag. Atlas, I, t. 79, C. et D. (? an id.

in Bull Soc. Linn. Paris, II, 844, ann. 1889—1897 sed posterior).
Stigmate 8 — 10-lobe, papilleux sur sa surface superieure mais aussi

ä la partie dorsale des lobes. Fruit oblong, ellipsoide, et arrondi

au sommet. A. Grandidieri Baillon.
Fleurs en forme d'entonnoir, dressees, k pedoncules moyens ou

courts, 1 — 6 cm; pßtales etroits; tube staminal se terminant par

un faisceau de filets dresses et formant un cöne renverse (Longi-

tubae) — 4.
Fleurs pendant au bout d'un pedoncule flexible et long de 30 — 50 cm,

petales larges reflechis. tube staminal se terminant par un faisceau

de filets horizontaux ou diriges en tous sens et formant une large

couronne ou une sphere (Pendentes) — 6.
Calice glabre exterieurement, pedoncules 2 — 3 cm; feuilles glabres
. ) grandes, folioles de 10 — 15 cm; fleurs blanches, petales allonges-

oboves. A. Stanburyana Hochr.
Calice velu exterieurement, fetiilles plus petites, glabres ou velues — 5.
Pedoncules l/2 — 1 x/2 cm, feuilles glabres petites, folioles 7 — 9 cm,
\ fleurs rouges, petales aigus lineaires. A. madagascariensis Baill. in
- ) Adansonia, XI, 251 (1873—1876).

J Pedoncules 2 — 3 cm, feuilles tomenteuses sur les deux faces, folioles
' 9 — 13 cm de longueur, fleurs cremes, petales cunees, oblongs.

A. Gregorii Ferd. v. Müll.

155] Borabacaceae. Borraginaceae. 155

\ Fruits oblongs. A. digitata L.

\ Fruits spheriques. A. sphaerocarpa Chev.

915. Mattei, G. E. II baobab. (Boll. R. Orto botan. e Giard. coloniale,
VI, Palermo 1907, p. 28—33.)

Aufzählung der Verwertung, welche die verschiedenen Organe der
Adansonia digitata und verwandten Arten Afrikas liefern (vgl. Wildeman 1903,
Millian 1 904 u. a.). Schliesslich wird auf das von Suzzi (1906) angegebene,
aus den. Samen extrahierbare Öl (vgl. auch Balland 1905) aufmerksam ge-
macht und auf den Vorteil einer anzustellenden Verbreitung der Kultur dieses
Baumes in der Eritrea mit Nachdruck hingewiesen. , So IIa.

916. Mücke, 31. Der Baumwollenbaum Kapok [Eriodendron anfrac-
tuosum DO.]. (Der Pflanzer, IV, 1908, p. 289—300. Schluss folgt.)

917. Prain, D. The Cotton Plant [Gossypium] '. (Nature, LXXVII,
1908, p. 318, 485.)

Verf. wendet sich in einem Briefe an den Herausgeber gegen eine
Kritik von Watts Werk (Just 1907, No. 827) und eine Notiz von Balls
(siehe oben).

918. Stürler, F. A. von. De Baobabboom. (Alb. de Nat, 1908, VIII,
p. 233—236, 1 pl.)

Nicht gesehen.

919. Ulbrich, E. Bombaceae in Ule, III. Beiträge zur Flora der Hylaea.
(Verh. Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. 90—91.) N. A.

Borraginaceae.

Neue Tafeln:
Cordia senegalensis Juss. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 133.
Ehretia acuminataR.Br. in Shirasawa, Iconogr. Ess. for. Japon, II, 1908, tab. 69,

fig. 12-24.
E- macrophylla Wall., 1. c, fig. 1 — 11.

920. Correvon, H. Omphalodes Luciliae. (Rev. hortic, LXXX, 1908,
p. 125—126, fig. 39.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

921. Ewart, A. J. and Tovey, J. R. Paterson's curse or purple
bugless [Echium violaceum L.J. (Journ. Dept. Agric. Victoria, VI, 1908, p. 176,
1 col. pl.)

Nicht gesehen.

922. Pitzherbert, S. W. Myosotiiium nobile. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 6. Fig. 5—6.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen und Blütenstand und Blatt.

923. Grignan, 0. T. Le Myosotitium nobile. (Rev. Hortic. LXXX, 1908,
p. 370—371, fig. 137—138.)

Blühende Pflanze und Blütentrieb.

924. Kusnezov, N. Contributions ä la systematique des especes
caucasiennes du genre Öm])//aWesMoeiich. (Bull. Ac. imp. Sc. St.-Peters-
bourg, 1908, p. 775 — 802, 2 pl., 1 carte, en russe.) N. A.

Der lateinische Schlüssel lautet:
1. Nuculae turbinato-depressae. Folia inferiora opposita. Pedicelli axillares.
O. scorpioides Schrank (1).
Nuculae depressae. Folia alterna. Pedicelli plerumque-extra-axillares. 2.

156 C. K* Schneider: Morphologie und Systemtik der Siphonogamen. [1 56

2. Folia radicalia ovato-cordata, arcuatim 5 — 7-nervia, nervis prominentibus,
caulina sessilia v. subsessilia. 3.

3. Nuculae margine valde denticulato obsitae. Folia caulina 2 — 5 subsessilia
cordato-ovata. 0. cappadocica DC. (2).

Nuculae margine integro incrassato obsitae. 4.

4. Nuculae glabrae basi tantum paulo pubescentes. Folia caulina nume-
rosa, ovato-lanceolata subsessilia v. inferiora breviter petiolata. 0. cap-
padocica var. Wittmanniana (Stev.) m.

Nuculae pubescentes. Folia caulina majora, latiora, cordato-ovata 0. cap-
padocica var. intermedia m.

5. Folia radicalia elongato-ovata basi in petiolum decurrentia. Nuculae
margine valde denticulato pilosissimo obsitae. 0. Lojkae S. et L. (3).
Folia radicalia a basi truncata oblonga v. subrotuuda. Nuculae margine
introflexo pilosissimo subedentato. 0. rupestris Rupr. (4).

Die neuen Diagnosen erscheinen voraussichtlich noch in Fedde, Rep.
nov. spec.

925. Maiden, J. H. Weeds of New South Wales. Blue Weed or
Patersons Curse (Echium plantagineum Linn.). (Agricult. Graz. N. S.Wales,
XVI, 1 [1905], p. 267—269.)

Nicht gesehen.

926. Pereira loutinho, A. Borraginaceae lusitanicae. (Rep. spec. nov.,
VI, 1908, p. 187—189.)

Ex: Bol. Soc. Brot, XXI (1904/05), 1906, p. 106-165.

Brunelliaceae.

Bruniaceae.

Neue Tafel:
Raspalia microphylla (Tlibg.) Brogn. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas. 1908.

tab. 64.

Burseraceae.

Neue Tafel:
Pachylobus edulis S. Don in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 76.

927. I.iiillaiiiiiin. A Le Porphyranthus est-il une Burseracees (Journ.
de Bot., 2. ser., I, 1908, p. 286-290, fig. 1-7.)

Verf. ergänzt Englers (1899) Beschreibung auf Grund reicheren Materiales
und glaubt, dass die Gattung vielleicht eher den Sapindaceen zuzuweisen ist.
Er gibt auch anatomische Details.

928. Gnillaurnin, A. Burseracees nouvelles ou peu connues de
Flndo-Chine. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 611—618, pl. XIX.)

N. A.
Neue Canarium- Arten. Die Tafel zeigt nur Blätter.

929. Gilillanmin, A. Repartition Geographique et biologique des
Burseracees. (Rev. gen. Bot.. XX, 1908, p. 321—327, pl. 11—14.)

Siehe „Pflanzengeographie".

930. Onillaumin, A. Revision des Burseracees du Gabon et du
Congo francais. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 261—269.) N. A.

Es handelt sich um die drei in nachstehendem Schlüssel wie folgt unter-
schiedenen Genera:

157] Brunelliaceae. Bruniaoeae. Barseraceae. Buxaceae. Cactaceae. 157

Fleurs pentameres. Embryons ä cotyledous plisses mais entiers. —
Aucoumea.
I Sepales soudes seulement ä la base embryons ä cotyledons pennes
Fleurs ) ä grand nombre de divisions Pachylobus.

trimeres. j Sepales soudes sur la plus grande partie de leur longueur. Em-
bryons ä cot}dedons pennes, ä 3 divisions Canarium.

Buxaceae.

Neue Tafel:
Buxus japonica Muell.-Arg. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon, II, 1908,
tab. 38, fig. 16—32.

Cactaceae.

Neue Tafeln:
Cereus Anisitsii K. Schum. in Gurke, Iconogr. Cact., 1908, tab. 107.
Evl/inocactus Fiebrigii Gurke in Iconogr. Cact., 1908, tab. 109.
E. Mihanovichii Fric et Gurke, 1. c, tab. 101.
E. Quehlianus F. Haage jun., 1. c, tab. 105.
E- myriostigma S.-D., 1. c, tab. 110.

Echinocereus acifer Lern, in Gurke, 1c. Cact., 1908, tab. 106.
Mamillaria polyedra Mart. 1. c, tab. 112.
M. radians P. DC. 1. c, tab. 102.

Opuntia arbuscula in Miss. Bob. Gard. Rep., XIX, 1908, tab. 22.
O. Cardenche, 1. c, tab. 21, fig. 1 und unten.
O. Castülae, 1. c, tab. 24.
O. Chaveüa, 1. c, tab. 23.
O. cocliinera, 1. c, tab. 26.
O. discata, 1. c, tab. 27.
O. fuliyinosa, 1. c, tab. 25.
O. fusicaulis, 1. c., tab. 23.

O. inermis P. DC. in Gurke, Ic. Cact., 1908, tab. 108.
O. leptocaulis in Miss. Bot. Gard. Rep., XIX, 1908. tab. 21, fig. 5.
O. linguiformis, 1. c, tab. 27.
O macrocalyx, 1. c, tab. 28.
O. nücrodasys, 1. c, tab. 28.
O. neoarbuscida, 1. c, tab. 23.

O. Spegazzinii Web. in Gurke, Ic. Cact., 1908, tab. 103.
Rhijjsalis chloroptera Web. in Gurke, Ic. Cact., 1908, tab. 104.
R. Houlletiana Lern., 1. c, tab. 111.

931. Berger, Alwin. Opuntia Miquelii Monv. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 35—36.)

Verf. beschreibt eine Blüte und konstatiert, dass diese Art mit O. Segethei
R. A. Phil, nichts zu tun hat, die letzte vielmehr mit O. subidata Engl, iden-
tisch sei.

932. Berger, Alwin. Cereus Beneckii Ehrenb. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 134—138.)

Beschreibung der Blüten, wonach die Art zur Untergattung Stenocereus
gehört.

933. Büdeker. Mamillaria Wrightii. (Monatsschr. Kakteenk.. XVIII,
1908, p. 143—144.)

Was unter diesem Namen geht, ist eine noch unsichere Art.

158 C. K- Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [158

934. Bödeker. Mamillaria hamuligera. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII,
1908, p. 144.)

Verf. glaubt, dass die unter diesem Namen gehende Art nicht mit M.
trichacantha K. Schum. identisch ist.

935. Bödeker. Die Frucht von Echinocactus Mihanovichii. (Monatsschr.
Kakteenk.. XVIII, 1908, p. 159.)

Kurze Beschreibung.

936. Bovvles, E. A. Hardy Cacti and other Succulents. (Journ.
R. Hort. Soc. Lond., XXIV, 1908, p. 24-31, fig. 8—10.)

Die Abbildungen zeigen blühende Exemplare von Opuntia camanchica
var., Cerens paucispinus var. fulvispinus und Echinopsis multiplex.

937. Britton, N. L. and Rose, J. N. A preliminary treatment of the
Opuntioicleae of North America. (Smithson Mise. Collect., L, 1908,
p. 503—539.) X. A.

Verff. behandeln die drei Genera Peireskiopsis, Opuntia und Nopalea.
Siehe „Index nov. gen. et spec." und Fedde, Rep. nov. spec.

938. Britton, X. L. and Rose, J. X. Anewgenusof Cactaceae. (Journ.
New York bot. Gard, IX, 1908, p. 185—188, 5 pl., 1 fig.) X. A.

Verff. trennen Cereus giganteus ab unter dem Namen Carnegia-

939. Conrad, Hans. Cereus Vrbanianus G. etW. (Gartenwelt, XIII, 1908,
p. 254—255, Fig.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

940. Eichlam, Frederieo. Melocacfus guatemalensis Gurke et Eichlam
(Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 37—38.) X. A.

Siehe Fedde, Rep. nov. spec. VI (1908/09). p. 130 u. 300.

941. Fobe, F. Einiges über blühende Kakteen. (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII, 1908, p. 42—45.)

Ganz allgemeines.

942. Fobe, F. Die schönsten S ä u 1 e n - Cereus. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 75—79, 89—92.)

Allgemeines.

943. Fric. Eine neue Form von Echinocactus Fricii (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII, 1908, p. 45.)

Über eine in Uruguay beobachtete Form, die an einen Discocactus
erinnert.

944. Fucini, A. Sopra im frutto di Cereus peruvianus Fab. maturato
in Toscana. (Atti Soc. Tose. Sei. nat. Proc. verb. XVI, p. 63.)

Ref. nicht eingegangen.

945. Griftiths, David. Illustrated Studies in the Genus Opuntia —
I. (Rep. Miss. Bot. Gard.. XIX, 1908, p. 259—272, pl. 21—27.) X. A.

Siehe die Tafeln am Kopfe der Familie.

946. [Gurke.] Cactaceae atque aliae sueculentes novae. IL (Rep.
spec. nov, VI, 1908, p. 130—134.)

Ex: Monatsschr. Kakteenk, XVIII, 1908, p. 1—64.

947. Gurke, M. Echinocactus coquimbanus Rümpl. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 1—5.)

Verf. beschreibt diese verschollene Art von neuem.

948. Gurke, M. Neue Kakteenarten aus Brasilien. (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII, 1908, p. 52-57, 66—71, 84—89, 3 Abb.) X. A.

159]

Cactaceae. 159

Die Beschreibungen siehe Fedde, Rep. nov. spec. VI (1908/09). pp. 88— 93,
130—13-1. 294—302; die Namen im Index nov. spec.

949. Gurke, M. Bemerkungen zu Melocactus guatemalensis Gurke et
Eichlam. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 60—62.)

Betrifft die geographische Verbreitung der Gattung Melocactus.

950. Gurke, M. Rhipsalis tetragona Web. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII,
1908, p. 74, Abb.)

Beschreibung und Blütendiagnose.

951. Giil'ke, M. Die Gattung Peireskiopsis Britt. et Rose (Opuntia
su bgen. Peireskiopuntia Web.). (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 81—84.)

Wiedergabe der 1907 unter No. 840 angeführten Arbeit.

952. Gurke, M. Melocactus Maxonii (Rose) Gurke. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVI II, 1908, p. 93).

Verf. stellt fest, dass Cactus Maxonii Rose und Melocactus guatemalensis
Gurke et Eichlam identisch sind und letzter daher Meloc Maxonii Gurke
heissen muss.

953. Gurke, M. Pilocereus Schottii (Englm.) Lern. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 99-100, Abb.)

Die Abbildung zeigt eine Pflanze bei San Jose de Cabo, Baja California.

954. Gurke, M. Britton und Rose: Aufzählung der Opuntioideae von
Nordamerika. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 104—106, 122—125.)

Wiedergabe der neuen Arten aus der unter No. 937 referierten Arbeit.

955. Giil'ke, M. Cereus Pringlei Wats. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII,
1908, p. 121, Abb)

Die Abbildung zeigt eine Pflanze von der oben unter Pilocereus ge-
nannten Lokalität.

956. Gurke, 31. Cereus Spegazzini Web. und C. Anisitsii K. Schum.
(Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 129—133.)

Beide Arten werden beschrieben und eingehend verglichen.

957. Gurke, M. Die zur Untergattung Malacocarpus gehörenden
Echinocactus- Arten. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 145—151, 160
bis 163, 177—179.)

Betrifft E. Selloicii Lk. et Otto und Formen. E. corynodes Otto, E. erinaceus
Lern., E- Fricii Arech., E. pauciareolatus Arech., E- Arechavaletae K. Seh. und
E. leueocarpus Arech., die genau beschrieben werden. Wahrscheinlich gehören
hierher auch E. aciculatus S.-D. und E. Jenischianus Pfeiff.

958. Gurke, M. Ojmntia fulgida Engelm. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII,
1908, p. 153—153, Abb.)

Die Abbildung zeigt ein Exemplar im südlichen Arizona.

959. Gurke, M. Zwei neue Cerens-Arten. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908. p. 166—169.) N. A.

C tricostatus Rol. Goss. n. sp. und C. Plumieri Rol. Goss. n. sp.

960. Gurke, M. Zwei neue Kakteen aus Westindien. (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII, 1908, p. 179—180.)

Rliipsalis Harrisii Gurke n. sp. und Opuntia guanicana (K. Schum.)
Gurke n. sp. — Siehe auch Fedde, Rep. VIII (1910). pp. 224. 225.

962. Jnssieu. Untersuchungen über die Kakteen, nach dem natür-
lichen System. 7. Aufl., hrsg. von F. S. Kraus. Leipzig 1908, 8 °, 30 pp., eine
Abbildung.

Nicht gesehen.

160 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [160

963. Mieckley, W. Opuntia myriacantha Web. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 45-46.)

Ganz kurze Notiz.

964. Purpus, J. A. Echinocereus pensilis (Brandegee) J. A. Purp.
(Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 5, Abb.)

Die Abbildung zeigt eine sterile Pflanze.

965. Quehl, L. Mamillaria Delaetiana Quehl n. sp. (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII, 1908, p. 59—60, Abb.) N. A.

Die Abbildung zeigt eine sterile Pflanze. — cf. Fedde, Rep. VI. p. 134.

966. Quehl, L. Mamillaria Eichlami Quehl n. sp. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 65-66.) N. A.

cf. Fedde, Rep. VI. p. 294.

967. Quehl, L. Mamillaria Delaetiana. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII,
1908, p. 79.)

Ergänzung zu obigem.

968. Quehl, L. Mamillaria Joossensiana Quehl n. sp. (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII, 1908, p. 95.) N. A.

cf. Fedde, Rep. VI. p. 300.

969. Quehl, L. Mamillaria difficilis Quehl n. sp. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 107, Abb.) N. A.

Die Abbildung zeigt eine sterile Pflanze. — cf. Fedde, Rep. VI. p. 301.

970. Quehl, L. Die Mamillarien aus der Reihe der Elegantes-
(Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 125—126.)

Betrifft im wesentlichen Mamillaria elegans P. DC, M. Haageana Pfeiff.
und M. perbella Hildm.

971. Quehl, L. Mamillaria ramosissima Quehl n. sp. (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII. 1908, p. 127.) N. A.

Die Abbildung zeigt eine sterile Pflanze. — cf. Fedde, Rep. VI. p. 301.

972. Roland-Gosselin, R. Caetaceae novae. (Bull. Soc. Bot. France, LV,
1908, p. 694—696.) X. A.

Je ein neuer Rhipsalis und Cereus-

973. Rose, J. X. On Opuntia santa-vita, a species of cactusof orna-
mental value. (Smithsonian misc. Coli., LH, 1908, p. 195 — 196, 1 pl.)

Redescription of Opuntia chlorotica santa-vita Griffiths et Harc.

974. Rose, J. N. Anew Opuntia from Arizona [Opuntia vivipara].
(Smithsonian misc. Coli., LH, 1908, p. 153, 1 pl.) N. A.

975. Schelle, E. Zur Praxis der Kakteenpf ropfunge n. (Monats-
schrift Kakteenk., XVIII, 1908, p. 10—14, 24—30.)

Nur gärtnerisch wichtig.

976. Schmidt, Richard. Mamillaria elongata var. anguinea K. Schum. in
Kopenhagen. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 165—166.)

977. Schumann, K. und Gurke, M, Blühende Kakteen. (Iconographia
Cactacearum.) Im Auftrage der Deutschen Kakteen-Gesellschaft herausgegeben.
Neudamm 1908, gr. 8 <>, kol. Taf. m. Text, Lief. 25 u. 26, 8 Taf. m. 9 pp. Text.

Tafeln siehe am Kopfe der Familie.

978. Standley, Paul Carpenter. Some Echinocerei of New Mexiko.
(Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908, p. 77—82, fig. 1—5.) X. A.

Die Abbildungen zeigen Ech. polyacanthus, conoideus und neo-mexicanus
in Blüte.

161] Cactaoeae. Calycanthaceae. Calyceraceae. Campanulaceae. \Ql

(J79. Terracciano, N. Descrizione di una nuova varieta di Opuntia
vulgaris Mill. (Atti R. Istit. Incor. Napoli, LIX, 1908, p. 679—685, 1 tav.)
Nicht gesehen. flf. A.

980. Trappen, A. von der. Sprossen aus der Zentralachse bei
Echinocactus myriostigma S.-D. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 9 — 10,
eine Text!'.)

Verf. bildet ein Exemplar ab mit mehreren Sprossen an dem Querschnitt
der durchschnittenen Zentralachse.

981. Weingart, W. Cereus Baumanni Lam. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 6—8.)

Verf. behandelt die Art und ihre in unseren Gärten befindlichen nächsten
Verwandten.

982. Weingart, W. Cereus serpentinus var. albispinus. (Monatsschr.
Kakteenk., XVIII, 1908, p. 30.

Der unter diesem Namen kultivierte Cereus ist identisch mit C splendens
Salm-Dyck.

983. Weingart, W. Cereus flagelliformis var. minor Salm-Dyck. (Monats-
schrift Kakteenk., XVIII, 1908, p. 49—52.)

Eingehende Beschreibung der verschollenen Form.

984. Weingart, W. Eine neueForm von Cereus Gonzalezii aus Costa -
rica. (Monatsschr. Kakteenk., XVIII, 1908, p. 185.)

Standortsform.

985. Z[ahn], E. Mamülaria gracilis Pfeiff. (Gartenwelt, XIII, 1908,
p. 322—323, Fig.)

Die Abbildung /.eigt eine sterile Pflanze.

986. Zahn, E. Cereus triangularis Haw. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 100
bis 101, Abbildung.)

Die Abbildung zeigt eine Blüte.

Callitrichaceae.

Calycanthaceae.

987. Anonym. Chimonanthus fragrans- (Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908,
p. 251, fig. 110-111.)

Die Abbildungen zeigen Blüten und Fruchtzweige und Details.

988. Pollard, Charles Louis. Calycanthaceae. (North American Flora,
XXII, 1908, pt. 3, p. 237—238.) N. A.

Nur Calycanthus mit vier Arten.

Calyceraceae.

Neue Tafeln:

Boopis patagonica Speg. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 3, fig. 6 und

tab. 8, fig. 16—19.
Gamocarpha Selliana Reiche, 1. c, tab. 8, fig. 1 — 5.
Moschopsis trilobata Dus., 1. c, tab. 5, fig. 5 — 6 und tab. 8, fig. 6—12.
M. spathulata Dus., 1. c, tab. 5, fig. 7 — 8 und tab. 8, fig. 13 — 15.

Campanulaceae.

Codonopis subscaposa Kom., C. tubulosa Korn, et C. vinciflora Kom. in Act. Hort.

Petrop., XXIX, 1908, tab. II.
C. convolvulacea Kurz in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8178.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 18. 7. 10.] 1 1

162 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [162

Campanula macrorhiza var. rotundata in Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, tab. XII,

fig. IL
0. rhomboidalis var. calycina, 1. c, tab. XIII.

var. tuberosa, 1. c, tab. XII, fig. I.
Lightfootia subulata L'Her. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 149.

989. Anonym. Campanula fragilis. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908,
p. 378, fig. 172.)

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze.

990. Chabert, Alfred. Sur quelques varietes de Campanules.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 305—310, pl. XII— XIII.) N. A.

Betrifft Campanula rhomboidalis L. var. tuberosa Chab., var. calycina Chab.
und var. Songeoni (Chab.) Rouy, ferner C. pusilla var. tubulosa Chab. und C-
macrorhiza var. rotundata Chab.

991. Chipp, T. F. A Revision of the Genus Codonopsis Wall. (Journ.
Linn. Soc. Lond., XXXVIII, 1908, p. 374—391, 4 Textfig.) N. A.

Verf. schliesst Glossocomia Don unter Codonopsis ein. Die Blütenstruktur
zeigt im wesentlichen vier Typen:

1. solche mit unterständigem Kelch und oberständiger Corolle;

2. halbunterständigem Kelch und noch oberständiger Corolle;

3. Kelch und Corolle halboberständig;

4. Kelch und Corolle oberständig.

Verf. hat zuletzt auch noch Komarows Arbeit (No. 995) berücksichtigen
können und gibt folgenden Schlüssel für die 22 Arten, die er eingehend be-
schreibt:

Calyx inferus 1. Tangshen.

Calyx semisuperus.
*Corolla supera.

Folia ad apicem ramorum lateralitum 3 — 4 fasciculata.

Semina alata 2. lanceolata-

Semina non alata 3. ussuriensis.

Folia opposita vel alterna.
Stamina setosa.

Folia non excedentia 1 cm longitudinis.
Corolla 3 — 4 cm longa; filamenta 16 — 17 mm longa . . 4. mollis.
Corolla 2 — 3 cm longa; filamenta 10 mm longa .... 5. thalictr i folia-

Folia 6 — 10 cm longa 6. Benthami.

Stamina glabra.

Corolla non excedens 9 mm longitudinis 7. micrantha.

Corolla saltem 17 mm longa.

Scandentes vel volubiles 8. rotundifolia-

Non scandentes nee volubiles. Caules fertiles robusti,
steriles numerosi a basi orti.

Folia sinuata .9. riridiflora.

Folia integra vel obscure serrata.

Folia 5 — 9 mm longa 10. foetens.

Folia 15 — 40 mm longa 11. ovata.

Folia integra marginibus albidis crassis instrueta . . 12. cardyophylla-
:!:*Corolla semisupera.
Scandentes vel volubiles.

1631 Campanulaeeae. 163

Stamina glabra.

Calycis lobi lineares, sinu obtuso saltem 5 mm lati sejuncti 13. viridis.

Calycis lobi trianguläres, sinu obtuso sejuncti 14. Henryi.

Calycis lobi late ovati, sinu acuto sejuncti 15. deltoidea.

Stamina pilosa.

Ovarium pilosum lli. tubulosa.

Ovarium glabrum 17. pilosa.

Xon scandentes nee volubiles.

Pedunculi primarii saltem 30 cm longi 18. subscaposa.

Pedunculi primarii non excedentes 13 cm longitudinis . 19. subsimplex.
Calyx superus.

Corolla ad basin divisa 20. convolmlacea.

Corolla nunquam ultra dimidium divisa.

Calicis lobi sinu late obtuso sejuncti 21. affinis.

Calicis lobi sinu acuto sejuncti 22. purpurea-

992. Fitzherbert, S. W. Campanula carpatica var. pelviformis- (Card.
Chron., 3. ser., XLIV, 1908, p. 64, Fig. 25.)

Die Abb. zeigt eine blühende Pflanze.

993. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie von Campanula persici-
folia L. (Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 396—397, 2 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

994. Hemsley, Botting, W. Campanula Baddeana. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIV, 1908, p. 139, Fig. 54.)

Die Abb. zeigt einen Blütenzweig.

995. Komarow, V. L. Revisio critica specierum generis Codono-
psidis Wall. (Act. Hort. Petrop., XXIX, 1908, p. 98—124, tab. II, russisch.) N. A.

Irn Anschluss an die eingehende Besprechung der 23 Arten, die sich in zwei
Subgenera: I. Pseudocodonopsis Kom. und Eucodonopsis Korn, gliedern, gibt Verf.
folgenden lateinischen Bestimmungsschlüssel, aus dem die Anordnung her-
vorueht:

Corolla rotata ad basin usque 5-partita, Capsula elongato-obeonica

-3.
Corolla companulata vel tubulosa, Capsula plerumque hemisphaeria

I

- 3.

\ Folia integra firma reticulato-venosa — C. convolvidacea Kurz.
( Folia plus minusve dentata tenera pennatim venosa — C. vineiflora Kom.
\ Caulis volubilis — 4.
} Caulis subscandens vel erectus — 13.
\ Folia pseudoverticillata quaterna — 5.
) Folia opposita vel alterna — 6.
Radix fusiformis. folia ampliora, corollae fundus quinquangulatus,

semina alata — C. lanceolata Benth.
Radix tuberosa sphaerica vel oblonga, folia parva, fundus corollae

quinquefossulatus, semina aptera — C- ussuriensis Hemsl.
Corolla anguste-tubulosa albida, calyx ea quadruplo brevior, folia
ovato-lanceolata — ('. tubulosa Kom.
4 Corolla late tubulosa vel saepis campanulata, calyx triplo vel saepius

subduplo ea brevior — 7.
\ Folia basi cordata vel subcordata, rarius nonnulla ovata — 8.
} Folia basi euneata, truncata vel ovata — 10.

11*

\

164 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [164

l Folia auriculato-cordata carnosula glabra — C. cordifolia Korn.
/ Folia cordata vel nonnulla ovata, saepe pilosa — 9.
, Pedunculi saepe dichotome ramosi foliolis bracteiformibus suffulti,
V racemiformes — C. affinis H. f. et Th.
q / Pedunculi elongati nudi plerumque oppositifolii, calycis lobi ampli
J foliacei — C. rotundifolia Bentb.
f Pedunculi terminales in ramulis foliosis dispositi, vel axillares, 1 — 2

foliati, calycis lobi mediocres - - C- sylvestris Korn.
[ Folia in genere amplissima, ovato-acuminata crenata vel dentata vel
\ etiam inciso-dentata, duplo longiora quam lata pedunculis axillaribus
10. { brevibus 2—4 bracteatis — C- Henryi Oliver.

j Folia mediocria ovato-oblonga vel ovata undulata vel repando-crenata,

pedunculi elongati nudi — 11.
I Folia oculo nudo densissime breviter pilosa — 12.
( Folia oculo nudo glabra vel subglabra — C. Tangshen Oliver.

iOorolIa intus dense pilosa — C. viridis Wall.
Oorolla glabra vel cum pilis longis albidis ad fundum ejus — C.
Griffithii Clarke.
\ Caulis princeps foliatus, folia radicalia florendi tempore adsunt — 14.
) Caulis ramulis foliferis plus minusve dense obsitus - 17.
I Caulis subscandens valde ramosus — 15.
| Caulis erectus vel basi adscendens — 16.

i Folia opposita elliptico-oblonga subintegra basi rbomboidea vel trun-
cata glabra — C. purpvrea Wall.
Folia rhomboidea-elliptica crenato-pilosa C. Benthamiana Hook. f. et Th.
, Caulis fere ad apicem foliatus, folia ovata vel ovato-oblonga basi
\ rotundata vel cuneata, corolla pallide coerulea angusta — C. sub-
^n I simplex H. et Th.

J Caulis basi tantum foliatus subscaposus, folia basi cuneata elongata,
f crenato-dentata, corolla, purpureo-venosa lurida late campanulata —

C subscaposa Kom.
\ Caulis princeps subscaposus saepissime uniflorus folia parva — 18.
/- ) Caulis princeps ramosus. rami foliiferi fertiles — 19.

( Folia in genere minima, corolla tubulosa-campaniilata, fauce dilatato
\ pallide sordide-coerulea — C- thalictrifolia Wall.
18. n Corolla globosa campanulata lurida purpurea (in sicco) — C. foetens
j H. et Th.
, Corolla late campanulata azurea — C- ovata Benth.

Folia oblonga vel ovata-acuminata repando-crenata, corolla calyce

sesquilongior luteo-viridis. filamenta late subulata — C. viridiflora

Maxim.
Folia subcordata-ovata vel oblonga integra. corolla albocoerulea caly-

cem duplo superans, filamenta ima basi tantum dilatata — C. cle-

matidea Clarke.
Folia integra, paruin longiora quam lata, obtusiuscula, corolla ampla,

rami laterales horizontaliter patentes — C. cardiopliylla Diels.

996. Ortlepp, K. Aproposdes Campanula glomerata et eervicaria. (Le
Monde des Plantes. X, 1908, p. ö.)
Nicht gesehen.

Ig5l Cainpanulaceae. Canellaceae. Capparidaceae. 165

997. Sinmions. H. (i. Antwort auf J. Witaseks Erwiderung. (Bot.
Not., 1908, p. 71—74.)

Betrifft die 1907 unter No. 904 referierte Arbeit und bezieht sich im
wesentlichen auf Campanula Gieseckiana.

!)98. Wagner, R. Zur Teratologie von Phyteuma spicatzim. (Österr.
Bot. Zeitschr., LV1II, 1908, p. 382—388, 2 Textfig.) '

Siehe „Teratologie".

Canellaceae.

Capparidaceae.

Neue Tafeln:
Capparis Badida in Lecomte Fl. gen. de lTndo-China, I, 1908, pl. XVI, fig. 1 — 7.
C. tonkinensis 1. c, fig. 8 — 13.
Crataeva erythrocarpa 1. c, tab. XV, fig. 13—18.
Neothorelia laotica 1. c, tab. XVI, fig. 14—20.
Niebuhria decandra 1. c, tab. XV, fig. 6 — 12.

Polanisia hirta Sond. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 55.
Bitchiea immersa De Wild., Ann. Mus. Congo II, fasc. III, 1908. tab. LXXXVI.
R. Pynaerti De Wild., 1. c, tab. LXXXVII.
R. Laurentii De Wild., 1. c, tab. LXXXV.

999. Gagnepain, F. Capparidaceae in Lecomte Flore gen. de l'Indo-Chine,
I, 1908, p. 171—207. N. A.

Umfasst Vertreter von Cleome, Gynandropsis, Niebuhria, Crataeva, Capparis,
Tirania, Neothorelia, Stixis.

1000. Gagnepain, F. Deux Capparidees nouvelles d'Indo-Chine.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 322—325.) N. A.

Betrifft: Crataeva erythrocarpa und Niebuhria decandra-

1001. Gagnepain, F. Neothorelia, genre nouveau de Cap paridacees
asiatiques. (Bull. Soc. Bot. France. LV, 1908, p. 269—270.) N. A.

1002. Gagnepain, F. Cap pari de es [Capparis] nouvelles d'Indo-
Chine. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 209—215.) N. A.

1003. Gagnepain, F. Essai d'une Classification des Capparis d'Asie.
(Journ. de Bot., XXI [ser. 2, I], 1908, p. 53—65.) N. A.

Verf. behandelt die verschiedenen Merkmale und gibt eine Tabelle zur
Bestimmung von 43 Arten, worunter 8 neue sind. Welche Merkmale Verf. in
den Vordergrund stellt, zeigen die folgenden Angaben :

A. Pedicelles supraxillaires, en serie longitudinale.

a) Placentas 2, ovules 2—4 sur chaque placenta.

b) Placentas 4, rarement 5; ovules nombreux sur chaque placenta.

B. Pedicelles solitaires ou groupes, jamais en series lineaires, longitudinales
au-dessus de l'aiselle.

a) Placentas 2; ovules 2—10 sur chacun.

b) Placentas 4 ou plus; ovules 15 et plus sur chacun, rarement 10 — 12.

1004. Ule, E. Über eine neue Gattung der Capparidaceen mit
Klettervorrichtungen. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908, p. 220—224,
Tab. IL) N. A.

Es handelt sich um Haptocarpum n. gen. mit H. hahiense n. spec. Sie
ist durch die fehlenden vorderen Petalen, die 4* nur vorn vorhandenen Staub-
gefässe, mit einem petaloiden Staminodium, die einseitige Nektarleiste und die
Form der Samen von allen anderen Genera sehr abweichend und als neue

166 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. 1 166

Gattung in die Nähe von Polanisia und Dactylaena zu stellen. Biologisch ist
sie interessant durch die Eigenschaft, sich mit dem Replum. einem Teil der
Frucht, festzuhalten.

Siehe auch Fedde, Eep. nov. spec. VII (1909). p. 190.

1005. Ule, E. Capparidaceae in Beitr. z. Flora v. Bahia. (Engl. Bot.
Jahrb., XLII, 1908. p. 201—202.) N. A.

Neue Arten von Haptocarpum und Crataeva.

1006. Wunderlich, A. Notiz über die Rhamnoside von Capparis
spinosa und Globidaria Alypum. (Arch. der Pharm., CCXLVI, 1908, p. 256.)

Siehe „Chem. Physiologie".

1007. Zahn, Emil. Steriphoma paradoxa. (Gartenfl., LVII, 1908,
p. 242, Abb.)

Die Abb. zeigt einen Blütenstand.

Caprifoliaceae.

Neue Tafeln:
Diervilla grandiflora S. et Z. in Shirasawa. Iconogr. Ess. forest.. Japon, II, 1908,

tab. 74, fig. 9—16.
D. japonica DC, 1. c, fig. 17 — 23.
Lonicera gracilipes Miq., 1. c, tab. 74, fig. 13 — 18.
L. Morroivii A. Gr., 1. c, fig. 8 12.
Sambucus racemosa L., 1. c, tab. 73. fig. 1 — 8.

Viburnum betulifolium Batal., in Sargent, Trees a. Shrubs. IL 2. 1908, tab. 147.
V. cordifolium Wall., 1. c, tab. 138.
V. cylindricum Hamilt, 1. c, tab. 143.
V- dasyanthuni Rehd., 1. c, tab. 149.
V. furcatum Bl. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest.. Japon, II, 1908, tab. 74,

fig. 24-31.
V. ichangense Rehd. in Sargent, Trees a. Shrubs. II. 2, 1908, tab. 150.
V- lobophyllum Grab.. 1. c, tab. 148.
V. luzonicum Rolfe, 1. c, tab. 146.
V. opulus L. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest., Japon, II, 1908, tab. 73,

fig. 1-7.
V. phlebotrichum S. et Z., 1. c, tab. 73, fig. 19 — 25.

V. pyramidatum Rehd. in Sargent, Trees a. Shrubs, II, 2, 1908, tab. 144.
V- rugosum Pers. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 145.
V. shensianum Maxim, in Sargent, Trees a. Shrubs, II, 2, 1908, tab. 140.
V- sempervirens K. Koch, 1. c, tab. 145.
V. sympodiale Grab., 1. c, tab. 139.
V. urceolatum S. et Z., 1. c, tab. 141.
V. utile Hemsl., 1. c, tab. 142.
V. utile Hemsl. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8174.

1008. Anonym. Viburnum Carlesii- (Gard. Chron., 3. ser., XLIII. 1908,
p. 345, Fig. 155.)

Die Figur zeigt einen Blütenstand und Blütendetails dieser Art.

1009. Brenner, M. Nägra Linnaea-i ormer i Finnland. (Medd. Soc.
Fauna et Flora fennica, 1908, 34, p. 89—97.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1010. Heineck. Ergänzungen zur Blütenbiologie von Weigelia
rosea Lindley. (Naturw. Wochenschr.. N. F. VII. 1908, p. 506, 1 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

167! Caprifoliaceae. Caricaceae. Caryocaraceae. Caryophyllaceae. 167

1011. Hemsley, W. Botting. The genus Dipelta. (Garcl. Chron., 3. ser.,
XLIV, 1908, p. 101—103, Fig. 37.) N. A.

Verf. bespricht die Arten und bildet Details von D. ventricosa n. sp. ab.

cf. auch Fedde, Rep. nov. spec. VIII (1910). p. 379.

1012. Peirce, Mary F. Note on Weigelia rosea. (Rhodora, X. 1908,
p. 131—132.)

Betrifft die Secretdrüse am Ende des Griffels.

1013. Bender, Alfred. Lonicerae generis species varietatesq u e
asiaticae novae vel recentius alio loco ab auctore descriptae. (Rep.
spec. nov., VII, 1908, p. 269—276.) N. A.

1014. Schelle, C. Vibumum Opulus var. pygmaeum Hort. (Mitt. D.
Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 189.)

1015. Tieghem, Th. van. Remarque sur l'orientation del'embryon
des Caprifoliacees. (Ann. Sei. Nat., 9. ser., VII, 1908, p. 128.)

Die Orientierung in der Frucht ist bekanntlich bestimmt durch die
Richtung der Symmetrieebene des Samens in Beziehung zur Medianebene
des Carpelles, sowie durch die Richtung der Medianebene des Embryo in Be-
ziehung zur Symmetrieebene des Samens.

Bei den Rubiaceen wie bei den Caprifoliaceen ist die Medianebene des
Embryo radial, wenn die Frucht einsamige Fächer hat. Während nun aber
bei den Rubiaceen der Samen seine radiale Symmetrieebene mit einem auf-
liegenden Embryo hat, finden wir bei den Caprifoliaceen eine tangentiale
Symmetrieebene mit anliegendem Embryo. Dies gilt sowohl für Sambucns,
Symphoricarpus und Yiburnum, wie für Lonicera und Diervilla. Durch diese
tangentielle Direktion der Symmetrieebene des Samens in der Frucht und durch
das Anliegen des Embryos im Samen, entfernen sich die Caprifoliaceen weiter
von den Rubiaceen, als man bis jetzt annahm.

1016. Zabel. Vorläufige Mitteilung über Lonicera Ferdinandii- (Mitt.
D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 188—189.) N. A.

Verf. zieht als Formen zu dieser Art die L. vesicaria Kom. und leyceste-
rioides Grab, und stellt als neue Form var. Beissneriana auf. — cf. Fedde, Rep. VIII.

Caricaceae.

1017. Bernard, Ch. Sur une anomalie des fruits de Carica Papaya.
(Ann. Jard. Buitenzorg, XXII, 1908, p. 56—68, pl. V— VI.)

Siehe „Teratologie".

1018. Jörns, M. J. Observations on change of sex in Carica Papaya.
(Science, II, XXVIII, 1908, p. 125—126.)

Siehe „Blütenbiologie".

1019. Wester, P. J. The correlation of flower- and fruit-
strueture in Carica Papaya. (Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908, p. 141 — 146,
2 Textfig.)

Siehe „Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen".

Caryocaraceae.

Caryophyllaceae.

Neue Tafeln:
Cerastium lithophilum Greenm. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908,
tab. 48 (Vegetationsb.).

168 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [168

Melandrium alpestre Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 1, fig. 5—6 et

tab. 7, fig. 8—11.
M. densifolium Dus., 1. c, tab. 1, fig. 2—3 et tab. 7, fig. 19—22.
M. Koslowskii Dus., 1. c, tab. 1, fig. 7 et tab. 7, fig. 12 — 18.
M. filifolium Dus., 1. c, tab. 1, fig. 4 et tab. 7, fig. 23—25.
Polycarpaea linearifolia DO. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 46.

1020. Anonym. Silene pendula. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908, p. 345,
Fig. 154).

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze von $. pendula var. compacta.

1021. Beck v. Mannagetta, G. Bemerkungen über Cerastium subtriflorum
Reich, und C. sonticum n. sp. aus dem Isonzotale. (Östr. Bot. Zeitschr.,
LVIII, 1908, p. 1—8.) N. A.

Verf. behandelt eingehend die zuerst von Beichenbach als C. lanuginosum
Willd. ß. subtriflorum beschriebene Form, die als eigene Art anzusehen ist und
der sich das neue C- sonticum eng anschliesst.

1022. Begninot, A. Gypsophila Visiani Beg. , n. sp., ex Dalmatia,
(Fedde, Rep. nov. spec, V, 1908, p. 96.) N. A.

1023. Begninot, A. Ulteriori osservazioni sulle culture di forme
del ciclo di Stellaria media L. Cyr. (Nuov. Giorn. Bot. Ital., Nuov. Ser,
XV, 1908, p. 544—556.)

Ref. noch nicht eingegangen.

1024. Beguinot, A. Cerastium alpinum L. e le sue vicende nella
flora italiana. (Atti Accad. scient. venet.-trent.-istr., V, 1908, p. 90 — 105.)

Besprechung siehe „Pflanzengeographie von Europa". Fedde.

1025. Bonnet, E. E. Observations sur la structure anatomique
de la tige des Paronychiees et des Cary ophyllees. Diss., Paris, 1908.

Siehe „Anatomie".

1026. Fedtschenko, Boris. Neue Silene- Arten aus Tnrkestan. (Allg.
Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 1—2.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec."

1027. Gagnepain, F. Contribution ä la connaissance du genr&
Polycarpaea Lara. (Journ. de Bot., 2. ser., I [XXI], 1908, p. 275—280.)

N. A.
Verf. behandelt kurz die allgemeinen Merkmale und gibt folgende Be-
stimmungstabelle für die 10 Arten, deren Exsiccaten er zitiert.

A. Style plus court que l'ovaire jeune ou ;i peine egal ä Tovaire jeune.

a) Style plus court que l'ovaire jeune, stigmate capite.

«) Petales orbiculaires, jamais plus longs que larges. I. P. corymbosa
ß) Petales oblongs ou acumines.

- Sepales fortement velus sur le dos; anthrre orbiculaire. 2. P.
eriantha.
= Sepales glabres ou ä peine cilies, non velus sur le dos; anthere
elliptique. 3. P. stellata.

b) Style presque egal ä l'ovaire jeune.

«) Petale non soudes ä la base; sepales egaux.

— Sepales ovales-triangulaires petales roux. 4. P. stylosa (1).

= Sepales triangulaires, longuement acumines; petales blanchätres.
5. P. brasiliensis.
ß) Petales un peu adherents par la base entre eux et avec le filet

des etamines.

169] Caryophyllaceae. 169

* Feuilles obovales larges; fleurs en tete compacte. <>. P. spicata.
** Feuilles lineaires etroites, fl. en tete lache. 7. P. synanära.
B. Styles 2 fois plus longs que l'ovaire jeune.

a) Sepales 2 fois plus longs que les petales. 8. P. lonyiflora.

b) Sepales egaux aux petales ou plus courts.

a) Sepales a peu pres egaux aux petales, les uns et les autres
lineaires-acumines, longs de 3 — 4 mm. 9. P. arenaria-

ß) Sepales plus courts que les petales, les uns et les autres ovales
acumines, long de 5 mm. 10. P. Gaudichaudi.

1028. Heineck. Wie kommen die fünf Zugänge zum Honig bei
der Blüte von Lychnis ftos cucidi zustande? (Naturw. Wochenschr., N. F..
VII, 1908, p. 74—75, eine Fig.)

Siehe unter „Blütenbiologie", Ref. Dalla Torre.

1029. Heineck. Die Zugänge zum Honig bei Dianthus carthnsianorum.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 187, eine Fig.)

Siehe ebenda.

1030. Heineck. Der Verlauf des Blütenlebens bei Silene mrfans L.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. -455—156, 2 Fig.)

Siehe ebenda.

1031. Holm, T. Method on Hibernation and vegetative repro-
duction in North Amerikan species of Stellaria. (Am. Journ. Sc. XXV,
1908, p. 315-322, 6 figs.)

Verf. gibt im Bot. Centrbl., CVIII, p. 207 folgendes Autorreferat:

Bei den nordamerikanischen Stellaria s. s. (mit Ausschluss von Malachium
und Cherleria) ist die Primärwurzel nur von kurzer Dauer, wird aber durch
sekundäre Wurzeln ersetzt, die sich von den Basalknoten des Stämmchens
über der Erde oder vom Bhizom entwickeln. Sehr charakteristisch für einige
dieser hochalpinen oder arktischen Formen ist die Fähigkeit des oberirdischen
Stammes zwei oder mehrere Saisons aktiv zu bleiben, ausserdem sind mehrere
Species noch mit echten Bhizomen ausgestattet.

Bei S- pubera Mchx. werden zwei Arten von Lufttrieben entwickelt:
florale und vegetative. Die letzten persistieren und werden im Herbst dicht
an den Grund angepresst. Sie bleiben den Winter hindurch lebend und neue
Triebe entwickeln sich im folgenden Fiühjahr in Paaren aus ihren Blatt-
achseln. Dann bricht der Muttertrieb an den Gliedern und es entstehen neue
unabhängige Individuen.

Bei S. lonyipes Goldie bleiben die Luftstengel den ganzen Winter hin-
durch aktiv, Knospen werden in den Achseln der vertrockneten Blätter ent-
wickelt. Während des folgenden Frühjahrs entwickeln diese Knospen Triebe,
die eine Saison lang oder zwei in den arktischen Regionen vegetativ bleiben,
während sie in der alpinen Region der ersten Saison eine Inflorescenz entwickeln.
Das Rhizom dieser Art hat lange schlanke Stolonen mit winzigen schuppen-
artigen Blättern, und die Internodien sind gestreckt.

Die hochalpine S. umbellata Turcz. zeigt die gleiche Eigentümlichkeit
in bezug auf das Persistieren der Obergrundstämme, aber hier sind die Inter-
nodien der Stolonen sehr kurz und die Blätter fleischig.

Ein typisches Rhizom mit mehreren knolligen Internodien besitzt S.
Jamesi Torr., aber hier persistiert der Obergrundstamm nicht.

Das Anschwellen der Internodien ist eine Folge der sekundären For-

170 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. [17Q

mationen der Stele und der grossen Entwickelung des Markes, das Stärke-
niederlagen enthält.

K 32. Ingham, W. et Wheldon, J. A. A new Variety of Sagina Reuteri
[var. glabra]. (Journ. of Bot., XLVI, 1908, p. 109—112, pl. 489 D.) N. A.

1033. Marshall, E. S. Stellaria neglecta Weihe. (Journ. of Bot., XLVI,
1908, p. 23—24.) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1034. Williams, Frederic N. European varieties of Silene inflata. (Bull.
Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 402—409.) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1035. Williams, Frederic N. The Caryophyllaceae of Tibet. (Journ. Linn.
Soc. London, XXXVIII, 19Q8, p. 395—407.) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie".

1036. Winstedt, K. Sagina procumbens X subulata. (Botanisk Tidsskrift,
Bd. 28, H. 3. p. XXXVII, Kjoebenhavn 1908.)

Eine kurze Charakteristik dieses Bastardes. H. E. P.

1037. Wittrock, V. B Omjordens allmännast utbredda fanerogam.
Sveriges yumigast vinterblomnande och inest namurika växt,
Vatarf, Stellaria media. (Föredrag Kgl. Vet.-Ak., höglidsdg. d. 31. mars 1908,
Uppsala, Almquist et Wiksell, 1908, 8», 16 pp., eine Abb.)

Nicht gesehen.

Casuarinaceae.

1037a. Azzi, G. Sulla formazione di tilli nei vasi legnosi delle
radici delle Casuarine. (Boll. Soc. bot. ital., 1908, p. 87—88.)

Referat nicht eingegangen.

1037b. Koorders, S. H. Enkele systematische en plantengeo-
graphische opmerkingen over de Javaansche Casurinaceae vooral van
's Pyk Herbarium te Leiden en Utrecht. Bydrage tot de kennis der Flora
van Java III. (Versl. kon. Ak. Wet. Amsterdam. 1908. p. 462—472.)

Noch nicht gesehen.

Celastraceae.

Neue Tafeln:
Elaeodendron crocevm (Thbg.) DC. in Thonner. Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 83.
Euonymus europaea L. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908, tab. 39,

fig. 1—12.
E. japonica Thbg., 1. c, fig. 13 — 24.

1038. B., W. J. Celastrus articulatm. (Gard. Chron., 3. ser.. XLIII. 1908,
p. 243, fig. 105.)

Die Figur zeigt einen Bliitenzweig.

1039. Boorsma, W. G. Pharmakologische Mitteilungen. IV.
(Bull. Dep. Agric. Ind.-Neerl., 1908, No. 16, 22 pp.)

Betrifft: Polygalaceen: Polygala glomerata Lour., Xanthophyllum excelsum
Bl. — Celastraceen : Pleiirostylia Wightii W. et A., Gymnosporia Wallichiana M.
Laws., Gotha spec, Evonymus japonicvs Bl., Siphonodon celastrinus Griff., Celastrus
dispermus F. Müll., Elaeodendron glaucum Pers. — Lecythidaceen : Chydenanthus
exeelsus Miers., Barringtonia speciosa Gärtn., Planctonia svndaica Miq. —
Anacardiaceen: Mangifera indica L.

1040. Loesener, Th. Celastraceae africanae. IV. (Engl. Bot. Jahrb., XLI.
1908, p. 298—312. 2 Textfig.) N. A.

1711 Casnarinaceae. Celastraceae. Centrolepidaceae. Chenopodiaceae. 171

Neue Arten von: Gymnosporia, Pterocelastrus, Elaeodendron, Mystroxylum,

Pleurostylia.

1041. Loesener, Th. Über das Vorkommen von Kautschuk bei
einigen ostafrikanischen Gymnosporia- Arten. (Notizbl. Bot. Mus. Berlin-
Dahlem, V, 1908. No. 42, p. 64—67, Tafel IV.) N. A.

Betrifft G. bukobinu Loes.. amaniensis Loes., acuminata Szysz. var.
lepidota Loes.

1042. Spragae, T. A. The prickly-fruited species of Euonymus.
(Kew Bull., 1908, p. 29—36.) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie" und „Index nov. gen. et spec."

Centrolepidaceae.
Ceratophyllaceae.

Chenopodiaceae.
Neue Tafeln:
Anabasis cretacea in Act. Hort. Petrop., XXVIII, 1908. tab. III, fig. 1 (Habitus .
Atriplex Babingtonii Woods in ßeichenb., Ic. Flor. Germ., XXIV. 1908, tab. 264.
A- calotheca Fries, 1. c, tab. 262.
A. farinosum Dum., 1. c, tab. 268, 1—4.
A. halimus L., 1. c, tab. 270.
A. hastatum Lt., 1. c, tab. 261.
A. hortensis L., 1. c, tab. 260.
A. Utorale L., 1. c. tab. 266.
A. nitens Schkuhr, 1. c, tab. 259.
A. oblongifolium W. K.. 1. c, tab. 263.
A. patulum L., 1. c, tab. 265.
A. roseum L., 1. c, tab. 267; var. litoreum, 1. c, tab. 268, 5 — 10.

A. tataricum L., 1. c, tab. 269.

Blitum ambrosioides G. Beck, 1. c, tab. 251, 1 — 9.
B- bonus Henricus Rchb., 1. c, tab. 257.

B. capitatum L., 1. c, tab. 254.

B. carinatum C. A. M., 1. c, tab. 252, 8—10.

B. rubrum Reich, und var. crassifolium Moqu. und hamile Moqu., 1. c, tab. 255:
var. acuminatum Koch, 1. c, tab. 256.

B. virgatum L., 1. c, tab. 253.
Camphorosma monspeliaca L., 1. c, tab. 274.
C ovata W. K , 1. c, tab. 275.

C. ruthenicum in Act. Hort. Petrop., XX VIII, 1908, tab. III, fig. 3 (Habitus).
Chenopodium aristum L. in Reichenb., Ic. Flor. Germ., XXIV, 1908, tab. 252.

1—7.
Ch. botrys L., 1. c, tab. 250.
CIl foetidum Schrad., 1. c, tab. 251, 10.
Ch. glaueum L., 1. c, tab. 248.

Ch. urbicum L., 1. c, tab. 246: var. intermedhim Koch, 1. c, tab. 247.
Ch. Wolffii Simk., 1. c, tab. 249.
Eurotia ceratoides C. A. M., 1. c, tab. 273.
Nanophyton caspicum in Act. Hort. Petrop., XXVIII. 1908, tab. III, fig. 2

(Habitus).
Obionc ]jortulacoides Moqu. in Reichenb., Ic. Flor. Germ.. XXIV, 190b', tab. 271.

172 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [172

Obione pedunculata Moqu., 1. c, tab. 272.

Spinacia oleracea L., 1. c, tab. 258.

Traganum nudatum Del. in Thonner, ßlütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 40.

1043. Fernald, L. The representatives of Rumex salicifolim in
Eastern America. (Rhodora, X. 1908, p. 17—20.)

Betrifft R. pallidus Bigelow und R. mexicanus Meisner.

1044. Wein, K. Rumex crispus X obtusifolius X sanguineus = R. wippraensis m.
(Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 73—74.) N. A.

Chlaenaceae.

Neue Tafel:
Leptochlaena multiflora Thouars in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 91.

Chloranthaceae.

Cistaceae.
Neue Tafel:
Cistus heterophyllus Desf. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 103.

1045. Coste, H. Cistus Soidiei et C Verguini, hybrides nouveaux,
■ lecouverts aux environs de Saint-Chinian (Herault). (Bull. Soc. Bot.
France, LV, 1908, p. 472—476.)

Cistus Souliei entspricht C ladaniferus X laurifolius und der andere
C. ladaniferus X salviaefolius-

1046. Gard, M. Sur la graine des Cistus (Journ. de Bot., XXI [ser. 2, I],
1908, p. 34-39, Fig. 1—6.)

Siehe „Anatomie".

1047. Janchen, E. Zur Nomenclatur des gemeinen Samen-
röschens. (Österr. Bot. Zeitschr., LVI1I, 1908, p. 406-413, 2 Textfig., p. 426
bis 435.)

Verf. klärt die Synonymie usw. von Helianthemum nummularium Dunal
(Cistus nummularius L., Hei. chamaecistus Mil)., HeL vulgare Gärtn. usw.) und
Hei. hirsutum (Thuill.) Merat.

1048. Janehen, E. Zwei neue Fumaneu. (Österr. Bot. Zeitschr.,
LVIII, 1908, p. 439—440.) N. A.

Betrifft Fumana paphlagonica Janen, et Bornm. und F. erieoides (Cavan.)
Pan. f. Malyi Jauch.

1049. Le Gendre, Ch. An sujet de l'appetence chimique de V Helian-
themum vulgare Gaertn. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 248-252, Fig. 1.)

Verf. ergänzt Mitteilungen von Russe 11s und kommt zu dem Schlüsse,
dass H. vulgare wohl Kalk liebt, aber sich auch auf minder günstigen Böden
sehr wohl fühlt und erhält.

1050. Törnbloni, Gustav. Jakttagelser over Helianthemum canum (L.)
Baumg. och H. oelandicum (L.) Willd. pa Ölands alfvar. (Beobachtungen
über H. canum und oelandicum auf dem Alfvar von Oeland.) (Svensk
Bot. Tidskr., II, 1908, p. 32. 37, 2 Textf., schwedisch.)

Vgl. ,,Pflanzengeographie von Europa".

Clethraceae.
Cochlospermaceae.
Columnellaceae.

1731 Chlaenaceae. Cistaceae. Coluinnellaceae. Coinbretaceae. Compositae. 173

Combretaceae.

Neue Tafel:
Combretum racemosum Beauv. in ThoDner, Blütenpfl. Afrikas. 1908, tat». 114.

1051. Bagshawe, A. G. et Baker. E. G. Uganda Combretaceae. (Journ.
of Bot., XLVI, 1908, p. 3—7.) X. A.

Siehe ..Pflanzengeographie".

1052. Britton. N. L. The generic name Bucida. (Bull. Torr. Bot. Club..
XXXV, 1908, p. 303-304, Fig. 1.)

Der Name gründet sich auf die hornartigen monströsen Früchte, die
sich bei der Gattung finden, und durch Gallen verursachte Hypertrophien dar-
stellen.

1053. Cook, Melville Thurston. The hypertrophied fruit of Bucida
Buceras. (Bull. Torr. Bot. Club. XXXV, 1908, p. 305-306, Fig. 2.)

Vgl. unter „Gallen".

1054. Harrison. E. F. Notes 011 the constituents of Combretum
sundaicum. (Pharm. Journ., LXXX, 1908, p. 52 — 54.)

Siehe „Chemische Physiologie".

Compositae.

Neue Tafeln:

Anthemis dipsacea Born m. in Mitt. Thür. Bot. Ver., V, XXIV, 1908, tab.
fig. 5. ArtemisiaStelleriana Bess. in Miyoshi, Atl. Jap. Vegetat., sect. X, 1908. tab. 64
(Vegetationsbild). Berkheya Francisci Bolus in Wildeman, pt. nov. Hort. Then.,
II, 1908, pl. LXXI. Centaurea Filarszkyi Gugl. (dissecta Ten. X Tenoreana
Willk.) in Ann. Mus. Hungaric, VI, 1908, tab. I. Chamaemelum hygrophilum
Bornm. in Mitt. Thür. Bot. Ver., V, XXIV, 1908, tab., fig. 4. Crepis Blavii Aschers,
in Österr. Bot. Zeitschr.. LVIII, 1908, tab. XI, fig. 3. C. chondrilloides Jacq.
]. c. Fig. 1. X C Mahji Stadlm.. 1. c, Fig. 2. Echinops Tournefortii Ledeb. in
Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8217. Eupatorium Bafßlii Hemsl., 1. c, tab.
8227. Gamolepis intermedia Bolus in Wildeman, pl. nov. Hort. Then., II. 1908.
pl.LXX Hieracium austro-americanumDahlst. inArk.f.Bot., VII, 1908, No.2, tab. 2,
Fig. 4, tab. 9, Fig. 14 — 16. R. alpinum L. in Karst, et Schenck, Vegetationsb.,
V, 1908, tab. 29 (Vegetationsb.). H dlpinum L. ssp. pseudofritzei Benz et Zahn
in ßeichenb., Icon. Fl. Germ., XIX, 2, 1908, tab. 131 A., 1—2. R. arolae Murr,
ssp. arolae M., 1. c, tab. 156; ssp. macrocalathium Zahn, 1. c, tab. 157. R. atratum
ssp. adenopJiytum Zahn, 1. c, tab. 14(i; ssp. dolichaetoides Zahn, 1. c, tab. 147.
ssp. samnaunicum Zahn, 1. c, tab. 148. R. atratum Fries ssp. dolichaetum
A.-T. und ssp. zinkenense Pernh., 1. c, tab. 144. R. Schroeterianum Zahn-
1. c, tab. 145, A. 1 — 4. R. cochleari forme Zahn ssp. cochleariforme Z., ssp.
pseudoglanduliferum Z. und ssp. j/seudoalpinum Z., in Bchb., 1. c, tab. 132.
R. Krasani Wol. ssp. Kra&ani Wol. und ssp. rotundiceps Zahn, 1. c.
tab. 150. H. nigrescens Willd. grex decipiens Zahn ssp. cochleare Huter, ssp.
reichartense Z. und ssp. subzinkense Zahn in Rchb., 1. c. tab. 134; ssp. pseudo-
rhaeticum Z. und ssp. leontodonloides A.-T., 1. c, tab. 135; ssp. decipiens Tsch.
und ssp. bructerum Fries. 1. c, tab. 136. H. nigrescens W. ssp. pseudohalleri Z.
und f. snbcocldeare Z. und ssp. subpumilum Z., 1. c, tab. 137; ssp. sphaerocalathiinn
H.-M. et Z. und ssp. nigrescenti forme Z., 1. c, tab. 137; ssp. subrhaeticum Z. und
ssp. subeximium Z., 1. c, tab. 139; ssp. nivimontis Ob. et Z., 1. c., tab. 140; ssp.
nigrescens Willd. und ssp. subneglectum Zahn, 1. c, tab. 141 ; ssp. rhacticum Fries,
1. c. tab. 142: ssp. stiricolum Zahn und ssp. stellulatum Zahn, 1. c. tab. 14:1.

174 C. K. Schneider. Morphologie und Systematik, der Siphonogaoien. [174

H. pietroszense D. et Z. ssp. pietroszense D. et Z. und ssp. bifidifolium Zahn,
1. c, tab. 149. H. prasinicolor Besse et Zahn in Rchb., 1. c, tab. 133. H. ran-
zense Murr. ssp. pseudarolae Murr, und megalocladum Z., 1. c, tab. 151; ssp. rau-
zense Murr., 1. c, tab. 152; ssp. aroliflorum M. et Z., 1. c, tab. 153; ssp. semi-
atratum Zahn, 1. c, tab. 154; ssp. bifidellttm Z., 1. c, tab. 155. H- Rostani N.
P. ssp. horongyiense Zahn in Rchb., 1. c, tab. 131, B. 3—5. H sqiialidiforme M.
et Z., 1. c, tab. 145, B. 5— 6. H. Thomasianum Zahn, 1. c, tab. 158. Hypochaeris
lanata Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 5, fig. 1, tab. 9, fig. 3. H. steno-
phylla Dus., 1. c, tab. 5, fig. 2, tab. 9, fig. 1 — 2. Jitrinea kirghisorum Janisch
in Act. Hort. Petrop., XXVIII, 1908, tab. IV, fig. 4 (Habitus). Matricaria am-
bigua Ledeb. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 33 (Vegetationsb.).
M. ambigua Ledeb. in Miyoshi, AU. Jap. Vegetat., sect. X, 1908, tab. 65 (Vege-
tationsbild). Metalasia pallida Bolus, in Wildeman, Ph. Nov. Hort. Then., II,
1908, pl. LXVII1, fig. 1 — 13. M. stricüfolia Bolus, 1. c, fig. 14—25. Montanoa
bipinnata Garden, LXXII, 1908, tab. col. ad, p. 302. M- mollissima in Gard.
Chron., 3. ser., XLIII, 1908, tab. nigra ad p. 41. Olearia ciliata F. Muell. in
Bot. Mag., OXXXIV, 1908, tab. 8191. O. ramidosa var. communis Benth., 1. c.,
tab. 8205. Perezia flavescens Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 6,
fig. 5 der Tab. 9 fig. 4—11. P. recurvata Less. var. sess/lis Dus., 1. c, tab. 6,
fig. 4. Petasites japonicus Miq. in Miyoshi, Atl. Jap. Vegetat., sect. X, 1908,
tab. 72 (Vegetationsbild). Pliaecocephalus gnidioides Sp. Moore in Wildeman,
PI. Nov. Hort. Then., II, 1908, pl. LXVII. Phihjrophyllum Schinzii O. Hoffm.
in Wildeman, PI. Nov. Hort. Then., II, 1908, pl. LXVI. Senecio Martinensis
Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 3, fig. 5, tab. 6, fig. 3 et Tab. 8,
fig. 20 — 23. S. xantliocephalus Dus., 1. c, tab. 9, fig. 13. S. pseudo-arnica Less.
in Miyoshi, Atl. Jap. Vegetat., sect. X, 1908, tab. 60 (Vegetationsbild). S. ther-
marum Bolus, in Wildem, PI. Nov. Hort. Then., II, 1908, p. LXIX. Tara-
xacum balticum Dahlst, Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 6, tab. I, fig. a — h, tab. II,
und tab. III, fig. 1. T. palastre var. concolor Dahlst., 1. c, tab. I, fig. i — k und
tab. III, fig. 3. T. Reichenbachi (Hut.) Dahlst. und subsp. dovrense Dahlst. in
Ark. f. Bot., VII, 1908, Taf. 1. Vernonia Baumii O. Hoffm. in Thonner,
BlütenpO. Afrikas, 1908, tab. 150. Senecio arcticus Rupr. in Karst, et Schenck,
Vegetationsbild, V, 1908, tab. 32 (Vegetationsb.).

1055. Barsali, E. Sulla presenza di individui femininili di Tara-
ccacum officinale Web. (Atti della Soc. Toscana di Sei. Nat., XVIII, Processi
verb., p. 31—36.)

Siehe „Blütenbiologie". Fedde.

1056. Beeby, William H. The Scape of Taraxacum- (Journ. of Bot.,
XLVI, 1908, p. 120—123.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Jahresberichtes.

1057. Bei'ger, Alwin. Shrubby and soft wooded Compositae.
(Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908, p. 23—24.)

Bemerkungen über Montanoa mollissima, tomentosa; Verbesina diversifolia ;
Tithonia diversifolia.

1058. Brenner, M. Hieraciologiska meddelanden. 5 Tilläg tili
södra Finlands Hieracium-il ora. (Medd. Soc. Fauna et Flora fennica, 1908,
34, p. 142—145.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

175] Compositae. 175

1059. Brenner, M. Nägra Taraxacuum officinale-iormer. (Medd. Soc.
Fauna et Flora fennica, XXXI V, 1908, p. 22-26.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec," und „Pflanzengeographie von Europa".

1060. Brenner, M. Xya lapska Taraxacuum-iormer. (Medd. Soc. Fauna
et Flora fennica, XXXIY, 1908, p. 74-76.) N. A

Siehe „Index nov. gen. et spec." sowie „Pflanzengeographie von Europa".

1061. Brenner, M. En för Finland ny Taraxacum officinale-iorm,
T. laeticolor Dahlst. (Meddeland. Soc. Fauna et Flora Fenn., XXXIII, 1906
bis 1907, p. 75.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1062. (habaud, B. Stifftia chrysantha. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 294
bis 295, fig. 109.)

Die Figur zeigt einen Blütenstand.

1063. Chifflot, J. De la production des graines de Chrysantheme.
(Rev. Hortic, CXXX, 1908, p. 39—41, fig. 16-17.)

In der Hauptsache Gärtnerisches.

1064. Chiovenda, E. Asteraceae novae in Ru wenzori Africae nionte
collectae. (Rep. spec. nov... VI, 1908, p. 181—183.)

Ex: Ann. di Bot., VI, 1907, p. 149—151.

1065. Cockayne, L. On the supposed Mount Bonpland Habitat
of Celmisia Lindsayi Hk. f. (Trans. N. Zeal. Inst. Well., XXXVIII, 1905 [1906],
p. 346—350.)

Siehe „Pflanzengeographie".

1066. Cockerell, T. D. A. Variation in Helianthus. (Bot. Gaz., XLV,
1908, p. 338.) N. A.

Verfasser hält Heliantlius lenticularis Dougl. nur für eine Varietät von
H. annuus.

1067. Dahlstedt, Hngo. Taraxacum palustre (Ehrh.) und verwandte
Arten in Skandinavien. (Ark. f. Bot., VII, 1908. No. 6, 29 pp., 5 fig.,
Tab. I-IV.) N. A.

Siehe Tafeln am Kopfe der Familie und „Pflanzengeographie von
Europa".

1068. Dahlstedt, H. Taraxacum Reich enbaehii (Huter) subsp. clovrense.
(Ark. f. Bot., VII, No. 1, 11 pp., 2 Textf., eine Tafel.) N. A.

1069. Dndgeon, W. A study of the Variation of the number of
ray flowers of certain Compositae. (Proc. Journ. Ac. Sei., XIV, 1908, p. 89
bis 106, ill.)

Siehe „Variation, Descendenz usw.".

1070. Dufour, Leon. Notes sur les affinites des especes du genre
Achillea. (C. R. Ass. franc. Avanc. Sc. Reims [Paris], XXXVI, 1907 [1908], p. 446.)

Nicht gesehen.

1071. Ewart, A. J. and Tovey, J. R. The stinking maywed orfetid
chamamile [Anthemis cotula L.]. (Journ. Dept. Agric. Victoria, VI, 190S,
p. 480, 1 col. pl.

Nicht gesehen.

1072. Fernald, M. L. Bidens connata and some of its american
allies. (Rhodora, X, 1908, p. 197—203.)

Betrifft noch: B. tripartita L. und hyperborea Greene.

1073. Piori, A. Un nuovo ibrido di Carduus [C. simplicifolius X nutans
Nob.]. (Bull. Soc. bot. Ital, 1908, 7/9, p. 155—156.)

176 U- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [176

1074. Fitzherbert, S. W. Brachyglottis repanda. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIV, 1908, p. 52, fig. 20—21.)

Die Abbildungen zeigen eine blühende Pflanze und einen Blütenstand.

1075. Fries, Thore C. E. Tvä nya alpina Taraxacum -arter af Cerato-
phorum-Gruw en. (Svensk Bot. Tidskr., II, 1908, p. 143—145, fig. 1—9.)

Betrifft T- melanostylum und tomense. N. A.

1076. Gerard. Sur les fleurs des Dahlias. (Assoc. franc. l'avancem.
Sei., XXXV, 1 part., Lyon. 1906, p. 101.)

Nur kurze Notiz. Fedde.

1077. Gericke, Fritz. Experimentelle Beiträge zur Wachstums-
geschichte von Helianthus annuus. (Zeitschr. f. Nattirw. Halle. LXXX, 1908,
p. 321-362, 9 Tabellen, 11 Textf.)

Siehe „Physiologie der Entwickelung".

1078. Geyer, M. Solidago aspera. (Gartenwelt, XIII, 1908. p. 496, Abb.)
Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1079. Geyer, 31. Leucanthemum (Pyrethrum) uliginosum. (Gartenwelt,
XIII, 1908, p. 532, eine Textf.)

Wie oben.

1080. Greene, Edward L. Antennariae novae canadenses. (Rep. spec.
nov, VI, 1908, p. 162—164.)

Ex: Ottawa Nat., XVII, 1904. p. 201—203: XVIII, 1904, p. 37—39.

1081. Greenman. J. 31. Notes on the Genus Senecio- (Rhodora, X,
1908, p. 68-69.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1082. Gressler, P. Über die Substanzquotienten von Helianthus
annuus. Bonn 1907, 8°, 29 pp., 5 Fig.

Siehe „Chemische Physiologie".

1083. Grevsmühl, E. Zur Kenntnis der Blattentwickelung von
Aster cyaneus und A. abbreviaius- Diss., Göttingen 1908, 61 pp. 8°.

Siehe „Chemische Physiologie".

1084. Grignan, G. T.-. L'exposition retrospective du Chrysan-
theme. (Rev. Hortic, LXXX, 1908. p. 561—564, fig. 217-218.)

Die Figuren zeigen alte Varietäten des Chrysanthemum und illustrieren
gut die Entwickelung der Gartenformen.

1085. Gurke, 31. Kleinia Galpinii Hook. f. (Monatsschr. Kakteenk.,
XVIII, 1908, p. 134, Abb.)

Die Abbildung zeigt eine prächtige blühende Pflanze.

1086. Gngler, Wilhelm. Die Centaureen des ungarischen National-
museums. Vorarbeiten zu einer Monographie der Gattung Centaurea und der
ihr nächstverwandten Genera. (Ann. Mus. Hungarici, VI. 1908, p. 15 — 297,
tab. I.) N. A.

Sehr eingehende detailreiche Arbeit, vgl. auch „Pflanzengeographie von
Europa" und „Index nov. gen. et spec".

1086a. Gngler, W. Der Formenkreis des Carduus deflorat/is L. (Mitt.
Bayr. Bot. Ges., II, 1908. p. 136—140, 145—156.) N. A.

Verf. gibt folgende Tabelle der Varietäten:

A. Unbeblätterter Köpfchenstiel sehr lang, meist 10 cm und mehr:
Köpfchen während der Blütezeit hängend. Blattflügel zusammenhängend.

1771 Compositae. 177

I. Blätter und Blattflügel ungeteilt, gezähmt, seltener schwach lappig, am
Rande mit wimperigen, schwachen Dornen besetzt, kahl.

1. Äussere (untere) und mittlere Hüllschuppen verhältnismässig kurz
(ca. 3 — ö mal so lang als breit), kurz bespitzt, mehr oder weniger
angedrückt: Blätter beiderseits blaugrün, stark bereift var. glaucus
(Baumg.) Beck.

2. Äussere und mittlere Hüllschuppen verhältnismässig lang (ca. 5 — 10
mal so lang als breit), allmählich pfriemlich verschmälert, mit der
Spitze deutlich abstehend: Blätter meist oberseits reingrün, unterseits
blaugrün, selten gleichfarbig, var. summanus (Poll.) DO.

II. Blätter und Blattflügel buchtig lappig bis fiederspaltig, mehr oder
weniger schwach dornig, völlig oder fast kahl, var. cirsioides (Vill.) DC.

III. Blätter und Blattflügel fiederspaltig bis fast fiederteilig, mehr oder
weniger kahl, Abschnitte wieder gelappt, wie die Blattflügel kraus und
mit starken stechenden Dornen besetzt, var. rhaeticus DO.

IV. Blätter tief fiederspaltig bis fiederteilig, anfangs unterseits dicht weiss-
wollig: Abschnitte breit, ungeteilt bis mehr oder weniger deutlich zwei-
spaltig var. alpestris (W. K.) DO.

B. Unbeblätterter Köpfenstiel mehr oder weniger kurz, manchmal nur
■etwa 5 cm; Köpfchen aufrecht, seltener gegen Ende der Blütezeit etwas ge-
neigt, Blattflügel lappig zerrissen.

I. Hüllschuppen lineal, ziemlich plötzlich verschmälert, mehr oder weniger
stark abstehend.

1. Blätter fiederspaltig, Abschnitte länglich, am vorderen Rande zwei
bis dreilappig, obere Blätter wenig herablaufend var. cardnelis
(L.) Mh.

2. Blätter tief fiederspaltig bis fiederteilig, Abschnitte mehr oder weniger
eiförmig, an beiden Rändern gelappt, obere Blätter stark herabiaufend
var. Kerneri (Simk.) Mh.

II. Hüllschuppen pfriemlich, ganz allmählich vom Grunde an verschmälert,
aufrecht; Blätter fiederspaltig, Abschnitte ungeteilt bis dreilappig var.
medhis (Gouan)- Mh.

1087. H., T. Ozothamnus rosmarinifolius. (Gard. ühron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 82—83, fig. 32—33.)

Die Abbildungen zeigen einen Blütenzweig und Blüten-, Blatt- und
Fruchtdetails.

1088. Hanansek. T. F. Über das Pericarp von Humea elegans Sm.
<Ber. D. Bot. Ges., XXVI, 2, 1908, p. 292—298. Tab. IV.)

Siehe „Anatomie".

1089. Holm, Th. Medicinal plants of North America 22. Eupa-
torium perfoliatum L. (Mercks Rep., XVII, 1908, p. 326—328, fig. 1—11.)

Siehe „Anatomie".

1090. Johansson, K. Rieracia vulgata Fr. frän Torne Lappmark.
(Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 12, 48 pp., V Tafeln.) N. A.

Siehe „Index gen. et spec. nov." und „Pflanzengeographie von Europa".
Die Tafeln zeigen Blattformen der neuen Arten.

1091. Johansson, K. Hieracia alpina fran Torne Lappmark. (Bot.
Not., 1908. p. 149-182.) X. A.

Siehe „Pflanzengeographie von Europa" und „Index nov. gen. et spec".
botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3 Abt. [Gedruckt 25. 7. 10.] 12

178 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [178

1092. Jael, 0. Om pollinationsapparaten hos familjen Com-
positum (Svensk Bot. Tidskr., II, 1908, p. 350—363, 5 Textf., deutsches
Resümee.)

Vgl. unter „Blütenbiologie".

1093. Kennedy, Beveridge. Some notes regarding Bicoria, with the
description of a new species [D. Brandegei]. (Muhlenbergia, IV, 1908,
p. 1—4, eine Fig.) N. A.

1094. Keramoponllos, A. D. Weihgeschenk der Ampelioten
Kyrenäer in Delphi: Silphion -Stengel. (Journal international d'Archeologie
Numismatique par J. N. Svoronos, Bd. 10, 1907, p. 295 — 310, mit einer Tafel.)

In dieser Abhandlung will Verfasser beweisen, dass die in Delphi ge-
gefundene und von Homolle als Acanthus bezeichnete Säule nicht Acanthus,
sondern Silphion darstellt. Um seine Annahme zu beweisen, bringt Verf. zuerst
auf einer Tafel das Bild der genannten Säule und einer Anzahl Kyrenäischer
Münzen mit eingeprägter Silphion-Pil&nze zum Vergleich. Ausserdem sieht
Verf. eine Ähnlichkeit zwischen der auf der Säule dargestellten Blätter und
derjenigen von Sellerie, welche bekanntlich nach Theophrast und Plinius
den Silphion-Blättera ähnlich sind. Verf. versucht den Mangel an Ähnlichkeit
zwischen den auf den Münzen geprägten Silphion-Blätteva. und denen des Sellerie
durch verschiedene Gründe zu rechtfertigen, hebt aber die Ähnlichkeit zwischen
den auf der Säule dargestellten Blättern und denjenigen des Sellerie besonders
hervor. Von weit grösserer Bedeutung ist der vom Verf. angebrachte Beweis-
grund, dass Acanthus keinen Stengel hat, während Silphion stets mit Stengel
dargestellt wurde, daher die als Säule dargestellte Pflanze mit Stengel Silphion
sein muss.

Zum Schluss wird noch die Angabe Alexandra das erwähnt, nach
welcher die Ampelioten ein Weihgeschenk in Gestalt eines Silphion-Stengels
in Delphi widmeten. Verf. gelangt daher zu der Überzeugung, dass die in Delphi
gefundene Säule der von der Ampelioten Kyrenäer geweihte Silphion-
Stengel ist. Lakon.

1095. Kliek, Engen. Seltene (Jirsienbastarde aus Steiermark.
(Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 33—36.) N. A.

Neil sind: Cirdium erisithales Scop. X pauciflorum Spr. = S. Scopolii
n. hybr.; C. pauciflorum Spr. ß. ramosum Khek.

1096. Koriba, K. Variation in the Ray-flo wers of some Compositae.
(Bot. Mag. Tokyo, XXII, 1908, p. 86-90, 109—112, 121—124, pl. V.)

Siehe unter: Variation, Descendenz usw.

1097. Lange, Axel. Isotypus onoserioides. (Garten weit, XIII, 1907/08,
p. 10—11, Fig.)

Die Abbildung zeigt eine junge Pflanze dieser südamerikanischen Art.

1098. Lindberg, H. Bidrag tili kännedomen af Taraxacum- form erna
i Finland. I. (Medd. Soc. Fauna et Flora fennica, 1908, 35, p. 13—31.)

Siehe „Pflanzengeographie".

1099. Lonaczewski, A. Centaurea (Ghartolepis) ßordziloivskü Lonacz.
(Act. Hort. Bot. Jurjev., IX, 1908, p. 162—164, Textfig., russisch.) N. A.

Neue Art aus dem Terekgebiet im Kaukasus.

1100. Maiden, J. H. Weeds of New South Wales. „Prickly Let-
tuce" or „Compass Plant" Lactuca Scariola Linn. (Agricult. Gaz. N. S.
Wales, XVI, 1 [1905], p. 375-377.)

1791 Coinpositae. 179

1101. Maiden, J. H. Eupatorium rebaudianum, Bertoni. A reputed
Sugar-Producing Plant from Paraguay. (Agricult. Gaz. N. S. Wales,
XVI, 2 [1905], p. 1040.)

Nicht gesehen.

1102. Moore, Albert Hanford. Genus Spilanthes revisum. (Rep. spec.
nov, V, 1908, p. 321 - 329.)

Ex: Contr. Gray Herb. n. s., XXXIII.

1103. Moore, Spencer le M. The Erlangeas of § Bothrocline. (Journ.
of Bot., XLVI, 1908, p. 155— 157.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1104. Muschler, R. Systematische und pflanzengeographische
Gliederung der afrikanischen Se«ec/o- Arten. I. Geschichte und Um-
grenzung der Gattung, Verbreitung der Gattung, ihrer Sippen und Arten in
Afrika usw. Diss. Berlin, 1908, 8°, 42 pp. (erschienen in Engl. Bot. Jahrb.,
XLIII, 1909, p. 1—74, eine Textf.).

Verf. erörtert zunächst die Notwendigkeit, die Grundlagen einer natür-
lichen Gruppierung der Arten schaffen. Er bespricht die Geschichte der
Gattung und dann deren Morphologie. Auch auf einige anatomische Verhält-
nisse seht er ein. In der Umgrenzung der Gattung schliesst er sich an
0. Hoffinann an, hebt hervor, dass Übergänge zu Gynura einer- und Cineraria
sowie Cacalia anderseits vorhanden sind, dass aber auf Grund des Griffels
stets mit Leichtigkeit eine Unterscheidung sich durchführen lässt. Die
Charakteristik der Gruppen ist das wichtigste Kapitel der allgemeinen Dar-
legungen und sei im folgenden wiedergegeben.

Die Gattung Senecio zerfällt, soweit die afrikanischen Arten in Betracht
kommen, in fünf Untergattungen, nämlich in Eusenecio — Notonia — Kleinia
Emilia — Gynwropsis.

Jede diese Abteilungen ist durch ihre stets konstante Griffelform vorzüg-
lich charakterisiert. Beim Subgenus Eusenecio endet der Schenkel in einer
geraden Linie, die mit einem Kranz einzelliger Fegehaare umgeben ist. Die
Notonia-Arten zeigen eine eiförmige Verlängerung des Schenkelendes, die
wiederum von den für Senecio charakteristischen Fegehaaren umgeben ist.
Gut unterscheidbar — auch an ältestem Herbarmateriale — sind hiervon die
Enden der Griffelschenkel der Untergattung Kleinia, die stets in ein scharf
gezeichnetes Dreieck ausgehen, dem sich der Fegehaarkranz umschliesst. Bei
der Abteilung Emilia verlängert sich dieses Dreieck bis zu einem Sechstel der
gesamten Griffelschenkellänge, um endlich bei Gynuropsis den Schenkeln
gleichlang zu werden und sich hier nur noch durch die schön ausgeprägten
Fegehaare von Gynura selbst zu unterscheiden.

So sind auf diese Weise bereits fünf Hauptgruppen geschaffen, von
denen vier als in sich geschlossene Einheiten keiner weiteren Einteilung be-
dürfen, da ausserdem ihre Artenzahl eine geringe ist, es sind dies Notonia,
Kleinia. Emilia, Gynuropsis. Es galt nun, für das übrige bleibende Subgenus
Eusenecio nach weiteren Einteilungsprinzipien zu suchen, die eine Grupjuierung
der restierenden fast 450 Arten ermöglichen. Zunächst konnten zwei Haupt-
gruppen unterschieden werden, deren eine durch die homogamen, die andere
durch die heterogamen Köpfchen genügend präzisiert ist. Innerhalb der homo-
gamköpfigen Arten ist eine Zweiteilung gut vorzunehmen und zwar dieses
Mal auf Grund der Köpi'chenform. Es finden sich nämlich erstens solche Formen,
bei denen das aus einer Hüllblattreihe bestehende Involucrum aus glatten

12*

180 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [180

nach unten sich verschmälernden Einzelschuppen besteht, so dass die Form
des Köpfchens einem umgekehrten Kegel gleicht, also das Bild einer Art aus
der Untergattung Emilia zeigt, während die Köpfchen der zweiten Haupt-
gruppe am Grunde fast ebenso breit sind als an der Austrittsstelle der Blüten
über das Involucrum, bei denen also eine nur schwer erkennbare leichte Ver-
jüngung der Köpfchen zur Basis hin zu beobachten ist. Einige Sektionen der
homogamköpfigen Arten zeigen rein habituell eine solche auffallende Ähnlich-
keit mit dem Subgenus Emilia. dass einige Arten auch als Emilia-Species be-
schrieben wurden. Hier aber entscheidet der Aufbau der Griffelschenkel, die
bei diesen Abteilungen stets am Ende völlig abgestumpft sind und keine Ver-
längerung aufweisen. Jede dieser beiden Gruppen nun zerfällt in verschiedene
Sektionen, die auf makroskopischen, leicht auffindbaren und stets konstanten
Merkmalen beruhen. Bei den Sektionen der mit an der Basis stark verjüngten
Köpfchen versehenen Gruppe sind es vor allem die Rhizom- und Wurzelver-
hältnisse, die vorzügliche Anhalte bieten. Dass zu diesen Unterschieden der
unterirdischen Organe auch noch solche der oberirdischen treten, spricht für
die Einheitlichkeit der Abteilungen in sich. Als erste Sektion treffen wir die
Crassuli, ausgezeichnet durch ihr dickfleischiges Rhizom sowie durch die kleinen
an dünnen Stielen hängenden Blütenköpfchen und die grundständigen, leicht
fleischigen Blätter.

Dicke bis faustgrosse Knollen entwickelt die Sektion der Tuberosi. Die
wenigblütigen, kleinen Köpfchen und die sehr langgestielten, meist nur grund-
ständigen Blätter lassen diese Arten leicht erkennen. Charakteristisch für die
sich hieran anschliessenden Emüianthei sind die dickfleischigen Wurzeln, die
selten mit kleinen Knöllchen besetzt sind. Für Herbarmaterial würde dieser
Unterschied des öftei-en unzureichend sein, doch bilden dann die breitstengel-
umfassenden bis zum Blütenstande reichenden Blätter, zusammen mit den bis
zum Köpfchen gleich starken Pedunculi willkommene Anhaltspunkte. Eng mit
diesen Arten verwandt sind die Angehörigen der Sektion Emilioidei Ihre
meist nur grundständigen Blätter, die unter dem Köpfchen stark angeschwollenen
Pedunculi, unterscheiden diese Species rein äusserlich von den Emüianthei ■
Der wichtigste Unterschied der Emilioidi von den genannten Species liegt aber
in dem Wurzelsystem, das hier nur aus dünnen Faserwurzeln besteht.

Wir gelangen nun zu den Abteilungen der zweiten Hauptp;ruppe der
mit homogamen Köpfchen versehenen Species der Untergattung Eusenecio.
Allen Sektionen sind, wie schon weiter oben ausgeführt wurde, die ziemlieh
grossen, nach der Basis zu nur wenig verschmälerten Köpfchen gemeinsam.
Von ihnen sondern sich zuerst die Coriacei ab, Arten, deren dickledrige, unge-
teilte Blätter zusammen mit den das Involucrum um die Hälfte überragenden
Blüten vorzügliche Bestimmungsmerkmale liefern. Leicht zu unterscheiden
sind hiervon die Oligophylli, deren dünnfleischige, grundständige Blätter sehr
gross sind. Aus dichten Blattrosetten ragen die dünnen Stengel. Die Köpfchen-
stiele sind mit Hochblättern versehen. Ausgezeichnet durch nadeiförmige
Blätter, die den ganzen Stengel bis zum Blütenstande hin bedecken, sind die
Pinifolii.

Die folgende Gruppe zeigt habituell grosse Ähnlichkeit mit der Gattun,
Cineraria. Es sind aber nur die bandförmig genervten Blätter, die diese
scheinbare Übereinstimmung hervorrufen. In Wirklichkeit hat diese Abteilung
der Ciner ariiphylli mit genannter Gattung generiscb nicht das geringste ge-
mein. Die letzte Gruppe der homo^amköpfigen Senecionen Afrikas bilden die

181] Compositae. Igl

Jacobei. meist aus Sträuchen) gebildet, deren fiederteilige oder äusserst schmale
Blätter diese Arten ausgezeichnet charakterisieren.

Wir gelangen nun zu den Senecionen mit heterogamen Köpfchen. Die
erste Hauptgruppierung, die in diesem Chaos aller sich drängenden Formen
vorgenommen werden konnte, war die Einteilung nach der Lebensdauer, erstens
in mehrjährige und zweitens in nur einjährige Arten. Es ist ein auffallendes
Moment, dass die Zahl der mehrjährigen Species die der einjährigen um das
siebenfache übertrifft.

Wenden wir uns zunächst zu den mehrjährigen Vertretern unseres Genus.
Auch hier gelang es wiederum auf Grund der Köpfchenorganisation zwei
Hauptgruppen zu schaffen. Bei den Species der ersten Abteilung finden wir,
ebenso wie bei den homogamköpfigen Senecionen, nur Köpfchen mit einer
einfachen Blütenhülle. Jede leiseste Andeutung eines äusseren Involucrums
fehlt völlig. Nur ein geringer Teil der heterogamen Arten zeigt ein solches
Verhalten. Innerhalb dieser grösseren Abteilung nun konnten wieder die
Kräuter gegenübergestellt werden den rein strauchigen Formen und endlich war
es möglich, auch innerhalb dieser zwei Untergruppen abermals eine Zweiteilung
vorzunehmen, indem man die dickfleischigen, häufig kakteenartigen Kleinioidei,
mit ihren wenigen Blättern und grossen, stets mit Randblüten versehenen
Köpfchen, gegenüberstellte den gewöhnlichen krautartigen, mit spatelt'örmigen.
am Grunde geöhrten Blättern versehenen Spathulati, deren hellgelben Köpfchen
die Randblüten fehlen. Der Unterschied der beiden Sektionen der strauch-
artigen Species liegt in ihrem Wüchse. Die erste Abteilung der Pericallis-
Arten hat nur aufrecht wachsende Vertreter, während die Angehörigen der
Scandentes bis auf zwei Ausnahmen kletternde Pflanzen sind. Die zwei nicht
schlingenden Arten der Scandentes (S. multicor ymbosus und S. Mannii) können
mit der Pm'caM'*-Gruppe nie verwechselt werden, weil sie erstens baumartig
sind und zweitens keine Randblüten entwickeln, durch welches Merkmal sie
sich übrigens auch sofort von den später noch zu besprechenden Arborei unter-
scheiden. — Die zweite Hauptgruppe der heterogamen Senecio- Arten weist
fast stets Blütenköpfe mit äusserem Involucrum auf. Wo in wenigen Fällen
dieses fehlt, ist das innere Involucrum durch Drüsenhaare ausgezeichnet.
Eine weitere Teilung in dieser Gruppft gestatten die Hochblätter. Man kann
sämtliche Arten, deren Köpfchenstiele dicht mit Hochblättern versehen sind,
die langsam in das Involucrum übergehen, gegenüberstellen den Species, bei
denen wir nur ganz vereinzelte, meist aber gar keine Bracteen mehr vorfinden.
Bei der ersten Abteilung ist eine weitere Sonderung möglich in Arten, bei
denen die Hochblätter unmerklich in das äussere Involucrum übergehend, zu-
sammen mit diesen das innere Involucrum dachziegelartig decken, und
solchen, bei denen die Bracteen zwar auch allmählich in das äussere Involucrum
übergehen, bei denen aber dieses selbst niemals den inneren Hüllblattkreis
deckt, sondern nur etwa die Hälfte desselben erreicht. Zur ersten Gruppe ge-
hören die Imbricati, Lanati, Monocephali und Lachmoides, welche sich unter-
einander auf das beste differenzieren durch Wuchs, Behaarung und Blattform.
In der zweiten Gruppe ermöglicht die Behaarung und das völlige Fehlen von
Trichomen an den Involucralblättern eine abermalige Zweiteilung. Glatte
Einzelhüllschuppen haben die Stenophylli. Die mit wollig behaartem Involucrum
versehenen Arten zerfallen in solche mit zum Blütenstande hin abnehmenden
Blättern und solche, deren Blätter bis zur Inflorescenz reichen und sich unter-
halb dieser dicht schopfig stellen. Wir unterscheiden erstere als Crociseris-

182 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik, der Siphonogamen. [182

Arten von den Orientales. — Alle übrigbleibenden mehrjährigen Arten der mit
äusserem Involucrum versehenen heterogamen Senecionen Afrikas weisen #an
den Pedicellis nur ganz vereinzelte, meist gar keine Hochblätter auf. Auf
Grund der verschiedenartigen Behaarung der Involucralblätter kann man hier
drei grössere Gruppen schaffen, von denen die erste völlig kahle Einzel-
schuppen hat, während die der zweiten Abteilung mit seidenhaariger Spitze
versehen sind und endlich die der dritten Gruppe Drüsenhaare aufweisen.
Bei den mit glattem Involucrum versehenen Species tritt eine Teilung in
kraut- und strauchartige und in baumartige Arten ein. Die Species mit
seidenhaariger Spitze der Einzelhüllblätter lassen sich in zwei Sektionen unter-
bringen, deren eine völlig kahle Arten umfasst, deren obere Blätter breit
stengelumfassend sind und deren Köpfchen sich in die Basis verschmäleru, es
sind dies die Trichopterygii. Aus graubehaarten Individuen, deren Köpfchen
breite Basen haben, setzen sich die Oliganthoidei zusammen. Bei den Species
mit drüsig behaarten Involucralblättern bieten die Rhizom- und Wurzel-
verhältnisse tiefgreifende Unterschiede. Zuerst gliedern sich die Rhizomatosi
ab, Kräuter mit mächtigem Rhizom, grundständigen Blättern, die die mittel-
grossen Köpfchen weit überragen. Entgegen diesen entwickeln die beiden
folgenden Gruppen nur dünne Faserwurzeln. Eine Differenzierung zwischen
ihnen bewirkt die verschiedene Länge der äusseren Involucralblätter im Ver-
hältnisse zum inneren Hüllblattkreis. Bei den Viscosi erreicht das äussere
Involucrum stets mindestens drei Fünftel der Länge des inneren, während bei
den Rigidi der äussere Hüllblattkreis nur ein Sechstel des inneren erreicht.

Nach dem vorhergehenden Teile Ausgeführten waren also für die
Gruppierung der Arten folgende Gesichtspunkte die massgebenden:

1. Für die Abgrenzung der Subgenera die Differenzierung der Griffel-
schenkelenden.

2. Für die Aufstellung der grösseren Abteile, denen sich die einzelnen
Sektionen unterordnen, die Organisationen der Köpfchen.

3. Für die Festlegung der Sektionen äussere, leicht vernehmbare habituelle
Merkmale, wie Wurzel, Rhizom, Stengel, Blatt und Hochblatt.

Wir haben also, was den Griffel anbetrifft, mit einer ausgesprochenen
Retrogression zu tun. Anders verhält es sich mit der Köpfchenorganisation.
Hier liegt klar eine ausgesprochene Progression zutage, denn die heterogamen
müssen sich aus den homogamen heraus entwickelt haben. Was die äussere
Gestalt angeht, so müssen sich die Köpfchen mit Aussenkelch später ent-
wickelt haben, als die ohne äusseren Hüllblattkreis, da die ersten Sektionen
der .Ewsenec/o-Untergattung noch Köpfchen ohne jedwedes Ausseninvolucrum
haben.

Die ursprünglichen Senecionen müssen also homogame Köpfchen ohne
Ausseninvolucrum besessen haben. Ihre Blüten wiesen Griffel mit teils
peitschenförmigen, teils eiförmigen Verlängerungen über dem Fegehaarkranz
der Griffelschenkel auf. Während nun der Griffelschenkel sich mehr und mehr
reduzierte, trat im Köpfchen selbst die Differenzierung, die wir als Heterogamie
bezeichnen, allmählich ein. Eine weitere Vervollkommnung erreichten die
Köpfchen dann mit Ausbildung des zweiten äusseren Involucrums, das als
vorzüglicher Blütenschutz zu deuten sein dürfte.

Verf. behandelt dann noch die Verbreitung der Gattung und ihre Arten
in Afrika (vgl. unter „Pflanzengeographie"), gibt eine Übersicht der Sektionen
und Gruppen, die er zuletzt mit Aufzählung der Arten speziell charakterisiert.

1831 Compositae. 183

1105. Nemec, B. Einige Regenerationsversuche an Taraxacum-
Wurzeln. (Wiesner-Festschr., Wien 1908, p. 207—215.)

Siehe im „Physiologischen Teile" des Just.

1106. Omang, S. 0. F. Beiträge zur Kenntnis der südnorwegischen
Oreadea. (Nyt. Mag. Naturw., XLVI, 1908, p. 381—432.) N. A.

Betrifft die Formen, die sich um Hieracium Schmidtii Tausch., crinigerum
Fries, argenteum Fr., rosulatum Lbg., saxifragum Fr., oreades Fr., farinosum (Lbg.),
Lindenbergii Nym., rufescens Fr. und norvegicum Fr. gliedern.

1107. Pampanini, R. La Stokesia cyanea L'Herit. (Bullettino Soc. tose.
Orticolt., XXXIII, Firenze 1908. p. 198—200, 8°.)

Ref. nicht eingegangen.

1108. Pampanini, R. Una specie ed una varietä nuove di Tithonia
Desf. (Bull. Soc. Bot. Ital., 1908, p. 132—134.)

Ref. nicht eingegangen.

1109. Pax, F. Die Archhieracien der Zentralalpen. (Jahresb.
Schles. Ges., LXXXVI, 1908, Zool.-Bot. Sekt., p. 30—39.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1110. Payne, C. Harnian. The pictorial history of the Chrysanthemum.
(Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908, p. 344—345)

Interessante Darlegungen über Werke, die Abbildungen von Chrysan-
themen enthalten.

1111. Petrak, Fr. Cirsii generis hybridae et varietates novae,
(Rep. nov. spec, V, 1908, p. 329—333.) N. A.

1112. Raciborski, M. Coreopsis tinetoria var. prolifica: eine unzweck-
mässige Mutation. (Wiesner-Festschr., Wien 1908, p. 417 — 420.)

Siehe „Variation, Descendenz usw.".

1113. Ross, H. Der anatomische Bau der mexikanischen Kaut-
schukpflanze „Guayule", Parthenium argentatwn Gray. (ßer. D. Bot. Ges.,
XXVI a, 1908, p. 248—263, 7 Fig.)

Siehe „Anatomie".

1114. Russell, W. Sur Fappetence chimique de 1' Relianthemum
vulgare Gaertn. (Bull. Soc. Bot. France, hV, 1908, p. 22—25.)

Diese Art wächst auf verschiedenartigem Untergrund, zieht aber im
allgemeinen Kalk vor.

1115. Sagovski, E. Die Formen der Artemisia salina Willd. am Sool-
graben bei Artern nebst einigen ungarischen Formen. (Mitt. Thür.
Bot. Ver., XXIII, 1908, p. 61—90.) N. A.

Verf. gruppiert den Formenkreis der A. salina W. wie folgt:
Subspec. I. patens Neilr.

1. var. coaretata Wahr, erweitert mit 1. subvar. hypoclados m. [mit den
Formen 1. f. rubriflora m., 2. f. flaviflora m.] und 2. subv. oligoclados m.

2. var. breviramosa m. mit 1. subv. salinaeformis m. 1. f. raldebracteosa m. mit
subf. refraeta m., 2. f. brevibracteosa m. mit a) subf. pallescens m. und
b) subf. canescens m. Zu letzterer noch wieder Unterformen rosea m.
und rubra m., 2. subv. germanica Wahr. 1. f. viridescens m. mit subf.
distorta in. 2. f. albescens m. mit a) subf. flava m., b) subf. luteo-rosea
m. und c) subf. rubieunda m. Zu letzterer wiederum noch Unterform
seeunda m.

184 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [184

3. var. pycnocephala m. mit 1. subv. salinoiäes m. [mit 1. f. erassiramea m.r
2. f. tenuiramea, 3. f. graciliformis m., 4. f. diversißora m.] und 2. subv.
penduliramen m. [1. f. canovirescens m. mit den Unterformen flavo-pur-
purea, pallidiflora und sanguinea und 2. f. incanescens m. mit /Wm und

4. var. oligantha Wallr. p. p. 1. subv. brevipedunculata m. mit 1. f. rubella
m. [mit subf. rectiramosa und elevato-ramosa], 2. f. expalleas m. [mit subf.
gracilescens, elevans und gracillima, zu letzterer noch Unterform Mniver/onsJ
und 2. subv. longipedunculata m. [mit 1. f. typica und 2. f. flagellaris].

5. var. eyfifsa Wallr. p. p. mit 1. subv. fenuifolia Wallr. p. p. [mit 1. f. pseudo>-
nutans m., 2. subgracilis m., 3. curvata m., 4. suberecto-ramosa m., 5. ancylo-
clados m., 6. erectiascula m.] und 2. subv. rosmarinifolia Wallr. p. p. [mit

1. f. campylocarpa m. und 2. f. adunca m.].
Subspec. IL monogyna (W. et K.)

1. var. axillaris Wallr. mit 1. subv. crassa m. [mit 1. f. subpurpurea m. und

2. f. subchrysantha m.] und 2. subv. gracilior m. [mit 1. f. subroseiflora m.,
2. subrubra und 3. grandifolia].

2. var. brachyclados m. 1. subvar. panicidata Wallr. mit 1. f. crassifolia m.
[mit subf. a) subpurpurascens und b) auriflora] und 2. f. diversifolia m. [mit
subf. a. erythroides und b. rosantha), 2. subv. sessiliflora Wallr. p. p., mit
1. f. grisea, 2. f. subcalvans, 3. f. decalvans und 4. f. subsanguinea.

3. var. Kitaibelii m. mit 1. subv. gracilis Wallr., 2. subv. robusta Wallr. [mit
1. f. erythrochroa, 2. f. chrysochroa, 3. f. luteola, 4. f. serotina, 5. f. Zöüci-
capitellata\ und 3. subv. siibrosmarinifolia m.

4. var. suboligantha m.

5. var. diffusa m. mit den subv. 1 . filiformis m., 2. glomeridans m., 3. patenti-
formis m. und 4. longiracemulosa m.

1116. Schulze, Erwin. Symbolae ad Floram Hercynicum. 4. Zur
Geschichte der ^.s/er salignus Willd. (Zeitschr. Naturw. Halle, LXXXr
1908, p. 374—377.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1117. Smith, Thomas. Olearia stellulata as a Rockgarden shrub. (Gard.
Chrom, 3. ser., XLIV, 1908, p. 261—262, fig. 115.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1118. Stadimann, Josef. Beiträge zur Kenntnis der Gattung Crepis.
(Östr. Bot. Zeitschr., LVIII, 1908, p. 422-426, Tab. XL) N. A.

Betrifft Crepis Blavii und deren Bastard mit chondrilloides Jacq. = XC-
Malyi Stadlm.

1119. Thellung, A. Zur Nomenclatur und Synonymie von Xanthium
Orientale L. und X. echinatum Murr., sowie Brassica juncea (L.) Cosson.
(Verh. Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. 137—159.) \. A.

Die Details über Xanthium wolle man im Original nachlesen.

Bei Brassica juncea gibt Verf. eine Gliederung in

subsp. I. eu-juncea Thell. mit var. brachycarpa Thell. n. var.

subsp. IL integrifolia (West) Thell.

subsp. (?) III. Urbaniana (O. E. Schulz) Thell.

1120. Tnnmann, 0. Über Zwillingsköpfchen von Spilanthes oleracea
Jacq. und über die wirksamen Bestandteile dieser Pflanze. (Apo-
theker-Ztg., 1908, No. 105, 6 pp., 1 Fig.)

Siehe „Anatomie".

185] Compositae. Connaraceae. Convolvulaceae. Ig5_

1121. Tunmann, 0. Mikroskopisch-pharmacognostische Beiträge
zur Kenntnis einiger neuerer Arzneidrogen. (Pharmac. Zentralh.,
1908, p. -157—465, Fig. 1—9.)

Betrifft: Grindelia robusta-

1122. Vigier, A. Comment obtenir des graines de Daldia Cactus.
(Rev. Hortic, LXXX, 190P. p. 568—570, fig 218-221.)

Gärtnerisches.

1123. WheHlon, J. A. The Scape of Taraxacum. (Journ. of Bot, XLVI,
1908, p. 171.)

Kurze ergänzende Notiz zu No. 1056.

1124. Zahn, Karl Hermann. Beiträge zur Kenntnis der Hieracien
Ungarns und der Balkanländer. (Ungar. Bot. Blätter, VII, 1908, p. 113
bis 128.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie von Europa".

1125. Zahn. K. H. ffieracw nouveaux ou moins connus de l'Herbier
du Jardin botani^ue de Tiflis. (Monit. Jard. bot. Tiflis, 1908, p. 11—20.)

N. A.

Siehe „Pflanzengeographie" und Fedde, Rep. nov. spec.

Connaraceae.

Neue Tafel:

Connarus Smeathmannii DC. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 67.

1126. Britton, Xathaniel Lord. Connaraceae in North American Flora,
XXII, 1908, 3, p. 233-236. N. A. '

Umfasst die Gattungen Rourea mit 3, Connarus mit 5 und Cnestidium
mit einer Art.

1127. Leoomte. H. Connaracees indo-chinoises de l'Herbier du
Museum. (Bull. Soc. Bot. France. LV, 1908, p. 82—84. N. A.

Betrifft: Connarus tonkinensis sp. n.

Convolvulaceae.

Neue Tafeln:

Exogonhtm arenarium Choisy in Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908, pl. 2, fig. d,

E. cubense House in Bull. 1. c, pl. 2, fig. b.

E. Eggersii House 1. c, fig. a.

E. luteum House 1. c., fig. c.

E. Rudolphii (R. et Seh.) House 1. c, pl. 1, fig. a.

E. racemosum (Poir.) Choisy, 1. c, pl. 1, fig. c.

E. velutifolium House 1. c, fig. b.

E. Wrightii House 1. c, fig. d.

Jacquemontia capitata Don in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 132.

1128. Hemsley, W. Botting. The History of three casual dodders.
(Journ. of Bot, 1908, XLVI, p. 241—247, pl. 493.)

Beschreibung, Synonymie usw. von Cuscuta suaveolens Ser., C. Tinei
Inseni;a und C. Gronovii Willd.

1129. Honse, H. D. The North American species of the genus
Ipomoea. (Ann. New York Ac. Sc, VIII, 1908, p. 181—263.) N. A.

Verf. beschreibt im ganzen 175 Arten, die sich in drei Sektionen und
19 Subsektionen gliedern. Vgl. „Pflanzengeographie" und „Index nov. spec.",.
sowie Fedde, Rep. nov. spec.

1^6 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [186

1130. House, Homer Doliver. Studies in the North American Con-
volvulaceae. IV. The genus Exogonium. (Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908,
p. 97—107, pl. 1—2.) N. A.

Tafeln siehe am Kopfe der Familie. Kurze Beschreibung der Arten und
Jiestimmungsschlüssel.

1131. House, Homer D. Two Bahamian species of Evolvulus. (Bull.
Torr. Bot. Club, XXXV, 1908, p. 88-89.) N. A.

Betrifft E. bahamensis und E- Braeei.

1132. Honse, Homer Doliver. Synopsis of the californian species
of Convolvulus- (Muhlenbergia, IV, 1908, p. 49 — 5(3.) N. A.

Verf. gibt einen Bestimmungsschlüssel.

1133. Inglese, E. La Cuscuta del Tabacco (in Nuovi Annali dAgric-
•siciliana fasc. I) Palermo 1908.

Nicht gesehen.

1134. Peglion, V. Intorno alla Ctiscuta Gronovii Wild. (Atti r. Acc.
Lincei, XVII, 1908. p. 343—346.)

Ref. noch nicht eingegangen.

1135. Peters, C. Vergleichende Untersuchungen über die Aus-
bildung der sexuellen Reproduktionsorgane bei Convolvulus und
Cuscuta. (Diss. Zürich 1908, 8°, 66 pp., 2 Taf.)

Die Bildungsweise und Struktur der Sexualorgane sind ganz ähnlich
bei Convolvulus und Cuscuta- Der Unterschied zwischen beiden liegt in der
Ausbildung der Antherenwand; bei Cuscuta gibt es nur eine einzige Zellschicht
anstatt deren zwei; vielleicht ist dies ein Effekt der parasitischen Lebensweise.

Die Übereinstimmung in allen wichtigen Punkten der Struktur und Ent-
wickelung der Reproduktionsorgane bei beiden Pflanzen der gleichen Familie,
aber von so ganz verschiedener Lebensweise, eine autotrop, die andere para-
sitisch, spricht zugunsten der von Goebel geäusserten Ansicht, dass die Be-
ziehungen zwischen der Lebensart der Pflanzen und der Struktur der Sexual-
organe noch dunkel sind und dass die Lebensweise keine correlative Trans-
formation der Sexualorgane nach sich zieht.

Die Verschiedenheit der Organisation macht sich hier in den Vegetations-
■organen bemerkbar; bei Cuscuta fehlen bekanntlich die Cotyledonen und die
Wurzel ist reduziert.

Nach Boubier in Bot. Centrbl., CXIII, p. 115.

1136. Pilger, R. Convolvulaceae africanae. (Engl. Bot. Jahrb., XLI, 1908,
p. 293-297.) N. A.

Neue Arten von Seddera, Prevostea, Convolvulus, Merremia, Ipomoea.
1136a. Power, F. B. and Rogerson, H. Chemical examinatum of
Ipomoea purpurea. (Amer. Journ. Pharm., LXXX, 1908, 251 — 286.)
Siehe „Chemische Physiologie".

1137. Rendle, A. B. Notes on African Convolvulaceae. III. (Journ. of
Bot., XLVI, 1908, p. 177—184.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

Coriariaceae.

Cornaceae.

1138. Dode, L. A. ~Les Davidia, (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 405-407.)

N. A.

1871 Üoriariaceae. Cornaceae. Corynocarpaceae. Crassulaoeae. 187

Verf. bespricht D. involncrata und stellt fest, dass die in Kulturen ver-
breitete Form als neue Art (D. Vilmormiana) anzusehen ist. Er unterscheidet
noch eine dieser sehr nahestehende D. laeta.

1139. Stockton, E. and Eldredge, C. G. The fruit of the Caulophyllum
thalictroidcs and Cornus sericea. (Chem. News, HC, 1908, p. 190—191.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1140. Vilmorin, L. de. Sur un fruit de Davidia. (Bull. Soc. Bot. France,
LV, 1908, p. 640—641.)

1141. Wangerin, W. Cornaceae novae. II. (Rep. spec. nov., VI, 1908,
p. 97— 102.) N. A.

Originaldiagnosen von Cornus- Arten.

Corynocarpaceae.

1142. Roccbetti, Bice. II Corynocarpus laevigata Forst, e le sue affinitä
naturali. (Bollet. R. Orto botan. e Giard. coloniale, Palermo, 1907, VI, p. 137
bis 141.)

Zu Palermo wächst, im Freien, unter jüngeren Exemplaren, ein mindestens
40 jähriger Baum von Corynocarpus laevigata Forst., aus Neuseeland, welcher
alljährlich Früchte und reife Samen trägt.

Das Studium der Pflanze, insbesondere die zu einem Organe ver-
wachsenen Nebenblätter (wie bei Bergenia und Melianthus), die Gegenwart von
ansehnlichen Hydathoden auf den Blättern, das Vorkommen von zungen-
förmigen, mit je zwei Drüsen versehenen Interstaminalanhängseln in den
Blüten lassen die Pflanze — als Vertreterin einer eigenen Familie (Engler
1897) — in die Nähe der Meliantheen bringen und einen Übergang von
dieser zur Familie der Saxifragaceen darstellen. So IIa.

Crassulaceae.

Neue Tafeln:
Kalanchoe laciniata DO in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 60.
Mesembrianthemum Pillansii Kensit in Wildeman, PI. novae Hort. Then., II,

1908, tab. LVII.

1143. Anonym. Oliveranthus elegans. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908,
p. 274, Fig. 119.)

Die Abbildung zeigt einen blühenden Trieb und Details.

1144. Fitzherbert, S. W. Sempervivum holochrysum. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIV, 1908, p. 62, fig. 24.)

Die Abbildung zeigt schon blühende Pflanzen.

114."). Geröme, J. Crassula Schmidtii. (Rev. Horticole, LXXX, 1908,
p, 54—55, fig. 19—20.)

Die Figuren zeigen eine blühende Pflanze und einen Blütenzweig.

1146. Harnet, R. Crassula Mariae sp. nova. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser.,
VIII, 1908, p. 715—717.) N. A.

1147. Harnet, R. Kalanchoe Luciae n. sp. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser.,
VIII, 1908, p. 254—257.) N. A.

Die Pflanze gehört einer neuen Gruppe an (vgl. Ref. unten), die Verf.
als Gruppe 14 bezeichnet und wie folgt charakterisiert.

Pflanze kahl, Blätter gegenständig, Kelch mit deltoiden die Röhre ein
wenig überragenden Abschnitten. Corolle mit oblong-linearen Segmenten, die
«in wenig kürzer als die Röhre sind. Staubblätter unter der Mitte der Corollen-

188 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [188

röhre inseriert. Carpelle verwachsen, in Griffel, die kürzer als sie sind, zu-
gespitzt. Schuppen viereckig-keilförmig, leicht dreilappig, medianer Lappen
viel breiter als die seitlichen, gekerbt, selten ganzrandig, seitliche Lappen
stets ganzrandig. Heimat Transvaal.

1148. Hamet, Raymond. Monographie du genre Kälanchoe (suite et
fin). (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 17—48.) N. A.

Sehr eingehende Behandlung der Arten und Formen. Die Gliederung
derselben wird aus folgender Gruppierung ersichtlich:

Gruppe I. Pflanzen kahl, Blätter gekerbt. Kelchsegmente der Röhre
gleichlang oder ein wenig länger, dreieckig oder halbrundlich. Corollen-
segmente viel kürzer als Röhre, eirundlich oder halbrundlich. Staubfäden über
der Mitte der Corollenröhre inseriert. Carpelle divergierend, in Griffel ver-
schmälert, die länger als sie oder ihnen gleichlang sind. Schuppen halbrund-
lich oder fast quadratisch leicht ausgerandet. — Neun Arten in Zentral- Madagaskar :
K. amplexicaulis, campanulata, gracilipes, panduriformis, parviflora, peltata, phor-
phyrocalyx ?, schizophylla ?, und gulphurea ?.

Gruppe IL Pflanze kahl, Blätter ganzrandig. Kelchsegmente dreieckig,
ein wenig länger als Röhre. Corollensegmente oboval-oblong, länger als Röhre.
Staubfäden unter der Corollenröhrenmitte inseriert. Carpelle zusammen-
hängend, ein Griffel verlängert, die kürzer als sie sind. Schuppen linear,
leicht ausgerandet. — Nur K. integrifolia in Zentral-Madagaskar.

Gruppe III. Pflanze kahl, Blätter nur in oberer Hälfte gekerbt. Kelch-
segmente länger als Röhre, dreieckig. Corollenabschnitte oboval, länger als
Röhre. Sonst wie Gruppe II. — Nur K. pumila aus Zentral-Madagaskar.

Gruppe IV. Wie Gruppe III, aber Kelchsegmente kürzer als Röhre,
dreieckig-halbrundlich. Corollensegmente kürzer als Röhre, eirundlich. — Nur
K. synsepala aus Zentral-Madagaskar.

Gruppe V. Pflanze kahl, Blätter gekerbt. Kelchsegmente länger als
Röhre, eioblong. Corollensegmente kürzer als Röhre, halbrundlich. Stamina
unter der Mitte der Corollenröhre inseriert. Carpelle verbunden, im Stiele ver-
schmälert, die länger als sie sind. Schuppen halbrundlich, leicht ausgerandet.
— Nur K. Adelae von Madagaskar.

Gruppe VI. Pflanze an Basis mit einfachen Haaren bedeckt, Blätter
kahl, gesägt. Kelchsegmente kürzer als Röhre, dreieckig. Corollensegmente
kürzer als Röhre, oblong-rundlich. Stamina über der Mitte der Röhre inseriert.
Carpelle wie bei V. Schuppen linear, leicht ausgerandet. — Nur R. trichantha
von Zentral-Madagaskar.

Gruppe VII. Wie vorige, aber Blätter gekerbt, Kelchsegmente ein
wenig länger als Röhre, Corollensegmente oblong, Carpelle dem Griffel fast
gleichlang, Schuppen fast viereckig, tief ausgerandet. — Nur K. pubescens
ebendaher.

Gruppe VIII. Pflanzen mit Haaren, die an der Basis einfach
und dann unter der Mitte in drei spitze Zweige geteilt sind, Blätter ganz-
randig oder sehr leicht gekerbt. Kelchsegmente länger als Röhre, eiförmig
oder dreieckig. Corollensegmente kürzer als Röhre oder dieser gleichlang,
oblong, eirundlich oder halbrundlich. Stamina ein wenig unter der Mitte der
Röhre inseriert. Carpelle verbunden, in Griffel verschmälert, die kürzer als
sie sind. Schuppen linear oder halbkreisrund, leicht oder nie ausgerandet. —
Drei Arten aus Madagaskar: zwei zentrale K. eriophylla und tomentosa und eine
südliche, K- beharensis-

189] Crassulaceae. Crossosomataceae. Cruciferae. Jg9

Gruppe IX. Pflanzen kahl, Blätter ganzrandig, gekerbt oder fieder-
schnittig. Kelchsegmente ein wenig länger (selten kürzer) als Röhre, dreieckig
oder halbkreisrund. Corollensegmente kürzer (selten länger) als Röhre, fast
rundlich oder dreieckig. Stamina wie Gruppe VIII. Carpelle ebenso, aber
Griffel länger. Schuppen ebenso, doch nur leicht ausgerandet. — Neun Arten;
vier aus Zentral-Madagaskar: K. miniata, prolifera, streptantha et Tieghemi; drei
aus Süd-Madagaskar: K. Beawoerdi, K- Costantini, K. rerticülata; eine von den
grossen Comoren: K. floribunda, endlich eine aus allen tropischen Welt-
regionen: K. pinnata.

Gruppe X. Pflanzen kahl, Blätter ganzrandig. Kelchsegmente so lang
oder länger als Röhre, halbrundlich oder lanzettlich. Corollensegmente kürzer
als Röhre, eirundlich. Stamina über der Mitte der Corollenröhre inseriert.
Carpelle verbunden, Griffel kürzer als sie. Schuppen halbkreisförmig oder fast
viereckig, ganzrandig. leicht oder tief ausgerandet. Sieben Arten aus Mada-
gaskar: fünf aus der südlichen Region: K. antanosiana, bracteata, Grandidieri,
linearifolia, Nadyae; zwei aus der zentralen Region: K. Hildebrandtii und
oryyalis.

Gruppe XL Pflanze kahl. Blätter ganzrandig. Kelchsegmente lärjger
als Röhre, dreieckig. Corollensegmente kürzer als Röhre, oblong-ligulär.
Stamina ein wenig über der Corollenmitte inseriert. Carpelle verbunden,
Griffel ein wenig länger als sie. Schuppen halbkreisrund, ganzrandig. — Nur
eine Art von Socotra: K. abrupta.

Gruppe XII. Wie vorige, aber: Kelchsegmente ein wenig kürzer als
Röhre, Griffel kürzer als Carpelle. Schuppen lineal, leicht ausgerandet. — Eine
Art von Socotra und Angola: K. farinacea.

Gruppe XIII. Pflanzen kahl oder an Basis mit einfachen Haaren, Blätter
gekerbt (selten ganzrandig oder fiederschnittig). Kelchsegmente länger als
Röhre (selten gleichlang). Corollensegmente kürzer als Röhre, eiförmig oder
halbkreisrund. Sonst wie Gruppe XII. — Hierher 18 Arten; 12 vom kontinen-
talen Afrika: K. Baumii, brachyloba, hirta, longiflora, marmorata, oblongifolia.
Pentheri, platysepala, Quartiniana. Schimperiana, thyrsiflora, velutina; eine eben-
daher und von Socotra: K. rotundifolia: zwei aus dem kontinentalen Afrika
und von Yemen: K. citrina, lanceolata: eine aus Tropisch-Arabien : K. tereti-
folia: eine aus dem kontinentalen Afrika und Indien: K. yrandiflora: eine
aus dem kontinentalen Afrika und den tropischen Regionen von Asien,
Ozeanien und Amerika: K. laciniata.

1149. Hamet. Raymond. Crassulacees nou\elles. (Bull. Soc. Bot
France, LV, 1908, p. 710—714.) N. A.

Neue Crassula und Sedum.

1150. Othmer, B. Crassula. (Gartenwelt, XIII. 1908, p. 69—70, 2 Fig.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen von C. Schmidtii Rgl. und

C. Bolusii Hk. f.

Crossosomataceae.

1151. Small, John Kunkel. Crossosomataceae in North American Flora,
XXII. pt. 8, 1908, p. 231—232. N. A.

Nur die Gattung Crossosoma mit vier Arten, eine davon neu.

Cruciferae.

Neue Tafeln:

Alyssnm ephesivm Bornm. in Mitt. Thür. Bot. Ver., V, XXIV, 1908, tab. fig. 1.
^4. saxatile L., 1. c, fig. 2.-

190 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [190

Draba Pringlei Rose in Karst, et Scheuch, Vegetationsb., V, 1908, tab. 51 B

(Habitus).
Heliophila amplexicaalis L. f. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 54.
Iberis carica Bornm. in Mitt. Thür. Bot. Ver., V, XXIV, 1908, tab., fig. 6.
Sisymbrium flexicaide Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 2, fig. 1, tab. 7,

fig. 26—28.

1152. Bailey, W. W. A true March flower [Draba verna]. (Amer.
Bot., XIII, 1908, p. 101—103.)

Nicht gesehen.

1153. Bauillgartner, J. Die ausdauernden Arten aus der Gattung
Alyssum. II. Teil. (Beil. zum 35. Jahresbericht des n.-ö. Landeslehrerseminars
in Wiener Neustadt, 1908, 58 pp.)

Vgl. das Bef. No. 1088 in Just 1907.

1154. Beguinot, A. Sulla eteromericarpia della Cakile maritima.
(Bull. Soc. Bot. It., p. 23—25, Firenze 1908.)

Exemplare von Cakile maritima am Lido von Venedig zeigten sich, im
Februar, mit abgefallenem Schnabelfortsatz und klaffenden Hälften des unteren
Gliedes der Frucht; die Samen waren ausgefallen. Nur sterile Früchtchen
waren geschlossen. Auch im Oktober vorgefundene Früchte waren schnabel-
los und mit einer feinen Spalte längs der Dehiscenzlinie.

Die im Juli und Oktober eingeheimsten Samen, im Warmhause anfangs
November zum Keimen ausgelegt, begannen erst im Februar sich zu ent-
wickeln, die im Februar gesammelten und ausgelegten Samen keimten dagegen
schon nach 20 Tagen. — Da die Samen auf der Pflanze schon im Juni — Juli
reif (? Ref.!) sind, die Früchtchen aber noch weitere acht Monate an den
Stengeln verblieben, so dürften die letzteren weniger der Ausstreuung als
vielmehr dem Schutze der Samen gegen die Unbilden der Witterung dienen.

Solla.

1155. Bootlle, L. A. On the occurrence of different types of
Hair in the Wallflower [Cheiranthus]. (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 714
bis 716, 1 fig.)

Von dieser Pflanze sind bisher nur zweiarmige (malpighian) Haare be-
schrieben worden, doch treten nach Verf. an den Cotyledonen auch andere,
drei- bis vier- bis sechsarmige auf, die er näher schildert. Er zeigt auch, dass
die Art des Bodens augenscheinlich die Zahl und Verteilung der dreiarmigen
Haare beeinflusst. Das Auftreten dieser mehrarmigen Haare ist als ein ancestraler
Charakter anzusehen, der in den ersten Stadien der Ontogenie sich bewahrt hat.

1156. Borzi, A. Note sulla biologia della dissemmazione di
alcune Crocifere. (Bull. Soc. bot. ital., 1808, p. 106-113.)

Siehe im blütenbiologischen Teile des Just.

1157. Briem, H. Natürliche Bastardierungen zwischen Zucker-
rüben und Futterrüben. (Östr.-Ung. Zeitschr. Zuckerind. u. Landwirtsch.,
1908, 34 pp.)

Siehe im descendenztheoretischen Teile des Just und unter Agrikultur.

1158. Barkill, J. H. Anguillicarpits, genus novum Crucif erarum.
(Rep. spec. nov., V, 1908, p. 250-251.

Ex: Journ. a. Proc. As. Soc. Bengal, N. S., IH, 1907, No. 8, p. 559—561.

1159. Basch, N. Arabis sect. nov. Alliariopsis. (Rep. spec. nov., VII,
1908, p. 39-40.)

Ex: Mon. Jard. Bot. Tiflis, Livr. 6, 1906, p. 1—23.

191] Cruciferae. 191

1160. Busch, N. Über eine neue Art der Gattung Peltaria Jacq.
im Kaukasus. (Monit. Jard. bot. Tiflis, 1908, p. 3— 16. Russisch u. deutsch.)

1161. Calestani, Vittorio. Sulla classificazione della crocifere
italiane. 1» Contribution. (Nuov. Giorn Bot. It., XV, 1908, p. 355—390.)

X. A.

Bei der grossen Veränderlichkeit der Merkmale der Kreuzblütler, infolge-
dessen bei der geringen Stabilität derselben für die Systematik, glaubt Verf.
in der Anatomie der Cruciferenfrucht eine festere Grundlage für die Gruppie-
rung der Gattungen gefunden zu haben. Die vorliegenden Untersuchungen
bleiben auf die Siliquosen und auf einen grossen Teil der Lomentaceen der
Flora Italiens beschränkt.

Die Schotenklappen besitzen eine äussere Oberhaut, das von den Strängen
durchzogene Mesocarp, eine Faserschichte und die innere Epidermis. Die
äussere Oberhaut, gewöhnlich glatt, zeigt Papillenbildung bei Nasturtium asperum,.
Matthiola, Trichome bei Malcolmia, Cheiranthus, Draba usw., eine schleim-
führende Cuticula bei Erucastrum, Arabis cebennensis. Das Mesocarp besteht
aus einer äusseren Reihe chlorophyJlführender Zellen und einem inneren
schwammigen Gewebe mit dünnen unverholzten Zellwänden. Zuweilen ver-
holzen aber die Zellwände und erscheinen getüpfelt, das Gewebe schliesst
dichter zusammen und Verf. nennt es brassikoid, da es für die Brassica- Arten
typisch, in verschiedener Entwickelung auch bei Hirschfeidia und Erucastrum
auftreten kann.

Das Strangsystem besteht aus einem primären und zwei lateralen Bündeln,
häufig durch Anastomosen miteinander verbunden (bei Cardamine und Dentaria
nur undeutlich). Die Ausbildung der Holzfasern des "Weichbastes und der
Bastfasern ist nicht immer die gleiche: vielmehr hängt von dem stärkeren
Hervortreten derselben die Kantigkeit der Frucht ab. Die innere Faserschicht
der Frucht ist gleichfalls von verschiedener Ausbildung: sind die Fasern ver-
tikal stark entwickelt, dann sind die Klappen sehr fest (Sisymbrium strictissimum) ;
in grosser Menge sind die Fasern bei Matthiola vorhanden; bei Arabis zeigen
sich verschiedene Übergänge. Am Rande bildet diese Schichte eine eigene
seitliche Zone, welche bei Erysimum und Alliaria fehlt, bei Sinapis und
Eruca dagegen mächtig entwickelt ist. Bei Farsetia und Alyssum gesellen
sich dazu auch noch quergestellte Fasern in kontinuierlicher oder in unter-
brochener Reihenfolge. Bei Cardamine und Dentaria sind die Innenwände
dieser Fasern stark verdickt und verholzt, die Aussenwände dagegen häutig
und aus reiner Zellulose. Cardamine bellidifolia zeigt diesbezüglich ein anderes
mit Arabis übereinstimmendes Verhalten, zu welcher Gattung auch die Pflanze
zu ziehen wäre. Die innere Epidermis bietet keine besonderen Merkmale dar;
sie besitzt zuweilen stark verdickte Zellwände (Braya) oder verholzte (Sisym-
brium officinale), oder Haare (Alyssum).

Die mittlere Zone des Replums besteht gewöhnlich aus zwei an der
Innenfläche verbundenen Hautgeweben, deren Elemente sehr verschieden ver-
dickte Wände besitzen und manchmal durch sekundäre Wände horizontal
(viele Cheirantheae, Brassiceae) oder vertikal (Alysseae) geteilt sind. Bei vielen
Cruciferen findet sich in der Mitte des Replums ein Faserbündel oder mehrere
vor, bei Matthiola ein Gefässstrang. Diese Einzelheiten haben nur spezifische
Bedeutung und lassen sich nur selten zur Begrenzung der Gattungen (Prantl)
verwerten, weil sie sehr inkonstant sind. Bei Hesperis biegen sich die Lamellen
der Scheidewand zwischen den einzelnen Samen übereinander, während deren

192 V. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [192

Zellwände verholzen; bei Cardamine und Dentaria behält das Replum einen
reichen Inhalt an Chlorophyll in den Zellen nahezu bis zur vollen Fruchtreife.

Der Griffel ist im Innern nicht hohl (entgegen Fournier) und wird von
einem Bündel durchzogen; der Zwischenraum zwischen diesem und dem äusseren
Gewebe wird von einem Geflechte von Lamellen durchsetzt: nahe der Spitze
schliessen diese dichter zusammen, so dass der Griffel voll ist. Der Frucht-
schnabel ist (nach Verf.) der Scheitelteil des Fruchtknotens, welcher für sich
zurückbleibt, da die Klappen nur den unteren und mittleren Teil dieses Organs
einnehmen.

Die Narbe wechselt bei den Cruciferen sehr stark; sind deren Variationen
deutlich, dann geben sie ein gutes Differenzierungsmerkmal für die Gat-
tungen ab.

Die Cruciferen mit Gliederschote (Raphaneae DO.) nähern sich sehr stark
den Brassiceen. Die Frucht besitzt nur einen äusserst reduzierten Klappen-
teil, bei exotischen Arten findet man deutliche Übergänge von der Schote
zum Lomentum. Morisia hat eine unvollständig gegliederte Frucht, wTiewohl
sich diese sehr leicht in zwei Hälften trennt. Die Fasernschicht in der Wand
ist vollkommen ausgebildet.

Über den Samen berichtet Verf. im allgemeinen kaum wesentliches.

Bei seiner entworfenen systematischen Gliederung der Familie vermag
Verf. keinem der Merkmale einen absoluten Wert zuzuerkennen; mit Rücksicht
jedoch auf Correlation und Übereinstimmung der Charaktere geht er von den
folgenden Gesichtspunkten aus: Umbiegung des Embryo, Nektarien, Bau der
Fasern und der Frucht; in zweiter Linie: Anatomie der Fruchtklappen mit
besonderer Berücksichtigung der Fasern, des mittleren Stranges, der Samen-
pölsterchen, des Schnabels, der Samenschale, Narbenform, Staubgefässe. Neben-
sächlich werden noch die genauere Form der Frucht, die Scheidewand, die
Blumenkrone und der Kelch berücksichtigt.

Denigemäss teilt Verf. die siliquosen Cruciferen ein:

I. Erysimeae Cal. (non alior.). Nektarien typisch mit Nektarleisten ver-
bunden, Narbe kopfig, schwach gelappt oder mit vorspringenden Lappen;
Klappen mit vollständigen Fasern, Cotjden flach.

A. Arabideae, Embryo seitenwurzelig: 1. Arabis L. (emend), 2. Enxena Cal.
n. gen. (= Arabis cebennensis), 3. Barbarea R. Br.

B. Sisyuibriae, Embryo rückenwurzelig: 4. Sisymbrium L. emend., 5. Kibera
Adans. emend.. 6. Arabidopsis Heyn., 7. Erysimum L. emend., 8. Alliaria
Adans.

II. Cardamineae Bayer. Honigdrüsen frei oder verbunden, veränderlich
^Narbe kopiig oder kaum gelappt, Fruchtfasern am Rücken unvollständig, Frucht
■elastisch aufspringend, Cotylen flach oder gefaltet.

9. Cardamine L., 10. Dentaria L.

III. Clieiranlheae Villan. emend., Honigdrüsen frei, nur an den kürzeren
Staubgefässen, Narbe mit vorspringenden placentären Lappen, Frucht mit voll-
ständigen Fasern, Cotylen flach oder ungefähr.

11. Cheiranthus L. emend. R. Br., 12. Matthiola R. Br., 13. Malcolmia
R. Br., 14. Hesperis L. emend. R. Br., 15. Conringia Heist.

IV. Brassioeae Bayer emend., Honigdrüsen frei, zwei ausserhalb der
längeren Staubgefässe am Grunde, eine auf der Innenseite eines jeden der
kürzeren Staubgefässe am Grunde, Narbe veränderlich, Frucht mit vollständigen
•oder ohne Fasern, Cotylen der Länge nach entzwei gefaltet.

193| Cruciferae. 193

A. Eruceae. Frucht eine Schote: 16. Melanosinapis Schimp. Spenn. emend.,
17. Diplotaxis D(J. emend., 18. Erucastrum Schimp. Spenn. emend., 19.
Brassica L. emend., 20. Hirschfeidia Mnch., 21. Moricandia DC, 22. Sinapis
L. emend. Cas., 23. Ernea Adans.

B. Velleae. Frucht ein Schötchen: 24. Carrichtera Adans., 25. Succotvia L.

C. Morisieae. Frucht eine zur Hälfte gegliederte Schote: 26. Morisia Gay.

D. Raplianeae. Frucht nicht aufspringend oder Gliederschote: 27. Rapistrum
Med., 28. Raphanistrum Gaertn., 29. Raphanus L. emend. Gaertn., 30. Cale-
pina L., 31. Crambe L. Solla.
1162. Camus, Fernand. Matthiola oyensis. (Bull. Soc. Bot. France, LV,

1908, p. 318—420.)

Verf. bespricht diese seltene aus den Kulturen verschwundene Art. Vgl.
auch „Pflanzengeographie von Europa".

1263. Coekerell, T. A. D. Sisymbrium Vaseyi (Coulter) Watson. (Muhlen-
bergia, IV, 1908, p. 5.)

Beschreibung.

1164. Cordemoy, Jacob de. Recherches anatomiques surles genres
Brassica et Sinapis- Paris 1907, 8 °, 190 pp., 45 fig.

Nicht gesehen.

1165. Ewart. A. J. and Tovey, J. R. Treacle mustard. [Erysimwn
repandum LJ (Journ. Dept. Agric. Victoria, VI, 1908, p. 252, 1 col. pl.)

Nicht gesehen.

1166. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie von Brassica oleracea.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 168—169, eine Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1167. Henslow, S. The history of the Cabbage tribe. (Journ. R.
Hort. Soc. Lond., XXIV, 1908, p. 15-23.)

Mit vielen interessanten historischen Details über Brassica oleracea L.
und seine Kulturformen: var. canlocarpa (Kohlrabi) usw.

1 1 (58. Janchen, E. und Watzl, B. Ein neuer Dentaria- Bastard. (Östr.
Bot. Zeitschr., LVIII, 1908, p. 36.) N. A.

Es handelt sich um Cardamiue enneaphylla X polyphylla = X C. Dege-
niana nov. hybr.

1169. Lemmermann, 0. und Blanck, E. Der weisse Senf in seiner
Beziehung zur Stickstoffassimilation. (Landw. Versuchsstat., LXIX,
1908, p. 145—160.)

Siehe „Physikalische Physiologie".

1170. Micheletti, L. Lepidium Draba var. subintegrifolium. (Bull. Soc.
Bot. It., 1908, p. 86—87.

Auf den Mauern von Alessandria (Piemont) und längs der Strasse nach
Savona bemerkte Verf. Exemplare von Lepidium Draba L., welche nahezu
ganzrandige oder nur spärlich und entfernt gezäbnelte Blätter, mehr länglich
und zart, die obersten eher ei-herzförmig, mit abgerundeten Öhrchen besassen.
Er bezeichnet dieselben als var. y. subintegrifolium. Solla.

1171. Mottet, S. Pcltaria Alliacea. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 130
bis 131.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1172. Muschler, Reno. Die Gattung Coronopus. (L.) Gaertn. (Engl.
Bot. Jahrb., XLII, 1908, p. 111—147, 2 Textf.) N. A.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 26.7.10.] 13

194 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [194

Verf. behandelt die Geschichte der Gattung, ihre Stellung im System,
wobei er sich Thellungs Anschauungen anschliesst, ferner die Morphologie
und Biologie, Anatomie und Physiologie, Phylogenie \ind Verbreitung. Das
systematisch Wichtigste ergibt sich aus folgender Sektionseinteüung, worauf
dann die Diagnosen folgen.

I. Frucht nierenförmig; entweder oben und unten oder nur unterseits
ausgerandet; Kelchblätter bei der Reife abfallend; Frucht entweder durch
vorspringende Leisten am Rande gezähnt, mit Schuppen versehen und runzelig
und mit dickem kegeligen Griffel oder ohne Randleisten und stark grubig und
in wenigen Arten sehr schwach beschuppt. Subgenus Eucoronopus Muschler.

1. Frucht nicht aufspringend, oberseits nicht ausgerandet, nierenförmig
oder schwach gekielt; Griffel frei, dick-kegelförmig, meist 1/7, selten '/s — V*
so lang als die Scheidewand; Narbe ringsum völlig gleichmässig entwickelt;
Frucht durch starke über den Rand vorspringende Leisten am Rande gezähnt,,
mit häutigen Schüppchen versehen, runzelig. Laterale Bodendrüsen stark,
mediane schwach entwickelt. Sectio I. Carara DC. (Pro genere Caesalpinus
1583, Coronopus Haller 1768, Gaertner 1791.) — Ein- oder zweijährige Pflanzen
mit pinnatifiden Blättern. Blütenhülle und Andröceurn voll entwickelt, Frucht
breit-nierenförmig, häufig gekielt; Fruchtstiel sehr stark entwickelt, mehr oder
weniger wagerecht abstehend.

Zwei Arten: Coronopus verrucarius Muschler et Thellung und C. violaceus-
O. Ktze. Ersterer eine äusserst vielgestaltige Species, sowohl im Hinblick auf den
ganzen Habitus, als vor allem auch auf die Anordnung der Fruchtstände und die
Form der Früchte selbst, welche zwischen nierenähnlich und verkehrt-breitherz-
förmig schwankt. Vom Mediterrangebiete aus hat die Art sich bis tief in den Orient
einerseits, anderseits bis über den Ozean hin westlich nach Nordamerika ver-
breitet. Als Ruderalpflanze ist sie in ganz Nordafrika und dem gesamten Europa
gemein. C. violaceus 0. Ktze. ist bisher nur aus Algier bekannt, dürfte sein
Areal aber sicher über Tunis in die Cyrenaika hinein erstrecken.

2. Frucht in zwei einsamige Kokken zerfallend, oben und unten aus-
gerandet; Griffel entweder fast fehlend oder bis zu einem Drittel der Scheide-
wandlänge entwickelt (C. inteqrifolius DC). Narbe halbkugelig-kopfig ent-
wickelt. Laterale Bodendrüsen fast oder ganz fehlend, mediane meist nur
schwach entwickelt.

a) Frucht beiderseits konvex; Narbe entweder sitzend oder auf einem
die Scheidewand ein Drittel an Länge überragenden Griffel. Sectio t
Nasturtiolum DO. {Senebiera DO. 1824, Desv. 1814).

Blätter teils lineal oder lineallanzettlich bis pinnatifid; Blüten äusserst
klein, zeigen starke Reduktionstendenz in allen Teilen. Fruchtform ziemlich
mannigfaltig. Griffellänge äusserst variabel. Narbe halbkugel-kopfig. Samen
kaum zusammengedrückt. Bewohnt in mehreren Arten fast die gesamte Erd-
oberfläche und meidet nur die asiatischen Steppen. Als jüngste Art ist wohl
Coronopus äidymus (L.) Sm. anzusehen, dessen Entwickelungszentrum im tro-
pischen Amerika zu suchen sein dürfte. C. integrifolia DC. hat seine Heimat
im tropischen Afrika, geht aber östlich bis zu den chinesischen und japanischen
Meeresküsten und nach Australien. Coronopus Englerianus Muschler beschränkt
sich auf Mozambique und die benachbarten Areale. Die linearblätterige Form
linoides (0. Ktze.) Muschler des C. integrifolius DC. ist im Kaplande gemein.

b) Frucht einerseits konkav, anderseits konvex ausgebildet; Griffel den
Emarginationssinus nicht überragend, höchsten ein Fünftel der Scheide-

195] Cruoiferae. 195

wandlänge erreichend und dann kopfig ausgebildet oder ein Drittel der
Scheidewandlänge erreichend und dann über den Medianen der Frucht-
blätter stärker entwickelt. Sectio: Cotyliscus (Desv. pro genere 1814;
DC. 4821).

Einjährige Arten, habituell sehr an die Species der vorigen Sektion er-
innernd. Blüten sehr klein, meist vollständig entwickelt. Fruchtstände schlank
und locker. Fruchtstiele sehr zart und lang, mehr oder weniger wagerecht ab-
stehend, zylindrisch, selten etwas kantig. Griffel höchstens bis an die Aus-
randung reichend und dann kugelig- köpf ig {Goronojms. niloticus Desv.) oder ein
Drittel der Scheidewandlänge erreichend und dann über den Medianen der
Fruchtblätter stärker entwickelt.

Entwickelungsgebiet im tropischen Afrika, von wo aus C. niloticus Desv.
nordöstlich, C. lepidioides 0. Ktze. nordwestlich den Mittelmeergestaden zu-
streben. C. Englerianus Muschler ist bis jetzt auf Mozambique beschränkt.

II. Frucht herzfiförmig an der Basis stark verschmälert; Kelchblätter
persistent. Frucht mit tiefen Gruben versehen und am Rande durch vor-
springende Leisten gezähnt, ohne Schuppen, nicht aufspringend. Narbe
sitzend, kopfig entwickelt. Subgenus Delpinoetta (Speg.) Muschler. Einjährige
Pflanzen mit ganzen Blättern, kahl, Fruchstände knauelartig dicht zusammen-
gedrängt. Blüten relativ ansehnlich, meist mit vollständiger Blütenhülle und
Andröceum.

Drei Arten im äussersten Süden Amerikas, in Patagonien. Coronopus
phytidocarpus Maclowsky dringt bis in die polaren Gegenden vor, während
C patagonicus Muschler und C. serratus Desv. etwas nördlicher beschränkt sind.
Wohl mit das jüngste Glied der Coronopus-G&ttung.

1173. Planchon. La vraie et les fausses Roses de Jericho. (Ac.
Montpellier, 1908, p. 12.)

1174. Sergueeff, Marguerite. Repartition geographique du genre
Iberis L. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 609-G22, illustr.)

Siehe „Pflanzengeographie".

1175. Spragne, T. A et Hutchinson, J. Noteon Barbaren stricto, Andrz.
(Journ. of Bot., XL VI, 1908, p. 106—109, pl. 489 C.)

Über Unterschiede gegen vulgaris R. Br., Vorkommen usw.

1176. Sutton. Arthur W. Notes on Brassica Grosses. (Gard. Chron.,
3. ser., XLIII, 1908, p. 58-59, fig. 26—31.)

Verf. sagt zum Schluss: Aus den Beobachtungen ergibt sich, dass
Brassica oleracea (Cabbage) sich ausserhalb seiner eigenen Klasse nicht kreuzt,
dass aber B. Xapus (Rapes), B- campestris (Swedes) und B. Rapa (Turnip) sich
miteinander kreuzen und Hybriden ergeben, obgleich viele dieser Hybriden
keinen Samen lieferten und deshalb nicht vermehrt werden konnten.

Zweifellos ist der Ursprung dieser letzteren Typen sehr obskur und in
bezug auf ihre Klassifikation herrscht viel Verwirrung.

Da es unmöglich war, die hybriden Formen zwischen „white and yellow
Swede", „white and yellow Turnips", „white Turnip and Swede and yellow
Turnip and Swede" oder vice verse zu vermehren, erscheint es wahrscheinlich,
dass sie ihre Existenz nicht einer gemeinsamen wilden Form verdanken.

1177. Sutton, Arthur W. Brassica Crosses. (Journ. Linn. Soc. Lond.,
XXXVIII, 1908, p. 337—349, pl. 24-35.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Jahresberichtes.

13*

196 C. K. Solineider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [196

1178. Thellnng, Alb. Neue Lepidium-F ormen. (Bull. Herb. Boiss.,
2. ser., VIII, 1908, p. 913—914.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1179. Tbellnng, A. Neues von den afrikanischen Arten der
Gattung Lepidium. (Bep. spec. nov., V. 1908. p. 87—95, 122—127.)

Ex: Mitt. Bot. Mus. Zürich, XXVI in Viertelj. Nat. Ges. Zürich, LI,
1906, p. 14-1—192.

1180. Viviaiul - Morel. Communication sur les Erophiles et les
Clypeoles, qu'il considere comme des types tres fixes, caracteri-
sant les petites especes. (Ann. Soc. Bot. Lyon, XXXII, 1907, p. XXIX.)

1181. Zederbaner, E. Versuche über die Vererbung erworbener
Eigenschaften bei Capsclla bursa pastoris. (Östr. Bot. Zeitschr., LVIII, 1908,
p. 231—236, 285—288, tab. V.)

Die Hauptergebnisse fasst Verf. wie folgt zusammen:

Capsella bursa pastoris ist von Hirten auf den Erdschiasdagh in Klein-
asien aus der Ebene verschleppt worden und hat sich dort (in einer Höhe von
2000 — 2400 m) dem Höhenklima angepasst, worauf der niedrige Stengel und
der xerophile Bau der Blätter hinweist. Die Anpassung ist vermutlich auf
direkte Be Wirkung zurückzuführen.

In der Kultur im Wiener Botanischen Garten verlieren die Blätter in
den nächsten Generationen den xerophilen Bau und passen sich den neuen
Lebensbedingungen an. Vergrösserung der Blattfläche, geringere Behaarung,
Abnahme der Gesamtdicke des Blattes, speziell der Cuticula, und des Palisaden-
gewebes deuten dies an. Der Stengel jedoch bleibt in den vier der Über-
tragung folgenden Generationen konstant niedrig oder wird um ein geringes
(1 — 2 cm) höher. Durch Feuchtigkeit etwas in die Länge getrieben, wird er
unter normalen Verhältnissen wieder niedriger.

Die in der Höhenlage erworbenen Eigenschaften werden von den ver-
schiedenen Organen verschieden festgehalten. Die Assimilationsorgane änderten
sich sofort bei Änderung der Lebensbedingungen. Die Fortpflanzungsorgane,
bzw. die mit ihnen im nahen Zusammenhange stehenden (Inflorescenz tragende
Stengel) zeigten hingegen ein grösseres Behaarungsvermögen und änderten
sich wenig oder gar nicht.

Cucurbitaceae.

Neue Tafel:

Momordia Charantia L. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas. 1908, tab. 148.

1182. Bews. J.W. Preliminary note on a peculiarity in the pith
of a species of Cucurbit. (Trans, a. Proc. Bot. Soc. Edinburgh, XXLII.
pt. III, 1907, p. 246-248.)

Siehe „Anatomie".

1183. Borzi, A. Una nuova varietä di Lagenaria verrucosa Sprg. da
introdursi nelle nostre colture. (Bollett. R. Orto botan. e Giard. coloniale
(Palermo, VI, p. 142—115. 1907.) N. A.

Aus mehreren, von A. Giordano aus Ehodesia eingesandten Samen
einer Lagenaria ging eine einzige Pflanze auf, welche wurzeltreibende Aus-
läufer entwickelte und sich auf dem Boden weit ausbreitete. Ihre Blüten
öffneten sich in' der Nacht und schlössen sich um die Mittagsstunde; die
Früchte hatten eine warzige Oberfläche, aber eine ausgesprochene birnförmige
Gestalt. Die Pflanze wird als L- verrucosa Sprg. n. var. Giordaniana Hort.
Panorm. angesprochen. Es folgt eine ausführliche (lateinische) Beschreibung

1971 Cruciferae. Cucurbitaceae. Cunoniaceae. Cynomoriaceae. Cyrillaceae. 197

derselben und eine bildliche Wiedergabe der wichtigeren Organe. Die Früchte
sind anfangs sehr zuckerreich und schmackhaft, so dass sich die Kultur der
Pflanze in den Küchengärten empfehlen dürfte. Solla.

cf. auch Fedde, Rep. nov. spec.

1184. Cannarella, P. Contributo allo studio dei nettarii estra-
nuziali e fiorali di alcune Cucurbitaceae e di alcune Passifloreae. (Mal-
pighia, XXI, 1908, p. 1—15, 1 tav.)

Ref. noch nicht eingegangen. Vgl. Just 1909.

1185. Cogniaux, Alfred. Deux Cucurbitacees nouvelles des lies
Samoa. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 257—258.) N. A.

1186. Cogniaux, A. Cucurbitaceae in Schinz, Beitr. afrik. Flora, XXII.
(Vierteljahrschr. Naturf. Ges. Zürich, LIII, 1908, p. 492.) N. A.

Neu ist Kedrostis velutina Cogn.

1187. Cognianx, A. Cucurbitaceae peruvianae. (Engl. Bot. Jahrb., XLIL
1908, p. 173—174.) N. A.

Nur Guraniopsis n. gen. mit einer Art.

1188. Desrnisseanx, A. Cucurbitacees tropicales. Paris, A. Chal-
lamel, 1908.)

Nicht gesehen.

1189. Donbek, Marie. Über die Ranken und die Zusammensetzung
der Achsen bei den Cucurbitaceen. (Bull, internat. Classe des sc. math.
nat. et de la medecine, XII, 1907, Prague 1908, p. 55—76 und Taf. I— III.)

Die Ranken sind als ungewandelte Laubsprosse anzusehen.

Der Stengel der Cucurbitacee stellt ein ziemlich kompliziertes Svmpodium
dar. Verf. beschreibt einige Fälle eingehend und erörtert sie an der Hand
von Abbildungen.

1190. Heineck. Ein neues Unterscheidungsmerkmal der männ-
lichen und weiblichenPflanzen von Bryonia dioica J c q. (Naturw. Wochen-
schrift, N. F., VII, 1908, p. 345—346, 2 Fig.)

Die Unterschiede liegen in der Ausbuchtung des Blattgrundes, die bei
den <J. Pflanzen eine viel tiefere ist, so dass zwei, sich zuweilen mehr oder
weniger deckende Lappen entstehen.

1191. Longo, B. Altre osservazioni sul Sechium edule Sw. (Annali
di Bot., VII, 1908, p. 71—73 und Tav. VII.)

Ref. noch nicht eingegangen.

1192. Solimena, F. Nel mundo delle Cucurbitacee. (II Secolo, XX,
vol. VII, 1908, p. 239-248, 111.)

Nicht gesehen.

Cunoniaceae.
Neue Tafel:
Weinmannia Hiläebrandtti Baill. in Thonner Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 63.

Cyanastraceae.

Cynomoriaceae.

1193. Baccarini, P. Sülle cinesi vegetative de Cynomorium coccineum L.
(Nuov. Giorn. Bot. It., XV, 1908, p. 189—203, eine Taf.j

Siehe „Morphologie der Zelle".

Cyrillaceae.

198 C1- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [198

Datiscaceae.
Diapensiaceae.

Dichapetalaceae.

Neue Tafel:
Dichapetalum leucosepalum Ruhl. in Thonner, JBlütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 80.

Dilleniaceae.

Neue Tafeln:
Clematoclethra Prattii Kom. et C- tiliacea Kom. in Act. Hort. Petrop., XXIX,

1908, tab. I.
Tetracera alnifolia Willd. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 97.

1194. Joain, E. Ein Feind der Aetinidia. (Mitt. D. Dendrol. Ges.,
XVII, 1908, p 192—193.)

Über die Beschädigungen der A. polygama und Kolomikta durch Katzen.

1195. Komarov, V. L. Revisio critica specierum generis Clemato-
clethrae Max. (Act. Hort. Petrop., XXIX, 1908, p. 83-97, tab. I, russisch.)

N. A.
Im Anschluss an die eingehende Besprechung der Arten, denen Verf. zwei
neue zufügt, gibt er folgenden lateinischen Bestimmungsschlüssel:

Pedunculi saepissime uniflori 2.

Pedunculi subtriflori vel 3 — 8 florl 5.

Petioli et rami novelli strigillosi, foliorum pägina inferior praeter

nervös glabra C. strigillosa Franch.
Petioli et rami novelli glaberrimi vel brevissime puberuli ... 3.
Tota perfecte glaberrima, folia serrulata vel rarius integra, pedunculi
3. J sparsi solitarii filiformes — C- integrifolia Franch.

Pedunculi puberuli vel tomentelli 4.

Folia basi cordata, subtus in axillis venarum barbellata, pedunculi
, ) uniflori subtrifloris immixti, calyx saepe violaceus — C. tiliacea Kom.
Folia basi rotundata vel cuneata subtus glaberrima pedunculi fascicu-

lati — C. actinioides Max.
' Folia subtus tomentosa secus venas setis strigillosis ornata, calyx

dense tomentosus — C. scandens Franch.
! Folia subtus sparse tomentella vel puberula setis nullis ... G.
Folia subtus in axillis venarum barbata caeterum glabra — C. basio-

clada Max.

Folia subtus secus venas plus minus tomentosa 7.

Folia per totam paginam subtus dense vel laxe tomentella . . 8.
Folia subtus pallida opaca, basi rotundata vel cuneata in genere maxima

C Prattii Max.
Folia subtus glaucescentia, basi rotundata vel cordata ovata lanceo-

lata, pedunculi numerosi praecipue extraaxillares — C. Faberi

Franchet.
Pedunculi sub 8 flori, folia subtus dense tomentella — C. tomentella

Franch.

Pedunculi sub 3 flori 9.

Folia ovato-lanceolata subtus glauca — C. Faberi Franchet.

Folia cordata , . 10.

6.

9.

1991 Datiseaceae. Dichapetalaceae. Dilleniaceae. Ebenaceae. Elaeagnaceae. 199

Polia brevia 3—5 cent. longa, pubes fulvo tomentella setulis nonnulis
... ) interjecti« — C. cordifolia Franch.

) Folia ad 12 cent. longa, pubes rufo tomentella setulis nullis — C.
( Francheti Korn.
Siebe auch Fedde, Rep. nov. spec.

Dipsacaeeae.

Neue Tafel:
•Cephalaria rigiäa (Spreng.) Schrad. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 147.

1196. Fortier^ E. Notes teratologiques. Dipsacus sylvestris Mill.
i(Soc. Amis Sc. nat. Reuen, Mai 1908, p. 5 — 6.)

Siehe „Teratologie".

1197. Heineok. Die Aufblühfolge der Blüten in den Köpfen von
Dipsacus Silvester Mill. (Natur w. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 294, 2 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1198. Tammes, Tine. Dipsacon und Dipsacotin, ein neues Chro-
mogen und ein neuer Farbstoff der Dipsaceae. (Rec. Trav. Bot. Neerl.,
V, 1908, p. 57—91.)

Siehe „Chemische Physiologie".

Dipterocarpaceae.

1199. Gilg, Ernst. Weitere Beiträge zur Kenntnis der afrikani-
schen Üipterocarpaeeen-Gattung Monotes. (Engl. Jahrb., XLI, 1908,
p. 287-292, eine Textf.) N. A.

Verf. beschreibt 13 neue Arten. Vgl. „Index gen. et spec. nov.".

Droseraceae.

Neue Tafel:
Drosera Burkeana Planch. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 57.

1200. [Fedde, Fr.] Vermischte neue Diagnosen [Drosera bulbigena
A. MorrJ. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 96.)

Aus: Trans, a. Proc. Bot. Soc. Edinburgh, XXII, 1905, p. 417.

1201. Rosenberg, 0. Om skottföljden hos Drosera. (Über die
Spross folge bei Drosera.) (Svensk Bot. Tidskr., II, 1908, p. 157—168, 7 Textf.)

Schwedisch, ohne deutsches Resümee.

Ebenaceae.
Neue Tafel:
Maba buxifolia (Rottb.) Pers. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 126.

1202. Wettstein, R. v. Über Parthenocarpie bei Diospyros Kaki. (Östr.
Bot. Zeitschr., LVIII, 1908, p. 457—462, 4 fig.)

Verf. konstatiert, dass diese Art auch bei ausbleibender Bestäubung zwar
.samenlose, aber sonst völlig normale Früchte ausbilden kann.

Elaeagnaceae.

Neue Tafeln:
JElaeagnus edulis Sieb, in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon, II, 1908,

tab. 54, fig. 1 — 4.
E. glabra Thbg., 1. c, fig. 11—13.
JE. umbellata Thbg., 1. c, fig. 5-10.

jt>-" " ~-' "O*

200 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [200

1203. Servettaz, Camille. Note Preliminaire sur la Systematique
des Elaeagnacees. (Bull. Herb. Boiss., 2. sei., VIII, 1908, p. 380—394.)

N. A.
Da 1909 die Monographie erschienen ist, werden wir dann darüber
referieren.

Elaeocarpaceae.

Neue Tafeln:
Elaeocarpus decipiens Hemsl. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon, II, 1908,

tab. 49, fig. 15—27.
E. japonica S. et Z., 1. c, fig. 1 — 14.

Elatinaoeae.

Neue Tafel:
Bergia suffruticosa (Del.) Fenzl. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 101.

1204. Moesz, Gusztäv. Die Elatinen Ungarns. (Ung. Bot. Bl., VII,
1908, p. 1—35, Tafel I, deutsch u. ungarisch.) N. A.

Nach einer Einleitung behandelt Verf. zunächst „die Hydropiper-Fv&ge",
gibt dann eine systematische Zusammenstellung von sämtlichen, bisher genau
bekannten Elatinen in lateinischer Sprache und bespricht zuletzt eingehend
die Formen der ungarischen Flora. Vgl. auch bei „Pflanzengeographie von
Europa".

Empetraceae.
Epacridaceae.

Ericaceae.

Neue Tafel:
Andromeda campanulata Miq. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest Japon, II, 1908,

tab. 62, fig. 1—10.
.4. nikoensis Max., 1. c, fig. 28 — 30.
A. ovalifolia Wall., 1. c, tab. 60, fig. 14 — 30.
Enkianthus japonicus Hook., 1. c, tab. 62, fig. 11 — 18.
Erica nervata Guthrie et Bolus in Wildeman. PI. Nov. Hort. Then., II, 1908,

pl. LX.
Ledum palustre var. dilatatum Wahlb. in Miyoshi, Atl. Jap. Vegetat., sect. X,

1908, tab. 67 (Vegetationsbild).
Philippia Chamisonis Klotsch. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 121.
Rhododendron dilatatum Miq. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon, II, 1908,

tab. 61, fig. 23—32.
Rh. indicum var. Kaempferi Max., 1. c, tab. 61, fig. 1 — 10.
Rh. kamtschaticum Pall. in Bot. Mag., tab. CXXX1V, 1908, tab. 8210.
Rh. Maddeni var. obtusifolium Hutch. n. var., 1. c, tab. 8212.
Rh. Mariesii Hemsl. et Wils., 1. c, tab. 8206.
Rh. Metternichi S. et Z. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon, II, 1908,

tab. 60, fig. 1—13.
Rh. micranthum Turcz. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8198.
Rh. sinense Sw. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon, II, 1908, tab. 62,

fig. 19—27.
Vacciniiim bracteatum Thbg., 1. c, tab. 61, fig. 11 — 22.

201] Elaeocarpaceae. Elatinaceae. Empetraceae. Epacridaceae. Ericaceae. 201

1205. Anonym. Epigaea repens. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908, p. 343,
Fig. 152.)

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze.

1206. Crawford, A.C. Mountain laurel (Kalmia latifolia) apoisonous
plant. (Bull. Bur. Plant. Ind. TT. S. Dept. Agric, 1908, No. 121, pt. 2, p. 21
bis 35, pl. IL)

Siebe „Agricultur".

1207. D. An interesting Rhododendron (rhombicum). (Garden, LXXII,
1908, p. 267, Fig.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1208. D., A. Rhododendron (Azalea) indicum var. Kaempferi und Pieris
formosa. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908, p. 5—6.)

Kurze Besprechung.

1209. D, W. Arctostaphylos Manzanita. (Gard. Chron., 3. ser., XLIVr
1908, p. 163. Fig. 64.)

Die Abbildung zeigt Blütenzweig und Blütendetails.

1210. Fernald, M. L. Note on Michaux's Vaccinium myrtilloides-
(Rhodera, X, 1908, p. 147—148.) N. A.

Verf. macht die Art zu V. pennsylvanicum Lam. var. myrtilloides.

1211. Goeze, E. Über die Herkunft und Einführungszeit der in
europäischen Gärten und Gewächshäusern kultivierten Rhododendron-
(Östr. Gartz., III, 1908, p. 424—429.)

1213. (Jrignan, G. T. Deux Azalees Nouvelles, Azalea „Vervaeneana
alba" et .4. „Yodozava". (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 424—425, tab. col.)

Kultursorten indischer Azaleen.

1214. Hill, E. J. A red-fruited H uckleb er ry [Gaylussacia resinosaT.
et Gr.]. (Torreya, VIII, 1903, p. 30-31).

1215. Hörold, R. Ericaceae in Ule, III, Beiträge z. Flora der Hylaea.
(Verh. Bot. Ver. Prov. Brandenburg, L, 1908, p. 92—94.) N. A.

1216. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 11. Gaultheria
procumbens L. (Mercks Rep., XVII, 1908, p. 1-3, 14 figs.)

Siehe „Anatomie".

1217. L., C White whortleberries. (Nature Notes, XIX, 1908, p. 228.)
Nicht gesehen.

1218. Malme, Gust. 0. A. N. Om förgrenade arsskott hos Calluna,
vulgaris (L.) Sali sb. (Über verzweigte J ahrestriebe bei Calluna vulgaris.)
(Svensk bot. Tidskr., II, 1908, p. 85—94.)

Verf. gibt folgende deutsche Zusammenfassung:

Die Jahrestriebe von Calluna vulgaris sind entweder kurz und tragen
stumpfe oder abgerundete, zwei bis drei Jahre lang fortlebende Blätter und
wenig entwickelte Stengelglieder, die kürzer als die Blätter sind, oder sie sind
verlängert und haben (ausser am obersten Teile) spitze, früh absterbende
Blätter und 0,5 — 1,5 cm lange Stengelglieder. Übergänge zwischen den beiden
Formen sind jedoch nicht selten.

Die verlängerten Jahrestriebe sind immer verzweigt und zwar so, dass
die Zweiglein unten am häufigsten vegetative, in der Mitte vegetativ-floraler
mit gewöhnlich einem, seltener zwei oder mehreren Paaren normal entwickelter
Blätter und zwei Paaren schuppenähnlicher, unmittelbar unter dem Kelche
sitzender Blätter versehene, oben wieder vegetative Stauchlinge sind. Aus
den Winkeln der beiden assimilierenden Blätter der vegetativ-floralen Zweigleini

202 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. 1 202

entwickeln sich bisweilen Zweiglein mit Gipfelblüte; wenn jene Zweiglein
erster Ordnung mehrere Blätter tragen, sind selten zwei, noch seltener bis
fünf Paare derartiger Zweiglein zweiter Ordnung vorhanden. Häufiger finden
sich am mittleren Teile des Jahrestriebes anstatt der in Blüte endenden,
kurzen Zweiglein, etwas längere ohne Gipfelblüte, aber mit einigen (bis sechs)
Paaren vegetativ-floraler Zweiglein zweiter Ordnung oder mit kurzen vege-
tativen Stauchungen.

Sämtliche Zweiglein mit Gipfelblüte sterben im folgenden Winter ab.

Die vegetativen Zweiglein unten am Jahrestriebe entwickeln in den
folgenden Jahren kurzgliedrige, unverzweigte terminale Sprosse — sie bleiben
also Stauchlinge, die bald, gewöhnlich nach drei oder vier Jahren, absterben —
seltener aber mehr oder weniger stark verlängerte und verzweigte Sprosse
und sterben auch in diesem Falle recht früh ab. Die vegetativen Zweiglein
oben am Jahrestriebe entwickeln dagegen grösstenteils verlängerte Sprosse,
die fast ebenso kräftig sind wie der Terminalspross und sich ganz und gar
wie dieser verhalten. Wenn die Zweiglein in der Mitte des Jahrestriebes
keine Gipfelblüte tragen, entwickeln sie im folgenden Jahre verlängerte und
verzweigte, aber recht schwache, terminale Sprosse und sterben wie die
Stauchlinge nach wenigen Jahren ab.

Die kräftigsten Zweige von Calluna vulgaris gehen also von den obersten
Teilen der successiven Jahrestriebe aus. Da aber nach einigen Jahren viele
absterben und der eine oder der andere ebenso kräftig oder sogar kräftiger
als der Hauptstamm wird, tritt an den älteren Teilen des CaUuna-Sta.mmes die
monopodiale Verzweigung sehr undeutlich oder gar nicht zum Vorschein und
die Möglichkeit, nach dem morphologischen Aufbau das Alter der Pflanze zu
bestimmen, verschwindet.

Wenn man bedenkt, wieviel die Calluna-Püanze in jedem Jahre aufbaut,
wie sich Zweige und Zweiglein erster und zweiter Ordnung, wie viele Blätter
und Blüten sie alljährlich zur Eatwickelung bringt, die zum grössten Teil
bald absterben, erweist sich die Rede von der Materialersparnis der Calluna
als wenig begründet. Auch die in der einschlägigen Literatur bisweilen vor-
kommenden Angaben von dem hohen Alter der Calltma-Vünnzen (bis zu
50 Jahren) scheinen einer genauen Nachprüfung zu bedürfen.

1219. Mottet, S. Pentapterygium serpens. (Rev. Hortic, LXXX, 1908,
p. 466-468, fig. 178—179.)

Die Figuren zeigen Blütenzweig und Pflanze.

1220. Mottet, S. Rhododendron a floraison precoce. (Rev. Hortic,
LXXX, 1908, p. 198-199, fig. 78.)

Die Figur zeigt Blütenzweige von R. dahuricum var. sempervirens.

1221. Otlnner, B. Macleania punctata Hk. f. und andere. (Gartenwelt,
XIII, 1908, p. 773-774, 2 Fig.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanze und Blütenstand.

1222. Peltrisot, C. N. Developpement et structure de la graine
chez les Ericacees. Paris 1908, 8°, avec 173 fig.

Referent konnte diese Arbeit noch nicht einsehen.

1223. Relinelt. Rhododendron racemosum Franch. und var. rigidum. (Garten-
flora, LVII, 1908, p. 561—562, 2 Abb., Tab. col. 1577.)

Kurze Darlegungen. Ob die var. rigidum des Verf.s mit Rh. rigidum
Franch. identisch, ist unsicher.

203] Ericaoeae. 203

1224. Rubel, E. Überwinterungsstadien von Loiseleuria procumbens
(L.) Desv. (Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 803—808, Tab. XIV.)

Verf. fand folgendes:

Loiseleuria procumbens trifft im Herbst weitgehende Vorbereitungen für
das nächstjährige Blühen:

In den Blütenknospen werden schon Kelchblätter, gefärbte Blütenblätter,
Staubblätter mit Pollenmutterzellen, Fruchtknoten mit Ovularanlagen aus-
gebildet. In den Laubknospen sind schon 2 — 6 Blätter entwickelt.

Die Knospen halten den Alpenwinter nicht nur unter Schnee, sondern
auch an schneefreien, windgefegten Stellen aus, bei — 24,5 ° C Minimum.

Der Knospenschutz ist relativ sehr gering. Die Blütenknospe ist frei
sichtbar, nur durch dickfleischige Deck- und Vorblätter geschützt, die den
ebenfalls dickfleischigen Kelch teilweise noch herausragen lassen.

Die Blattknospen liegen in den Höhlungen der Laubblattstiele, umgeben
von Haaren und Drüsen.

1225. Suringar. Valkenier. Azalea mollis und Azalea sinensis. (Gartenfl.,
LVII, 1908, p. 504-517, fcab. col. 1575/76.)

Verf. kam bei seinen Untersuchungen über diese Arten zu folgenden
Resultaten:

1. Es existieren zwei verschiedene Azaleen, eine von Maximowicz aus Japan
eingeführte, welche allgemein kultiviert wird, und eine von der Firma
M. Koster & Sohn in England aufgefundene, welche selten ist.

2. Die Beschreibungen und Abbildungen der 1823 und 1829 in England
aus China eingeführten Azalea sinensis Lodd. (Syn. A. pontica var. sinensis
Lindl., Rhododendron sinense Sweet.) sind identisch mit der Pflanze der
Firma Koster; auch Blumes Azalea mollis und die von Fortune aus China
1845 noch einmal in England eingeführte und später von verschiedenen
Personen in China gesammelte Azalea sind dieselbe Azalea sinensis Lodd.

3. Die zu verschiedenen Zeiten aus Japan eingeführte, für uns hier in Be-
tracht kommende Azalea ist die überall als A. mollis bekannte und kulti-
vierte, von Maximowicz eingeführte Pflanze, welche fälschlich mit der
eher bekannt gewesenen, doch vergessenen A. sinensis Lodd. gleich-
gestellt wird.

4. Die unter 2. genannte Azalea sinensis wächst wild in China die unter 3.
genannte Azalea mollis in Japan.

5. Die wissenschaftlich richtigen Namen sind für unsere Azalea sinensis:
Lodd. (non Koch) resp. Rhododendron sinense Sweet, (not Aut.), und für
unsere Azalea mollis: Azalea mollis hört, (non Bl.), Rhododendron motte
S. u. Z.

6. Die viel kultivierten A. mollis-sinensis-Yariet&ten sind Bastarde zwischen
beiden genannten Azaleen.

1226. Warnung, E. Ericineae, morphology and biology. (Medd. om
Grönland, XXXVI, 1908, p. 1—71, 44 figs.)

Über diese, Ref. nicht zugängliche Arbeit, berichtet O. Paulsen im Bot.
Centrbl., CVIII, p. 516 wie folgt:

Die vorliegende Arbeit ist die erste einer Serie über arktische Blüten-
pflanzen, die wahrscheinlich publiziert wird.

Die Morphologie und Biologie folgender Pflanzen wird beschrieben und
durch zahlreiche Figuren illustriert: Andromeda polifolia, Arctostaphylos alpina,
A. Uva-ursi, Cassiope htjpnoides, C. tetragona, Ledum palustre, Loiseleuria pro-

204 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [204

cumbens, Lyonia calyculata, Phyllodoce coerulea, Pirola minor, P. miiflora, P.
rohindifolia, P. secunda, Rhododendron lapponicum. Vaccinium Myrtülus, V. oxy-
coccos, V- uliginosum, V- Vüis-idaea.

Aus dem Resümee sei folgendes hervorgehoben: Alle Arten sind der
Kreuzbefruchtung durch Insekten angepasst und alle, ausgenommen Pirola,
sezernieren Honig. Die Poilenkörner sind kahl und trocken. Mit einigen Aus-
nahmen haben alle Arten glockige und nickende Blüten und Anhänge an den
Antheren. Der Nutzen davon ist, dass die Insektenbesucher sie berühren und
dabei den Pollen aus den Antheren schütteln. Anderseits fehlen die Anhänge
bei Arten mit offenen und nicht nickenden Blüten.

Meist kann leicht Selbstbestäubung eintreten, und bei einigen arktischen
Arten tritt eine Neigung auf, diese zu erleichtern, was mit der Seltenheit der
Insekten in diesen Gebieten in Zusammenhang gebracht werden kann. Bei
einigen Arten scheint eine Art Cleistogamie aufzutreten, indem die Antheren
sich noch in der Knospe öffnen.

Alle Grönland-Ericaceen haben holzige Stämme und zählen zur Wuchs-
form Kleinsträucher. Nur zwei von 16 Arten haben typische abfallende Blätter;
bei 13 Arten halten sich die Blätter wenigstens durch einen Winter frisch.
Von Arctost. alpina scheinen die Blätter weder zu fallen noch frisch zu bleiben
während des Winters.

Erythroxylaceae.

Neue Tafel:
Erythroxylon jnctum E. Mey. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 72.

Eucryphiaceae.

Neue Tafel:
Eucryphia cordifolia Cav. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8209.

Euphorbiaceae.

Neue Tafeln:

Crotonogyne Laurentii De Wild, in Ann. Mus. Congo, II, fasc. 3, 1908, tab. LXXIII.

Daphniphyllum glaucescens Bl. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II,
1908, tab. 37, fig. 14—22.

Euphorbia Sapini De Wild, in Ann. Mus. Congo, II, fasc. 3, 1908, tab. LXXX.

E. Tirucalli L. in Miyoshi, Atl. jap. Vegetat. sect. X, 1908, tab. 78 (Vege-
tationsbild).

Excoecaria jajwnica Müll. -Arg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II,
1908, tab. 36, fig. 1—13.

Glochidion obovatum S. et Z., 1. c, fig. 14 — 25.

Manihot dichotoma Ule in Notizbl. Bot. Garten Berlin, V, 1908, No. 41a, Taf. I.

M. heptaphylla Ule, 1. c, Taf. IL

M. piairfiyensis Ule, 1. c, Taf. III.

Phyllanthus flexuosus Müll.-Arg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II,
1908, tab. 17, fig. 1 — 13.

P. floribundus Müll.-Arg. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 81.

P. tenuirhachis J. J. Smith in Icon. Bogor., III, 1908, tab. CULXIII.

Sapium anadenum Pitt, in Contr. U. St. Nat. Herb.. XII, 1908, pl. XL

S. mexicanum Hemsl., 1. c, pl. XII.

S. oligoneurum Schura. et Pitt., 1. c, pl. XVII.

8. pachystachys Schum. et Pitt., 1. c, pl. XVI.

2051 Erylhroxylaceae. Eucryphiaceae. Euphorbiaceae. 205

Sapiwm pedicellatum Huber, 1. c, pl. XIV.

S. Pittieri Huber, 1. c, pl. XV.

8. pleiostacliys Schum. et Pitt., 1. c, pl. X.

S. thelocarpum Schum. et Pitt., 1. c, pl. XIII.

Uapaca Bossenge De Wild, in Ann. Mus. Congo, II, fasc. 3, 1908, tab. LXX,

fig. 1-4.
U- ealaensis De Wild., 1. c, fig. 5—8.
Z7. Pynaerti De Wild., 1. c, tab. LXXI.
U. Sereti De Wild.. 1. c, tab LXXII.

1227. Anonym. Jequie Manicoba and its allies. (Manihot dichotoma
üle and other species.) (Kew Bullet., 1908, p. 59—68.)

Im wesentlichen agrikulturtechnischen Inhaltes unter Hinweis auf Ules
Arbeit, die 1907 unter No. 1168 angezeigt wurde.

1228. Asimont, W. F. C. Hevea brasiliensis or Para Rubber in the
Malay Peninsula. London 1908. 8°, 64 pp., ill.

Nicht gesehen.

1229. Bailand. Sur les graines d'Aleurites de Cochinchine. (Journ.
Pharm, et Chim., 6, XXVIII, 1908, p. 162.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1230. Cash, J. T. The characters and actions of the seeds of
■Omphalea megacarpa (diandra), O. triandra and Garcia mutans (from Trinidad).
(Pharm. Journ., LXXXI, 1908, p. 351—352.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1231. Cook, T. The flora of the presidency of Bombay. Vol. II,
part IV, Euphorbiaceae to Araceae, p. 625—816, London 1908.

1232. Costantin et Gallaud. Jatropha tepiquensis. (Rep. spec. nov.. V.
1908, p. 128—129.)

Ex: Rev. gen. Bot., XVIII, 1906, p. 388.

1233. Eimer, A. D. E Six undescribed species of Macaranga. (Leafl.
of Philipp. Bot., II, 1908, p. 427—434.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1234. Gehrmann, K. Vorarbeiten zu einer Monographie der
Gattung Bridelia mit besonderer Berücksichtigung der afrikani-
schen Arten. Diss., Breslau 1908, 8°, 46 pp., erschienen in Engl. Bot. Jahrb.,
XLI, Beibl. 95, 1908, p. 1-42, 2 Textf., eine Karte. N. A.

Verf. grenzt zunächst die Gattung derart ab, dass er nur die Arten der
Bridelieae dahin zieht, die einen zweifächerigen Fruchtknoten, dabei in der
■$ Blüte um das Ovar eine kragen- bis flaschenförmige Discuseffiguration
als Hülle und typisch blattachselständige Blütenknäuel besitzen, wobei
höchstens die einzelnen Blüten kurz gestielt sind.

Verf. schildert dann kurz die Morphologie der Vegetationsorgane und
•charakterisiert drei Typen der Blattnervatur. Bei der Blütenmorphologie hebt
•er hervor, dass die Blüten typisch diklin sind und unterscheidet strenge
Diöcie und herrschende Monöcie. Die Frucht ist:

1. zweifächerig und zweisamig.

a) Eine aufspringende Kapsel mit mehr oder weniger fleischigem Mesocarp,
z. B. Subsect. Stipulares, Scleroneurae-

b) Eine sich nicht öffnende Steinfrucht mit zwei Steinkernen, z. B. die
Reticidatae.

2. Einfächerig und einsamig.

206 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [206

a) Eine Kapsel mit mehr oder weniger fleischigem Mesocarp, z. ß. _B„
stenocarpa.

b) Eine Steinfrucht, z. B. B. Moonii.

c) Eine Schliessfrucht mit mehr oder weniger trockenem Pericarp, z. B.
B. assamica, B. coccolobaefolia.

Auch die Anatomie wird kurz behandelt. Aus allem ergibt sich, dass
für die Systematik die Merkmale verwendbar sind, welche in folgender
Gliederung der Gattung besonders hervortreten:

Sect. I. Eubridelia Gehrm. Fructus 2-locularis. Semina plana vel latere
interiore vix excavata. Petala floris <3 contorta.

a) Oellulae epidermis a facie visae undulatae.

Ia. Subsect. Burmanicae Gehrm. Species unica: B. burmanica.

ß) Oellulae epidermis a facie visae non undulatae.

Ib. Subsect. Stipularae Gehrm. Flores ceteris speciebus maiores. In
fundo cupulae floris $ corona pilorum evoluta et flos extus glaber, vel flores
extus sericeo-pubescentes corona pilorum intra cupulam praediti vel fundus
cupulae glaber. Nervi secundarii cheilodromi. — Huc pertinent: B. stijmlaris,.
B. dasycalgx, B. scandens, B. subunda ?.

Ic. Subsect. Scleroneurae Gehrm. Flores parvi, saepissime pilosi. Folia
ovata, elliptica vel cuneata, nervis secundariis cheilodromis percursa, nervis
reticularibus saepissime valde prominentibus.

1. Cellulae epidermis foliorum longe papillosae: B. retusa, B. squamosa,.
B. Boxburglnana, B. tinerascens, B. Paxii, B. angolensis, B- scleroneura, B.
scleroneuroides.

2. Cellulae epidermis foliorum subpapillosae: B. tenuifolia, B. taitensis,
B. Kurzii.

Id. Subsect. Intermediae Gehrm. Flores parvi, glaberrimi. Folia lanceolata
vel lanceolato-ovato, subtus cinerascentia, nervis secundariis cheilodromis per-
cursa. — B- lomentosa, B. ovata, B. cathartica.

le. Subsect. Cuneatae Gehrm. Flores parvi, glaberrimi. Folia cuneata
nervis secundariis camptodromis vel brachidodromis percursa. — B- Hamiltoniana,
B- cuneata, B. sikkimcnsis.

If. Subsect. Beticulatae Gehrm. Flores parvi, saepissime glaberrimi.
Folia nervis secundariis dictyodromis vel reticulato-brochidodromis percursa.
— B. melanthesoides, B- Fischeri, B- nigricans, B. Lingelsheimii, B. Nidenzui.

Sect. IL Monospermae Gehrm. Fructus 1-locularis. Semen latere interiore
excavatum. Petala floris (5 inflexa, discum amplectentia.

IIa. Subsect. Cleistanthoideae Gehrm. Nervi secundarii camptodromi. —
B. Balansae, B. pubescens, B. Griffithii, B- pustttlata, B. Moonii.

IIb. Subsect. Dubiae Gehrm. Nervi secundarii cheilodromi. — Subsectio
versimiliter non naturalis : B. assamica, B. montana, B. coccolobaefolia.

II c. Subsect. Micranthae Gehrm. Nervi secundarii cheilodromi. Discus
lageniformis floris $ saepius sericeus. — Species omnes africanae : B. ferruginea,
B. gambicola, B- speciosa, B. Neogoetzea, B. stenocarpa, B. zanzibarensis, B. abys-
sinica. — B. Zenkeri nervis secundariis foliorum camptodromis ä ceteris differt.

Das Gesamtergebnis der phylogenetischen Erörterungen, wobei die

pflanzengeographische Verbreitung sehr berücksichtigt wurde, ist folgendes:

1. Das Entwickelungszentrum liegt im indisch-malaiischen Gebiet. Schon

ehe die Spaltung der Urform in Sektionen und sogar in die Subsektionen

2071 Euphorbiaceae. 207

erfolgte, war das malagassische Gebiet und der afrikanische Kontinent
von Bridelien besiedelt.

2. Die beiden Sektionen (Monospermae und Eubridelia) sind als zwei gleich-
wertige divergierende Reihen aufzufassen, jede mit einer eigenen
Entwickelung, die den Monospermae eine höhere Entwickelungsstufe
zuweist.

3. Während die indischen Arten im grossen und ganzen als schärfer um-
schriebene Sippen aufzufassen sind, ihnen also ein höheres phylogenetisches
Alter zukommt, hat in Ostafrika eine sehr bemerkenswerte Artspaltung
eingesetzt. In weit beschränkterem Masse kann dies auch für das
tropische Westafrika angenommen werden.

1235. Gehrmann, K. Die geographische Verbreitung und Ent-
wickelung der. Gattung Bridelia. (Jahrb. Schles. Ges., LXXXVI, 1908,
Zool.-Bot. Sekt., p. 28—30.) N. A.

Siehe „Pflanzengeographie" und „Index nov. gen. et spec." sowie die
oben ref. Arbeit! Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1236. Hfemsley], W. B. Aleurites trixperma Blanco. (Bull. Kew., 1908,
p. 93, Textf.)

Besprechung der Unterschiede der Art gegen cordata Steud. und Fordii
Hemsl. und der Synonymie. Die Figur zeigt Früchte und deren Details.

1237. Kirfikar, K. R. A note on Rura crepitans Linn., found in
Khandala, Western Ghants. (Journ. Bombay N. Hist. Soc, XVIII, 1908,
p. 513—514.)

Beschreibung der Art; und ihrer Verwendung ohne neue Angaben.

1238. Malte, M. 0. Om Cellkärnans byggnad hos Euphorbiaceerna.
(Bot. Not., 1908, p. 75 — 87, mit deutschem Resümee.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1239. Pax, F. Neue Euphorbiaceengattungen aus Afrika.
(LXXXVI. Jahrb. Schles. Ges., Breslau [1908], 1909, II. Abt.. Zool.-Bot.
Sekt., p. -±8.)

Siehe „Ind. nov. spec." u. Fedde, Rep. nov. spec. Fedde.

1240. Petry, H. Entgegnung auf die Thellungsche „ Erwiderung
usw.-. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 43—45.)

Xomenclatorische Streitfragen. Siehe No. 1246.

1241. Pittier, Henry. The Mexican and Central American Specie s
of Sapium. (Contr. U. St. Nat. Herb., XII, 1908, p. 159—169. pl. X— XVII,
Fig. 7—10.) N. A.

Siehe Tafeln am Kopfe der Familie und „Pflanzengeographie".

1242. RafÜll, C. P. The genus Euphorbia. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 374, Fig. 159.)

Die Abbildung zeigt 15 habituell bezeichnende Arten der Gattung.

1243. Rebuffat, 0. Sulla gomma elastica estratta dal latice del-
VEuphorbia candelabrum. (Atti r. Istut. Incoragg. Xapoli, LIX, 1908, p. 89.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1244. Sandhack, Herrn. A. Meine neuen Äcalypha-Hybriden. (Garten-
welt. XIII, 1908, p. 685—687, 6 Abb.)

Die Abbildungen zeigen Pflanzen von A. Goäsefftana und A. Sanderiana
und der aus diesen erzogenen Hybriden A. Beissneriana, A. Hesdoerfferiana, A.
Wagneriana und .4. Sandhackiana.

2(J8 C. K. Schneider: Morphologie und Systeintik der Siphonogamen. [208

1245. Schellmann, W. Untersuchung von Manihot -Kautschuk. (Der
Pflanzer, IV, 1908, p. 39—44.)

Siehe „Chemische Ph}rsiologie".

1246. Thellnng, A. Erwiderung auf den Artikel „Euphorbia Chamaesyce
Auct. germ. olim" von H. Petry. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908,
p. 25—26.)

Verf. weist Petry s Behauptungen als unbegründet zurück.

1247. Ule, E. Kautschukgewinnung und Kautschukhandel in
Bahia. (Notizbl. Bot. Garten Berlin-Dahlem. V, 1908, No. 41a, 52 pp., 2 Textf.,
3 Taf., 1 Karte.) N. A.

Verf. beschreibt drei neue Manihot-Arten. Vgl. Index nov. gen. et spec.

1248. Ule, E. Euphorbiaceae in Beitr. Fl. Bahia. I. (Engl. Bot. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 217—225.) N. A.

Neue Arten von: Argyrothamnia Pluckenetia, Pera, Jatropha, Manihot,
Sebastiana, Stillingia, Euphorbia-

1249. Ule. E. Euphorbiaceae in III. Beitr. zur Flora der Hylaea. (Verh.
Bot. Ver. Prov. Brandenburg, L, 1908, p. 74—85.) N. A.

1250. Wickham, H. A. On the Plantation, Cultivation and Curing
of Parä India-rubber (Hevea brasiliensis), with an Account of its Intro-
■duction from the West to the Eastern Tropics. London 1908, IV,
78 pp., ill.

1251. Wright, H. Hevea brasiliensis or Para Rubber. 3. edit. Colombo
1908, 80, XVII, 204 pp.. 89 pl.

Nicht gesehen.

1252. Zimmermann, A Die neuen kautschukliefernden Manihot-
arten. (Der Pflanzer, IV, 1908. p. 193—203.)

1253. Zimmermann, A. Die Kultur und Kautschukgewinnung von
Manihot Glaziovii in Portugiesisch-Ostafrika. (Der Pflanzer, IV, 1908,
p. 209—221.)

Fagaceae.

1254. Doile, L.-A. Sur les Chataigniers [Castanea]. (Bull. Soc. Dendrol.
France, 1908, p. 140—159, illustr.) N. A.

Verf. bespricht eingehend die Abgrenzung der Gattung und zwölf Arten in
drei Sektionen: 1. Eucastanon: Chätaignes 3 en moyenne, dilatees; 2. Balano-
eaxtanon: Chätaigne 1, allongee; 3. Hypocastanon". Chätaignes ordinairement 2,
de forme intermediaire. — Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1255. [Gibson, H. H] American forest trees — 48. Bur oak, Quer-
em macrocarpa Mchx., 52. Pin oak, Q. pahistris Muench., 53. Chinquapin
oak, Q. acuminata Sarg. (Hardwood Record, XXIII, 10, XXIV, 2 — 3, p. 16
bis 17, 1907, ill.)

Nicht gesehen.

1256. Medwedew. J. S. Die Eichen des Kaukasus. (Monit. Jard.
Bot. Tiflis, 1908. 46 pp., 3 Taf. Russisch.)

1267. Palibin, J. W. Sur une nouvelle espece de Fagus de la Flore
du Caucase [F. Hohenacheriana]. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908,
p. 378-379.) X. A.

1268. Rotlirock. J. T. Laurel oak, Shingle oak, — Querem imbri-
caria Michx. (Forest. Leaves, XI, 1908, p. 168, with habit and bark photograms.J

Nicht gesehen.

2091 Euphorbiaceae. Fagaceae. Flacourtiaceae. 209

1269. Schnitze, Th. Die Prinzeneichen im Herzogl. Schloss-
garten zu Altenburg, S.-A. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 579—580, 2 Abb.)

Die Abbildungen zeigen die angeblich 1455 gepflanzten ca. 30 m hohen
und 4,8 und 5,5 m im Umfang messenden Eichen.

1270. Seemen, 0. v. Eine neue Quercus - A r t von den Philippinen
[Q. MerriUii v. Seem.j. (Rep. Spec. nov., V, 1908, p. 21.) N. A.

1271. Sliilliek, B. A hybrid oak [Quercus imbricaria X palustris]. (Proc.
Jowa Ac. Sc, XV, 1908, p. 77—80, 2 pl.)

1272. Sprenger, C. Beitrag zur Kenntnis der Quercus coccifera L.
(Mitt. Deutsch. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 155-157.) N. A.

Verf. beschreibt folgende Formen: a) genuina Boiss., b) integrifolia Boiss.,
c) calliprinos Webb., d) pseudococcifera Desf., e) microphylla Spr., f) corcyrensis
Spr., g) umbrellifera Spr. — Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

Flacourtiaceae.
Neue Tafeln:
Erythrospermum Wichmannii Val. in Icon. Bogor., III, 1908, tab. CCLXIV.
Flacouriia Bamontchi L.'Her. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 105.

1273. Gagnepain, F. Essai de Classification des Scolopia et Flacouriia
asiatiques. (Journ. de Bot., XXI [2. ser., I], 1908, p. 164-173.) N. A.

Die Merkmale, auf die Verf. Wert legt, ergeben sich aus folgenden Be-
stimmungsschlüsseln :

Scolopia.

A. Antheres toujours glabres.

a) Presence d'un disque autour des etamines.

«) Loges plus courtes que l'appendice staminal; glandes foliares pre-
sentes: 4 sepales 1. S- rhinanthera.

ß) Loges plus longues que l'appendice: pas de glandes aux feuilles:
5 — 6 sepales 2. S. acuminata-

b) Pas de disque autour des etamines; pas de glandes aux feuilles.

«) Loges plus longues que l'appendice . . . . 3. S. Closii nom. nov.
ß) Loges plus courtes que l'appendice 4. S. Gaertneri.

B. Antheres toutes ou la plupart barbues au sommet.
a) Pas de disque autour des etamines.

«) Loges plus longues que l'appendice.

± Placentas 3—4, ä 4 — 5 ovules chacun: feuilles peu crenelees.

5. S- Roxburghn-
±± Placentas 2, biovules; feuilles fortement crenelees

6. S. dasyanthera.
ß) Loge» plus courtes que l'appendice; pas de glandes aux feuilles

entieres 7. S. buxifolia.

bi Disque autour des etamines; loges plus courtes que l'appendice.

«) Glandes aux feuilles 8. S- chinensis.

ß) Pas de glandes aux feuilles . . 9. S. chinensis var. saeva, Oldhami.

Flacouriia.

A. Fleurs toujours hermaphrodites 1. F. inermis Roxb.

B. Fleurs toujours unisexuees.

a) Sepales glabres en dedans 2. F. mollis Hook, et Th.

b) Sepales tres velus en dedans.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 27. 7. 10.1 1 4

210 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [210

a) Ovaire attenue au soramet en col cylindrique.

+ Styles courts, de la longueur du diametre des stigmates.
( Anthere sans gibbosite dorsale; feuilles moyennes.

3. F. Cataphracta Roxb.
(( Anthere avec une gibbosite dorsale; feuilles grandes.

4. F. montana Grah.
++ Styles plus longs que le diametre du stigmate; sepales velus

en dehors.
( Etamines ä filets velus sur toute la longueur; feuilles cordees;

6 — 7 styles 5. F. sumatrana Planch.

(( Etamines ä filets ä peine velus a la base; 4—5 styles; feuilles

cuneiformes; rameaux epineux 6- F- sapida Roxb.

ß) Ovaire non attenue en col cylindrique; styles plus longs que le dia-
metre du stigmate.

± Eleurs ä 4 sepales 7. F.Rukam Zoll, et M.

++ Fleurs ä 5 — 7 sepales.

( Rameaux floriferes toujours epineux; filets ä peine velus ä la base

8. F. sepiaria Roxb.
(( Rameaux floriferes jamais epineux; filets velus dans leur moite

inferieure.
<5 Styles etales horizontaux; tronc ä fortes epines; fruit fortement

cotele 9. F. Balansae Gagnep.

63 Styles courbes, descendants; tronc sans epines; fruit lisse

10. F. Thorelii Gagnep.
Fouquieriaceae.

Qentianaceae.

Neue Tafel:
Chironia transvaalensis Gilg in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 129.

1274. Berger, Alwin. Erythraea insignis Tod. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIV, 1908, p. 67—68.)

Beschreibung nach lebenden Exemplaren.

1275. Blichheister, J. C. Bumble-bec and closed gentian. (Amer,
Bot., XIV, 1908, p. 108-109.)

Nicht gesehen.

1275a. (Jejer, Malin. Afvikande talförhällanden i blomman hos
Menyanthes trifoliata L. (Über abweichende Zahlen Verhältnisse in der
Blüte von Menyanthes trifoliata L.) (Svensk Bot. Tidskr., II, 1908, p. 95—100.)

Verf. gibt folgendes deutsche Resümee:

Die abweichenden Zahlen Verhältnisse in der Blüte von Menyanthes tri-
foliata L. sind bis jetzt wenig bedacht worden. Im Jahre 1907 hat die Verf.
eine grosse Anzahl von Individuen daraufhin untersucht.

Der Blütenstand dieser Pflanze ist bekanntlich eine Traube mit Gipfel-
blüte. Die Seitenblüten sitzen, was schon Linne bemerkt hat, anscheinend in
dreizähligen Wirtein; die Anzahl der in jeder Inflorescenz vorhandenen Blüten
ist folglich n8-f- 1, wobei n am häufigsten 5 oder 6 bezeichnet. Abweichungen
entstehen bisweilen und zwar dadurch, dass sich sekundäre Seitenblüten aus
den Winkeln der Vorblätter der untersten primären Seitenblüten entwickeln.

Die Gipfelblüte und die unteren Seiteublüten sind oft überzählig, die
oberen Seitenblüten dagegen oft unterzäblig. Von 62 untersuchten Gipfel-

•_>H] Fouquieriaoeae. Gentianaceae. Geraniaceae. 211

bluten waren nur 18 normal pentamer (in der Hülle und dem Andröceum):
15 waren hexamer, eine einzige tetramer, die übrigen anisomer, und zwar so,
dass sie öfters Übergänge zwischen Pentamerie und Hexamerie bildeten (am
häufigsten mit 6 S., 5 P. und 5 St.). Die Seitenblüten waren verhältnismässig
viel seltener normal hexamer, dagegen kamen anisomere häufig vor, am zahl-
reichsten mit 6 S., 5 P. und 5 St.

Normal tetramere Seitenblüten hat die Verf. (39 mal) angetroffen. Über-
gänge zwischen Tetramerie und Pentamerie sind ebenfalls häufig, besonders
Blüten mit 5 S., 4 P. und 4 St.

Normal trimere oder heptamere Blüten hat die Verf. nicht gefunden,
bisweilen aber Dreizähligkeit oder Siebenzähligkeit dieses oder jenes Wirteis.
Das Gynäceum war immer zweizählig.

In den anisomeren Blüten war meistens die Anzahl der Sepala grösser
als die derPetala; dagegen zeigten gewöhnlich Krone und Andröceum gleiche
Zahlen.

1275b. Goldschmidt, M. Gentiana Arten aus der Sektion Endotricha
im Rhöngebirge. (Mitt. Bayer. Bot. Ges., II, No. 7, 1908, p. 101 — 103.)

N. A.

Neu ist XGr. Denneri n. hybr. (G- campestris L. subspec. G. suecica Froel.
XG. solstistialis Wettst.).

Siehe sonst „Pflanzengeographie von Europa", sowie Fedde, ßep. nov. spec.

1276. Henieek. Beitrag zur Blütenbiologie von Gentiana tili ata ~L.
(Naturw. Wochenschr,, N. F., VII, 1908, p. 586—587, 2 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1277. Heller, A. A. The generic name Centaurium. (Muhlenbergia,
IV, 1908, p. 85—86.) N. A.

Der Name Centaurium wurde von Hill, British Herbae, 62, 1756, zuerst
veröffentlicht und nicht, wie man gewöhnlich zitiert von Gilib., Fl. Lith., I, 35,
1781. Mithin ist Erythraea Neck., Elem., II, 10, 1790 Synonym.

1278. Hill, A. W. Notes on Sebaea and Exoehaenium. (Kew Bullet.,
1908, p. 317—341, 1 Tafel.) X. A.

Genaue Besprechung beider Genera und Arten mit Diagnose, Synonymie,
Verbreitung usw.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

Die Tafel zeigt Blütendetails von ExocJiaenium-Arten.

1279. Prain, D. Notes on Cltironia and Orphium. (Kew Bullet., 1908,
p. 341—376.)

Eingehende Besprechung der Genera und Arten unter Klärung der
historischen, sj-stematischen und Nomenclaturfragen.

Geraniaeeae.
Neue Tafel:
Monsonia biflora DC. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 69.

1280. Drabble, E. et H Geranium pratense X Robert ianum. (Journ. of
Bot., XLVI, 1908, p. 301.)

Beschreibung dieser Hybride.

1281. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 17. Geranium
maculatum L. (Mercks Bep., XVII, 1908, p. 172 — 175, 14 fig.)

Siehe „Anatomie".

14*

212 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Sipbonogarnen. (212

1282. Legault, A. Recherches anatomiques sur Tappareil vege-
tatif des Geraniacees. (C. R. Acad. Sei. Paris. CXLVII, 1908, p. 382— 384.)

Siehe „Anatomie".

Gesneraceae.

Neue Tafeln:

Chirita barbata Sprague in Bot. Mag., CXXXIV, 1908. tab. 8200.

Columnea magnifica, Rev. Hortic, LXXX, 1908, tab. col. ad p. 376 (ramul.

florif.).
C. magnifica Klotzsch in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8225.
Corytholoma macropodum Sprague in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8228.
Didymocarpus cyanea Ridl. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8204.
Sbmingia Regina Sprague in Bot. Mag., CXXXIV, tab. 8182.
Streptocarpus Cooperi Clarke in Thonner. Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 141.

1283. Beddome. R. H. Gesneraceae. With annotated list of the
genera and species which have been introduced to eultivation.
(Journ. R. Hort. Soc. Lond., XXXIII. 1908, p. 74—100.)

In erster Linie gärtnei'isch wertvoll.

1284. Eimer, A. D. E. Gesneraceae from the Cuernos Mts. (Leafl.
Philipp. Bot., II, 1908, p. 553—507.) N. A.

Neue Arten von : Cyrtandra, Rhynchoglossum und Trichosporum. Siehe
„Index nov. gen. et spec".

1285. Leveille, H. Gesneraceae novae chinenses. (Rep. spec. nov., V,
1908, p. 221—224.)

Ex: C. R. Assoc. Franc. Av. Sei. Congr. de Cherbnurg, p. 422—429.
1280. Pampanini, R. Una nuova specie di Codonanthe: C florida
Pampanini. (Bull. Soc. tose. Ortic, XXXIII, 1908, p. 8— 11, ill.) N. A.

1287. Sprague, T. A. Columnea magnifica. (Card. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 66—67, fig. 33.)

Eingehende Besprechung der Art. Die Abbildung zeigt Blütenzweig und
Blütenlängsschnitt.

Goodeniaceae.

Neue Tafel:

Leschenaultia biloba major in Rev. Hortic, LXXX, 1908, tab. col. ad p. 36,
fig. A.

1288. lolozza. A. Una nuova specie di Leschenaultia R. Br. (Nuov.
Giorn. Bot. It., XV, 1908, p. 204, mit einer Taf.) N. A.

Beschreibung von Leschenaultia Drummmdiana Col. nov. spec, welche
1839 von Drummond am Swan River gesammelt wurde und im Herb. Webb.
aufliegt: nächste Verwandte der neuen Art, besonders nach Verteilung und Bau
der Blüten, sind L. fioribunda Benth. und L. expansa R. Br. Solla.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1289. Colozza, A. Studio anatomico sulle Goodeniaceae- (Nuov.
Giorn. Bot. It., XV, 1908, p. 5—92, mit 2 Taf.)

Über die systematischen Affinitäten der Gattung Brunonia mit den
Goodeniaceen und über die Unterschiede zwischen diesen, den Selaginaceen,
den Plumbaginaceen und den Campanulaceen vgl. das Ref. in dem Abschnitte
für „Anatomie der Gewebe". Solla.

Guttiferae.

Neue Tafel:

Allanblackia fioribunda Oliv, in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 100.

213] Gesneraceae. Goodeniaceae. Guttiferae. 213

1290. Bramlza. Georges. Recherclies anatomiques sur la germi-
nation des Hypericacees et des Guttiferes. (Ann. Sei. nat.. 9. ser., VIII,
1908. p. 221—300. 2 Fig., pl. V— XV.)

Verf. betrachtet die Hypericaceae als eigene Familie im Gegensatz zu
den Guttiferae im engeren Sinne (auch als Clusiaceae bezeichnet). Er sagt in
der Zusammenfassung der Resultate folgendes:

Die Embryone und Pflänzchen der Hypericaceen sind wohl unterschieden
von denen der Guttiferen.

Die Hauptvvurzel der Hypericaceen ist binär, wogegen sie bei den
Guttiferen mindestens drei Bündel (Sarcinia sizygiifolia) und meist viel mehr
besitzt.

Die primären Secretkanäle sind hier ausschliesslich pericyclischen Ur-
sprungs, wogegen man bei den Guttiferen bald corticale Secretkanäle (Clusieen,
< 'alophylleen), bald solche im Zentralzylinder, aber keine pericyclischen findet
(Moronobeen, Garcinieen).

Die Clusieen, Garcinieen und Moronobeen haben in der Wurzel ein
Periderm superficiellen Ursprungs, bei den Calophylleen aber ist es pericyclisch
wie bei den Hypericaceen.

Das Stämmchen besitzt ein pericyclisches Periderm bei letzteren, ein
oberflächliges bei den Guttiferen.

Das Stämmchen ist sehr glatt und von binärer Struktur bei den Hype-
ricaceen, wogegen es bei den Guttiferen mehr oder weniger tuberkulös, zylin-
drisch mit vier Bündeln (Clusieen) oder tuberkulös mit einer grossen Anzahl
von ringförmig disponierten Bündeln (Moronobeen und Garcinieen) oder mehr
kurz mit einer grossen Anzahl von Bündeln (Calophylleen) ist.

Speziell interessant würde eine Studie der Gattungen Kielmeyera, Caraipa,
Hoploclathra, Marita, Makurea und Endodesmia sein in beziig auf die Beschaffen-
heit des Embryo und die Art der Keimung, sowie des Platzes ihrer Einreihung
im System.

1291. Keller, Robert. Zur Kenntnis der Sectio Brathys des Genus
Hypericum. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 175 — 191.) N. A.

Verf. charakterisiert die Sektion und ihre Teile wie folgt. Wegen der
neuen Arten vgl. „Index nov. gen. et spec".

Sectio Brathys Spach.
Herbae, suffrutices fruticesve, folies patulis vel dense confertis, imbri-
catis. Flores solitari vel plerumque in cymis multifloris. Calicis laciniae
plerumque inaequales. Petala post anthesin persistentia, convoluta. Stamina
libera vel solum ima basi connexa, saepe numerosa, post anthesin persistentia.
üvarium uniloculare. Styli 3. rare 4—5, stigmatibus subcapitatis, disco-capi-
tatisve. Ovula placentis 3, rare 4 — 5, parietibus inserata, Capsula 3-, rare 4 — 5-
valvis; valvae papyraceae, subcoriaceae longitudinaliter striatae. Semina
plerumque numerosa, faveolato-punctata.

Subsectionum Clavis.
1. Frutices suffruticesve.

1*. Folia saepe dense conferta, imbricata, + coriacea vel crassiuscula,
linearia, lanceolato-linearia vel ovato-lanceolata, rare squamosa, +
caneliculata. Flores in apice ramulorum solitarii, breviter jjedun-
culati vel in cymis terminalibus plerumque paucifloris. Stamina
numerosa. Styli plerumque 3, rare 5 (abnorme 4), distineti vel rare
usque ad apicem connati.

214 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [214

A. Subsectio Eubrathys Rob. Keller in Engler u. Prantl, Pflanzenfam.
III. 6. 214 (1893).

2*. Folia coriacea, lata profunde cordata vel connata. Flores in cymis
laxifloris. Styli 3 — 5, distincti.

B. Subsectio Connatum Rob. Keller in Engler u. Prantl, Pflanzenfam.
III. 6. 214 (1893).

2. Herbae annuae perennesve. Flores parvae. Inflorescentia multiflora.
Stamina plerumque haud numerosa. Styli 3, rare (4 — )5.
e) Subsectio Spachium Rob. Keller — Synon. Spachium Rob. Keller in
Engler u. Prantl, Pflanzenfam. III. 6. 214 (1893) et Multistamineuni
Rob. Keller, 1 c.

1292. Keller, Rob. Hyperica (Sect. Brathys) andina. (Engl. Bot. Jahrb..
XLII, 1908, p. 129—130.) N. A.

Neue Hypericum- Arten.

Halorrhagidaceae.

Neue Tafel:
Laurembergia repens Berg, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 118.

1293. Modilewski, Jakob. Zur Embryobildung von Gunnera chilensis.
<Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 550—555, Tafel XL)

Siebe „Morphologie der Zelle".

1294. Wagner, A. Über die Anpassungsfähigkeit von Myriophyllum
verticillatum. (Ber. naturw.-mediz. Ver. Innsbruck, XXXI, 1907/08, p. XX
bis XXI.)

Nicht gesehen.

Hamamelidaceae.

Neue Tafeln:
Corylopsis pauciflora S. et Z. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest., II, 1908, tab. 26,

fig. 1-12.
C spicata S. et Z., 1. c, fig. 13 — 25.

Distyliimi racemosum S. et Z., 1. c, tab. 25, fig. 18—32.
Hamamelis japonica S. et Z., 1. c, tab. 25, fig. 1 — 17.
Trkhodadus ellipiicus Eckl. et Zeyh. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908,

tab. 05.

1295. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 12. Liqni-
dambar styraciflua L. (Mercks Rep., XVII, 1908, p. 31—34, fig. 1—21.)

Siehe „Anatomie".

Hernandiaceae.

1290. Dünn, Stephan Troyte. A Revision of the Genus llligera
Blume. (Journ. Linn. Soc. London, XXXVIII, 1908, p. 290—297.) N. A.

Verf. gibt folgende Diagnose der Gattung:

Frutices ope petiolorum scandentes. Folia alterna, 3-(vel 5)-foliolata,
foliolis petiolatis. Inflorescentiae cymosae, bracteolata. Flores hermaphroditi ;
calycis tubus ovoideus, superne constrictus, ovario adnatus; limbus 5 partitus,
lobis patentibus, valvatis, oblongis, deciduis; petala 5, sepalis textura similia:
stamina 5 cum glandulis 5 oppositipetalis alternantia, ima basi nectariis duobus
lateralibus vel dorsalibus appendiculata, nectariis tubulosis extrorsis conspicuis
vel solidis obscuris, antheris ovatis, lateraliter valvatim dehiscentibus; ovarium
1-loculare; Ovulum unicum pendulum; stylus brevis, in stigma peltatum

215] Halorrhagidaceae. üernandiaeeae. Hippocrateaoeae. Hydnoraoeae. 215

undulatum vel varie incisum expansus: fructus indehiscens, siccus, 2-4-alatus;
seinen oblongum cotyledonibus planoconvexis, radicula inclusa. Genus
geronlogeum tropicum species 12 asiaticas includens et unani africanam.

Die Arten gliedern sich in zwei Sektionen, deren eine sich durch ver-
hältnismässig grosse röhrige Nektarien aviszeichnet (Appendiculatae), wogegen
die andere die Arten umfasst, wo an Stelle dieser Nektarien kleine solide
Drüsen treten (Parviglanchdatae).

Verf. gibt einen Schlüssel für die Arten und kurze Diagnosen. Hin-
sichtlich der systematischen Stellung schliesst er sich an Pax, in Pflanzen-
familien 1889, an.

, l Leaves ternate 2

< Leaves quinate pentaphylla Welv.

c, ( Infrutescence with stiff setose hairs villosa C. B. Clarke.

' Infrutescence glabrous or softly hairy 3

o ( Xectaries inflated, large 4

' Nectaries obscure • . 9

( Calyx-tube clothed with spreading red hairs (yellow in a dried state) 5

' Calyx-tube glabrous or softly pubescent 6

Calyx-lobes externally tomentose dasyphylla Miq.

Calyx-lobes glabrous or puberulous rodantha Hance.

i Calyx-tube glabrous or nearly so ternata Dünn.

I

/.

o.

( 'al vx-tube softly and densely pubescent 7

Leaves with tufts of hair in vein-axils 8

Leaves glabrous or uniformly hairy trifoliata Dünn.

. Veins immersed appendiculata Blume.

8. ] Veins prominently reticulate on the lower surface

' khasiana C. B. Clarke.
q I Filaments cylindric 10

< Filaments winged 12

... l Leaf-veins ascending 11

< Leaf-veins patent, stamens boarded pulchra Blume.

, , l Leaves glabrous, lanceolata parviflora Dünn.

' Leaves pubescent, ovate-cordate cordata Dünn.

19 ( Cal>x-tube puberulous " celebica Miq.

• Calyx-tube glabrous platyandra Dünn.

Hippocrateaceae.

Neue Tafel:
Salacia Dusmii Loes. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. SL

Hippuridaceae.

1300. Taqq, H, F. Note on abnormal leaves of Hippuris. (Trans,
and Proc. bot. Soc. Edinburgh, XXIII, 1908, p. 237—241.)

Siehe „Teratologie".

Humiriaeeae.

Hydnoraceae.

1301. Giacomelli, E. Prosopanche Bur meistert De Bary. (Anal. Soc. Ci.
Argent, LXII, 1906, p. 5—22.)

Nicht gesehen.

216 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [216

Hydrocaryaceae.

Hydrophyllaceae.

1302. Tanniann, 0. Mikroskopisch-pharmacognostische Beiträge
zur Kenntnis einiger neuerer Arzneidro,ü,en. (Pharmaceut. Centralh..
1908, p. 159—166, Fig. 1-4.)

Betrifft: Eriodktyon Californicum.

Siehe „Anatomie".

Hydrostachydaceae.

Neue Tafel:
Hydrostachys multiftda A. Juss. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 5ü.

Icacinaeeae.

Neue Tafel:
Apodytes dimidiata E. Mey. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 85.

Juglandaceae.

Neue Tafeln:
Juglans regia L. var. sinensis (Jas. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II,

1908, tab. 5, fig. 1—15.
J. Sieboldiana Maxim., 1. c, fig. 16—29.
Pterocarya, Behderiana C. K. Sehn., in Sarg., Trees a. Shrubs, II, 2, 1908, tab. 137.

1304. Bates, C. G. A drought-resistant hickory. (Science, II,
XXVII, 1908, p. 473—474.)

Nicht gesehen.

1305. Dode, L.-A. üarya Diguetii spec. nov. (Bull. Soc. Bot. France»
LV, 1908, p. 470—471, Fig.) N. A.

1306. [Gibson, H. H.] American forest trees — 72. Bitternut hickory.
Hickoria minima Britt. (Hardwood Record, XXV, 1908, p. 16 — 17, 111.)

1307. [Gibson, H. H.J American forest trees - - 47. Butternut, Juglans
cinerea Linn. (Hardwood Record, XXIII, 1907, p. 16—17.)

1308. [Gibson, H. H.J American forest trees — 51. Pignut, Hicoria
glabra Britton. (Hardwood Record, XXIV, 1907, p. 16 — 17.)

1309. Jepson, W. J. The distribution of Juglans californiea Wats.
(Bull. South California, Ac. Sc, VII, 1908, p. 23—24.)

Siehe „Pflanzengeographie".

1310. Koehne, E. Abnorme Früchte von Juglans nigra L. (Mitt. D.
Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 197—199, Abb.)

Es werden Früchte beschrieben, die am Scheitel statt einer nabelartigen
Erhöhung eine breite, flache, sehr scharf begrenzte Grube von unregelmässig
elliptischem Umriss tragen.

1311. Schwappach, A. Erfahrungen über den Anbau von Juglans
nigra und Carya alba. (Zeitschr. f. Forst- u. Jagdwes., XL, 1908, p. 772 — 776.)

Forstlich.

1312. Fritsch, F. E. The anatomy of the Julianaceae considered
from the Systematic Point of View. (Trans. Linn. Soc. London, 2. ser.,
Bot., VII, 1908, p. 129—151, 2 Text-fig., pl. 20—21.)

Siehe „Anatomie".

217] Hydrocaryaceae. Hydrophyllaceae. Icacinaceae. Juglandaceae. 217

1313. Hallier, Hans. Über Jxiliania, eine Terebinthaceengattung
mit Cupula, und di<? wahren Stamm eitern der Kätzchenblütler.
Neue Beiträge zur Stammesgeschichte nebst einer Übersicht über das natür-
liche System der Dicotyledonen. Dresden, C. Heinrich, 1908, 210 pp., 6 M.
(Beih. Bot. Centrbl., XXIII, II, p. 81-265, 1908.)*)**)

Der Verf. ist bekannt als verdienstvoller Forscher in der Stammes-
geschichte der höheren Pflanzen. Wenn auch die Ergebnisse seiner Unter-
suchungen vielfach angefochten werden und sich z. T. auch wohl viel ge-
wichtige Gründe gegen die Richtigkeit seiner Hypothesen anführen lassen, so-
ist doch ganz ohne Zweifel der unermüdliche Eifer und der eiserne Fleiss
anzuerkennen, mit denen Hallier sich dem Studium der Materie hingibt. Anzu-
erkennen ist vor allen Dingen auch die Vielseitigkeit seiner grundlegenden
Untersuchungen, bei denen er sich nicht, wie dies in früheren Zeiten fast
allein üblich war, lediglich auf morphologische Vergleiche der Reproduktions-
organe beschränkt, sondern bei denen er auch die vergleichende Morphologie
der Vegetationsorgane, die vergleichende Anatomie im allgemeinen, Ent-
wickelungsgeschichte, Phytopaläontologie und Phytochemie in gebührender
Weise berücksichtigt und zu Schlussfolgerungen benutzt.

Anlass zu vorliegender Arbeit gab die merkwürdige Gattung Juliania
Schlechtendal, deren erste Art 1828 von Schiede in Mexiko gesammelt, aber
erst 1843 von Schlechtendal beschrieben und als Vertreter einer besonderen
Familie betrachtet wurde. Bentham und Hook er stellten dann 1862 die
Gattung als fraglich zu den Anacardiaceae. Ihnen folgte Baillon 1874, der
Juliania in die Nähe der madagassischen Faguetia stellte, während Eng ler sie
1883 aus der Familie ausschloss und Harms 1897 sie unter den Gattungen
zweifelhafter Stellung bei den Angiospermae anführt. Jadin 1894 setzte sie
zu den Sinmrubaceae, Dalla Torre und Harms stellten sie 1901 in ihren
Genera wieder als zweifelhaft zu den Anacardiaceae- Hemsley 1901. der die
Gattung in den Tafeln 2722 und 2723 von Hookers Icones trefflich im Bilde
wiedergibt, ist endlich wieder der Meinung, dass es sich um den Vertreter einer
neuen, mit Burseraceae, Juglandaceae und Anacardiaceae verwandten Familie
handelt. Hallier endlich in seinem „Provisional scheme . . ." erblickte in den
Julianieae eine besondere Sippe der Juglandaceae, was er in der vorliegenden
Arbeit beweisen wollte. Indessen kam er doch zu ganz abweichenden Re-
sultaten. Da es zu weit gehen würde, den Untersuchungen Halliers zu folgen,
seien hier nur die Resultate angeführt. Die dreifrüchtige Cupula Hess eine
nahe Verwandtschaft mit der Untergattung der Fagaceae Castanopsis vermuten,
anderseits deuteten eine Reihe von Merkmalen, die den Fagaceae fehlen, wie
z. B. das Fehlen der Nebenblätter, das Vorhandensein von Harzgängen im
Mark, die Fiederblätter, das einfache Integument, die reich verzweigten männ-
lichen Blütenstände, die perianthlosen weiblichen Blüten, die immer ge-
schlossene Cupula, die z. T. mit der Fruchtwand verwachsen ist, das harte
Pericarp der Nüsse, der einfächerige und eineiige Fruchtknoten, der massig

*) Herr Hallier war so freundlich, dieses von mir gefertigte Referat
durchzusehen und Anmerkungen dazu zu .^eben. (Juli 1910.) F. Fedde.

**) Vgl. auch das Autorreferat im Botan. Centralbl., CX (1909), p. 184—189.
— Inzwischen ist mir im Reichsherbarium zu Leiden beim Aufarbeiten der
Indeterminaten und der Revision zahlreicher Familien ein ungeheures Material
durch die Hände .^eganiA'en. wodurch sich zahlreiche neue Aufschlüsse und
Änderungen ergaben, von denen die hauptsächlichsten hier kurz Erwähnung
finden mögen. Hallier.

218 C. K. Sohneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [218

-entwickelte Funiculus und der Obturator auf die Jvglandaceae hin, bei denen
eine Reihe dieser Merkmale vorkommen. Eine Pollenuntersuchung ergab
jedoch einen ganz abweichenden Bau des Pollens, und es stellte sich heraus,
dass Harzgänge nicht nur im Marke, sondern vor allem auch in der Rinde sich
fanden, weshalb H. zu der Überzeugung kam, dass Juliania zu den Rhoideae in
die Nähe von Pistacia und Rlius gehöre, wofür auch noch eine ganze Reihe
anderer Merkmale, wie die Entstehung des Korkes an der Oberfläche der
Zweige, die Durchsetzung der primären Rinde und des Weichbastes mit
dunkelbraunen Gerbstoffzellen (Anacardiaceae), das Fehlen des (bei den
Juqlandaceae vorhandenen) sekundären Hartbastes, die äussere Ähnlichkeit mit
manchen Rhus-Aiten, geltend gemacht werden. Indessen ist Rhus, der Kron-
blätter besitzt, nicht am nächsten verwandt mit Juliania. Am ehesten könnte
dies die kronenblattlose Haplorhus sein , zumal sich diese in ihrer geo-
graphischen Verbreituni;- gut an Juliania anschliesse; indessen besitzt Haplorhus
einfache Blätter und seitlich mit drei sitzenden, getrennten Narben versehene
Fruchtknoten. Es bleibt daher als nächste Verwandte nur Pistacia übrig, die
in allen Einzelheiten des Baues der vegetativen und reproduktiven Organe
eine hochgradige Übereinstimmung mit Juliania aufweist. Somit wäre die
Gattung untergebracht.

Des weiteren vereinigt nun Halber die Anacardiaceae und Burseraceae
nach Jadin als Terebinthaceae, indem er auf die Stellung der Samen-
knospen, ob epi- oder anatrop, nur einen ganz geringen Wert legt. Dann
■wendet er sich den Geraniales und Sapindales zu. Er will zu den Geraniales
in seinem Sinne nur Geraniaceae (excl. Neviracleae), Oxalidaceae, Balsam.inaceae
(Limnantheae, Tropaeoleae und Balsamineae), Zygophyllaceae und Linaceae (wahr-
scheinlich mit Einschluss von Asteropeia und Ancistrocladus, Erythroxylaceae und
Humiriaceae) rechnen, die sich fast alle durch epitrope Samenanlagen auszeichnen.
Die Geraniales leitet er durch Vermittelung von Eryihroxylum und von Hugonieae
von ausgestorbenen Luxemburgieae-artigen OcJinaceae ab*). Weiter sucht H. die
Zugehörigkeit der Limnantheae trotz ihrer apotropen Samenknospen zu den
Geraniales nachzuweisen, indem er die fünf episepalen Staminaldrüsen wie
Urban bei Linum als Staminodien aufgefasst wissen will. Die Gattung
Parnassia, die er früher für verwandt mit Limnanthes gehalten hat, stellt er
als Farnassiaceae zu Ranunculaceae, Nymphaeaceae, Droseraceae (excl. Roriduleae)
und Sarraceniaceae (incl. Nepenthes. excl. Cephalotus)**). Auch die Gattung
Peganum will er den Geraniaceae genähert wissen.

Die Euphorbiaceae sind mit den Papayaceae aus Sterculiaceae entstanden ***)

*) Die Linaceae s. ampl. scheinen allerdings in die Verwandtschaft der
Ochnaceae, Guttiferae und Ternstroemiaceae zu gehören, nicht zu den Gruinales.
Die letzteren dürften sich wohl durch bäum- und strauchartige, fiederblättrige
Formen, wie Averrhoa. Connaropsis und Guajacum, seitlich an die Capparidaceae,
Polygalaceae, Connaraceae, Caesalpinieae und Rutaceae anschliessen. Auch die
perigynen Tropaeoleae und die Balsamineae passen in diese Ordnung nicht recht
hinein. Erstere müssen vielleicht zu den Passifforales zurückversetzt werden:
letztere hingegen haben, abgesehen von dem auch bei Roydsieae vorkommenden
pentameren Blütenbau, vieles mit den Fumarieae, Cleomeae und Crucifcrae
gemein. Hallier.

**) Parnassia betrachte ich jetzt als ein mit Saxifraga corymbosa H. f. et
Tb. und diversifolia Wall, vom Himalaja verwandtes Derivat von Saxifraga,
die Sarraceniaceae (ohne Nepenthes) als eine Sippe der Firolaceae. Hallier.

***) Trotz ihrer frappanten Anklänge an die Sterculiaceae scheinen die
Euphorbiaceae nicht mit Columniferae verwandt zu sein, sondern neben den

2191 Juglandaceae. 219

CaUitriche gehört nicht zu den Halorrhayidaceae, sondern scheint ein ver-
kümmerter Abkömmling der Gratioleae zu sein. Die Trigoniaceae, die von den
Vochysiaceae*) abzutrennen sind, bilden mit letzteren und den Proteaceae, Dicha-
petalaceae, Polygalaceae (incl. Kramera) und Tremandr aeeae eine besondere
Ordnung der Trigoniales, die neben den Caesalpinieae, Kielmeyereae, Violaceae u. a.
von den Luxemburgieae abstammen.

Die Malpighiaceae lassen sich vielleicht mit den Gonnaraceae, Leyuminosae
(incl. Morinya und Bretschneidera), sowie Sapindaceae (incl. Hippocastaneae, excl.
Aceraceae) zu den Sapindales zusammenschliessen, die ebenfalls von den Luxem-
burgieae abstammen.

Der Rest der Englerschen Geraniales ist mit einem Teile der Sapin-
dales und Posales zu den Rutales zusammenzuschliessen. Die Buxaceae wurden
schon früher mit den Hamamelidaceae vereinigt, die Empetr aeeae, wie dies auch
vanTieghem wünscht, zu den Ericaceae gestellt.

Pentaphylax gehört zu den Termtroemieae in die Nähe von Eurya.
Corynocarpus gehört zu den Posaceae direkt neben die Amyydaleae.

Die Cyrillaceae, Aquifoliaceae, Celastraceae und Hippocrateaceae bilden zu-
sammen mit Ochnaceae, Chlaenaceae, Quiinaceae, Guttiferae, Cistaceae, Tamari-
eaceae, Ter ustroemi aeeae, Marcgraviaceae, Symplocaceae die Ordnung der Cisti-
florae, die durch Vermittelung ausgestorbener Luxemburyieae-a.vt\gei: Ochnaceae
von B erb er idopsis- artigen Berberidaceae abstammen.

Stackhousia gehört zu den Abkömmlingen der Saxifray aeeae. Die Staphylea-
ceae gehören mit den Gunoniaceae zu den Abkömmlingen der Luxemburgieae.
Durch die Icacinaeeae (incl. Rh aptopetal aeeae) leiten sich die gesamten Santa-
lales ab von den Ebenales oder neben ihnen von den Gordonieae.

Zu den Rutales, für die Hallier die Rutaceae als Ausgangspunkt nimmt,
gehören zunächst die Meliaceae und die Simarubaceae. Letztere Familie scheint
ihm allerdings, wie sie Engler betrachtet, unnatürlich zu sein, indem die
Surianeae wohl mit den Zyyophyllaceae verwandt sind, während Kirkia zu den
Meliaceae gehört, die von den Terebinlliaceac-Bursereae abzuleitenden Irvinyiaceae
selbständig sein dürften, und Picramnia, Alvaradoa und Picrodendrum aus der
Familie auszuschliessen sind. Dagegen dürfte Cneorum gleichwie Nitraria,
bisher zu den Zygophyllaceae gehörig, wohl zu den Rutaceae zu rechnen sein.

Rhamnaceae und Ampelidaceae bilden die Franyulinae, die anscheinend
unmittelbar von Perrottetia-artigen Brexieae abzuleiten sind.

Aryophyllum, Corokia und Cuttsia sollen zur Sippe der Aryophylleae zu-
sammengestellt werden, die bei den Saxifrayaceae zunächst in Ermangelung
eines besseren Platzes bleiben könnten.

Bei den Ternstroemiaceae muss Asieropeia vielleicht zu den Hayonieae
gesetzt werden, ferner wohl auch Tetramerista zu den Marcgraviaceae-

Juliania nun endlich ist, trotzdem sie von den Juylandaceae zu den Tere-
bii/fhaceae versetzt ist, doch ein wichtiges Verbindungsglied zwischen beiden
Familien. Juliania ist nämlich als stark reduzierter Abkömmling von Pistacia
anzusehen, und man kann annehmen, dass die Juylandaceae bei noch weiter

Dichapetalaceac von G'asear/eae-artigen Flacourtiaceae abzustammen, wodurch
sie auch den Salicaceae, Passifloraceae und den von letzteren abstammenden
Papayaceae wieder etwas genähert werden. Hallier.

*) Die Triyoniaceae und Vochysiaceae sind nicht verwandt mit Proteaceae,
Dichapetalaceae, Polyycdaceae usw., sondern anscheinend mit den Guttiferae-
Kielmeyereae und den Cunoniaceae. Hallier.

220 C- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [220

fortgeschrittener Reduktion von Blüten und Blütenständen im westlichen
tropischen Amerika aus Juliania-ähnlichen Terebinthaceae entstanden sind, so
dass man sie zu letzterer Familie wohl als Sippe der Jnglandeae stellen
könnte, wieder ein Beweis dafür, dass die unnatürliche Gruppe der Apetalae
polyphyletisch von den Choripetalae abzuleiten wäre.

Die Gnetaceae sind, trotzdem sie mit den Dicotyledoneae eine gewisse
Ähnlichkeit haben, bei den Gymnospermae zu lassen. Die Casuarinaceae, früher
immer als Mittelglied zwischen Angiospermae und Gymnospermae betrachtet,
müssen nun mit Margaret Benson als eine Sippe der Bel/ilaceae, die stark
xerophil geworden ist, aber gleich Carpinus noch bitegmisch ist, betrachtet
werden. Ja nicht einmal die Coniferae können als Stammeltern der Angio-
spermae betrachtet werden. Als solche können vielmehr nur undifferenzierte,
umbildungsfähige Gymnospermae von der Art der Bennettitaceae und Cycadeae
betrachtet werden. Halber geht hierauf dann noch in Beispielen (Cycadeoidea
ingcns) näher ein.

Halber beschäftigt sich dann noch weiter näher mit der Verwandtschaft
der Terebinthaceae und der Juglandaceae und fordert dazu auf, festzustellen, ob
auch bei Pistacia und Rhus Chalazogamie vorhanden ist.

Nun sucht Halber die Verwandtschaft der Amentifiorae mit den eben
genannten beiden Familien festzustellen. Allerdings müssten zunächst die
Salicaceae ausscheiden. Diese sind aber als reduzierte Abkömmlinge Homalieae-
artiger flacourtiaceae zu betrachten. Auch Lacistema müsste hierher als ein
Reduktionsprodukt der Homalieae gerechnet werden, während Llavea (Neo-
pringlea) sich Trimera von den Homalieae nähert.

Peridiscus und vielleicht auch Plnjsena sind, nachdem beide schon früher
durch Warburg von den Flacourtiaceae ausgewiesen worden sind, zu den
Roydsieae der Capparidaceae zu stellen, Psiloxylum dagegen wohl von den
Flacourtiaceae zu den Guttiferae, das ebenfalls ausgewiesene Plagiopterum zu
den Hippocrateaceae.

Die Passifloraceae stammen ab von den Paropsieae der Flacourtiaceae und
von ihnen stammen wieder die MalesJierbiaceae und die Turneraceae. Weiter
hinten wird dann auch noch nachgewiesen, dass von den Passifloraceae auch die
Papayaceae (einschl. Pileus Ramirez, der im Index von Dalla Torre und Harms
vergessen worden ist), die Aehariaceae und die „Peponiferae" abstammen. Zu
letzteren gehören die Cucurbitaceae, Begoniaceae und Datiscaceae. Von Theineae von
der Art der Kielmeyereae und Luxemburgieae stammen die Cistaceae, Bixaceae und
Cochlospermaceae ab, die Yiolaceae von den Flacourtiaceae, die wieder mit den
Tiliaceae verwandt sind und vielleicht mit den Columniferae aus Luxemburgieae
entstanden sind*). Die Passiflorales werden also wesentlich enger begrenzt.

Weiterhin wendet sich dann Halber den Umbell iflorae zu. So weicht
zunächst Toricellia von den übrigen Cornaceae ab und ähnelt mehr den Tetra-
meleae und Brexieae. Hierbei sucht Halber Irrtümer in Wangerins Disser-
tation über die Cornaceae nachzuweisen und die Art und Weise der Polemik
von Mez und Gilg abzuweisen. Als Stammgruppe der Cornaceae, Caprifoliaceae,

*) Die Cistaceae gehören vielleicht zu den Rhoeadinae. Die Bixaceae und
Cochlospermaceae stelle ich jetzt neben die Tiliaceae zu den Columniferae, die
ich nicht mehr für Verwandte der Theineae und Flacourtiaceae halte, sondern
wieder für solche der Anonaceae. Von letzteren ist Eupomatia zu den Magnoliaceae
zu versetzen. Hallier.

221] .Juglandaceae. 221

Rubiaceae usw. nimmt Hallier die Philadelpkeae an*). Es werden dann die
Cornaceae in ihrer Zusammensetzung festgestellt. Ausser Toricellia gehört
hierher auch das von Wangerin ausgewiesene Alangium (mit Pölyosma und
Lissocarpa [früher Styracacea])*), die Garryeae, von denen Garrya durch Wangerin
von den Cornaceae ausgewiesen war, mit Curtisia und Grubbia, welche letztere
man als gesonderte Familie neben die Santalaceae stellte, die Helwingieae
(mit Toricellia, Melanophylla, Aucuba, Kaliphora, Helwingia und Griselinia).
Corokia muss dagegen neben Argophyllum zu den Saxifragaceae gestellt werden_
dgl. Cuttsia: alle drei sind zu den ArgophyUeae zu vereinigen. Zu den Corna-
ceae gehört auch die den Helwingieae fernerstehende Gattung Cornns, ferner
Davidia (mit Unrecht von Wangerin aus der Familie entfernt), Mastixia, sowie
die früheren Caprifoliaceae Yiburnum, Sambucus und Adoxa, vielleicht auch
Phyllonoma. Von den Cornaceae stammen nun, also nicht unmittelbar von den
Phüadelpheae, die Umbelliferae ab einschliesslich der Araliaceae.

Nun wendet sich Hallier den Sympetalae zu, die er eine künstliche und
ganz unnatürliche Pflanzengruppe nennt, die durchaus einen polyphyletischen
Ursprung haben müsse. Weitaus der grösste Teil lässt sich von den Lnxem-
burgieae ableiten, aus denen sie aber polyphyletisch, zum Teil direkt, zum Teil
durch Vermittelung anderer Descendenten entstanden sein dürften. Von Einzel-
heiten gibt Hallier in seiner Übersicht folgendes an :

Die Bicornes (excl. Lennoaceae) sind durch die Clethraceae-Siipipe der Saurau-
jeae (Actinidia, Saurauja und Clematoclethra) abzuleiten von Brexieae und sind
verschwistert mit den Primulinae**). Zu den Bicornes gehören auch die Empetra-
ceae, zu den Clethraceae die Roriduleae. Die Plumbaginaceae gehören neben die
Caryophyllaceae, Polygonaceae und Nyctaginaceae zu den Centrospermae. Die
Symplocaceae sind Abkömmlinge oder vielleicht nur eine Sippe der Ternstroemia-
ceae. Die Ebenaceae, Styracaceae und Sapotaceae bilden zusammen die Ordnung
der Styracinae Barth oder der Diospyrinae Eichlers und stammen neben den
Ternstroemiaceae und Olacaceae (incl. Bhaptopetaleae, Brachynema, Ctenolophon,
Diclidanthera, Icacinaceae, Opilieae und Champercia) ab von Brexieae***)- Anordnung
der Gattungen der Styracaceae: 1. Styraceae: Alniphyllum, Bruinsmia, Styrax,
Foieolaria und Pamphilia, 2. Halesieae: Halesia. Die Caprifoliaceae leiten sich
durch Biervilla und Leycestera neben den Cinchoneae und Cornaceae ab von

*) Die Rubiaceae, Caprifoliaceae (?) und Oleaceae (?) stammen ab von
Loganiaceae, diese und die Gentianaceae von den Apocynaceae, die mit ihren
langen Follikeln und häufig noch wechselständigen Laubblättern den Aus-
gangspunkt der gesamten Tubiflorae zu bilden scheinen. Aber auch mit echten
Caprifoliaceae und mit Saxifragaceae sind die Cornaceae kaum verwandt, viel-
mehr scheinen sie sich durch Nyssa und Davidia von Ramämelidaceae-Bucklan-
dioideae abzuleiten, wodurch die mit Harzgängen versehenen Altingieae, Mastixieae
und Umbelliferae (incl. Araliaceae) einander genähert werden. Gehören die
Alangieae nicht zu den Cornaceae, dann sind es mit den Bhaptopetaleae ver-
wandte Olacaceae, aber nie und nimmer Myrtinae, von denen auch die Thyme-
laeinae mit den Gonystylaceae als Ausgangspunkt zu trennen sind. Silvianthus
und Carlemann ia sind weder Rubiaceae noch* Caprifoliaceae, sondern wahrschein-
lich Gesneraceae. Hallier.

**) Die Bicornes und Primulinae stammen ab von den Ternstroemiaceae.
von denen Trematanthera zu den Clethraceae- Sauraujeae zu versetzen ist.

Hallier.

***) Die Diospyrinae und Santalales sind kaum verwandt mit Theineae und
Rosales, sondern wahrscheinlich mit Anonaceae-axiAgen Pö'ycarpicae.

Hallier.

222 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [222

Deutzia-artigen Philadelpheae und sind die Stammeltern der Valerianaceae und
Dipsacaceae. Triosteum und die Linnaeeae sind reduzierte Lonitzereae. Lepipogon
Bertol. gehört sicher zu den Rubiaceae, vielleicht in die Nähe von Randia.
Die Cucurbitaceae gehören nicht zu den Campannlatae, sondern zu den Abkömm-
lingen der Passifloraceae. Die tenuinucellat unitegmischen Loasaceae und
Campanulaceae, ohne die crassinucellat bitegmischen Gattungen Peganum und
Stachhousia, stammen nicht von Passifloraceae oder Peponiferae ab, sondern von
Menyantheae- und Hydrophyllaeeae artigen Tubifloren. Die Pittosporaceae ge-
hören an den Anfang der Tubiflorae und durch ihre Vermittelung leiten sich
auch die letzteren, incl. Convolvulaceae, neben den Santalales, Styracinae, Tern-
stroemiaceae usw. ab von Brexieae*). Pittosporwm bicrurium Schinz et Dur. ist
ein DicJtapetalum. Cheiranthera gehört nach ihren bastständigen Harzgängen
sicher zu den Pittosporaceae. Die Gcntianaceae sind verwandt mit den Pole-
moniaceae und Borraginaceae (incl. Hydroptyllaceae, Plocosperma und Lennoaceae).
Die Oleaceae stammen neben den Myoporaceae und Bigyioniaceae ab von Pau-
loionia- artigen Cheloneae. Desfontainea ist ein Columellia und Veronica sect. Hebe
nahestehender alter Scrophulariaceae-Tjpus**). Retzia gehört zu den Cheloneae
neben Ixianthes. Die Callitricheae sind vielleicht verkümmerte Qratioleae. Die
grosse Mehrzahl der Tubiflorae, auch die Plant aginaceae, stammen ab von
Scrophulariaceae. Die noch crassinucellat bitegmischen Salvadoraceae sind mit
keiner Familie der bisherigen Sympetalae verwandt, sondern vermutlich mit den
Celastrales oder den Anipelidaceae.

"Was die Rosales betrifft, so wurden diese schon früher den Tern-
stroemiaceae genähert und durch Vermittelung der Quillajeae werden sie nun
ebenfalls von Luxembnrgieae-avügen Ochnaceae abgeleitet, nicht etwa durch die
Kerrieae und Spiraeeae von den Grossidariaceae oder Saxifragaceae. Die
Polycarpie der Potentilleae und Roseae hält Hallier für etwas sekundär Er-
worbenes, für etwas ganz anderes jedenfalls wie die Polycarpie der Monimiaceae
und Rauunculaceae. Im einzelnen macht Hallier folgende Angaben:

Donatia ist eine ßeduktionsform der Brexieae-Gattung Chalepoa. Die
Cunoniaceae stammen ab von Brexieae und umfassen auch Banera. Eucryphia
und Medusagyne. Die Saxifragaceae umfassen Thomassetia und Strasburgera
sowie Perrottetia. Ribes ist nur ein kräftiger entwickelter, holzig gewordener
Descendent der Saxifrageae. Die Tetrameleae sind nicht verwandt mit den
Flacourtiaceae und Salicaceae, sondern gehören zu den Brexieae neben Dedea.
Die Escallonieae, Philadelpheae (incl. Pterosiemon), Hydrangeae, Saxifrageae usw.
stammen ab von Brexieae, dgl. auch die Stachyuraceae. Ventrale Vorwölbung
der Fruchtblätter und spreizende Griffel bei den HamameUdaceae, Saxifraga-
ceae usw. Die Saxifragaceae stammen vielleicht nicht unmittelbar von Magnolia-
ceae ab, sondern von HamameUdaceae. Die Argophylleae incl. Corokia wurden
schon vorher erwähnt. Zu den Rosaceae gehören Dichotomanthes und Stylo-
basium, Corynocarpus, als Synonym zu Prinsepia auch Plagiospermum, die Xeu-
radeae aber nicht zu den Geraniaceae oder Rosaceae, sondern zu den Malvaceae
als eine nahe Malvastrum in Südafrika aus Malvinae entstandene Untersippe

223] Juglandaceae. 228

Neuradinae- Die Rosaceae sind nicht verwandt mit den Monimiaceae und
Ranunculaceae, sondern durch die Quillajeae, Pomeae und Amygdaleae mit den
Ternstroemiaceae und Brexieac. Im phyletischen Zusammenhang der einzelnen
Sippen der Rosaceae stimmt Hallier im grossen und ganzen mit Engler überein,
nur meint er, seien die Leguminosae weder mit den Chrysobalaneae noch über-
haupt mit irgend welchen Rosaceae näher verwandt.

Auch über die Abstammung der Celastrales, von denen er schon früher
annahm, dass sie von den Saxifragaceae abstammten, ist Hallier zur Klarheit
gekommen. Er schreibt:

Die Celastrales stammen nicht von Philadelpheae oder Hgdrangeae ab,
sondern von Brexieae. Die Aquiföliaceae sind reduzierte Brexieae, die Celastraceae
verwandt mit den Aquiföliaceae und Brexieae, die Hippocrateaceae (incl. Plagio-
pterum) mit Celastraceae und Brexieae. Die gemeinsamen Merkmale der
Celastrales werden angegeben und die Verwandtschaft derselben mit Englers
Theineae, durch die Aquiföliaceae und Cyrillaceae, erläutert. Siphonodon gehört
zu den Celastraceae neben die Evonymeae- Gattung Lophopetalum. Die Rhamna-
ceae und Ampelidaceae gehören nicht zu den Celastrales, sondern bilden die von
Perrottet ia-a.rt\gen Brexieae abstammende Ordnung der Rhamnales.

Schon weiter oben war von den Guttiferae und verwandten Gruppen die
Rede. Hallier stellt hier als neue Reihe die Lamprophyllae Bartling auf. Diese
entsprechen den Guttales und Theales Lindl., den Guttiferales Benth. et Hook.,
den Cistiflorae Eichl., den Theineae Engl. Im übrigen zieht Hallier die Er-
gebnisse seiner Untersuchungen, soweit sie nicht schon oben erwähnt wurden,
folgendermassen zusammen:

Abstammung der Cistaceae, Bixaeeae und Cochlospermaceae von Kielmeyereae
oder neben diesen und den Columniferae von Luxemburgieae. Symplocos ist ver-
wandt mit den Ternstroemiaceae und Aquiföliaceae; die Theineae sind durch ge-
meinsame Abstammung von Brexieae verschwistert mit den Rosaceae, Cunoniaceae,-
Celastrales usw., die Cyrillaceae verwandt mit den Ternstroemiaceae, Brexieae
und Aquiföliaceae. Die Verbreitung von Korkwarzen am Blatte bei Theineae,
Celastrales, Chrysobalaneae, Myrtineae, Loranthaceae, Tubiftorae usw. scheinen auf
eine gemeinsame Abstammung von den Ochnaceae hinzudeuten.

Die modifizierten Rutales Lindl. fasst Hallier zu den Terebinthinae zu-
sammen und gibt folgende Einzelheiten :

Die Aceraceae sind nicht verwandt mit den Staphyleaceae, auch kaum mit
den Sapindaceae, sondern mit den Terebinthaceae. Die Rutaceae stammen ab
von Saxifragaceae (Brexieae) und sind verschwistert mit den Staphyleaceae,
Cunoniaceae. Celastraceae, Aquiföliaceae, Ternstroemiaceae, Rosaceae, Rubiaceae,
Melianthactae, Hippocrateaceae, Guttiferae (incl. Bonnetieae), Pittosporaceae, Humi-
riaceae, Myrtiflorae, Leguminosae und anderen Saxifragenae. Tetradiclis hat nach
Solereder Secretlücken und ist eine Rutacea. Die Simarubaceae (ohne die
Surianeae, Brunellieae, Irvingieae, Picramnia, Alvaradoa, Picrodendrum und Kirkia)
stammen ab von Toddaliinae. Didymeles gehört vielleicht zu den Soulameeaer
Balanites zu den Simarubaceae in die Nähe der Castelineae*). Die Meliaceae sind
nahe den Dictyolomeae, Flindersieac, Toddalieae und Simarubaceae aus Rutaceae
entstanden. Kirkia gehört vielleicht zu den Meliaceae in die Nähe der Ptaero-
xyleae und Swietenieae.

Schon oben war von der eigenartigen Beschränkung, bzw. Erweiterung

*) Oder neben Koeberlinia zu den Capparidaceae. Hallier.

224 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [224

der Sapindales die Rede, die Hallier als Aesculinae zusammenfasst und denen
er die Leguminosae anschliesst. Er sagt:

Die Leguminosae stammen nicht von Rosaceae ab, auch nicht von Rutaceae,
sondern bilden mit den Connaraceae, Mälpighiaceae, Sapindaceae und vielleicht
auch den Melianthaeeae die Ordnung der Aesculinae oder eigentlichen Sapindales,
die neben den Polygalinae, Rosaceae, Cunoniaceae, Rutales, Gruinales usw. aus
Breccieae entstanden ist. Moringa und Bretschneidera sind tricarpellate, syn-
carpische Caesalpinieae mit Myrosin. Die Dehiscenz der Antheren von Moringa
wurde in den ..Natürlichen Fflanzenfamilien" ganz falsch dargestellt; sie
springen nicht intrors auf, sondern auf dem Rücken. Die Sapindaceae sind
nicht verwandt mit den Meliaceae, sondern mit den Leguminosae. Das epider-
male Palissadensklerencbyrn der Samenschale der Sapindaceae, Melianthaeeae
und Leguminosae deutet auch auf nähere Verwandtschaft hin.

Interessant ist die Zusammenfassung der phylogenetisch ältesten Familien-
reihen Halliers zu den Proterogenae. Er fasst seine Resultate etwa folgender-
massen zusammen.

Die Polycarpicae und die von ihnen abstammenden Ranales, Aristolochiales,
Sarraceniales, Rhoeadales, Piperinae (Barth 1830). Hama melinae Brongn. (Platana-
ceae vmd Hamamelidaceae)*) und Caryopligllinae Barth (Centrospermae) lassen sich
zu einer Abteilung der Proterogenae zusammenfassen. Batis gehört zu den
Caryophyllinae neben die Crassulaceae; die Parnassiaceae zu den Sarraceniales;
Thalictrum neben Aquilegia und Lsopyrum zu den Helleboreae ; Peridiscus, Pliysena
und LCoeberlinia zu den Capparidaceae; die Tamaricaceae incl. Frankenieae zu den
Caryophyllinae neben die Caryopliyllaceae, Plumbaginaceae und Polygonaceae ; die
Cactaceae in dieselbe Ordnung neben die Portulacaceae, Aizoaccae und Crassula-
ceae; die Didieraceae neben die mit den Portulacaceae zu vereinigenden Basella-
ceae; die Fouquieraceae neben die Cactaceae und Portulacaceae; Guapira Aubl.
zu der Nyctaginaceae-Ga.ttving Piaonia. Durch Vermittelung der Crassulaceae
leiten sich die Caryophyllinae neben den Menispermaceae, Ranunculaceae, Nym-
phaeaceae, Monocotylae, Aristolochiales, Sarraceniales, Rhoeadales usw. ab von
Lardizabaleae- und Podoj)hylleae-artigen Berberidaceae. Die Proterogenae neigen
schon stark zu monocotylenähnlicher Anordnung der Gefässbündel. Die
Aristolochiales ( Aristolochiaceae, Rafflcsiaceae, Hydnoraceae, Balanophoraceae incl.
Cynomorium und Lophophyteae) sind verwandt mit den L,ardizabaleae, Menisperma-
ceae, Clematideae, Rhoeadales, Sarraceniales, vielleicht auch mit den Canellaceae,
Anonaceae und Lllicieae. Paeonia gehört neben die Lardizabaleae zu den Ber-
beridaceae. Die Dilleniaceae gehören nicht zu den Theineae, sondern als unmittel-
bare Abkömmlinge von Magnoliaceae in die Nähe der Lardizabaleae und Faeonieae
an den Anfang der Ranales. Die Podostemaceae gehören wahrscheinlich zu den
Sarraceniales oder den Ranales**). Die Myrothamneae gehören nicht zu den Hama-
melidaceae, sondern sind nur eine ursprünglichere, nahe den Saurureae, Lactoris
usw. von Magnoliaceae abstammende Sippe der Chloranthaceae***). Die Myristica-
eeae sind nicht Abkömmlinge, sondern unmittelbar von Magnoliaceae ab-
stammende Geschwister der Anonaceae. Auch die Lauraceae stammen ab von
Magnoliaceae.

*) Wahrscheinlich gehören dazu auch die Bruniaceae. Hallier.

**) Vielleicht auch die Halorrhagidaceae. Hallier.

***) Die Chloranthaceae (ohne Myrothamnus) betrachte ich jetzt als Ab-
kömmlinge von Monimiaceae. Hallier.

225] Juglandaceae. 225

Diesen Protcrogcnae setzt nun Hallier die höheren Dicotylen als Saxi-
fragenae gegenüber. Er sagt:

Nicht die Sterculiaceae, Ternstroemiaceae, Ochnaceae, Rosaceae oder Dillenia-
ceae sind das Übergangsglied von den Proterogenae zu den höheren Dicotylae,
sondern die Saxifragaceae, und die höheren Dicotylae können daher als Saxi-
fragenae bezeichnet werden*).

Nachdem schon in früheren Arbeiten Hallier versucht hatte, die Hama-
melidaceae von den ausgestorbenen, hypothetischen Drimytomagnolieae abzuleiten
und den Beweis zu erbringen, dass die Hamamelidaceae die Stamnieltern der
Amentifiorae seien, stellt er hier die Hamamelinae Brongn. wieder her und
kommt zu folgenden Ergebnissen, nachdem die Unterschiede von Juliania
gegenüber den Fagaceae, Betulaceae und Hamamelidaceae schon früher erwähnt
worden waren: Die Buxaceae gehören zu den Hamamelidaceae- Die bisherige
Umgrenzung der Hamamelidaceae und ihre Ableitung von Drimytomagnolieae,
oder von Columniferae wurde schon früher zu beweisen gesucht. Die Casuari-
neae sind keine Hamamelidaceae, sondern bilden mit den Quercineae, Coryleae
und Betideae die Familie der Cupuliferae. Sie stammen anscheinend ab von
Prtsrmirt-artigen Quercineae, durch die letzteren die Amentaceae von Rhoideae.
Die Platanaceae gehören nicht zu den Hamamelidaceae, sondern zwischen sie
und die Magnoliaceae. Zu den Hamamelidaceae gehören Cercidiphyllam, Eucommia,
Euptelea, Daphniphyllum, Trochodendrum und Tetracentrum. Die Saxifragaceae
stammen vielleicht ab von Hamamelidaceae, die Hamamelidaceae sicher von
Magnoliaceae.

Den Schluss bilden dann die Amentifiorae und Urticales. Nach Hallier
sind die Cupuliferae nicht verwandt mit den Hamamelidaceae, sondern gleich
den Myrieaceae, Leitneraceae und Urticales, also mit Einschluss der meisten
Chalazogamen, reduzierte Abkömmlinge von Terebinthaceae, demnach sicher
keine Verbindungsglieder zwischen Angiospermae und Gymnospermae- Daher
die Ähnlichkeit mancher Cupuliferae mit den gleichfalls von Terebinthaceae ab-
stammenden Aceraceae. Die anatomischen Übereinstimmungen von Casuarina,
mit den übrigen Cupuliferae werden angegeben. Die Myrieaceae stehen den
Cupuliferae viel näher, als den Juglandeae, und sind mit ersteren zur Familie
der Amentaceae zu vereinigen. Die Leitneraceae sind keine Hamamelidaceae,
sondern Verwandte der Amentaceae, Juglandeae und anderer Terebinthaceae.
Die Balanopideae (Balanops und Trilocularta) sind nicht verwandt mit den
Amentaceae und Terebinthaceae, sondern gehören zu den Hamamelidaceae neben
Daphniphylhon, Trochodendrum und Rhodoleia. Die Urticales sind keine redu-
zierten Euphorbiaceae oder überhaupt Columniferae, sondern, gleich den Aceraceae
und Amentaceae, durch Beduktion in Blüte und Frucht aus Terebinthaceae, und
zwar wahrscheinlich Rhoideae, entstanden.

Bemerkt sei noch, dass auf p. 172 und 17-t in zwölf Punkten die Haupt-
ergebnisse der Arbeit zusammengefasst werden. Auch die Ergebnisse in bezug
auf Morphologie und Keimesgeschichte, Anatomie und Phytochemie fasst
Hallier noch einmal zusammen. Im folgenden kurz die Ergebnisse, wie sie

*) Diese Gruppe der Saxifragenae lässt sich kaum aufrecht erhalten
und muss zerlegt werden, indem die kaum scharf voneinander geschiedeneu
Rosales und Theineae nicht von Brexieae oder Luxemburgieae, sondern als Ge-
schwister derselben direkt von Dilleniaceae-arti'^ea. Ranales oder Anonales
(Polycarpicae) abzuleiten sind. Hallier.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (19081 3. Abt. [Gedruckt 1. 8. 10.] 15

226 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [226

Hallier selbst zusammenstellt; die Zahlen in Klammern geben die Seitenzahlen
der Arbeit an:

a) Morphologie und Keimes geschieht e.
Die Verbreitung der epi- und der apotropen Samenknospen und ihre geringe
systematische Verwendbarkeit (13 — 14, 21—26, 76 — 77, 108). Die Reduktion
der Integumente und der Nucelluswand hat polyphyletisch stattgehabt und ist
in van Tieghems System zu einseitig verwendet worden (14, 19 — 20). Die
Coniferae sind durch Einwärtsklappung der Ovularfiedern (Fruchtschuppe), anti-
thetisch zur Endfieder des Fruchtblattes (Deckschuppe), schon halb angiosperm
(87—88). Die Anatropie der Samenknospen beruht auf Verharren dieser Ovular-
fiedern in der schneckenförmigen Knospenlage von Farnfiedern (88), wie sie
auch am Laubblatt von Cananga, Droseraceae, manchen Ranunculaceae usw.
noch erhalten geblieben ist (113 — 114, 147). Die festgestellte und die ver-
mutlich noch weiter ausgedehnte Verbreitung der Chalazogamie (30 — 31, 140,
154, 160, 163, 166, 172). Bandförmig verbreiterte, Schüssel-, becher- oder urnen-
förmige Blütenstandsachsen (4 — 6, 164, 167 — 168). Tangentiale Spaltung von
Staubblättern bei G-ruinales, Illipe, Dipterocarpaceae, OchnaceacParnassia, Loasaceae,
Gentianaceae, Apocynaceae incl. Asclepiadeae (15, 131 — 132, 137). Die dreispaltigen
Staubblätter von Kydia, Theobrominae, Monsonia, Peganum und Nitraria (16,
136, 138). Die gefiederten Staubblätter von Cycadeoidea und vielen nur schein-
bar polystemonen Dicotylae (28—29, 89), auch Begoniaceae (122, 125) und Datisca
(? 126). Die Angiospermentheka entspricht wahrscheinlich einem Marattiaceae-
und Cycadeoidea-Synanginm mit zwei Längsreihen von Sporangien (29). Die
Verbreitung noch unvollständig ventral miteinander verwachsener Fruchtblätter
(82, 90, 115). Cercidiphyllwm, Leitnera und Typha sind ausgezeichnet durch ein
einziges, mit der Naht nach vorne gerichtetes Fruchtblatt (146). Die Ver-
breitung roter Narben bei anemophilen Kätzchenträgern (157, 160, 166). Die
Verbreitung von gespaltenem Endosperm oder einer kleinen, den Embryo um-
gebenden Höhle (45, 46, 106, 109, 118). Die längs gefalteten Laubblätter von
Myrothamnus und vielen Monocotylae (142). Noch relativ alte Merkmale (111),
z. B. Pollentetraden (141, 142), ein winziger, in reichliches Endosperm ein-
gebetteter Keimling (145).

b) Anatomie.
Die starke Neigung der Caryophyllinae und anderer Proterogenae zu
monocotylenartiger Anordnung der Gefässbündel (110 Anni., 114). Der zer-
klüftete Holzkörper von Bauhinia, Paullinieae und Malpighiaceae (17, 97). Die
verholzten Zapfen der primären Rindenmarkstrahlen von Fagus, Quercus und
Casuarina (156, 168). Die ATerbreitung aromatischer Ölzellen bei den Poly-
carpicae (37, 67, 114, 141) und den mehr oder weniger unvermittelt von ihnen
abstammenden Aristolochiaceae (37, 141) und Piperinae (110 Anm., 141, 142).
Verhältnismässig ursprüngliche Merkmale sind das Fehlen von Drüsenhaaren
(114, 152), zerstreute Gefässe (114), leiterförmige Gefässdurchbrechungen (38,
67, 75, 88, 96, 111, 114, 115, 152), auch gegen Markstrahlparenchym behöfte
Tüpfelung der Gefässwand (111, 115, 117), behöft getüpfeltes Holzprosenchym
(67, 88, 96, 111, 114, 115, 144), Treppenhoftüpfel (142, 152), oberflächliche Ent-
stehung des Korkes (111, 114, 115, 144), einfache einzellige Deckhaare, spärliches
Holzparenchym, Spaltöffnungen ohne besondere Nebenzellen, das Fehlen von
Rhaphiden (114), enge, auf dem Querschnitt vierkantige Gefässe (115, 142, 143
bis 144, 150, 152), breite Markstrahlen (144), das Fehlen von Gelassen (152).

227] Juglandaceae. Labiatae. 227

Die Verbreitung der Korkwarzen (63, 65, 66). Der systematische Wert der
sklerosierten Palissadenschicht der Samenschale (23, 72—73, 77, 78, 82, 88, 98).

c) Chemie.

Die Verbreitung von Blausäure (18, 85), Saponin (72, 85, 98), Myrosin
(91), Inulin (129, 135), Coniin (57), Thein (bei Hex und Symplocos, 68), Tannin
(11, 21, 84, 158, 161, 162, 170), Bitterstoffen (24, 37, 94, 96, 105, 106), Milchsaft
und Kautschuk (2, 35, 67. 79, 123, 129, 135, 148, 171), Cystolithen und cysto-
lithenartigen Bildungen (40, 125, 129, 134—135, 170). Kieselsubstanz (37, 112,
114, ]29, 134—135, 148, 152, 170), kohlensaurem Kalk (44, 48, 129, 130, 134 bis
135, 170).

Seite 176 — 200 enthält eine Übersicht über das natürliche (phylogene-
tische) System der Gefässpflanzen. Am Ende findet sich eine „Inhaltsüber-
sicht", die insofern sehr dankenswert ist, als ohne sie die Schrift nur schwer
zu benutzen wäre. Keferent hat diese Übersicht z. T. in seinem Referat
benutzt und dabei den Nutzen gemerkt, den sie bietet, um sich in der unge-
heuren Menge von Einzelheiten zurechtzufinden.

Wenngleich ich zugeben muss, dass Hallier von manchen seiner Gegner
nicht grade glimpflich behandelt worden ist, so kann ich mich doch mit der
Art der Polemik, wie sie in der Arbeit besonders gegen Engler, Grilg und Mez
angewendet wird, nicht einverstanden erklären. Sie erinnert bisweilen stark
an O. Kuntze. Ich selbst bin immer dafür eingetreten, dass die Arbeiten
Halliers voll und ganz berücksichtigt werden müssten, denn es steckt neben
grossem Wissen auch viel Mühe und Fleiss darinnen. Anderseits muss sich
Hallier doch überlegen, dass seine Ansichten doch fast nur auf Annahmen be-
ruhen und sich zudem fortdauernd im Flusse befinden, was bei dem Stoffe
auch gar nicht verwunderlich ist. Ich vermisse in den Urteilen den Ausdruck
der „Annahme" zu sehr und habe nach dem Durchlesen der meisten Arbeiten
Halliers immer die Empfindung eines aufgestellten Dogmas gehabt, das leider
aber als recht wenig feststehend sich erweist. Gerade dieses Dogmatische ist
es ja aber, das Hallier an anderen Systemen gar nicht mit Unrecht so heftig
bekämpft. F. Fedde.

1313a. Hemsley, W. Botting. The Julianaceae: a new family of plants.
(Gard. Chrom. 3. sei., XLIII, 1908, p. 98—99, fig. 42.)

Auszug aus der grossen Arbeit (siehe Just 1907) und Abbildung von
Julian a adstringens.

Labiatae.

Neue Tafel:
Plectranthus madagascariensis Benth. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908,
tab. 135.

1314. Allard, E. J. Salvia Sclarea. (Gard. Chrom, 3. ser., XLIV, 1908,
p. 268, fig. 116.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1315. Anonym. Patch ouli (Pogostemon Patchouli var. suavis Hk. f. =
P. Cablin Benth.). (Kew Bullett., 1908, p. 78—82.)

Klärung der Nomenclatur usw.

1316. Bornniiiller, J. Über eine unbeschriebene Satureia der Sektion

Säbbatia aus der Flora von Assyrien. (Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 114

bis 115.) N. A.

15*

228 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. 1 228

1317. Bornmüller, J. Eine neue Micromeria von den Kanarischen
Inseln [M. Pitardii]. (Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 1-2.) N. A.

1318. Briquet, John. Labiatae novae in Asia-media atque Persia
ab Ove Paulsen collectae. (Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 65 — 73.)

Ex: Bot. Tidskr., XXVIII, 1907, p. 233-248.

1319. Domin, K. et Jackson, A. Bruce. The british species of Thymus.
(Journ. of Bot., XLVI, 1908. p. 33—37.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1320. Ewart, A. J. and Tovey, J. R. Common Horchound [Marrubium
vulgare L.J. (Journ. Dept. Agric. Victoria, VI, 1908, p. 80, 1 col. pl.)

Nicht gesehen.

1321. Fitzherbert, S. W. Salvia dichroa. (Garden, LXXII, 1908, p. 76,
Figur.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1322. GÜrcke, M. Labiatae africanae. VII. (Engl. Bot. Jahrb., XLI.
1908, p. 313-327, 4 Textf.) N. A,

Neue Arten von : Plectranthus, Coleus, Ocimum, Orthosiphon.

1323. Heineck. Die Blütenbiologie von Plectranthus fruticosus L* Herit
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 556—557, eine Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1324. Heineck. Ergänzung zur Blütenbiologie von Salvia pra-
tensis L. (Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 574 -575, eine Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1325. Holm, Th. Medicinal plants. 15. Hedeoma pidegioides Pers.
(Mercks Rept., XVII, 1908, p. 115-117, 12 fig.)

Siehe „Anatomie".

1326. Lainothe, L. Lavande et Spie. Varietes, eulture, engrais,
produetion, etc. 2. edit. (Grand-Serre [Dröme] chez Tauteur, 1908, 4 °.)

Nicht gesehen.

1327. Leveille, H. Les Thyms a odeur Oitronnelle. (Bull. Soc. Bot.
France, LV, 1908, p. 605—607.)

Betrifft Thymus citriodorus DG.

1328. Menezes, Carlos Azevedo de. As Labiadas do Archipelago da
Madeira. Funchal 1907, 8°, 18 pp.

Der bekannte Botaniker von Funchal. Carlos A. de Menezes, hat die
Veröffentlichung einer Reihe von Monographien über die Flora der Insel
Madeira unternommen, welche das unvollendete Werk Lowes hoffentlich
ersetzen werden. Vorliegende Monographie beschreibt ausführlich die 40 bis
jetzt auf Madeira und Porto Santo bekannt gewordenen Labiatae- Arten.
Darunter sind 11 den Atlantischen Inseln eigen und 5 auf Madeira endemisch.

A. Luisier.

1329. Mitlacher, Wilhelm. Über einige anatomische Verhältnisse
bei den Labiaten. (Zeitschr. Allg. Östr. Apoth.-Ver., XLVI, 1908, p. 1—4,
fig. 1—3, p. 17—19, 33-34, fig. 4, p. 45—46.)

Siehe „Anatomie".

1330. Pan, D. C. Thymus inodorus Du f., especie lenora nueva para el
continenta europea. (Bol. Soc. aragon. Cienc. nat., 1908.)

Nicht gesehen.

1331. Pereira Coutinho. Antonio Xavier. As Labiadas de Portugal.
Lisboa 1907, 4 ». 135 pp. N. A.

229 1 Labiatae. 229

Auf Grund der reichen Sammlungen von Lissabon, Coimbra, Porto und
S. Fiel, hat Verf. eine ausgezeichnete Monographie der portugiesischen Labiatae
veröffentlicht. 106 Arten wurden bis jetzt in Portugal nachgewiesen. Am
reichsten tritt die Gattung Thymus mit 15 Arten hervor. Teucrium Haenseleri
Boiss. wird vom Verf. als subspecies von T.polium mit zwei Varietäten: algarliense
P. Cout. und Haenseleri (Boiss.) P. Cout. betrachtet. Bef. stimmt gerne dazu
bei: er meint aber, dass die portugiesische Pflanze, wenigstens die von der
Umgebung von Setubal und der Serra d'Arralida, nicht in derselben Varietät
mit dem echten spanischen T. Haenseleri einbegriffen werden könne. Sie
wurde von G. Sampaio (Ann. Sc. nat., VII, p. 10) zuerst als eigene Species,
später als Varietät, mit dem Namen T. Luisieri beschrieben. A. Luisier.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1331a. Pereira Coutinho, Antonio Xavier. As Escrophulariaceas de
Portugal. (Extr. Bol. Soc. Brot., XXII, 1907, Coimbra, 8°, 107 pp., eine
Tafel.) N. A.

91 Scrophidariaeeae-Arten werden aufgezählt bzw. beschrieben; darunter
ist Linaria Ricardoi P- Cout. für die Wissenschaft neu. A. Luisier.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1332. Prain, D. Labiatae in King a. Gamble, Materials for a flora of
the Mala v an Peninsula. (Journ. As. Soc. Bengal, LXXIV, 1908, p. 699—727.)

Umfasst 18 Gattungen. N- A.

1333. Pagsley, H. W. The forms of Salda Verbenaca L. (Journ. of
Bot., XL VI, 1908, p. 97-106, pl. 489 B; 141—151.)

VTerf. gibt nach eingehenden Erörterungen über die verschiedenen Auf-
fassungen der Autoren folgende (hier verkürzt gegebene) Übersicht:
S. Verbenaca L.

Subspec. 1. clandestina (S. clandestina Tu., S. praecox Savi, S clandestina
midtifida Benth., S. Verbenaca multifida Vis.),
var. angustifolia (S. controversa Ten., »S. Verbenaca var. controversa
Briq.).
Subspec. 2. Verbenaca {S. Verbenaca L. s. restrict., S. clandestina Benth.
ex p., non L., S. Verbenaca var. clandestina Briq).
var. oblongifolia Benth. (S. oblongifolia Vahl, 8. pallidiflora St.,
Gallitrichium pallidiflorum Jord. et Fourr., S. Verbenaca typica
und var. oblongata Briq.).
Subspec. 3. horminoides ($. horminoides Pourr., non Gr. et Godr.,
S. Verbenaca Benth. ex p., S- Verbenaca var. amplifrons Briq.).
var. incisa (S. Verbenaca var. incisa Benth., Gallitrichium anglicum
Jord. et Fourr., S- Verbenaca var. horminoides Briq.).
1333 a. Spooner, H. Leonot i s Leonurus. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908,
p. 139, fig. 55.)

Die Figur zeigt Blütenzweig.

1333b. Snbba Rav, C. K. Su n n hemp (Crotalaria juncea). (Bull.Dept.Agric.
Madras, III, 1908, 16 pp.)
Nicht gesehen.

1333c. Tuninann. 0. Mikroskopisch-pharmakognostische Beiträge
zur Kenntnis einiger neuerer Arzneidrogen. (Pharmaceut. Centralh.,
1908, p. 219—224, Fig. 1—8.)

Betrifft: Orthosiphon stamineus.
Siehe „Anatomie".

230 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [230

1333 d. Verguin, Louis. Un Teucrium hybride nouveau de la section
Polium Benth. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 607—611.) N. A.

T. rnontanum X Polium = T. castrense Verg.

1333 e. W., W. ('. Eremostachys laciniata. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 415.)

Über das Vorkommen abnormaler Sämlinge.

1333f. Wakemann, Nellie. Quantitative determination of oxidase
in the leaves of Monarda fistulosa. (Pharm. Rev., XXVI, 1908, p. 314—315.)

Siehe „Chemische Physiologie".

Lardizabalaceae.

1333g. Gagnepain, F. Deux Lardizabalees [Stauntonia] nouvelles.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 47-48.) N. A.

1333h. H[emsley], W. B. Asiatic Lardizabalaceae. (Kew Bull., 1908,
p. 459—461.)

Notiz im Anschluss an Beschreibungen in Hookers Icones, Dezember 1907
(siehe Just 1907), mit Hinweis auf Gagnepains oben zitierte Arbeit 1908.

Lauraceae.

Neue Tafeln:
Adinodaphne acuminata Meisn. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II,

1908, tab. 21, fig. 1-12.
A- lancifolia Meisn., 1. c, tab. 20, fig. 1—11.
Cinnamomum Camphora Nees et Eberm. in Miyoshi, Atl. Jap. Veget, sect. X«

1908, tab. 80 (Vegetationsbild).
C sericeum Sieb, in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908, tab. 22,

fig. 9—18.
Lindera membranacea Maxim, in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908,

tab. 18, fig. 1—15.
L. praecox Bl., 1. c, tab. 19, fig. 1 — 10.
L. triloba Bl., 1. c, fig. 11—21.
L. umbellata Thbg., 1. c, tab. 18, fig. 16—23.
Litsea aciculata BL, 1. c, tab. 21, fig. 25 — 38.
L. japonica Juss., 1. c, tab. 22, fig. 1 — 8.
Machilus japonica S. et Z., 1. c, tab. 20, fig. 12 — 20.
M. Kobu Max., 1. c, tab. 21, fig. 13—24.

Ocotea bullata Benth. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 52.
Bavensara Perrieri in Ann. Mus. Col. Marseille, XV, 1907, tab. ad p. 14.

1333L Charabot, E. et Lalouc, G. Surl'essencede Tetrantherü polyantha
var. citrata Nees. (Bull. Soc. chim. France, 4, III— IV, 1908, p. 383—388.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1333k. Eimer, A. D. E. Some interesting Lauraceae. (Leafi. Philip.
Bot., II, 1908, p. 375—384.) N. A.

Neue Arten von: Adinodaphne, Endiandra, Litsea, Neolitsea, Persea.
Siehe „Index nov. gen. et spec".

1334. Hnniplireys, Edwin W. An analogv between the development
of the plates of crinoids and the leaves of Sassaf7-as- (Bull. Torr. Bot.
Club, XXXV, 1908, p. 571—576, Fig. 1—2.)

Siehe im „Descendenztheoretischen und Physiologischen Teile" des
Jahresberichts.

23 1| Lardizabalaceae. Lauraceae. Lecythidaeeae. Legumiaosae. 23 t

Lecythidaceae.

Neue Tafeln:
Barringtonia racemosa (L.) Blume in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 112.
Couroupia guianensis Aubl. in Contr. U. St. Nat. Herb., XII, 1908, pl. IV— V.
Entada scandens Benth. in Ann. Mus. Congo, II, fasc. III, 1908, tab. LXXV.
Eschweilera calyculata Pittier in Contr. U. St. Nat. Herb. XII, 1908, pl. I— II.
E- Collinsü Pitt., 1. c, pl. III.
Lecythis costaricensis Pitt., 1. c, pl. VI — VIII.

1335. Pittier de Fäbrega, H. Tbe Lecythidaceae of Costa Rica. (Contr.
ü. St. Nat. Herb., XII, 1908, p. 95—101, pl. I— VIII und Textf.) N. A.

Siebe Tafeln am Kopfe der Familie und „Pflanzengeographie".

Leguminosae.

Neue Tafeln:

Acacia spirocarpa Höchst, in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908.
tab. 45 (Habitus). Adesmia pumila Hook. fil. var. aurantiaca Dus. in Ark. f.
Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 6, fig. 7—8, tab. 8. fig. 30—39. Astragalus Grum-
Grschimaüoi Palib. in Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIIi, ' 1908, tab. 3, fig. 1.
A. Poterium Vahl in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 39 (Vege-
tationsb.). Bauhinia macrantha Oliv, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908,
tab. 68. Caesalpinia japonka S. et Z. in Bot. Mag., LXXXIV, 1908, tab. 8207.
Garagana acanthophylla Kom. in Act. Hort. Petrop., XXIX, 1908/09, tab. XIVB.
C- ambigua Stocks., 1. c, tab. XIX. C. bicolor Kom., 1. c, tab. IX A. C. Boisi
C. K. Sehn., 1. c, tab. XV B. C. brevifolia Kom., 1. c. tab. XVII. G Camilli-
Schneideri Kom., in Act., 1. c, tab. VIA. C. Chamlagu Lam., 1. c, tab. VB.
C. conferta Benth, 1. c, tab. XVIII. C. densa Kom., 1. c, tab. VII. C. decortkans
Hemsl., 1. c, tab. XIVA. G erinacea Kom., 1. c, tab. TXB. C. Franchetiana
Kom., 1. c, tab. XIII A. C. Gerardiana Benth., 1. c, tab. XIII B. C. Korshinski
Kom., 1. c, tab. XVI B. C. Kozlowi Kom., 1. c, tab. XI A. C. laeta Kom.. 1. c,
tab. VIB. C Leveillei Kom., 1. c, tab. VA. C. Lüwinowi Kom., 1. c, tab. XVIC.
G mamhurica Kom., 1. c, tab. XVI A. C. Maximotvkzi Kom., 1. c, tab. XI B.
C. pekinensis Kom.. 1. c, tab. XV C. C. polourensis Franch., 1. c, tab. VIIIA.
C- Potanini Kom., 1. c, tab. XVID. G. Boborowskii Kom., 1. c, tab. VIIIB.
C. rosea Turcz., 1. c, tab. VC. C. sericea Pamp., 1. c, tab. XV A. C. stijntata
Kom, 1. c, tab. XV D. C. tangutka Maxim., 1. c, tab. XII. C tibetka Kom.
1. c, tab. X. C. turkestanica Kom., 1. c, tab. XIV C. C. ulicina Stocks, 1. c,
tab. XX. Chadsia Jullyana in Ann. Mus. Col. Marseille, XV, 1907, tab. ad p. 31.
Ch. Perrieri, 1. c. ad p. 36. Cytisus decumbens Spach in Bot. Mag., LXXXIV.
1908, tab. 8230. Genista glabrescens Briq. in Bot. Mag., LXXXIV, 1908, tab.
8201. G. pilosalj. in Karst, et Schenck, Vegetationsb, V, 1908, tab. 2A (Vege-
tationsbild). Hardenberg ia retusa Benth. in Icon. Bogor., III, 1908, tab. CCLXV-
Indigofera hebepetala Benth. in Bot. Mag., LXXXIV, 1908, tab. 8208. Kraunhia
flaribunda Taub, in Shirasawa, Iconogr. ess. forest., VI, 1908, tab. 32, fig. 12—24.
Lotononis swaziensis Bolus in Wildeman, Plant nov. Hort. Then. II, 1908,
tab. LVIII. Melolobium Wümsii Harms in Wildeman, PI. nov. Hort. Then., II,
1908, tab. LIX. Mundulea striata in Ann. Mus. Col. Marseille, XV, 1907. tab.
ad p. 25. Oxytropis Grum-Grschimailoi Palib. in Bull. Herb. Boiss., 2. ser.,
\III, tab. 4, fig. 5. O. tenuis Palib., 1. c, tab. 4, fig. 4. O. Potanini Palib.,
1. c, tab. 3, fig. 2. O. schizantha Palib., 1. c, tab. 3, fig. 3. Robinia Kelseyi
Hutch. in Bot. Mag., LXXXIV. 1908, tab. 8213. Sarothamnus scoparius Wim.,

232 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [282

in K^rst. et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 3 (Vegetationsbild). Sophora-
platycarpa Max. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest., II, 1908, tab. 32, fig. 1 — 11.

1336. Anonym. Robinia Kelseyi. (Gard. Cbron., 3. ser., XLIV, 1908,
p. 426, Fig. 174.)

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze.

1337. Anonym. XCytisus ketvensis. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908,
p. 323, Fig. 138.)

Ist C. Ardoini X albus. Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1338. Anonym. A little known Acacia [podalyriifolia] . (Gard. Chron.,
3. ser., XLIII, 1908, p. 11, fig. 11.)

Die Figur zeigt Blütenzweige.

1339. Anonym. Yeheb (Cordeauxia edulis Hemsley). (Kew Bull., 1908,
p. 36—44.)

Bemerkungen kultureller und industrieller Art mit Hinweisen auf Ver-
breitung usw.

1340. Baker, E. G. The Sections of Geissaspis. (Journ. of Bot., XLVI,
1908, p. 112—114.) N. A.

Verf. unterscheidet:

I. Eugeissaspis : Bracteae amplae oblique reniformes vel suborbicuiares
venosae flores fructusque saepius obtegentes nunc ciliatae nunc integerrimae.
Bracteolae O. Hierher: G- psittacorrhyncha Taub., cristata W. et A., tenella
Benth.

II. Bracteolaria: Bracteae amplae late suborbicuiares vel suborbiculari-
obovatae apice saepius emarginatae vel bilobatae flores fructusque saepius
obtegentes. Bracteolae 2 calycis tubo appressae. Hierher die anderen
acht Arten.

1341. Beijerinck, M.W. Beobachtungen über die Entstehung von
Cytisus purpureus aus Cytisus Adami. (Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 137
bis 147, 2 Textfig.)

Siehe „Variation" usw.

1342. Bernegau, L. Die Verwendung der Samen von Parkia africana,
(Jahrber. Ver. angew. Bot., V, 1908, p. 100—101.)

Siehe „Agricultur" usw.

1343. Bornmüller, J. Novitiae Florae Orientalis, ser. IV (65—87),
(Mitt. Thür. Bot. Ver., XXIII, 1908, p. 1—27.) N. A.

Betrifft fast ausschliesslich Astragalus. Vgl. „Index nov. gen. et spec".

1344. Briquet, John. Note sur le Genista anxantica Ten. (Annuaire
Cons. et Jard. Bot. Geneve, XI— XII, 1908, p. 25—28.)

Ist nur als eine Rasse von G. tinctoria = G. tindoria L. var. anxantica
Rchb. aufzufassen.

1345. Bnhlert, H. Hülsenfrüchte. Hannover, M. Jänecke, 1908, IVr
52 pp., ill.

Nicht gesehen.

1346. Cavillier, Fr. Note sur les caracteres et les affinites du
Vicia elegantissima Shuttl. (Annuaire Gons. et Jard. Bot. Geneve, XI— XII,.
1908, p. 1—9, Fig. 1—2.) N. A.

Verf. weist nach, dass diese Form in den Kreis von \T. pseudocracca
gehört, welche wieder zu villosa Roth zu ziehen ist. Verf. sagt darüber
folgendes:

233J Leguminosae. 233

Mais le V- pseudocracca fait lui-meme partie d'un groupe plus vaste dans
lequel on peut distinguer, pour la partie du bassin de la Mediterranee qui
nous occupe, trois groupes principaux (sous-especes) aiusi que la le premier
indique M. Burnat (Fl. Alp.-Marit., II, p. 185). Ces trois sous-especes formant
ensemble Tespece collective Vicia rillosa Roth, Tent. fl. germ., II, pars 2,
p. 182 (ann. 1793) sont:

1° Subsp. dasycarpa Cavillier = V. varia Host., Fl. austr., II (ann. 1831)
non alior = V. dasycarpa Ten., Relaz. viagg. Abruzz., p. 81 et Fl. napol., V,
p. 116, tab. 244 = Cracca varia Gr. Godr., Fl. Fr., I, p. 469 = F. villosa „forma
F. dasycarpa" Rouy, Fl. Fr., V, p. 138.

2° Subsp. eu'villosa Cavillier = V. villosa Roth op. cit. (sensu stricto)
= Cracca villosa Gr. Godr., op. cit., p. 470.

3° Subsp. p)seudocracca Rouy, op. cit., p. 239= V. pseudocracca Bert., Rar.
it. plant, decas., 3, p. 58 (ann. 1810) et Fl. it., VII, p. 487 = Cracca Bertolonii
Gr. et Godr., op. cit., p. 470.

Nous distinguons a l'interieur de la sous-especes pseudocracca Rouy,
deux varietes: u) Bertolonii Cavillier = F. pseudocracca Bert, sensu stricto; et
ß) brevipes (Willk.) = F. pseudocracca Bert. var. ß. brevipes Willk. in Willk.
et Lge., Prodr. fl. hisp., III, 305 = F. elegantissima Shuttl. ined. apud Rouy,
Excurs. bot. Esp. en 1881—1882, p. 65; Suites Fl. Fr. in Naturaliste, ann. 1888,
p. 85; Fl. Fr., V, p. 272; Willk., Suppl. Prodr. fl. hisp., p. 239.

On peut donner de la variete ß. brevipes le resume diagnostique suivant:

Yicia villosa Roth subsp. pseudocracca Rouy var. ß. brevipes (Willk)
Cavillier = V- elegantissima Shuttl. ined. apud, Rouy 1. c. ; Willk., Suppl. 1. c.

A var. Bertolonii Cavillier (= V. pseudocracca Bert, sensu stricto) differt:
Glabrescentia omnium partium. Calycis dentibus lateralibus magis angustis,
sinibus fere truncatis a dente antico separatis, dentibus superioribus ad appen-
dices acuminatas brevissimas sursum versas reductis. Corolla coeruleo-violacea,
alis non luteis.

Variationes. — Nunc prostrata, foliolis linearibus vel angustioiibus,
racemis paucifloris quam folia brevioribus, in locis aridis siccisve (f. debelis =
V. elegantissima Shuttl. ap. Rouy sensu stricto), nunc robustior, scandens vel
adscendens, foliolis majoribus oblongis, racemis paucifloris, folia excedentibus,
in locis cultis vel pinguioribus (f. vegeta).

1347. Cockerell, T. D. A. New Combinations. (Muhlenbergia, IV,
1908, p. 68.) N. A.

Betrifft Chamaecrista und Hoflma?mseggia. Siehe „Index nov. gen.
et spec".

1348. Darbishire, A. D. A contribution to vegetable teratology.
(New Phytol., VII, 1908, p. 205—206, fig. 27.)

Betrifft Pisum sativum.

1349. Dunstan, VV. R. and Henry, T. A. The poisonous properties
of the beans of Phaseolus lunatus. (Journ. Board Agric. Great-Britain and
Ireland, XIV, 1908, p. 722—731.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1350. Fitzherbert, S. W. Clianthus puniceus albus- (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIV, 1908, p. 23, Fig. 8.)

Die Abbildung zeigt blühende Pflanze.

234 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [234

1351. [Fredholm, A.] Studies on the pollination processes in
Clitoria arborescens. Ait. (Bull. Mise. Inf. Trinidad. LVIII, 1908, p. 79—84.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

1352. French, G. T. Observations on Medicago lupidina L. (Science
II, XXVIII, 1908, p. 127.)

Betrifft die vegetativen Unterschiede gegen M. sativa.

1353. Gibson, H. H. American forest trees — 49. Honey locust,
Gleditschia triacanthos Linn. — 50. Coffee tree, Gymnocladus dioieus Koch.
(Hardwood Record, XXIII, 11—12, p. 16—17, 1907, ill.)

1354. Ginsbourg, B. Röle de la strueture vasculaire de la fausse
cloison dans la dehiscence du fruit des Astragalees. Dipl. Etudes
sup. Paris 1908.

Siehe „Anatomie".

1355. Goris, A. et Crete, L. Recherches sur la pulpe dite farine
de nette [Parkia bhßobosa Beoth.y. (Compt. Rend. Ac. Paris, CXLVI, 1908,
p. 187—189.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1356. Greenmann, J. M. The Generic name Goldmania. (Bot. Gaz.,
XLV, 1908, p. 198.) N. A.

Verf. zieht seine von ihm 1907 aufgestellten Gattungsnamen Goldmania
ein, da derselbe bereits 1903 von Rose vergeben war und nennt seine Gattung
nun Goldmanella mit G. sarmentosa.

1357. H., J. M. Parkia africana R. Br. (P. biglobosa Benth .). (Kew Bulletin,
1908, p. 314-315.)

Hauptsächlich chemische Fruchtanalyse.

1358. Harms, H. Zur Nomenclatur des Perubalsambaumes.
(Notizbl. Bot. Garten Berlin V, 1908, No. 43, p. 85—98.)

Die Ergebnisse sind:

1. Die Gattung Myroxylon L. f. (= Toluifera L.) besteht aus zwei Arten,
die einander täuschend ähnlich sind und sich hauptsächlich durch den
Bau der Hülse und des Samens unterscheiden.

2. Bei M. peruiferum E. f. ist der Same von tiefen, mit Harz erfüllten
Furchen durchzogen, bei M. balsamum (L.) Harms ist er glatt.

3. Die Stammpflanzen des Tolubalsams und die des Perubalsams gehören
zur selben Art der Gattung, und zwar zu M- balsamum. Der Tolubalsam
bildet den Typus der Art; der Perubalsam kann als Varietät dieser Art
betrachtet werden (var. Fereviae).

1359. Harms, H. Über Geocarpie bei einigen afrikanischen
Leguminosae. (Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 225—231, Tab. III.) N. A.

Siehe „Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen".

Verf. beschreibt als neu die Gattung Kerstingiella (Phaseoleae) mit
K. geocarpa. - - Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec. VII (1909), p. 191.

1360. Harms, H. Leguminosae in Ule, Beitr. z. Flora v. Bahia. (Engl.
Bot. Jahrb., XLII, 1908, p. 203. N. A.

Neue Arten von Calliandra. Mimosa, Bauhinia, Cassia, Swartzia, Siveetia,
Zornia, Dalbergia, Machaerium, Platymiscium, Camptosema, Galactia, Phaseolus-

1361. Harms, H. Leguminosae andinae. (Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908,
p. 88—97.) N. A.

Neue Arten von Liga, Mimosa, Bauhinia, Caesalpinia, Brongniarta, Coursetia,
Fiebrigella.

2351 Leguininosae. 235

1362. Heim, F. Dispositifs entomophobes chez Phaseolus vulgaris L.
(Papilion.) (Notes de Bot. pure et appl., 1908, -4 pp.)

Siehe im ..Blütenbiologischen Teile" des Just.

1363. Heller, A. A. New Combinations. (Muhlenbergia, IV, 1908,
p. 40.) N. A.

Betrifft Lupinus und Pachylophus, siehe „Index nov. gen. et spec".

1364. Hetschko, A. Über den Insektenbesuch bei einigen Vicia-
Arten mit extrafloralen Nektarien. (Wiener entomol. Ztg., XXVII, 1908,
p. 299—305.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

1365. Hildebrand, Friedrich. Über Sämlinge von Cytisus Adami.
(Bei: D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 590—595.)

Verf. beobachtete an echten ^«^/-Blutenständen Fruchtbildung. Es
gelangten drei Früchte zur Beife, die ganz kahl und freudig grün wie bei
purpureum waren. Er erhielt zwei gute Samen, die auch aufgingen. Von den
Sämlingen glich einer ganz Laburnum und blühte und fruchtete auch bereits
genau wie dieser. Auch der zweite, der erst im Laub etwas an Adami ge-
mahnte, zeigte sich in der Blüte mit C. Laburnum ganz identisch.

Über weitere Sämlinge aus echten Adami-Samea sind die Beobachtungen
des Verfs. noch nicht abgeschlossen.

1366. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 21. Baptisia
tinctoria R. Br. (Mercks Rep., XVII, 1908, p. 295—297, fig. 1—9.)

Siebe „Anatomie".

1367. Honlbert, F. Sur la fructification de la Glycine de Chine.
(Rev. bretonne de bot. pure et appl. Rennes, 1906, avec figures.)

Nicht gesehen.

1368. Johannsen, W. Über Knospenmutation bei Phaseolus- (Zeitschr.
indukt. Abstamm. u. Vererbungsl., I, 1908, p. 1.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

1368a. Komarov. V. L. Generis Caraganae monographia. (Act. Hort.
Petrop., XXIX, 1908/09, p. 178—385, 16 Taf. u. eine Textfig. Russisch.)

Die neuen Diagnosen siehe auch Fedde, Rep. nov. spec. X. A.

Die Tafeln siehe am Kopfe der Familie.

Eine sehr eingehende sorgfältige Bearbeitung der formenreichen Gattung,
die hier zum ersten Male in natürliche Gruppen gegliedert wird. Diese sind
aus der folgenden Übersicht ersichtlich, welche alle Arten verzeichnet. Vgl.
sonst auch „Ind. nov. gen. et spec.".

Series 1. Frutescentes, foliis digitatis vel subdigitatis bijugis, stipulis
spinosis, petiolis persistentibus, foliolis plus minusve obovatis, auricula alarum
brevi, pedunculis evolutis.

A Rossiae meridionalis finibus occidentalibus ad Oceanum Pacificum et
a parte media montium Ural ad Armeniam turcicam, ab Ussuri fluvio ad Chinae
partem centralem distributae.

1. C Chamlagu Lam.

2. C. rosea Turcz.

3. C. Leveillei Kom.

4. C. opulens Kom.

5. C. brevi folia Kom.

6. C. polourensis Franch.

7. C. turfanensis Krassn.

8. C laeta Kom.

9. C. Camilli Schneiden Kom.

10. C grandiflora DG

11. C. frutex K. Koch.

12. (.'. mollis M.B.

236 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |236

Series 2. Pygmeae, petiolis brevissimis persistentibus, foliolis confertis
2-jugis digitatim fasciculatis, plus minusve lanceolatis, pedunculis evolutis,
auricula alarum varia.

A ripis fl. Argun ad Turkestaniam et a montibus Altai ad Himalayae
regionem alpinum distributae.

13. C. densa Kom. 15. G. aurantiaca Könne.

14. C. pygmaea Poir. 16. C. versicolor Benth.

Series 3. Spinosae, foliis dimorphis, modo digitatim fasciculatis, modo
pinnatis, tubo calycino subcylindrico, corolla abbreviata, petiolis persistentibus
elongatis, auricula alarum brevi, pedunculis evolutis.

In Mongolia occidentali, montibus Altai, Turkestania atque in Tibetia
meridionale distributae.

17. C. spinosa Poir. 19. C. spinifera Kom.

18. C. pruhiosa Kom.

Series 4. Erinacanthae, foliis pinnatis, petiolis pungentibus crebris, pedun-
culis brevissimis, bracteis nullis, carina apice rostro acuto adnata, legumen
plerumque a dorso compressum, auricula alarum varia.

A fluvio Selenga ad lacum Issyk-kul et a montibus Altai ad Himalaya
distributae.

25. C. tibetica Kom.

26. C. leucospina Kom.

27. C- conferta Benth.

28. C. Koslowi Kom.

20. C. Maximowczii Kom.

21. C. tragacanthoiäes Poir.

22. C. hololeuca Bunge.

23. C. Roborowsky Kom.

24. C. Gerardiana Benth.
Series 5. Jubatae, petiolis pungentibus patentibus vel floxuosis, auri-

culis alarum elongatis, pedunculis brevissimis, carina obtusa.

Ab Oceano glaciale ad fines meridionales Tibetiae, et ab Oceano Pacifico
(ad portum Ajan) ad lacus Issyk-kul distributae.

29. C. tanguüca Maxim. 30. C. jubata Poir.

Series 6. Bracteolatae, petiolis persistentibus, foliis pinnatis, bracteis vel
bracteolis pluribus, pedunculis evolutis saepe multifloris, auriculis alarum
brevibus.

A provincia Seczuan usque ad Beludshistan per Himalaya distributae.

31. C sukiensis 0. K. Sehn.

32. C. bicolor Kom.

33. C. Franchetiana Kom.

34. C. polyacantha Royle.

35. C. brevispina Royle.

36. C. ambigua Stocks.

37. C. ulicina Stocks.

38. C. catenata Kom.

Series 7. Occidentales, petiolis plerumque caducis interdum induratis,
bracteolis reduetis, foliis pinnatis bi-multijugis, calycis lobis e basi latiore
subulatis, pedunculis evolutis auricula alarum brevi.

A Altai meridionali in Turkestaniae et Afghaniae montibus usque ad
Himalaya oeeident. distributae.

39. C. decorticans Hemsl. 42. C. turkestanica Kom.

40. C. acanthophylia Kom. 43. C. Bungei Ldb.

41. C. Praini C. K. Sehn.

Series 8. Altaganae, petiolis caducis, foliis multijugis, bracteolis ad
unam minutusculam reduetis, pedunculis in genera longioribus, alarum auri-
cula brevi, carina obtusa.

2371 Leguminosae. 237

A fluvio Irtysch ad Ussuri super, et a provincia Seczuan ad fluvii Ob
decursum medium distrilmtae.

44. C- arborescens Lam.

45. C. frutkosa Besser.
4(5. C. manshurica Kom.

47. C. pekinensis Kom.

48. C. Zdhlbruckneri 0. K. Sehn.

50. C sericea Pamp.

51. 0. Boisi C. K. Sehn.

52. C. stipitata Kom.

53. 0. microphylla DC.

54. C. Komhinskii Kom.

49. C. Lüwinowi Kom. 55. C. Potanini Kom.

1368b. Le Renard, Alf. Sur quelques especes critiqües de Viciees
francaises. (Journ. de Bot., 2. ser.. 1 [XXI], 1908, p. 256—260.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1368c. Leveille. H. Les Pueraria de Chiue. (Bull. Soe. Bot. France,
LV, 1908, p. 424-427.) X. A.

Verf. gibt einen Bestimmungsschlüssel.

1368 d. Leveille, H. Le genre Mucuna en Chine. (Bull. Soc. Bot.
France. LV, 1908, p. 407—409.) X. A.

Verf. gibt folgenden Schlüssel der fünf Arten:
\ Feuilles soyeuses en dessous: grappes courtes 2.
/ Feuilles non soyeuses en dessous; grappes longues 3.
\ Fleurs longues de 4 cm au plus M. Championi.
' I Fleurs longues de 7—8 cm M. Bodinieri.

Feuilles absolument glabres M- sempervirens.

Feuilles ä face inferieure munie de poils rüdes 5.

Folioles laterales auriculees ä la base; etamines exsertes M. Martini.

Folioles laterales non auriculees; etamines incluses M. macrobotrys.

1368e. Lock, R. H. The present State of knowledge of heredity
in Pisum. (Ann. Bot. Gard. Peradeniya, IV, pt. III, 1908, p. 93—111.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Jahresberichtes.

1368f. Mallett, (i. B. Piptanthus nepalensis. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 178—179, fig. 7."». i

Die Figur zeigt einen Blütenstand.

1368g. Migliorato, Erminio. La fogliazione delle acacie a fillodii
verticillati. subverticillati, conferti e sparsi. (Ann. di Bot., VII,
Rom 1908, p. 171—172.)

Verfasser versucht auf anatomischer Grundlage nachzuweisen, dass die
nektar-, nebenblatt- und achselknospenfreien Phyllodien der Acacia rerticUlata
Willd, (von Delpino Pseudophyllodien genannt, von Goebel als mit Neben-
blättern gelegentlich versehene Gebilde angesehen): 1. keine Emergenzen sind,
da ihr anatomischer Bau ganz derselbe der typischen Phyllodien ist: 2. indivi-
dualisierte Teile der phyllopodialen Region darstellen, die keinem Blattstellungs-
gesetze gehorchen; 3. niemals Nebenblätter noch Nektarien besitzen können
und dass die vermeintlichen Nebenblätter nichts anderes als sehr stark reduzierte
Pseudophyllodien sind; 4. dass sie endlich aller Wahrscheinlichkeit nach erst
nach Feststellung der Phyllodialfunktionen auftraten, somit also als Ent-
schädigungsorgane aufzufassen wären. So IIa.

1368h. Nielsen, H. T. Cowpeas (Yigna ungnicidata). (Bull. Dept. Agric,
1908, 28 pp., 8 fig.)

Siehe „Agricultur".

238 C. K. Sohneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [238

1369. Noll, F. Neue Beobachtungen an Laburnum Adami Poir.
(Cytisus Adami hört.). (Sitzb. niederrhein. Ges. Nat.- u. Heilk., Bonn 1907,
17 pp.)

Noch nicht gesehen.

1370. Orphal, K. Untersuchungen über Correlationsersch ei nungen
bei mehreren Sorten der Vicia fetba. Jena 1908, 8°, 75 pp.

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

1371. Osborne, Th. B. and Heyl, F. W. Hydrolysis of vignin of the
cowpea [Yigna sinensis]. (Amer. Journ. Physiol., XXII, 3, p. 362—373.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1372. Palibine, J. W. Nouveaux Astragalus et Oxytropis de la Mon-
golie occidentale. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 157—161,
planches III— IV.) N. A.

Siehe Tafeln am Kopfe der Familie und „Index nov. gen. et spec".

1373. Pellegrin, Francois. Recberches anatomiques sur la Classi-
fication des Genets et des Cytises. (Ann. Sei. Nat., 9. ser., VII, 1908,
p. 129-320, 28 fig.)

Sehr eingehende detailreiche Untersuchungen, deren wichtigste Er-
gebnisse folgende Tabelle veranschaulicht.
A. Ailes libres n'embrassant pas la carene.
I. Legume non glanduleux, glabre ou velu.
O Marges du legume ni epaisses ni ailees.
•\ Oalice ne se gouflant pas apres la floraison.

a) Oalice campanule ou tubuleux ä deux levres, la superieure ä deux
lobes plus ou moins libres, l'inferieure ä trois lobes.

1. Levres du calice rarement plus longues que le tube;

«) La feuille prend ä la tige trois meristeles completes; tige ä

stele ailee par le pericycle, ou, ä stele ailee et meristeles

completes Genistet.
ß) La feuille prend ä la tige une meristele complete et s'insere

vis-ä-vis d'une cöte; tige ailee par le pericycle. Yoglera,

Phyllospartium.
y) La feuille prend a la tige une meristele complete et deux

meristeles fibreuses dans l'ecorce. Cytisus.

2. Levres du calice beaueoup plus longues que le tube.

La feuille prend ä la tige trois meristeles completes; tige
normale ä stele cylindrique. Argyrolobium.

b) Calice ä deux levres papyraeees, fendu jusqu'a la base:

La feuille prend a la tige une meristele complete; tige ailee par
le pericycle Ulex.

c) Calice oblique, fendu jusqu'ä la base du cöte de Taxe, a une
seule levre terminee par cinq dents courtes:

La feuille prend ä la tige trois meristeles completes; tige ä, meri-
steles fibreuses ou ailee par le pericycle Spartium.

d) Calice campanule ä cinq dents egales.

La feuille prend ä la tige trois meristeles completes; tige a struc-

ture normale:
Etendard plus grand que la carene. Hypoealyptus.
Etendard plus court que la carene. Loddigesia.

239] Leguminosae. 239

ff Calice plus ou moins membraneux, se gouflant apres la floraison :
La feuille prend a la tige cinq faisceaux liberoligneux; tige ä
Stele ailee par le pericycle Erinacea.
QO Legume epaissie ou ailee le long de la suture ou de la nervure
mediane:

a) La feuille prend ä la tige une meristele complete et deux meri-
steles fibreuses : tige ä meristeles fibreuses corticales :

(() La suture du legume seule epaissie ou ailee Calycotome.
ß) La suture et la nervure mediane du legume sont ailees Podo-
cytisus.

b) La feuille prend ä la tige trois meristeles completes: tige normale
Labumum.

II. Legume glanduleux ou tubercule:

La feuille prend ä la tige trois meristeles completes: tige a meri-
steles completes dans l'ecorce Adenocarpus.
B. Ailes soudees par le bord anterieur, embrassant la carrne:

La feuille prend ä la tige trois meristeles completes; tige normale Lupinus.
1374. Pellegrin, Framois. Recherches anatomiques sur la Classi-
fication des Genets et des Oytises. (Ann. Sei. nat., 9. ser., VI, 1908,
p. 129—320, 28 Fig.)

Systematisch sehr wichtig sind folgende zwei Gattungs-Übersichten,
die wir in der Originalsprache wiedergeben.

Die Gattung Genista gliedert sich nach Verf. in folgende Sektionen:
A. La feuille prend ä la stele trois meristeles completes.
Sous-genre I. Calice tubuleux: stele ailee par le pericycle: poche
gemmaire Petteria-

Sous-genre II. Calice campanule: stele ailee avec ou sans meristeles
completes: pas de poche gemmaire.

I. Stenocarpees. Legume oblong, allonge, quelquefois tres etroit, beau-
coup plus long que le calice, s'ouvrant en deux valves; nombreuses graines.
a) La meristele mediane foliaire se detache de la stele au niveau de
l'insertion de la feuille: les deux meristeles foliaires laterales se detachent de
la stele Inen audessous du niveau d'insertion de la feuille et suivent un par-
cours long dans l'ecorce; il y a des meristeles completes corticales dans
l'entre-noeud.

a) La feuille s'insere entre deux cotes, sur une face de la tige, ou en
face d'une cöte moitie moins developpee que les deux laterales.

v Trois ä cinq cotes principales avec meristeles completes: arbrisseaux
inermes a rameaux alternes; feuilles alternes: feuilles alternes persistant
jusqu'a l'automne.

O Graines strophioles: feuilles 3-foliolees petiolees, sauf les superieures
quelquefois unifoliolees; calice persistant Teline.

OO Graines sans strophiole. Feuilles sessiles unifoliolees, calice non
membraneux caduc. Genistoides.

Feuilles sessiles 3-foliolees, calice membraneux persistant. Gonocytisus.

fj Deux cotes opposees tres allongees, aplaties en ruban, contenant,

alignees suivant un rayon, deux ou plusieurs meristeles completes; arbrisseaux

inermes, rameaux alternes; phyllodes ou feuilles sessiles 1-foliolees, persistantes;

calice et corolle persistantes; graines avec ou sans strophiole Genistella-

240 U- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [240

ß) La feuille s'insere en face d'une cöte, eile est formee par trois cotes
voisines egales, fournissant chacune une meristele complete.

f Les cotes sont etroites ou etranglees ä la base, separees par des
sillons larges ou au moins elargis au fond; graines sans strophiole.

O Arbrisseaux epineux, ä rameaux alternes; epines feuilles axillaires;
feuilles persistantes a. deux stipules aigues; calice et corolle caducs. Scorpioides.

OO Arbrisseaux inermes, ä rameaux alternes; feuilles persistantes non
stipulees; calice et corolle persistantes Spartioides.

ff Les cotes sont larges, aplaties au sommet, separees par des sillons
etroits, reduits a une fente profonde.

O Arbrisseaux ä rameaux alternes, epineux au sommet, sans epines
laterales: feuilles alternes ou fasciculees, sessiles, uni ou 3-foliolees: fleurs
laterales; calice et corolle persistantes Erinnerndes.

OO Sous-arbrisseaux ä rameaux alternes, inermes; feuilles alternes ou
fasciculees, 1-foliolees, sessiles, persistantes: calice et corolle caducs.
Chamaesparhim ■

y) La feuille s'insere sur une face de la tige il n'y a pas de cotes
differenciees; la tige offre une strueture speciale avec exoderme; arbrisseau
inerme a feuilles unifoliolees, alternes, tres fugaces; calice persistant campanule
ä cinq dents presque egales Spartidium.

b) Les trois meristeles foliaires se detacbent de la stele au niveau de
l'insertion de la feuille; il n7y a pas de meristeles corticales dans l'entre-
noeud; la feuille s'insere en face d'une cöte, eile reeoit trois cotes egales,
fournissant chacune une meristele complete.

f Cotes etroites ou etranglees ä la base, sillons larges ou du moins
elargis au fond.

O Arbrisseaux epineux Scorpioides.

OO Arbrisseaux inermes Spartioides.

•ff Cotes larges separees par des sillons etroits Erinacoides-

II. Sphaerocarpees. Legume presque spherique ou ovale, charnu, coriace,
peu ou pas dehiscent; quelques graines sans strophiole.

a) Stele ailee par le pericycle, pas de meristeles completes dans l'ecorce.
O Cotes larges, sillons etroits Retama.
OO Cotes etroites, sillons larges Boelia.

III. Brachycarpees. Legume court, ovale plus ou moins aplati, muni d'un
bec aigu, s'ouvrant par deux valves; une ou deux graines (sauf quelques
especes de Lasiospartum dont le fruit est allonge, ä cinq ou six graines); pas
de strophioles.

a) Les trois meristeles foliaires se detacbent de la stele au niveau
d'insertion de la feuille; il n'y a pas de meristeles completes dans l'ecorce de
'entre-noeud; la feuille s'insere en face d'une cöte, eile reeoit trois cotes
egales, fournissant chacune une meristele complete.

■f Feuilles opposees ou les unes opposees les autres alternes. sessiles le
plus souvent 3-foliolees.

Arbrisseaux epineux Echinospartum.

Arbrisseaux inermes Aste rospar tum-

ff Feuilles alternes, sessiles, 3 ou 1-foliolees tres caduques; arbrisseaux
inermes.

Fleurs en grappes Retamospartum.

Fleurs en capitules Lasiospartum.

241] Leguminosae. 241

b) La meristele foliaire mediane se detache de la stele au niveau de
l'insertion de la feuille: les deux meristeles foliaires laterales se detachent de
la stele au-dessous du niveau d'insertion de la feuille: il y a des meristeles
completes dans l'entre-noeud.

Arbrisseaux epineux Echinospartwm.

Arbrisseaux inermes Asterospart um.

B. La feuille prend a la stele une seule meristele complete. (La
meristele se detache toujours au niveau d'insertion de la feuille: il n'y a Jamals
de meristeles completes dans l'entre-noeud.)

Sous-genre III. La stele est ailee par le pericycle: la feuille s'insere
en face d'une cöte: eile recoit le faisceau liberoligneux coiffe de l'aile peri-
cyclique correspondant ä cette cöte.

Arbrisseaux epineux.

a) Fruit court. Voglern.

ß) Fruit long. Phyllospartum.

Die Cytisvs gliedert Verf. wie folgt:

La feuille prend ä la tige une meristele complete et deux meristeles
exclusivement fibreuses.

Sous-genre I. Calice campanule: stele ailee par le pericycle ou a meri-
steles incompletes fibreuses: tige en etoile, ou avec alles larges nombreuses.
separees par d'etroits sillons.

La feuille s'insere entre deux cötes: sa meristele mediane correspond
dans la tige ä un sillon, les meristeles fibreuses ä deux cötes.

A. Carene vite pendante; style enroule sur lui-meme, stigmate droit
Sarotliamnus.

B. Carene restant dressee et contenant les etamines; style recourbe.
jamais enroule: stigmate en general oblique:

«) Fleurs laterales ou en grappes.

f Graines nettement strophiolees.

O Feuilles persistantes unifoliolees; carene courbee sans bec Corothamnus.

OO Feuilles persistantes trifoliolees; carene courbee ä bec obtus Eucytisus.

OOO Feuilles tres fugaces: rameaux denudes comme ceux de Spartium:
carene peu courbee obtuse Spartocytisus-

ff Graines ä stropliioles rudimentaires ou nuls; Feuilles persistantes:
carene tres courbee ä bec aigu Lembotropis.

ß) Fleurs en capitules terminant les rameaux: feuilles 3-foliees: carene
droite obtuse Chronanthus-

Sous-genre IL Calice tubuleux long; meristeles fibreuses de la tige peu
developpees, quelquefois absentes, la structure est alors normale Wiborgia.

1375. Perrot, F. et Oerard, 6. Becherches sur le bois de differentes
especesdeLegumineusesafricaines. Paris 1907, 8°, 162 pp., avec pl. et figs.

Siehe „Anatomie".

1376. Petersen, Erich. Zur vergleichenden Anatomie desZentral-
y.ylinders der Papilionaceen-Keimwurzel. (Beih. Bot. Centrbl., XXIV,
\, 1908, p. 20—44.)

Siehe „Anatomie".

1377. Prain, D. A new species of Butea, with notes on this genus.
<Ke\v Bull., 1908, p. 381-387.) N. A.

Butea umfasst jetzt 4 Arten.
Botaniseher Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 8. 8. 10.] 16

242 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogaaien. ["242

1378. Rapaics, R. Phyllodie der Lupinenblüte. (Nov. Közl., VIIT
1908, p. 233, ungarisch; deutsch im Beibl., p. [42]— [43].)

Siehe „Teratologie".

1379. Reynier, Alfred. La pretendue espece Medicago ouonidea de
Coincy n'est qu'une forme pathologique du M. minima Lmk.; —
demonstration concluante. (Bull. Soc Bot. France, LV, 1908, p. 553 — 557,
Fig. 1.)

1380. Rose, J. N. Viciaceae novae mexicanae atque centrali-
americanae. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 106 — 110.)

1381. Rose, J. N. Caesalpinaceae novae mexicanae. (Rep. spec. nov.,
V, 1908, p. 110—112.)

Beides aus: Contr. Unit, St. Herb., X, pt. 3, 1906, p. 97—103, 107.

1382. Russell, W. Observations sur des Genets ä balais adoptes
ä un sol calcaire. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 96—98.)

Verf. weist nach, dass Sarothamnus scopariits Koch, eine calcifuge Pflanze,
doch ohne sehr beeinträchtigt zu werden, in schwach kalkhaltigen Böden
vegetieren kann, wenn dort Eisensalze anzutreffen sind.

1383. Sagorski. Über den Formenkreis von Anthyllis Vulneraria L.
(Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 40-43, 55-58, 89—93, 124—134, 154—157,
172—175, 184—189. 204-205.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".
Noch unbeendet.

1384. Saxton. W. T. On the development of the ovule and em-
bryosac in Cassia tomentosa Lamb. (Trans, s. afric. phil. Soc, XVIII, 1907,
p. 1—5, 2 pl.)

Nicht gesehen.

1385. Scolield, Carl 8. The botanical History and Classification
of Alfalfa. (Bull. No. 131, U. S. Dep. Agric Wash., 1908, p. 11—19, 2 Text-
figuren.)

Betrifft Trigonella foenum-graecum L.. Medien fälcata (L.) Mill., als echte
Alfalfa, and Medicago radiata L.

1386. Severini, G. Particolaritä morfologiche ed anatomiche
nelle radici dell' Hedgsarum coronarium L. (Ann. di Bot., VII, Roma 1908,
p. 75—81, 2 Taf.)

Es ist im wesentlichen eine Wiedergabe der bereits 1907 in Rend. Acc
Lincei, XVI, II, p. 145 publizierten Abhandlung. Solla.

1387. Solereder, H. Über die Stammpflanze des sog. Hardwickia-
Baumes, Kingiodendron pinnatum Harms, nebst Bemerkungen über ver-
wandte Genera. (Arch. de Pharm., CCXLVI, 1908, p. 71—77.)

Nicht gesehen.

1388. Späth. Robinia Holdtii var. britzensis. (Mitt. D. Dendr. Ges., 1908,
p. 189—190.)

Die Varietät ist ein neuer Bastard zwischen Robinia neomexicana und
Pseudacacia.

1389. Stapf. Otto. Spartina Townsendii. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 33—35, fig. 17—20.)

Verf. bespricht an der Hand von Planskizzen die Verbreitung der Spar-
tina-Arten und gibt einen Schlüssel für die drei kritischen Arten. Von S. Town-
sendii und S. strieta werden Pflanzen abgebildet.

2431 Leguminosae. Lentibulariaceae. 243

1390. Tropea, Caleedonio. Sulla posizione naturale del Lathyrus
saxatilis Vis. (Mlp., XXI, 1907, p. 41-47.)

Gelegentlich der Einreihung von Exemplaren des Orobus saxatilis Vent.
isub Lathyro Vis. = L. ciliatns Guss.), welche in Süd-Frankreich, Spanien,
Griechenland, Algerien und von Gussone bei Palermo (M. Oatall'ano) gesammelt
worden waren, widmete Verf. der Pflanze grössere Aufmerksamkeit. Der
Hauptstengel ist durch seitliche, in der Achsel der Cotylen austretende Zweige
ersetzt. — Der Griffel ist fadenförmig und seitlich behaart; die Staubfaden-
röhre schief zur Achse geschnitten. Die Blüten sind gelb mit roter Fahne;
die Hülsen kurz und zylindrisch, mehr einer F/ciffl-Frucht entsprechend. Die
Blätter endigen nicht in Ranken, sondern tragen eine Stachelspitze am Ende
der Rhachis. Auf den Nebenblättern bemerkt man die Eindrücke von Honig-
grübchen. — Die Pflanze besitzt auch kleistogame unterirdische Blüten, ist
somit amphicarp.

Die oben angeführten Merkmale lassen in Lathyrus saxatilis Vis. deutlich
eine Vicia aus der nächsten Verwandtschaft von V- sativa erkennen ; die
Pflanze hätte daher richtiger V. saxatilis (Vent.) Tropea benannt zu werden.

Solla.

1391. Volut, Robert. La Tip a (Machaeriwm Tipu). (Rev. hortic., LXXX,
1908, p. 430-432, fig. 165.)

Die Figur zeigt eine Pflanze in Argentinien.

1392. Wagner, Rudolf. Beiträge zur Morphologie einiger Amorphar
Arten. (Sitzb. Akad. Wien, CXVI, I, 1907, p. 1544— 1553, 4 Textfig.) N. A.

Verf. schildert eigenartige Verwachsnngsverhältnisse bei A. fruticosa L.,
angustifolia Boynh., californica Nutt. und andere Arten, wobei A. süpellata und
A. Tracyi als neu aufgestellt, aber vorläufig noch nicht näher beschrieben
werden.

1393. Wiinstedt, K. Trifolium filiforme (T- micranthum Viviani). (Bot.
Tidssk., Bd. 28, Heft 3, p XXXV, Kjoebenhavn 1908.)

Der Verf. erwähnt das Vorkommen von Trifolium filiforme in Dänemark
und macht einige Bemerkungen mit Rücksicht auf die genaue Bestimmung
dieser Art und des Trifolium minus. H. E. Petersen.

1394. Wirtgen. Bemerkung zu L. Geisen heyners Notizen über
das Vorkommen von JJlex europaeus in Nassau. (Sitzb. Naturhist. Ver.
preuss. Rheinlande u. Westf., Bonn 1909, p. 33.)

Siehe „Pflanzengeographie". Fedde.

1395. Witte, Hernfrid. Om själfsteriliteten hos rödklöfvern
(Trifolium pratense L.). (Über die Selbststerilität des roten Klees.)
(Svensk Bot. Tidskr., IT, 1908, p. 333—339, mit deutschem Resümee.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Just.

1396. Zeissig, R. Ein alter Veteran im Nassauer Schlossgarten
(Sophora japonica). (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 200—201, 3 Fig.)

Die etwa 30 m hohe und um 1815 gepflanzte Sophora wird abgebildet.

1397. Zimmermann, A. Der ostafrikanische Copalbaum [Traehy-
lobiinn verrucosum], (Der Pflanzer, IX, 1908, p. 17 — 23.)

Lentibulariaceae.

1398. Othmer, R. Pinguicula caudata Schltdl. (Gartenwelt, XIII, 1908,
p. 308-309, 0 Textfig.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen, Blätter und Winterknospen.

16*

244 U- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [244

1399. R., R. A. Utricularia Humboldtü. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 380-381.)

Eingehende Beschreibung der Art und ihres Vorkommens.

1400. Schindler, Johann. Studien über einige mittel- und süd-
europäische Arten der Gattung Pinguicula. (Östr. Bot. Zeitschr., LYIII,
1908, p. 13—18, 61—69.)

Verf. fasst die Ergebnisse seiner Untersuchungen wie folgt zusammen:
1. Pinguicula grandiflora ist nicht eine Varietät der P vulgaris, sondern
eine Art, welche von P vulgaris und P. leptoceras durch Kelchform,
Spornlänge und Petalenform deutlich unterschieden ist. Sie reicht
östlich nur bis zum Genfer See: alle Angaben über P grandiflora aus
östlicheren Gebieten sind irrig und beziehen sich meist auf P leptoceras.
"2. P. Reuteri ist keine der P grandiflora gleichwertige Art, sondern nur
eine Rasse derselben. Morphologisch ist sie nur graduell von P. grandi-
flora verschieden.

3. P leptoceras ist eine namentlich durch die Kelchform sehr gut charakteri-
sierte Art; sie ist von P. grandiflora und P vulgaris deutlich verschieden
und der Name P. leptoceras daher nicht Synonym zu P. grandiflora oder
Varietätsname zu P. vulgaris, sondern Artname.

4. P Helhvegeri Murr ist vollkommen gleichbedeutend mit P leptoceras, der-
Name somit Synonym zu der Reichenbachschen Art.

5. P longifolia ist eine endemische Art der Zentralpyrenäen. Sie ist
namentlich durch die Kelchform von den nächstverwandten Arten
unterschieden.

li. Die Pinguicula der Seealpen (Rojatal) wird als neue Art, als P Reichen-
bachiana beschrieben. Sie ist weder mit P. longifolia noch mit P leptocerox
identisch, sondern nimmt eine Mittelstellung zwischen beiden unter Aus-
bildung eigener morphologischer Blütenverhältnisse ein.

7. P. vallisneriaefolia gehört nicht, wie man erwarten sollte, in den Ver-
wandtschaftskreis der P. hirtiflora, sondern in den P longifolia. Auch
hier hat die Form der Kelchblätter als wichtiges Unterscheidungsmerkmal
zu gelten.

8. Die grosse Bedeutung der Kelchform für die Unterscheidung der
europäischen Pinguicula-Arteu wird namentlich an dem Kelche der
P corsica nachgewiesen. Durch die Kelchform ist diese der P leptoceros
äusserlich sehr ähnlich sehende Art von allen anderen Arten auf das
schärfste verschieden.

9. Auch bei P. hirtiflora ist die Kelchform ein einfaches und unbedingt
sicheres Unterscheidungsmerkmal. P. laeta und P albanica sind Syno-
nyme zu P hirtiflora, dagegen ist P megaspilaea Boiss. et Heldr. als
Varietät von P hirtiflora zu unterscheiden.

10. P. crystallina und P. hirtiflora stehen einander sehr nahe und auch die
Kelchblätter beider Arten sehen, entgegen Boissiers Behauptung,
einander gleich.

11. Der Name P variegata Arv.-Touv. hat zu fallen, da eine sibirische Art
früher unter diesem Namen beschrieben wurde. Was unter P. variegata
Arv.-Touv. zu verstehen sei. ob es P leptoceras oder eine Übergangsform
von P Reichenba chiana zu P. corsica sei, lässt sich nicht entscheiden, da
es an Belegen fehlt und die Beschreibung zu ungenau ist.

245] Linaceae. Loasaceae. Lobeliaceae. Loganiaceae. Loranthaceae. 245

Linaceae.

Neue Tafel:
Hugonia acuminata Engl, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 71.

Loasaceae.

1401. Urban. J. Loasaceae in Ule, Beitr. Flora Bahia, I. (Engl. Bot.
Jahrb., XLII, 1908, p. 231—232.) N. A.

Xeue Arten von Loasa.

Lobeliaceae.

Loganiaceae.

Neue Tafel:
Xuxia Autunesii Gilg in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 128.

1402. Hebert. A. Sur les principes actifs des fruits d'un Strychnos
africain. (Journ. Pharm, et Chim.. 6, XXVII. 1908, p. 151—155.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1403. Holm. Th. Medicinal plants of North America. 14. Gelsemium
sempervirens Ait. (Mercks Rep., XVII, 1908, p. 86—89, 17 figs.)

Siehe „Anatomie".

1404. King, George and Gamble. Loganiaceae in Materials for a Flora of
the Malayan Peninsula, No. 19. (Journ. As. Soc. Bengal, LXXIV, 1908, p. 598
bis 625.)' N. A.

Mit den Gattungen: Mitreola, Mitrasacme, Buddleia, Norrisia, Fagraea,
strychnos und Graertnera.

1405. Lencbs. H. Zur Kenntnis der Strychnosalkaloide. I. (Ber.
deutsch, ehem. Ges., XLI, 1908, p. 1711 — 1720.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1406. in n in ii n it. 0. Über den anatomischen Bau der Rhizoma
Gelsemii [Gelsemium sempervirens Ait.] (Pharmaceut. Centralh., 1907, p. 679
bis 687, Fig. 1—4.)

Siehe ..Anatomie".

Loranthaceae.

Neue Tafel:
Loranthus capitatus Engl, in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 34.
Osyris tenuifolia Engl, in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 35.

1407. Anonymus. Richerche sul caoutchouc dei frutti di aleune
Loranthacee. (Boll. Orto Bot. e Giard. colon. Palermo, VI, 1907, p. 15 — 17.)

Siehe ..Chemische Physiologie".

1408. Brittlebank, C- C. The life-history of Loranthus exoearpi B ehr.
(Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, XXXIII, 1908, p. 650-656, pl. XV— XX.)

Diese Art lebt bei Victoria meist auf diversen Acacia, Casuarina, Exco-
carpus cupressiformis, Hymenanthera Banksii, Loranthus pendulus und Prunus
cerasus wie domestica. Verfasser beschreibt die Verbreitung der Früchte und
schildert an der Hand der Tafeln die Entwickelung der Sämlinge.

1409. Chassignol, F. Le gui; les essences sur lesquelles il a ete
Signale; les ebenes porte gui. iProc. Verb. Soc. Hist. nat. Autun, 1907,
28 PP.)

Nicht gesehen.

1410. Durafour, A. Le Gui les Porte-Gui. (Bull. Soc. Nat. de l'Ain,
Bourg [1908], No. 23, p. 4—17.)

Nicht gesehen.

246 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [246

1411. Duret, V. Les preferences du Gui. (Bull. Soc. region. Bot.
Deux-Sevres, XIX, 1907 [1908J, p. 273-275.)

Nicht gesehen.

1412. Gerber, C et Cotte, J. Observations biologiques sur Arceu-
thobium jimiperorum Reyn. IL Partie chimique. (0. R. Soc. Biol. Paris,
LXIV, 1908, p. 1180.)

Siehe „Chemische Physiologie". *

1413. Heinricher, E. Studien über die Mistel. (Ber. naturvv.-mediz.
Ver. Innsbruck, XXXI [1907/08], p. XVII— XIX.)

Vgl. das Referat No. 1327 im Just 1907.

1414. Koernicke. Über Rindenwurzeln tropischer Loranthaceen.
(Natnrw. Rundsch., XXIII, 1908, p. 532-553.)

Siehe „Anatomie".

1414a. Meschede, Franz. Einiges über die Mistel. (XXV. Jahresber.
Westf. Prov.-Ver. f. Wiss. u. Kunst [1906/07], Münster 1907. p. 177—184.)

Kurzer Vortrag. Fedde.

1414b. Müller, Fr. Das Schmarotzen von Viscum auf Viscum. (Naturw.
Zeitschr. Landw. u. Forstw., VI, 1908, p. 323—326. eine Abb.)

Verf. berichtet, dass das Schmarotzen von Mistel auf Mistel im Fürsten-
tum Birkenfeld sich ziemlich häufig findet.

1414c. Müller, Fr. Beobachtungen an der Mistel (Viscum album).
(Sitzungsber. Naturhist. Ver. d. preuss. Rheinl. a. Westfalens, 1908, E, p. 2 — 8.)

Nicht gesehen.

1414d. Plateau, Felix. Note sur l'implantation et la pollination
du gui (Viscum album) au Flandre. (Bull. Soc. Roy. Bot. Belg., XLV, 1908,
p. 84—102.)

Siehe unter „Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen".

1414a. Solereder, H. Pfropfversuche mit der Mistel und der
Riemenblume im botanischen Garten zu Erlangen. (Naturw. Zeitschr.
Land- u. Forstw., VI, 1908, p. 28—32, 2 Textf.)

Es handelt sich um Pfropfungen von mit Viscum album bzw. Loranihus
europaeus besetzten Zweigen von Apfel und Eiche auf analoge Wirtspflanzen.

1414f. Tubeuf, C. von. Über die Beziehungen zwischen unseren
Misteln und der Tierwelt. (Naturw. Zeitschr. Land- u. Forstw., VI, 1908,
p. 47—68.)

Siehe im Referate Dalla Torres.

1414g. Tubenf, C. von. Über die Bedeutung von Beerenfarbe und
Beerenschleim bei der Mistel, Viscum album. (Naturw. Zeitschr. Land-
u. Forstw., VI, 1908. p. 141—151, eine Textf.)

Die weisse Beerenfarbe scheint nach Verf. besonders einen Schutz gegen
Erwärmung zu bieten und dadurch eine vorzeitige Keimung zu hindern.

Die grosse Schleimmasse hat weder den Sinn des Verdunstungsschutzes
und der Wasserabsorption noch jenen, keimungshemmende Stoffe zu bergen
noch auch durch Zellulose oder Fettgehalt als Nahrungsmittel zu dienen. Ihre
Hauptfunktion, ein Anheftungsmittel zu sein, bleibt ihr. Verf. bemerkt noch
dass der Schleim nur sehr schwer wässerige Flüssigkeiten aufnimmt und beim
Passieren des Vogeldarmes nur leicht braun gefärbt wird, worin ein gewisser
Schutz gegen Verdauung für den eingeschlossenen grünen Samen liegt.

1414h. Tubeuf, C. von. Yiscwm crutiatum Sieb., die rotbeerige Mistel.
(Naturw. Zeitschr. Land- u. Forstw., VI, 1908, p. 407—414, 497—509, 7 Textf.)

247^ Loranthaceae. Lytlnaceae. Magnoliaceae. Malpighiaceae. 247

Verf. klärt zunächst die Nomenclatur und bespricht die Verbreitung und
Morphologie der Art. Dann behandelt er die Samenruhe, die etwas kürzer als
bei V- album zu sein scheint. Die Keimung erfolgt etwas früher und wird
durch höhere Temperaturen gefördert. Hinsichtlich des Einflusses von Trocken-
heit und Feuchtigkeit auf die Keimung verhalten sich beide Arten gleich.
V. album ist zur Keimung lichtbedürftiger als V- cruciatum. Im allgemeinen
.ähneln sich beide sehr, doch eignet sich cruciatum zu Beobachtungen über
Geotropismus, Heliotropismus, Thermotropismus usw. besser, da es bald keimt,
schnell wächst, empfindlich reagiert und weniger abhängig ist von der Be-
lichtung zur Keimungszeit.

1415. Tle, E Loranthaceae in Beitr. z. Flora von Bahia. (Engl. Bot.
Jahrb., XL1I, 1908, p. 199—201.) N. A.

Neue Arten von Strutanthus, Phoradendron-

Lythraceae.

Neue Tafel:

Nesaea floribunda Sond. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 111.

1416. Hooper, David. Oil of Lawsonia alba Lamk. (Journ. a Proc. As.
Soc. Bengal, N. S., IV, 1908, p. 35.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1417. Recenti, A. La Lagerstroemia. (Bull. Soc. tose. Orticolt., XXXIII,
p. 225-226, in 8 0, 1 tav., Firenze 1908.)

Referat noch nicht eingegangen.

Magnoliaceae.

Neue Tafeln:
Itticium anisaUon L. in Shirasawa, Iconogr. ess. for. Japon, II, 1908, tab. 17,

fig. 0—17.
Magnolia Kobus DC. in Sargent, Trees a. Shrubs, II, 2, 1908, tab. 12li.
M. parvißora S. et Z. in Shirasawa, Iconogr. ess. for. Japon, II, 1908, tab. 17,

fig. 1-5.

1418. Bean, W. J. TAriodendron chinense. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 429, Fig. 175.)

Die Abbildung zeigt eine junge Pflanze.

1419. Charabot, E, et Lalouc, G. Sur l'essence de Magnolia Kobus DU.
(Bull. Soc. chim. France, 4, III-1V, 1908, p. 381—383.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1420. Henrüjues, J. A. A Magnolia grandiflora do Jardino Botanico.
(Bolet. Soc. Broteriana, XXIII, 1907, p. 218.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1421. Schwerin, F. v. Erfahrungen bei der Aufzucht von Magnolia
hypoleuca. (Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 105—108.)

Für Gärtner. Forstleute, überhaupt Kultivateure wichtig.

Malesherbiaceae.

Malpighiaceae.

Neue Tafel:
Aeridocarpus macrocalyx Engl, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 78.

1422. Dop, Paul. Contribution ä l'etude des Malpighiacees
d'Indo-Chine. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 427—430.) N. A.

Betrifft neue Aspidopteris und Hipsage- Arten.

248 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [248

1423. Dubard, Marcel et Dop, Paul. Nouvelles observations sur
i'anatomie et les affinites des Malpighiacees de Madagascar.
(Compt. Rend. Ac. Paris, CXLVI, 1908, p. 355—357.)

Die unter Anatomie zitierten anatomischen Befunde bestätigen die aus
der Morphologie gewonnenen Resultate, dass die Malpighiaceen von Madagaskar
besonders zu den afrikanischen durch die Gattungen Microsteira, Triaspis und
Acridocarpus Beziehungen zeigen, dass aber vier neue oder noch wenig-
bekannte Gattungen deutliche Anklänge an südamerikanische Typen bieten.

1424. Niedenzn, Franz. De genere Mascagnia. (Arb. bot. Inst. kgl.
Lyceum Hosianum, Braunsberg, Ostpreussen, III, 1908, 29 pp.) N. A.

Die Gattung gliedert sich wie folgt:
Subg. I. Mesogynixa: Racemi s. corymbi (in M. Pringlei umbellae). Pedunculi
floriferi pedicellique obliquo-directi, plerique usque apicem aequaliter
subgraciles. Bracteae bracteolaeque in plerisque apice acutae s. raro
acutiusculae, pleraeque lanceolatae, haud rarae lineari-lanceolatae
acutissimae. Styli glaberrimi trianguläres usque apicem simpliciter
truncatum s. apice a lateribus compressi, gynixo ad angulum internum
oblique orbiculari s. a lateribus compresso (raro totum fere apicem sim-
pliciter truncatum subtriangularem occnpante).
Sect. 1. Eumascagnia: Petala rubra s. rosea s. violacea s. lilacina s. coerulea
(incl. M. sepium et M. multiglandulosa lutea s. flava). Samarae ala
laterialis unica basi quidem continua.
Subsect. A. Psilopetalis: Petala patentia utrinque glaberrima.

Ser. a. Actinandra : Androeceum actinomorphum. Stamina petalis
opposita (exteriora) alternis paulo breviora inter se aequalia.
Etiam gynaeceum actinomorphum: styli breves directi s. sim-
pliciter recurvi nee torti inter se (excl. M. polybotrya et M. Buchii)
aequilonga. — Hierher: M. nitida Ndz., M. complicata Ndz.,
M. polybotrya Ndz., M. sepium Gris., M. cordifolia Gris., M. Pringlei
Ndz., M. cynanchifolia Griseb., M. macradena Ndz., M. tenui-
folia Ndz., M. Buchii Urb. et Ndz.
Ser. b. Zygandra : Et androeceum et gynaeceum zygomorphum.
Staminum petalis oppositorum 2 stylis posticis opposita ceteris
majora et filamentis crassioribus et antheris longioribus crassi-
oribusque. Styli dorso apicis nunc transverse truncati acuti,
nunc oblique truncati + uncinati, 2 postici antico longiores
crassioresque. Racemi semper propra. — Hierher: M. vaccinii-
folia Ndz., M. nervosa Ndz., M. ovatifolia Grisb., M- violacea
Ndz., M. lilacina Ndz., M. brevifolia Grisb.
Subsect. B. Sericopetalis: Petala sub anthesi ± ereeta, subtus sericea s.
parce puberula, margine glanduloso-denticulata s. -lacero-ciliata.
Samarae ala fere Fabellariae suborbicularis, apice angulo l/8 — 3/4.
R metiente usque nucem exciso et cristo dorsali percurso. —
Hierher: M. macrodisca Ndz., M. anisosepala Gris., M- niulti-
glandulosa Ndz., M. Spruceana Ndz., M. leucanthele Grisb.
Sect. 2. Pleuropterys : Petala flava s. lutea. Alae 2 laterales et supra et
infra nucem distinetae. Orista dorsalis distinete — plerumque
multoties, raro vix dimidio — minor alis lateralibus, rarissime sub-
nulla c. e nervo tantum prominente probato. — Hierher: M- Doniana
Grisb., M. metallicolor Ndz., M. sericans Ndz., M. chlorocarpa Gris.,

2491 Malpighiaoeae. Malvaceae. 249

M. rolubilis Ndz., M- pubiflora Gris., M. hippocrateoides Ndz., M- jamai-

censis Urb. et Ndz.
Sect. 3. Notopterys: Petala flava s. lutea. Samarae trialatae, ala dorsali

laterales et forma et magnitudine + aequante. — Hierher: 31. ambigua

Grisb., M. salicifolia Grisb.
Subg. II. Plagiogynixa : Fructices + scandentes partibus novellis parce albido-
sericeis, ramulis compressis, ramis teretibus glabratis. Folia novella
utrinque parce sericea. adulta supra vel utrinque glabrata, petiolo tenui
supra canaliculata, stipulis exiguis vix ultra >/2 mm longis basi petioli
affixis. Umbellae vel corymbi 4 — 8 flori, pedunculis cujusque ordinis
demum + glabratis, floriferes (cum pedicellis) adscentibus, pedicellis
ipsos + duplo superantibus versus apicem clavato-incrassatis. bracteis
bracteolisque (irjfra apicem s. apici pedunculi affixis) + glabratis,
gemmae floriferae sphaeroideae. Sepala rotunda + glabrata pauloque
undulata, glandulis 6 — 8 crassiusculis orbicularis s. rotundis. Petala
lutea extus sericea, limbo orbiculari denticulato, quinti ceteris minore
corrugato glandulis stipitatis clavatis (margine quidem basali) ornato.
Antherae filamentis apice reduncis resupiuatae a dorso compressae late
vovideo s. orbiculari-lentiformes, 3 posticae ceteris dimidio minores.
Styli a basi ultra medium sericei + arcuato-divergentes apice a dorso
ventreque compressi, gynixo ad angulum internum transverse dilatato
saepe viride. Samarae paulo puberulae trialatae, ala dorsali lateralibus-
+ dimidio breviore, areola nucis ventrali late ovata s. suborbiculari
paulo ultra basim toro brevissimo, ceterum altera alteri accumbente
itaque secundum medianama refracta.

Hierher: 31. macroptera Ndz., M. septrionalis Ndz., M. psilophylla Grisb. r
M. mexkana Ndz., M. sericea Ndz. und M. Barclayana Ndz.

Die neuen Diagnosen erscheinen in Fedde, Eep. nov. spec. VIII oder IX.

1425. Niedenza. F. Novae species Hiraeae Malpighiacearum generis.
(Rep. spec. nov., V, 1908, p. 58—64.)

Aus: De genere Hiraea in Verg. Vorl. Kgl. Lyc. Hosianum Braunsberg,
1906, p. 3—17.

Malvaceae.

Neue Tafeln:
Ribiscus Uliaceus var. Hamabo Max. in Shirasawa, Iconogr. Ess. forest. Japon,

II, 1908, tab. 51, fig. 1-9.
Paconia praemorsa Willd. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 93.

1426. Abbey-Yates. The use of Urena lobata as a fibre material
and as a possible Substitute for jute. (Agric. Ledger, 1908/09, 4,
p. 51—62.)

Siehe „Agrikulturbotanik".

1427. Anonym. Malvastrum hypomadarum in Edinburgh. (Gard. Chrom,
3. ser., XLIV, 1908, p. 93, Fig. 34-35.)

Die Abbildungen zeigen eine blühende Pflanze und Fruchtdetails.

1428. Balls, W. Lawrence. The Cotton plant. (Nature, LXXVII,
1908, p. 484—485.)

Bezugnahme auf eine Notiz von Prain vgl. Just 1907.

1429. Balls, W. L. Mendelian studies of Egyptian cotton. (Journ.
agric. Sc, II, 1908, p. 346—379, 3 figs.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

250 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [250

1430. Berger, Alwin. Hibiscus venustus. (Gard. Ohron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 365.)

Beschreibung nach lebenden Exemplaren.

1431. Britton, N. L. Wild Jamaica cotton. (Science, N. S., XXVII,
1908, p. 654-665.)

Nicht gesehen.

1432. Cockayne, L. Supplementary note on the defoliation of
■Gaya in New Zealand. (Trans. New Zeal. Inst., XXXIX, 1906, p. 359—360.)

Ergänzung zur Notiz Just. 1907, No. 1355.

1433. Cook, 0. F. Note on Professor Brittons wild Jamaica
.cotton. (Science, N. S., XXVII, 1908, p. 665—666.)

Nicht gesehen.

1434. Friedel, Jean. Observations sur la developpeme nt du
pistilchezlesMalvacees. (CR. Acad. Sei. Paris, CXLVI, 1908, p. 832— 833.)

Siehe „Anatomie".

1435. Fries, R. E. Entwurf einer Monographie der Gattungen
Wissadula und Pseudabutilon. (Kgl. svenska Vet. Ak. Handl , 1908, 114 pp.,
10 Tai'.)

Referat folgt 1909!

1436. Fyson, P. F. Some experiments in the hybridising of
Indian Cottons [Gossypium]. (Mem. Dep. Agr. India, II, 1908, No. 6, 29 pp.,
19 figs.)

Siehe „Variation, Descendenz" usw.

1437. Heine, C Die Baumwolle, ihre Kultur, Ernte, Bearbeitung
and der internationale Baumwollhandel nach „Cotton" von Ch. W.
Burkett und Gl. H. Poe. Leipzig, O. Wigand, 1908, mit 71 Abb.

Nicht gesehen.

1438. Hoclireuliner, B. P. G. Malvaceae et Stercidiaceae novae vel
minus cognitae. (Annuaire Cons. et Jard. Bot. Geneve. XI — XII, 1908,
p. 1-9.) N. A.

Neue Arten von : Dombeya, Hermannia. Buettnera, Hibiscus.

1439. Leake, H. Martin. Studies in the Experimental Breading
of the Indian Cottons [Gossypium], — an introduetory note. (Journ.
and Proc. Asiat. Soc. Bengal, N. S., IV, p. 14—20, 1908.)

Siehe im „Descendenztheoretischen Teile" des Just.

1440. Sprague, T. A. An overlooked Malvastrum (M. hypomadarum
n. sp.). (Gard. Ghron., 3. ser., XLIII, 1908, p. 394—395, Fig. 176.) N. A.

Die Figur zeigt Blütenzweige und Blütendetails.

1441. Tyler, Frederkk J. The neetaries of cotton. (Bull. No. 131,
U. S. Dep. Agric. Wash., 1908, p. 45— 54, pl. I.)

Verf. beschreibt die floralen und extrafloraleu Nektarien, von denen die
letzteren sich in Blatt- und lnvolucralnektarien gliedern. Vgl. die folgende Liste:

Groups of Species having similar neetaries.

A. luvolucral neetaries both present. American group, also including
Bourbon and Scinde cottons.

a) Floral neetary with a band of hairs above.

Gossypium hirsutum L., G. mexicanum Tod., G. microcarpum Tod., G-
palmerii Watt., G. purpurascens Poir., G. darwinii Watt., G. stoeksii Mast.

b) Floral neetary naked.

251] Malvaceae. Marograviaceae. Martyniaceae. Melastomataceae. 251

Gossypium barbadense L., G- brasilicnsc Macf., G. pernvianum Cav., G.
vitifolium Lam.

B. Outer involucral nectary absent, the inner present, with a covering
of stellate hairs. Asiatic group.

Gossypium arboreum L., G. nanking Meyen., G- obtusifolium Roxb., G.
herbaceum L.

C. Outer involucral nectary present, the inner absent. Ingenhonsia group.
Gossypium davidsonii Kellegg., Ingenhottsia karknessii (Brandegee) Rose.

Ingenhousia triloba Moc. u. Sesse.

D. All extrafloral nectaries absent.
Gossypium tomentosum Nutt.

1442. Ulbrich, E. Malvaceae in Ule, III, Beiträge zur Flora der Hylaea.
(Verh. Bot. Ver. Prov. Brandenburg, L, 1908, p. 85-91, fig. I— II.) N. A.

Die Figuren zeigen Details von Malvaviscus pälmatus und integrifolius.

1443. Ulbrich, E. Malvaceae in Ule, Beitr. Flora Bahia I. (Engl. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 225-229.) N. A.

Neue Arten von Sida, Pavonia.

1444. Ulbrich, E. Malvaceae austro-americanae imprimis andinae.
(Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908, p. 104—124.) N. A.

Neue Arten von Palana, Malvastrum, Nototriche, Sida, Pavonia-

1445. Wagner, H. und Clement, J. Zur Kenntnis des Baumwoll-
samens und des daraus gewonnenen Öles. (Zeitschr. Unters. Nähr- u.
Genussmittel, XVI, 1908, p, 145—161.)

Siehe „Chemische Physiologie".

Marcgraviaceae.

144(3. Gilg, E. Marcgraviaceae Americae tropicae. (Engl. Bot. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 124—128.) N. A.

Neue Arten von Marcgravia, Norantea, Souroubea.

Martyniaceae.

Melastomataceae.

Nene Tafeln:
Cincinnobotrys Sereti De Wild, in Ann. Mus. Congo, II, fasc. III, 1908,

tab. LXXXIX.
Dissolis capitata (Vahl.) Hook. f. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 116.
Leandra furfurella Rech, in Denkschr. Ak. Wien, LXX1X. 1908, tab. XXIII.
L. Wettsteinii Rech., 1. c, tab. XXII.
Tibonehina nobilis Rech, in Denkschr. Ak. Wien, LXXIX, 1908, tab. XXI.

1447. Cogniaux, A. Melastomataceae peruvianae. (Engl.Bot. Jahrb., XLII,
1908, p. 131—148.) N. A.

Neue Arten von Centradeniastrum, Brachyotum, Macrairea, Tibouchina,
Graffenrieda, Axinaea, Calyptrella, Macrocentrum, Leandra, Miconia, Bellucia,
Blakea.

1448. Recenti, A. Cyanophyllum magnificum Denis in Bull. Soc. tose
Ortic, XXXIII, p. 137—140, in-8», 1 tav., Firenze 1908.

Ref. noch nicht eingegangen.

1449. Reehinger. C. Melastomataceae. Ergebn. bot. Exp. kais. Ak. Wiss.
Wien nach Südbrasilien, 1901, I. Bd. (Denkschr. kais. Ak. Wiss. Wien, LXXIX,
1908, mit 3 Taf.) N. A.

252 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [252

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie", sowie Fedde,
Rep. nov. spec.

1450. Ule, E. Melastomataceae in Beitr. Flora Bahia, I. (Engl. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 233-236.) N. A.

Neue Arten von Chaetostoma, Microlicia, Pterolepis, Itatala, Fritzschia,
Marcetia.

Meliaceae.

Neue Tafeln:
Cedrela chinensis Juss. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest., II, 1908, tab. 35,

fig. 1—13.
Leioptyx congoensis Pierre in Ann. Mus. Congo, II, fasc. III, 1908, tab. LXXVT,

bis VII.
Melia japonica Don. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest, II, 1908, tab. 35,

fig. 14—20.
Pynaertia ealaensis De Wild, in Ann. Mus Congo, II, fasc. III, 1908,

tab. LXXXIV.
Trichilia retusa Oliv, in Thonner, BlütenpfJ. Afrikas, 1908, tab. 77.
Turraea Laurentii in Ann. Mus. Congo, IT, fasc. III, 1908, tab. LXXXVIII.

1451. Bagshawe, A. G. A new Turraea [rogelioides] from Uganda.
(Journ. of Bot., XLVI, 1908, p. 56—57.) N. A.

1452. Ball, 0. M. Formation of adventitious roots in the Um-
brella China Tree. (Bot. Gaz., XLVI, 1908, p. 303—304, 2 figs.)

Verf. beschreibt Adventivwurzelbildung an einem alten modernden
Stumpf von Melia azedaracli umbraculifera.

1453. Camlolle. C. de. A revision of the Indo-Malayan species
of Cedrela. (Rec. bot. Survey India, HI, 1908, p. 357 — 377.)

Ref. konnte die Arbeit noch nicht einsehen.

1454. Drabble, E. Carapa procera DC. (Journ. Inst. comm. Res. Tropics,
111, 1908, p. 21-24, 1 pl.)

Beschreibung der Früchte und Samen.
Ref. konnte die Arbeit nicht einsehen.

Melianthaceae.

Neue Tafel:
Bersama abyssinica Fres. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 87.

1455. Anonym. Grayia Sutherlandi. (Gard. Chrom, 3. ser., XLIII, 1908,
p. 138, fig. 54.)

Die Figur zeigt Blütenstand und Blütendetails.

Menispermaceae.

Neue Tafel:
Cocculus Leaeba DC. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 48.

1456. Diels, L. Menispermaceae in Ule, III, Beiträge zur Flora der
Hylaea usw. (Verb. Bot. Ver. Prov. Brandenburg, L, 1908, p. 73—74.)

N. A.

1457. Gagnepain, F. Menispermaceae in Lecomte, Fl. gen. de l'Indo-Chine,
I, 1908, p. 124—154, fig. 14—15. N. A.

Vertreter der Gattungen: Tinomiscium, Tinospora, Fibraurea, Parabaena.,
Mirtana, Coscinium, Anamirta, Pericampylus, Diploclisia, Cocculus, Luisacia,
Stephania, Cissampelos, Cyclea, Pachygone, Autitaxis.

2531 Meliaceae. Melianthaceae. Menisperuiaceae. Monimiaceae. Moraceae. 253

1458. Gagnepain. F. Menispermacees nouvelles. (Bull. Soc. Bot.
France, LV. 1908, p. 35-41, 43—46.) N. A.

Neue Arten von: Antitaxis, Cocculus, Cyclea, Menispermum, Pachygone,
Stephania, Tinomisciwm, Tinospora-

1459. Ginnchi, D. Ricerche sulla struttura anatomica di alcune
Aristolochiaeee, Menispermacee e Lardizabalacee. Bologna, tip.
Pongetti, 1908, 40 pp., in-4<>, 6 tav.

Ref. noch nicht eingegangen.

Monimiaceae.

Neue Tafel:
Glossocalyx longicuspis Benth. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 51.

1460. Tunmann, 0. Folia Boldo [Peumus Boldus Mol.]. (Südd. Apoth.-
Ztg., 1908, No. 14, ill.)

Siehe ..Anatomie".

Moraceae.

Neue Tafeln:
Dorstenia elliptica Bureau, Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 31.
Ficus cordi folia Bl. in Ic. Bogor., III. 1908, tab. CCLXVI.
F. erecta Thbg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon II, 1908, tab. 16.

fig. 1-8.
F. rocco Schweinf. et Warb, in Notizbl. Bot. Mus. Berlin Dahlem, V, No. 42,

Taf. IL
F. triangularis Warb, in Notizbl., 1. c, Taf. III.
F. Vogelii Miq. in Notizbl., 1. c, Taf. I.
F. Wightiana var. japonica Miq. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, tab. 16,

Fig. 9—15.
Morus alba L. var. stylosa Bur. in Shirasawa, 1. c, tab. 6, fig. 1—11.

1461. Bessey, Ernst A. The Florida Strangling Figs [Ficus]. (Rep.
Miss. Bot. Gard., XIX, 1908, p. 25—33, pl. 1—9.)

Es handelt sich um Ficus (sect. Urostigma) aurea Nutt. und F. populnea W.

Verf. zeigt in den Tafeln die aurea auf Quercus virginiana und Sabal palmeüo,

sowie eine nicht epiphytisch wachsende Pflanze; ferner Fruchtzweige beider

Arten.

Dann bespricht Verf. die Bestäubung durch Blastophaga-Arten (vgl. im

„Blütenbiologischen Teile" des Just und zum Schluss die Keimung der Samen

im Dunkel und Licht (vgl. „Physikalische Physiologie".

14H2. Cell, G. Ricerche sulla biologica e filogenesi del Fico
ed inquadramen to delle relative racce italiane meridionale [Firns
carica L.]. (Atti r. Ist. Incoraggiam, Napoli, 6. ser., IV, 1908, p. 1—114.)

Über diese Arbeit berichtet Pampanini im Bot. Centrbl., CVIII, p. 132/3
wie folgt:

Nachdem Verf. einen kurzen Bericht über den Ursprung, die Geschichte
und die Bedeutung des Feigenbaumes sowie über die Beziehungen zwischen
der wilden Form (Caprificus) und der kultivierten Form (F. Carica f. sativa) und
deren Konstitution gegeben hat, zeigt er, welches die morphologischen
Charaktere der Art im allgemeinen und der Kulturform im besonderen sind.
Die lange Kultur hat beim Feigenbaum Variationen hervorgerufen, die sich
fixiert haben und zahlreiche Rassen bilden. Verf. überblickt die Ursachen
dieser Variationen, d. h. die Ursachen, die die Entwickelung der Frucht, ihre

254 C\ K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [254

Form und Farbe bestimmen und die schliesslich in den klimatischen Be-
dingungen des Milieus sich resümieren.

Der Feigenbaum zeigt je nach der Rasse verschiedene Fruchttypen:
eiförmige, rundliche und niedergedrückte. Nach dem Autor rufen Verminderung
der Wärme und Vermehrung der Feuchtigkeit die Verlängerung der Frucht
(eiförmiger Typ) hervor, was nach ihm die Tatsache erklärt, dass in den nörd-
lichen Gegenden des Verbreitungsgebietes der Feige die langen Fruchtformen
dominieren. Während seinem Ursprung nach (südliche Gegenden) die typische
Form der wilden Feige die mit kugeligen Früchten sein müsste, ist es in
Wirklichkeit die mit eiförmigen Früchten, denn die normale Blütezeit findet
im Frühling statt, der feuchter und weniger heiss als der Sommer und Herbst
ist. Indessen gibt es in jeder Region Rassen, die den drei Typen angehören,
denn sie bewahren ihre Charaktere, weil sie immer auf agamische Wege ver-
mehrt werden.

In bezug auf die Faibe gruppieren sich die Rassen in zwei Serien: eine
cyanische (Früchte violett oder scbwarz) und eine xanthische (Früchte gelb
oder grünlich) ; die Rassen der ersten Serie würden aus den südlicheren Re-
gionen stammen. Nach dem Autor ist die Feige ein Fruchtbaum mit einmaliger
und gradueller Produktion, die während des Winters unterbrochen wird und
sich im folgenden Frühling abschliesst.

Die Feige ist eine dichogame proterogyne Pflanze, deren typische Form
entomophil ist.

Die Caprifikation war schon zur Zeit des Herodot bekannt und bis auf
unsere Tage wird sie in verschiedenen Regionen Süditaliens mit denselben
Mitteln ausgeführt, die die Alten gebrauchten.

Nach den Experimenten des Autors ist die Caprifikation für gewisse
Arten notwendig, wogegen andere ohne solche völlig reifen. Die zuweilen ge-
brauchten Mittel, um diesen Gebrauch zu ersetzen, haben keine nützliche
Wirkung, denn sie ersetzen die Aktion der Blastophaga nicht. Die capri-
fizierten Rassen sind viel mehr entwickelt als der Caprificns, ihre Früchte sind
essbar, ihre Samen sind befruchtet und sie repräsentieren die erste Stufe der
Evolution der Art. Die nicht caprifizierten Rassen sind noch mehr ent-
wickelt, denn sie zeigen die carpologische Reifung der Früchte, ohne dass die
Ovula befruchtet seien: ihre Achaenen sind klein und steril.

Jede Rasse wird durch besondere morphologische und plrysiologische
Charaktere definiert, welche man seit langem versucht hat, zu gruppieren, um
die verschiedenen Rassen wieder zu erkennen. Nachdem Verf. die von den
Autoren vorgeschlagenen Klassifikationen aufgezählt und diskutiert hat, ana-
lysiert er die Charaktere, welche die zahlreichen Rassen der Feige voneinander
unterscheiden, als Typ und Form der Frucht, Länge des Pedunculus, äussere
Farbe, Länge der Internodien und Form des Blattes. Nach diesen Charakteren
schlägt er eine Klassifikation vor, die für die Bestimmung in zwei synoptische
Tableaus gruppiert wird. Nachdem er ein Apercu über die Wahl der kom-
merziellen Rassen gegeben hat, schliesst der Autor die Arbeit mit der
Klassifikation der zahlreichen Rassen der Feige aus Süditalien nach seiner
Methode.

1463. Cobelli, Ruggero. II Fiats carica L. nel Trentino. (Verh. Zool.-
Bot. Ges. Wien, LVIII, 1908, p. 20—29.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa" und „Blütenbiologie".

255] Moraceae. 255

1404. Eimer A. D. E. A fascicle of South Negros Figs [FicusJ.
(Leafl. Philipp. Bot., IL 1908, p. 531-551.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1465. Fiebrig, K. Cecropia peltata und ihr Verhältnis zu Azteca
Alfari, zu Atta sexdens und anderen Insekten; mit einer Notiz
über Ameisendornen bei Acacia Cavenia. (Biol. Centrbl., XXIX, 1908,
p. 1—16, 2, p. 34—55, 3, p. 65—77.)

Siehe „Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen".

1466. Hackenberg, H. Über die Substanzquotienten von Cannabis
sativa und C. gigantea. Diss., Bonn 1908, 8°, 27 pp., 4 Fig.. 14 Tab.

Siehe „Chemische Physiologie".

1467. Leclerq da Sablon. Observations sur les diverses formes
du Figuier (F. Carica). (Rev. gen. Bot.. XX, 1908, p. 129—150, fig. 1—13,
207-216, p. 14—15.)

Siehe „Befruchtungs- und Aussäungseinrichtungen".

1468. Leelerc du Sablon. Structure et developpement de Falbumen
du Caprifiguier. (Rev. gen. Bot., XX, 1908, p. 14—24, Fig. 1—6, pl. 6.)

Die Untersuchung ergab folgendes:

In den $ Blüten von Caprificus, wo ein Ei von Blastophaga abgelegt
wurde, entwickelt sich das Albumen, ohne dass Befruchtung erfolgte, partheno-
genetisch. Seine Aufgabe ist die Larve zu ernähren. Die Aufzehrung des
parthenogenetischen Albumen durch die Larve vollzieht sich in gleicher Weise
wie die des normalen durch die Pflanze in dem Falle, wo die Befruchtung
stattfand. Die Digestion ist immer eine totale. Wenn die Larve völlig ent-
wickelt ist, erfüllt sie ganz das Pericarp und es bleibt keine Spur von
Albumen zurück.

Das parthenogenetische Albumen differiert beträchtlich von dem infolge
Befrachtung entwickelten normalen: Die Scheidewände, welche die Zellen
trennen, sind nie mit Zellulose imprägniert; das sehr dicke Protoplasma ent-
hält zahlreiche Globoide von verschiedenen Dimensionen: die Kerne, deren
Zahl in jeder Zelle schwankt, sind sehr dick, von oft irregulärer Form und
enthalten zuweilen mehrere Nucleolen. In den sehr seltenen Fällen, wo die
9 Blüten von Caprificus befruchtet sind, ist das Albumen identisch mit dem
der Smyrnafeigen. Die Scheidewände sind zellulüs und jede Zelle enthält
einen einzigen ziemlich kleinen Kern, ein wenig reichliches Protoplasma und
zahlreiche Aleuronkörner.

Die ^ Blüten von Caprificus, die kein Blastophagaei empfingen oder
die nicht befruchtet wurden, hören gewöhnlich auf, sich zu vergrössern und
sterben ab. Ausserdem vertrocknen die Caprifeigen der zweiten und dritten
Ernte, die nicht von ßlastophagen besucht wurden und fallen vor ihrer Reife
ab. Die von Blastophaga verursachte Wirkung ersetzt in gewisser Hinsicht
die Befruchtung: sie bestimmt das Wachstum des Ovulum, des Pericarp und
der gesamten Feige gleichzeitig mit Entwickelung des Albumen.

1469. Martin- Lavigne, E. Sur une curieuse formation de Thylles
dans le bois d'une Artocarpee. (Journ. de Bot., 2. ser., I, 1908, p. 2S1
bis 286, 9 Fig.)

Es handelt sich um Piratinera guianensis Aubl.

1470. Spenee, D. Analysis of latex from Ficus Vogelii. (Journ. Inst,
com. Res. Tropics, III, 1908, p. 64—75.»

Siehe „Chemische Physiologie".

256 & K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [256

1471. Stapf, Otto. Teo-Non. a new Rubber tree from Tonkin
(Bleekrodia tonkinensis Dub. et Eberh.). (Kew Bull., 1908, p. 262—265.)

Beschreibung usw.

1472. Svedelins, Nils. Ett af rinden ensidigt utbildadt träd
{Ficus bengalensis L.). (Svensk Bot. Tidskr., II, 1908, p. [1]— [4], 1 Textf.)

Die Figur zeigt einen j^icws-Baum auf Ceylon, der infolge des Nordost-
Monsuns nur einseitig in südwestlicher Richtung entwickelt ist.

1473. Thoms, H. Einige interessante Ficus- Arten des tropischen
Afrikas. (Notizbl. Bot. Garten Berlin, V, 1908, No. 42, p. 62— 64, Taf. I— III.)

Betrifft F. Yogelii Miq., rocco Warb, et Schweinf. und triangularis Warb.

1474. Trincllieri, G. Della caulifloria nel fico domestico. (S.-A.
aus Bullettino dell' Orto botanico, t. II, Napoli 1908, 2 pp.)

In einem Garten zu Messina beobachtete Verf. einen kultivierten Feigen-
baum, welcher an vollkommen blattlosen Stellen des Stammes mehrere, in
verschiedenen Beifestadien begriffene Fruchtstände trug, alle mit der Mündung
nach abwärts gerichtet. — An der Pflanze waren die Spuren einer ergiebigen
Abholzung sichtbar; auch waren die Frühlingsmonate sehr regenreich gewesen.

Solla.
Moringiaceae.

1475. Jadin, F. et Boucher, Volcy. Sur la production de la gomme
chez les Moringa. (Compt. Kend. Ac. Paris, OXLVI, 1908, p. 647—649.)

Siehe „Chemische Physiologie".

Myoporaeeae.

Myricaceae.

Neue Tafeln:
Myrica conifera Burm. fil. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 29.
M. rubra S. et Z. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908, tab. 6,

fig. 12—23.

1476. Aubree, Edonard. Le Myrica Gale. (Rev. bretonne de bot. pure
et appl. Rennes, 1906.)

Nicht gesehen.

1177. Koorders. S. H. Over de standplaats voorwaarden, ver-
spreidings middelen en geographische verspreiding van de in
Java, vooral in het hooggebergte, wildgroeiende soorten des
Myricaceae. (Verslagen der Afdeeling Natuurk., DL, XVI, A°. 1907/08,
p. 645—653.)

Besprechung siehe bei „Pflanzengeographie". Fedde.

Myristicaceae.

Neue Tafel:
Pycnanthus Kombo Warb, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 50.

Myrsinaceae.

Ardisia Sieboldi Miq. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908,

tab. 63, fig. 1—11.
Maesa lanceolata Forsk. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 122.
Myrsine capitettata Wall, in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908,

tab. 63, fig. 1—11.

257] Moringiaceae. Myricaceae. Myristicaceae. Myrsinaceae. 257

1478. Eimer, A. D. E. Six new Myrsinaceae. (Leafl. Philipp. Bot., II,
1908, p. 439-444.) X. A.

Neue Arten von Ardisia, Discocalyx und Maesa. Vgl. „Index nov. gen.
et spec".

1479. Grosse, A. Anatomisch-systematische Untersuchungen
der Myrsinaceen. Diss.. Halle 1908, 48 pp., mit 31 Abb., 8° (erschienen in
Engl. Bot. Jahrb., XLI, Beibl. 96, 1908, p. 1—46, 31 Textf.).

Verf. gibt zum Schluss folgende anatomische Charakteristik der
Gattungen :

1. Maesa Forsk.: Besitz von echten Deckhaaren. Mangel von ver-
schleimten Innenwänden der Epidermiszellen. Auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zellwände dick. Besitz von nicht eingesenkten Drüsenbaaren mit einzelliger
Basis. Strichförmige langgezogene Secretbehälter in deutlicher Anlehnung an
die Nerven und Nervillen: bei M. latifolia Secretbehälter in Blättern sehr
selten, erst im Stamm sicher nachgewiesen. Nur Drusen vorhanden, nie mit
Einzelkristallen gemischt.

2. Aegieeras Gäertn. : Gekörnte Cuticula. Beiderseits geradwandige
Epidermiszellen. Sehr stark verdickte Aussenwände der Epidermiszellen.
Keine verschleimten Innenwände der Epidermis. Auf die Spaltöffnungen zu-
laufende Zellwände dick. Spaltöffnungshörner stark gespalten, tief eingesenkt.
Bilaterale Ausbildung der Drüsenhaare. Wassergewebe auf der Oberseite
mehrschichtig, auf der Unterseite meist einschichtig. Lange Palisaden,
^pikularzellen im Palisadengewebe. Nur Drusen, nie Einzelkristalle.

3. Ardisia Swartz: Drei dünne, auf die Spaltöffnungen zulaufende Zell-
wände. Sonst keine durchgehenden, positiven Charaktere. Subgenus I
'Walleniopsis Mez: Zellwände der Epidermis geradlinig. Dünne Ausbildung
der äusseren Epidermiswände. Subgenus II Synardisia Mez: Zellwände der
Epidermis geradlinig. Dünne Ausbildung der äusseren Epidermiswände.
Fehlen von verschleimten Innenwänden der Epidermis. Drusen vorhanden.
Subgenus III Graphardisia Mez: Zellwände der Epidermis geradlinig. Fehlen
von verschleimten Innenwänden der Epidermis. Drusen vorhanden. Sub-
genus IV Pickeringia (Nutt.) Mez: Fehlen von verschleimten Innenwänden der
Epidermis. Subgenus V Icacorea (Aubl.j Pax (ref.): Drusen vorhanden. Sub-
genus VI Pimelandra (A. DC.) Mez: Zellwände, wenigstens der Oberwände,
geradlinig. Fehlen von verschiedenen Innenwänden der Epidermis. Sub-
genus VII Akosmos Mez: Zellwände wenigstens der Oberseite geradlinig.
Fehlen von typischen Palisaden. Subgenus VIII Stylardisia Mez: Fehlen von
verschleimten Innenwänden der Epidermis. Drusen vorhanden. Subgenus IX
Acrardisia Mez: Beiderseits geschlängelte Epidermiszellen (nur bei A. javanica
beiderseits einen geradlinigen Verlauf nehmend). Dünne Ausbildung der
äusseren Epidermiswände. Verschleimte Innenwände der Epidermis fehlen.
Drusen vorhanden. Subgenus X Tinopsis Mez: Geradlinige Zellvvände der
Epidermis (nur bei Ardisia tenuiramis und A. macrocalyx beiderseits geschlängelte
Epidermis). Starke Aussenwand der Epidermiszellen nur bei A. Hasseltii und
A. purpurea. Fehlen von verschleimten Innenwänden der Epidermis. Drusen
vorhanden. Subgenus XI Tunis (Burm.) Mez: Fehlen von verschleimten
Innenwänden der Epidermis. Subgenus XII Pyrgns (Lour.) Mez: Fehlen von
verschleimten Innenwänden der Epidermis. Subgenus XIII Crispardisia Mez:
Fehlen von verschleimten Innenwänden der Epidermis. Eiweissdrüsen des

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 8.8.10.] 17

258 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [258

Blattrandes vorhanden. Subgenus XIV Bladhia (Thunb.) Mez; Dünne Aus-
bildung der äusseren Epidermiszellwände. Verschleimte Innenwände der
Epidermis fehlen überall. Nicht eingesenkte Drüsenhaare mit langem, mehr-
zelligem Stiel und kleinem, septierten Köpfchen. Fehlen der Palisaden.
Drusen vorhanden.

4. Hymenandra A. DC: Gestreifte Cuticula auf beiden Seiten. Stark
entwickelte Aussenwand der Epidermiszellen. Mangel von verschleimten
Innenwänden der Epidermis. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zellwände. Mangel von charakteristischem Palisadengewebe. Drusen und
Kristalle im selben Blatte gemischt.

5. Conandrium Mez: Beiderseits geradwandige Epidermiszellen. Fehlen
der verschleimten Innenwände der Epidermis. Drei dünne auf die Spalt-
öffnungen zulaufende Zellwände. Fehlen eines charakteristischen Palisaden-
gewebes. Drusen und Kristalle im selben Blatte gemischt. Spaltöffnungen
durchgängig auch auf der Oberseite vorhanden.

6. Heberdenia Banks: Starke Aussenwände der Epidermiszellen. Ver-
schleimte Innenwände der Epidermis überall vorhanden. Auf die Spaltöffnungen
zulaufende Zellwände dick.

7. Monoporus A. DC. : Hypodermbildung bei allen Arten. Gekörnte
Cuticula. Starke Aussenwände der Epidermis. Verschleimte Innenwände der
Epidermis überall vorhanden. Auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände
dick. Fehlen von Calciumoxalateinschlüssen.

8. Tapeinosperma Hook. f. : Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zellwände. Nur Drusen oder Drusen und Kristalle gemischt im selben Blatt.

9. Labisia Lindl. : Gestreifte Cuticula auf beiden Seiten des Blattes.
Geradwandige Epidermiszellen auf beiden Seiten. Dünne Ausbildung der
äusseren Epidermiswände. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zell wände. Fehlen von charakteristisch ausgebildetem Palisadengewebe.
Schwammparenchym locker, sternförmig. Kleinere Einzelkristalle, niemals mit
Drusen zusammen.

10. Para thesis Hook, f.: Beiderseits geradwandige Epidermiszellen. Fehlen
von verschleimten Innenwänden der Epidermis. Drei dünne auf die Spalt-
öffnungen zulaufende Zellwände. Nur Drusen, niemals mit Einzelkristallen
gemischt.

11. Afrardisia Mez: Mindestens Unterseite aller Species mit stark ge-
schlängelten Epidermiszellwänden. Fehlen von verschleimten Innenwänden
der Epidermis. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände.
Ein charakteristisches Palisadengewebe fehlt. Nur Drusen, nie Einzelkristalle
vorhanden.

12. Antistrophe A. DC: Durchgängig und beiderseits geschlängelte
Epidermiswände. Mangel von verschleimten Innenwänden der Epidermis.
Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände. Nicht eingesenkte
Haare mit einzelligem Stiel und mit stark verlängertem Kopf. Grosser Mangel
von eingesenkten Drüsenhaaren. Fehlen von charakteristischem Palisaden-
gewebe. Nur Drusen, niemals Einzelkristalle vorhanden.

13. Tetrardisia Mez: Gekörnte Cuticula. Durchgängig und beiderseits
gewellte Epidermiswände. Starke Ausbildung der äusseren Epidermiswände.
Fehlen von Schleimhypoderm. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zellwände. Fehlen von charakteristisch ausgebildetem Palisadengewebe. Nur
Drusen, nie mit Einzelkristallen gemischt.

259] Myrsinaoeae. 259

14. Oncostemon Juss. : Fehlen von verschleimten Innenwänden der
Epidermis. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände. Nur
Drusen oder Drusen und Kristalle gleichzeitig.

15. Amblyanthus: Durchgängig und beiderseits geschlängelte Epidermis-
wände. Dünne Aussenwände der Epidermiszellen. Mangel von verschleimten
Innenwänden der Epidermis. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zellwände. Vier-, drei- oder zweilappige eingesenkte Drüsenhaare mit starken
Zellwänden des Köpfchens. Fehlen von charakteristisch ausgebildetem Pali-
sadengewebe. Eiweissdrüsen des Blattrandes vorhanden. Nur Drusen, nie
Einzelkristalle.

16. Amblyanthopsis Mez: Gekörnte Cuticula. Epidermiszellwände beider-
seits geschlängelt. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände.
Mangel von verschleimten Innenwänden der Epidermis. Mangel von vier-,
drei-, zweilappigen Haaren. Kein charakteristisch ausgebildetes Palisaden-
parenchym. Eiweissdrüsen des Blattrandes vorhanden. Kleinere Einzelkristalle,
nie mit Drusen zusammen gefunden.

17. Discocalyx Mez: Mangel von verschleimten Innenwänden der Epi-
dermis. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände. Drusen
und Kristalle im selben Blatt gemischt.

18. Cybianthas Mnrt. : Geschlängelte Epidermis wenigstens der Oberseite
Regel. Auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände stark. Fast durch die
ganze Gattung nicht eingesenkte Drusenhaare mit vierzelligen Köpfchen.
Calciumkristalle in langgezogener, last balkenförmiger Gestalt.

19. Gramiuadenia Benth.: Gekörnte Cuticula. Wohlentwickelte lange
Palisaden. Eange Secretgänge. Subgenus I Cybianthopsis Mez: nur Einzel-
kristalle vorkommend. Subgenus IL Eugrammadenia Mez: Kristalldrusen,
selten die Drusen mit Kristallen gemischt.

20. Geissanthus Hook, f.: Beiderseitig geradwandige Epidermiszellen.
Starke Aussenwand der Epidermiszellen. Drei dünne auf die Spaltöffnungen
zulaufende Zellwände. Schuppenhaare überall vorhanden. Drusen stets vor-
handen, selten mit Einzelkristallen gemischt.

21. Walleihia Swartz: Starke Aussenwände der Epidermiszellen. Palisaden
lang. Subgenus I Enwallenia Mez: Verschleimte Innenwände der Epidermis.
Nur Einzelkristalle vorhanden (bei Wallenia Urbaniana Mez ausser vielen
Kristallen wenige Drusen vorkommend).

22. Conomorpha A. DC.: Stark verdickte Aussenwand der Epidermis.
Auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellen dick. Palisadengewebe wohl ent-
wickelt (nur bei C. quercifolia ganz kurz). Schwammparenchym sternförmig.
Schildförmige Haare bei allen Arten vorhanden. Alle Species mit Einzel-
kristallen, selten mit Drusen gemischt.

23. Stylogijne A. DC. : Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zellwände.

24. Badida A. DG: Beiderseitig geradliniger Verlauf der Epidermiszell-
wände. Stark verdickte Aussenwand der Epidermis. Fehlen von verschleimten
Innenwänden der Epidermis. Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende
Zellwände.

25. Weigeltia A. DC: Schwammparenchym sternförmig. Calciumoxallat-
kristalle in langgezogener, fast balkenförmiger Gestalt als Belag der Nerven.
Subgenus I Emceigelüa Mez: Raupenartige Haare fehlen. Subgenus II

17*

260 C. &■ Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [260

Comomyrsine (Hook, f.) Mez: Raupenartige Haare fehlen. Subgenus III
Triadojrfiora Mez: Zweiarmige raupenartige Haare vorhanden.

26. Grenacheria Mez: Gestreifte Cuticula. Geradliniger Verlauf der
Epidermiszellwände wenigstens auf der Oberseite. Stark verdickte Aussen-
wand der Epidermis. Verschleimte Innenwände der Epidermis vorhanden.
Drei dünne auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände. AVohlentwickelte,
lange Palisaden. Drusen und Kristalle im selben Blatte gemischt.

27. Embelia Burm. : Echte einzellige Deckhaare vorhanden, soweit
Blätter überhaupt behaart. Auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände
dick. Lockeres Schwammparenchym fehlt regelmässig.

28. Suttonia-Brusea mit Kristallen im selben Blatte gemischt. Zellwände
auf die Spaltöffnungen stark.

29. Pleiomeris A. DC. : Gekörnte Cuticula geradwandige Epidermis-
zellen. Auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände dick. Sehr starke
Aussenwand der Epidermis. Fehlen von verschleimten Innenwänden der
Epidermis. Kleinere Einzelkristalle, nie mit Drusen vermischt. Durchgehende
Gefässbündel.

30. Myrsine L.: Durchgängig und beiderseits gewellte Epidermiswände.
Auf die Spaltöffnungen zulaufende Zellwände dick. Einzelkristalle, selten mit
Drusen gemischt; M. Moquerysii hat nur Drusen.

31. Bapanea Aubl.: Palisaden gut ausgebildet (Mangel nur bei B.
subsessilis).

1480. Weiss, L. Pharmakognostische und phytochemische
Untersuchung der Rinde und der Früchte von Acgiceras majus C, mit
besonderer Berücksichtigung des Saponins. Strassburg 1907, 8°,
82 pp., 6 Fig.

Siehe „Chemische Physiologie".

Myrtaceae.

Neue Tafeln:
Eucalyptus Behriana F. v. M. in Maid., Crit. Rev., pt. X, 1908, tab. 48, fig. 6

bis 10.
E. Boormani D. et M., 1. c, fig. 2.
E. Bowmani F. v. M., 1. c, fig. 1.

E. Caleyi Maid, in Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, XXXIII, 1908, pl. I (Baum).
E. Consideniana Maid., Crit. Rev., pt. X, 1908, tab. 46, fig. 1—9.
E. Crebra in Proc. Linn. Soc X. S. Wales, XXXIII. 1908, pl. II (Baum).
E. haemastoma Sm., Crit. Rev., pt. X, 1908, tab. 46, fig. 10 — 17 et pl. 4-7, fig. 1

bis 18.
E. leptophleba F. v. M., 1. c, tab. 48, fig. 3—5.
E. piperita Sm., 1. c, tab. 48, fig. 1 — 9.
E. populifolia Hook., 1. c, tab. 48, fig. 11 — 18.
E. siderophloia Benth., 1. c, tab. 47, fig. 19—33.
E. Sieberiana F. v. M., 1. c, tab. 48, fig. 10—15.

Eugenia natälüia Sond. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 115.
Metrosideros lucida, Kew Bullet., 1908, plate ad p. 248, fig. 3. Habitusbild.

1481. Baker, K. T. and Smith, H. G. The Australien Melaleucas
and their essential oils. Part IL (Journ. and Proc. Roy. Soc. N. S. Wales,
XLI, 1908, p. 196—210, 111.)

Siehe „Chemische Physiologie".

261] Myrtaceae. 261

1482. Bliss, A. J. Colour mutations in Leptospermum scoparium.
(Gard. (Jhron., 3. ser., XL1V, 1908, p. 54.)

Ergänzende Bemerkungen zu den Angaben von Dornen Smith siehe No. 1490.

1483. [Gibson, H. H.] American forest trees. — 56. Eucalyptus
globulus Labill. (Hardwood Record, XXIV, 16, 1907, p. 16—17, ill.)

1484. Jugham, N. D. Eucalyptus in California. (Bull. Calif. agric. Exp.
Stat., 1908, p. 196)

Nicht gesehen.

1485. Maiden, J. H. A critical Revision of the genus Eucalyptus.
Part X, 1908, p. 296—348, 4 plates. N. A.

Man vergleiche die Tafeln am Kopfe der Familie. Teil VITI behandelt
in gewohnter Weise:

XXXII. Eucalyptus piperita Sm. (Syn. Metrosideros aromatica Salisb.),
Heimat: Neu Süd- Wales.

XXXIII. Eucalyptus Sieberiana F. v. M., Heimat: Tasmanien, Viktoria,
Neu-Süd-Wales.

XXXIV. Eucalyptus Consideniana Maid., Heimat: Küstendistrikte von
Neu-Süd-Wales und Gippsland, Viktoria.

XXXV. Eucalyptus haemastoma Sm. (Syn. E- micrantha DC, E- signata
F. v. M.), Heimat: Neu-Süd-Wales, Queensland.

XXXVI. Eucalyptus sideropldoia Benth. (Syn. E. fibrosa F. v. M., E.
oniata Sieb.), Heimat: Neu-Süd-Wales, Queensland.

XXXVII. Eucalyptus Boormani Deane et Maid., Heimat: Bankstown and
Cabramatta districts.

XXXVIII. Eucalyptus leptophleba F. v. M. (Syn. E- drepanophylla F. v. M.),
Heimat: Queensland (vielleicht auch Neu-Süd-Wales).

XXXIX. Eucalyptus Behriana F. v. M. (E. pruinosa Behr), Heimat: Süd
Australien, Viktoria, Neu-Süd-Wales).

XL. Eucalyptus populifolia Hook. (Syn. E. micrantha A. Cunn., popidnea
F. v. M., largifiorens F. v. M. var. parviflora Benth., 0- bicolor A. Cunn. var
parviflora F. v. M., E. polyanthemos Schauer var. populifolia F. v. M.), Ver-
breitung: Neu-Süd-Wales, Queensland.

1486. Maiden, J. H. Eucalypti gener is species novae I. (Rep. spec.
nov., V, 1908, p. 48—54.)

. Ex: Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, XXIX, 1904, p. 469—478, 751—780.

1487. Maiden, J. H. Eucalypti generis species novae. II. (Rep. spec.
nov., V, 1908, p. 143—146.)

Ex: Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, XXX, 1905, p. 190-202, 336-338,
502— 51 (i.

1488. Mottet, S. Floraison d'un Eucalyptus ä Verrieres. (Rev. hortic,
LXXX, 1908, p. 326—328, fig. 118—119.)

Im Park von M. Phil, de Vilmorin in Verrieres bei Paris hält eine Eu-
calyptus coccifera seit langem im Freien aus und blühte auch 1908.

1489. 0., A. The genus Darwinia. (Card. Chrom, 3. ser., XLIII, 1908,
p. 243—244, fig. 106.)

Die Figur zeigt Blütenzweige von D- Hookeriana.

1490. Smith, A.A. Dorrien. New Char acter in Leptospermum scoparium.
(Gard. Chrom, 3. ser., XLIII, 1908, p. 398/399.)

Über bei dieser weissblühenden Art auftretende Varietäten mit rosa-
farbenen und roten Blumen.

262 C. K. Schneider: Morphologie und Systemtik der Siphonogamen. [262

Myxodendraceae.

Nepenthaceae.

1491. Macfarlane, J. M. Nepenthaceae in Engler, Das Pflanzenreich, IV,
111. 1908. 92 pp., 19 Fig. N. A.

Verwandtschaftlich stehen die Nepenthaceen mit dem einzigen Genus
Nepentlies den Sarraceniaceen am nächsten, wobei insbesondere die Gattung
Heliamphora der letzteren Familie Anknüpfungspunkte zeigt. Beide Familien
reihen sich den Droseraceen eng an „and all of these seem to stand in inter-
mediate relation between the Papaveraceae and Cistaceae"-

Die Morphologie und Anatomie wird vom Verf. eingehend diskutiert, so
dass sich eine gute Zusammenstellung der Kenntnisse ergibt, wie wir sie heute
besitzen. Im morphologischen Teile nimmt naturgemäss die Schilderung der
Blattentwickelung und Bildung der Schläuche den grössten Raum ein, wobei Verf.
im wesentlichen nur Bekanntes wiedergibt, bzw. durch seine Beobachtungen
bestätigt. Dies gilt auch von den anatomischen Darlegungen, wobei Verf. in
erster Linie der Arbeit von Zacharias (1877) folgt.

Auch die Biologie der Blätter wird behandelt und ebenso in der im
„Pflanzenreich" üblichen Weise die Blütenverhältnisse, Früchte und Samen.

Bastardbildung ist in der Gattung sehr häufig, wenigstens in Kultur,
doch dürften weitere Untersuchungen in der Heimat auch noch viele natür-
liche Hybriden nachweisen.

Geographisch ist die Familie fast ganz auf das „indische Monsungebiet"
beschränkt und ihr Hauptzentrum liegt in Nord-Borneo (Mount Kina Balu). Am
meisten Neues dürfte Neuguinea noch bergen.

Beschrieben werden 58 gute Arten.

Nyetaginaceae.

Neue Tafel:
Pisonia aculeata L. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. -12.

1492. Heimerl, A. Two new species of Abronia. (Smithsonian misc.
Coli., 1908, LH, p. 197—198.) N. A.

Abronia Bigelowii and A. Covillei.

1493. Heimerl, A. Nyetaginaceae austro-americanae. (Engl. Bot. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 73-81.) N. A.

Neue Arten von Mirabilis, Colignonia und Pisonia.

Nymphaeaeeae.

Neue Tafel:
Barcia ya Pierreana in Lecomte Flore gen. de lTndo-Uhine, I, 1908, pl. XV,
fig. 1-:,.

1494. Areangeli, G. Studi sulla Victoria regia Lindl. (Atti Soc. tose.
Sc. nat.. XXIV, Pisa 1908, p. 59—78, in 8.)

Referat noch nicht eingegangen.

1495. Areangeli, G. Di nuovo sul germa.^liomento d eil ' Euryale
ferox Sal. (Atti Soc. Tose. Sc. nat. Proc. verb., XVI, 1907, p. 63 — 6ü.)

Verf. konstatierte, dass bei Euryale ferox und Victoria regia die Samen
aus derselben Frucht in successiven Epochen keimen. Verf. glaubt, dass dieser
vegetative Anachronismus dazu dient, die Erhaltung der Art zu sichern und
dass sich gleiches nicht nur bei anderen Phanerogamensamen, sondern auch
bei Sporen der Cryptogamen beobachten lässt.

2631 Myxodendraceae. Nepenthaceae. Nyctaginaceae. Nymphaeaceae. 263

1496. Grtgnan., G.-T. Le Nelumbium speciosum. (Uev. hortic, LXXX,
1908, p. 442-4-44, fig. 167—168.)

Die Figuren zeigen Blüten von var. album plemtrn und var. rubrum
plenwn.

1497. Gil#, Ernst. Nymphaeaceae africanae. (Engl. Bot. Jahrb., XLI,
1908, p. 351—366.) N. A.

Übersicht der 20 bisher bekannten Arten mit lateinischen Bestimmungs-
schlüssel. Vgl. auch unter „Pflanzengeographie" und „Index nov. geü. et spec".

1498. Mk'holitsch, A. Die Lotosblume, eine ornamentale Studie.
(Jahrb. niederösterr. Landesoberrealscbule Krems, XLV, 1908, p. 1 — 54, 111.)

Nicht gesehen.

1499. Seaton, Sara. The development of the embryosac of Nym-
phaea advena. (Bull. Torr. Bot. Gl., XXXV, 1908, p. 283-290, pl. 18—19.)

Siehe „Anatomie".

1500. Schuster, Julius. Zur Systematik von Castalia und Nymphaea
(suite et fin). (Bull. Herb. Boiss.. 2. ser., VIII, 1908, p. 65—74.)

Verf. gibt folgende Zusammenfassung der allgemeinen Ergebnisse:

I. Gattung Castalia.

a) Die europäischen Arten.

1. Es gibt in Europa drei gleichwertige und gleich alte Castalia- Arten, die
schon im Tertiär vorhanden waren und ursprünglich in Anpassung an
drei klimatisch verschiedene Gebiete entstanden sind.

2. Sie können daher nur einer Sektion zugehören.

3. Die Grenzen ihrer früheren Verbreitung wurden während und nach der
Glacialperiode stark verwischt.

4. Die einzelnen Arten sind nur durch Bastarde, nicht aber durch Über-
gangsformen nichthybriden Charakters miteinander verbunden.

5. Ohne sich in besondere Rassen zu gliedern, variieren sie sehr stark.

6. Castalia fennica ist von Castalia tetragona nicht verschieden: Castalia
Leibergii Mor. ist eine besondere auf Nordamerika beschränkte Varietät
der letzteren: ihr Vorkommen in Austraiia beruht auf Irrtum.

7. Castalia alba var. minor DC. ist keine reduzierte Form der Castalia alba.
sondern gleich Beslers Nymphaea alba minor mit Castalia Candida Presl
identisch: die Fundorte der letzteren in Nordafrika beziehen sich auf
Castalia alba.

8. Die Einwanderung der Castalia Candida in unseren Breiten erfolgte zur
Eiszeit: sie ist daher als Glacialrelikt aufzulassen.

b) Die afrikanischen Arten.

9. Ausser der europäischen Castalia alba und der endemischen Castalia sul-
phurea kommen in Afrika zwei sehr polymorphe Arten vor. Castalia
stellata und Castalia Lotus.

10. Castalia coerulea und mpcnsis sind zwei geographisch getrennte, aber
morphologisch eng verwandte Sippen von Castalia stellata, die sich in
Anpassung an zwei klimatisch verschiedene Gebiete aus einem Typus
entwickelt haben.

11. Die Existenz einer nicht hybriden Übergangsform beweist, dass diesu
Entwickelung nicht sehr weit zurückgeht.

12. Der ursprüngliche Typus stammt aus Nordosten.

13. Castalia stellata kommt auch in Australien vor.

264 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [264

14. Nymphaea scuiifolia hört, monac. entspricht der Castalia stellata ssp.
caerulea var. vesiculosa f. cynea; Nymphaea Beichardiana F. Hoffm. dem,
Bastard zwischen Castalia Lotus und stellata; Nymphaea Zenkeri Gilg
stellt eine behaarte Form von Castalia Lotus dar.

15. Der Indigenat der Castalia Lotus in Europa ist bis j.etzt nicht erwiesen.

II. Gattung Nymphaea.

16. Es gibt in Europa nur zwei Nymphaea-Arten, die leicht bastardieren
und durch keine phylogenetischen Mittelformen verbunden sind; die
übrigen beschriebenen Arten sind Lokalrassen, Varietäten oder unbe-
ständige Formen.

17. Nymphaea pumila gehört der skandinavischen Flora an; ihre Ansiedelung
in Mitteleuropa erfolgte während der Eiszeit, nach Ablauf derselben ein.
Rückgang nach Norden; sie ist daher bei uns als Relikt aus den:
wärmeren Intervallen der Eiszeit aufzufassen.

18. Nymphaea pumila kommt in Amerika nicht vor: die betreffenden Angaben,
beziehen sich auf Nympliaea micropliylla Pers.

19. Nymphaea lutea war schon im Tertiär in Mitteleuropa.

20. Nuphar affine Harz ist eine durch standörtliche Verhältnisse bedingte
reduzierte Form von Nympihaea lutea.

1501. Simonkai, Ludovk'O. Revisio nomenclaturae Nymphaeacearum<
in Hunoaria spontanearum. (Ung. Bot. Bl., XXII, 1908, p. 129-132.)

Nomenclatorisches, da jetzt der Name Nymphaea für Nuphar gebraucht
wird und erstere durch Castalia zu ersetzen ist.

1502. Wittmack, L. Ein goldener Eichenkranz und goldverzierte
Nymphaeaceenstiele in einem Hügelgrab in Pergamon. (Ber. D. Bot.
Ges., XXVI a, 1908, p. 263—274, 6 Abb.)

Verf. fand folgendes:

1. Die Blätter des goldenen Eichenkranzes sind nach Blättern von Quercus-
Aegilops, der Ziegenbarteiche, gearbeitet.

2. Die Holzproben stammen von einer Cupjressineae, höchstwahrscheinlich
Cupressiis sempervirens, Zypresse.

3. Die Trauerreii'en sind Blatt- oder Blütenstiele einer Nymphaeaceae,.
höchstwahrscheinlich der gelben Seerose, Nuphar luteum Smith.

Ochnaceae.

Neue Tafel:
Oclma Hoepfneri Engl, et Gilg in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 98.

1503. Tieghem, Pli. van. Ochnaceae novae. (Rep. nov. spec, VI, 1908,.
p. 7—16.)

Ex: Ann. Sei. nat. Paris Bot., 9. ser., V, 1907, p. 157—192.

Olacaceae.

Neue Tafel:
Olax Durandii Engl, in Thonner. Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 37.

Oleaceae.

Neue Tafeln:
Fraxinus Bungeana var. pubinervis Wg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon,.

II, 1908, tab. 64, fig. 1—13.
F. Sieboldiana Bl., 1. c, fig. 14—26.

265] Ochnaoeae. Olacaceae. Oleaceae. 265

Schrebera alata Welvv. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 127.
Syringa nmurensis Rupr. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908,
tah. 63, fig. 23—36.

1504. Bois, D. L'origine de Syringa josikaea eximia. (Rev. Hortic,
LXXX. 1908, p. 176.)

Verf. weist darauf hin, dass diese Form bei Froebel in Zürich entstand
und von diesem durch Auslese unter S. josikaea-F ormen und nicht durch
Kreuzung dieser Art mit S. Bretschneideri (== villosa) erhalten wurde.

1505. ßoarqaelot, E. et Vintilesco, J. Sur l'oleuropeine, nouveau
principe de nature glucoside retire de l'olivier [Olea curopaea Li.].
(Journ. Pharm, et Chim., 6, XXVIII, 7, p. 303-314 et O. R. Acad. Sei. Paris,
ÜXLVII, 12, p. 533—535.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1506. Cockerell, T. D. A. The pollination of the Olive. (Nature.
LXXVII1, 1908, p. 31.)

Verf. weist darauf hin, dass in Knuths Werk nichts gesagt ist über
Beobachtungen beim Ölbaum. Prof. J. E. Coit in Arizona hat dort beobachtet,
dass Enthrips occidentalis das einzige Insekt ist, welches die Blüten besucht,
dass diese Tiere oft mit Pollen beladen sind. Coit hält den Wind für den
Hauptvermittler der Befruchtung.

1507. Fliehe, P. Note sur les Phillyrea. (Bull. Soc. Bot. France, LV,
1908, p. 253—261, 343-351.)

Verf. kommt zum Schlüsse, dass man im Mediterrangebiet nur zwei
Arten unterscheiden kann, P. angmtifolia E. und P. latifolia L., wogegen
P. media nur als Varietät der latifolia anzusehen ist. Verf. beschreibt dann
noch je eine eigenartige Form beider Arten, ohne sie zu benennen.

1508. Gabelli, E. Alcune anomalie osservate nella Syringa vul-
garis Li. in relazione a moltiplicazione e contrazione di organi.
(Atti Pontif. Accad. Nuovi Eincei, LXI, p. 156—162, in -4 0, fig., Roma 1908.)

Siehe „Teratologie".

1509. Heinricher, E. Eine erbliche Farbenvarietät des Ligustrum
vulgare. (Flora. LXLVIII, 1908, p. 379.)

Verf. beschreibt eine bei Innsbruck gefundene Form mit cremfarbigen
Blüten, die sich als samenbeständig erwies.

1510. Henry, Louis. Le Syringa affinis. (Rev. Hortic., LXXX, 1908,
p. 301.)

Die Figur 112 zeigt Blüten- und Fruchtdetails.

1511. Henry, Louis. Etüde sur les Forsythia. (Rev. Hortic, LXXX,
1908, p. 372-376, fig. 139.)

Beschreibung der Arten usw.

1512. Lingekheim, A. Eine neue Forsythia- (Jahrb. Schles. Ges.,
LXXXVL 1908, Zool.-Bot. Sekt., p. 1.) N. A.

Es handelt sich um F. Giraldiana aus Nord-Shensi, die mit europaea
nahe verwandt ist.

1513. Power, F. B. and Tatin, F. The constituents of olive leaves.
(Journ. ehem. Soc, XCIII— XCTV, 1908, p. 891—904.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1514. Schwerin, Fritz von. Starkwüchsigkeit von Fraxinus pubescens
Lam. (Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 208—210, 2 Abb.)

2QQ C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogaraen. 1 266

Die Abbildungen illustrieren, wieviel stärker F. pubescens als F- excelsior
wächst.

1515. Schwerin, F. von. Die schönste Esche {Fraxinus americana
acuminata [Lara.] 0. Koch). (Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 210.)

Onagraceae.

Neue Tafeln:
Epilobium Sita Cruzense Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 1, fig. 2—4,

tab. 7, fig. 29-34.
Jussieua UnifoUa Vahl in Thonner, Bliitenpfl. Afrikas, 1908, tab. 117.

1516. F., J. B. Lopezia lineata Zucc. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908
p. 294. fig. 131.)

Blütenzweig und ßlütenanalysen.

1517. Gates, R. R. The chromosomes of Oenothera- (Science, II,
XXVII, 1908, p. 193-195.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1518. Gates, ReginaM Rutgers. A study of reduction in Oenothera
rubrinervis. (Bot. Gaz., XLVI, 1908, p. 1—34, plates I— III.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1519. Geerts, J. M. Beiträge zur Kenntnis der Cytologie und
der partiellen Sterilität von Oenothera Lamarckiana. (Rec. Trav. Bot.
Neerl., V, 1908, p. 93—208, Tafel A^— XXII.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1520. Geerts, J. M. Beiträge zur Kenntnis der cy tologischen
Entwickelung von Oenothera Lamarckiana. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa,
1908, p. 008—614.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1521. Jepson, W. J. Godctiae novae Americae borealis. (Rep. spec.
nov.. VI, 1908, p. 104—110.)

Ex: Eniv. Oalif. Publ. Bot.. II. 1907, p. 319—354.

1522. Langhlin, Emma E. Euchanter's Nightshade [Qircaea lutetiana].
(Amer. Bot., XIII, 1908, p. 99 — 101.)

Nicht gesehen.

1523. Leveille, H. Un Epilobe hybride au Jardin d'Horticulture
du Mans. (Bull. Int. Ac. Geogr. Bot., XVIII, 1908, p. 448.)

E. roseum X E. parriflorum = E. persicinwm Rchb.

1524. Leveille, H. et Guffroy, Ch. Monographie du Genre Onothera.
Ille Partie. (Bull. Int. Ac. Geogr. Bot., XVIII. 1908, p. 257—332, illustr.)

N. A.
Verf. behandelt die Gruppen Godetia, Clarkia, Boisduvalia- Die Figuren
zeigen Blattquerschnitte und Haarformen. Vgl. auch Just 1906/7.

1525. Leveille, H. Epilobia nova. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 98—99.)

N. A.

1526. Lodewijks, Jr. J. A. Vegetative vermenigvuldiging van
■Oenotheras. Diss. Amsterdam, Haarlem, 1908, 8°, 113 pp.

Über den Inhalt dieser Arbeit berichtet J. Tammes im Bot. Centrbl.,
CVIII, p. 236 wie folgt: Verf. hat Versuche angestellt über die vegetative Ver-
mehrung von Oenothera Lamarckiana und ihren Mutanten. Es ergibt sich,
dass alle durch Stecklinge vermehrt werden können, bei einigen, z. ß. bei
■Oenothera <jigas, gelingt die vegetative Fortpflanzung leicht, bei anderen, z. B.

2671 Oleaceae. Onagraceae. 267

bei Oenothera lata, weniger leicht. Die Stecklinge fahren fort mit der
Bildung derjenigen Organe, welche sie an der Pflanze gebildet haben würden;
der anatomische Bau der Stecklinge zeigt aber oft erhebliche Abweichungen.

Ausführlich wird behandelt, in welcher Hinsicht das Erbalten von
OHoMera-Stecklingen von Bedeutung sein kann. Verf. selbst hat keine Ver-
suche in dieser Bichtung angestellt, er bespricht aber eingehend viele wichtige
Fragen, welche mit Hilfe von Stecklingsmaterial gelöst werden können. In
der Zusammenfassung der sich hierauf beziehenden Betrachtungen betont
Verf. unter anderem, dass durch die vegetative Vermehrung nicht konstante
und völlig oder ganz sterile Arten erhalten werden können und dass es
mittelst Stecklinge möglich wird, das Verhalten der inkonstanten und anfangenden
elementaren Arten und die Ursachen der Sterilität, des Auftretens von Mutation
und Prämutation zu studieren.

Im zweiten Teil der Arbeit werden die Bildung und der Bau von Callus
behandelt. Nach einer ausführlichen Literaturübersicht werden eigene Unter-
suchungen mit Stengel-, Wurzel- und Blattstecklingen von 25 verschiedenen
Pflanzen, unter denen mehrere Mutanten von Oenothera Lamarckiana sich
befinden, beschrieben. Diese Untersuchungen lehren, dass die lebenden
Holzelemente Callus bilden können und dass bei Stecklingen von Oenothera
Lamarckiana und ihren Mutanten die neuen Wurzeln sehr verschiedenen Ur-
sprungs sein können.

1527. lMelsheimer, Marzellus. Oenothera biennis und Oenothera muricata.
(Sitzber. Naturhist. Ver. preuss. Rheinl. u. Westf., 1907, Bonn 1908, p. 58.)

Siehe „Variation". Fedde.

1528. Nakai, T. Revisio Epilobii Japonensis. (Bot. Mag. Tokyo,
XXII, 1908, p. 73—76, 81-85.) N. A.

Bestimmungstabelle und kurze Angaben über Vorkommen und
Nomenclatur.

1528a. Rubner, K. Über anormale Sprossbildung und Ver-
mehrung der Epilobien. (Mitt. Bayer. Bot. Ges., II, 190S, p. 109—112,
1 Textfig)

Es handelt sich um Pflanzen von E. obscurum X roseum, wo die schein-
baren Seitenzweige aus anormal in den Stengelblattachseln auftretenden Ver-
mehrungssprossen entstanden. Diese Sprosse entwickeln schon bald Blüten und
Kapseln mit sterilen Samen, ja vielfach entstehen — oft sind die Sprosse
kaum 1 cm lang und noch horizontal — Unmenge winziger Blütenknospen,
die dann gar nicht zum Erblühen kommen, sondern als solche vertrocknen.
Besonders zahlreich fanden sich blühende und fruktifizierende Sprosse an
Stellen vor, wo der Hauptspross putiert gewesen war. Die ganze Kolonie
machte überhaupt den Eindruck stark luxurianten Wachstums, das durch die
mehr oder weniger nrthotrope Richtung der scheinbaren Seitenzweige am
Schlüsse ihrer Entwickelung noch verstärkt erscheint. Echte plagiotrope
Seitenzweige fehlen, wie es scheint, vollständig und unsere Pflanzen sind Indi-
viduen mit zwei Generationen, wovon die erste allerdings nur eine vegetative
ist ohne Seitenzweige, Blüten und Kapseln, während die zweite Generation,
vegetativ auf der ersten entstanden, Samen, wenn auch völlig sterile, in
grosser Menge produziert hat, wie ja nicht selten schwach und anormal ent-
wickelte Pflanzen sehr früh und zahlreich Fortpflanzungsorgane mit sterüen
■Samen zu entwickeln pflegen.

268 C- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [268

1529. Vries, Hugo de. Über die Zwillingsbastarde von Oenothera
nanella. (Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 667—676.)

Siehe „Descendenz" usw.

1530. Vries, Hngo de. Bastarde von Oenothera gigas. (Ber. D. Bot.
Ges., XXVI a, 1908, p. 754—762.)

Siehe wie oben.

Opiliaeeae.

Neue Tafel:

Opilia amentacea Roxb. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 36.

1531. Barber, C. A. Studies in root-parasitism. IV. The haustorium
of Cansjera Rheedii. (Mem. Dpt. Agric. India Bot. Ser., II. 1908, 37 pp., 11 pl.)

Siehe „Anatomie".

Orobanchaceae.

Neue Tafel :

Cistanehe lutea Link et Hoffmsg. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 140.

1532. Boissien, H. de. Oröbanche Hederae sur Fatsia japonica- (Bull. Soc.
Bot. France, LV. 1908, p. 277—278.)

1533. Ducailip, L. Une nouvelle plante nourrice pour \' Oröbanche
Hederae Duby. (Associat. franc. l'avancem. Sei., XXXIV, 1905, Cherbourg,
p. 462-463.)

Nicht gesehen.

1534. Heinriche!*, E. Die Schuppen würz Lathraea Squamaria. Text
zu Tafel III der pflanzenpathologischen Wandtafeln, herausgegeben von Dr. O.
von Tubeuf. Stuttgart, E. Ulmer, 1908, 22 pp., 12 fig.

Verf. gibt im Bot. Centrbl., CX, p. 49 folgendes Autorreferat: Ausser
der in verkleinertem Massstabe reproduzierten Tafel, die mit Ausnahme der
Figuren 5 und 6 nur Originale aus den bekannten Arbeiten des Verfs. über
Lathraea enthält, bringt auch der populär gehaltene Text 12 Abbildungen,
deren Reproduktion leider nicht als vollkommen gelungen bezeichnet werden
kann. Sieben unter diesen sind anderwärtig noch nicht veröffentlichte Originale
Von Interesse davon sind einige Bilder, die Entwickelungsstadien der Lathraea
■squamaria. gewonnen aus den Kulturen des Autors, vorführen. So z. B. die
vierjährige, in Figur 2 dargestellte Pflanze. Hingewiesen sei auch auf Figur 4,
die Mikrophotographien des Längsschnittes durch einen Sprossscheitel. Der
aufmerksame Beobachter wird erkennen, dass dieses Bild mit der üblichen
Auffassung über die Entstehung der Blatthöhlen der Rhizomschuppen nicht
ganz in Übereinstimmung steht. Verf. weist in dem populären Schriftchen
auf diesen Punkt aber auch nur hin und verspricht, den Gegenstand an anderer
Stelle gesondert zu erörtern. Textfigur 7 zeigt ein Paar unterirdische, kleistogame
Blüten resp. Fruchtstände.

1535. Kusano, S. Further studies on Aeginetia indica- (Beih. Bot.
Centrbl., XXIV, 1, 1908, p. 286-300, pl. XI— XII.)

Verfs. Resümee lautet:

1. Die Keimung v on Aeginetia-Samen tritt weder in Wasser, in der feuchten
Kammer noch im Boden ein. Sie verlangt immer den Stimulus der
Wurzeln anderer Pflanzen.

2. Zwei Jahre lang trocken gehaltener Samen verliert die Keimfähigkeit.

3. Sowohl Gefässkryptogamen, Gymnospermen und Angiospermen können
den Samen zur Keimung reizen.

269] Opiliaeeae. Orobanehaoeae. Oxalidaceae. Papaveraceae. 269

4. Der Stimulant ist eine unbekannte Substanz, die vielleicht von den
aktiven Wurzeln aller höheren Pflanzen ausgeschieden wird.

5. Die Entwickelung der Sämlinge tritt nur auf den Wurzeln gewisser
Monocotylen ein. Die Bedingungen dafür sind ganz different von denen,
die zur Keimung der Samen nötig sind. Eine Entwickelung tritt eben
nur bei gewissen Pflanzen ein. wogegen die Keimung durch die Wurzeln
aller höheren Pflanzen veranlasst wird.

6. Die erste Änderung, die während der Keimung eintritt, ist das An-
schwellen der epidermalen Zellen des Eadiculaendes des Embryo und
ihre Transformation in Haarranken.

7. Die Sämlinge sind in Gestalt sehr reduziert, und es tritt keine Zellver-
mehrung ein, ehe sie mit dem Wirt in Verbindung treten.

8. Die Sämlinge entwickeln, sobald sie dem Wirt angeheftet sind, kugelige
Tuberkeln. Diese werden durch das Meristemgewebe unter den Haar-
ranken gebildet.

9. Zur Vermehrung der Zellen in den Sämlingen scheint ein gewisser
Stimulus der Wirtswurzeln, für den die Haarranken empfindlich sind,
erforderlich zu sein.

10. Die Tuberkeln werden zuerst im primären Haustorium am frontalen

Teile differenziert und dann in dem Trieb- und Wurzelsystem der anderen

Teile.

Oxalidaceae.

Neue Tafel:
Biophytum sensitivum (L.) DC. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 70.

153(3. Hildebrand, Friedrich. Über Versuche zur Bildung von
Pfropf bastarden bei Oxalis crasskaulis. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908.
p. 19-21, 2 Textfig.)

Verf. hatte Augen von roten Zwiebelknollen in gelbgefärbte Zwiebel-
knollen eingesetzt und erhielt aus den eingesetzten Pfropfreisern stets nur
rote Knollen, bis auf eine, welche gelb und rot war. Leider ging sie zu
Grunde. Verf. glaubt, dass hier ein Pfropfbastard vorgelegen hat, konnte aber
bei späteren Versuchen nie wieder ähnliches erzielen.

1537. Knuth, R. Die Gattung Rypseocharis. (Engl. Bot. Jahrb., XLII,
1908, p. 170—174.) X. A.

Verf. erörtert die Beziehungen, die die Gattung zu den Oxalidaceen,
wie zu den Geraniaceen zeigt und bespricht die sechs Arten.

Papaveraceae.

Neue Tafeln:
Meconopsis sinuata var. latifolia Prain in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8223.
Trigonocaimos curvipes Schlecht, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 53.

1538. Bois, D. Un Bicentra grimpant ä fleurs jaunes (B. torulosa).
(Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 393—394.)

Kurze Notiz über Kulturpflanzen.

1539. Greene, E. L. Argemone pleiacantha Greene. (Rep. spec. nov., VI,
1908, p. 161.) X. A.

1540. Hawson. F. E. A cup of gold (Eschscholtzia). (Out West. XXVIII,
1908, p. 287 — 291, with G illustrations after photographs.)

Nicht gesehen.

270 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [270

1541. Heineck. Über eine eigentümliche Krümmung der Blüten-
spindel bei Diclytra spectabilis DO. (Natur w. Wochenschr , N. F., VII, 1908,
p. 283-^284, eine Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1542. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 18. San-
guinaria Canademi* L. (Mercks Bep., XVII, 1908, p. 209-212, 15 fig.)

Siehe „Anatomie".

1543. Hooper, D. The seeds and oil of the Mexican Poppy
[Argemone mexicana]. (Agric. Ledger., 1907 [1908], p. 35—39.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1544. I[rwing], W. Meconopsis sinuata. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 202, Fig. 88.)

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze.

1545. Irwing, W. Two new hardy plants. (Garden, LXXII, 1908,
p. 290—291, 2 Fig.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen von Corydalis Alleni und
Lewisia Cotyledon.

1546. Klebelsberg, R. v. Corydalis Haasmcnni, ein neuer Corydalis-
Bastard. (Östr. Bot. Zeitschr.. LVIII, 1908, p. 243-244.) N. A.

Es handelt sich um C. intermedia P. M. E. X C densiflora Presl.

1547. Le Gendre, Ch. Fragment du genere Papaver. (Rev. sc.
Limousin, XVI, 1908, p. 157 — 159.)

Nicht gesehen.

1548. Makoslii, K. Über Alkaloide der chinesischen Corydalis-
Knollen. (Arch. der Pharm., OCXLVI, 1908, p. 381.)

1549. Makoslii, K. Über das Protopin der japanischen Corydalis-
Knollen, Corydalis Vernyi. (Arch. der Pharm., OCXLVI, 1908, p. 401-402.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1550. Prain, D. A new Meconopsis [speciosa] from Yunnan. (Trans.
a. Proc. R. Bot. Soc. Edinburgh, XXIII, 1907, p. 257—258, tab. II.) N. A.

Siehe auch Fedde, Rep. spec. nov. VIII.

1551. Ritter, G. Sur la flexion et le redressement de la pedon-
cule du pavot. (Mem. Inst, agron. et forest. Nowo-Alexandria, XIX, 1908,
p. 82, en russe.)

1552. Schmidt, E. Notiz über die Alkaloide der Knollen von
Corydalis cava. (Arch. der Pharm., CCXLVI, 1908, p. 575—582.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1553. Schnlleriis, Josef. Zur Blütenbiologie des Gartenmohns
(Papaver somniferum L.). (Verh. u. Mitt. siebenbürg. Ver. Naturw., LVII, 1907,
p. 09—77, eine Tafel.)

Siehe „Blütenhiologie".

Paronychiaceae.

Passifloraceae.

Neue Tafel:
Adenia lobata (Jacq.) Engl, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 107.

1553a. Baccarini, P. Notizie sulla struttura anatoniica della
Modecca Abyssinica Hchst. (Bull. Soc. Bot. Ital., 1908, p. 40—50.)

Siehe „Anatomie 1909".

271] Paronychiaceae. Passifloraeeae. Pedaliaceae. Pittosporaceae. 27 t

1554. Harms, H. Passifloracea peruviana. (Engl. Bot. Jahrb., XLIIT
1908, p. 130-131.) N. A.

Nur Passiflora macrocltlamys n. sp.

1555. M., F. Passion-flo wers and their cultivation. (Gard.
Chron., 3. ser., XLIIT, 1908, p. 187—188. fig. 77—79.)

Die Figuren zeigen Blüten von Passiflora coerulea, P. vitifolia und
P. alata.

Pedaliaceae.

Neue Tafeln:

Harpagophytum Peglerae Stapf in Wildeman, PI. Nov. Hort. Then., II, 1908r

tab. LXIV.
Sesamnni angolense Welw. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 139.

Penaeaceae.

Neue Tafel:
Sarcocolla squamosa (L.) Kunth in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 109.

1556. Stephens, E. L. A preliminary note on the Embryo-Sac of
certain Penaeaceae. (Rhodora, XXII, 1908, p. 329—330.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

Phytolaecaceae.

Neue Tafel:
Linien in viscosum Fenzl in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 43.

1557. Holm. Th. Medicinal plants of North America. 9. Phytolacca
decandra L (Mercks Rep., XVI, 1907, p. 312-314, fig. 1—16.)

Siehe „Anatomie".

Piperaeeae.

Neue Tafel:

Piper gxineense Schum. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 27.

1558. Brown. William H. The nature of the embryo sac of Pepe-
romia. (Bot. Gaz., XLV1, 1908, p. 445-460, pls. XXXI— XXXIII.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1559. Candolle, C. de. Trois Peperomia des Nouvelles-Hebrides.
(Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 329-330.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1560. Hill, Artlinr W. Peperomiae generis species novae geophilae.
(Rep. spec. nov.. V, 1908, p. 3o0— 352.)

Ex: Ann. of Bot., XXI, 1907, p. 139—160.

1561. Mottet, S. Saururus Loureiri. (Rev. Hortic, LXXX. 1908, p. 394
bis 395, fig. 143.)

Blütentriebe werden abgebildet.

Pirolaeeae.

Pittosporaceae.

Neue Tafel:

Pittosporwn viridiflorum Sims in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas. 1908, tab. 62.

1562. Gagnepain, F. Essai d'une Classification des Pittosporum
d'extreme-orient. (Journ. de Bot., 2. ser., I, 1908, p. 223-228.)

Verf. behandelt kurz die in Betracht zu ziehenden Merkmale und gibt
dann einen Schlüssel zur Bestimmung der 22 Arten. Die neuen sind bereits
in einer früheren Arbeit beschrieben.

272 ?• K. Schneidor: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |272

Plantaginaceae.

Neue Tafeln:
Plantago palmata Hook. f. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 143.
P. sempervivoides Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 4, fig. 46 und tab. 8,

fig. 24-27.

1563. Begninot, Augusto. II nanismo nel gener a Plantago e le sue
cause. (Nuoy. Giorn. Bot. It., XV, p. 205-306, 1908.)

Auf Grund dreijähriger Beobachtungen und kultureller Erfolge sammelt
Verf. im vorliegenden seine Erfahrungen betreffs des Auftretens von Zwerg-
formen bei der Gattung Plantago. Eine kritische kurze Besprechung der vor-
handenen Literatur über den Gegenstand wird vorausgeschickt; p.214 — 215 werden
alle Plantago-Arten angeführt, bei welchen Zwergformen bekanntsind ; esfolgt dann
die kritische Illustration jeder einzelnen der 29 genannten Arten, mit ihren Varie-
täten. In dem dritten Teile der Abhandlung bespricht Verf. die Verbreitung
des Nanismus bei Plantago- Arten und betrachtet, als Ursache desselben, einzeln :
die Meereshöhe, die Station, Jahreszeit und Klima, Entwickelungsgrad, Lebens-
kampf, Einwirkung des Menschen, innere Ursachen. Nachdem er noch die
typischen Merkmale, das Auftreten und das Wesen des Nanismus bei dieser
Pflanzengattung besprochen, hebt er den s}Tstematischen Wert der Zwerg-
formen von Plantago hervor. Die angestellten Kulturen haben den Beweis er-
bracht, dass mehrere Zwergformen ganz unrichtig von den Autoren als selbst-
ständige Arten angesprochen worden sind. Viele dieser letzteren haben ihre
Merkmale nicht vererbt, im Gegenteil. Nachkommen gegeben, welche oft schon
in der ersten Generation zum Typus zurückschlugen; es handelte sich um in-
dividuelle schwankende Variationen, welche zuweilen deswegen von Interesse
sind, weil sie Fingerzeige bezüglich des Auftretens ihrer Merkmale und bezüg-
lich ihrer Entwickelungsgeschichte darbieten. Anderseits zeigen sich Merkmale
an gewissen Formen konstant. P. sarda, welche wahrscheinlich aus P. carinata
hervorgegangen, hat sich in den Nachkommen, welche aus Samen vom Genn-
argenta (Sardinien) im botanischen Garten zu Padua gezogen wurden, durch
drei fortgesetzte Generationen hier unverändert erhalten. Ihr gebührt somit
nicht der Wert einer Varietät, sie dürfte vielmehr als eine stabile Entität auf-
zufassen sein. Anderseits hat sich P. commutata in den Kulturen nicht redu-
zierbar gezeigt, wenn auch Verf. nicht ausschliesst, dass sich in Natur Zwischen-
formen zwischen ihr und P. Coronopus — von welcher jene als vereinfachtere
Form, mit breiten Hochblättern erscheint — sich vorfinden werden. Auch
dürften manche variable Formen in Natur Nachkommen von Kreuzungen sein.
Mit dieser Art ist, durch allmähliche Zwischenglieder P. Dccaisnei verbunden,
welche anderseits mit P. Boissieri verwandt ist, allein die Übergänge zwischen
beiden scheinen derzeit nicht gefunden worden zu sein. Möglicherweise
könnten fortgesetzte Kulturen gewisse Merkmale zwischen diesen verwandten
Arten stärker hervortreten lassen. P. Cupani, gleichfalls aus dem Cyclus
P Coronopus hervorgegangen, ist eine konstante Art, bei deren Entstehung
der Nanismus ausschlaggebend gewesen ist. Ebenso ist der Nanismus für eine
Gruppe einjähriger Arten aus der Sektion Micropsyllium eigentümlich, dasselbe
gilt für die Arten aus der Sektion Oreadis, welche meistens die höheren Lagen
bewohnen. P. fmcescens, aus dieser Sektion, ist hingegen durch Gigantismus
hervorgegangen; eine durch drei Jahre fortgesetzte Kultur hat ihre Merkmale
nicht abgeändert.

2731 Plantaginaceae. Platanaceae. Plutnbaginaceae. 273

Aus den analytischen und kulturellen Studien folgert der Verf., dass:

1. Der Nanismus ist bei den sehr empfindlichen Plantago-Arben stark ver-
breitet und einer der wichtigen Faktoren für den Polymorphismus der
Gattung.

2. Die den Nanismus beeinflussenden Faktoren sind alle die vom Autor
(siehe oben) in Betracht gezogenen Kräfte.

3. Nicht immer äussert sich derselbe als eine Reduktion von Organen oder
der ganzen Pflanze, oft bewirkt er Vereinfachung, besonders im
Laubblatte, zuweilen auch Komplikationen, namentlich bei den Hoch-
blättern (Frondescenz).

4. Infolge der Vereinfachung können die vorzeitig zur Entwickelüng ge-
langenden Zwergformen als neo- oder pädokarpische Formen an-
gesprochen werden. Die .Neigung zur Frondescenz seitens einiger Zwerg-
formen ist ein atavistischer Charakter.

5. Der Nanismus ist regelmässig eine Form individueller Anpassung; in

einzelnen Fällen sind diese Merkmale erblich fixiert worden, und dadurch
wurde ein Ausgangspunkt für neue Entitäten geschaffen. Solla.

1564. Prain, D. Plantaginaceae, in King a. Gamble Materials t'or a
flora of the Malayan Peninsula. (Journ. As. Soc. Bengal, LXXIV, 1908,
p. 727—728.)

Nur Plantago major L.

Platanaceae.

1565. Dode, L.-A. Sur les Platanes. (Bull. Soc. Dendrol. France,
1908, p. 27—68.) N. A.

Eingehende historische und morphologische Hinweise. Verf. unter-
scheidet drei Gruppen:

I. Orientales: feuilles tres divisees, dentees, adultes glabrescentes; capi-
tules nombreux: hierher: P. orientalis L., cuneata W., acerifolia W., orientalior
n. sp., digitata Gordon, cretica n. sp.

II. Racemosae: feuilles tres divisees, peu ou pas dentees, adultes pubes-
centes: capitules nombreux; hierher: P. Wrightii S. Wats.. racemosa Nutt.,
mexicana Moricaud.

III. Occidentales: feuilles peu divisees, dentees, adultes glabrescentes,
capitules 1 ä 3; hierher: P. occidentalis L., densicoma n. sp.

1566. Gleason, Henry Allan. Platanaceae in North American Flora, XXII,
pt. 3, 1908, p. 227—229.

Umfasst 6 Arten.

Plumbaginaceae.
Neue Tafeln:

Acantholimon demaioendicum Bornm. in Bull. Herb. Boiss.. 2. ser., VIII, 1908, tab. 2.

Dyerophyton africanum (Lam.) 0. Ktze. in Thonner. Blütenpflanzen Afrikas,

1908, tab. 124.
Limonium Dubyi O. Ktze., Journ. of Bot., XLVI. 1908, tab. 488.
Plumbago eapensis in Rev. Hortic, LXXX, 1908, tab. col. ad p. 60 (ramul.

florif.).

1567. Allard, E. J. Acantholimon venustum. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 259, Fig. 113.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1568. Mottet, S. Plumbago eapensis. (Revue hortic, LXXX, 1908, p. 60
bis 61, tab. col.)

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 17. 8. 10.] 18

274 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. |274

1569. 0., A. A heautiful Sea Lavender (Statice Snworotci). (Garden,
LXXII, 1908, p. 338, Fig.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1570. Salmon, C. E. Notes on Limonium. (Journ. of Bot., XL VI, 1908,
p. 1-3, pl. 488.)

Verf. behandelt in dieser VII. Note Limonium Dubyi 0. Ktze.

1571. Stapf, Otto. Rediscoverv of Statice arborea and discovery of

a new, allied species (St. Preauxii). (Ann. of Bot., XXII, 1908, p. 115—116.)

N. A. S
Siehe „Pflanzengeographie".

Podostemaceae.

Neue Tafeln:
Oenone multibranchiata n. sp. in Matthiesen (Ref. No. 1572), tab. I.
0. Othmeri n. sp., 1. c, tab. II.
Rhyncholacis diraricata n. sp.. 1. c, tab. IV.
R. penicillata n. sp., 1. c, tab. III.
Tristicha alternifolia Tul. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 58.

1572. Matthiesen, Franz. Beiträge zur Kenntnis der Podostema-
ceen. (Bibl. Bot, No. 68, 1908, 55 pp., eine Textabb, 9 Tafeln.) N. A.

Im ersten beschreibenden Teil der Arbeit behandelt Verf. folgende Arten:
Oenone multibranchiata Matth., (). latifolia Goeb., O. Imthurni Goeb., O. Othmeri
Matth, Apinagia pusilla Tul., Rhyncholacis penicillata Matth, i?. divaricata Matth,
R. macrocarpa Tul. und Mourera fluviatilis Aubl.

Der zweite Teil gibt eine kurze Zusammenfassung der morphologischen
und anatomischen Merkmale. Über die anatomischen haben wir bereits unter
„Anatomie" berichtet. Im folgenden sei aus den morphologischen Befunden
folgendes hervorgehoben:

1. Wurzeln und Hapteren: Oft abnorm an Gestalt, fast stets in
ihrer Funktion, haben sie mit den gleichen Organen anderer Pflanzen wenig
Ähnlichkeit.

Da die Podostemaceen auf felsigen Untergrund wachsen, so ist es da-
durch schon bedingt, dass die Wurzeln in Gestalt und Wachstumsweise von
der gewöhnlichen Form abweichen müssen. Wir können dort, wo sie über-
haupt vorkommen, drei Haupttypen unterscheiden. Die erste Form, die ge-
wöhnliche, wie sie hauptsächlich bei den amerikanischen Gattungen vorherrscht
und wo der Wurzelcharakter noch am deutlichsten ausgeprägt ist, besteht aus
relativ dünnen Fäden, welche kreuz und quer übereinanderwachsen und sich
jeder Unebenheit des Substrates anschmiegen. Sie sind etwas abgeflacht, die
Rückseite ist gewölbt, die untere fast ganz eben, und die Spitze meist mit
einer Wurzelhaube versehen.

An dieser Wurzelform werden in akropetaler Folge endogen, aber weit
vom Zentralzylinder entfernt und zu zweien einander gegenüberstehend,
Laubsprosse angelegt, welche wir im Gegensatz zu den Sämlingspflanzen als
„Sekundärsprosse" bezeichnen. Diese stellen aller Voraussicht nach die Haupt-
masse einer Podostemaceenvegetation vor.

Da die Wurzeln am Lichte wachsen, so sind sie mehr oder minder
chlorophyllhaltig. Für die Assimilation kommt diese erste Wurzelform jedoch
weniger in Betracht als die beiden anderen.

275' Podostemaceae. 275

Die zweite Wurzelform, die mehr bei den in ihrem Habitus am wenigsten
an Phanerogamen erinnernden indischen Arten vorherrscht, zeigt die auf das
Licht zurückführende, oben angedeutete Abflachung so weitgehend, dass sie
den Anblick einer Flechte gewährt und knotenförmig den Felsen fest anliegt.
Die Sekundärsprosse entstehen an ihr nicht seitlich, sondern auf dem Rücken.
Es hat eine Verschiebung der Organe stattgefunden, welche Goebel treffend
mit der bei den Schollen vergleicht. Die Funktion dieser Wurzeln ist eine
dreifache und in den einzelnen Punkten fast gleichwertige : sie sind zu gleicher
Zeit Haftorgane, Assimilationsorgane und Hervorbringen von Sprossen.

Als dritte Form wären die frei im Wasser flottierenden Wurzeln von
Dicraea elongata Tul. und D. algaeformis Bedd. (D. stylosa var. fucoides Willis)
zu erwähnen, welche neben dem Substrat fest anliegenden Wurzeln an der
gleichen Pflanze vorkommen. Bei ersterer Art sind sie rund, bei der zweiten
bandförmig und einem Laubblatte ähnlich, analog den Phyllokladien anderer
Pflanzen. Sie sind im Gegensatz zu den beiden ersten Formen offenbar von
begrenztem Wachstum. Die Wurzelhaube ist rudimentär. Funktionell kommen
diese flottierenden Wurzeln für die Assimilation und vegetative Vermehrung in
Betracht.

Neben den Podostemaceen, welche Wurzeln besitzen, kommen eine
ganze Reihe wurzellose vor. So finden wir z. B. bei Rhyncholacis macrocarpa
keine Andeutung irgend einer Wurzelbildung. Es wurde oben bemerkt, dass
die Sekundärsprosse besonderer Mittel bedürfen, um sich am Substrat zu be-
festigen und diese Notwendigkeit tritt bei den wurzellosen um so mehr zutage.

Es sind dies die „Hapteren", jene eigentümlichen zahnförmigen Aus-
wüchse an den basalen Teilen vieler Podostemaceen, welche Warming und
Goebel eingehender besprochen haben. Mit Wurzeln entwickelungsgeschicht-
lich in keiner Beziehung verwandt, stellen sie den Standortsverhältnissen ent-
sprechende Neubildungen dar.

2. Blatt und Spross: Die äusserst mannigfaltige Gestaltung der Blätter
der Podostemaceen beweist, auf wie verschiedene Weise bei den einzelnen
Gattungen, selbst innerhalb einer Gattung bei den einzelnen Arten, die Mög-
lichkeit geschaffen wurde, in einem mehr oder minder stark strömenden Wasser
unbeschadet leben zu können. Es würde zuweit führen, auf jede der einzelnen
Blattformen näher einzugehen; ich kann hier nur auf die Haupttypen hinweisen.
Einmal sehen wir breite Blattflächen scheinbar der Strömung den grössten
Widerstand entgegensetzen, gross und massig wie bei Mourera aspera und M-
fluviatilis. Die Blätter in ihrem Ansehen und an grosse Kohlblätter erinnernd,
liegen jedoch in relativ ruhigem Wasser flach ausgebreitet; dieses strömt nicht
mit der Gewalt wie bei anderen über sie hinweg. Wenig geteilte Blätter
finden wir ferner bei Oenone latifolia Goebel, Marathrum utile, Oenone multi-
branchiata u. a. Bei ersterer Art, wo die Blätter fast so breit wie lang sind,
liegt die ganze Pflanze flach auf dem Substrat. Die Blätter, welche alle eine
Seite nach oben kehren, bieten der Strömung kein Hindernis.

Wenn nun bei vielen Blättern durch Teilung der Lamina wie bei
anderen Wasserpflanzen die Möglichkeit gegeben ist, eine möglichst grosse
Oberfläche dem Wasser darzubieten, so wird ein gleiches bei Blättern mit
breiten Flächen durch besondere Organe erreicht, z. B. bei den beschriebenen
Oenone- Arten durch die Kiemenbüschel. Auf die Wichtigkeit dieser und ihren
Wert für die Pflanze wurde früher von Goebel hingewiesen, und jener muss
z. B. bei 0. »lultibranehiata ein ganz enormer sein im Gegensatz zu 0. lati-

18*

276 C" *v Schneider: Morphologie und Systematik der Sipbonogamen. !_ "

folia Goebel. wo sie nur spärlich auftreten. Pie einzelnen Kienienbüsehel
sind stets mit zahlreichen einzelligen Haaren besetz:. Wirft man nun die
Frage auf, ob sie wegen ihrer grossen Zahl an Chlorophyllkörpern mehr dem
sck der Assimilation dienen, oder wegen der Menge der Haare eine viel-
leicht noch wichtigere Funktion auszuüben haben, so ist die Entscheidung
ä bwer. Was die Funktion der Haare anbelangt, so führen mich meine t'nter-
suehungen ebenfalls zur Annahme Goebels, dass sie zur Sauerstoffaufnahme
dienen. Schleim konnte ich bei dem Alkoholmaterial nirgends entdecken, eben-
sowenig eiue C i. wenn auch in manchen Haaren ein du uner Strang Fein-
körniger Substanz, offenbar P - -• .-.iftrat. Pie Frage welche der beiden
Funktionen die bedeutendere sei. ist überhaupt unwichtig. Jedenfalls gehen
beide als wichtige Faktoren für die Lebensbedingungen der V B neben-
einander her.

Als weitere Mittel zur Überfiaehenvergrösserung sind die kleinen runden
oder kolbenförmigen Emergenzen bei M : ' • and M- «3]

nennen, welche die Rauheit der Oberseite des Blattes bedingen und bei ersterer
auch des gan - -ules. Wal - h sind grösseren zahn-

förmigeu Auswüchse auf den Hauptrippen des Blattes von M- ßwtiatiKs funk-
tionell den kleineren gleichwertig. Am Fasse der Emergenzen des Brut
Schaftes fi sieb wieder zahlreiche Haare und zwar mekrzell g, iie sich

auch in kurze:-. Seit« sten verzv a anen. Überhaupt scheinen die H

in der Familie keine zu unterschätzende Rolle zu spielen.

Pie BL: stehen am Spross meistens Bg in der Stellung ' ,.

und wendeu dann di _-: Seite, welche unter normalen Verhält SS der

Sprossachse zugewendet sein müsste. stets nach oben. Eine solche Drehung
jedes Blattes um 90 Grad ist keineswegs •- roh die Strömoj g i st spater

erfolgende. Schon in der Knospenlage komi : sie zum Ausdruck. Die
werden dadurch mehr oder minder d< rsiventral.

Pie Eutwickelung eines Blattes hat bei ':.'-_ sigt

SS es der Innenseite des vorhergehenden am Fusse in einem meristemen
Gewebe entspringt, die junge Anlage gedeckt von der Stipel jenes Bla: 3
EinVeg spunkt. an dem die Blatter;: _: angelegt wer

st ] ••■ u-handen.

Pie gleiche Art der Sp] ss g ndet meinei sieht -

stemaeeen statt, mit :.em Unterschiede, dass iral

der Blätter als solche kein Zweifel herrscht und e 3 -Umbildung hier oj
unterdrück: st El ist der St m bei den Podostemaeeen mit obig

Ausnahmen nichts weiter als ftigung der basalen Blatteil«

-. und erstarken. un.:. - : i fcige S sse len wie .

«in/- se Auffassung der Stammbildung wird bes rs durch

sse bei 0. ' -• 5] _ St '--:. wo ein neuer Spross in

sich sjmpodialen Aufbau nicht gar - a Teil des Mutter

- ■ :was höher am BL - S

brennen kann. Hier wird der untere Teil des Blattes unawetJ
i einem 3t i des Stammes. Eine eigentliche Spross
vorhanden, und wenn von einem Stam: :. Spross l -her die Kede war. -
:. diese Beg mit g innl rbehalt

Näheres r weitere Forme _

selbst nachlesen.

3. Blüte ui 3 q: Solai a las " — - die Pf

277] Podostemaceae. 277

strömt, verharren die Blüten im Knospenzustand in den Höhlungen, welche
die basalen Blatteile mit den teilweise verwachsenen Stapeln um sie bilden.
Tn diesen Höhlungen finden die jungen Blüten einen vortrefflichen Schutz
gegen die reissende Gewalt des Wassers. Ausserdem sind die meisten mit
einer Spatha umgeben, welche, wie ich bei Ocnone beobachtete, oben einen
engen Kanal offen lässt. Wir haben bei 0. latifolia am Fusse der Blüte ein
reduziertes Blatt kennen gelernt und gaben der Vermutung Ausdruck, dass
die Spatha vielleicht, als Stipelbildung dieses Blattes aufzufassen sei: während
Willis annimmt, sie sei ursprünglich aus einem oder mehreren Blättern ver-
wachsen. Die Spatha fehlt nur denjenigen Gattungen, welche noch vollständig
ausgebildete Perigonblätter besitzen. Es sind dies die Gattungen Laicia und
Weddellina. Bei Laicia finden wir drei Kreise, die regelrecht alternieren, jeden
aus drei Gliedern bestehend. Die Hüllblätter sind bis - 3 Höhe verwachsen.
Die Blüte stellt den einfachsten und regelmässigsten Typus in der Familie dar.

Gleiche Verhältnisse treffen wir bei Trist ichia ramosissima, während
die Zahl der Staubblätter bei T. hypnoides auf eines reduziert ist. Die Blüte
von Weddellina besitzt fünf Perigon- und zwei Fruchtblätter. Die Zahl
der Staubblätter schwankt, nach den Angaben der verschiedenen Autoren
zwischen fünf und 25. Alle anderen Podostemaceen besitzen Blüten mit zu
kleinen nervenlosen Schuppen reduzierten Perigonblättern, zwei Fruchtblättern
und entweder sehr zahlreichen oder sehr wenig Staubgefässen. Es fragt sich
nun. was vielleicht als das Ursprüngliche anzunehmen sei, eine grosse Zahl
von Staubblättern, von der allmählich eine Reduzierung, oder eine kleinere,
von der aus eine Vermehrung erfolgt ist.

Bei den amerikanischen Arten finden wir nun ebenfalls eine Menge,
welche die Reduzierung in gleicher Weise zeigen, daneben aber eine ganze
Reihe, wo die Zahl der Staubblätter sehr gross ist und oft über 20 hinausgeht.
Hier habe ich den Kindruck gewonnen, dass von einer mittleren Zahl die
(Milder sowohl reduziert, als auch vermehrt wurden. Jene Zahl lässt sich
.war nicht mehr feststellen, auch kann sie selbst nur eine sekundäre Stufe in
der Entwicklungsgeschichte darstellen, ohne den ursprünglichen Ausgangspunkt
zu bilden. Kinen direkten Beweis haben wir für die Verringerung der Staub-
blätter bei Oenone Othmeri, wo der bei den meisten anderen Arten der Gattung
sonst charakteristische geschlossene Kreis auf zwei bis vier Glieder beschränkt
wurde. Die Zone, die befähigt ist, Staubblätter auszubilden, schwankt also
noch in der Breite, vielleicht durch Nahrungsverhältnisse beeinflusst, während
bei den nahestehenden Apinagien die Zahl 1 schon vielfach konstant geworden
ist. Die Vermehrung der Glieder machen mehrere Gründe wahrscheinlich.

Zum Schluss hebt Verf. in systematischer Hinsicht noch folgendes
hervor: Die Frage nach den verwandtschaftlichen Beziehungen der Podostema-
ceen ist mit Recht eine viel umstrittene gewesen. So viel Forscher sich bis
jetzt mit der Familie beschäftigt haben, fast ebenso viele Stellungen im natür-
lichen System sind ihr angewiesen worden. Man hat versucht, Beziehungen
zu den Caryophyllaceen, den Lentibulariaceen, den Sarraceniaceen und Saxi-
fragaceen zu entdecken. Mit letzteren scheint Warning die glücklichste Wahl
bei den verschiedenen Meinungen getroffen zu haben, wenn die in Frage
kommenden Merkmale auch nur allgemeiner Natur sind: hypogyne Blüte, zwei-
blätterige Fruchtknoten, zahlreiche anatrope Samen an einer starken Placenta,
die durch eine dünne Scheidenwand mit der Kapselwand verbunden ist, gerader
Embryo, der ohne Endospermbildun.<; wächst.

278 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |278

Verf. glaubt nicht, dass diese Merkmale gentigen, der Familie den ge-
bührenden Platz im System anzuweisen, und hält den jetzigen Zeitpunkt zur
Lösung der Frage noch nicht für geeignet. Es wird vorläufig vielmehr darauf
ankommen, festzustellen, ob die Samenentwickelung überall die gleiche ist.
Hier scheint ihm der einzige sichere Anhaltspunkt zu liegen, der zunächst
einen Schluss auf die Einheitlichkeit der Familie gestattet.

Nun macht es aber gerade die einfache Art der Sprossung, der Mangel eines
Vegetationspunktes bei den meisten wahrscheinlich, dass die Vorfahren der
Podostemaceen nicht auf dem Lande, sondern im Wasser zu suchen sind.
Diese können sich ebensogut, wie vom Lande aus ruhigerem Wasser mit
weichem Untergrund die Felsen der Wasserfälle erkämpft haben, und alle
Hypothesen, die man z. B. zur Erklärung der nicht axillären Verzweigung
herbeiziehen muss, werden nach unseren früheren Ausführungen überflüssig.

Nach allem erscheint es Verf. fraglich, ob es überhaupt gelingen wird,
eine näher Verwandtschaft der Familie mit anderen festzustellen, wenn man
von ganz allgemeinen Punkten absieht. Man wird sich wohl damit begnügen
müssen, in letzteren nur eine gewisse Ähnlichkeit mit anderen Familien zu
erkennen; die Annahme, dass die Podostemaceen in jeder Hinsicht einen rück-
gebildeten Typus darstellen, entbehrt jeglicher Berechtigung.

1573. Weilt, F. A. F. C. The development of the Ovule. embryo-
sac and egg in Podostemaceae. (Rec. Trav. Bot. Neerl., V. 1908, p. 1—16, pl. I.)

Siehe „Anatomie".

Polemoniaeeae.

Neue Tafel:
Ipomopsis clegans in Rev. Hortic, LXXX. 1908, tab. col. ad p. 108 (ramul.
florif.).

1574. Brand, A. Polemoniacea peruviana. (Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908,
p. 174—175.) N. A.

Nur Hirfhia n. gen. und eine Art.

1575. Ewart, A. J. and Tovey, J. R. Californian stink weed, or
sheepweed (Gilia squarrosa Hook, and Arn.). (Journ. Dept. Agric. Victoria.
VI, 1908, p. 592, 1 col. pl.)

Nicht gesehen.

1576. House, Homer Dolliver. The genus Rosenbergia. (Muhlenbergia,
IV, 1908, p. 22—25.) N. A.

Da Cobaea Cav. 1791 nach Verf. wegen des älteren Namens Cobaea Neck,
1790 ungültig ist, so tritt Rosenbergia Oerst. 1856 an ihre Stelle und Verf. tauft
die Arten demgemäss um und beschreibt eine neue.

1577. Vuilleuiin, P. Le norabre des petales chez le Phlox subulata L.
(Bull. Soc. Sc. Nancy, 1907, 26 pp . 9 pl.)

Nicht gesehen.

Polygalaceae.

Neue Tafeln:
Polyqala Wettsteinü Chod. in Denkschr. Ak. Wien. LXXIX, 1908. tab. XXVI.
Sccuridaca longepedtinculata Fresen. in Thonner. Blütenpfl. Afrikas, 1908,

tab. 79.

1578. Cliodat, R. Polygalaceae an di na e. (Engl. Bot. Jahrb.. XLII, 1908,
p. 97—104.) N. A.

Neue Arten von Polygala, Monnina.

2791 Poleinoniaeeae. Polygalaeeae. Polygonaceae. 279

1579. Gagnepain, F. Contribution a la connaissance des Xantho-
phyllum. Une famille nouvelle: les Xanthophyllacees. (Journ. de
Bot., XXI [2. ser., 1], 1908, p. 241—253.) N. A.

Verf. erörtert zunächst die Stellung der bisher den Polygalaceen zu-
geordneten Gattung. Sie zeigt Analogien mit diesen in den stipellosen,
alternierenden Blättern, der Präfloration, soweit es den Kelch betrifft, den
introsen in gleicher Zahl vorhandenen Antheren und dem sehr ähnlichen
Pollen.

Indes weicht Xanthophyllum beträchtlich ab vor allem durch die differente
Präfloration, die völlige Unabhängigkeit der Corollenstücke untereinander, die
nicht monadelphen Stamina und die parietale Placentation in dem ein-
fächerigen Ovar.

Mithin betrachtet Verf. Xanthophyllum als Vertreter einer eigenen
Familie, die sich den Polygalaceen anreiht und ziemlich nahe den Bixaceen
und Capparideen mit parietaler Placentation und einfächriger. fleischiger Frucht
zu stellen ist.

Verf. bespricht dann noch 22 Arten kurz und gibt einen Bestimmungs-
schlüssel dafür. Die neuen werden 1909 im Bull. Soc. Bot. France beschrieben.

1580. Ostermayer, F. Polygalaeeae. Ergebn. bot. Exp. kais. Ak. Wiss.
nach Südbrasilien, 1901. I. Bd. (Denkschr. kais. Akad. Wiss. Wien, LXXFX,
1908, mit 1 Taf.) N. A.

Siehe Tafeln am Kopfe der Familie. Siehe auch Fedde. Rep. nov. spec.

Polygonaceae.

Neue Tafeln:
Oxyqonum sinuatum Benth. et Hook, in Thonner. Blütenpfl. Afrikas, 1908,

tab. 39.
Polygonum amphibium L. in Miyoshi, Atlas Jap. Veget., sect. X. 1908, tab. 74.
Bheum inopinatum Prain n. sp. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8190.

1581. Clos, D. Les Stenophylles staminiformes du Brunnichia
cirrhosa. (Associat. franc. l'avancem. Sei., XXXV. 1906. Lyon. p. 419 — 420.)

1582. Gandoger, Michel. Eriogonum Polygonacearum genus speciebus
varietatibusque novis auetum. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 169 — 179.)

Ex: Bull. Soc. Roy. Bot. Belg.. XLII. 1906, p. 183—200.

1583. Hesse, 0. Über die Rhapontikwurzel und die österreichi-
schen Rhabarber. (Journ. prakt. Chem., N. F.. LXXVII, 1908, p. 321— 352.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1584. Xakai, T. On the so-called Polygonum japonieum. (Bot. Mag.
Tokyo, XXII, 1908, p. [159], japanisch.)

1585. Schuster, J. Versuch einer natürlichen Systematik des
Polygonum lapathifolium L. (Mitt. Bayer. Bot. Ges. Erforsch, heim. Flora,
München, II, 1907, p. 74—78.)

Verf. resümiert die Ergebnisse seiner Untersuchungen wie folgt:

1. P. lapathifolium ist eine eigene Art, deren Variationen infolge trans-
gressiver Variabilität grösser sind als die Differenzen zwischen P.
lapathifolium und dem ihm am nächsten stehenden P. Persicaria.

2. Auf Grund des Indumeuts der Blätter lässt sich P. lapathifolium weder
in Arten bzw. Unterarten, noch in geographische Rassen gliedern.

3. P. lapathifolium zerfällt in drei scharf getrennte Unterarten, diese wieder
in eine Anzahl durch den Wechsel der äusseren Verhältnisse bedingter

280 ^- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [280

Varietäten Nach diesen Gesichtspunkten lässt sich eine natürliche
Gliederung versuchen. Als die ursprüngliche Form ist die terrestre zu
betrachten.

4. Mit den übrigen Arten ist P. lapathifolium nur durch Bastarde ver-
bunden.

5 Diese Bastarde sind intermediär, namentlich in der Behaarung der
Ochrea und durch luxuriantes Wachstum ausgezeichnet; ihr Pollen ist
mehr oder minder steril, die Fruchtbarkeit schwächer oder stärker
reduziert, doch sind sie fast nie unfruchtbar; ihre Samen sind keim-
fähig.

6. Steriler Pollen und verminderte Fruchtbarkeit kommt auch bei den
reinen Polygonum -Arten vor.

7. Es ist im höchsten Grade wahrscheinlich, dass die sog. nichthybriden
tjbergangsformen der systematisch einander nahestehenden Polygonum-
Arten nur Formen polymorpher Hybriden sind, die auch als hybridogene
Arten auftreten können; wenigstens ist dies bei P. mite var. ambiguum
Thellung und P. foliosum Lindb. fil. der Fall.

1586. Schnster, Julias. Polygonaceenstudien. (Bull. Herb. Boiss.,
2. ser. VIII, 1908, p. 704—713.) N. A.

Betrifft die Arten Polygonum lapathifolium (L.), hystriadum n. sp., tomen-
tosum W., sambesicum n. sp., Tanganikae n. sp., der Sektion Echinocaulon Meissn.
(pedunculare Wall, emend. Schust.) usw.

1587. Tschirch, A. Die Stammpflanze des chinesischen Rha-
barbers. <Mitt. Naturf. Ges. Bern, 1907, 1908, p. XL)

1588. Wanderlich, A. Über das Fagopyrum- Rutin. (Arch. der Pharm.,
CCXLVI, 1908, p. 241.)

Siehe „Chemische Physiologie".

Portulaeaceae.

Neue Tafeln:
Talinum cuneifolium W. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 45.
Leicisia CotyUdon Bob. in Bot. Mag., OXXXIV, 1908, tab. 8220.

1589. Berger, Alwin. Mesembrianthemum und Portulaeaceae. (Vgl. Referat
No. 818!) N. A.

Verf. behandelt nur die sukkulenten Gattungen Anacampseros, Portulacaria
und Vertreter von Portulaca, Calandrinia, Lewisia.

1589a. Franz, Erich. Beiträge zur Kenntnis der Portulacaceen
und Basellaceen. Diss. Halle, 1908, 8°, 50 pp., 43 Fig. (Erschienen in
Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908, Beibl. 97, p. 1-46.)

Verf. sagt am Schluss zusammenfassend folgendes:

Mit der Darstellung der Blütenmorphologie und Anatomie der Portula-
caceen sind die für die Systematik wesentlich in Frage kommenden Gesichts-
punkte erschöpft.

Nach der zuerst behandelten Morphologie der Portulacaceen kann ich
mich der Paxschen Ansicht, dass eine natürliche Einteilung der Familie nicht
möglich sei, nicht anschliessen. Die ganze Familie stellt sich uns dar als
zusammengesetzt aus zwei scharf gesonderten Gattungsgruppen, deren jede
für sich einen geschlossenen phylogenetischen Entwickelungskomplex bildet,
deren Zusammenhang unter sich aber nicht vollkommen sichergestellt ist.

281] Portulacaceae. 281

Ich definiere die natürlichen Gruppen in folgendem Schlüssel:
I. Pollen Dodekaederform oder davon abzuleitende Formen: Frucht-
knoten mit breiter Basis aufsitzend; Ovula viele an einer Mittelsäule (mit
einziger Ausnahme von Monocosmia) ; Gefässbündel mit den Festigungs-
elementen einen geschlossenen Kreis bildend (mit Ausnahme von Portulaca):
Portulacoideae.

A. Karpelle mehr als drei Portulacinae.

1. Hochblattin volucrum aus zwei Blättern gebildet; Blüten im Blüten-
stande viele Portulacinae (Portulaca).

2. Hochblattinvolucrum durch mehrere spiralige Blätter eingeleitet,
Blüten einzeln. Lewisicinae (Lewisia, Grahamia).

B. Carpelle höchstens 3. Calandrinieae.

1. Mikropyle nach aussen gerichtet: Calandriniinae (Calandrinia, Talinum,
Anacampseros).

2. Mikropyle nach innen gerichtet: Calyptridiinae.

a) Polleu mit 12 Poren (Monocosmia, Calandriniopsis).

b) Pollen mit 3 Furchen (Calyptridium, Spraguea).

IL Pollen Würfelform oder davon abgeleitete Formen: Fruchknoten in
den Grund verschmälert bis gestielt: Ovulae höchstens 6; Gefässbündel isoliert
bleibend, bicollateral: Montioideae.

A. Ovula 3 — 6. Kalkoxalat und Schleimzellen fehlen: Montieae (Montia,
Claytonia, W angerinia) .

B. Ovulum 1. Kalkoxalat und Schleimzellen vorhanden : Baselleae (Portu-
lacaria, Basella, Tournonia, Ullucus, Boussingaultia, Anredera).

Als letzte Frage bliebe noch der Anschluss der Portulacaceen innerhalb
der Centrospermen zu erörtern.

Schon Pax spricht die Vermutung aus, dass die Portulacaceen von den
Aizoaceen herzuleiten seien. Auch mir scheint dieser Anschluss besonders
viel Wahrscheinlichkeit für sich zu haben. Im besonderen wäre ein Anschluss
bei der sehr formenreichen Gattung Sesuvium oder deren nächsten Verwandten
denkbar. Der Hauptunterschied zwischen Sesuvium und Portulaca — denn
diese Gattung kommt als die ursprünglichste der Portulaceen hier in erster
Linie in Betracht — ist, dass Sesuvium einen gefächerten Fruchtknoten zeigt
gegenüber dem ungefächerten von Portulaca. Dies kann aber für die Ab-
leitung der Portulacaceen von den Aizoaceen kein Hindernisgrund sein, da
wir ja die Formenkreise mit ungefächerten Fruchtknoten notwendigerweise
von solchen mit gefächerten abzuleiten haben. Die letzten Reste einer Fächerung
sind im übrigen ja auch bei Portulaca noch als vorstehende Rippen an der
Basis der Zentralplacenten zu beobachten. Ganz gleichartig ist dagegen die
Ausbildung des Fruchtknotens. In beiden Fällen ist er halbunterständig und
öffnet sich mit umschriebenen Deckel.

Auch im Vergleich mit anderen Anschlussmöglichkeiten ist die Ab-
leitung von den Aizoaceen die weitaus wahrscheinlichste. Mit den Phyto-
lacaceen können die Portulacaceen direkt nichts zu tun haben, weil, abgesehen
von der Fächerung des Fruchtknotens, jedes Carpell nur ein einziges Ovulum
führt, während der Typus der Portulacaceenblüte (ich sehe hier von den letzten
fortgebildeten Gattungen der Montioideae ab) mehrovulate Carpelle zeigt. Dazu,
ist der Aufbau der Pflanzen, speziell der Blütenstände, ein vollkommen ver-
schiedener. In Anbetracht des streng dichasialen oder doch aus Dichasien ab-

282 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. [282

zuleitenden sympodialen Aufbaues aller Portulacaceeninflorescenzen kann nur
ein Anschluss an gleichfalls begrenztachsige Centrosperme in Frage kommen.

Diese wären bei den gleichfalls mit ungeteilten Fruchtknoten ver-
sehenen niederen Caryophylleen wohl vorhanden, allein sowohl die geringe
Zahl der in jenen Formkreisen vorhandenen Ovula, wie anatomische Verhält-
nisse lassen diesen Anschluss als unwahrscheinlich erscheinen.

Demgegenüber müssen die oben angeführten Gründe für die Verwandt-
schaft von Sesuvium und Portulaca und damit der Aizoaceen und Portulacaceen
als besonders ins Gewicht fallend bezeichnet werden und der Anschluss der
Portulacaceen an die Aizoaceen hat besonders viel Wahrscheinlichkeit für sich.

1590. Riley. L. A. Oecology of Montia montana. (Journ. of Bot.,
XL VI, 1908, p. 92.)

Betrifft die Frage, ob diese Art in Sümpfen vorkommt. Verf. zitiert
zahlreiche Referenzen.

Primulaceae.

Neue Tafeln:
Ardisiandra sibthorpioides Hook, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908. tab. 123.
Primula kewensis, Rev. Hortic, LXXX, 190S, tab. col. ad p. 400 (ramul. florif.).

1591. B., J. B. Primula malacoides. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908.
p. 397, Fig. 161-165.)

Die Figuren zeigen Pflanzen und Details.

1592. Beauverd, Gustave. Une nou velle va riete d'Ändrosace coreenne.
(Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 308.) N. A.

Es handelt sich um : A. saxifragifolia Bge. var. Faurieana Beauv.

1593. Braun, J. Über die Entwickelung der Soldanellen unter
der Schneedecke. (Jahrber. naturf. Ges. Graubündens, L. 1908, p. 3 — 20.)

Bisher hatte man, namentlich den Ansichten A. v. Kerners folgend,
angenommen, dass die Soldanellen durch Eigenwärme sich Hohlräume in der
Schneedecke ausschmelzen. Demgegenüber stellt Verf. fest, dass nicht ihre
Eigenwärme, sondern die absorbierte Strahlungswärme das Durchschmelzen
des Schnees veranlasst. Die Pflanzen entwickeln sich selbst im gefrorenen
Boden bis zur Blüte, sobald nur oberflächlich Schmelzwasser vorhanden ist
Diesen Entwickelungsprozess schildert Verf. wie folgt: Über diese Entwickelung
unter der Schneedecke, die dort am weitesten fortgeschritten ist, wo am
reichlichsten Schmelzwasser fliesst, lässt sich noch folgendes sagen: Schon
unter mehr als metertiefer Schneeschicht macht sich das neue Leben bemerk-
bar. Die dann im Verlauf des Frühjahrs durch Zusammensintern entstehende
Eis- resp. Firnschicht, welche sich an der unteren, dem Erdboden anliegenden
Seite des Schneefeldes bildet, stellt aber dem Aufwärtswachsen der sich ent-
wickelten Pflanzen ein Hindernis entgegen. Es bleibt für dieselben nur der
anfänglich vom Schmelzwasser eingenommene, meist kaum wahrnehmbare
Raum zwischen Firnunterseite und Erdboden zur Verfügung und so wachsen
sie denn, der Erde angepresst, nach allen Richtungen hin kriechend, unter der
tiefen Schneedecke weiter. Der Uneingeweihte dürfte manchmal erstaunen,
wenn er im Juni beim Abgraben eines Schneefeldes plötzlich auf einen
grünenden, ja blühenden Flor stösst. Auch die Soldanellen haben sich kräftig
entwickelt, trotz der unbequemen, beengten Lage. Von einer durch die
Pflanze selbst ausgeschmolzenen Höhlung vermochte ich hier aber nie etwas
wahrzunehmen.

2831 Friinulaceae. 283

Der rasch fortschreitende Schmelzprozess verkleinert den Schneefleck
fort und fort: dadurch kommen die Soldanellenpflanzen immer mehr gegen
den Rand des Firnfeldes und zugleich näher der Oberfläche des Schnees zu
hegen.

Hier nun, aber auch nur hier, an der auf etwa 3 — 5 cm Dicke zusammen-
geschmolzenen Eiskruste des Firnenrandes, lässt sich das schon von Kerner
beschriebene, aber unrichtig gedeutete Phänomen des Blühens von Soldanellen
in kleinen Hohlräumen des Eises beobachten. Ich hatte Gelegenheit, das
Aufrichten und successive Durchschmelzen der Pflänzchen in allen seinen
Stadien zu verfolgen. Am einfachsten und klarsten liegt die Sache bei einem
eben lagernden Firnfleck, da das ausgeschmolzene Loch, sofern der Firn hart
genug ist, noch deutlich wahrzunehmen ist, wenn die Blütenkrone schon an
der Eisoberfläche erscheint. Es stellt einen etwas mehr als Millimeter breiten,
sich nach unten zu verengenden, zirka der Stengellänge der durchgeschmolzenen
Soldanelle entsprechenden Schnitt dar, der bis auf den Erdboden reicht und
am unteren Ende. d. h. dort wo die Krone lagerte, etwas erweitert erscheint.
Ein genügender Beweis dafür, dass die Pflänzchen nicht direkt in den Firn
hineingewachsen und sich fortwachsend erst nach und nach einen senkrechten
Tunnel ausgeschmolzen hat, sondern dass es sich um seitliche Aufrichtung
des schon am Boden liegend angewachsenen Doldenstiels handelt.

Zum Schluss weist Verf. noch auf folgende interessante Tatsache hin:
Ich habe noch kurz eine Erscheinung zu erwähnen, die ich mir im Beginn
meiner Untersuchung nicht recht zu erklären wusste. Es werden nämlich gar
nicht selten auch unter einer ziemlich (bis 60 und wohl noch mehr cm) tiefen
Schneedecke aufrecht blühenden Soldanellen angetroffen, die keinen Hohlraum
ausgeschmolzen haben. Ebenso findet man Crocus, Blättchen von Polygomnn
viviparum, Alchemilla spec. und im Jura häufig Scilla bifolia, aufrecht in den
Schnee hineinwachsend.

Diese Tatsache darf nun mit dem vorher auseinandergesetzten Durch-
schmelzen nicht verwechselt werden. Es handelt sich nämlich hier um die
rein mechanische Kraftleistung des Verschiebens der kleinsten Schneeteilchen,
mit anderen Worten eines Durchwachsens des Schnees, das wohl am besten
mit dem Durchwachsen von Pflanzen durch Sandhaufen (z. B. Taraxanim,
Cirsium arvense u. a.) zu vergleichen ist, mit dem Unterschied, dass die im
Sande begrabenen Pflanzteile etoilieren und bleich bleiben, während die vom
Schnee bedeckten infolge der Lichtdurchlässigkeit des letzteren sich bald mit
wenigen Ausnahmen, grün färben, also reichlich Chlorophyll bilden. Selbst-
verständlich ist das Inden-Schnee-Hineinwachsen nur möglich, so lange dessen
dem Erdboden anliegende Unterseite noch nicht verfirnt ist.

1594. Decroek. E. La graine de Primula auricula L.: etude morpho-
logique et anatomique. (Ann. Fac. Sc. Marseille, 1908, 19 pp.. 12 fig.)

Siehe „Anatomie".

1595. Forrest, (j. Primulaceae from Western Yunnan and Eastern
Thibet. (Notes roy. bot. Gard. Edinburgh, XIX, 1908, p. 213-239, pl. 2(i— -43.)

Ref. konnte diese Arbeit, die wegen der Tafeln wertvoll zu sein scheint,
noch nicht einsehen.

1590. Gaill, Edmond. Etude biometrique sur un hybride de
Primeveres (Primula flagellicaulis Pax). (Assoc. franc. l'avancem. Sei.,
XXXVI, 2. Reimers 1907, p. 490—504.)

Besprechung siehe „Variation". Fedde.

284 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [284

1597. Garn, Edmond. Sur les variations de la fleur et l'hetero-
stylie de Primula grandiflora Lam. et de Primula officinalis Jacq. (Assoc.
franc. 1 avancem. Sei., XXXVI, 2. Reims, p. 472 — 489.)

Besprechung siehe „Variation". Fedde.

1598. Garn, Edmond. Etüde biometrique sur l'heterosty lie de
Primula officinalis Jacq. et de Primula grandiflora Lam. (Assoc. franc.
l'avancem. Sei., XXXVI, 1 part., 1907, Reims, p. 233.)

Siehe „Blütenbiologie". Fedde.

1599. Goebel, K. Abnorme Blattbildung bei Primula Arendsu Pax.
(Flora, XCIX, 1908, p. 370—372, Textf.)

Siehe „Teratologie".

1600. Hildebrand, Friedrich. Über einige neue Cyclamenarten.
(Gartenfl., LVII, 1908, p. 291—298.) N. A.

Betrifft: C. maritimum, C- pseudo-maritimum, C Jörns und C. aegineticum.

1601. Hildebrand. Friedrich. Neue Cyclamenarten. (Rep. spec. nov.t
VI, 1908, p. 200—202.)

Ex: Gartenflora, LVII, 1908. p. 291—298.

1602. I[rwing], W. Shortia uniflora. (Gard. Chron, 3. ser.. XLIII, 1908,
p. 218, fig. 97—98.)

Die Figuren zeigen hübsche blühende Pflanzen.

1603. Marquand, E. D. Primrose-flowers: A study of pink-centres
and rose-centres. (Rept. and Trans. Guernsey Soc. nat. Sc. for 1907, p. 323
bis 328.)

Nicht gesehen.

1604. Mottet, S. Primula hewensis. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 400
bis 401, fig. 145, tab . col.)

Diese Art gilt als Hybride P. floribunda X verticillata, doch scheint
Verf. die Bastardnatur zweifelhaft.

1605. Nestler, A. Die hautreizende Wirkung der Primula mollis
Hook, und P. Arendsii Pax. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908. p. 468—475,
tab. VIII.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1606. Palibine, J. W. Note sur le genre Stimpsonia C. Wright.
(Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 162.)

Verf. weist nach, dass die von Petitmengin (vgl. No. 1612) beschriebene
Primula veronieoides mit Stimpsonia chamaedryoides Wright identisch ist.

1607. Pax, F. Primula elatior var. Lingelsheimii Pax nov. var. (Jahrb.
Schles. Ges., LXXXVI. 1908, Zool.-Bot. Sekt., p. 27—28.) N. A.

Siehe Fedde, Rep. nov. spec.

1608. Perriraz, J. Etüde biologique et biometrique de Primula
vulgaris. (Bull. Soc. Vaudoise sei. nat. Lausanne, XLV, 1908, p. 311 — 319.)

Siehe „Blütenbiologie" bei Dalla Torre im Jahresberichte. Fedde.

1609. Petitmengin, M. A propos de Primula penduliflora (Franchet)
Ptgin. etp. polyphylla (Franchet) Ptgin. (Le Monde des Plantes, X, 1908,
p. 6-7.)

KilO. Petitmengin, M. Diagnoses d'especes nouvelles de

Primeveres. (Le Monde des Plantes, X, 1908, p. 7.) N. A.

Primula delicata, P. Duclouxii, P. speluncicola, des environs de Yun-
nan-sen.

2851 Primulaceae. Proteaceae. Quiinaceae. Rafflesiaceae. 285

Kill. Petitmengin. Primulaceae novae sinenses (Collections du
Museum de Paris; R. R. P. P. Ducloux, Mussot et SoulieV). (Bull. Herb.
Boiss., 2. ser., VIII. 1908, p. 363—370.) N. A.

Neue Primula und Androsace. Siehe „Index nov. gen. et spec".

1612. Petitmengin. Marcel. Sur une Primevere monocarpique du
Japon [Primula veronicoides] '. (Bull. Herb. Boiss.. 2. ser., VIII, 1908, p. 107
bis 108, Textf.) N. A.

Die Figur zeigt eine Pflanze und Blütendetails.

1613. Petitmengin. Revue critique des Primulacees asiatiques.
(Bull. Ac. Int. Geogr. Bot., XVIII, 1908, p. 334—338.) N. A.

Verf. stellt in erster Linie fest, dass eine Anzahl von ihm neu be-
schriebener Arten bereits früher von Franchet und anderen beschrieben
wurden.

1614. Petitmengin. Primula Cavaleriei sp. nov. (Bull. Int. Ac. Geogr.
Bot., XVIII, 1908. p. 256.) N. A.

1615. Spinner, H. L'inflorescence de Primula officinalis. (Bull. Soc.
Neuchäteloise sei. nat.. XXXLV, 1905—1907, p. 159.)

Nicht gesehen.

1616. Vidal, L. Distribution geographique des Primulacees
dans les Alpes francaises. (C. R. Ass. franc. Avanc. Sc. Congr. de Reims,
1907, Paris 1908. p. 118—325, 3 cartes.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

Proteaceae.

Neue Tafel:

Leucospermum eonoearpum R. Br. in Thonner. Blütenpflanzen Afrikas. 1908,
tab. 33.

1617. Fletcher, J. J. Illustrations of Polycotyledony in the
genus Persoonia, with some reference to Nuytsia. (Proc. Linn. Soc. N. S.
Wales, XXXIII, 1908. p. 867—882, pl. XXXIV— XXXV.)

Verf. beschreibt von vielen Persooma-Arten Keimlinge mit 3—7 Keim-
blättern. Er hält diese Neigung zur Ent Wickelung von mehreren Keimblättern
nicht für einen Rückschlag, einen primitiven Charakter, sondern für einen er-
worbenen Charakter.

Im Anschluss beschreibt er drei Sämlinge von Nuytsia floribvnda (Loran-
thaeeen) mit drei bis vier Cotyiedonen.

1618. Nannizzi, A. Le Proteacee ornamentali. Brevi cenni sulla
loro eultura e descrizione delle principali specie. (Bull. Soc. tose.
Orticult, XXXIII, p. 234—243, in 8°. Firenze 1908.)

Referat noch nicht eingegangen.

1619. Wagner, R. Morphologische Mitteilungen. (Verh. Z. B. Ges.
Wien, LVIII. 1908, p. [91]— [96], 2 Textf.)

Über Cotyledonar-Achselsprosse bei einigen Proteaceen.

Quiinaceae.

Rafflesiaceae.

1620. Lankester. E. Ray. The crimson variety of Cytinus hypocistis L.
(Gard. Chron., 3. ser., XLIIL 1908, p. 341.)

Verf. behandelt die noch strittige Frage, ob die rote Form dieser Cytinus-
Art nur auf roten Cistus schmarotzt und die orange und gelbe Form nur auf

286 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [286

weissen. Sollte dies der Fall sein, so läge eine biochemische Reaktion vor.
Vorläufig bleibt die Frage noch unentschieden.

Ranunculaceae.

Neue Tafeln:
Anemone vesicatoria Prtl. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 47.
Paeonia Delavayi in Garden, LXXII, 1908, tab. col. ad p. 322.
P. lutea superba in Gard. Chron., 3. ser., XL1V, 1908, tab. nigr. ad p. 50.
P. Mlokosewitschii Lomak. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8173, und in

Gard. Chron., 3. ser., XLIV, 1908, tab. nigra ad p. 76.

1621. Bois, D. Pivoine de Delavay hybride var. Souvenir du
Professeur Maxime Cornu. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 322—323,
fig. 117.)

Entstanden aus der Kreuzung von Paeonia Delavayi var. lutea X P-
Montan var. Ville de Saint-Denis.

1622. Cavalerie, J. Notes sur les Renonculacees du Kouy-Tcheou.
(Bull. Ac. Int. Geogr. Bot., XVIII, 1908, p. VII— VIII.)

Siehe „Pflanzengeographie".

1623. D. W. Xanthorrhiza apiifolia. (Gard. Chron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 62.)

Kurze Notiz.

1624. Davidson, A. The Delphinü of Southern California. (Mühlen -
bergia. IV, 1908, p. 33—70.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

1625. Davis, Charles A. Seedlings of Ramm culus Pur shii Richardson.
(X. Rep. Michig. Acad. Sei. Ann. Arbor, 1908, p. 39-40.)

Nicht gesehen :

1626. Finet, E.-N. Additions älaflore de l'Asie Orientale (Renon-
culacees). (Journ. de Bot., XXI [2. ser., I], 1908, p. 14—21, 29—34, 95—100.)

N. A.
Siehe „Pflanzengeographie" und „Index nov. gen. et spec".

1627. Gerber, C. Sucs presurants des Renonculacees. (C. R. Soc.
Biol. Paris, LX1V, 1908, p. 522.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1028. Hemsley, W. Betting. JSligella integrifolia Regel (Syn. V. diversi-
folia Franchet). (Gard. Chron.. 3. ser., XLIV, 1908, p. 226-227, Fig. 98.)
Die Figur zeigt Blütenzweige und Details.

1 629. Hohn, Th. M e d i c i n a 1 p 1 a n t s ;o f N o r t h A m e r i c a. 20. Cimicifuga
americana Watt. (Mercks Rep., XVII, 1908, p. 262-265, fig. 1—9.)

Siehe „Anatomie".

1630. Holm, Th. Isopyrum biternatum Torr, et Gr., an anatomical
study. (Amer. Journ. Sei., VI, 1908, p. 133 — 140, fig. 1—3.)

Siehe „Anatomie".

1631. Johaimson, K. Om fyllodi hos Anemone silvestris L. (Svensk
Bot. Tidskr., II, 1908, p. [62]— [64], eine Fig.)

Siehe „Teratologie".

1632. Keller, 0. Studien über die Alkaloide der Nigella- Arten
Marburg 1907, 8°, 52 pp., 2 Taf.

Siehe „Chem. Physiologie".

287] Rammculaceae. 287

1633. Lloyd, J. U. and C. G. Hydrastis canadensis. (Drugs and Med. of
North Am., I, 1884—1885, p. 76—184, pl. 8, fig. 27-43, reprinted in Bull, of
the Lloyd Library, No. 10, 1908.)

1634. Lloyd, J. U. The cultivation of Hydrattis. (Pharm. Rev., XXVI,
1908, p. 138—140, 4 fig.)

Nicht gesehen.

1635. Lonay, H. Svtr quelques genres rares ou critiques de
Renonculacees. (Bull. Soc. Roy. Bot. Belgique, XLV, 1908, p. 191—204.)

N. A.

Verf. behandelt zunächst Traut vetteria und Oxyyraphis und kommt zum
Schluss, dass Tränt vetteria mit letzter Gattung zu vereinen sei. Diese gliedert
sich dann in:

Sekt. I. Callianthemum. Blätter meist einfach, gekerbt; Blüten einzeln
mit 5 grünen zuweilen persistierenden Sepalen, mit 5—12 nektarientragenden
Petalen, die ebenso gross oder grösser als die Sepalen sind. Wenigstens
9 Arten.

Sekt. II. Trautvetteria (Fisch, et Mey. als Gattung). Blätter handlappig;
Blüten in Corymbus, mit 3 — 5 aber meist 4 weissen, abfälligen Sepalen ohne
Petalen. Nur Q. palmata (F. et M.) comb. nov.

Die Vereinigung gründet sich auf die Frucht- und Samenmerkmale: le
fruit est une reunion de follicules monospermes dont le pericarpe, parcouru
par des faisceaux longitudinaux, ne presente qu'une assise de cellules scleri-
fiees ä l'epiderme interne; graine lisse ä spermoderme uniquement forme par
le seul tegument dont l'epiderme interne ne presente pas d'epaississements
frangees.

Ferner ist nach Verf. die Gattung Callianthemum den Adonis im System
nächstznstellen. da die Ovarstruktur der ersten Gattung genau wie bei
Adonis ist.

Die Gattung Xanthorrhiza steht, wie schon Bai Hon betonte, Aqnilegia
in ihrer floralen Struktur am nächsten und Verf. zeigt weiter, dass die
anatomische Untersuchung der Frucht- und Samenstruktur diese Ansicht
bestätigt.

Zuletzt bespricht Verf. noch Coptis und Isopyrum und plädiert für eine
gesonderte Erhaltung beider Genera. Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1036. Ludwig, F. Weiteres zur Biologie von Helleborus foetidus.
(Zeitschr. wiss. Insektenbiol., III, 1908, p. 45—50.)

Siehe im „Blütenbiolog. Teile des Just".

1637. Mattei. 6. E. Piuttia, novum Ranunculacearum genus. (Rep.
spec. nov.. V, 1908, p. 76—77.)

Ex: Malpighia, XX, 1906, p. 332.

1638. Müller, L. Notesurunpied d' Anemone pulsatilla L. ä hampe
biflore. (Bull. Soc. Amis Sc. nat. Rouen, XLIII, 1908, p. 25.)

Siehe „Teratologie".

1639. Nakai, T. An Observation on Japanese Aconitum. (Bot. Mag.
Tokyo, XXII, 1908, p. 127—140.) N. A.

Bestimmungstabelle, kurze Notizen über Vorkommen und Synonymie.

1639a. Rapaics, Raymund. Die Pflanzengeographie der Gattung
Aconitum. (Nov. Közl., VII, 1908, p. 124—131, ungarisch; deutsche Übersetzung,
p. [21]— [28] des Beiblattes.)

Siehe „Pflanzengeographie".

288 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [288

1640. Sampaio, Gonc,alo. Note sur Ranunculus gregarnts Brot. (Bull.
Soc. Portug. Sei. Nat., I, 1907, p. 34—37.)

Siehe „Pflanzengeographie".

1641. Step. E. Helleborus foetidus L. (Proe. South London Entomol. and
Hist. Soc, 1908/09, p. 56—58.)

Nicht gesehen.

1642. Swingle, Leroy D. Embryology of Myosurus minimus. (Americ.
Naturalist, XLII, 1908, p. 582—589, 2 plates.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1643. Tenand. Les plantes utiles. L'Aconit Napel. (Bull. Soc.
Naturalistes de l'Ain Bourg, 1906, No. 18, p. 4.)

Nicht gesehen.

1644. Williams, Frederic N. Critical study of Ranunculus aquatilis L.
var. y. (Journ. of Bot., XLVI, 1908, p. 11—22, 44—52.)

Verf. weist sehr eingehend nach, dass diese Linnesche Form folgende zwei
Formengruppen umfasst, die er genau bespricht:

I. R. divaricatus Schrank (1789).

var. 1. communis,

lusus macrantlms-
var. 2. eradicatus = R. aquatalis var. eradicatus Laest (1842),

lusus macrantlms,

lusus furcatus.
var. 3. Rionii = R. Rionii Lagger (i848).
var. 4. Aschersoni = -R. Aschersoni Freyn (1881).

var. 5. sphaerospermus = R. sphaerospermus Boiss. et Blanche (1856).
var. 6. cabomboides = R. hydrocharis var. cabomboides W. P. Hiern (1871).
var. 7. terrester — R. Drouetii f. terrestris Gr. C. Druce (1897).

II. R. trichophyUus Godron (1847).

var. 1. communis.

forma typica.

forma filicaulis Rouy et Fouc. (1893).

forma dolichopoda = R. dolichopodus A. Kerner (1893).

forma nutans.

forma carnosa = Ratracliium confervoides var. carnosum J. M. Norman
(1893).

forma nana Beauverd (1904).
var. 2. terrester Godron.

forma crebrior.

forma germanica.

1645. Woloszczak, E. Aconitum Zenoniae (A. Anthora X Kapellus var.
romanicum Wol. (Ung. Bot. Bl., VII, 1908, p. 279—281.) N. A.

1646. Worsdell, W. C. The affinities of Paeonia. (Journ. of Bot.,
XLVI, 1908, p. 114—116.)

Verf. glaubt, dass unter Berücksichtigung aller Charaktere, auch der
anatomischen, Paeonia eine intermediäre Stellung zwischen den Ranunculaceen
einerseits und den Magnoliaceen und Calycanthaceen anderseits einnimmt.
Wahrscheinlich steht sie den Magnoliaceen näher. Verf. hat in einer anderen
Arbeit (vgl. Anatomie) deshalb vorgeschlagen, die Gattung als eigene Familie,
Paeoniaceae, zu führen.

2891 Rapataceae. Resedaceae. Rhamnaceae. Rhizophoraceae. Rosaceae. 289

Rapataceae.

Resedaceae.
Neue Tafel:
Oligomeris glaucescens Cambess. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 56.

1647. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie von Reseda odorata L.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908. p. 649—650, 5 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

Rhamnaceae.

Neue Tafeln:
Hovenia didcis Thbg. in Shirasawa, Icon. ess. forest. Japon., II, 1908, tab. 47,

fig. 15—27.
Microrhamnus frunguloides Max. 1. c, tab. 48, fig. 1 — 7.
Rhamnus costata Max. 1. c, fig. 8 — 13.
R. crenata S. et Z., 1. c, tab. 47, fig. 1—14.
R. japonicus var. gemiina Max., 1. c, tab. 48, fig. 14 — 21.
Yentilago leiocarpa Benth. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas. 1908, tab. 89.

1648. Anonym. Cascara Sagrada (Rhamnus Purshianus DO.) (Kew
Bullet., 1908, p. 429—432, plate 1—2.)

Pharmazeutische und allgemeine Bemerkungen. Die Tafeln zeigen
Pflanzen in Kew.

1649. Barsali, E. Sulla struttura del frutto del Zizyphus sativa
Gaertn. (Atti Soc. Tose. Sc. Nat. Proc. verb., XVII, p. 19—23.)

Referat nicht eingegangen.

1650. Lainorlette, L. Remarques sur la tige et la feuille des Ner-
pruns [Rhamnus]. Diplome d'etudes, Paris, 1908.

Nicht gesehen.

1651. Rade, Karl. Rhamnus latifolia viridis Hort. (Gartenwelt, XIII,
1908, p. 341—342, Abb.)

Die Abbildung zeigt eine Pflanze im Winter.

1652. Schneider, Camillo Karl. Neue Rhamnus- Arten des Berliner

botan. Museums aus Ostasien und Bemerkungen zur Systematik

der Gattung Rhamnus. (Notizbl. Bot. Garten Berlin, V, No. 43, 1908, p. 75—79.)

N. A.
Siehe „Index uov. gen. et spec".

1653. Simonkai, Lud. Novae species atque formae Rhamnorum
hungaricarum. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 105.)

Ex.: Nov. Közl., VI, 1907, p. 39—58, Beibl. p. 11—13.

1654. Tschirch, A. und Pool, J. F. A. Vergleichende Studien über
die Rinden von Rhamnus frangula und Rh. Purshiana- (Arch. der Pharm.,
CCXLVI, 1908, p. 315—320.)

Nicht gesehen.

Rhizophoraceae.
Neue Tafel:
Weihea africana Benth. in Thonner. Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 113.

Rosaceae.

Neue Tafeln:
Alchemilla pinnata R. et P. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 48 B
(Vegetationsb.).
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. iGedruckt 20. 8. 10.] 19

290 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. [290

Crataegiis aspera Sargent in Trees and Shrubs, II, 2, 1908, tab. 131.

C. lanceolata Sarg.. 1. c, tab. 130.

C Livoniana Sarg., 1. c, tab. 129.

C Kennedyi Sarg., 1. c, tab. 134.

C- magnifolia Sarg., 1. c„ tab. 132.

C mollita Sarg., 1. c, tab. 136.

C. padifolia Sarg., 1. c, tab. 135.

C- procera Sarg., 1. c, tab. 133.

C. severa Sarg., 1. c, tab. 127.

C. villiflora Sarg., 1. c, tab. 128.

Paeonia anomala L. in Karst, et Schenck, Vegetat., V, 1908, tab. 20 (Vegetationsb.).

Parinarium congoense Engl, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 66.

Pirus aucuparia var. japonica Max. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest., II, 1908,

tab. 31, fig. 1 — 13.
P. Toringo Sieb., 1. c, tab. 31, fig. 14-24.
P. Tschonoski Max., 1. c, tab. 30, fig. 10—20.

Potentilla Alexenkoi in Wolf Monogr. Potentilla (Ref. No. 16, 17), Taf. III, fig. 2.
P. alpestris var. Brotheriana und Frieseana in Wolf, 1. c, tab. XVIII. P.
Aucheriana in Wolf, 1. c, tab. XIV, fig. 2. P. Clarkei in Wolf, 1. c, tab. VII,
fig. 2. Colletiana in Wolf, 1. c, tab. IX, fig. 2. P. concolor Rolfe in Bot. Mag.,
CXXXIV, 1908, tab. 8180. P cryptophila in Wolf, 1. c, tab. XIV, fig. 1.
P. desertorum var. amavatensis in Wolf, 1. c, tab. XII. P. effusa var. rupincola
in Wolf, 1. c, tab. V, fig. 2. P flabellata in Wolf, 1. c, tab. XIV, fig. 3.
P flaccida in Wolf, 1. c, tab. XIII, fig. 2. P. Gerardiana in Wolf, 1. c,
tab. VIII, fig. 1. P. gilanica in Wolf, 1. c, tab. X. P Griffithii in Wolf,
1. c, tab. VII, fig. 1. P Hickmanii in Wolf, 1. c, tab. V, fig. 1. P hololeuca
var. calvescens in Wolf, 1. c, tab. III, fig. 1. P horrida in Wolf, 1. c, tab. VI.
P Komaroviana [in Wolf, 1. c, tab. XIII, fig. 1. P Kryloviana in Wolf, 1. c,
tab. IX, fig. 1. P. kuramensis in Wolf, 1. c, tab. XIX, fig. 2. P. Lipskyana
in Wolf, 1. c, tab. XVII. P monanthes in Wolf, 1. c, tab. XIX, fig. 1. P. niponica
in Wolf, 1. c, tab. II. P. nurensis in Wolf, 1. c, tab. XI, fig. 1. P opaciformis
in Wolf, 1. c, tab. XIX, fig. 3. P orbiculata in Wolf, 1. c, tab. XVI, fig. 2
P Regeliana in Wolf, 1. c, tab. XII, fig. 1. P. rigidula in Wolf, 1. c, tab.
VIII, fig. 2. P Rigoana in Wolf, 1. c, tab. XX. P sericata in Wolf, 1. c,
tab. XVI, fig. 1. P sikkimensis in Wolf, 1. c, tab. IV. P Szovitsii in Wolf,
1. c, tab. XV. P tianschahica in Wolf, 1. c, tab. I. P. Tollii in AVolf, 1. c,
tab. XI, fig. 2.

Prunus cerasoides Maxim, in Shirasawa, Iconogr. ess. forest., tab. 28, fig. 14 — 19.
P incisa Thbg., 1. c, tab. 28, fig. 20-30.
P. macrophylla S. et Z., 1. c, tab. 29, fig. 1—9.
P Maximoiviczü Rupr., 1. c, tab. 30, fig. 1 — 9.
P Miqueliana Max., 1. c, tab. 27, fig. 15—26.
P Pseudo-Cerasus Ldl., 1. c, tab. 27, fig. 1 — 14.
P. espinulosa S. et Z., 1. c, tab. 29, fig. 19 — 21.
P Ssiori Schm., 1. c, tab. 28, fig. 1—13.
P tomentosa Thbg. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8196.
Pyrus aria var. majestica in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8184.
P. sinensis Ldl., 1. c, tab. 8226.
P Tschonoskii Maxim., 1. c, tab. 8179.
Posa sericea var. pteracantha Franch. in Bot. Mag., 1. c, tab. 8218.

291] Rosaceae. 291

Rosa Wülmottiae Hemsl., in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8186.
Rubns chamaemorus L. in Karst, et Schenck, 1. c, tab. 31.

Rnbus affinis W. N. in Sudre Rubi europ. Monogr., fasc. 1, 1908, tab. VII. R.
amblyphyllus N. Eoul., 1. c, tab. IV, fig. 8. R. Arrhenii Lge., 1. c, tab. XXVII.
R. arrltenianthus K. Frid., 1. c, tab. XXVIII. R. axillaris P.-J. M., 1. c, tab.
XXI, 1 — 5. R. Bakeri Lees, 1. c, tab. XXXIX, fig. 1 — 2. R. brach ythyrsoides
S.. 1. c, tab. XXI, fig. 10—12. R. brachythyrsus S., 1. c, tab. XXI, 8—9. R.
calvifol/us Sud., 1. c, tab. XLI, fig. -4 — 5. R. chaerophyllus S. et Seh., 1. c,
tab. XX. R. carpinifolius Wh., 1. c, tab. X et XI exp. R. chlorothyrsus F.,
1. c, tab. XXXV. R. eimbricus F., 1. c, tab. XXXVII. R. clethrophilus Genev.,
1. c, tab. XIV. R. danicus F., 1. c, tab. XXIII. R. emergens B. et M., 1. c,
tab. VIII. R. erythranthus S., 1. c, tab. XXVI. R. fallens S., 1. c, tab. XXII,
fig. 7 — 9. R. flssus LdL, 1. c, tab. II. R. fucatus S., 1. c, tab. XIX. R. gratus
F., 1. c, tab. XVI. R. hebetipes S., 1. c, tab. XXXIV, fig. 3—5. R. hemistemon
P. J. M., 1. c, tab. XXXI. R. holerythrus F., 1. c, tab. VI, fig. 5—6. R.
hypomalacus F., 1. c, tab. XXIV, fig. 1 — 5. R. horridisepahis S., 1. c, tab. XXI,
fig. 6. R. hypomalacoides Sud., 1. c, tab. XVII. R. immutabilis S., 1. c, tab.
XXX. R. integribasis M., 1. c, tab. VI, fig. 1—4. R. latifolius Bab., I. c, tab.
XVII. R. Legi F., 1. c, tab. XXXVI, fig. 1—4. R. Loretianus S., 1. c, tab.
XXXVI, fig. 8—10. P. Maassii F., 1. c, tab. XXXVIII. R. mercicus Bagn.,
1. c, tab. XXXIX, fig. 12 — 13. R. mucronatiformis, 1. c, tab. XXIV, fig. 6 — 9.
R. Muenteri Mars., 1. c, tab. XXXIX, fig. 14—16. F. myricae F., I.e., tab. XXXII. R.
Ninckii S., I.e., tab. XXX. R. nitidus W. N., 1. c, tab. V. R. oliyadenes Sud., 1. c, tab.
XIX. R. opacus F., 1. c, tab. IV, fig. 9. R. orbifoliatus S., 1. c, tab. XXXIII, fig. 1—3.
R. orthocladus A. Ley., 1. c, tab. XXV. R. orthosepalus Hai., 1. c, tab. XXXVI,
fig. 5 — 7. R. oxyanchus Sud., 1. c, tab. XXXIX, fig. 7 — 8. R. pervagus Sud.,
1. c, tab. XVIII. R. platybelus Sud., 1. c, tab. XI. R. plicatus W. N., 1. c,
tab. IV, fig. 1 — 7. R. porphyracanthus F., 1. c, tab. XXII, fig. 4 — 6. R. Questieri
L. M., 1. c, tab. XL. R. repetinus S., 1. c, tab. XIX. R. Rogersii Lint., 1. c,
tab. VIII. R. rotundatus P.-J. M., 1. c, tab. XLI, fig. 6—9. R. Salteri Bab.,
1. c, tab. XIII, 4—8. R. saltuivagus S., 1. c, tab. XXXIV, fig. 1—2. R.
Scheutzii Lindg., 1. c, tab. XXXIX, fig. 3 — 6. R. sciocharis Sud., 1. c, tab.
XVII. R. Selmeri Lindg., 1. c, tab. XIII, 1 — 3. R. senticosus Koebl., 1. c,
tab. IX. R. similis S., 1. c, tab. XXII, fig. 1 — 3. R. sollingiacus F. Krt., 1. c,
tab. XXVIII. R. Sprengelii W., 1. c, tab. XXIX. R. sienoacanthus M. L., 1. c,
tab. XLI, fig. 1-3. R. subcalvus S., 1. c, tab. XXVI. R. suberectus And., 1. c,
tab. I. R. subglaucus Sud., 1. c, tab. XIX. R. subnitens Sud., 1. c, tab. XXXIII,
fig. 7 — 10. R. sulcatus Vest., 1. c, tab. III. R. tarnensis Sud., 1. c, tab. XV.
R. teretipes S., 1. c, tab. XXXIV, fig. 6—8. R. teretiramus S., 1. c, tab. XXXIII,
fig. 4—6. R. varüdens S. et B., 1. c, tab. VIII. R. viridicatus Sud., 1. c, tab.
XXXIX, fig. 10—11. R. vulgaris W. N., 1. c, tab. XII.

1655. Aigret, Cl. Les Roses beiges. (Bull. Soc. Roy. Bot. Belg.,
XLV, 1908, p. 101—189.) N. A.

Sehr eingehende Behandlung der Arten und Formen. Vgl. auch
„Pflanzengeographie von Europa".

1656. Almqaist, S. Studier öfver Bergianska Trädgärdens spon-
tana Rosa- Former. (Act. Hort. Bergiani, IV, 1907, Xo. 4, 88 pp., 1 Taf.,
84 Textb.) N. A.

Über diese detailreiche Arbeit, die ganz in schwedischer Sprache ge-
halten ist, berichtet R. E. Fries in Bot. Centrbl., CX, p. 51—52, 1909, wie

19*

292 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [292

folgt: Die Arbeit enthält, ausser Einleitung, teils eine speziellere systematische
Abteilung, teils einen allgemeineren Teil, Anmerkungen und Schlussfolgerungen.
In iener wird über die im Garten wildwachsenden .Rosa-Formen, die der
Kollektivart solstitialis Bess. angehören, eingehend berichtet. Diese belaufen
sich auf nicht weniger als 40 Stück, nach dem Verf. Elementararten aus-
machend, nebst fünf sicheren oder mehr oder weniger wahrscheinlichen Hy-
briden. Die allermeisten sind neu. Allen werden Beschreibungen (auf
schwedisch) und Textfiguren beigefügt, welch letztere die Blatt-, Dorn- und
Fruchtformen veranschaulichen. Auf einer kolorierten Tafel wird auch die
Farbe und Form der Kronenblätter einiger Arten wiedergegeben.

In dem zweiten Teil diskutiert der Verf. mehrere Fragen allgemeineren
Inhalts, wie Bedeutung der verschiedenen Charaktere für die Artunter-
scheidung, das Vorkommen von Elementararten innerhalb der Gattung, die Ver-
breitungsweise der Bösen und das oft isolierte, inselartige Vorkommen
einzelner Arten in den Rosengebüschen, die relativ unbedeutende Einwirkung
des Standortes auf das Aussehen der Formen, Sprossvariationen u. a. Auch
die Frage der Artbildung berührt der Verf. und hebt dabei hervor, dass die
Arten durch Mutation entstanden sind. Experimentelle Versuche wurden nicht
ausgeführt. Eine Stütze für seine Ansicht findet er in dem Umstand, dass in
der Kegel nahe verwandte Formen zusammenwachsen, wovon mehrere Bei-
spiele angeführt werden. Durch diese Ansicht erklärt sich auch die Tatsache,
dass so viele Formen auf einem so kleinen Gebiet gesammelt sind.

Im übrigen muss, für eine nähere Kenntnisnahme des Inhalts auf die
Arbeit selbst hingewiesen werden, da es kaum möglich ist, in einem begrenzten
Referate über die vielen dort gehäuften, wertvollen Angaben Bericht zu
erstatten.

1657. B-, W. J. Prunus tomentosa. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908,
p. 297, fig. 133—134.)

Blüten- und Fruchtzweige.

1658. Baenitz, C. Neue Rubi. (Jahrb. Schles. Ges. Breslau, LXXXVI,
1908, Zool.-Bot. Sekt., p. 1—3.) N. A.

Betrifft R. Paxii Focke (R. pltoenicolasius X idaeus). Siehe auch Fedde,
Rep. nov. spec.

1659. Ball, C. F. Nuttallia cerasiformis. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII,
1908, p. 267, fig. 117—118.)

Die Figuren zeigen Blüten- und Fruchtzweige und -details.

1660. Barclay, W. The genus Rosa in the „London Catalogue"
ed. 10. (Journ. of Bot., XL VI, 1908, p. 278—280, 356—358.)

Vgl. unter „Pflanzengeographie von Europa".

1661. Blanchard, W. H. On the identity of Rubus canadensis- (Rhodora,
X, 1908, p. 117—121.)

Verf. klärt diese Art und ihr Vorkommen in bezug auf R. alleghaniensis
(nigrobaccus), pergratus usw.

1662. Brenner, M. Rosa opaca-former i Juga. (Medd. Soc. Fauna et
Flora fennica, 1903, 34, p. 128—131.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1663. Brenner, M. Formerof Sorbus aucuparia L. i F i n 1 a n d. (Meddeland.
Soc. Fauna et Flora Fenn., XXXIII, 1906/07, p. 5—6.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

293] Rosaceae. 293

1064. Brettschneider. Einfach blühende Rosen und Wildrosen
(Gartenfl., LVII, 1908, p. 113—117, tab. 1570.)

Die Tafel zeigt Fruchtstände von Rosa alpina, blanda, cinnamomea,
hwmilis, Jundzilli, rugosa f. Mme. Alvarez de Oampo, X Aschersoniana und
rtibiginosa, über die Verf. plaudert.

1665. ßuser, R. Alchimülae novae Caucasicae et Ponticae. (Rep.
spec. nov., VI, 1908, p. 63—65, 135—143.)

Ex: Mon. Jard. Bot. Tiflis, Livr. 4, 1906, p. 1—9, Livr. 5, 1906, p. 1—16.

1666. Christ, D. H. Blattvariationen bei Sorbus terminalis Or. (Ber.
Schweiz. Bot. Ges., XVII, 1908, p. 258.)

Stockausschläge, die an die von Populus tremula gemahnen.

1667. Domin, Karl. Zwei neue Potentilla-F ormen. (Rep. spec. nov.,
V, 1908, p. 65—66.) N. A.

1668. Eggleston, W. W. The Crataegi of the North Eastern United
States and adjacent Canada. (Rhodora, X, 1908, p. 73—84.) N. A.

Verf. legt eingehend dar, welche Schwierigkeiten die Gattung in Amerika
bietet und wie unvollkommen unsere heutigen Kenntnisse noch sind. Er
reduziert eine grosse Zahl der neuen Arten auf Formen und klärt zum Teil
die alten von europäischen Forschern gegebenen Namen.

1669. Eimer, A. D. E. Synopsis of Rubus. (Leafl. Philipp. Bot., II,
1908, p. 445—462.) N. A.

Verf. gibt einen Schlüssel für die Bestimmung der Arten und Formen
der Philippinen.

1670. [Fedde, Fr.] Species novae ex: Lein an, Note sur plusieurs
especes nouvelles de Rosiers des environs de Paris. (Rep. spec.
nov., V, 1908, p. 47-48.)

Aus: Journ. de Physique, LXXXVI, 1818, p. 364—367.

1671. Figert, E. Beiträge zur Kenntnis der Brombeeren in
Schlesien. III. Rubus Gerhardtii n. sp. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908,
p. 197—198.) N. A.

1672. Focke, W. 0. Fruchtansatz bei Birnen [Pirus]. (Abh. Naturw.
Ver. Biemen, XIX, 1908, p. 558—559.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile des Just".

1673. Graebner, P. EinevernachlässigteWildrose: Rosa Freundiana.
(Gartenflora, LVII, 1908, p. 470—471, Abb.) N. A.

R. moschata X gällica.

1674. Grignan, (J. T. Le rosier Lady Gay et les hybrides de
Wichuraiana- (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 11 — 13, eine Textfigur, eine
bunte Tafel.)

Es handelt sich um Notizen über die Rose „Orimson Rambler" gekreuzt
mit Rosa Wichuraiana.

1675. Heineck. Einrichtungen zur Samen Verbreitung von Agri-
monia eupatoria L. (Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 40.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile des Just".

1676. Heinricher, E. Potentilla aurea L. mit zygomorphen oder auch
asymmetrischen Blüten und Vererbbarkeit dieser Eigentümlichkeit
(Zeitschr. Ferdinandeums, III. Folge, 52, 1908, p. 281—286, eine Taf.)

Verf. gibt im Bot. Centralbl., CX, 1909, p. 50 folgendes Autorenreferat :
Ein nächst Patsch bei Innsbruck gefundener Stock der genannten Potentilla
produzierte durch Jahre zygomorphe oder auch asymmetrische Blüten in

294 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [294

mannigfaltiger Weise. Vielfach kamen Blüten vor, die gestaltlich jener eines
Veilchen glichen.

Verf. stellte fest, dass auch die aus Samen des Stammstockes erzogene
Descendenz die gleichen Abweichungen zeigte. Er erwähnt der ausserordent-
lichen Verschiedenheiten in der Ausgestaltung zygomorpher Blüten bei Iris,
die er während seiner drei Decennien umfassenden Kulturen mit I. pallida
(Rückzüchtung der atavistischen Formen mit sechs Staubgefässen, eventuell
mit sechs bärtigen Perianthblättern [Abavia-Form usw.]) zu beachten Gelegenheit
hatte und bemerkt in einer Fussnote, dass die Versuche die Zygomorphie bei
Iris zu vererben negativ verliefen.

Was die veranlassenden Momente betrifft, die zur Entstehung der erörterten
Blütenanomalien bei Potentilla führten, so vermutet der Verf., dass es sich so
wie bei von Correns angeführten Fällen um Mittelbildungen zwischen weib-
lichen und zwitterigen Pflanzen handeln möge, wobei die durch Correns fest-
gestellten Correlationen zwischen dem Grad der Entwickelung der Staubblätter
und jenem der Blumenbläter auch bei Potentilla aurea zum Ausdruck kämen.
Doch wurde nicht geprüft, ob bei letzteren an den die kleineren Blumen-
blätter tragenden Flanken der Blüten tatsächlich auch eine Verkümmerung
der Glieder des Androeceums stattfindet.

1677. Heller, A. A. Is Spiraea pyramidata a Hybrid? (Muhlenbergia,
IV, 1908, p. 81.)

Rydbergs Ansicht, dass die Art eine Hybride von S- lucida X Menziesii
sei, ebenso Holzingers ähnliche Ansicht hält Verf. noch nicht für genügend be-
gründet.

1678. Holm, Th. Medicinal plants of North America. 19. Gillenia
trifoliata Mnch. (Mercks Rep., XVII. 1908, p. 234—236, 11 fig.)

Siehe „Anatomie".

1679. Huerre, R. La gomme d'Amandier. (Journ. Pharm, et Chim.,
6, XXVII, 1908, p. 561—569.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1680. Jaquet, F. Contribution ä Fetude de la flore fribourge-
oise, avec des descriptions d' Alchemilles et une clef analytique pour
les Alpinae fribourgeoises, parR. Buser. (Mem. Soc. fribourg. Sei. nat.,
II, 1907, I, p. 61—80.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1681. Keller, R. Synopsis der schweizerischen Alchemi'lla- Arten
und -Formen. (Mitt. naturw. Ges., Winterthur 1907/08, 7, p. 64—130.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1682. Kingsley, R. G. Roses and Rose-growing. London, 1908, 8°,
176 pp., 111.)

Nicht gesehen.

1683. Lambert, P. Rosa Wichuraiana C rep. und ihre Hybriden. (Mitt.
D. Dendrol. Ges.. XVII, 19U8, p. 134—136.)

Es handelt sich um Kreuzungen mit den verschiedensten Gartenrosen
(Tee-, Noisetterosen usw.).

1684. Leveille, H. Nouvelles Rosacees et Rubiacees chinoises.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 55—60.) N. A.

Neue Rosa, Riibus, Potentilla, Crataegus, Prunus-

295] Rosaceae. 295

1685. Ley, Angastin. The Villosae Sectio n of the genus Rosa. (Journ.
of Bot., XLVI, 1908, p. 328—329.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1686. Lindberg, Harald. Höstfärgning hos AlcJiimilla-bla,d. (Meddeland.
Soc. Fauna et Flora Fenn., XXXIII, 1906—1907, p. 33—34.)

Nicht gesehen.

1687. Mottet. S. Bubus trifidus. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 298—299,
fig. 111.)

Die Figur zeigt einen Blattzweig.

1688. Mottet, S. Amandier-Pecher et Bacarinier. (Revue Hortic,
LXXX, 1908, p. 64—65, fig. 23—24.)

Verf. berichtet über die Hybride zwischen Mandel (Prunus communis,
Amygdalus communis) und Pfirsich (Prunus persica), sowie über eine von Fabre
1894 gezogene Kreuzung dieser Hybride mit Prunus Myrabolana. Er erwähnt,
auch, dass Fabre eine Hybride erhalten habe „en fecondant un Pranier commun
[= Prunus domestica] par le Prunier Myrobolan".

1689. Pammel, L. H. Rocky Mountain rambles, I — IL (Horticulture,
VIII, 1908, p. 537, 1 fig. and p. 569, 1 fig.)]

Nicht gesehen.

1690. Pemberton. J. H. Roses; their history, development and
cultivation. London 1908, XXIV, 336 pp.

In erster Linie gärtnerisch.

1691. Prodinger, M. Das Periderm derRosaceen in systematischer
Beziehung. (Denkschr. Akad. Wiss. Wien, 1908, p. 328—383, 4 Taf.)

Siehe ausführliches Referat unter „Anatomie". Ist systematisch wichtig!

1692. Ragan, W. H. Nomenclature of the Pear. Catalogue-index of
the known varieties referred to in american publications from 1804 to 1907.
(Bull. Dept. Agric, Washington 1908, 268 pp.)

Für Obstziichter wichtige Zusammenstellung.

1693. Ramaley, Francis. New Colorado species of Crataegus. (Bot.
Gaz., XCVI, 1908, p. 381—384, 2 figs.) N. A.

Die Figuren zeigen Fruchtzweige von C. Doddsü und coloradoides.

1694. Ramaley, Francis and Dodds, G. S. Two imperfectly known
species of Crataegus. (Bull. Torr. Bot. Club, XXXV, 1908, p. 581—583.)

Betrifft: C. occidentalis und coloradensis.

1695. Rees, P. Note on an abnormal development on leaves of
Prunus cerasus. (Proc. roy. Soc. Victoria, XXI, 1908, p. 247 — 248, 1 pl.)

Siehe „Teratologie".

1696. Rose, J. N. Rosaceae novae mexicanae. (Rep. spec. nov., V,
1908, p. 155—156.)

Ex: Contr. Unit. St. Nat. Herb.. X, t. 3, 1906, p. 95—96.

1697. Rouy, G. Notices floristiques (suite). Rosa Lamberti Rouy,
hybride nouveau [R. stylosa X glaucaj. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908,
p. 708—709.) N. A.

1698. Rydberg, Per Axel. Rosaceae in North American Flora, XXII,
pt. 3, 1908, p. 239—292; pt. 4, p. 293—388 [noch nicht vollendet;. N. A.

Umfasst folgende Triben und Genera:
1. Neillieae: mit Opulaster in 13, darunter 4 neuen Arten.

296 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [296

2. Spiraeae: mit Spiraea mit 22 Arten (7 neu); Petrophytum mit 5 Arten
(3 neu, bzw. neue Kombinationen); Kelseya mit 1 Art; Luetkea mit 1 Art;
Äruncus mit 5 Arten (4 neu).

3. Sorbarieae: mit Schizonotus mit 1 Art; Chamaebatiaria mit 2 Arten (1 neu);
Porteranthus Britt. (= Gillenia Mnch.) mit 2 Arten.

4. Quillajeae: mit Lindleyella Rydb. (= Lindleya H. ß. K.) mit 2 Arten
(neu, bzw. neue Kombinationen) und Vauquelinia mit 4 Arten (1 neu).

5. Holodisceae : mit Sericotheca Raf. (= Holodiscus Max.) mit 14 Arten (sämt-
lich neu, bzw. neue Kombinationen).

6. Ulmarieae: mit Filipendula mit 6 Arten.

7. Potentilleae : mit Horkelia mit 37 Arten (7 neu); Horkeliella Rydb. n. gen.
(3 Arten); Ivesia T. et Gr. mit 24 Arten (1 neu, sonst viele neue Kom-
binationen); Purpusia mit 1 Art; Comarella mit 2 Arten; Stellariopsis mit
1 Art; Potentilla mit 176 Arten (44 neu); Argentina mit 8 Arten (4 neu);
Comarum mit 1 Art; Duchesnea mit 1 Art: Fragaria mit 27 Arten (2 neu);
Sibbaldia mit 1 Art; Sibbaldiopsis mit 1 Art; Dasyphora mit 1 Art; Drymo-
callis mit 28 Arten (14 neu); ChamaerJtodos mit 1 Art.

8. Alchemilleae : mit Alchemilla 5 Arten; Aphanes mit 5 Arten (4 neu); Lache-
milla (Focke) Rydb. mit 14 Arten (neue Kombinationen); Zygalchemilla
Rydb. n. gen. mit 1 Art.

9. Sanguisorbeae: Sanguisorba mit 5 Arten und Poteridium mit 2 Arten.

1699. Rydberg, Per Axel. Notes on Bosaceae — 1. (Bull. Torr. Bot.
Club, XXXV, 1908, p. 535-542.)

Verf. gibt ergänzende Bemerkungen zu seiner Bearbeitung der Familie
in „The North American Flora, XXII". Er begründet einige Namensänderungen,
zitiert mehr Exsiccaten usw. Die behandelten Genera sind: Opulaster Medic.
Spiraea, Petrophytum, Kelseya, Luetkea, Aruncus.

1700. Sargent, Charles Spragne. Crataegus in Missouri. (Rep. Miss.
Bot. Gard., XIX, 1908, p. 35—126.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1701. Sargent, Charles Sprague. Notes on a collection of Crataegus
made by Mr. G. D. Cornell in the neighborhood of Cooper's Plain.s,
Steuben Country, N. Y. (N. Y. State Mus. Bull., CXX, 1908, p. 84—114.)

Siehe „Index nov. gen. et spec". N. A.

1702. Sargent, Charles Spragne. Some additions to the Crataegus
flora of western New York. (N. Y. State Mus. Bull., CXX, 1908, p. 26
bis 83.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie".

1703. Sargent, Charles Spragne. New York speciesof Crataegus from
various localities. (N. Y. State Mus. Bull., CXX, 1908, p. 115—130.)

Siehe „Index nov. gen. et spec." und „Pflanzengeographie". N. A.

1704. Schneider, C. K. Hesperomelides andinae. (Engl. Bot. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 85—88.) N. A.

Neue Arten von Hesperomeles.

1705. Schnetz, Jos. Mehrere neue Varietäten des Genus Rosa.
(Mitt. Bayr. Bot. Ges., II, No. 6, 1908, p. 93-95.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec." und Fedde, Rep. spec. nov.

1706. Schnetz, Jos. Zur Rosenflora von Münnerstadt. (Mitt. Bayr.
Bot. Ges., II, No. 6, 1908, p. 112—122, 130—134.) N. A.

Siehe „Index nov. spec", „Fedde, Rep. spec. nov." u. „Pflanzengeographie".

297] Rosaceae. 297

1707. Seyot, P. Etudes morphologiques et physiologiques sur
le Cerisier. These, Paris 1908, 186 pp., 58 fig.

Siehe „Anatomie" und „Physiologie".

1708. Sjaroff, 6. Die Rosenkultur und Rosenölindustrie in
Bulgarien. Leipzig 1907, -8», 143 pp.

Nicht gesehen.

1709. Spribille, F. Rubus Pfuhlianus mh. nov. sp. (Zeitschr. d. Naturw.
Abt. naturw. Ver. Posen, XV, 1908, p. 20—23.) N. A.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1710. Sartre, H. Sur quelques Rubus peu connus de la flore
francaise. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 172—180, 215—219.) N. A.

1711. Snrtre, H. Rubi Europae vel Monographia iconibus illu-
strata Ruborum Europae. Toulouse, H. Sudre [12, Rue Andre Delieux],
1908, 4<>, fasc. 1, p. 1—40, tab. I— XLI. N. A.

In diesem grossangelegten Werke bespricht Verf. zunächst die Not-
wendigkeit einer Monographie der europäischen Rubus-Formen und in welcher
Weise er sich für eine solche Arbeit vorbereitet hat.

Dann beginnt er mit dem Subg. EiCbatus Focke und erläutert zunächst
die Differentialmerkmale der Formen, worauf er die Wahl der Hauptarten be-
spricht. Auch über den Ursprung der Species sagt er Näheres, ebenso über
die Hybriden.

Eine Aufzählung der Exsiccatensammlungen und eine Bibliographie
schliessen den allgemeinen Teil.

Im speziellen systematischen Teil umgrenzt er zunächst die Subgenera,
deren erstes Eubatus 110 Arten umfasst, wogegen Idaeobatus und Chamaemorus
nur je eine und Cyclactis 2 enthalten.

Das Subg. Eubatus gliedert er dann wie folgt:

A. Homalacanthi Dumort. Bull. Soc. bot. Belg., 1863, p. 220; N. Boul.
Bull. Soc. Bot. France, XLII, p. 393; ß. homeacanthi Bouvet Rub. Anjou (1889),
p. 44. — Aculei turionum aequales vel subaequales, compressi, ad angulos
dispositi; glandulae stipitatae nullae vel rarae.

B. Heteracanthi Dumort., 1. c. (emend.); N. Boul. I.e. — Aculei turionum
vulgo inaequalissimi; glandulae stipitatae plus minus frequentes.

A. Homalacanthi Dumort.

Subsectio I. Suberecti P.-J. Müll, in Flora (1885), p. 129; N. Boul.
Bull. Soc. Bot. France, XLII, p. 394; Focke Syn., p. 103; ap. Asch, et Gr.,
1. c. ex pte. — Turiones suberecti, apice arcuati, angulati, glabri; folia
plerumque subtus viridia, interdum cinereo-tomentosa; petioli supra saepe
canaliculati ; inflorescentiae pauciflorae, subracemosae ; sepala externe viridia,
tomentosa-marginata; coneeptus praecox. — Rubi plerumque eglandulosi. -
Crescunt in locis montosis, ad sepes, silvarum margines et profluentum ripas.
— No. 1—7.

Sectio II. Silvatici P.-J. Müll., 1. c, p. 142; N. Boul. 1. c, p. 395. -
Turiones arcuato-procumbentes glabri, vel pilosi, vulgo angulati autumno
saepe apice radicantes; folia subtus viridia vel cinereo-tomentosa; inflores-
centiae compositae vel superne racemosae, apicem versus decrescentes; sepala
externe cinereo-tomentosa, raro viridia. Rubi saepe sparsim glandulosi. —
Crescunt ad nemores et profluentum ripas. — No. 8 — 48.

Sectio III. Discolores P.-J. Müll., 1. c, p. 133; N. Boul. 1. c, p. 395. —
Turiones arcuato-procumbentes, glabri vel pilosi, angulati, aculeis aequalibus

298 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [298

instructi, autumno apice radicantes: folia subtus albo-tomentosa: inflorescentiae
compositae, apicem versus decrescentes; sepala externe tomentosa, in fructu
reflexa. Rubi eglandulosi scandentes. — Crescunt in locis apertis, ad sepes. —
No. 49-59.

B. Heteracanthi Dumort.

Sectio IV. Appendieulati Gen. 1er Suppl. Ess. mon. (1873): Sud. Rub.
Pyr., p. 6; R. spectabiles et R. glandulosi P.-J. Müll., 1. c. p. 149, 163. —
Turiones arcuato-procumbentes vel prostrati, plus minus glandulosi, angulati
vel teretes: folia ternata vel quinata, subtus viridia vel canescentia: stipulae
lineares vel lineari-lanceolatae: inflorescentiae compositae vel apice racemosae,
glandulis stipitatis munitae: sepala saepe appendiculata: drupeolae numerosae.
— Crescunt in locis montosis, ad sepes, nemores et Silvas. — No. 60 — 109.

Sectio V. Triviales P.-J. Müll., 1. c, p. 176 (1858); N. Boul. 1. c, p. 395;
R. corylifolius Focke, N. V. Bremen, I, p. 277 (1868): Syn., 79, p. 387; ap. Asch.
et Gr., 1. c, p. 624: R. glaucobatus Bumort. (1863). — Turiones prostrati vel
arcuato-procumbentes, vulgo glandulosi, saepe pruinosi, glabri vel sparsim
pilosi, aculeis vectis muniti: folia utrinque viridia vel subtus canescentia;
foliola lata, saepe marginibus sese tegentia, infima brevissime petiolulata: stipulae
lanceolatae; vel linearilanceolatae : inflorescentiae abbreviata, ramuli saepe sub-
corymbosi: petala lata: drupeolae magnae: fructus saepe imperfecti. Rubi
sarmentosi, praecoces. — Crescunt in dumetis, sepibus, ad margines agroium
et viarum. — No. 110.

1712. Tnzson, J. Systematische Gliederung und Verbreitung
der Potentilla rupestris. (Növ. Közl., VII, 1908. p. 207—218, 2 Textf., ungarisch
deutsches Resümee im Beibl., p. [341 — [3S].) N. A.

Verf. schickt seinen Untersuchungen Darlegungen über seine Auffassung
des Artbegriffes und dessen Gliederung voraus. Man vergleiche die Gliederung
der Formen der P. rupestris im Original. Er sagt dazu noch folgendes: Die
Verteilung der einzelnen Formen von P. rupestris in Europa lässt interessante
und wichtige Schlussfolgerungen zu. Wir sehen nämlich, dass var. gracilis,
die allem Anscheine nach die Stammform der Art bildet, in Mitteleuropa auf
unverhältnismässig grosse Gebiete ausgebreitet ist, und zwar kommt sie haupt-
sächlich auf solchen Standorten vor, woraus auf einen borealen Charakter der
Stammform geschlossen werden kann. Um dieses Gebiet herum reihen sich
gleichsam kranzförmig, wenn auch nicht ohne Unterbrechungen, die ver-
schiedenen anderen Formen an. Und zwar von Norden ausgehend ist auf der
Skandinavischen Halbinsel, in Spanien und Frankreich, sowie im südwestlichen
Teil der Schweiz die var. villosa- im Süden auf Korsika und Sardinien die f.
pygmaea; in Südungarn, sowie in den Gebirgen der Balkanhalbinsel bis Klein-
asien die var. ßenitzkyi mit ihren abwechselungsreichen Formen und die var.
strigosa, in Kleinasien auch die var. orientalis und f. Boissieri zu finden. Somit
sind die von der Stammform abweichenden Formen sämtlich auf die Grenzen
des Gebietes der Stammform verteilt und aller Wahrscheinlichkeit nach sind
sie auch dort entstanden. Dieser Umstand lässt darauf schliessen, dass die
Varietäten und Formen vorzüglich an den Grenzen des optimalen Ver-
breitungsgebietes der Stammform zur Geltung kommen und sich aufrecht er-
halten als charakteristische Formen der betreffenden Gebietsteile.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1713. W. Srubby Spiraeas. (Gard. Chron., 3. ser.. XLIII, 1908, p. 397,
Fig. 178—180, 415, Fig. "l 84— 186.)

299] Rosaceae. 299

Die Figuren zeigen Blütenzweige von S. Aitchisoni, argnta, bracteata,
Lindleyana, japonica Bumalda, salicifolia.

1714. Wein, K. Rosa glaaca Vi 1 1. var. wippraensis m. (Allg. Bot.
Zeitschr., XIV, 1908, p. 5.) N. A.

1715. Westerlund, Carl Gustaf. Neue schwedische Formen von
Alcliemilla vulgaris. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 310 — 311.)

Ex: Redog. f. Allm. Lärov. i Norrk. och Söderk., 1906/07 (1907), 31 pp.

1716. Wolf, Theodor. Monographie der Gattung Potentüla. (Bibl.
Bot., Heft 71, 1908, VI u. 714 pp., 2 Karten, 20 Taf.) N. A.

Diese grossangelegte wertvolle Monographie gliedert sich in zwei Teile.
Der erste bringt allgemeines über die Gattung und Grundzüge des Systems.

Nach einer kurzen Einleitung geht Verf. ausführlich auf das Geschicht-
liche und die Literatur ein, wobei er mit Linne (1753) beginnt. Hierbei
werden besonders die bekannten Arbeiten von Chr. Lehmann und A. Zimmeter
gewürdigt.

Die vom Verf. gegebene Begrenzung der Gattung und ihre Stellung in
der Familie erhellt aus folgendem Schlüssel:

I. Früchten 5 — oo (selten 3 — 6): Staubfäden 5— oo.

A. Staubfäden 10 — oo; Früchtchen meist oo. (Bei Potentüla pentaudra
Staubf. nur 5, aber Früchtch. oo.)

1. Kelch flach ausgebreitet, teller- oder schüsseiförmig; Staubf. nahe
am Fuss des Fruchtträgers stehend, auf dem mehr oder weniger verdickten
Rand einer Honigscheibe.

a) Fruchtträger bei der Reife fleischig, sich vom Kelch ablösend und
abfallend. — Fragaria.

b) Fruchtträger bei der Reife trocken oder schwammig, selten fleischig,
aber sich nicht ablösend, sondern bleibend. — Potentüla.

2. Kelch trichter- oder krugförmig, ohne verdickte Honigscheibe 5 Staub-
fäden weit vom Fuss des Fruchtträgers abgerückt. — Horkelia.

B. Staubfäden 5 (sehr selten 10); Früchtchen 5 — 15. (Die wenigen
Potentillen mit nur 5 Staubfäden haben stets sehr zahlreiche Früchtchen.)

1. Aussenkelch gut ausgebildet, Kelch wie bei Potentüla. — Sibbaldia.

2. Aussenkelch verkümmert, durch lange Borsten repräsentiert; Kelch
wie bei Horkelia. — Chamaerhodos.

II. Früchtchen 2; Staubfäden 5: Kelch trichterförmig mit flachem Rand. —
Comarella.

III. Früchtchen 1: Staubfäden 15; Antherenfächer sich oben mit Pore
öffnend; Kelch trichterförmig, wie bei Horkelia. — Stellariopsis.

Dann folgt ein Abschnitt über Morphologie und Biologie, wobei auch
die Bastarde besprochen werden.

Hinsichtlich der geographischen Verbreitung und Phylogenie ist anzu-
nehmen, „dass die Gattung nicht auf der Südhalbkugel und vor allem nicht
in den heissen Gegenden der Tropen, sondern im gemässigten und kalten
Norden entstanden ist und ihre Hauptentwickelung durchgemacht hat. Das
tertiäre Circumpolarland mag die Heimat der Urpotentillen gewesen sein, und
schon in der arktisch-tertiären Flora wird sich die Gattung in mehrere Arten-
gruppen gespalten haben, von denen einige Reste bis heute erhalten sind".
Von den 305 Arten befinden sich in Asien allein 126, in Europa allein 54 und
in Amerika allein 54, die übrigen gehören mehreren Gebieten zugleich an.

300 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [300

Verf. erörtert dann: Artbegriff, Wertstufen, Nomenclatur, Synonymik,
Zitate. Er benennt seine Subspecies (die kleinen Arten) binär, im übrigen
folgt er den Wiener Regeln.

Beachtenswert sind die „Winke für das Studium und das Bestimmen der
Potentillen".

Der vorletzte Abschnitt betrifft „das System, Sektionen, Subsektionen,
Gruppen", wobei die für die Subsektionen so wichtigen Griffelformen genau be-
schrieben werden.

Nun folgt als letztes Kapitel des ersten Teiles die „natürliche An-
ordnung der Gruppen und Schlüssel zu deren Bestimmung". Bei der Wichtig-
keit der Arbeit und der Seltenheit des teueren Werkes halten wir es für ge-
boten, im folgenden den lateinischen Schlüssel für die Gruppen (grex) wieder-
zugeben:

Sectio I. Potentülae trichocarpae.

Frutices, suffrutices vel herbae, perennes, receptaculo plerumque dense-
et longe-hirsuto, carpellis aut omnino, aut saltem ad umbilicum pilosis (exceptis
P. palustri, P. elatiori et pro parte P. bifurca): stylis vel clavae-formibus
(Rhopalostylae), vel longe-filiformibus (Nematostylae).

Subsectio A. Rhopalostylae.

Frutices et suffrutices subdioici, i. e. flores androdynamicos et gyno-
dynamicos producentes, carpellis rhopalostylis, i. e. stylis clavaeformibus e
basi tenui versus apicem sensim valde dilatatis vel sab stigmate amplo con-
strictis, longitudine carpella matura subaequantibus; foliis pinnatis, stipulis
vaginantibus scariosis, petalis rotundatis integris.

a) Frutices et fruticuli ramis lignosis persistentibus, foliis articulatis,
carpellis dense pilosis, stylo subbasali. — Grex 1. Fruticosae.

b) Suffrutices humiles caulibus et ramis subterraneis stoloniformibus
persistentibus longe lateque repentibus, supraterraneis hieme fere usque ad
basin marcescentibus, foliis non articulatis, carpellis junioribus ad umbilicum
(rarius ad apicem quoque) parce pilosis, maturis glabris, stylo laterali. —
Grex 2. Bifurcae.

Subsectio B. Nematostylae.

Suffrutices vel herbae perennes carpellis nematostylis, i. e. stylis fili-
formibus a basi ad apicem usque aeque-tenuibus (rarissime in medio-aliquan-
tulum incrassatis), quam carpella matura plerumque multo longioribus, subbasa-
libus, lateralibus vel subterminalibus.

Series a) Suffruliculosae.

Suffruticuli caulibus supraterraneis solummodo ad basin lignosis caeterum
hieme marcescentibus, caulibus floriferis terminalibus (excepta P. biflora), i. e.
ex apice axis determinati nascentibus (nulla remanente rosula centrali) ; foliis
pinnatis vel ternatis.

«) Folia aut pinnata, bijuga, foliolisjugi superioris decurrentibus et saepe
cum foliolo impari supremo confluentibus, illis jugi inferioribus oppositis sessi-
■ libus (non articulatis), — aut ternata (seu unijuga) foliolis articulatis (in una
sola specie).

§, Stylus lateralis, carpella omnino villosa, petala alba, non emarginata.
— Grex 3. Xylorrhizae.

§§. Stylus subterminalis, carpella ad umbilicum tantum pilosa, petala
flava profunde emarginata. — Grex 4. Biflorae-

301] Rosaceae. 301

tS) Folia inferiora irrregulariter pinnata, foliolis jam oppositis jam alter-
nantibus, vel ternata foliolo terminali plerumque petiolulato.

§. Stylus lateralis, folia inferiora irregulariter pinnata, petala atripurpurea
vel persicina (vel fere alba). — Grex 5. Palustres.

§§. Stylus subbasalis, folia omnia ternata, foliolis tridentatis, petala alba
vel lutea. — Grex 6. Tridentatae.

§§§. Stylus subterminalis, folia inferiora ternata vel pinnata intermixtis
ternatis, foliolis pluridentatis, terminali conspicue petiolulato: petala alba vel
lutea. — Grex 7. Eriocarpae.

Series b) Herbaceae.

Herbae perennes caulibus floriferis lateraliter ex axi indeterminato nas-
centibus. remanente gernma terminali sterili (rosula centrali); foliis ternatis
vel digitatis (nunquam pinnatis). Stylus subterminalis; petala plerumque alba
raro lutea.

«) Carpella omnino, vel saltem dorso aut apice, plus minusve dense
pilosa, interdum aetate glabrescentia.

§. Plantae eriotricbae, praesertim in pagina inferiore foliorum tomento
denso et insuper saepe pilis serieeis ineumbentibus obteetae; petala (alba vel
rubra) longe unguiculata spathulata. — Grex 8. Speciosae.

§§. Plantae orthotrichae tomento vero destitutae et pilis rectis vel
undulatis plus minusve dense obteetae.

* Planta omnis, vel saltem pagina inferior foliolorum pilis longis ineum-
bentibus argenteosericea: caules floriferi plerumque folia radicalia non vel
parum superantes.

f Petala alba vel rubra. — Grex 9. Kitidae.

ff Petala aurea. — Grex 10. Curvisetae-

** Planta plus minus patenter, raro subadpresse pilosa vel villosa;
foliola subtus plerumque viridia, nunquam dense argenteo-sericea. Caules
floriferi folia radicalia plerumque longe superantes.

f Foliola foliorum radicalium crassiuscula nervis validis, plerumque late
obovata, multidentata, dentibus patentibus; caules floriferi crassi, saepe rigidi,
floribus apice congestis. — Grex 11. Crassinerviae.

ff Foliola foliorum radicalium tenuia, nervis debilibus, anguste-oblongo-
vel oblongo-obovalis, versus apicem paueidentata, dentibus plerumque conni-
ventibus ; caules floriferi tenues, pauci- vel multiflori, floribus apice umbellato-
corymbosis. — Grex 12. Cauleseentes.

ß) Carpella ad umbilicum tantum pilosa, caeterum glabra. — Herbae
humiles, caulibus floriferis debilibus, paucifloris, folia radicalia vix superantibus
petalis albis emargiuatis. — Grex 13. Fragariastra.

Sectio II. Potentillae gymnocarpae.

Herbae perennes, raro biennes vel casualiter annuae, reeeptaculo plerum-
que breviter piloso aut rarius glabro, carpellis glabris, rarissime pilis sparsis
obsitis (atavismus ?), stylis aut fusiformibus (Closterostylae), aut basi coniformibus
(Conostylae), aut claviculiformibus (Gomphostylae), aut demum virguliformibus
(Leptostylae).

Subsectio A. Closterostylae.

Stylus subbasalis, fusiformis, versus basin et apicem sub stigmate dilatato
tenuis et in medio valde incrassatus (rarius non conspicue incrassatus) longi-
tudine carpelli maturi vel paulo longior: folia pinnata, nunquam tomentosa.

Die Subsektion besteht nur aus einer Gruppe. — Grex 14. Rupestres.

302 C1- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. 1 302

Subsectio B. Conostylae-

Stylus subterminalis, coniformis, i. e. basi vel parum supra basin plus
mirmsve incrassatus et inde versns apicem paulatim vel derepente tenuescens,
in parte inferiore saepissimae papillis obsitus, carpellum maturum longitudine
aut subaequans aut multo superans.

Series a) Eriotrichae.

Herbae praeter pilos rectos vel undulatos tomentum verum, pilis tener-
rimis ad modum lanae crispulis et dense intricatis consistens gerentes, imprimis
in pagina inferiore foliolorum; rarissime pilis glanduliferis praeditae. Tomentum
aliquando valde tenue et in quibusdam speciebus aut varietatibus nullum est,
quarum tarnen affinitas cum speciebus tomentosis plerumque faciliter dig-
nosciter.

a) Stylus brevis et sat crassus, carpello maturo vix longior; folia radi-
calia pinnata. Petala semper lutea. — Grex 15. Multifidae.

ß) Stylus supra basin breviter cnnicam tenuis et longe protractus, carpello
maturo multo (bis vel ter) longior; folia rad. pinnata vel digitata.

§. Petala semper lutea: folia radicalia digitata, vel pinnata, vel sub-
pinnata foliolis multifarie dentatis et incisis; folia caulina suprema et floralia
parum evoluta et parva (plerumque simplicia) carpophorum parvum et plerumque
oligocarpum. (Species quaedam sunt etomentosae vel fere etomentosae.) —
Grex 16. Graciles.

§§. Petala plerumque rubra raro lutea; folia radicalia 3 — 7nate digitata
(excepta P. Ehrenbergiana quae folia habet congeste pinnata seu subpinnata);
folia caulina et floralia plerumque evoluta et magna; foliola plerumque crassa,
nervosa, simpliciter dentata (nunquam profunde incisa); carpophorum magnum,
hemisphaericum vel conicum polycarpum. — Grex 17. Haematochroae.

y) Stylus brevis et sat crassus, carpello maturo non aut parum longior;
folia radicalia ternata vel digitata (solummodo in P. concinna var. divisa et in
P. äealbata foliola externa se separant aliquantulum ab internis, ut in speciebus
subpinnatis). Petala semper lutea.

§. Herbae humiles, caespitosae, caulibus decumbentibus vel ascendentibus
(raro erectis) paucifloris, praeter caules floriferos surculos steriles et rosulas
centrales emittentibus (axis indeterminatus): foliis radicalibus plerumque ter-
natis, rarius 5(-7) natim digitatis. — ■ Grex 18. Xiveae.

§§. Herbae plerumque elatae, caulibus erectis vel ascendentibus, multi-
floris tempore florendi surculis sterilibus nullis aut paucis praeditae (axis
determinatus; attamen confer subgregem Collinarum), foliis 5 — 7nate digitatis
(in P. dealbata quandoque subdigitatis). — Grex 19. Argenteae.

§§a. Herbae ut plurimum minus elatae quam Argenteae verae, saepe
surculis sterilibus et rosulis centralibus praeditae, habitu inter Argenteas et
Aureas vacillantes et probabiliter olim ex earum commixtione ortae ideoque
difficulter dignoscendae, in pagina inferiore foliorum plerumque tomento tenui
et canescenti (raro niveo), interdum nullo gaudentes, sed ejus loco vel super
tomentum saepissime pilis longis strigosis vestitae; Stylus haud raro non typice
coniformis, sed ad illum Gomphostylarum vergens. — Subgrex l'Ja. Collinae.

Series b) Orthotrichae.

Herbae semper tomento vero destitutae, solummodo pilos rectos vel
undulatos et insuper saepissime ,i;landulas sessiles vel stipitatas gerentes.

«) Stylus brevis et crassus, saepe papillosus, aliquando ad basin parum
crassior quam sub stigmate dilatato, plerumque carpello maturo brevior vel

303] Rosaceae. 303

aequilongus, solum in speciebu Grandiflorarum longius protractus, sed nunquam
ad duplicem carpelli longitudinem.

§. Folia radicalia pinnata, 3- multijuga. Herbae perennes saepe glandu-
losae, caulibus elatis rigidis plerumque paucifloris, foliis floralibus parvis et
plerumque simplicibus, quo charactere faciliter distinguunter a speciebus foliis
pinnatis Rivalium (§§§). — Grex 20. Tanaeetifoliae-

§§. Folia radicalia 5 — 7 ( — 9) nate digitata. Herbae perennes, saepe
glandulosae, caulibus elatis, rectis vel ascendentibus, ex apice axis determinati
nascentibus (surculis sterilibns tempore florendi nullis vel paucis); caules, rami,
pedunculi et petioli praeter pilos longiores indumentum brevissimum plus mi-
nusve densum gerunt, quod setulis rigidis horizontaliter patentibus constat, et
hanc gregem a sequentibus optime distinguit. — Grex 21. Mectae.

§§§. Folia radicalia pinnata, vel digitata, vel ternata. Herbae perennes,
vel biennes (casualiter annuae) caulibus in quibusdam speciebus ex apice axis
determinati, in aliis lateraliter ex axi indeterminato nascentibus; caules saepissime
a tertio inferiore vel a basi ramosi ; inflorescentia ut plurimum foliosa et
multiflora, ad formam racemoso-cymosam vergens; in foliis ternatis et quinatis
foliolum medium plerumque conspicue petiolulatum; pedicelli post anthesin
saepe recurvati, petala lutea, rarius alba, in speciebus (annuis et) biennibus
minuta et calycem non superantia (in speciebus perennibus majora); antherae
plerumque exiguae, subrotundae, didymae vel reniformes (raro ovatae); Stylus
brevis et crassus, subpapillosus et apice haud raro recurvatus, plerumque ex
ipsa basi coniformis, sed aliquando e basi breviter cuneata incrassatus (in tertio
inferiore) ideoque subfusiformis. — Grex 22. Rivales.

§§§§• Folia radicalia 3 — 7 ( — 9) nate digitata. Herbae perennes caulibus
elatis, lateraliter ex axi indeterminato nascentibus remanente gemma terminali
sterili (rosula centrali); caulis, rami, pedunculi et petioli praeter pilos longiores
pubem blandam subincumbentem gerentes, quo charactere duae greges se-
quentes faciliter distinguntur a grege Rectarum indumento brevisetuloso notata.
A Rivalibus quibusdam perennibus species huc spectantes eo discernuntor,
quod in eis nunquam tres aut plures notae pro istis indicatae concurrunt.

i: Stylus carpello maturo sesqui-longior, e basi incrassata sensim attenatus
usque ad Stigma vix dilatatum (solum in P. umbrosa latius); caules firmi, e
basi ascendente erecti, superne ramosi et plerumque pauciflon; pedicelli post
anthesin rigide erecti; folia rad. ternata vel quinata foliolis plerumque crassius-
culis et valde nervosis. — Grex 24. Grandiflorae.

* Stylus carpello maturo brevior vel subaequilongus, saepe papillosus,
stigmate plerumque satis dilatato; Caules et rami debiles, flexuosi, illi e basi
inclinata ascendentes, a medio vel tertio inferiore dichotome ramosi et multi-
flori; pedicelli tenues, post anthesin plerumque incurvati; folia rad. 5 — 9 nate
digitata foliolis plerumque tenuibus et parum nervosis. — Grex 25. Chrysanthae.

ß) Stylus supra basin incrassatam et breviter coniformem tenuis longissime
protractus et filiformis, carpello maturo duplo vel triplo longior. (Umnes species
huc pertinentes axi indeterminato gaudere videntur.)

§. Herbae perennes orbis veteris, plerumque humiles, foliis pinnatis, vel
5 nate digitatis, vel pinnato-digitatis (nunquam ternatis). - Grex 23. Persicae.

§§. Herbae perennes orbis novi (duae solum species crescunt in Sibiria
et in Japonia), plerumque sat humiles, foliis digitatis vel pinnatis.

* Folia radicalia coidenter pinnatae, 2-multijuga. Species habitu (et

304 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [304

forma quoque stylorum) quasdam species e grege Gracilium revocantes. —
Grex 26. Multijuga.

** Folia 3 — 7nate digitata, vel subdigitata (foliolis externis quandoque
ab internis paulo remotis). Species habitu ad gregrem Aurearum accedunt, a
qua tarnen forma stylorum longe discrepant. — Grex 27. Ranunculoides-

Subsectio C. Gomphostylae.

Stylus subterminalis rarius lateralis, claviculiformis, i. e. e basi tenui
parum incrassatus et aequalis, demum sub stigmate modice intumescens,
carpello maturo aequilongus vel subbrevior. Herbae pei'ennes axi indeterminato
gaudentes, orthotrichae.

a) Caules floriferi folia radicalia non vel parum superantes, pluriflori;
inflorescentia corymbosa vel corymboso-cymosa, foliis floralibus parvis et
reductis.

a) Polia radicalia 3 — 9 nate digitata, in P. subpalmata subpinnata; antherae
parvae, subrotundae vel breviter ovatae, basi filamentis affixae. — Grex 28.
Aureae-

ß) Folia rad. pinnata, 2 — 4 juga, foliolis tribus superioribus deorsum
sequentibus manifeste majoribus, raro ternata (unijuga); antherae sat magnae,
bis vel ter longiores quam latae, dorso supra basin filamentis affixae. — Grex
29. Fragarioides.

b) Caules floriferi folia radicalia longe superantes, simplices, vel dicho-
tome ramosi, foliosi, prostrati vel sarmentosi et reptantes saepe ad genicula
radicantes (in P. Tonnentüla suberecti vel ascendentes); flores aut solitarii
axillares vel oppositifolii, aut inflorescentiam pseudo-corymbosam formantes;
folia rad. 3 — Tnate digitata, floralia bene evoluta. — Grex 30. Tormentillae.

Subsectio D. Leptostylae.

Stylus lateralis, virguliformis (breviter filiformis) et per totum aeque-
tenuis, carpello maturo brevior vel aequilongus. Herbae perennes, partim
eriotrichae, partim orthotrichae, axi indeterminato, praeditae, foliis pinnatis,
caulibus prostratis et radicantibus floribus solitariis aut erectis et plurifloris.

Die Subsection besteht nur aus einer Gruppe. — Grex 31. Anserinae.

Der zweite Teil bringt dann die „Beschreibung der einzelnen Species
und Schlüssel zu deren Bestimmung".

Man vergleiche den „Index nov. gen. et spec". Verf. beschreibt sehr
eingehend die Arten und Formen und lässt einen „Herbarkatalog" und ein
alphabetisches Register folgen.

1717. Wolf, Th. Über die neue „Monographie der Gattung Poten-
tilla". (Sitzber. u. Abh. natw. Ges. „Isis" Dresden, 1908, p. 52—62, eine Abb.)

Siehe Ref. 1716.

1718. Wolley-Dod, A. H. The subsection Eu-caninae of the genus
Rosa. (Journ. of Bot., XLVI, 1908, Suppl. 108 pp.)

Sehr eingehende Darstellung.

1719. Zeiner-Lassen, A. Rosen, dens Historie, Udbredelse og Kultur.
2. udg. Kjoebenhavn 1908, 8°, 144 pp.

Nicht gesehen.

Rubiaceae.

Neue Tafeln:
Adina globiflora Sal. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest Japon., II, 1908, tab. 72,

fig. 11—20.
Coptosapelta Hammii Val. in Icon. Bogor., III, 1908, tab. CCLXVII.

305] Kubiaceae. 305

Gardenia florida L. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest Japon., II, 1908, tab. 72,

fig. 1—10.
G. subacaulis Stapf et Hutch. in Journ. Linn. Soc. Lond., XXXVIII, 3908,

pl. 37.
Lucinaea billitonensis Val. in Icon. Bogor., III, 1908, tab. CCLXVIII.
Morinda bracteata Roxb. var. celebica Miq. und var. latifolia Val. in Icon. Bogor..

III, 1908, tab. CCLXIX.
Mycetia javanica Korth. und var. anthotricha Val. in Icon. Bogor., III, 1908,

tab. CCLXX.
Mussaenda erythrophylla Schum. et Thonner in Bot. Mag., CXXXIV, 1908,

tab. 8222.
Pavetta lasiorrhachis K. Schum. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908,

tab. 144.
Psychotria bacteriophila Val. Icon. Bogor., III, 1908, tab. CCLXXI.
P. montana Val. und var. leiopyrena Val., 1. c, tab. CCLXXII.
Randia insignis Val., 1. c, tab. CCLXXIII.
Rubia transalaica O. et B. Fedtsch. in Act. Hort. Petrop., XXVIII, 1908, tab. IL

1720. Britton, Nathaniel Lord. The genus Emodea Swartz, a study
of species and races. (Bull. Torr. Bot. Club. XXXV, 1908, p. 203—208.)

N. A.

Verf. beschreibt die 6 Arten und gibt folgenden Schlüssel: Calyx-lobes
varying from nearly as long as the fruit to longer.

Leaves lanceolate to oblong, oblanceolate or oblong-lanceolate, 5 to
10 mm wide.

Corolla white to pink: leaves relatively broad; plant mostly of coats.

1. E. littoralis-

Corolla red to scarlet; leaves relatively narrow; plant mostly of
pine-lands.

2. E- angusta.

Leaves narrowly linear, 1 — 3 mm wide.

3. E. Cokeri.

Calyx-lobes much shorter than the fruit. Leaves oblong-lanceo-
lata, 6 — 8 mm wide.

4. E. Millspaughü-

Leaves narrowly linear to linear-oblanceolate, 1—3 mm wide.
Leaves bristle-tipped; calyx-lobes half as long as the fruit.

5. E. Taylori.

Leaves merely mucronate; calyx-lobes one third as long as
the fruit.

6. E. Nashii.

1721. Cockayne, L. On a specific case of leaf-variation in Co-
prosma baueri. (Trans. New Zeal. Inst., XXXVIII, 1905 [1906], p. 341—345,
pl. LH.)

Über die LTnterschiede von Schattenblättern und solche von Strand-
pflanzen, die gerollt sind.

1722. Fonillade, A. Note sur deux formes du XGalium ochroleucum
Wolf [G. erectum X verum]. (Bull. Soc. region. Bot. Deux-Sevres, XIX, 1907
[1908], p. 263—267.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 27 8. 10.] 20

306 ^- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [306

1723. Gorter, K. Beiträge zur Kenntnis des Kaffees, IL
(J. Liebigs Ann. Chem., CCCLIX, 1908, p. 217-242.)

Siehe „Chem. Physiologie".

1724. Krause, K. Rubiaceae in Ule, Beitr. z. Flora der Hylaea. (Verh.
Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. 96—119, eine Fig.) N. A.

Die Abbildung zeigt Details von Dolichodelphys chlorocrater K. Seh. et
Krause.

1723. Malinowski, Edmond. Une nouvelle espece de Crucianella
[kurdistanica] du Kurdistan. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 623
bis 624, Fig.) N. A.

1726. Pierre. Pausinystalia nov. gen. Rubiacearum, t ribus Cinchonearum.
(Rep. spec. nov., V, 1908, p. 309.)

Ex: Act. Soc. Linn. Bordeaux, LXI, 1906, p. 129—132.

1727. Stapf, Otto and Hutchinson, J. Gardenia Thunbergia and its Allies.
(Journ. Linn. Soc. Lond., XXXVIII, 1908, p. 417—428, pl. 37.) N. A.

Verff. geben folgenden Schlüssel, dem sie die Beschreibung der neuen
und minder bekannten Arten folgen lassen.
Subacaulis; flos solitarius cum foliis in rosulam dispositis.

Folia scabrida; corollae tubus 4 — 8 cm longus .... 1. subacaulis.
Folia laevia; corollae tubus circiter 3,5 cm logus ... 2. Tinneae.
Arbores vel frutices.
Corolla 8 — 9-mera.

Ovarium 9-merum.
Calycis tubus ultra 5 mm longus, lobis oblongis ... 3. Jovis-tonantis-
Calycis tubus infra 3 mm longus, lobis subfilifonnibus

demum reflexis 4. Volkensit.

Ovarium 3 — 6-merum.

Calycis lobi spatulati, infundibuliformes 5. Thunbergia.

Ualycis lobi oblongi (non spatulati).

Calycis lobi lateraliter complanati. equitantes et

decurrentes 6. Saundersiae.

Calycis lobi dorsaliter complanati, non decurrentes . 7. asperula-
Corolla 6 — 7-mera (raro 9-mera in G- spathulifdia).
Calycis tubus ultra loborum insertiones produetus . 8. comuta.
Calycis tubus non ultra loborum insertiones pro-
duetus.
Calycis lobi non filiformes; calyx et corolla fere

glabra vel breviter pubescentia.
Folia laevia.
Folia late obovato-euneata, nervis lateralibus + fki-

bellatis 9. spathulifolia.

Folia oblanceolata ad obovata, nervis lateralibus magis

patulis quam in praecedente.
Folia arete reticulata; fruetus ellipsoideus, saepe + ob-
tusus vel utrique angustatus 10. ternifolia-

Folia laxe reticulata; fruetus oblongo-ellipsoideus +

stipitatus 11. lutea.

Folia scabrida.

Corollae tubus quam lobi vix duplo longior . . . 12. triacantJia.

3071 Rubiaceae. Rutaceae. 307

Corollae tubus quam lobi triplo longior 13. Goetzei.

Calyx dentes filiformes; calyx et corolla magis minusve
tomentosa.
Folia scabrida; fructus 3 — i cm longus, multicostatus 14. Aqualla.
Folia laevia; fructus 6 — 9 cm longus, ecostatus . . 15. ernbescens.
1T2S. Tisza, E. Über die Bestandteile der Soranjee [Morinda
ciirifoliaj. Diss., Budapest 1908, 8° 71 pp., 3 Taf.
Siehe „Ckem. Physiologie".

1729. Tiunnann, 0. Zur Anatomie des Holzes und der Wurzel
von Morinda citrifolia Li. mit besonderer Berücksichtigung der mikro-
chemischen Verhältnisse. (Pharmac. Zentralhalle, 1908, p. 1013 — 1017.
Fig. 1-3.)

Siehe „Anatomie".

1730. Valeton, Th. Lindeniopsis. Een nieuw subgenus der Rubiaceae.
(Verslag van de Gewone Vergad. Wis-en Natuurk. Afd. kgl. Akad. v. Wetensch.
Amsterdam, XVII, 1908, p. 120—126.) N. A.

Lindeniopsis bildet eine Untergattung von Coptosapelta, die sich in zwei
Subgenera gliedert: Eucoptosapelta mit C. flavescens Korth. und C Griffithi
Hook., sowie Lindeniopsis mit der einzigen Art C. Hammii Val.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1731. Zahn. E. Über die Abstammung des „liberischen Kaff ees"
(Coffea liberica Hiern.). (Gartenfl., LVII, 1908, p. 273—275.)

Auszug aus einem Artikel von Chevalier in Journ. Agricult. tropi-
cale 1908.

Rutaceae.

Neue Tafeln:

Agatliosma ciliata Link in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 74.
Boronia heterophylla in Rev. Hortic, LXXX, 1908, tab. col. ad p. 36, fig. O.
JEvodia meliaefolia Bnth. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908,

tab. 34, fig. 1—9.
Haploplnßlum megalanthum Bornm. in Mitt. Thür. Bot. Ver., V, XXXIV", 1908,

fig. 3 der Tafel.
Melicope nocaguineensis Val. in Icon. Bogor., III, 1908, tab. OCLXXIV.
Orixa japonica Thbg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908, tab. 34,

fig. 18—25.
Phellodendron amurense Rupr. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908,

tab. 33, fig. 16-33.
Skimmia japonica Thbg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908,

tab. 34, fig. 10—17.
Zanthoxylum alatuin Roxb. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908,

tab. 34, fig. 26-30.
Z. schinifolium P. et Z., 1. c, tab. 33, fig. 1 — 15.

1732. Dode, L.-A. Revue des especes du continent asiatique de
la section Tetradium et de la section nouvelle Evodioceras du genre
Evodia. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 701—708.) N. A.

Siehe „Index nov. gen. et spec".

1733. Longo, B. La poliembrionia nella Xanthoxylum Bungei PI an eh.
senza f econdazione. (Bull. Soc. Bot. It., 1908, p. 113—115.)

Im Botanischen Garten zu Siena gedeihen zwei weibliche Exemplare
von Xanthoxylum Bungei ohne Spur von männlichen Blüten auf ihnen und

20*

308 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. 1 308

auch in der Umgebung keine männlichen Pflanzen dieser Art. Die Pflanzen
entwickeln aber nichtsdestoweniger Früchte und darin keimfähige Samen. Die
Samen enthalten je zwei Embryone, von denen meistens der eine abortiert,
doch bemerkte Verf. in zwei Fällen, dass aus einem Samen je zwei Keim-
pflänzchen hervorgingen.

Die anatomische Untersuchung der Blütenverhältnisse legte klar, dass
es sich hier um einen Fall von nicht sexueller Polyembryonie handle: nicht
um Parthenogenese, sondern um vegetative Entwickelung von Adventiv-
embryonen aus dem Sporophyten, welcher in Form einer Haube oberhalb des
Embryosackes stark entwickelt ist. Solla.

1734. Riccobono, V. Intorno ad alcuni agrumi rari o nuovi. (Boll.
E. Orto bot. e Giard. colon. Palermo, VI, 1907, p. 34 — 37, mit einer Tafel.)

Im Kulturgarten Ingegnoli (Mailand) reifen Citrus Margarita Lour. und
C. japonica Thunbg., deren Kultur auch für Sizilien empfohlen wird. Erstere
Art wird, entgegen Miquel (1865), als selbständig angesprochen, ausführlich
beschrieben und als schöne Zierpflanze dargestellt. Es folgt auch die Be-
schreibung von C. japonica, deren Kultur der Verwertung der Früchte wegen
zu verbreiten wäre.

In dem Privatgarten Whitaker (Palermo) gedeiht eine Mandarinenabart
mit birnförmigen Früchten, welche Verf. als C- deliciosa Ten. n. var. Mandei
Piiccob. bezeichnet und im Bilde vorführt. Solla.

1735. Spragne, T. A. Pilocarpus racemosus. (Kew Bullet., 1908, p. 310
bis 311.)

Kurze Beschreibung.

1736. Tommasini, C. II Bergamotto: Citrus Bcrgamia communis.
(Italia agric, XLV, 1908, p. 228—239, 1 tav.)

1737. Wilson, Percy. Notes on Rutaceae. (Torreya, VIII, 1908, p. 138
bis 139.) N. A.

Betrifft Xanthoxylum Nashii n. sp. und Amyris texana (Buckl.) Wils.
comb. nov.

Sabiaceae.
Neue Tafeln:

Meliosma myriantha S. et Z. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908,

tab. 46, fig. 12—23.
M. tenuis Max., 1. c, fig. 1 — 11.

1738. Leeomte, H. Sabiaceae in Fl. gen. de l'Indo-Chine, II, 1908, p. 1
bis 6, fig. 1.

Vertreter von Sabia und Meliosma.

1739. Le Renard, Alfr. Structure interne du petiole dans le
Genre Meliosma (Sabiacees). (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 540
bis 544.)

Vgl. hierzu die folgende Arbeit.

1740. Le Renard, Alfr. Recherches anatomiques sur la tige et la
feuille des Sabiacees. (Journ. de Bot., 2. ser., I [XXI], 1908, p. 290— 332.)

Siehe „Anatomie".

Salicaeeae.

Neue Tafeln:
Salix Safsaf Forst, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 28.

3091 Sabiaceae. Salicaceae. 309

Salix repens L. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 2 B (Vege-
tationsbild).

S. caprea L. in Sbirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, II, 1908, tab. 8, fig. 12
bis 22.

S. daphnoides Vill., 1. c, tab. 10, fig. 13—22.

S. opaca Anders., 1. c, tab. 9, fig. 1—10.

S. purpnrea L.. 1. c, tab. 7, fig. 10—18.

S. purpurea \*ar. multinervis Matsum., 1. c, tab. 8, fig. 1 — 11.

S. triandra var. nipponica Fr. et Sav., 1. c, tab. 9, fig. 11—23.

S. Thunbergiana Bl., 1. c. tab. 7, fig. 1 — 9.

S. Urbaniana v. Seem., 1. c, tab. 10, fig. 1 — 12.

1741. Ascherson, P. Die Auffindung einer zu Populus euphratica ge-
hörigen Elementarart in Europa. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908,
p. 353—360.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1742. Ascherson, P. Berichtigungen und Nachträge zu dem Auf-
satze über Populus euphratica in Europa. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908,
p. 445—440.)

1743. Dode, L -A. Sur un Peuplier europeen du sous-genre
Turanga [Populus illicitana]. (Bull. Soc. Dendrol. France, 1908, p. 103 — 166,
2 Fig.) N. A.

Gefunden zu Elche in Spanien. Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1744. Geisenheyner, L. Noch etwas von der Pyramidenpappel.
(Mitt. D. Dendrol. Ges., XVII, 1908, p. 202—205, Abb.)

Verf. weist zunächst nach, dass £ Pflanzen in Deutschland nicht so
selten sind, als man glaubte, und zitiert Stellen.

Ferner wendet sich Verfasser gegen die verbreitete Annahme, dass das
häufige Absterben unserer Pyramidenpappel darauf zurückzuführen sei, dass
sie alle von einer Mutterpflanze stammen, und da diese abstirbt, es auch tun.
Verf. betont, dass im Westen Deutschlands diese Pappeln wahrscheinlich aus
Frankreich eingeführt wurden und dass diese auch eine ungewöhnlich reiche
Verzweigung gegenüber den anderen Formen in Mitteldeutschland zeigen.

1745. Gibson, H. H. American trees — 77. Balm of Gilead, Populus
balsamifcra Lin. (Hardwood Record, XXVI, 9, 1908, p. 18—19.)

Nicht gesehen.

1746. [Gibson, H.H.] American forest trees — 55. White willow,
Salix alba Linn. (Hardwood Record, XXIV, 5, 1907, p. 16, ill.)

Nicht gesehen.

1748. Goinbocz, Endre. A Populus-nem monographitja, Mono-
graphia generis Populm. (Math, es Term. KözL, XXX, Kötet, 1. sz., 8°,
238 pp., Budapest 1908.)

von Degen berichtet im Ung. Bot. Bl., VII, p. 297—300 über diese
Arbeit folgendes: Die Arbeit, deren grösster Teil die Systematik der rezenten
Arbeiten behandelt, lehnt sich diesbezüglich im wesentlichen an Dodes Extraits
d'une monogr. ined. du genre Populus (1905) — wohl der wertvollsten Vor-
arbeit auf diesem Gebiete — an, befolgt aber im Gegensatze zu dieser Arbeit
eine mehr zusammenziehende Richtung.

Während Dode die Gattung in drei Untergattungen (Turanga, Leuce und

310 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [310

Eupopulus) teilt und den beiden letzteren zwei, resp. drei Sektionen unter-
ordnet, teilt sie der Verf. in sechs Sektionen und zwar: Turanga, Aegeiros,
Tacamahaca, Leucoides, Trepidae und Leace, auch weicht er in der Anordnung
der einzelnen Gruppen von Dode ab.

Als wertvolle Bereicherung der einschlägigen Literatur müssen wir das
Kapitel über die verwandtschaftlichen Beziehungen der Gattung auf paläonto-
logischer Grundlage bezeichnen.

Schon in der unteren Kreide ist eine Zweispaltung der Entwickelungs-
richtung (Sekt. Coriaceae-Turanga und Vorfahren der Sekt. Aegeiros) nachzu-
weisen, welche sich im Frühtertiär wieder in zwei Richtungen (Marginatae-
Aegeiros und Balsameae-Tacamahaea) teilt. Von der Entwickelungsart Turanga
zweigt der Verf. die Arten der Gruppe Chamitea ab.

Da stammesgeschichtliche Daten diese Anordnung bekräftigen, müssen
wir dieser Einteilung des Verf.s vollen Beifall zollen und diesen Teil seiner
auch sonst verdienstvollen Arbeit als den wertvollsten bezeichnen. Eine offene
Frage bleibt immerhin, ob eben auf Grund der Stamme.sgeschichte die Ein-
teilung in Subgenera mit Unterordnung der Sektionen nicht eine natürlichere
wäre. Übersichtlichkeit des Stoffes, kritische Umgrenzung der Arten und sorg-
fältig ausgearbeitete Claves specierum sichern der Arbeit auch einen praktischen
Wert zu.

Von den speziellen Ausführungen interessieren uns zunächst die über
einige unserer einheimischen Formen gegebenen kritischen Bemerkungen. P.
pannonica als deren Autor gewöhnlich Kit. oder W. K. zitiert wird, ist von
diesen Autoren gar nicht beschrieben worden und erscheint erst in Bessers
Enum. (1822). Besser hat diesen Namen später (Flora, 1832) in P. croatica
W. K. verbessert. Nach dem Verf. ist P. croatica nun nichts anderes, als
weibliche Exemplare der P. pyramidalis Roz., welche westlich von Ungarn
seltener vorkommen und deren Blattform oft an jene der P nigra erinnern.
(Nach C. K. Schneider ist sie eine nigra X pyramidalis.) — P. media Schur ist
auch eine weibliche pyramidalis, deren Äste sich zuerst nach abwärts krümmen
und erst dann zu einer pjn-amidenförmigen Krone emporwachsen. — P. alba
var. nivea Willd. wird von der Balkanhalbinsel bis zur Donau und aus der
Umgebung des Adriatischen Meeres angegeben. — P. alba f. Paletskyana (Dode)
wird aus Rumänien an der Donau erwähnt. — P. Bachofenii Wierzb. wird
p. 150 eingehend erörtert: der Verf. hält sie nicht für f. alba X tremiüa, sondern
für eine Form der P alba- — P alba f. floccosa (Dode) wird aus dem Vituyeder
Wald bei Sopron f. megalense (Dode) aus dem oberen und mittleren Donaulaufe
angegeben. — P. canescens Sm. hält der Verf. mit Dode für keinen Bastard.
Neu unterschieden wird P alba f. liungarica aus Mittelungarn (Donau-Theis,
Igbez usw.). Auch P. Steiniana Bornm. wird nach brieflicher Mitteilung des
Autors als alba X tremula gedeutet, obschon der Verf. den Bastarden in dieser
Gattung überhaupt skeptisch gegenübersteht.

1748a. Jones, M. E. The willow [Salix] family of the Great Plateau.
Salt-Lake, Utah, edit. by the author, 1908, 32 pp.

Siehe „Pflanzengeographie''.

1749. Nilsson, Heribert. Vinterknopp arna hos släktet Salix och
deras betydelse för artbestämmingen. (Bot. Not., 1908, p. 197 — 212,
Abbild.)

3H] Salieaceae. Salvadoraceae. Samydaceae. 311

Schilderung der Winterknospenmerkmale von Salix pentandra, fragilis,
triandra, purpurea, vimitialis. repens, daphnoides, caprea, cinerea, aarita, nigricans.

1.750. Pfuhl. Absonderliche Blüten von Salix Caprea. (Zeitschr. f.
Naturw. d. naturw. Ver. Posen, XV, 1908, p. 23—27, 4 Fig.)

Siehe „Teratologie".

1751. Schreiber. Weibliche Pyramidenpappeln. (Forstwiss. Central-
blatt, XXX, 1908, p. 561.)

Über zwei früher in der Nähe von Braunschweig vorhandene Bäume.

1752. Seemen, 0. v. Salices novae. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 17—20.)

N. A.

1753. Seemen, 0. v. Zwei Weiden aus dem westlichen Sudan.
(Rep. spec. nov., V, 1908, p. 133—134.) X. A.

1751. Smith, W. 6. and Taylor, T. H. Note on the Lombardy Poplar
(Populus pyramidalis Roz.). (Naturalist, 1908, 618, p. 232, pls. and fig.)
Nicht gesehen.

1755. Tüpffer. Schedae zu Toepffer, Salicetum exsiccatum. Fase. III.
No. 101 — 151 und Nachträge zu Fase. I und II, nebst einem Anhange: Sali-
cologische Mitteilungen No. 1. München, Selbstverlag, 1908, 8°. p. 43 — 74.

Die salicologischen Mitteilungen enthalten:

1. Zur Benennung teratologischer Formen.

2. Notizen zu O. v. Seemens Bearbeitung der Gattung Salix in Ascherson
und Graebner, Synopsis.

3. Einige Bemerkungen zum Salicetum exsiccatum.

1756. Wolf, E. Neue asiatische Weiden aus dem Arboretum des
kaiserlichen Forstinstitutes zu St. Petersburg. (Rep. spec. nov., VI,
1908, p. 213—216.)

Ex: Mitt. kais. Forstinstitutes St. Petersburg, VIII, 1908, Sep., p. 1—13.

1757. Wolf, Egbert. Eine neue Weide (Salix anomala n. sp.) aus Süd-
Russland. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 22—23.) N. A.

1758. Zederbauer, E. Die weibliche Pyramidenpappel (Populus
pyramidalis Roz.). (Centrbl. ges. Forstwes., XXXIV, 1908, p. 118-121, Fig. 4.)

Aus den Berichten und Untersuchungen der Autoren geht hervor, dass
es tatsächlich weibliche Individuen von Populus pyramidalis gibt. Ob diese
ein Kreuzungsprodukt von Populus nigra und P. pyramidalis sind, ist fraglich.
Jedenfalls hat dieser Einwand viel für sich und kann mit demselben Rechte
behauptet werden wie das Gegenteil. Tatsache ist, dass aus den Samen von
weiblichen Pyramidenpappeln grösstenteils wieder Individuen mit steilauf-
strebenden Asten entstehen und Populus pyramidalis mit Erfolg aus Samen
erzogen werden kann.

Weibliche Individuen haben Äste, die in einem Winkel von 30 bis 40 °
gerade vom Stamme auslaufen, während die der männlichen eng, 10 bis 20 °
anliegen.

Salvadoraceae.

1759. Hooper, E. M. Salvadora oleoides. A short aecount of the
Salvadora fat. (Agric. Ledger., 1908, 1. p. 1—5.)

Nicht gesehen.

Samydaceae.

312 C« K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [312

Sapindaceae.
Neue Tafel:
Deinbollia pycnophylla Gilg in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 86.

1760. Adamovic, L. Die Eosskastanie [Aesculus Hippocastanum] im
Balkan. (Engl. Bot. Jahrb, XLI, 1908, Beibl. No. 94, p. 1—9, 2 Tafeln.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1760a. Heim, F. Myrmecophilie probable desPavia Boerh. (Sapind.).
(Notes de Bot. pure et appl., 1908, 2 pp.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile des Just".

1760b. Heineck. Der Verlauf des Blütenlebens bei Aesculus ffippo-
castanum L. (Naturw. Wochenschr., N. F., VIII, 1908, p. 29—30.)

Über Unterschiede der $ und der ß Blüten.

1760 c. Mottet, S. Pavia macrostachya. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 101
bis 104, fig. 31—32.)

Blühende Pflanze und Blütenstand.

1761. Schinz, Hans. Sapindaceae in Beitr. z. Kenntnis d. afrik. Flora. XXII.
(Vierteljahrsschr. Naturf. Ges. Zürich, Uli, 1908, p. 485—490.) N. A.

Neue Arten von Pappea.

Sapotaceae.

Neue Tafel:
Mimusops Kümmel Bruce in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 125.

1762. Dnbard, Marcel. Les Sapotacees du groupe des Illipees.
(Rev. gen. Bot., XX, 1908, p. 193—206, fig. 1—7.)

Die Gruppe der Illipeen zeigt eine grosse Homogenität und enthält
Formen, die unter sich durch zahlreiche Übergänge verknüpft sind. Zwei
Genera dominieren in dieser Gruppe: Illipe und Payena. Der Typ Illipe ist
deutlich durch die sekundäre transversal zu den Rippen verlaufende Blatt-
nervatur und den fast völlig eiweisslosen Samen mit einem Embryo mit
fleischigen (Jotyledonen und kurzer Radicula ausgezeichnet. Payena unter-
scheidet sich durch den Rippen (costules) vorwiegend parallele sekundäre
Nervatur mit gegen den Hauptnerven herabsteigenden Verzweigungen, durch
den mit reichlichem Albumen versehenen Samen mit einem Embryo mit blatt-
artigen Ootyledonen und das vorragende Würzelchen.

Zwischen diesen zwei extremen Gattungen schalten sich drei Haupt-
übergangsgenera ein: Kakosmanthus, Dasyaulus und Ganna. Das erste Genus
schliesst sich an Illipe durch die kurze Corolle und an Ganna durch das Ovar
an. Dasyaulus neigt in der Konstitution des Ovar zu Illipe, doch gemahnen
an Payena die zum Teil den Rippen parallele sekundäre Blattnervatur, die
Kleinheit der Blüten, das Vorhandensein ziemlich reichlichen Albumens und
die vorspringende Radicula. Ganna ist recht gut umgrenzt durch die spezielle
Ovarstruktur und die Frucht mit dünnem, holzigem Pericarp. Die Blattnervatur
gemahnt an Payena, die Dünne des Albumens au Illipe.

Um diese Hauptgattungen gruppieren sich einige minder wichtige.
Mixandra, ausgezeichnet durch Form und Disposition ihrer Stamina, sich durch
ihr mit einem Discus an der Basis versehenes Ovar an Illipe anschliessend.
Burckella aus Neuguinea, gekennzeichnet durch Ovar mit basilärem Discus und
Frucht mit dickem, fleischigem Pericarp, sich bei Dasyanthus einschaltend, wovon
D. malaccensis den Übergang bildet. An die Seite von Kakosmanthus müssen
wir Diploknema stellen, eine Gattung, die durch dikline Blüten abweicht, und

313]

Sapindaceae. Sapotaceae. Sarraeeniaceae.

313

in das Genus Payena können wir als Sektion einreihen den Typ Aesandra.
Diese Beziehungen lassen sich graphisch wie folgt darstellen.

Diploknema

Kakosmanthus

Illipe

Myzandra

Payena

■

(Aesandra)

Ganna

1763. H[emsley], W. B. Sideroxylon novo-zelandicum Hemsl. (KewBull.,
1908, p. 459.)

Kurze Notiz über diese Art und Achras costata Endl.

1764. Kraase, K. Sapotaceae in Ule, III. Beitr. z. Flora der Hylaea.
(Verh. Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. 91-96.) N. A.

Sarraeeniaceae.

1765. Deribere-Desgardes et Renandet, G. Sur la scyphogenie de

V Heliamphora nutans Benth. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 443—44"».
Figur.)

Siehe „Teratologie".

1766. Macfarlane, J. M. Sarraeeniaceae in Engler, Das Pflanzenreich, IV.
110, 1908, 39 pp., 10 Fig., eine Tafel.

Die Familie wird in gewohnter Weise behandelt. Sie schliesst sich eng
an die Nepenthaceen an, welche beide sich den Droseraceen nähern und im
übrigen eine engere natürliche Verwandtschaft mit den Cistifloren besitzen
dürften.

Die Familie umfasst nur drei Gattungen, die Verfasser wie folgt
charakterisiert:

A. Ascidia subereeta ore sursum verso, bilamellae (alae) ventrales aseidii
distinetae. Petala 0. Apex styli truncatus 1. Heliamphora Benth.

B. Ascidia ereeta spiraliter torta ore deorsum verso bilamellae ventrales
aseidii in alam mediam conjunetae. Petala 5. Apex styli 5-radiatus

2. Darlingtonia Torr.

C. Ascidia ereeta, subereeta vel decumbentia ore sursum vel oblique vel
deorsum verso, bilamellae ventrales aseidii in alam mediam conjunetae.
Petala 5. Apex styli late expansus umbraculiformis ... 3. Sarracenia L.

314 C. K. Sehneider: Morphologie und Systematik der Siphonogatnen. [314

Bei der Besprechung der Vegetationsorgane gibt Verf. in bezug auf die
Morphologie und Entwicklungsgeschichte der Blätter im wesentlichen seine
bereits 1889 geäusserten Ansichten wieder. Auch in dem anatomischen Teile
folgt er grossenteils eigenen Untersuchungen. Hinsichtlich der Blattbiologie
sind noch Mellichamps Darlegungen massgebend. Auch die Schilderung der
Blütenverhältnisse und Bestäubungseinrichtungen bietet nichts wesentlich Neues.

Hybriden sind in der Gattung Sarracenia häufig.

Geographisch ist Heliamphora auf den Berg Roraima zwischen Britisch-
Guiana und Venezuela beschränkt. Darlingtonia hat ihr Zentrum in Nord-
Kalifornien und Südwest-Oregon. Sarracenia ist auf die östlichen Staaten von
Nordamerika beschränkt, nur S. jmrpurea geht weiter.

Die Gattungen Heliamphora und Darlingtonia sind monotypisch. Von
Sarracenia werden 7 Arten beschrieben.

1767. Nichols, M. Louise. The development of the pollen of
Sarracenia. (Bot. Gaz., XLV, 1908, p. 31—37, pl. V.)

Siehe „Morphologie der Zelle".

1768. Othmer, Bernhard. Sarracenias. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 277
bis 281, 4 Textfig.)

Die Abbildungen zeigen Photos von Sarracenia Courtii, Chelsoni, illustrata
und Williamsi.

1769. Ritzberger, E. Über Sarracenien oder Schlauchpflanzen.
(XXXVI. Jahresber., 1907, Ver. Naturkde. Österr. ob d. Enns— Linz, p. 31.)

Volkstümlicher Vortrag. F. Fedde.

1770. Robinson, Winif'red J. A study of the digestive Power of
Sarracenia purpurea. (Torreya, VIII, 1908, p. 181—194, 1 fig.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1771. Zahn, Emil. Zwei neue Insektivoren-Hybriden. (Garten-
welt, XIII, 1908, p. 82, 2 Fig.)

Die Abbildungen zeigen Pflanzen von Sarracenia cantabrigiensis (Drum-
mondi X rariolaris) und Nepenthes Allardi (Veiichii $ X Courtii <S)-

Saururaceae.

1772. Shibata, K. et Miyaka, K. Über Parthenogenesis bei Houttuynia
cordata. (Bot. Mag. Tokyo/ XXII, 1908, p. [281]— [304], tab. VI, japanisch.)

Der deutsche Auszug, 1. c, p. 141 — 143, lautet wie folgt:

Houttuynia cordata Thunb. ist ein zu den Saururaceen gehöriges und in
Ostasien verbreitetes mehrjähriges Kraut; es wächst auch in Japan als ge-
meines Unkraut. Der ährenförmige Blütenstand ist 2 — 3 cm lang und mit
vier weissen blumenblattartigen Hochblättern versehen. Die Blüte ist nackt
mit drei Staubblättern und hat einen aus drei Carpellen bestehenden Frucht-
knoten. Der letztere ist einkammerig und enthält viele Samenanlagen, von
welchen sich nur 4 — 5 zu reifen Samen entwickeln.

Die Pollen sind ganz abortiert; in vielen Staubblättern, die wir unter-
suchten, haben wir kein einziges normal aussehendes Pollenkorn gefunden.
Die den Pollen entsprechenden Gebilde sind unregelmässig geformt, oft zu
zwei vereinigt und eines oder beide davon in der Mitte durchgeschnürt. Alle
Versuche, die Pollen zur Keimung zu bringen, fallen negativ aus.

Die Bildung der Pollenmutterzellen, welche von einer Tapetenschicht
umgeben ist, scheint in normaler Weise zu verlaufen. Der ruhende Kern der
Pollenmutterzelle hat normale Struktur mit einem deutlichen Kernkörperchen.

315J Saururaceae. 315

Bald geht der Kern zum Synapsisstadium über. Dieses und das nächst-
folgende Knäuelstadium zeigen keine besonderen Abweichungen von der typi-
schen Form. Nur haben wir die oft in anderen Pflanzen beobachtete Doppel-
natur des Knäuelfadens nicht sicher festgestellt. Dann zerfällt der Faden in
eine grosse Anzahl von kurzen Chromosomen und die letzteren finden sich
zerstreut im Kernraum besonders dicht der Kernmembran wie in der Diakinese.
Nur sind die Chromosomen nicht in Paaren wie bei typischer Diakinese. Die
Zahl der Chromosomen liess sich mit Sicherheit erst in Polansicht der
Äipiatorialplatte feststellen. Wir haben eine beträchtliche Anzahl gezählt und
durchschnittlich zwischen 52 und 5t> bestimmen können. Dieselbe Zahl haben
wir auch in den verschiedenen vegetativen Zellen gefunden und können die-
selbe als Diploidzahl betrachten.

Die Tochterkerne gehen bald zum Ruhestadium über und die Zellen
teilen sich gewöhnlich nicht mehr. Manchmal aber teilt sich der Kern der
Tochterzelle amitotisch und dann folgt die Zweiteilung der ganzen Zelle. Die
durch die Teilung der Pollenmutterzelle entstandenen 2, 3 oder 4 Zellen er-
wachsen zu unregelmässigen Körpern mit wenigem Plasmainhalt und kleinen
Kernen.

Wir sehen also, dass die Pollenbildung von Houituynia cordata ganz
normal verläuft, stark abweichend von denjenigen der bisher untersuchten
Fälle von parthenogenetischen Blütenpflanzen. Die meisten parthenogenetischen
Pflanzen haben auch abortierte Pollen, aber die Teilung der Pollenmutter-
zellen geschieht immer in normaler Weise, d. h. mit reduzierter Chromo-
somenzahl.

Die als eine subepidermale Zelle der jungen Samenanlage entstandene
Archesporzelle wird direkt, ohne weitere Teilung, zur Embryosackmutterzelle.
Der Kern der Embryosackmutterzelle zeigt bald eine synaptische Kontraktion
des Kerninhaltes. Die darauffolgenden Teilungsfiguren gleichen im ganzen
denjenigen der Pollenmutterzellen. Die Richtung der Spindel ist gewöhnlich
parallel zur Längenachse der Samenanlage, aber man findet auch manchmal
solche Figuren, welche eine schräge Stellung annehmen. Die Zahl der Chromo-
somen ist nicht immer leicht festzustellen: in günstigsten Fällen haben wir
immer über 50 zählen können. Dieses ist also auch keine Reduktionsteilung.

Die untere der zwei Tochterzellen teilt sich noch einmal und die
unterste Zelle — die funktionelle Makrospore — entwickelt sich zum Embryo-
sack. Manchmal sieht man, dass die obere der zwei Tochterzellen sich auch
gleichzeitig teilt. In diesem Falle sind vier Makrosporen gebildet anstatt wie
gewöhnlich drei.

Es scheint aber, dass in der Embryosackmutterzelle neben der typischen
Teilung auch Reduktionsteilung vorkommt. Die karyokinetische Spindel mit
schmaler Spindel und kleiner Anzahl von Chromosomen haben wir einige Male
angetroffen und können sie als Reduktionsfigur betrachten.

Die weitere Entwickelung des Embryosackes scheint in durchaus typi-
scher Weise zu verlaufen. Durch dreimalige Teilung entstehen da acht Kerne,
von denen die drei oberen zum Eiapparat sich entwickeln, während aus den
drei unteren Kernen Antipoden entstehen; die zwei übrigen Kerne vereinigen
sich in der Mitte zum sekundären Embryosackkern.

Nach der Ausbildung der acht Kerne wächst der Embryosack noch
weiter; zuerst teilt sich der sekundäre Embrvosackkern. Die Wand ist
zwischen den beiden Kernen gebildet und die untere Tochterzelle verlängert

316 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogauien. [316

sich durch das Nucellusgewebe zum transitorischen Saugapparat. Die obere
Zelle teilt sich nun weiter und bildet ein verhältnismässig kleines Endosperm-
gewebe.

Wenn das Endospermgewebe beinahe fertig gebildet ist, teilt sich die
Eizelle und der kugelige oder eiförmige Embryo mit 2 — 4 zelligem Suspensor
ist endlich gebildet. Gleichzeitig ist das Nucellusgewebe mit Stärke gefüllt
und wird zum Perisperm. Es entsteht also der Embryo aus der Eizelle und
zwar ohne Befruchtung.

Die ausführliche Beschreibung mit theoretischen Erörterungen soll an
anderer Stelle veröffentlicht werden.

Saxifragaceae.

Neue Tafeln:
Argophyllum laxum in Ann. Hofmus. Wien, XXII, 1907, tab. IX.
A. Lejourdani, 1. c, tab. VIII.
A. Schlechterianwm, 1. c, tab. X.

Brexia madagascariensis Thouars. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 61.
Deutzia scabra Thbg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908, tab. 24r

fig. 6—1 4.
Hydrangea involucrata Sieb., 1. c, fig. 1 — 5.
H. paniculata Sieb., 1. c, tab. 23.
Itea japonica Oliv., 1. c, tab. 24, fig. 15 — 19.
Philadclphus coronarius L., 1. c, tab. 24, fig. 20 — 25.

Ph. purpureo-maculatus Lemoine in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8193.
Saxifraga Brunoniana Wall, in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8189.

1773. Anonym. Carpenteria californica. (Gard. Chron., 3. ser., XL1V,
1908, p. 112, Fig. 42.)

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze.

1774. Beauverd. (t. Un nouvel hybride spotane de Saxifrages
exotiques. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 226—227.) N. A.

Es handelt sich um Saxifraga hederacea X Huetiana = X S- Vetteriana
Beauv.

1775. Bois, D. Les Ribes de la section Bobsonia. (Rev. Hortic, LXXX,
1908, p. 29—32, fig. 6-14.)

Die Figuren zeigen Blütenzweige von R. speciosum, R. Lobbi, R. Menziesii
var. subvestitum und R. amictum var. cruentum; von letztem auch einen
Fruchtzweig. Ferner Blüten von R. Lobbii, R- Marshalli, R. occidentale und
R- Menziesii subvestitum.

1776. Brenner, W. Beobachtungen an Saxifraga gramdata. (Flora,
XCVHI, 1908, p. 252-256, 4 Textfig.)

Siehe im „Blütenbiologischen Teile" des Jahresberichtes.

1777. Brenner, Willi. Die Entwickelung der Blüten von Saxifraga
granulata. (Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 363—364, 3 Fig.)

Autorreferat der unter Blütenbiologie behandelten obigen Arbeit.

1778. Coville, Frederick Vernon and Britton, Natlianiel Lord. Grossulariaceae.

(North American Flora, XXII, pt. 3, 1908, p. 193—225.) N. A-

Umfasst die Gattungen Ribes mit 43 Arten, worunter zwei neue, und
die von den Autoren davon getrennte Grossularia uiit 40 Arten, die zum aller-
grössten Teile neue Kombinationen darstellen.

•317] Saxifragaceae. 317

1779. Eichinger, A. Beiträge zur Kenntnis der systematischen
Stellung der Gattung Parnassia. (Beih. Bot. Centrbl.. XXIII, II, 1908,
p. 298—317, 21 Textfig.)

Parnassia unterscheidet sich von den Droseraceen wie folgt:

1. Keimung. Parnassia zeigt normale Keimung, Cotyledonen sind nicht
zu einem Saugapparat umgestaltet. Die Droseraceen haben keine Primär-
wurzel, Cotyledonen haben mehr oder minder die Funktion eines Saug-
apparates.

2. Blattbau. Die Xervatur ist eine verschiedene. Parnassia besitzt typischen
Blattbau, in der Epidermis Gerbstoffidioblasten, die Droseraceen haben
kein typisches Assimilationsgewebe und oft Chlorophyll in der Epi-
dermis, ausserdem immer mehr oder minder modifizierte Drüsen.

3. Blüte. Alle Arten von Parnassia haben Staminodien, die Drosera-
ceen nicht.

4. Befruchtungsvorgang. Er ist bei den Parnassia- Arten anscheinend gleich-
artig und hat kein Analogon bei den Droseraceen, dagegen bei Saxifraga.

5. Androceum. Parnassia besitzt einfache kleine Pollenkörner, alle Drosera-
ceen haben Tetraden.

6. Gynaeceum. Parnassia hat gestielte Placenta, ein ausgeprägtes Pollen-
leitungsgewebe, der Nucellus ist kleinzellig und verschwindet bald, der
Embryo ist gut ausgebildet und erfüllt den fast endospermlosen Samen.
Drosera wenigstens hat flache Placenta ohne Pollenleitungsgewebe,
eigentümlich differenzierten Xucellus, allen Droseraceen kommt der
kleine, rundliche, unvollständige Embryo und reichliches Endosperm zu.
Man kann also mit vollem Recht sagen, dass die Angliederung von

Parnassia an die Droseraceen die Einheitlichkeit dieser Familie vollkommen
stören würde: ihre Hauptcharakteristik wäre verwischt. Ebenso spricht
manches dagegen, wenn man die Droseraceen von phylogenetischem Stand-
punkte aus betrachtet. Diels hat in seiner Monographie die Gründe zusammen-
gefasst, die dafür sprechen, dass Droseraceen mit Wasserformen enge Be-
ziehungen haben und aus Wasserpflanzen hervorgegangen sind. Das Fehlen einer
Primärwurzel, die mangelhafte Differenzierung des Assimilationsgewebes, die
Stipulargebilde, die an die Intravaginalschuppen mancher Wasserpflanzen er-
innern, die zahlreichen Secretionsdrüsen, das allgemeine Vorkommen kleisto-
gamer und autogamer Blüten, die hohe Regenerationsfähigkeit und das Auf-
treten vegetativer Knospen sind die wichtigsten Momente, die darauf hinweisen.
Zudem besitzen wir noch eine Form, Aldrovandia, die ausschliesslich dem
Wasserleben an.^epasst ist und in ihrer Blütenmorphologie primitive Verhältnisse
zeigt. Bei Parnassia lassen sich derartige Beziehungen zu Wasserpflanzen
nicht finden.

Sieht man sich nach einer für Parnassia passenden Stellung im System
um, so muss man gestehen, dass sie bei den Saxifrageen immer noch am
besten steht. Diese Familie ist in ihrer jetzigen Fassung ja derartig wenig
einheitlich, dass Parnassia ihrer s}*stematischen Charakteristik keinen Abbruch
tut. Immerhin scheint mir gerade das Vorkommen von Gerbstoffidioblasten
und der Bestäubungsvorgang in den Blüten die jetzige Stellung zu recht-
fertigen.

1780. Eimer. A. D. E. The genus Itea. (Leafl. Philipp. Bot., II, 1908,
p. 527—529.) N. A.

Zwei Arten. Vgl. „Index nov. gen. et spec".

318 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [318

1781. Ewert, R. Die Parthenocarpie der Stachelbeere [Ribes
Grossularia]. (Ber. D. Bot. Ges.. XXVI a. 1908, p. 531—532.)

Die Parthenocarpie war hier eine Folge einer Zweigverletzung, infolge
welcher die organischen Säfte, die wieder aus korrelativen Gründen nach
anderen Verbrauchsorten wandern, der besseren Entwickelung der Jungfern-
frucht zugute kamen.

1782. Grignan, G. T. Les Deutzia nouveaux de MM. Lemoine.
(Rev. Hortic., LXXX, 1908, p. 174—176, fig. 65.)

Die Figur zeigt blühende Pflanze von Deutzia gracilis Candelabrum.

1783. Heller, A. A. Two californian species of Ribes- (Muhlen-
bergia, IV, 1908, p. 27—30.) N. A.

Es handelt sich um: R. Grantii und R. purpurascens.

1784. Heller, A. A. Where was Ribes bracteosum published? (Muhlen-
bergia, IV, 1908, p. 24.)

Verf. gibt Mem. Acad. St. Petersb.. VI, 2, 138, 1832 an, während ge-
wöhnlich Hookers Flor. Bor.- Am.. T, 233. 1833 zitiert wird. Übrigens soll nach
Piper in Cont. U. S. Nat. Herb., XI, 325 die Flora schon 1831 erschienen sein.

1785. Ijrwing], W. Lewisia (Calandrinia) Cotyledon. (Gard. Chrom, 3. ser.,
XLIII, 1908, p. 342, Fig. 151.)

Kurze Beschreibung und Kulturnotiz, sowie Abbildung einer blühenden
Pflanze.

1786. Ifnving], W. New Hybrid Saxifragas. (Gard. Chrom, 3. ser.,
XLIII, 1908, p. 277.)

Betrifft folgende Hybriden : S. ambigua DG. (media X aretioides), S- Berto-
lonii Sündermann (thessalica X parophylla), S. Borisii Kellerer (marginata
X Ferdinandii-Cobu/gii), S. Burnati Sund, (cochlearis X Aizoon), S. Elizabethae
Sund. (Burseriana X sancta), S. endoxiana Kell. ( Ferdinandi-Coburgii X sancta),
S. Kyrillii Kell, (marginata X Ferdinandi-Coburgii), S. Obristi Sund. (Burseriana
X marginata), S. Paulinae Sund. (Burseriana minor X Ferdinandi-Coburgi), S.
Petraschii Sund, (tombeanensis X Rocheliana), S. Salomonii Sund. (Burseriana
X Rocheliana).

1787. Ifrwing], W. Saxifraga cochlearis. (Gard. Chrom, 3. ser., XLIV,
1908, p. 245, Fig. 108.)

Die Abbildung zeigt blühende Pflanzen.

1788. Ifrwingj, W. Rodgersia tabularis. (Gard. Chrom, 3. ser.. XLIV.
1908, p. 210, Fig. 89.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1789. Irwing, W. Saxifraga Vandellü. (Gard. Chrom, 3. ser., XLIV,
1908, p. 71, Fig. 28.)

Die Figur zeigt blühende Pflanze.

1790. Jaiu-zewski, Ed. Sur les antheres steriles des groseilliers
(Bull. Int. Ac. Sei. Cracov., 1908, p. 587—595.)

Siehe „Anatomie".

1791. Janczewski, Eduard. Species novae generis Ribes. III. (Rep.
spec. nov., VI, 1908, p. 216-220.)

Ex: Bull. Int. Acad. Cracovie, Mai 1906, p. 280—293.

1792. Mottet, S. Saxifraga tellimoides. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 250
bis 252, Fig. 93.)

Die Figur zeigt eine blühende Pflanze.

319] Saxifragaceae. 319

1793. Mottet, S. Nouveaux Astilbes (Hoteia) ä fleurs roses. (Rev.
Hortic, LXXX, 1908, p. 346—348, Fig. 123.)

Die Figur zeigt eine Form der Kreuzung ,1. compacta (A. japonicae forma
X A- chinensis).

1794. Mottet, S. Rirengeshoma palmata. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p, 152
bis 154, Fig. 48.)

Beschreibung und Abbildung eines Blütenzweiges.

1795. Mottet, S. Les Rodgersia. (Rev. Hortic, LXXX. 1908, p. 14—16,
eine Textfig.)

Die Figur zeigt R. poäoplujlla in blühender Pflanze.

1795 a. Xappi, G. Alcuni studi sul genere Saxifraga e gen er i
affini. (Bull. Ort. Bot. Univ. Napoli, I, 1908, p. 394.)
Referat noch nicht eingegangen.

1796. Rnppert, Jos. Saxifraga Freibergii Hupp evt (Saxifraga granulata X
[decipiens var. sponJtemica] seu S. granulata X decipiens var. sponhemica f.
propius ad S. granulatam recedens. Nova hybrida). (Allg. Bot. Zeitschr.,
XIV, 1908, p. 87—89, Abb.) N. Ä.

1797. Schwaighofer, Karl Fritz. Ist Zahlbrucknera als eigene Gattung
beizubehalten oder wieder mit Saxifraga zu vereinigen? (Abh. Akad.
Wien, 1908. 28 pp., 4 Taf.)

Verf. sagt zum Schluss:

Soviel können wir wohl als feststehend annehmen:

1. Zahlbrucknera ist keine selbständige Gattung, sondern gehört zur
Gattung Saxifraga, ist wieder mit derselben zu vereinigen, wie sie auch ur-
sprünglich zu ihr gerechnet wurde.

Die Pflanze schliesst sich an die Sektion Cymbalarku speziell an S.
hederacea und Huetiana sehr enge an, mit denen sie das Vorkommen eines
Sclerenehymringes im Blütenstiel gemeinsam hat, während sie durch das Vor-
handensein eines solchen im Laubstengel geschieden ist.

Dass dieses Merkmal nicht als Gegengrund für die Zugehörigkeit zu
dieser Sektion verwendet werden kann, ist einleuchtend, da es auch innerhalb
der bereits anerkannten Formen solche gibt, die im Blütenstiel einen Scleren-
chymring haben (S. hederacea, Huetiana), und Arten (8. Cymbalaria, Sibthorpii),
denen er vollständig fehlt.

Wenn wir schliesslich noch die geographische Verbreitung der Sektion,
Zahlbrucknera paradoxa natürlich mit inbegriffen, näher in Betracht ziehen, so
wird durch die Miteinbeziehung dieser Art der einheitliche Verbreitungsbezirk,
der diese Sektion auszeichnet, dadurch nicht gestört, da auch andere
Gattungen eine ähnliche Verbreitung beisitzen. Noch besser gestützt wäre diese
Behauptung, wenn es sich herausstellen würde, dass die Angaben über das
Vorkommen der Zahlbrucknera paradoxa Rchb. in Krain und Kroatien (bei
Samobor) auf Richtigkeit beruhten, was jedoch kaum der Fall sein dürfte.

2. Die Gattung Saxifraga ist als einheitliche Gattung nicht haltbar,
sondern muss nach anderen allgemeinen Gesichtspunkten gegliedert und in
mehrere selbständige Gattungen gespalten werden.

Es wäre eine dankbare und gestützt auf das bereits vorhandene Unter-
suchungsmaterial nicht allzuschwierige Aufgabe, diese Neugruppierung vorzu-
nehmen. Eine Einteilung, die zwischen der streng anatomischen Gruppierung
Leists und der fast ausschliesslich auf morphologische Merkmale gestützten
Einteilung Englers die Mitte hielte, also die anatomischen und morphologischen

320 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [320

Merkmale gleich berücksichtigte, dürfte wohl die richtigen Verwandtschafts-
grade treffen.

1798. Sündermann, F. Saxifraga Friedend Augusti B. X Burseriana L.,
8. Kelleren m. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 17.) N. A.

1799. Zemann, Margareta. Studien zu einer Monographie der
Gattung Argophyllum Forst. (Annal. k. k. Naturhist. Hofmus., Wien,
XXII, 1907/08, p. 270—291, 3 Taf., 4 Textabb.) N. A.

Die Arbeit bringt eine Untersuchung aller Arten auf Grund der
Morphologie und Anatomie. Das Verbreitungsgebiet umfasst die Insel Neu-
Caledonien und den östlichen Teil von Australien (Queensland und New South
Wales). Aus Neu-Caledonien liegen 8, aus Ostaustralien bis jetzt nur
3 Arten vor. Im folgenden sei der Bestimmungsschlüssel wiedergegeben:
I. Kelch um vieles kürzer als die Oorolle. — Sekt. I. Brachycalyx.

1. Behaarung der Blätter und Inflorescenzen dunkel rostbraun, Blätter an
der Spitze abgerundet, ganzrandig. — 2. A. ellipticum Labill.

2. Behaarung nicht dunkelrostbraun, Blätter zugespitzt, oft gesägt-gezähnt.

A. Blattunterseite auffallend erhaben-netzaderig, Band meist stark gesägt.
— 5. A- Lejourdani F. v. Muell.

B. An der Blattunterseite nur Mittelrippe und Primärnerven deutlich
hervortretend.

a) Blätter über der Mitte am breitesten, abgebrochen zugespitzt. —
1. A. nitidum Forst.

b) Blätter in der Mitte am breitesten, lang zugespitzt, unterseits
silberweiss-seidenhaarig. — 4. A- nullumense Bak.

c) Blätter unter der Mitte am breitesten, unterseits fast matt, Rand
schwach zurückgerollt. — 3. A. cryptophlebum mh.

II. Kelch mindestens halb so lang wie die Corolle, meist ebenso lang. — Sekt. III.
Dolichocalyx.

1. Blätter unterseits kahl oder nur die Mittelrippe mit einzelnen Haaren
besetzt.

A. Blätter unterseits ganz unbehaart, Inflorescenzen um die Hälfte länger
als ihre Stützblätter, Petalen kürzer als die Kelchzipfel. — 10. A-
montanum Schltr.

B. Blattnerven der Unterseite mit einzelnen Haaren besetzt. Inflores-
cenzen kaum etwas länger als ihre Stützblätter, Petalen um 1 mm
länger als die Kelchzipfel. — 9. A. Schlecht erianum Bon. et Petitmg.

2. Blätter unterseits dicht filzig behaart.

A. Blätter 3— 3 1/2 mal länger als breit. — 8. A. Grunoivii A. Zahlbr.

B. Blätter höchstens doppelt so lang als breit.

a) Die Inflorescenz überragt das Blatt, Kelchzipfel lang zugespitzt.
— A- laxum Schltr.

b) Die Inflorescenz ist viel kürzer als das Blatt. Kelchzipfel in eine
kurze Spitze ausgehend. — 7. A. latifolium Vieill.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

Scrophulariaceae.

Neue Tafeln:
Chacnostoma Burkeanum (Benth.) Wettst. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908,

tab. 137.
Eylcsia buchneroides in Journ. of Bot., XLVI, 1908, tab. 495 B.

321] Scrophulariaoeae. 321

Hebenstreitia elongata Bolus in Wildema-n, pl. nov. Hort. Then., II, 1908,

pl. LXIII. '
Rehmannia angulata HemsL in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8177.
Sutera stenophylla Hiern, in Wildeman, PI. nov. Hort. Then., II, 1908, pl. LXI.
S. grandiflora Hiern, 1. c, LXII.
Veronica anagallis et aquatica et anagallis X aquatica in Act. Hort. Bot. Jurjev,

IX, tab. II, 1908.
Zahizianskya maritima Walp. in Bot. Mag., CXXXIV, 1908, tab. 8215.

1800. Ball, C. F. Yerbascum leianthum Benth. (Gard. Chron., 3. ser.,
XLIV, 1908, p. 171, Fig. 71.)

Die Abbildung zeigt eine blühende, 4,5 m hohe Pflanze.

1801. Ball, C. F. Verbascum at Glasnerin Botanic Gardens. (Garden,
LXXII, 1908. p. 509, Fig.)

Die Abbildung zeigt V- leianthum.

1802. Bauer, E. Die /Iwra-Sippen von Antirrhinum majus. (Zeitschr.
indukt. Abstämmlings- und Vererbungsl., I, 1908, p. 124.)

Siehe unter „Descendenz, Variation usw.".

1803. Bennett, A. Distribution of Veronica verna L., V. triphyllos L.,
Herniaria glabra L. and Sclerantlms perennis L. (Trans. Norfolk and Norwich
nat. Hist. Soc, VIII, 1908, p. 528—534.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1804. Bois, D. Muflier [Antirrhinum majus] ä fleurs peloriees.
(Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 345—346.)

Siehe „Teratologie".

1805. Bonati, (i. Contribution ä l'etude du genre Mazm Lour.
(Bull. Herb. Boiss., 2. ser.. VIII, 1908, p. 525—539, Textfig.) N. A.

Verf. charakterisiert die Gruppen wie folgt:

Si nous considerons l'ensemble des especes annuelles, nous pouvons les
diviser en trois sous-sections tres nettes:

1. Sous-section Dentata, comprenant: M. dentatus Wall., M. pulchellus Hemsl.,
caracterisee par la tige nue scapiforme.

2. Sous-section Bugosus. comprenant: M. rugosus L., M. macrocalyx m., M.
Delavayi m., caracterisee par la tige dressee ou decombante, feuillee au
moins k la base, ä feuilles generalement alternes.

3. Sous-section Stachydifolia comprenant: M. stachydifolius Max.. M. Bodi-
nieri m., M. Fargesii m., M. macranthus Diels, M. caducifer Hance,
caracterisee par les tiges dressees, plus ou moins velues ou herissees,
rameuses, les feuilles caulinaires nombreuses, alternes ou opposees, les
feuilles des rameaux opposees.

Dans le groupe des especes stoloniferes, nous pouvons distinguer
les sous-sections suivantes:

4. Sous-section Longipes, comprenant: M. longipes m., M. Rarmandi m.,
M. pumilio Brown, caracterisee par ses inflorescences naissant du milieu
de la rosette principale et par ses stolons steriles-correspondaux „den-
tata " .

5. Sous-section Surculosa, comprenant: M- surculosus Don., M. procumbens
Hemsl., M. gracilis Hemsl., M. Cavaleriei m., M. japonicus m., M. Engle-
rianus m., M. Wilsoni m., M. divaricatus m., M. elongatus m., caracterisee
par les stolons fructiferes et les inflorescences naissant soit lateralement,

Botanischer Jahresbericht XXXVI (190S) 3. Abt. [Gedruckt 30.8. in.] 21

322 C- K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [322

soit a l'extremite des rameaux. L'existence simultanee d'inflorescences
centrales et d'inflorescences rameales, teile que chez M. japonicus m.
est rare.

L'on ne connait jusqu'ä present que deux especes cespiteuses;
ce sont:

6. Sous-section Cespitosa, M- Fauriei m., M. Lecomtei m., tres voisines
l'une de l'autre.

De meme, il n*existe qu'une espece ä rhizome tracant:

7. Sous-section Lanceifolia, M. lanceifolius Hemsley.

1806. Bonati, G. Scrophularinees nouvelles de 1' Indo-Chine.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 509—515, 537—544.) N. A.

Neue Arten von: Bacopa, Limnophüa, Torenia, Vandellia. Uysanthes,
Bonnaya, Pedicularis.

1807. Bonati, GL Sur quelques Pedicularis chinoises nouvelles.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 242—248, p. 312—314.) N. A.

1808. Bonstedt, C. Bacopa amplexicaulis (Mchx.) Wettst. (Gartenwelt,
XIII, 1908, p. 745—746, 3 Abb.)

Die Abbildungen zeigen Pflanzen und blühende Zweige.

1809. Derganc, Leo. Über die geographische Verbreitung der
Wulfenien. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 168—172.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1810. Chodat, R. Etüde critique des Genres Scoparia L. und
Hasslerellia Chod. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 1—16, fig. 1—26;
p. 85-89, fig. 27-36.) N. A.

Die Arten der Gattung Scoparia werden aus folgendem Schlüssel er-
sichtlich, wogegen Hasslerella nur eine Art, H. Rojasii umfasst. Verf. behandelt
auch die der letzten verwandte Gattung Aragoa.

A. Subgenus Tetracronia Fries.

Calyx quadrifidus; antherarum loculi basi liberi usque ad apicem connati.

1. Bracteae saepius, nisi sernper longiores quam pedicelli floi-entes S.
dulcis L.

2. Bracteae saepius nisi semper quam pedicelli florentes multo breviores,
folia saepissime integra rarius subserrata S. nudicaulis Chod.

B. Pentacronia Fries.

Calyx 5-fidus, loculi aDtherarum haud plus minus usque ad apicem connati,
semper sinu profundo separati.

3. Antherae sub apice i. e. ad !/4 sub apice filamento insertae; Stylus
ovario multo brevior vel brevior rarissime snbaequilongus.

3j. Pedicelli floribus, fructibusque breviores; Stylus ovario plus quam

triplo brevior S- Aemilii Chod.
33. Pedicelli filiformes quam flores multo longiores; Stylus duplo

brevior quam ovarium vel subaequilongus.

a) Perennis, Capsula fere duplo longior quam lata, folia angusta
crassiuscula, pedicelli sparse glandulosi S. mexicana P- E. Fries.

b) Annua. Capsula vix longior quam lata, folia nonnulla limbo
tenui dilatato, pedicelli glaberrimi S. annua Cham.

4. Antherae medio affixae; loculi apice sinu angusto profundo separati;
flores haud flavi.

4j. Stylus ovario aequilongus vel longior cylindricus.

3231 Scrophulariaceae. 323

a) Sepala oblonga-acuta dorso secus nervös minute denticulato-
cristata; Stylus ovario multo longior, folia pinnatifida S. pinnati-
fida Cham.

b) Sepalorum nervi haud cristati, folia haud pinnatifida, integra,
denticulata vel incisa haud glandulosa-hirsnta.

•j- Stylus in ovarium sensim desinens

Pedicelli patentes, folia vix dentata S. divaricata R. E. Fries.
Pedicelli erecti vel adscendentes.

j-f Stylus ovario superpositus quasi articulatus haud sensim
in id desinens.
Pedicelli pilis longis laxe hirsuti folia dilatata S. ellip-

tica Cham.
Pedicelli haud hirsuti, folia integra S- ericacea Cham, et

Schldl.
Tota planta glanduloso hirsuta S. Hassleriana Chod.
5. Flores flavi.

Stylus sensim in stigma dilatatus, sepala oblonga vel ovata acuta

S. montevidensis R. E. Fries.
Stylus aequalis, sepala late elliptica acuta glabra S. brasiliensis
Chod.

1811. Dode, L.-A. Sur les Paulownia. (Bull. Soc. Dendrol. France, 1908,
p. 159—163.) N. A.

Verf. bespricht die Arten, die sich in zwei Sektionen gliedern:

1. Imperiales: ä calice entierement lanieux: P. imperialis, P. Fargesii.

2. Fortuneanae: ä calice pubescent seulement ä la marge: P. Fortunei, P.
Duclouxii und P. meridionalis.

Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

1812. Fischer, Hngo. DiePelorienbei Linaria vulgaris. (Flora, XCVIII,
1908, p. 386—388.)

Siehe unter „Entstehung der Arten, Descendenz usw.".

1813. Fries, Rob. E. Einige weitere Bemerkungen über die
Gattung Scoparia. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 934-940.)

Verf. nimmt Stellung zur Arbeit von Chodat (vgl. No. 1810) und gibt
zahlreiche Details, die man im Original nachlesen wolle.

1814. Gautier, L. Sur le parasitisme du Melampyrum pratense. (Rev.
gen. Bot, XX, 1908, p. 67—84, fig. 1—21.)

Verf. gibt folgendes Resümee:

Melampyrum pratense ist ein in seinem Parasitismus ziemlich eng speziali-
sierter Hemiparasit, Er liebt vor allem Waldbaumarten mit Mycorrhiza, vor allem
die Buche. Deren Wurzelapparat bildet ein sehr oberflächiges Mycorrhizen-
>!ystem und bietet so dem Melampyrum eine leichte und gesuchte Gast-
freundschaft.

Die in Papiersäcken oder Schachteln aufbewahrten Samen verschiedener
Melampyrum verderben rapid, verlieren ihre Keimkraft und werden schwarz.
Zur guten Erhaltung dieser Samen ist Stratifizierung nötig. In einem feuchten
Substrat eingebettet, erhalten sie ihre ursprüngliche Weisse und ihre Keim-
fähigkeit. Dies gilt auch für die Samen von Pedicularis und Rhinanthus. Die
Bartsia können sich eine gewisse Zeit lang in trockenem Zustand konservieren.

Während die Samen von Melampyrum und Rhinanthus langsam und

21 *

324 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [324

schwierig keimen, tun dies die von Pedicularis und Bartsia leicht beim Ver-
lassen der Frucht.

Melampyrum pratense ist mit einem eiligen Parasitismus begabt; die
Sauger erscheinen auf den Würzelchen und fixieren sich viel eher als die
Samenreserven erschöpft sind und die Cotyledonen sich entfaltet haben. Die
Phase des freien Lebens ist daher sehr kurz, wenn nicht fehlend. Durch
diesen Charakter, wie durch seine Spezialisierung, weicht der Parasitismus von
Mel. pratense. ab von dem von Osyris alba und Santalum album, welche während
einer ziemlich langen Zeit ihrer Existenz selbständig sind und die sich in-
different den verschiedenen Arten anheften, die in ihrer Nähe wachsen.

Im Schosse des feuchten Mooses verzweigt sich die Radicula eines
keimenden Samens reichlich und bedeckt sich und ihre Zweige mit einer
Menge Wurzelhaare, von denen eine grosse Zahl zwei- oder dreizellig ist.
Diese übermässige Bildung von Wurzelhaaren beim Fehlen von Saugern, die
unter normalen Lebensbedingungen erscheinen, scheint anzuzeigen, dass die
parasitische Pflanze gegen den sicheren Untergang, der sie erwartet, zu
reagieren versucht.

Beim erwachsenen Melampyrum prädominieren die Sauger, wogegen die
Wurzelhaare fast ganz eingehen. Die Sauger stellen somit morphologisch und
physiologisch den Saughaaren vergleichbare Organe dar.

Die Formation der Sauger scheint zu resultieren aus einem physio-
logischen Reiz seitens des Wirtselementes, sie wird nicht durch den Kontakt
bewirkt.

Entfernt man die jungen Pflänzchen aus ihrem normalen Milieu, damit
sie ihre Entwickelung in einem feuchten Boden oder in Gartenerde vollenden
sollen, so gehen sie sehr prompt ein; sie bilden nur eine kleine schwächliche
Pflanze.

Eine rein saprophytische Ernährung sagt dem Melampyrum pratense so
wenig zu als eine ausschliesslich mineralische. Der Parasitismus erscheint
nach dem Ausspruch von Heinricher als der „Schwerpunkt der Ernährung".

1815. Kirchmayr, H. Die extrafloralen Nektarien von Melampyrum
vom physiologisch-anatomischen Standpunkte. (Sitzb. Akad. Wien,
1908, 1, CXVII, p. 439—452, eine Taf.)

Siehe „Anatomie".

1816. Koernicke, Fr. M. Über den Namen Veronica. (Verh. Bot. Ver.
Brandenburg, L, 1908, p. 181—184.)

Der Name Veronica ist auf Vetonica zurückzuführen und nicht auf
Btoivi/.t, und infolgedessen auch Veronica und nicht Veronika zu sprechen.

1817. Kränzlin, Fr. Eine neue Calceolaria aus Bolivia. (Rep. spec.
nov., V, 1908, p. 369-370.) N. A.

1818. Krause, Ernst H. L. Über Veronica und andere umstrittene
Pflanzennamen. (Naturw. Wochenschr.. N. F., VII, 1908, p. 492—494.)

Der Name Veronica hat nichts mit der heiligen Veronica zu tun, sondern
ist aus Vetonica entstanden, was Verf. eingehend durch Belege unterstützt.
Er weist ferner darauf hin, dass nach Linnes Philosophia botanica z. B. Cypri-
pedium eigentlich Cypripodium heissen müsse, dass ferner Asplenium und nicht
Asplcnum die rechte Schreibweise ist.

1819. Krauter, Louis. A comparative study of the genus Pent-
stemon. (Contrib. bot. Labor. Univ. Pennsylvania, III, 2, p. 93 — 206.) N. A.

325] Serophulariaceae. 325

Verf. beschreibt nach einer historischen Einleitung 148 Arten (vgl. „Index
nov. gen. et spec"), die sich in folgende Gruppen gliedern:

Sekt. I. Eupenistemon Kr. Antherenzellen bald divarikat oder diver-
gierend, an der Spitze vereint oder oft zusammenfliessend, ihrer ganzen Länge
nach oder fast so aufspringend.

1. Erianthera Benth. Antheren dicht schopfig mit sehr langen Wollhaaren
nach Art von Chelone, schildförmig ausgebreitet im Alter; niedrige und
halbstrauchige Arten mit lederigen Blättern. Westliches Nordamerika.
Hierher acht Arten.

2. Friiticosi A. Gr. Antheren kahl, an der Spitze aufspringend und nach
Aufspringen ausgebreitet: Bäume verzweigt und strauchig, wenigstens
unten; Blätter lederig oder häutig, klein oder kurz, meist sehr kurz
gestielt; Filamente alle gebartet oder behaart an der Basis. Hierher
zehn Arten.

3. Ambigui A. Gray. Antheren kahl, nierenförmig, nicht ausgebreitet im
Alter, die Öffnungslinie kurz über Zellbasis endend; Stamm halbstrauchig
und Blätter dicklederig. Hierher nur P. bacdiarifolius Hook.

4. Elmiqera Rchb. Antheren kahl (selten behaart); Zellen von der Basis
gegen, aber nicht bis zur Spitze aufspringend, folglich nicht ausgebreitet
nachher; Corolle röhrig, oberwärts wenig erweitert, rot; sterile Filamente
meist kahl; Kräuter kahl und meist glaucescent, kahl selbst bis zum
Kelch und der Aussenseite der Corolle oder höchstens bereift behaart;
Stamm rutig und einfach; Blätter alle ganzrandig; kauline Blätter
sitzend oder zum Teil übergreifend; Thyrsus verlängert, rutig, locker-
blütig, traubig oder rispig. Vier Arten mit vielen Formen.

•">. Speciosi A. Gr. Antheren mit den divergierenden oder divarikaten und
distinkten Zellen von der Basis bis fast oder ganz (aber nicht zusammen-
fliessend) zur Spitze aufspringend, nachher nicht ausgebreitet, entweder
kahl, rauh behaart oder selten langhaarig; Kräuter mit einfachen Stengeln
und dicht sitzenden meist kahlen (selten behaarten) ganzrandigen kau-
linen Blättern; Blutenstände nie drüsig behaart oder klebrig, Blüten an-
sehnlich: Corolle blau oder \iolett, schlundförmig erweitert oben, die
Lappen des massig oder leicht zweilappigen Saumes rundlich und gleich-
förmig ausgebreitet. Hierher zehn Arten.
6. Gennini A. Gr. Antheren von Basis zur Spitze und durch die Ver-
bindung der zwei Zellen aufspringend, kahl (oder nur an den Öffnungs-
linien rauhlich gewimpert), nach Aufspringen offen, meist ausgebreitet
im Alter, in der grösseren Zahl zusammenfliessend einzellig; krautig,
selten halbstrauchig am Grunde. 96 Arten.

Sekt. II. Saccanthera Benth. Antheren pfeil- oder hufeisenförmig, Zellen
an der Spitze zusammenfliessend und dort durch einen zusammenhängenden Spalt
aufspringend, der bei beiden Zellen nur bis zur Mitte hinab reicht, während
die Basis geschlossen und sackförmig bleibt, diese zuweilen rauh behaart, nie
filzig. Alle westlich der Bocky Mts. bis zur Pacificküste. 19 Arten.

Im Schlusskapitel werden die Samen der Gattung noch speziell be-
handelt.

1820. Kusano, S. On the parasitism of Siphonostegia [Rhinantheae] .
(Bull. Coli. Agric. Tokyo, VIII. 1908, p. 51—57, 5 figs.)
^icht gesehen.

326 C. ß- Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. j 326

1821. Lakscliewitz, Pawel. Veronica anagallis L. et Veronica aquatica
Beruh. (Act. Hort. Bot. Jurjev., IX, 1908, p. 160—162, Tab. II. Russisch.)

Über diese Arten und den Bastard zwischen ihnen.

1822. Lehmann, Ernst. Geschichte und Geographie der Veronica-
Gruppe agrestis. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 229—244, 337—3,12,
410—425, 644—660.) N. A.

Aus dieser sehr eingehenden detailreichen Studie, über die man auch
unter „Pilanzengeographie" vergleichen wolle, sei als systematisch vor allem
bedeutsam folgendes über die Abgrenzung der Gruppe wiedergegeben:

Benthani stellte in De Candolles Prodromus als § 2 der Sektion VIII
(Omphalospora) die Gruppe der Agrestes auf. Er zählte zu ihr die folgenden
Arten: V. crista-galli Stev. ; V. Buxbaumü Ten. (= V. Tournefortü Gm.); V. fili-
formis Sm.; V- agrestis L. mit den Unterarten: 1. V. pulchella Bast.; 2. V. didyma
Ten. (= V. polita Fr.); 3. V. opaca Fr.; V. violifolia Höchst, mit dem falschen
Synonym V. sinensis Fries. ; V- Aucheri Boiss. Wettstein (in Natürl. Pflanzen!.,
4. Teil, Bd. III hat die Benthamsche Gruppe in gleicher Fassung übernommen,
während Boissier (Fl. r. 1879, Bd. IV) einmal V- crista-galli abtrennte und mit
V- Griffithii Boiss. zu einer Gruppe vereinigte, anderseits F. Aucheri zur
Sektion Chamaedrys stellte. V- violifolia und V. sinensis kamen für Boissiers
Gebiet nicht in Betracht, V. agrestis, polita und opaca betrachtete er nach Fries
als eigene Arten und stellte neben sie dann noch V. cymbalaria Bertol., F.
cymbalarioides Blanche und V. hederifolia L., welche von Bentham als eigene
Gruppe der Cymbalariae (§ 3) aufgefasst wurden.

Ich kann mich in der Abgrenzung der Agrestes weder an Bentham noch
auch an Boissier unbedingt anschliessen, da zweifellos beide recht Verschiedenes
unter diesen Namen zusammenfassen. Sicher bilden einmal die Benthamschen
Cymbalariae eine eigene Gruppe; V. hederifolia und Y- cymbalaria sind gute
Arten, welche unter sich viel näher verwandt sind als etwa mit V. agrestis
oder Totimefortii. Zu ihnen hatte schon Boissier als dritte, allerdings zweifel-
hafte Art F. cymbalarioides gestellt und weiterhin sind noch mehrere andere
ebenfalls schwächere Arten hinzugekommen (F. triloba Opiz, F. panormitana
Guss., V. sibthorpioides Debeaux et Degen u. a.), über deren Artwert im ein-
zelnen die Meinungen wohl auseinander gehen können, deren Zugehörigkeit
zum engsten Vervvandtschaftskreis der Cymbalariae aber ausser jedem Zweifel ist.

Sodann müssen F. crista-galli und F. sinensis von der Gruppe Agrestes ab-
getrennt werden. Beide sind vor allem durch die paarig verwachsenen Kelchblätter,
die Zähnung derselben u. a. von der Agrestes verschieden, unter sich aber so nahe
verwandt, dass Fresenius (Bot. Zeitschr., 1844) mit vollem Recht F. sinensis als ein
Diminutivum von F. crista-galli bezeichnet. Immerhin unterscheiden sie sich
in mehreren Punkten sehr auffallend; so in der Samenzahl, Grösse und Zähnung
der Kelchblätter und auch darin, dass bei F. crista-galli das eine Kapselfach
meist abortiert, bei F. sinensis aber nicht. Im ganzen dürfte F. crista-galli den
Cymbalariae näher stehen, F. sinensis aber den Agrestes. Ob nun V- Griffithii,
wie Boissier will, auf Grund der paarig verwachsenen Kelchblätter und der
Cochlidiospermie zu diesen beiden Arten gestellt werden muss, möchte ich
einstweilen unentschieden lassen, da gewisse Charaktere von Griffithii dieser
Vereinigung entgegen zu sein scheinen. Jedenfalls wäre für diese Gruppe der
Name Diplophyllum wieder in Vorschlag zu bringen, welchen seinerzeit
Lehmann (Mag. Ges. Naturf. Fr. Berl., VIII, 1814) als Gattungsname für V-
crista-galli und V. Griffithii aufstellte.

3271 Scrophulariaceae. 327

Wir kommen nun zu V. Aucheri und V. violifolia. Die erste von beiden
war sicher mit Recht, wie schon erwähnt, durch Boissier von den Agrestes
abgetrennt worden; ob ihre Stellung bei den Chamaedrgs als endgültig be-
trachtet werden kann, ist eine andere Frage, welche hier nicht erörtert werden
kann. Zweifelhafter ist es, ob V- violifolia ebenfalls abgetrennt werden sollte.
Wenn ich mich trotz der grossen Ähnlichkeit der vegetativen Teile und auch
der Kapselgestalt mit den Agrestes, speziell mit V. filiformis Sm. dazu ent-
schlossen habe, so war dafür massgebend, dass die Samen dieser Pflanze, wie
schon Fresenius (Bot. Zeit., 1851) richtig hervorhob, nicht tief ausgehöhlt,
sondern plan sind. Es existiert zwar insofern ein Übergang zu V. filiformis,
als bei ihr die Samen bei weitem nicht so stark konkav sind, wie z. B. bei
V. Tournefortii, manchmal sogar fast plan werden: Ledebour (Fl. ross., III)
nennt sie plano-convexiuscula, was aber von Boissier (Fl. or., IV) als Irrtum
hingestellt wird. Die Wahrheit liegt in der Mitte. Zudem bin ich weit davon
entfernt, besonders nach den Untersuchungen Bachmanns (Die Entwickelungs-
geschichte und der Bau der Samenschale der Scrophnlariaceen in Nova act.
Leop. Carol., Halle 1880) und meinen eigenen Erfahrungen, der Cochlidio-
spermie einen so grossen systematischen Wert beizumessen, wie es etwa
Bentham in De Cand., Prodr. tut. Die Cochlidiospermie kommt in verschiedenen
Gruppen, nach Bachmann z. B. auch bei Teucrium vor. Man würde aber,
wollte man ihr jede systematische Wertung absprechen, ins andere Extrem
verfallen und man müsste dann wohl noch eine Reihe anderer Arten, vor
allem V- ceratocarpa C. A. Mey. mit unserer Gruppe vereinigen, wodurch die-
selbe ihre Einheitlichkeit verlöre. Es scheint mir unter diesen Umständen
natürlicher, die Gruppe Agrestes, speziell V. filiformis von solchen Formen mit
planen Samen, welche aber im übrigen den Agrestes sehr nahe stehen, wie eben
V. violifolia Höchst., V- ceratocarpa C. A. Mey. herzuleiten, sie aber nicht mit
ihnen zu vereinigen. Dass V. filiformis Sm. perennierend ist, wie Bornmüller
(Beih. Bot. Centrbl., 1907, Bd. XXII. Abt. II) richtig hervorhebt und wie ich
mich an lebendem Material, welches ich von Haage und Schmidt in Erfurt
unter dem Namen Y. polita bezog und was jetzt im Botanischen Garten in
Dahlem kultiviert wird, überzeugen konnte, kann uns nicht veranlassen, die
sonst der V- Tournefortii so überaus nahestehende Art von der Gruppe zu
trennen; kann man ja sogar gewissermassen Übergänge zum Perennierend-
werden auch bei V. Tournefortii bemerken, indem nicht selten im Herbst die
niederliegenden Stengel in den Blattachseln neue Sprosse treiben, die dann
oft überwintern, um im Frühjahr oder noch im Winter zur Blüte und Fruchtung
zu gelangen. Nur zerfallen dann die niederliegenden Stengel bei V. Tourne-
fortii bald, während sie bei V. filiformis zusammenbleiben und im letzteren
Falle viel weitergehende Verzweigungen zustande kommen.

Es bleiben somit für unsere Gruppe die folgenden fünf Arten übrig:
V. agrestis L., V. polita Fr., V. opaca Fr., V. Tournefortii Gm., V. filiformis Sm.,
zu der sich noch eine sechste neu zu beschreibende: V. siaretensis gesellt.

Für sie gilt die folgende Diagnose der Gruppe Agrestes:

Herbae annuae vel perennes, radix fibrosa, caules decumbentes, pilosi,
saepius radicantes. Folia caulina opposita, floralia alterna, subconformia, ovata
vel oblongo-ovata. Pedicelli in axillis foliorum floralium solitarii, fructiferi
recurvi. Oalyx 4-partitus, segmentis subaequalibus. Corolla rotata, tubo
brevissimo. Capsula a latere compressa, didyma, loculis pleiospermis, semin a
plus minusve cyathiformia, facie concava dorso convexa.

328 U. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [328

1823. Lehmann, Ernst. Veronica heäerifolia und Cymbalaria. (Allg. Bot.
Zeitschr., XIV, 1908, p. 70—71.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1824. Malinvaud, Ernest. A propos du Linaria origanifolia L. et du
genre Chaenorrhinum Lge., en repouse ä des observations de Eouy.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 3U— 317.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1825. Mariz, B. Joaquim de. Subsidios para o Estudo da Flora
Portugueza. As. Verbasceas. (Bolet. Soc. Broteriana, XXIII, 1907, p. 23
bis 50.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1826. Menezes, C. A. Notice sur les especes maderienues du
genre Scrophularia. Funchal 1908, 11 pp.

Vgl. folgende Arbeit.

1827. Menezes, Carlos A. Scrophulariae maderenses. (Rep. spec. nov.,
V, 1908, p. 213-216.)

Ex: Menezes, Not. sur les esp. mad. du genre Scrophularia. Funchal 1908.
Siehe „Pflanzengeographie".

1828. Othmer, B. Limnophüa heterophylla Benth. (Garten weit. XIII,
1907/08, p. 15, 2 Textfig.)

Die Textfiguren zeigen sterile und blühende Pflanzen.

1829. Pereira, Coutinho Antonio Xavier. As Escrophulariaceas de
Portugal. (Extr. aus Bol. Soc. Brot., XXII, 1907, 8<>, 107 pp., mit einer Taf.)

91 Arten; darunter ist Linaria Ricardoi, P. Cout. n. sp. für das erste
Mal beschrieben und gezeichnet. A. Luisier.

1830. Petrie, D. Description of a New Species of Veronica (Linn.)
[V. Astoni sp. nov.]. (Trans. New Zeal. Inst. Well., XL, 1907, p. 288-289.)

Siehe Fedde, Rep. nov. spec. N. A.

1831. Pöwerlein. H. Die Rhinantheen Niederbayerns. (Jahresber.
Naturw. Ver. Landshut, XVIII, 1908, 33 pp.)

Ref. konnte die Arbeit nicht einsehen. Vgl. unter „Pflanzengeographie
von Europa".

1832. Rehnelt. Rehmannia angulata. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 362,
2 Textfig.)

Die Abbildungen zeigen blühende Pflanzen.

1833. Riebe, H. Veronica Traversi. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 160—161,
Abbildung.)

Die Abbildung zeigt eine schöne blühende Pflanze in Kew Gardens.

1834. Rony, d- Notices floristiques (suite). Un peu de biblio-
graphie II. 5. Pedicularis rhaetica A. Kerner. (Bull. Soc. Bot. France, LV,
1908, P. 126—128.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1835. Seniler, ('. Alectorolophus- Studien (Forts.). (Allg. Bot. Zeitschr.,
XIV, 1908, p. 2—4, 18—19, 36—37, 116-119.) N. A.

Betrifft: A. Kerneri Stern., A. Freynii Stern., .4. contrinensis n. sp., A.
abbreviatus Stern., A. Sagorskii Seml. n. sp., A. glandulosus var. Malyi Behr. et
Seml., nov. var.

1836. Sper]ficll, Adolf. Ist bei grünen Rhinanthaceen ein von
einem pflanzlichen Organismus ausgehender äusserer Keimungs-
reiz nachweisbar. (Ber. D. Bot. Ges., XXVI a, 1908, p. 574—587.)

329' Scrophulariaceae. Scytopetalaceae. 329

Siehe auch „Chemische Physiologie".
Die Ergebnisse präzisiert Verf. wie folgt:

1. Das Keimprozent wird durch die Anwesenheit eines höheren pflanzlichen
Organismus bei Samen von Melampyrum silvaticum deutlich erhöht, es
hat demnach eine Anzahl von Samen dieser Pflanze zur Keimung den
Reiz des Wirtes nötig; für die Samen von M. arvense und Alectorolophus
ist es wahrscheinlich, dass deren Keimung in gleicher Weise, aber im
schwächeren Grade beeinflusst wird.

2. Ein von abgestorbenen Teilen höherer Pflanzen oder von Humusstoffen
ausgehender Keimungsreiz ist für die Samen der drei untersuchten
Pflanzenarten vollkommen ausgeschlossen.

3. Die Entscheidung, ob ein Same der genannten drei Pflanzen eine längere
oder kürzere Ruheperiode durchzumachen hat, erfolgt mit grosser Wahr-
scheinlichkeit schon in der Zeit bis zur erlangten Reife. Eine nach-
trägliche Beeinflussung der Ruheperiode von äusseren Faktoren konnte bis
heute für die hier in Frage kommenden Samen in keinem Falle nach-
gewiesen werden.

4. Rücksichtlich des Verhaltens bei der Keimung steht M. arvense der
Gattung Alectorolophus näher als dem eigenen Gattungsgenossen M- sil-
vaticum, eine Beziehung, die sich nach den bald erscheinenden Studien
Heinrichers auch mit Rücksicht auf andere Lebenserscheinungen fest-
stellen lässt.

1837. Westling, R. Om ständarhären hos svenska Yerbascum-
arter. (Über die Haare der Staubfäden bei den schwedischen Ver-
bascum- Arten.) (Svensk farm. Tidskr., 1908, 21, 8 pp., ill.)

Über diese, Referenten unzugängliche Arbeit berichtet Grevillius im
Bot. Centrbl , CXI, p. 45 wie folgt: In den vorliegenden, als vorläufige Mit-
teilung zu betrachtenden Artikel belichtet Verf. über die Haare der Staubfäden
bei Verbascum phlomoides L., V. thapsiformc Schrad., V. Thapsus L., V. nigrum
mit var. glabrescens Hu. und f. leucandrum Aresch., V. Lycltnitis L. und V. nigrum
L. X Thapsus L.

Die Haare zeigen bei den meisten Arten, ja sogar bei den Varietäten
konstante Verschiedenheiten, welche öfters, z. B. bei Hybriden, zuverlässiger
als die morphologischen Merkmale zu sein scheinen.

V. phlomoides und thapsiforme sind betreffs der Haare — wie auch in
bezug auf Aussehen und Bau der Krone - - einander sehr ähnlich.

Das Aussehen der Haare bei V- nigrum f. leucandrum deutet an, dass
diese Form vielleicht eine Hybride zwischen nigrum und Lgchnitis ist.

In der Drogue „Flos Verbasci" hat Verf. nie Blüten von V. thapsus ge-
funden: Drogue liefert dagegen V- phlomoides, wahrscheinlich auch thapsi-
forme Schrad.

1838. Zahn, E. Veronica salicifolia, (Gartenfl., LVII, 1908, p. 188, Abb.)
Die Figur zeigt blühende Pflanze.

Seytopetalaceae.
Neue Tafel:
Rhaptopetalum sessilifolium Engl, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 96.

1839. Tieghem, Ph. van. Rhaptopetalaceae novae. (Rep. spec. nov., V,
1908, p. 118-122.)

Ex: Ann. Sei. Nat. Paris, 9. sei., I, 1905, p. 321—388.

330 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. 1 330

Simarubaeeae.

Neue Tafel:
Trvingia Barteri Hook. fil. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 75.

1840. DrabMe, E. Irvingia gabanensis Aubry-Lecompte. (Journ. Inst,
comm. Rec. Tropics, III. 1908, p. 20, 1 pl.)

Siebe „Anatomie".

18-41 . (iilling, Ch. The constituents of Simaruba bark. (Pharm.
Journ., LXXX, 1908, p. 510—513.)

1842. (iilling, Ch. The active constituents of medicinal Sima-
rubaceous plants. (Pharm. Journ., LXXXI, 1908, p. 30, 103—104.)

Siehe beide „Chemische Physiologie".

1843. Müller, R. Zur Anatomie der Aüanthus- Rinden. (Pharm.
Praxis, VII, 1908, p. 261—263, eine Abb.)

Siehe „Anatomie".

1844. Tieghem, Ph. van. Aüanthus et Fongelion nova specie auctum.
(Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 191—192.)

Ex: Ann. Sei. nat. Paris Bot., 9. ser., VI. 1906, p. 272-280.

1845. Tieghem, Ph. van. Irvingiaceae novae. (Rep. spec. nov.. V, 1908,
p. 14«J — 155.)

Ex: Ann. Sei. nat. Paris, 9. ser.,'l, 1905, p. 247—320.

1846. W[agner], R[n<lolph]. Über neue und wenig bekannte Ailanthus-
Arten. (Östr. Gartenztg., III, 1908, p. 195 — 197.)

Betrifft A. Vilmoriniana, Giraldii, sutcJmensis, grandis usw.

Solanaceae.

Neue Tafeln:
Benthamiella montana Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 4, fig. 3, tab. 8,

i'ig. 33 — 35.
Datlira cJitorantha in Rev. Hortio, LXXX, 1908, tab. col. ad p. 302.
Discopodium penninervium Höchst, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 136.
Fabiana glandulosa Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 5, fig. 3—4,

tab. 8, fig. 32.
Grabowskia Spegazzinii Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 4, fig. 2,

tab. 8, fig. 28—31.
Solanum Commersonii Dun., diverse Kulturformen in Journ. Linn. Soc. Lond.,

XXXVIII, 1908, pl. 39, 40, 42. 43.
S- etuberosum Lindl., Typ und Formen, 1. c, pl. 46 — 48.
J§. Maglia Schlecht., 1. c, pl. 38.

S. Sabini de Wild, in Ann. Mus. Congo, II, fasc. 3, 1908, tab. LXXIV.
S. tuberosum L. var. in Journ. Linn. Soc. Lond., XXXVIII, 1908, pl. 45.

1847. Allard, E. J. Fabiana imbricata. (Garden, LXXII, 1908, p. 511,
Figur.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

1848. Anonymus. Pollination of tomatoes. (Journ. Board Agric,
XV, 1908, p. 517—518.)

Nicht gesehen.

1849. Choslowsky, J. von. Die Kartoffelpflanze. Untersuchungen
über Form- und Gewichts Veränderungen sowie Translokation der Stärke
während der Vegetationszeit. Rostock 1908, 8°, 71 pp., 8 Taf.

Siehe „Agrikulturbotanik".

331] Siinarubaceae. Solanaceae. 33 \

1850. Colombano, A. Sulla solanina estratta dai germi e dai fiori
del Solanum tuberosum L. (Gazz. chim. ital., XXXVIII, 1908, p. 19 — 37.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1851. Oomes, 0. Sülle varietä tipiche della Nicotiana Tabacum L.
(Boll. tecnico Coltiv. Tabacchi Scafati, VII, 1908, p. 3—49.)

Nicht gesehen.

1852. Comes, 0. Prospetto delle razze di tabachi. (R. Scuola sup.
Agric. Poritici, 1906, p. 171—175.)

Nicht gesehen.

1853. Dowzard, W. Hyoscyamus muticus. (Amer. Journ. Pharm., LXXX,
1908, p. 201—204.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1854. Druery, Chas. T. The Origin of the Potato. (Gard. Chrom,
3. ser., XLIII, 1908, p. 154—155, fig. 61 — 6(3.)

Bericht über einen Vortrag von Sutton in der Linnean Society.

1855. Evvart, A. J. and Tovey, J. R. The Thorn Apple (Datura Stra-
monium L.). (Journ. Dept. Agric. Victoria, VI, 1900, p. 672, 1 col. pl.)

Nicht gesehen.

1856. Fawcett, William. HistoricalNot.es on economic plants in
Jamaica — VII. Tobacco. (Bull. Dep. Agric. Jamaica, VI, 1908, p. 46—65.)

Technisch-Industrielles.

1857. G. und E. Solanum Lycopersicum L., Tomate, Liebesapfel
Paradiesapfel. (Gartenflora, LVII, 1908, p. 1—5, 2 Textfiguren und tab.
col. 1568.)

Vorwiegend gärtnerische Plauderei. Die Tafel zeigt zwei Frucht-
sorten.

1858. Griffon, Ed. Recherches sur la Xenie chez les Solanacees.
(Bull. Soc. Bot. France, LV. 1908, p. 714—720, pl. XX.)

Siehe im Kapitel über Descendenz etc.

1859. Griffon, Ed. Nouveaux essais sur le greffage des plantes
herbacees. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 397—405.)

Betrifft meist Solanum- Arten. Vgl. in Kapitel über Descendenz etc.

1860. Heckel. Sur les mutations gemmaires culturales du
Solanum Maglia. (Rev. hortic. Marseile, LIV, 1908, p. 160—162.)

Siehe „Variation" usw.

1860a. Heim, F. Mode de ramification et d'inflorescence de
Browallia viscosa H. B. et K. (B. Czerniakowskii Warsc. = B. pulchella Hort.)
(Solanac). (Notes de Bot. pur. et appl., 1908, 2 pp.)

Siehe „Just 1909".

1861. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie von Nicotiana affinis
Moore. (Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908. p. 442—444, 5 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1862. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie einiger Solanum- Arten.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 535—536, 2 Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

1863. Heineck. Verlauf des Blütenlebens bei Atropa Belladonna L.
(Naturw. Wochenschr., N. F., VII, 1908, p. 377—378, eine Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

332 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [332

1864. Kiltz, H. Versuche über den Substanzquotienten beim
Tabak und den Einfluss von Lithium auf dessen Wachstum. (Diss.
Bonn 1908, 8», 28 pp., 4 Tab., 2 Taf.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1865. Klemt, F. Über den Bau und die Entwickelung der Sola-
naceenfrüchte. Berlin 1907, 8°, 35 pp.

Siehe „Anatomie".

1866. Kraemer, H. Some of the distinguishing morphological
characters of Belladonna and Scopolia. (Am. Journ. Pharm., LXXX, 1908,
p. 459—464, fig. 1-3.)

Nicht gesehen.

1867. Labergerie. Variations du Solanum Commersoni et du S. Maglia.
Paris 1908, 8°.

Siehe „Variation" usw.

1868. Leveille, H. Solanum et Physalis de Chine. (Bull. Soc. Bot.
France, LV, 1908, p. 202—209.) N. A.

Verf. gibt in seiner gewöhnlichen Art Diagnosen und Bestimmungs-
tabellen.

1869. Leveille, H. et Vaniot, E. Solanaceen nouvelles. (Le Monde
des Plantes, X, 1908, p. 37.) N. A.

Physalis Fauriei et Solanum anodontum aus China.

1870. Lntz, L. Sur la production detigesäl'aisselle desfolioles
d'une feuille composee. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 568—570,
pl. VHI.)

Betrifft die Tomate ( Lycopersicum cerasiforme X puriforme).
Siehe „Teratologie".

1871. Scotti, L. Eteranteria in Solanum citrullifolium A. B. (Malpighia,
XXII [IX— XII], 1908, p. 527-536.)

Siehe „Blütenbiologie". Fedde.

1872. Sterling, C. M. Histology of Hyoscyamus muticus- (Amer. Journ.
Pharm., LXXX, 1908, p. 361—368, fig. 1-5.)

Nicht gesehen.

1873. Satton, Arthur W. Notes on some Wild Forms and Species
of Tuber-bearing Solanums. (Journ. Soc. Linn. Lond., XXXVIII. 1908,
p. 446—451, pl. 38—49.) N. A.

Vgl. die Tafeln am Kopfe der Familie.

1874. Texnier, Le. Le Petunia: son Histoire. (Revue Hort., LXXX,
1908, p. 377—379.)

Die erste Art wurde 1760 von Commerson an den Ufern des Rio de la
Plata entdeckt, aber erst 1823 wurde sie (Pet. myctaginiflora) in Europa ein-
geführt.

1875. Vuillemin, Paul. Lobes interpetalaires d'origine staminale.
(Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, sess. extr., p. LIV— LX, 2 Fig.)

Siehe „Teratologie". Es handelt sich um Petunia.

1876. Winkler, Hans. Solanum tubingense, ein echter Pfropfbastard
zwischen Tomate und Nachtschatten. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908,
p. 595—608, 2 Textf.)

Siehe unter „Variation, Descendenz" usw.

1877. Witasek, J. Solani generis species et varietates novae.
(Rep. spec. nov, V, 1908, p. 163-166.) N. A.

3331 Stachyuraceae. Staphyleaceae. Sterculiaceae. Stylidiaceae. 333

1878. Wittmack, L. Das violette Solanum Commersonü. (Deutsche
Iandw. Ges., 1908, 1, 3 pp.)

Stachyuraceae.

1879. D-, W. Stachyurus praecox. (Gard. Chron., 3. ser., XLIII, 1908,
p. 19(3, fig. 83.)

Die Figur zeigt Blütenzweig und Blatt.

1880. Ronhaud, R. Stachyurus praecox. (Rev. Hortic, LXXX, 1908, p. 86
bis 88, fig. 28—29.)

Die Figuren zeigen blühende Pflanze und Blütenzweig.

Stackhousiaceae.

Staphyleaceae.

Neue Tafeln:
Staphylea Bumalda S. et Z. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908,

tab. 40, fig. 14—27.
Turpinia pomifera DC, 1. c, fig. 1 — 13.

Sterculiaceae.

Neue Tafeln:
Dombeya Bruceana A. Eich, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 95.
Sterculia platanlfolia L. in Shirasawa Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908, tab. 51,

fig. 10—24.

1881. Matthes, H. Zur Bestimmung der Kakaorohfaser. (Ber.
D. Chem. Ges., XLI, 1908, p. 400—403.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1882. S., T. A. Sterculia Alexandri (Kew Bullet., 1908, p. 137—139.)
Beschreibung der Art unter Benutzung der handschriftlichen Notizen

von Bolus.

1883. Ulbrieh, E. Sterculiaceae in Ule, III, Beitr. z. Flora der Hylaea.
(Verh. Bot. Ver. Brandenburg, L, 1908, p. 91—92.) N. A.

1884. Viguier, Rene. Recherches sur le genre Sezannella. (Bev. gen.,
Bot.. XX, 1908, p. 6—13, pl. 5.)

Die Befunde ergaben folgende Charakteristik der Gattung:
Genus der Sterculiaceae, Tribus der Lasiopetaleae. — Kelch mit fünf bis
zur Basis freien, ovalen, spitzen Sepalen, Knospenlage klappig. — Corolle völlig
abortiert. — Androeceum gebildet aus fünf alternisepalen Stamina mit grossen
extrorsen, in ihrem oberen Teil im Rücken an den Faden angehefteten An-
theren; Fäden zylindrisch, ohne Anhängsel, spitz zulaufend; Antheren mit vier
poriciden Pollensäcken; keine Staminodien. — Ovar aus fünf verwachsenen Car-
pellen gebildet; Griffel zweimal länger als Ovar, ihrer ganzen Länge nach in
eine zylindrische fächerige Säule zusammengeschweisst, von einem kugeligen,
nicht gelappten Stigma gekrönt. — Carpelle mit axiler Placentation mit zwei
Beihen horizontaler Ovula. — Achsenverlängerung kurz. — Frucht: kugelige
Kapsel ohne Stacheln mit einer medianen Furche auf jedem Fach, so dass sie
wie zehnklappig aussieht. ■ — Dehiscenz septicid? — Blätter einfach, fächerlappig
mit fächeriger Nervatur. — Zwei Arten: S. major und S- minor.

Stylidiaceae.

334 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. 1334

Styracaceae.

Neue Tafeln:
Halesia corymbosa B. et H. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon, IT, 1908,

tab. 65, fig. 14—25.
H. hispida B. et H., 1. c, fig. 1—13.

Symplocaceae.

Neue Tafeln:
Symplocos crataeyoides Ham. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908,

tab. 68, fig. 1-13.
S. japonica DG, 1. c, tab. 66, fig. 11 — 21.
8. myrtacea S. et Z., 1. c, tab. 68, fig. 14—23.
S. neriifolia S. et Z., 1. c, tab. 67, fig. 1—11.
S. prunifolia S. et Z., 1. c, tab. 66, fig. 1 — 10.
S. spicata Roxb., 1. c, tab. 67, fig. 12—22.

Tamaricaceae.

Neue Tafel:
Tamarix senegalensis DC. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 102.

1885. Bornmüller, J. Reaumuria kermanensis Bornm. spec. nov. (Rep.
spec. nov., V, 1908, p. 376—377.) N. A.

Theaceae.

Neue Tafeln:
Eurya japonica Thbg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908, tab. 53,

fig. 1-17.
E. ochnacea Szysz., 1. c, fig. 18—31.
Stewartia tnonadelpha S. et Z., 1. c, tab. 52, fig. 1 — 10.
Thea sasaquana Nois., 1. c, fig. 11 — 21.
Visnea Mocanera L. f. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 99.

1886. Anonym. Stuartia Malachodendron. (Gard. Ohron., 3. ser., XLIV,
1908, p. 133, Fig. 53.)

Die Abbildung zeigt einen Blütenzweig.

1887. Bald, C. Indian Tea, its Culture etc.. 2. edit. Calcutta 1908, 8°,
with 111.

Nicht gesehen.

1888. Bernard, Ch. en Welter, H. L. Bibliographisch overzicht [der
thee]. (Med. Pröfstat. Thee, Dept. Landb. Buitenzorg, 1908, 2, 32 pp.)

Nicht gesehen.

1889. Dn Pasquier, Panl A. Beiträge zur Kenntnis des Tees.
(Vierteljahrsschr. Naturf. Ges. Zürich, LIII, 1908, p. 295.)

Siehe „Chemische Physiologie" und „Pharmakognosie".

1889a. Pekelharing, N. R. Systematisch-anatomisch onderzoek
van den bouw der bladschijf in de familie der Theaceae. Diss., Groningen,
M. de Waal, 1908, 8°, 113 pp.

Hierüber berichtet Weevers im Bot. Centrbl.. CXIII, 1910, p. 322
folgendes:

Verf. untersuchte 68 Arten aus zwölf Genera; die meisten Arten gehören
zu den Theeae und Ternstroemieae, während aus den Bonnctieae nur das Genus Archy-
tea, aus den Pelliciereae und Asteropeieae keine Exemplare vorlagen.

3351 Styracaceae. Symploeaeeae. Theaeeae. Thymelaeaceae. Tiliaceae. 335

Die zwei wichtigsten Gruppen, die Theeae und Ternstroemiae bilden ein
Ganzes. Die einzelligen Haare, das Fehlen oder die unbedeutende Differen-
zierung der Nebenzellen der Stomata, die Kristallsternzellen und Sklerenchym-
zellen im Mesophyll sind Charaktere, die bei beiden Gruppen vorkommen,
jedoch den Bonnetieae fehlen. Anderseits bieten die Theeae in bezug auf die
Anatomie des Blattes keine Unterschiede, die eine Trennung von den Tern-
stroemiae ermöglichen. Das Genus Archytea wird durch die Entwickelung der
Nebenzellen der Stomata charakterisiert, zeigt nämlich den Typus der Rubiaeeae.

Die Genera Ternstroemia, Adinandra und Enrya besitzen jedes eine eigen-
tümliche Form ihrer Sklerenchymzellen, die anderen untersuchten Genera
der Theeae und Ternstroemiae nicht.

Aus den Untersuchungen Solereders schliesst Verf., dass die Blatt-
anatomie die Richtigkeit der Meinung Englers und Prantls bestätigt, die die
Theaeeae als eine besondere Familie von den übrigen Genera, womit sie von
Bentham und Hooker zu den Ternstroemiaceae vereinigt waren, durchaus ge-
trennt haben.

Theophrastaceae.

Thymelaeaceae.
Neue Tafeln:
Pimelia decussata in Rev. Hortic, LNXN, 1908, tab. col. ad p. 36, fig. B.
Lachnaea filamentosa (L.) Gilg in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 110.

1890. Christ, D. H. Daphne laureola L. var. arbuscida n. var. (Ber.
Schweiz. Bot. Ges., XVII, 1907 [1908], p. 256—257.) N. A.

1891. Mallett, G. B. The alpine and other Daphnes. (Gard. Chrom,
:;. ser., XLII1, 1908, p. 273—274.)

Mehr gärtnerische Plauderei.

Tiliaceae.
Neue Tafel:
Grewia occidentalis L. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 91.

1892. Barkill. J. H. and Finlow, R. S. The races of Jute. (Agric.
Ledger, 1907 [1908], 6, p. 41—137.)

Siehe „Agrikulturbotanik".

1893. Frieboes, \Y. Beiträge zur Kenntnis der Jute. (Rostock
1907, 8°, 68 pp.)

Nicht gesehen.

1894. Fries, Rob. E. Ett par fall af terminal inflorescens bild-
ning hos Tilia. (Svensk Bot. Tidskr., II, 1908, p. 325—332, eine Textfig.)

Ohne deutsches Resümee.

1895. Heineck. Beitrag zur Blütenbiologie und Beschreibung
einiger Abnormitäten des Blütenstandes bei Tilia platyphyllos Scop.
(Naturw. Wochenschr.. N. F., VII, 1908, p. 634—635, eine Fig.)

Siehe „Blütenbiologie".

Ferner Beschreibung von Inflorescenzen, die über der Anfügungsstelle
des Hochblattes noch diesen analoge Blätter tragen, in deren Achseln häufig
Knospen sitzen, die aber nie zum Austreiben gelangen.

1896. Spragne, T. A. Triumfetta cordifolia. (Kew Bullet.. 1908, p. 230
bis 233.) N. A.

Beschreibung der Art und neuer Formen.

336 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [336

Tremandraeeae.

1897. Anonym. Platytheca galioides. (Gard. Ohron., 3. ser., XLIV, 1908,
p. 290, Fig. 123.)

Die Abbildung zeigt eine blühende Pflanze.

Trochodendraceae.

Tropaeolaceae.

1898. Wagner, Rudolf. Tropaeolum Karstenii, eine neue Art aus

Kolumbien. (Östr. Bot. Zeitschr., LVIII, 1908, p. 435—439, eine Textf.)

N. A.
Turneraceae.
Neue Tafeln :

Hyalocalyx Dalleizetti Capit. in Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, pl. 5 (Details).

Wormskioldia lobata Urb., in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 106.

1899. Capitaine, L. Hyalocalyx Dalleizetti n. spec. Turneracee nou-
velle de Madagascar. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, p. 251—253,
pl. V.) N. A.

Ulmaceae.

Neue Tafeln:

Trema guineensis Schum. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas, 1908, tab. 30.
Ulmus campestris var. vulgaris Planch. in Shirasawa, Icon. ess. forest. Japon.,

II, 1908, tab. 15, fig. 10—21.
U- montana var. laciniata Trautv., 1. c, fig. 1—9.

1900. Chiej-Gamaechio, G. II bagolaro. (Annali R. Accad. d'Agricol-
tura, L, p. 273—3)1, Torino 1908.)

Der Aufschwung, welchen die Herstellung von Peitschenstielen zu Nole
Canavese (Piemont) in den letzten Jahren erfahren hat, veranlasst Verf. einiges
über den Zürgelbaum, insbesondere über seine Lebens- und Kulturbedingungen
mitzuteilen, um dessen Anbau zu fördern.

Der in ganz Italien spontan vorkommende Baum (Celtis australis) war,
bis etwa 1840, nur bekannt als eine zur Festigung lockeren und abschüssigen
Bodens geeignete Pflanze, deren Laub als Viehfutter und deren Holz zum
Brennen verwendet wurden.

Verf. beschreibt die Pflanze eingehend, nennt die zahlreichen volkstüm-
lichen Bezeichnungen für dieselbe, und gedenkt dabei anderer Nutzbarkeiten
ihrer Teile. Aus den Samen wird ein Öl gepresst, das als Tafelöl, in der
Medizin und als Brennmaterial Verwendung findet: aus den Rindenfasern
werden Taue gedreht, oder wird Packpapier bereitet: die Rinde dient überdies
als Gerb- und Färbemittel, das Holz ist zähe, elastisch, witterungshart und
wird nicht von Tieren zerfressen: lässt sich gut spalten, springt aber nicht:
es wird zu mannigfaltigen Zwecken, namentlich zu Jochen, Heugabeln, zu
Drechsler- und Einlegearbeiten benutzt. Verf. beschreibt dessen anatomischen
Bau und gibt die chemische Zusammensetzung (Aschenanalyse) desselben an.

Von anderen Arten werden in Italien hin und wieder als Zierbäume
kultiviert: C. cordata Dsf. und C. occidentalis L. aus Nordamerika, C. orientalis
L. (non Mill.), in zwei Varietäten, aus China und Japan.

Das folgende bezieht sich auf die technische Seite: Kultlirbedingungen
und -methoden des Baumes, dessen Vermehrung und Ertrag; technische Ver-
arbeitung des Holzes.

337] Tremandraceae. Turneraceae. Ulinaceae. Uinbelliferae. 337

Verf. macht noch auf die Eigentümlichkeit aufmerksam, dass die Fasern
sich gern drehen und dadurch gewundene Stämme hervorbringen: eine Be-
sonderheit, die er als erblich angibt. Manchmal kommen Schorfbildungen an
den Stämmen vor, oder es wird das Holz am Stammgrunde zersetzt und aus
den Wunden fliesst ein schwärzlicher Saft lieraus. Schädlich sind den jungen
Pflanzen die Wald- und Wühlmäuse, die Werre, Engerlinge; im Holze nistet
sich manchmal die Larve von Cossus h'gnipercla ein. Auf den Blättern leben:
Fusarium celtidis, Gyroceras celtidis, PJ/yllostida destruens und Sphaerotheca phy-
toptophüa. So IIa.

1901. [Gibson, H. H.] American forest trees. — 45. Slippery elm,
Ulmus fulva Michx., JJ- pubesccns Walt. (Hardwood Record, XXIII, 8, 1907,
p. 16-17, ill. et XXV, 1, 1907, p. 16, ill.)

Nicht gesehen.

1902. Lancy, C. C. The types of the American elm [Ulmus ameri-
canaj. (Gard. Mag., VII, 1908, p. 154—156, fig. 1—12.)

Nicht gesehen.

1903. Rotlirock, J. T. Hackberry, sugar berry (Celtis occidentalis
Linn.). (Forest Leaves, XI, 1908, p. 136-137. ill.)

Nicht gesehen.

1904. Seh. Ein lOOOjähriger Baum. (Gartenwelt, XIII, 1908, p. 69.)
Betrifft besonders die Ulme von Schimsheim in Rheinhessen, ca. 1000

Jahre, Stammumfang 15,5 m, Höhe jetzt nur 17 m.

Umbelliferae.

Neue Tafeln:
Annesorrhiza capensis Cham, et Schlechtd. in Thonner, Blütenpflanzen Afrikas,

1908, tab. 120.
Azorella trilobata Dus. in Ark. f. Bot., VII, 1908, No. 2, tab. 6, fig. 1—2 und

tab. 7, fig. 35—38.
Bupleurum gidezense O. et B. Fedtsch., Act. Hort. Petrop., XXVIII, 1908, tab. I.
Diplotaenia cachrydifolia Boiss. in Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908, tab. 8.
Meum athamanticum Jacq. in Karst, et Schenck, Vegetationsb., V, 1908, tab. 13

(Vegetationsb.).

1905. Baker, R. T. Actinotus Paddisoni. (Rep. spec. nov., V, 1908,
p. 158—159.)

Ex: Proc. Linn. Soc. N. S. Wales, XXX, 1905, p. 225—228.

1906. Bequaert, J. Cultuurproeven met gefasereerde Pastinaca.
(Handl. vlaamsch. nat.-en geneesk. Congres, XII, 1908, p. 206—212.)

Siehe „Teratologie".

1907. Boissien, Henri de. Note complementaire et rectificative
sur les Ombelliferes de Coree. (Bull. Herb. Boiss., 2. ser., VIII, 1908,
p. 641-643.) N. A.

Betrifft Peucedanam und Porphyroscias.

1908. Chabert, Alfred. Sur les Bupleurum Odontites L. part. et opacum
(Ces.) Lge. (Bull. Soc. Bot. France, LV. 1908, p. 437—439.)

Siehe „Pflanzengeographie".

1909. Christ, D. H. Eryngium alpinum X Bourgati = E. Zabeli Hort.
(Ber. Schweiz. Bot. Ges., XVII, 1908, p. 258-260.)

Beschreibung der Eltern uüd der Hybride.
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908> 3. Abt. [Gedruckt 16. 9. 1Ü.J 22

338 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogainen. [338

1910. Diels, L. Azorella Cockaynei. (Rep. spec. nov., VI, 1908, p. 98.)

N. A.

1911. Doiiiin, Karl. Monographie der Gattung Dicliscus (DC). (Sitzb.
Böhm. Akad. Prag, 1908, No. 10, 76 pp., 4 Taf.) N. A.

Der Inhalt der eingehenden Studie gliedert sich wie folgt:

Vorwort. Dicliscus (DC). 1. Morphologie der Vegetations- und Repro-
duktionsorgane. 2. Historische Bemerkungen und Nomenclatur. 3. Syste-
matische Stellung der Gattung Dicliscus. 4. Die geograpische Verbreitung und
die Entwickelungsgeschichte der Gattung Dicliscus. 5. Die landwirtschaftliche
Bedeutung einiger Arten. 6. Systematischer Teil, a) die systematische Ein-
teilung der Gattung Dicliscus, b) Analytischer Schlüssel zum Bestimmen der
Arten, c) Descriptio specierum. Die wichtigste Literatur für das Studium der
Gattung Dicliscus. Erklärung der Tafeln. Register.

Die systematische Gruppierung der Gattung erhellt aus folgender
Übersicht:

I. Eudidiscus.

Calycis dentes obsoleti vel minimi vix distincti.

Herbae annuae vel biennes, interdum perennes saepius glandulosae.
Gaules foliati, rarius scapi omnino nudi. Folia partita.

A Foliosi. — Caulibus foliatis.

A. Oliganthon.

Plantae annuae pusillae plerumque molliter glanduloso-hirsutae, radice
simplici tenui, caulibus sympodice compositis, pedunculis umbelliferis foliis
oppositis et terminalibus, umbellis paucifloris (floribus tantum 3 — 12), involucri
foliolis acutis paucis (saepe todidem ac umbellae radiis).

1. D. püosus- 2. D. cyanopetalus. 3. D. junceus. 4. D. ornatus.

B. Polyanthon.

Plantae biennes aut cum annuae tunc robustae elatioresque modo hir-
sutae vel glanduloso-hirsutae modo glabrae, caulibus monopodice compositis,
pedunculis umbelliferis terminalibus necnon e foliorum sinu egredientibus,
umbellis semper multifloris, involucri foliolis numerosis.

1. MXcrocarpon. Mericarpiis vix l3/4 mm longis.
5. D. Croninianus. 6. D- clachocarpus.

2. Macrocarpon. Mericarpiis insigniter longioribus.

7. D. Benthami. 8. D. glandulosus. 9. D. coeruleus. 10. D. compositus.
11. D. macropliyllus. 12. D. villosus. 13. D. glaucifolius. 14. D. bialatus.

C Perennes.

Plantae perennes, caeterum ut Polyanthon.

15. D. incisus. 16. D. procumbens. 17. D. microcephalus. 18. D. Homei-

Species haud satis notae:

19. D. tenuifolius. 20. D. pimpinellifolius.

A Scaposi. — Gaules foliati nulli, tantum scapi.

21. D. humilis. 22. D. scapiger. 23. D. Gillenae.

II. Pseudocalycina.

Galycis dentibus nunc 1 — 3 nunc omnibus sabulato-filiformibus protractis.
Plantae perennes eglandulosae. Folia pluria radicalia integra lobatave, caulina
valde diminuta.

24. D. hemicarpus. 25. D- Dusenii.

339] ümbelliferae. 339

III. Calycina.

Calycis dentibus 5 parvis sed conspicuis oblongo-triangularibus omnibus
aequalibus.

Plantae perennes eglandulosae.

26. D. saniculifolius. 27. D. celebicus. 28. D- geraniifolius-

1912. Doiuin. Charles. Tableau abrege des especes du genre
Trachymene. (Bull. Ac. Int. Geogr. Bot., XVIII, 1908, p. 481—494.)

Verf. gibt folgenden Scblüssel, den wir bier wiedergeben, weil das
Bulletin so wenig zugängig ist:

I. Sectio Platymene.

Plantae perennes virgatae vel suffruticosae ramis applanatis aut acutangulis
(raro subteretibus) saepe paucifoliatis subnudisve, foliis 1—2 plo 3 partitis ve
foliis superioribus ad bracteas minutas anguste lineares integras reductis.

A Umbellae compositae.

§§ Fructu turgidulo (angulis intermediis subprovectis) nee plane compresso.

1. Ramis plus minusve sed conspicue applanatis.
«) Ramis sterilibus multis flexuosis Tr. xeropliila.
ß) Ramis sterilibus paucioribus non flexuosis.
««) Rami floriferi erecti.

a) Umbellae paucae ramos planos terminantes Tr. compressa.

b) Umbellae numerosae saepe ramulos laterales abbreviatos graciles
anguste alatos terminantes.

* Caules stricti conspicue alati Tr. striata.

* Caules flaccidi angustissime alati Tr. filiform'is.
««) Rami floriferi insigniter deflexi Tr. pendula.

2. Ramis acutangulis vel subteretibus baud applanatis.
u) Caulibus nudis efoliatis, ramis acutangulis.

au) Rami erecti nee flexuosi Tr. juncea.

<ta) Rami conspicue flexuosi Tr. ramosissima.

ß) Caulibus saltem ad basin petiolis foliorum persistentibus instruetis,
ramis subteretibus Tr. teres.

y) Caulibus ramisque saltem ad medium conspicue foliatis.

*) Caulibus valde rigidis divaricatis tantum ad medium foliatis Tr.
disseeta.

*) Caulibus tenuibus totis foliatis.

00) Foliis tantum infimis partitis caeteris indivisis Tr. heterophylla-

°°) Foliis omnibus 1-plo vel subduplo tripartitis Tr. tenuissima.

§§ Fructu planissime compresso Tr. cirrhosa.

A Umbellae simplices Tr. haplosciadia.

II. Sectio Dendromene.

Frutices rarius suffrutices, ramis foliatis haud plane compressis, foliis
simplieihus integerrimis.

A. Fructu a latere plane compresso.

a) Foliis erectis vel patentibus.

u) Foliis vix 5 mm longis, ramis crebre foliatis.

* Umbellis fere sessilibus Tr. commutata.

' Umbellis longiuscule peduneulatis Tr. effusa.
ß) Foliis semper plus 5 mm longis.

* Plantae tuberosae, foliis c. 6—13 mm longis Tr. Eatoniae.

* Frutices vel suffrutices etuberosi.

22*

340 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [340

««) Foliis remotiusculis saepe plus 2 cm longis et c. 3 mm vel ultra
latis Tr. valida.

««) Foliis crebrioribus plus 1 cm longis et haud plus 1 mm latis Tr.
Maxwelli-

b) Foliis insigniter deflexis Tr. deflexa.

B. Mericarpiis turgidulis lateribus plus expansis nee plane compressis.
Australiae orientalis incolae.

a) Foliis omnibus integris.
«) Foliis anguste linearibus.

* Foliis brevibus c. 4 — 6 mm longis, ramis pro more breviter glanduloso-
pubescentibus Tr. erieoides.

* Foliis conspicue longioribus (saepe plus 2 cm), ramis pro more exaete
glabris Tr. linearifolia.

ß) Foliis euneatis Tr. euneata.
y) Foliis orbicularibus ovatis vel lanceolatis.
*) Foliis haud incrassatis Tr. Billardieri.
*) Foliis manifeste carnosis Tr. crassifolia.

b) Foliis inferioribus vel fere omnibus profunde 3 vel 5 lobis, rigidis
acutissimis fere pungentibus Tr. Stephensonii.

1913. Domin, Carl. Dichosciadium, umbelliferarum generis nomen
novum. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 104—105.) N. A.

Dichosciadium Dom. für Dichopetalum F. Muell. 1855, nee Thou. 1806.

1914. Domin, Karl. Zwei neue Umbelliferengattungen. (Beih.
Bot. Centrbl., XXIII, II, 1908, p. 291—297, tab. X.) N. A.

Verf. beschreibt zunächst die neue Gattung Neosciadium (mit N. glochi-
diatum Dom.), die neben Hydrocotyle gehört. Ferner die Gattung Homaloscia-
dium (mit IL. verticillatum Dom.), die sich eng an Didiscus anschliesst.

1915. Domin. Karl. Monographische Übersicht der Gattung
Centella. (Engl. Bot. Jahrb., XLII, 1908, p. 148—169.) N. A.

In Hinblick auf die Nomenclatur ist es zunächst interessant, dass Verf.
den Namen Centella beibehält, obgleich Solandra L. älter ist. Er schlägt vor,
Centella in die Liste der nomina conservanda aufzunehmen, weil Solandra schon
für eine Solanaceengattung eingebürgert ist.

Dann folgen morphologische und phylogenetische Bemerkungen, denen
sich der systematische Teil anschliesst, worin Verf. 20 Arten kurz bespricht.

1915a. Domin, Karl. Morphologische und phylogenetische
Studien über die Familie der Umbelliferen. I. Teil. (Bull, internat.,
XIII, 1908 [1909], Classe des sei. math. nat. et med. Prague, p. 108—152, 3 Tab.,
14 Textabb.)

Im ersten Abschnitt dieses Teiles spricht Verf. von der Keimung der
Umbelliferen, wobei er die bisher bekannten Tatsachen zusammenstellt. Dann
folgt ein zweiter Abschnitt über die Knollenbildung bei den Umbelliferen. Die
knollenförmig verdickten unterirdischen Teile mancher Umbelliferen sind im
allgemeinen aus einem verdickten Hypocotyl entstanden. Verf. schildert die
Knollenentwickelung bei Smyrnium perfoliatum. Interessant ist dabei, dass die
Cotyledonstiele in eine lange dünne Röhre verwachsen, unter der sich das
schon im ersten Jahre angeschwollene, ein kleines Knöllchen bildende Hypo-
cotyl befindet. Die Plumula sitzt an der Basis der röhrigen Keimblattstiele
und am oberen Ende des Hypocotyls. Es zeigt sich hierbei die morphologisch
interessante Tatsache, dass das Blatt (hier das Keimblatt bzw. der untere

341] Umbelliferae. 3-fcl

Teil der verwachsenen Keimblattstiele) unter gewissen Umständen die bio-
logische Funktion einer Wurzel übernehmen und nicht nur Wurzelhaare, sondern
wie hier, auch endogene Adventivwurzeln ausbilden kann. Bei Bunium ist
das gleiche zu beobachten. Auch bei Chaerophyllum bulbosum u. a. Verf.
schildert noch näher Biasolettia tuberosa Koch.

Ausser diesen Hypocotylknollen kommen auch echte Wurzelknollen vor,
z. B. bei den Arten von Oenanthe (subg. Eu-Oenanthe) usw.

Abschnitt 3 bringt vergleichende Untersuchungen über die Morphologie
der Vegetationsorgane. Zuerst werden die Blätter der Hydrocotyloideae be-
handelt, und zwar erstens die durch Stipularbildungen charakterisierten
Gattungen. Freie Nebenblätter besitzen alle Hydrocotyle-Avten. Für sie ist
ein deutlicher, von der Spreite scharf abgegrenzter und an der Basis nicht
scheidenartig verbreiteter, sondern schmal inserierter Blattstiel bezeichnend.
Zu diesem gehören zwei, in der Regel freie Nebenblätter von stets häutiger
Consistenz, die in Grösse, Form, Behaarung und in ihrer Lage variieren. Auch
Neosciadium Dom. besitzt freie Nebenblätter.

Angewachsene Nebenblätter finden sich bei den Arten von
Schizeilema Dom., sowie Hnanaea Cav. Merkwürdig sind die Stipularbildungen
bei den Boiclesiinae (Bowlesia R. et P. und Drusa DC.) Auch hier handelt es
sich um echte Nebenblätter.

Die Blattspreiten aller dieser Gattungen mit Nebenblättern werden eben-
falls besprochen.

Dann folgen die durch die Ausbildung der Scheiden charakteristischen
Gattungen, a) Mit durchaus einfachen Spreiten: Centella, Micropletira, Spananthe,
Dickinsia, Pozoa und Laretia. b) Mit durchaus oder meist geteilten Spreiten:
Mulinwm, Eremocharis, Bastillosia, Gymnophyton, Asteriscum, Bolax. c) Mit zum
Teil einfachen, zum Teil geteilten Spreiten: Azorella, Xanthosia- Hier gibt
Verf. eine kurze Übersicht der Haupttypen des Azorella-Bl&ttes.

Es folgen nun die durch den Mangel an Scheiden charakterisierten
Gattungen. Es sind : Didiscus, Homalosciadium, Trachymene, Pentapeltis, Schoeno-
laena, Hermas, Actinotus.

Des weiteren werden die Blätter der Saniculoideae besprochen, wobei
Verf. vor allem die merkwürdigen Blattbildungen bei der Gattung Eryngium ins
Auge fasst.

1916. Ealer, H. und Nordenson, E. Zur Kenntnis des Möhrencarotins
und seiner Begleitsubstanzen. (Zeitschr. physiol. Chem., LVI, 1908,
p. 223—236.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1917. Ewart, A. J. and Tovey, J. R. The Hemlock (Conium maculatum
L). (Journ. Dept. Agric. Victoria, VI, 1908, p. 416, 1 col. pl.)

Nicht gesehen.

1918. Hardy, J, Contribution a l'etude chimique de 1' Echinophora
spinosa. Montpellier 1908, 8°, 45 pp.

Siehe „Chemische Physiologie".

1919. Reynier, Alfred. Le groupe linneen Bupleurum Odontites dans
les Bouches-du-Rhöne. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 7—12.)

Vgl. auch „Pflanzengeographie von Europa". N. A.

Es handelt sich im wesentlichen um B. aristatum Barth, non Lge. und
die Varietät opacum Reyn.

342 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. |342

1920. Reynier, Alfred. Encore quelques mots sur le Bupleurum
aristatam Bartl. var. opacum. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 516 — 521.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa".

1921. Seefried, F. Über das Seseli glaucum der österreichischen
Botaniker. (Mitt. Naturvv. Ver. Steierm., XLIV, 1907/08, p. 198—212, Fig. 1
bis 7.) N. A.

Verf. unterscheidet zwei Arten: S. ausiriacum Wohlf. (Seselinia austriaca
Beck) und S. Beckii n. nov. (Seseli glaucum Beck).

1922. Tnnniann, 0. Über die Bildung der Luftlücken bei den
Wurzeln der Umbelliferen. (Pharmaceut. Centralh., 1907, p. 885—894,
Fig. 1-6.)

Die Untersuchungen betrafen: Torilis infesta Koch, Daucus carota L.,
Aegopodium Podagraria L., Pasiinaca sativa L., Heracleum Sphondylmm L.,
Angelica silvestris L., Bupleurum falcatum L. und Pimpinella Saxifraga L.

Siehe „Anatomie".

1923. Vogler, Paul. Variationsstatistische Untersuchungen an
den Dolden von Astrantia major L. (Beih. Bot. Centralbl., XXIV, 1, 1908,
p. 1—19, 6 Textf.)

Siehe unter Variation, Descendenz etc.

1924. Wolff. Eryngium Buchtienii Wolf f. n. spec. (Rep. spec. nov.,
VI, 1908, p. 24.) N. A.

Urticaeeae.

Neue Tafel:
Fleurya aestuans Gaudich. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 32.

Valerianaceae.

Neue Tafel:
Valeriana capensis Vahl in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 146.

1925. Purpus, A. Valeriana arizonica. (Gartenwelt, XIII, 1908. p. 101,
Abbildung.)

Die Abbildung zeigt blühende Pflanzen.

1926. Tiegliem, Ph. van. Orientation de l'ovule dans le pistil et
de l'embrjon dans la graine chez les Valerianacees. (Ann. Sei. Nat.,
9. ser., VIII. 1908, p. 176.)

Von den drei geschlossenen und verwachsenen Carpellen, die das unter-
ständige Pistill der Valerianaceen zusammensetzen, ist nur eines fertil. In
diesem ist das einzige Ovulum an der Spitze des inneren Winkels des Faches
angeheftet, anatrop, hängend, mit lateraler Raphe, mithin exonast und mit
tangentieller Symmetrieebene. Im albumenlosen Samen ist der ölige und
stärkereiche Embryo umgestülpt und der Raphe anliegend. In der Frucht ist
also die Medianebene des Embryo radial. Es zeigt sich mithin hier dasselbe
Verhalten wie bei den Borragineen und Caprifoliaceen.

Verbenaceae.

Neue Tafeln:
Callicarpa japonica Thbg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon.. II, 1908,

tab. 70, fig. 11—19.
C. mollis S. et Z., 1. c, fig. 20—27.
Clerodendron formicarum Gurke in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908. tab. 134.

343' Urticaceae. Valerianaceae. Verbenaceae. Violaceae. 343

Clerodendron trichotomum Thbg. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., IL.

1908, tab. 70, fig. 28-36.
Premna japonica Miq. in Shirasawa, Iconogr. ess. forest. Japon., II, 1908, tab. 70,

tab. 1 — 10.

1927. Asashima, Y. Über das Sakuranin, ein neues Glycosid der
Verbena officinalis A. (Arcb. der Pharm., CCXLVI, 1908, p. 259—272.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1928. Bourdier, L. Über das Verbenalin, das Glycosid der Verbena
offiänalis. (Arch. der Pharm., CCXLVI, 1908, p. 272-281.)

Siehe „Chemische Physiologie".

1929. Hayek, A. v. Verbenaceae austro-americanae. (Englers Bot.
Jahrb., XLII, 1908, p. 162—173.) N. A.

Neue Arten von Verbena, Lippia, Lantana, Citharexylon, Duranta, Aegi-
phila, Cornutia, Clerodendron.

1930. Hnber, Jacques. Neue Arten von Vitex aus dem Amazonas-
gebiet. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 307—308.)

Ex: Bol. do Mus. Goeldi, V, 1908. p. 209-222.

1931. Maiden, J. H. Weeds of New South Wales. A Blue Weed
{Verbena venosa Gill. et Hook.) (Agric. Gaz. N. S. Wales, XVJ, 2, 1905,
p. 705—706.)

1932. Maiden. J. H. Weeds of New South Wales. Pourple-Top
or Wild Verbena (Verbena bonariensis Linn.). (Agric. Gaz. N. S. Wales, XVII,
2, 1906, p. 800.)

Nicht gesehen.

1933. Mattei, G. E. Specie nuove, rare o critiche del R. Orto-
Botanico. Vitex litoralis A. Cunn. (Bol. Orto Bot. e Giard. colon. Palermo,
Palermo 1907, VI, p. 86—87, 8», 1 tav.)

1934. Schulz, 0. E. Ein neues Citharexyluni (C. Urbani) aus Jamaika.
(Rep. nov. spec, V, 1908, p. 193-194.) N. A.

Violaceae.

Neue Tafel:
Rinorea gracilipes Engl, in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 104.

1935. Becker, W. Violae exsiccatae. Lfrg. 8, No. 182—202. (Wellel-
xoda 1908.)

1936. Becker, W. Viola gracillima St. Hill., PI. rem. Bras. (1824), p. 275
var. incisa W. Becker, nov. var. (Rep. spec. nov., V, 1908, p. 46.) N. A.

1937. Becker, W. Viola nebrodensis var. pseudogracilis X splendida Becker
et Lacaita = V- Lacaitaeana Becker (hybr. nova). (Malpighia, XXII [IX
to XII], 1908, p. 522—526.) N. A.

1938. Boissieu, H. de. Encore quelques Violariees nouvelles
d'Extreme-Orient. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 467— 470.) N. A.

Betrifft: Viola- und Alsodeia- Arten.

1939. Boissieu, H. de. Note sur une Violariee nouvelle de l'Indo-
Chine francaise. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 33—34.) N. A.

Betrifft: Scyphellandra Pierrei sp. nov.

1940. Boissieu, H. de. Une seconde Violariee nouvelle d'Indo-
Chine. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 161—162.) N. A.

Betrifft: Alsodeia Thoreliana n. sp.

344 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [344

1941. Capitaine. Une Violette [Viola canina] virescente. (Bull. Soc.
Bot. France. LV, 1908, p. 405—407, fig. 1-4.)

Siehe „Teratologie".

1942. Erdner, Engen. Ein neuer Veilchen-Tripelbastard Viola
(hirta L. X odorata L.) X saepincola Jord. Rasse cyanea Cel. pro spec. =
V. permixt a Jord. X saepincola Jord. Rasse Cyanea Cel. pro spec. = V.
neoburgensis Erd. (Allg. Bot. Zeitschr., XIV, 1908, p. 72—73.) N. A.

1943. Gäyer, Gynla. Bemerkungen über die einheimischen Arte n
der Veilchengruppe Plagiostigma. (Eng. Bot. Bl., VII, 1908, p. 39— 4L
Engarisch und deutsch.)

Siehe „Pflanzengeographie von Europa" .

1944. Gerstlauer, C. Viola polychroma Kerner und ihre kleinblütig e
Form. (Mitt. Bayr. Bot. Ges., II, 1908, p. 134—136, 143—145.)

Verf. gelangt zu der Annahme, dass Viola arvensis Murr., wie das klein-
blütige wohlriechende Ackerveilchen Augsburgs nichts anderes sind, als auto-
game, zur Kleistogamie neigende Formen der V- tricolor L. und V- polychroma
Kerner.

1945. Rony, G. Notices floristiques (suite). En peu de biblio-
graphie. (Bull. Soc. Bot. France, LV, 1908, p. 98—104.)

Vgl. unter „Pflanzengeographie von Europa". Verf. erwähnt, dass Viola
Dehnhardti Tenore nach Friedrich Dehnhardt, dem Autor des Catal. plant,
horti Camaldulensis, Neapel 1829, benannt wurde.

1946. Ule, E. Violaceae in Beitr. Flora Bahia, I. (Engl. Bot. Jahrb.,
XLII, 1908, p. 230 -231.) N. A.

Neue Hybanthus- Arten.

1947. Wunderlich, A. Eber das Viola -R\it in. [Viola quercitrinj
(Arch. der Pharm., CCXLVI, 1908, p. 224.)

Siehe „Chemische Physiologie".

Vitaceae.

Neue Tafel:
Leea macropus K. Seh. in Ic. Bogor., III, fasc. 3, 1908, tab. CCLVI1I.

1948. Colin, Ch. Etüde de quelques parties de la groupe d'un
hybride de greffe de Vigne. (Rev. bretonne de bot. pure et appliquee,
1906, avec figures.)

Nicht gesehen.

1949. Geröme, J. Vitis [Cissus] gongylodes. (Rev. Horticole, LXXX, 1908,
p. 202—203, fig. 79.)

Die Figur zeigt Früchte und Samen.

1950. Graebner, P. Die Benennung der wilden Weinarten unserer
Gärten. (Gartenfl., LVII, 1908, p. 59—67.)

Verf. wendet sich im wesentlichen gegen Reh ders Auffassung, wonach
unter Parthenocissus quinquefolia die Formen der selbstkletternden wilden
Weine zu bezeichnen sind, wogegen unsere gewöhnlich so benannten wilden
Weine P. vitacea heissen müssen.

Die Einzelheiten wolle man im Original nachlesen.

1951. Hedrick, U. P. The grapes of New York. (Rept. New York
agric. Expt. Stat., 1907, II, Albany 1908.)

Nicht gesehen.

345] Vitaceae. Vochysiaceae. Zygophyllaoeae. 345

1952. Hofmann, K. Beiträge zur Anatomie und Jahresring-
bildung der Vitaceen. Dissert., Berlin 1908.

Hierüber berichtet Denys im Bot. Centralbl., OXI1I, 1910, p. 386 folgendes:
Verf. bat die Gattungen Vitis, Parthenocissus und Ampelopsis untersucht. Vitis
ist gegenüber Parthenocissus und Ampelopsis durch den Besitz von Trachei'den
mit steil aufsteigenden Spiralen im Spätholz ausgezeichnet. Ampelopsis ist
näher verwandt mit Vitis als Parth. es ist.

Parth. und Amp. sind durch undeutlich oder gänzlich unkenntliche
Jahresringe ausgezeichnet. Die Undeutlichkeit wird durch die gleichmässige
Verteilung der Gefässe auf dem Querschnitt und ihr bedeutendes Überwiegen
über die anderen Elemente hervorgerufen. Die Jahresringbildung ist an
schwächer entwickelten Stellen des Querschnittes deutlicher als in normalen
Partien. Zum Teil wird die Undeutlichkeit der Jahresringbildung dadurch
veranlasst, dass der wilde Wein während des ganzen Sommers ohne Unter-
brechung Blätter treibt. Die Wurzel enthält stets weniger Gefässe als der
Stamm, woraus sich zum Teil bei einigen Arten die deutlichere Bingbildung
ergibt. Durch Entlaubung Hessen sich bei P. quinquefolia keine geschlossenen
Ringe erzeugen.

1953. Rehder, Alfred. The New England Species of Psedera. (Rhodorar
X, 1908, p. 24-29.) N. A.

Verf. zeigt, dass Psedera Necker 1790 an Stelle von Parthenocissus und
Ampelopsis treten muss und nimmt die nötigen Änderungen vor.

1954. Schmitthenner, F. Verwachsungserscheinungen an Ampelopsis-
und p%'s-Veredelungen. (Zeitschr. Pflanzenk r. Int. phytop. Dienst., 1,1908,
p. 11—20, 6 Abb.)

Siehe im „Physiologischen Teile" des Just.

Vochysiaceae.

Zygophyllace ae .

Neue Tafeln:
Balanites aegyptiaca Del. in Thonner, Blütenpfl. Afrikas, 1908, tab. 73.
Zygophyllum macmpterum in Act. Hort. Petrop., XXVIII, 1908, tab. III, fig. 4.

(Habitus.)
Nitraria Roborowskii Kom., Act. Hort. Petrop., XXIX, 1908, tab. IV.

1955. Bews, J. W. Cases of Abnormal Germination in Seeds of
Peganum Harmala. (Trans, a. Proc. Bot. Soc. Edinbgh., XXIII, p. 342—343,
pl. XIV.)

Bei einigen Samen erscheinen die Cotyledonen zuerst an dem der Mikro-
pyle entgegengesetzten Ende oder sie erscheinen auch gleichzeitig mit dem
Würzelchen, das normal früher durch die Mikropyle auszutreten pflegt.

1956. Komarov, V. L. De Nitraria gener e. (Act. Hort. Petrop., XXIX,
1908, p. 151 — 176, tab. IV. Russisch.) N. A.

Verf. behandelt den ganzen Formenkreis und seine Auffassung erhellt
aus folgender Bestimmungstabelle:

. Folia omnia integra apice rotundata obtusa vel apiculata rarius acutius-
1. J cula — 2.

' Folia modo integra modo bi- vel tridentata vel omnia apice dentata — 4.

346 ^- K. Schneider: Morphologie und Systematik, der Siphonogamen. [346

3.

4.

Folia lineari-spathulata vel linearia, dnipa globosa pubescens inflato-

vesicaria, putamen angustum — JV. pliysocarim Maxim.
Folia oblonga spathulata vel obovata, drupa succosa ovoidea, putamen

ovato-conicum — JV. Schoberi (Gmel.) L. — 3.
Drupa major rubra succo pallido, putamine acuminato — ovoideo — JV.

Schoberi caspi Pall.
Drupa minor nigra v. obscura succo coerulescente, putamine ovoideo

parvo — JV. Schoberi sibirica Pall.
Folia parva vel mediocria, cyma abbreviata putamen trigonum sinuato

exsculptum — JV. retusa Forsk.
Folia in genere ampliora, cyma elongata, putamen ovoideum super-

ficialiter foveolatum JV. Roboroivskii Kom.
Siehe auch Fedde, Rep. nov. spec.

Abbey-Yates 1426.

Adamovic, L. 1760.

Adams, J. 133.

Aggs, H. 632, 633.

Aigremont 1.

Aigret, Ol. 1655.

Allan, J. A. 251.

Allard, E. J. 1314, 1567,
1847.

Almquist, S. 1656.

Arnes, Oakes 634, 635.

Anders, G. 2.

Anderson, M. P. 315.

Andrews, F. M. 580.

Annibale, E. 902.

Anonym 252, 407, 533,
636-668, 772, 773, 836,
837, 853, «65, 866, 987,
989, 1008, 1020, 1143,
1205, 1227, 1315, 1336
bis 1339, 1407, 1427,
1455, 1648, 1773, 1848,
1886, 1897.

Arber, E. A. N. 253, 254.

Arcangeli, G. 1494, 1495.

Arnott 554.

Arthur, J. C. 255.

Asashima, Y. 1927.

Ascherson, P. 669, 1741,
1742.

Asimont, W. F. 0. 1228.

Aubree, E. 1476.

Autorenverzeichnis.

Aznavour, G. V. 581.
Azzi, G. 1037 a.

B., J. B. 1591.
B., W. J. 1038, 1657.
Baccarini, P. 1193, 1553 a.
Baenitz, C. 1658.
Bagshawe, A. G. 833, 1051,

1451.
ßailey, L. H. 3, 134.
Bailey, W. W. 607, 1152.
Baker, E. G. 1340.
Baker, R.T.316,1481, 1905.
Bald, 0. 1887.
Balt'our 4.

Ball, 0. F. 1659, 1800, 1801.
Ball, C. R. 471.
Ball, O. M. 1452.
Balland 1229.
Balls. W. L. 1428, 1429.
Barber, 0. A. 1531.
Barcley, W. 1660.
Barsali, E. 1055, 1649.
Bartsch, G. 671.
Bates, C. S. 1304.
Baudon. A. 838.
Bauer, E. 1802.
Baumgartner, J. 1153.
Bayer, A. 317.
Beau, W. J. 822, 1418.
Beauverd, G. 463, 464,

582, 583, 1592, 1774.

Beccari, O. 774—776.
Beck von Maunagetta, G.

1021.
Becker, W. 1935—1937.
Beddome, R. H. 805, 1283.
Beeby, W. H. 1056.
Beguinot, A. 135, 472,

473,555,556,1022—1024,

1154, 1563.
Behnick, E. B. 672, 673,

777.
Behrens, W. 114.
Beijerinck, M. W. 1341.
Beiklie, J. 5.
Beule, L. 6.
Beissner, L. 256, 318.
Bellini, R. 257.
Bennett, A. 474, 791, 1803.
Bequaert, J. 1906.
Berg, F. 319.
Bergen, J. Y. 7.
Berger, A. 584, 818, 819,

867, 931,932, 1057, 1274,

1430, 1589.
Bergon, P. 677.
Berlin, N. J. 8.
Bernard, Oh. 1017, 1888.
Bernard, N. 674.
Bernätsky, J. 585.
Bernegan, L. 1342.
Bessey, E A. 258, 1461.
Betche, E. 294.

347]

Autorenverzeichnis.

347

Bews, J. W. 1182, 1955.
Bierberg, W. 579.
Blackader, E. H. 405.
Blanchard, W. H. 1661.
Blanck, E. 1169.
Blaringham, L. 475.
Blauw, A. H. 476.
Bliss, A. J. 1482.
Blossfeld, R. 67."».
Blum 136.
ßlumer, J. C. 137.
Bödeker 933—935.
Böhmer, G. 477.
Bohlin, K. 138.
Bois, D. 408. 409.823,841,

1504, 1538, 1621, 1775.

1804.
Boissieu, H. de 1532, 1907,

1938—1940.
Boüd, P. 478.
Bonati, G. 1805—1807.
Bonnet, E. E. 1025.
Bonstedt, C. 1808.
Boodle, L. A. 1155.
Boorsma, W. G. 1039.
Bornmüller, J. 428, 586,

1316, 1317, 1343, 1885.
Borzi, A. 9, 839, 1156,1183.
Boucher, V. 1475.
Boudret, E. 17.
Bouget 183.
Bourdier, L. 1928.
Bourquelot, E. 1505.
Bowles, E. A. 936.
Brand, A. 1574.
Brandza, G. 1290.
Brande], J. W. 320.
Braun, J. 1593.
Braun, K. 410.
Bremen 676.
Brenner, M. 1009. 1058

bis 1061, 1662, 1663,

1776, 1777.
Brettschneider 1664.
Bridges, S. J. 10.
Briem, H. 1157.
Briquet, J. 259, 897, 1318,

1344.
Brissemoret. A. 139.
Brittlebank, C. C. 1408.

Britten, J. 94.

Britton, N. L. 11, 260 bis

262,937,938,1052, 1126,

1431, 1720, 1778.
Broili, J. 479. '
Brookland. T. H. 140.
Brotherus, V. F. 141.
Brown, E. 123.
Brown, J. P. 903, 904.
Brown, N. E. 868, 869.
Brown, W. H. 1558.
Brunn, J. 142.
Bruno, A. 840.
Bruschi, D. 480.
Buchet, S. 124.
Buchheister, J. C. 1275.
Buchholtz, F. 143.
Büsgen, M. 12.
Buhlert, H. 1345.
Bunyard, G. 13.
Burgerstein, A. 321.
Burk, W. 144, 144 a.
Burkill, J. H. 145, 146 a,

462, 778, 1158, 1792.
Burlingame, L. L. 322.
Burtt-Davy, J. 95, 481.
Buscalioni, L. 226.
Buoch, N. 1159, 1160.
Busemann, L. 14.
Buser, R. 1665.
Butler, C. 96.
Buzek, E. 587.

Cabanes, G. 588.
Oalestani, V. 1161.
Callier 898.
Campbell, D. H. 788.
Camus, E. G. 677.
Camus, F. 1162.
Candolle, A. de 146b.
Candolle, C. de 884, 1453,

1559.
Cannarella, P. 1184.
Capitaine 1899, 1941.
Cash, J. T. 1230.
Cavalerie, J. 1622.
Cavers, F. 146.
Cavillier, Fr. 1346.
Cayeux, H. 880, 881.
Chabaud, B. 1062.

Chabert, A. 990, 1908.
Charabot, E. 1333 i, 1419.
Chase, A. 482-484.
Chassignol, F. 1409.
Cheeseman, T. F. 97, 438.
Chiej-Gamacchio, G. 1900.
Chifflot, J. 411, 1063.
Chiovenda, E. 485, 486,

1064.
Chipp, T. F. 991.
Chodat, R. 1578, 1810.
Choslowsky, J. v. 1849.
Christ, D. H. 1666, 1890,

1909.
Chrysler, M. A. 323.
Clark, J. 324, 812.
Clarke,C.B. 446—448, 806.
Clements, F. E. 263.
Clement, J. 1445.
Clos, D. 1581.
Clute, W. N. 589.
Coaz 147 a.
Cobelli, R. 1463.
Cockayne, L. 1065, 1432,

1721.
Cockerell, T. D. A. 1066,

1163, 1347, 1506.
Cogniaux, A. 678, 679,

1185—1187, 1447.
Coleman, W. M. 134.
Colin, Ch. 1948.
Colombano, A. 1850.
Coiozza, A. 1288, 1289.
Combes, R. 139.
Comes, O. 1851, 1851.
Commenda, H. 15.
Compton, R. H. 394.
Connell, E. CSD.
Conrad, H. 939.
Cook, M. T. 792, 1053.
Cook, O. F. 264, 1433.
Cook, Th. 428 a, 449. 465,

487, 1231.
Cooper. C. S. 87.
Cordemoy, J. de 1164.
Correvon, X. 412, 920.
Costantin, J. 265,266, 841.

1232.
Costanzo, G. 325.
Coste. H. 1045.

348 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik, der Siphonogainen. |348

Cotte, J. 1412.
Coulter, J. M. 400.
Coupin, H. 16, 17, 148.
Coville, F. V. 1778.
Cowles, H. 0. 268.
Cozzi, C. 18.
Crawford, A. C. 1206.
Crawshay, de B. 681.
Crete, L. 1355.
Crusius, C. 779.
üutting, E. M. 326.

D. 1207.
D., A. 1208.

D., W. 1209, 1623, 1879.
Dahlstedt, H. 1067, 1068.
Dallimore, W. 269.
Dammer, U. 682—687.
Darbishire, A. D. 1348.
Darlington, H. R. 413.
Darwin, C. 149.
Dauphine, A. 16, 888.
Davidson, A. 1624.
Davis, Oh. A. 1625.
Deane, A. 150.
Deane, W. N. 590—591.
Decrock, E. 1594.
Demcker, E. 19.
Dengler 327.
Densmore, H. D. 592.
Derganc, L. 1809.
De>ibere-Desgardes 1765.
Desruisseaux, A. 1188.
Dicks, A. J. 10.
Dickson, W. S. 344.
Diels, L. 688, 834, 1456,

1910.
Dix, W. 488.
Dobbiu, F. 151.
Dodds, G. S. 1694.
Dode, L.-A. 270, 1138,

1254, 1305, 1565, 1732,

1743, 1811.
Domin. K. 1319, 1667, 1911

bis 1915.
Dommes, H. 489.
Dop, P. 1422, 1423.
Dorety, H. A. 387, 388.
Doubek, M. 1189.
Dowzard, W. 1853.

Drabble, E. 20, 1280, 1454,

1840.
Drabble, H. 1280.
Druce, G. 689.
Druery, Ch. T. 1854.
Dubard, M. 1423, 1762.
Ducamp. L. 1533.
Dudgeon, W. 1069.
Dufour, L. 1070.
Dnnstan, W. R. 1349.
Du Pasquier, P. A. 1889.
Durafour, A. 1410.
Duret. W. 1411.
Dykes, W. R. 557.

E. 1857.

Eaton, A. A. 690, 691.
Eggleston, W. W. 1668.
Eichinger, A. 817 a, 1779.
Eichlam, F. 940.
Eldredge, C. G. 1139.
Eimer, A. D. E. 1233, 1284,

1333k, 1464, 1478, 1669,

1780.
Elwes, H. J. 21.
Emerson, A. J. 22.
Endlich, R. 414.
Engler. A. 152, 429.
Erdner, E. 1942.
Erikson, J. 226 a.
Ernst, A. 271.
Euler, H. 1916.
Evans, E. 23, 490.
Ewart, A. J. 593, 921,1071,

1165, 1320, 1575, 1855,

1917.
Ewert, R. 1781.

F, J. B. 1516.
Farrer, R. 24.
Faust, Fr. 153.
Fawcett, W. 842, 1856.
Fedde, Fr. 25, 26, 1200,

1670.
Fedtschenko, B. 1026.
Fernald, M. L. 450, 793,

1043, 1072, 1210.
Fernekess, K. 491.
Fiebrig, K. 1465.
Field, F. 780.
Fiet, A. 415.

Figert, E. 451, 1671.
Finet, E.-A. 691, 1626.
Finlovv, R. S. 1792.
Fiori, A. 1073.
Fischer, E. 27.
Fischer, H. 1812.
Fitzherbert, S. W. 558,

559, 922, 992, 1074, 1144.

1321, 1350.
Fletcher, J. J. 1657.
Fliehe, P. 1507.
Fobe, F. 941, 942.
Focke, W. O. 1672.
Forrest, G. 1595.
Forster, H. 328.
Fortier, E. 154, 150, 1196.
Fouillade, A. 272, 1722.
Fraine, E. de 128, 347.
France, R. H. 28, 156.
Francois, L. 157.
Franz, E. 1589 a.
Fredholm, A. 1351.
French, G. T. 1352.
Eric, 943.

Frieboes, W. 1893.
Friedel, J. 1434.
Fries, R. E. 441a, 1813,

1894.
Fries. Th. C. E. 1075.
Fritsch, F. E. 1312.
Fritsch, K. 273.
Fruhwirth,C, 158, 492,493.
Fucini, A. 944.
Fürstenberg, M. \. 692.
Furlani, J. 29.
Fyson, P. F. 1436.

G. 1857.

Gabelli, E. 1508.

Gage, A. T. 436.

Gagnepain, F. 273 a, 439,
549, 550, 631, 801—803,
889, 890, 912, 913, 999
bis 1003, 1027, 1273,
1333 g, 1457, 1458, 1562,
1579.

Gain, E. 1596—1598.

Gallagher, W. J. 442.

Gallaud 1232.

Gamble, J.S. 843, 870, 1404.

349]

Autorenverzeichnis.

349

Gammie, G. A. 693.
Gandoger, M. 1582.
Ganong, W. F. 30.
Gard, M. 1040.
Gates, R. R. 1517, 1518.
Gatin, C. L. 124, 274, 440,

441, 781.
Gaulhof er. K. 159. 430.
Gautier, L. 1814.
Gayer, G. 1943.
Geerts, J. M. 1519, 1520.
Gejer, M. 1275 a.
Geisenheyner, L. 1744.
Gehrmann, K. 1234, 1235.
Gentil, L. 31.
Gerard 1076, 1375.
Gerber, C. 1412.
Geremicca, M. 32.
Gericke, F. 1077.
Geröme, J. 1145, 1949.
Gerstlauer, L. 1944.
Geyer, M. 1078, 1079.
Giacomelli, E. 1301.
Gibbs, V. 275.
Gibson, H. H. 329—336,

813, 899, 905. 1255, 1306

bis 1308, 1353. 1483,

1745, 1746. 1901.
Gifford, J. 98.
Gilg, E. 844, 845, 1199,

1446, 1497.
Gilling, Ch. 1841, 1842.
Ginsbourg, B. 1354.
Girnsoli, C. 437.
Giunchi, D. 1459.
Glabisz, J. 871.
Gleason, H. A. 1566.
Goebel, K. 160, 227, 228,

1599.
Goeschke, F. 276.
Goeze, E. 337, 1211.
Goiran, A. 161.
Goldschmidt, M. 1275 b.
Gombocz. E. 1747.
Gordon, G. 33.
Goris, A. 1355.
Gorter, K. 1723.
Goss, W. L. 123.
Gow, J. E. 431. 432.
Graebener 277.

Graebner, P. 338. 1673,

1950.
Graves, A. H. 794.
Gravis, A. 34, 35.
Gravisi, G. 99.
Greene, E. L. 36, 824, 1080,

1539.
Greenman,J.M.1081, 1356.
Gregory, K. P. 393.
Greshoff, M. 573.
Gressler, P. 1082.
Grevsmühl, E. 1083.
Griffin, E. M. 339.
Griff on, E. 162, 1858, 1859.
Griffiths, D. 945.
Grignan, G. T. 560. 694,

923, 1084, 1213, 1496,

1674, 1782.
Grosse. A. 1479.
Gurke, M. 595, 946—961,

977. 1085, 1322.
Gueguen, F. 433.
Guffroy, Ch. 1524.
Gugler, W. 1086. 1086 a.
Guillaumin. A. 229, 927

bis 930.
Guiliiermond, A. 125.
Guinier, P. 340.
Guthrie-Smith. H. 494.
Guttenberg, H. v. 695.

H-, J. M. 1357.
H., T. 1087.
Hackel, E. 495-499.
Hacken berg, H. 1466.
Hagström, O. 795.
Hall, H. M. 100.
Hallier, H 278, 1313.
Harnet, R. 1146—1149.
Hanausek, T. F. 1088.
Handel-Mazzetti.H.v. 279.
Hardy, J. 1918.
Harms, H. 101, 856—859,

1358—1361, 1554.
Harper, R. M. 280.
Harrison. E. F. 1054.
Harshberger, J. W. 596.
Harvey, N. A. 37.
Hausmann. E. 597.
Hawson, F. E. 1540.

Hayata, B. 341, 342.
Haydon, W. T. 343.
Hayek, A. v. 102, 1929.
Hebert, A. 1402.
Heckel 1860.
Hedrick, ü. P. 1951.
Heering, W. 163.
Heim, F. 416, 1362, 1760 a.
Heimerl, A. 281,799, 1492

bis 1493.
Heine, C. 1437.
Heineck 164, 417, 443, 561,

598, 599, 860, 861, 863,

993, 1010, 1028—1030,
1166, 1190, 1197, 1236,
1276, 1323, 1324, 1541,
1629. 1630, 1647, 1675,
1760b, 1861 — 1863, 1895.

Heinricher, E. 126, 127,
600,878,1413,1509,1534,
1676.

Heller, A. A. 282, 1277,
1363, 1677, 1783, 1784.

Hemsley, W. B. 696, 798,

994, 1011, 1128, 1313a,
1333 h, 1628, 1763.

Hennis, W. 697.
Henriques, J. A. 103, 401,

1420.
Henry, A. 21.
Henry, L. 1510, 1511.
Henry, T. A. 1349.
Henslow, G. 230, 231,1167.
Heraud, A. 104.
Hertwig, 0. 165.
Herty, Ch. H. 344.
Hesse, O. 1583.
Hesselman, H. 345.
Hetschko, A. 1364.
Heyl, F. W. 1371.
Hickel, R. 346.
Hiern, W. P. 406.
Hildebrand, Fr. 166, 167,

885, 886, 1365, 1536,

1600, 1601.
Hill, A. W. 283, 1278, 1560.
Hill, E. J. 1214.
Hill, T. G. 128, 347. 402.
Himmelbaur, W. 348, 349.
Hitchcock, A. S. 500, 501.

350 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogarnen. [350

Hoch, H. 418.
Hochreutiner, B. P. G. 38,

284, 914, 1438.
Hock, F. 39, 434.
Hörold, R. 1215.
Hofmann, K. 1952.
Holm, T. 452, 453, 502,

562, 601, 602, 698, 864,

891, 1031, 1089, 1216,

1281. 1295, 1325, 1366,

1403, 1542, 1557, 1678.
Holmberg, O. R. 503.
Holmes, E. M. 825.
Holt, W. T. 168.
Hooker, J. D. 40, 882.
Hooper, H. 1416, 1543.
Hooper, E. M. 1759.
Houlbert, 0. 1367.
House, H. D. 1129—1132,

1576.
Houzeau de Lehaie, J. 504

bis 507.
Huber, J. 1930.
Huerre, R. 1679.
Hüll, F. G. 169.
Humphreys, E. W. 1334.
Hus, H. 232.
Husnot, T. 574, 575.
Hutchinson, J. 892, 1175,

1727.
Ichimura, T. 508.
Icones, Bogor. 41.
Ingham, W. 1032.
Inglese, E. 1133.
Iterson, G. van 233.
Irwing, W. 603, 604, 699,

1544, 1545, 1602, 1785

bis 1789.

Jackson, A. B. 1319.
Jackson, B. D. 40.
Jadin, F. 1475.
Janchen, E. 105—107,285,

1047, 1048, 1168.
Janczewski, E. 1790, 1791.
Janelli, G. S. 170.
Jaquet, F. 1680.
Jeffrey, E. C. 350.
Jepson, W. J. 1309, 1521.
Joclin, H. 16.

Joergensen, E. 700.
Johannsen, W. 1368.
Johannsson, K. 1090, 1091,

1631.
Johnson, D. S. 286.
Johnson, T. 115.
Jolyet, A. 351.
Jones, M. E. 1748.
Jordan, D. S. 287.
Jörns, M. J. 1018.
Jouin, E. 352, 1194.
Jowitt, J. F. 509.
Juel, O. 1092.
Jugham, N. D. 1484.
Jugowiz, R. 353.
Jumelle, H. 171, 846, 872

bis S74.
Jussieu 962.

Kammerer, P. 172.
Kanngiesser, F. 108, 173.
Kanzleiter, H. 563.
Karzel, R. 389
Kawamura, S. 510.
Keissler, K. v. 288.
Keller, R. 1291, 1292,

1681.
Keller, T. 1632.
Kennedy, B. 1093.
Kenter, J. 234.
Kerampoullos, A. D. 1094.
Kersten, H. 289.
Khek, E. 1095.
Kiessling, L. 511.
Kildahl, N. J. 354, 355.
Kiltz, H. J864.
Kindberg, N. C. 900.
Kindermann, V. 174, 175.
King, G. 1404.
Kingsley, R. G. 1682.
Kirchmayr, H. 1815.
Kirchner, O. v. 175 a, 544.
Kirtikar, K. R. 1237.
Klebelsberg, R. v. 1546.
Klemt, F. 1865.
Klincksieck, P. 116.
Kneucker, A. 512.
Knuth, R. 1537.
Kny, L. 42.
Kobler, J. 235.

Koehne, E. 1310.
Koernicke, Fr. M. 1414,

1816.
Komarow, V. L. 893,995,

1195, 1368 a, 1956.
Koorders, S. H. 513, 514,

S14, 1037 b, 1477.
Koriba. K. 1096.
Koslowski, W. 176.
Kradolfer, E. 177.
Kraemer, H. 43, 1866.
Kraenzlin, Fr. 701—704,

1817.
Kraepelin, K. 44.
Krauss, O. 887.
Krause, E. H. L. 1818.
Krause, K. 429, 1724, 1764.
Krauter, L. 1819.
Krieger, H. 290.
Krischtofowitsch, A. 705.
Krogmann 515.
Kronfeld, E. M. 45.
Krüger, W. 178.
Kükenthal, G. 576.
Kühlhorn, J. 236.
Kuntz 516.
Kupffer, K. R. 129.
Kurdiani, S. 356.
Kusano, S. 1535, 1820.
Kusnezow, N. 924.

L., C. 1217.
Labergerie 1867.
Lakschewitz, P. 1821.
Lalouc, G. 1333i, 1419.
Lambert, L. 454.
Lambert, P. 1683.
Lamorlette, L. 1650.
Lamothe, L. 1326.
Lancy, 0. C. 1902.
Landsberg, B. 179.
Lang, W. H. 393.
Lange, A. 1097.
Laughlin, E. E. 1522.
Lankester, E. R. 1620.
Lary de Latour, E. de

419.
Laurie, Ch. L. 46.
Lauterbach 180.
Leake, H. M. 1439.

351

Autorenverzeiclinis.

351

Leclerq du Sablon 1467,

1468.
Lecomte, H. 466 — 470,

826, 827, 1127, 1738.
Ledien, F. 706, 707.
Leeke, P. 517, 518.
Legault, A. 1282.
Le Gendre, Ch. 708, 1049,

1547.
Lehmann. A. 47.
Lehmann, E. 1822. 1823.
Leidigh, A. H. 421.
Lemmermann, 0. 1169.
Lenchs, H. 1405.
LeRenard,A. 1368b, 1739,

1740.
Leveille, H. 455, 456, 1285,

1327, 1368 c— d, 1523 bis

1525, 1684, 1868, 1869.
Lewis, J. M. 357.
Ley, A. 1685.
Liebus, A. 48.
Lignier, 0. 237, 291.
Lindau, G. 807.
Lindberg, H. 1098, 1686.
Lindhard, E. 519.
Lindinger, L. 605, 606.
Lindman, C. A. M. 181.
Lingelsheim, A. 1512.
Linsbauer, K. 390.
Liversidge, M. A. 49.
Lloyd, C. G. 1633.
Lloyd, J. U. 1633, 1634.
Lock, E. H. 1368 e.
Lodewijks, J. J. A. 1526.
Loesener, Th. 854, 855,

1040, 1041.
Loew, E. 175 a, 607, 608.
Lolli, A. 520.
Lonaczewski, A. 1099.
Lonay, H. 1635.
Longo, B. 1191, 1733.
Lopriore, G. 130.
Lotsy, J. P. 50.
Lowson, T. M. 51.
Ludwig, F. 1636.
Lundgreen, F. 52.
Lutz, L. 1870.
Lynch, J. 182.
Lyons, A. B. 109.

M. 709.

M., F. 1555.

Macchiati, L. 131.

MacDougal, D. T. 292.

MacFarlaine, J. M. 1491,

1766.
Mackenzie, K. K. 457, 609.
Macmillan, H. F. 238, 293,

782.
Magnus, P. 710, 711.
Maiden, J. H. 294, 521,

522, 828, 925, 1100,1101,

1485—1487, 1931, 1932.
Maillefer, A. 53, 906.
Majima. R. 829.
Maire, R. 340.
Makoshi, K. 1548, 1549.
Mallett, G. B. 564, 610,

611, 1368f, 1891.
Malinowski, E. 1725s
Malinvaud, E. 1824.
Malme, G. O. A. 800, 875,

1218.
Malte, M. O. 1238.
Marchand 183.
Mariz, B. J. 1825.
Marquand, E. D. 1603.
Marshall, E. S. 1033.
Martelli, V. 239.
Martin-Lavigne, E. 1469.
Massart, J. 184.
Masters, T. M. 358.
Matte, H. 391.
Mattei, G. E. 295, 523,

915, 1637, 1933.
Matthes, H. 1881.
Matthiesen, F. 1572.
Maxwell, W. J. 54.
Medwedew, J. S. 1256.
Melsheimer, M. 1527.
Menezes, C. A. 359, 1328,

1826, 1827.
Merrill, E. D. 789, 907.
Meschede, F. 1414a.
Micheletti, L. 1170.
Micholitsch, A. 1498.
Mieckley, W. 963.
Miethe, E. 712.
Migliorato, E. 1368 g.
Migula, W. 185.

Miscenko, P. 612.

Missbach, R. 90] .

Mitlacher, W. 1329.

Mitscherlich, E. A. 117.

Miyake, K. 360, 1772.

Modilewsky, J. 132, 1293.

Moebius. M. 296, 783.

Moesz, G. 1204.

Moffat, E. 118, 1171.

Mole, J. W. 119.

Montemartini, L. 524.

Moore, F. W. 713.

Moore, Spencer le M. 1102,
1103.

Mottet, S. 361, 830, 883,
1219, 1220, 1488, 1561,
1568, 1604, 1687, 1688,
1760 c, 1792-1795.

Mottier, D. M. 525.

Mücke, M. 434 a, 916.

Müller, Fr. 1414 b— c.

Müller, K. 362, 820.

Müller, L. 1638.

Müller, R. 847, 1843.

Murr, J. 714.

Muschler, R. 1104, 1172.

Nakai, T. 1528, 1584, 1639.
Nadson, G. A. 186.
Nannizzi, A. 1618.
INappi, G. 1795 a.
Nash, G. V. 187, 188, 526.
Negro, C. 325.
Nelson, J. 189.
Nemec, B. 1105.
Nestler, A. 715, 1605.
Neumann, R. 363.
Neuweiler, E. 54.
Nichols, M. L. 1767.
Nicolosi-Roncati, F. 364.
Nicotra, L. 190, 297, 298.
Niedenzu, F. 1424, 1425.
Nielsen, H. T. 1368h.
Nielsson-Ehle, H. 527 bis

530.
Nilsson, H. 1749.
Noll, F. 240, 1369.
Nordenson, E. 1916.
Noren, C. O. 361a.
Nowry, E. 241.

352 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonogamen. [352

0.. A. 1489, 1569.

Oertel, G. G. 716.

Ohlendorf, O. 191.

Ohlmer, W. 531.

Omang, S. O. F. 1106.

Ono, K. 242.

Orphal, K. 1370.

Ortlepp, K. 192, 613, 996.

Osborne, Th. 1371.

Ostenfeld, C. H. 796.

Ostermayer, F. 1580.

Othmer, B. 299, 300, 420,
421, 444, 614, 717, 718,
804, 1150, 1221, 1398,
1768, 1828.

Palibin, J. W. 1267, 1372,

1606.
Palla, E. 110, 458, 459.
Pammel, L. H. 1689.
Pampanini, R. 565, 615,

616, 1107, 1108, 1286.
Parish, S. B. 784.
Parkin, J. 254.
Passy, P. 243.
Pau, D. C. 1330.
Pauchet, L. 244.
Payne, C. H. 1110.
Pax, F. 566, 1109, 1239,

1607.
Peacock, R. W. 193.
Pearson, H. H. W. 392,

403.
Peckolt, Th. 111.
Peglion, V. 1134.
Peirce, M. F. 1012.
Pekelharing, N. R. 1889 a.
Pellegrin, F. 1373. 1374.
Peltrisot, C. N. 1222.
Pemberton, J. H. 1690.
Pereira, Coutinho A. X.

926, 1331, 1331a, 1829.
Perrier de la Bathie, H.

846, 872, 873.
Perriraz, J. 422, 908, 1608.
Perrot, E. 1375.
Peters, C. 1135.
Peters, H. 194.
Petersen, E. 1376.
Petersen, O. G. 55.

Petitmengin, M. 1609, 1614.
Petrak, F. 532, 1111.
Petrie, D. 533, 1830.
Petry, H. 1240.
Pfeffer W. 195.
Pfitzer, E. 719.
Pfuhl 1750.
Phytian, J. C. 56.
Pieper, G. R. 196, 301.
Pierce, G. J. 120.
Pierre 1726.

Pilger, R. 302, 534, 1136.
Pittier de Fabrega, H.

848, 1241, 1335.
Planchon 1173.
Plateau, F. 141 4 d.
Plemper van Baien, B. A.

G17.
Plüss, B. 57.
Poewerlein, H. 1831.
Poisson, H. 265, 266.
Pokorny 58.
Pollacci, G. 121.
Pollard, Ch. L. 988.
Pool, J. F. A. 1654.
Porsch, O. 720.
Porter, A. E. 567.
Power, F. B. 1136, 1513.
Prain, D. 59, 462, 917,

1279, 1332, 1377, 1550,

1564.
Prodinger, M. 1691.
Przibram, H. 197, 365.
Pugsley, H. W. 1333.
Purpus, A. 618, 619, 1925.
Purpus, J. A. 964.

Quehl, L. 965—971.

R., R. A. 1399.
Rade, K. 620, 1651.
Raciborski, M. 1112.
Raffill, C.P. 568, 821,1242.
Ragan, W. H. 1692.
Ramaley, F. 1693, 1694.
Rapaics, R. 1378, 1639a.
Raunkiaer, C. 198.
Ray, J. 199.
Rebuffat, O. 1243.
Recenti, A. 423, 1417,1448.
Rechinger, C. 60, 1449.

Rees, B. 1695.
Rehder, A. 303,1013,1953.
Rehnelt 1223, 1832.
Reiche, K. 463 a.
Renaudet, G. 1765.
Rendle, A. B. 535, 1137.
Revue Hortic. beige 304,

306.
Reynier, A. 1379, 1919,

1920.
Riccobono, V. 1734.
Richards, H. M. 61, 62.
Riebe, H. 1833.
Ridley, H. K 797, 798.
Riley, L. A. 1590.
Rikli, M. 63.
Ritter, G. 1551.
Ritzberger, E. 1769.
Robinson, W. J. 721, 1770.
Rocchetti, B. 1142.
Roda, G. 63.
Rogerson, H. 1136.
Roland-Gosselin, R. 972.
Rolfe, R. A. 722—752.
Rose, J. N. 621, 937, 938,

973, 974, 1380, 1381,

1696.
Rosen 200.
Rosenberg, O. 1201.
Ross, H. 65, 1113.
Rotbe, K. C. 66.
Rothrock, J. T. 366, 1268,

1903.
Rouhaud, R. 1880.
Rouy, G. 424, 1697, 1834,

1945.
Roy er, E. 753.
Rubner, K. 1528 a.
Rubel, E. 1224.
Ruppert, J. 1796.
Rüssel, W. 201,1114, 1382.
Rydberg, P. A. 551, 1698,

1699."
Rysselberge, H. van 622.
Rywosch, S. 367.

S., T. A. 1882.
Säurich, P. 202, 203.
Sagorski, E. 1115, 1383.
Saint- Yves 536.

353]

Autorenverzeiclmie.

353

Salfeld, H. 396.
Salmon, C. E. 1570.
Sancy, C. C. 1902.
Sandhack, H. A. 754, 1244.
Sampaio, G. 1640.
Sargant, E. 307.
Saro-ent, C. S. 67, 1700 bis

1703.
Sargent, O. H. 755, 756.
Saxton, W. T. 1384.
Scala, A. C. 122.
Seh. 1904.
Schelle, E. 204, 368, 862,

975, 1014.
Schellmann, W. 1245.
Schinabeck 308.
Schindler, J. 1400.
Schinz, H. 112, 210, 1761.
Schlechter, R. 757.
Schmeil, O. 68.
Schmidt, E. 1552.
Schmidt, R. 976.
Schmitt, C. 205, 206.
Schmitthenner, F. 1954.
Schneider, C. K. 894-896,

1652, 1704.
Schneider, J. M. 623.
Schneider, M. 69.
Schneider, N. 309.
Schnetz, J. 1705, 1706.
Schoenichen, W. 70.
Schönland, S. 71.
Schreiber 1751.
Schröter, C. 175 a, 206 a
Schuhe, Th. 207.
Schullerus. J. 1553.
Schultze, Th. 1269.
Schulz, G. 758
Schulz, G. E. F. 208.
Schulz, O. E. 1934.
Schulz, P. F. F. 72.
Schulze, E. 245, 1116.
Schumann, K. 977.
Schuster, J. 758 a, 1500,

1585, 1586.
Schuster, W. 216.
Schwaighofer, K. F. 1797.
Schwappach, A. 369, 370,

1311.
Schweinfurth, G. 537.

Botaniseher Jahresbericht

Schweizer, Th. 759.
Schwendt, E. 247.
Schwerin, F. v. 310, 371,

397,815,1421,1514.1515.
Scofield, C. S. 1385.
Scott, D. H. 393.
Scotti, L. 1871.
Seefried, F. 1921.
Seaton. S. 1499.
Seemen, O. v. 1270, 1752,

1753.
Semler, C. 1835.
Sergueeff, M. 1174.
Severini, G. 1386.
Servettaz, C. 1203.
Sevvard, A. C. 393.
Seyot, P. 1707.
Shai'er, J. A. 11.
Shaw, F. J. F. 398.
Shibata, K. 1772.
Shimek, B. 1271.
Shull, G. H. 538.
Siehe, W. 624.
Shirasavva, H. 72a.
Simmons, H. G. 997.
Simon, E. 625.
Simoukai, L. 816, 1501,

1653.
Sjaroff, G. 1708.
Skärman. J. A. O. 73.
Skubniewsky, Oh. 209.
Smalian, K. 74.
Small, J. K. 1151.
Smith, A. A. D. 1490.
Smith, H. G. 316. 1481.
Smith, J. J. 760-762.
Smith, R. W. 790.
Smith, Th. 569, 1117.
Smith, W. G. 1754.
Smyth, W. 539.
Solereder, H. 1387, 1414 e.
Solimena, F. 1192.
Someren Brand, J. E. van

83.
Sommier, S. 763.
South, W. F. 394.
Späth 1388.
Spence, D. 1470.
Spence, M. 577.
Sperlich, A. 1836.

Spinner, H. 1615.
Spirihille, F. 1709.
Spitzen berg, G. K. 372.
Spooner, H. 1333 a.
Sprague, Th. A. 909, 910,

1042, 1175, 1287, 1440,

1735, 1896.
Sprecher 399.
Sprenger, C. 311, 570, 831,

1272.
Stadimann, J. 1118.
Standley, P. C. 978.
Stap, E. 1641.
Stapf, O. 540, 849, 850, 876,

1389, 1471, 1571, 1727.
Stausch, K. 210.
Steinbrinck, C. 211.
Stephens, E. E. 1556.
Sterling, C. M. 1872.
Stiles, W. 373.
Stirling-Maxwell, J. 374.
Stockton, E. 1139.
Stone, W. G. M. 911.
Stoward, F. 212.
Strasburger, E. 75, 76, 77.
Strigl, M. 879.
Stürler, F. A. v. 918.
Subba Rav, C. K. 1333 b.
Sudre, H. 1710, 1711.
Sudworth, G. B. 78.
Sündermann, F. 1798.
Suringar, V. 1225.
Sutton, A.W. 1176, 1177,

1873.
Svedelius, N. 1472.
Swingle, L. D. 1642.
Sykes, M. G. 626.
Sylven, N. 375, 376,

Tammes, T. 1198.
Taqq, H. F. 1300.
Taylor, A. D. 377.
Taylor, T. H. 1754.
Tedin, H. 541.
Tenand 1643.
Terraciano, JS. 213, 979.
Texnier, Le 1874.
Thellung, A. 112, 1119,

1178, 1179, 1246.
Theorin, P. G. E. 248.

XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 21. 9. 10.)

23

354 C. K. Schneider: Morphologie und Systematik der Siphonoganien. [354

Thiessen, R. 395.
Thomas, Fr. 378.
Thompson, H. St. 578.
Thompson, R. B. 379.
Thoms, H. 1473.
Thonner, F. 79.
Tieghem, Ph. van 808 bis

891, 1015, 1839, 1844,

1845, 1926.
Tisza, E. 1728.
Toeppffer 1755.
Törnblom, G. 1050.
Tommasini, C. 1736.
Toni, J. B. de 835.
Tovey, J. R. 593, 921,

1071, 1165, 1320, 1575,

1855, 1917.
Trappen, A. von der 980.
Trelease, W. 425, 426, 627.
Tribolet, M. de 542.
Trinchieri, G. 214—216,

427, 1474.
Tropea, C. 249, 523, 1390.
Tschirch. A. 1587, 1654.
Tubergen, C. G. van 571.
Tubeuf, C. v. 1414 f—h.
Tunmann. O. 851, 1120,

1121, 1302, 1333 c, 1406,

1460, 1729, 1922.
Turner, F. 543.
Tutin, F. 1513.
Tuzson, J. 1712.
Tyler, T. J. 1441.

Uellenberg, E. 80.
Ulbrich, E. 919, 1442 bis

1445, 1883.
Ule, E. 437 a, 445, 1004,

1005, 1247—1249, 1415,

1450, 1946.
Urban, Ign. 311a, 1401.

Valeton, Th. 1730.
Valette, Th. 116.
Vaniot, E. 1869.
Veres, M. 552.
Verguin, L. 1333 d.
Verrill, A. H. 785.
Vidal, L. 1616.

Vigier, A. 628, 1122.
Viguier, R. 1884.
Vilmorin, L. de 1140.
Vilmorin, Ph. de 572.
Vilmorin-Andrieux et Uie.

81.
Vintilesco, J. 1505.
Viviand-Morel 1180.
Vogler, P. 852, 1923.
Volkart, A. 544.
Voigt 218.
Voigt, A. 82.
Volut, R. 1391.
Vries, H. de 1529, 1530.
Vuillemin, P. 1577, 1875.

W. 629, 1713.
W., C. H. 630.
W., H. 435.
W., W. O. 817, 1333 e.
Wagner, A. 1294.
Wagner, H. 1445.
Wagner, M. 219.
Wagner, R. 380, 764, 786,

877,998,1619,1846,1898.
Wakemann, N. 1333 f.
Wangerin, W. 1141.
Warburg, O. 83.
WTard, H. M. 84, 220.
Warming, E. 221, 222, 1226.
Wason 85.
Watzl, B. 1168.
Weed, C. M. 86.
Wein, K. 545, 1044, 1714.
Weingart, W. 981—984.
Weinzierl, Th. v. 546.
Weiss, F. E. 223.
Weiss, L. 1480.
Wellesley, F. 765.
Welter, B. L. 1888.
Went, F.A.F. C. 547,1573.
Wessberge 86 a.
Westeil, W. P. 87.
Wester, P. J. 101!).
Westerlund, C. G. 1715.
Westling, R. 1837.
Wettstein, R. v. 88, 89,

1202.

Wheldon, J. A. 1123.
White, C. A. 224, 225.
Wickham, H. A. 1250.
Wiechowski, W. 832.
Wieland, G. R. 381.
Wildeman, E. de 90, 766

bis 768.
Wilhelm, K. 382.
Williams, F. N. 461, 1034,

1035, 1644.
Willis, J. (J. 92.
Williston, S. W. 312.
Wilson, P. 1737.
Winkler, H. 313, 1876.
Winstedt, K. 1036, 1393.
Wirtgen 1394.
Witt, O. N. 769.
Witte, H. 1395.
Witasek, J. 1877.
Wittmack, L. 1502, 1878.
Wittrock, V. B. 1037.
Wolf, E. 1756, 1757.
Wolf, Th. 1716, 1717.
Wolff 1924.

Wolley-Dod, A. H. 1718.
Woloszczak, E. 1645.
Wood, J. M. 93.
Worsdell, W. C. 250, 1646.
Wright, Ei. 1251.
Wunderlich, A. 1006, 1588,

1947.

Zabel 1016.

Zahn, E. 314, 985, 986,

1007, 1731, 1771, 1838.
Zahn, K. H. 1124, 1125.
Zang, W. 383.
Zederbauer, E. 384, 385,

1181, 1758.
Zeiner-Lassen, A. 1719.
Zeissig, R. 1396.
Zeman, M. 1799.
Zimmermann, A. 386, 548,

1252, 1253, 1397.
Zimmermann, K. v. 113.
Zimmermann, W. 770.
Zobeide 787.
Zodda, G. 771.

1] ß. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 355

XXII. Entstehung der Arten, Variation und

Hybridisation.

(1907—1908.)
Referent: R. Pilger.

1. Allen, J. A. Mutations and the geographic distribution of
nearly related species in plants and animals. (Am. Nat., XLI [1907],
p. 653 — 655.)

Der Aufsatz bringt einige Bemerkungen zu der Arbeit von Leavitt
(vgl. Ref. 109), besonders in bezug auf die Differenzen in der Ansicht bei den
Zoologen und Botanikern. Für höhere Tiere gilt der Satz, dass sich nahe
verwandte Arten oder Unterarten geographisch ausschliessen; diese Formen sind
aber anders zu bewerten, als die kleinen Variationen bei Rubus-, Rosa-
arten usw., die sich nicht durch die Umgebung herausbilden, sondern trotz der
Gleichheit der Umgebung erhalten.

2. Graf Araim-Schlagentliin. Ältere und neuere Selektionsmethoder..
Erwiderung zu dem Artikel des Herrn Professor Hugo de Vries.
(Biol. CentrbL, XXVII [1907], p. 25-32.)

De Vries hatte in seinem Aufsatz auf die hohe Konstanz der Getreide-
rassen hingewiesen, die durch die neue Svalöfer Selektionsmethode gewonnen
wurden. Es braucht dann nicht mehr die ständige Selektion des Saatgutes
stattzufinden. Diese Ansicht ist nach dem Autor nicht richtig. Die Konstanz
ist nur relativ; auch bei den Pedigreehochzuchten, d. h. denjenigen, die sowohl
von einigen Züchtern in Deutschland als in Svalöf aus einzelnen ausgesuchten
Pflanzen gezogen worden sind, treten, und zwar in einzelnen Jahren in be-
deutendem Umfange, in anderen weniger, eine grosse Menge von neuen Formen
auf. Die neuen Formen vererben sich ziemlich konstant, andere treten in den
nächsten Jahren hinzu, so dass bei Weiterzucht in einigen Jahren die Rasse
ein ganz anderes Ansehen gewinnt. Fortdauernde Selektion und der Gebrauch
von angekauftem Saatgut ist also für den Landwirt nicht zu entbehren. „Nach
diesen Ausführungen, sagt der Autor, halte ich mich nach wie vor für be-
rechtigt, zu behaupten, dass Nachbau von Originalgetreide des Züchters wesent-
lich in der Regel abweicht, in der Regel durch fortwährendes Auftreten von
Variationen und Mutationen auch bei an sich konstantesten Hochzuchten seinen
Charakter ändert und es geradezu heisst, einen für die Entwickelung der Land-
wirtschaft verderblichen Irrtum erregen, wenn man die Ansicht verbreitet, dass
jeder Landwirt imstande sei, sich durch Nachbau aus einem geringen Quantum
Originalsaat dauernd sein Saatgut selbst zu erziehen."

3. Baccarini, P. Intorno ad una nuova ipotesi di evoluzione a
rovescio. (Giorn. Bot. Ital., N. S.. XIV [19071, p. 608—645.)

Eine Verteidigung der Evolutionslehre im Darwinschen Sinne gegen
Kritiken, wie sie z. B. von E. Mattei (Veritä ed errori nella teoria della evo-
luzione) ausgeführt wurden.

23*

356 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 2

4. Baccarini, P. I fenomeni cariocinetici nelle piante ed i loro
rapporti colle dottrine filogenetiche. (Giorn. Bot. Ital., N. S., XIV
|1907], p. 646—669.)

5. Bateson, W. The progress of genetics since the rediscovery
of Mendels papers. Progr. Rei Botan. herausgeg. von Dr. J. P. Lotsy, I
(1907), p. 368—418.

6. Bateson, W. The progress of genetic research. (Rep. 3. Intern.
Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 90—97.)

7. Bateson, W. Facts limiting the theory of heredity. (Science,
N. 8., XXVI [1907], p. 649—660.)

8. Bateson, W. Methods and scope of genetics. (Cambridge
[1908], 56 pp.)

9. Baar, Erwin. Über infektiöse Chlorosen bei Ligustrum, Labur-
num, Fraxinus, Sorbits und Ptelea. (Ber. D. Bot. Ges., XXV [1907], p. 410
bis 413.)

Untersuchungen des Verf. zeigen, dass infektiöse Chlorosen der Art, wie
er sie speziell bei den Malvaceen näher verfolgte, recht häufig sind. So liegt
eine solche Chlorose vor bei Ligustrum vulgare fol. aureo-variegatis (Späth, Baum-
schule) und Laburnum vulgare chrysophyllum. Bei beiden Formen Hess sich die
Chlorose nicht durch Samen übertragen, alle Sämlinge blieben grün. Die
letztere Form ist entstanden als Spross einer bis dahin grünblätterigen Labur-
mtm-Unterlage, auf die ein Reis von einer anderen, lange bekannten gelb-
blätterigen Laburnum-^orm, Laburnum vulgare fol. aureis gepfropft war. Die
infektiöse Chlorose von Laburnum lässt sich auch auf Cytisus hirsutus über-
tragen. Laburnum alpinum und Cytisus purpurcus konnten bisher nicht infiziert
werden. Auch bei den Gattungen Fraxinus (F. pubescens aucubifolia), Sorbus,
Ftelea (P- trifoliata fol. variegatis) macht sich infektiöse Chlorose bemerkbar.

10. Banr, Erwin Untersuchungen über die Erblichkeitsverhält-
nisse einer nur in Bastardform lebensfähigen Sippe von Antirrhinum
majus. (Ber. D. Bot. Ges., XXV [1907], p. 442-454.)

„Dass die Aureavarietäten von Antirrhinum majus nicht samenbeständig
zu gewinnen sind, sondern stets einen gewissen Bruchteil von grünblätterigen
Pflanzen abspalten, beruht darauf, dass die gelbblätterigen Individuen alle
Bastarde sind, die auf der Merkmalskombination grün X gelb bzw. gelb X grün
beruhen. Diese Bastarde bilden zwar 50% Keimzellen mit der Anlage für
Grünblätterigkeit und 50°/0 mit der Anlage für Gelbblätterigkeit, aber die Keim-
zellkombination gelb X gelb führt nicht zu lebenfähigen Embryonen, so dass
also von den möglichen Kombinationen gelb X gelb, gelb X grün, grün X gelbr
grün X grün nur die drei letzten übrig bleiben, d. h. diese Aureaformen geben
bei Selbstbefruchtung genau '/3 grünblätteriger konstanter uud 2/3 Aurea-
blätteriger, spaltender Nachkommen. Ähnlich scheinen die Verhältnisse auch
bei Felargonium zonale ,Yerona' zu liegen."

Solche nach Bastardform sich aufteilende Sippen haben mit den eigent-
lichen umschlagenden Sippen (ever sporting varieues) z. B. Trifolium pratense
quinquefolium, Dipsacus Silvester torsus, nur äusserliche Ähnlichkeit. Über die
theoretische Bedeutung solcher umschlagenden Sippen verbreitet sich Verf.
ausführlich in der Einleitung. Er betrachtet das Umschlagen nur als einen
Spezialfall des Eintretens der durch die Verschiedenheit der Aussenbedingungen
hervorgerufenen Modifikationen. In vielen Fällen geht die Änderung von
Charakteren einer Sippe der Änderung der Aussenbedingungen parallel (z. B,

3] R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 357

Grösse von Bohnensamen): in anderen Fällen bleibt ein Charakter bei gewissen
Änderungen der Aussenbedingungen sich gleich, bis diese so stark werden,
dass dann eine plötzliche Änderung des betreffenden Charakters, ein Umschlagen,
erfolgt. Mit dieser Auffassung des Umschlagens als eines Spezialfalles der
Modifizierbarkeit, von dem es alle Übergänge zum gewöhnlichen Fluktuieren
gibt, stehen die Erblichkeitsverhältnisse in Einklang, insofern keine Modi-
fikation erblich ist, also auch nicht eine solche Zwischenrasse wie Dipsacus
silvcstcr torsus.

11. Baur, Erwin. Neuere Untersuchungen über die Vererbung
der Geschlechtsformen bei den polyözischen Pflanzen. (Bot. Zeitschr.,
LXV, II [1907], p. 338-348.) '

Kritisches Referat über die betreffenden Untersuchungen von Correns,
Bateson, Burck, Raunkjaer usw.

12. Baur, Erwin. Über eine infektiöse Chlorose von Evonymus
japonicus. (Bei: D. Bot. Ges., XXVI a [1908), p. 711—713.)

Verf. wurde zu den Versuchen mit Evonymus angeregt durch eine Be-
merkung Bouches (1871), der auf zwei grüne Exemplare an verschiedenen
Stellen seitlich in den Stamm Pfropfreiser von zwei verschiedenen gelb und
weiss panaschierten Abarten desselben Strauches eingesetzt hatte und beob-
achtet hatte, dass die vorher rein grünblätterigen beiden Pflanzen an den nach
der Pfropfung produzierten Zweigen Blätter bildeten, die deutliche Spuren
einer weisslichen Aderung trugen. Verf. operierte mit zwei Varietäten, Evony-
mus japonicus argenteo-marginatus und fol. aureo-marginatis.

Erstere erwies sich als nicht infektiös, letztere zeigte das von Bouche
beschriebene Verhalten. Es ist merkwürdig, dass eine neue Art der Pana-
schierung (gelbe Adern) entsteht, die mit der Gelbrandigkeit der benutzten
Varietät keine Ähnlichkeit hat. Die neue Art der Panaschierung blieb auch
bestehen, wenn die Zweige abgeschnitten und selbständig kultiviert wurden.
Verf. nimmt an, dass Evonymus japonicus fol. aureo-marginatis zweierlei Pana-
schierungen enthält, eine — sehr auffällige — nicht infektiöse, die sich durch
den gelben Blattrand äussert, und eine zweite durch die gelbliche Aderung
gekennzeichnete infektiöse, die aber auf den stark gelbbunten Blättern der
Form nicht erkannt werden kann.

13. Beijerink, M. W. Beobachtungen über die Entstehung von
Cytisus purpureus aus Cytisus Adami. (Ber. D. Bot. Ges. [1908], XXVI a, p. 139
bis 147, 2 Textfig.)

An einigen Exemplaren von Cytisus Adami wurden im Mai während des
Beginns der Belaubung alle ein- und zweijährigen Zweige kurz eingeschnitten,
so dass die schlafenden Knospen des Vorjahrs sowie die Sommerknospen am
einjährigen Holz zur Entwickelung kommen mussten. Unter diesen letzteren
befanden sich vier selbständige Purpureusgruppen, d. h. je eine Anzahl von
stärkeren und schwächeren Zweigen von C. purpureus, welche sich auf dem
gleichen Mutterzweige befanden und durch einen Rindenstreifen von Purpureus-
gewebe verbunden waren, also einem einzigen Komplexe angehörten. Es ist
demnach anzunehmen, dass der betr. Mutterzweig' bereits aus einer Knospe
hervorgegangen war, deren Achse zum Teil variiert war.

Die Tatsache, dass sich derartige Purpureusgruppen tragende Zweige in
unmittelbarer Nachbarschaft von Wunden vorfanden, bestimmt den Verf. zu
der Annahme, dass „der Wundreiz ein mitwirkender Faktor jenes Variabilitäts-
aktes" gewesen sei. Simon.

358 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [4

14. Bennett, Artlinr. Potamogeton Macvicarii Mihi. P. praelongus X P-
polygonifolius, a new Hybrid. (Ann. Scott. Nat. Hist. Edinburgh [1907], p. 106
bis 108.)

15. Bessey, Charles E. The taxonomic aspect of the species
question. (Amerie. Naturalist, XLII [1908], p. 218—223.)

Ausführliches Referat siehe „Morphologie und Systematik".

Fedde.

16. Biffen, R. H. Experiments on the breeding of Wheats for
English Oonditions. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907],
p. 373—377.)

17. Bitter, Georg. Über Verschiedenheiten in der Entwicke-
lungsdauer bei Xanthium-Ti> assen. (Abh. Naturw. Ver. Bremen, XIX [1908],
p. 290—297, T. 8 und 9.)

Die Gattung Xanthium (spez. Section Euxanthium) zeigt einen hohen
Grad von Spezialisierung und Aufteilung in Rassen; die Gruppe ist in einem
Stadium intensiver Formsonderung, wobei nach Ansicht des Verf.s die Lebens-
bedingungen, unter denen sie sich seit langem in den Botanischen Gärten
befinden, mitgewirkt haben. Von X. italicum gewann Verf. drei in der Färbung
verschiedene Rassen, rubricaule ritbristriatum, viridicaule rubristriatum, viridicaule
instriatum, die in ihrem physiologischen Verhalten verschieden sind. Die erste
Form nämlich eilt in ihrer Entwickelung bedeutend voraus; am weitesten
bleibt die dritte zurück. Da ähnliches z. B. für Kleerassen festgestellt ist,
dürfte es sich empfehlen, die frühen oder späteren Rassen unserer Kultur-
gewächse auf ihre Pigmentierung zu untersuchen. X spinosum neigt weniger
zur Rassenbildung, morphologisch leicht erkennbar ist nur die var. inerme.
Verf. untersuchte die Entwickelung von Pflanzen, die aus den verschiedensten
Botanischen Gärten stammten und konnte konstatieren, dass die aus süd-
europäischen Gärten in ihrer Entwickelung bedeutend zurückblieben; man
kann zwei als praecocius und tardius zu bezeichnende Rassen unterscheiden.

18. Bitter, Georg. Oxalis stricto, L. var. decumbens n. var., eine Mutation.
(Verh. Naturw. Ver. Bremen XIX [1908], p. 298—300, T. 10.)

Verfasser fand auf dem Gelände des in der Anlage begriffenen Bremer
Botanischen Gartens eine Mutation von Oxalis stricta, die sich als samen-
beständig erwiesen hat. Sie zeichnet sich besonders durch den gestauchten,
kompakten Wuchs aus. „Da diese neue Form bisher nirgends in der Umgebung
Bremens beobachtet worden ist, wo doch die gewöhnliche grosse O. stricta
keineswegs selten ist, so muss man annehmen, dass sie durch sprungweise
Änderung (Mutation) am Fundorte entstanden ist."

19. Blakeslee, A. F. The nature and significance of sexual
differentiation in plants. (Science N. S., XXV [1907], p. 366—372.)

20. Blaringhem, L. Variations dans le Coquelicot (Papaver Bhoeas
L.). (C. R. Acad. Sei. Paris, CXLV [1907], p. 129-1—1296.)

Auf einem mit Papaver Bhoeas bestandenen Felde fand Verf. zahlreiche
verschiedene Formen ; doch dominierte kein Typus, keine bestimmte Ent-
wickelungsrichtung war zu verfolgen. Verf. unterschied mindestens 14 Reihen
von Formen nach der Behaarung der Blütenstiele und nach der Kapselform.

Wahrscheinlich ist hier ein Mutationsvorgang bei der Formenbildung tätig.

21. Blaringhem, L. Espece et varietes nouvelles de Mais obtenues
apres mutilation et distribuees par le Museum. (Bull. Mus. Hist. Nat.,
1907, p. 83—84.)

5| K. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 359

Referierende Zusammenfassung der Resultate des Verf.s, die 1906 in den
Comptes Rendus Paris veröffentlicht wurden (vgl. J. J., 1906, No. 17 u. 18).

22. Blaringhem, L. Production d"une variete nouvelle d'Epinards,
Spinacia oleracea, var. polygama. (C. R. Acad. Sei. Paris, CXLVII [1908]r
p. 1331—1333.)

23. Blaringhem, L. La Variation des formes vegetales. (Rev. Gen,
Bot., XX [1908], p. 49-66.)

Die Arbeit ist ein Abdruck einer „Lecon d'ouverture du Cours de Bio-
logie agricole cree ä la Faculte des Sciences de l'Universite de Paris." Sie
behandelt die neueren statistischen und experimentellen Forschungen über
Variation, Mutation und Hybridismiis.

24. Blaringhem, L. Mutation et traumatismes. Etüde sur l'evo-
lution des formes vegetales. Paris, F. Alcan (1908), 248 pp., 8 T.

25. Böhmer, 6. Über die Systematik der Hafersorten sowie über
einige züchterisch wichtige Eigenschaften der Haferrispe. Diss., Giessen
1908, 88 pp.

26. Bower, F. 0. The Origin of a Land Flora. A theory based
upon the facts of alternation. London 1908, 727 pp.

Der Grundgedanke des Werkes ist, dass die morphologische und ana-
tomische Ausbildung der Sporophytengeneration der höheren Pflanzen auf den
Übergang vom Wasserleben zum Landleben zurückzuführen ist; erst durch das
Landleben wurde die Gestaltung des Sporophyten mit seiner Gliederung in
Blatt und Stamm, mit seinen wasserleitenden Bahnen und seinen zahlreichen
ungeschlechtlichen Sporen bedingt. Der Sporophyt ist somit eine neue, ein-
geschobene Generation, in immer steigender Vollkommenheit im Lauf der
phylogenetischen Entwickelung fortgebildet und findet bei den Thallophyten
kein Homologon. Das ist das Wesentlichste der Theorie vom antithetischen
Generationswechsel der Archegoniaten und Phanerogamen, die Verf. entwickelt.
Verf. hat selbst eingehende Studien über die Entwickelung der archegoniaten
Kryptogamen betrieben: ein grosser Teil des Werkes ist der Darstellung der
Entwickelung, der Morphologie und Anatomie der Archegoniaten gewidmet.
Auf dieses „detailed Statement of facts" braucht hier nicht eingegangen zu
werden, da an dieser Stelle nur der Gedankengang in bezug auf die Phylogenie
der höheren Pflanzen von Interesse ist.

Beim Vergleich der beiden Generationen einer Farnpflanze usw. ist er-
sichtlich, dass der Gametophyt seinen thalloiden Habitus beibehalten hat; auch
ist er in allen Lebensbedingungen an Feuchtigkeit gebunden und die ge-
schlechtliche Fortpflanzung kann nur durch Vermittelung von Feuchtigkeit
geschehen. Dagegen der Sporophyt ist an das Landleben angepasst, an Be-
dingungen relativer Trockenheit, auch in der Bildung seiner Fortpflanzungs-
zellen. Die Farnpflanze steht also gewissermassen mit einem Fusse im Wasser,
mit dem anderen auf dem Lande. Der Gametophyt, zeigt durch seine Gestalt
und Anpassung an Wasser, dass er die ältere Generation ist; der phylogenetisch
jüngere Sporophyt hat unter den Algen nichts Ähnliches und Vergleichbares.
Ein Vergleich der verschiedenen Gruppen der Archegoniaten lässt den all-
mählichen phylogenetischen Fortschritt in der Ausbildung des Sporophyten
von kleinen Anfängen an bei den ßryophyten, besonders bei den Lebermoosen»
erkennen. Damit geht Hand in Hand eine fortschreitende Reduktion des
Gametophyten und ein immer vollkommener Übergang zum Landleben ; bei
den Phanerogamen liegt auch bei der Befruchtung der weiblichen Zelle des

3(30 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [Q

Gametophyten keine Notwendigkeit der Mithilfe des Wassers mehr vor; an
die Stelle der Befruchtung durch Spermatozoiden ist die durch die generativen
Zellen des Pollenschlauches getreten.

Somit kann man schliessen, dass der so charakteristische Generations-
wechsel der höheren Pflanzen dem Übergang vom Wasserleben zum Landleben
seinen Ursprung verdankt und dass der Sporophyt eine jüngere, erst später
eingeschobene und zwischen je zwei aufeinander folgende Gametophyten ge-
stellte Generation ist, die im Laufe der phylogenetischen Entwickelung zu
immer höherer Ausbildung gelangte. Der wichtigste Faktor, der diesen Auf-
schwung bedingte, ist die fortschreitende Sterilisation des Gewebes des Sporo-
phyten. Die in grossen Mengen gebildeten Spjoren des Sporophyten mussten
in bestimmten Geweben erzeugt und ernährt werden; dies geschah zuerst, wie
bei den Moosen, durch den Gametophyten, dann wie bei den höheren Archego-
niaten, durch den Sporophyten selbst; Zellen, die potentiell sporogen waren,
wurden steril; dann erfolgte ein weiterer Fortschritt dadurch, dass die Sporen-
bildung auf bestimmte Organe, die Sporangien beschränkt wurde, wodurch ihre
Ausstreuung erleichtert wurde; immer mehr Teile des Sporophyten hatten
keine direkte Beziehung zur Sporenbildung mehr, Anhangsorgane, besonders
Wurzeln, traten auf und der grössere Körper des Sporophyten bedurfte dann
eines besonderen Apparates zur Wasserversorgung, der wasserleitenden Bahnen.
Das Auftreten der Gefässbündel machte erst möglich, dass der Sporophyt
grössere und schliesslich gewaltige Dimensionen annehmen konnte. Gleich-
zeitig wurde ein weiterer phylogenetischer Fortschritt ermöglicht durch das
Auftreten der Heterosporie, die schliesslich zur Samenbildung führte, dann
durch die siphonogame Befruchtung und die verschiedenartigen Anpassungen
zur Pollenübertragung.

Auch bei den Thallophyten ist ein Generationswechsel festgestellt, wenn
auch für die meisten Gruppen die Tatsachen noch nicht sehr klar erkannt
sind; doch ist dieser mit dem antithetischen Generationswechsel der Archego -
niaten nicht direkt zu vergleichen. Bei Dictyota z. B., dem am besten be-
kannten Fall, wechseln zwei gleichwertige Generationen, die Tetrasporen-
generation und die geschlechtliche Generation, regelmässig miteinander ab;
bei den höheren Pflanzen hat sich im Verlaufe der phylogenetischen Ent-
wickelung die ungeschlechtliche Generation aus kleinen Anfängen heraus immer
fortschreitend ausgebildet.

27. Bradley, H. H. B. Hybridising at the Antipodes. (Rep. 3. Intern.
Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 388— 395.)

Kreuzungen vom Verf. in Sjrdney ausgeführt mit Narcissus, Hippeastrum,
Gloriosa usw.

28. Bräinerd, Ezra. The behavior of the seedlings of certain
Violet Hybrids. (Science, N. S., XXV [1907], p. 940-944.)

29. Britton, N. L. The taxonomic aspect of the species question.
(Americ. Naturalist, XLII [1908], p. 225—242.)

Ausführliches Referat siehe: Systematik. Fedde.

30. Bruyker, C. De. Erfelyke en besmettelyke panachuur. (Bo-
tanisch Jaaiboek, XI [1907], Gent, p. 171 — 177.)

Vortrag nach den Arbeiten Jul. Burvenichs über den Einfluss der
Ernährung auf die erbliche Panaschierung von Zea Mays japonica fol. var. und
Erwin Baurs über infektiöse Chlorose. Autorreferat.

7] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. $Q\

31. Bnnyard, Edward A. On Xenia. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on
Genetics, London [1907], p. 297—300.)

Der Ausdruck „Xenia" muss für die Fälle reserviert werden, in denen
der Pollen bei Kreuzungen eine Variation derart hervorgerufen hat, dass die
Mutterpflanze in vegetativen Teilen eine Beeinflussung nach der Richtung der
Pollenpflanze hin zeigt. Diese Beeinflussung wird besonders im Perikarp, als
der Mutterpflanze allein angehörig, zu suchen sein. Die meisten sog. Xenien
sind, wie bekannt, durch die doppelte Befruchtung im Embryosack zu er-
klären. Die Versuche des Verf. mit verschiedenen Kulturpflanzen ergaben kein
greifbares Resultat in bezug auf das Vorkommen von Xenien; bemerkenswert
ist nur ein Fall, bei dem eine Blüte der Apfelsorte „Sandringham" mit dem
Pollen von „Bismarck" befruchtet wurde; der entstandene Apfel war ganz
anders als „Sandringham" und glich einer Frucht der Sorte „Oox's Orange".

32. Burek, W. Darwins Kreuzungsgesetz und die Grundlage
der Blütenbiologie. (Biol. Uentrbl., XXVIII [1908], p. 177-195.)

Es existieren viele Pflanzen, die sich selbst bestäuben, deren Kerne also
immer von Vermischungen mit fremden Elementen freibleiben und die dabei
ihre volle konstitutionelle Kraft und Fruchtbarkeit behalten; sie bedürfen
keiner Kreuzung und ziehen aus ihr keinen Vorteil. Andere Arten geben bei
Kreuzung und Fremdbestäubung kräftigere Nachkommen als bei Selbst-
bestäubung, was schon Darwin nachwies. Verf. sieht den Grund darin, dass
sie der Gefahr ausgesetzt sind, dass fremder Pollen auf die Narbe abgesetzt
wird, was zur Verunreinigung des Zellkernes oder Bastardierung Veranlassung
geben kann, wodurch die Pflanze ihre Artmerkmale verliert, während ihre

ö

Kraft und Fruchtbarkeit nachlässt. Kreuzungen dieser Bastarde mit einem

£>v

der Stammeltern oder mit einem etwas anders gearteten Nachkömmling des-
selben Bastards können die verminderte Kraft und Fruchtbarkeit teilweise
wieder herstellen. Die Darwinsche Regel von der Notwendigkeit der Fremd-
bestäubung für die Lebensfähigkeit der Rasse hatte zu der Annahme geführt,
dass die verschiedenen Blüteneinrichtungen (Dichogamie, Herkogamie usw.)
die Bedeutung hätten, Fremdbestäubung zu sichern und Selbstbestäubung zu
vermeiden. Die Nützlichkeit der Selbstbestäubung musste vielfach durch
Schädigung in anderer Richtung, Erschwerung der Bestäubung usw., erkauft
werden. Gegen diese Ansicht ist manches zu sagen. Die Proterandrie z. B.
verhindert häufig nicht Selbstbestäubung, zum mindesten findet die Bestäubung
nicht zwischen verschiedenen Individuen, sondern nur zwischen benachbarten
verschieden alten Blüten desselben Stockes statt und ein Vorteil solcher Geitono-
gamie über typische Selbstbestäubung ist nicht erwiesen. Verf. betrachtet
die Proterandrie einfach als ein Organisationsmerkmal, da im allgemeinen die
Staubblätter früher als die Fruchtblätter angelegt werden. Es liegt hier somit
keine Anpassung an Fremdbestäubung vor. Die herkogamen Pflanzen sind
vielmehr als die dichogamen, bei denen häufig auch Selbstbestäubung statt-
finden kann, auf die Mitwirkung von Insekten angewiesen. Die Herkogamie
ist vielfach eine schädliche Einrichtung und hat das Aussterben vieler Arten
veranlasst; andere haben sich dadurch erhalten, dass ihnen durch ihre reich-
liche Nektarabsonderung Insektenbesuch gewährleistet wurde. Ähnlich ist
es bei der Diklinie. In beiden Fällen liegen dann keine Anpassungen vor
und die Einrichtungen sind, entsprechend der Mutationstheorie als Sprung-
voriationen zu deuten.

362 ß- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [8

33. Burck, W. Darwins wet omtrent de noodzakelykheid der
kruisbevruchtig getoetst aan de nieuwere inzichten omtrent
bevruchting en hybridisatie. (Handelingen van het XL Nederlandsch
Natuur-en Geneeskundig Congres, Leiden [1907], p. 268 — 282.)

Ist ausführlich erschienen (in englischer Sprache) in dem Recueil des
Travaux botaniques hollandais.

34. Bürger, Max. Lecture on hybrid Pelargonium grandiflorum nanum.
(Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 456—462.)

35. Camus, E. G. A contribution to the study of spontaneous
hybrids in the European Flora. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics,
London [1907], p. 150—154.)

Zuerst bringt der Aufsatz einige allgemeine Bemerkungen über spontane
Hybriden, ihre Verbreitung und verschiedene Verteilung über die natürlichen
Familien, dann folgen Bemerkungen über einzelne Familien, die Häufigkeit der
Hybriden bei den Gattungen usw.

36. Chittenden, F. J. The influence of the parents on the colour
of the hybrid. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 213
bis 217.)

37. Clements, F. E. An ecologic view of the species conception.
(Am. Nat, XL1I [1908], p. 253—264.)

38. Cockayne, L. On the sudden appearance of a new character
in an individual of Leptospermum scoparium. (The New Phytologist, VI [1907],
p. 43-46.)

Leptospermum scoparium ist eine in Neuseeland weit verbreitete und recht
variable Art; die Blütenfarbe ist normal weiss, doch kommen auch Exemplare
mit hellrot gefärbten Blüten hier und da vor. Eine neue Form wurde vor
kurzem in einem einzigen Exemplare auftretend entdeckt; sie unterscheidet sich
einigermassen im Laub, dann aber besonders durch hochrote Blüten. Da nur
ein Exemplar vorhanden war, entwickelten sich die Samen an der Pflanze
durch Kreuzbefruchtung. Trotzdem hatten eine Anzahl Nachkommen dieselbe
Blütenfarbe, bei den anderen variierte die Farbe in allen Nuancen. Es ist hier
eine Form entstanden, die ebenso wie die schon früher bekannte Form
L. Cltapmanni mit hellroten Blüten als Mutante oder „ever-sporting variety"
anzusehen ist.

39. Comes, 0. Sülle varietä ti piche della Nicotiana Tabacum L.
Note critiche. (Bull. tecn. Coltivaz. Tabacchi, VII. Scafati 1908, p. 1—49, 8°.)

40. Cook. 0. F. Origin and evolution of Angiosperms trough
Apospory. (Proc. Washington Acad. Science, IX [1907], p. 159 — 178.)

Während die Gymnospermen durch die ausgestorbenen Cycadofilices mit den
Pteridophyten phylogenetisch verbunden sind, haben wir in dieser Beziehung
keine Anhaltspunkte für die Angiospermen. Verf. ventiliert den Gedanken,
dass wir uns ihre phylogenetische Entwickelung vielleicht verständlich machen
können, wenn wir den weiblichen Reproduktionsapparat der Angiospermen
mit den Farnprothallien vergleichen, die öfters direkt, ohne Vermittelung von
Sporen, an der Elternpflanze entstehen (Aposporie). Die Mitapsis, die Fusion
des Chromatins, die bei der Sporenbildung sonst eintritt, kann bis zum Beginn
der Eizellbildung verschoben sein. Die gradweise Reduktion des Prothalliums
bis zu den Angiospermen hin braucht nicht angenommen zu werden; die
Aposporie weist darauf hin, dass das Prothallium bei den Angiospermen
direkt eliminiert ist. Dann braucht der Embryosack nicht als Makrospore be-

9| R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 363

trachtet zu werden, die auf der Mutterpflanze haften geblieben ist; sondern
die junge Pflanze haftet auf der alten, wie eine Farnkapsel am Farn, oder
wie ein junger Farnthallus am Prothallium. Verf. hält seine Theorie der
Angiospermenentstehung für einfacher, als die landläufige; bei ihrer Bildung
wurde Makrospore und Prothallium völlig eliminiert und nicht rückgebildet;
das sog. Prothallium (Endosperm) ist dann durchaus nicht dem Gymnospermen-
prothallium homolog; es entsteht erst nach der Befruchtung, und zwar nach
Vereinigung zweier Kerne.

•AI. Cook, 0. F. Mendelism and other methods of Descent. (Proc.
Wash. Acad. Sciences, IX [1907], p. 189—240.)

Verf. will in dem Aufsatze die allgemeinen Tatsachen hervorheben, die
durch die neueren Experimente in Mendelscher Richtung gewonnen worden
sind. Einige Feststellungen sind im voraus zu erledigen: Man sagt im allge-
meinen, dass zwei Individuen, die die und jene Verschiedenheit zeigen, ge-
kreuzt werden; in Wahrheit kreuzen wir Geschlechtszellen; damit beginnt das
Experiment. Die aus der Vereinigung erwachsenden Organismen nennen wir
die erste Generation der Bastarde ; in Wahrheit ist die Fusion keine vollkommene,
da die Chromatinelemente der Kerne getrennt bleiben bis zur Reduktions-
teilung, die dem nächsten Geschlechtsakt vorangeht; in diesem Zustande sind
die Organismen als konjugiert zu bezeichnen. Wir haben es also in dieser
ersten Generation mit einer Verzögerung der völligen Vereinigung, die wir
erreichen wollen, zu tun. Die nächste Generation, die eigentlich die erste der
Kreuzung ist, die die Erfolge einer völligen Vereinigung oder vollendeten
Konjugation aufweist, kann als perjugiert bezeichnet werden („perjugate
generation"). Folgende fünf Elemente sind also bei Kreuzungen zu unter-
scheiden: 1. „Parent Organisms": Die Individuen, die für das Kreuzungs-
experiment ausgewählt werden. 2. „Parent Gametes": Die Geschlechtszellen,
die sie hervorbringen und die zusammengebracht werden, um die Erfolge der
Vereinigung zu zeigen. 3. „Conjugate Organisms": Die Organismen, die auf-
gebaut werden nach der Vereinigung der elterlichen Gameten, aber vor ihrer
völligen Konjugation. 4. „Perjugate Gametes": Die Gameten, die von den
konjugierten Organismen hervorgebracht werden und die den ersten Erfolg
einer völligen Konjugation der elterlichen Gameten darstellen. 5. „Perjugate
Organisms": Die Organismen, die aus der Vereinigung perjugierter Gameten
hervorgehen und die die erste Generation von Organismen darstellen, die von
einer völligen Vereinigung der elterlichen Gameten herrühren.

Der zweite grössere Abschnitt der Arbeit gibt eine Übersicht über die
verschiedenen Formen der Abstammung und Vererbung (Heterismus, Vererbung,
Mutation, Atavismus, Mendelismus usw.), deren einzelne Definitionen zu geben,
hier zu weit führen würde. Der Mendelismus ist eine Form der Abstammung,
die besonderes Interesse erweckt hat, da durch sie die landläufige Anschauung
widerlegt wurde, dass differente Charaktere durch die Kreuzung zu einem
Mischmerkmal vereinigt werden. Zur Erklärung der Spaltung der Charaktere
wurde die Theorie der reinen Keimzellen erfunden, die als überflüssig zu be-
zeichnen ist und den Tatsachen nicht gerecht wird. Die Tatsachen zeigen
nur an, dass die perjugierten Gameten dazu neigen, den einen oder den anderen
der widerstreitenden elterlichen Charaktere zum Ausdruck zu bringen; etwas
ganz anderes ist es, ob er in der Keimzelle vorhanden ist oder nicht. Keim-
zellen können ein Merkmal lange übertragen, ehe es wieder sichtbar wird.

Zwischen Mendelismus und Mutation bestehen enge Beziehungen.

364 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation MQ

Wahrscheinlich treten neue Variationen beim Prozess der Chromatinfusion
(Mitapsis) auf. Mutationen sind selten: meist werden sie also nur bei einem
Gameten vorhanden sein und variierende Gameten vereinigen sich durch-
schnittlich mit nicht veränderten, so dass also dasselbe Verhalten wie bei
einer Mendelschen Kreuzung vorliegt. Also wird eine dominierende Mutation
nicht bei allen Exemplaren der zweiten Generation vorhanden sein, auch nicht
bei Selbstbestäubung. Eine recessive Mutation wird, wenn sie einmal zum
Vorschein gekommen ist, samenbeständig sein, wie die recessiven Exemplare
einer Mendelschen Kreuzung. Das ist für die Praxis von Bedeutung.

Der Ausdruck „Vererbung" ist bisher in einem doppelten Sinne gewöhn-
lich gebraucht worden, um zwei verschiedene Tatsachen zu bezeichnen, näm-
lich die Übertragung von Charakteren und den Ausdruck von Charakteren, ihr
Sichtbarwerden (transmission of characters und expression of characters). Die
neuen Gameten einer Pflanze leiten sich nicht sowohl von dem konjugierten
Zellkörper her, als von den Gameten, von denen der Zellkörper gebildet
wurde: bei den höheren Pflanzen sind immer mehr Zellen steril geworden,
die keine direkten Nachkommen ihrer selbst liefern und ihre Merkmale über-
tragen. Die Keimzellen übertragen die Merkmale, die nur durch das Medium
der vegetativen Zellen zum Ausdruck gelangen können, die keinen Anteil am
Prozess der Rejiroduktion nehmen. Dominanz ist ein Phänomen des Sichtbar-
werdens von Charakteren und gibt keinen Anhalt für das Verständnis des
Mechanismus ihrer Übertragung. Denn ein Organismus kann nur eine Reihe
von Merkmalen zum Ausdruck bringen, aber den folgenden Geschlechtern
eine unbegrenzte Zahl von Merkmalen überliefern. Somit ist es unlogisch, an-
zunehmen, dass ein Merkmal nicht übertragen wird, weil es nicht zum Ausdruck
gelangt ist.

Die allgemeine Bedeutung des Mendelismus für die Evolutionstheorie
liegt darin, dass neue Formen, die durch Mutation entstanden, ohne Isolation
sich erhalten können; sie erweitern die Verschiedenheiten, die in der elter-
lichen Gruppe existierten. Der Fortschritt hängt weder direkt noch indirekt
von Einflüssen der Umgebung ab. Durch den Mendelismus werden die
Charaktere, die neu entstanden, in mannigfachen Kombinationen vereinigt, so
dass sich ein langsamer, gradweiser Fortschritt und dauernde Continuität
ergibt. In der Veränderung der Merkmale liegt die Evolution, nicht in der
Bildung neuer Arten, deren Zusammenhang immer durch die Kombination der
Merkmale gewahrt bleibt, wenn auch die Veränderung der einzelnen Merkmale
discontinuierlich ist.

4'_\ Cook, 0. F. Transmission Inheritance distinct from Ex-
pression Inheritance. (Science, N. S., XXV [1907], p. 911.)

Die in dem Aufsatz niedergelegten Gedanken finden sich auch in dem
vorigen Aufsatz (Ref. 41) wieder.

43. Cook, 0. F. Methods and Causes of Evolution. (U. S. Dep.
Agric. Washington, Bur. Plant. Ind. Bull., n. 136 [1908], 35 pp.)

44. Cook, 0. F. The Mendelian inheritance of Mutations. (Science,
N. S., XXVIII [1908], p. 86—88.)

Darwins Kenntnis der Phänomene, wie sie in der Mendelschen
Theorie und in der Mutationstheorie dargestellt werden, wird stets unter-
schätzt. Verf. weist die Mendelsche Erklärung der Spaltung bei Bastarden
(wirkliches Abspalten von Merkmalen) zurück, die Merkmale sind nur in ihrem

H] R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 365

Hervortreten verschieden (alternative expression im Gegensatz zu alternative
transmission).

45. Correns, C. DieBestimmungundVererbungdesGeschlechtes,
nach Versuchen mit höheren Pflanzen. (Arch. f. Rassen- u. Gesellschafts-
biologie, IV [1907]. p. 794 802.)

46. Correns, C Zur Kenntnis der Geschlechtsformen polygamer
Blütenpflanzen und ihrer Beeinflussbarkeit. (Jahrb. wissensch. Bot.,
XLIV [1907], p. 124—173.)

Die Untersuchung eines grossen Materiales von Satureja hortensis zeigte
zunächst, dass die Art nicht gynodiöcisch ist (Darwin und andere), sondern,
dass einmal rein weibliche Individuen vorkommen und dann gynomonöcische,
die im Laufe ihrer Entwicklung zwitterige und viele weibliche Blüten pro-
duzieren. Zwischen den typisch weiblichen und den typisch zwitterigen Blüten
existieren viele Übergangsformen mit mehr oder weniger „kontabescenten"
(Gärtner) Antheren; unvollkommene und vollkommene Antheren sind in den
Blüten in verschiedener Weise gemischt. Das Weiblichwerden der Zwitterblüte
und die Entstehung von Sippen mit geringerer Staubblattzahl als die vier
üblichen der Labiaten (z. B. bei Salvia) sind verschiedene Prozesse; durch den
ersteren entstehen Geschlechtsformen, durch den letzteren neue Elementar-
arten und Arten. In dem Auftreten der verschiedenen Blütenformen macht
sich bei der Satureja eine Peridiozität bemerkbar, indem die gynomonöcischen
Exemplare zunächst fast rein zwitterig blühen, dann immer mehr weiblich und
zuletzt rein weiblich (wenigstens im physiologischen Sinne) werden.

Die wichtigsten Ergebnisse der Untersuchung liegen in der Beobachtung
einer Beeinflussung der Peridiozität durch Eingriffe von aussen. Das gilt nur
für die gynomonöcische Geschlechtsform, die weiblichen Pflanzen waren einer
Beeinflussung unzugänglich, Hessen sich nicht „umstimmen". Der Einfluss
der Ernährungsbedingungen zeigte sich darin, dass bei guter Ernährung die
Zwitterblüten entstehen, bei schlechter die weiblichen. Bei schlechten Er-
Dährungsbedingungen kann also das Eintreten des weiblichen Stadiums gegen-
über der normalen Peridiozität beschleunigt werden; die Pflanzen trugen in
einem frühen Stadium lauter weibliche Blüten oder zwitterige mit kontabescenten
Antheren. Ebenso sind auch umgekehrte Resultate zu erzielen. Somit ergibt
sich: „Unempfindlichkeit der eingeschlechtlich (bei Satureja weiblich) gewordenen
Geschlechtsform, Beeinflussbarkeit der mehr oder weniger zwitterigen Form in
dem Sinne, dass der Anlage nach zwitterige Blüten eingeschlechtlich (weiblich)
werden können. Dabei bewirkt schlechte Ernährung die Ausbildung der ein-
geschlechtlichen Blüten."

47. Correns, C. Weitere Untersuchungen über die Geschlechts-
formen polygamer Blütenpflanzen und ihre Beeinflussbarkeit.
(Jahresb. Wissensch. Bot., XLV [1908], p. 661-700.)

Die Arbeit bringt den Bericht über die Fortsetzung der Versuche des
Verf. besonders mit Satureja (vgl. Ref. 46). Es hatte sich eine Beeinflussbar-
keit in der Verteilung der Geschlechtsformen nach Zeit und Zahl der Blüten
ergeben, die nun noch genauer studiert wurde. Die Pflanzen wurden ver-
schiedenen Bedingungen der Ernährung und Belichtung unterworfen, und es
konnten die früheren Resultate bestätigt und erweitert werden. Die wichtigsten
sind nach der Zusammenfassung des Autors, in der er selbst die zahlreichen
Tabellen und Beschreibungen der Einzelversuche resümiert, die folgenden: Die
gynomonöcischen Stöcke der Sippe A (von Satureja hortensis, mit der Verf.

306 ^- Pi'ger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. M2

schon früher operierte) bringen unter normalen Bedingungen etwa 10% echt
weibliche Blüten und etwa 7°/0 Zwischenstufen (darunter etwa 2,5 °/0 Zwitterige
mit ganz kontabescenten Antheren) hervor, sind also gegenüber anderen Gyno-
monöcisten nur schwach gynomonöcisch. Die Kurve der rein zwifcterigen
Blüten steigt von Beginn der Blütezeit, erstes Minimum, an, erreicht ihren Gipfel
etwa zu der Zeit, wo auch die Blütenbildung überhaupt am stärksten ist, nimmt
dann allmählich wieder ab und sinkt zuletzt fast oder völlig auf Null, zweites
Minimum. Die Kurve der mehr oder weniger weiblichen Blüten hat natürlich
den entgegengesetzten Verlauf; zuletzt, am Schluss der Blütezeit, sind die Stöcke
fast rein weiblich oder rein weiblich. Durch schlechte Ernährung, durch Kultur
in sehr magerem Boden oder in herabgesetzter Beleuchtung lässt sich die Zahl
der rein zwitterigen Blüten herabdrücken. Der Eintritt des weiblichen Stadiums
lässt sich durch herabgesetzte Beleuchtung während der Blütezeit sehr be-
schleunigen. Bei besserer Ernährung der einzelnen Blütenknospen, wie sie
sich durch Verhinderung des Fruchtansatzes erreichen lässt, sinkt die Kurve
der rein zwitterigen Blüten gegen das Ende der Blütezeit zu viel allmählicher,
so dass sie ihr zweites Minimum viel später erreicht. Aus allen diesen Tat-
sachen hat Verf. schon früher den Schluss gezogen, dass die Ausbildung einer
Blütenanlage zu einer zwitterigen oder einer physiologisch weiblichen Blüte
von ihrer Ernährung abhängt, so dass bei reichlicher Ernährung die Zwitter-
blüte, bei geringerer die weibliche Blüte entsteht.

Zum Schluss wird noch auf das Grössenverhältnis der gynomonöcischen
und weiblichen Stöcke bei Satureja hortensis eingegangen; nach Darwin sind
die zwitterigen Stöcke grösser und schwerer; Verf. konnte dies für eine Rasse
nicht bestätigen ; ein wirklicher Grössenunterschied war nicht vorhanden, so
dass die Grösse bei S. hortensis keinen sekundären Geschlechtscharakter abgibt.

48. Correns, C. Die Rolle der männlichen Keimzellen bei der
Geschlechtsbestimmung der gynodiöciscb en Pflanzen. (Ber. Deutsch.
Bot. Ges., XXVIa [1908], p. (386—701.)

Aus früheren Berichten des Verf. wissen wir, dass bei den gynodiöcischen
Pflanzen die verschiedenen Geschlechtsformen aus ihren Samen vorwiegend
bis ausschliesslich sich selbst wieder hervorbringen, so dass also die Nach-
kommenschaft der zwitterigen Pflanzen wieder vorwiegend aus Zwittern, die
der weiblichen vorwiegend aus Weibchen besteht. Wenn dies bei den früheren
Versuchen mit Satureja noch nicht so rein hervortrat, so lag das daran, dass
Verf. die echten Weibchen erst allmählich von den im weiblichen Stadium
befindlichen Gynomonöcisten trennen lernte. Ein in Tabellenform gegebener
Stammbaum von Satureja hortensis zeigt das reine Hervortreten der Geschlechts-
formen. Satureja hortensis verhält sich also ganz so, dass der Pollen der mehr
oder weniger zwitterigen Form gar keine andere Rolle bei der Bildung der Nach-
kommen der weiblichen Form spielt, als die eines Entwickelungsanregers. Bei
Satureja arbeitete Verf. nur mit weiblichen und gynomonöcischen Formen,
die reine Zwitterform hatte er nicht; der etwaige Einfluss des Pollens ist bei
Arten zu studieren, bei denen solche vorkommen, so bei Plantago lanceolata.
Hier kann der Pollen einen Einfluss auf das Geschlecht der Nachkommenschaft
haben. Die Versuche wurden in folgender Form angestellt: Es wurden ein-
getopfte Stöcke verwendet, deren Geschlecht schon im voraus bestimmt war.
Sie wurden in Gruppen vereinigt, die aus je einem „Bestäuber", einer zwitte-
rigerj Pflanze und einigen zu bestäubenden Stöcken bestanden: rein weiblichen
oder solchen, die ganz kontabescente Antheren führten. Bei P. lanceolata sind

13] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 3(57

allerhand Übergänge zwischen rein weiblichen und zwei geschlechtlichen
Stöcken vorhanden. Die Gruppen wurden auf verschiedene Stellen des bo-
tanischen Gartens verteilt. Nach einiger Zeit wurden die inzwischen abge-
blühten, vom Pollen des „Bestäubers" belegten Ähren eingesackt, alle noch
blühenden Ähren entfernt und nun die Bestäuber der verschiedenen Gruppen
vertauscht, während die zu bestäubenden Pflanzen an Ort und Stelle blieben.
Auf diese Art wurden also bei derselben Pflanze Samen erzielt, die durch den
Pollen verschiedener, bestimmter zwitteriger Pflanzen entstanden waren. Aus
den Samen entstanden Pflanzen, von denen ausführliche Tabellen gegeben
werden, die über ihre Geschlechtsform berichten. Die allgemeinen Resultate
sind folgende:

Die Zusammensetzung der Nachkommenschaft hinsichtlich ihres Ge-
schlechts hängt von der die Eizellen liefernden Pflanze ab. Die Zusammen-
setzung der Nachkommenschaft hängt aber auch von der die Pollenkörner
liefernden Pflanze ab. (Es zeigte sich, dass nach der Bestäubung mit dem
Pollen des einen Bestäubers jede der drei Versuchspflanzen mehr rein weibliche
Nachkommen bildete, als mit dem Pollen des anderen Bestäubers.) Je aus-
gesprochener eine Pflanze Keimzellen mit der weiblichen Tendenz bildet, um
so geringer ist der Einfluss der Herkunft des Pollens. Der Einfluss des Pollens
zeigt sich nicht nur bei den zwei extremen Geschlechtsformen, er tritt auch
bei den Zwischenstufen hervor.

Die Versuche zeigen, dass bei den gynodiöcischen Pflanzen das Geschlecht
nicht unabänderlich in der Eizelle bestimmt sein kann, ebensowenig wie bei
den zweihäusigen. Wenn sich Satureja so verhält, dass der Pollen gar keinen
Einfluss ausübt, so kann das nur daran liegen, dass hier die Eizellen der
Weibchen alle die weibliche Tendenz haben, und dass diese Tendenz so stark
ist, dass sie stets über die gynomonöcische Tendenz der Pollenkörner do-
miniert. Eine solche weibliche Form hatte Verf. bei P. lanceolata nicht.

49. Cowles, H. C. An ecological aspect of the conception of
species. (Americ. Naturalist, XLII [1908], p. 265—271.]

Besprechung siehe „Systematik". Fedde.

50. Crawshay. de Barri. Hybrid Odontoglosm. (Rep. 3. Intern. Conf.
1906 on Genetics, London [1907], p. 242—272.)

51. Danl'ortli, C. H. Notes on numerical Variation in the Daisy.
(Bot. Gaz., XL VI [1908], p. 349—356.)

52. Daniel, L. Sur la greffe de quelques varietes de haricots
(Cpt. Rend. Acad. Sc. Paris, CXLVII [19081, p. 142—144.)

53. Darbishire, A. D. On the result of crossing round with
winkled peas, with especial reference to their starch-grains. (Proc.
Roy. Soc. London, LXXX [1908], p. 122—135.)

54. Davenport, Charles B. Heredity and Mendels Law. (Proc. Wash-
ington Acad. Science, IX [1907], p. 179—188.)

55. Detto, Carl. Die Erklärbarkeit der Ontogenese durch
materielle Anlagen. (Biol. Centrbl., XXVT1 [1907], p. 81—95, 106—112,
142—160, 162—174.)

Es wird zunächst gezeigt, dass das Präformationsprinzip ein allgemeines
naturwissenschaftliches Prinzip ist, das auch für die organischen Naturwissen-
schaften zur Erklärung von Entwickelungen notwendig ist. Jede unterscheid-
bare qualitative Besonderheit des Organismus muss durch eine Anlage prä-
formiert sein, sonst könnte sie nicht aus der Keimzelle entstehen. Der

368 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. M4

qualitative Präformismus ist eine Konsequenz der mechanischen Naturauffassung.
Ehe das Problem der Entfaltung der Merkmale besprochen wird, wird erst fest-
gestellt, was eigentlich unter Merkmal zu verstehen ist und welche Merkmale
für das ontogenetische Problem wichtig sind. Keimzelle und Soma haben
verschiedene Merkmale. Wie entstehen nun die des Soma? Tn der Keimzelle
sind materielle Anlagen für sie enthalten und zwar sind die Strnkturmerkmale
durch heteronome Anlagen, die Formmerkmale durch regulative Formanlagen
vertreten. Durch solche Anlagen ist das Differenzierungsproblem (während
der Ontogenese) lösbar, wenn wirklich die Entfaltungsbedingungen gegeben
sind, d. h. besonders wenn die rechten Anlagen an den rechten Ort kommen
können. Nun zeigt es sich aber, dass das Problem der adäquaten Anordnung
der Srukturanlagen unlösbar ist, beides, wenn man erbgleiche (Hertwig) oder
erbungleiche (Weismann) Teilungen annimmt.

So folgt als Gesamtergebnis, dass die Erklärung der ontologischen
Probleme auf Grund materieller Präformation keine Erklärung, sondern Um-
schreibung, eine dogmatisch-materialistische Verbildlichung dieser Probleme
ist. „Ein fruchtbarer Sinn bleibt dem Begriff der Anlage nur gewahrt, wenn
man ihn als fiktiven Hilfsbegriff für die Beziehungen zwischen den Tatsachen
auffasst und sich dessen stets bewusst bleibt."

56. Krabble, E. and Nierenstein, M. Bastard logwood from Jamaica.
(Bull. Dept. Agr. Jamaica, V [1907], p. 185—187.)

57. Drude, 0. Die Theorie der Entstehung der Arten als Mark-
stein im Lebensbilde Darwins. (Sitzber. u. Abhandl. Naturw. Ges. „Isis",
Dresden (1909]. p. 11—22.)

58. Druery, Chas T. Fern Breeding. (Rep. 3. Intern. Oonf. 1906 on
Genetics, London [1907]. p. 273—277.)

In der Gruppe der Farne ist bisher wenig mit rationeller Zucht und
Hybridisation zur Erzeugung neuer und schöner Formen gearbeitet worden,
da die Grundlagen besonders für Bastardierungen schwieriger zu erkennen
sind als bei Phanerogamen. Der Autor will hierzu anregen und beschreibt die
Methoden der Sporenaussaat und Bastardierung.

59. East, E. M. Suggestions concerning certain bud variations.
(Plant World, XI [1908], p. 77-83.)

60. Engerrand, (J. Les phenomenes de la telegonie et de la
xenie, sont-ils inexplicables? (Mein, y Rev. Soc. Cien. Antonio Alzate
XXVI [1908], p. 285—295.)

61. Erdner, E. Sind die Veilchenbastarde fruchtbar oder nicht?
(Allg. Bot. Zeitschr., XIII [1907], p. 117—118.)

Bei einer Reihe von Bastarden hatte Verf. schon längere Zeit beobachtet,
dass sie aus kleistogamen Blüten Früchte mit vollkommenen Samen hervor-
brachten. Im letzten Jahre gewann er bei mehreren Kombinationen (z. B.
V. odorata X saepincola) auch solche aus chasmogamen Blüten.

62. Erdner, E. Ein neuer Veilchen-Tripelbastard. (Allg. Bot.
Zeitschr, XIV [1908], p. 72—73.)

Der zuerst im Englischen Garten bei Neuberg a. D. entdeckte und dann
in Kultur genommene Bastard ist nach der kritischen Untersuchung des Verf.s
Viola (hirta L. X odorata L.) X saepincola Jord. Basse cyanea Gel. pr. sp. = V-
permixta Joid. X saepincola Jord. Rasse cyanea Cel. pr. sp. = V- neobicrgensis
Erdner.

15| E. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 3ßQ

63. Famintzin, A. Die Symbiose als Mittel der Synthese von
Organismen. (Biol. Centrbl.. XXVII [1907], p. 353—364.)

Die Descendenztheorie.behauptet dieEntwickelung komplizierterer Formen
aus einfacheren; ein Beweis dafür ist bisher nicht erbracht worden. Verfasser
wundert sich darüber, dass die Flechten nicht als Beweismittel für die Evo-
lutionslehre verwandt worden sind, da doch hier durch die Symbiose ein-
facherer Lebewesen (Pilz und Alge) kompliziertere Formen entstanden sind.
Man hat eben bisher die Flechten nach den Untersuchungen Schwendeners
nicht als den anderen Pflanzen gleichartige Organismen betrachtet, in ihnen
keine besondere Klasse gesehen, sondern sie den Pilzen angeschlossen. Verf.
meint nun, dass es wohl möglich wäre, dass auch die eigentlichen Organismen
Konsortien im Sinne der Flechten wären, aus selbständigen isolierbaren Lebe-
wesen, wie die Flechte aus Pilz und Alge zusammengesetzt. Freilich ibt
es noch nicht gelungen, z. B. Chloroplasten vom Cytoplasma unabhängig
und selbständig zu machen, doch meint Verfasser, dass dies nicht als un-
möglich zu bezeichnen ist. Ähnliche Ansichten hatte 1905 Mereschowsky
geäussert. Forschungen der letzten Jahre haben gezeigt, dass auch sonst bei
Tieren und Pflanzen Konsortien ähnlich wie die Flechten vorkommen, so z. B.
bei den Orchideen, die ohne Pilze nicht wachsen können. „So sonderbar es
auch klingen möchte, erlaube ich mir zu behaupten, dass wir, strenge genommen,
nur das symbiotische Gebilde, nicht aber die Orchideenpflanzen kennen, da es
noch nicht gelungen ist, dieselben ohne das Zutun des Pilzes zu erzielen."

Die Flechten können uns also zeigen, wie die Symbiose ein Mittel ist,
durch Synthese von Organismen einen phylogenetischen Fortschritt herbeizu-
führen. „In den Flechten haben wir einen streng bewiesenen Fall der Synthese
eines höher organisierten Wesens aus zwei einfacheren, die zum symbiotischen
Leben zusammentreten. Diese Tatsache ist deshalb besonders interessant,
weil wir von jetzt an zur Stütze der Lehre von der Evolution der Organismen
nicht bloss theoretische Betrachtungen, sondern auch tatsächliches Material
vorführen können."

6L Fick, R. Vererbungsfragen, Reduktions- und Chromosome n-
hypothesen, Bastardregeln. (Ergebn. d. Anat. u. Entwickelungsgesch.,
XVI [1907]. p. 1—140.)

65. Fiori, Adr. Un nuovo Ibrido di Carduus (C. simplicifoUus X nutans
Xob.;. (Bull. Soc. Bot. Ital. [1908], p. 155—157.)

66. Fischer, Ed. Der Entwickelungsgang derTJredineenunddie
Entstehung neuer Formen im Pflanzenreich. (Mitt. Naturf. Ges. Bern
aus dem Jahr 1907 [1908], p. 136—154.)

Der Aufsatz ist die Bearbeitung eines Vortrages des Verf.s. Nachdem
zuerst der Entwickelungsgang einer typischen Uredinee kurz beschrieben
worden ist, werden die neueren cytologischen Ergebnisse (Blackman, Fräser,
Christman) gewürdigt, nach denen der Aecidienbildung ein Sexual akt voran-
geht, also im Entwickelungsgang des Pilzes eine Gametophyten- und eine
Sporophytengeneration wechelt. Innerhalb dieser beiden Generationen können
sich Modifikationen geltend machen, insofern als in der sporenbildenden Genera-
tion die Aecidien oder die Uredo oder beide, in der sexuellen Generation die
Pycniden in Wegfall kommen. Diese Modifikationen finden sich häufig inner-
halb enger Artgruppen; meist sind dann zwischen den Arten ausser den Ver-
schiedenheiten im Entwickelungsgang auch noch morphologische Unterschiede
bemerkbar, manchmal aber (Primula bewohnende Uromyces) fallen diese ganz
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt G. 10. 10.1 24

370 R. Pilger: Entstehung der Arten. Variation und Hybridisation.

[16

oder fast ganz fort und die Arten unterscheiden sich nur durch die Modifika-
tionen im Entwickelungsgang und durch die Nährpflanzen. Es handelt sich
um biologische Arten, und doch sind die Unterschiede konstant. Daraus
gewinnt man den Eindruck, „dass im allgemeinen diese Unterschiede im Ent-
wickelungsgange phylogenetisch junge Merkmale darstellen: Die Species,
welche man nach diesen Merkmalen auseinanderhält, können daher gewisser-
massen als Species in statu nascendi bezeichnet werden, und das erweckt die
Hoffnung, dass es für sie gelingen könnte, die Faktoren festzustellen, welche
bei ihrer Entstehung im Spiele waren".

Besonders spielen klimatische Bedingungen eine Rolle, denn es zeigt
sich, dass alpine Formen denen der Ebene gegenüber eine starke Verkürzung
der Uredobildung und ein früheres Auftreten der Teleutosporen aufweisen-.
Es liegt hier also eine Anpassung an das alpine Klima mit seiner kurzen
Vegetationsperiode vor. Die Anpassung könnte durch eine direkte Einwirkung
äusserer Faktoren zustande gekommen sein, oder indirekt durch Selektion.
Für die erstere Auffassung sprechen folgende Versuche, die durch B. Iwanoff
auf Veranlassung des Verf. ausgeführt wurden: Es wurden Parallelversuche
mit Infektion in der Ebene und in der Alpenregion, also in Bern und auf dem
Faulhorn an der Schneegrenze angestellt, z. B. mit Puccinia Pimpinellae auf
Pimpinella magna, einer Uredinee, die alle Sporenformen hat. Ein Teil der
Pflanzen in Bern wurde nachts im Eiskasten gehalten. Die Pflanzen wurden
in Bern am 7. Juli infiziert mit Uredosporen und dann zum Teil nach dem

Tabelle :

Faulhorn gebracht

Das Resultat zeigt folgende

21. VII.

25. VII.

2. VIII.

13. VIII.

(

Bern an der

Puccinia \

Sonne . .

U

ü

U

U : T = 9 : 1

Pimpinellae )

Bern nachts

Aussaat vom j

im Eis-

7. Juli 1906 1

kasten . .

—

U : T = 8 : 1

—

—

[

Faulhorn . .

—

U:T= 1:3,5

—

U = Uredosporen. T = Teleutosporen.

Auf dem Faulhorn und unter ungünstigen Bedingungen wurde also die
Uredobildung stark zurückgedrängt und die Teleutosporenbildung beschleunigt.
„Es gibt also Uredineen, die unter direktem Einfluss äusserer Einwirkungen
ihren Entwickelungsgang verkürzen, also einen Entwickelungstypus zeigen,
der bei anderen Uredineen ein erbliches Speciesmerkmal darstellt. Man geht
daher wohl nicht fehl, wenn man sich auch für diese letzteren Uredineen den
verkürzten Entwickelungsgang durch direkte Bewirkung von Seiten äusserer
Einflüsse entstanden denkt."

Zum Schluss weist Verf. noch auf die Detto sehen Einwürfe gegen die
Annahme einer direkten Anpassung hin (vgl. J. J., 1904); man kann natürlich
hier auch von „Fixierung eines Regulationseffektes durch Verlust anderer
Einstellungen" reden, wobei dann die eigentliche Anpassung ganz aus dem
Spiele bliebe.

67. Pocke, W. 0. Betrachtungen und Erfahrungen über Variation
und Artenbildung. (Abh. Naturw. Ver. Bremen, XIX [1907], p. 68—87.)

17] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 37 j

In der Einleitung- werden einige allgemeine Betrachtungen über Variation
und Entstehung von Arten gegeben; Verf. kann den Unterschied von Variationen
und Mutationen nach de Vries nicht anerkennen; „es gibt vielmehr die mannig-
faltigsten Abänderungsmöglichkeiten und Abänderungsursachen, durch welche
die wandelbaren Pflanzengestalten in der verschiedensten Weise beeinflusst
werden". Oenothera Lamarckiana scheint ihm ein ungeeignetes Objekt zu sein,
um die Probleme der Formwerdung zu studieren, da sie eine ausländische
kultivierte Rasse unbekannter Herkunft ist, die seit langer Zeit wechselnden
Einflüssen, vermutlich auch vielen Kreuzungen ausgesetzt gewesen ist. Dann
geht Verf. auf einige speziellere Fragen ein. 1. Selbstbestäubung und Chloro-
phyll. Hemerocallis flava liefert gewöhnlich nur Samen bei wirklicher Fremd-
bestäubung; gibt sie ausnahmsweise Samen bei Selbstbestäubung, so wird bei
den aus ihnen entstehenden Pflanzen die Chlorophyllbildung unterdrückt.
Ähnliches liess sich bei Acer pseudoplalanus beobachten. Diese Erfahrungen
begründen die Vermutung, dass bei einigen Pflanzen die durch Selbstbefruchtung
erzeugten Sämlinge zum Teil lebensunfähig oder doch untereinander ungleich-
wertig sind. 2. Umwandelung bei Datura- Durch Aussaat von Z). Tatula-
Samen erhielt Verf. nach mehreren Jahren D. Stramonium-Pflanzen. 3. Variation
verschiedener Eigenschaften. Die Zahl der Blatt- oder Blütenglieder variiert
bei einzelnen Teilen der Individuen; besonders bei der Zahl der Glieder in
den Blütenkreisen ist es deutlich, dass diese Variation sich nicht auf ganze
Individuen oder Rassen erstreckt, sondern auf einzelne Blüten desselben
Stockes oder Zweiges. Dagegen ist es nicht selten, dass ausgeprägte Arten
durch Blütenkreise mit mehr oder weniger Einzelgliedern von den verwandten
Arten abweichen. Die Grösse wird durch Ernährungsbedingungen beeinflusst,
doch gibt es auch samenbeständige Rassen, die durch die Grössenverhältnisse
verschieden sind (Nanismus). Im Freien sind solche konstitutionellen, nicht
von der Ernährung abhängigen, Abänderungen selten (Phragmites communis
var. pseudodotiax). Am auffälligsten sind die Abänderungen in den Farben,
besonders der Blüten; bei Kreuzungen verhalten sich die Abänderungen sehr
verschieden. Endlich wird noch die Variation in Gestalt, Behaarung, Belaubung
und Laubfall besprochen. 4. Neu entstandene Tragopogon-Avten. T. phaeus,
ein Bastard von T. dubius und T. porrifolius. T. hortensis, eine neue Form, in
•einem Exemplar ursprünglich vorgefunden, die als Abkömmling von T. porri-
folius gedeutet wird.

68. Focke, W. 0. Verschiedenblätterigkeit bei einer Himbeer-
kreuzung (Rubus X Paxii). (Abh. Naturw. Ver. Bremen, XIX [1908], p. 204
bis 206.)

Der Bastard Rubus X Paxii ist aus der Kreuzung R. idaeus X phoeni-
colasius entstanden und wurde zuerst im Breslauer Botanischen Garten ge-
funden; bemerkenswert ist er dadurch, dass die Blätter an denselben Sprossen
verschieden sein können und sich bald der einen, bald der anderen Stammart
in ihrer Form nähern.

69. Fruhwirth, C. Untersuchung über den Erfolg und die zweck-
mässigste Art der Durchführung von Veredelungsauslesezüchtung
bei Pflanzen mit Selbstbefruchtung. (Arch. f. Rassen- u. Gesellschafts-
biologie, IV [1907], p. 145—170.)

In dem einleitenden Kapitel werden die verschiedenen Verfahren der
Züchtung landwirtschaftlicher Kulturpflanzen dargestellt. Zunächst werden
die verschiedenen Formen der Vererbung unterschieden: Gewöhnliche oder

24*

372 R. Pilger: Entstehung der Arten, A7ariation und Hybridisation. Mg

volle Vererbung, teilweise Vererbung und verhältnismässige Vererbung. „Als
verhältnismässige Vererbung bezeichne ich bei solchen Eigenschaften, welche
von Individuum zu Individuum Schwankungen im Ausmass zeigen, jene Ver-
erbung, bei welcher das mittlere Ausmass der Eigenschaft vererbt wird."
Dann wird bei der Variabilität unterschieden: Individuelle kleine Variabilität
(fluktuierende oder Plus- und Minusvariabilität), individuelle grosse Variabilität
(hierbei Variabilität nach Bastardierung und gewöhnliche grosse individuelle
Variabilität oder Mutabilität) und allgemeine Variabilität. „Als allgemeine
Variabilität habe ich endlich Veränderungen von Leistungseigenschaften be-
zeichnet, welche an einem neuen Staudort bei allen Individuen der Form als
Folge einer gleichgerichteten Einwirkung auf Körper- und Vererbungssubstanz
in Erscheinung treten." Dementsprechend wird die Züchtung auf verschiedenem
Wege versucht: Durch Bastardierung, mit Benutzung spontaner morpho-
logischer Variationen, durch Formtrennung (durch Erkennung und Aufsuchung
der Elementarformen bei Formenmischung in Rassen), endlich auf dem Wege
der Veredelungsauslese, wobei die kleinen oder fluktuierenden Variationen
benützt werden. Jede dieser Züchtungsmethoden lässt verschiedene Auslese-
verfahren zu, besonders das Verfahren der fortlaufenden Auslese (Massenaus-
lese oder aber Familienauslese) oder der Individualauslese.

Im zweiten Kapitel wird der Erfolg bei Veredelungsausleseziichtung
behandelt. Die Ansichten über einen solchen Erfolg gehen auseinander bei
verschiedenen Forschern; es wird hingewiesen auf Gal ton (Regressionsgesetz),
Pearson, de Vries, Johannsen (Unterschied von Populationen und reinen
Linien). Von Wichtigkeit ist die Art und Weise, in der der Erfolg festgestellt
wird; dies kann geschehen, indem man 1. das Mittel der Kinder ausgewählter
Eltern in jedem Jahre mit dem Mittel vergleicht, das in der Ausgangs-
generation, in welcher unausgelesene Pflanzen zur Verfügung standen, vor-
handen war, oder 2. das Mittel der Kinder ausgewählter Eltern in jedem Jahr
mit dem Mittel der Kinder nicht ausgewählter Eltern vergleicht. Die Kinder
nicht ausgewählter Eltern müssen von der Ausgangsgeneration der Auslese
abstammen und die Nachkommenschaft solcher muss, ohne irgend welche
Auslese aber unter den gleichen Verhältnissen wie die Elitepflanzen, demnach
auch im Zuchtgarten und bei gleichem Wachsraum, gleicher Fruchtfolge und
gleichen Düngungsverhältnissen wie diese, erwachsen sein. Der letztere Weg
ist der sichere, weil die einzelnen Eigenschaften stark von den Witterungs-
verhältnissen verschiedener Jahre abhängig sind.

Das dritte Kapitel bringt den Bericht über Versuche mit Veredelungs-
auslesezüchtung bei Pflanzen mit Selbstbefruchtung. Die wichtigsten Ergeb-
nisse stellt Verf. selbst am Schluss in folgenden prägnanten Sätzen zusammen:
„Als Veredelungsauslesezüchtung bezeichne ich jene Art der Züchtung, bei
welcher die individuelle kleine Variabilität benutzt wird. Die angeführten
Versuche mit Veredelungsausleseziichtung bei Erbse, Hafer und Gerste sprechen
für die hohe Bedeutung der Linientrennung und bestätigen damit die Ergeb-
nisse der Versuche von Johannsen. Der sicherste und daher zweckmässigste
Vorgang der Durchführung der Veredelungsausleseziichtung ist jener mit
nebeneinanderlaufenden Individualauslesen. Die Veredelungsauslesezüchtung
lässt sich mit ständig fortgesetzter Auslese oder mit zeitlich beschränkter
Auslese durchführen. Auf Fremdbestäubung angewiesene Pflanzen machen
eine mindestens mehrere Jahre hindurch fortgesetzte Auslese notwendig. Bei
Selbstbefruchtern kann eine einmalige Pflanzen- und einmalige Nachkommen-

19] K. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 373

auslese genügen. Auch bei anderen Arten der Züchtung ist das Verfahren
mit nebeneinanderlaufenden Individualauslesen und Fortsetzung der Auslese
vielfach mit gutem Erfolg anwendbar. Der Erfolg einer Veredelungsauslese
wird sich bei Selbstbefruchtung durch Linientrennung, bei Fremdbefruchtung
durch Linienreinigung und Linientrennung darstellen.''

Wenn also auch Verf. im allgemeinen den Standpunkt der schwedischen
Forscher, die die Züchtung mit reinen Linien und Individualauslese betreiben,
für richtig befindet, so ist doch zu bemerken (im Gegensatz zur Darstellung
von de Vries), dass eine fortgesetzte Auslese von Vorteil ist, und zwar nicht
nur bei Arten mit Fremdbestäubung, bei denen ja erst dadurch eine Linien-
reinigung erreicht werden kann, sondern auch bei Arten mit Selbstbestäubung.
Das gilt besonders für die Praxis.

70. Gain, E. Etüde biometrique sur un hybride de primeveres,
Primida flagellieaulis Pax. (C. R. Ass. FranQ. Avanc. Sc. Reims [Paris], XXXVI,
1907 [1908], p. 490.)

71. Gain, E. Sur les variations de la fleur et de l'heterostylie
de Primula grandiflora Lam. et de P. officinalis Jacq. (C. R. Ass. Franc.
Avanc. Sc. Reims [Paris], XXXVI, 1907 [1908], p. 472.)

72. Gates, Reginald Rnggles. Pollen development in hybrids of
Oenothcra lata X 0. Lamarckiana, and its relation to mutation. (Bot.

■Gaz., XLIII [19071, p. 81 — 115, T. 2—4.)

73. Gates, Reginald Rnggles. Hybridization and Germ cells of
Oenothera mutants. (Bot. Gaz., XLIV [1907], p. 1—21.)

74. Gates, Reginald Ruggles. A study 01 reduction in Oenothera
rubrinervis. (Bot. Gaz., XLVI [1908], p. 1-34, T. 1—3.)

75. Geerts, J. M. Über die Zahl der Chromosomen von Oenothera
Lamarckiana. (Ber. D. Bot. Ges., XXV [1907], p. 191—195, T. 6.)

Das Material für die Untersuchung stammte teils aus dem Versuchs-
garten von Prof. De Vries in Amsterdam, teils vom Oenotherenfeld zwischen
Hilversum und s'Graveland, auf dem auch De Vries Material für seine Kulturen
sammelte.

Oenothera Lamarckiana hat 14 Chromosomen in den vegetativen Kernen
und 7 in den generativen.

76. Geerts, J. M. Beiträge zur Kenntnis der cytologischen Ent-
wickelung von Oenothera Lamarckiana. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa [1908],
p. 608—614.)

77. Gallard», A. Sur l'epreuve statistique de la loi de Mendel.
(C. R. Acad. Sei. Paris, CXLVI [1908], p. 361—362.)

Das Mendelsche Gesetz wird von den Biometrikern nicht anerkannt,
sie weisen auf die Unterschiede hin, die die statistische Methode und die
Theorie ergibt. Pearson verlangt von einer Vererbungstheorie als Prüfstein,
dass ihre Folgerungen mit den Resultaten übereinstimmen, die die Statistik
grosser Populationen ergibt. Das ist nicht gerechtfertigt, da die Fertilität
und Vitalität der verschiedenen Kreuzungen verschieden sind. Das Galtonsche
Gesetz ist nur eine Konstatierung a posteriori.

78. Giglio-Tos, E. L'ereditä e le leggi razionali dell' ibridismo.
(Biologica, vol. II, 36 pp., 8», Torino 1908.)

79. Giesenhagen. Bef ru chtung und Vererbung im Pflanzenreiche.
(Wissenschaft und Bildung, Heft 6, Leipzig 1907, 132 pp., mit 31 Abbildungen,
geb. 1,25 M.)

374 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [20'

Ursprünglich Vorträge im Münchener Volkshochschulverein. Behandelt
die Befruchtungs- und Fortpflanzungsvorgänge von den niedersten Pflanzen
an bis zu den höchsten.

Zum Schlüsse wird besprochen: Parthenogenese, Nucellarembryonen und
die Bedeutung der Vererbung für die Entstehung neuer Formen.

F. Fedde.

80. Gregory, E. S. Pollen of hybrid vi ölet s. (Journ. of Bot., XLV
[19071, P- 377—378.)

Die Untersuchung der Viola- Hybriden erweist, dass sie, wenigstens zum
Teil, mit gutem Pollen versehen sind, so dass in der Ausbildung des Pollens
kein sicherer Unterschied zwischen guten Arten und Bastarden gesucht
werden kann.

81. (Mffon, Ed. Nouveaux essais sur le greffage des plantes
herbacees. (Bull. Soc. Bot. France, LV [1908], p. 397—404.)

Die neueren Versuche mit Pfropfungen bestätigen das frühere Resultat
des Verf., dass in allen untersuchten Fällen Unterlage und Pfropfreis ihre
Charaktere bewahrten und dass keine Merkmale auftraten, durch die man hätte
auf asexuelle Bastardierung (Pfropf hybriden) schliessen dürfen. Verf. will nicht
leugnen, dass es solche geben kann, nur sollen sie erst gezeigt werden; die
bisherigen Fälle sind unsicher, er selbst konnte in allen Kulturen keine ge-
winnen. Die Versuche beziehen sich auf Solanaceen (Aubergine auf Tomate),
Piment auf Tomate, verschiedene Formen von Auberginen untereinander,
Tollkirsche auf Kartoffel, Tabakarten aufeinander oder auf Kartoffel, oder auf
Tollkirsche), ferner auf Bohnen. Hier wurde auf Keimlinge unterhalb der
Keimblätter gepfropft, um Triebe aus der Unterlage zu vermeiden; die Pfrop-
fungen waren sehr verschiedener Art: Zwergform auf Riesenform und umgekehrt,,
ferner jede Form auf sich selber gepfropft oder ohne Pfropfung kultiviert; das
gleiche galt auch für die Wachsbohnenformen.

Das Resultat war, was Bastardierung anbetrifft, wie schon erwähnt,
durchaus negativ. Die gepfropften, wie nicht gepfropften Exemplare wuchsen
und fruchteten regelmässig, ohne eine bedeutendere Variation zu zeigen.

82. Grimaldi, Cl. Sopra alcune esperienze di ibridazione della
vite. (Att. R. Acc. Line. Roma, XVII [1908], p. 653—661.)

83. Haecker, V. Die Chromosomen als angenommene Vererbungs-
träger. (Ergebn. und Fortschr. der Zoologie, I [1907], p. 1 — 136.)

84. Hardy, G. H. Mendelian proportions in a mixed population..
(Science N. S., XXVIII [1909], p. 49-50.)

Nachweis, dass nicht, wie so oft angenommen wird, ein dominierendes
Merkmal die Tendenz hat, sich über eine ganze Population auszubreiten oder
ein recessives Merkmal die Tendenz hat, auszusterben.

85. Hatschek, B. Die Generat ültheorie. Grundideen meiner
Vererbungshypothese und deren Kritik durch Plate. (Biol. Centrbl.,
XXVII [1907], p. 311—320.)

Verf. weist die Kritik Pia t es an seiner Vererbungstheorie zurück und
setzt diese in ihren Grundzügen nochmals auseinander. Eine Antwort Plates
darauf findet sich im selben Bande des Centralblattes, Seite 638 — 651. Endlich
wendet sich Hatschek wiederum gegen die Antwort Plates im folgenden
Bande des Centralblattes (1908, Bd. 28), Seite 306—320.

86. Heckel. Sur les mutations gemmaires culturales du Solanum
Maglia. (Rev. Hort. Marseille, LIV [1908], p. 160—162.)

21] R. Pilger: Entstehung- der Arten, Variation und Hybridisation. 375

87. Hedlund. Om artbildning ur bastarder. (Bot. Notis. [1907],
p. 27—46.)

Vgl. das Referat von ßaur in Bot. Zeit., LXV, II (1907), p. 350.

88. Heinricher, E. Potentilla anrea L. mit zygomorphen oder auch
asymmetrischen Blüten und Vererbbarkeit dieser Eigentümlichkeit.
(Zeitschr. des Ferdinandeums. III, 52 [1907], p. 281—286.)

89. Heinricher, E. Über Androdiöcie und Andromonöcie bei
Liliuni croceum Ohaix und die systematischen Merkmale dieser Art.
(Flora, XCVIII [1908], p. 363—378.)

Verf. fand bei Exemplaren von Lilium croceum Chaix an Standorten des
Monte Baldo, dass die Blüten männlich oder zwitterig waren; dieses Merkmal
zusammen mit anderen ergibt die Selbständigkeit der Art, doch braucht auf
die systematischen Folgerungen hier nicht eingegangen zu werden.

Das weitere Verhalten der Exemplare und ihrer Descendenz will Verf.
noch eingehender untersuchen; vorläufig steht fest, dass die männlichen Pflanzen
an Zahl stark überwiegen.

Ferner haben die männlichen Individuen allgemein noch einen Rest des
Gynaeceums, ebenso wie die männlichen Blüten der andromonöcischen. End-
lich sind die männlichen Pflanzen kleiner und schwächer, so dass wohl ein
Zusammenhang zwischen Ernährung und Blütenform besteht, indem die
schlechter ernährten Exemplare männlich, die besser ernährten zwitterig oder
polygam andromonöcisch, die kräftigsten, mehr als zweiblütigen in der Regel
andromonöcisch werden.

90. Heinricher, E. Eine erbliche Varietät des Ligustrum vulgare L.
(Flora, XCVIII [1908], p. 379.)

Verf. fand an der Reichsstrasse bei Innsbruck ein Exemplar von Ligus-
trum vulgare mit satt cremefarbigen Corollen, eine „mutatio flore lutescente".
Diese Farbe wurde bei Blüten von Stecklingsexemplaren reproduziert und er-
wies sich auch bei aus Samen gezogenen Exemplaren als erblich.

91. Henslow, G. The heredity of acquired characters in plants.
London, J. Murray (1908), XII, 107 pp.

92. Herse, F. Beiträge zur Kenntnis der histologischen Er-
scheinungen bei der Veredelung der Obstbäume. (Arbeiten aus der
Pflanzenphysiolog. Versuchsstation der Kgl. Lehranstalt für Wein-, Obst- und
Gartenbau zu Geisenheim a. Rh.) (Landwirtsch. Jahrb., XXXVII [1908], Er-
gänzungsband, No. 4, p. 71 — 136, 2 Taf. u. 12 Textfig.)

Die Arbeit soll in erster Linie die Frage beantworten, in welcher Form
und in welcher Zeit die Verwachsung der Symbionten bei den wichtigsten
Veredelungsmethoden unter den in der Praxis gegebenen Bedingungen ver-
läuft. Es wurden hauptsächlich die bei der Copulation auftretenden Ver-
wachsungserscheinungen behandelt und zwar nicht nur die normalen, sondern
auch die Abweichungen, welche sich infolge von Mängeln in der Ausführung
der Veredelung oder des Materials ergeben. Ausserdem erfahren noch die
Vorgänge beim Okulationsverfahren, besonders ihr zeitlicher Verlauf eine ein-
gehende Darstellung, während die weiteren Veredelungsmethoden (wie An-
schäften, Rindenpfropfung usw.) nur gestreift werden.

Bezüglich des histologischen Charakters des in der Verwachsungsregion
im Veredelungsjahre gebildeten Holzes bringen die Untersuchungen des Autors
gegenüber unseren bisherigen Kenntnissen wenig Neues. Es wird die Orien-
tierung, Gestalt und Verteilung der neugebildeten Holzelemente, sowie ihre

376 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation and Hybridisation. [22

Abweichung von denen des normalen Holzes geschildert. Einzelheiten müssen
im Original eingesehen werden. Simon.

93. Hildebrand. Friedrich. Die Cyclamen- Arten als ein Beispiel für
das Vorkommen nutzloser Verschiedenheiten im Pflanzenreich.
(Beih. Bot. Centrbl., XXII, II [1907], p. 143—196, T. 2—9.)

Den Gedanken, von dem die Zusammenstellung der Cyclamen- Arten aus-
geht, zeigt das Schlusswort des Verf.:

„Jedenfalls liefern die Arten der Gattung Cyclamen ein ausgezeichnetes
Beispiel dafür, dass, wenn man auf die Verschiedenheiten der Arten einer
Gattung näher eingeht, es sich zeigt, dass diese Verschiedenheiten als solche
für die einzelne Art von keinem Vorteil sind; jedenfalls können sie nicht durch
Naturauslese entstanden sein. Als erster Grund für die Verschiedenheiten
der Arten einer Gattung tritt uns das wahrscheinlich oft durch Änderung von
äusseren Lebensbedingungen verursachte Variieren eines Urahnen entgegen.
Dieses Variieren hat eine bestimmte Richtung eingeschlagen, es ist die
Grundursache aller heutigen verschiedenen Formen. Erst in zweiter Linie,
was ja doch eigentlich auf der Hand liegt, hat die Naturauslese eintreten
können, welche, um mit de Vries und anderen zu reden, ja vollständig ohn-
mächtig ist, wenn ein Variieren nicht stattfindet, welche erst dann, wenn
dieses eintritt, zur Geltung kommen kann, aber durchaus nicht immer in
Wirksamkeit zu sein braucht ; denn es findet sich eine ganz ungeheure Menge
von Eigenschaften an den variierenden und auch an den fest ausgebildeten
Organismen, welche dem einzelnen Träger derselben vor dem anderen absolut
gar keinen Vorteil bringen und für seinen Bestand vollständig gleichgültig
sind. Diese Tatsache an einem speziellen Fall, nämlich an den Arten der
Gattung Cyclamen, zu zeigen, war die Aufgabe des Vorstehenden."

94. Hildebrand, Friedrich. Über Versuche zur Bildung von Pfropf-
bastarden bei Oxalis crassicaulis. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa [1908], p. 19 — 21.)

Bei Oxalis crassicaulis existieren mehrere Formen, deren Zwiebelknollen
verschiedene Färbung besitzen (weiss, gelb, dunkelkarminrot). Sie benutzte
Verf. zu Versuchen, um Pfropfbastarde zu bilden, aber ohne Erfolg. Nur ein
Fall zeigte günstigere Aussichten. Die Augen von roten Zwiebelknollen waren
in gelbgefärbte Zwiebelknollen eingesetzt worden ; meist entwickelten sich rote
Zwiebelknollen, nur in einem Falle zeigte sich eine Beeinflussung durch die
gelbe Form, indem an einer Zwiebelknolle der untere Teil dunkelkarmin
gefärbt war, nur an den Spitzen der Schuppen gelb, während an dem oberen
Teil auf gelbem Grunde nur unterhalb der gelben Schuppenspitzen ein roter
Fleck sich befand. Dieses Gebilde hatte aber keine weitere Entwickelung,
sondern verfaulte. Verf. berichtet über den Fall, um vielleicht weitere Unter-
suchungen anzuregen.

95. Hildebrand, Friedrich. Über Sämlinge von Cytisus Adami. (Ber.
D. Bot. Ges., XXVIa [1908], p. 590-595.)

Der Pfropfbastard Cytisus Adami entwickelt meist nur an den Labumum-
Zweigen Früchte mit reifen Samen. Verf. erhielt nun einige Samen an einem
wirklichen Adami-Zweig. Diese entwickelten zwei kräftige Pflanzen, die ganz
zu 6. Laburnum zurückschlugen, auch in der Blüte. Einige andere jüngere
Pflanzen sind noch in Kultur: vorläufig erscheinen dem Verf. theoretische Er-
wägungen und Besprechungen noch nicht am Platze.

96. Hnrst, C. C. Mendelian Characters in plants and animals.
(Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 114—129.)

23] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 377

97. Hurst, ('. C. Mendel's Law of Heredity. (Journ. Roy. Hort. Soc.
Lond., XXX [I [1907], p. 227—229.)

Ganz kurze allgemeine Angaben. C. K. Schneider.

98. Jensen, P. Organische Zweckmässigkeit, Ent Wickelung
und Vererbung vom Standpunkt der Physiologie. Jena, P. Fischer,
1907, 251 pp.)

99. Johannsen, W. Does hybridisation increase fluctuating
variability? (Rep. 3. Intern. ConC 1906 on Genetics, London [1907], p. 98
bis 113.)

Vortrag auf dem Kongress in London 1906, in dem die Ansichten
Johannsens, wie sie in seinem Werke „Über Erblichkeit in Populationen
und in reinen Linien (190-4)" niedergelegt sind, dargestellt werden. Die bio-
metrische Methode und das Galtonsche Gesetz werden, da hier mit Populationen
und nicht mit reinen Linien gearbeitet wird, zurückgewiesen. Johannsens
Methode erweist, dass Selektion nur die einzelnen Biotypen in einer Population
trennt, aber sie nicht verändert. Verändert werden können sie nur durch
Mutationen; so wirkt auch die Umgebung und Lebenslage nicht direkt auf
die Typen ein, wenn auch vielleicht durch extreme Bedingungen Mutations-
vorgänge ausgelöst werden.

100. Jordau, David Starr. The law of Geminate Species. (Americ.
Natural., XLII [1908], p. 73-80.)

In dem Buche von Jordan und Kellogg: Evolution and Animal Life
war folgendes gesagt worden : Given any species, in any region, the nearest
related species is not to be found in the same region nor in a reraote region,
but in a neighboring district separated from the first by a barrier of some
sort or at least by a belt of country, the breadth of which gives the effect of
a barrier. Dies Gesetz nannte Allen (in Science) „Jordans Law". Jordan
macht keinen Anspruch auf die Entdeckung des Gesetzes, da die Idee schon
auf Moritz Wagner zurückgeht; nur die Formulierung ist von ihm. Während
sich das Gesetz für die höheren Tiere einwandfrei nachweisen lässt, ist es für
die Pflanzenwelt nicht anerkannt worden. Es ist darauf hingewiesen worden,
dass nahe verwandte Arten dasselbe Areal bewohnen. Verf. meint, dass hier
wohl vielfach erneute Einwanderung vorliegt, da Pflanzen Grenzen leichter
überschreiten, und findet, dass viele Gattungen Beispiele dafür liefern, dass
zwei nahe verwandte Arten gemeinsam in benachbarten Arealen ent-
standen sind.

101. Issler, E. Sorbus chamaemespilus und seine Bastarde mit Sorbits
aria. (Mitt. Philom. Ges. Elsass-Lothringen, III |1907|, p. 515—517.)

102. Kellogg, Vernon L. Darwinism to-day. A discussion of present-
day scientific criticism of the Darwinian selection theories, together with a
brief account of the principal other proposed auxiliary and alternative theories
of species-forming. New York, Henry Holt and Comp., 1907, 403 pp.

Eine Zusammenstellung der neuesten Forschungsergebnisse für Studenten
und sonstige Interessenten. Es kommen zuerst die Gegner des Darwinismus
zu Worte, wie Dennert, Fleischmann. Hermann Friedmann, worauf dann in
drei Kapiteln „Darwinism attacked" die Gründe für die Richtigkeit der
Forschungen angeführt werden, nachdem vorher die Unterschiede zwischen
dem Darwinismus an sich und der Evolution erläutert worden sind. Das
dritte dieser Kapitel ist der geschlechtlichen Selektion gewidmet. In den
folgenden beiden Kapiteln wird der Darwinismus verteidigt, indem zuletzt auch

378 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [24

noch besonders auf Plates Forschungen eingegangen wird. Die folgenden vier
Kapitel handeln von den verschiedenen Theorien, die die Selektionstheorie
stützen und den Schluss bildet eine Übersicht über den heutigen Stand des
Darwinismus. F. Fedde.

103. Kersten, H. Über die Begriffe der natürlichen, der syste-
matischen und der genetischen Verwandtschaft der Organismen.
(Zeitschr. für Naturwissensch. Halle a. S., LXXIX [1907], p. 272—293.)

Ein natürliches System entstand an Stelle des künstlichen, als man
lernte, die Gesamtheit der Merkmale zu berücksichtigen. Es kann mehrere
künstliche Systeme geben, aber nur ein natürliches. Die natürliche Verwandt-
schaft ist von der Natur bestimmt und eindeutig gegeben. Die Fährte, um sie
zu erkennen, weist die Unabhängigkeit morphologischer Eigenschaften von den
Existenzbedingungen (Homologien).

Die natürliche Verwandtschaft der Organismen ist eine natürlich be-
dingte, originale Formverwandtschaft; sie kennzeichnet sich als solche durch
eine Übereinstimmung im Gesamtbau, das heisst durch eine gleichartige Ver-
bindung gleicher resp. gleichwertiger morphologischer Charaktere, eine Ver-
bindung, die in bestimmter Weise selbständig für sich und unabhängig von
der Besonderheit äusserer Existenzbedingungen besteht.

Die Aufgabe der Systematik ist es, die Verwandtschaftsbeziehungen fest-
zulegen, aus den Einheiten das System aufzubauen. Dabei wird immer nach
dem Stande unserer Erkenntnis die Auffassung von Art, Varietät, Gattung usw..
schwanken. So ergibt sich die Charakterisierung der systematischen Verwandt-
schaft als einer Formverwandtschaft, wie sie in einem aufgestellten System
zum Ausdruck kommt.

Naturgemäss erhebt sich die Frage nach der Entstehung der Verwandt-
schaft. Wir können nicht umhin, die systematische Verwandtschaft als eine
Blutsverwandtschaft zu deuten und kommen damit zum Begriff der genetischen
Verwandtschaft. Sie bedeutet zunächst einen bestimmten Zusammenhang
organischer Individuen, welcher bedingt ist durch Abstammung infolge Fort-
pflanzung und durch eine hiermit einhergehende, als Vererbung bezeichnete
Übertragung einer Formähnlichkeit von den Erzeugern auf deren Nachkommen
und von einer Nachkommenschaft oder Generation auf die andere. Die Frage,
ob Konstanz oder Transmutation bei dieser Übertragung ist heute zu-
gunsten der letzteren gelöst. Das System wird auf Descendenz mit fort-
währender Änderung gegründet. Von früheren Systematikern wurde das
genetische Band unbewusst gesucht, heute begründen wir eine bewusst
genealogische Klassifikation. Dabei ist es allerdings als ein Trugschluss zu
bezeichnen, von der Formverwandtschaft ohne weiteres auf die genealogische
Verwandtschaft zu schliessen. Dies mahnt zur Vorsicht bei phylogenetischen
Spekulationen, wenn auch die Descendenzlehre unbestritten sicher dasteht.

104. Koriba, K. Variations in the Ray-flowers of some Compo-
sitae. (Bot. Mag. Tokyo, XXII [1908], p. 86—90, 109—112, 121 — 128.)

Verf. untersuchte die Anzahl der Strahlenblüten bei einigen Compositen,
um den Einfluss der Jahreszeit und des Standortes zu studieren. 1. Arnica
unalaschcensis Less. vom Berg Hakkoda (1852 m), von drei verschiedenen Stand-
orten. Die Pflanze entwickelt nur einen Blütenkopf, was für die Untersuchung
von Vorteil ist, da dann der Einfluss der Correlationen, der Stellung am Ast
usw. fortfällt. Am Berg Hakkoda macht sich besonders die Verschiedenheit
der Schneeschmelze neben der Bodenbeschaffenheit bemerkbar.

25| R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 379

Zuerst am 29. Juli wurden nur die Blüten am günstigsten Standorte
im Krater gezählt, da nur diese genügend, entwickelt waren; zwei gleiche
Gipfel bei der Zahl 13 und 16 waren vorhanden; am 15. August war der
Hauptgipfel geblieben, dann ein kleiner Gipfel bei 14; an dem zweiten Standort
(etwas ungünstiger, Ostabhang) war nur ein Gipfel bei 16; am 21. August
waren am zweiten Standort zwei Gipfel bei 13 und 16, am dritten
Standort (ungünstig, Nordseite) ein Hauptgipfel bei 12, zwei Gipfel bei
14 und 16: am 30. August war beim zweiten Standort der Hauptgipfel bei
16, ein kleinerer bei 14, am dritten Standort ein Gipfel bei 12. Es zeigt
sich, dass die mittlere Anzahl der Strahlenblüten zunächst zunimmt, was
damit zusammenhängt, dass die ersten Blütenköpfe unter ungünstigen Be-
dingungen des Schnees und der Temperatur entstehen; es steht dies im Gegen-
satz zu Beobachtungen an mehrköpfigen Compositen, bei denen die ersten
Köpfe als die besser ernährten mehr Strahlen haben. Der Hauptgipfel ist bei
der Zahl 16 (mit Ausnahme der letzten Zählung); 16 Strahlen sind der Typus
für die Art. Der Einfluss der äusseren Bedingungen ist also hier, sowohl
was die Blütezeit, als auch was die Zahl der Strahlenblüten anlangt, unver-
kennbar; das gilt nicht für zwei andere Compositen, von denen einige
Zählungen gegeben werden, nämlich Aster trinervius Koxb. var. congeshts
Franch. Savat. und Asteromoea inclica Bl. var. pinnatifida Maxim. Hier spielen
für die Variationen innere Bedingungen die Hauptrolle.

105. Korschelt, E. Über die Beeinflussung der Komponenten
bei Transplantation. (Medizin. Naturvv. Archiv, I [1908], p. 447—526.)

Die vorliegende Arbeit behandelt zwar in erster Linie die Beeinflussung
der Komponenten bei der tierischen Transplantation, bringt aber zum Vergleiche
auch die entsprechenden Vorgänge bei der pflanzlichen Transplantation mit
besonderer Berücksichtigung der Pfropfhybriden.

Der sich mit der tierischen Transplantation beschäftigende Teil der
Arbeit umfasst vier Kapitel, von denen das erste die morphologischen und
strukturellen Änderungen der transplantierten Körperteile bespricht. Das
zweite behandelt die Polaritätsänderungen des Transplantates, welche bei
niederen Tierformen im Gegensatz zu den Pflanzen in gewissen Grenzen vor-
kommen können. Weiter folgen die Beeinflussung der Geschlechtsmerkmale
und diejenige der spezifischen Charaktere durch die Transplantation.

Der von den Pfropfungen am Pflanzenkörper handelnde Abschnitt bringt
zuerst eine kritische Besprechung der von der gegenseitigen Beeinflussung der
Symbionten existierenden Literatur. Hier zeigen bekanntlich besonders die in den
letzten Jahren erschienenen Untersuchungen, dass, wenn man von der infektiösen
Panaschierung absieht, eine Beeinflussung nur in ernährungsphysiologischer
Beziehung besteht! — Ebenso eingehend wird die Frage der Pfropfhybriden
erörtert, beginnend bei dem klassischen Beispiel des Cytisus Adami und
schliessend mit den damals gerade erfolgten Veröffentlichungen H. Winklers
über die Chimäre zwischen Solanum nigrum und S. lyco])er$ku)i/.

Simon.

106. Krasan, Franz. Die Hauptresultate meiner 20-jährigen
Kulturversuche. (Flora, XCV11I [1908]. p. 389—406.)

Verf. hat in langjährigen Versuchen die Mutationsfähigkeit einer Reihe
von Arten untersucht, indem er besonders Pflanzen der Gebirgsgegenden in
der Umgebung von Graz kultivierte (vgl. z. B. J. B., 1905/06, Bef. Ko. 85).

380 R Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [26

Seine wichtigsten theoretischen Folgerungen seien mit den Worten des
Verf. (p. 401 — 406) wiedergegeben:

1. Wenn man die einzelnen Kulturversuche und deren Ergebnisse über-
blickt, so kann die mehrfach sich wiederholende Tatsache einem nicht ent-
gehen, dass sich die Mutationen im ganzen in sehr engen Grenzen halten:
nicht eine einzige geht über den Umfang einer Species hinaus, ja manche
bleiben in den Grenzen einer engeren Formengruppe innerhalb einer und der-
selben Species. Zudem erstrecken sich die Mutationen in der Mehrzahl der
Fälle nur auf den vegetativen Organkomplex; nur bei Knautia drymeja haben
schliesslich auch die Blütenköpfchen mutiert, doch zu einer Zeit, wo in den
Blättern und Innovationsverhältnissen der Dn/me/a-Charakter bereits stabilisiert
war: man kann darum immerhin sagen, dass die Charaktere der beiden Organ-
komplexe unabhängig voneinander variieren.

Das zeigt sich in besonders auffallender Weise bei den Bässen des ge-
meinen Kohls, Brassica oleracea. deren Stöcke sicher von einem ursprünglichen
Wildling abstammen, aber infolge der Kultur die merkwürdigsten Differenzen
an den vegetativen Organen erfahren haben: erzeugt nicht dennoch der
wunderliche Karfiol genau solche Blüten und Früchte wie jede andere Kohl-
sorte'? Und dazu sind auch diese seit undenklichen Zeiten dem Menschen als
Nahrung dienenden Kohlsorten erblich. Umgekehrt erzielen die Gärtner oft
bei ein und derselben Species sehr divergente Variation der Blüte, ohne dass
die Blattform oder das Habitus der Pflanze irgendwie beeinflusst würden.

Auch durch Anpassungen der Blüten (Blumen) an die Bedürfnisse der
Insekten sind gewiss schon sehr bedeutende Abänderungen der Corolle bewirkt
worden, und dieser Gestaltungsprozess dürfte noch lange nicht seinen Ab-
schluss gefunden haben.

2. Am weitesten gehen die Metamorphosen und Mutationen bei Knautien,
besonders bei Kn. arvensis, welche die Vorkommensverhältnisse, unter denen
Kn. drymeja gedeiht, weder als Individuum, noch als Typus verträgt, denn
man sieht sie unter solchen Umständen entweder allmählich zugrunde gehen,
oder, wenn die Versuchsindividuen lebenskräftig genug sind, dauernd durch
Metamorphosen ihre spezifischen Charaktere abändern, in einzelnen Fällen
sogar in der Richtung der Kn. drymeja mutieren.

Aber mit dieser letzteren verhält es sich umgekehrt, denn auf die
Wiese zwischen Kn. arvensis versetzt, bleibt sie konstant: jahraus-jahrein fand
ich sie wunderbar prosperierend, aber sie behauptet ihre spezifischen Charaktere
hartnäckig; die Mutationen der Kn. arvensis sind demnach nicht rückläufig.
Ich halte es darum für sehr wahrscheinlich, dass Kn. drymeja eine verhältnis-
mässig noch sehr junge, eine werdende Art ist, weil der phyletische Nexus,
der sie mit ersterer verbindet, gegenwärtig noch fortbesteht; sie wird, so denke
ich, einmal nach langer Zeit, eine ausgestaltet und selbständig gewordene
Art werden, wenn dieser Nexus nicht mehr bestehen, d. h. wenn Kn. arvensis
nicht mehr im Sinne der Kn. drymeja mutieren wird.

3. Hinsichtlich der gemeinen Wiesen-Leucanthemum denke ich auch nicht
anders: der gesamte Formenkomplex scheint aus wenigstens zwei im Werden
begriffenen, daher unfertigen Arten zu bestehen; von dem sehr energischen
Aufstreben derselben gibt ihre ausserordentliche Verbreitungsfähigkeit auf dem
ihnen zusagenden produktiven Boden ein deutlich sprechendes Zeugnis, denn
sie nehmen meist das ganze Wiesenland ein; auf Kunstwiesen, wie z. B. im
Salzburgischen, sieht man im Vorsommer zur Blütezeit sehr grosse Flächen

27] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 3gl

weiss von den offenen Anthodien der Wiesenwucherblume. Die anderen zwei
Leucanthcmum-Artew bzw. „Formen" okkupieren nirgends so geschlossen Areale.

Auch hier sind die auf das Wiesen-Leucanthemum gerichteten Mutationen,
wie oben gezeigt wurde, nicht rückläufig. Die Generationen der nicht
mutationsfähigen Individuen werden im Laufe der Zeiten voraussichtlich ihre
Lebensenergie, damit auch ihr Anpassungsvermögen, verlieren und in ihrem
Vorkommen mehr und mehr auf einzelne zersprengte Areale beschränkt sein.

Die Kulturversuche, wie sie nach den obigen Andeutungen betrieben
werden, lehren also, dass zwischen der Lebensenergie, der Anpassungs- und
Mutationsfähigkeit der Individuen ein auf Gegenseitigkeit — Correlation —
beruhender Zusammenhang besteht: nur die lebenskräftigsten passen sich den
neuen Lebensverhältnissen an, und auch nur diese mutieren, ein Ergebnis,
das auch mit den Erfahrungen von de Vries übereinstimmt (Papaver somniferum
polycephalum!). Die Nichtmutanten sind es, die bei meinen Aussaaten nicht
aufgekommen sind, die Nichtmutanten sind es auch, die, wo es sich um ver-
setzte Objekte handelt, früher oder später eingehen, die überlebenden aber
sind sämtlich Mutanten, wenn auch nicht alle gleich variieren, sondern erst in
den aus Samen gezogenen späteren Generationen.

4. In der Photographie ist in neuerer Zeit oft von phyletischen Ab-
teilungen die Rede, da trägt man kein Bedenken, von Stamm-Parallel- und
Übergangsformen zu sprechen und sie in den Kalkül einzubeziehen, aber in
erkenntnis-theoretischer Hinsicht sind die Systematiker in keiner anderen Lage
als ein Mineralog, der es mit einer isomorphen Substanz zu tun hat. Calcit,
Magnesit, Siderit, Dolomit, Ankerit, Rhodochoosit sind auch formverwandt,
alle sechs lassen sich von einem gemeinsamen Grundtypus ableiten, dieser
bildet durch seinen Kristallisationsmodus, seine Molecularstruktur und
chemische Zusammensetzung gewiss eine natürliche Einheit, ausdrückbar durch
die Formel 0M03, worin M ein Atom von Ca, Mg, Fe oder Mn bedeutet. Die
Ableitung der untergeordneten Arten geschieht im formalen Sinne durch Sub-
stitution und Kombination der Metallatome, die in mannigfacher Weise
vikariierend eintreten können. Mithin sind die genannten Minerale unter- und
zueinander Parallelformen eines gemeinsamen Urtypus; weil aber dabei von
einer Descendenz im realen Sinne nicht die Rede sein kann, denn dieser Ur-
typus ist nur ein gedachter oder idealer, so gilt das auch von den davon ab-
geleiteten Parallelformen oder Arten und deren Übergangsformen.

Nun aber gibt es bei den Pflanzen eine genealogische Descendenz, denk-
bar ist daher für einen gegenwärtig bestehenden Typus auch eine wirkliche
genealogische Stammform. Für einzelne Fälle hat das sogar einen hohen Grad
von Wahrscheinlichkeit für sich, aber für manche andere Fälle muss von einer
solchen Stammform ganz abgesehen werden: denn es ist soviel wie erwiesen,
dass z. B. die Waldbuche, Fagus silvatica, auf keine bestimmte vorweltliche
Buchenart zurückgeführt werden kann: der Weg, auf dem die Natur das her-
vorgebracht hat, was wir gegenwärtig F. silvatica nennen, ist ein ganz eigen-
tümlicher und unerwarteter.

5. Ob nun die Behandlung einer Pflanzengruppe vom rein systematischen
oder vom phylogenetischen Standpunkt in Angriff genommen wird, stets bauen
wir auf den unvermeintlichen Artbegriff, der gewissermassen einer apriorischen
Denkform gleichkommt, aber wegen seiner Doppelnatur in der Anwendung
dem Systematiker wie dem Phylogenetiker die grösste Schwierigkeit bereitet,
denn er entspringt sicher aus zwei grundverschiedenen Vorstellungen, die

382 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [28

meist nur schwer auseinander zu halten sind; ist ja die eine konkret, die
andere abstrakt. Wir können uns nämlich eine Art in keinem Falle denken,
ohne dass wir bestimmte Individuen vor Augen haben, an denen eine be-
stimmte und durchgehends übereinstimmende Gestaltung ausgeprägt ist, aber
nach dem üblichen Sprachgebrauch, der so oft eine Quelle des Irrtums ist,
schieben wir nicht bald die eine, bald die andere Seite des Artbegriffs vor, je
nachdem es der momentane Fall erfordert, sondern gebrauchen das Wort „Art"
als ob es sich um einen einfachen Begriff handeln würde, es dem Leser oder
Hörer überlassend, sich das Richtige zu denken.

„Art" für Individuum und umgekehrt, Typus für Art und umgekehrt,
das sind leider sehr übliche Vertauschungen. Oft hört oder liest man etwas
wie: „Die Art (so und so) kommt dort nicht gut fort," wo zu sagen wäre: „Die
Individuen oder Stöcke (von einem bestimmten Charakter) gedeihen dort
nicht". Ein anderes Mal ist von einer „Artumwandlung" die Rede, aber
gemeint ist in diesem Falle nur ein Wechsel der diagnostischen Merkmale an
einzelnen Individuen usw.

Wieviel Missverständnisse und unrichtige Deduktionen hat nicht schon
dieser versteckte Dualismus des Artbegriffs verschuldet! Wie sehr es darauf
ankommt, dass man sich mit voller Klarheit dessen bewusst sei, kann man
schon daraus ersehen, dass eine Art nicht nur dadurch erlöschen kann, dass
alle ihre Individuen durch Ausrottung oder infolge gründlich veränderter
Lebensverhältnisse verschwinden, sondern auch dadurch, dass sich der Typus,
d. i. die Gestaltungsform an denselben in den aufeinanderfolgenden Generationen
verändert, wobei die Kontinuität der Generationen fortbestehen kann.

6. Ein anderer Grund für die ausserordentliche Schwierigkeit, welche
die Anwendung des Artbegriffs so oft mit sich bringt, ist von leichter ein-
zusehender Natur: er besteht darin, dass dieser nur dann einen Sinn hat,
richtiger gesagt, nur dann möglich ist, wenn es sich um Gebilde handelt,
welche in der Natur als ausgestaltet angenommen werden können; auf die
Phasen des Werdens — und gerade diese bilden den Hauptgegenstand der
Phylogenie ■ — passt er nicht, während in der Natur die Formbildungen bei
vielen Gattungen und Arten noch keineswegs zum Abschluss gekommen sind.

Wenn daher in solchen Fällen die einzelnen Phasen nach Linneschem
Usus binär bezeichnet werden, so ist das nur ein praktisches Auskunftsmittel,
allerdings schwer zu vermeiden, da man sonst einen sehr komplizierten
Apparat von Über- und Unterordnungen in Anwendung bringen müsste.

7. Soll ein Begriff einen unantastbaren Wert haben, so muss er derart
eingeengt sein, dass er einen durchaus konkreten Inhalt erhält. Das gilt be-
sonders von dem, was wir mit dem Worte Entwickelung bezeichnen, die in
der Biologie eine so grosse Rolle spielt. Im engeren Sinne bedeutet Ent-
wickelung das Hervorgehen eines Organs, eines Organteiles, auch eines ganzen
Individuums aus einer gegebenen erblichen Anlage. Diese gibt sich auf der
Anfangsstufe als etwas Körperliches, Sichtbares zu erkennen; ist aber einmal
die Anlage da, so folgt unter normalen Verhältnissen mit Naturnotwendigkeit
die Entwickelung, welche bekanntlich in einer Volumzunahme, verbunden mit
inneren successiven Bildungsvorgängen, besteht.

Die augenfälligsten dieser Bildungsvorgänge vermögen wir Schritt für
Schritt zu verfolgen, und uns so ein menschlich-mögliches Bild von dem ge-
samten Prozesse zu verschaffen, aber gerade das, was wir vor allem so gern
kennen möchten — es ist der Urgrund der allerersten Anlage — , bleibt uns

291 K. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 3^3

verborgen. Es ist nicht viel, was wir beim Verfolgen eines Entwickelungs-
vorganges nach der kausalen Seite hin erfahren, aber auch in der Einsicht,
wie das und jenes geschieht oder zustande kommt, finden wir einstweilen
eine Befriedigung und soweit wenigstens hat es die Biologie, besonders in
ihrem physiologischen, die Prinzipien der Zweckmässigkeit und der Anpassung
vorsichtig heranziehenden Zweige seit der Entdeckung der Zelle gebracht.

8. Dagegen wird der Forscher, wenn er das Hauptmoment des Ent-
wickelungsbegriffs, wonach man von gegebenen erblichen Anlagen ausgehen
muss, übersieht, unausweichlich eine Beute von Illusionen, welche für den be-
treffenden Zweig der Wissenschaft, eine Zeitlang wenigstens, fatal werden
können; denn auf den erweiterten, verwässerten Entwickelungsbegriff (es ist
meist kein Begriff) lässt sich alles Denkbare konstruieren, nur nichts solches,
was einen wissenschaftlichen, realen Wert hätte.

So entstanden und entstehen auf diesem Boden leider noch immer die
kühnsten Entwickelungstheorien und Stammbäume, die, wenn sie mit schönen
Phrasen aufgeputzt sind, bezaubernd wirken auf alle diejenigen, welche auf
die billigste Weise ihre Wissbegierde befriedigen möchten, ernüchternd hin-
gegen auf ihre Urheber, wenn sie später zu besserer Einsicht gelangen.

Oder sollte es wahr sein, dass die Menschheit die Naturerkenntnisse nur
aus der Hand des Dichters empfangen will?

„Immer wird der Mensch — auch der unterrichtetste macht hierin keine
Ausnahme — das am leichtesten und am liebsten für wahr halten, was dem
Verständnisse die geringste Schwierigkeit bietet. Es wird aber und muss
eine Zeit kommen, wo man einsehen wird, dass vieles in solchen Dingen
schon gar nicht so ist, wie man es am leichtesten begreifen könnte, während
es der Eigenart des menschlichen Begriffs- und Fassungsvermögens einstweilen
versagt ist, den wirklichen, realen Sachverhalt zu verstehen. Nur die Tat-
sachen an und für sich behalten unter allen Umständen unerschütterlich ihren
unantastbaren Wert: ihnen muss der menschliche Intellekt sich unterordnen
und anpassen."

107. Krüger. W. Über ungeschlechtliche Fortpflanzung und
das Entstehen weiblicher Individuen durch Samen ohne Be-
fruchtung bei Mercurialis annua und anderen diöcischen Pflanzen.
<Ber. Deutsch. Bot. Ges., XXVI a [1908], p. 333—342.)

Schon von Kern er war ausführlich dargelegt worden, dass bei
Mercurialis annua sich ohne Befruchtung Samen entwickeln. Durch zufällige
Beobachtungen veranlasst, verfolgte Verf. den Vorgang mit allen Vorsichts-
massregeln genauer und konnte im Gegensatz zu anderen Angaben die Richtig-
keit der Kern er sehen Beobachtung erweisen. Bemerkenswert ist ferner, dass
die ohne Befruchtung erzeugten Samen nur weibliche Individuen liefern. Verf.
vermutet, dass bei Mercurialis annua durch Befruchtung Samen erzeugt werden,
die nur männliche, ohne Befruchtung solche, die nur weibliche Pflanzen hervor-
bringen; ferner, dass die Fruchtansätze bei M. annua zweierlei Art sind, näm-
lich solche, die ohne Befruchtung keimfähige Samen hervorzubringen imstande
sind, und solche, welche dazu der Befruchtung bedürfen. Auch bei Cannabis
und Melandryum rubrum entstehen Samen ohne Befruchtung.

108. Knpffer, K. R. Apogameten, neueinzuführende Einheiten
des Pflanzensystems. (Östr. Bot. Zeitschr. XLVII [1907], p. 369—382.)

Um eine Klärung des Artbegriffes wenigstens teilweise zu erreichen,
hatte Verf. (1905) zwei Grundsätze für die Artbegrenzung aufgestellt:

384 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [gQ

1. Als obere Grenze: Zwei Gruppen lebender Wesen müssen verschiedenen
Arten (species) zugezählt werden, wenn aus geschlechtlicher Zeugung
zwischen Individuen ein und derselben Gruppe im allgemeinen Nachkommen
mit normaler geschlechtlicher Fortpflanzungsfähigkeit hervorgehen, aus
geschlechtlicher Zeugung zwischen Individuen beider verschiedenen
Gruppen hingegen entweder keine Nachkommen oder solche mit herab-
gesetzter geschlechtlicher Fortpflanzungsfähigkeit entstehen.

2. Als untere Grenze: Zwei Gruppen lebender Wesen müssen ein und der-
selben Art zugezählt werden, wenn es nicht mindestens wahrscheinlich
ist, dass die Verfahren der einen und die der anderen Gruppe ver-
schiedener Arten angehört haben, und wenn die betreffenden Wesen
sich von diesen ihren Vorfahren nicht durch hinreichende, bei geschlecht-
licher Fortpflanzung beständige Merkmale unterscheiden.

Diese beiden Sätze werden durch einige Beispiele erläutert und es
werden auch einige Beispiele angeführt, wo ihre Kriterien versagen und
andere herbeigezogen werden müssen.

Eine neue Schwierigkeit ergibt sich infolge der Entdeckung der apo-
gamen Formen bei einer Reihe von Gattungen (Alchemüla, Hieracium usw.).
Diese Formen haben bekanntlich infolge des Fortfallens der geschlechtlichen
Vermischung hohe Konstanz trotz geringer morphologischer Unterschiede, und
sind deshalb auch als Arten beschrieben worden (z. B. von Bus er bei Alche-
müla). Dieses Verfahren ist nun nicht angängig, denn die Konstanz der
Formen entspricht vielmehr derjenigen, die überall bei vegetativer Vermehrung
durch Ableger, Stecklinge usw., vorhanden ist. Hier bleiben die Eigenschaften
des betreffenden Individuums, da keine Mischung mit den Eigenschaften
von anderen Individuen der Art stattfindet, und nicht die Charaktere einer
systematischen Einheit gewahrt.

So wie nun niemand solche infolge der vegetativen Vermehrung sich kon-
stant erhaltenden Formen als besondere Arten anführen wird, so wenig wird
man dies auch mit den apogamen Formen tun dürfen.

„Die Formbeständigkeit ungeschlechtlich erzeugter Nachkommen einer
Pflanzengruppe ist für sich allein selbst dann kein hinreichender Grund dafür,
diese Gruppe als besondere Art anzuerkennen, wenn die Erzeugung der Nach-
kommenschaft durch Ausbildung unbefruchteter Keimlinge aus den Geschlechts-
zellen vor sich geht." Apogame Formen sind also als Unterabteilungen von
Arten zu beschreiben. Da aber für sie keine bisher gebräuchliche unter der
Art stehende Kategorie anwendbar ist, ist die Einführung eines neuen Terminus,
nämlich Apogamet (apogametes) geboten. „Unter Apogamet (apogametes)
versteht man eine solche Unterabteilung der Pflanzenart, die sich durch irgend-
welche samenbeständige Kennzeichen von den anderen Unterabteilungen unter-
scheidet und sich durch unbefruchtete Samen fortpflanzt."

109. Leavitt, Robert Greenleaf. The geographic distribution of
closely related Species. (Americ. Natur., XLI [1907], p. 207—210.)

Die genaue Klarlegung des Verbreitungsbezirkes der Arten kann für
die Evolutionstheorie von grosser Bedeutung sein. Die zoologischen Forscher
neigen mehr zu der Ansicht, dass verwandte Arten sich in ihren Arealen aus-
schliessen, botanische Forscher haben auf Entstehung und das Bestehen von
naheverwandten Formen im selben Gebiet hingewiesen (Nägeli usw.), was für
die Mutationstheorie spricht. Eine Untersuchung der Verbreitung der nord-
amerikanischen Orchideen zeigt, dass bei ihnen eine geographische Isolation

31] R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 385

bei der Entstehung der Arten nicht angenommen werden kann. Freilich finden
wir auch öfter bei den Pflanzen Einwirkungen des Gebietes, z. B. Abänderungen
weit verbreiteter Typen, die auf bestimmte Areale beschränkt sind.

110. Lehmann, Ernst. Vorläufige Mitteilung über Aussaatver-
suche mit Yeronicis der Gruppe agrestis. (Ber. D. Bot. Ges., XXV [1907].
p. 464—470.)

Die Arten Yeronica agrestris, polüa, opaca, Tournefortü sind als gute
Arten in Linneschen Sinne zu betrachten; sie zerfallen in eine Anzahl von
Sippen und zeigen anderseits transgressive Variabilität in den einzelnen Merk-
malen. Auf die letztere geht Verf. in der Arbeit nur kurz ein; eingehender
wird die Erblichkeit einiger Anomalien besprochen, die Zwischenrassen ergeben
(etwa wie Trifolium pratense quinquefolium nach de Vries). Einmal wurde
untersucht die Vermehrung der Carpelle (in der Zahl 3 — 5); besonders bei
einem Exemplar von V. opaca erwies sich das Merkmal in hohem Grade erb-
lich (eine reiche Rasse). Es handelt sich hier wohl um eine spontane Variation
neueren Datums.

Ferner wurden in Betracht gezogen die Vermehrung der Kelchblätter
(Fünfzahl bei V. Tournefortü) und Anomalien in der Ausbildung der
Blumenkrone.

111. Leveille, H. Un nouvel hybride de Juncus. (Bull. Soc. Bot.
France, LIV [1907], p. 517—518.)

Beschreibung des in Sarthe aufgefundenen Bastardes Juncus anceps X
acutiflorus (X J- Valbrayi).

112. Lidforss, Bengt. Über das Studium polymorpher Gattungen
(Bot. Notiser [1907], p. 241—261.)

Verf. kritisiert die systematischen Studien polymorpher Gattungen, wie
sie z. B. von Ernst Almquist {Capsella), V. B. Wittrock (Linnaea).
S. Almquist (Rosa) ausgeführt wurden, in denen zahlreiche Varietäten oder
Elementararten dieser Gattungen beschrieben wurden. Diese Zersplitterung
der Linneschen Arten entbehrt eines höheren wissenschaftlichen Wertes,
wenn die Verwandtschaft der beschriebenen kleinen Formen nicht mit zahl-
reichen Kulturen experimentell geprüft wird. Er weist z. B. auf die Studie
von Shull über Capsella hin (vgl. Ref. 162), in der dieser Autor nachweist,
dass die zahlreichen Formen der weniger elementaren Arten typisch mendeln,
so dass viele Kombinationen entstehen; solche Formen sind dann z. B. von
Almquist als Elementararten beschrieben worden (65 bei Capsella). Verf. ist
selbst mit Studien über Rubus beschäftigt und hat zahlreiche Kulturen aus-
geführt, die ihm zeigten, dass Bastarde in dieser Gattung vielfach hervorragend
fertil sind, so dass besonders bei den folgenden Generationen eine hohe Viel-

förmigkeit entsteht „auf dem Gebiete der Artbildungsprobleme haben sich

Linnes Landsleute, soweit sie Systematiker vom Fach sind, bis jetzt nicht
besonders hervorgetan und zwischen den Anschauungen, die sich in diesen
Arbeiten der Acta Horti Bergiani kundgeben, und dein Geiste, von dem die
Arbeiten eines Co rrens oder eines Johannsen durchweht werden, klafft ein
ganzes Jahrhundert".

113. Lindman, C. A. M. Amphichromie bei Calluna vulgaris. (Bot.
Notiser [1907], p. 201—207.)

Verf. beschreibt die grosse Variabilität der Blütenfarbe bei Calluna. Von
besonderem Interesse war ein Stock, der meist schmutzig weisse Blüten mit
einem schwach violetten oder grau-rötlichen Ton hatte und daneben auch die
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 12. 10. 10.) 25

386 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [32

gewöhnlichen purpurvioletten Blüten an einzelnen Zweigen. Verf. bezeichnet
dies Verhalten als Amphichromie. Er nimmt an, dass hier wohl ein Bastard
zwischen der gewöhnlichen Form und der nicht seltenen rein weiss blühenden
Form vorliegt. Im Anschluss an die Mitteilung wird folgende Nomenclatur
für die Verteilung der Blütenfarbe vorgeschlagen:

1. Polychromie, Vielfarbigkeit oder Buntfarbigkeit einer Blumenkrone (z. B.
Convolvulus tricolor).

2. Heterochromie, Farbenunterschied zwischen den Individuen einer Art,
die also heterochrome Stöcke erzeugt (Calluna, Melampyrum cristatum).
Häufig ist die sexuelle Heterochromie zwischen $ und $ Stöcken einer
diöcischen Art.

3. Amphichromie, Verschiedenheit der Blüten eines Stockes (habituell z. B.
bei Cytisus Adami, individuell z. B. bei dem beschriebenen Calluna -Stock,
bei Polygala amarella usw.).

4. Metachromie, Umfärbung oder Farbenwechsel einer Blüte während ihrer
verschiedenen Altersstufen.

114. Linton, E. F. Hybrids among british Phanerogams. (Journ.
of Bot., XLV [1907J, p. 268—276, 296—304.)

Eine systematische Aufzählung der britischen Bastarde im Pflanzenreich.

115. Lots}', J. P. Vorlesungen über Descendenztheorien mit
besonderer Berücksichtigung der botanischen Seite der Frage,
gehalten an der Reichsuniversität zu Leiden. II. Teil. 1908.
G. Fischer, Jena.

116. Lutz, Anne M. A preliminary note on the chromosomes
of Oe.notlie.ra Lamarckiana and one of its mutants, 0- gigas. (Science, N. S.,
XXV |1907], p. 150—151.)

0. gigas, ein Mutant von 0. Lamarckiana hat ungefähr die doppelte An-
zahl von Chromosomen als 0- Lamarckiana.

117. Lynch, K. Irwin. Natural Hybrids. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906
on Genetics, London [1907], p. 159—177.)

Eine Aufzählung wichtiger natürlicher Bastarde von Grossbritannien
und dem Kontinent.

118. Mac Dougal, D. T, Vail, A. M. and Shull, G. H. Mutation s,
Variations, and Relationships of the Oenotheras. (Carnegie Institution
of Washington Publication, no. 81 [1907], 92 pp., 22 T.)

Die Arbeit bringt eine ausführliche Darstellung der systematischen
Kulturen mit OenoMera-Mutanten und -Arten, die besonders im New Yorker
botanischen Garten ausgeführt wurden. Die Resultate sind wichtig als Er-
gänzungen zu den Befunden von De Vries, etwas wesentlich Neues in bezug
auf die Theorie der Mutation springt aus ihnen kaum hervor. Die Anzahl der
Mutanten bei einer bestimmten Menge von Sämlingen ist bei den amerikanischen
Kulturen nicht grösser als bei denen von de Vries. Fixierte Hybriden wurden
aus der Kombination von O. Lamarckiana und O. cruciata gewonnen.

Ausgedehnte statistische Untersuchungen zeigen, dass phylogenetisch
junge Charaktere variabler sind als ältere; das Hypanthium von Oenothera,
eine wahrscheinlich junge Bildung, ist variabler als die anderen Merkmale der
Knospe. Eine neu ins Leben tretende Form zeigt einen höheren Grad von
Fluktuabilität als die Eltern; solche Sprungformen sind der Ausgangspunkt
von Reihen mit abnehmender Fluktuation. Interessant sind die Versuche,
Mutabilität durch Reizeinwirkungen auf den Sporophyten vor der Bildung der

33] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 387

Geschlechtszellen zu induzieren. Junge Ovarien von Oenothera biennis und
Raimannia odorata wurden mit Zuckerlösung oder mit einer Lösung von
Calciumnitrat (1 : 1000) injiziert, wodurch Mutanten erzeugt wurden, die sich
als konstant erwiesen. Es ergibt sich hieraus, dass erbliche Charaktere durch
äussere Einwirkungen, die direkt auf die Geschlechtsorgane agieren, verändert
werden können.

Die wichtige Frage nach der Herkunft und dem natürlichen Auftreten
von O. Lamarckiana, die die Grundlage der de Vriesschen Studien bildete,
ist nicht befriedigend gelöst. Was ist eigentlich diese O. Lamarckiana'^. Eine
Form der Gattung, die anscheinend 0. Lamarckiana ist, trat schon 1756 in
Holland auf und ist verschiedentlich auch in England seitdem beobachtet.
In Amerika ist ihre Heimat nicht sicher bekannt. Eine Anzahl verwandter
Arten, 0. grandifiora, 0. Simsiana, 0- Oakesiana, 0. parviflora, 0. muricata
werden in einem besonderen Abschnitt von A.nna Murray Vail ausführlich
systematisch behandelt. In 0. grandifiora wird eine 0. aus Kentucky gestellt,
die früher von den Autoren der Arbeit als 0. Lamarckiana betrachtet wurde.

119. MaeDougal, D. T. Hybridization of Wild Plants. (Bot. Gaz.,
XLIII [1907], p. 45-58.)

Viele wildwachsende Pflanzenformen sind als Bastarde zweier Arten
angegeben worden, häufig aus unzureichenden Gründen. Sichergestellt werden
kann die Bastardnatur einer Form, wenn man den Bastard aus den vermeint-
lichen Eltern wieder herstellt, was häufig mit grossen Schwierigkeiten ver-
knüpft ist, nicht nur wegen der Zeit, die dies z. B. bei Baumarten erfordert,
sondern auch, weil man selten nur dieselben physiologischen Bedingungen
wieder wie bei der ursprünglichen Kreuzung trifft. Ferner ist es auch nicht
gleichgültig, welche Art die Pollenpflanze oder die Mutterpflanze gewesen ist.
Ferner kann man eine anatomische Untersuchung des Bastardes anstellen, was
keine genügende Sicherheit gibt, da besonders auch die Bastarde häufig
goneoklin sind.

Endlich kann man die Nachkommen der Bastarde studieren; hier liegt
die Schwierigkeit in den Fällen, bei denen die Bastarde sich konstant erzeigen,
oder auch in der zweiten Generation eine ausserordentliche Formfülle durch
Merkmalkombination zeigen. Die letzte Methode führte den Verf. zum Ziel,
um die Bastardnatur einer recht umstrittenen Eiche, Quercus heterophylla, zu
zeigen; die Art war als Bastard verschiedener Arten oder als Varietät ver-
schiedener Arten gedeutet worden. Sie erwies sich als Bascard von Q. Pliellos
und Q. rubra. Junge Pflanzen im New Yorker Garten gezogen, zeigten in den
Blättern Zwischenstufen oder näherten sich den Elternarten, so dass sie nicht
mehr von ihnen in der Blattform zu unterscheiden waren. Sie gehören offen-
bar verschiedenen Kombinationen der Charaktere der Eltern an, unter denen
auch solche sind, die die Typen der Eltern rein oder fast rein wiedergeben.
Ein gleich sicheres Resultat konnte mit Q. Itudkinii, welche Art als ein Bastard
zwischen Q. Pliellos und Q. marylandica betrachtet wird, nicht erzielt werden.
Am Schluss wird eine Aufzählung der im Freien entstandenen mutmasslichen
Hybriden der nordamerikanischen Flora gegeben.

120. MaeDougal, I). T. Heredity and environic forces. (Science,
N. 8, XXVII [1908], p. 121—128.)

Nach einem Vortrag vor der American Association for the Advancement
of Science, Chicago meeting. Verf. berichtet über seine Versuche, Änderung
von Charakteren durch äussere Einflüsse hervorzurufen (vgl. Ref. 118).

25 *

388 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 34

121. Mc Elhinney, M. G. Note on experiments relating to the
origin of life-forms. (Ottawa Nat., XXI [1908J, p. 188.)

122. Macfarlane, J. 31. On the occurrence of natural hybrids in the
genus Sarracenia. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907],
p. 155—158.)

Im wilden Zustande bastardieren Sarracenia pmrpurea, S. flava, S- minor,
S. psittacina, S. Drummondii mehr oder weniger vollkommen miteinander.

123. Mackenzie, Kenneth K. A hybrid Lespedeza — Lespedeza Jiirta X
repens. (Torreya, VII [1907], p. 76—78.)

124. Magnus, Werner und Friedenthal, Hans. Über die Spezifizität
der Verwandtschaftsreaktion bei Pflanzen. (Ber. D. Bot. Ges., XXV
[1907], p. 242—247.)

Die Verf. hatten in einer früheren Mitteilung (vgl. 1906, Ref. No. 107)
gezeigt, dass Presssäfte von Pilzen, die in die Blutbahn von Kaninchen ein-
geführt wurden, das Blutserum nach einiger Zeit so veränderten, dass es nach
Zusatz geringer Mengen des zur Vorbehandlung dienenden Saftes Nieder-
schläge (Präcipitine) erzeugte. Bildete das Serum eines mit Pflanzenpresssaft
vorbehandelten Tieres mit dem Presssaft einer anderen Pflanze gleichfalls
Präcipitine, so gestattete diese Tatsache einen Rückschluss auf die Verwandt-
schaft der Arten. Die Versuche bezogen sich auf Hefe, Trüffel und Champignon.
Kowalski hatte schon früher angegeben, dass pflanzliche Eiweisskörper wahr-
scheinlich nicht so verschieden seien wie tierische, da er z. B. mit dem Serum
von mit Weizenalbumose behandelten Kaninchen auch eine, allerdings schwache,
Präcipitinreaktion mit Erbsenalbumose erhielt, dagegen nicht mit dem doch
näher verwandten Hafer. Wenn dies richtig wäre, hatten die Verwandtschafts-
reaktionen bei höheren Pflanzen keinen Wert. Die Verf. zeigen jedoch, dass die
Reaktion sehr deutlich die Verwandtschaft kundgibt. So zeigte das Serum des
mit Weizenalbumose behandelten Tieres keine Reaktion mit Erbsen extrakt
und umgekehrt.

Aus der Tabelle der Versuche sei erwähnt, dass z. B. Mais noch deut-
liche Präcipitonreaktion zeigte mit dem Safte der Teosinte, dagegen nicht mit dem
von Reis, Hafer mit dem Saft von Ärrlienatherum, dagegen nicht mit dem von
Triticum usw. Verff. wollen die Verwandtschaftsreaktion für systematische
Zwecke, zunächst für eine natürliche Gruppierung der Gramineen, ausnützen.

125. Magnus, Werner und Friedenthal, Hans. Über die Artspezif izität
der Pflanzenzelle. (Ber. D. Bot Ges., XXV [1907], p. 337—340.)

Bei den früheren Mitteilungen über den Nachweis der Verwandtschaft
durch die Präcipitinreaktion hatten die Verff. stillschweigend angenommen,
dass alle Pflanzenteile bzw. Pflanzenzellen sich bei der Reaktion gleichwertig
zeigten. Diese Annahme wurde nun für den Roggen noch experimentell als
richtig erwiesen. Es ergab sich, dass verschiedene zur Untersuchung ver-
wandte Organe des Roggens (Same, Wurzel, Spross und Pollen), wirksam
waren (Trübung oder Niederschläge ergaben), wenn das Serum mit Samen oder
Pollen vorbehandelt war. Damit ist die Artspezifizität der Zellen und ihre
Gleichwertigkeit für die Verwandtschaftsreaktionen der Pflanzen nachgewiesen.

126. Magnus, Werner. Weitere Ergebnisse der Serumdiagnostik
für die theoretische und angewandte Botanik. (Ber. D. Bot. Ges.,
XXVI a [1908], p. 532—539.)

Die vom Verf. und von H. Friedenthal ausgeführten Untersuchungen
haben in Arbeiten von Gasis undRelander zum Teil Bestätigung gefunden.

35] R- Pilger: Entstehung- der Arten, Variation und Hybridisation. 339

Doch sollen nachG asis Ausnahmen vorkommen, die den Wert der ganzen Methode
in Frage stellen würden, so sollen Reis und Bohnen miteinander in Reaktion
treten. Verf. macht darauf aufmerksam, dass dabei nicht berücksichtigt worden
ist, dass eine Reihe von Pflanzenextrakten mit jedem Serum nicht vor-
behandelter Tiere Niederschlag ergeben. Bei der einwandfreien Untersuchung
der im Normalserum Trübung gebenden Gramineenextrakte müssen also alle
diese Stoffe erst mit Normalserum vermischt und die Fällung entfernt werden.
Erst mit diesen ganz klar gemachten Solutionen im Normalserum dürfen die
Versuche angestellt werden.

Ferner werden in der Arbeit die Versuche besprochen, die sich auf die
Ergründung der Verwandtschaftsverhältnisse der Gramineen beziehen. Hier
liegt die Schwierigkeit vor, dass der Grad der Verwandtschaft nicht mit Sicher-
heit aus der Stärke der Reaktion geschlossen werden kann, da nicht bekannt
ist, welche Stoffe eigentlich für die Reaktion besonders wichtig sind. Wichtiger
ist die Tatsache, dass bei höherer Immunisierung der Versuchstiere die Ver-
wandtschaftsreaktion bei immer entfernter verwandten Formen auftritt. So
ergab Weizenimmunserum für Bromus und Lolium ein negatives Resultat,
wenn das Kaninchen 29 Tage behandelt war, ein positives Resultat, wenn es
36 Tage behandelt war. Es liegt hierin ein Anzeichen für den Grad der Ver-
wandtschaft. Schliesslich lässt es sich erreichen, dass alle Gramineen unter-
einander Reaktionen zeigen, doch niemals mit Angehörigen anderer verwandter
Familien. Bleibt somit eine Verwertung der Methode für die Erkennung der
näheren Verwandtschaft von Gruppen im Pflanzenreich noch eingehenderen
Untersuchungen in der Zukunft überlassen, so sind anderseits schon gewisse
Erfolge in praktischen Fragen erzielt worden. Es liess sich z. B. Kastormehl
als Verunreinigung des Weizenmehls in geringen Mengen auffinden.

127. Miigocsy-Dietz, Sändor. Über die Veränderung des Geschlechts
beim Hanf. (A kender nemenek vältozäsa: in Növenytani Közlemenyek,
Budapest, VI [1907], p. 16 — 18, magyarisch mit deutschem Resümee.)

Verf. setzt seit mehreren Jahren Versuche im Botanischen Garten zu
Budapest fort, die die Ursachen der Veränderungen des Geschlechtes beim
Hanf aufdecken sollten. Die Resultate der Versuche wurden zeitweise ver-
öffentlicht (so in Math. Termtud. Ertesitö, Bd. XXIV, p. 145 — 165).

Im Sommer 1906 wurde im Viktoriahause 1012 Samen ausgesät. Bei
einer Temperatur von 25 — 30° C. gelangten 314 Exemplare zum Blühen,
darunter 145 <$ und 169 2 (46,17 °/0 c5> 33,82 % ?,. Im grossen Glashause
wurden 1000 Samen ausgesät, von denen bei 16 — 19° C 316 blühten, darunter
160 (50,63 o/o) (5 und 156 (49,36 °/0) ?. Die zwei Versuche stellen einen merk-
würdigen Unterschied dar, weil, während im wärmeren Viktoriahause auf
100 männliche 116,55 weibliche Exemplare fielen, im kälteren Glashause auf
100 männliche 97,50 weibliche Exemplare fielen. Das im kälteren Glashause
erreichte Resultat steht nahe dem des im Freien unternommenen Versuches,
wo auf 100 $ 104,88 bzw. 100,13 2 Exemplare fielen (1. c, p. 156). Diese
Ähnlichkeit beruht wahrscheinlich darauf, dass die Exemplare im Glashause
ebenso trocken gehalten wurden wie im Freien. Der Gedanke liegt nahe,
dass die Trockenheit verursachend auf die Steigerung der Zahl der männlichen
und auf das Sinken der der weiblichen Exemplare wirkt.

Im Freien wurden 5000 Samen ausgesät. Zur Blüte gelangten
4002 Exemplare, darunter 1954 (48,82 °/0) £, 2046 (51,12%) 2, ein Exemplar
mit weiblichem Habitus trug männliche Blüten, ein anderes trug weibliche,

390 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation J3ß

männliche und zwittrige Blüten. Das Resultat ist dasselbe wie im vorigen
Jahre, auf 100 $ fielen 104,7 $.

Verf. schliesst aus seinem Versuche, dass das Geschlecht des Hanfes
nicht fixiert ist, und die äusseren Faktoren auf die Ausbildung des Geschlechtes
Einfluss haben. Szabö.

128. Malinvaud, Ernest. Phenomena of hybridisation in the genus
Mentha. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 178—182.)

Mentha rotundifolia, silvestris, viridis, aquatica und arvensis, die Eumenthae,
bilden eine Reihe von Bastarden. Leicht bastardieren besonders M. aquatica
und arvensis und bilden die zahlreichen Formen von M- sativa L. Bemerkens-
wert ist die relativ geringe Dauer der Bastardformen, die an bestimmten
Standorten auftreten und wieder verschwinden; auch die vermeintliche
Stabilität von M. sativa ist eine Illusion, die durch die immer erneute Bildung
von hybriden Pflanzen entstanden ist. Verf. ist der Ansicht, dass die Zwischen-
formen, die zwei Arten verbinden, keine Bastarde sind, sondern Stadien bei
der Bildung einer neuen Art, die dann bei der schliesslichen Fixierung der
abweichenden Formen verschwinden.

129. Mattei, G. E Note botaniche. 1° Pensieri in argomento di
mutazione. 2° II caso dell* Oxalis cernua- 3° II caso delle Tulipc
arvensi. 4° Variabilita nel Cyelamen neapolitanum. 5° Polimorfismo
nelle specie vegetali. (Rivista di Fisica, Matern, e Scienze Natur, di Pavia,
anno IX, n.i 98, 99, 103, 104, Pavia 1908.)

Diese biologischen Notizen beziehen sich besonders auf die Mutations-
theorie von de Vries.

130. Meyer, Arthur und Schmidt, Ernst. Die Wanderung der Alkaloide
aus dem Pfropfreis in die Unterlage. (Ber. D. Bot. Ges., XXV [1907],
p. 131—137.)

Die Versuche betreffend die Wanderung von Alkaloiden wurden mit
Kartoffel und Datura angestellt. Datura wurde auf Kartoffel gepfropft, wobei
kräftige Pflanzen entstanden. Die Prüfung, ob Hyoscyamin aus dem Pfropf-
reis in die Unterlage wandert, ergab ein negatives Resultat. Die Versuche
sollen fortgesetzt werden.

Vgl. dazu die Arbeiten von Lindemuth, Strasburger, Gräfe und
Linsbauer (1906, Ref. 93, Ref. 157, Ref. 59).

131. Mikoseh, Carl. Über den Einfluss des Reises auf die Unter-
lage. (Wiesner-Festschr., 1908, p. 280-286.)

Nach Molisch finden sich in der Epidermis und dem darunterliegenden
Assimilationsparen chym der flachen Laubsprosse verschiedener Epiphyllum-
Arten eigenartige spindelförmige Eiweisskörper. Dagegen enthält Peireskia
aculeata weder in den Geweben des Blattes noch des Stammes derartige In-,
haltskörper. Wird jedoch, wie Verf. feststellt, Epiphyllum auf Peireskia
gepfropft, so treten in den nach der Pfropfung zur Entwickelung gekommenen
Blättern Inhaltskörper auf, welche den in Epipliyllam-SipTossen vorkommenden
in jeder Hinsicht ähneln. In den Geweben des Pez'res7aa-Stammes Hessen sich
diese Körper nur beim Fehlen der Blattentwickelung in erheblicher Menge
nachweisen. — Sollten weiterausgedehnte Versuche diese Beobachtung be-
stätigen, so wäre wohl des Verf. Annahme berechtigt, „dass das Auftreten von
Epiphyllum-Kör-pem nach der Pfropfung in den Laubblättern der Peireskia-
Unterlage durch einen spezifischen Einfluss verursacht wird." Simon.

37] R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 39 J

132. Morris, Sir Daniel and Stockdale, F. A. The improvement of
the Sugar-Cane bv selection and hybridisation. (Rep. 3. Intern. Conf.
1906 on Genetics, London [1907], p. 310—335.)

Beschreibung der Versuche, die in verschiedenen Ländern, besonders
in Westindien angestellt sind, um durch Auslese und Bastardierung die Sorten
des Zuckerrohrs zu verbessern und besonders auch gegen Schädlinge wider-
standsfähiger zu machen. Der Erfolg wird weiterhin davon abhängen, dass es
gelingt, reine Sorten aus Stöcken unter sorgfältiger Auslese zu ziehen, die
ökonomischen Wert besitzen, besonders Widerstandsfähigkeit und Reichtum
an Zucker.

133. Nilsson, Herman. Om lifstyper och individuell Variation.
(Bot. Notiser [1907], p. 113—140.)

134. Nilsson, Herman. Einige Ergebnisse von Kreuzungen bei
Hafer und Weizen. (Bot. Not. [1908], p. 257—294.)

Nach der Auffassung des Autors sind die vielen Elementararten (Linien
oder Kleinformen), die man beim Getreide hat, konstante Überbleibsel der
Spaltungsprodukte freiwilliger Kreuzungen; es sind alles Kombinationen einer
Anzahl von Eigenschaften oder Eigenschaftsabstufungen: bei alten Rassen ist
schon eine Konstanz eingetreten, bei Kreuzungen werden die Kombinationen
gebildet, entstehen vor unseren Augen. Eine geringe Anzahl von Eigen-
schaften kann zahlreiche Kombinationen erzeugen. Dabei wird vorausgesetzt,
dass die sogenannten Merkmalspaare vom Vorhandensein oder Fehlen einer
Eigenschaft gebildet werden, eine Anschauung, die von Forschern, wie Correns,
Bateson und Saunders, in neuerer Zeit allgemein vertreten wird. So z.B.
sind bei der Kornfarbendifferenz beim Hafer (schwarz- und gelbkornig), zwei
Merkmalspaare vorhanden. Schwarz (S) bildet ein Merkmalspaar mit seinem
Fehlen ('s) und gelb (G) mit seinem Fehlen (g). So ergibt sich folgendes
Schema:

Schwarzkörnige Muttersorte Gelbkörnige Vatersorte

schwarz (S) O schwarz (s)

O gelb (g) gelb (G).

Es liegt dann eine dihybride Kreuzung vor, bei der in der zweiten
Generation auch die Kombination 0 schwarz -f- O gelb = weiss vorkommen
muss, was in der Tat der Fall ist. Ferner kann eine schwarze Sorte zugleich
auch die gelbe Farbe besitzen, so dass die Kombination entsteht

schwarz (S) O schwarz (s)

gelb (G) X Gelb (G).

Die Spaltung ergibt hier drei schwarz: 1 gelb und man könnte meinen,
dass gelb und schwarz ein Merkmalspaar bilden und dass schwarz über gelb
dominiert. Das wahre Verhältnis zeigt sich aber, wenn man die schwarze
Sorte mit einer weissen kreuzt:

schwarz (S) 0 schwarz (s)

gelb (G) X O gelb (g).

Alsdann treten auch gelbkörnige Formen (G s) auf und zeigen, dass die
schwarze Form auch die gelbe Farbe besitzt. Bei den Formen kommen auch
erbliche Abstufungen in der Farbe vor (braun bis schwarz), also auch hier
quantitative Unterschiede und es lässt sich (besonders auch durch Kreuzungen
beim Weizen) zeigen, dass diese Farbenabstufungen das Resultat mehrerer
voneinander unabhängiger Einheiten sein können, die sich also selbständig bei
der Kombinationsbildung verhalten. Hierin liegt vielleicht ein Fingerzeig für

392 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [38

das Verständnis des Verhaltens der Arthybriden. „Jedenfalls wird der experi-
mentelle Nachweis, dass erbliche Gradationen einer Eigenschaft' von vielen
unabhängigen Einheiten bedingt, werden können, die Tragweite der Mendelschen
Entdeckung der Elementareigenschaften noch mehr erhöhen, und man kann
sich der Annahme, dass auch grössere Differenzen durch verschiedene
Gruppierungen von Einheiten zustande kommen, und im Anschluss daran,
dass die Merkmalspaare immer Vorhandensein und Fehlen der Einheiten be-
zeichnen, kaum mehr erwehren." Für die Richtigkeit dieser Anschauungen
sprechen eine Reihe von Bastardierungsergebnissen bei Weizen und Hafer, bei
denen Behaarung, Begrannung, Höhe usw. in Betracht gezogen wurden. So
kann die Behaarung der Ährchen beim Hafer aus mehreren selbständigen
Komponenten bestehen. An der Basis des Ahrchens sind entweder keine
Haare oder kurze oder längere Haare vorhanden. Bei Kreuzung einer lang-
haarigen und kurzhaarigen Sorte bilden nicht Langhaarigkeit und Kurzhaarig-
keit ein Merkmalspaar, sondern jede Eigenschaft mit dem Fehlen derselben
(L — 1, K — k). Das Schema ist also folgendes :

K k

1 X L.

In der zweiten Generation wurden nämlich Individuen abgespalten,
denen überhaupt die Haare fehlten (lk X 1 k)> dann kamen aber auch Indi-
viduen vor, die beide Kategorien von Haaren besassen (K L X K L). Durch
Synthese von zwei unabhängigen Einheiten ist also eine Art von sehr kräftiger
„ Verstärkung" der Behaarung hervorgerufen worden. „Es ist in letzter Zeit
mehrmals hervorgehoben worden, dass die Mendelsche Lehre von den unab-
hängigen Elementareigenschaften oder Erbeinheiten eines der wichtigsten
Prinzipien, welche in die biologische Wissenschaft jemals eingeführt wurden,
bezeichnet. Dass die Forschung über die Formenbildung in der Natur immer
mehr ,im Zeichen des Mendelismus' stehen wird, kann jedenfalls wohl nie-
mandem mehr fremd klingen, der dazu Anlass gehabt hat, auf den Wegen zu
wandern, die der geniale Brünner Forscher zuerst betreten hat."

135. Noll. Neue Beobachtungen an Laburnum Adami Poit. (Cytisus
Aäami Hort. (Sitzungsber. Naturh. Ver. d. preussischen Rheinlande u. West-
falens, 1907 [1908], p. 38—51.)

Zuerst wird eine neue Variante des Laburnum Adami beschrieben. An
einem fast orthotropen Adami-Zweige erschien eine reichblütige Traube von
PurpureusBlüten. Der Rückschlag ist hier nicht, wie sonst, ein völliger, da
die Pwpwm<s-Inflorescenzen normal wenigblütig sind. Eine erbliche Über-
tragung des Merkmals Vielblütigkeit auf den Purpureus- Rückschlag lag aber
nicht vor, da der Trieb im nächsten Jahre normale P?(r/wmts-Inflorescenzen
bildete. Ferner wurden an einem Adami- Exemplar weiter entwickelte Hülsen beob-
achtet; diese Weiterentwickelung entstand durch den Reiz, der durch Insekten-
larven, die in den Fruchtanlagen schmarotzten, auf das Wachstum ausgeübt
wurde. Samen entstanden nicht. Die Hülsen sind von langer rundlicher
Form, wie die von Laburnum vulgare; sie gleichen nur in der glatten, grünen
haarlosen Oberhaut den Purpureus -Hülsen. Somit überwiegt bei dem Mischling
Adami auch in den Früchten der Labarnum-Gh&T&kter.

An die Darstellung dieser Beobachtungen werden einige Erörterungen
ü'ner das Kernproblem bei C. Adami geknüpft. Die Kerne enthalten, wie
Strasburger zeigte, die für den Sporophyten normale Anzahl von Chromo-
somen, nicht die doppelte, wie man bei einem Pfropfbastard annehmen sollte.

39| R- Pilger: Entstehung der Arten. Variation und Hybridisation. 393

Eine Reduktion ist aber immerbin möglich, wenn auch die Angaben von
Nemec, auf die sich Verf. früher stützte, nach Strasburger nicht zutreffen.
Man wird nun annehmen müssen, dass die Adami- Kerne zur Hälfte aus
Chromosomen des Labumum vulgare, zur anderen Hälfte aus solchen des
Cytisus purpureus bestehen; dann kann man sich die Rückschläge auf dreierlei
Art entstanden denken: Bei dem Rückschlag in den Purpureus gehen die
Chromosomen des Goldregens (die „gelben") irgendwie zugrunde, die „roten"
des Purpureus bleiben allein übrig. Dann sind die Kerne haploid. Oder sie
weiden diploid durch eine autoregulative Verdoppelung der „roten" Chromo-
somen. Oder endlich die Kerne sind infolge der Anwesenheit von beiderlei
Art von Chromosomen diploid, doch sind die „gelben" in ihrem artbestimmenden
Einfluss ausgeschaltet. Die Kerne wären dann „pseudodiploid" zu nennen.
Nach Untersuchung des Verfs. sind die Kerne der Rückschläge diploid, doch
war eine Entscheidung, ob der zweite oder dritte Fall vorliegt, nicht möglich:
im letzteren Falle wäre eigentlich gelegentlich an den Rückschlägen ein Rück-
schlag wiederum nach dem Adami zu erwarten (ein umkehrender oder „repro-
gressiver" Rückschlag), was bisher nicht beobachtet ist. Die Goldregen- und
P?o-/?Mre«s-Rückschläge bewahren ihre reine Form.

136. Noll. Vorläufiger Abschluss der Versuche über die Be-
stimmung des Geschlechts bei diöcischen Pflanzen. (Sitzungsber.
Naturh. Ver. d. preussischen Rheinlande u. Westfalens, 1907 [1908], p. 68 — 91.)

137. Noll. Über eine äee^eri-ähnliche Form der Capsella Bursa
Pastoris Mnch. (Sitzungsber. Naturh, Ver. d. preussischen Rheinlande u. West-
falens, 1907 [1908], p. 91—96.)

Verf. erhielt durch mehrere Floristen eine Form des Hirtentäschels, die
nur in noch nicht fruchtreifen Exemplaren gesammelt, der Capsella Heegeri,
der bekannten Mutation der C. bursa pastoris mit rundlichen Früchten, sehr
ähnlich war und auch zunächst als diese angesprochen wurde. Bei genauer
Untersuchung stellte sich schliesslich aber heraus, dass bei dieser Pseudo-
Heegeri nur eine sterile Form des Hirtentäschels vorlag, deren Samenanlagen
fehlschlagen und deren Schötchen infolgedessen in der Weiterentwickelung
zwar nicht ganz gehemmt werden, aber docn in eine nach Gestalt und Grösse
reduzierte Form übergeführt werden. Von der Form Heegeri unterscheidet sie
auch die Abplattung des Schötchens; die C. Heegeri pflanzt sich ziemlich
konstant fort, hier lag nur eine sterile Form vor. Diese Feststellung ist insofern
von descendenztheoretischem Interesse, weil die Annahme der öfteren Ent-
stehung der Heegeri-Form also nicht den Tatsachen entspricht.

138. Obmann, M. Über die Art und das Zustandekommen der
Verwachsung zweier Pf ropf symbionten. (Centrbl. f. Bakteriologie,
Parasitenk. u. Infektionskrankh., Abt. II, Bd. XXI, 1908, No. 7/8, 10/12,
37 Textfig. [auch als Dissertation].)

Der erste, aligemeine Teil der Arbeit beschäftigt sich mit der Ent-
wicklung und Differenzierung des Callus, der die primäre Verwachsung
zwischen Pfropfreis und Unterlage herstellt, und streift dann die eigenartigen
pathologischen Störungen (z.B. die „Knäuelbildung") im neuen Holzzuwachse
an der Grenze der beiden Symbionten. Der zweite Teil behandelt die ana-
tomischen und physiologischen Verhältnisse der einzelnen Transplantationsarten
(Copulation, Ablaktierung, Triangulation, Oculation).

Die Wasserversorgung des Reises geschieht bei den Copulationen vor
der eigentlichen Verwachsung für kurze Zeit auf rein physikalischem Wege

394 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [40

durch das Blutungswasser der Unterlage. Später übernimmt dann der aus
dem Cambium stammende, zwischen den Schnittflächen wuchernde primäre
Oallus in bescheidenen Grenzen die Wasserleitung, die naturgemäss bei
stärkerer Ausdehnung der Callusentwickelung auch entsprechend reichlicher
ausfällt. Je grösser daher die Schnittflächen sind, d. h. je schräger sie ver-
laufen, desto besser geht die Wasserversorgung vor sich und um so üppiger
treiben auch die Reiser aus.

Die Ablenkung im Faserverlaufe des Wundholzes der Grenzlinie der
beiden Symbionten glaubt der Verf. auf mechanische Einflüsse zurückführen
zu müssen. Denn durch die zwischen die beiden Schnittflächen wuchernden
Callusmassen werden diese auseinander getrieben und es kommt so eine
orthogonal zur Schnittfläche verlaufende Ablenkung der neuentstehenden
Holzelemente zustande. An Triangulationen, bei welchen eine derartige Ver-
schiebung der Symbionten nicht eintreten kann, findet nur infolge eines
Herausbiegens der dünneren Enden des Satteleinschnittes eine Ablenkung der
Fasern statt. Auch in der Rinde sind ähnliche Verhältnisse wie im Holze
wahrnehmbar.

Bei der Oculation beteiligen sich Rindenschildchen wie die Rindenlappen
der Unterlage in gleicher Weise an der Callusbildung. Das Rindenschildchen
wächst aber gleichzeitig mit seinem eigenen Cambium weiter, welches dann
im weiteren Verlauf mit dem der Unterlage in Verbindung tritt.

Simon.

139. Ortlepp, Karl. Der Einfluss des Bodens auf die Blüten-
füllung der Tulpen. (Flora, XCVIII [1908], p. 406—422.)

Kulturen von Tulpen, die durch mehrere Jahre hindurch fortgesetzt
wurden, liessen erkennen, dass die Stärke der Blütenfüllung bei den Tulpen
vor allem von der Beschaffenheit der angewandten Erde abhängt. Da sich
der günstige oder ungünstige Einfluss erst im folgenden Jahr zeigt, muss die
Erde schon auf die Mutterzwiebel in der Weise einwirken, dass die in ihr
ausreifende Tochterzwiebel eine Tendenz zur Zu- oder Abnahme der Füllung
erhält. Ausser dieser indirekten Einwirkung, die der neuen Zwiebel gleich
gewisse Qualitäten mitgibt, scheint die Beschaffenheit der Erde noch eine,
wenn auch viel schwächere direkte Wirkung auf die Blütenfüllung der fertigen,
austreibenden Zwiebel auszuüben.

140. Ortmann, A. E. Facts and interpretations in the mutation
theory. (Science, N. S., XXV [1907], p. 185—190.)

Kritik der Mutationstheorie, insbesondere gegen MacDougal, den
amerikanischen Vorkämpfer der Theorie. Verf. kann besonders den Unterschied
zwischen den Formen der Variation nach de Vries nicht anerkennen, auf dem
die Theorie beruht.

141. Ostenfeld, C. H. Oastration and hybridisation in the genus
Hierachim. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London 1907, p. 285
bis 288.)

142. Pampanini, R. Aleuni Cirsium ibridi dei Dintorni di Belluno.
(Bull. Soc. Bot. Ital. [1908], p. 126—132.)

143. Pampanini, R. Un Iris probabilmente ibrido delF /. illijrica
Tomm. e dell' I. pallida Lam. ed una nuova varietä di quest* ultima.
(Bull. Soc. Bot. Ital. [1908], p. 135—137.)

144. Pavolini, A. F. La produzione artificiale di nuove specie.
(Bull. Soc. tose. Orticolt., XXXIII, p. 263—266, Firenze 1908.)

41] ß. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 395

145. Pearl, R. Variation and Differentiation in Ceratophyllum.
(Carnegie Instit. of Washington (1907), Publ. 58, 136 pp., 2 T.).

146. Perriraz, J. Variations chez VAstrantia major. (Bull. Soc. Vaud.
Scienc. Nat., 5. ser., XLIII, No. 159, 1907.)

Kurze Inhaltsangabe bei Vogler, vgl. Ref. 187.

147. Putzer. Hybridisation and the systematic arrangement
of Orchids. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 218
bis 221.)

148. Putzer. On the Phylogeny of Orchids. (Rep. 3. Intern. Conf.
1906 on Genetics, London [1907|, p. 476—481.)

149. Pollock, James B. Some physiological Variations of Plauts
and their general Significance. (Science, N. S., XXV [1907], p. 881-889.)

150. Reinke, J. Kritische Abstammungslehre. (Wiesner-Festschr.
[1908], p. 11 — 18.)

151. Reitsma, J. I. Correlatieve variabiliteit bij planten. Inaugural-
dissertation (Amsterdam), Verlag T. de Vries Dzn., Rotterdam (1907).

Die Einleitung enthält eine Übersicht der wichtigsten Publikationen auf
dem Gebiete der korrelativen Variabilität im Pflanzenreich. Darauf folgt eine
Auseinandersetzung der befolgten Methode. Verf. zeigt, dass sich Ver-
schaffelt täuschte, wenn er Galtons Methodik so abänderte, dass er als
Einheit der Variation für jedes Organ nicht (wie Galton) die durchschnittliche
Deviation, sondern die Mediane gebrauchte. Der Korrelationsratio ist, nach
Galton, derselbe, von welchen beiden Organen oder Merkmalen man ausgeht.
Mittelst Beispiele, den Arbeiten Mac Leods und de Bruykers entnommen,
wird gezeigt, dass Verschaffelts Methode einen verschiedenen Ratio liefert, je
nachdem man von einem oder dem andern der untersuchten Merkmale ausgeht.

Verf. bestimmte für mehr oder weniger 2500 Blätter von Trifolium prü-
fende die Länge und die Breite jeder der drei Blattspreiten und berechnete die
Korrelation zwischen diesen verschiedenen Merkmalen. Das nämliche folgte
bei Trifolium repens für eine viel geringere Zahl Blätter.

Andere Untersuchungen bezogen sich auf die Länge der Internodien
und ihre oberen Nachbarblätter bei Lamium album (1800 Exemplare), auf
die Länge des Blumenstiels und der Blütenröhre von Crocus vernus var. Albion
purper (1480 Ex.). Im letzten Fall konnte man vielleicht a priori vermuten,
es bestehe eine Kompensation zwischen beiden Organen, in diesem Sinne,
dass, wenn der Stiel kurz bleibt, die Röhre desto länger wird, um die Fort-
pflanzungsorgane an das Licht zu bringen.

Nach den Untersuchungen Goebels gibt es bei vielen Papilionaceen
eine Kompensation zwischen Blättern und Nebenblättern, und steht die Grösse
der Nebenblätter in kausalem Verband mit der Reduktion der Blattspreiten.
Verf. konnte nun für das erste normale Blatt bei Vicia faba (500 Ex.) und
Lathyris communis var. americanus (176 Ex.) eine deutliche Korrelation zeigen.
Bei der letztgenannten Species, wie wahrscheinlich auch bei Lathyrus aphaca.
gibt es Korrelation zwischen der Länge der Blattspreite und der Länge der
Blattranke.

Die wichtigsten Resultate dieser Untersuchungen, in zahlreichen Tabellen
dargestellt, führen zu den folgenden Schlüssen:

1. Der Variabilitätscoefficient ist für verschiedene Organe derselben
Pflanzen ein sehr verschiedener.

396 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [42

2. Zum Vergleich der Variationen zweier Organe und zur Bestimmung
der Korrelation sollen die Variationen in ihrer respektiven durchschnittlichen
Variation ausgedrückt werden.

3. Für die mediane Blattspreite des Klees ist der Mittelwert der Länge
und der Breite grösser als für die lateralen Spreiten, die miteinander ungefähr
übereinstimmen. Die Korrelation zwischen den Längen der Spreiten ist sozu-
sagen eine vollkommene: diese zwischen der Breite etwas minder vollkommen;
zwischen Länge und Breite ist sie noch kleiner, aber doch sehr gross. Der
Variabilitätscoefficient ist für die Längen am grössten.

4. Zwischen den Internodien und den angrenzenden Blattpaaren von
Lamium album gibt es keine beträchtliche Korrelation. Die Internodien
variieren bedeutend mehr als die Blattlängen.

5. Die Korrelation zwischen Nebenblatt und Blattspreite ist sehr ansehn-
lich bei Yieia faba und Lathyrus odoratus; ebenso zwischen Spreite und Ranken
der letztgenannten Species. Bei Lathyrus aphaca gibt es auch Korrelation
zwischen den Blatteilen. Der Variationscoefficient ist nahezu derselbe für
beide Organe.

6. Die Länge des Blütenstiels und der Kronenröhre von Crocus vemus
zeigen eine hohe Korrelation, wenn auch der Stiel mehr variabel ist als die
Röhre.

7. Stets wurde bei der Bestimmung der Korrelation derselbe Wert ge-
funden, wenn wechselweise von jeder der beiden zu vergleichenden Organe
ausgegangen wurde.

8. In keinem der untersuchten Fälle konnte eine Kompensation bestätigt
werden. 0. De Bruyker.

152. Rolfe, R. Allen. Natural hybrids of the Cattleya group. (Rep.
3. Intern. Oonf. 1906 on Geneties, London [1907], p. 222—211.)

153. Rosenberg, 0. Cytological investigations in plant hybrids
(Rep. 3. Intern. Oonf. 1906 on Geneties, London [1907], p. 289—291.)

Bericht über die cytologischen Untersuchungen des Verf. an Drosera-
und iKeracmm-Bastarden.

154. Saunders, E. R. Certain complications arising in the cross-
breeding of Stocks. (Rep. 3. Intern. Oonf. 1906 on Geneties, London [1907],
p. 143—149.)

Die gewöhnlichen Mendelschen Proportionen werden dadurch ver-
ändert, dass Charaktere in ihrem Auftreten nicht selbständig, sondern von
anderen abhängig sind.

155. Saunders, Charles E. The inheritance of awns in Wheat. (Rep.
3. Intern. Conf. 1906 on Geneties, London [1907], p. 370—372.)

Verschiedentlich war angegeben worden, dass Begrannung und Grannen-
losigkeit ein Merkmalspaar im Mendelschen Sinne bildeten. Das ist nach
dem Verf. nicht der Fall. So wurden in der ersten Generation beim Weizen
gefunden: 15 °/0 Ähren mit mehr als ein Viertel begrannter Ährchen, 59%
mit ein Viertel, 20 °/0 fast grannenlos, 6 % grannenlos. In der zweiten Gene-
ration ist ebenfalls Vielförmigkeit vorhanden; häufig sind Zwischenformen mit
kurzen Grannen.

156. Schelle, E. Zur Praxis der Kakteenpfropfungen. (Monats-
schrift f. Kakteenkunde, Jahrg. 18 [19081, P- 10— 14, 24— 30.)

Zu Beginn der Abhandlung werden die praktischen Handgriffe bei der
Pfropfung der verschiedenen Kakteenarten aufeinander besprochen. Es folgen

43] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 397

Mitteilungen über die richtige Wahl einer passenden Unterlage für eine grosse
Anzahl von Arten, über ihr Verhalten nach der Pfropfung, über die Abhängig-
keit des Zustandekommens der Verwachsung von dem Zustand der Unterlage
sowie über den Einfluss der Übertragung auf den betreffenden Pfröpfling
Die letztgenannten Angaben scheinen ziemlich übereinstimmend darauf hinzu-
deuten, dass alle Arten im aufgepfropften Zustande nicht nur wesentlich
besser wuchsen, sondern auch früher und williger blühten, als wurzelechte
Exemplare. — Im übrigen sind in dieser Abhandlung Bezugnahmen auf wissen-
schaftliche Fragen, die vielfach nahe gelegen hätten, vermieden und nur die
Bedürfnisse der Praxis berücksichtigt. Simon.

157. Schenk, Heinrich. Über die Phylogenie der Archegoniaten
und der Characeen. (Engl. Bot. Jahrb., XLII [1908], p. 1—37.)

Verf. versucht die Archegoniaten in einen Anschluss an die Thallophyten
zu bringen und zwar durch Vermittelung der Phaeophyceen. Nach seiner An-
sicht sind die Antheridien und Archegonien der Moose und Farne den pluri-
lokulären Gametangien der Braunalgen homolog. Der Vergleich ist am
leichtesten für die Antheridien der Moose und Farne durchzuführen. Der
Hauptunterschied gegenüber den Gametangien liegt darin, dass diese in allen
Zellen Gameten erzeugen, während die Antheridien eine sterile Wandung
haben. Dies ist auf den Übergang zur terrestrischen Lebensweise, der bei den
höheren Kryptogamen eintrat, zurückzuführen; die im Wasser lebenden Algen
konnten eine solche schützende Wandschicht entbehren. Das Landleben be-
dingte auch den Übergang von exogener zu endogener Anlage der Organe.
Nicht so klarliegend ist die Homologisierung der Archegonien. doch ist sie
auch verständlich bei der Annahme, dass eine weitere Reduktion der Anzahl
der Sexualzellen bis auf eine eintrat; die Halskanalzellen sind als steril ge-
wordene Sexualzellen zu betrachten. Ferner werden die Sporenmutterzellen
der Archegoniaten mit den unilokulären Sporangien der Braunalgen homologi-
siert. Am deutlichsten ergibt sich die Vergleichung mit Dictyota. Deren
Tetrasporangium lässt sich der Sporenmutterzelle homolog setzen. Die endogene
Anlage der Tetrasporangien bei den Archegoniaten im Gegensatz zu Dictyota
lässt sich wiederum als Anpassung an die terrestrische Lebensweise deuten.
Dann wird der Gametophyt und der Sporophyt der Archegoniaten mit dem
Thallus der Algen verglichen und es zeigt sich, dass der erstere noch vie
Ähnlichkeit mit dem Thallus hat, während der letztere beim Übergang zum
Landleben sich eigentümlich entwickelte; der höhere phylogenetische Fort-
schritt fand durch die Ausbildung der wasserleitenden Trache'fden und Gefässe
statt. Verf. verwirft die Anschauung Bowers vom antithetischen Generations-
wechsel der Archegoniaten, nach der der Sporophyt eine eingeschobene
Generation ist (vgl. Ref. No. 26). Der Vergleich der Characeen mit den
Braunalgen, den Verf. am Schlüsse der Arbeit bringt, ist schwächer begründet.
Er findet in den plurilokulären Gametangien gewisser Braunalgen Gebilde, die
morphologisch genau mit den spermatogenen Zellfäden der Charen überein-
stimmen und betrachtet diese als die eigentlichen Antheridien der Characeen
und das ganze männliche Organ als einen aus acht Gruppen zusammengesetzten
Sorus von Antheridien, der endogen abgelegt wird und in einen Hohlraum der
Pflanze hineinwächst,

158. Schneider, K. C. Versuch einer Begründung der Descen denz-
theorie. Jena, G. Fischer (1908), VIII, 132 pp.

398 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. I44

159. Semon, Richard. Kritik und Antikritik der Mneme. (Archiv
f. Rassen- u. Gesellschaftsbiologie, IV, p. 201.)

Entgegnung auf die Kritik von Semi Meyer (Gedächtnis und Vererbung.
Dies. Zeitschrift, III [1906], 5. Heft).

160. Semon, Richard. Beweise für die Vererbung erworbener
Eigenschaften. Ein Beitrag zur Kritik der Keimplasmatheorie.
(Archiv f. Rassen u. Gesellschaftsbiologie, IV [1907], p. 1 — 46.)

Die Frage nach der Möglichkeit der erblichen Übertragung erworbener
Eigenschaften ist immer noch ungeklärt und wird von vielen Forschern ver-
neint, hauptsächlich seit Weis mann mit so grosser Entschiedenheit die
Nichtvererbbarkeit erworbener Charaktere vertreten hat. Somit richtet sich
diese Schrift besonders gegen Weismann und seine Einwände gegen die vor-
gebrachten Beispiele der VTererbbarkeit erworbener Eigenschaften. Diese Ein-
wände sind besonders die vier folgenden. 1. Einwand der direkten Beein-
flussung der Keimzellen. Weis mann stellt bekanntlich das Keimplasma, den
Träger der erblichen Eigenschaften, das von einem Individuum in das andere
übergeht, dem Soma des einzelnen Individuums gegenüber. Das Keimplasma
kann durch Amphimixis, sowie durch Reize, die dasselbe direkt treffen, ver-
ändert werden. Will man nun Beispiele der Vererbung ' erworbener Eigen-
schaften bringen, so verlangt Weismann, dass Fälle gezeigt werden, bei
denen der abändernde Reiz ganz offenbar auf dem Wege organischer Reiz-
leitung vom Soma auf das Keimplasma übergegangen ist. Keineswegs dürfen
die Keimzellen direkt vom Reiz getroffen sein, wie es bei thermischen oder
chemischen Reizen der Fall sein kann. Durch seine Unterscheidung engt also
Weis mann das Gebiet sehr ein, auf denen Forscher ihre Beispiele wählen
können, um die Vererbbarkeit erworbener Eigenschaften nachzuweisen.
2. Einwand des Eingreifens der Zuchtwahl. Beispiele von angeblicher Über-
tragung erworbener Eigenschaften werden von Weismann durch das Ein-
greifen der Zuchtwahl erklärt. So bei dem erblich gewordenen Laubfall der
Bäume in Gegenden mit Winterruhe. Es ist von grossem Nutzen für die be-
treffenden Bäume, eine bestimmte Peridiozität einzuhalten, da frühzeitig aus-
treibende Knospen durch Nachtfröste zerstört werden. Das gibt Semon zu.
„Das Eingreifen der Zuchtwahl lässt sich in diesem Falle durchaus nicht aus-
schliessen, ist vielmehr überaus wahrscheinlich, so dass es hier einfach un-
möglich ist, auseinanderzuhalten, wieviel der etwaigen direkten Wirkung der
periodischen Temperaturschwankungen, wieviel der Auslese aus wie immer ent-
standenen Variationen zuzuschreiben ist." Anders liegt der Fall bei den
Schlafbewegungen der Pflanzen. Diese finden im zwölfstündigen Turnus ge-
mäss dem Lichtwechsel von Hell und Dunkel statt und sind als direkte
Reaktionen des Organismus auf das Auftreten und Verschwinden des Licht-
reizes anzusehen. Die Bewegungen treten alier auch noch in regelmässigem
Wechsel ein, wenn der Reiz nicht mehr vorhanden ist, und zwar handelt es
sich nicht nur um Nachwirkungen, die auf das individuelle Leben beschränkt
sind, sondern die Nachwirkungen sind, wie Semon nachwies, erblich. Die
Disposition, unabhängig von der jeweiligen Reiz Wirkung, wird also vererbt,
und diese Vererbung ist nicht durch Zuchtwahl zu erklären. Es wäre durch
Zuchtwahl zu erklären, dass die Pflanzen die Disposition erbten, bei jedesmal
auftretendem Reiz die zweckmässigen Bewegungen auszuführen, nicht aber,
dass sie die Disposition erbten, auch ohne neu einsetzende Reizwirkung die
Schlafbewegungen auszuführen, da hier von keinem Nutzen gesprochen werden

45] R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 399

kann. 3. Einwand, es handle sich um Atavismus. Hiergegen bemerkt Semon,
dass dieser Einwand gar nicht den Kern der Sache trifft; denn „für den Be-
weis, dass Veränderungen des Soma auf dem Leitungswege den Keimzellen
übermittelt werden, bleibt es sich gleich, ob die vom Soma auf die Keimzellen
herübergeleitete Veränderung neue Wege schafft oder alte wieder gangbar
macht. Das wesentliche ist. dass sie überhaupt hinübergeleitet wird. Dies hat
Weismann stets bestritten ....." 4. Einwand des logischen Gegenbeweises.
Weismann schafft ein „Massengrab, das jede ihm entgegengehaltene Tat-
sache verschlingen muss", durch die Bemerkung, dass Tatsachen vorliegen,
die den logischen Beweis liefern, dass eine somatische Vererbung nicht vor-
kommt. Dieser „logische Beweis" ist aber durchaus nicht zwingend, wie
Semon in Kürze nachweist. Von den vier Einwänden bleibt bis zu einem
gewissen Grade nur der erste bestehen, aber nur dann, wenn man eben die
strikte Unterscheidung Weismanns von Keimplasma und Soma annimmt.
Sie ist aber nach den neueren physiologischen Forschungen (besonders nach
der Erkenntnis der Regenerationserscheinungen) nicht aufrecht zu erhalten.

„Die Zweiteilung der lebendigen Substanz in Keimplasma und somatisches
Idioplasma und vor allem die prinzipielle Gegenüberstellung dieser beiden
Substanzen ist ungerechtfertigt und muss aufgegeben werden. In so ver-
schiedenen Gestalten und mit so verschiedenen Ausdrucksformen begabt uns
die lebendige Substanz auch in den einzelnen Teilen und Teilchen eines
Individuums entgegentritt, und so sehr da eine morphologische und physio-
logische Einteilung gerechtfertigt erscheint: die Herausarbeitung eines
prinzipiellen Gegensatzes zwischen Keimplasma und Körperplasma ist
nur möglich, wenn man den Tatsachen tausendfach Gewalt antut." Im Gegen-
satz zu dem Weismannschen Versuch der Erklärung der Vererbung steht
der Gedankengang des Verfs., den er in seiner „Mneme" ausgeführt hat.
Hiernach haben wir das erhaltende Prinzip im Wechsel des organischen Ge-
schehens zu erblicken in der Eigentümlichkeit der lebendigen Substanz, durch
Reize nicht nur vorübergehend, sondern dauernd verändert zu werden und
solche dauernden Veränderungen (Engramme) den Nachkommen bei jeder
Fortpflanzungsweise, auch der durch Keimstoffe, zu übermitteln. Dieses
Prinzip bildet den Schlüssel zu Regeneration und Regulation, zu onto-
genetischer Entwickelung und biogenetischem Grundgesetz, kurz zum ganzen
Vererbungsproblem.

161. Semon, Richard. Hat der Rhythmus der Tageszeiten bei
Pflanzen erbliche Eindrücke hinterlassen? (Biol. Centrbl., XXVIII
[1908], p. 225—243.)

Verf. geht auf die Kritik ein, die Pfeffer (Unters, über die Entstehung
der Schlaf bewegungen der Blattorgane, Abh. Math.-phys. Kl. der Kgl. Sachs.
Ges. d. Wissensch., XXX, No. 3 [1907]) an seinem in der obigen Überschrift
ausgedrückten Befunde geübt hatte. Pfeffers Auffassung ist, „dass die
njktinastischen Nachwirkungen verhältnismässig schnell ausklingen, dass sie
also nicht erblich geworden sind, obgleich sie unter dem Einfluss des Tages-
wechsels in einer gewaltigen Zahl aufeinanderfolgender Generationen in dem-
selben Rhythmus wiederholt wurden". Verf. hält daran fest, dass der Rhythmus
der Tageszeiten bei Pflanzen erbliche Eindrücke, vererbbare Engramme hinter-
lassen hat.

162. Shull, George H. Elementary species and hybrids of Bursa.
(Science N. S., XXV [1907), p. 590—591.)

400 R- Pi'ger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [4g

Ausgedehnte Kulturen von Formen von Capsella bursa pastoris ergaben,
dass wenigstens vier elementare Arten und eine grosse Anzahl von Formen
vorhanden sind, die bei Kreuzung typisch mendeln. Die Mendel sehe Kreuzung
ist also nicht auf kultivierte Formen beschränkt. Die Formen der Gapsella
wohnen dicht nebeneinander, so dass ersichtlich ist, dass keine räumliche
Trennung zur Aufrechterhaltung nahe verwandter Formen nötig ist. Die
Kulturen zeigen auch, was ja theoretisch einleuchtet, dass die Formen mit
dominierenden Merkmalen nicht das Übergewicht über die mit recessiven
Merkmalen erhalten. Dagegen werden die verschiedenen Formen durch natür-
liche Auslese begünstigt oder geschädigt.

163. Shull, (i. H. The significance of latent characters. (Science
N. S., XXV [1907], p. 792—794.)

164. Shull, 0. H. Some latent characters of a white Bean.
(Science N. S., XXV [1907], p. 828—832.)

165. Shull, G. H. Some neweases ofMendelian inheritance. (Bot.
Gaz., XLV [1908], p. 103—116.)

Die Arbeit bringt die experimentelle Feststellung des Mendelns einiger
Merkmale bei Helianthus annuus (starke Verzweigung einer Rasse), Lychnis
dioeca (rote und weisse Blüten), Verbascum blattaria (gelbe und weisse Blüten).

166. Shull, G. H. An new Mendelian Ratio and several Types of
Latency. (Americ. Natur., XLII [1908], p. 433-451.)

Bei Kreuzungen von weissen und gefärbten Bohnen ergaben sich neue
Charaktere, die keine der Eltern besass; Verf. machte die Annahme, dass diese
von Mendel sehen Einheiten herrühren, die latent in der weissen Rasse vor-
handen sind ; diese Latenz bedeutet nicht etwa Inaktivität von Charakteren,
die dann durch bestimmte Bastardkombinationen wieder aktiv werden (Tscher-
mak), sondern nur Unsichtbarkeit. Diese Latenz kann verschiedene Ursachen
haben: 1. Latency due to separatiou. Ein Paarung zeigt sich nicht äusserlich,
wenn er allein in Aktion tritt, sondern nur in Verbindung mit einem anderen.
Eine solche Latenz zeitigt die Verhältnisse 9:3:4, 9:7, 27:9:9:3:16 und
29 : 9 : 28, an Stelle der theoretischen : 9:3:3:1 und 27 : 9 : 9 : 9 : 3 : 3 : 3 : 1.
2. Latency due to combination. Zwei dominierende Paarlinge, deren jeder,
wenn er allein wirkt, ein besonderes Merkmal hervortreten lässt, werden nicht
mehr manifest, wenn sie in einer Zygote zusammen vorhanden sind. Bei
Selbstbefruchtung treten die Verhältnisse 1:1, 3:3:2, 18 : 18 : 6 : 6 : 16 u. a. auf.
Beispiele hierfür bieten besonders die Mittelrassen, bei denen eine doppelte
Serie von Merkmalen in ungefähr gleicher Zahl iu der Nachkommenschaft
auftritt. 3. Latency due to hypostasis. Die Gegenwart eines Paarlings kann
nicht bemerkt werden, weil ein anderer Paarung vorhanden ist, der durch den
ersteren nicht in seiner Erscheinungsform modifiziert wird. So verdeckt die
schwarze Farbe einer Bohne den wohlgetrennt vorhandenen Charakter braun.
Der Ausdruck „Dominanz" sollte eigentlich nur gebraucht werden für die Be-
ziehung eines positiven Merkmales zum Fehlen desselben Merkmales. Wenn
aber ein positives Merkmal über ein anderes positives dominiert, so ist das
letztere latent durch Hypostasis in dem Individuum, das den ersteren besitzt.
4. Latency due to fluetuation. Sehr häufig verschwinden Merkmale durch
schlechte Ernährung usw. Kultur unter günstigen Bedingungen lässt sie
wieder hervortreten, und diese Tatsache mag zum Teil der Grund für den
allgemeinen Eindruck sein, dass Kultur die Variation begünstigt.

47] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 401

Viele Unstimmigkeiten zwischen theoretisch geforderten und empirisch
gewonnenen Erblichkeitsverhältnissen sind auf Latenz von Merkmalen zurück-
zuführen.

167. Steffen, Th. Histologische Vorgänge beim Veredeln ins-
besondere bei Oculationen und Copulationen. Diss.. Würzburg, 1908,
lil pp., 15 Taf., 80.

Besprechung siehe „Anatomie der Gewebe".

168. Strampelli, N. Esperienze di selezione e di ibridazione sul
frumento e sul grantureo. (Rend. Accad. Line. Roma, XVI, 1907, p. 135
bis 142.)

In dem Bestreben, geeignete und ergiebige Getreidesorten zu gewinnen,
welche den klimatischen und anderen Anforderungen genügen sollten, unter-
nahm Veit', einige Auslese- und Hybridisationsversuche.

Die exotischen Getreidesorten, in Italien eingeführt, unterliegen häufiger
dem Getreideroste als die einheimischen. Unter den letzteren ist das Getreide
von Rieti besonders widerstehend: es zeigt aber dafür eine starke Neigung
zum Lagern. Die Ursache davon findet Verf. in dem anatomischen Bau des
Halmes. Die Gefässbündel des Rietigetreides sind schmächtig, in geringer
Zahl vorhanden und nur in einer einzigen Reihe gestellt, während bei anderen
•Sorteu bedeutend kräftigere Bündel in einer grösseren Anzahl, daher auch in
zwei Reihen abwechselnd gestellt, vorkommen.

Verf. versuchte eine Auslese der Körner und eine Zucht nach Halletts
Methode, aber die so herangezogenen Pflanzen waren sehr stark vom Roste
befallen, während die umgebenden Getreidepflanzen davon ganz unversehrt
blieben. In dem nächstfolgenden Jahre wurden die Auslesepflanzen dichter
gesäet und sie blieben vom Pilze auch verschont, aber sie lagerten noch immer.

Von 1904 wurde das Hybridisationsverfahren eingeleitet. Innerhalb
dreier Jahre wurden viele Bastarde erzielt: bei 281 derselben wurde das Rieti-
getreide 125 mal als männlicher und 144mal als weiblicher Eaktor benützt;
12 andere Hybriden wurden ohne Rietigetreide vorgenommen. Über die
näheren Erfolge wird erst die Zukunft lehren. Es wurde aber beobachtet,
dass bei Kreuzung von Rieti mit Sorten, welche dem Lagern gegenüber wider-
standsfähig sind, ein Hybrid erzielt wurde, der mehr und stärker entwickelte
Gefässbündel in den Halmen aufweist.

Versuche, das Getreide mit Pollen des Lolchs und von Mais zu belegen,
schlugen fehl. Über Hybridisierung von Oucuruz mit einigen im Lande

kultivierten Maissorten ist nur ganz weniges mitgeteilt. Solla.

169. Strasburges Eduard. Apogamie bei Marsüia. (Flora, XCVI1 [1907],
p. 123—191, T. 3—7.)

170. Strasburger, Eduard. Über die Individualität der Chromo-
somen und die Pfropfhybridenfrage. (Jahrb. Wisseusch. Bot., XLIV
11907], p. 482—555, t. 5-7.)

Auf diese Arbeit, die eine grosse Menge cytologischer Details bringt,
soll hier nur eingegangen werden, soweit sie allgemeine Resultate über die
Frage der Pfropfhybriden und verwandte Probleme enthält. Für die Frage
des Verhaltens der Kerne bei den Pfropfhybriden sind die Untersuchungen von
Xemec an Keimwurzeln von Pisum und die daraus gewonnenen Anschauungen
von Wichtigkeit. Diese Wurzeln wurden chloralisiert, wodurch die Bildung
von Teilungswänden der Zellen unterbrochen wurde: die schon gebildeten
Tochterkerne vereinigen sich bei dann erfolgender weiterer Kultur zu einem
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt, [Gedruckt 3. 2. 1". 26

402 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [4y

Kern mit der doppelten Chromosomzahl. Diese Doppelkerne verschwinden
allmählich wieder; Nemec glaubte annehmen zu dürfen, dass eine autoregula-
tive Reduktion der Chromosomenzahl erfolgt. Das wäre für die Pfropfhybriden-
frage von besonderem Wert; bei ihren Kernen müsste man die doppelte
Chromosomenzahl der normalen erwarten, während in der Tat nur die einfache
vorhanden ist; es liegt nur nahe, eine ähnliche Reduktion wie bei den anomalen
Doppelkernen von Pisum anzunehmen. Strasburger studierte nun die Vor-
gänge an chloralisierten Wurzels23itzen an den gleichen Objekten wie Nemec
lind stellte fest, dass Reduktionsteilungen nach Art der heterotypischen in den
Wurzeln nicht vorkommen; vielmehr besteht die Meterzahl der „syndiploiden*
Kerne (mit der doppelten Chromosomenzahl der normalen) in den chloralisierten
Wurzeln fort und geht in ihr Dauergewebe über. Somit kommen diese Fälle
nicht als Stütze für die Annahme des Bestehens von Pfropfhybriden und für
die Erklärung des Verhaltens ihrer Kerne in Betracht. Letzteres, das nicht
den Erwartungen entspricht, wurde z. B. für den als typisch angesehenen
Pfropfbastard Cytisus Adami untersucht. Die Vegetationspunkte von Cytisus
Adami hatten, auch wenn sie ganz typischen Sprossen der Hybride angehörten,
nicht die doppelte, sondern dieselbe Chromosomenzahl wie die Vegetations-
punkte von Cytisus vulgaris und C. purpurens.

Der am besten untersuchte Fall eines Pfropf bastardes ist der der Kreuzung
von Mespilus germanica und Crataegus monogyna, über den Noll einen aus-
führlichen Bericht veröffentlichte (vgl. Ref. 119 [1906]). Aber auch demgegen-
über kann Verf. seine Bedenken noch nicht fallen lassen. „Ich meine," sagt er,
„dass diese Zweifel berechtigt bleiben, so lange als für das Zustandekommen
von Pfropfhybriden nur nachträglich gemachte Wahrnehmungen angeführt
werden können, so lange es in einem Worte nicht gelang, Pfropfhybride will-
kürlich hervorzubringen und in ihrer Entstehung zu verfolgen." Es lässt
sich vorstellen, „dass ursprünglich ein Bastardreis auf die Unterlage veredelt
worden sei, und wenn man auch Noll darin beipflichten mag, dass es nicht
eben wahrscheinlich erscheint, dass ein solcher in eine normale Mispel zurück-
schlug, so könnte immerhin eine solche Mispel einer zweiten Veredelung an
der Basis des Bastards, der dann bis auf die Veredelungsstelle zurückgeschnitten
worden wäre, ihren Ursprung verdanken. Das mag unwahrscheinlich seinT
lässt sich nicht erweisen, ist aber sicherlich nicht ganz ausgeschlossen. Da
der Stamm von Bronvaux an der Stelle, welche die Mischzweige trägt, über
100 Jahre alt ist, so bleibt das, was sich an ihnen einst ereignete, für immer
der Prüfung entzogen." Ähnliche Fälle wie der Cytisus Adami finden sich bei
Citrus, nämlich die sogenannten Bizzarien, denen der letzte Abschnitt der
Arbeit gewidmet ist. Die betreffenden Bäume („Bizzaria") tragen Früchte
verschiedener Formen, Orangen, Cedraten, Citronen nebeneinander, oder es sind
sogar die einzelnen Früchte aus verschiedenen Teilen zusammengesetzt. Verf.
verfolgt die Geschichte der Bizzarien und beschreibt die typischen Fälle.
Alles spricht dafür, dass hier keine Pfropf bastarde vorliegen, sondern dass die
Bizzarien sexuellen Ursprunges sind.

171. Strasburger, Eduard. Chromosomenzahlen, Plasmastrukturen,
Vererbungsträger und Reduktionsteilung. (Jahrb. Wissensch., Bot.,
XLV [1908], p. 479—570.)

172. Suttou, Arthur W. Brassica Grosses. (Journ. Linn. Soc, XXXVIII,
[no. 267] [1908], p. 337—349, T. 24-35.)

Verf. führte eine grosse Anzahl von Kreuzungen mit Formen von Kohl

491 K. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 403

und Kohlrübe aus; seine Aufgabe war dabei, festzustellen, welche Varietäten
von Brassica Kreuzungen eingehen, ferner welchen Ursprung die wichtigsten
Formen von Kohlrüben und Rüben haben, besonders ob die gelben und weissen
Sorten von gleichem Ursprung sind, endlich überhaupt die Beziehungen der
kultivierten Kohlformen zueinander etwas aufzuklären. Die Pflanzen wurden
im Freien kultiviert; die Blüten, die mit fremden Pollen belegt werden
-ollten, wurden vor dem Reifwerden der Staubblätter kastriert und in Papier
eingeschlossen. Ebenso wurden die Pollenblüten eingeschlossen, um eine
Mischung des Pollens mit fremdem Blütenstaub hintanzuhalten. Die wich-
tigsten Resultate sind die folgenden: 1. Rassen und Varietäten von Brassica
oleracea L., wie Kopfkohl, Kohlrabi, Blätterkohl (Cabbages, Kohl Rabi, Thou-
-ar.d-headed Kaie) bastardieren leicht; die resultierenden Pflanzen zeigten einen
Mischlingscharakter, anders als die Eltern; es scheint, dass die Formen, die
man jetzt in den Gärten antrifft, mehr das Ergebnis fortgesetzter Selektion
als das Produkt von Kreuzungen sind. 2. Formen von Brassica oleracea L.
(die stets und in jedem Stadium kahle Blätter haben) bastardieren nicht mit
solchen von Turnips (Brassica Rapa L.), Kohlrüben (Swede Turnips, Brassica
campestris L. var. Napobrassica DG.), oder mit verschiedenen Formen von
Rübsen (oil-yielding Rapes), die alle in der Jugend behaarte Blätter haben.
3. Keine Rübsenform zeigte kahle Blätter. 4. Rübsen, Turnips und Rüben
(Swedes) bastardieren leicht untereinander. Die Pflanzen, die aus der Kreuzung
von (behaartem, grünblätterigem) Turnip mit (behaarter blaugrünblätterigei)
Kohlrübe (Swede) entstanden, waren steril. Turnip und Swede-Turnip sind
ohne Zweifel spezifisch verschieden. „Ragged Jack Kaie" und „Asparagus
Kaie' bringen fruchtbare Bastarde. Alle haben in der Jugend blaugrüne be-
haarte Blätter. 5. Der sogenannte hybride gelbwurzelige Turnip kann nicht
aus einer Kreuzung von Swede und Turnip hervorgegangen sein. (i. Die Be-
ziehungen zwischen weissen und gelben Rüben (bei Turnips und Swedesj sind
noch nicht aufgeklärt. 7. Manche der Kreuzungen und ihrer Nachkommen-
schalt zeigen einfache Mendelsche Beziehungen: in der zweiten Generation
sind aber doch bei den Spaltungen manche Punkte vorhanden, die noch nicht
völlig aufgeklärt sind; es handelt sich um das Auftreten neuer Merkmale, wie
neuer Farben und Veränderung in der Blattform. Der anscheinend unter-
scheidende Charakter der ..Fleischigkeit" der Wurzeln bei Selektionsformcn
tritt in der ersten Generation stark zurück; sein Auftreten kann leicht mit
kräftigerer Stammbildung verwechselt werden. Er kommt aber in der zweiten
Generation verstärkt wieder, wenn auch bei keiner Pflanze in gleichem Masse
wie bei den Eltern.

173. Timpe, H. Der Geltungsbereich der Mutationstheorie und
die Einwände der Biometrika. (Verh. Nat. Ver. Hamburg, Dritte Folge,
XIV, 1906 [1907], p. H9— 1S2.)

Verf. zeigt im Sinne der De Vriesschen Mutationstheorie die Unzu-
länglichkeit der Selektionslehre für die Entstehung neuer Formen und gibt eine
Darstellung der Mutationstheorie. Dieser haben die Biometriker vorgeworfen,
dass sie die Einwirkung der Einflüsse der Ahnen vernachlässigt. De Vries
wollte aber nur experimentell arbeiten, ohne historische Vermutungen hinein-
zuziehen.

Die biometrischen Arbeiten haben grossen Wert bei der Erforschung
der individuellen Variabilität und bei der Erforschung des Geltungsbereiches
der Men deichen Regeln. „Für die Beurteilung der Entstehung neuer Arten

26

404 ''■ Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [5Q

auf dem Wege der Mutation dagegen scheint die Biometrika zu versagen, da
die physiologischen Faktoren bei ihrem in erster Linie messenden Vorgehen
nicht zu ihrem Rechte kommen. Die Mutationstheorie begründet ein experi-
mentelles Studium der Entstehung der Arten und wird nach Klarstellung der
ursächlich wirkenden Faktoren eine Handhabe zur Beeinflussung der Muta-
bilität der Organismen bieten."

174. Tischler, G. Weitere Untersuchungen über Sterilitäts-
ursachen bei Bastardpflanzen. (Ber. D. Bot. Ges., XXV [ 1907], p. 376
bis 383.)

Eine vorläufige Mitteilung, der eine ausführliche Arbeit folgte (Ref. 175).
Am Schluss eine Aufzählung von 18 „Thesen", die die theoretische Quint-
essenz der Untersuchungen geben.

175. Tischler, G. Zellstudien an sterilen Bastardpflanzcn.
(Archiv für Zellforschung, I [1908], p. 33—151.1

Der erste Teil der Arbeit berichtet von der Entwickeln ng des sporogenen
Gewebes bei sterilen Pflanzenhybriden, und zwar aus den Gattungen Mirdbilis,
Potciäilla und Syringa. Auf die cytologischen Einzelheiten der ausführlichen
Darstellung kann an dieser Stelle nicht eingegangen werden, sie gehören in
ein anderes Kapitel; es soll nur das allgemeine Resrdtat erwähnt werden,
dass kein morphologisch gesicherter Unterschied zwischen Bastard und Eltern
bei der Pollenbildung besteht, und dass die Art der Sterilität nichts Spezifisches
für den Bastard ist.

Die allgemeinen Folgerungen zieht Verf. im zweiten Teil der Arbeit; die
wichtigsten Resultate hatte er schon vorher in Form einer Anzahl von Thesen
veröffentlicht (vgl. Ref. 174). „Die Sterilität wird dadurch bedingt, dass zwei
Sexualzellen zusammengetreten sind, die eine nicht identische Entwickelungs-
richtung oder -teudenz besitzen. Einige Mal wird der bei der Fusion aus-
gelöste Anreiz zu gering, andere Male wieder zu gross, vor allem aber niemals
so ausgeglichen sein, dass der ganze Ablauf einer normalen Ontogenese gut
gelingt.

Beim Eintritt des Individuums in den besonders „kritischen" Zeitpunkt
der generativen Phase wird sich dann die starke „Harmoniestörung" auch
äusserlich dokumentieren.

Dieser nicht normal angepasste „Stimulus" zur Weiterentwickelung kann
möglicherweise, wenn wir überhaupt eine Erklärung versuchen wollen, darin
seinen Grund haben, dass — im Sinne von R. Hertwig und seiner Schule —
nicht aufeinander „angepasste" Kern- und Piasmaniengen zusammentreffen, so
dass die normale Kernplasmarelation nicht völlig erreicht wird. Die Haupt-
sache wird aber nicht in der rein quantitativen, sondern in der qualitativen
Verschiedenheit der copulierenden Zellinhalte liegen". In diesen Sätzen ist
die Grundanschauung, die in der Arbeit zum Ausdruck kommt, enthalten. Die
Plasmaqualitäten, die bei der Befruchtung zusammen kamen, stimmen nicht
zueinander, darum zeigt der Bastard Unregelmässigkeiten, die besonders in der
kritischen Periode der Bildung der Geschlechtszellen sich bemerkbar machen
und Sterilität veranlassen. Auch sonst sind solche Unstimmigkeiten in der
vegetativen Periode vorhanden, z. B. das Luxurieren, die zu starke Üppigkeit
einzelner Teile der Bastarde, die häufig zu beobachten ist; hier kann man an
eine Art Giftwirkung der qualitativ verschiedenen Plasmaarten denken, die zu
vergleichen ist mit der Wirkung zu nahe verwandter Plasmaqualitäten aufein-
ander bei der Inzucht. Jedenfalls ist eine Erklärung der Sterilität bei den

51] R- Pilger: Entstellung der Arten, Variation und Hybridisation. 4Q5

Bastarden nicht in der Unverträglichkeit der Chromosomen bei der Reduktions-
teilung (.Repulsion) zu suchen (Hacker usw.). Die Reduktionsteilungen ver-
liefen überhaupt in den untersuchten Fällen mehr oder weniger normal und
die Sterilität begann erst nachher bei der Bildung der Pollenzellen, die kein
genügendes Plasma aufwiesen. Diese Plasmaarmut ist nicht auf ungenügende
Ernährung zurückzuführen, denn „wenn die Möglichkeit der Weiterentwicke-
ln ng des sporogenen Gewebes in der Richtung der Ontogenese läge, würde
der Nährstrom zu den Antheren schon hingeleitet werden." Die Sterilität
liegt, wie oben erwähnt, in der Xatur des Bastardes begründet. Von dieser
Anschauung aus macht Verf. einen Excurs auf das Gebiet der Pangene und
Erbsubstanzen ; er kommt naturgemäss zur Ablehnung der Annahme, dass die
einzelnen Merkmale an distinkte, räumlich getrennte ., Pangene" gebunden sind.
„Wir haben es bei dem Keimplasma nicht mit extensiven, sondern mit in-
tensiven Mannigfaltigkeiten im Sinne von Driesch zu tun."

Die von Hacker u. a. vertretene Hypothese der Chromosomenrepulsion
ist auch zur Erklärung der Mendelschen Spaltungen herangezogen worden;
man dachte sich die Abtrennung der einzelnen Merkmalsträger während der
Reduktionsteilung vollzogen. Nun kennen wir aber solche Merkmalsspaltungen
auch in vegetativen Organen (Knospenvariationen usw.), wo keine Reduktions-
teilungen nachgewiesen sind. Ferner kann in Gameten, die in bezug auf ein
bestimmtes Merkmal ganz rein sein sollen, doch wieder das abgespalten geglaubte
sich zeigen (Kryptomerie). Endlich können auch Eigenschaften mendeln, für
die distinkte Erbsubstanzträger nicht angenommen werden können (Einjährig-
keit und Zweijährigkeit bei Hyoscyamus nach Oorrens). Trotzdem hält auch
Verf. dafür, dass die Reduktionsteilungen für die Mendelschen Spaltungen
die entscheidenden sind, nur darf die Erklärung nicht rein mechanisch in dem
Fortschaffen ganzer Chromosomen gesehen werden. Zum Schlüsse weist Verf.
auf die Ähnlichkeit mutierender Pflanzen mit den Bastarden in bezug auf die
Pollenbildung hin; das gemeinsame ist in beiden Fällen die Störung der Kon-
stitution des Idioplasmas. Gerade viele apogame Pflanzengruppen lassen eine
kürzlich vergangene Mutationsperiode vermuten und es ist bei ihnen anzu-
nehmen, dass die Apogamie das Sekundäre ist und durch die bei der Mutation
entstandene Sterilität des Pollens verursacht wurde, sich als Aushilfe bei der
Mutation und Sterilität des Pollens eingestellt hat. Endlich bestehen nahe
Beziehungen zwischen der Sterilität bei Bastarden und der bei Kulturpflanzen
(Banane, Zuckerrohr). Diesen Fällen will Verf. weitere Untersuchungen
widmen.

176. Tropea, Calcedoniu. La variazione della Bellis perennis in rap-
porto alle sue condizioni d'esistenza. (Mlp., XXI. 11)07, p. 276 — 283.)

In Fortsetzung der von Ludwig (1898) und später von Helguero (190-i)
mitgeteilten Variationskurven der Zungenblüten des Gänseblümchens unter-
nahm Verf. ähnliche Zählungen an verschiedenen Standorten innerhalb der-
selben Region, in zwei aufeinanderfolgenden Jahren und zu verschiedenen
Zeiten. Die Standorte waren: Die Wiese (mesophiler Typus), ein Wäldchen
(nemoraler Typus), eine na^se Wiese (hygrophiler Typus): alle drei bei Padua;
ferner am Strande von Fusina bei Venedig (halophiler Typus), und ein Haus-
hof in einer Wiese bei Este (xerophiler Typus). Aus den 1Ü9.~>4 abgezählten
Blütenständen werden für jeden Standort, in den Jahren 1905 und 1906, die
Mittelwerte angegeben. Daraus schliesst Verf.. dass nicht die Jahreszeit allein,
sondern auch der Standort auf die genannten Verhältnisse einen Einfluss aus-

406 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [52

übe. Der Einfluss des Standortes prägt sich nicht allein in der Zahl der
Randblüten, sondern auch in der Länge des Stieles und in der Grösse des
Köpfchendurchmessers aus. Trockene und sonnige Standorte fördern die Ent-
wickelung; an nassen und schattigen Standorten bleibt die Pflanze niedrig und
entwickelt weniger Zungenblüten. Die Jahreszeit bewirkt eine zunehmende
Förderung in der Entvvickelung der Pflanze bis zu einem Maximum, von dem
ab diese wieder abnimmt. Diese Wirkung erfolgt in gleicher Weise an jedem
Standorte. Auch die Verteilung von Niederschlägen und der Temperatur-
medien während des Jahres bedingen einen Einfluss. Die Region übt eben-
falls, aber einen mehr gleichförmigen Einfluss aus. Das Durchschnittsmittel
für das vom Verf. gewählte Gebiet steht zwischen jenem von Deutschland
und von Rom, ist aber mehr jenem als diesem genähert, entsprechend der
Gesamtheit der Vegetationsbedingungen, welche jenen Süddeutschlands ähn-
licher sind. — Ähnliche Zählungen bei Palermo vorgenommen, ergaben einen
mittleren Wert, der ungefähr um zehn höher ist als das von Helguero für
Rom angegebene Mittel. Solla.

177. Tropea, ('. Di una maniera di semplificare la costruzione
dei poligoni empirici di frequenza. (Contr. Biol. Veg., IV [1908], p. 195
bis 203.)

178. Tschermak, E. The importance of hy bridisation in the study
of descent. (Rep. 3. Int. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 278
bis 284.)

Vgl. J. J., 1900, Ref. 107.

179. Tschermak, Erich. Die Kreuzungszüchtung des Getreides
und die Frage nach den Ursachen der Mutation. (Monatshefte für
Landwirtschaft, I [1908], Heft 1, Sep. 9 pp.)

Verf. bespricht kurz die Bedeutung der Mendelschen Regeln für die
[iraktische Getreidezucht: dieser Bedeutung ist auch von hervorragenden
Züchtern noch nicht genug Rechnung getragen worden. Dann erwähnt er die
von ihm besonders studierte Kryptomerie bestimmter Rassen und im Anschluss
hieran das Problem der Ursachen der Mutation. Er glaubt, dass alle die
einzelnen bisher bekannten Faktoren, welche die plötzliche Manifestation neuer
fertiger Merkmale veranlassen können, sich unter dem gemeinsamen Gesichts-
punkte zusammenfassen lassen, dass dabei die Wachstumsbedingungen in
irgendeiner Weise alteriert werden. „Wachstumsstörungen oder noch
allgemeiner gesprochen, positive oder negative Anomalien des Wachs-
tums wurden demnach die gemeinsame Ursache für die Manifestation latenter
Eigenschaften, für die sprunghafte Veränderung der äusseren Form, für die
sogenannte Mutation abgeben."

180. Tschnlok, S. Zur Methodologie und Geschichte der Des-
cendenztheorie. (Biol. Centrbl., XXVIII [1908], p. 4—18, 33—51, 73-9l>,
97-117.)

Der umfangreiche Aufsatz geht von dem Gedanken aus, wie es wohl
gekommen ist, dass der Descendenzgedanke vor Darwin nicht durch-
gedrungen ist und worin Darwins Verdienst um seinen Sieg liegt. Die bio-
logische Forschung zerfällt in zwei Zweige, Biotaxie und Biophysik, deren
Wesen zunächst dargelegt wird ; die Methode der Biotaxie ist die vergleichende,
die Methode der Biophysik die experimentelle. Das Verhältnis beider Rich-
tungen zum Descendenzproblem wird nun untersucht. Die Biotaxie liefert für
die Entwickelungslehre ein reiches ßeweismaterial (besonders in der Klassi-

531 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 407

i'ikation, Morphologie und Geographie) durch vergleichende Untersuchung.
Die Biophysik ist in der Lösung des Descendenzproblems der Biotaxie logisch
untergeordnet. Den Unterschied geben kurz folgende Sätze wieder: Die Bio-
taxie beweist, dass die Arten der Tiere und Pflanzen sich entwickelt haben,
erklärt aber nicht, wie dies geschehen ist oder geschehen konnte. Die
Biophysik erklärt, wie sich Arten entwickelt haben können, beweist aber
nicht, dass sie sich wirklich so, oder dass sie sich überhaupt entwickelt
haben.

Das ist das logische Verhältnis der beiden Forschungszweige in ihren
Beziehungen zum Descendenzgedanken. Darauf wird untersucht, wie sich die
Descendenztheorie tatsächlich historisch entwickelt hat. Es zeigt sich, dass
Laniarck mit seinen descendenztheoretischen Spekulationen nicht durch-
dringen konnte, weil er sie nicht auf die Grundlage der Biotaxie stellte,
sondern fast ausschliesslich von biophysikalischen Betrachtungen ausging.
Auch stand ihm zu seiner Zeit nicht das reiche Material in der Biotaxie zur
Verfügung, das Darwin nun in glänzender Art ausnützte, um die Evolutions-
theorie zu beweisen. Somit kann Lamarck nicht als Begründer der Des-
cendenztheorie angesehen werden, da er die Tatsachenreihen, die allem be-
weisend sind, nicht in den Kreis seiner Betrachtungen gezogen hat. Darwin
selbst bat ihn und andere nicht als seine Vorläufer anerkannt. Von dem
Beweismaterial der Biotaxie ging Darwin aus und sie genügen auch, um die
Evolutionstheorie zu erhärten; dann sollten aber biophysikalische Beweise
hinzukommen, um die Zweckmässigkeit in der Organismenwelt zu erklären.
Die Selektionsidee war eine wissenschaftliche Konstruktion zur Beseitigung
teleologischer Anschauungen. Später verknüpften sich bei Darwin Des-
cendenztheorie und Selektionstheorie immer enger und diese Verknüpfung
„war berufen zur methodologischen Erbsünde des Darwinismus zu werden.1*

..Es ist ein für allemal festzustellen, dass zum Beweise der Descendenz
die Tatsachen der vergleichenden Wissenschaft (Biotaxie) herangezogen
werden müssen, und dass allein in jenen Tatsachen der Klassifikation, Morpho-
logie, Embryologie, Geographie und Paläontologie der notwendige und hin-
reichende, der logisch zwingende Beweis für die Abstammung (contra unab-
hängige Entstehung der einzelnen Arten) enthalten ist". „Sämtliche , Vor-
läufer' Darwins gingen von der Biophysik, nicht von der Biotaxie aus und
mussten sich, bei dem damaligen Stand des biophysikalischen Wissens aus-
schliesslich auf spekulativem Gebiet bewegen. Dies betrifft selbst diejenigen
Vorläufer, bei welchen, wie bei Lamarck und Geoffroy Saint-Hilaire
der Begriff der Entwickelung einen realistischen Inhalt hatte. Um so weniger
kommen jene Vorläufer in Betracht, welche die Entwickelung idealistisch auf-
fassen (Oken, vielleicht auch Goethe). Darwin ist und bleibt der einzige
wahre Begründer der gesamten biologischen Entwicklungslehre".

181. Tnrner, J. B. Variation in the corolla of Linaria vulgaris Mi 11.
(Science, N. S., XXV [1907], p. 1003—1004.)

182. Vergttin, L. Un Teucrium hybride nouveau de la section
Poliam Benth. (Bull. Soc. Bot. France, LV [1908], p. 607—611.)

Es handelt sich um Teucrium montanum X T. Polium (X T. castremc
Verguin): der Standort ist: Tarn, Valdurenque pres de Castres. Im Anschluss
an die genaue Beschreibung des Bastards wird eine Aufzählung der anderen
Hybriden gegeben, deren einer Elter T. montanum ist.

408 R- füger: Entstehung der Arten. Variation und Hybridisation. I54

183. Vilmorin, Ph. L. de. Beana luxurians X Zea Mays. (Bull. Soc. Bot.
France, LIV [1907], p. 39—42, t. 1.)

Der in Madagaskar erzeugte Bastard ist Teosinte $ X Mais $. Der
Autor bezeichnet ihn als Beispiel für Xenienbildung. Der Kolben der Ur-
sprungspflanze (als Generation F0 genannt) zeigt eine Mischung der Charaktere^
an den Körnern zeigen sich die Merkmale der Eltern nebeneinander; im
unteren Teil gleichen die Früchte nämlich der Teosinte. im oberen dem Mais..

184. Vilmorin, Philippe de. Hybrids and variations in Wheat.
(Rep. 3. Intern. Oonf. 1900 on Genetics, London [1907], p. 344—369.)

185. Viviaml-Morel. Cytisus Aäami, en greffant le C. purpureus sur le-
C. labumum. (Ann. Soc. Bot. Lyon, XXXII [1907], p. XXXII.)

Erklärung als Pfropf bastard von C. purpureus auf C. Labumum.

Fedde.

186. Vogler, P. Variationstatistische Untersuchungen an den
Blättern von Vinco, minor L. Ein Beitrag zur Theorie des Flächen-
wachstums der Blätter. (Jahresber. St. Gallischen Naturw. Ges , 1907 (1908).
p. 1—31, 9 Fig.)

187. Vogler, P. Variationsstatistische Untersuchungen an den
Dolden von Astrantia major L. (Beih. Bot. OentrbL, XXIV, 1. Abt. [190H|.
p. 1-19.)

Die Ergebnisse der variationsstatistischen Arbeit mit Astrantia-Doldeu,
die in Wengen (Berner Oberland) ausgeführt wurde, summiert Verf. folgender-
massen: „Im vorstehenden habe ich versucht, das von mir ausgezählte Material
nach allen Richtungen zu beleuchten, um dabei namentlich die Vielgipfli^keit
der Kurven und ihre Abweichungen vom Fibonaccitypus durch Herbeiziehen
eines zweiten , Gipfelgesetzes' aufzuklären. Ich bin mir wohl bewusst, dass
dieser Versuch zur Zeit, so lange nicht an anderen Pflanzen ähnliches Ver-
halten nachgewiesen ist, keine grossen Ansprüche machen kann auf eine wirk-
liche Lösung. Immerhin hielt ich es für richtiger, nicht nur die trockenen
Zahlen aufzuführen, sondern trotz aller Schwächen, die der gegebenen Er-
klärung noch anhaften, die Unterordnung des gefundenen unter ein allgemeineres
Prinzip zu versuchen, das nun allerdings noch der Bestätigung durch weitere
Untersuchungen bedarf.

In diesem einschränkenden Sinne sollen also auch die folgenden resü-
mierenden Schlusssätze aufgefasst werden :

1. Die Anzahl der Hüllblätter, Zwitterblüten und die Gesamtzahl dei
Blüten der Dolden von Astrantia major variieren unter Bildung von ein- oder
mehrgipfligen Variationskurven, deren Gipfel auf den Haupt- und Nebenzahlen
der Fibonacci- und der Trientalisreihe liegen.

2. Bei den Kurven der Hauptdolden überwiegt der Fibonaccicharaktei,
bei denen der Nebendolden der Trientalischarakter.

3. Zwischen der Anzahl der einzelnen Organe zeigt sich eine Parallel-
variation.

4. Betrachtet man in einer Korrelationstabelle nur einzelne Reihen, so
ergeben sich reinere Kurven, und je nachdem die , Bestimmungszahl' der
einen oder der anderen Reihe angehört, entsprechen diese mehr dem Fibonacci-
oder Trientalistypus."

188. Voss, W. Über Merkmale normaler Organe in monströsen.
Blüten. 1. h'osa viridifiora. (Ber. D. Bot. Ges., XXV [1907], p. 219—224.)

55] K. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 4Q9

Durch die neueren Bastardforschungen ist eine hohe Selbständigkeit der
einzelnen Charaktere eines Organismus festgestellt worden. Über die Ursachen
der Entfaltung von Merkmalsanlagen in Bastarden oder normalen Rassen ist
wenig bekannt: einzelne Resultate weisen auf den Einfluss der Ernährungs-
bedingungen hin: in vielen Fällen kann aber die Aktivierung einer Merkmals-
anlage keine Funktion der äusseren und inneren Bedingungen sein, sondern
muss durch andere unbekannte Faktoren beeinflusst werden. Verf. untersuchte
vergrünte Blüten der Rosa viridiflora. Bei den Zellen der oberen Epidermis
der Blätter kommen drei Merkmale in Betracht: Form der Radialwände, Aus-
bildung der Onticula und Farbstoffgehalt der Zellen. Diese Merkmale wurden
dann auch bei Laubblättern, Kronblättern (vieler verwandter Arten, da bei
R. viridiflora keine Kronblätter vorkommen) und Staubblättern untersucht.
Es ergaben sich die drei Merkmalspaare: Radialwand ungewellt-gewellt, Outi-
cula glatt-gefaltet, Zellsaft ungefärbt-gefärbt. Jedes der Merkmale kann in
den Epidermiszellen der Blätter der Kronblattkreise von R. viridiflora auf-
treten; es fragte sich nun, ob mit dem Auftreten eines der Merkmale in seiner
vollen Stärke notwendig das eines bestimmten anderen der in Beobachtung
gewonnenen Gruppe verbunden sein müsse. Das ist nicht der Fall, jedes der
Merkmale braucht nicht beeinflusst zu werden durch die Ausbildung der vier
Merkmale der beiden Merkmalspaare, denen es nicht angehört. Es zeigt sich,
„dass Zellen mit all den verschiedenen Kombinationen der sechs ins Auge
e;efassten Merkmale gemischt nebeneinander in den Blättern der äusseren
Blattkreise vorkommen. Wenn also die verschiedenen Merkmalskombinationen
keine Funktion des Einflusses der verschiedenen Merkmalsanlagen aufeinander
sein können, so sind sie es auch nicht, wenigstens nicht absolut, von den die
einzelne Zelle von aussen beeinflussenden Faktoren, da dieselben für zwei
benachbarte Zellen derselben Art kaum als verschieden angesehen werden
können, und eine durch frühere, voneinander abweichende äussere Einflute
auf solche Zellen selbst und auf deren Ahnen in ihnen hervorgerufene ver-
schiedenartige Reaktionsfähigkeit auf denselben Reiz hier auch nicht angenommen
werden kann".

Zu ähnlichen Resultaten gelangte Verf. auch bei Untersuchung der
proliferierten Blüten der ChrysaiitJiemum-Form Waban (derselbe Band, p. 276
bis 286).

189. De Vries, Hugo. Plant-Breeding, comments 011 the experi-
ments of Nilsson and Burbank. Chicago, The open Court publishing Co.,
1907.

Referat: Biol. Centrbl., XXVIII (1908), p. 1—3.

Nach dem Vorwort sind die Ziele des Buches: Unter dem Einfluss der
Arbeiten von Nilsson, Burbank u.a. hat sich das Zuchtwahlprinzip in der
Praxis in demselben Sinne verändert, in welchem sich auch seine Bedeutung
in der Wissenschaft bei der Annahme der Artentstehung durch plötzliche
Mutationen ändert. Die Methode der langsamen Verbesserung der Rassen von
Kulturpflanzen durch wiederholte Auswahl verliert ihre Zuverlässigkeit und
wird ersetzt durch den hohen praktischen Wert der „elementaren Arten",
welche durch eine einzige Auswahl isoliert werden können. Die Erkenntnis
der Bedeutung dieses Prinzips wird ohne Zweifel bald die ganze Gestaltung
der Kulturpflanzenzucht verändern.

Hybridisation ist die wissenschaftliche und willkürliche Vereinigung-
bestimmter Merkmale. Sie bringt keine neuen Merkmalseinheiten hervor, nur

410 R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. |5ß

deren Verbindung ist neu. Von diesem Gesichtspunkte aus stimmen die
Resultate von Burbank u. a. ganz mit der Mutationstheorie überein, die auf
dem Prinzip der Einheitsmerkmale begründet ist.

Diese weitreichende Übereinstimmung zwischen Wissenschaft und Praxis
wird die Grundlage für die weitere Entwickelung sowohl der praktischen
Pflanzenzucht als der Entwickelungslehre bilden. Diesen Satz zu beweisen ist
die Hauptabsicht dieser Essays. (Nach dem Referat von K. Göbel 1. c.)

190. De Vries, Hugo. On twin hybrids. (Bot. Gaz., XLIV [1907],
p. 401—407.)

191. De Vries, Hugo. Über die Zwillingsbastarde von Oenothera
nanella. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa [1908], p. 667—676.)

Bei Kreuzung von Oenothera Lamarckiana mit einer verwandten Art
entstehen manchmal aus derselben Kreuzung zwei verschiedene Bastarde: die
beiden Formen werden als Laeta und Velutina unterschieden. Verf. benutzte
von Oe. Lamarckiana die Mutationsform Oe. nanella; mit ihrem Pollen wurde
Oe- muricata bestäubt. Es entstanden die Laeta- und die Velutina-Form:
erstere blieb durch mehrere Generationen hindurch gleich, bei letzterer
spalteten von der zweiten Generation an regelmässig Zwergformen ab (Oeno-
thera murinella). Über die Zusammensetzung der einzelnen Generationen ist
noch folgendes zu bemerken : Die Zwillingsbastarde (Laeta und Velutina) ent-
stehen ungefähr in gleicher Anzahl; in der ersten Generation treten keine
Zwerge auf. Die Zwerge, die von der zweiten Generation ab bei der Velutina-
Form sich zeigen, machen alljährlich zirka die Hälfte der ganzen Zahl der
Pflanzen aus; sie bleiben in den weiteren Generationen konstant. Zur Er-
klärung dieses Verhaltens dient folgende Annahme, die durch reciproke
Kreuzungen wahrscheinlich gemacht wird:

1. Die Eizellen der konstanten Laeta und der sich spaltenden Velutina
haben Bastardnatur und geben dementsprechend mit Blütenstaub von
Zwergen etwa zur Hälfte hohe Nachkommenschaft und zur Hälfte
Zwerge.

2. Der Blütenstaub der Velutina hat die reinen erblichen Zwergeigen-
schaften.

3. Der Blütenstaub der Laeta hat die erblichen Eigenschaften der hohen
Statur. Diese dominieren über die Bastardnatur der eigenen Eizellen,
sind aber den Eizellen der reinen Zwerge gegenüber rezessiv.

192. Wagner, A. Der neue Kurs in der Biologie. Allgemeine
Erörterungen zur prinzipiellen Rechtfertigung der Lamarckschen
Entwickelungslehre. Stuttgart 1907, Kosmos -Verlag, 96 pp.

193. Wangerin, W. Beobachtungen und Erfahrungen über
Variation und Artenbildung. (Zeitschr. f. Naturwiss. Halle a. S. LXXIX
[1907|, p. 294-299.)

Besprechung der Fockeschen Arbeit in den Abh. Naturw. Ver. Bremen.

F e d d e.

194. Wein. K. Bumex crispus X obtusifolius X sanguineits R. ivippraensis m.
(Allg. Bot. Zeitschr., XIV [1908], p. 73—74.)

Beschreibung des Tripelbastardes, der im Tale der Alten Wipper am
• ■irmeskopfe gefunden wurde.

195. Went, F. A. F. C. Über Zwecklosigkeit in der lebenden
Natur. (Biol. Oentrbl., XXVII [1907], p. 257-271.)

57 1 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 41 1

Durch den Darwinismus ist die Zweckmässigkeitslehre besonders in Auf-
nahme gekommen, da nur nützliche Variationen im Kampf ums Dasein erhalten
bleiben, also jedes Gebilde eine bestimmte Funktion haben muss. Zunächst
gibt Verf. einige Beispiele von voreiligen Schlüssen, die Zweckmässigkeit von
Strukturen betreffend; häufig ist diese einfach aus der Struktur gefolgert
worden ohne praktische Beobachtung der Tatsachen. So bei den geflügelten
Früchten der Dipterocarpaceae, die anscheinend eine ausgezeichnete Anpassung
an die Verbreitung durch Luftbewegung darstellen ; nun haben die Unter-
suchungen Ridleys gezeigt, dass diese Bedeutung sehr gering ist. Ferner
sind besonders bei der Deutung der Anpassung von Pflanzen an Ameisen
voreilige Schlüsse gezogen worden. Am ausgeprägtesten ist die Forschungs-
richtung, die überall nach Zweckmässigkeit sucht und meist aus der Struktur
die Zweckmässigkeit folgert, in der physiologischen Pflanzenanatomie ent-
wickelt. Nun zeigt Verf., dass es auch zwecklose oder unzweckmässige
anatomische Strukturen, wie überhaupt solche Einrichtungen im Pflanzenreich
gibt. Ein Beispiel von vielen, die sich leicht der aufmerksamen Beobachtung
darbieten : Bei Oenothera biennis findet die Bestäubung innerhalb der geschlossenen
Knospe statt, meistens morgens oder früh mittags, erst gegen Abend öffnet
sich die Knospe, die hellgelbe Blumenkrone entfaltet sich; viele Abendfalter
werden von dieser, sowie von dem Duft angezogen, sich des abgeschiedenen
Honigs zu bemächtigen, aber die ganze Einrichtung ist vollkommen zwecklos,
denn die Bestäubung hat schon lange stattgefunden. Wenn man sich also
auf den Zweckmässigkeitsstandpunkt überhaupt stellt, wird man viele zweck-
lose und unzweckmässige Einrichtungen finden: aber dieser Standpunkt muss
eben von der biologischen Forschung verlassen werden. Hierin ist Verf. in
Übereinstimmung mit der Mutationstheorie; nach dieser Theorie sind die
Mutationen regellos und es können sich auch zwecklose und unzweckmässige
Variationen erhalten, wenn sie nicht allzu schädlich sind. Die Natur ist
zwecklos, meint der Verf.: „Wenn ich hier auf die Gefahren einer teleologischen
, Erklärung' der lebenden Natur hingewiesen habe und dafür auch einige Fälle
von Unzweckmässigkeit genannt habe, so ist das immer geschehen vom Stand-
punkt derjenigen aus, welche an einen Zweck in der Natur glauben. Mir war
es darum zu tun, an diesem Glauben etwas zu rütteln, denn meiner Meinung
nach haben wir eben die Natur als zwecklos anzunehmen, wenigstens so lange
wir uns mit wissenschaftlicher Arbeit beschäftigen. Der Dichter oder der
Romanschreiber mag tun was er wünscht, in der Naturwissenschaft wird man
alle dergleichen Deuteleien beiseite lassen müssen."'

196. Wettstein, R. von. Über sprungweise Zunahme der Fertilität
bei Bastarden. (Wiesner-Festschrift [1908], p. 368—378.)

197. Wettstein, R. v Welche Bedeutung besitzt die Individual-
züchtung für die Schaffung neuer und wertvoller Formen? Referat,
erstattet auf dem landwirtschaftlichen Kongresse in Wien (Mai 1907). (Östr.
Bot. Zeitschr. [1907], No. 6, 5 pp.)

„Für die wissenschaftliche Erforschung der bei der Neubildung von
Formen eine Rolle spielenden Vorgänge ist Individualzüchtung unbedingt nötig
und der verlässlichste Weg zur Gewinnung einwandfreier Resultate. Für den
praktischen Vorgang der , künstlichen Züchtung' neuer Formen ist Individual-
züchtung gleichfalls von grosser Wichtigkeit, doch darf ihre Bedeutung nicht
einseitig übertrieben werden. Individualzüchtung wird notwendig sein bei
Gewinnung neuer Formen durch Mutation und durch Kreuzung, sie wird von

412 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. [5g

geringerer Bedeutung sein, wenn es sich um Erzeugung von Rassen durch
direkte Be Wirkung handelt."

198. White, Charles A. The aggregate Origination of Parasitic
Plants. (Americ. Natural., XLII [1908.1, p. 98—108.)

199. White, Charles A. Aggregate mutation of Gossypium. (Science
N. S., XXVII |1908]. p. 192.)

Verf. weist kurz darauf hin, dass 0. F. Cook in seinem Bericht an das
U. S. Department Agriculture Massenänderungen von Varietätscharakteren bei
Baumwolle beschrieben hat; einige dieser Änderungen stehen mit Standorts-
änderungen im Zusammenhang, andere nicht.

Ähnlich sind die Mutationen bei der Tomate, wie sie Verf. aufgefunden
und schon früher beschrieben hat (1905).

200. Willis, J. C. Some Evidence against the Theory of the
Origin of Species by Natural Selecti on of infinitesimal variations,
and in favour of Origin by Mutation. (Ann. R. Bot. Gard Peradeniya.
IV [1907], Pt. i, 15 pp.)

Verf. wendet sich gegen die Darwinsche Selektionstheorie, nach der
neue Formen durch Akkumulation kleiner Variationen entstehen sollen und
glaubt in den endemischen Arten von Bergen Ceylons, wie von dem von ihm
speziell untersuchten Ritigala, Zeugen für die Richtigkeit der Mutationstheorie
vor sich "zu haben. Auf ganz beschränktem Gebiet haben sich hier eine Reihe
bemerkenswerter Endemismen ausgebildet.. Als Beispiel führt er neben anderen
Coleus elongatus Trimen aus der Verwandtschaft von ('. barbatus Benth. an.
Beide Arten sind so stark durch morphologische Merkmale verschieden, dass
man nicht einsehen kann, wie sie durch kontinuierliche Variation sich ausein-
ander entwickeln konnten. Auch können diese Unterschiede nicht auf klima-
tische Einflüsse usw. zurückgeführt werden, da sie zu ihnen in keiner Be-
ziehung stehen; ebensowenig aber auch auf den Kampf ums Dasein, zumal
auch beide Arten nebeneinander vorkommen und C. elongatus die andere Art
nicht unterdrückt hat. Es bleibt nur die Annahme einer Entstehung durch
Mutation oder diskontinuierliche Variation übrig. Dieselben Argumente gelten
für die anderen Endemismen. Bei den vielen Endemismen Ceylons müsste
man nach Darwins Theorie annehmen, dass ihre besonderen Charaktere für
sie nützlich wären und sie daher eine grosse Verbreitung hätten: dies ist nun
aber durchaus nicht der Fall; die meisten Endemismen sind selten und auf
kleine Wohnbezirke beschränkt.

201. Williston, S. W. What is a species? (Am. Nat., XLII [Ap. 190S],
p. 184—195.)

202. Wilson, John H. infertile Hybrids. (Rep'. 3. Intern. Conf. 1906
on Genetics, London [1907], p. 183—209.)

Beschreibung unfruchtbarer Bastarde aus den Gattungen Digitalis, Passi-
flora, Begonia, Pelargonimn, Centaurea, Brassica, Bibes, Bubus.

203. Winkler, Hans. Parthenogenesis u nd Apogamie im Pflanzen-
reich. Progressus Rei Botanicae, herausgeg. von Dr. J. P. Lotsy, II, 3. Helt
(1908).

204. Winkler, Hans. Über Pfropf bastarde und pflanzliche Chi-
mären. (Ber. Deutsch. Bot. Ges., XXV [1907], p. 568—576.)

Strasburger hatte treffend bemerkt, dass die Zweifel an der Existenz
von wirklichen Pfropfbastarden so lange berechtigt sind, als man sie
nicht hervorgebracht und in ihrer Entstehung beobachtet hat. Verf. suchte

59] R- Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. 443

nun Pfropfhybriden herzustellen, dadurch, dass er Pflanzen veranlasste aus der
Verwachsungsstelle von Reis und Unterlage Adventivsprosse zu bilden. So
hat man sich ja auch z. B. die Entstehung von Cytisus Ädami gedacht. Als
geeignete Objekte für die Versuche erwiesen sich Solanum- Arten. Ein decapi-
tierter Spross von S. lycopersicum bildet zahlreiche Regenerationssprosse aus
der Querschnittfläche, wenn die sonstigen Knospen regelmässig entfernt werden.
Auf S. lycopersicum wurde z. B. S. nigrum und andere Arten aufgepfropft und
es handelte sich nun darum, Adventivsprosse aus den Verwachsungsstellen
der beiden Pflanzen zu erhalten. Es gelang dies bei einem Exemplar von
>'. lycopersicum „Gloire de Charpennes", das mit einem Spross von ij. nigrum
nach der Keilpfropfmethode verbunden war. Aus einer Verbindungsstelle er-
wuchs ein Spross, der links von einer ihn ziemlich genau halbierenden Mittel-
linie reine Tomate, rechts von ihr reiner Nachtschatten war. Geht die Trennungs-
linie durch ein Blattprimordium hindurch, so sind die Blätter aus Nigrum- und
Lycopersicum -Gewebe zusammengesetzt. Verfasser nennt diesen Spross, der ja
auch nicht einem Pfropfbastard wie Cytisus Adami entspricht, eine pflanzliche
Chimäre. Die Entstehung kann nur folgende sein: „Es müssen aus dem Callus,
der die aus lycopersicum- und aus Nigrum-Qewebe bestehende Schnittfläche
überzog, und der ein so einheitliches Gebilde darstellt, dass auch unter dem
Mikroskop die Grenzen zwischen den beiden artfremden Gewebearten schlechter-
dings nicht zu erkennen waren, mindestens zwei nebeneinander liegende Zellen,
eine Xachtschattenzelle und eine Tomatenzelle, zusammen einen Adventiv-
vegetationspunkt konstituiert haben." „Damit ist zum ersten Male in ein-
wandfreier Weise die theoretisch bedeutsame Tatsache sichergestellt, dass auf
anderem als sexuellem Wege die Zellen zweier wesentlich verschiedener Arten
zusammentreten können, um als gemeinsamer Ausgangspunkt für einen Orga-
nismus zu dienen, der bei völlig einheitlichem Gesamtwachstum die Eigen-
schaften beider Stammarten gleichzeitig zur Schau trägt."

205. Winkler, H. Solanum tubingensc, ein echter Pfropfbastard
zwischen Tomate und Nachtschatten. (Ber. D. Bot. Ges. [1908], XXVIa,
p. 595—608, 2 Textfig.)

Verfasser schildert die erfolgreiche Fortsetzung seiner Versuche, auf
experimentellem Wege Pfropfbastarde zu erzeugen, welche schon früher zur
Entdeckung der pflanzlichen Chimäre geführt hatten. In der damals geschilderten
Weise wurde Solanum lycopersicum („König Humbert, gelbfrüchtig" ) auf Solanum
nigrum mittelst Keilschnittes gepfropft und nach der Verwachsung an der
Pfropfstelle wieder derart dekapitiert, dass die apicale Schnittfläche teils aus
Nigrum-, teils aus Lyopersicum-Gewebe bestand. Unter der Menge der an
solchen Schnittflächen an der Grenze der beiden artfremden Gewebe ent-
stehenden Adventivsprosse befand sich nun einer, der keinem der beiden
Eltern glich. Isoliert zur Bewurzelung gebracht, entwickelte er sich kräftig
weiter, blühte und fruchtete. Es ergab sich, dass er im Aussehen ungefähr
die Mitte zwischen Tomate und Nachtschatten hielt, indem seine einzelnen
Eigenschaften teils mehr dem einen, teils dem anderen Elter zuneigten. So
besass er z. B. die dichte Behaarung und den Geruch der Tomate, näherte
sich aber bezüglich der Form der Blätter, der Blütengrösse und des Aussehen.-*
der Frucht mehr dem Nachtschatten. .

Es kann demnach als sichergestellt angesehen werden, dass diese Pflanze,
•welche Verf. Sola)uuu tubingensc nennt, ein echter Pfropfbastard zwischen den
genannten Solanum-Arten ist. Simon.

414 R. Pilger: Entstehung der Arten, Variation und Hybridisation. \$Q

20<). Worsley, A. Hybrids among the Amarylliae and Cactaceae,
with some notes on Variation in the Gesneraceae and the gen us Senecio.
(Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 405—414.)

207. Yeld, G. Hybrids of Semerocallis. (Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on
Genetics, London [1907), p. 415— 417. )

208. Zavitz, C. A. The breeding of Oats, Barley, and Wheat.
(Rep. 3. Intern. Conf. 1906 on Genetics, London [1907], p. 336—343.)

209. Zederbauer, E. Versuche über Vererbung erworbener Eigen-
schaften bei Cappella bursa pastoris. (Östr. Bot. Zeitschr., 1908, Jahrg. LVIII,
p. 231—236 u. 285-288, m. einer Tafel.)

Die Hauptergebnisse dieser Versuche sind nach dem Verf. folgende :

„Gapsella bursa pastoris ist von Hirten auf den Erdschiasdagh in Ivlein-
asien aus der Ebene verschleppt worden und hat sich dort (in einer Höhe von
2000—2400 m) dem Höhenklima angepasst, worauf der niedrige Stengel und
der xerophile Bau der Blätter hinweist. Die Anpassung ist vermutlich auf
direkte Bewirkung zurückzuführen. In der Kultur im Wiener Botanischen
Garten verlieren die Blätter in den nächsten Generationen den xerophilen
Bau und passen sich den neuen Lebensbedingungen an. Vergrösserung der
Blattfläche, geringere Behaarung, Abnahme der Gesamtdicke des Blattes,
speziell der Cuticula und des Palisadengewebes deuten dies an.

Der Stengel jedoch bleibt in den vier, der Übertragung folgenden
Generationen konstant niedrig oder wird um ein Geringes (1 — 2 cm) höher.
Durch Feuchtigkeit etwas in die Länge getrieben, wird er unter normalen
Verhältnissen wieder niedriger.

Die in der Höhenlage erworbenen Eigenschaften werden von den ver-
schiedenen Organen verschieden festgehalten. Die Assimilations-
organe änderten sich sofort bei Änderung der Lebensbedingungen. Die Fort-
pflanzungsorgane bzw. die mit ihnen im nahen Zusammenhange stehenden
inl'lorescenztragenden Stengel zeigten hingegen ein grösseres Behaarungsver-
niögen und änderten sich wenig oder gar nicht. Simon.

1] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 415

XXIII. Berichte über die pharmakognostische
Literatur aller Länder aus den Jahren 1907 und 1908,

Referent: Dr. Reno Muschler.

1. Abderhalden, E. und Babkin, B. Die Monoaminosäuren des
Legumins. (Zeitschr. f. physiol. Chemie, XLVlf, p. 354 ff.)

Die Verff. hydrolysierten Legumin, das nach der Ritthause tischen
Methode aus weissen Bohnen gewonnen worden war. Der eine Versuch
wurde mit konzentrierter Salzsäure, der zweite mit 25prozentiger Schwefel-
säure gemacht. Beide Versuche führten zu völlig gleichen Ergebnissen. Das
Legumin weist eben den gleichen Aufbau in qualitativer Hinsicht auf, wie
alle bis jetzt bekannten Eiweisskörper.

2. Abel. Über die Fabrikation und Zusammensetzung der
Schiessbaumwolle. Friedländer & Sohn, Berlin 1907, 04 pp.

3. Abrens. Über die Bestimmung von Kolophonium im Schel-
lack. (Zeitschr. f. öffentl. Chem., XIV, 1908, p. 463.)

Das bei der Verfälschung in Frage kommende Material ist Kolophonium.
Das Wesentliche der Verfälschung ist der Prozentgehalt. Als „Rubinlack''
kommen jetzt Gemenge von Schellack und Kolophonium in grossen
Mengen in den Handel. Verf. hat nun genaue und umfangreiche Unter-
suchungen unternommen, um eine Methode der genauen Schelläckuntersuchung
zu gewinnen. Diese Untersuchungen sind noch nicht völlig zu Ende geführt,
lassen aber schon folgende Schlüsse zu : Die Jodzahl von Kolophonium liegt
in ziemlich weiten Grenzen, zwischen 110 und 165, wenn man eine sechs-
stündige Einrichtungsdauer von Jodlösung vorausgehen lässt. Der Kolo-
phoniumgehalt des Rubinlacks lässt sich nur annähernd bestimmen.

Bezüglich der genaueren Einzelheiten muss auf das Original verwiesen
werden.

4. Albabary, J. M. Vollständige Analyse der Frucht von Lyco-
persicum esculentum oder der Tomate. (Compt rend., CXLV, 11)07, p. 131.)

Frische Tomaten enthielten:

Wasser 93,50 o/0

Stickstoffsubstanzen 0,95°/0

Stickstofffreie Substanzen . . 0,20°/0

Fett 0,20%

Kohlenhydrate 3.6

Unlösliche Substanzen .... 1,80

Bezüglich der genaueren Verhältnisse sei auf das Original verwiesen.

416 Berichte über die pharmakognostiscke Literatur aller Länder. \->

5. Albaliary, J. M. Vollständiger Gang der Analyse pflanz-
licher Substanzen. (Chem. Ztg., XXXII, 1908, p. 171 ff.)

Der Verf. gibt folgendes Verfahren an: Wasser und flüchtige Stoffe
werden durch Austrocknen, die Gesamtasche durch Verbrennen im Sauerstoff-
strom bestimmt.

Im Alkoholauszug sind zu determinieren lösliche feste Substanzen,
flüchtige Säuren, Fett- und Farbstoffe, ebenso freie Säuren, Cholesterine und
Lecithine.

In den im Alkohol unlöslichen Teilen finden sich die reduzierenden
Zucker, die Mineralsäuren, der Gesamtstickstoff, Asparagin, Gesamtschwefel,
Proteinstoffe, Nucleine und Albumine, ferner Stärke, Glycoside und Zellulose.

6. Albaliary, J. M. nnd Loeffler, K. Die physiologische Unter-
suchung einiger Alkaloide des Schierlings (Conium maculatum). (Compt.
rend., 1908, p. 996.)

Die Stereoisomerie des d- und 1-Conicins hat keine physiologischen
Verschiedenheiten zur Folge. Pseudoconicin dagegen hat eine weit
schwächere Wirkung als seine beiden Isomerien.

Verff. ziehen sehr interessante chemische und physiologische Schlüsse.

6a. Albo, (i. Die Enzyme und die Keimkraft der Samen. (Arch.
des sciences physiques et naturelles, 1908, t. 25, p. -45 — 52.)

Bekanntlich verlieren die Samen ihre Keimkraft nicht nur nach dem
Eintritt tiefgreifender Veränderungen in ihrer Struktur und Zusammensetzung,
sondern gewöhnlich auch ohne dass solche Veränderungen wahrnehmbar sind
oder überhaupt stattgefunden haben. Der Autor führt nun aus, dass dieser
Verlust des Keimvermögens eng mit den diastatischen Eigenschaften der
Samen zusammenhängt. In den ruhenden Samen ist die Enzymtätigkeit ziem-
lich schwach; im übrigen variiert sie nicht nur mit der Pl'lanzenart und dem
Alter der Samen, sondern aucli mit deren Herkunft und Aufbewahrungsart.
Normale Samen mit hohem Keimvermögen zeigen auch ein sehr hohes diasta-
tisches Vermögen. Mit dem Alter nehmen beide ah. Ist die Keimfähigkeit
verloren, so ist auch das diastatische Vermögen vermindert oder aufgehoben.
Samen mit hohem Keimvermögen verlieren dieses sowie das diastatische Ver-
mögen völlig, wenn man sie einige Stunden in Wasser taucht, das rasch auf
90° erhitzt wird. Samen, die bei einer Temperatur nicht über 30 — 35° all-
mählich ausgetrocknet werden, bewahren ihr Keimvermögen ungeschwächt,
und die Diastasemenge, die sie enthalten, ist fast dieselbe, wie vor der Aus-
trocknung, wenn sie auch nur noch 10 — l-i°/0 Wasser enthalten. Langsam aus-
getrocknete Samen, die einige Minuten den extremen Temperaturen von 100°
oder — 13° ausgesetzt werden, bewahren grösstenteils ihr Keimvermögen nnd
eine diastatische Kraft, die wenig unter der der normalen Samen liegt. Doch
beruht dies wohl weniger auf ihrer eigentlichen Widerstandsfähigkeit, als
darauf, dass sich jene Temperaturen bei der kurzen Versuchsdauer den Samen
nicht genügend mitteilen können. Verweilen der Samen in lauwarmem Wasser
(250) scheint eine leichte Erhöhung des diastatischen Vermögens zu bewirken:
die ersten Keimungsvorgänge sind um so rascher und die Enzymtätigkeit um
so merklicher, je länger das Eintauchen der Samen gedauert hat. Jede Lebens-
äusserung normaler Samen scheint mit der diastatischen Fähigkeit in Ver-
bindung zu stehen, und man kann diese nicht unterdrücken, ohne jene aufzu-
heben. Die äusseren Bedingungen (Wärme, Licht, chemische Einwirkungen)
beeinflussen das Keimungsvermögen und die Enzyme in gleicher Weise.

3] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 41 7

Samen, die keine Enzyme enthalten und nicht imstande sind, solche zu er-
zeugen, haben für immer jede Keimfähigkeit verloren, selbst wenn sie keine
chemische oder strukturelle Veränderung erlitten haben.

7. Alcock, J. H. Einige Drogenpulver. (Pharm. Journ., XXVII,
1908, p. 753.)

Der Verf. bestimmt den Wassergehalt in Drogen so, dass er 1 g Pulver
mit 100 ccm Wasser und 5 Tropfen Chloroform zwölf Stunden lang bei ge-
wöhnlicher Temperatur maceriert.

Dann werden 50 ccm in eine Platinschale gebracht und so lange filtriert,
bis die Gewichtskonstanz fast völlig erreicht ist.

Das Extrakt wird nach dem Wägen geglüht, um den Aschengehalt fest-
zustellen.

Betreffs der genaueren Einzelheiten sei auf das Original verwiesen,

8. Alexander, P. Die Nitrosite des Kautschuks und deren Ver-
wendung für die Analyse von Rohkautschuken und Kautschuk-
waren. (Zeitschr. f. angew. Chemie, XX, 1907, p. 1265.)

Der Autor gelangte zu folgenden Resultaten:

Ein Produkt von der Zusammensetzung Ci0H16C4N.,, d. h. der Web er-
sehe Dinitrokautsch.uk, wird bei den von Weber angewendeten Versuchs-
bedingungen nicht gebildet. Bei Einwirkung von stickoxydreichen Gasen auf
Kautschuk entsteht eine Verbindung, die von dem Harriesschen Nitrosit
Ci0Hi5C7N3 verschieden ist, die Formel C9H1206N2 besitzt und als 5,6-Dinitro-
cyclooten-1-Carbonsäure aufgefasst werden kann. Weich vulkanisierter
Kautschuk verhält sich bei der Einwirkung von Stickstoffdioxyd im Prinzip
genau wie der nicht vulkanisierte Kautschuk. Kautschuksorten der ver-
schiedensten Herkunft zeigen bei der Nitrosierung ein durchaus gleichartiges
Verhalten, weshalb Dimethylcycloostadien als Träger der typischen Eigen-
schaften des Kautschuks anzusehen sind.

9. Andes, L. E. Über das Mastixharz. (Chem. Rev., 1907, p. 190.)
Der Autor beschreibt das Vorkommen und die Entstehung des Mastix-
harzes. Dieses Harz findet jetzt nur noch Verwendung zu feinsten Bilder-
lacken und seltener auch noch zu Polituren.

10. Angelico, J. Die wirksamen Stoffe aus Atractylis gummifera.
(Arch. farmacol., 1907, No. 2.)

Die Früchte der in den gemässigten Zonen ziemlich häufigen Kom-
posite Atractylis gummifera sind ebenso ungiftig, wie die Wurzeln stark
giftig sind.

Dem Verf. gelang es, aus der Wurzel einen weissen, kristallinischen Stoff
zu gewinnen, dessen wirksames Prinzip in die Formel:

C3oH52K2S2C18

passt. Baldriansäure entwickelt sich bei der Hydrolyse mit verdünnten
Säuren oder Alkalien, ebenso eine Pentose und ein beim Abkühlen er-
starrendes Öl.

Von Interesse ist die Reaktion der Substanz gegen konzentrierte
Schwefelsäure. Es entsteht beim Wärmen ein starker Geruch nach Baldrian-
säure. Beim Mischen entsteht zunächst eine weinrote Färbung, die dann rot-
braun wird, dann nach einigen Minuten violett.

Nach wenigen Stunden entsteht unter Absonderung eines violetten
Kristallpulvers Entfärbung, die aber nach Zusatz von H0SO4 wieder aufhört
und der violetten Färbung Platz macht.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (19081 3. Abt. [Gedruckt 6. 2. 11.] 27

418 Berichte über die pharaiakognostische Literatur aller Länder. [4

Als wirksames Prinzip in der Wurzel von Atractylis gummifera ist ein
Glycosid anzusprechen, dessen Aufbau Schwefelsäure, Baldriansäure, eine Pen-
tose und eine bis jetzt noch unbekannte Säure bewirken.

11. Anonym. Zirkular des Zolldepartements, 21. Juli 1906.
No. 17024. Zulassung der Einfuhr von Heilpflanzen.

Die Einfuhr folgender Mittel ist durch Veterinärbeschluss erlaubt: Nähr-
pulver „Pecusin" und die Arzneimittel für Pferde, wie „Liniment geneau
pour les chevaux".

12. Anonymus. Verfälschung von K ampfer. (Maandblaad tegen de
Vervalschingen, 1907, p. 158.)

In der Abhandlung wird gesagt, dass man im Handel oft Kampfer
bekommt, der mit 50°/0 Stearinsäure verfälscht ist. Solcher verfälschter
Kampfer fühlt sich sehr fettig an und ist in 90prozentigem Alkohol nicht
völlig löslich.

13. Anonymus. Medizinische Anwendung der Samen von Cacsah
pinia Bonducella. (Bull. Scienc. Pharmacol., 1908, XV, 1908, p. 110.)

Caesalpmia Bonducella ist eine in den Tropen sehr verbreitete Legu-
minose. Auf den Philippinen werden die Samen als Tonicum und fieber-
widriges Mittel angewendet.

Die Samen werden ähnlich wie Chinin angewendet.

Bezüglich der näheren Angaben sei auf das Original verwiesen.

14. Anonymus. Eine Anti-Opiumpflanze. (Ref. des Centrbl. f. Chemie
u. l'harmacie, 1907, p. 77.)

Eine der Nauclea Gambir Roxb. ähnliche Pflanze soll in China jetzt
mehr und mehr die echte Opiumpflanze zurückdrängen. Die Blätter des Ge-
wächses werden mehrere Tage lang an der Sonne getrocknet und geben dann
eine Teeart, die geeignet ist, die Opiumsucht zu heilen.

Näheres wird über die Species nicht mitgeteilt.

15. Appel, 0. Neuere Untersuchungen über Kartoffel- und
Tomatenerkrankungen. (Bot. Centrbl., 1907, p. 23.)

Im Sommer 1904 traten die sonst gefährlichen Kartoffelkrankheiten, wie
Phytophthora infestans und Schwarzbeinigkeit zurück — wohl infolge der Trocken-
heit — , traten jedoch 1905 in um so grösserer Menge auf. Verf. fand, dass
die Befallzeit und die Krautvernichtung Hand in Hand geht mit der Vege-
tationsdauer. Die frühesten Sorten werden also vom Pilz zuerst befallen. Es
ist von grossem Vorteile, möglichst späte Sorten zu kultivieren, da bei ihnen
die Reifezeit des Pilzes in die kühle Jahreszeit fällt und so oft der Pilz ver-
nichtet wird.

Bezüglich der anderen umfangreichen Angaben sei auf das Original
verwiesen.

Tomaten trugen auch Phytophthora infestans.

16. Archbntt, L. Die Untersuchung reiner algerischer und
tunesischer Olivenöle. (Journ. Soc. Chem. Ind., XXVI, 1907, p. 453.)

Die tunesischen, wie auch die algerischen Olivenöle enthalten nur wenig
Arachin- und Lignocerinsäuren. Wenn sich im Handelsprodukte grössere
Mengen dieser beiden genannten Säuren finden, so müssen diese erst später
von zugesetztem Erdnussöl entstanden sein.

17. Archbutt, L. Über tunesische und algerische Olivenöle.
Der Verf. hat seine früheren Untersuchungen weitergeführt und dann

gefunden, dass sich in echten authentischen Olivenölen niemals Arachin-

5| Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 419

und Lignocerinsäuren fanden. Dem Verf. scheint die Eelliersche
Methode die geeignetste zu sein zum Nachweis in qualitativer Hinsicht,
während sich für qualitative Beweise am schönsten die Methode von Renard
eignet.

18. Arnold, J. H. Die Ausdehnung der Kampferproduktion auf
Formosa. (Daily Consular & Frade Eeport, 1907, No. 2899.)

19. Al'on, II. Studien über die proteolytischen Fermente in
einigen pflanzlichen Nahrungsmitteln. (Biochem. Zeitschr, IX, 1908,
p. 163.)

Proteolytische Fermente treten übereinstimmend auf in Haler,
Gerste und Wicken. In saurer Lösung erweist sich das Ferment des Hafers
am wirksamsten. Schon nach sechs Stunden ist die Verdauung vollkommen
zu Ende geführt. Von diesem Ferment wird auch die Milch in den ver-
schiedensten Formen angegriffen; ebenso eine ganze Reihe pflanzlicher Eiweiss-
körper, tierische Eiweisskörper nur sehr gering.

Bezüglich der ausserordentlich interessanten Einzelheiten muss auf das
Original verwiesen werden.

20. Arragoii, C. Über eine neue Verfälschung des Fenchels.
(Zeitschr. f. Untersuch, d. Nahrungs- u. Genussmittel, XVI, 1908, p. 400—402.)

Verf. konnte bei der Untersuchung einer Fenchelprobe feststellen, dass
dieselbe aus 72,8 °/0 Fenchelkörnern, 16,7 °/0 fremden Samen und 10,5% gelben
Steinchen bestand. Die fremden Samen waren zum grössten Teil Weizen-
körner, mit einigen Mohn- und Wickensamen und vereinzelten Haferkörnern
vermengt. Die kleinen Steinchen erwiesen sich als Marmorstückchen, die
durch eine Behandlung mit Eisenocker gelb gefärbt worden waren.

K. Krause.

21. Arzberger, Hans. Die Prüfung der Arzneimittel der öster-
reichischen Pharmakopoe. Mit kurzen Erläuterungen. 2' Teile. Wien
1908, Verlag Franz Deuticke.

22. Asahima, V. Über zwei chinesische Drogen: Kansho-Ko
und To-Ko. (Journ. Jap. Pharm. Soc, 1907.)

Eine in Japan sehr geschätzte Droge ist das Riechmittel Kansho-Ko
(auch Kansho genannt). Jedenfalls ist sie als das mit Blattresten versehene
Ehizom der Valerianacee Nardostachys Jatamansi zu deuten.

Beim genauen Untersuchen gewann der Verf. aus der Droge ein grün-
gelbes, riechendes Öl, das sehr leicht an der Luft verharzt und das ein
Sesquiterpen enthält, das bei 250—284° siedet.

To-Ko wird vom Verf. gedeutet als das Kraut und die Wurzeln von
Asarum Blumei- Dieses Kraut enthält 1,4% ätherisches Öl, das einen sassafras-
ähnlichen Geruch besitzt. In diesem Öle finden sich Eugenol, Safrol und ein
terpenartiger Körper.

Als identisch mit To-Ko wird die chinesische Droge Sai-sui oder
Si-sui bezeichnet.

23. Asahima, Y. Untersuchung der Frucht von Styrax Obastia
Siebold et Zuccarini. (Arch. Pharm., OCXLV, 1907, p. 325.)

Untersucht wurden die im August reifen Früchte von Styrax Obastia
S. et Z. Es scheiden sich darin nach eingehender Behandlung, bezüglich
deren auf das Original verwiesen werden muss, Kristalle ab, die nach dem
Reinigen schneeweisse glänzende Prismen darstellen, die bei 155° schmelzen.

27*

420 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. fß

Diese Gebilde zeigen zuerst einen ziemlich stark süsslichen, dann bitterlichen
Geschmack, sind stark hygroskopisch und folgen der Formel C6H1205.

Verf. schlägt für diese Kristalle den Namen Styracit vor. Bezüglich
der chemisch genau geschilderten Einzelheiten muss auf das Original verwiesen
werden.

24. Asahima, Y. Über das Sakuranin, ein neues Glycosid aus
der Rinde von Prunus Pseudo-Cerasus Lindl. var. Sieboldii Maxim. (Arch.
Pharm., 1908, p. 259.)

Es finden sich in Japan vom japanischen Kirschbaum (= Sakura) drei
Varietäten: Prunus Pseudo-Cerasus Lindl. var. spontanea Maxim. (= Yama-
Sakura), Pr. Ps-C var. Sieboldii Maxim. (= Y7oschino -Sakura) und Pr. Ps.-C
var. Jiortensis Maxim. (= Yae-Sakura). Aus der Rinde der var. Sieboldii gewann
der Verf. ein Glycosid von der Formel CojH^Oiq, das er als Sakuranin be-
zeichnet. Es wird hydrolytisch gespalten in Sakuranetin (= Ci6H1405) und
Traubenzucker. Die Konstitution des Sakuranetins steht noch nicht sicher
fest. Jedenfalls scheint es dem Ootoin nahe zu stehen. Physiologisch ist
der Stoff nach Versuchen, die Takahaschi damit unternommen hat, völlig
unwirksam.

25. Astruc, A. Precis des Operations pharmaceutiques. —
A l'usage du pharmacien et de l'eleve en pharmacie. Montpellier 1908.

20. Astruc, A. und Dejean, E. Über Tinctura Digitalis aus ge-
trockneten und frischen Blättern. (Journ. de Pharm. Chim., 1908, p. 282.)

27. Atenstaedt, P. und Beythien, A. Zur Methodik der Analyse von
Geheimmitteln. (Zeitschr. f. Untersuch, d. Nahrungs- u. Genussmittel, XIII,
1907, p. 488.)

Wenn sich auch für die Analyse der Geheimmittel kein systematischer
Gang wie für rein anorganische Stoffe aufstellen lässt, so lässt sich doch für
eine Reihe von Geheimmitteln eine Methodik befolgen, welche die Trennung
und quantitative Bestimmung freier organischer Säuren, vor allem der Salicyl-
säure, ferner ätherischer Öle der Kampferreihe, nach Art des Menthols, und
gemischter Ester von Salicylsäure und Phenol gestattet.

I. Trennung von Salicylsäure, Menthol und Phenolen. Da Phenol,
Salicylsäure und Menthol in Äther, die letzteren ausserdem in Petroläther lös-
lich, die Alkaliverbindungen aber unlöslich sind, so ist in der abwechselnden
Behandlung mit Alkalien und Lösungsmitteln die Möglichkeit einer Trennung
gegeben; Salicylsäure und Menthol kann man dann nach dem Verdunsten des
Lösungsmittels als Substanz zur Wägung bringen, was bei Penol nicht an-
gängig ist; dieses kann man nach dem Bromierungs verfahren von Koppeschaar
oder mittelst alkalimetrischer Titration bestimmen, so dass sich die Trennung
wie folgt gestaltet: Die alkoholische Lösung wird mit gesättigter Natrium-
bicarbonatlösung geschüttelt, darauf mit Wasser verdünnt und der Flüssigkeit
das unveränderte Menthol durch anhaltendes Schütteln mit niedrigsiedendem
Petroläther entzogen. Die petrolätherische Lösung, die phenolfrei ist, giesst
man durch ein trockenes Filter, lässt sie in gewogener Glasschale bis zur Ver-
dunstung des Lösungsmittels bei gewöhnlicher Temperatur im Vakuum stehen
und wägt möglichst bald. Zur Kontrolle kann die bei Anwesenheit von reinem
Menthol meist kristallinisch erstarrende Substanz jn Alkohol aufgenommen
und polarisiert werden. — Die spezifische Drehung des Menthols beträgt nach
Arth in lOprozentiger Lösung [«]d = — 50,1° bei 18° C; in Sprozentiger Lösung
[«]d = ■ — 49,4° bei 22° C. Amerikanisches Pfefferminzöl hat demgegenüber eine

7] Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 421

Drehung von —25 bis 33°. — Der wässerigen Lösung wird durch mehrmaliges
Ausschütteln mit Äther das Phenol entzogen. Die ätherische Lösung wird mit
einer abgemessenen Menge n/rKalilange am Rückflusskiihler erhitzt, darauf
der Äther abdestilliert und der Rückstand nach dem Ansäuern mit n/2-Schwefel-
säure und Zusatz von 2—3 Tropfen Trinitrobenzollösung auf Rot titriert.
I ccm n/2-Kalilauge entspricht 0,047 g Phenol. Die von Phenol befreite Lösung,
welche jetzt nur noch die Salicylsäure enthält, wird mit verdünnter Schwefel-
säure im Überschusse versetzt, darauf mit Äther extrahiert und der nach dem
Verdunsten des Lösungsmittels hinterbleibende Rückstand gewogen oder auch
nach Zusatz von Alkohol und Phenolphthalein mit n/rKalilauge titriert. 1 ccm
»^-Kalilauge = 0,138 g Salicylsäure. II. Trennung von Salicylsäure, Menthol,
Phenol und Saliphenol (Salol). Behandelt man die alkoholische Lösung nach I,
so gehen Menthol und Salol in die petrolätherischen Ausschüttelungen über;
sie werden nach dem Verdunsten des Lösungsmittels zusammen gewogen.
Das Gewogene wird mit Alkohol in ein Kölbchen gespült und mit alkoholischer
n /2-Kalilauge '/a Stunde am Rückflusskühler verseift. Der Kolbeninhalt wird
nach dem Erkalten mit viel Wasser verdünnt. Durch Ausschütteln mit Äther
oder Petroläther gewinnt man daraus das Menthol; durch Subtraktion erfährt
man den Gehalt an Salol. Im übiigen verfährt man wie unter 1. III. Tren-
nung von Salicylsäure, Menthol, Phenol, Saliphenol und Salimenthol.
Menthol, Salol und Salimenthol isoliert und wägt man zusammen, wie für
Menthol und Salol unter EL. angegeben. Das Gewicht der Summe dieser drei
Bestandteile sei a. Das Gewogene wird mit Alkohol aufgenommen, mit alko-
holischer W2-Kalilauge am Rückflusskühler verseift, und nach Zusatz von viel
Wasser mit Petroläther ausgeschüttelt, der sowohl das ursprünglich vorhandene,
wie das aus dem Salimenthol abgespaltene Menthol aufnimmt. Das Gewicht
des Menthols sei b. Die hinterbleibende alkalische Flüssigkeit enthält das
dem Salol entstammende Phenol und die Gesamtmenge der in Form von Estern
(Salol und Salimenthol) vorhandenen Salicylsäure. Sie wird nach dem Ansäuern
zur Entfernung der Salicylsäure mit Petroläther und darauf zur Lösung des
Phenols mit Äther ausgeschüttelt. Die in oben angegebener Weise bestimmte
Menge des Phenols sei c; die Gesamtmenge der veresterten Salicylsäure d.
Aus diesen Daten lässt sich die Zusammensetzung des Gemisches wie folgt
ableiten: 94 T. Phenol sind in 214 T. Salol mit 138 T. Salicylsäure verbunden;

138
die analytisch ermittelten c g Phenol erfordern also zu Sättigung c X ~qT S

138
Salicylsäure. d — c X ~öT g ist die Menge der in Form von Salimenthol vor-
handenen Salicylsäure. Da im Salimenthol auf 138 T. Salicylsäure 156 T.

138 / 138\156

Menthol entfallen, so binden diese d — c X ~qT S Salicylsäure Id — c X TjT/Toö §'

Menthol. Der Betrag, um den der Gesamtmentholgehalt b diese letzte Zahl
übertrifft, gibt die Menge des freien Menthols an. IV. Bestimmung von
Phenol und Kresolen. Es können drei Wege eingeschlagen werden: 1. Be-
handhing mit Petroläther. Die Kresole können aus stark verdünnter wässerig-
alkoholischer Lösung mit Petroläther ausgeschüttelt und nach dem Verdunsten
des Lösungsmittels direkt zur Wägung gebracht werden, während Phenol in
Petroläther so gut wie unlöslich ist. Man kann auf Grund dieses Verhaltens
eine rohe Trennung herbeiführen und dadurch die folgende Methode ver-
schärfen. 2. Bestimmung der Bromzahl nach Ditz und Cedivoda. Eine

422 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. [8

Bromzahl von weniger als 509 — 510 deutet auf die Anwesenheit von Kresolen.
3. Oxydation der Kresole nach Hey mann und Königs. V. Systematischer
Gang der Analyse bei Gegenwart aller vorher besprochenen Bestandteile.
100 ccm der alkoholischen Lösung, entsprechend 4 — 5 g gelösten ätherlöslichen
Stoffen, werden mit 20 ccm konzentrierter Natriumbicarbonatlösung kräftig
geschüttelt, darauf mit Wasser auf 200 ccm verdünnt und mit niedrig-
siedendem Petroläther wiederholt ausgezogen. 1. Die wässerige Schicht, die
Natriumsalicylat und freies Phenol enthält, wird mit Äther ausgeschüttelt,
der das Phenol aufnimmt, während die Salicylsäure nach dem Ansäuern aus-
geäthert wird. 2. Den Petrolätherauszug, in dem sich freies Menthol, Salimenthol
und die Salicylsäureester der Phenole bzw. Kresole befinden, lässt man bei
gewöhnlicher Temperatur eindunsten, bringt darauf den Rückstand mit 100 bis
150 ccm Alkohol in einen Kolben und verseift nach Zusatz von 3 g festem
Ätzkali 1 !/2 Stunde am Bückflusskühler. Nach dem Erkalten wird der Kolben-
inhalt mit viel Wasser verdünnt, mit Äther geschüttelt und das so isolierte
Menthol nach freiwilliger Eintrocknung gewogen. Die alkalische Flüssigkeit
wird angesäuert, darauf mit Natriumbicarbonat und Äther ausgeschüttelt. In
Lösung gehen die Phenole und Kresole, während der wässerigen Lösung
nach dem Ansäuern die Salicylsäure entzogen wird. Die nähere Charakterisierung
«ler Phenole bzw. Kresole erfolgt mit Hilfe der Bromierung und der Oxydation.
— Eine nach vorstehendem Verfahren ausgeführte Analyse des Odols
(dis° — 0,8515) ergab ausser etwa 0,1 °/0 Saccharin folgende Befunde für
100 ccm:

Alkohohl 67,340 g (= 84,78 Vol.-%)

Wasser 13,550 g

Ätherlösliche Stoffe 4,260 g

Davon »Saccharin 0,100 g

freie Salicylsäure .... 0,077 g

Pfefferminzöl 1,478 g

Salicylsäure-Mentholester . 0,380 g

Salicylsäure-Kresolester . . 2,440 g.

28. Augusthi, Bela. Geschichte, Kultur und Handel des Paprika.
(Pharm. Centralh., XLVIII, 1907, p. 792.)

Der Verf. bespricht auf Grund umfangreicher eigener Untersuchungen
die Geschichte, Kultur und Handel des Paprika in historisch-
kritischer Art und Weise und gibt eine anatomisch-entwickelungs-
geschichtliche Untersuchung des Paprika. Die Arbeit ist entstanden im
Pharmazeutischen Institute der Universität Bern.

29. Babcotk, N. E. und Hanson, H. E. Ätherische Öle amerikanischer
Ooniferenarten. (Journ. Am. ehem. Soc, XXVIII, 1906, p. 1198.)

Es wurden genauer untersucht:

1. Picea Mariana (black spruce). Diese Art brachte 0,57 °/0 Nadelöl;
du*0 0,9274.

2. Tsuga canadensis (hemlock). Nadeln und Zweige brachten 0,4 — 0,46%
Öl; dl5° 0,9238—0,9273.

3. Picea canadensis (cut spruce). Aus den Nadeln wurden gewonnen
0,103% öl; dl5« o,9216. Estergehalt = 25,7%. Die Zapfen gaben
"•")0/u gelblich limonartig riechendes Öl; dl»" 0,899.

4. Picea rubens (red spriice). Es wurde gewonnen 0,204% Nadelöl;
diö° 0,9.")39; 66,2% Bornylacetat; 7,76% freies Borneol.

91 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 423

5. Larix americana. Nadeln oder Zweige ergaben 0,149% Öl; di5° 0,8816;
Estergehalt = 15,1 o/0.

6. Pinus rigida (pitch pine). 12 kg Blätter und Zweige ergaben nur
0,2 ccm stechend riechendes Öl, ähnlich wie bei Pinus retinosa (red pine).

30. Bacon, R. P. Terpene und ätherische Öle von den Philip-
pinen. II. Ylang-Ylangül. (Philipp. Journ. Scienc, III, 1908, p. 65.)

Der Verf. schildert die Gerinnung von Ylang-Ylangül und seine Zu-
bereitung auf den Philippinen. Er schildert die Zusammensetzung des Öles
und seine Verfälschung.

Eine analytische Wertbestimmung von YH.ang-Ylangöl ist undurchführ-
bar, da nicht nur einer, sondern viele Stoffe am Zustandekommen des Wohl-
geruches teilnehmen.

Verf. gibt folgende Eigenschaften des Öles an:

3f|0

d400 0,911—0,958: nD30<> 1,4747—1,4940: «d30 0-270—49.70.

E.Z. 90-138.
Lus
werden

Aus 36 Proben zweiter Güte konnten folgende Konstanten gewonnen

300
d ^0 0,896—0,942: nD300 1,4788—1,5082; «d 30 0—27,40-87°.

E.Z. 42-94.

Zur Verfälschung des Öles wird vielfach Terpentinöl verwendet, ferner
Alkohol, Kokosfett und Petroleum, sowie andere nicht flüchtige Öle. Terpentinöl
gibt einzeln scharfen Geruch von grosser Härte.

Verf. gibt dann die Methoden zur Erkennung der einzelnen Ver-
fälschungen an, bezüglich deren auf das Original verwiesen werden muss.

Was der Verf. über die einzelnen Bestandteile des Ylang-YIangöles er-
mittelt hat, stimmt mit den Angaben früherer älterer Autoren überein.

Als neu weist er Ameisensäure und Safrol bzw. Isosafrol nach.

31. Bohriscli, F. Das Verhalten von Vanillin-Salzsäure gegen
natürliche und künstliche Kampfer. (Pharm. Centralh., XLVIII, 1907,
p. 527, 778.)

Der Verf. gibt an, dass die charakteristische bläuliche Färbung, die
natürlicher Kampfer des Handels mit Vanillin-Salzsäure ergibt, darauf zurück-
zuführen ist, dass der Naturkampl'er, wie er im Handel anzutreffen ist, kein
chemisch reines Produkt ist, denn bekanntlich fehlt dem synthetischen Handels-
kampfer diese charakteristische Reaktion.

32. Baker, R. T. and Smith, H. (i. The australian Melaleucas and
their essen tial oil. II. (Journ. and Proceed. Roy. Soc. of N. S. Wales,
XLI, 1907.)

Über diese Arbeit berichten Schimmel & Co. in ihrem Bericht vom
Oktober 1908, p. 21—22 das folgende:

Als Fortsetzung ihrer Arbeit über die australischen Mdaleuca- Arten und
deren ätherische Öle berichten R. T. Baker und H. G. Smith über die beiden
Species Melaleuca uncinata R. Br. und M. nodosa Sm. Nach eingehenden
botanischen Mitteilungen über die morphologischen und anatomischen Ver-
hältnisse dieser Arten besprechen die Verf. die darin enthaltenen ätherischen Ole.

Mehdeuca uncinata R. Br. Im Monat März gesammelte Blätter und
Zweigspitzen gaben bei der Destillation 1,246 °/0 eines gelblichen Öles. Das
Rohöl verschiedener Destillationen, deren Dauer durchschnittlich vier bis fünf

424 Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 1 10

Stunden betrug, hatte folgende Konstanten: diso 0,9259, «D _|_ 7,20, nDl5° 1,4788,
V. Z. 3,05, löslich in 1,5 Vol. 70-prozentigen Alkohols (Gewichtsprozente). Bei
der Eektifikation gingen unter 172° nur 4% über, von 172 — 177° etwa 41,6%,
von 177—195° etwa 24,8%, von 195-197° etwa 2,6 °/0, höhersiedend waren
27%; dieser Rückstand erstarrte nach einigen Tagen zu einer dicken Masse.
Das Öl enthält viel Cineol, etwas d-Pinen (im Cajeputöl ist 1-Pinen), ein
Sesquiterpen und eine kristallinische Substanz; Phellandren wurde in dem Öle
nicht nachgewiesen. Die kristallinische Substanz erwies sich als ein Alkohol,
der nach wiederholter Reinigung schnee weiss war und bei 72,5° schmolz;
[«]l> -f 36,99° in alkoholischer Lösung. Dieser Körper, den die Verf. Uncineol
nennen, sublimiert in Nadeln und löst sich in Essigsäure, Chloroform, Tetra-
chlorkohlenstoff, Alkohol, Äther, Essigäther, Aceton und anderen organischen
Lösungsmitteln; seine Formel ist C]0H18O.

Melaleuca nodosa Sm. Mitte Juni gesammelte Blätter und Zweigspitzen
gaben 0,664% ätherisches Öl. Das Rohöl ist hellgelb und besitzt einen
terpentinartigen Geruch, der durch kleine Mengen Aldehyd (Butyl- oder Valeral-
dehyd) etwas verdeckt ist. Die Konstanten des Rohöls waren folgende:
diso 0,8984, «d + H,6°, nDl8» 1,4689, löslich in 1 Vol. 80-prozentigen Alkohols
(Gewichtsprozente), V. Z. 7,24, 33 % Cineol, nach der Phosphorsäuremethode
bestimmt. Bei der Rektifikation gingen 92% unter 183° über; das Öl enthält
nur wenig hochsiedende Bestandteile, unter denen ein Sesquiterpen ist;
Phellandren konnten die Verf. in dem Öle nicht nachweisen. Das Öl besteht
hauptsächlich aus d-Pinen und Cineol und entspricht daher mehr dem Eucalyptusöl
als dem CajeputöL so dass sein Handelswert nur gernig ist.

33. Bambes, K. Über Kampfer. (Journ. d'Agr. trop., IX, 1907, p. 58.)
Die Ursache, dass in einigen Gegenden von Ceylon die Kampl'erkultur

noch im Rückstande ist, liegt, dem Verf. zufolge, in der völligen Unerfahren-
heit im Destillieren. Man macht dies zu schnell, kühlt dabei sehr schlecht,
und infolgedessen geht natürlich ein grosser Teil des Kampfers völlig ver-
loren. Einige Destillierungen ergaben nur 1,16 — 1,71 % Kampfer. In den
Blättern fand sich dreimal so viel Kampfer als in den Zweigen.

34. Bardet. Digitalis et Digitaline. (Bull. gen. Ther., CLIV, 1907,
p. 769.)

Der Verf. gibt an, dass das im Jahre 1866 von Nativelle kristallisierte
Digitalin ein Stoff ist, dem alle Wirkungen der Droge zukommen. Die
amorphen Digitaline, im Gegensatz zu diesem wohldefinierten haben nur sehr
geringe Wirkungen. Die deutschen Digitoxine entsprechen, wenn sie rein
sind, dem Digitalin.

Bezüglich anderer chemischer Einzelheiten muss auf das Original ver-
wiesen werden.

35. Bargellini, G. und Gialdini, C. Das Oxydationsprodukt des
Santonins. (Chem.-Ztg., XXXII, 1908, p. 290.)

Durch Einwirkung von Ozon auf Santonin entsteht ein Oxydations-
produkt, dem folgende Formel zukommt C^rl^Oy. Diese Verbindung hat die
Fähigkeit, Silber und Fehlingsche Lösung zu reduzieren und mit Phenyl-
hydrazin acetat das Hydrazin [= C^BLoOstNfcLPgt^)«] zu bilden.

36. Barger, (i. Über Mutterkornalkaloid e. (Chem.-Ztg., XXXI,
1907, p. 438.)

Der Verf. kann nach seinen neueren Versuchen die Angaben von Kraft

Hj Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 425

bestätigen. Der Autor hat für das Ergotinin folgende Formel gefunden:
C35H39N505. Für das Ergotoxin die Formel: C35H4lN506. Ergotoxin (= Hydro-
ergotinin) wird durch Wasserabgabe in Ergotinin umgewandelt. Die früher
von Tancret aufgestellte Formel C35H40N5O5 ist zu verwerfen.

37. Barger, G., Carr, F. H. und Dale, H. H. Über das wirksame
Alkaloid des Mutterkornes. (Pharm. Journ., LXXVIII, 1907, p. 74.)

Tancret hatte behauptet, dass das früher von ihm als amorphes Ergotinin
beschriebene Produkt übereinstimme mit dem von Barger und Carr auf-
gestellten Alkaloids Ergotoxins. Die Ansicht weisen die Autoren zurück und
geben die zwischen beiden Produkten herrschenden Unterschiede genau an.

Da diese Angaben rein chemischer Natur sind, kann hier nicht näher
darauf eingegangen werden.

38. Barger und Carr. Die Alkaloide des Mutterkornes. (Journ. de
Pharm, et Chimie, 1907, p. 131.)

Die Verff. haben das 1875 von Tancret entdeckte Ergotinin auf sein
Moleculargewicht und seine Formel hin untersucht. Ihre Resultate stimmen mit
denen von Tancret nicht überein. Statt C35H40O5N4 nehmen sie die Formel
C28H32O4N4 an Diese Formel entspricht einem Moleculargewicht von 488. —
Bei den kryoskopischen Untersuchungen wurden 463 in Pyridinlösung und
477 in Phenollösung gefunden. Phenyl- und Methylgruppen fehlen dem Ergo-
tinin. Jedenfalls enthält es eine an Stickstoff gebundene Methylgruppe.

Die Verff. isolierten ein neues Alkaloid „Ergotoxin". Dieses kristalli-
siert gut wie Oxalate, Tartarate, Phosphate. Es ist in Soda leicht löslich und
gibt ein Derivat benzoesaurer Art nach der Schotten-Baumannschen Methode.
Die Formel der Elementaranalyse stimmt fast ganz mit der des Ergotinins
überein. Beide Alkaloide besitzen also eine chemische sehr nahestehende Ver-
wandtschaft.

Die Wirkung des Mutterkornes beruht auf dem Gehalt an Ergotoxin.

Die Verff. behandeln es als das wichtigste Agens der Droge.

39. Barrowcliff, M. Poleiöl. (Journ. ehem. Soc, XCI, 1907, p. 875.)
Das Poleiöl findet sich in der amerikanischen Minze (Hedcoma pule-

gioides L.). Der Verf. hat über dieses Öl sehr eingehende Untersuchungen an-
gestellt.

40. Barrowcliff, M. und Tutin, Fr. Chemische Untersuchung der
Wurzel und Blätter von Morinda longiflora. (Proc. Chem. Soc, XXIII,
1907, p. 248.)

Es gelang den Verff., aus der Wurzel der Scrophulariacee Morinda
longiflora Nadeln von der Formel C16H1204, die bei 290° schmelzen, zu kristalli-
sieren. Sie stellen ein Dioxymethylanthranol dar. Aus den Blättern der
gleichen Pflanze isolierten die Verff. einen Stoff, den sie als Morindanol
bezeichnen C38H6.:04, der aus farblosen Nadeln besteht, die bei 278° schmelzen,

41. Bartelt, K. Die Terpene und Kampferarten. Heidelberg, Carl
Winter, 1908.

42. Baselli, A. Prüfung des synthetischen Kampfers. (Zeitschr.
d. österr. Apoth.-Ver., XLV, 1907, p. 225.)

Der Verf. empfiehlt folgende Methoden:
1. Man mischt 1 Teil Kampfer innig mit 2 Teilen gelöschtem Kalk, dann
wird bis zur ganzen Verflüchtigung des Kampfers erhitzt. Nach dem

426 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. M2

Erkalten zieht man mit heissem Wasser aus und filtriert dann. Das
Filtrat darf mit Silbernitrat nicht getrübt werden.
2. Man löst 5 g Kampfer in 50 g 90 proz. Alkohol, dann fügt man eine
Lösung von 5 g salzsaurem Hydroxylamin und 5 g Ätznatron und
ausserdem noch soviel Alkohol zu, dass die Feuchtigkeit klar bleibt.
Erhitzt man 1 '/3 Stunden im Bade, darf die Lösung nach Zusatz von
HaO nicht getrübt, der beim Neutralisieren der Lösung entstandene
Niederschlag muss im Überschusse sowohl des Fällungsmittels wie von
Natronlauge löslich sein.

43. Batlandier, J- A. Kampfer und Kampferbäume in Algier.
(Journ. Pharm. Chim., 1907, p. 182.)

44. Bauer, K. Der mikrochemische Nachweis des Berberins in
Pflanzen und Drogen. (Zeitschr. allgem. österr. Apoth.-Ver., XLVI,
1908, p. 355.)

Auf folgende Weise gelang es dem VTerf., Berberin in den Pflanzen
nachzuweisen: 2 — 3 Schnitte der Pflanzenteile werden in Wasser auf den Ob-
jektträger gebracht, dann 1 Tropfen 10 proz. Natronlauge hinzugefügt, vor-
sichtig erwärmt und dann 4 — 5 Tropfen Aceton hinzugegeben, worauf wiederum
erwärmt wird. In einigen Fällen tritt die Kristallbildung erst nach Verlauf
von Stunden auf, gewöhnlich aber schon nach einer halben Stunde. Berberin
konnte ohne allen Zweifel nachgewiesen werden bei Berberis Aquifolium Pursh,
B. fascicularis Sims., B. vulgaris L., B. ceresina Schrad., B. canadensis Pursh
und B. lucida Schrad. Die Blätter von Berberis species sind frei von Ber-
berin. Berberin fand sich auch in Rhizomenschnitten von Hydrastis cana-
densis L., in den Stengeln von Coptis trifoliata Salisb. und Xanthorhiza apii-
folia L'Herit. Kein Berberin wurde gefunden in: Podopliyllum peltatum L.,
P. Emodii Wall., Epimedium alphium L., Caidophylhim (Leontice) tlialictroides
Mchx., Jeffersonia pinnata Bent., Nandnia domestica Thbg., Menispermam cana-
dense L., Chaomanthera dependens Höchst , Zanthoxylum Clara Herculis L„ Z.
Bungei Planch., Evodia elegans Hort., Forestiera lignstrina Poir., Andina inermis
H. B. K, Sanguinaria canadensis L., Chelidoniam wtajm L., Bocconia cordata
Willd., Adonis vernalis L., Radix Colombo, Fructus Cocculi, Pidv. Azaroba
naturalis.

45. Bavink, R. Natürliche und künstliche Pflanzen- und Tier-
stoffe. Ein Überblick üher die Fortschritte der neueren organischen Chemie.
(187. Bändchen der Sammlung: Aus Natur und Geisteswelt, Leipzig 1908,
B. G. Teubner, 131 pp.) 1 M. geheftet, 1,25 M. gebunden.

Das Büchlein will einen Einblick in die wichtigsten theoretischen Er-
kenntnisse der organischen Chemie geben und das Verständnis für ihre darauf
begründeten praktischen Entdeckungen und Erfindungen vermitteln.

In einem einleitenden Kapitel werden die Grundlagen der allgemeinen
und anorganischen Chemie in prägnanter und leicht verständlicher Form ge-
geben, sodann der Grund der besonderen Stellung der Kohlenstoffverbindungen
in theoretischer (Kettenbildung) und praktischer Hinsicht gekennzeichnet und
in den zwei letzten Dritteln des Buches schliesslich die Verbindungen mit
offenen und dann die mit ringförmig geschlossenen Ketten im einzelnen ab-
gehandelt. Es sind, wie es der Titel des Büchleins erwarten lässt, besonders
die Pflanzen- und Tierstoffe besprochen, deren Konstitution aufgeklärt und
Synthese gelungen ist; auch die neuesten Forschungen Emil Fischers über die

13] Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 427

Proteine haben Berücksichtiguni;- gefunden. Das Werk Kann nicht nur den in
den angrenzenden Wissensgebieten arbeitenden Studierenden und Lehrern,
sondern, wegen der anziehenden, leichtverständlichen Darstellung und der
klugen Beschränkung auf das Wichtigste, allen den „allgemein Gebildeten"
empfohlen werden, die, wie Verf. in der Einleitung ausführt, über Ausgrabungen
in Assyrien, Künstler des 15. Jahrhunderts, drahtlose Telegraphie und Tiefsee-
forschung mitreden können, dagegen von den so bedeutsamen Forschungs-
ergebnissen der organischen Chemie nicht die geringsten Kenntnisse haben,
oft weil ihnen in der Schulzeit der scheinbar trockene Formelkram ein für
allemal die Lust, in dies „Nebenfach" tiefer einzudringen, verleidet hat.

46. Bayer & Co., Farbenfabriken vorm. Friedrich. Prüfungsvorschriften
für die pharmazeutischen Produkte. Elberfeld 1908.

Diese von der bekannten Firma herausgegebene Schrift gibt genaue Vor-
schriften über die Drogen in Hinsicht ihrer Zusammensetzung, ihrer chemisch-
physikalischen Eigenschaften, ihrer Dosierung und Prüfung, der Identitäts-
reaktionen, der Rezeptur, sowie ihrer Anwendung und Aufbewahrung. Es
sind naturgemäss nur Drogen genannt, die von der Firma in den Handel ge-
bracht werden.

Es ist darauf geachtet worden, mit den Reagenzien und volumetrischen
Lösungen aus der Pharm. Germ. Ed. IV auszukommen. In einer besonderen
Tabelle findet der Leser diejenigen Reagenzien aufgezählt, die die oben ge-
nannten Anforderungen überschreiten.

47. ßeattle, Cl. und Stevens. H. P. Der sogenannte Nerv des Kaut-
schuks. (Chem. News, 1907, XCVI, p. 491.)

Physikalische Prüfungen an rohem, unvulkanisiertem Kautschuk vorzu-
nehmen, ist nach den Verf. völlig nutzlos, wenn die einzelnen Proben nicht in
völlig übereinstimmender Weise während und nach der Coagulation , beim
Waschen und beim Trocknen behandelt werden.

•48. Beckmann, E. Anwendung der Kryoskopie zur Beurteilung
von Gewürzen und anderen Drogen. (Arch. Pharm., 1907, p. 211.)

Verf. machte mit seinen Schülern Untersuchungen über die Benutzung
von Athylenbromid zur kryoskopischen Bestimmung einzelner Bestandteile der
Drohen, Gewürze und auch von einzelnen Nahrungsmitteln.

Aus der Differenz der Gefrierpunktserniedrigungen, welche die Gesamt-
extraktlösungen nach der Entfernung des ätherischen Öles durch Wasser-
dampf geben, lässt sich der Gehalt an ätherischen Ölen in Gewürzen und
Drogen feststellen.

Der genauen Einzelheiten wegen muss auf das Original verwiesen werden.

49. Beckmann, E. Physikalisch-chemisches aus der Nahrungs-
mitteluntersuchung. (< 'hem.-Ztg., XXV, p. 484. )

50. Beckurts, Heinrich. Jahresbericht zur Pharmazie. Heraus-
gegeben vom D. Apoth.-Ver., XLI.

51. Beiire, A. Olivenöl. (Pharm. Centrbl., XLV1II, 1907, p. 489.)
Verf. untersuchte öS aus Italien stammende Proben von Olivenöl. Keine

dieser Proben war verfälscht. Trotzdem gaben 17 Proben eine direkte positive
Bandouinsche Reaktion. — Verf. spricht infolgedessen dieser Reaktion jeden
Wert ab.

Es werden dann chemische Eigenschaften der Öle usw. besprochen.

428 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 1 14

52. Beule, Le und Lemaire, P. Kampfer aus Blättern. (Rep. Pharm.,
1908, p. 145.)

Verf. untersuchte die Blätter eines Kampferbaumes, der im Garten
zu Bordeaux im Freien gedeiht. Die Untersuchung ergab, dass der
Kampfergeh alt der Blätter durchschnittlich 1—2% betrug.

Bezüglich der Kultur des Kampferbaumes meint der Verf., dass sie
überall dort, wo das Klima sie erlaubt, mit Erfolg getrieben werden kann.
Die Gewinnung des Kampfers aus den Blättern, hält der Verf. für nutz-
bringend und weist besonders darauf hin, dass sie eine Schonung des Baumes
zulässt. Denn durch die bisherige Art der Kampfergewinnung wurde das
Holz zerstört und mit ihm der ganze Baum.

53. Beliier, M. J. Über den Nachweis von geringen Mengen
Kokosfett in Butter. (Rev. Internat, des Falsific, 1907, p. 21.)

54. Belschmer, G. Bestimmung der Stärke in Cerealien durch
Polarisation. Inaug.-Diss., Münch. 1907.

55. Beimet, C. T. Die Pinusöle des Handels. (Pharm. Journ., XXVI,
1908, p. 483.)

Verf. teilt die im Handel befindlichen Öle wie folgt ein:

1. Die Terpentinöle.

2. Die ätherischen Öle aus Nadeln und Zapfen verschiedener Pinus-
Arten.

I. Das amerikanische Terpentinöl von Pinus australis; das russische von
Pinus silvestris; das französische von Pinus maritima bestehen fast
vollkommen aus d- und 1-Pinen, enthalten nebenbei aber auch Oamphen
und Dipenten. Man nimmt als Verfälschungen Petroleumfraktionen
und Harzöl.
IL Das in England offizineile Latschenkiefernöl von Pinus Pumüio ent-
hält sehr wenig Pinen, nur 1-Phellandren, Silvestren und Cadinen,
wenig Ester.
Sibirisches Fichtennadelul enthält viel Bornylacetat. Das Fichtennadelöl
stammt von Pinus silvestris nach Angabe der Händler; der Verf. hält ihn aber
für ein Gemisch von anderen Pinusölen mit Terpentinöl.

Verf. geht dann noch auf einige andere Öle genauer ein.

56. Bennet, C. T. Bestimmung von Cineol in Eucalyptus und
Cajeputölen. (Ohem. Drugg., LXXII, 1908, p. 55.)

Sehr gute Resultate ergibt nach dem Autor die bekannte Phosphor-
säuremethode, wenn der Cineolgehalt des betreffenden Öles unter 50%
beträgt. Der Verfasser hält die Phosphorsäuremethode für genauer als
die von Schimmel & Co. angegebene Resorcinmethod e.

Als Vergleichsbestimmung kann dem Autor zufolge die fraktionierte
Destillation herangezogen werden.

Das gesamte Oineol findet sich in den zwischen 175° und 185° über-
steigenden Anteilen.

57. Bennet, C. T. Thymian- und Origanumöl des Handels. (Pharm.
Journ., XXVI, 4, 1908, p. 803.)

Der Autor gibt für die verschiedenen Öle des Handels folgende klare
Übersicht:

15]

Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

429

Spezifisches

Phenol-

Haupt-

1 Volum

Gewicht

gehalt

bestandteile

ist löslich in

Französisches Thy-

0,90.">— 0.920

18-450/0

Thymol.Car-

2 Vol. 80proz. Al-

m\anöl(Tliym-us vul-

vacrol, Cy-

kohols

garis)

mol, Pinen

Öl von Thymus 8er-

0.890—0,905

Praktisch =0

Cymol

2—3 Vol. 80proz.

pyllum

Alkohols

Spanisches Thy-

0,930—0,950

50-70 o/0

Carvacrol

3 Vol. 70proz. Al-

mianöl (Ursprung-

kohols

unbekannt)

Triester Öl (Origa-

0,940—0,980

60— 85%

Carvacrol

2—3 Vol. 70proz.

num hirtwm)

Alkohols

Smyrnaöl (Origa-

0,915—0,945

25-60°/0

Carvacrol,

2—3 Vol. 70proz.

num smyrnaceum)

Linalol, Cy-
mol

Alkohols

Cyperisches Ö\(Ori-

0,961—0,967

78-840/0

Carvacrol,

2—3 Vol. 70proz.

ya n u m majorem oides)

Cymol, Ori-
ganol

Alkohols

Sizilisches Öl

0,920

440 0

Carvacrol

2 Vol. 80proz. Al-
kohols

58. Bergtheil, C. u. Briggs, R. H. Die Indigobestimmung in Indigo-
pflanzen. (Journ. Chem. Ind. Soc, XXVI, 1907, p. 1172.)

59. Bergtheil, ('. u. Briggs, R. H. Die Bestimmung des Indigotins
in Indigo liefernden Pflanzen. (Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 1162.)

Die Verff. arbeiteten nach der modifizierten Methode von Rawson und
erzielten damit die gleichen Resultate, wie durch die Vergärung des Extraktes
mit Indigoenzym. Eine andere Untersuchungsart, die sich gründet auf die
Fällung des Indirubins durch Isatin in saurer Lösung, gab bedeutend höhere
Ergebnisse.

60. Berl, E. und Smith, W. Zur Kenntnis der- Zelluloseester.
(Berl. Ber., 40, 1907, p. 903.)

Den Autoren ist es gelungen, ausgehend von der Hydrozellulose, Zellu-
loseester herzustellen, indem sie entweder einwirken Hessen lOOproz. Ameisen-
säure unter Schwefelsäurezusatz oder des gemischten Ameisensäure-Essigsäure-
Anhydrids.

Das Reaktionsgemisch gössen die Verff. in eine grössere Menge kalten
Wassers und die dann hervorgegangenen weissen Flocken werden so lange
mit Wasser gewaschen, bis das Wasser keine saure Reaktion zeigt.

61. Bemegau, L. Die botanisch-chemisch interessante, wirt-
schaftlich im Handelsverkehr Afrikas wertvolle Kolanuss, ihre
Arten, Schädlinge und ihre Bedeutung als tropische Kulturpflanze.
Vortrag, gehalten in der Vereinig, für angewandte Botanik, Dresden 1907.

Der Verf. unterscheidet:
..1. Zweisamige Kolaarten, Cola dispermatica: Art Cola vera K. Schumann.
2. Mehrsamige Kolaarten (4- und 5 sämig), Cola polyspermatica: Art Cola
acuminata (Rob. Brown) oder Sterculia acuminata (Palisot de Beauvais).

430 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. \\Q

Die Mitteilung von Tschirch, dass sowohl C. acuminata als C vera Samen
mit 2 Cotyledonen besitzen, habe ich auf Grund persönlicher Beobachtung in
"Westafrika nicht prüfen können. Es ist mir nicht gelungen, C. acuminata mit
2 Cotyledonen zu finden. Wenn Schumann angibt, C. vera liefere nur grosse
Kolanüsse, dagegen C. acuminata kleine Kolanüsse, oder Tschirch, C. acuminata
wie C. vera besitzen Samen mit 2 Cotyledonen und können also grosse Kola-
nüsse liefern, dagegen C. Ballayi Samen mit -1 Cotyledonen liefere wahrschein-
lich kleine Kolanüsse, so habe ich das bei den westafrikanischen Kolaarten
nicht bestätigt gefunden. In den Fruchtschoten von C- vera fand ich Nüsse
verschiedener Grösse, Form und Farbe, wie weiss, weissgelblich, fleischfarben,
rosafarben, dunkelkirsch- und purpurrot."

Was die Qualität angeht, schreibt der Autor wie folgt:
Die Qualität der frischen Kolanuss beurteilen die schwarzen Kolahändler
(Haussaleute) nach Geschmack, Aroma, Wohlbekömmlichkeit und prüfen die
Qualität durch einen Kauversuch. Der Kolakenner schneidet die Kolanuss in
Scheiben, kaut längere Zeit daran — fast eine halbe Stunde lang — , spuckt
den breiartigen Kaurückstand aus und trinkt dann Wasser. Eine gute Kau-
kolanuss darf

1. nicht schleimig sein und

2. nicht zu adstringierend bitter schmecken.

3. Die Speichelsekretion muss schon nach kurzem Kauen stark angeregt
werden. Darauf beruht die durstlöschende Wirkung, welche die moha-
medanischen Kolakauer sehr schätzen, was erklärlich ist, da sie auf ihren
langen Wüstenmärschen Durststrecken passieren müssen.

4. Sie muss einen lang anhaltenden, süsslich aromatischen, kakaoartigen
Nachgeschmack auslösen, namentlich wenn man nach dem Kauen Wasser
trinkt.

ä. Nach dem Kolakauen und Wassertrinken muss der Geschmack und Atem
gereinigt (desodorisierende Wirkung der Kolagerbsäure), Anregung der
Blutzirkulation (durch Coffein und Theobromingerbsäure) und eine er-
frischende Wirkung im Allgemeinbefinden wahrzunehmen sein.
Kaut man schleimhaltige Kolanüsse, so wird beim Kauen die Mund-
höhle schnell mit einem voluminösen fadenziehenden gummiartigen Stärkebrei
angefüllt, der durch die Schleimansammlung den weiteren Kauprozess unmög-
lich macht und damit die durstlöschende und erfrischende Wirkung verhindert.
Wie beim Einkauf von Kaffee, Tee, Zigarren usw. der Kenner durch die Ge-
schmacksprüfung durch Zunge und Nase die Qualität, namentlich das Aroma
sicherer bewertet als der Chemiker durch die Analyse, so prüft der schwarze
Kolahändler die Qualität der Kolanuss nach der Wirkung des Kauprozesses
und sortiert nach dem Ausfall dieser Prüfung die Kolanüsse nach Qualitäten.
Der Kolahandel in Westafrika liegt lediglich in den Händen der Schwarzen.
Verf. berichtet dann über die verschiedenen Versuche bezüglich des An-
baues der Kolanuss und fährt fort:

1. Zur Anpflanzung eignen sich die als Kaukolanuss hochwertigen aroma-
reichen zweisamigen Kolasorten, namentlich die Mandingo- und Aschanti-
kolanüsse, die zur Art Cola vera Schumann gehören.

2. Bei der Anlage von Kolapflanzungen ist darauf zu achten, dass der
Boden entsprechende Feuchtigkeit besitzt. Es empfiehlt sich, die bei
der Agegepflanzung gemachten, im Tropenpflanzer näher beschriebenen
Erfahrungen betr. Anzucht von Saatgut und Verpflanzung der jungen

17 I Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 431

Kolapflanzen in die Pflanzung, Pflanzweite, Beschattung, Bewässerung,
Düngung, Schneiden der Bäume und Bekämpfung von Schädlingen zu
beachten.

3. Für die Verwertung der wildwachsenden mehrsamigen, zur Art Cola
acuminata gehörigen Sorten und auch der schleimhaltigen Kolanüsse
empfiehlt sich die Aufbereitung zu Rohkolaextrakt am Produktionsortr
da diese Cola-aciUJiinata-JZxtrakte am europäischen Markte gute Preise
erzielen. Für Anpflanzungszwecke empfehlen sich nur die nicht schleim-
haltigen Cola-acu minata-Sorten.

4. Wurmstichige Nüsse sind für Extrakte nicht zu verarbeiten, da sie
keine einwandfreien Extrakte liefern. Solche Nüsse sind zu verbrennen,

5. Die Eingeborenen sind anzuhalten, die Kolafrüchte abzupflücken, die
Früchte aber nicht zu öffnen, sondern ungeöffnet zur Faktorei oder
Pflanzung zu bringen. Die Aufbereitung durch die Eingeborenen ist
nicht rationell und daher zu verhindern.

6. Für die Aufbereitung der Kolanuss durch Trocknung empfiehlt sich das
Trocknen bei niedrigen Temperaturen im Obstdörrapparat, besser in
Vacuumtrockenapparaten. Die getrockneten Nüsse sind in hermetisch
verschlossenen Dosen, nicht in Säcken aufzubewahren und zu ver-
schiffen.

7. Für Konservierung frischer Kolanüsse ist die Konservierung in Gläsern
oder Dosen durch Erhitzung unter Druck im Autoklav geeignet.

62. Bernegau. Über wirtschaftlich wertvolle Nutzpflanzen aus
Togo und Kamerun. Vortrag, gehalten auf der 80. Naturforschervers, zu
Köln 1908.

63. Bernegau, L. Über die Konservierung frischer Kolanüsse.
(Apoth.-Ztg., XXIII, 1908, p. 657.)

Der Verf. betont, dass das von A. Goris in den Berichten der Deutschen
Pharmazeutischen Gesellschaft, XVIII, 1908, p. 345 geschilderte Konservierungs-
verfahren der frischen Kolanüsse bereits schon von ihm geschildert worden
sei und dass er also für sich die Priorität beanspruchen muss.

64. Bemegean, L. Über die Verwertung der deutschen Trocken-
kartoffel, der afrikanischen Süsskartoff el und der afrikanischen
Liraone. (Apoth.-Ztg., XXIII, 1908, p. 669.)

65. Bemegean, L. Studien über die Kolanuss. (Ber. d. D. Pharm.
Ges., XVIII, 1908, p. 463.)

Vom Autor werden folgende Typen unterschieden :

1. Zweiteilige Kolanüsse von Cola vera, C. sublobata und C. astrophora-

2. Mehrteilige (4 — 5-teilige) Kolanüsse, wie von C. acuminata.

In einer Fruchtschale von C. vera fanden sich grosse und kleine Nüsse.

Als Verfälschung der Handelsware dient die vollkommen alkaloidlose C-
Supfiana Busse.

Es werden eingehende Schilderungen gegeben über Anpflanzung von
CWa-Pflanzen.

Über weitere rein technische Teile der Arbeit ist das Original ein-
zusehen.

66. Bemegeau, L. H. Einige Beobachtungen über Drogenver-
fälschungen aus der Praxis. (Amer. Journ. Pharm., LXXX, 1908, p. 221 ff.)

432 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. Mg

Den Folia Stramonii waren Semina Hyosctjami beigemischt. In den
meisten vom Autor untersuchten Proben von Herba Conii war Coniin so gut
wie gar nicht nachweisbar. Der Verf. glaubt diese Tatsache darauf zurück-
führen zu müssen, dass die Blätter gleich beim Sammeln zu fest in die Säcke
eingeschnürt worden waren. Bei der dann entstehenden Hitze zersetzt oder
verflüchtigt sich das Coniin.

Bei der Untersuchung von Radix Liquiritiae pulverata zeigte der
mikroskopische Befund fast alle Teile der echten Droge, aber es fehlten die
Calciumoxalatkristalle bis auf geringe Reste und die Holzfasern zeigten
eine eigentümliche Färbung. Aus der Droge konnten nur 20 % Extrakt, statt
40 % gewonnen werden.

Seeale cormdum war meist von Würmern zerfressen.

In Podophyllin wurden fast ständig mehr als 10°/0 in Alkohol unlös-
licher Bestandteile beobachtet.

67. Bertarelli, E. Verfälschung von Mehl mit Steinnuss. (Zeit-
schrift f. Untersuch, d. Nahrungs- u. Genussmittel, 1907, p. 484 ff.)

68. Bertolo, P. Einige neue Reduktionsprodukte des Artemisins
(Chem. Ztg., XXXII, 1908, p. 448.)

69. Bertoni, G. Über den Anbau und die Kultur der für die
industrielle Ölgewinnung in Frage kommenden Geranium -Arten
(Bull, de l'Office du G-ouv. de 1' Algier, XII, 1906, p. 277.)

70. Bertrand, G. und Muttermilch. Über die Existenz einer Pyrosi-
nase in der Weizenkleie. (0. R., OXLIV, 1907, p. 1164.)

Die Farbe des Schwarzbrotes ist zurückzuführen auf eine in der Weizen-
kleie enthaltenen Laktase, wie Boutroux gesagt hatte. Die Verff. behaupten,
dass dies nicht der Grund sein könne, denn in der Weizenkleie komme keine
Laktase vor. Es sei zu finden nur eine Tyrosinase, eine Thermostabil-
tyrosinase. Neben dieser Thyrosinase treten noch verschiedene andere
Enzyme auf, wie das Leptomin.

71. Bertrand, G. und Biokind, L. Untersuchungen über die Ver-
breitung des Vicianins und dessen Diastase in den Leguminosen-Samen.
(Bull. Scienc. Pharmacol., XIV 1907, p. 161.)

Die Verff. haben 60 Leguminosen- Arten auf ihren Gehalt an Vicianin
untersucht und ob sie die dieses Glycosid spaltende Diastase enthielten.

Fast in allen Samen konnte Vicianin nachgwiesen werden mit Aus-
nahme von:

Anagyris foetida L., Astragalus falcatus L., Cassia fistulu L., Ceratonia
siliqua L., Coronilla varia L., GleditscJna triacanthos L.. Galega officinalis L.,
Lathyrus silvestris L., Lupinus albus L., Sojihora japonica L., Vicia narbonensis L.,
Cercis siliquastrum L.

Vicianin zusammen mit dem Glycosid wurde nur in folgenden Samen
gefunden: Vicia angusti folia Roth und Vicia macrocarpa Bertol.

Weder Vicianin noch die Diastase wurde gefunden bei:

Äcacia dealbata Link., A- picrantha Benth., A. retinoides Schi. var. flori-
bunda, Ulex europaeus Sm., Anthyllis barba Jovis L., Colutea arborescens L., Cytisus
Laburnum L., Dolichos spec, Ervum spec. L., Faba vulgaris L. var., Trigonella
foenum graecum L., Commersonia odorata Aubl., Phytostigma venenosum Ball'.,
Sarotliamnus scoparius L., Genista tinetoria L., Lathyrus sativus L., Spartium
junceum L., Wistaria frutescens DC, Lndigofera tinetoria L., Lathyrus cicer L.,
Lotus spec, Lupinus Intens L., Melilotus albus Lam., Glycyrrhiza glabra L.,

19] Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 433

Robinia pseudacacia L., OrnifJiopus sativxis L., Soja hispida Mch., Hedysarum
coronarium L., Anthyllis vulneraria L., Trifolium repens L., ZV. pratense L., ZV.
incarnatum L., ZV. filiforme L., Fieia villosa Roth., F. aZfea var. a/fc<7, F. dume-
torum L.

72.-* Bertrand, G. Das Vicianin, ein neues blausäurespaltendes
Glycosid in den Körnern der Wicke. (Bull. Scienc. Pharmac, XIII,
1907, p. 65.)

Dem Verf. ist es gelungen, aus den Körnern der in Frankreich sehr ver-
breiteten Leguminose Vicia angustifolia Roth, ein neues Glycosid zu finden,
das er Vicianin nennt; es entsteht beim Zerreiben der Körner mit Wasser
Blausäure durch Einrichtung einer Diastase.

Dieses Glycosid kristallisiert in farblosen nadeiförmigen Büscheln, löst
sich gut in kaltem Wasser, schwer dagegen in Alkohol, ist in Petroläther unlös-
lich, ebenso in Benzin, Schwefelkohlenstoff und Chloroform. Es schmilzt bei 160°.

73. Beuttner, E. Giftiger Sternanis. (Schweizer Wochenschr. Ohem.
u. Pharm., XLV, 1907, p. 277—282.)

Veranlasst durch den Fall, dass in einem von einem Schweizer Drogen-
haus bezogenen Sternanis gegen 50°/0 giftige Sikimifrüchte vorhanden waren,
geht Verf. näher auf die Unterschiede zwischen echtem und giftigem Sternanis
ein. Von äusserlich wahrnehmbaren Unterscheidungsmerkmalen hebt er zu-
nächst folgende hervor:

1. Beim echten Sternanis ist der Fruchtstiel an seinem oberen Ende um-
gebogen und daselbst keulenförmig verdickt; beim unechten Sternanis
erscheint der Fruchtstiel dagegen gerade, in der ganzen Länge gleich
dick und an beiden Enden mit einem Korkwulste versehen.

2. Bei dem japanischen Stern anis ist die Fruchtstielnarbe glatt, flach, rund
und mit einem hellen, schmalen, vorspringenden Korksaum versehen.

3. Die Fruchtsäule, die sog. Columella, geht bei dem echten Sternanis fast
immer ganz auf die Höhe der anschliessenden Carpelle und läuft in eine
breite Endigung aus: bei dem japanischen Sternanis endigt sie dagegen
mehr konisch und unterhalb der Höhe der Oarpellränder, so dass sie
ziemlich tief eingesunken erscheint.

4. Die Früchte sind verschieden gestaltet. Fructus axiri stellati sind meist
grösser als EVnctus illicii religiosi, d. h. der Längsdurchmesser der
Einzelfrüchte vom echten Sternanis übertrifft den der japanischen Droge.
Ausserdem sind die Seitenflächen der Frucht des echten Sternanis ziem-
lich flach und einander genähert, die kahnartigen Früchte laufen in eine
stumpfe Spitze aus und klaffen, sobald sie reif sind, an der Oberseite
etwas auseinander, so dass dann die bräunlichgelbe Spaltfläche sichtbar
wird. Beim giftigen Sternanis dagegen sind die Seitenflächen bauchiger,
erscheinen mehr gewölbt; die Früchte laufen in einen spitzen, oft haken-
förmig gekrümmten Schnabel aus, dessen Spitze höher liegt als die
höchste Stelle der Balgfrucht; ausserdem klaffen die Früchte mehr aus-
einander als bei der nicht giftigen Droge und ihre Spaltflächen erscheinen
nicht dunkel, sondern hellgelb gefärbt.

5. Der Same der echten Droge ist von gelblichbrauner Farbe, von abge-
flachter Gestalt: sein oberer Rand, wo sich die Raphe befindet, ist zu-
geschürft, der untere abgerundet. Der Sikimisame besitzt dagegen hell-
gelbe Färbung, bauchige, volle Gestalt und die in der Regel stärker
hervortretende Raphe endigt in eine warzenförmige Verdickung.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 9. 2. IL] 28

434 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. [20

Von anatomischen Unterscheidungsmerkmalen führt der Verfasser
folgende an:

1. Wie man auf Querschnitten durch das Endocarp erkennen kann, bestehen
die Epidermiszellen der Fruchthöhlenwandung aus mächtigen, palisaden-
artig angeordneten, sklerenchymatischen Säulenzellen, die bis zu 600 u
lang werden können und dabei verhältnismässig dünn sind; im Gegen-
satz dazu bestehen die Spaltflächen aus dickwandigen, kurzen, reich
getüpfelten Zellen. Während die Pali^adenzellen des echten Sternanis
4.10 — 550 // lang sind, messen die der Sikimifrüchte meist nur 320 — 440 u.

2. Auch in dem anatomischen Bau der Fruchtstiele und der Columella, in dem
Vorkommen und Aussehen der Skiereiden sind Unterschiede bemerkbar.

3. Die Aleuronkörner beider Samen geben ein ganz verschiedenes mikro-
skopisches Bild. Bei Illicium verum sind sie meist von sehr unregel-
mässiger Form, rund oder nur wenig gestreckt und mit unregelmässigen,
wie gekörnt aussehender Oberfläche versehen, ihr Inhalt ist schwer
erkennbar; bei Illicium religiosum erscheinen sie dagegen glatt, glänzend,
oval bis elliptisch mit einem deutlichen Globoid und 2 — 3, seltener
einem grossen Kristalloide.

Der echte Sternanis enthält das Anisöl Anethol und besitzt süssen,
aromatischen Geschmack. Die Sikimifrüchte enthalten dagegen kein Anethol.
schmecken scharf, bitter und riechen im gepulverten Zustande deutlich nach
Cardamomen. Zum Schluss gibt der Verf. noch folgende leicht auszuführende
chemische Unterscheidung beider Sorten an: Man kocht ein von den Samen
befreites, grob zerstossenes Garpell mit 5 ccm Weingeist eine Minute lang,
filtriert dann und gibt zu dem Filtrate 25 ccm Wasser. Dabei geben echte
Sternanisfrüchte eine trübe, stark nach Anisöl riechende und schmeckende
Flüssigkeit, während bei Sikimifrüchten eine klare, höchstens etwas opalisierende
Flüssigkeit entsteht, die nicht nach Anisöl riecht und einen sehr unangenehmen
Geschmack besitzt. Lässt man die alkoholischen Auszüge auf Uhrgläsern
verdunsten, so scheiden sich bei den Sikimifrüchten schön ausgebildete Kristalle
ab, während bei dem echten Sternanis gar keine oder nur undeutlich ent-
wickelte Kristalle zustande kommen.

74. Beythien, A. Einige neue Erfahrungen der Nahrungsmittel-
industrie. (Zeitschr. f. Untersuch, d. Nahrungs- u. Genussmittel, XII, 1907.
p. 467—472.)

I. Garantol. Das beste Eikonservierungsmittel der Welt wird hergestellt
aus einer Mischung von Eisenoxydulsalz mit üalciumlvydroxyd und Paraffinöl.

IL Fromms Conglutin-Nährsalzmischung. Das Präparat scheint
zu bestehen aus 35 °/0 eines Protemstoffes pflanzlichen Ursprungs mit 46 %
Kochsalz, 7 °/0 Magnesia usta und kleinen Dosen von Sulfaten und Phosphaten.

III. Oacaol. Scheint zu sein ein Gemisch von Kakao mit 2,56 °/0 Koch-
salz, 17,43 °/0 Zucker und ca. 10°/o Hafermehl.

75. Beythien, A. und Atenstädt, P. Über den Nachweis von Sade-
baumöl. (Zeitschr. f. Untersuch, d. Nahrungs- u. Genussmittel, XVI, 1908,
p. 677—679.)

Nach den Untersuchungen der Verff. bietet die Refraktion kein sicheres
Merkmal zur Unterscheidung des Sadebaumöles von anderen verwandten Ölen
und auch die Jodzahlen sind wenig charakteristisch. Wichtiger erscheinen
schon die Verschiedenheiten im spezifischen Gewichte und das Verhalten bei
der fraktionierten Destillation. Ein sicherer Nachweis des Sabinaöles wird

2 1 1 Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 435

sich aber mit Hilfe der hohen Verseifungszahl und der hohen spezifischen
Drehung führen lassen. Die letzte Eigenschaft kann auch noch bei Gegenwart
von Coniferenül und von Terpentinöl, die mit Ausnahme einiger amerikanischer
Terpentine entweder optisch inaktiv oder linksdrehend sind, mit Erfolg heran-
gezogen werden. Diese Methode besitzt ausserdem den Vorzug, dass sie nur einen
Tropfen Öl erfordert, während es bei forensischen Untersuchungen selten ge-
lingen wird, die zur Bestimmung der Verseifungszahl erforderliche Substanzmenge
zu isolieren. Das wichtigste Kriterium für die Gegenwart von Sabinaöl wird
übrigens immer der charakteristische Geruch bleiben. Vergleichende Unter-
suchungen ergaben, dass noch 0,1 °/0 Sabinaöl mit Sicherheit am Geruch fest-
gestellt werden kann. Derselbe kommt am deutlichsten beim Verdünnen mit
Wasser und nachherigem Erwärmen zur Geltung.

7G. Beythien, A. und Friedrich, A. Über den Nachweis von Bohr-
zucker in Milchzucker. (Pharm. Centralh., XLV11I, 1907, p. 39.)

Als Vorprüfung am geeignetsten bezeichnen die Autoren die Probe von
E. Schmidt, wonach man die Milchzuckerprobe auf konzentrierte Schwefelsäure
schüttet. Rohrzuckerfrei sind die Proben, die einige Minuten völlig unver-
ändert bleiben.

Bezüglich der eingehenden anderen chemischen Proben usw. muss auf
das Original verwiesen werden.

77. Biechele, M. Reaktionen der für die Pharmazie wichtigen
Verbindungen. Eine Anleitung zur Ausführung von chemischen Reaktionen
für Apothekerincipienten und Studierende der Pharmazie. Stuttgart 1908,
Ferdinand Enke.

78. Bierbaum, K. Ein Beitrag zur Pharmakologie des Ricinus-
samens. Dissert., Giessen 1906.

Der Verf. gibt an, dass durch seine sehr umfangreichen und genauen
Untersuchungen die bisher geglaubte heftige Giftigkeit der Ricinussamen
anzuzweifeln ist. Einem Pferde gab der Autor pro die bis zu 100 g Ricinus-
samen, ohne dass auch nur die allerleiseste Erkrankung des Tieres zu kon-
statieren gewesen wäre.

79. Bird, Wacholderöl. (Pharm. Journ., LXX1X, 1907, p. 180.)
Veranlassung zur vorliegenden Arbeit gaben dem Verf. die vor allen Dingen

in Pmgland immer mehr und mehr auftauchenden Klagen über die völlige
Verschiedenheit des in den Handel kommenden Ricinusöles. Der Autor gibt
als Grund an, dass die englischen Öle völlig normale Destillate seien, wogegen
die aus Ungarn kommenden Öle aus den leichter siedenden Teilen beständen.
Die ungarischen Wacholderöle werden nicht direkt aus den Beeren
destilliert, sondern als Nebenprodukt bei der Wacholderbranntweinfabrikation
gewonnen.

80. Blarez und Üeniges. Vergiftungen durch Arsenik. (Schweiz.
Wochenschr. f. Chemie u. Pharmazie, 1907.)

Bronardel gibt in seinem Buche über Vergiftungen die folgenden Quanti-
täten von Arsenik als tödliche Dosen an:

für den Magendarmkanal . . . 0,671 g arsenige Säure

für die Leber 0,639 g „ „

für die Niere 0,060 g „

für das gesamte Gehirn . . . . 0,008 g „ „

Man kann die tödlich wirkende Dosis bis auf 60 — 70 cg erhöhen.
Spezieller Einzelheiten wegen sei auf das Original verwiesen.

28*

436 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [22

81. Blareg, Ch. Nachweis kleiner Mengen von Erdnnssöl im
Olivenöl. (Les corps gras indusir., XXXIII, 1907, p. 210.)

82. Blasdale, W. C. Das ätherische Öl des pacifischen Lebens-
baumes. (Journ. Amer. Chern. Soc, XXIX, 1907, p. 539 — 541.)

Verf. erhielt aus 13,8 kg der lufttrockenen Blätter des pacifischen
Lebensbaumes, Thuja plicata, durch Wasserdampfdestillation etwa 400 ccm
eines dunkelbraunen Öles von durchdringendem Terpentingeruch. Dasselbe
hatte einen Siedepunkt von 150 — 225°, das spezifische Gewicht 0,8997 bei 15°,
den Brechungsindex 1,4575 sowie die optische Drehung im 100-mm-Rohr
-f- 1 ° 45 '. Die zwischen 198° und 200° übergehende Fraktion des Öles scheint
dessen wichtigsten Bestandteil zu enthalten, der in seinen wesentlichsten
Eigenschaften mit dem von Wallach beschriebenen Thujen übereinstimmt.
Jedenfalls besteht das Öl von Thuja plicata aus einem Gemisch von zwei
optisch aktiven Modifikationen, die indessen durch Destillation nicht getrennt
werden können. Es gelang auch nicht, die Bestandteile der höheren und
niederen Fraktionen zu identifizieren. Aus dem Holz von Thuja plicata, das
einen sehr typischen Geruch besitzt, konnte zwar kein Öl isoliert werden,
wohl aber geringe Mengen einer kristallinischen weissen Substanz, die bei 80°
schmilzt und der Formel C10H12Oo zu entsprechen scheint.

83. Blau. Über ein neues Verfahren zum mikrochemischen
Nachweis von Flechten säuren. (Vortrag, gehalten 'auf der Naturf.-Vers.
Dresden, 1907.)

Wesentlich für die vom Verf. angegebene, von Senft gefundene, neue
Methode ist die Eigenschaft der Flechtensäuren, aus heissen fetten Ölen in gut
ausgebildeten Kristallen sich auszuscheiden.

Die Kristallisation nimmt der Autor auf dem Objektträger selbst vor in
einem Tropfen Knochenöl. Entweder benutzt er hierbei das Objekt selbst
oder den abgedampften Äther- oder Alkoholauszug.

Durch dieses von Senft gefundene Verfahren gelang es eine Anzahl
Flechtensäuren in gut ausgebildeten Formen zu erlangen.

84. Bloch, A- Die Soja, ihre Kultur, Zusammensetzung und An-
wendung in der Medizin, sowie in der Ernährung. (Bull, scienc.
pharmacol., XIV, 1907, p. 53G, 593.)

85. Bloch, A. Bestimmung des Citrals im Lemongrasöl. (Bull,
scienc. pharm., XV, 1908, p. 72.)

Nach genauen Besprechungen der einzelnen bisher angewendeten Me-
thoden zur Bestimmung des Citrals im Lemongrasöl kommt der Verf. zu
der Ansicht, dass es nicht möglich sei, wirklich vollkommen genau das Citral
im Lemongrasöl zu bestimmen. Die von Schimmel & Co. ausgeführte
Schimmeische Methode kann bei ganz genauer Ausführung nur rein zu ver-
gleichenden Resultaten verwendet werden.

Der Gehalt kann nur als Mittel von 4 — 6 Bestimmungen gefunden
werden und zeigt dann noch Differenzen von 2— 3°/0.

Bezüglich der sehr genauen Einzelausführungen muss auf das Original
verwiesen werden.

8(i. Bloemendahl. W. H. Fettbestimmung in Copra. (Pharm. Weekbl.,
XLIV, 1907, p. 873.)

Der Verf. benutzt folgendes Verfahren bei der Bestimmung des Fettes
in der Copra, dem ülreichen Kerne von Cocoa nucifera.

23] Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 437

Die Fehlergrenze beträgt bei einem Fettgehalt von ca. 60% nur 1 — 2%.
Als Extraktionsmittel benutzt der Verf. Benzol, besonders deshalb, weil bei
dem niedrigen specifischen Gewicht die unlöslichen Pflanzenreste der Oopra
sich schneller absetzen, und so das Filtrieren bedeutend erleichtert wird.

2,97 g geraspelte Copra kocht man drei Stunden hindurch in einem
Messkölbchen von 150 ccm Inhalt mit 125 ccm Benzol im Wasserbade, am
Bückflusskühler.

Nach dem Abkühlen wird auf 150 ccm aufgefüllt. Dann wird rasch
umgeschüttelt und das Ganze eine halbe Stunde zum Absetzen stehen ge-
lassen. Dann wird schnell durch Papier filtriert, und zwar 100 ccm, indem
man zuerst ca. 100 ccm weglaufen lässt, dann bringt man die Flüssigkeit in
ein getragenes Kölbchen, destilliert das Lösungsmittel ab und trocknet bei 95°
den Rest zwei Stunden lang. Die Gewichtszunahme des Kölbchens zeigt dann
genau die Fettmenge aus 2 g Oopra an.

87. liooliin. R. und Kubler. K. Über die Kawarawurz el. (Arch. der
Pharm., 1908, p. 663.)

Ein Missionar sandte die Kawarawurzel, deren Stammpflanze zu den
Asclepiadaceen zu gehören scheint, aus Transvaal zur Untersuchung ein.
Dort soll sie als gutes Mittel gegen Krebs Verwendung finden.

Verf. gibt dann eine makro- und mikroskopische Beschreibung der Droge.

Der Droge ist ein intensiv aromatischer Geruch und eine starke
Bittere im Geschmack zu eigen.

Bei der chemischen Verarbeitung gab das ätherische Extrakt eine an-
sehnliche Menge ätherischen Öles.

Aus dem alkoholischen Extrakt wurde das Glycosid „Kawarin" ge-
wonnen. Dieses wird aus der Wurzelrinde hergestellt.

Im Capillarrohre bleibt das reine Kawarin völlig unverändert bis zu
132°, Zersetzung erfolgt bei 188° unter Gasent Wickelung.

Die wässerige Lösung ist optisch inaktiv.

Bei der Hydrolyse liefert Kawarin Zucker.

Aus den Kohlenhydraten konnten Osazone vom Schmelzpunkt 215° und
217° hergestellt werden.

88. Bolton, W. von. Das Burseracin und seine Wirkungen. (Zeitschr.
f. Elektrochem., 1908, p. 211.)

Unter „Burseracin" versteht der Autor jenen wundheilenden Bestand-
teil des Myrrhenharzes.

Zur Erlangung dieses Produktes wird der alkoholische Auszug des Harzes
eingedampft und dann mit Wasser gekocht.

Man erhält das Burseracin als harzähnliche braune Substanz nach Ein-
dampfen des Filtrates. In kürzester Zeit zeigt sich Hautbildung. Dem ge-
reinigten Produkt gibt der Verf. die empirische Formel :

CioHi404
und eine Moleculargrösse von 396, die der Formel O20H28O8 entspricht. .

Der Schmelzpunkt des Burseracins liegt bei 78,15°.

Als Oxyburseracin bezeichnet der Autor eine überaus explosive Ver-
bindung des Burseracins mit Wasserstoffsuperoxyd.

Das Oxyburseracin ist radioaktiv. Es wurde lebhafte ß- und wenig leb-
hafte /-Strahlung konstatiert. Im Laufe von dreiviertel Jahren geht es in
einem Körper über, der weder y- noch ^-Strahlen besitzt.

438 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [24

Bezüglich der medizinischen Wirkungen des Produktes sei auf das
Original verwiesen.

89. Boorsma, W. G. Pharmakologische Mitteilungen. IV.' (Bull.
du Departm. de l'Agricult. des Indes Neerland., XVI, 1908.)
Von den Resultaten sei das Folgende mitgeteilt:

Polygalaoeae:

Polyyala glomerala Lour.

Das als „lidah ajam" oder auch als „maläla" bezeichnete Kraut gehört
auf Java zu dem Arzneischatz der Eingeborenen. Ein Aul'guss desselben wird
innerlich genommen, namentlich gegen Husten und Asthma, jedoch auch, in
Verbindung mit anderen Mitteln, gegen Durchfall.

Giftig ist die Pflanze nicht in irgend erheblichem Masse: Fische zeigten
nach einem Aufenhalt von einer Stunde in einem, im Verhältnis 1 : 100 dar-
gestellten Infus keine Intoxikationserscheinungen.

Die Wurzel hat den Geruch von Methylsalicylat, welche Verbindung denn
auch im Destillate leicht nachgewiesen werden kann. Obgleich viel schwächer,
fiel doch die Reaktion auf Methylsalicylat in dem, aus den fast geruchlosen
Blättern, erhaltenen Destillate ebenfalls positiv aus.

Da ein Saponingehalt erwartet wurde, kochte der Verf. über Kalk getrock-
netes Kraut mit Methylalkohol aus. Während der Destillation des Methylalkohols
schieden sich, ausser grünem Wachs, Kristalle ab, welche, von dem Wachs
getrennt, mit Methylalkohol und Äther gewaschen, ein gelbliches Pulver von
kaum bitterlichem Geschmack bildeten. Dasselbe war in absolutem Alkohol
sehr schwer löslich: zweimaliges Kochen mit viel Alkohol liess noch einen
Teil ungelöst. Aus dem Alkohol kristallisierte beim Abkülüen nichts aus, nach
teilweiser Destillation schied sich ein etwas unreines, grünlich gefärbtes Pulver
ab: das Filtrat wurde auf ein kleines Volumen abgedampft. Es fiel eine blass-
gelbe Substanz aus, welche aus prismatischen Kristallen bestand; zwischen
245° und 255° schmolz dieselbe allmählich zu einer schwarzen Masse zu-
sammen; in Wasser war sie, auch beim Kochen, nur wenig löslich, sie krystalli-
sierte aus Wasser in gelben Nadeln. Auch in ihrem übrigen Verhalten, gegen
verdünnten Alkohol und andere Lösungsmittel, gegen Alkalien, Bleiacetat,
alkalische Kupfer- und Silberlösung usw. stimmte diese Substanz vollständig
mit dem, aus Blättern und Rinde von Manyifera indica isolierten, Farbstoff
überein, mit welchem er deshalb für identisch erklärt werden darf.

Aus der Mutterlauge der Farbstoffkristalle wurde der Methylalkohol
grösstenteils abdestilliert und weiter auf dem Wasserbade entfernt, das Extrakt
wiederholt in der Kälte mit Petroleumäther ausgezogen, welcher anfangs grün-
gelb, später gelb gefärbt wurde, indem er eine wachsartige, in Alkohol mit
intensiv gelber Farbe lösliche, nicht näher untersuchte Substanz auflöste.
Nachdom darauf das Methylalkoholextrakt wieder durch Erwärmen von
Petroleumäther befreit war, wurde der körnige, braune Rückstand bei gewöhn-
licher Temperatur öfters mit kleinen Mengen Methylalkohol verrieben. Es
blieb ein fast weisses Pulver zurück, welches, aus Methylalkohol umkristallisiert
und mit Methjdalkohol und Äther ausgewaschen, grosse, wohl ausgebildete,
farblose Kristallblättchen lieferte. Ausbeute etwa 2,5 °/0 aus lufttrockenem
Kraut. Diese Kristalle hatten einen süssen Geschmack. Sie reduzierten
Fchlingsche Lösung nicht, und auch nach längerem Kochen mit verdünnter
Salzsäure bildete sich keine reduzierende Substanz. Die Kristalle sind optisch
aktiv. |a]D wurde = -f- 44° befunden. Schmelzpunkt 148°. Vielleicht ist

251 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. 439

dieser Körper identisch mit dem Polygalit, einem Süssstoff, der in anderen
Polygalaceen gefunden ist.

Der Rückstand des Methylalkohols, welcher zur Reinigung des Süssstoffs
verwendet war, wurde zum Teil zur Untersuchung auf Saponin, in wässeriger
Lösung dialysiert, zur Beseitigung von Gerbstoff mit Magnesia verdunstet, der
Rückstand mit Methylalkohol ausgekocht, der Alkohol grösstenteils abdestilliert
und Äther hinzugefügt. Es entstand nur eine geringfügige, bräunliche
Fällung, welche mit Wasser eine stark schäumende Lösung bildete: dieselbe
trübte sich beim Kochen mit Salzsäure und lieferte dann ein reduzierendes
[Ultrat. Mit Bleizucker entstand eine Fällung, das Filtrat wurde durch Blei-
essig wieder getrübt. Mit starker Schwefelsäure gab die Substanz eine, nicht
besonders deutliche, Saponinreaktion. Hämolytische Eigenschaften fehlten.

Saponin ist also sicher vorhanden, wurde jedoch nur in unerheblicher
Menge und in unreinem Zustand dargestellt. Ob ein einziger oder ob zwei
Saponinkörper vorkommen, bleibt fraglich. Ein Versuch, das Saponin nach
der Bleimethode abzuscheiden, hatte noch weniger befriedigende Resultate.

Der andere Teil des obigen Methylalkohols wurde, durch Fällen mit
Bleiessig, Entbleien mittelst Schwefelsäure, Alkalischmachen und Ausschütteln
mit Chloroform, auf Alkaloid untersucht; das Ergebnis war zwar nicht absolut
negativ, jedoch ist der Alkaloidgehalt jedenfalls unbedeutend.
Xanthophyttum excelsum Bl.

Ein Exemplar von dieser Species gehört zu den grössten und schönsten
Bäumen des Buitenzorger Gartens.

Ein alkoholisches Extrakt der frischen Rinde schäumte stark mit Wasser.
Mit Methylalkohol maceriert, ging es bis auf etwas Wachs in Lösung. Mit
Äther versetzt, gab die Lösung zunächst einen teilweise kristallinischen
Niederschlag, aus dem, durch Waschen mit wenig Methylalkohol und mit
Äther, süss schmeckende, farblose Kristalle zurückgehalten wurden. Dieselben
schmolzen gegen 190°, waren in Wasser sehr leicht löslich. Ihre Lösung
reduzierte alkalische Kupferlösung nicht, nach kurzem Kochen mit Salzsäure
dagegen wirkte sie stark reduzierend. Dieser kristallinische Körper ist also
eine Zuckerart.

Weiterer Ätherzusatz zu der Methylalkohollösung des Extraktes lieferte
•eine amorphe Fällung, aus welcher durch Dialyse usw. ein wenig noch un-
reines Saponin gewonnen wurde. Dem Ätherfiltrat entzog Na^CC^- haltiges
Wasser einen Farbstoff, der sich in Alkalien mit stark gelber Farbe und grüner
Fluorescenz löste: Äther nimmt der Farbstoff leicht auf.

Die hämolytische Wirkung des Saponins war zwar nicht besonders
stark, aber doch sehr deutlich: die Lösung 1 : 1000 war bei einem Blutgehalt
von 1 °'0 in einer Minute klar; 1 : 10000 war die Lösung nahezu wirkungslos.

Blätter lieferten gleichfalls ein wenig Saponin, nebst gelbem wachs-
.artigen Farbstoff.

Das Holz enthält kein Saponin. Ein bräunlicher Farbstoff ist hier vor-
handen, der in Wasser unlöslich ist. in Na2C03-haltigem Wasser sich leicht
löst, mit gelber Farbe, ohne Fluorescenz.

Celastraceae.

Nachdem eine im Botanischen Garten wachsende Catha-Ärt alkaloidhaltig
befunden war, wurde Material von einigen anderen Celastraceen gleicher
Provenienz der Prüfung unterzogen. Die Ergebnisse dieser Untersuchungen
werden im nachstehenden mitgeteilt.

440 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [26

Pleurostylia Wightii W. et A.

Nachdem das Vorkommen von Alkaloid in den Blättern festgestellt war.
wurde dasselbe nach folgendem Verfahren in etwas grösserem Massstabe
dargestellt. Das Blattpulver wurde mit starkem Alkohol einige Male aus-
gekocht, der Alkohol aus den Dekokten grösstenteils abdestilliert, die zurück-
gebliebene Flüssigkeit mit Wassei versetzt und auf dem Wasserbade der
Alkohol abgedunstet. Eine wachsartige Substanz schied sich ab. Die filtrierte
wässerige Flüssigkeit, welche Alkaloid enthielt, wurde durch Bleiacetat von
Gerbstoff usw. befreit, durch Natriumphosphat entbleit und etwas eingeengt,
einige Male mit viel Chloroform geschüttelt (I), nachher mit Ammoniak alkalisch
gemacht und das Schütteln mit Chloroform wiederholt (II).

Der Chloroformrückstand aus I, mit HCl-haltigem Wasser ausgezogen,
gab daran Alkaloid sowie gelben Farbstoff ab, welcher durch Schütteln mit
Äther, Benzol und Chloroform sich wenigstens teilweise entfernen liess,
während das Alkaloid zum grössten Teil in der sauren wässerigen Lösung
zurückblieb, derselben jedoch, nachdem sie mit Ammoniak alkalisch gemacht
war, durch wiederholtes Schütteln mit grossen Mengen Chloroform entzogen
werden konnte. Der Rückstand des Chloroforms, mit angesäuertem Wasser
maceriert, blieb noch zum Teil ungelöst; die erhaltene Losung wurde noch
durch Schütteln mit Chloroform gereinigt, mit Na2C03 übersättigt und aber-
mals mit Chloroform geschüttelt. Aus dem Chloroform blieb jetzt ein, zwar
amorphes, jedoch farbloses und in säurehaltigem Wasser ohne Rückstand lös-
liches Produkt zurück.

Der Rückstand des oben mit II bezeichneten Chloroforms löste sich in
HCl-haltigem Wasser zum Teil auf. Aus der Lösung wurde, in ähnlicher
Weise wie oben angegeben, Alkaloid erhalten.

Das aus dem alkoholischen Dekokte beim Erwärmen mit Wasser ab-
geschiedene Wachs zeigte sich gleichfalls alkaloidhaltig. Petroleumäther löste
es bis auf einen kleinen Rest. Der Lösung sowie dem ungelösten Anteil
entzog angesäuertes Wasser Alkaloid, dessen Reinigung wieder durch eine
Reihe von Ausschüttelungen saurer und alkalischer Flüssigkeiten mit Chloro-
form, sowie durch Ausfällung einer gefärbten Nebensubstanz aus Chloroform-
lösung durch Petroleumäther, angestrebt wurde. Darauf wurde die sämtliche
erhaltene Alkaloidmenge noch in saurer Lösung mit Äther, Benzol und Chloro-
form gereinigt, Natriumcarbonat im Überschuss zugesetzt und die freigewordene
Base in Chloroform aufgenommen. Das Chloroform hinterliess jetzt einen farb-
losen, amorphen Rückstand. Auch aus verdünntem Alkohol, mit dem es zur
Entfernung von Spuren Chloroform erwärmt wurde, blieb das Alkaloid amorph
zurück.

Das bitter schmeckende Pleurostylia- Alkaloid ist in Wasser sehr wenig
löslich, ebenso in Petroleumäther; leicht löslich ist es in Alkohol, Methyl-
alkohol, Äther, Aceton, Essigäther und Chloroform, weniger leicht in Benzol.
Die Lösung in verdünntem Alkohol reagiert auf Lackmus sehr schwach alka-
lisch, auf Phenolphtalein nicht.

Die meisten Salze sind in Wasser leicht löslich; schwer löslich ist das
Nitrat. Wird etwas Alkaloid mit HN03-haltigem Wasser verrieben, so löst es
vsich zwar zunächst auf, alsbald kristallisiert jedoch das Nitrat körnig aus
Aus Alkohol kristallisiert das derart abgeschiedene Nitrat in besonders
schönen, baumartig verzweigten Gebilden. Wird einer etwas konzentrierten
Lösung eines Salzes des Alkaloides Salpetersäure zugesetzt, so entsteht eine

27] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 441

weisse, amorphe Fällung, welche sich jedoch bald in Kristallaggregate tim-
ändert. Dieses Verhalten des Nitrats wurde noch zur Reindarstellung des
Alkaloids benutzt. Nachdem dasselbe als Nitrat gefällt war, wurde dieses mit
Wasser ausgewaschen, in wenig Alkohol gelöst und Chloroform nebst alkali-
haltiges "Wasser hinzugefügt: nach dem Schütteln das Chloroform durch
frisches ersetzt und abermals geschüttelt, die gesamte Chloroformmenge mit
Wasser gewaschen, filtriert und abdestilliert. Der Rückstand war wieder
völlig amorph, und auch aus anderen Lösungsmitteln wurden keine Kristalle
erhalten. Von den Salzen scheinen — ausser dem Nitrat — das Sulfat und
das Phosphat am meisten Neigung zur Kristallisation zu besitzen: dieselben
blieben beim Verdunsten ihrer Lösungen über Schwefelsäure wenigstens zum
Teil in Kristallen zurück.

Im Capillarrohr erhitzt, fängt das Alkaloid bei etwa 135° an, unter
Bräunung zusammen zu sintern, es ist bei etwa 140° geschmolzen.

Besonders charakteristische Reaktionen mit starken Säuren usw. wurden
nicht beobachtet; nur dass die nahezu farblose Lösung in starker Schwefel-
säure mit molybdänsaurem Ammon allmählich eine schwach violette färbe
annimmt.

Die schwach saure Lösung des Alkaloids — 1: 1000 — in mit HCl an-
gesäuertem Wasser liefert mit Pikrinsäure, Kaliumquecksilberjodid, Jodjod-
kalium, Phosphormolybdänsäure, Phosphorwolframsäure, Kaliumcadmiumjodid
und Goldchlorid starke Fällungen, weniger starke, jedoch deutliche Trübungen
mit Kaliumchromat und Phosphorantimonsäure; Platinchlorid, Tannin, Rhodan-
kalium und Kaliumdichromat rufen bei dieser Verdünnung keine Trübung
hervor.

Durch Kali oder Natron, Kalk, Baryt, Ammon, sowie durch kohlen-
saures und doppeltkohlensaures Alkali wird das Pleurostylia- Alkaloid aus den
Lösungen seiner Salze amorph ausgefällt. Ein Überschuss der Fällungsmittel
löst nur sehr wenig. Das ausgefällte Alkaloid geht leicht in Äther, Chloro-
form usw. über, aus saurer Lösung wird es nur schwierig ausgeschüttelt.

Das Alkaloid ist ziemlich giftig; 5 mg 1 als Hydrochlorat einem 58 g
wiegenden Frosche unter die Haut gespritzt, verursachte eine tödliche Intoxika-
tion: Pupillenverengerung und Respirationsstörung traten alsbald ein; nach
20 Minuten hatte die Atmung aufgehört und war das Tier fast vollständig
gelähmt; kurze Zeit nachher war jedes Lebenszeichen verschwunden; das Herz
stand still und zeigte systolisches Vorkommen.

4 mg, einem grösseren Frosche eingespritzt, hatten kaum merkliche Ver-
giftungserscheinungen zur Folge.
Catha spec.

Eine nicht näher bestimmte Catha- Art aus dem botanischen Garten er-
gab bei der Untersuchung nachstehende Resultate.

Aus einer mit starkem Alkohol erhaltenen Abkochung der Blätter schieden
sich während und nach der Destillation Kristalle nebst dunkelgelbem Wachs
ab. Maceration mit Petroleumäther liess die Kristalle ungelöst, welche, mit
Petroleumäther und Äther gewaschen und aus Alkohol, darauf aus Wasser
unkristallisiert, vollkommen farblos erhalten wurden und einen süssen Ge-
schmack zeigten. Die Ausbeute betrug etwa 2°/0, auf lufttrockenes Blattpulver
bezogen. Die Kristalle reduzierten Fehlingsche Lösung nicht weder direkt
noch nach dem Kochen mit verdünnter Salzsäure. Dagegen wurde nach dem
Erhitzen mit Bleisuperoxyd und Salzsäure starke Reduktion beobachtet.

442 Berichte über die pkarrnakognostische Literatur aller Länder. J28

Schmelzpunkt (186°) und weitere Eigenschaften kennzeichneten diesen Körper
als Dulcit.

Der Petroleumäther, welcher bei der Isolierung des Dulcits verwendet
war, hinterliess einen zum Teil grüngelben, wachsartigen, zum Teil kristal-
linischen Rückstand, der sich in verschiedenen Lösungsmitteln leicht und voll-
ständig löste. Teilweise Trennung der Kristalle von dem Wachs wurde derart
erreicht, dass der ganze Petroleumätherrückstand in kochendem 70prozentigen
Spiritus aufgenommen und der Alkohol allmählich abgedunstet wurde; zunächst
setzte sich hauptsächlich Wachs ab, eine weitere Ausscheidung bestand wesent-
lich aus Kristallen, welche durch Umkristallisieren aus Methylalkohol voll-
kommen rein und farblos erhalten wurden. Schmelzpunkt 195°. Die Substanz
war in wässerigem Alkali unlöslich, lieferte mit starker Schwefelsäure ganz
allmählich eine rote Farbe, sowie in Chloroformlösung mit Schwefelsäure
Phytosterinreaktion. Jetzt wurde das ganze Gemisch von Wachs und Kristallen
mit alkoholischem Kali gekocht und die Lösung in Wasser ausgegossen, nach
dem Absitzen der gelbe Bodensatz mit Petroleumäther ausgezogen und dieser
der freiwilligen Verdunstung überlassen. Es bildeten sich schöne nadeiförmige
Kristalle, welche, mit etwa Petroleumäther gewaschen, rein weisse Farbe und
wieder den Schmelzpunkt 195° zeigten. Eine Ohloroformlösung dieses Körpers,
mit Schwefelsäure geschüttelt, nahm auf die Dauer eine rote Farbe an, beim
Verdunsten des Chloroforms hinterblieb ein farbloser Rückstand; die Lösung
in Essigsäureanhydrid wurde beim Hinzufügen von Schwefelsäure intensiv
violett. Es Hess sich leicht an Acetylester darstellen, der nach vorher-
gegangener Bräunung, bei etwa 220° schmolz. Es ist hier also ohne Zweifel
ein phytosterinartiges Produkt abgeschieden. Der Gehalt an diesem Bestandteil
wird für lufttrockene Blätter etwa 2°/0 betragen.

Der Destillationsrückstand des Alkoholdekoktes, nach der Entfernung
der oben erwähnten Stoffe zur Trockene verdunstet, gab an Chloroform eine
beträchtliche Menge eines gelben Farbstoffes ab, der als amorphe, wachsartige
Substanz zurückblieb. Der in Chloroform nicht gelöste Anteil des alkoholischen
Extraktes, in Wasser aufgenommen, mit Bleiacetat gefällt, mit Natriumphosphat
entbleit und mit Chloroform geschüttelt, lieferte einen alkaloidhaltigen Rest.
Das Alkaloid blieb auch bei weiterer Reinigung amorph. Gewiss ist der Ge-
halt der Blätter an Alkaloid sehr gering, wie auch die Bearbeitung einer
neuen Menge nach dem Verfahren Beitters lehrte.
Siphonodon celastrinus Griff.

Blätter und Rinde lieferten nur eine sehr geringe Menge Alkaloid. Ein
weisser, kristallinischer Bestandteil, welcher bei der Destillation des Alkohol-
dekoktes sich ausschied,' war in Alkohol, Äther und Chloroform leicht löslich,
schwierig in Petroleumäther, unlöslich in wässerigem Alkali; beim Kochen mit
alkoholischem Kali erlitt er keine Veränderung. Schmelzpunkt gegen 230°.
Dieser Körper gab nicht die gewöhnlichen Phytosterinreaktionen; Schütteln
mit starker Schwefelsäure liess die Lösung in Chloroform ungefärbt, die Säure
färbte sich gelb ; die Lösung in Essigsäureanhydrid wurde mit Schwefelsäure
olivengrün. Eine Acetyl Verbindung schmolz bei etwa 200°.

Lecythidaceae
Chydenanihus excelsus Miers (Barr'mgtonia Vriesei T. et B).

Über das Saponin der hier genannten, sowie verwandter Species liegen
schon frühere Untersuchungen vor.

Nach Greshoff enthält die, zum Betäuben von Fischen angewandte.

29] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Lander. 443

Wurzelrinde von Barringtonia insignis Miq. (= B. serrata Miq.) in absolutem
Alkohol leicht lösliches Saponin. Rinde und Samen von Chydenanthus excelsns
Miers lieferten ihm gleichfalls, durch Extraktion mit kaltem absoluten Alkohol,
nach vorheriger Erschöpfung mit Äther, eine saponinartige Substanz, welche
jedoch weniger leicht in Alkohol löslich war als das Rindenglucosid von
B. serrata und nur '/3 von dessen Giftigkeit besass. Weil gibt an, er habe in
der trockenen Wurzelrinde von B. serrata l,2°/0, in der Stammrinde 0,7°/0 neu-
trales Saponin gefunden, 8° 0 einer, ebenfalls neutralen Saponin Substanz in den
trockenen Samen von Ch. excelsns. Er erteilt dem „Barringtonia-Sa,^omna
— mutmasslich ist dasjenige aus Chydenanthus- Samen gemeint — die
Formel 018Ho5O10. Die gleiche Zusammensetzung — und zwar Ci8H25
{OH)3Ü7 — findet van den Driessen Mareeuw für sein „Barringtonin", welches
er aus den Samenkernen von B. speciosa Gärtn. darstellte. Er erklärt dasselbe
für identisch mit dem Saponin von B. serrata und Ch. excelsns. Die quanti-
tative Bestimmung ergab einen Gehalt von 3,271 °/0 in den trockenen Samen.
Daneben wurden gefunden 2,9°/0 fettes Öl, 0,54°/0 Gallussäure sowie l,082°/0
„Barringt ogenitin": letzteres ist ein farbloser, in Äther löslicher, kristallinischer
Körper, dem die Formel C15H2402 — Ci5H21(OH)s — zukommt.

Verf. beschäftigten in erster Linie die Samenkerne von Chydenanthus
excelsns, welche, unter dem einheimischen Namen „Bisolä", in beschränktem
Masse medizinische Anwendung finden. Dieselben werden von den Händlern
in grob zerschnittenem Zustande vorrätig gehalten, und zwar sind die Stücke,
•obgleich sich dieselben mit geringer Mühe vorzüglich trocknen und dann un-
verändert aufbewahren lassen, zumeist mehr oder weniger verdorben und
riechen ekelhaft, während den frischen Samen ein schwacher, jedoch an-
genehmer Geruch eigen ist. Ganze Samen oder sogar Früchte werden zu-
weilen in der Handelsware angetroffen, deren Bau keinen Zweifel darüber
bestehen lässt, dass man es tatsächlich mit Chydenanthus- Samen zu tun hat.

Frisches Material zur Untersuchung erhielt der Autor aus dem botanischen
•Garten, wo ein grosses Exemplar des Baumes reichlich Früchte trägt.

Die reifen Samenkerne von Ch. excelsns haben in frischem Zustande ein
mittleres Gewicht von etwa 30 g. Dieselben sind weiss und werden beim
sorgfältigen Trocknen kaum bräunlich gefärbt.

Petroleumäther entzieht dem Pulver ein wenig fettes Öl (+ l,5°/0).
Äther nimmt darauf, neben sehr wenig Gallussäure, einen farblosen, in Wasser
unlöslichen Körper auf, der aus Alkohol allmählich auskristallisiert. Diese
Substanz, welche wohl mit dem Barringtogenitin identisch ist, wurde nicht
näher untersucht.

Zur Darstellung des Saponins aus dem mit Äther ausgezogenen Pulver
wurde zunächst nach der Methylalkoholmethode vorgegangen, indem die aus dem
Destillationsrückstand des Methylalkoholauszugs mittelst Äthers gefällt, nahezu
weisse Substanz, in Wasser gelöst, der Dialyse unterworfen wurde. Nachdem
darauf der Inhalt der Diffusionshülse bis zur Sirupkonsistenz eingeengt war,
fielen auf Zusatz von Alkohol — etwa li Vol von 9i3°;0 — einige graue Flocken
aus, worauf im Filtrat alsbald eine sehr voluminöse weisse Ausscheidung sich
zu bilden anfing. Dieselbe wurde mit starkem Alkohol gewaschen, zwischen
Papier getrocknet und mit Alkohol gekocht. Aus dem Filtrate fiel beim Ab-
kühlen rein weisse Substanz aus. Es zeigte sich jetzt, dass diese aus etwas
konzentrierter wässeriger Lösung durch Alkoholzusatz in nadeiförmigen
Kristallenen niedergeschlagen wurde und eine weitere Ausbeute von diesem

444 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [30

kristallinischen Körper konnte in ähnlicher Weise aus der. beim Kochen mit
Alkohol ungelöst gebliebenen Portion erzielt werden.

Die Kristalle lieferten mit Wasser stark schäumende Lösungen. Dass
es sich hier wirklich um Saponin handelte, wurde durch die Beobachtung
ausser Zweifel gesetzt, dass auch nach wiederholtem Ausfällen die kristal-
linische Substanz die Eigenschaften der Saponinkörper behalten hatte.

Ein wenig kristallinisches Saponin konnte aus dem Wasser isoliert
werden, welches bei der Dialyse als Aussenflüssigkeit gedient hatte; bei weitem
die Hauptmenge war jedoch bei dieser Operation in der Hülse zurückgeblieben.

Auf Grund der gemachten Erfahrung wurde jetzt ein weniger umständ-
liches Verfahren zur Darstellung des Saponins versucht, und zwar wurde das
mit, Petroleumäther entfettete Pulver zweimal mit dem vierfach Gewicht
+ 70% Alkohols gekocht, das Dekokt destilliert und weiter eingeengt, und die
sirupdicke Masse allmählich mit 5 Vol. starken Alkohols versetzt, die zunächst
entstehende graue Fällung schnell abfiltriert, der nachher gebildete, grössten-
teils aus Nadeln bestehende Niederschlag mit viel Alkohol von 95°/0 gekocht
und dieser auf ein kleines Volum abdestilliert. Beim Abkühlen schied sich
das Saponin als weisses Pulver aus, welches wieder aus wässeriger Lösung
(1 :4) durch Alkohol kristallinisch gefällt wurde.

Auch so resultierte ein rein weisses Produkt. Beim Trocknen auf 120°
verlor es 16,8°/0 an Gewicht. Dasselbe lieferte mit Wasser eine klare, neutral
reagierende, stark schäumende Lösung, mit starker Schwefelsäure eine anfangs
orangefarbige Lösung, welche allmählich vom Bande aus purpurviolett
wurde; längeres Kochen mit verdünnter Salzsäure, Schwefelsäure oder Phos-
phorsäure ergab eine dichte Trübung und ein Fehlingsche Lösung reduzierendes
Filtrat; Essigsäure hatte diese Wirkung nicht. Die wässerige Lösung lieferte
mit normlem Bleiacetat eine weisse Fällung nach deren Entfernung das Filtrat
durch Bleiessig nicht getrübt wurde. In Alkohol, Äther usw. war die Substanz
kaum oder nicht löslich.

Der Versuch, aus dem Alkohol, aus welchem sich das Saponin bei der
ersten Darstellung abgeschieden hatte, weiteres, möglicherweise ein zweites
Saponin zu gewinnen, ergab folgendes. Nach dem Abdunsten des Alkohols
gab Bleiacetat einen Niederschlag, Bleiessig trübte darauf das Filtrat nicht
mehr. Die ausgewsachene Bleifällung wurde, in Wasser zerteilt, durch
Schwefelwasserstoff zersetzt, mit einem gleichen Volum starken Alkohols ver-
mischt — weil ohne diesen Zusatz Schwefelblei durch das Filter ging — , das
Filtrat zur Trockene verdunstet, der Rückstand mit Alkohol- Chloroformmischung
gekocht, die Lösung mit Äther versetzt. Der Ätherniederschlag besass Saponin-
eigenschaften — allerdings war die Wirkung auf Blutkörperchen weniger stark
als die des oben erwähnten Produktes — war jedoch in Alkohol verhältnis-
mässig leicht löslich.

Da also noch ein zweites, in Alkohol lösliches, Saponin vorhanden zu
sein schien — wie übrigens auch aus dem Befund Greshoffs hervorging — ,
wurde eine neue Menge des entölten Samenpulvers mit dem vierfachen Ge-
wicht absoluten Alkohols bei gewöhnlicher Temperatur unter häufigem Um-
schütteln maceriert, der Alkohol auf ein kleines Volum konzentriert, und, als
sich nach längerem Stehen nichts aus der Flüssigkeit abgeschieden hatte,
Äther im Überschuss zugesetzt. Das Gewicht der mit Äther gewaschenen
und getrockneten, weissen Ätherfällung betrug etwa 2°/0von dem des Samen-
pulvers. Dieses Produkt war amorph, in Alkohol ziemlich löslich mit merklich

31 J Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. 445

saurer Reaktion. Es zeigte das gewöhnliche Verhalten eines Saponinkörpers ;
durch normales Bleiacetat wurde es aus wässeriger Lösung vollständig gefällt.
Dasselbe wird hier weiter mit B bezeichnet werden, das zuerst erhaltene
Saponin mit A.

Ein wesentlicher Unterschied zwischen B und A bestand darin, dass
letzteres einen erheblich höheren Aschengehalt aufwies: bei einem quanti-
tativen Versuch hinterblieb aus luftrrockener Substanz von A 5,8 °/0 alkalisch
reagierender Asche, welche überwiegend Natrium- und Kaliumcarbonat ent-
hielt: daneben konnten auch Calcium, Schwefelsäure sowie eine Spur Chlor
nachgewiesen werden. Da nun B viel weniger Asche enthielt — bei einer
Bestimmung wurde l,8°/0 gefunden — und ziemlich sauer reagierte, lag der
Gedanke nahe, dass A einfach aus Alkalisalzen von B bestehen könnte. Diese
Vermutung wurde durch das Experiment wahrscheinlich gemacht. Es wurde
4 g von B in 26 ccm Wasser gelöst und die Lösung in zwei Hälften geteilt,
die eine Hälfte mit 8 ccm ^3 n. NaOH fast neutralisiert, der anderen 8 ccm
Wasser zugesetzt und hierauf zu jeder der beiden Flüssigkeiten 100 ccm ab-
soluten Alkohol hinzugefügt. Die neutrale Lösung zeigte anfangs nur Opales-
cenz und änderte sich in den ersten Standen nicht merklich, während die
andere ganz klar blieb. Am nächsten Morgen wurde letztere immer noch
klar befunden, in der neutralen Mischung dagegen hatte sieb eine sebr volu-
minöse Ausscheidung gebildet, welche aus schönen, wolligen Konglomeraten
von Nadeln zusammengesetzt war.

Ein weiterer Versuch zeigte, dass das Zustandekommen dieser Kristal-
lisation durch Zusatz einer geringen Menge von A in erheblichem Masse be-
schleunigt werden konnte. Wurde die, wie oben erhaltene, mit NaOH neutrali-
sierte Lösung nach Alkoholzusatz mit einer Spur von A geimpft, so war der
Anfang der Kristallbildung schon nach wenigen Minuten wahrnehmbar und
pflanzte sich dieselbe schnell durch die Flüssigkeit fort. Wenn KOH statt
NaOH zur Neutralisation verwendet wurde, so war das Ergebnis wesentlich
das gleiche. Sogleich schien die Kristallisation hier glätter vor sich zu gehen,
da dieselbe schon kurze Zeit nach dem Alkoholzusatz anfing. Freilich wurde
auch hier durch Impfen mit A die Ausscheidung der Kristalle gefördert.

Es ist also durch die beschriebenen Versuche festgestellt worden, dass
in den Samenkernen von Chydenanthus excelsus eine Saponinsäure vorkommt
neben Kalium- und Natriumsalzen wahrscheinlich der nämlichen Säure, welche
letztere die Eigenschaft besitzen, aus wässeriger Lösung durch Alkohol in nadei-
förmigen Kristallen gefällt zu werden. Tatsächlich kann man aus dem Samen-
pulver, nachdem dasselbe mit absolutem Alkohol einige Male maceriert und
sogar ausgekocht worden ist, durch Erhitzen mit verdünntem Alkohol, die
kristallinischen Saponinsalze ausziehen; nur werden sich von letzteren auch
aus dem Alkohol, mit dem gekocht wurde, beachtenswerte Mengen beim Ab-
kühlen nach der Destillation ausscheiden. Übrigens geht aus dem Umstände,
dass bei der ersten Darstellung das Hauptquantum von A während der Dialyse
nicht durch das Pergamentpapier diffundiert war, hervor, dass das Saponin
auch in der Lösung dieser kristallinischen Salze seine kolloide Natur nicht
verleugnet.

Der immer noch hohe Aschengehalt von B ist zum Teil aus einer Ver-
unreinigung mit A zu erklären. A ist ja auch bei gewöhnlicher Temperatur
in absolutem Alkohol, namentlich bei Anwesenheit von B, nicht völlig un-
löslich, und das Gelöste wird durch Äther zusammen mit der Säure gefällt.

446 Berichte über die pbarrnakognostische Literatur aller Länder. |32

Nachdem nun B in 95 prozentigem Alkohol gelöst war, schied sich im Verlauf
eines Tages eine erhebliche Menge von A aus der Lösung aus. Eine voll-
ständige Trennung von A und B war damit aber noch nicht erreicht, und
auch fraktionierte Fällung mit Äther genügte dazu nicht. Nach zwei Methoden
wurde jetzt versucht, aus A die freie Säure darzustellen. Die eine bestand
darin, dass eine gewisse Menge von A mit H.2S04 haltigem absoluten Alkohol
verrieben, das Filtrat mit Äther gefällt und der Niederschlag mit Äther aus-
gewaschen wurde: bei dem zweiten Versuch werde eine wässerige Lösung von
A mit Bleiacetat gefällt, der Niederschlag mit heissem Wasser wiederholt aus-
gewaschen, in Wasser zerteilt, durch Schwefelwasserstoff entbleit, Alkohol
zugesetzt zur Fällung des Schwefelbleis, und das Filtrat bei gelinder Wärme
zur Trockne verdunstet. Beide Verfahren lieferten vollständig weisse amorphe
Produkte, die beide noch etwa 1 °/0 Asche enthielten. Der Wassergehalt des
lufttrockenen Pulvers wurde nur für das mittelst Bleifällung dargestellte Präparat
bestimmt, durch Trocknen bei 120°; er betrug 14,4 °/0.

Die hämolytische Wirkung des letzten Präparates war nicht viel schwächer
als diejenige von A; durch Neutralisation einer konzentrierten wässerigen
Lösung mit Natronlauge, Hinzufügen von Alkohol und Impfen mit A konnte,
freilich erst nach längerem Stehen, eine reichliche Kristallisation erzielt werden.
Etwas mehr schien das Vermögen, Blutkörperchen zu lösen, bei der durch
HoSOj-haltigen Alkohol erhaltenen Säure abgeschwächt; kristallinische Ab-
scheidung des Natriumsalzes blieb hier aus. Es scheinen eben die starken
Säuren schon bei gewöhnlicher Temperatur nicht ohne Einwirkung auf das
Saponin zu sein, wie auch aus folgendem Versuche hervorgeht. 6 g von A.
in 00 ccm etwa 2,5proz. Salzsäure gelöst, wurde über Nacht stehen gelassen
und mit 40 ccm absolutem Alkohol versetzt, welcher einen amorphen, in
Alkohol löslichen Niederschlag gab. Derselbe wurde zwischen Filtrierpapier
ausgepresst und mit Äther gewaschen. Er war in Wasser etwas schwer löslich,
leicht in Alkohol; die konzentrierte alkoholische Lösung wurde durch Wasser.
namentlich auf Säurezusatz, gefällt. Eine Lösung 1 : 20 000, in 0,7proz. NaCl-
Lösung, mit l°/0 defibriniertem Blut versetzt, war erst nach 8 Minuten klar
geworden. Es hat also die Einwirkung der Salzsäure die blutlösende Kraft
des Saponins schon merklich herabgesetzt.

Schwefelwasserstoff scheint diesen Einfluss nur in geringem Masse aus-
zuüben, weshalb die Bleimethode zur Darstellung des Saponins Emplehhxng
verdient. Die nach dieser Methode erhaltene Säure löst sich in Wasser in der
Kälte erst langsam auf — viel schwieriger als die Alkalisalze — und bildet
damit eine, in konzentriertem Zustande zähflüssige Lösung, welche durch
Alkohol zunächst getrübt, bei weiterem Alkoholzusatz jedoch wieder klar wird.
Absoluter Alkohol löst bei gewöhnlicher Temperatur nicht leicht, beim Erhitzen
jedoch sehr reichlich; die abgekühlte Lösung bleibt klar, gibt mit wenig,
namentlich mit saurem Wasser, eine Trübung, welche durch mehr Wasser
wieder gelöst wird. Das gleiche Verhalten zeigt die Lösung in Methylalkohol,
welcher schon bei gewöhnlicher Temperatur die Säure äusserst leicht auf-
nimmt. Auch in etwas verdünntem Äthylalkohol, z. B. !)ö°/0, ist das Saponin
ohne Erwärmung sehr leicht löslich. Die Alkalisalze lösen sich in Methyl-
alkohol erst beim Erwärmen leicht auf. Verdunsten des Alkohols lässt einen
amorphen Rückstand ; sind jedoch einige Ivriställchen zugesetzt, so erstarrt
der ganze Rückstand in Nadeln.

33| Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 447

Barringtonia speciosa Gärtn.

Es wurde versucht, festzustellen, inwieweit das Saponin der Samenkerne
mit den aus Chydeuanthus erhaltenen Produkten Übereinstimmung zeigt.

Mit Petroleumäther entfettetes Pulver — 50 g — wurde mit absolutem
Alkohol zweimal maceriert und einmal aufgekocht, der Alkohol bis auf 50 ccm
abdostilliert: es schied sich nichts ab. Nach Ätherzusatz wurde der getrocknete
Niederschlag, der etwa 1 g wog, mit 20 ccm absolutem Alkohol maceriert;
10 ccm des Filtrates Hess 180 mg amorphen Rückstand. In 1 ccm Wasser
gelöst, mit Natronlauge neutralisiert und mit 4 ccm absolutem Alkohol ver-
setzt, lieferte derselbe, auf Zusatz von einigen Kristallenen Saponinsalz aus
Chydeuanthus, alsbald eine reichliche Abscheidung von sehr schön ausgebildeten
Nadeln.

Das mit absolutem Alkohol ausgezogene Pulver wurde jetzt dreimal mit
je 200 ccm etwa TOproz. Alkohols gekocht, die Dekokte destilliert und auf 15 ccm
eingeengt, ein gleiches Volum 95proz. Alkohol zugegeben und die zunächst
gebildete amorphe Fällung durch Filtration beseitigt: aus dem Filtrate setzten
sich allmählich rein weisse Nadeln ab, welche mit 50°/0 Alkohol gewaschen
und abgepresst, 250 mg wogen. Durch weiteren Alkoholzusatz wurden aus
dem Filtrat weitere, z. T. kristallinische, z. T. jedoch amorphe und mehr oder
weniger gefärbte Niederschläge bekommen.

Die kristallinischen Produkte, welche viel Asche enthielten, zeigten
Saponineigenschaften und durchaus Übereinstimmung mit den entsprechenden
Stoffen aus Chydenanthm excelsus. Die hämolytische Wirkung war ungefähr
die gleiche. Obwohl eingehendere Untersuchungen noch auszuführen bleiben,
kar.n jetzt schon mit grosser Wahrscheinlichkeit die Identität der Saponin-
körper in den Embryonen beider Arten behauptet werden.

Da dem Verf. Rinde von der zu dieser Familie gehörigen Plauchonia
mndaica Miq. zur Verfügung stand, prüfte ich dieselbe aui Saponin mit;
negativem Erfolg.

Anacardiaceae.
Mangifera indica L.

Blätter von Mangifera indica dienen bekanntlich in Britisch-Indien zur

Herstellung des als „Indischgelb" bekannten Farbstoffes: Rinder werden mit

denselben gefüttert und nachher der gesammelte Harn, wie es scheint, zur

Trockene verdampft. Hauptbestandteil des fertigen Produktes ist eine Magne-

siumverbinduug der Euxanthinsäure, welche letztere sich in Euxanthon und

Glucuronsäure spalten lässt. Euxanthon selbst ist im Indischgelb gleichfalls

enthalten.

Das Euxanthon

OH

- CO— / '^OH

- o-l

bildet blassgelbe, breite Nadeln oder Blätter. Schmelzpunkt 240° (korr.), sub-
limiert, unter teilweiser Zersetzung, in allen Kristallen, ist unlöslich in Wasser.
wenig löslich in Äther, leicht in siedendem Alkohol, in Ätzkali und in konzen-
triertem Ammoniak. Die alkoholische Lösung wird nur durch Bleiessig gefällt.
Eisenchloridlösung erzeugt eine grüne Farbe. Beim Erhitzen mit Wasser und
Natriumamalgam und nachherigem Ansäuern fällt ein amorpher, schwarz-
violetter Körper C26H1807 aus. (Beilstein.)

448 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [34

Der Mutterstoff, aus dem im Organismus der Kinder das Euxanthon
gebildet wird, scheint bis jetzt nicht studiert zu sein. Derselbe kommt sowohl
in der Binde wie in den Blättern des „Mangga"baumes vor. Am einfachsten
erhält man diesen Körper aus der Binde.

Die frische oder getrocknete Binde wird zerkleinert und mit Wasser
zweimal ausgekocht; für frisches Material nimmt man das erstemal etwa das
dreifache, das zweitemal das zweifache Gewicht an Wasser. Beim Abkühlen
der heissen Filtrate scheidet sich der Farbstoff in unreinem Zustande ab. Man
wäscht diesen Bodensatz mit Wasser aus, trocknet ihn ab und kocht ihn
wiederholt mit eiriem Gemische aus 3 Volumen Alkohol und 2 Volumen Wasser.
Nach der Filtration wird die erhaltene Flüssigkeit zur Entfernung des Alkohols
verdunstet, die sich abscheidenden Kristalle mit Wasser gewaschen, getrocknet^
einige Male mit absolutem Alkohol gekocht, schliesslich das Umkristallisieren
aus dem Alkoholwas sergt misch und das Kochen mit absolutem Alkohol
wiederholt.

Etwas schwieriger gestaltet sich die Darstellung des Farbstoffes aus den
Blättern, wo er neben grösseren Mengen harz- und wachsartiger Körper so-
wie anderen gefärbten Bestandteilen usw. vorkommt. Von den Wegen, die
hier zum Ziele führen, sei nur der einfachste erwähnt. Getrocknete Blätter
werden nacheinander mit Petroleumäther. Äther und absolutem Alkohol
extrahiert, darauf mit verdünntem Alkohol (Mischungsverhältnis wie oben)
ausgekocht, aus den Dekokten der Alkohol abgedunstet und die ausgeschiedenen
Kristalle wie oben gereinigt.

Man erhält so in beiden Fällen ein hellgelbliches Pulver, welches unter
dem Mikroskop aus prismatischen Kristallen zusammengesetzt erscheint. Das-
selbe unterscheidet sich durch geringe Löslichkeit in den meisten Flüssigkeiten.
Siedendes Wasser löst in 100 ccm etwa 180 mg, beim Abkühlen auf gewöhn-
liche Temperatur kristallisiert etwa 140 mg aus; wird die Mutterlauge genügend
eingeengt, so erstarrt sie in der Kälte gallertartig; aus der Gallerte wird
allmählich der Farbstoff wieder in gelben Kristallen erhalten.

Es fällt auf, dass die aus Wasser ausgeschiedene Substanz viel lebhafter
gefärbt ist, als die aus Alkohol kristallisierte. Wird ersteres Produkt mit
starkem Alkohol gekocht, so zeigt es bald die helle Farbe des letzteren. Der
Unterschied zwischen beiden besteht darin, dass der Farbstoff aus Wasser mit
Kristall wasser kristallisiert. Die lufttrockenen, hellgeblich gefärbten Kristalle
aus Alkohol erleiden bei 125° keinen Gewichtsverlust, das aus Wasser erhaltene
Produkt dagegen — dessen Gewicht mit der Feuchtigkeit der Luft etwas
wechselt — verliert bei 125° etwa 7,5 °/0, die Farbe wird dabei heller; bei
höherer Temperatur nimmt das Gewicht noch etwas ab: Erhitzen auf 155°
erhöht den gesamten Gewichtsverlust auf + 10°/0, der Kückstand ist jedoch
nach lang fortgesetzter Erhitzung grünlich gefärbt.

Die Löslichkeit in Alkohol ist gleichfalls gering; absoluter Alkohol, durch
Kochen mit überschüssigem Farbstoff gesättigt, lässt beim Abkühlen nichts
auskristallisieren, der Verdunstungsrückstand aus 100 ccm hat nur ein Gewicht
von Hb 70 mg, derselbe ist z. T. kristallinisch, z. T. amorph, firnisartig. Methyl-
alkohol löst beim Kochen etwa 70 mg in 100 ccm, Aceton und Butylalkohol
etwa 30 mg. In Essigäther, Chloroform, Benzol, Petroleumäther, Äther und
Schwefelkohlenstoff ist die Substanz nahezu unlöslich, in Glycerin etwa 500 mg
auf 100 ccm.

35] Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. 449

Besser als Alkohol und Wasser jedes für sich, lösen Mischungen von
Alkohol und Wasser, und zwar am besten bei einer StärKe von 60 Volum-
prozent Alkohol; kochend gesättigt, Hess ein derartiges Gemisch aus 100 ccm
1,84g Farbstoff zurück; Abkühlen auf Zimmertemperatur liess 0,58 g aus-
kristallisieren. Für 50 Volumprozent Alkohol waren diese Zahlen bzw. 1,14 g
und 0,0") g, für 66°/0: 1,13 und 0. Auih für andere Mischungsverhältnisse war
die Löslichkeit niedriger, 60 proz. Alkohol bildet also wohl das geeignetste
Lösungsmittel für den Farbstoff. Die Kristalle, welche aus Mischungen von
Alkohol und Wasser sich ausgeschieden haben, besitzen hellere oder dunklere
Farbe und verschiedenen Wassergehalt je nach dem höheren oder niedrigeren
Alkoholgehalt des Gemisches.

Natrium- und Kaliumhydroxyd, -carbonat oder -bicarbonat, sowie Ammo-
niak lösen, in genügender Menge zugesetzt, den Farbstoff leicht auf, mit
intensiv gelber Farbe und grüner Fluorescenz: Ammoniumcarbonat löst weniger
leicht. Verreibt man den Farbstoff mit wenig Wasser und setzt nachgerade
eine verdünnte Lösung von ätzendem oder kohlensaurem Alkali zu, so wird
zunächst eine gallertartige hellgelbe Masse gebildet, welche erst bei weiterem
Alkalizusatz gelöst wird. Der Farbstoff ist nämlich eine schwache Säure, von
der zwei Alkalisalze dargestellt werden können. Es -wurden z. B. 500 mg mit
Wasser verrieben und aus einer Bürette ;fc 1/10 n. NaOH zufliessen gelassen;
zur vollständigen Losung waren 20 ccm erforderlich; die Flüssigkeit reagierte
schon zuvor sehr deutlich alkalisch. Eine andere, gleiche Probe wurde darauf
mit nur 10 ccm der Lauge versetzt. Aus der im letzteren Falle gebildeten,
auf Lackmus kaum merklich alkalisch reagierenden Gallerte fällte Alkohol eine
gelbe, amorphe Substanz, welche, mit Alkohol ausgewaschen und über Schwefel-
säure getrocknet, mit wenig Wasser wieder gallertartig aufquoll, mit mehr
Wasser eine klare, gelbe, neutral reagierende Flüssigkeit lieferte.

Beide Natriumsalze bleiben aus ihrer wässerigen Lösung beim Abdunsten
amorph zurück. Ihre mit Alkali versetzten wässerigen Lösungen reduzieren
alkalische Silberlö<ung schon in der Kälte und bilden einen Silberspiegel,
alkalische Kupferlösung dagegen wird, auch in der Siedehitze, nicht reduziert
Kupferacetat gibt eine graubraune, Bleiacetat sowie Baryt eine hellbraune
Fällung, Eisenchlorid eine sclrwarze Trübung, welche durch Alkali mit rot-
brauner Farbe gelöst wird. Erhitzen mit Wasser und Natriumamalgam und
nachheriges Ansäuern liefert eine graue Fällung.

Der wasserfreie Farbstoff, im Gvpillarröhrchen erhitzt, fängt bei etwa
240° an, sich zu bräunen; bei 255° ist er zu einer schwarzen Masse zusammen-
geschrumpft.

Es wurden zwei Acetylester des Farbstoffes dargestellt und zwar durch
ein- bzw. zweistündiges Kochen mit E>sigsäureanhydrid und Natriumacetat.
Die erste ist hellgelblich, die zweite schmutzig weiss. Beide sind in Chloro-
form und in Benzol löslich und können durch Petroleumäther ausgefällt werden.
Die erste erstarrt beim Abkühlen aus heisser konzentrierter Alkohollösung
gallertartig.

Aus den bisher erhaltenen Resultaten lässt sich nur folgern, dass der
Farbstoff aus Blatt und Rinde von Mangifera indica zwar zum Euxanthon in
nähere Beziehung stehen wird, jedoch sicher nicht Fuxanthon selbst ist. Er
scheint eine zweibasische Säure zu sein, welche zwei oder mehrere Hydroxyl-
gruppen enthält. Möglicherweise entsteht durch Kochen mit Alkohol ein An-
hydrid, wenigstens scheint nicht einfach Entziehung von Kristallwasser statt-
ßotanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 17. 3. 11. | 29

450 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. [36

zufinden, da die aus Wasser kristallisierte Substanz nach der Entwässerung
durch Erhitzen stark hygroskopisch ist und an der Luft das verlorene Wasser
zum grössten Teil wieder aufnimmt, während nach dem Kochen mit Alkohol
das schwach gefärbte Produkt nicht hygroskopisch ist und im lufttrockenen
Zustande beim Erhitzen keinen Gewichtsverlust erleidet. In ihrem Verhalten
gegen Alkalien weisen die beiden Stoffe keinen Unterschied auf.

Im Fruchtfleisch der „mangga" — bekanntlich einer der am meisten
geschätzten Tropenlrüchte — welches hell- bis braungelb gefärbt ist, kommt
der Farbstoff aus Rinde und Blatt nicht vor. Die Farbe wird hier durch
Carotin verursacht.

90. Boorsma, W. G. Über Aloeholzöle und andeie Riechhölzer.
(Bull, du Dep. de l'Agric. aux Ind. Neerland, 1907, No. 7, p. 1 ff.)

Über diese Arbeit findet sich folgender Bericht in Schimmel & Co.
Bericht, Oktober 1908, p. 16:

Die Abhandlung berührt zunächst die früheren Arbeiten der Autoren
Greshoff, Möller und Ridley. Nach ihnen ist das schon früh in Ägypten,
dann bei den Juden und Arabern, im Mittelalter auch in Europa wegen seines
beim Brennen auftretenden lieblichen Geruches geschätzte Aloeholz (vom
arabischen „al-oed" das Holz) heute in Europa nahezu vergessen, wird aber in
Britisch-Indien, China und im Niederländischen Archipel auch jetzt noch viel-
fach verwendet. Als echte Aloehölzer des Handels (in Indien „Agar", in
Malakka „Garu". in Arabien und Ostafrika „Udi" genannt) kommen die den
Thymelaeaceen angehörenden Aquilaria- Arten und Gonystylus Miquelianus T. et
B. in Betracht, während zahlreiche andere harzreiche Hölzer, die als Ersatz-
oder Verfälschungsmittel dienen, nicht zu den Aloehölzern zu rechnen sind.
In dieser Beziehung ist besonders durch die ausgedehnten mikroskopischen
Untersuchungen Möllers Klarheit geschaffen worden. Im f rischeu Zustand
können die beiden erwähnten echten Aloeholzarten auch von Laien nicht ver-
wechselt werden, während dies im verharzten Zustand leicht möglich ist.

Die eigenen Untersuchungen Boorsmas erstrecken sich auf die Aloe-
hölzer und eine Reihe von in Java gebrauchten Riechhölzern:

1. Gonystylus Miquelianus T. et B. Das Gonystylusholz ist das in Java am
meisten verwendete Aloeholz und wird unter dem Namen „kaja garu"
verkauft. Das Äussere ist in hohem Masse wechselnd und von dem
Grade der Verharzung abhängig. Die verharzten Teile sind glänzend,
wachsgelb bis tiefschwarz, unverändertes Holz ist weiss. Es ist sehr
hart und wird bei fortschreitender Verharzung immer härter und schwerer.
Durch Destillation des zerkleinerten Holzes mit Wasserdampf wird in
einer Ausbeute bis zu 6°/0 ein angenehm riechender Körper gewonnen, der
vonEyken näher untersucht und Gonystylol genannt wurde. Während
das Holz als solches dem Gonystylol seinen Geruch verdankt, ist der beim
Verbrennen enstehende Geruch durch harzartige Körper bedingt, die man,
nach Entfernung des Gonystylols durch Extraktion des Holzes mit Petrol-
äther, durch aufeinanderfolgende Extraktion mit Äther (Rückstand
ca. 10%), Chloroform (Rückstand ca. 4,5%) und Alkohol (Rückstand
ca. 13%) gewinnen kann. Unverändertes Gonystylusholz enthält kein
Gonystylol und nur unbedeutende Mengen harzartiger Substanz.

2. Aquilaria-Avten. Aloeholz von Aquilaria- Arten ist auf Java viel weniger
im Gebrauch als solches von Gonystylus. Es stammt wahrscheinlich

37] Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. 451

"von Aquilaria malaccensis Lam., ist weiss, auffallend weich und leicht,
im verharzten Zustand aber hart und schwer wie Gonystylusholz.

Bei der Destillation mit Wasserdampf gingen geringe Mengen
farblosen Öls von schwachem, an Gonystylol erinnerndem Geruch über,
aus dem sich einzelne kleine Kristalle ausschieden, die sich nach Reini-
gung des Öls auch durch Impfen mit Gonystylol nicht vermehrten und
daher eine andere Zusammensetzung haben wie dieses. Die Menge des
in Chloroform oder Alkohol löslichen Harzes betrug 40%.

Über die Art der Gewinnung erwähnter Aloehölzer gehen die Nach-
richten auseinander. Nach den einen sollen aus den alten oder ab-
gestorbenen, absichtlich gefällten oder vom Wind gestürzten Bäumen
die verharzten Stücke herausgehauen oder nach Verwesung der übrigen
Teile gesammelt werden, nach anderen soll die Harzbildung durch
monate-, ja jahrelanges Vergraben der Stämme in feuchtem, modrigem
Boden hervorgerufen werden. Der Verfasser meint, dass die Boden-
behandlung nur dazu diene, das harzfreie Holz erweichen zu lassen,
um dadurch die Absonderung der von Anfang an vorhandenen harz-
führenden Teile zu erleichtern. Die Harzbildung scheint hauptsächlich
oder ausschliesslich in alten Bäumen stattzufinden. Über die Ursache
ist nichts bekannt, und die Ansicht, dass sie durch Tierfrass und Ver-
letzung hervorgerufen werde, ist unbegründet.

3. Wickstroemia tenuiramis Miq. Diese Thymelaeacee ist ein kleiner Baum,
der „Tementak" oder „Menameng" genannt wird, und dessen Holz in
geringer Menge in Bangka als Riechholz Verwendung findet. Es ist
viel härter als Aquilariaholz und geruchlos, gibt aber beim Verbrennen
einen ähnlichen Geruch wie dieses.

4. Exeoecaria Agallocha L. In einigen Teilen von Niederländisch-Indien
wird das Excoecariaholz unter den Namen „Menegen" zu Räucher-
zwecken angewandt, doch brennt nur das Kernholz weniger alter Bäume
mit aromatischem Rauch. Das Holz ist sehr weich und leicht, in ver-
harztem Zustand völlig geruchlos, sehr hart, rotbraun, stellenweise fast
schwarz, auf dem Durchschnitt glänzend und hat bitteren Geschmack.

Mit Wasserdampf flüchtige Produkte sind in erheblicher Menge
nicht vorhanden. Durch Extraktion mit Petroläther wurden 24°/0 hell-
gelbes, firnissartiges Extrakt gewonnen, das aus einem Gemenge zweier
Säuren und eines Esters bestand, die noch nicht näher charakterisiert
werden konnten. Die weitere Extraktion des Holzes mit Äther ergab
12% Extrakt, das einen Ester enthielt, dessen Alkohol bei 85° schmilzt.
Durch darauffolgende Extraktion mit Alkohol wurden 10% Extrakt ge-
wonnen, das durch Chloroform in zwei Teile zerlegt werden konnte.

5. Dalbergia Cumingiana Benth. Das Holz dieser Leguminose spielt unter
dem Namen ..kaju laka" in Niederländisch-Indien eine wichtige Rolle. Es ist
zunächst farblos, wird aber bei alten Bäumen rot und schwerer. Der
beim Brennen auftretende aromatische Geruch rührt von einem zunächst
fast farblosen ätherischen Öle von schwachem, etwas an Cineol erinnern-
dem Geruch her (s. auch p. 37). Nach Entfernung des Öles lieferte das
Holz mit verschiedenen Lösungsmitteln braune oder rote amorphe
Extrakte.

6. Canarium- Der einheimische Name „kaju rasamala" bezeichnet im
Drogenhandel das hauptsächlich zu Räucherzwecken benutzte Holz einer

29*

452 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. [38

Canariuinspecies, das aus Neuguinea und den Molukken über Makassar
in Java eingeführt wird. Es verbrennt mit storaxartigem Geruch und
enthält 0,2% flüchtiges Öl von aromatischem Geruch und brennendem
Geschmack. Petroläther entzog dem Holz eine geringe Menge fetten
Öles, Äther einen esterartigen Körper (ca. 2°/0) und Alkohol ein storax-
artig riechendes Produkt (l,6°/0).

7. Celtis retkulata Miq. Der Verfasser zählt das Holz dieses Baumes zu
den Riechhölzern Javas, weil es als Bestandteil von Räucherungs-
gemischen und Schminken Verwendung findet. Der Geruch des skatol-
haltigen, harten, gelben, braun bis schwarz moirierten Holzes ist jedoch
keineswegs angenehm, worauf die einheimische Bezeichnung „kaju tai"
(Dreckholz) hindeutet. Der Skatolgehalt ist von Dunstan und von
Greshoff nachgewiesen worden. Der Fäkalgeruch nimmt jedoch beim
Trocknen stark ab. In einem solchen alten Holze konnte ßoorsraa
Skatol nicht nachweisen. Die widrig riechenden Extrakte mit Peirol-
äther und Äther gaben keine Skatol- und Indolreaktionen, doch lieferte
das alkoholische Extrakt einen stickstoffhaltigen Körper, der vielleicht
zu dem Skatol in Beziehung steht.

8. Coniferenhölzer. In ihrem Bericht vom April 1906, 124 referierten Seh &. Co.
über eine Arbeit Eykens über das ätherische Öl eines in Makassar
unter dem Namen „kaju ^aru" verwendeten Riechholzes. Eyken konnte
darin die Anwesenheit von Guajol feststellen. Dieses Holz ist nun eben-
falls von Boorsma untersucht worden. Es zeigte die gewöhnliche
Struktur eines Juniperusholzes, doch fehlt eine nähere Kenntnis seiner
Abstammung. Das durch Destillation mit Wasserdampf vom Öl befreite
Holz lieferte durch Extraktion mit Äther 5% einer mit aromatischem
Rauch brennenden amorphen Masse.

Ein ander.s von Juniperusarten oder anderen Coniferen stammen-
des Riechholz ist das „kaju ka-turi". Der Kern ist rötlich bis dunkelrot,
dass äussere Holz weiss. Bei der Destillation liefert das rote Holz ein
hellgelbes ÖL von gusjolartigem Geruch, das der Verfasser aber nicht
zur Kristallisation bringen konnte, weshalb er es für guajolfrei hält.

9. Alijxia stellnta R. et S. Auf der Insel Bangka wird das Holz einer
„Pulisari" genannten Liane als Riehholz benutzt, das der Verfasser als
Alyxiaholz erkannte. Flüchtige Stoffe enthielt das untersuchte Holz
nicht, dagegen Hessen sich mit Äther 10% einer harzartigen Masse
extrahieren, die beim Erhitzen einen aromatischen, cuminartigen Geruch
zeigte.

Weiter wird von Boorsma noch eine Anzahl zu Räucherungsgemischen
dienender Stoffe erwähnt, von denen zwei Hölzer interessant erscheinen (das
„Mai tahek" und Altingia excelsa Noronh.), da sie bis tief ins Innere von Kammern
und schmalen Gängen durchs« tzt sind, die teils mit weissem Wachs angefüllt
sind, das ebenso wie das nächstliegende Holz von einem Pdz durchwuchert
ist. Der Verfasser glaubt, class dieser die Üellulose zerstört, das Wachsgerüst
der Zell wände aber unangegriffen lässt, wodurch die wachserfüllten Kammern
entstehen.

90a. Bessey, Ernst A. Die Würgerfeigen Floridas. (Printed in
advance from the Nineteenth Annual Report of the Missouri Botanical Garden,
1908, 19, p. 25 -32, 9 plates.)

In Florida gibt es zwei einheimische Feigenarten: Ficus aurea Nutt. und

39] Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. 453

F- populnea Willd. Wie mehrere andere Ficus- Arten können sie unter Um-
ständen in der Jugend epiphytisch leben, wenn auch die letztgenannte Sp^cies
diese Eigentümlichkeit nur selten zeigt; Verl", beobachtete sie nur einmal auf
Quercus virginiana. Ditse Eiche und die Palme Sabal palmetto sind auch die
häufigsten Wirte von F. aurea, die aber noch auf mehreren anderen Baum-
arten und selbst auf grossen Bäumen ihrer eigenen Art vorkommt. Die mit
epiphytischer Lebensweise beginnenden Formen gehen gewöhnlich aus Samen
hervor, die (wahrscheinlich durch Vögel) in Höhlungen von Baumstämmen.
Zweiggabeln oder die Achseln der Palmettoblätter gelangt und dort aus-
gekeimt sind. Die dünnbleibenden Wurzeln wachsen den Siamm entlang ab-
wärts, bis sie den Boden erreicht haben, worauf das Wachstum der Pflanze
sehr rasch wird. Die Wurzeln nehmen an Dicke zu, neue werden ausgesandt,
sie anastomosieren miteinander überall, wo sie sich berühren, bilden so ein
dichtes Netzwerk und endlich eine geschlossene Röhre um den Stamm des
Wirtsbaums, der so am Dickenwachstum gehindert und getötet wird. Nur die
Palme kann, da sie kein Dickenwachstum hat, noch jahrelang in solcher Hülse
fortleben, bis sie von der Feige so übergipfelt und beschattet wird, dass sie
abstirbt.

Beide Arten gehören zur Sektion Urostigma und haben männliche und
teils saraen-, teils gallenliefernde weibliche Blüten in derselben Urne (Feigen-
frucht) Die Bestäubung wird durch Blastophagaarten herbeigeführt, die für
beide Feigen verschieden sind. Sie erreichen ihre Reife mit den Samen zu der
Zeit, wo auch die Feigenfrucht zu reifen beginnt. Gerade zu der Zeit, wo die
Insekten den Gallen entschlüpfen, öffnen sich die Antheren. Die befruchteten
Weibchen bedecken sich mit Blütenstaub, während sie bemüht sind, den Aus-
weg aus der Urne zu finden. Sie suchen die jungen Urnen auf, in denen die
weiblichen Blüten gerade für die Bestäubung bereit sind. Meist gelangt nur
ein Insekt in eine Urne und setzt, während es sich herumbewegt, um die Eier
abzulegen, den Blütenstaub an den Narben ab. In jede Blüte, die es ansticht,
wird nur ein Ei gelegt ; die Legröhre wird augenscheinlich in die Griffel-
höhlung hinabgeführt und das Ei im oberen Teile des Fruchtknotens auf dem
Gipfel des Ovulums abgelegt.

Bei vielen i^icMS-Arten gibt es zweierlei weibliche Blüten; während die
«inen Samen bringen (Samenblüten), sind die anderen hierzu unfähig und
dienen nur zur Aufnahme der Blastophagaeier, können sich auch ohne den
durch letztere ausgeübten Reiz nicht weiter entwickeln (Gallenblüten). Bei
F. aurea und populnea besteht dieser scharfe Unterschied nicht. Es sind aller-
dings zwei Extreme von weiblichen Blüten zu unterscheiden, solche mit langen
und solche mit kurzen Griffeln; diese Ausbildung hängt mit der Länge des
Blütenstiels zusammen, derart, dass die Narben der Blüten alle auf demselben
Niveau stehen. Die Kurzgriffligen werden von den Blastophagen bevorzugt;
in fast allen findet man Larven. Der Umstand aber, dass die wenigen kurz-
griffligen Blüten, die von den Gallwespen verschont bleiben, Samen bringen,
zeigt, dass es keine spezialisierten Gallenblüten sind. Ausserdem enthält auch
immer ein Teil der langgriffligen Blüten (5—20%) Blastophagalarven.

Keimversuche mit Samen von Ficus aurea Hessen erkennen, dass die
Keimung nur im Lichte vor sich geht. Diese Tatsache ist bemerkenswert im
Zusammenhang mit anderen Beobachtungen der letzten Zeit. Bei F. populneu
scheint das Lichtbedürfnis weniger ausgesprochen zu sein. Die Notwendig-
keit des Lichtes für die Keimung der Samen von F. aurea steht in engeir

454 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [40

Beziehung zu der Tatsache, dass die in dichten Wäldern vorkommenden Gold-
feigen in der Jugend epiphytisch sind; auf dem Erdboden können sie wegen
der dort herrschenden Dunkelheit nicht keimen.

91. Boos, J. Y. D. Die Reaktion der niederländischen Pharma-
kopoe auf Santonin und auf «-Naphthol in /^-Naphthol. (Pharm.
Weekbl., XLIV, 1907, p. 1478.)

Im Pharm. Weekbl., XLIV, 1907, 291 hatte sich Schoorl sehr abfällig
über die Reaktionen ausgesprochen, wie sie von der niederländischen Pharma-
kopoe verlangt werden.

Der Autor verteidigt diese Reaktionen nun auf das Lebhafteste.

92. Bardas, F. und Tonlpain. Verfahren zur Bestimmung von
Fremdkörpern in K|akao und Schokolade. (Annal. chimiq. analyt., XI,
p. 203—205.)

93. Bottier, Max. Harze und Harzindustrie. (Biblioth. d. ges. Technik,
XLV, 1907, Hannover.)

94. Bougault, J. und Bourdier, R. Über die Coniferenwachse. Eine
neue Gruppe natürlicher Bestandteile. (Comptes rendus, CXLVII,
1908, p. 1311.)

Bourdier hatte bei früheren Untersuchungen aus Juniperus Sabina ein
weisses kristallinisches Pulver isoliert, das äusserlich an gewisse Pflanzenwachse
erinnerte. Analoge Verbindungen fanden sich nun auch in anderen Pflanzen,
Ooniferen. Es ist sogar möglieb, dass sie bei allen Nadelhölzern zu finden
sind. Untersucht wurde das Wachs in:

Beeren und Blättern von Juniperus communis,
Blättern von Picea excelscu
Blättern von Pinus silvestris,
Blättern von Thuja occidentalis.
Die Darstellung der Wachse ermöglicht ihre Löslichkeit in heissem
90proz. Alkohol, in kaltem Alkohol sind sie völlig unlösbar. Die Reinheit
wird erreicht durch Waschen usw. in heissem und kaltem Benzol, Äther
und Aceton.

Diese so gereinigten Stoffe stellen keine einheitlichen Verbindungen dar,
sondern Gemische. Sie sind Säuren, Alkohole und Ester gleichzeitig. Ihre
Entstehung ist zu denken durch Esterif izierung der Oxysäuren unter-
einander.

Folgende Konstitution ist ihnen zuzusprechen:

R • CHOH • (CH2)n • COO • OHR' • (CH2)m • OOO • CHR" • (CH2)P COOH.

Hierbei sind R, R' und R" wie auch n, m und p identisch.
An Oxysäuren gelang es, folgende zu isolieren:
Juniperinsäure Oi6H3203 Schmelzpunkt 95° (Oxy Palmitinsäure)
Sabininsäure C12H?403 Schmelzpunkt 84° (Oxylaurinsäure).

Diese Gruppe zeigt viele Ähnlichkeit mit den Peptiden E. Fischers. Die
Verf. gaben ihr den Namen „Estolide". Der Name soll zeigen, dass diese
Verbindungen zu gleicher Zeit Ester, Alkohole nnd Säuren sind.

95. Boulanger-Dausse, E. Einige Betrachtungen über den Wert
pharmazeutischer Extrakte. (Bull, scienc. pharm., XXV, 1908, p. 28.)

Der Autor schildert die Bestandteile verschiedener Drogenextrakte und
beweist, dass deren Wirksamkeit unmöglich ganz allein durch die aus den
Pflanzen herstellbaren, chemisch definierten Körper, wie Alkaloide usw. hervor-
gerufen würden.

41] Berichte über die pharrnakognostisohe Literatur aller Länder. 455

96. Bonnlier, L. Sur la presence de l'aucubine dans les dif-
ferentes especes du genre Plant ago. (Journ. de Pharm, et de Chiraie,
6. ser., XXVI, 1907, p. 254-266.)

Verf. konnte aus den vegetativen Teilen Plantago major L., PI. media L.
und P. lanceolata L. im reinen und kristallisierten Zustande ein Glucosid isolieren,
das er nach eingehendem Studium seiner Eigenschaften mit dem schon früher
von Bourquelot und Herissey aus Ancuba japonica L. gewonnenen Glucosid
Aucubin identifizieren zu können glaubt. Im weiteren Verlauf seiner Arbeit
weist er auch nach, dass dasselbe Glucosid höchstwahrscheinlich auch bei
Plantago arenaria Waldst. et Kit., PI. cynops L. und PI. psyllium L. vorkommt.
Endlich konnte er auch für alle von ihm untersuchten Arten das Auftreten
von Invertin und Emulsin feststellen. K. Krause.

97. Bourdier, L. Über das Verbenalin, das Glycosid der Verbena
offiänalis. (Arch. Pharm., 1908, p. 272.)

Dem Verf. ist es gelungen, aus den frischen Inflorescenzen von Verbena
officinalis ein linksdrehendes Glycosid zu isolieren, das er als Verbenalin
bezeichnet. Es hat einen Schmelzpunkt von 181,56° und hat die Formel

Ui7H25Oj0 oder Ci7H24O,0
zu bekommen.

Durch Emulsin spaltet sich das Verbenalin in die Glucose und in ein
hellgelbes amorphes Produkt von Phenolcharakter und reduzierenden Eigen-
schaften, das bisher nicht auskristaliisiert werden konnte.

98. Bourquelot, Em. Über den Nachweis des Rohrzuckers in den
Pflanzen mit Hilfe von Invertin. (Arch. Pharm., XLV, 1907, p. 544.)

99. Bourquelot, Em. und Herissey, M. Über das Arbutin und einige
seiner Derivate vom Gesichtspunkte ihres Drehungsvermögens
und ihrer Zersetzung durch Emulsin. (Journ. Pharm. Chim., XXVIII,
1908, p. 255.)

Die Verff. hatten in einer früheren Arbeit im Journ. Pharm. Chim., XIV,
1901, p. 485 den Satz aufgestellt, dass alle durch Emulsin hy drolisierbaren
Glycoside von d-Glycose abstammen und linksdrehend sind.

Durch die Untersuchung des Arbutins hat es sich gezeigt, dass dieser
Satz vollkommen richtig ist. Weitre Stützen für ihre frühere Behauptungen
fanden die Autoren beim Untersuchen von Methylarbutin, Benzylarbutin
und Dinitroarbutin.

Aus den Untersuchungen konnte auch der Schluss gezogen werden,
dass die Angabe Schliff ts, wonach das gewöhnliche Arbutin ein Gemisch
ist aus echtem Arbutin und Methylarbutin. vollkommen gerechtfertigt ist.

100. Bourquelot, Em. Über den Nachweis der Glycoside in den
Pflanzen mit Hilfe von Emulsin. (Arch. Pharm., 1907, p. 172.)

Verf. gibt die Resultate einer Anzahl Untersuchungen an verschiedenen
Pflanzen wieder.

Er sagt, dass das Emulsinverfahren zu brauchen ist, wenn man sich
versichern will, ob in einem Organ nur ein oder mehrere Glycoside vorhanden
sind, oder wenn man ein bekanntes Glycosid quantitativ festlegen will.

101. Bourqnelot, Em. und Bridel, M. Analyse einer Knolle von
Dioscorea Macabiha Jura, et Perr. von Madagaskar. (Journ. Chim. et Pharm.,
XXVIIT. 1908, p. 4!H.)

456 Berichte über die pharmäkognostiscke Literatur aller Länder. [42

Das Gewicht der Knolle betrug 10 kg, ihr Umfang 1,24 m. Die stäikste
Dicke = 0,20 m, der grös.ste Durchmesser = 0,39 m, der kleinste Durch-
messer 0,3 m.

Alle anfangs gänzlich farblosen Schnitte färbten sich an der Luft sehr
bald bräunlichrot.

100 g der frischen enthielten
81,6 Wasser 0,04 g reduzierenden Zucker

1,14 g Asche 0,111 g Saccharose

6,8 g Stärke 0,43 g Stickstoff.

Glycoside und Alkaloide waren nicht nachzuweisen.

Die Knolle gilt aber auf Madagaskar für stark giftig und wird erst ge-
gessen, wenn sie gut ausgewaschen, gekocht und dann ausgepresst ist.

Als Fermente waren nachzuweisen: Anaeroxydase, Amylase und Invertin.
Emulsin fehlte.

102. Bourqnelot, Em und Herissey, H. Sur un nouveau glucoside
hydrolysable par l'emulsiue, la bakankosine, retive des graines
d'un Strychnos de Madagascar. (Journ. de Pharm, et de Chimie, 6. ser.,
XXV, 1907, p. 417—423.)

Verf. hat aus den Samen eines in Madagaskar heimischen Strychnos,
Str- Bakanho, ein neues Glucosid isolieren können, das er in seiner Gewinnung,
seiner Zusammensetzung und seinen wichtigsten Eigenschaften und Reaktionen
beschreibt. K. Krause.

103. Bourqnelot, Em. und Vintilesco, J. Über das Oleuropein, einen
neuen glycosidartigen Bestandteil der Olive. (Journ. Pharm. Ohim.,
XX VIII, 1908, p. 303.)

Die Verff. fanden in Rinde, Blättern und Früchten von Oka europaea
L. grosse, mit der jeweiligen Vegetationspei iode sthr wankende Mengen von
einem Glycoside, das sie als Oleuropein bezeichneten. Dieses Oleuropein
wird durch Emulsin, das sowohl in den Blättern, wie in den Früchten zu
finden ist, gespalten unter Bildung von d-Glycose.

Aus 2000 g frischer Oliveufrüchte wurden 40 g, aus 2000 g frischer
Blätter nur 15 g Glycosid gewonnen.

Durch Alkalien wird die wässerige Lösung gelb gefärbt, durch konzen-
trierte Schwefelsäure blutrot, durch Eisenchlorid grün; durch Bleiessig wird
eine vollkommene Fällung bewirkt.

104. Bradley, 0. E. Über das Vorkommen von Cumarin in Achlys
triphylla. (Journ. Amer. Chem. Soc, XXIX, 1907, p. 606.)

Dem Verf. ist es gelungen, in der sogenannten wilden Vanille, die in
grosser Anzahl in den Kiefernwäldern der paeifischen Küste von Nordamerika
vorkommt, Cumarin nachzuweisen.

Das riechende Prinzip der Pflanze konnte nicht mittelst der Wasser-
destillation festgehalten werden, sondern der Verf. musste es mittelst Äther
extrahieren.

10.1. Brandl, J. W. Pflanzenfarbstoffe. (Pharm. Rev., XXV, 1907,
p. 166, 208, 238, 257, 332, 370; XXVI, 1908, p. 44, 65, 119, 141, 185, 215, 269.)

Die vorliegende, sehr umfangreiche Abhandlung gibt eine sehr eingehende
und genaue Besprechung sowohl der eigenen Arbeiten des Verls., soweit sie
sich auf Pflanzenfarbstoffe beziehen, als auch eine Darstellung der von anderen
Autoren gewonnenen Ansichten. Der Verf. gibt die Pflanzenfamilien in
alphabetischer Reihenfolge und zählt in ihnen die Farbstoff führenden Species-

431 Berichte über die ph;irinaliognostische Literatur aller Länder. 457

und Gattungen auf. Genaue Angaben über die Literatur dieses Gebietes
finden sich überall verstreut.

Bezüglich der Einzelheiten dieser wichtigen Arbeit muss auf das Original
verwiesen werden.

106. Brandl. J. W. Coniferenöle des Nordwestens. V Nadelöl
der Douglastanne. (Pharm. Rev., XXVI. 1908, p. 326)

Bei der Wasserdampfdestiüation ergaben* frische grüne Zweige und
Nadeln 0,8 — 1 °/0 grünlichgelbes ätherisches Ö , das einen Geruch nach Lirnonen
hatte und dem folgende Kennzahlen zukommen:

d.:3 0,868 S.-Z. 0,

«D = — 62,5° V.-Z. 86,6 entsprechend 30,3 °l0 Bornylacetat

A.-Z. 92,1 entsprechend 32,2 % Bornylacetat.

Aldehyde waren in dem Öle nicht nachweisbar. Es best ht grösstenteils
aus Terpenen, von denen der Kampfer isoliert werden konnte.

Die höher siedenden Anteile enthielten Borneol.

107. Prandl, J. Über Sapotoxin von Agrostemma githago- (Arch. f.
experim. Pharmakol. u. Patholog., 1908, p. 199 ff.)

Bei Versuchen au Schweinen zeigte es sich, dass kleinere Dosen von
Agrostemma githago auf die Verdauungsorgane auch von Kaninchen, Rindern
und Pferden nicht schädlich einwirken. Vergiftungssymptome treten erst bei
grösseren Dosierungen von Sapotoxin auf. Die grössten Mengen dieses Giftes
können Kaninchen ertragen. 'Futter mit 5 — 12°/0 Kornrade wirkt auf Riuder
und Pferde nicht schädlich ein.

Treten bei den Tieren aber kleinere Verdauungsstörungen auf, so darf
Futter, das die Kornrade enthält, nicht gefüttert werden, da es dann sehr
schädlich wirken kann.

Gut soll es sein, nach dem Verfahren von Lehmann und Mai, solches
Futter erst leicht zu rösten, da dann die Krankheitserscheinungen leichter zu
unterdrücken sind.

108. Brandl, J. und Miiyr, E. Sapotoxin und Sapogenin von
Agrostemma githago. (Arch. Path. Pharmakol., L1X, 1908, p. 245.)

Es gelang den Verff., das Agrostemmasaponin zu spalten in
neutrales Agrostemmasapotoxin und in Agrostemmasäure. Letztere
ergibt mit Bleiacetat eine Fällung, wogegen dies bei der ersteren nicht,
eintritt.

Bei der Spaltung mit verdünnter Schwefelsäure liefern beide die gleichen
Produkte:

Sapogenin. — Verschiedene Zuckerarten (Glucose und Galactose)

Beim Schmelzen mit Sapogenin mit Kaliumhydroxyd bildet sich eine
kristallinische Säure, der folgende Formel zukommt: C30H46O4.

Der Dimethylester dieser Säure [C30H44(UH3 204] kristallisiert in schönen
Nadeln aus.

Physiologisch sind Agrostemmasapotoxin und Agrostemmasäure
in ihren Wirkungen gleich.

109. Brander, Md. Über den Gehalt des käuflichen Rhabarbers
an Mineralstoffen. (Pharm. Journ., 1908, p. 147.)

Den Anlass zur folgenden Arbeit gab dem Verf. die Verschiedenheit der
Literaturangaben über den Aschengehalt des Rindenrhabarbers. Folgende
Tabelle gibt die Resultate des Verfs. wieder:

458

Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

[44

Sorte

Von dem

in Wasser

Gesamt-

löslich in

unlöslichen Rückstand-

asche

Wasser

oxyd
in Salzsäure in Salzsäure

°/o

°/o

löslich °/0

unlöslich °/0

10,49

22,95

79,67

20,33

14,49

10,00

86,96

13,04

7,17

18,75

64,88

35,12

10,19

21,89

78,86

21,14

9,96

19,27

81,47

18,53

1. Chinesischer Rhabarber
in Stücken

2. Desgl

3. Englischer Rhabarber
in Stücken

4. Rhabarberpulver . .

5. Desgl. IL Qualität . .

110. Brandt, J. Über Sapotoxin und Sapogenin von Agrostemma
githago. (Arch. experm. Path., LIV, 1906, p. 245.)

Der Verf. hat Sapotoxin gereinigt und Sapogenin kristallisiert. Er
hat dann Elementaranalysen und Molekulargewichtsbestimmungen unternommen.
Diese führten bei Sapotoxin auf 1810, bei Sapogenin auf 634 hin. Sapogenin
bekommt die Formel: C35H54Oi0.

Einige Derivate des Sapogenins wurden gewonnen.

Die Untersuchungen von Quillajasapotoxin und Quillajasäure ergab, das
beide das vollkommen gleiche Sapogenin enthielten. Diesem kommt die Formel
C33H5A0 zu.

Der Verf. gibt dann noch ausführliche Angaben über die giftige und
hämolytische Wirkung beider Substanzen.

111. Breitenstein. Zinn kraut (Equisetum arvense) bei Herzkrank-
heiten. (Corresp.-Blatt f. Schweiz. Ärzte, 1907, No. 14.)

Der Verf. empfiehlt sehr Anwendung von Zinnkraut (Equisetum arvense)
bei Herzkrankheiten. Vor allem dann, wenn es nicht möglich ist, durch die
gewöhnlichen Herztonika und Diuretika die im Körper befindlichen Wasser-
ansammlungen zu entfernen. Täglich 2 Deziliter konzentrierter Zimtkraut-
abkochung bewirkten innerhalb von sechs Wochen die Diurese von 1600 ccm
auf 5 Liter pro die zu erhöhen, so dass die Oedeme dann vollkommen ver-
schwanden.

112. Bride), M. Sur les pectines retirees des fruits de Lonicera
scylosteum h., de SympJioricarpus racemosus L. et de Tamus communis L. (Journ.
de Pharm, et de Chimie, XXVI, 1907, p. 536—543.)

Verf. behandelt der Reihe nach die drei Pektine, die er aus den Früchten
von Lonicera xylosteum L., SympJioricarpus racemosus L. und Tamus communis L.
hat isolieren können. Zunächst gibt er eine kurze Schilderung der Gewinnungs-
methode, um dann auf die physikalischen und chemischen Eigenschaften näher
einzugehen. Als Gesamtresultat bezeichnet er selbst folgende Sätze:

„II ressort de l'etude de ces trois produits que ce sont des pectines au
meme titre que les produits analogues retires de la gentiane, des petales de
roses, du coing, des cynorrhodons, des groseilles ä maquereau.

Leur Solution aqueuse, en effet, se coagule par addition d'eau de baryte,
d'eau de chaux, de pectase. Elle est rendue incoagulable par la pectinase du

45] Berichte über die phnrmakognostisehe Literatur aller Länder. 459

malt. Enfin, elles fournissent par Oxydation avec l'acide azotique de l'acide
mucique, et. pour l'une dentre elles. il a ete constate qu'elle donne de l'ara-
binose par hydrolyse avec l'acide sulfurique."

113. Brieger und Krause, M. Untersuchung einer neuen Fett-
frucht „Njore-Njole" aus Kamerun. (Tropenpflanz., 1908, p. 83 ff.)

Die Kerne dieser Frucht, deren Stammpflanze leider nicht mitgeteilt
wird, wiegen 1,2 — 1,4 g.

Der Wassergehalt beträgt 7 %.

Der entölte Rückstand 35,4 „

Der entölte Rückstand aus getrockneten

Früchten 37,99 „

Die Kerne enthalten ein Öl in 62%, dessen

Specifisches Gewicht 0,9135

Brechungsexponent 1,4695 bei 22°

Kottstorf ersehe Zahl 193,05

Reichert-Meisslsche Zahl 0,66

Jodzahl 93,35

Erstarrungspunkt — 1° — 1.5°

beträgt.

114. Brindejouc, G. Über die Veränderungen des natürlichen
Kautschuks. (Bull. Soc. chim. de France, I, 1908, p. 39.)

Verf. untersuchte die verschiedenen Veränderungen, die die jeweiligen
Reagentien im Kautschuk hervorrufen. Diese Veränderungen zeigen sich als
Auftreten von Klebrigkeit, Elastizitätsverlust und Schwarzwerden. Einflüsse
gewinnen :

I. Die Sonne. Die Wärme bildet Brandwunden, wie in der Haut.
II. Diffuses Licht hat in gemässigtem Grade keinen Einfluss. Einfluss
gewinnt es bei höherer Intensität, Wärme und Luftfeuchtigkeit.

III. Dunkle Wärme wirkt nie ein.

IV. Seesalz, selbst in den kleinsten Quantitäten, wirkt sehr schädlich.

V. In vierzehn Tagen schädigen selbst schwache Konzentrationen von
Essig- und Carbolsäure.
VI. Von der Sonne veränderter Kautschuk verändert sich im Dunklen
weiter.

Bei diesen Veränderungen wird die Molecularkonstruktion des Kaut-
schuks sehr verändert.

115. Briot, A. Sur la presure du figuier (Fiats Carica). (Compt.
rend., OXLIV, 1907, p. 1164.)

Verf. kommt auf Grund sehr eingehender Untersuchungen zu folgenden
Schlüssen :

1. On chauffe des echantillons de lait de vache ä diverses temperatures et
pendant des temps variables, et l'on essaye la coagulation de ces echan-
tillons par le suc de figuier, comparativement avec celle lu lait frais et
du lait bouilli. On constate que du lait chauffe 4 heures ä 62° — 65°
se coagule encore dans les memes conditions que du lait frais. Le lait
chauffe 15 minutes ä 70° est dejä aussi sensible au suc de Figuier que

• e lait bouilli.

A des temperatures superieures ä 70°, il faut un temps beaucoiip
moindre pour amener le lait ä la meme sensibilite que le lait bouilli.
Ainsi, 70° est la temperature critique pour le lait vis-ä-vis du suc de

460 Berichte über die phaiiuakognostische Literatur aller Länder. [4ß

figuier. Or, ä cette temperature, le lait na pas encore subi l'alteration
qui le rend moins sensible a la presure ordinaire. 11 faut atteindre 80°
pour que la caseine subisse cette modification, qui est accompagnee du
phenomene de production de pellicules ä la surface du 1 quide.

Pour mettre en evidence des pkenomenes, j'ai opere les essais de
coagulation ä des temperatures voisines de 53° avec im suc de figuier
obtenu par maceration de rameaux decoupes en rondelles dans de Feau
fortement salee. J'obtenais un suc d'nne activite assez grande. lcm''
coagulns 10cm3 de lait en 5 minutes. Je me suis astreint ä faire les
coagulations dans des temps plus longs que MM. Chodat et Rouge.
2. On sait que le serum normal du cheval renferme un antiferraent empe-
chant l'action de la presure animole. Ce meme serum empeche egalement
la coagulation du lait bouilli par le suc de figuier. Cette action du
serum est supprimee par chauffage prealable ä 62°.

Du serum qui m'a servi dans les experiences il fallait environ
ocmS, -1 pour annihiler lcm3 de la Solution du suc de figuier qui coagulait
10cm3 de lait bouilli en 5 minutes. Cette meme dose de serum anni-
hilait une quantite de presure animale susceptible de coaguler 10cm3 de
lait en 4 minutes. Les pouvoir antipresurant sur le ferment animal et
sur le ferment vegetal sont de meme ordre de grandeur.

110. ßrissemoret, A. Über eine Farbenreaktion der Tannoide.
(Bull. Soc. chim. France, 4, 1, 1907, p. 474.)

Der Verf. verwendete Kiiianis Farbenreaktion des Digitalins. Man kann
seine Resultate wie folgt zusammenfassen:

1 Gruppe der Gallussäuretannoide. Die Tannoide dieser Gruppe
liefern bei der trockenen Destillation Pyrogailol, bei der Hydrolyse Gallus-
säure, zuweilen auch Ellagsäure. Gallussäure selbst gibt mit dem Reagens
keine Färbung. Pyragallol eine rosagrünliche, Ellagsäure, Psidi-, Granato- und
Nucigerbsäure eine grünlichgelbe, Hamamelistamin, C14H1409 und Nuphargerb-
säure, C56H5e027 eine rote, Kinogerbsäure, C^gHgjOn eine rosa, Geranigerbsäure
und das Tannin der chinesischen Galläpfel, C^H^Ojg. eine gelbe Färbung-
Bezüglich weiterer ausführlicherer Angaben sei auf das Original verwiesen.

IL Gruppe der Kaf feesäuretannoide. Die Tannoide dieser Gruppe
liefern bei trockener Destillation Brenzkatechin, bei der Kalischmelze Proto-
catechusäure und Essigsäure und bei der Hydrolyse Glycose und Kaffeesäure.
Protocatechusäure gibt keinerlei Färbung mit dem Reagens, Brenzcatechin
eine violette, später blaugriine, Kaffeesäure eine Färbung aus Schai lachteer.

Auch hier finden sich noch viele hochinteressante Momente, deren
Wiedergabe aber den Rahmen des hier zu schildernden Stoffes überschreiten
würde. Es muss diesbezüglich ebenfalls auf das Original verwiesen werden.

111. Gruppe der Phloro gluci ntannoide. Bei trockener Destillation
liefern die Tannoide aus dieser Gruppe Brenzcatechin. Bei der Kalischmelze
tritt Zerfall ein in Protocatechusäure, Phloroglucin und Fettsäuren. Phloro-
glucin gibt mit dem Reagens eine gelbe, Quebrachogerbsäure, C26H27O10. und
Eichengerbsäure, CjgHigOg, eine dunkelrote, Filix- und Sorbusgerbsäure eine
scharlachrote, Aesculigerbsäure, C13Hli06, eine rotviolette, Tormentillgerbsäure,
G^H^On, Ratanhiagerbsäure, Co0Hi0O9, Arecagerbsäure und das Tannoid von
Rhus triphyllum eine bordeauxrote, Cachougerbsäure, C15H1206, Colotannin,
Quaranaggerbsäure, Catechin, C15H1406 • 4H20 und die Cedrelagerbsäure.
C^H.jqOh, eine purpurne Färbung, die der von Digitalinum verum gleicht.

47 j Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 4ßl

117. ßrissemoret und Derrieil. Über die Digitalisreaktion Kilianis
und ein neues Reagens der Pigitalisgly coside. (Bull. gen. Therap ,
CLI1I, 1907, p. 382)

Die von Kilianis angewendete Reaktion zeigte gewisse Ähnlichkeiten
mit der Eiweissreaktion von Hopkins und Cole. Man konnte also annehmen.
dass, wie hier, auch dort die Glyoxylsäure das wesentliche Moment sei.

Die Autoren benutzten folgende Reagentien:

1. Eine Mischung von 3 cem Essigsäure mit 2 cem vierp'ozentiger Oxal-
säure, die mit Natriumamalgam bis zur Neutralisation reduzier war.

2. 5 cem konzentrierte Schwefelsäure. Das Gljcosid wird in 1 g» löst und
dann mit 2 unterschichtet.

Bei kristallisiertem Digitaliu entwickelt sich bald an der Berührungs-
stelle, wie auch in der Schwefelsäure eine grüne, bei Digitalin karminrote
Färbung ohne die bei Kilianis Reagens zu beobachtende braune Färbung des
Randes.

118. Brocq-Rousseaa und Gain, Edmond. 1. Über die Anwesenheit
einer Peroxydiast ase in den tockenen Samen. (C R. Acad. Sei. Paris,
1907, t. 145, p. 1297—1298.) — 2. Über die Dauer der Peroxydiastasen
der Samen. (C. R. Acad. Sei. Paris, 1908, t. 146, p. 545— 548.)

Raciborski hat gezeigt, dass im Leptom der Gefässbündel und in ver-
schiedenen anderen Pflanzenteilen, im Milchsaft und in einigen Samen ein
Stoff auftritt, der Guajaktinktur bei Gegenwart von Wasserstoffsuperoxyd blau
färbt. Er hat diesen Inhaltskörper Leptoinin genannt; später ist letzterer als
Peroxydase und von G. Bertrand als Peroxydiastase bezeichnet worden. Die
Herren Brocq-Rousseau und Gain, die den Bertrandschen Namen an-
nehmen, konnten die Anwesenheit einer solchen Peroxydiastase ganz allgemein
in trockenen Samen nachweisen, sowohl an Schnitten als in Extrakten, die
durch rasche Behandlung der zerriebenen Samen mit kaltem Wasser hergestellt
waren. Als Reagentien dienten eine frisch bereitete alkoholische Lösung von
Guajakharz und eine einprozentige Lösung von Guajakol. Mit dem ersten
dieser Reagentien gibt Wasserstoffsuperoxyd bei Gegenwart einer Peroxydia-
stase eine blaue, mit dem zweiten eine rotbraune Färbung.

Samen von Pflanzen, die sehr verschiedenen (gegen 50) Familien an-
gehörten und aus verschiedenen Florengebieten stammten, Hessen das Vor-
handensein einer Peroxydiastase erkennen, die im Embryo lokalisiert zu sein
scheint. Mit dem Alter schwindet dieser Körper aus den Samen, bei den einen
früher, bei den anderen später. Die Verfasser haben in dieser Hinsicht Samen
jeden Alters bis zu solchen, die 500 Jahre alt waren (aus peruanischen Gräbern),
ja selbst 2000 — äOOOjährige (altäg\'ptische) Samen untersucht. Kein Same, der
aus älterer Zeit als aus dem 18. Jahrhundert stammte, Hess die Anwesenheit
von Peroxydiastase erkennen. Die ältesten Samen, in denen sie festgestellt
werden konnte, waren etwa 208 Jahre alte Samen von Triücum hibemum und
T. monocoecum aus dem Herbarium Tourneforts. Dagegen befanden sich
unter den Samen der verschiedensten Jahrgänge aus dem 19. Jahrhundert (seit
1810) stets eine Anzahl, die ihre Peroxydiastase behüten hatten, um so mehr,
je jünger sie waren. Keimfähige Samen enthalten immer Peroxydiastasen;
aber auch in denjenigen, die die Keimkraft verloren haben, kann die Peroxydia-
stase sehr lange noch erhalten bleiben. Die oben genannten Triticum- Arten
dürften ihre Keimkraft mindestens schon 100 Jahre früher verloren h.ib^n als
ihr peroxydiastatLches Vermögen.

462 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [48

119. Brüning, H. Olexim Chenopodii "anthelm int ici aetherenura
(Deutsch, med. Wochenschr., 1907, p. 245.)

Die Arbeit hat einen rein medizinischen Charakter.

120. Branner, L. Bequeme und sichere Färbung von Tuberkel-
bazillen. (CentrbL f. Pharm, u. Chemie, 1908, p. 59, Sep.)

121. Bruni, GL Über die physiologische Wirkung isomerer
optischer Antipoden auf höhere Organismen. (Gaz. chim. ital., XXXVIII,
2, 1908, p. 1.)

122. Bnchner, E. und Klatte, Fr. Über das Co-Enzym des Hefe-
presssaftes. (Biochem. Zeitschr., VIII, 1908, p. 520.)

123. Budde, Th. Über die Wertbestimmung von vulkanisiertem
Kautschuk. (Arb. aus den hygien.-chemisch. Untersuchungsstellen, 1908,
p. 216.)

Der Verf. wandte folgende Methode zur Untersuchung an :

Brom lasst man mit einem Überträger auf den in Tetrachlorkohlen-
stoff gequollenen Kautschuk einwirken. Dadurch bekommt man einen
Körper, dessen sämtliche freien doppelten Kohlenstoffverbindungen durch
Brom aufgehoben sind.

Aus dem gewonnenen Bromschwefelkautschuk wird massaualytisch der
Inhalt bestimmt und aus ihm der Kautschukgehalt berechnet.

Die interessanten Einzelheiten der sehr ausführlichen Arbeit sind im
Original nachzulesen.

124. Buer, C. Gewinnung von Lecithin aus den Samen der
Lupinen und anderer Hülsenfrüchte. (Pharm. Ztg.. LI II, 1908, p. 694.)

Verf. gründet seine Methode auf die bekannte Tatsache, dass ein
Gemisch aus 45 Raumteilen 96 prozentigen Alkohols. 40—45 Raumteilen
Wassers und 10 Volumteilen Äthers neben den leichter löslichen Bitterstoffen
bei kräftigem Schütteln aus Lupinen auch das Lecithin löst, jedoch beim
ruhigen Stehen das Lecithin ausfällen lässt.

Statt des Äthers kann man auch Benzin, Benzol oder Petroläther an-
wenden.

Bei geschälten Lupinen erhält man ca. 1 — lV8°/o< De^ Erbsen, Bohnen
und anderen Hülsenfrüchtlern etwa 1 °/0 des verwendeten Rohmateriales an
Lecithin.

125. Burlnreanx. Guajakolum kakodylikum. (Union pharm., 1906,
No. 3.)

126. Buschmann, E. Die oberirdischen Vegetationsorgane von
Eletfaria Cardamomum White e Maton mit besonderer Berücksichti-
gung der Ölzellen derselben. (Pharm. Post., XVI, 1908, p. 397.)

Die Arbeit stellt eine histologisch-pharmakognostische Untersuchung dar.
Sie ist im pharmazeutischen Institute der Universität Moskau ausgeführt
worden.

127. Bosse, Walther. Über die giftige Mohnbohne (Phaseolus luna-
tus L. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs- u. Genussmittel, XIII, 1907, p. 739 ff.)

128. Baste, W. Über die Stammpflanzen der Colanuss. (Tropen-
pflanzer, 1906, Beiheft Oktober, Sp., p. 60.)

Die Kolafrage ist für Westafrika von grosser Bedeutung wegen des Aus-
fuhrs derselben zwecks Verwendung zu medizinischen und diätetischen Prä-
paraten in Europa.

49] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 4ß^

Der Autor fand angebaut folgende Arten :

Cola vera K. Schum. — C. acuminata R. Br. — C. sublobata Warbg.
C. Supfiana Busse.

C- sublobata Wbg., die Aschantikolonuss ist als Varietät der C- vera an-
zusehen, der sich nur im männlichen Geschlechtsapparate einige Verschieden-
heiten zeigen.

Es werden dann die anderen Arten und Varietäten eingehend ge-
schildert.

Grösse, Form und Farbe der Kolanüsse des Handels lassen keinen
sicheren Schluss auf die botanische Abstammung der Saat zu.

129. ßnysman, M. Heil- und Nutzpflanzen der Javanern (Apoth.-
Zeitung, XXIII, 1908, p. 581.)

Verf. gibt genaue morphologische Angaben über die einzelnen behandelten
Pflanzen. Geschildert werden:

1. Euehresta Horsfieldii. Die bitteren Samen werden gegen Blutspucken
und Schwindsucht verwendet. Sie enthalten Cytisin.

2. Abelmosclms esculentus. Die Wurzel wird gegessen. Die sehr schleim-
haltige Fruchthülle hat einen angenehmen Geschmack und wird vielen
Speisen zugesetzt. Die Stengelfasern dienen zum Anfertigen von
Flechtwerk.

3. Abelmoschus moschatus. Blätter werden als Kopfwaschwassermittel
benutzt. Die nach Bisam riechenden Samen als Stimulans und Diureti-
cum angewendet.

4. Abroma angusta. Die Wurzelrinde wird gegen Hautausschlag benutzt.
Als Hanf findet die innere Stammrinde Verwendung.

5. Abrus pulchellus. Wurzel und Samen werden als Fischgift verwendet.
Aus den Stengeln werden Bindfaden bereitet.

0. Abrus precatorius- Anwendung der Wurzel wie Süssbolz. Absud der
Blätter wird gegen Katarrhe benutzt, ferner äusserlich bei Zahnschmerzen
und Mundfäule. Die Samen werden beim Löten des Goldes verwendet
und in Wein als Absud gegen Epilepsie und Herzkrankheiten, als Aphro-
disiacum, Emeticum, Anthelminticum und Diaphoreticum gebraucht.

7. Abroma fastuosa. Als Emmenagogum findet die Rinde der Wurzel Ver-
wendung. Auch wird sie vielfach bei Hautauschlägen benutzt.

8. Abutilon atropurpareum.

9. Abutilon hirtum.

10. Abutilon indicum.

11. Acacia concinna soll Saponin in der Frucht, etwas Alkaloid in der Rinde
besitzen. Wird gegen Lepra verwendet.

12. Acacia farnesiana- Gummi wird aus den Stammausschwitzungen ge-
wonnen. Als Brechmittel benutzt werden Wurzel, Rinde und Blätter.
Die aramotisch duftenden Blüten liefern ein Cosmeticum, werden in
Liköre gemischt, als Magenleidenmittel und bei Verdauungsstörungen
angewendet. Gegen Augenentzündung findet Benutzung der klebrige
Saft der jungen Schoten. Der.-elbe findet als Leim Verwendung. Auf
Wunden gelegt, bringt das Fruchtfleisch Heilung.

13. Acacia Rooperiana hat essbare Blätter.

14. Acacia Tntria liefert Blätter und Rinde, die gegen Leibschmerzen benutzt
werden. Bei .Schlangenbissen und Geschwüren wird die Wurzelrinde
gebraucht.

Wurzeln, Blätter, Blüten und Samen werden
wie Eibischblätter verwendet.

464 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. [50

15. Früchte von Caulophyllum thalictroides. Diese Steinfrüchte enthalten
Fruktose, Citronen-, Gerb- und Weinsäure, ferner ein zur Laurin- oder
Oleingruppe zu rechnendes Öl. Die Asche enthält Kieselsäure, Eisen,
Calcium, Magnesium, Kalium, Natrium, Schwefel und Phosphor.

16. Cornus sericea. Die Steinfrüchte dieser Pflanze, die unter dem Namen
„Kinnikinnik" bekannt ist, enthalten Fructose, Kaliumbitrartrat, Kalium-
bioxalat, Calciumoxalat, Gerb-, Gallus- und Apfelsäure. Ferner konnten
nachgewiesen werden Palmitin und Olein.

IcO. Calvct, L E. Der Kapok, seine Verwendung im Haushalt
und Pharmazie. (Bull. Pharm. Sud-Est, XII, 1907, p. 325.

Kapok findet sich als eine wollige Masse häufig in Früchten der Bom-
bacaceen. Vor allen Dingen bei den Gattungen Bombax und Ceiba. Dieses
Material, das zuerst von den Japanern als Handelsprodukt ausgenützt wurde,
wird von diesen aus Ceiba pentandra gewonnen. Dieses Produkt zeigt eine
gelbbraune Färbung, bestellt aus ineinander dicht verflochtene Haaren von
20,35 mm Länge. Diese Pflanzendaunen, wie sie genannt werden, sind ausser-
ordentlich h icht, sind mit Wasser nur sehr schwer benetzbar und nehmen
unter Wärmeeiufluss sehr schnell an Volumen zu.

Verwendbar ist das Produkt nur recht beschränkt, höchstens als Ersatz-
mitttl für Leinen und Federn.

131. Camo. Das fette Öl aus den Samen von Nerium Oleander.
(Bull. Scienc. Pharm., XV, 1908, p. 441.)

Das untersuchte Öl ist von dicklicher Konsistenz, brauner Färbung und
scharfschmeckend, folgende Zahlen kommen dem Öle zu:

Köttstorfersche Z. 202-205. — R. M. Z. 10,26
Hübische Jodzahl 88.0. — Acetylzahl 19.
Im Öle fanden sich 20°/0 unverseifbare Btstandte le, Schmelzpunkt 30°,
die sich ni<ht als einheitlich erwiesen, obwohl sie die Farbreaktion des Phyto-
sterins ergaben.

132. (Japelle, G. Untersuchungen über die Beschaffenheit käuf-
licher Filixrhizome. (Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 433.)

O. Penndorf hatte in Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 433 behauptet: „Die
Unterscheidung der Wurzelstöcke von Farnkräutern ist makroskopisch nicht
mehr möglich, wenn die Wedel entfernt sind, wenigstens nicht mehr mit
Sicherheit, man ist vielmehr auf die mikroskopische Untersuchung angewiesen."
Dieser Annahme tritt der Verf. der vorliegenden Arbeit nun mit Recht
entgegen.

Es gibt gute Unterschiede an zur Erkennung der Rhizome von Arthy-
rium Filix femina, Aspidium spinulosum, Aspidium dilatatum, Aspidium Oreopteris
(montainim), Polypodivm alpestre und Aspidium lobatum.

133. Carle», P. Die ideale Kolazubereitung. (Rep. Pharm., XIX,
1907, p. 193.)

O!) man Kolannüsse im Autoklaven, im Trockenschrank oder in kochen-
dem Alkohol sterilisiert, wirklich sicher ist man dennoch nie, ob sie sich nicht
doch noch verändern.

Temperaturerhöhung zum Beispiel zerstören die löslichen Eiweissstoffe
und die Oxydase.

Zerstösst man frische Kolanüsse mit dem gleichen Gewicht trockenen
Hutzuckers, so ergibt sich eine Art Marmelade, die man in Einmachegläsern,

51]

Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder.

465

die mit Papier überbunden werden, jahrelang vollkommen unverändert
erhalten kann.

134. Carr, J. H. und Reynolds, C. Änderung der Wirksamkeit roher
Handelsdrogen. (Pharm. Journ., XXVI, 1908, p. 542.)

Die im folgenden wiedergegebene Tabelle über die Schwankungen einer
Anzahl Drogen gibt ein anschauliches Bild dieser Tatsache.

Droge

Geringster

beobachteter

Gehalt

°/o

Aloe (Curacao) ....
Radix Belladonnae . . .
Herba Belladonnae . . .
Summitates Cytisi Scoparii
Fabae Calabar

Oortex Chinae succirubrae
Folia Coca

Semen Colchici ....
Rhizoma Hydrastis cana

densis

Folia Hyoscyanii nigri . .
Pilocarpus Jaborandi . .
Pilocarpus microphyllus .
Cortex Radicis Granati

Radix Ipecacuanhae . .

Tubera Jalapae . . .
Leptandra Virginia . .
Semen Strychni . . .
Podophyllum peltatuni
Radix Scammonii . .

Die Verff. haben dan
geprüft, z. B. Herb. Oannab

12,6
0,29
0,23
0,07
0,04
1,06
2,7
0,018

0,12
l 1,14
) 2,3

6,06
Spuren
Spuren
0,12
1,70
0,98
I 0,84
5,1
6,9
0,81
3,80
7,75

Höchster

beobachteter

Gehalt

27,9
0,55
1,08
1,06
0,27
4,64
8,3
0,79

6,57
3,17
5,8
0,21
0,05
0,99
0,29
2,77
1,83
1,29
15,8
12,5
2,0
6,65
10,8

Wirksame Bestand-
teile, die
bestimmt wurden

Aloin

Gesamtalkaloid
Gesamtalkaloid
Sparteinsulfat
Physostigmin
Chinin u. Oinchonidin
Gesamtalkaloid
Petroläther lösliche

Alkaloide
Colchicin
Hydrastin
Berberinsulfat
Gesamtalkaloid
Pilocarpinnitrat
Pilocarpinnitrat
Gesamtalkaloid
Gesamtalkaloid
Emetin
Cephalin
Harz
Harzöl
Strychni n
Harz
Harz

n noch andere Drogen auf physiologischem Wege
s Ind., Folia Digitalis: Bulbi Scillae, Semen Stro-
phanti usw. Alle diese Drogen zeigten bei verschiedenen Proben gänzlich
verschiedene Wirkungen. Einfluss auf die Verschiedenartigkeit, der Wirkungen
der Drogenkörner haben Trocknen der Droge, sowie Standort und Klima, unter
denen sie gediehen sind.

135. Casll, Th. Kennzeichen und Wirkung der Samen von Om-
phalea megacarpa (d i a n d r a) , Omphalea triandra und Garcinia nutans (v o n T r i n i •
dad). (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 357.)

Verf. beschreibt die im Titel genannten Euphorbiaceensamen auf das
genaueste. Was den ganzen Samen angeht, enthielten sie 47,33°/0, 36,9% und
26,0 °/0 fettes, ätherlösliches Öl. Im Endosperm fand sich an gleichen Bestand-
teilen 64°/0, 56,6% und 36,29%. Was nun die Wirkung der einzelnen Samen
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 7. i. IL] 30

466 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. [52

betrifft, so gibt der Verf. an, dass die Samen der Omphalea megacarpa und der
Omphalea triandra ebenso wie ihr Endospenn allein ein ätherisches Öl ent-
halten, das in geringen Dosen stark abführend wirkt. Hierbei sind irgend-
welche unangenehme Nebenwirkungen nicht aufgetreten. Was die Mittel
besonders empfehlenswert macht, ist der Umstand, dass sie ohne irgend
welchen unangenehmen Geschmack und Geruch vorzüglich abführend wirken.
Weniger gut sind die Samen der Garcinia nutans, da sie neben ihren guten
Bestandteilen giftige Prinzipien enthalten und mit grosser Vorsicht zu ge-
brauchen sind. Bei der guten Extraktion gehen diese giftigen Stoffe aller-
dings nicht in das Öl über.

136. Castoro, N. Über die in den Samenschalen von Cucurbita Pepo
enthaltenen Hemicellulosen. (Zeitschr. physiol. Chem., LH, 1907, p. 521.)

Der Verf. fand in den Samenschalen von Cucurbita Pepo in grossen
Mengen ein Xylem, in geringen Mengen Galaktan. Die Samenschalen selbst
hat H. C. Schellenberg einer eingehenden mikroskopischen Untersuchung unter-
worfen.

Aus diesen Studien ergab sich, dass die Hemicellulosen etwa zu 80 °/0
aus der Samenschale stammen. Nur 5 — 10 °/0 liefert die Quellsehicht der
Samenschale. Die restierenden Prozente fanden sich im Perisperm und Endo-
sperm. In den äusseren Samenhäutchen finden sich 2 — 3°/0 Hemicellulose.

137. Chamberlain, Joseph 8. Untersuchungen über die Eigen-
schaften der Weizenprote'inkörper. (Journ. Amer. Chem. Soc. XXVIII,
p. 1657—1659.)

138. Charabot, E. und Lalone, G. Über die Wanderung der Riech-
stoffe. (Compt. Rend., CXLIV, 1907, p. 808.)

Die Autoren untersuchten die bekannte Verbenacee Verbena triphylla.
Ihre Studien führten die Verf. aus sowohl während des Blühens der Pflanzen
als auch während der Zeit nach erfolgter Befruchtung, also am 16. September
und am 20. Oktober 1905.

Die Ergebnisse ihrer Beobachtungen fassen die Autoren wie folgt zu-
sammen:

Die Riechstoffe wandern von den Blättern zur Blüte. Zwischen der in
den Blütenständen "und der in den Stengeln vorhandenen Ölmenge sind Be-
ziehungen vorhanden. Man kann den Stengel als Kanal zum Leiten der
Riechstoffe betrachten, denn er verbindet die Erzeugungsstätte, das Blatt,
mit der Verbrauchsstätte, der Blüte.

Während der Tätigkeit der Blüten findet in den Wurzeln Anhäufung
der Riechstoffe statt, ebenso in den Stengeln, wogegen Blätter und Blüten-
stände einen grossen Teil dieser Stoffe zur gleichen Zeit einbüssen.

Im Öl der Blütenstände ist mehr Oitral als in dem der Blätter vor-
handen. Die Riechstoffbildung ist so zu erklären, dass das in den grünen
Pflanzenteilen auftretende Geraniol partiell esterifiziert, und dass dieser zur
gleichen Zeit zu Citral oxydiert. Diese Stoffe diffundieren nach den Blüten-
ständen, die infolgedessen ein leichter lösliches Öl enthalten als die Blätter.
Während der Fruchtbildung wird ein Teil der Riechstoffe verbraucht.

Die zu diesem Vorgange nötige Energie liefert das Citral.

139. Charabot, E. und Laloue, G. Das ätherische Öl von Magnolia
Kobus DC. (Compt. Rend., 1908, p. 183.)

In den ätherischen Ölen fanden sich die folgenden Kennzahlen:
d^°0.9432. «D -1° 20': löslich in 1 Vol. 90 prozentigem Alkohol, auf

53]

Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

467

weiteren Alkoholzusatz opalisierend, Siedepunkt 190—23.")°. Die Verf. konnten
15°/0Citrol und ferner Anethol, ferner kleinere Quantitäten von Alkoholen
und Estern konstatieren.

HO. Charabot, E. und Laloue, (i. Über das ätherische Öl von Te-
tranthera pohjantha var. citrata. (Compt. Rend.. 1908, p. 349.)

Tetranthera polyantha var. citrata ist eine Lauracee. Der Baum be-
herbergt in Rinde. Blättern und Früchten ein ätherisches Öl. Die Verff.
fanden

I. in der Rinde:

Citral 8 %
Citronellal 20 o/0

IL in den Blättern:

Citral 6 «• 0
Cineol 21,2%

III. in den Früchten:

Citral 64%
Geraniol (?) 19,4 %

Als Kennzahlen fanden sich

Geraniol (?) 56,5 °/0
Esterarten 2,4%

Geraniol (?) 31.3%

Ester 2 0/

o

dl5°

«D

V.Z. nach dem Ace-

tylieren . . . .

Löslichkeit . . .

0.9013
— 12« 30'

104.7
trübe löslich in
8 und mehr Vol.
70 proz. Alko-
hols

0,8872
+ 120 44'

172,5
löslich in 4 Vol.
70proz. Alkohols,
bei weiterem Zu-
satz Trübung

0.8673
+ 200 30'

252.3
löslich in 2 Vol.
75 proz. Alko-
hols, bei mehr
Opalescenz; in
jedem Verhält-
nis in 80 proz.
Alkohol löslich

141. Chevalier, J. und Abal. Über Collinsonia canadensis L. (Bull,
scienc. pharmacol., 1907, p. 513.)

Die Verff. leiten ihre Arbeit ein mit genauer Beschreibung und Ab-
bildung der in Canada vorkommenden Labiate Collinsonia canadensis. Dieses
Gewächs wird in Amerika sehr viel als Diureticum angewendet. Die Autoren
gewannen aus dem Rhizom ein saponinartiges Glycosid und ein Harz.

Das Glycosid erwies sich als schwaches Herztonicum.

Aus dem Rhizom wird ein Aufguss gewonnen (1 proz. 10 — 100 g), ferner
ein Pulver (0,5—4,0 g), eine Tinktur (20 gutt. bis 6,0 g) und ein Fluidextrakt
(0,1-3,0 g).

Zum Schluss erwähnen die Verf., dass diese Collinsoniapräparate auch
vielfach äusserlich angewendet werden.

142. Chevalier, J. und Vigne, P. Pharmakologische Notizen über
die Colanuss. (Bull. gen. de Therap., CLII1, 1907, p. 173.)

Die Verff. haben gefunden, dass die pharmakognostischen Prinzipien
der Colanuss in einem Tannoglycosid zu suchen sind, das die gesamte Menge

30*

468 Berichte über die pharniakognostisehe Literatur aller Länder. [54

von Coffein enthält. Eine in der Nuss auftretende geringe Menge ätherischen
Öles kommt erst in zweiter Linie in Betracht.

Die Verff. behandelten die ganzen Nüsse zuerst mit siedendem
Alkohol, um das Tannogiycosid zu gewinnen und die Oxydase abzutöten. Ist
im Vacuum der Alkohol beseitigt, so werden die gepulverten Nüsse mit Essig-
äther ausgezogen. Hierbei löst sich das Tannogiycosid. Die Verff. reinigten
es durch Waschen mit Äther und durch öfteres Umkristallisieren aus Alkohol
und Essigäther.

Das Glycosid ist in Wasser löslich, in der Lösung aber tritt sehr bald
Spaltung ein in je 1 Mol. Coffein. Glycose und einer Verbindung von Colarot
mit Coffein.

Die gelbbraune Färbung, die den trocknenden Colanüssen bald anhaftet,
kommt dadurch zustande, dass das Tannogiycosid durch die Oxydase ge-
spalten wird.

Reine Extrakte aus frischen Nüssen dürfen entweder keine oder nur
eine schwach rötliche Färbung zeigen.

Die Verfi. stellten ein Pulver her. das alle Eigenschaften der frischen
Nuss besitzt und auch die gleiche Wirkung wie diese hervorruft.

143. Clover, A. M. Philippinen-Holzöle. (Philipp. Journ. of Science,
1906. p. 1.)

144. Clover. Elemiöl. (Philipp. Journ. of Science. 1907. p. 1.)

145. Cobb. Wurzelkrankheit des Zuckerrohrs in Hawai. (Int.
Sugar. Journ, IX, 1907. p. 30.)

146. Coblentz, V. Geschichte und Gebrauch des Kampfers in
Pharmazie und Medizin. (Journ. Soc. Chem. Ind., XXVI, 1907, p. 382.)

Verf. beschreibt die Methode E. Reynolds, der durch Sättigen von
Kampfer mit Schwefeldioxyd ein Präparat bekam, dem er den Namen „Thio-
camph'4 beilegte. Wird dieses Produkt erhitzt, so gibt es das Gas wieder ab.
Aus 200 g Thiocamph gewinnt man 20 1 Schwefelsäuregas.

0,000005 g Kampfer sind noch durch den Geruch in 1 1 Luft wahrnehmbar.

Eine Verflüssigung des Kampfers tritt ein, wenn man ihn vereinigt
mit organischen Produkten, wie Salol, Resorcin, Menthol, allen Naphtholen,
Catechol, Thymol und organischen Säuren.

Medizinisch findet der Kampfer in 30 bis 40 Formen Anwendung.

147. Coflignier, Ch. Untersuchung einiger amerikanischer Ko-
pale. (Bull. Soc. chim., XXXV, 1907, p. 1143—1150.)

Dem Verf. lagen zur Untersuchung drei verschiedene Kopalsorten, die
erste aus Demarara (Britisch-Guyana), die zweite aus Kolumbien, die dritte
aus Brasilien vor.

I. Kopal von Demarara: Spezifisches Gewicht bei 19° = 1,047. Bei
90° tritt Erweichen, bei 180° Schmelzen ein. Säurezahl = 97,7; Kött-
storfersche Zahl = 102,4.

Beim Pulverisieren macht sich starker Valeriansäuregeruch be-
merkbar.
II. Kopal von Kolumbien: Spezifisches Gewicht bei 190° = 1,054. Bei
90° tritt Erweichen, oberhalb 300° Schmelzen ein. Säurezahl = 118,8;
Köttstorfersche Zahl = 155,7.
III. Kopal von Brasilien: Spezifisches Gewicht bei 19° = 1.053. Bei 50°
tritt Erweichen, bei 100° Schmelzen ein. Säurezahl = 123,0: Kött-
storfersche Zahl = 133.3.

55]

Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder.

469

In den unten angegebenen Lösemitteln waren in Prozenten in der
Siedehitze unlöslich:

I
72,10
77,40
53,00
55,40
56.90
70,90
69,20
92,50
50,20
73,90
37.10
75,50

148. Coflignier, Ch. Studie über Manila- und Pontianakkopale.
(Bull. Soc. Chim. France, III, 1908, p. 453.)

Dem Verf. kam es bei seinen sehr eingehenden Untersuchungen darauf
an, festzustellen, wie sich Härte und Zerreiblichkeit des Manilakopals und
des Pontianakkopals verhalten. Man kann seine Resultate wie folgt zu-
sammenfassen:

Alkohol . .
Holzgeist .
Amylalkohol
Äther . . .
Chloroform .
Benzol . .
Aceton . .
Terpentinöl
Benzaldehyd
Anilin . .
Amylacetat
Tetrachlor .

II

III

17,00

30,20

60,00

50,00

4,90

1,80

50,00

29,70

54,70

36.00

60,80

40,50

43,60

37,60

68,70

48,20

18,30

26,70

2,20

8,30

6,00

3,40

69.50

44,90

Manilakopal

Pontianak

hart

zerreiblich

kopal

1,065

1,060

1,037

1900

1200

1350

80°

450

550

72,8

145,2

134,3

87

185,1

186,5

Spezifisches Gewicht bei 17°

Schmelzpunkt

Erweichungspunkt . . . .

Säurezab.1

Köttstorfersche Zahl . . .

Was die Löslichkeit anbetrifft, so ähnelt diesbezüglich der Pontianak-
kopal dem zerreiblichen Manilakopal sehr, nur ist das spezifische Gewicht in
beiden verschieden.

Man kann den Pontianakkopal auffassen als einen halbharten Malina-
kopal, der dem zerreiblichen Manilakopal sehr nahe steht.

149. Cohen, N. E. Lupeol, a- und /?-Amyrin aus Bresk. (Arch.
Pharm.. 1907, p. 236.

150. Cohen, N. H. ,3-Amyrinacetat aus Balata. (Arch. d. Pharm.,

1907, p. 245.)

Der Verf. hat nach den von A. Tschirsch (Arch. Pharm., CCXLV, p. 245)
gemachten Angaben durch Verseifung des aus der Balata gewonnenen
«-Balalbans die hierbei gewonnenen Produkte untersucht.

Er gibt an, dass das «-Balalban nichts weiter ist als /3-Amyrinacetat.
Der Name «-Balalban ist daher aufzugeben.

151. Cohen, N. H. Über Phytosterine aus Balata. (Arch. d. Pharm.,

1908. p. 510 ff.)

Balata, aus Guyana stammend, nimmt eine Mittelstellung ein zwischen
Kautschuk und Guttapercha.

470 Berichte über die pkarmakognostische Literatur aller Länder. |5g

Tschirch und Schereschewski haben in dem alkohollöslichen Teile zwei
kristallisierende Stoffe nachgewiesen, «- und ß-Balalban. «-Balalban wurde
als identisch mit ß-Amyrinacetat befunden.

Diese beiden Stoffe hat der Verf. auch gefunden.

Für ß-Balalban stellt er die Formel C31Hj0O2 auf. Der Schmelzpunkt
liegt zwischen 111° und 112°.

Das Drehungsvermögen [«JD wurde zu -f- 57° bestimmt. Jedenfalls ist
/?-Balalban ein Ameisensäureester.

Verf. fand noch einen dritten kristallisierbaren Stoff, einen Lupeolester
vom Schmelzpunkt 208 — 210°. Vielleicht ist er ein Lupeolacetat, der jedoch mit
synthetischem Lupeolacetat nicht übereinstimmt.

152. Cohen, X. H. Studie über die Ohina-Alkaloidbestimmune-
nach Florence. (Pharm. Weekbl.. 1908, p. 1089.)

Verf. hat folgende gegen frühere Methoden sehr verbesserte Unter-
suchungsart vorgeschlagen:

In einem mit sehr gutem Kork verschlossenen Kölbchen werden 5 g
reinstes Rindenpulver mit 175 g Äther übergössen und umgeschüttelt. Man
gibt dann 5 ccm 15 proz. Natronlauge hinzu und wiegt. Eine Stunde lang
wird alle fünf Minuten stark umgeschüttelt, dann wird eine halbe Stunde lang
am Rückflusskühler gekocht. Nach dem Abkühlen wird mit Äther zum ur-
sprünglichen Gewicht aufgefüllt, nach Zusatz von 5 ccm Wasser wird sehr
stark umgeschüttelt und der Äther soweit als möglich in ein anderes Kölbchen
von 250 ccm Inhalt umgegossen. Nun werden 20 ccm Kaltwasser hinzu-
gegeben und nach festem Verschluss gut geschüttelt.

Nach Trennung der Flüssigkeit werden 100 g der ätherischen Lösung
in ein gewogenes Kölbchen von 200 ccm Inhalt durch einen Wattepfropf ab-
filtriert. Nach Abdestillation des Äthers werden die Alkaloide '/g — 2 Stunden
bei 100° getrocknet und dann gewogen.

Multipliziert man die Anzahl der gewogenen Gramme mit 25, so erhält
man den Prozentgehalt an Gesamtalkaloiden.

Um die Verunreinigungen zu bestimmen, werden diese Gesamtalkaloide
in 10 ccm 2 proz. Schwefelsäure gelöst. Darauf wird die wässerige Flüssigkeit
zweimal kräftig mit 20 bzw. 10 ccm Äther ausgeschüttelt. Dann wird der
Äther in ein gewogenes Kölbchen abdebtilliert und nach dem Verdunsten des
Äthers wird gewogen.

153. Cohen, X. H. Über Phytosterine aus afrikanischem Rubber.
(Arch. Pharm., 1908, p. 515.)

Unter Euphorbiarubber versteht man den koagulierten Milchsaft süd-
afrikanischer Euphorbiaceen, der nur sehr wenige kautschukähnliche Stoffe
enthält, wohl aber viel Harz.

Solchen Euphorbiarubber untersuchte Verf. auf seine kristallisierenden
Bestandteile hin. Er fand:

Reinkautschuk 5,5 % Unreinigkeiten 1,8 °/0

Harz 70.0 % Wasser 25,4 %

Es gelang dem Verf. der Nachweis von /?-Amyrinacetat, dessen Schmelz-
punkt bei 235» uegt, [«]D in Chloroform = -4-83,7°. Ferner fand Verf. ein
Phytosterin, das jedenfalls mit Isocholesterin aus Wollfett identisch ist.

Andere kristallisierende Stoffe konnten in reinem Zustande nicht er-
halten werden.

57] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 47 1_

154. Collin, M. E. Des sumacs et de leurs succedanes. (Journ.de
Pharm, et de Ohim., 6. ser., XXV, 1907, p. 603—610.)

Verf. beschreibt zunächst die Blattanatomie und auch die mikroskopischen
Merkmale des Blattpulvers der beiden wichtigsten Sumacharten, Rhus coriaria
L. und R. eotinus L. Weiter geht er kurz auf die Gewinnung und Bearbeitung
der Blätter ein sowie auf die verschiedenen in den Handel kommenden Varie-
täten. Recht ausführlich werden dann endlich die häufigeren Verfälschungen
behandelt; es sind dies besonders Zusätze von Pistacia lentiscus L., Tamarix
africana L., Rhus glabra L., Rhus metopium L., Coriaria myrtifolia L., Osyris
compressa Li. und Ailanthus glandulosa Desf. Die Blätter aller dieser Arten
werden sämtlich unter Hervorhebung ihrer charakteristischen Eigenschaften
besehrieben, um sie so unter Umständen von den echten Sumachblättern
unterscheiden zu können. K. Krause.

155. Collin, Eng. Mikroskopische Untersuchung von Kakao-
und Schokoladenpulvern. (Journ. Pharm. Chim., XXVIII, 1908, p. 295.)

Der Verf. benutzte folgende Methode:

Das Pulver wird zuerst mit Äther und Petroläther entfettet. Die Ent-
färbung mit Eau de Javelle oder Eau de Labaraque geschieht auf folgende
Weise: In einer mit flachem Boden versehenen Glasschale werden 1 — 2 g des
entfetteten Pulvers mit etwas Bleichflüssigkeit übergössen und geknetet.
Dann werden nochmals 60 — 80 ccm hinzugetan und maceriert unter möglichst
häufigem Umschwenken.

Tritt Entfärbung des Pulvers ein, so wird die überstehende Lösung ab-
gegossen, dann dekantiert mit destilliertem Wasser und der breiige Rückstand
unter dem Mikroskop untersucht.

Eine sehr gute Tafel gibt die einzelnen Elemente dieses Rückstandes
im mikroskopischen Bilde wieder.

156. Colombano. A. Über das aus den Samen von Solanum tubero-
sum L. extrahierte Solanin. (Atti R. Acad. dei Lincei Roma, XVI, 1908.
p. 683.)

Das aus Solanum tuberosum selbst hergestellte Solanin (Zerschmelzpunkt
260 — 263°) entsprach ganz dem Solanin des Handels. Es unterscheidet sich
aber vom Solanin, das aus Solanum sodomaeeum gewonnen wird, durch sein
Verhalten gegen verdünnte Mineralsäuren und durch seine Zusammensetzung.

Es wurden durchschnittlich aus Kartoffelsamen 2 72°/o Solanin gewonnen;
Blüten ergaben 6 — 7 °/0, die grünen Beeren gegen 10 °/0. Die Formel ist an-
zusprechen als C32H5lOuN.

Solanin aus S. tuberosum lieferte mit 2 prozentiger siedender Salzsäure
ein Solanidin vom Schmelzpunkt 210 — 215°.

Solanin aus S. sodomaeeum liefert ein Solanidin vom Schmelzpunkt
190—1920. Beide sind linksdrehend.

157. Combes, R. Über eine allgemeine Methode des mikro-
chemischen Saponinnach weises und über ihre Anwendung beim
Studium der Verteilung der Saponine in den Pflanzen. (G. R. Acad.
Sei. Paris, CXLV, 1908, p. 1431.)

Auf folgende Weise wird der Saponinnachweis geführt: Die Pflanzen-
schnitte werden 24 Stunden in gesättigtes Barytwasser gelegt; hierdurch
wird das Saponin in den Zellen als gelatinöse und fast farblose Baryt-
verbindung gefällt. Hiernach folgt Auswaschung mit Barytwasser und
Kalkwasser. Dann werden die Präparate in eine 10 prozentige Kalium-

472 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [5$

dichromatlösung gelegt; hierdurch wird die Barytverbindung zersetzt
und das Baryum in den Zellen als unlösliches zitrongelbes Baryumchromat.
gefällt.

Entgegengesetzt den saponin haltenden Zellen geben die tannin-
führenden Zellen bei dieser Reaktion einen Niederschlag von braunroter
Farbe.

Mittelst dieses Verfahrens gelang der Nachweis der Saponinverteilung
in Gypsophila paniculata, Saponaria officinalis, Arum maculatum, Aescuhis Hippo-
castanum, Anagallis arvensis und Digitalis purpurea-

158. Constantin und Bois. Folotsy und Voharanga, zwei neue Ascle-
piadeen von Madagaskar. (C. B. Acad. Sei. Paris, 1908, p. 257.)

Die Eingeborenen benutzen unter dem Namen Folotsy eine Asclepia-
dacee, deren Latex benutzt wird, um damit Kautschuk zu verfälschen.

Die Verf. benennen die Pflanze Folotsia. sarcostemmoides.

Der aus dieser Pflanze gewonnene Kautschuk enthält sehr viel Harze.
Die Verf. beschreiben die Species eingehend im botanischen Sinne.

Voharanga hat ein sehr merkwürdiges Aussehen.

Junge Exemplare sehen aus wie ein Stück totes Holz, dessen Ober-
fläche fast vollkommen bedeckt ist mit grünen flechtenartigen Warzen.

Die Autoren geben der Pflanze den Namen Voharanga madagascarienxis.

159. Constantin, J. und Poisson, H. Über einige Kautschukpflanzen
Süd-Madagaskars. (Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 572.)

Verf. beschreiben die Kautschukpflanzen Kekomba und Kidroa, Landolphia
mamolava und L. mamar. — Ferner wird eingehend beschrieben die Gewinnung
des Kautschuks durch die Eingeborenen.

160. Constantin und Poisson, H. Katafa, Geaya und Macrocalyx, drei
neue Pflanzen von Madagaskar. (C. E. Acad. Sei. Paris, CXLVII. 1908»
p. 635.)

Katafa crassisepalum nov. gen. nov. spec. ist eine der wichtigsten Arznei-
pflanzen der Eingeborenen. Die Zweige werden zu Aufgüssen und Räuche-
rungen verwendet, um Fieber und andere zahlreiche Krankheiten zu heilen.

Die Pflanze enthält ein aromatisches Prinzip. Das Gewächs soll einer
neuen Familie angehören, die zwischen den Icacinaceen und Celastraceen die
Mitte hält.

Geaya purpurea nov. gen. nov. spec. nahe verwandt mit den Ericacee.
Der Pflanze kommt saprophytische oder parasitische Lebensweise zu.

Macrocalyx tomentosa nov. gen. nov. spec. ist ein Baum mit sehr hartem
Holze, das von den Eingeborenen vielfach verwendet wird. Der Baum ähnelt
Gossypium, hat aber nur drei, nicht fünf Kelchblätter.

Jede der drei Pflanzen wird botanisch genauer beschrieben.

161. Cowie, W. B. Untersuchung und Gehaltsbestimmung von
Resina Jalapae. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 362.)

Der Autor hat folgendes Verfahren angewendet:

Er bestimmt den Feuchtigkeitsgehalt in ungefähr 5 g des Harzes; den
Aschengehalt in 1 g. Der Gehalt an ätherlöslichen Stoffen wird so bestimmt,
dass 1 g des getrockneten Harzes in einem Mörser gepulvert wird und dann
21/* Minuten lang mit 10 cem Äther geschüttelt wird.

Die ätherische Lösung wird durch Watte filtriert und das Verreiben mit
je 10 cem Äther dreimal wiederholt. Dann werden Trichter und Äther mit
Watte nachgespült, der Äther verdunstet und der Rückstand nach Trocknen

59J

Berichte über die pharoiakognostische Literatur aller Länder.

473

bei 110° gewogen. Säure- und Esterzahl wurden in 1 g des trockenen Harzes
in der bekannten Art bestimmt.

Es färbt sich eine Lösung von 6,25 g Jalapenharz in 5 ccm Essigsäure-
anhydrid mit zwei Tropfen konzentrierter Schwefelsäure nicht purpurrot. Ein
wenig Harz mit Alkohol und dann mit Eisenchloridlösung behandelt, darf
keine Blaufärbung hervorrufen. Es dürfen beim Verreiben mit Wasser weder
färbende noch andere Substanzen in das Wasser übergehen. Es soll ferner
das Wasser keinen bitteren Geschmack annehmen. Nach dem Kochen darf
die wässerige Lösung nach Behandlung mit Jod keine Blaufärbung ergeben.
Für die verschiedenen Jalapaharze kommt der Verf. zu folgenden Schlüssen:

d

Benennung

Feuchtig-
keit

%

Asche

°/o

Äther-
lösliches

%

Säure-
zahl

Ver-
seif ungs-
zahl

1

Resina Jalapae alba

3,0

0,02

0,3

2,8

417

2

Resina Jalapae alba

3,1

0,027

0,3

2,8

417

3

Jalapin (ätherunlösliche
Bestandteile reinen

Jalapenharzes) . . .

—

—

—

2,8

408

4

Resina Jalapae fusca .

5,0

0,3

10,0

14,0

333

5

Resina Jalapae fusca .

5,6

0,3

10,0

11,2

333

Für weisses Jalapenharz und für Jalapin wurden folgende Konstanten
festgelegt:

Schmelzpunkt 149 — 152° bzw. 145—150°. Optische Drehung:
[o]D = _ 39,5° bzw. 37,5».

162. Cowie, W. B. L'ntersuchung und Gehaltsbestimmung von
Scammonium. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 365.)

163. Cowie, W. B. und Brander, B. M. Untersuchung von mexika-
nischem Scammonium. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 366.)

Die Verf. geben über ihre Untersuchungen an verschiedenen Scammonium-
proben aus Mexiko folgende Resultate:

3

Feuchtig-
keit

°/o

Asche

Löslich

in Äther

(0,720)

°/o

Säure-
zahl

Ver-

seifungs-

zahl

Schmelzpunkt
Beginn Ende

L«Jd

1

3,05

0,20

72

8,4

295,0

80°

100»

— 18,75«

2

3,0

0,18

70

8,4

296,0

90°

1000

27°

3

2,0

0,16

68,6

8,4

327,0

—

—

—

Die Verf. meinen, dass das mexikanische Scammonium aus Jalapin,.
Scammonium und einem dritten Harze besteht, das einen sehr niedrigen
Schmelzpunkt hat.

164. Crae, J. Mc Nikotin in südafrikanischem Tabak. (Ohem.
Ztg., XXXI, 1907, p. 46.)

474 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

[60

Der Autor hat seine Bestimmungen an lufttrockenem Materiale aus-
geführt. Er verfuhr dahei nach der Kisslingschen Methode. Man kann seine
Resultate wie folgt zusammenfassen :

Material

Wasser
%

Nikotin

im
Tabak

Nikotin in der

Trockensubstanz

des Tabaks

1. Abfälle (Staub) aus einer Magalies-
bergfabrik 7,1 0,92

2. Abfälle (Staub aus einer Pretoria-
fabrik, welche Magaliesberg- und
Nataltabak verarbeitet) ..... 6,6 0,71 0,75

3. "Verdorbener Magaliesbergtabak . 7^41 0,47 0,50

4. Magaliesbergtabak, erste Ernte . 7,34 1,20 1,29

5. Magaliesbergtabak, zweite Ernte . 6,72 1,28 1,37

6. Magaliesbergtabak, dritte Ernte . 9,82 0,47 0,52

7. Magaliesbergtabak, als bester ge-
geben 6,92 1,91 2.05

8. Zontpansbergtabak 7,69 1,81 1,96

9. Zontpansbergtabak • 6,91 1,16 1,25

10. Babertontabak 8,17 3,88 4,22

11. Babertontabak ohne Blatt und

Stamm • 7,80 4,37 4.74

12. Babertontabak 7,48 2,01 2,17

13. Babertontabak • 10,24 2,88 3,21

14. Piet-Reti eftabak " 14,82 3,60 4,22

15. Venterstro omtabak 9,69 3,27 3,62

16. Potchefstoomtabak ...... 8,85 2,93 3,22

17. Nataltabak(unbestimmter Herkunft) 7,72 2,30 2,49

18. Nataltabak(unbestimmterHerkunft) 8,27 2,43 2,65

165. Crane, J. E. und Joyce, M. C. Bemerkungen zur Kampfer-
analyse. (Journ. Soc. Chem. Ind., XXVI, 1907, p. 383.)

Zur Untersuchung von rohem natürlichen Kampfer reicht die Polarisations-
methode vollkommen aus. Dagegen fehlt vollkommen eine Methode zur
Analysis des künstlichen Kampfers, da er im völligen Gegensatz zum rohen
natürlichen Kampfer das polarisierte Licht nicht abzulenken vermag.

166. Cuniasse, M. L. Caracterisation de l'essence dabsinthe.
(Journ. de Pharm, et de Chim., 6. ser., XXV, 1907, p. 180—182.)

Verf. empfiehlt zum Nachweis von Absinth folgende Reaktionen:

1. Combinaison avec Fhydroxylamine et formation de l'acetoxime corre-
spondante ä l'aide du sei de Crismer (reaction sensible seulement pour
les Solutions d'essence ä 3 g par litre).

2. Action de la phönylhydracine, legerement plus sensible que l'hydro-
xylamine.

3. Action du Sulfate acide de mercure. Les Solutions d'essence ä 3 g par
litre dans l'alcool ä 70 c sont ramenees ä 3 ou 4° alcooliques; ou
ajoute un volume correspondant de Sulfate acide de Mercure et on
chauffe au bani-marie. Dans ces conditions, les esseuces d'absinthe.

61 1 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. 475

de tanaisie et de fenouil donnent un precipite abondant et les essenees
d'anis, de badiane et d'hysope ne donnent rien.

4. L*iode se dissont en vert dans l'essence d'absinthe et cette propriete se
manifeste encoi-e nettement dans les Solutions it 3 g par litre.

5. Enfin, si dans chacune des essenees qui servent ä preparer la liqueur
d'absinthe, dissontes dans l'alcool ä 50 c ä raison de 1 g par litre, nous
faisons agir, pour. 10 ccm de Solution: 1. 1 ccm de Solution recente ä
10 p. 100 de nitroprussiate de sonde (1); 2. quelques gouttes de Solution
de sonde et 1 ccm d'acide acetique: nous obtenous; avec l'essence
d'absinthe de Paris une coloration rotige intense; avec l'essence de
tanaisie une coloration rouge intense, et rien avec les essenees de
fenouil, d'hysope, de coriandre, de badiane et d'anis; rien egalement
avec une Solution d'aldehyde acetique ä 1 g par litre.

167. Czerkis. M. Zur Kenntnis des Cannabinols, des wirksamen
Bestandteiles des Haschisch. (Lieb. Ann. Ohem., CCCLI, 1907, p. 467.)

Verf. konnte im Cannabinol ein Phenolhj'droxyd nachweisen, das ein
Trinitroderivat liefert, beim Oxydieren übergeht in eine Dicarbonsäure der
gleichen Kohlenstoffzahl.

Lässt man sehr stark oxydieren, so tritt neben Bildung von verschiedenen
noch nicht untersuchten Stoffen Buttersäure und Oxalsäure auf.

Die Destillation des Cannabinols mit Zinkstaub ruft eine Spaltung her-
vor in zwei Komplexe:

C13H180 und CgtLoO.

168. Damm, 0. Beiträge zur Kenntnis der Entstehungs-
bedingungen diastatischer Enzyme in höheren Pflanzen. (Naturw.
Eundsch., 1907.)

169. Danjou, Em. Ein Glycosid in den Blättern von Yiburnum
Tinus. (Nouv. Remed., XXIII, 1907, No. 38.)

Dem Verf. ist es gelungen, in den Blättern von Viburnum Tinus L. ein
Glycosid zu ermitteln, das sich bei der Hydrolyse in eine Zuckerart und
Baldriansäure spaltet.

170. Danjou, Em. Anwendung der biochemischen Methode zur
Auffindung und Bestimmung des Rohrzuckers und der Glycoside
in den Pflanzen aus der Familie der Caprifoliaceae. (Arch. Pharm., 1907,
p. 200.)

171. Decker. F. Über den Farbstoff im Safran. (Chemiker-Ztg..
1906, p. 18 ff.)

Dem Verf. war es möglich, das Crocetin, das bekanntlich den färbenden
Bestandteil des Safrans darstellt, als kristallisiertes Ammoniumsalz zu gewinnen.
Bisher war Crocetin nur in amorphen Flocken bekannt. Die Analyse ergab:
64,60% C, 8,70 o/0 H, 8,06 o/0 N, 18,64<>/0 O.

Der Verf. will die Molekulargrösse noch untersuchen.

172. Deer. Ein Beitrag zur Untersuchung des Jalapenharzes.
(Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 862.)

Verf. hat folgende Untersuchungsmethode benutzt und empfiehlt sie als
sehr zweckmässig:

Man übergiesse 1 g Harzpulver in einer gut verschlossenen Flasche mit
10 g alkoholfreiem Äther, schüttelt während 6 Stunden häufig und filtriert
die gewonnene Lösung in ein gewogenes Kölbchen. Dann wird Rückstand
und Filter dreimal mit 5 — 6 ccm Äther ausgewaschen und die vereinigten

476 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [ß2

Lösungen im Wasserbade eingedampft. Der Rückstand darf jetzt nicht niem-
als 0,1 g bei 100° betragen.

In kalter wie auch in warmer Ammoniakflüssigkeit ist dieser Rückstand
unlöslich.

Wird der ätherunlösliche Rückstand, der im Wasserbade getrocknet ist,
mit 5 g Ammoniakflüssigkeit übergössen und in einer gut verschlossenen
Flasche auf 30 — 40° erhitzt, so löst er sich als klare Flüssigkeit, die sich erst
dann trübt, wenn sie mit dem doppelten Gewicht Wasser verdünnt worden
oder mit verdünnter Essigsäure übersättigt ist. Auch dann tritt die Trübung
erst nach längerem Stehen ein.

Dann wandte der Verf. die Liebermannsche Cholesterinreaktion wie
folgt an:

Es darf sich die Lösung von 0,02 g Jalapenharz in 2 ccm Essigsäure-
anhydrid nach dem Vermischen mit einem Tropfen Schwefelsäure weder rosa
noch schmutziggrün färben. Blutrote Färbung tritt ein, wenn in der Lösung
10°/0 Colophonium vorhanden sind. Ist ein Guajakharz in der Lösung, so ist
schmutziggrüne Färbung zu beobachten.

Die Dietrichschs Methode zur Bestimmung von Säureester und Ver-
seif ungszahl verwirft der Verf. gänzlich.

173. Dehm, W. W. Charakteristischer Nachweis von Hippur-
säure. (Journ. Amer. Chem. Soc, XXX, 1908, p. 157.)

Der Verf. hat gefunden, dass, wenn man Hippursäurelösung mit Natrium-
hypobromit kocht, eine braunrote Färbung der Flüssigkeit auftritt.

Beim Stehen bildet sich dann am Boden des Gefässes ein roter, opaker,
festsitzender Niederschlag, der in Wasser vollkommen unlöslich ist.

Kocht man zu lang, so zersetzt sich die Substanz.

174. Dekker, J. Phytochemische Bemerkungen. (Pharm. Week-
blad, XLV, 1908, p. 1156.)

I. Nepheliumsaponin. Dieses wurde aus der Samenschale von
Nephelium lappaceum gewonnen, und zwar auf folgende Weise: Die gepulverte
und getrocknete Samenschale wurde bei gewöhnlicher Temperatur drei- bis
viermal in OOprozentigem Alkohol rnaceriert. Die dunkelroten Auszüge wurden
mit Magnesiumoxyd geschüttelt. Das nach Eindampfen des Filtrates restierende
Extrakt wurde mit Methylalkohol aufgenommen. Diese Lösung liefert mit
Essigäther eine Fällung. Auch dieses Filtrat wird wieder mit Methylalkohol
aufgenommen und gibt beim Fällen mit Äther rohes Nepheliumsaponin. eine
sehr scharf schmeckende, giftige Substanz.

In Schwefelsäure löst sich das Saponin mit gelber Färbung, die allmählich
in Purpur übergeht und sich dann entfärbt unter Bildung dunkelroter Flocken.

Nach Aufschichtung der Lösung in Eisessig und konzentrierter Schwefel-
säure entsteht ein brauner Ring. Beim Kochen mit verdünnter Säure entsteht
ein weisser kristallinischer Niederschlag.

II. Phyllanthus distichus. Aus der Wurzelrinde dieser Euphorbiacee
konnte der Autor einen lupeolähnlichen Stoff vom Schmelzpunkt 208° isolieren.
Es gelang dem Verf. auch ein Saponin und Gallussäure nachzuweisen.

III. Ipotnoea mammosa. Auf Java werden die Knollen dieses Gewächses
als Universalmittel benutzt. Vor allen Dingen wird die Pflanze viel benutzt
gegen Zuckerkrankheiten.

Dem Verf. gelang der Nachweis eines Harzes, sowie eine sehr starke
Oxydasereaktion gegen Guajakharztinktur.

63] Berichte über die pharuaakognostisehe Literatur aller Länder. 477

ITÖ. Delphin, F. Über die Prüfung des Perubalsams. (Svensk.
Farm. Tidskr., 1907, No. 22—24.)

Der Verf. untersuchte nach folgender Methode:

Er löste 2 g Perubalsam in einem zusammen mit einem Filter gewogenen
Kölbchen in etwas Äther. Darauf giesst man durch das Filter in einen
Scheidetrichter ab und wäscht Kolben und Filter gut mit Äther nach, trocknet
und wiegt. Dann schüttelt man die ätherische Lösung mit 40 ccm n/8 Kali-
lauge, die wässerige Lösung wird in einen 100 ccm Kolben gebracht und
nach Zusatz von 2 g Natriumbicarbonat bis zur Ausfällung des Harzesters
geschwenkt. Die Ätherlösung wird hierauf noch mit 2 ccm Wasser aus-
geschüttelt und diese zu der mit Natriumbicarbonat versetzten Flüssigkeit
gegeben. In diese Flüssigkeit wird nun eine Stunde lang Kohlendioxyd ein-
geleitet. Der entstehende Niederschlag wird auf einem Filter gesammelt, gut
ausgewaschen und nach dem Trocknen gewogen.

Waschwasser und Filtrat werden darauf vorsichtig mit Salzsäure ange-
säuert und der Niederschlag auf einem gewogenen Filter mit siedendem
Wasser gut ausgewaschen, bei 100° getrocknet und gewogen.

Das kalte Filtrat und Waschwasser ist mit Äther zu schütteln und die
ätherische Lösung mit n/i0 Kalilauge zu titrieren.

Multipliziert man mit 0,0148, so erhält man die Menge der aromatischen
Säure als Zimtsäure berechnet. Die das Cinnamein enthaltende Ätherlösung
wird eingedunstet und das Cinnamein 1/2 Stunde im Wasserbade erhitzt, dann
12 — 18 Stunden in den Exsiccator gebracht und gewogen. Das in 30 ccm
Alkohol gelöste Cinnamein wird nach Zusatz von 20 ccm n/2 alkoholische
Kalilauge eine Stunde beiseite gestellt, eine Stunde auf dem Wasserbade er-
hitzt Nach Erkalten filtriert man den Laugenüberschuss mit n/; Salzsäure
zurück. Aus der neutralisierten Flüssigkeit wird der Alkohol entfernt und
diese in einen Scheidetrichter gebracht und zweimal mit Äther ausgeschüttelt,
dann mit Wasser auf 25 ccm verdünnt. Es werden einige Tropfen Calcium-
chloridlösung beigegeben bis zu schwacher Opalescenz. Fällung darf nicht
sofort eintreten.

170. Delphin, T. Eine neue Methode zur Prüfung des Tolu-
balsams. (Svensk. Pharm. Tidskr., 1907, No. 3, 4, 5.)

Auf folgende Art untersuchte der Verf. den Tolubalsam:

Er bestimmt den Gehalt an Cinnamein (nicht unter 8°/0), an Zimtsäure
nicht unter 25°/0 und an Harzsäure nicht unter 1 °,'0.

Er löst 2 g Balsam in einem Scheidetricher in 25 ccm Äther auf, dann
fügt er 20 ccm njy Kalilauge hinzu und schüttelt um. Die wässerige Flüssig-
keit wird in einen Kolben von 75 ccm Inhalt abgelassen und die ätherische
Lösung nochmals mit 2 ccm Wasser ausgeschüttelt. Nach Ätherverdunstung
und nach -dem Trocknen wird das restierende Cinnamein gewogen. Die alka-
lische Lösung versetzt man mit 2 g Natriumkarbonat und leitet eine Stunde
langsam einen Kohlendioxydstrom hindurch. Dann wird filtriert und Kolben
und Fällung sorgfältig mit warmem Wasser ausgewaschen. Nun übersättigt
man das Substrat vorsichtig mit Salzsäure, sammelt den Niederschlag auf
einem gewogenen Filter, wäscht mit heissem Wasser aus und wiegt (Harz-
säure).

Das erkaltete Filtrat schüttelt man mit der auskristallisierten Säure in
einem Scheidetrichter dreimal mit Äther (40 -4-20 + 20 ccm).

478 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. ["(34

Hierauf werden die vereinigten ätherischen Lösungen nach Beigalte von
Phenolphthalein bis zur Rotfärbung der abgeschiedenen wässerigen Flüssigkeit
mit n/0-Lauge titriert.

Die verbrauchte Anzahl ccm X 0,0148 ergibt die Menge der aromatischen
Säuren, als Zimtsäure berechnet, für 2 g Balsam.

Verf. empfiehlt statt des bisher benutzten harten Tolubalsams die weichere
Art anzuwenden.

177. Dettmer. Über die Kultur des Kakaobaumes. (Pharm. Ztg..
LH, 1907, p. 406.) (Ref.!)

178. Detmer, W. Über die Kultur des Teestrauches. (Pharm.
Ztg., LIT, 1907, p. 40G.)

179. Deussen, E. undLewinsohn, A. Über das Caryophyllen. (Liebigs
Ann. Chem., COOL VI, 1907, p. 1.)

Die Verf. haben gefunden, dass das Oaryophyllen aus zwei isomeren
Kohlenwasserstoffen besteht, von denen einer durch Säuren invertierbar ist.

180. Dewey, A. H. Öl aus den Blättern der roten Oeder. (Pharm.
Rev., XXVI, 1908, p. 248.)

Die rote Oeder Thuja plicata (Thuja gigantea) führt in ihren Blättern
und Zweigen 6,8 — 1,4 °/0 ätherisches Öl. Dieses Öl ist hellgelb, riecht sehr
charakteristisch schwach stechend und kampferartig und ist in jedem Verhält-
nis in 70 prozentigem Alkohol löslich. Ihm kommen folgende Werte zu:

d25 = 0,9305 « d — — 6'9 °

S.Z. = 0,518 V.Z.= 5,7

A.Z. = 6,2.
In dem Öle finden sich nur 3% Terpene, darunter Pinen. Oymol fehlt
vollkommen. Dagegen sind nachzuweisen: die Ketone, Thujon und Fenchon
und Barneolester.

181. Dietrich, K. Balsamum tolutanum. (Ber. D. Pharm. Ges.,
XVIII, 1908, p. 135.)

Verf. nennt die folgenden Identitätsreaktionen für Tolubalsam:

Wird eine Mischung aus 0,5 g Tolubalsam, 5 ccm W7asser und 5 ccm
Natronlauge mit 10 ccm Äther ausgeschüttelt und macht man dann die den
Harzester führende Natronlauge sauer und schüttelt sie mit 10 ccm Äther aus,
so muss diese Ätherlösung, wenn man sie mit Schwefel- und Salzsäure unter-
schichtet, unten eine rote, oben eine grüne Zone zeigen.

Unterschichtet wird so, dass 5 ccm der Ätherlösung bei schief gehaltenem
Reagenzglas mit 1 ccm konzentrierter Schwefelsäure unterschichtet werden.
Dann wird das Reagenzglas wieder vorsichtig in gerade Lage gebracht und
nun lässt man die Schwefelsäure etwas auf den Äther einwirken.

Dann werden bei ebenfalls schief gehaltenem Reagenzglas 2 ccm Salz-
säure beigegeben.

Wird 0,1 g Tolubalsam in 5 ccm Eisessig aufgelöst und gibt man der
kochenden Lösung zwei Tropfen Schwefelsäure hinzu, so zeigt sich sehr schnell
eine blauviolette oder blaugrüne Färbung.

182. Dietrich, K. Über künstliche und synthetische Harzprodukte.
(Ber. Pharm. Ges., 1908, p. 135.)

Auf Grund eingehendster Untersuchungen gelang es dem Verf., festzu-
stellen, dass das Perugen, das man als künstlichen, nicht aber als synthetischen

t;5] Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 479

Perubalsam bezeichnen müsste, jedenfalls mit Tolubalsam bereitet wird, ob-
gleich das in der Patentschrift nicht angegeben ist.

Uni Perugen oder Tolubalsam im Perubalsam nachzuweisen, wendet der
Verf. folgende Methode an :

Die den Harzester enthaltende Natronlauge säuert man mit Salzsäure
an und schüttelt sie mit 10 ccm Äther aus. Dann unterschichtet man 5 ccm
dieser Ätherlösung vorsichtig mit 1 ccm konzentrierter Schwefelsäure. Nach
Aufrichten des Reagenzglases lässt man die Schwefelsäure etwas auf den
Äther an der Berührungsstelle einwirken. Dann fügt man nochmals bei schief
gehaltenem Reagenzglas vorsichtig 2 ccm Salzsäure hinzu.

Es darf nun die obere Zone zwischen Äther und Salzsäure keine grüne
Färbung annehmen, sondern eine rotbraune Farbe, die untere Zone färbt
-ich rot.

183. Ditmar, H. Regenerierter Kautschuk und seine Unzu-
lässigkeit zu Gummikompositionen für hygienische Artikel im
allgemeinen. (Chem.-Ztg., XXXI, 1907, p. 945.)

Verf. beschreibt einige Regenerationsmethoden. Er beweist, dass
regenerierter Kautschuk solche wesentliche Veränderungen erfahren habe, dass
sich solche bis zum Zerfall des Kautschukmoleküls ausdehnen. Derartige Ver-
änderungen machen ihn natürlich zur Herstellung von hygienischen Artikeln
vollkommen wertlos, da hierfür nur das beste Rohmaterial mit sehr wenig
Schwefelzusatz geeignet ist.

184. Ditmar, K. Die Analyse des Kautschuks, der Guttapercha,
Balata und ihre Zusätze. Wien, Hartlebens Verlag, 1908.

185. Ditz, H. Über die Einwirkung von Ammoniumpersulfat-
lösungen auf Zellulose. 1. Die Bildung eines Zelluloseperoxyds
und seine Eigenschaften. (Chem.-Ztg., 1907, p. 833, 844, 857.)

Der Verf. beweist durch eine grosse Versuchskette, dass beim Kochen
von Zellulose mit Ammonium- oder Kaliumpersulfat und verdünnter Schwefel,
säure Zelluloseperoxyd gebildet wird, das bei kaltem Wasser nicht, jedoch in
kochendem Wasser, sowie beim Trocknen bei 100° zerstört wird.

Unabhängig vom Zelluloseperoxyd entsteht eine in Wasser unlösliche
Säure, die nach Zusatz von Neutralsalzen (NaCl, KCl, nicht aber Na2So4) durch
Methylorange zu erkennen ist.

Zum Schluss zeigt der Verf. die Bildung von Oxyzellulose bei diesen
Versuchen und zeigt die Beständigkeit des so gebildeten Peroxydes bei ge-
wöhnlicher Temperatur.

186. Dohine, L. und Engelhardt, A. Scopolia oder Belladonna. (Deutsch-
amerik. Apoth.-Ztg., 1907, No. 8.)

In Nordamerika ist Radix Belladonnae immer schwieriger zu beschaffen.
Deshalb meinen die beiden Verf., man solle an Stelle dieser Wurzel die von
Scopolia verwenden.

Diese enthält die gleichen Alkaloide wie Radix Belladonnae, nur in be-
deutend höherer Konzentration. Deshalb ist sie therapeutisch natürlich viel
wirksamer.

Im übrigen weisen die Verf, darauf hin, dass die Scopolia in Nordamerika
schon längst zur Herstellung des dort viel verlangten Belladonnapflasters
verlangt wird.

187. Dohme, A. R. L. und Engelhardt, H. Anforderungen an Sandel-
holzöl. (Arner. Journ. Pharm., LXXX, 1908, p. 51.)

480 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [fJ6

Die Verf. haben sich jahrelang mit den genauen Untersuchungen des
ostindischen Sandelholzöles befasst und kritisieren die Anforderungen der Unit.
Ph. Pharm. Sie schlagen folgende LTmänderungen vor:

I. Die verlangte optische Drehung wird nur selten erlangt bei sonst
vollkommen einwandfreien Produkten. Es dürfen nur — 12° — 20° verlangt
werden.

IL Eine Garantie bietet die Löslichkeit in 70 prozentigem Alkohol
durchaus nicht, da ein Öl mit 95 % Santalol sich im Verhältnis von 1 : 6 Vol.
anstatt 1 : 5 Vol. löst und ein anderes mit mehr als 97,7 °/0 Santalol in 5 Vol.
70 prozentigem Alkohol unlöslich ist.

III. Zu niedrig bemessen sind die Säurezahlen. Für die Beurteilung der
Ölqualität geben sie gar keinen Anhalt.

188. Doht, Walter. Neuere Arbeiten über Acetvlzellulose.
(Zeitschr. angew. Chem., XX, 1907, p. 743.)

Die vorliegende Arbeit gibt eine übersichtliche Zusammenstellung der
im Inlande und Auslande erteilten Patente über Acetvlzellulose. Ferner werden
die wissenschaftlichen Publikationen besprochen, in denen die Konstitution
der Acetvlzellulose erläutert worden ist.

Auch Arbeiten, die auf die Anwendung der Acetvlzellulose hinauslaufen,
sind aufgezählt.

189. Doroschewsky, A. G. und Rakowsky, A. Einwirkung von Sal-
petersäure auf Stärke. (Chem.-Ztg., XXXI, 1907, p. 399.)

Die beiden Verf. studierten in zwei Versuchsreihen den Gang der In-
version der Stärke beim Erhitzen mit Salpetersäure am Rückflusskühler, sowie
in der zugeschmolzenen Glasröhre.

Sie konnten feststellen, dass die Zeit der vollkommenen Inversion der
Konzentration der Säure umgekehrt proportional ist und dass die zuletzt er-
reichte Drehung sich von der der Glycose nicht unterscheidet.

Es entstehen dabei Stoffe, die mehrere Osazone bilden.

190. Dott, D. B. Opiumuntersuchung. (Pharm. Journ., LXXVIII,

1907, p. 78.)

Die Resultate der U. St. Pharm, kritisiert der Autor. Es fand bedeutend
bessere nach folgender Methode:

10 g der Probe werden mit verdünntem Weingeist ausgezogen, nach
dem Abdampfen auf ein Drittel des Volums wird 0,1 g Natriumsalicylat,
0,1 g Ammoniumoxalat sowie verdünnte Ammoniakflüssigkeit bis zur fast
neutralen Reaktion hinzugefügt. Die Flüssigkeit muss sauer reagieren. Dann
wird nach einer Stunde gewaschen, das Filtrat auf 1,2 g konzentriert. Nun
bringt man es unter Zusatz von 3 ccm Wasser und 5 ccm Weingeist in eine
Flasche, fügt 50 ccm Äther und 3 ccm Ammoniakflüssigkeit hinzu und verfährt
jetzt genau nach Vorschrift der Pharmakopoe.

Vor der Titration wird der Niederschlag sorgfältig ausgewaschen und
zwar mit morphiumgesättigtem Wasser.

191. Dowzard, Edwin. Bergamottöl. (Amer. Journ. Pharm.. LXXI.

1908, p. 204.)

Der Verf. hat 23 Bergamottöle untersucht und hat nun folgende Kon-
stanten festgelegt:

Spez. Gew. bei 150 = 0,881—0,886 Rotation (100 mm) + 8<\— + 24°

Löslichkeitszahl = 220—290 Rückstand 4,3-6,4 %

Säurezahl 1,4—4,2 Linalacetat = 32 °/0 und mehr

67] Beriohte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 4gJ

Als hauptsächlichste Verfälschungen nennt der Verf.:
Destilliertes Bergamottül Lemonöl

Orangenöl Zitronenöl

Terpentinöle Alkohol

Zu erkennen sind solche Beimischungen leicht entweder an der stärkeren
Dichte oder an der geringeren Drehung.

Durch fettes Öl vermehrt sich der Abdampfungsrückstand, durch freie
Säure erhöht sich die Säurezahl.

192. Dowzard, E. Orangenöl. (Amer. Journ. Pharm., LXXX, 1908,
p. 63.)

Verf. hat 17 verschiedene Untersuchungen über ätherisches Öl aus
süssen Orangen gemacht. Er erhielt dabei folgende Konstanten:
Spezifisches Gewicht 0,848—0,853 bei 15°.
Optische Drehung bei 200 = -f-95<> f- 98<>.

Verfälschungen sind infolge des hohen Rotationsvermögens des Öles
leicht nachweisbar.

Bei gutem Öl darf die Drehung der ersten 10%, die beim Destillieren
übergehen, nicht geringer sein als die des übrigen Öles.

193. Dowzard, E. Hyoscyamus muticus. (Amer. Journ. Pharm., LXXX,
1908, p. 201.)

Hyoscyamus muticus L. ist aus Ägypten auf den amerikanischen Markt
gebracht worden. Der Verf. empfiehlt dies mehr als das übrige Material. Die
Droge enthielt in allen Teilen bedeutende Alkaloidmengen, die lediglich aus
Hyoscyamin bestanden. Es fand sich in

der Gesamtdroge 0,75 % in der Wurzel 0,83 °/0

in den Stengeln 0,48% im Laub 1,34%

im Samen 1,17%
an Hyoscyamin.

Nach Ansicht des Ref. dürfte sich diese Droge nicht allzu lange am
Markte halten. Denn solche Mengen, wie sie von einem gewissenlosen Floren-
ausbeuter in den Handel gebracht werden, vermögen die vegetationsarmen
Täler und Schluchten Ägyptens und des Sinai nicht so schnell wieder zu
ersetzen. Es ist bedauerlich, dass ganze Formationen eines an sich schon
mehr als pflanzenarmen Gebietes so der Spekulation gewisser „Floristen" (? ?)
zum Opfer fallen, deren sonstiger botanischer Blick durch keinerlei Sach-
kenntnis getrübt ist.

194. Droberg, G. Reinigung und Raffination natürlichen
Kampfers. (Journ. Soc. Chem. Ind., XXVI, 1907, p. 381.)

In der Praxis werden folgende Methoden angewendet:

I. Resublimation:

a) in Europa in Glasretorten, liefert die runden konkaven Kuchen;

b) in Amerika sublimiert man aus flachen eisernen Pfannen, mit eisernen
Deckeln. Produkt flache Kuchen.

II. Condensation : Kampferdampf wird in grosse eiserne oder steinerne
Kammern geführt. Hier kristallisiert er zu einem mikrokristallinischen Pulver.
Dieses wird hydraulisch zu Würfeln und Platten gepresst.

III. Kristallisation aus siedendem Benzol oder Petroleumäther. Die aus-
geschiedenen Kristalle werden in Centrifugen getrocknet.

Botaniseher Jahresbericht XXXVII (1909) 3. Abt. [Gedruckt 12. 4. 11.1 31

482 Berichte über die pharuiakognostisohe Literatur aller Länder. [68

Roher Kampfer kommt als grauweisses Pulver in den Handel. Seine
gewöhnlichen Verunreinigungen sind:

Wasser Eisen

Kampferöl Sand

Holz
Das Kampferöl wird schon in Japan in der Hauptmenge vom rohen
Kampfer getrennt.

Näheres über die einzelnen Gewinnungsarten siehe im Original.

195. Dabosc, A. Über den Kopal von Madagaskar. (Bull, de la
soc. ind. de Rouen, 1906, p. 372.)

Die Ostküste von Madagaskar liefert eine recht stattliche Anzahl von
Gummiharzen. Die meisten besitzen ein bernsteinartiges Äussere, haben eine
rotgelbe bis gelbweisse Färbung, abgerundete Formen und fast immer glasigen
Bruch. Folgende Zahlen gibt der Autor an:

Dichte 1,654 Schmelzpunkt 327°

Erweichen bei 105° Säurezahl 78.5

In Methylalkoholäther, Methylalkohol, Benzol, Aceton und Tetrachlor-
kohlenstoff ist der Kopal kalt fast ganz unlöslich; warmgemacht geht ein
Viertel in Lösung über.

Grössere Qualitäten lösen sich in Terpentinöl, Chloroform, Amylalkohol.
Noch mehr Lösung bewirkt Anilin, Amylacetat, am meisten Benzaldehyd.
Äther und Amylalkohol bewirken Quellung und Bleichung. Anilin bildet mit
dem Kopal eine rötliche Gallerte.

196. Dubard und Eberhard. Die Kautschukpflanzen in Indochina.
(Naturw. Rundsch., 1908, No. 5.)

Die in Tonkin gemachten Versuche, die besten fremdländischen Kautschuk-
bäume einzuführen, hatten keinerlei Erfolg.

In den verschiedenen Provinzen ist aber ein Kautschukbaum gefunden
worden, der zur Gewinnung geeignet ist.

Die Verf. benannten den Baum Bleekrodea tonkinensis. (Eine Moracee.)

197. Dufresne, M. Anwesenheit von Paramethyloxyzimtaldehy d
in Estragonessenz und einige Derivate des Estragols. (Compt. rend.,
OXLV, 1907. p. 875.)

Wenn Estragonessenz durch Destillation von Teyxenen und Estragol
befreit wird, so entsteht nach mehrmaligem Fraktionieren unter vermindertem
Drucke ein gelbes öl, das bei 171° (15 mm) siedet und eine Dichte = 1,137
besitzt. Dieser Stoff ist zu identifizieren mit Paramethyloxyzimtaldehyd:
0 • CH3-CH4— OH=CH— CHO.

Der Gehalt der verschiedenen Handelsessenzen schwankt zwischen 4,5 °/e
bei alten und 0,5-0,6% bei frischen Produkten.

198. Dufresne. Zusammensetzung von Estragonöl. (Bull. Soc.
Chim. Franc, V, 1908, p. 330.)

Verf. fand im Estragonöl 15— 20°/0 Terpene C10H16. Aus ihnen Hessen
sich isolieren :

I. Ein aliphatischer Kohlenwasserstoff mit drei Doppelbindungen, jeden-
falls zu identifizieren mit Ocymen.

IL Ein cyclischer Kohlenwasserstoff mit starker Rechtsdrehung Seine

691 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. 433

Konstanten nähern sich denen des Phellandrens, 60% bis 70°/0 Estragol, frei
von Anethol, ferner 0,5°/0 bis 0,6°/0 Paramethoxyzimtaldehyd.

199. Dancan, W. Mexikanisches Scammonium. (Pharm. Journ.,
XXVII, 1908, p. 378.)

Verf. untersuchte eine Droge, die als „Mexican scammony" zur Her-
stellung von Scammoniumharz gedient hatte. Es handelte sich um Orizaba
Jalapae.

Die Droge bestand hauptsächlich aus Wurzeln, die mit den Stammteilen
untermischt waren. Sie lieferte 16,5 °/0 Harz, wogegen eine Wurzel 20,1 °/0
Harz lieferte.

Das gewonnene Harz wird allen Anforderungen gerecht, die die englische
Pharmakopoe an Scammoniumharze stellt, bis auf die transparente grünliche
Färbung.

Ein Hauptunterschied gegenüber der echten Droge fand der Verf. im
Schmelzpunkt, der hier tiefer liegt bei 110°. Auch die Säurezahl liegt um
25o/0 tiefer.

200. Dunstan, R. und Henry, A. Th. Über die Bildung der Cyan-
wasserstoffsäure in den Pflanzen. (Ann. de Chim. et de Phys., X, 1907,
p. 118—125.)

Frühere Autoren hatten schon festgestellt, dass die Javabohnen cyan-
wasserstoffabspaltende Glycoside enthielten, die bei der Spaltung durch ver-
dünnte Säuren entstehen.

Diese Ansichten bestreiten beide Verff. entschieden. Sie konnten bei
Nachprüfung der früheren Versuche nur Phaseolnuatin gewinnen, das bei
Spaltung unter anderen Produkten auch Aceton lieferte.

Die Javabohnen enthalten ausser Emulsin noch zwei andere glycosid-
spaltende Enzyme, deren eines dem Emulsin, das andere der Maltose ähnelt.

Letzteres Enzym wird das Phaseolnuatin in Glycose, Aceton und Cyan-
wasserstoff zerlegt. Hierdurch ist die Konstitution des Phaseolnuatins als
«-Glycoseäther des Acetonanhydrides bewiesen.

201. Dupare, L und Monnier, A. Über einige Eigenschaften und
Reaktionen der ätherischen Öle. (Arch. Sc. phys. nat. Genf., XXVI, 4,
1908, p. 609.)

Bei ihren Untersuchungen über die Identifizierung der ätherischen Öle,,
die in den Absinthlikören auftreten, ergab sich kein grosser Unterschied in
den Massermengen, die gebraucht werden, um die alkoholischen Lösungen
zu trüben. Eine quantitative Bestimmung auf Grund des Emultionsvermögens
der ätherischen Öle ist also nicht möglich.

Als gute Methode geben die Autoren an, die Öle aus der Lösung durch
Wasser, dem man etwas Geeignetes beigegeben hat, auszufällen und sie mit
einem guten Lösungsmittel, wie z. B. Äther und Petroläther, aufzunehmen.
Nach Entfernung des Lösungsmittels werden sie getrocknet und gewogen.

Soll Wermutöl oder ähnliches identifiziert werden, so ist die Segaische
Nitroprussidnatriumreaktion sehr geeignet.

202. Durand und Eberhard. Über einen Kautschukbaum Tonkins.
(C. R. Acad. Sei. Paris, CIXV, 1907, p. 631.)

Verf. geben genaue Angaben über die Entdeckung einer neuen Kautschuk-
pflanze in Tonkin, die den Apocynaceen angehört. Sie wird in Gruppen

31*

484 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

[70

von 50—150 Stück angetroffen. Die Bäume werden 10 — 15 m hoch. Das
Produkt soll einen ausgezeichneten Kautschuk liefern.

Der Baum wird als ßleekrodea tonkinensis bezeichnet; zwei andere Species
kommen auf Borneo oder Madagaskar vor.

203. Dnyk. Über die Butter der Tonkabohne. (Rep. de Pharm.,
XX, 1908, p. 193.)

Es gelang dem Verf., für das Fett der Tonkabohne folgende Konstanten
festzulegen:

Schmelzpunkt 28°.
Dichte bei 100" = 0,888.
Verseifungszahl 257.

Brechungsindex (Zeiss Abbe) 47.
Kritische Lösungstemperatur (1 Vol.
Fett und 2 Teile abs. Alkohol) 32,50.
Esterzahl 250.
Index der löslichen flüchtigen Säuren (nach Leffmann-Beam) 5,4.
Ausserdem gelang es noch, ziemliche Mengen unlöslicher flüchtiger
Säuren nachzuweisen.

204. Dybowski, J. Über den Tee der französischen Kolonien.
(C. R. Acad. Sei. Paris, 1908, p. 1433.)

Verf. hat je drei Teeproben untersucht von:
I. Tee aus Indochina.
IL Tee aus Madagaskar.
III. Tee aus Ceylon.
Der Verf. kommt zu folgenden Resultaten:

Stoffe

Probe I

Probe II

Probe III

2,82

2,34

2,40

0,209

0,255

0,255

89,28

88,60

88,55

2,18

2,76

3,12

0,279

0,326

0,312

87,45

88,40

88,33

2,24

2,04

2,30

0,558

0,488

0,488

90,28

89,50

89,73

I. Coffein . . .
Tannin ....
Trockensubstanz
IL Coffein . . .
Tannin ....
Trockensubstanz
III. Coffein . . .
Tannin ....
Trockensubstanz

Der Tee aus Indochina sowohl wie der aus Madagaskar ist gleich gut
wie die übrigen Handelsmarken.

205. Eberhardt, P. La Badiane (IUidum anisatum) et sa eulture en
Indo-Chine. Paris 1906.

206. Ebert, F. Beiträge zur Kenntnis des chinesischen Arznei-
schatzes, Früchte und Samen. (Zeitschr. f. allgem. österr. Apotheker-
Verein, LXI, 1907, No. 30.)

Die Untersuchungen des Verf. beruhen auf dem Material, das sich im
Züricher Museum findet.

Die Bestimmungen sind vom Verf. genau kontrolliert worden. Die
Namen der Stammpflanzen sind genau geprüft worden.

Der Arbeit sind zahlreiche Literaturangaben beigegeben.

71] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 485

207. Kbert, A. Beiträge zur Kenntnis einiger seltener Manna-
sorten und verwandter Körper. (Zeitschr. für allgem. östr. Apoth.-Ver.,
XLVI, 1908, p. 427, 439, 447, 459, 467, 479, 491, 503, 515, 530.)

Der Verf. gibt im ersten Teil seiner sehr ausführlichen Arbeit einen
historischen Überblick über die Literatur und die bisher angewendeten Unter-
suchungsarten. Folgende Zusammensetzungen wurden gefunden:

I. Trehala.

Wasser 11,08%. Fett und Chlorophyll 2,01 %.

Asche 2,61%. Trehalose 17,5%.

Schleim 27.08 %. Stärkezellulose 31,75 %.

Rückstand und Spuren an Gerbstoff 12,78%.

11. Terendschabin. Wasser 5,2%.

Asche 9,35%.
Schleim 20,35%.
Rohrzucker.

III. Manna von Salix fragilis.

Dextrose 17,45 %. Wasserlösliche Bestandteile 13,27%.

Rohrzucker 50,01 %. Unlöslicher Rückstand 19,2%.

IV. Manna von Quercus Vallonia.

Rohrzucker 53,2 %.
Traubenzucker 19,0%.
Pflanzenschleim 10,3%.
Wasser 7,45%.
Rückstand 10,05%
Dextrin und Invertzucker konnten nicht nachgewiesen werden.

V. Schir-Khist (Cotoneaster nummularia).

Dextrose 37,5%.
Rohrzucker 12,9%.
Pflanzenschleim 24,2%.
Rückstand 9,5%.
Wasser 15,9%.

VI. Eucalyptus Manna (Eucalyptus G-unnii Hook. var. rubida).

Melitose 68,49%.
Dextrose 20,86 %.
Invertzucker 2,14%.
Pflanzenschleim 3,22%.
Pflanzen wachs 0,11%.
Rückstand 4,27 %.
Asche 6,78%.
Wasser 9,74%.

VII. Manna von Eucalyptus pulverulenta.

Melitose 21,75%.
Fruktose 16,15%.
Rohrzucker 6%.
Rückstand 1 %.
VIII. Tabaschir, ein kieselsäurereiches Secret aus dem Innren der Bambus-
stengel.

486 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [72

Anorganische Bestandteile 90°/0.
Rohrzucker 4,25%.
Schleim 2,6 o/0.
Keine der untersuchten Sorten enthielt Mannit.

208. Eeckhout, A. van der. Studien über die hypnotische Wirkung
in d er Val e rian säuregruppe. (Arch. exper. Patbol. Pharmakol., LVII
1907, Heft 5/6.)

Die Untersuchungen des Verfs. beziehen sich auf Bromural (Monobromiso-
valerianylharnstoff). Es wurden ferner untersucht:

Jodisovalerianylharnstoff. Chloriso valerianylharnstolf.

Broinvalerianylharnstoff. Isovalerianylharnstoff.

Valerianylharnstoff. Bromisovaleriansäureamid.

Brombutryl harn stoff. Bromisobutylharnstoff.

Brombuttersäureamid.

208a. Ehrlich, Felix. Über eine Methode zur Spaltung razemischer
Aminosäuren mittelst Hefe. (Biochem. Zeitschr., 1906, Bd. I, p. 8- — 31.)

Von den klassischen Pasteurschen Methoden zur Spaltung von Razem-
verbindungen in ihre beiden optisch-aktiven Komponenten hat die biologische
Methode, die darauf beruht, dass aus dem ursprünglichen Razemkörper durch
die Tätigkeit niederer Lebewesen die eine optisch- aktive Komponente, und
zwar immer die in der Natur vorkommende Modifikation, zerstört wird, während
die Antipode zurückbleibt, nur wenig praktische Anwendung gefunden. So-
fern man sich ihrer bediente, blieb sie fast ausnahmslos beschränkt auf die
Spaltung von Kohlehydraten und anderen diesen nahestehenden stickstoff-
freien Substanzen, die für die zur Spaltung benutzten Pilze (Hefe, Penicillium
glaucum, Aspergillus niger) einen vorzüglichen Nährboden lieferten. Bei Stick-
stoff haltige n Körpern, unter denen die optisch-aktiven Aminosäuren als
Bausteine des Eiweisses besonderes Interesse beanspruchen, war eine Spaltung
der Razemverbindungen mittelst Mikroorganismen bisher nur wenige Male und
meist unvollkommen ausgeführt worden. Dagegen ist es mit Hilfe der von
E. Fischer ausgearbeiteten eleganten chemischen Methoden (Zerlegung der
razemischen Aminosäuren durch Kombination ihrer Benzoyl- bzw. Formylver-
bindungen mit Alkaloiden und fraktionierter Kristallisation der beiden Anti-
poden) gelungen, die natürlich vorkommenden Aminosäuren und ihre optischen
Spiegelbilder künstlich darzustellen.

Die vom Verf. gelegentlich seiner Arbeiten über die Bildung des Fusel-
öls aufgefundene Methode ist eine biologische und beruht auf einer partiellen
Vergärung der razemischen Aminosäuren in sehr kurzer Zeit durch viele Hefe
in Gegenwart von Kohlehydraten. Im Gegensatz zum tierischen Organismus
vermag nämlich die Hefe, wie viele Pflanzen, natives Eiweiss nicht zu assi-
milieren, sondern benutzt zum Aufbau ihres Körpereiweisses gerade die lös-
lichen, diffusiblen Stickstoffkörper, zu denen auch die physiologisch-chemisch
hochinteressanten letzten Spalt produkte des Eiweisses, die Aminosäuren,
gehören.

Wenn sich Hefe in einer nur wenig Stickstoffverbindungen enthaltenden
Zuckerlösung bei Sauerstoffzufuhr vermehrt, so nimmt nach Versuchen von
Delbrück und Hayduck ihr Eiweissgehalt beträchtlich ab, sie wird stick-
stoffarm. Lässt man jetzt diese stickstoffarme Hefe in einer genügenden

73] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 487

Menge reiner Zuckerlösung ohne Anwendung jedweder anderen Nährsalze auf
eine razemische Aminosäure wirken, so tritt ausser einer vollständigen Ver-
gärung des Zuckers eine Mästung der Hefe an Stickstoff ein, wozu der
Stickstoff der einen Komponente der Aminosäure verwandt wird. Auf diese
Weise wird die eine — die natürlich vorkommende — optisch-aktive Form der
Ami nosäuren vergoren, der grösste Teil der anderen kann nach dem Abfiltrieren
der Hefe aus der LösuDg gewonnen werden.

Mit Hilfe dieser schnell und leicht, mit geringer Apparatur und ein-
fachen Mitteln ausführbaren Methode, die im Prinzip der Vergärung der Zucker
durch Hefe ähnelt, hat Ehrlich nun 1-Alanin, d-Leucin, l-a-Aminovaleriansäure
und noch eine Reihe anderer optisch-aktiver Aminosäuren aus ihren Razem-
verbindungen dargestellt. Es wurde bei diesen Versuchen übrigens auch stets
ein Teil der Antipode — also der natürlich vorkommenden Form — mit von
der Hefe zerstört, so dass die Ausbeute nur 2/3 — 3/4 der Theorie betrug.

209. Eibner, A. Über Copaivabalsam und Copaivaöle. (Farben-
Zeitung, XIII, 1908, p. 1627.)

Verf. gibt zunächst eine ausführliche Aufzählung und Beschreibung der
echten und unechten Copaivabalsame, sowie ihrer Ersatz- und Verschnitt-
mittel.

Dann werden besprochen die technischen Prüfungsmethoden (Säure-,
Verseifungs- und Esterzahl), das Verhalten derselben gegen Lösemittel, ferner
die Ammoniakprobe zum Kolophoniumnachweis und zum Nachweis von
Terpentin.

Es werden zum Schluss eingehend behandelt die physikalischen und
chemischen Eigenschaften der Copaivaöle.

Bezüglich der sehr zahlreichen und interessanten Einzelangaben sei auf
das Original verwiesen.

210. Einhorn, A. Über neue Arzneimittel. (Liebigs Ann. Chem.,
1908, p. 145.)

211. Eismann, G. Über Kautschukkultur in Deutsch-Ostafrika.
(Tropenpflanzer, 1907, No. 2.)

Am besten eignet sich für Deutsch-Ostafrika die sogenannte Ceara-
kautschukkultur. Während Kickxia und Hevea an den Boden ziemlich hohe
Anforderungen stellen, wächst Manihot Glaziovii auch auf weniger gutem
Boden schnell und gut.

Verf. empfiehlt die Kulturen mit Zwischenkulturen zu versehen, wie
z. B. Baumwolle. Auch sind grössere Abstände zwischen den einzelnen
Bäumen sehr zu empfehlen.

Der untersuchte Kautschuk gab folgende Resultate:

1. Hevea- Kautschuk: 4,80 Feuchtigkeit, 4,55 Harze, 75,33 Reinkautschuk,
Unlösliches und Verunreinigungen 13,2%. — Die Qualität erwies sich
als ganz vorzüglich.

2. Manihot-Kautschuk: 8,45 Feuchtigkeit, G,45 Harze, 78,8 Reinkautschuk,
8,3;°/0 Verunreinigungen. — Die Qualität war gut.

3. Ficns- Kautschuk: 13,38 Feuchtigkeit, 40,53 Harze. 42,36 Reinkautschuk»
3,73 °/0 Verunreinigungen. — Diese Qualität wrar sehr minderwertig.

211a. Elborne und Warren. Zur Prüfung des Pfefferminzöles-
(Pharm. Journ., 1907, No. 1942.)

488 Berichte über die phaimakognostische Literatur aller Länder. I 74

212. Ellinger, A. Über die Konstitution der Indolgruppe im
Eiweiss. III. Oxydation des Tryptophans zu /S-Indolaldehyd. (Ber.
d. D. Chern. Ges., XXXIX, p. 2515 ff.)

Die Arbeit trägt zu stark chemischen Charakter, um hier eingehender
erörtert zu werden.

213. Endemann, H. Zur Schellackanalyse. (Zeitschr. f. angewandte
Chem., XX, 1907, p. 1776.)

Der Verf. gibt folgende Methode zur Schellackuntersuchung an:

2 g sehr fein zerriebener Probe werden in einer Porzellanschale mit
ungefähr 10 g gereinigtem Sand gemischt. Dann gibt man erst 4 ccm Alkohol
und zum Schluss 20 ccm konzentrierter Salzsäure hinzu. Nach dem Eintrocknen
wird der Zusatz von Alkohol und Säure wiederholt und dann im Wasserbade,
später im Luftbade bei 100 — 105° getrocknet.

Nach dem Erkalten wird mit 20 ccm Alkohol augefeuchtet und über
Nacht beiseite gestellt.

Dann wird dekantiert und in geringen Mengen mit Alkohol ausgezogen,
bis die filtrierten Auszüge 150 ccm oder mehr betragen.

Der unlösliche Teil wird von Wachs (Myricilalkohol) gebildet, sowie
von kondensierten Oxysäuren. Aus dem gelösten Teil destilliert man den
Alkohol ab. Im Rückstande sind die nicht zu den Oxysäuren zu rechnenden
Säuren.

Im besten Handelsschellack sind nachzuweisen :

87% Oxysäuren 5% Schellackwachs
8% lösliche Teile (Fette und Harze).

Giesst man auf eine Lösung in konzentrierter Schwefelsäure Zucker, so
entsteht bei Harzgehalt erst intensiv blaurote, dann blaue und zum Schluss
schwarze Färbung.

214. Endemann, H. Weitere Bemerkungen über Schellack. (Journ.
Frankl. Inst., CLXV, 1908, p. 217.)

Der Verf. gibt nähere Angaben über die in einer früheren Arbeit (Zeit-
schrift f. angewandte Chem., XX, 1907, p. 1776) erwähnte Oxydation des im
hydrolytischen sog. flüssigen Schellack befindlichen kristallisierbaren Säure.
Er bezeichnet diese als Trioxypalmitinsäure.

Der Verf. bestimmt die Bromzahl der Abietinsäure. Die Säure nahm
ungefähr 18 Atome Brom auf. Es entstand dabei ein Körper ohne jede saure
Eigenschaft. Daraus erfolgt, dass bei der Bromierung CO* abgespalten wird.

Bezüglich der anderen interessanten Angaben der Arbeit muss auf das
Original verwiesen werden.

215. Engel, A. Über den Kongokopal und über den Benguela-
kopal. (Arch. Pharm., 1908, p. 293.)

216. Engler, A. Syllabus der Pflanzenfamilien. Übersicht über
das gesamte Pflanzensystem mit Berücksichtigung der Medizinal-
und Nutzpflanzen nebst Übersicht über die Florenreiche und Ge-
biete der Erde. Fünfte, umgearbeitete Auflage, Berlin, Gebr. Borntraeger,
247 pp.

Das bekannte Werk des grossen Systematikers liegt abermals in einer
Neuauflage vor.

Da das Buch ein ganz unentbehrliches Nachschlagewerk für den Apotheker

751 Berichte über die pharraakognostische Literatur aller Länder. 489

darstellt und bei seiner Billigkeit leicht angeschafft werden kann, soll hier auf
den Inhalt nicht näher eingegangen werden.

217. Engstrand, Georg. Vergleichende Untersuchungen über die
Wirkung von Digitalen und Digitalysatum. Bürger. (Svensk Farm.
Tidsskr., 1908, p. 185.)

218. Eriksson, Ella. Vergleichende Anatomie und Entwickelungs-
geschichte der Stengel der offiziellen Kräuter. (Ber. D. pharm. Ztg.)

Die Veif. untersuchte die in der schweizerischen Pharmakopoe ent-
haltenen Herbae. Die Arbeit ist reichlich mit ausgezeichneten Abbildungen
versehen.

Abgehandelt werden Adonis vernalis, Viola tricolor, Conium maculatum,
Erythraea Centaurium, Majorana hortensis, Lobelia inflata, Artemisia Absinthium,
Artemisia vidgaris, Cnicus benedictus, Achillea millefolium.

Die Verf. untersuchte vor allem die Entwickelung der mechanischen und
wasserleitenden Elemente.

Bezüglich der Einzelheiten der sehr genauen und interessanten Arbeit
muss auf das Original verwiesen werden.

219. Erlenmeyer, E. jun , ßarkow und Herz. Isomere Zimtsäuren.
(Berl. Ber., XL, 1907, p. 653.)

Die Verf. haben nach ihren eingehenden Untersuchungen mit vollster
Gewissheit feststellen können, dass mindestens sechs verschiedene Zimtsäuren
existieren. Fünf derselben haben die Autoren kristallographisch eingehend
gemessen.

I. Isozimtsäure. Schmelzpunkt 37 — 38°.

Gewonnen beim Reduzieren der «-Bromallozimtsäure mit Zinkstaub und
Alkohol.

II. Allozimtsäur e. Schmelzpunkt 68°.
Gewonnen aus Blättern von Erythroxyloncoca.

III. Isozimtsäure. Schmelzpunkt 59°.
Gewonnen aus Erythroxyloncoca und aus Storax.

IV. «-Zimtsäure. Schmelzpunkt 134—135°.
Gewonnen aus Storax.

V. /9-Zimtsäure. Schmelzpunkt 132 — 133°.
Gewonnen aus der Borigen Säure durch Umlagerung.

Säure LV (Storaxzimtsäure) kristallisiert aus Äther in zentimetergrossen,
schönen Tafeln.

220. Ernest, A. und Berger, H. Peroxydasen aus der Zuckerrübe.
(Berl. Ber., XL, 1907, p. 4671.)

Es gelang den Verff., aus Zuckerrübenbrei unter Ausscheidung anderer
Enzyme vermittelst Alkohols und Äthers Peroxydasen zu isolieren.

Diese finden sich in den Zellen der Zuckerrüben. Peroxydasen beob-
achteten die Verff. ferner auch in jungen Radieschen.

221. Etard, A. Die trockene Destillation des Schellacks. (Compt.
rend., CXL, 1905, p. 1603.)

Bei der trockenen Destillation des Schellacks erhielt der Verf. folgende
Zahlen :

gasförmige Anteile 6°/0 flüssiges Destillat 72°/0

kolisartiger Rückstand 22°/o.

490 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [76

Vom Destillat wurde sofort Wasser abgeschieden. Auf dieser Flüssigkeit
befand sich oben ein blaues, zähes, schwach fluoreszierendes Öl (50,975), das
ungefähr 62°/0 des Schellacks darstellte.

Im Öle fanden sich:

Oleinsäure, Capronsäure, Sabacinsäure, Terpene (C5H8)n vom Siedepunkt
235 — 2-40°, ein Kohlenwasserstoff (Dipenten?) vom Siedepunkt 170 — 175°, ein
Polyterpen vom Siedepunkt 310°, ein Kohlenwasserstoff C32H66 vom Schmelz-
punkt 61—52° und Siedepunkt ca. 360°.

Der Verf. spricht den Schellack an als ein wenig beständiges Oleat,
eine fortlaufende Reihe von Polyterpenen.

222. Euler, H. und A. Alkohole und Harzsäuren im Blaufirnis
von Alnus glutinosa. (Berl. Ber., XL, 1907, p. 4760.)

So klebrig die jugendlichen Blätter von Alnus glutinosa sind, so trocken
sind die älteren herbstlichen.

Zuerst sind sie mit einem dünnen firnisartigen Lack bedeckt. Dieser
ist leicht abzuwischen mit Benzol-Toluol.

Es gelang zu isolieren:

I. Gluti nol, O14H28O. Es ist dies ein farbloser, gesättigter, in Alkohol,
Äther, Benzol leicht löslicher Alkohol.

II. Glutanol, C14H2602. Dies ist ein bei 76° schmelzender, in Äther
sehr schwer löslicher Alkohol.

III. Glutinolsäure (Co8H4805). Sie konnte nur amorph erhalten werden.
Vielleicht stellt sie eine Mischung von Isomeren dar.

IV. Glutinsäure, Cn8H4407; auch sie ist amorph und in Petroläther
unlöslich. Dadurch ist sie leicht von der Glutinolsäure zu trennen.

Beiden Säuren kommt die Salkowskische Cholesterinreaktion zu.

223. Evers, F. Über Perubalsam. (Pharm. Ztg., LH, 1907, p. 828.)
Im wesentlichen eine Entgegnung gegen die Mitteilungen von Caesar

und Loretz über den sogenannten synthetischen Perubalsam, Perugen.

224. Evesqne, Verdier u. Bretin. Über giftige Bohnen, sogenannte
ungarische Bohnen. (Journ. Pharm. Chim., XXVI, 1907, p. 348.)

Die Verfasser fanden bei der Unsersuchung von Phaseolus vulgaris ein
charakteristisches Kristall, das nur diesen Bohnenfrüchten zukommt.

Diese Oxalsäuren Kristalle finden sich in den Zellen der Oberhaut.

Ferner gelang der Nachweis eines blausäureabspaltenden Glycosides.

Die durch Hydrolyse des Glycosids entstehende Blausäure wurde nach der
Methode von Deniges bestimmt. 1 kg Bohnen enthielt 0,3420 Blausäure oder
in einer Kation von 60 g eine Menge, die 41 g Kirschlorbeerwasser entspricht.

225. Ewers, E. Über die Bestimmung des Stärkegehaltes auf
polarimetrischem Wege. (Zeitschr. öff. Chem., 1908, p. 150.)

226. Eyken, P. A. T. Über die Gegenwart von Guajol in einem
Holze Neuguineas. (Rec. trav. chim. Pays-Bas, XXV, 1906, p. 40.)

Aus einem, jedenfalls einer Conifere angehörenden Holze, das auf der
Insel Celebes heimisch ist, gewann der Verf. ein Öl, das beim Erkalten grössere
Mengen einer Verbindung abschied, die mit Guajol von der Formel C15H260
identisch ist.

227. Fahrion, W. Über die Autoxydation des Colophoniums.
(Zeitschr. f. angewandte Chem., XX, 1907, p. 356.)

77] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 49 [

Dem Verf. gelingt es, die Resultate einer früheren Arbeit (Zeitschr. f.
angewandte Chem., XVII, 1904, p. 238) zu bestätigen. Er hatte damals be-
wiesen, dass Colophonium, wenn es in dünner Schicht der Luft ausgesetzt
wird, Sauerstoff aufnimmt. Das hatten Tscbirch und Studer (Arch. f. Pharm.,
CCXLI, 1903) angezweifelt.

Bei dieser Sauerstoffaufnahme entstehen Oxjabietinsäuren.

Die Formel der Abietinsäure fasst der Autor als CooH^Oa zusammen.

Die Formel der sehr unbeständigen Peroxyde, die sich bei der Oxydation
bilden, formuliert der Verf. als Co0H30O6.

228. Falck, Richard. Über den Hausschwamm. (Zeitschr. f. Hygiene,
LXV, 1907, p. -478.)

228a. Farnsteiner, K. Untersuchungen über ein Verfahren des
wahren Alkalitätswertes der Aschen. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs-
u. Genussmittel, XIII, 1907, p. 305.)

Das direkte Verfahren der Alkalitätsbestimmung hat den Mangel, dass
die Phosphate infolge ihrer Reaktion auf die bekannten Indikatoren je nach
ihrer Menge ein zu hohes Resultat verursachen. Verf. hat auf Grund umfang-
reicher Versuche folgendes Verfahren ausgearbeitet: Bei der Herstellung der
Asche verwendet man entweder eine Spiritusflamme oder schützt vor der
Aufnahme von Schwefelsäure aus dem Leuchtgase durch eine durchlochte
Asbestplatte. Aschen, die mit Salzsäure aufbrausen, behandelt man nach 1.,
nicht aufbrausende phosphorsäurereiche nach 2. 1. Kohlensäurereiche Aschen.
0,2 — 0,3 g der scharf getrockneten Asche rührt man mit etwas Wasser zu
einem feinen Brei an und bringt sie in bedecktem Gefässe mit 10 — 20 ccm
n/2- Salzsäure in Lösung. Die saure Lösung bringt man mit Hilfe von 30 — 40 ccm
Wasser verlustlos in ein Erlenmeyerkölbchen von etwa 150 ccm Inhalt, erhitzt
die Flüssigkeit zum Sieden und lässt sie bei ganz klein gestellter Flamme
unter mehrfachem Umschwenken etwa 3 — 5 Minuten kochen. Die kalte
Lösung führt man mit 20—30 ccm Wasser in einen Mischzylinder über, mischt
nach Möglichkeit, setzt 5 — 10 ccm streng neutraler Chlorcalciumlösung (5 g
trockenes Chlorcalcium und 10 g Chlorammonium zu 100 ccm) und 10 — 20 ccm
einer etwa halbnormalen Ammoniaklösung zu und füllt mit kohlensäurefreiem
Wasser zu 100 ccm auf. Nach mehrfachem kräftigen Schütteln lässt man
wohl verschlossen über Nacht absitzen, hebt dann mit einer Pipette 25 — 50 ccm
der klaren Flüssigkeit ab und titriert nach Zusatz einiger Tropfen Methyl-
orange mit n/10-Salzsäure. Bezeichnet a das Gewicht der Asche in g, S das
Volumen der zur Lösung verwandten Säure in ccm n^-Säure, n das Volumen
des zugesetzten Ammoniaks in ccm n/1-Ammoniak, s das Volumen der zum
Zurücktitrieren für die ganze Substanzmenge verbrauchten Säure in ccm
n/x-Säure, so ist die Alkalität für a Gramm Asche: a = S -f- s — n. 2. Neutrale
oder pyrophosphathaltige Aschen. Bei Aschen, die mit Salzsäure keine deut-
liche Kohlensäureentwickelung zeigen, und die also Pyrophosphate enthalten
können, führt man die Pyrophosphate zweckmässig zuerst in Ortho phosphate
über. Zu diesem Zwecke erhitzt man 0,2 g der Asche mit 20 ccm n/2-Salz-
säure eine Stunde lang zum schwachen Sieden und zwar in einem geeigneten
geschlossenen Apparate, z. B. einer Retorte mit aufwärts gerichtetem Halse,
von dem ein in einen Trichter endigendes Rohr nach unten führt, das mit
dem Trichter in Wasser taucht. Die abgekühlte Flüssigkeit führt man verlustlos
unter Nachspülen mit Wasser in einen Messzylinder über und verfährt dann

492 Berichte über die pharimkognostisehe Literatur aller Länder. |7g

weiter sinngemäss nach 1. Ein dreistündiges Erhitzen liefert niedrigere Er-
gebnisse. Pyrophosphathaltige Aschen zeigen, auf diese Weise untersucht,
negative Alkalitätswerte, deren Höhe im Verhältnis zum Gehalte an Pyro-
phosphat steht. Zweckmässig ist es, bei derartigen Aschen die Alkalität in
einer kalt hergestellten und sofort weiter verarbeiteten Lösung in titrierter
Säure zu bestimmen. Die so erhaltene Zahl gibt einen Anhalt für den Zustand
der Asche selbst und wird sich meist wenig von Null entfernen. Die unter
1 angeführte Vorbehandlung zur Entfernung der Kohlensäure bewirkt schon
eine teilweise Inversion des Pyrophosphates.

Auf die Ergebnisse der Alkalitätsbestimmung nach obigem Verfahren an
Verbindungen von bekannter Zusammensetzung und an Aschen verschiedenster
Herkunft sei verwiesen.

229. Farr, E.H. und Wright, R. Die Opium probe, eine Bemerkung
zu dem offizinellen Verfahren bei der Bestimmung von Morphin in
Opium und Opiumtinktur. (Pharm. Journ , LXXVIII, 1907, p. 78.)

Zuerst unterziehen die Verf. die Methoden der N. St. Pharm, einer
kritischen Besprechung. Sie empfehlen als geeignet die folgenden Methoden
und Abänderungen.

I. Opium. 8 g Opium werden gemischt mit 2 g Calciumhydroxyd und
80 ccm Wasser. Dann werden 52 ccm Wasser entsprechend 5 g Opium ab-
filtriert.

IL Starke Opiumtinktur. Statt 80 ccm nehme man 40 ccm, die auf
10 ccm einzudampfen sind, oder man verjage allen Alkohol. Dann gebe man
1 g Calciumhydroxyd hinzu und mische sorgfältig, fülle auf 42 ccm auf, filtriere
25 ccm ab, die ebensoviel Opiumtinktur entsprechen. Dann verwende man
0,2 g Rohmorphin zur Titration.

III. Opiumfluid extrakt: Man verdünne auf 40 ccm und verfahre im
übrigen wie in No. II.

IV. Opiumextrakt: Man verwende 2,5 g, löse in 20 ccm heisstm
Wasser auf und mischt nach dem Erkalten mit 1 g Calciumhydroxyd. Dann
wird auf 52 ccm aufgefüllt und nun werden 40 ccm entsprechend 2 g Extrakt
abfiltriert. Zur Titration werden 0,3 Rohmorphin verwendet.

230. Fass, E. H Über die Wirkung der Blätter der einjährigen
und zweijährigen Digitalis purpurea. (Drug Topics, 1907, p. 253.)

Verf. stellte Tinkturen her sowohl aus Blättern von einjährigen wie
auch zweijährigen Digitalis-Pflanzen. Haques hat diese Tinkturen auf ihren
Wert geprüft.

Es verhielten sich die Wirkungen der einjährigen Blätter zu denen der
zweijährigen wie 8^4 zu 10.

Ein besonders grosser Unterschied ist also in den Blättern nicht zu
bemerken.

Als Voraussetzung gilt natürlich, dass die beiderlei Blätter vom gleichen
Standort kommen.

Verf. empfiehlt sehr, vor dem Trocknen die Blattstiele zu entfernen.

231. Feist, K. Über die Alkaloide der Colombo -Wurzel. Vortrag,
gehalten auf der 79. Naturforscherversammlung. Dresden UJ07.

Ausser Jateorrhizin und Columbamin konnte der Verf. noch Palmatin
isolieren. Dieses Palmatin ist nicht der Methyläther des Columbamius. Ohne

79 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 493

Zweifel aber ist das Oolumbamin anzusprechen als der Methyläther des
Jateorrhizins. Es ist gelungen, beide Alkaloide auszukristallisieren. Dadurch
gelang der Beweis, dass sich das Columbamin in der Wurzel als Nitrat, das
Jateorrhizin als Chlorid vorfindet.

Die drei Colomboalkaloide zeigen enge Beziehungen zum Berberin.

Verf. isolierte einen neuen farblosen Bitterstoff aus Colombeextrakt, der
aber noch nicht genauer untersucht werden konnte.

232. Feist, K- Über das Tannin. (Bull, scienc. pharm., XV, 1908,
p. 89.)

233. Fenton, H. J. H. Eine neue Zuckerprobe. (Lancet, Jan. 1907.)

234. Fernau. Nachweis von Mutterkorn im Mehl. (Pharm. Journ.,
II, 1907, p. 11.)

Als Nachweis des Mutterkornes im Mehl eignet sich ganz vorzüglich
das Sklererythrin. Man isoliert dieses in der Weise, dass man 10 g Mehl mit
20 ccm Äther und 10 Tropfen verdünnter Schwefelsäure in Berührung lässt.
Dann wird filtriert und der Rückstand mit 10 ccm Äther ausgewaschen.

Versetzt man die Ätherlüsung mit 15 Tropfen einer gesättigten Natrium-
bicarbonatlösung, so nimmt diese das Sklererythrin mit violetter Färbung auf.

235. Fichtenholz, A. Nachweis des Arbutins in den Pflanzen.
(Journ. Pharm. China., XXVIII, 1908, p. 253.)

Der von Jungman angegebene Arbutinnachweis in den Pflanzen mittelst
der Blaufärbung durch Phosphormolybdänsäure in alkalischer Lösung ist dem
Verf. zufolge nicht ganz einwandfrei, denn Hydrochinon und Toluchinon geben
die gleiche Reaktion.

Zuverlässig ist der biochemische Nachweis nach Bourquelot. Hierbei
stützt man sich auf die optische Drehung der Pflanzenauszüge vor und nach
der Behandlung mit Emulsin, also auf die Glycosidspaltung. Das Emulsin
muss ziemlich lange auf das Arbutin einwirken, denn die Spaltung tritt nur
sehr langsam ein.

Das Resultat ist vermittelst der Fehlingschen Lösung kaum zu kon-
trollieren, da ausser der Zuckerkomponente auch noch das Hydrochinon
reduzierend einwirkt.

236. Filsinger, F. Über den Pottaschengehalt der aufge-
schlossenen Kakaopulver des Handels. (Zeitschr. f. öff. Chemie, 1906,
p. 246 ff.)

Beythien fand bei 95 untersuchten Proben die Alkalität des in Wasser
löslichen Aschenteiles zwischen 0,94—4,65%. Lührig hatte bis 2,75% be-
rechnet. B. will nur diesen Satz von den erstgenannten Alkalitäten abnehmen,
so dass also Kakaopulver mit 5 % Kaliumcarbonat nicht zu beanstanden wäre.

237. Fineke, Heinrich. Gehalt des Pfeffers und Kakaos an Zellu-
lose, Lignin und Kutin. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs- u. Genuss-
mittel, XIII, 1907, p. 265 ff.)

Zum Zweck der Untersuchung dieser Fragen hat der Verf. bei Pfeffer-
schalen, schwarzem und weissem Pfeffer, sowie bei Kakaoschalen und Kakao,
die mit Glycerin-Schwefelsäure erhaltenen Rohfasern weiter auf ihren Gehalt
an Reinzellalose, Lignin und Kutin untersucht. Die Ergebnisse waren
folgende:

494

Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

180

In der wasser- und

aschenfreien Substanz

In Prozenten

u

der Rohfaser,

Bezeichnung

CO
CO

CD
Ü

u

Einzelbestand-

im Mittel

der untersuchten

rt

£

CD

pH

CO

CD
CO

a

teile der Rohfaser

Substanz

i i

.9

p

■ i

.9

a

O

Ö Ö g

'S

a E> °

"a

tf

11^

bß

3

M

o— ' o

bß

3

°/o

°/o

°/o

°/o

°/o

°/o

°/c

%

%

°/o

l

23,54

8,74

12,52

2,28

/

Pfefferschalen . .

12,13

6,70 J

22,19

8,95

11,22

2,03

38,68

51,89

9,43

Schwarzer Pfeffer,

/

14,50

4,88

7,83

1,79

i

Tellicherry, ge-

14,24

3,76 j

34,21

53,66

12,13

(

13,36

4,65

7,12

1,59

1

Weisser Pfeffer,

i

11,59

/

12,41

3,59 j

11,04

| 3,12

6,54

1,66

27,56

57,77

14,67

Weisser Pfeffer,

5,78

1,11

3,76

0,91

j

Penang, ge-

15,05

—

2,06

17,27

67,19

15,54

kalkt

'

5,74

0,88

3,98

0,88

'

Weisser Pfeffer,

,

5,40

1,16

3,20

1,04

j

Singapore, un-

15,71

—

0,99

20,28

60,93

18,79

gewaschen . . .

'

5,40

1,03

3,38

0,99

'

Weisser Pfeffer,

,

4,97

j

Singapore, extra-

14,83

—

0,83

1,73

2,66

1,00

23,59

55,53

20,88

fein, gewaschen

4,62

'

Weisser Pfeffer,

/

5,16

0,96

3,21

0,99

|

Java, superfein,

14,71

—

0,72

j 18,73

61,93

19,34

gewaschen . . .

4,77
In der

0,90
wasser-

2,94
-, fett

0,93
- und

asche

afreien

Substanz

i

8,98

2,81 i

\

20,21

9,88

9,92

0,41

|

Kakaoschalen . . 1

8,99

2,74 |

7,91 j

20,25

9,07

10,87

7

0,31

46,84

51,38

1,78

|

4,97

28,52 J

l

9,28

3,57

5,47

0,24

/

Puderkakao • • • )

4,95

28,86 i

6,07 J

8,88

3,18

5,48

0,22

j 37,17

60,30

2,53

238. Fischer, Emil und Abderhalden, Emil. Bildung von Dipeptiden
bei der Hydrolyse der Proteine. (Ber. Deutsch. Ohem. Ges., XXXIX,
p. 2315.)

Den Verff. gelang es, mit Hilfe eines früher schon angewendeten Ver-
fahrens zwei neue Dipeptidenhydride zu gewinnen. Der Inhalt der Arbeit ist
sonst rein chemisch.

238a. Fischer, Emil und Raske, Karl. Verwandlung des 1-Serins in
aktives natürliches Cystin. (Ber. Deutsch. Chem. Ges., 1908, XLI, p. 893
bis 897.)

Vor kurzem gelang es den beiden Verff. (vgl. Just, Jahresb. 1906), durch

gl] Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. 495

Reduktion der aus salzsaurem 1-Serinmethylester gewonnenen l-«-Amino-/?-chlor-
propionsäure, C1CH2 • CH(NH2) • COOH, mit Natriumamalgam in saurer Lösung
d-Alanin zu erhalten, wodurch die optische Gleichartigkeit dieser beiden
natürlichen Bausteine des Eiweisses bewiesen war.

Jetzt ist es nun geglückt, durch Erwärmen mit Baryumhydrosulfid aus
der l-«-Amino-^-chlorpropioDSäure eine Lösung zu erhalten, in der sich beim
Durchleiten von Luft Cystin bildet. Es scheidet sich dieser Körper beim all-
mählichen Eindunsten der Lösung aus; er zeigt nach dem Umkristallisieren

20
die Kristallform des natürlichen Produktes und eine Drehung [«] -pj = — 209,6°,

die wenig tiefer liegt als die von Mörner an den reinsten Cystinproben aus
Protein beobachtete ( — 223—224,3°). Ein Wechsel der Konfiguration in
Waldens Sinne ist bei diesen Verwandlungen, die nicht einmal am asym-
metrischen Rohlenstoffatom vor sich gehen, nicht zu befürchten.

Es entspricht also das natürliche 1-Cystin in sterilischer Beziehung dem
natürlichen 1-Serin und d-Alanin. Formelmässig kann man sich den Vorgang,
der in gleicher Weise auch bei der inaktiven Aminochlorpropionsäure zum
Ziele führt, durch die folgenden zwei Gleichungen veranschaulichen:

2 CH2C1 • CHNH2 • COOH -4- Ba(SH)2 = BaCl2 + 2 CH2SH • CHNH2 • COOH

2 CH2SH • CHNEL • COOH -f- O
= H20 + COOH • CHNH2 • CH2 ■ S— S • CH2 . CHNH2 • COOH.
Den Zusammenhang dieser Konfigurationsverhältnisse mit denen von
d-Glucose, Weinsäure und ihren Abkömmlingen hoffen Verff. durch Umwandlung
der Aminochlorpropionsäure in Asparaginsäure erbringen zu können.

239. Fischer, H. Infusum foliorum Digitalis. (Centrbl. f. Pharm,
u. Chemie, IV, 1908, p. 420.)

240. Focke, C Weiteres zur physiologischen Prüfung der
Digitalis- Blätter. (Arch. Pharm., 1907, p. 646.)

Der Verfasser hatte zur Aufnahme in das deutsche Arzneibuch folgende
Methode empfohlen :

Man stellt einen Auszug her durch Übergiessen von gepulverten Digitalis-
Blättern. Nach 30 Minuten Stehenlassen wird der Auszug 1 : 10 hergestellt.

Verf. gibt seine Vtrsuche mit Fröschen (Rama temporaria) wieder, auf
die aber hier nicht näher eingegangen werden kann.

241. Foelsing, A. Über einen ostafrikanischen Copal. (Tropen-
pflanzer, 1907, No. 7.)

Der meiste ostafrikanische Copal stammt von Trachylobium verrucosum
oder T. mossambicense Kl. Er findet sich in allen Teilen dieses zur Familie
der Leguminosen gehörigen Baumes, als klebriger, fadenziehender Saft, der
bald an der Luft erhärtet.

Da die Gewinnung des echten fossilen Copals aus der Erde immer
geringer wird, hat der Verf. eine Methode erprobt zur Darstellung von Copal
aus der Frucht des Copalbaumes.

Die Sansibarcopalfrucht enthält in ihren weicheren Schalen 1 5 °/0, in den
Kernen 8°/0 Copal.

Der nach des Verf.s Verfahren gewonnene Copal ist direkt blank und
satzfrei, in den üblichen Lösungsmitteln löslich.

242. Fontoynout. Aphloia theaeformis als Mittel gegen Hämo-
globinurie. (Presse media, 1908, p. 577.)

496 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [82

Aphlöia theaeformis, ein in Madagaskar sehr häufiger Strauch aus der
Familie der Bixaceae, der von den Eingeborenen als Voa-Jotsy bezeichnet
wird, findet seit langen Zeiten Anwendung gegen Hämoglobinurie.

Er wird als Infusum mit und ohne Zuckerzusatz benutzt, indem man
30 g trockene Blätter auf einen Liter Wasser gibt. Hiervon müssen die
Kranken möglichst oft trinken. Der Verf. berichtet, dass auch er mit diesem
Heilmittel ganz ausgezeichnete Erfolge erzielt habe.

243. Fraenkel, A. Die Wirkungen von Digitalisaufguss und
Digitalispulver. (Münch. med. Wochenschr., 1907, No. 33.)

Digitalispulver wirkt nach den Angaben des Verf.s schneller als Digitalis-
infusum. Letzterem kommen keinerlei Vorzüge von dem Digitalispulver zu.
Zudem wird es seines bitteren Geschmackes wegen ungern genommen.

Weitere Angaben sind rein medizinischen Charakters und im Original
einzusehen.

244. Fraenkel, Albert. Bemerkungen zur internen Digitalis-
medikation. (Arch. exp. Path. u. Pharmakolog., LVII, 1907, p. 131.)

Die interne Digitalistherapie hat immer mehr wieder den Vorzug gegen-
über der subkutanen Injektion bekommen.

Die intravenöse Einverleibungsmethode ist vorläufig nicht überall an-
gezeigt.

Bezüglich der näheren rein medizinischen Einzelheiten der interessanten
Arbeit muss auf das Original verwiesen werden.

245. Frank, J. Der Kautschuk, seine Gewinnung unter Be-
rücksichtigung des Plantagenbaues, seine Verarbeitung und Rege-
neration. (Verh. Verein. Beförd. Gewerbefl., 1907, p. 227.)

246. Franke, M. Über die Verfahren zur Bestimmung des Mor-
phins, Kodeins und Narkotins im Opium. (Apoth.-Ztg., XXIII, 1908,
p. 309, 318, 325, 350, 365, 372, 381, 390, 428, 456, 466, 478, 486.)

Der Verf. gibt in seiner überaus interessanten Arbeit eine Zusammen-
stellung der bisher für die Bestimmung des Morphins, Kodeins und Narkotins
im Opium in der Literatur gegebenen Methoden.

247. Frerichs, G. Vorschläge für die Neuausgabe des Deutschen
Arzneibuches. (Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 292.)

248. Freundlich, J. Rohprotein in Cocosölen. (Chem.-Rev. Fett- u
Harzind., XIV, 1907, p. 302—305.)

Verf. stellte durch eine Reihe von Versuchen an zehn verschiedenen
Sorten von Cocosöl den Gehalt an Eiweissstoffen oder richtiger von Roh-
piote'in fest. Er bediente sich dabei der Methode von Kjeldahl und Fendler
und konnte feststellen, dass Eiweiss in den einzelnen Ölsorten immer in ganz
verschwindend geringen Mengen vorhanden war, und meist nur wenige
Hundertstel Prozent betrug. Der Gehalt an Proteinen kann infolgedessen
auch nicht, wie man bisher oft annahm, die Schwierigkeiten bei der gelegent-
lichen Verarbeitung von Cocosöl zu Speisezwecken verursachen; letztere hängen
wohl eher zusammen mit dem Auftreten stickstofffreier Extraktstoffe, die beim
Pressen der Öle in diese übergeben. K. Krause.

249. Freundlich, .1. Rohprote'in in Cocosölen. (Chem. Revue, XIV,
1907, p. 302 und XV, 1908, p. 3.)

Im Gegensatz zu der mehrfach geäusserten Ansicht, dass sich die
schwierige Verarbeitung gewisser Cocosölsorten zu Speisezwecken aul einen
allzu grossen Gehalt an Eiweisssubstanzen zurückführen lässt, vertritt Verf.

83 J Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 497

auf Grund seiner Befunde den Ständpunkt, dass der Eiweissgehalt des Cocos-
öles ein ganz geringer ist. Er glaubt vielmehr die störenden Elemente in
den stickstofffreien Extrakten, wie Dextrine, Schleimstoffe und Gummi, suchen
zu dürfen. Indes kann er positive Tatsachen dafür nicht anführen.

K. Krause.

250. Freundlich, J. Das Fett von Mimusops djak. (Chem.-Rev.
Fett- u. Harzindustrie, 1908, p. 198.)

251. Frey. Über Bestimmung des Extrakt- und Aschengehaltes
in Drogen. (Pharm. Post, XL, 1907, p. 227.)

Verf. hat die Extraktbestimmungen der neuen österreichischen Pharma-
kopoe einer Untersuchung unterzogen. Es wird dort vorgeschrieben, dass man
zur Extraktbestimmung nehmen soll 10 g der feinstgepulverten Droge und
diese übergiessen soll mit 100 g kochendem Wasser oder J00 ccm Alkohol.
Nach 2-1 stündigem Stehen sei dann in 50 g bzw. 50 ccm die Extraktmenge
bestimmbar. Dieser Weg führt nach dem Verf. nicht immer zum richtigen
Ziele. Bei einer grossen Anzahl von Drogen ist es schwer, 50 ccm der Flüssig-
keit ohne Verlust zu bekommen.

Der Autor empfiehlt deshalb, statt 10 g nur 5 zu nehmen. Bei An-
wendung dieses Masses sind auch die Extraktlösungen weniger konzentriert,
und kann die Gewichtskonstanz besser erhalten bleiben.

Die Anforderungen des österreichischen Arzneibuches den an Extrakt-
gehalt der Drogen seien in einigen Fällen unerreichbar.

Bei Folia Theae werden verlangt 33°/0 Extrakt — erreicht werden nur
18,1— 23<>/0.

Bei Catechu werden verlangt 75% — gefunden wurden nur 60,5 — 74,4°/0.

Fructus Myrtilli sollen liefern 50°/0 — gefunden wurden nur 45 — 49,7 °/0.

Mehrere solcher Gegenüberstellungen zeigen, dass oft die Anforderungen
des österreichischen Arzneibuches mit den Resultaten der Praxis nicht in Ein-
klang zu bringen sind.

252. Friedrichs, 0. von. Chemische L'ntersuchung der Heerabol-
myrrhe. (Arch. Pharm., 1907, p. 427.)

Die vom Autor untersuchte Myrrhe bestand aus Harz, äthersichem Öl,
Gummi und Enzym. Irgend welcher besondere Bitterstoff war nicht nach-
weisbar. Das ätherische Öl der Droge enthielt freie Ameisensäure und Essig-
säure, ferner auch eine kristallisierende, bei 159° schmelzende und nicht
flüchtige Säure, die als Ester in der Droge vorhanden ist, sowie eine ein-
basische Estersäure, von der Formel C17H2205. Dieser gab der Verfasser den
Namen Myrrholsäure, dann m-Kresol, Cuminol, Zimtaldehyd und ein Sesqui-
terpen, das mit den bekannten nicht zu identifizieren ist und als Heerabolen
bezeichnet wurde.

Das petrolätherlösliche Harz ergab bei der Trockendestillation Essigsäure.

Der ätherlösliche, in Petroläther unlösliche Teil enthielt drei freie Säuren,
die «-, ß- und ;/-Commiphorsäuren genannt wurden. Die beiden ersten sind
isomer mit der Formel C14H,804, während die ;/-Commiphorsäure isomer ist
mit der Myrrholsäure.

Nach der Verseifung wurde eine einbasische Estersäure Commiphorin-
»iuire erhalten, der die Formel C^HsgOg zukommt.

Ferner gewann der Verfasser zwei Harzphenole, das «-Heerabo-Myrrhol
Oi8H;60;, und das ,9-Heerabo-Myrrhol Go0H:6O6, die beide Hydroxylgruppen ent-
halten, ein einwertiger Alkohol C^FfnoOj, der durch Verseifung frei wird und
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 12. 4. 11.] 32

498 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [{-(4

mit Wasserdampf flüchtig ist und das Heeraboresen C^H^Og, mit einer Methoxyl-
gruppe.

Das ätherunlösliche Harz bestand aus zwei einbasischen Säuren, «-Heerabo-
Myrrholsäure O15H22O7 und ^-Beerabo-Myrrholsäure C25H3a06.

Das Gummi war mit einem Enzym vermischt, das zu den Oxydasen
gehört.

253. Friedrich, Otto. Über Chysarobinvergiftung bei interner
Anwendung. (Med. Klinik, 1908, p. 1870.)

Die Arbeit hat zu sehr medizinischen Charakter, um hier eingehender
erörtert zu werden.

254. Fromme, 0. Über Perubalsam. (Pharm.-Ztg., LH, 1907, p. 828.)
Der Verf. hält als Erwiderung auf eine Publikation von Evers (Pharm.-
Ztg., LH, 1907, p. 828) über künstlichen Perubalsam die Salpetersäureprobe
für den Perubalsam sehr geeignet, um Nachahmungen und Falsifikate von
echten Präparaten zu unterscheiden.

Die Salpeterprobe sollte nach Meinung des Verf.s in das neue Arznei-
buch aufgenommen werden.

255. Fnjitani, J. Beiträge zur Chemie und Pharmakologie der
Ginsengwurzel. (Arch. int. de Pharmacol. et de Therap., XIV, 1907, p. 353.)

Verf. hat den wahrscheinlichen Träger der Wirkung der Wurzel von
Panax Ginseng, einer Araliacee, rein hergestellt, das Panaquilon. Es ist ein
schneeweisses, amorphes Pulver, von bitterem Geschmack, in Wasser, Alkohol.
Eisessig und Benzol löslich, aber in Äther, Chloroform, Aceton, Petroläther
und Amylalkohol unlöslich.

Beim Erhitzen wird Glycose abgespalten, folglich ist das Panaquilon als
Glycosid anzusehen.

Als Heilmittel ist das Produkt der Ginsengwurzel keineswegs anzusehen.

Weiterer klinischer Angaben wegen muss auf das Original verwiesen
werden.

Ü">6. Gadamer, J. Isomere von Ephedrin und Pseudoephedri n.
(Arch. Pharm., 1908, p. 566.)

257. Galjalo, M. J. Untersuchung der wirksamen Substanzen
des Panax Ginseng. Diss., St. Petersburg, 1906.

Verf. untersuchte die Wrrrzeln der wildwachsenden Pflanzen und ver-
mied kultivierte Exemplare. Er verfuhr dabei genau nach den chinesischen
Rezepten.

Die physiologische Wirkung der Panaxwurzel besteht in Verlangsamung
der Herztätigkeit, Mattigkeit, Schlafsucht und Empfindungslosigkeit.

Eine der wirksamen Momente steht sehr nahe dem Spermin-Poehl, viel-
leicht stellt er sogar ein Homologes desselben dar. Ein anderer Stoff ist als
Colanin anzusprechen.

258. Gandara, G. Uso y aplicacion de la preparacion Bordelesa.
(Comision de Parasit ologia Agricola. Circulas nos. 55, Mexico 1907. 14 pp..
4 Taf.)

259. Gandurin, A. Über die Struktur des Guajols. (Berl. Ber.,
XLI, 1908, p. 4359.)

Der Verf. erklärt seine Untersuchungen für noch nicht abgeschlossen.
Immerhin ist das Guajol anzusehen als ein tertiärer bicyklischer Alkohol
mit einer Äthylenverbindung.

$51 Berichte über die phaimakognostische Literatur aller Länder. 499

260. Garnier, L. Über die Farbenreaktionen der Digitalisglyko-
side. (Journ. Chim Pharm., 1908, p. 369.)

261. Garnett und Grier. Über das Prinzip des brennenden Ge-
schmackes von Ingwer. (Pharm. Journ., 1907.)

Seinerzeit hatte Thresh als Grund des brennenden Geschmackes von
Ingwer eiu Gemisch angegeben, das er „Gingeroi" benannte. Die Autoren
haben nun gefunden, dass es sich um Gemisch von mehreren Phenolen handelt,
die unter 18 mm zwischen 235° und 250° sieden und sich in verdünnten
alkalischen Lösungen auflösen, wobei sie vei'ändert werden und ihren charak-
teristischen Geschmack einbüssen. Unter Zusatz von Ferr. sesquichlorat.
färben sie sich grün, mit Brom fällen sie sich.

Die Verff. traten der Frage näher, warum Ingwer unter Einfluss von
Alkalien seinen Geschmack einbüsst. Sie bemühten sich um ein Verfahren zur
Untersuchung, ob den Ingwerölen oder Extrakten Pigmente beigemischt sind.

Zu diesem Zwecke werden digeriert und zwar 15 Minuten lang im
Wasserbade 10 ccm der Ingwertinktur oder Essenz mit KOH. Der Alkohol
verdampft, und nun wird der Rückstand mit HCl angesäuert und mit 5 ccm Äther
durchgeschüttelt. Liegt ein vollkommen reines Ingwerpräparat vor, so hat
der Rückstand der Ätherverdampfung keinen brennenden Geschmack. Im
Gegensatz hierzu zeigen Ingwerpräparate, die mit Pigmenten verfälscht sind,
einen stark brennenden Geschmack. Man kann mit Hilfe dieser Untersuchungs-
methode mit Leichtigkeit in 100 Teilen Ingwer noch 1,3 Teile Pfeffer
nachweisen.

262. Garnett, H. und Grier, Jas. Die Schärfe des Ingwers. Vorläufige
Mitteilung. (Pharm. Journ., LXXIX, 1907, p. 118.)

Das scharfe Prinzip des Ingwers ist das Gingeröl, ein Öl von Phenol-
charakter.

Den Verff. ist es noch nicht gelungen, die chemische Natur dieses Öles
festzustellen, da eine hinreichend grosse Menge noch nicht erzeugt werden
konnte.

Verff. t;eben dann noch eine Methode an, die sie zufällig bei ihren oben-
genannten Untersuchungen fanden, um reine Ingweressenzen, Ingwerextrakte
und Ingwerharzöle von solchen zu unterscheiden, die mit Capsicum ver-
setzt sind.

263. Gasis, D. Über die Unterscheidung verschiedener Pflanzen-
eiweissarten mit Hilfe spezifischer Sera. (Berl. klin. Wochenschr.
1908, p. 358.)

Die Pflanzeneiweissarten lassen sich unter Berücksichtigung bestimmter
quantitativer Verhältnisse durch das biologische Verfahren differenzieren. Je
nach der näheren oder ferneren Verwandtschaft der verschiedenen Pflanzen-
eiweissstoffe zeigen sich stärkere oder sehr weichere Reaktionen.

Die pflanzlichen Eiweissstoffe lassen sich viel leichter differenzieren als
die tierischen.

264. Gatin-Grazewska Über die Zusammensetzung des Stärke-
korns. (C. R. Acad. Sei. Paris, 1908, p. 542.)

265. Ganltier, R. und Chevalier, J. Physiologische Wirkung der
Mistel (Viseum album). (0. R. Acad. Sei. Paris, CXLV, 1907, p. 941.)

Einspritzung von wässerigem Mistelextrakt in die Venen setzten den
Blutdruck herab unter Beeinflussung des motorischen Nervensystems.
Bei genügenden Dosen tritt der Tod ein.

32*

500 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. Igß

266. Gannt, R,. Thomas. F. und Bloxani, P. Analyse des Indigos und
der trockenen Blätter von Indigo fera arrecta und Indigofera Sumatrana
(Journ. Chem. Ind. Soc, XXVI, 1907, p. 1174.)

Die Verff. geben eingehende Vorschriften zur Gewinnung reinen Indigo-
tins als Standard zur Ausführung des Tetrasulfonatverfahrens zur Bestimmung
des Indi.^otins.

Es werden die einzelnen Methoden sehr genau geschildert.

Eine neue Sorte trockener Blätter von Indigofera sumatrana haben einen
doppelt so hohen Gehalt an Indigo als alle anderen Varietäten von Indigofera
sumatrana.

'2(i7. Gantier, E. Über das Ergotoxin und einige Bestandteile
des Mutterkorns. (Bull. Scienc. pharniacol., XIV, 1907, p. 663.)

Verf. bespricht zuerst alle bis jetzt erschienenen Arbeiten über das
Mutterkorn.

Dann gibt der Autor Angaben über das Ergotoxin als alleinigen Träger
der spezifischen Wirksamkeit des Mutterkornes.

Es bildet ein weisses Pulver, dessen Zersetzung eintritt bei 162° — 164°;
es ist sehr leicht löslich in den organischen Lösungsmitteln, ausgenommen
Äther und Petroläther. Es ist eine säurige Base, die mit Säuren kristallisier-
bare Salze liefert, z. B. mit Phosphorsäure das Salz: C35H4106N5; Po4H3H20.

1. Ecbolin und Ergotin (Wenzell) = Unreine Mischung von Ergotin
und Ergotoxin.

2. Amorphes Ergotinin (Tanret) = Unreine Mischung von Ergotin
und Ergotoxin.

3. Picrosclerotin (Dragendorff) = Ergotinin, jedenfalls mit Ergotoxin
gemischt.

4. Sclerocrystallin (Pedvveyssotski) = Ergotin.

5. Sphacelinsäure (Robert) = Unwirksames Harz mit anhaftendem
Alkaloid.

6. (Jornutin (Robert) = Alkaloidisches Harz, ein wenig Ergotoxin und
ein Zersetzungsprodukt desselben enthaltend.

7. Cor nutin (Reller) = Unreine Mischung von Ergotinin und Ergotoxin.

8. Chrysotoxin (Jacoby) = Gelber Farbstoff mit wenig anhaftendem
Alkaloid.

9. Secalintoxin (Jacoby) = Mischung von Ergotinin und Ergotoxin.

10. Sphacelotoxin (Jacoby) = Unreines Ergotoxin.

11. Hydroergotinin (Rraft) = Ergotoxin.

12. Clavin (Vahlen) = Weder eine Säure noch ein Alkaloid. Eine Ver-
bindung des Leucins.

268. Gehe & Co., Akt.-Ges. in Dresden. Verzeichnis n euerer Arznei-
mittel, ihre Synonyme und wissenschaftlichen Bezeichnungen.

269. Gentner, G. Über selbstleuchtende Pflanzen. (Pharm. Ztg.,
LH, 1907, p. 457.)

270. Gerber, P. Über das Lab der Cruciferen. (Ühem.-Ztg., XXXI,
1907, p. 913.)

An verschiedenen Pflanzen hat der Verf. die Eigenschaft nachweisen
können, Milch zu koagulieren.

Vor allen Dingen ist das den Cruciferen, sowohl den wilden als auch
den kultivierten Exemplaren gleich gut zu beobachten.

87] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 5Q|

271. Gerber und Cotte. Centaurea aspera, eine Bläusäure liefernde
Pflanze. (L'ün. pharmac, 1908, No. 8.)

Die Verff. gewannen aus der Trockensubstanz der Pflanze im ganzen
0,61 % Blausäure.

Den meisten Gehalt an Blausäure zeigten die grünen Blätter.

272. Giessen, C. Semen Strophantin. (Südd. Apoth.-Ztg., 1906, No. 83.)
Zur Schwefelsäure-Strophanthinprobe bemerkt Giessen, dass an den zum

Zwecke des Schälens in Wasser aufgeweichten Samen infolge des Aufquellens
die konzentrierte Schwefelsäure nicht mehr als solche wirken kann, da sie
durch den Wassergehalt der Kerne verdünnt werde.

273. Giglio. La canfora italiana. Born 1908, Giov. Bertero & Co.,
298 pp.. 40.

Leider war mir diese Arbeit nicht zugänglich. Ich gebe hier das Referat
wieder, das in Schimmel-&-Co.-Berichten, 1908, p. 28 ff. gegeben ist.

„In den ersten zehn Kapiteln, auf die wir nur verweisen können, bringt
das sehr beachtenswerte Werk, das eine Reihe von weniger bekannten und
spärlich ausgebeuteten Quellen berücksichtigt, eingehende Mitteilungen über
Erzeugung und Preisbewegung des synthetischen' Kampfers, Vorkommen, Ge-
winnung und Handelsverhältnisse des Naturproduktes, botanische, geographische
und klimatologische Bemerkungen über den Kampferbaum, Gewinnung und
Reinigung des Kampfers sowie Handels- und Preisverhältnisse des Kampferöls
Da wir letzterem Gegenstand seit Jahren unsere Aufmerksamkeit, schenken, so
begnügen wir uns mit einem Hinweis auf eine von Grossmann erschienene
Bearbeitung dieses Kapitels.

Mittelst eines von ihm auf Grund der japanischen Destilliermethode aus-
gearbeiteten, eingehend beschriebenen Verfahrens hat Giglio die Blätter
zahlreicher, an den verschiedenen Orten Italiens wachsender Kampferbäume,
in einzelnen Fällen auch das Holz und die Aste, auf ihren Gehalt an Kampfer
untersucht; aus dem im Original einzusehenden, umfangreichen Material (der
experimentelle Teil der Arbeit umfasst etwa 80 Seiten) zieht der Autor folgende
Schlüsse.

Die Kultur des Kampferbaumes kann für alle Gegenden Italiens emp-
fohlen werden, ausser für die Binnengegenden und die kühleren nördlichen
Provinzen (Piemont, Lombardei, Venetien u. a.). Zu bevorzugen sind Küsten-
gebiete, aber nur solche, die vor Trockenheit und rauhen Winden verschont
sind. Bei günstigen Boden- und Klimaverhältnissen wTächst der Baum rasch.

Vermehren lässt er sich durch Aussaat, durch Schösslinge oder durch
Senkreiser; erstere Methode führt nur langsam zum Ziel und liefert Pflanzen
von schwankendem Kampfergehalt, während die beiden anderen Verfahren
schnelleren Erfolg versprechen. Der Gehalt der Blätter und anderer Pflanzen-
teile lässt sich nach dem mitgeteilten Verfahren leicht bestimmen. Durch
besondere Versuche wurde festgestellt, dass der Versuchsfehler der Methode
etwa 5% betrug. Im allgemeinen beläuft sich der Kampfergehalt der frischen
Blätter in Italien auf l,20°/0, in einzelnen Gegenden auf 1,50% bis 1,80%.
Beim Trocknen der Blätter, deren Gehalt zwischen 2,40 und 3% schwankt,
tritt kein Verlust an Kampfer ein. Ausserdem liefern die Blätter gegen 0,5%
Kampferöl. Das Holz des Baumes enthält, wie nur in vereinzelten Fällen be-
stimmt werden konnte, sehr wenig Kampfer, nämlich 0,02 bis 0,25%. Im all-
gemeinen kann man für je 100 kg Blätter, bei Anwendung des japanischen
Destillierverfahrens, auf eine Ausbeute von 1 kg Kampfer rechnen. Ein aus-

502 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [yg

gewachsener Baum im Alter von 15 bis 20 Jahren ist imstande, jährlich 35 kg
Blätter herzugeben, so dass von drei Bäumen auf eine jährliche Ernte von
1 kg Kampfer und 0,3 kg Öl zu rechnen ist. Ältere Bäume können sogar bis
zu 50 kg Blätter jährlich liefern. In der Annahme, dass jedem Baume 35 kg
Blätter im Jahre entnommen werden dürfen, berechnet Giglio zur Deckung
des von ihm auf 5 bis 6 Millionen kg geschätzten Weltbedarfs an Kampfer
eine Anpflanzung von etwa 20 Millionen ausgewachsener Bäume, eine Zahl,
die ungefähr der der in Italien kommerziell verwerteten Bäume der Citrus-
Arten (rund 19 Millionen) gleichkommt. Der italienische Kampfer ist in seinen
physikalischen wie chemischen Eigenschaften und in seiner Verwendbarkeit
zur Darstellung von Zelluloid und anderen Produkten dem ostasiatischen
Kampfer völlig gleich.

273a. Giglio, Italo und Quartaroli, Alfredo. Über die wahrschein-
liche Enzymwirkung bei der Begünstigung von Wasseranhäufung
und osmotischem Druck in den Pflanzengeweben. (Atti della Reale
Accademia dei Lincei, 1907, 5. ser., XVI, p. 586 — 595.)

Die Verff. haben eine Reihe von Versuchen ausgeführt, um zu ermitteln,
ob das Quellen der Samen bei der Keimung und die Turgorerhöhung anderer
Pflanzenorgane auf der Anwesenheit von Enz}rmen in der Pflanzenzelle beruht.
Sie gingen dabei von folgender Beobachtung aus. Wenn man in zwei gleiche,
in destilliertes Wasser tauchende Osmometer, die mit Membranen aus Tierblase
verschlossen werden und dieselbe (lOproz.) Rohrzuckerlösung enthalten, einen
Tropfen lnvertase (oder wässerigen Extrakt mit Sand zerriebener Bierhefe)
bringt, derart, dass der eine Osmometer die lnvertase in natürlichem Zustande,
der andere durch vorheriges Kochen zersetzte lnvertase erhält, so sieht man
in dem ersteren nach einiger Zeit den osmotischen Druck wachsen, während
in dem anderen Falle die Endosmose sich schwächer und langsamer geltend
macht. Dieser, wie es scheint, früher nicht angestellte Versuch zeigt, welchen
bedeutenden Einfluss das Erwachen der Enzymtätigkeit auf die Anziehung
von Wasser in eine Zelle und auf die Erzeugung des Turgors ausübt.

Für die Hauptversuche verwendeten die Verff. sehr kleine Osmometer,
die gefüllt nicht über 100 g wogen. Sie bestanden aus einer kleinen Glocke
von etwa 22 ccm Rauminhalt, die am oberen Ende eine dünne Glasröhre trug-;
das untere Ende wurde nach dem Einfüllen der zu untersuchenden Substanz
mit Tierblase verschlossen. Die Pflanzensubstanz war vorher in einem Mörser
mit Sand zerrieben worden. Der so unter Zusatz von Wasser erhaltene Brei
wog in jedem Falle ungefähr 30 g und bestand aus 16 g Wasser, 12 g Sand
und 2 g Trockensubstanz. Die gefüllten Osmometer, aus denen durch gelindes
Schütteln etwaige Luftblasen entfernt worden waren, wurden in normaler
Stellung fixiert und tief in Wasser getaucht, derart, dass das Niveau der
Flüssigkeit innen und aussen gleich war.

Für jeden Versuch wurden zwei Glocken hergerichtet: in die eine kam
gewöhnlicher, in der beschriebenen Weise zubereiteter Pi'lanzenbrei, in die
andere der gleiche Brei, der aber vorher über eine Stunde feuchter Wärme
von 100° ausgesetzt war. Durch das Erhitzen werden die Enzyme und labile
Verbindungen von sehr komplizierter Molekularstruktur zerstört. Um das Auf-
treten von Gärungsprozessen innen und aussen zu verhindern, waren der Brei
und das Wasser mit Chloroform destilliert worden, das ja die Enzymtätigkeit
nicht beeinträchtigt und wegen seiner geringen Löslichkeit in Wasser durch
sich selbst keine osmotische Wirkung ausübt.

#9] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 5Q3

Infolge von Endosmose steigt nach dem Eintauchen der Glocken die
Flüssigkeit in den Glasröhrchen empor. Nach 24 — 48 Stunden hört das Steigen
auf. und es beginnt ein Fallen infolge der nun vorwiegenden Exosmose. Wenn
in den Parallelversuchen mit frischem und mit erhitztem Brei das Wasser
gleichmässig stiege, so wäre die Annahme nicht begründet, dass in den
Pflanzenzellen besondere aktive Stoffe, die die osmotischen Wirkungen ein-
leiten, vorhanden seien. Wenn aber der vorher erhitzte Pflanzenbrei das
Wasser schwächer anzieht als der normale, so weist das auf die Anwesenheit
enzvmatischer oder sehr komplexer, leicht zersetzbarer Verbindungen, und dies
um so mehr, als durch die beim Erwärmen auf 100° herbeigeführte Hydrolyse
gewisser Stoffe, wie der Stärke, statt einer Verminderung vielmehr eine Er-
höhung des osmotischen Druckes bewirkt werden müsste.

Die ersten Versuche wurden mit zerriebenen Samen von Klee und
Weizen, die nicht gekeimt hatten, in denen also die Lebenstätigkeit ruhte,
angestellt. Es zeigte sich in diesen Fällen kein merklicher Unterschied zwischen
der Wirkung des normalen und des erwärmten Breies. Ganz anders verliefen
die Versuche mit gekeimten Samen. Bei Leguminosen war die Wasser-
anhäufung (gemessen durch die Gevvichtsvermehrung der Osmometer) bei dem
normalen Brei etwa 21/2mal grösser als beim erhitzten Brei. Es ist also in
den gekeimten Samen irgend eine in der Hitze leicht veränderliche Verbindung
enthalten, die die Samen rasch zum Quellen bringt. Der durch Zerreiben der
gekeimten Samen mit Sand erhaltene Brei hat eine leicht oxydierende Wirkung,
die sich durch mehr oder weniger starke Violett- oder Blaufärbung von Ben-
zidinpapier (erhalten durch Eintauchen von Filtrierpapier in eine Lösung von
Benzidin in kochendem Wasser) anzeigt. Rey-Pailhade hat schon 1898 in
keimenden Leguminosensamen eine Oxydase gefunden. Nach ihm sind in
nichtgekeimten Samen kleine Mengen von Laccase vorhanden, die während
der Keimung beträchtlich zunehmen.

Normaler Brei von gekeimten Getreidesamen bewirkte eine Wasser-
anhäufung, die etwa das Vierfache von derjenigen betrug, die erhitzter Brei
herbeiführte. Das Wasser wird aber langsamer angezogen als bei den Legumi-
nosensamen; die Maximalhöhe wird bei diesen in 24, bei Getreidesamen erst
in 48 Stunden erreicht. Die Wirkung des Getreidesamenbreies auf Benzidin-
papier ist schwach, aber sichtbar. Grüss hat bereits eine Oxydase im Malz-
extrakt beobachtet.

Abweichend von den bisher mitgeteilten Ergebnissen waren die mit
ölhaltigen Samen (Lein, Ricinus) gewonnenen. Der erhitzte Brei hatte hier eine
stärkere Anziehung auf das Wasser als der normale Brei. „Die rasche und
intensive Oxydation, die in den ölhaltigen Samen während der Keimung ein-
tritt, dürfte wahrscheinlich ephemere, leicbt hydrolysierbare Verbindungen von
komplizierter chemischer Struktur entstehen lassen. Schon vor vielen Jahren
beobachteten Sachs, Peters und andere das Erscheinen und dann das Ver-
schwinden von Stärke bei der Keimung einiger ölhaltiger Samen. Diese Stoffe,
die beim Erwärmen hydrolysiert werden, könnten im Samenbrei die osmotische
Aktivität erhöhen, so dass die auf der Zersetzung enzymatischer Substanzen
beruhende Schwächung mehr als aufgewogen wird."

Knospen von Pappeln, Birn- und Pfirsichbäumen verhielten sich ent-
sprechend den gekeimten Leguminosen- und Getreidesamen: im normalen Brei
wurde beträchtlich mehr Wasser angesammelt als im erhitzten. Auch die
oxydierende Wirkung liess sich beobachten.

504 Berichte über die pharraakognostische Literatur aller Länder. [90

Die Verff. Hessen weiter Maissamen und verschiedene Leguminosensamen
teils im Dunkeln, teils im Lichte keimen und sich entwickeln und zerrieben
dann die ganzen Pflanzen zu Brei, um mit diesem die osmotischen Versuche
auszuführen. Es zeigte sich, dass bei den im Dunkeln erwachsenen Pflanzen
der erhitzte Brei den normalen in seiner anziehenden Wirkung auf Wasser
um ein geringes übertraf. Dies erklären die Verff. damit, dass bei der Keimung
im Dunkeln die Reservestoffe mit Einschluss der Enzyme aufgebraucht werden:
so verschwindet auch zuletzt die anfangs sehr starke Reaktion auf Benzidin.
Die im Licht erwachsenen Pflanzen zeigen eine etwas grössere osmo-
tische Wirkung für den normalen Brei. Die Verff. erinnern daran, dass nach
Overton die osmotischen Prozesse mit der Bildung von Lecithin verknüpft
sind, und dass nach Stoklasa in den im Dunkeln gekeimten Pflanzen das
Lecithin abnimmt, während es sich in den im Lichte gekeimten vermehrt.

Wesentliche Unterschiede ergaben sich, als die Verff. einzelne Organe
erwachsener, saftreicher Pflanzen von raschem Wachstum für sich untersuchten.
Bei der Sonnenblume (KeManthus) wird die osmotische Fähigkeit der Substanz
des Stengelmarkes und der ganzen Blätter durch Erhitzen ein wenig vermehrt,
die der Wurzelsubstanz aber auf ein Drittel vermindert. Dieselbe Reduktion
auf ein Drittel wiesen die Wurzeln von Ricinus auf; hier zeigten auch die
anderen Organe mit Ausnahme der alten Blätter eine Verminderung der osmo-
tischen Kapazität durch Erhitzen; die Abnahme war beträchtlich beim Stengel,
gering bei den jungen Blättern.

Versuche mit Wurzeln von Luzerne, Bohne und Mais hatten ein ent-
sprechendes Ergebnis und bestätigten so die Anwesenheit enzymartiger, zu
der osmotischen Tätigkeit in Beziehung stehender Verbindungen in den Wurzeln.
Der Wurzelbrei zeigt auch die Oxydasewirkung durch Blaufärbung von
Benzidin.

„Der Nachweis, dass in den Pflanzen leicht zersetzbare Stoffe vorkommen,
die hierin den Enzymen gleichen und wahrscheinlich als Enzyme wirksam sind,
und denen die Fähigkeit zukommt, das Vermögen der Wasseranhäufung in
den Pflanzengeweben beträchtlich zu erhöhen und Druck zu erzeugen, trägt
dazu bei, den Mechanismus der Wasserabsorption aus dem Boden durch
quellende Samen und Wurzeln zu erklären und auch verständlich zu machen,
wie es kommt, dass die lebenden Gewebe . . . allmählich das Wasser bis zu
den Transpirationsorganen emporführen können, wodurch es erreicht wird,
dass das Wasser bis zu jenen grossen Höhen gelangt, die wir an den höchsten
Bäumen bewundern."

274. (jilg, Ernst. Die Ausbildung des studierenden Pharma-
zeuten in der Pharmakognosie an den deutschen Hochschulen.
(Ber. d. deutsch. Pharmaz. Ges. Berlin, 19015.)

Verfasser fasst seine interessanten Ausführungen in folgenden Sätzen
zusammen.

„Dem Hochschullehrer — mag er sich nun mit der chemischen oder mit
der botanischen Seite der Pharmakognosie lehrend und forschend beschäftigen —
erwächst die Pflicht, die Ergebnisse dieser Forschung in zweckentsprechender
Weise auch in seinen Vorlesungen und Übungen zum Ausdruck zu bringen
und damit anregend auf den studierenden Pharmazeuten einzuwirken. Der
Hochschullehrer wird sich bei dem pharmakognostischen Unterricht immer
vergegenwärtigen müssen, dass er Studierende auszubilden hat, welche der-
maleinst in der Praxis, d. h. im Apothekerberuf die auf der Hochschule er-

91 1 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. 505

worbenen wissenschaftlichen Kenntnisse und Fähigkeiten gebrauchen müssen
zur chemischen und mikroskopisch-botanischen Prüfuno- urid Wertbestimmung
der Drogen.

Dass in Deutschand eine Teilung der Arbeit in der Pharmakognosie für
den früher dieses Fach lehrenden Hochschullehrer eingetreten ist, begrüsse ich
freudig. In einer Reihe ausgezeichneter pharmazeutischer Institute, denen aus
dem Apothekerstande hervorgegangene Lehrer der pharmazeutischen Chemie
als Leiter vorstehen, wird neben Chemie in weitestem Umfange auch der
chemische Teil der Pharmakognosie gelehrt und praktisch geübt, wie es z. B.
in Berlin in vorbildlicher Weise der Fall ist.

Eine wichtige und notwendige Ergänzung findet der pharmazeutisch-
chemische Unterricht, wenigstens in Berlin, durch den pharmazeutisch-
botanischen Unterricht, welcher in dem dem Pharmazeutischen Institut benach-
barten und mit ihm in engster Fühlung stehenden Botanischen Museum
besonders nach der mikroskopischen Seite hin auf das eingehendste und, wie
die Ergebnisse der Prüfungen bewiesen haben, auch mit bestem Erfolg ge-
lehrt wird.

Dass der Inhaber eines Lehrstuhls für die botanische Pharmakognosie
ebenfalls aus dem Apothekerstande hervorgegangen ist, mag erwünscht sein,
für notwendig halte ich indessen diese Forderung nicht. Hauptsache ist und
bleibt, dass der botanische Pharmakognost ebenso wie sein chemischer Kollege
sich mit Liebe und Hingabe dem Unterricht und der Erforschung ihres Faches
widmen und den Umfang und die Art ihrer Lehre abstimmen auf die prak-
tischen Bedürfnisse des Apothekerstandes."

275. Gilg, Ernst. Die Pharmakognosie als wissenschaftliche
Disziplin und ihre Vertretung an den deutschen Hochschulen.
(Jahrb. d. Vereinig, f. angewandte Botanik. V, 1907, p. lff.)

Am Schlüsse seiner eingehenden Erläuterungen sagt der Verf.:

,,Ich bin am Schlüsse meiner Ausführungen. Sie haben gesehen, dass
ich die Spaltung der Heilmittellehre, wie sie in Deutschland fast allgemein
eingetreten ist. freudig begrüsse, wonach die Pharmakologie dem Mediziner.
die Pharmakochemie dem Chemiker, die Pharmakognosie dem Botaniker als
Lehrfächer zugefallen sind. Wir haben aber auch erkannt, dass der Pharma-
kognost nicht ein sogenannter , reiner' Botaniker sein darf, sondern dass er
sich in sein Spezialfach eingearbeitet und auch die Grenzgebiete kennen gelernt
haben muss, die die Pharmakognosie in grosser Anzahl zu anderen wissen-
schaftlichen Disziplinen besitzt. Gerade in dieser Hinsicht haben die Vertreter
der Pharmakognosie in Deutschland noch sehr viel von den pharmazeutischen
Chemikern zu lernen. Diese, sämtlich aus dem Apothekerstande hervor-
gegangen, kennen naturgemäss die Bedürfnisse des studierenden Pharmazeuten
und haben sich, nach gründlichem Studium der Chemie, ihrem Spezialfache
zugewandt. Die meisten Lehrer der Pharmakognosie in Deutschland sind da-
gegen meist ganz zufällig, oft fast gezwungen, zu dieser Disziplin gekommen.
Sie sind keine Pharmakognosten, sondern reine Botaniker, die niemals in ihrem
Fache wissenschaftlich gearbeitet haben, die keine Freude an diesem Teil ihrer
Lehrtätigkeit besitzen und deshalb auch dem Studierenden keine Liebe zu der
von ihnen vertretenen Disziplin beizubringen vermögen. Dass der Inhaber
eines Lehrstuhls für die Pharmakognosie aus dem Apothekerstande hervor-
gegangen ist, mag erwünscht, ja sogar von Vorteil sein; für notwendig halte
ich indessen diese Forderung nicht, wenn der auf dem Boden der Botanik

506 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. [92

stehende Pharniakognost sich mit Liebe und Hingabe dem Unterricht in der
Erforschung seiner Disziplin widmet und den Umfang und die Art seiner Lehre
abstimmt auf die praktischen Bedürfnisse des Apothekerstandes."

276. GÜ£, E. Pharmakognostische Wandtafeln. Borntraeger,
Berlin 1907.

277. (xilg, E. Welche Strophanthus- Art verdient als offizineil in
das neue Arzneibuch aufgenommen zu werden? (Ber. D. Pharm. Ges.,
Berlin 1908, p. 284 ff.)

Der Verf. kommt am Ende seiner interessanten Ausführungen zu folgenden
Schlüssen :

Es kann kein Zweifel darüber bestehen, dass die Droge von Strophanthus
hispidus unbedingt den Vorzug vor der Kombedroge verdient und an ihrer
Stelle in das neue Arzneibuch aufgenommen werden muss, allerdings nur so-
lange die ungünstigen Bezugsverhältnisse und das Fehlen umfassender
klinischer Versuche für die Gratusdroge hindernd bestehen.

Wir sahen, dass die Kombedroge bisher noch nicht mit vollster Sicher-
heit botanisch identifiziert werden konnte, dass trotz aller Bemühungen die
Droge des Handels weit davon entfernt ist, auf Reinheit und Zuverlässigkeit
Anspruch erheben zu können, dass sich eine Kultur bisher nicht hat ermög-
lichen lassen, dass endlich selbst die Schwefelsäurereaktion, welche bisher als
festeste Stütze bei der Feststellung der Droge galt, unzuverlässig erscheinen
muss. Im Gegensatz dazu ist die Hispidusdroge nach jeder Hinsicht genau
bekannt, die Strophanthinreaktion tritt bei ihr mit vollster Sicherheit und Zu-
verlässigkeit auf und die verhältnismässig leicht zu charakterisierenden Samen
lassen sich in genügenden Mengen, in absoluter Reinheit und verhältnismässig
billig beziehen, da die Stammpflanze, Strophanthus hispidus-, in ansehnlichen
Gebieten unserer Kolonie Togo schon seit langen Zeiten in Halbkultur ge-
zogen wird.

278. Gilg, E. Über die als Heilmittel gegen Asthma empfohlene
Punaria Ascochingae. (Pharm. Ges., Berlin 1908, p. 275 ff.)

Der bekannte Verf. führte in seinem interessanten Vortrag das
Folgende aus:

„Seit einiger Zeit wird von der Firma Brockhaus & Co. in Haiensee bei
Berlin ein Teegemisch, der sog. Punariatee, in den Handel gebracht, welcher
in der Form eines Aufgusses innerlich genommen wird und, wie auf den
Paketen angegeben ist, „glänzend bewährt ist bei altem Husten, chronischer
Verschleimung, Asthma, Atemnot, chronischem Bronchialkatarrh und bei allen
Erkrankungen der Atmungsorgane". Dieser Anpreisung ist die Mitteilung bei-
gefügt: „Hergestellt aus den Blättern und Wurzeln der Punaria Ascochingae" .

Gleichzeitig findet aber dieselbe Droge auch noch in anderer Weise
Anwendung. Die „Deutsche Asthma-Carbon-Gesellschaft" in Haiensee bringt
Tabletten in den Handel, welche so hergestellt sind, dass Kraut und Wurzeln
der Punaria Ascochingae aufs feinste pulverisiert werden, worauf man 5 g der
Masse zu einer Tablette von der Form und Grösse eines Markstückes kom-
primiert. Diese Tablette ist auf einer zylindrisch gestanzten, feinporösen
Holzkohle befestigt. Zur Linderung von Asthmaanfällen wird die Kohle der
Asthmacarbontablette zum Glühen gebracht, worauf sich auch die Droge ent-
zündet und charakteristisch riechende, weisse Dämpfe entweichen lässt. Werden
diese von dem Kranken eingeatmet, so soll nach anfänglichem Hustenreiz die
Atmung ruhiger werden, die asthmatischen Beschwerden sollen aufhören.

93] Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 5Q7

Es war mir schon längst von Interesse, festzustellen, woher die Droge
.stammt und durch welche Eigenschaften die Stammpflanze ausgezeichnet ist.
Zu meinem Erstaunen stiess ich jedoch auf grosse Schwierigkeiten. Deu
schön gebildeten botanischen Namen Punaria Ascochingae konnte ich trotz
grösster Bemühungen nirgends in der botanischen Literatur auffinden. Eine
Sierra Ascochinga war mir zwar als ein Gebirgszug der südamerikanischen
Republik Argentina bekannt, doch liess sich in der dieses Land betreffenden
Literatur keine Pflanze von den angegebenen Eigenschaften nachweisen. Von
der Firma Brockhaus & Co., an welche ich mich brieflich wendete, erhielt ich
die Benachrichtigung, „dass die Deutsche Asthma-Carbon-Gesellschaft in
Haiensee, welche die Punaria AscocJiingae für ihre Präparate verwendet, die
Pflanze von einem Grossohaus in Buenos Aires bezieht und dass ein anderer
Name für die Pflanze nicht bekannt ist. Die Droge wird von der Deutschen
Asthma-Carbon-Gesellschaft bereits zerkleinert bezogen.

Ein mir übersandtes Teegemisch, das zu Aufgüssen Verwendung findet,
erwies sich zusammengesetzt aus stark zerkleinerten Bruchstücken von Wurzeln
und Blättern, zwischen denen sich massenhaft lange weisse Wollhaare, in
Büscheln zusammenliegend, antrafen. Dieser Befund liess mich vermuten,
dass die Stammpflanze der Droge eine jener südamerikanischen rosetten-
bildenden Compositen sein könne, in deren Blattbasen sich regelmässig dichte
Haarbüschel finden, eine Vermutung, die durch meinen Kollegen, Professor
Hieronymus zur Gewissheit erhoben wurde. Es gelang uns sogar nach kurzen
Herbarstudien, als Stammpflanze der Droge mit Bestimmtheit die schon von
Grisebach beschriebene Composite Trichoclinc argentea nachzuweisen, was, wie
ich leider erst später bemerkte, schon längst vorher aus der Literatur zu er-
sehen gewesen wäre.

Da mich nun interessierte, zu erfahren, ob der Name Punaria Ascochingae
irgendeiner Beschreibung entnommen oder ein ,. Kunstprodukt" sei, ging ich
dem Namen in der Literatur nach. Das Resultat war folgendes:

In Mercks Berichten 1899, p. 158 findet sich unter der Überschrift Herba
et Radix Brachycladi Stuckerti folgende Ausführung: „Von Brachycladus
St ackert i. Familie Compositae. Heimat: Argentinien.

Über diese interessante Droge lagen in der wissenschaftlichen Literatur
bis jetzt noch keine näheren Angaben vor. Herr Stuckert, nach dem die
Pflanze benannt ist, berichtet mir, dass der wässerige Aufguss der ganzen
Droge von den Eingeborenen Argentiniens mit ausserordentlich gutem Erfolge
gegen die beim Aufenthalt in hochgelegenen Regionen auftretende Bergkrank-
heit (Puna. Soracho) verwandt wird. Versuche, welche mit Asthmakranken
vorgenommen wurden, zeigten, dass der länger fortgesetzte Genuss der In-
fusion der Pflanze mit der Zeit eine wesentliche Linderung der Asthmaanfälle
herbeiführt. Im geschnittenen Zustande als Zigarette geraucht, verschafft die
Pflanze sofortige Linderung des Asthmaanfalles. Die Brachycladuszigaretten
duften angenehm nach Kumarin und können mit einer minimalen Menge
Salpeter versetzt werden, wodurch sie besser in Brand zu halten sind. In
dieser Form angewandt, wirkt diese Droge allerdings schwächer als Cannabis
indica. entbehrt aber auch der unangenehmen Nebenerscheinungen (Kratzen
im Halse usw.), welche das Rauchen des indischen Hanfkrautes meist nach
sieh zieht. Andauernder Genuss der Brachycladuszigaretten bewirkt Schlaf,
wonach eine gewisse Eingenommenheit des Kopfes zurückbleibt, während die
Asthmaanfälle zuweilen tagelang pausieren.

508 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. |9_j.

Bezüglich der botanischen Beschreibung dieser neuen Pflanzenart sei
auf Ch. Spegazzini in Comm. del Mus. Nac. de Buenos Aires, I, No. 4 (1899)
p. 133 verwiesen."

Wir werden gleich sehen, dass der Name Brachyclaäus Stuckerti Speg.
ein Synonym zu Trichocline argentea Griseb. darstellt; in der eben gegebenen
Mitteilung ist aber wenigstens als Stammpflanze der Droge eine in einer
Zeitschrift sehr ausführlich beschriebene Pflanze genannt, welche stets eine
Identifizierung möglich macht.

Kurze Zeit nach dieser Veröffentlichung wies F. Kurtz nach, was ich
auf das Sicherste bestätigen kann, dass Brachyclaäus Stuckerti Speg. als Syno-
nym zu der schon im -Jahre 1879 von Grisebach beschriebenen Trichocline
argentea gehört. Er fügt diesem Nachweis folgende Bemerkungen hinzu (von
mir aus dem Französischen ins Deutsche übertragen): „Diese hübsche Art von
Trichocline ist bisher nur bekannt geworden von der Sierra Chica und der
Sierra Grande (Sierra Achala) de Cordoba, wo sie bis etwa 1500 m Meereshöhe
erreicht." Er fährt dann fort: „Th. Stuckert berichtet über diese Art in
Mercks Berichten, dass die Eingeborenen Argentinas sich ihrer mit gutem
Resultat, und zwar in der Form eines Teeaufgusses, gegen die Bergkrankheit
(Puna, Soracho) bedienten. Mehr Wahrscheinlichkeit hat die Angabe Stuckerts
über die Heilwirkung der Droge, in der Form eines Teeaufgusses getrunken
oder als Zigarette geraucht, gegen asthmatische Beschwerden ; denn von der
Bergkrankheit weiss man in der Sierra de Cordoba nichts, da dieser Gebirgs-
zug nur 2900 m hoch ist."

Verf. erwähnt dann ausführlich Angaben von Zehden über die Stamm-
pflanze der Droge. Die Angaben stellen ein merkwürdiges Gemisch dar von
Richtigem und Unrichtigem. Bezüglich ihrer sei auf das Original verwiesen.
Der Verf. fährt dann fort :

Was weiter über unsere Pflanze noch in der Literatur erschienen ist,
ist kurz geschildert. In Mercks Berichten 1906 (1907), p. 229 wird ein Referat
über die Arbeit von Zehden gegeben und besonders die Verwendungsart der
Droge genau angegeben; als Stammpflanze wird jetzt natürlich der Phantasie-
name Punaria Ascochingae angegeben, während im Jahre 19(10 ein richtig ver-
öffentlichter Name in Mercks Berichten genannt worden war. Erstaunlich ist
es mir, dass von Merck die Zusammengehörigkeit der beiden Namen fest-
gestellt werden konnte : Es wird zwar über die Droge mit dem Namen Punaria
Ascochingae berichtet, in einer Anmerkung findet man jedoch den Hinweis auf
die frühere Veröffentlichung der Droge unter dem Namen Brachyclaäus
Stuckerti Spegazz.

Zu genau demselben Resultat gelangt auch E. M. Holmes. Auch er
weist den Namen Punaria Ascochingae zurück und nennt als Stammpflanze der
Droge Brachyclaäus Stuckerti Spegazz. Leider ist es ihm entgangen, dass
letzterer Name ein Synonym von Tricliocline argentea Griseb. ist, und dass
unsere Pflanze in Wirklichkeit zu der bisher einzigen strauchförmigen Art der
Gattung Brachyclaäus keine näheren Beziehungen zeigt.

Ich musste deshalb auf den geschilderten Fall so ausführlich eingehen,
weil hier etwas ganz Neues vorliegt, die offenbar bewusste Unterdrückung
eines vorher genau bekannten Pllanzennamens und die Einführung eines
neuen, ohne Beschreibung veröffentlichten und deshalb unkontrollierbaren
Namens, zweifellos zu dem Zwecke, um die Herkunft einer Droge zu ver-
schleiern oder zu erreichen, dass die Droge von den Behörden nicht als ein

951 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. 509

Geheimmittel angesehen werden soll, sondern als ein Körper, der jederzeit auf
seine Identität hin geprüft werden kann.

Zu demselben Zwecke werden neuerdings die verschiedensten Mittel
angewendet und manchmal botanische Kenntnisse offenbart, die ganz erstaun-
lich sind!

In einer Reklameschrift der schon genannten Firma Brockhaus & Co.,
betitelt: „Eine wesentliche Verbesserung unseres weltberühmten Johannistees",
wird z. B. folgendes ausgeführt:

„Die Beobachtungen und Erfahrungen, die wir nunmehr schon seit
vielen Jahren mit den diversen Galeopsisarten gemacht haben, haben in uns
immer mehr die Überzeugung wachgerufen, dass bei der Einerntung der auf
die erkrankten Atmungsorgane spezifisch wirksamen Galeopsis ochroleuca der
Standort, auf dem die Pflanze eingesammelt wird, noch weit mehr, wie es
bisher bereits der Fall war. zu begrenzen sei. Wir haben zwar schon immer
betont, dass nur ein dem Wachstum dieser eigenartigen Heilpflanze besonders
günstiger Boden, in Verbindung mit einem ebenso günstigen Klima, ihr die-
jenigen Stoffe zuführen könne, die ihr die Heilkraft geben, und dass an
anderen Orten eingesammelte Pflanzen mitunter absolut unwirksam seien.
Die fortgesetzten Bemühungen in dieser Richtung haben aber noch ein anderes
Resultat gezeitigt, und zwar, dass eine Abart der Pflanze, nämlich die in der
vulkanischen Eifel wachsende Galeopsis grandiflora, gerade diese heilkräftigen
Stoffe par excellence enthält, und so haben wir uns denn jetzt entschlossen,
für die Zukunft nur noch aus dieser Quelle unseren Bedarf zu decken.

Da das Bessere nun aber stets der Feind des Guten ist, so bringt es
diese engere Begrenzung der Bezugsquelle und die damit verbundene Ver-
besserung in der Qualität mit sich, dass wir, um dieser letzteren einen präg-
nanten Ausdruck zu verleihen, unsere bisherige Marke ,Johannistee' vollständig
fallen lassen und dieselbe durch die neue, vom Kaiserlichen Patentamte ge-
schützte Marke ,Brockhaustee' ersetzen. Der Johannistee wurde aus der
Galeopsis ochroleuca vuleanica hergestellt, während der Brockhaustee jetzt aus
der weit wirksameren Galeopsis grandiflora Eifliae gewonnen wird."

Die Pflanze, um die es sich hier handelt, Galeopsis ochroleuca, ging früher
als Herba Galeopsidis in den Apotheken und ist ein anerkanntes Heilmittel,
das bei der Landbevölkerung der Mark Brandenburg, aber auch anderweitig,
bei Katarrhen ständig angewendet wird. Sie ist in den trockenen Gebieten,
besonders des westlichen Deutschlands, ausserordentlich verbreitet und über-
deckt stellenweise ganze Brachäcker. Ob die Pflanze in der Mark Branden-
burg oder aber z. B. in der Eifel gesammelt wird, ist meiner Ansicht nach für
die Heilwirkung belanglos: doch ist zuzugeben, dass diese Frage noch nicht
in jeder Hinsicht geklärt ist.

Jedenfalls kennt kein Botaniker jetzt mehr eine Galeopsis grandiflora;
höchstens figuriert dieser Name noch als ein Synonym von Galeopsis ochroleuca-
Die Firma Brockhaus & Co. behauptet nun aber, sie habe früher die „Galeopsis
ochroleuca vuleanica" einsammeln lassen, während sie jetzt die „Galeopsis grandi-
flora Eifliae" vertreibe. Man muss der Firma zu dem genialen Scharfblick
ihrer Sammler wirklich gratulieren, welche das fertig bringen, was nicht ein-
mal scharf beobachtenden speziellen Botanikern gelingt: nämlich zwei Arten
auseinander zu halten und sogar im grossen zu sammeln, die weder Arten,
noch Varietäten sind und höchstens noch gelegentlich als Formen angesehen
werden! Auch hier finden wir wieder die auffallende Namenbildung: die

510 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [9g

keinem Botaniker bisher bekannten Affixnamen „vulcanica" and „Eifliae" hinter
den eigentlichen Artnamen! Zwei Erklärungen habe ich nur für diesen Über-
fluss an gänzlich ungerechtfertigten Namen: Entweder wollte die Firma
Brockhaus & Co. nicht hinter Dr. med. Schaffner zurückstehen, welcher auf
der Aufschrift seines „Blutreinigung^pulvers Danosanum" ebenfalls angibt:
gewonnen aus der „Galeopsis grandiflora eifl.", oder aber sie wollte dadurch
eine Erklärung für den recht ansehnlichen Preis ihres Tees geben. Wäre
dieser z. B. in der Mark Brandenburg gesammelt, so wäre er weit über zehn-
fach zu hoch bezahlt. Und kein Mensch ist imstande, durch eine Untersuchung
die Herkunft festzustellen.

Verf. schliesst seine interessanten Beobachtungen mit den Worten, dass
er dererlei Tatsachen noch viele anführen könnte. Ein recht trüber Einblick
in manche Geschäftspraxis!

279. Gill, A. Mo. Prüfung von Terpentinöl. (Journ. Soc. Chem.
Ind., XXVI, 1907, p. 847.)

Will man die Jodzahl von Terpentinöl bestimmen, so ist Methode von
v. Hübl der von Hanus vorzuziehen.

Ein mit den üblichen Mitteln verfälschtes Terpentinöl gibt Hübische
Jodzahlen unter 870, oder Zahlen nach Hanus unter 200. Die spezifische
Refraktion für echtes Terpentinöl ist bei 20° ungefähr = 1,47.

Die gewöhnlichen Verfälschungsmittel verringern das Kefraktions-
vermögen.

Um reines Terpentinöl von verfälschtem zu unterscheiden, benützt der
Autor folgende Methode :

Von 100 ccm Öl lässt er 25 ccm unter Beobachtung der Siedetemperatur
abdestillieren. Dann bestimmt er vom Destillate Jodzahl und Brechungsindex.

280. Gill, A. H. Über die Oxj'dation von Olivenöl. (Journ. Am.
Chem. Soc, XXX, 1908, p. 874.)

Viele Versuche, Olivenöl zu oxydiei-en, verliefen vollkommen resultatlos.

Eine Probe eines vorher mit Ammoniak emulgierten Öles, mit dem man
Baumwolle getränkt hatte, zeigte nach siebenwöchentlichem Liegen an der
Luft eine Verringerung der Jodzahl um ca. 25°/0.

281. Gilling, Chr. Die wirksamen Bestandteile medizinisch an-
gewandter Simarubaceen. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 30 und 103.)

Verf. hat folgende Pflanzen untersucht:

1. Quassia amara. 8. Ailanthus excelsa.

2. Picraena excelsa. 9. Ailanthus glandulosa-

3. Simaruba amara- 10. Picrasma quastioides.

4. Sameraria indica- 11. Picrasma javanica.

5. Brucea sumatrana. 12. Picraumia ciliata (?).
(>. Brucea antidysenterica. 13. Picramnia camboita.
7. Simaba Valdivia. 14. Gascara amara.

Die wirksamen Bestandteile dieser Gewächse stellt er nach der Literatur
zusammen.

Nur 'Quassia amara enthält ohne Zweifel Quassiin.

282. Glaser, L. Repetitorium der Pharmakologie. (Arzneiver-
ordnungslehre, Arzneimittellehre und Toxikologie.) 2. rev. u. verb. Auflage,
V, 73 pp., 80, Würzburg 1906.

Ein Büchelchen bestimmt vor allen für den Gebrauch der Studierenden.

97] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 51 \

2SH. Glücksmann, C. Zur Kenntnis des Tannins. (Oollegium, 1907,
p. 282: Pharm. Praxis, 1907, p. 115.)
Es werden behandelt :

1. Die Konstitution des Tannins.

2. Die Säurezahl des Tannins.

3. Tannin als Gerbstoff; zur Theorie der Gerbung.

284. Gmeiner. Die Vorzüge der Barbadosaloe in der Tierarznei-
praxis. (Berl. tierärztl. Wochenschr ., 1907, No. 11.)

Der Verf. hat die Barbadosaloe als die wirksamste befunden.
Er gibt von ihr den Pferden Bissen mit Sapo halinus venalis.
Er warnt aber sehr vor höheren Gaben als 25 — 35 g pro dosi.

285. Gomez, Pamo J. R. Tratado de Materia farmaceutica Vegetal.
2. edicion, 2 vol., Madrid 1907, 844 und 855 pp.

286. tlonnermann, M. Über die Spaltung der wirksamen Bestand-
teile der Rhizomafilicismaris durch animalische Enzyme. (Apoth.-Ztg.,
XXII, 1907, p. 669.)

Die eingehenden Forschungen des Verf. ergaben, dass weder aus Aspidin
noch aus Filmaron von Pepsin, Pankreatin und Trypsin Phoroglucin und
Buttersäure abgespalten werden.

Die dem Filmaron nachgerühmte leichte Spaltbarkeit im Darme ist also
wohl nur auf die alkalische Reaktion des Darmsaftes zurückzuführen.

287. Gordin, H. >I. Eine gute Methode, die durch ungerecht-
fertigte Änderungen wertlos gemacht worden ist. (Amer. Journ.
Pharm., LXXIX, 1907, p. 61.)

Der Autor schreibt eine Salpetersäure vom spez. Gewicht 1,42, die U. St.
Pharmac. 1900 eine solche von 1,40 vor.

Man muss beim Abdampfen der Alkaloidlösung gegen das Ende etwas
Amylalkohol hinzugeben, damit keinerlei Verluste durch Verspritzen ent-
stehen.

Die U. St. Pharm, schreibt diesen Zusatz nicht vor.

So gute Resultate also die ursprüngliche Methode ergab, so wenig genau
ist diejenige, die L'. St. Pharmac. 1900 unter dem Namen „Gordinsche
Methode" (! !) angibt.

288. Gordin, H. M. Über Marrubiin. (Deutsch.-Amerik. Apoth.-Ztg.,
1907, p. '.IL,

Matusow hatte eine Methode angegeben, mittelst derer man aus Mar-
rubium vulgare, der bekannten Labiate, Marrubiin erhalten könne, und zwar
kristallinisch. Verf. behauptet, dass nach dieser Matusowschen Methode (das
Kraut wird mit Aceton ausgezogen, das Lösungsmittel abdestilliert und der
Rückstand mit heissem Benzin aufgenommen) kein Marrubiin, sondern Kalium-
nitrat erhalten werde.

Er gibt ein anderes Verfahren an, das er aber nicht genauer mitteilt.

Seinem Marrubiin kommt die Formel CaiHigO^ zu. Es schmilzt bei
154,5°— 155,5°. In Aceton ist es leicht löslich, ferner in Chloroform, Pyridin,
warmem Phenol und heissem Alkohol. Schwer ist es zu lösen in Äther, Benzin
und kaltem Alkohol. In kaltem Wasser ist es so gut wie unlöslich.

Es ist rechtsdrehend.

512 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 19g

Beim Kochen mit alkoholischer Kalilauge geht es in Marrubiinsäure
über, der die Formel C2iH30O5 zukommt.

Die Säure ist rechtsdrehend, bildet leicht lösliche, aber nicht kristallisier-
bare Salze. Sie ist einbasisch. Der Methyl- und Äthylester wurden kristal-
linisch erhalten.

289. Gordin, H. ML Marrubiin. (Journ. Americ. Chem. Soc, XXX,
1908, p. 2(55.)

Der Verf. isolierte aus der Labiate Marrnbium vulgare Marrubiin, einen
bekannten Bitterstoff.

Bezüglich ihrer Methode sei auf das Original verwiesen.

Der Verf. erhielt reines Marrubiin, der Formel C.^H^C^ entsprechend.
Es hat den Schmelzpunkt 154,4°— 155,5°. Der Siedepunkt ist bei 297°— 299°,
[«|D = -f- 45,68° (in Acetonlösung bestimmt).

In dem Bitterstoff findet sich weder eine Hydroxylgruppe noch eine
Carbonylgruppe.

Marrubiin entsteht beim Kochen mit alkoholischer Kalilauge. Der
Marrubiinsäure kommt die Formel C;flHo80.i(OH)CooH zu.

Marrubiin ist ein Lacton und wahrscheinlich ein ;/-Lacton.

290. Goris, A. Über ein neues kristallinisches Prinzip der
frischen Cola. (Bull, scienc. pharmacol., XIV, 1907, p. 645.)

In den frischen Colanüssen findet sich ein zur Tanningruppe gehöriges
wirksames Prinzip. Es ist das Colatin. Der Verf. bekam dieses Produkt als
prismatische Kristalle von der Formel: C8H10O4.

Es gibt mit Coffein eine lockere Verbindung. Während des Trocknens
der Colanüsse verschwindet das Colatin, wenn man die Nüsse wie gewöhnlich
behandelt.

Werden sie aber vor dem Trocknen und Pulverisieren 10 Minuten hin-
durch im Autoklaven sterilisiert bei 105°, so bleibt das Colatin erhalten.

Solches Pulver liefert pro Kilogramm 15 g der Colatin-Coffeinverbindung.
Frische Nüsse geben 6 — 7,59 dieser Substanz.

Bezüglich weiterer Einzelheiten sei auf das Original verwiesen.

291. Goris, A. Nachweis von Kolophonium in Tolubalsam.
(Bull. d. scienc. pharmac, XV, 1908, p. 636.)

292. Goris, A. und Arnoalt, L. Aufbewahrung und Sterilisation
der frischen Colanüsse. (Bull, scienc. pharmacol., XIV. 1907, p. 159.)

Einige Monate lang lassen sich frische Colanüsse nebeneinander in
Blechbüchsen gelagert an einem trockenen Orte aufbewahren.

Mehr zu empfehlen aber ist Sterilisation derselben im Autoklaven bei
100°- 115°, wobei allerdings ein oxydierendes Ferment, die Coloxydase zer-
stört ward.

Die Erwärmung muss sehr schnell vor sich gehen.

Die von Natur weissen Colanüsse behalten ihre Farbe, während die
roten eine violette Färbung annehmen.

293. Goris, A. und Chevalier, J. Pharmakodynamische Wirkung
des Colatins. (Bull, scienc. pharmacol., XIV, 1907. p. 648.)

Das Colatin zeigt nun sehr geringe giltige Momente.

Die Verff. beschreiben die physiologischen Wirkungen des Colatins auf
das Muskelsystem und das Zentralnervensystem bei kalt- und warmblütigen
Tieren.

1. In der Rinde

2. Im Mark .

99 1 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 513

294. Goris, A. und Crete, L. Über den Wert von Polygonum cuspida-
tum Sieb, et Zucc. als Abführmittel. (Bull, scienc. pharmacol., XIV,
1907, p. 698.)

Die Verf. geben vorzügliche Abbildungen und gute Beschreibungen des
Rhizoms von Polygonum cuspidatum Sieb, et Zucc.

Im Bastparenchym, in den Markstrahlen und im Mark selbst findet sich
ein Glykosid, Polygonin, das bei der Hydrolyse Emodin und einen nicht
näher studierten Zucker liefert.

Das Glykosid und Emodin ist unter dem Mikroskop leicht nachweisbar,
wenn man die Schnitte mit stark verdünnter Kalilauge behandelt.

Der Inhalt der das Glykosid führenden Zellen färbt sich granatrot. Es
fanden sich an Emodin:

\ frisch 0,556%.

' " ' " ) getrocknet 1,200%.

\ frisch 0,629 °/0.

■•■••] getrocknet 1,400%.

\ frisch 0,353%.

3. Im ganzen Rhizom . . \ , , , AP-,. n,
ö I getrocknet 0,6/6%.

In der Wirkung gleicht das Rhizom dem Rhabarber qualitativ voll-
kommen, ebenso der Fanlbaumrinde.

Die Pflanze ist überall sehr leicht zu kultivieren und empfiehlt sich also
ihrer Eigenschaften wegen gut zum Anbau.

295. Goris, A. et Crete, L. Über das Rosskastanienöl. (Bull. Sc.
Pharmakol., XIV, 1907, p. 68—72.)

Verf. konnte feststellen, dass das Rosskastanienöl nicht durch ein ge-
löstes Ferment oder ein Ferment entsteht, das auf Kosten der Stärkesubstanz
der Cotyledonen gebildet wird, sondern vielmehr im Samen vorhanden ist,
sich aber in den gebräuchlichen Lösungsmitteln für Fette nur löst, wenn die
Samen vorher völlig getrocknet sind. Eine Extraktion aus den frischen Samen
ist nicht möglich, weil da das Öl durch das Saponin festgehalten wird.
Letzteres wird durch die in dem befruchteten, zermahlenen Mehl vor sich
gehende Fermentation zerstört, so dass dann das Fett durch Äther, Schwefel-
kohlenstoff usw. ausgezogen werden kann.

29(i. (Ums und Crete. Über Polygonum cuspidatum. (Bull, scienc. phar-
macol., No. 12, 1907.)

Die Verf. führen aus, dass Polygonum cuspidatum ebenso wirke wie P.
dumetorum.

Vergl. Referat No. 294.

297. Goris, A. und Crete, L. Der chinesische Rhabarber. (Bull,
scienc. pharmacol., XIV, 1907, p. 93.)

Die ziemlich lange Arbeit gibt eine ausführliche Übersicht über die in
den verschiedensten Arbeiten neuerer Zeit gewonnenen Fortschritte in der
Kenntnis des chinesischen Rhabarbers.

Die Arbeit zerfällt in folgende Abschnitte:

1. Handelsprodukte.

2. Anatomische Struktur.

o. Chemische Zusammensetzung.
4. Handelswert eines Rhabarbers.
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt, [Gedruckt 20. 4. 11. | 33

514 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [100

298. Goi'is, A. und Wallart, J. Körner und Öl von Ühaulmoogra.
(Bull, scienc. pharmacol., XIV, 1907, p. 204.)

Man nahm bisher an, dass das namentlich in England viel gegen Lepra
gebrauchte Chaulmoograöl von Gynocardia odorata R. Br. (= Chaulomoogra
odorata Roxb.) stammt. Die Verff. weisen diese Annahme zurück, da die
Stammpflanze bisher noch unbekannt ist.

Die Verff. geben dann botanische Charaktere für die Bixaceengattungen:
Taraktogenos, Hydrocarpus und Gynocardia.

299. Gorter, K. Beiträge zur Kenntnis des Kaffees. (Bull, du
Departm. de l'Agricult aux Indes Neerland, 1907, XIV, p. 1 — 68.)

Die Arbeit zerfällt in folgende Abteilungen :

Einleitung. Experimenteller Teil. Chlorogensaures Kalicoffei'n. Chlorogen-
säure. Die chlorogensauren Salze. Chlorogensaures Calcium. Chlorogensaures
Magnesium. Chlorogensaures Zink. Chlorogensaures Blei. Chlorogensaures
Blei (basisch). Chlorogensaures Benzidin. Chlorogensaures Benzidin (basisch).
Chlorogensaures Strychnin. Chlorogensaures Anilin. Die Alkalispaltung der
Chlorogensäure. Kaffeesäure. Diacetkaffeesäure. Chinasäure. Chinasaures
Zink. Chinasaures Calcium. Triacetylchinid. Die Säurespaltung der Chlorogen-
säure. Acetylierung der Chlorogensäure. Pentacetylhemichlorogensäure.
Benzoylierung der Chlorogensäure. Theoretische Betrachtungen. Hemichlorogen-
saures Anilin. Hemichlorogensaures Benzidin. Pentacetyhemichlorogensaures
Anilin. Der Pektinstoff aus Kaffee. Coffalsäure. Das Enzym aus den Kaffee-
bohnen.

Am Schlüsse der genauen Abhandlung fasst der Verf. seine Ergebnisse
wie folgt zusammen:

1. Der Hauptbestandteil des Kaffees ist das chlorogensäure Kalicoffei'n:
CAOuH, (C8H10N4O2)2 + 2H2O.

2. Die daran zugrunde liegende Chlorogensäure (C32EI3g019) ist eine zwei-
basische Säure vom Schmelzpunkte 206—207°. [«1d = --33,1°.

3. Folgende Salze wurden dargestellt:

Chlorog. Calcium .... C32H36019Ca + 6i/2ILO.

Chlorog. Magnesium . . . C32H360i9Mg -f- 5H20.

Chlorog. Zink C32H36019Zn -f 5H20.

Chlorog. Blei C32H36019Pb + 5H20.

Chlorog. Blei (basisch) . . C32H38Ol9Pb. 2PbO.

Chlorog. Benzidin .... C32H38019. Cl2H12N2. Schmelzpunkt 166°
unter Aufschäumen.

Chlorog. Benzidin (basisch) C32H38019. (C12Hi:N2O2)+10H2O Schmelz-
punkt 170—171°.

Chlorog. Strychnin . . . (C32H38019)2. (C21H22N202)3+2H20. Schmelz-
punkt 235°.

Chlorog. Anilin CsnHsgO^. (C6H5NH2)2. Schmelzpunkt 174°.

4. Die Einwirkung von Alkali ergibt Kaffee- und Chinasäure nach der
Gleichung: C32H38019 + H20 = 2C9H804 + 207H12O6.

5. Bei der Acetylierung entsteht die I'entacetylhemichlorogensäure
(,i6H130y (C2H30)6. Schmelzpunkt 180,5—181°.

6. Die Hemichlorogensäure wurde als Anilinsalz vom Schmelzpunkt 173°
isoliert und mit dem chlorogensauren Anilin verglichen.

101]

Berichte über die phartnakognostische Literatur aller Länder.

515

7. Die Umwandlungen der Chlorogensäure finden ihren Ausdruck in folgender

Strukturformel

OH

1 6^3— CH>

COOH

OH

CH-

O

H H

/

H

-o-

C.H

6n3"

o

-CH

-OH

OH

OH A
H OH

H OH

OH V

A
H H

H H

V

T>H

CH

OH

,c-

H H

.H

~OH

VH

0

COOH

8. In den Kaffeebohnen ist ein Pektinstoff vorhanden, welcher bei der
Oxydation mit Salpetersäure Schleimsäure und bei der Hydrolyse neben
Galaktose eine Pentose liefert.

9. Es wurde eine neue kristallisierte Säure aus Kaffee isoliert. Zusammen-

setzung:

C34H54OU. Schmelzpunnt 255°, welche ich mit dem Namen

Coffalsäure belegt habe.

10. Die Coffalsäure spaltet mit Säuren und Alkalien Isovaleriansäure ab.

11. In den Liberiakaffeebohnen fand ich eine Oxydase, welche mit dem
chlorogensauren Kalicoffei'n Färbung gibt.

12. Die Kaffeegerbsäure früherer Autoren ist kein einheitlicher chemischer
Körper, sondern ein Gemisch von Chlorogensäure, Coffalsäure und anderen
Substanzen.

300. Gorter, K. Zur Kenntnis des Kaffees. (Lieb. Ann. Chem.,
1908, p. 327, 217.)

Payen hatte vor Jahren aus dem Kaffee Chlorogensäure kristallisiert.
Die Mitteilung ist sehr viel angezweifelt worden. Man sagte, er habe jeden-
falls nur eine Chinasäure gehabt.

Verfasser kann nur die Richtigkeit der Payenschen Untersuchungen
bestätigen.

Die Chlorogensäure hat weisse Färbung, ihr kommt die Formel Cs^^gO^
zu: ihr Schmelzpunkt liegt bei 206 — 207°.

Bei der Spaltung mit Alkali zerfällt sie in Kaffeesäure und Chinasäure.
Sie findet sich als chlorogensaures Kalicoffei'n im Kaffee. Dieses kristallisiert
aus 60 — 80% Weingeist um und bildet weisse, im Wasser leicht lösliche Prismen.

Es gelang dem Verf., von dieser Säure verschiedene Salze herzustellen,
deren Eigenschaften er genau beschreibt.

Bei der Acetylierung entstand Pentaacetylhemichlorogensäure von der
Formel: C16H1309(CoH30)6. Der Schmelzpunkt dieser Säure liegt bei 180,5 0 bis 181°

In den Kaffeebohnen findet sich ein Pektinstoff, der mit Salpetersäure
Schleimsäure und bei der Hydrolyse Galaktose und Pentose gab. Dann gelang
es noch, eine Säure zu isolieren, die Coffalsäure von der Zusammensetzung
C34H54015, ihr kommt ein Schmelzpunkt bei 255° zu.

3M*

516 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [102

Im Liberiakaffee ist eine Oxydase zu finden, die mit dem chlorogen-
sauren Kalicoffein Färbung gibt.

Die Kaffeegerbsäure der früheren Verf. ist keine einheitliche chemische
Verbindung, sondern ein Gemisch von Chlorogensäure, Coffalsäure und noch
einer anderen Substanz.

Weder die Ohiorogensäure noch die Coffalsäure geben beim Erhitzen
mit Rohrzucker und Coffein den spezifischen Kaffeegeruch,

Die ihn verursachende Substanz muss noch aufgefunden werden.

301. Goalding, E. und Pelley, R. G. Ein neues Isomeres des Vanil-
lins im Stengel einer Chlorocodonart. (Chem. Ztg., XXXII, 1908, p. 429.)

Die in Uganda als „Murnudo" bezeichnete Chlorocodonart hat einen
riechenden Bestandteil, der ein Monomethylester des Dihydrobenzaldehyds,
CH30 • C6H3(OH) • COH, darstellt, der mit dem Vanillin und dessen bekannten
Isomeren nicht zu identifizieren ist, .

302. Graf, V. und Linsbauer, K. Über die wechselseitige Be-
einflussung von Nicotiana Tabacum und Nicoticma affinis bei der Pfropfung.
(D. Bot. Ges.^ XXIV, 1907, p. 366.)

Pfropft man Nicotiana affinis auf Nicotiana Tabacum oder dient sie
letzterer als Grundlage, so lassen sich in den Blättern der nikotinfreien oder
nikotinarmen ersten Art regelmässig grössere Nikotinmengen nachweisen.

Dass das Nikotin einfach von der nikotinstärkeren in die nikotinarme
Pflanze übergeht, ist nicht anzunehmen.

Die Verff. suchen den Grund zu dieser Erscheinung, dass Befähigung
der letzteren zur Nikotinbildung durch das nikotinreiche Edelreis bzw. die
Unterlage gesteigert wird.

Es handelt sich also in diesem Falle wiederum um ein Beispiel vege-
tativer Bastardbildung.

302a. Gräfe, Viktor und Leopold Ritter v. Portheini. Untersuchungen
über die Rolle des Kalkes in der Pflanze. (Sitzungsberichte der Wiener
Akademie, 1906, Bd. 115, Abt. 1, p. 1004—1037.)

Josef Boehm hat zuerst (1875) auf den Anteil des Kalkes an der Um-
wandlung der Stärke in Zucker und an dessen Transport und Verarbeitung in
der Pflanze hingewiesen. Zahlreiche Forscher haben nach ihm sich mit diesem
Gegenstande beschäftigt und die Notwendigkeit des Kalkes bei den erwähnten
Vorgängen hervorgehoben. Man hat u. a. auf die Rolle des Kalkes bei der
Bildung der Zellulose und bei der Umwandlung des Zuckers in Polysaccharide
hingewiesen (Kohl 1889). Loew nimmt an, dass der Kalk für die Bildung
der Diastase, wenn auch nur indirekt, notwendig sei (1892).

Im Hinblick auf diese Beobachtungen und Annahmen legten die Herren
Gräfe und v. Portheim ihren Untersuchungen den Gedanken zugrunde, dass
durch Zufuhr von Zucker vielleicht die in kalkfreien Kulturen eintretende
Erkrankung entweder gänzlich aufgehoben oder wenigstens eine Zeitlang
bintangehalten werden könnte. Sie verwandten hauptsächlich Lävulose, die
für die Pflanzenwurzel ein besonders günstiger Nährstoff ist, daneben auch
Dextrose und Saccharose. Die Versuche wurden mit aller Sorgfalt an Keim-
lingen der Bohne (Phaseolus vulgaris) durchgeführt und ergaben in der Tat
eine Beeinflussung des Wachstums durch Zuckerzusatz, die aber recht verschieden
ausfiel, je nachdem die Kultur im Licht oder im Dunkeln vorgenommen wurde.

Wenn die Bohnen im Lichte in normaler, also auch kalkhaltiger Nähr-
lösung (Knopscher Lösung), der einer der drei genannten Zucker zugesetzt

103] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 517

war, kultiviert wurden, so erschien das Längenwachstum des hypocotylen
Gliedes der Keimlinge gegenüber den Kulturen in zuckerfreier normaler Nähr-
lösung begünstigt, am meisten bei Lävulosezusatz. (Für die Wurzeln wurde
kein klares Resultat erzielt.) Im Dunkeln wiesen dagegen die ohne Zucker
kultivierten Bohnen das schönste Wachstum auf; hier standen die Kulturen,
denen Lävulose zugesetzt war, am schlechtesten.

An den Keimlingen der kalkfreien Kulturen, die im Licht erzogen waren,
iess sich stets eine Bevorzugung der Entwickelung der Wurzeln sowohl wie
der oberirdischen Organe in den Lävulosekulturen gegenüber den anderen
Kulturen, besonders den kalkfreien ohne Zucker, wahrnehmen. Der Termin
der Erkrankung wurde bei den Lävulosepflanzen bedeutend hinausgeschoben.
Weniger ausgesprochen waren die Resultate mit Dextrose- und Saccharose-
kulturen. Bei diesen trat die günstigste Wirkung im Dunkeln zutage, während
die im Dunkeln erzogenen Lävulosepflanzen gerade die schlechtesten Wurzeln
aufwiesen.

Die quantitativen Analysen der Zuckerlösungen der kalkfreien Kulturen
im Licht ergaben, dass die Zuckeraufnahme durch die Pflanze den besprochenen
Erscheinungen entsprach. Am meisten Zucker war in den Lävulosekulturen, am
wenigsten in den Dextrosekulturen verbraucht. In den Saccharoselösungen
war der Zucker völlig invertiert. In den Versuchsgläsern mit Dextrose und
Saccharose fand sich immer auch noch Lävulose vor. Lobry de Bruyn und
van Ekenstein haben solche Umwandlungen von Monosen ineinander unter
der Einwirkung von sehr verdünnten wässerigen Alkalien beobachtet (vgl.
Rdsch,, 1890, XI, 552), und zweifellos können auch enzymatische Wurzelsecrete
diese Wirkung haben; über amyloly tische und invertierende Wirkungen von
Wurzelsecreten hat (1887) Molisch berichtet (vgl. Rdsch., 1888, III, 388).

Die beobachteten Erscheinungen gaben den Verff. Veranlassung, die
Pflanzen auf die Anwesenheit von Formaldehyd zu prüfen. Sie knüpften dabei
an eine Wahrnehmung von Loew und Bokorny an, die aus Formaldeh^d nach
längerem Stehenlassen mit verdünnter Kalklösung synthetisch einen redu-
zierenden Zucker (Formose) erzeugt hatte, der sich weiterhin als ein Gemisch
von Dextrose und Lävulose erwies. Die Verff. wünschten festzustellen, ob
der Kalk vielleicht ein synthesierendes Agens darstelle, oder ob er gegen den
bei der Kohlensäureassimilation sich bildenden Formaldehyd als Schutzstoff
wirke, so dass die Krankheitserscheinungen, die sein Fehlen hervorrufen, hier-
aus erklärt werden könnten. Für die Wirkung des Kalkes als Schutzstoff im
Tierkörper ist neuerdings J. Loeb eingetreten. In den Versuchen setzten die
Verff. Licht- und Dunkelkulturen von Bohnenkeimlingen teils in normaler,
teils in kalkfreier Lösung an. In den Pflanzen der Dunkelkulturen konnte
überhaupt niemals Aldehyd nachgewiesen werden. In den Lichtkulturen
wurden mit dem Schiffschen Reagens (Rötung durch S02 entfärbter Fuchsin-
lösung) und mit einem neu gefundenen spezifischen Reagens auf Formaldehyd
(Bildung eines grünen Ringes mit einer Lösung von Diphenylamin in Schwefel-
säure) Reaktionen erhalten, aber sowohl in den Pflanzen der normalen, wie
denen der kalkfreien Kulturen. Die Versuche lassen es allerdings als möglich
erscheinen, dass die kalkfrei erzogenen Pflanzen mehr Formaldehyd enthielten.
Zur endgültigen Entscheidung dieser Frage sind aber weitere Untersuchungen
nötig, und dies um so mehr, als ja bei den durch Kalkmangel erkrankten
Keimlingen im Dunkeln kein Formaldehyd nachgewiesen werden konnte, hier
also die Erkrankung auf andere Ursachen zurückgeführt werden müsste.

518 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [104

303. Gratt", G. Zur Beurteilung des schwarzen Pfeffers. (Zeit-
schrift öffentl. Chem., XIV, 1908, p. 425 ff.)

304. Graham, G. H. Über Aesculin. (E. Mercks Jahrb., 1906.)

305. Grandmont, P. Verfälschung von Pimentpulver (rotem
Pfeffer). (Journ. Pharm. Chim., XXVII, 1908, p. 522—526.)

Verf. hat zwei in den Handel kommende Ersatz- und Fälschungsmittel
des Pimentpulvers, die als Pimientina bzw. als Piment neu bezeichnet wurden,
untersucht. Er konnte feststellen, dass beide neben sehr wenig echtem Piment
eine grosse Menge sehr fein gemahlener Weizenkleie und etwas Öl enthielten,
das gestattete, einen künstlichen Farbstoff gleichmässig in der Masse zu ver-
teilen. Die Fälschung lässt sich aber sowohl organologisch wie auch mikro-
skopisch leicht nachweisen. Ausserdem empfiehlt sich noch folgende einfache
Trennungsmethode: ein wenig von dem zu untersuchenden Piment wird mit
Benzin geschüttelt, das Pulver absitzen gelassen, die Flüssigkeit abgegossen
und mit dem gleichen Volumen Schwefelsäure versetzt. In beiden Fällen geht
die rote Farbe in Violett, Blau, Grün usw. über; nach 72 Minute langem
Schütteln gibt man zu der Flüssigkeit das zehnfache Volumen Wasser und
schüttelt wiederum. Liegt reiner Piment vor, so wird die Flüssigkeit gelb,
liegt dagegen gefälschter Piment vor, so erscheint wieder die ursprüngliche
Rosafärbung.

306. Grandmont, P. Verfälschungen des spanischen Pfeffers.
(Journ. Pharm. Chim., XCIX, 1908, p. 522.)

Mit Pimientina und Piment veuf wird in letzter Zeit vielfach spanischer

Pfeffer ersetzt. Folgende Tabelle gibt die Unterschiede des echten vom ver-
fälschten Produkte an :

Echter spanischer Pfeffer: Verfälschter spanischer Pfeffer:

1. Ockerfarbig rot. 1. Lebhaft rot.

2. Aussehen trocken. 2. Aussehen fettig.

3. Geruch etwas scharf. 3. Geruch fade.

4. Geschmack etwas scharf. 4. Geschmack mehlig.

5. Papier wird auch nach 3 Tagen 5. Papier wird kräftig rot gefärbt,
kaum gefärbt.

Die genaue mikroskopische Untersuchung ergab folgendes:
Echter spanischer Pfeffer: Verfälschter spanischer Pfeffer:

1. Epicarpzellen von Capsicum. 1. Epikarpzellen von Getreide.

2. Mesocarpzellen von Capsicum. 2. Röhren- und Querzellen.

3. Endocarpzellen von Oysticum. 3. Zellen mit Eiweissschicht.

4. Bündel mit Holz und Bastteilen. 4. Conglomeratevou Aleuronkörnern.

5. Eiweisshaltige Zellen. 5. Zellen mit Eiweissinhalt.

6. Stärkekörner fehlen. 6. Getreidestärke.

7. Getreidehaare.

307. Grandmont, P. Fälschung von Papercha. (Journ. Pharm. Chim.,
XXV11, 1908, p. 522.)

Der bekannte von Capsicum annimm stammende „rote Pfeffer" wird in
letzter Zeit sehr viel verfälscht mit Stärke und Naphtholfarbstoffen.

Bezüglich des Nachweises der einzelnen Verfälschungen sei auf das
Original verwiesen.

308. Grandmougin, E. Zur Kenntnis der Zellulose und ihrer
Derivate. (Chem. Ztg., XXXII, 1908. p. 241.)

1Q5] Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. 519

Verf. erweitert die Beobachtungen, die C. Schwalbe früher veröffentlicht
hat, durch eigene genaue Untersuchungen.

Wegen der Einzelheiten muss auf das Original verwiesen werden.

309. Grelot, P. Über das Vorkommen von Stärke in reinem
Senf. (Bull. Scienc. Pharmacol., XII, 1908, p. 40.)

Verf. fand Stärke in mehr oder minder grosser Anzahl in völlig
reinem Senf.

310. Greshoff, M. Ekgoninbestimmung in Java Coca. (Pharm.
Weekbl, XLIV, 1907, p. 961.)

Die vom Verf. angegebene sehr eingehende Methode ist im Original ein-
zusehen.

311. Greshoff, M. Über vorübergehende An Wesenheit von Blau-
säure im Farn. (Pharm. Weekbl., XLV, 1908, p. 776.)

In den jungen Blättern von Pteris aquilina konnte der Verf. 0,02 — 0,056°/o
Blausäure feststellen. Diese Blausäure erwies sich als an ein Benzaldehyd
gebunden, diese Verbindung wird aber durch ein anwesendes Enzym schnell
und vollkommen gespalten.

Bt handelt man die jungen Blätter mit siedendem Alkohol, so ist
Pterisamygdalin zu gewinnen. Diesem kommt ein Glycosidcharakter zu,
es entwickelt mit Emulsin Blausäure und kann vom Amygdalin dadurch unter-
schieden werden, dass es sich in Ätheralkohol bedeutend leichter löst.

In den ausgewachsenen Blättern findet sich kein Alkohol mehr.

312. Greshoff. Eine natürliche Gruppe von Blausäurepflanzen.
Die Iuncaginaceen. (Pharm. Weekbl., XLV, 1908, p. 1165.)

Die in der Verwandtschaft der Alismataceae und Potamogetonaceae stehenden
Juncaginaceen sind wasserbewohnende Monocotylen. In drei Arten dieser Familie:

1. Triglochin maritima,

2. Triglochin palustris,

3. Scheuchzeria palustris,

konnte Blausäure nachgewiesen werden. Leider konnten die blausäurehalten'-
den Substanzen nicht isoliert werden.

Im Destillate war ausser Blausäure noch Aceton zugegen, so dass diese
beiden Stoffe in der Pflanze jedenfalls ein linamarinartiges Glycosid bilden.

313. Grieb. C. M.W. Zur Bewertung von Insektenpulver. (Chem.
u. Drugg., 1908, p. 648 ff.)

Verf. bestimmte die in Äther löslichen Bestandteile (Oleoresin) des durch
Mahlen geschlossener Blüten gewonnenen Insektenpulvers. Die gewonnenen
Zahlen schwanken zwischen 7,3 und 12,0°/0. Verf. benutzte folgende Methode.

Im Vorversuch werden 1 g des Pulvers in einem Reagenzglas mit 10 ccm
Äther geschüttelt. Wenn sich der Äther nach dem Absetzen des Pulvers
deutlich grün gefärbt hat, so kann man daraus schliessen, dass Stengel und
Stiele mit gemahlen worden sind. Wird der Äther nicht grün gefärbt, so
werden, 5,0 g des Pulvers abgewogen und in einem hohen Becherglase mit
50 ccm Äther übergössen, dann wird mit einem Glasstabe umgerührt. Hier-
nach wird nach dem Absetzen die Ätherextraktlösung durch einen Filter in
eine tonierte Platinschale getan, dann wird dieser Vorgang wiederholt ur.d
endlich das Pulver mittelst Äthers auf das Filter gespült und hier wieder mit
Äther ausgewaschen. Man braucht nur 150 ccm Äther.

Man verdampft den Äther, erhitzt die Schale zwei Minuten im Wasser-
bade und wägt dann.

520

Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder.

1106

Die höchsten Prozentzahlen gewann der Autor aus denjenigen Proben,
die mit Äther sich goldgelb färbten.

Eine Probe, die der Verf. untersuchte, war mit Borax verfälscht.

314. Griffon, Ed. Einige Versuche über das Pfropfen der Sola-
neen. (C. R. Acad. Sei. Paris, CXLIII, 1907, p. 1249—1251.)

315. Grimaldi. Zum Nachweis von Harzessenz (Pinolin). (Ohem..
Ztg., XXXII, 1908, p. 8.)

316. Grimbert, L. Über das Verbenalin, ein neues Glycosid aus
Verbena officinalis. (Journ. Pharm. Ohim., XXVII, 1908, p. 49 u. 97.)

Das neu gefundeneGlycosid aus Verbena officinalis kristallisiert völlig wasser-
frei in seinen Lösungsmitteln Wasser, Äthyl- und Methylalkohol, Essigäther und
Aceton. In gewöhnlichem Äther und Chloroform löst es sich absolut nicht.

Seine Linksdrehung beträgt «D = -- 180,5, sein Schmelzpunkt liegt
bei 181,50.

Im Gegensatz zu den anderen durch Emulsin hydrolisierbaren Glycosiden
reduziert es sehr stark alkalische Kupferlösung: 1 g reduziert so stark wie
0,8759 Glycose.

Die Elementaranalyse, sowie die hygroskopische Untersuchung führen
zur Formel C17H25O10.

317. Grimme. Über Tiervergiftungen durch Taxus baccata. (Beil.
Tierärztl. Wochenschr., 1907, No. 38.)

318. Gross, C F., Bevan, E. J. und Briggs, J. F. Über die Farben-
reaktionen der Lignocellulosen. (Berl. Ber., XL, 1907, p. 3119.)

319. Grübler. Phenophthalei'n im Harn. (Pharm. Post, 1907.)

Der Verf. hat eingehende Studien angestellt über das Verhalten des
Phenophthalei'nharns gegen Reagentien, die die Unterscheidung des Chrysophan-
säureharnes vom Santoninharne ermöglichen. Alle drei Harnarten färben sich
bei Alkalizusatz rot. Aber der verschiedene Farbenton gestattet schon
meistens eine Unterscheidung. Chrysophansäureharn wird bei Zusatz von
NaOH karmesinrot, Santoninharn bei gleichem Zusatz fleischrot, Phenophthalei'n-
harn dagegen violettrot. Aber auch andere Reaktionen lassen eine schnelle
Unterscheidung zu, wie folgende Tabelle zeigt:

Chrysophansäure-
harn

Santoninharn

Phenophthalei'n-
harn

Mit Barytwasser

Rötlicher Nieder-

Farbloser Nieder-

Farbloser Nieder-

schlag, fast farb-

schlag, rotes Fil-

schlag, violett-

loses Filtrat

trat

rotes Filtrat

Mit kohlensaurem

Sofort rötliche Ver-

Erst nach einigem

Sofort violett-röt-

Natron

färbung

Stehen rötliche
Verfär'oung

liche Verfärbung

Mit Natronlauge u.
Zinks taub

Entfärbung

Keine Entfärbung

Entfärbung infolge
Bildung von Phe-
nophthalei'n

Mit Bleiacetat ge-

Keine Verfärbung

Fleischrote Verfär-

Violettrote Verfär-

fällt, Filtrat mit

bung

bung, nach eini-

NaOH versetzt

gem Stehen farb-
los werdend.

107] Berichte über die pharmakognostiscbe Literatur aller Länder. 521

320. Gnignard. L. Über die angebliche Giftigkeit der ungarischen
Bohnen. (Compt. rend., CXLV, 1902, p. 1112.)

Über seine ausserordentlich genauen Beobachtungen gibt der Autor
folgende Tabelle:

Acide cyanhydrique obtenu avec 100 g de Haricots de Java.

IMaceration de 12 heures

Echantillon
no 2

T = + 15°

Echantillon
n« 2

T = + 15"
g

Echantillon n» 3
T = +15° T = +30°

g g

\ 0,130
/ 0,129

0.289
0.290

0,235
0,232

0,234
0,233

Eau renfermant pour 100:

0,25 g d" acide tartrique

\ 0,108
) 0,105

0,216
0,210

0,161
0.166

0,233
0.232

*0,40 g ..

\ 0,088

0,166

I 0,091

0,158

'»•50 g ..

\ 0,082

0,138

0,102

0,165

/ 0.086

0,130

0.108

0.159

1 g

\ 0,055

0.090

0,069

0.102

| 0.054

0,086

0,066

0.097

Der Autor kommt dann zu folgendem Schlüsse:

En resume, sans insister davantage sur des inexactitudes de methode
qu'il etait pourtant bon de relever, je puis dire qu'aticun des echantillons de
Haricots de Hongrie que j'ai examines ne donnait la plus petite trace d'acide
cyanhydrique. On conviendra sans doute que la chose n"est pas entierement
depourvue d'interet, en raison de la repercussion fächeuse que l'opinion con-
traire peut avoir sur le commerce et l'alimentation.

321. Gnignard, L. Über die Blausäuremengen, die Phaseolus lunatus
liefert, die bei Paris kultiviert wird. (Bull, scienc. pharmacol., XIV,
1937, p. 565.)

321a. Gnignard, L. Physiologische Untersuchungen über die
Pfropfung der Blausäurepflanzen. (Annales des Sciences naturelles,
Botanique 1907, ser. 9, T. 6, p. 261—305.)

In den letzten Jahren sind eine Reihe von Arbeiten erschienen, die sich
mit der Frage beschäftigen, ob bei der Pfropfung spezifisch oder generisch
verschiedener Pflanzen Stoffe, die nur in der einen Komponente vorhanden
sind, auch in die andere übergehen, beispielsweise, ob bei der Pfropfung des
Stechapfels auf die Kartoffel das in ersterem auftretende Atropin auch in der
letzteren nachzuweisen sei. Diese Frage ist für die Alkaloide von den einen
bejaht, von den anderen verneint worden ; für gewisse andere Stoffe fällt die
Antwort bestimmter aus, z. B. hat ein Übergang von Inulin aus der Unterlage
in das Pfropfreis nicht nachgewiesen werden können.

Verf. stellte sich die Aufgabe, festzustellen, ob beim Pfropfen einer
blausäurehaltigen Pflanze auf eine davon freie oder bei dem umgekehrten
Verfahren Blausäure aus dem einen Teil in den anderen übertritt. Zu den
Versuchen verwendete er teils Verbindungen der Blausäurebohne ( Phaseolus
lunatus) mit gewöhnlichen Bohnen (Ph. vulgaris var. compressus und Ph. multi-

522 Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 1108

florus), teils solche zwischen gewissen Holzgewächsen aus der Familie der
Rosaceen, in der, wie Verf. früher gezeigt hatte, die Blausäure sehr verbreitet
ist. Er pfropfte Photinia serrulata Lindl. und Cotoneaster frigida Wall., die in
den Blättern und Stämmen {Photinia auch in den Wurzeln) ein Blausäure-
glucosid enthalten, auf Quitten (Cydonia vulgaris), die in der Wurzel gar kein
und in den blattlosen Zweigen sowie im Stamm sehr wenig Glucosid auf-
wiesen. Ausserdem wurde Cotoneaster microphylla Wall., die an der Cyan-
verbindung besonders reich ist, auf C. frigida gepfropft, und endlich diente
Weissdorn (Crataegus Oxyacantha), in dem keine Blausäure nachzuweisen war,
als Unterlage für Cotoneaster bacillaris Wall.. C. affinis Lindl. und C. acutifolia
Lindl. Blausäurefreies Pfropfreis in Verbindung mit blausäurehaltiger Unter-
lage kam nur bei den Bohnen, nicht aber bei den Holzgewächsen zur Beob-
achtung. Die Versuchsergebnisse führten zu folgenden Schlüssen:

Wird eine Blausäurepflanze auf eine blausäurefreie Pflanze, oder um-
gekehrt diese auf jene gepfropft, so tritt das Glucosid weder aus dem Reis in
die Unterlage, noch aus der Unterlage in das Reis über. Wenn eine solche
Wanderung in dem einen oder dem anderen Sinne überhaupt stattfinden
könnte, so hätte man erwarten dürfen, sie bei den Bohnen zu finden, die viel
näher miteinander verwandt sind, als mehrere der Solaneen, bei denen einige
Forscher den Übertritt von Alkaloiden festgestellt haben wollen. Das Er-
gebnis war aber völlig negativ. Die gleiche funktionelle Autonomie des
Pfropfreises und der Unterlage trat im allgemeinen bei den Rosaceen hervor,
obgleich ihnen die Fähigkeit, Blausäureglucoside zu bilden, gemeinsam ist.
Wenn die Glucoside von Photinia, Cotoneaster und Cydonia nicht identisch sind,
was man noch nicht weiss, so erfüllen sie doch zweifellos bei den ver-
schiedenen Pflanzengattun^en dieselbe physiologische Aufgabe. Insofern ist
zwischen diesen Gattungen ein geringerer Uinterschied, als zwischen Phaseolus
lunatus und Pli. vulgaris. Dennoch geht das Glucosid aus dem Photinia- und
dem Ootoneasterreise nicht in die Quittenunterlage über.

Man könnte einwenden, dass das Glucosid zwar in die L^nterlage über-
trete, aber hier zerstört werde; doch bietet sich einmal für diese Annahme
zurzeit kein Anhalt, und sodann würde auch die Tatsache bestehen bleiben,
dass der gegenseitige Einfluss der beiden gepfropften Arten gleich Null ist.

Nur wenn die beiden gepfropften Arten derselben Gattung angehören
und dasselbe Glucosid erzeugen, wie bei der Verbindung von Cotoneaster frigida
mit C. microphylla. kann eine Wanderung dieses Körpers festgestellt werden.
In dem erwähnten Falle war deutlich ein Niedersteigen von Glucosid aus dem
Pfropfreis in die Unterlage nachzuweisen.

Bei der künstlichen Symbiose, die durch die Ptropfung hergestellt wird,
behält also im allgemeinen jeder Teil seinen eigenen Chemismus und seine
Autonomie.

322. Guignard, L. Über das Pfropfen von Cyanwasserstoff
liefernden Pflanzen. (Compt. rend., 1907, p. 1334.)

Auf Grund seiner eingehenden Studien kommt der Verf. zu folgenden
Schlüssen:

]. A la germination, la jeune tige des Haricots developpe. corame on
sait, au-dessus des cotyledons, deux premieres feuilles opposees, simples et
transitoires, tendis <jue les feuilles typiques sont isolees, composees et durables.
Le greffage etait fait au-dessus des deux feuilles primordiales, ä 15 ou 20 cm

109 1 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. 503

de la base de la tige. En general, la soudure compli'te n'exigeait pas plus
dune huitaine de jours.

Lorsqu'on employait comme sujet le Ph. lunatus et comme greffon le
Haricot vulgaire, on laissait se developper sur le premier un ou deux rameaux
feuilles, de facon a lui permettre d'elaborer une certaine quantite de glucoside
cyanhydrique. Sans cette precaution, le sujet, reduit ä sa raeine et h une tige
courte ne portant que les deux feuilles primordiales caduques, n'eüt renferme
qu'une proportion de glucoside trop faible pour que l'experience fut demon-
strative.

Apres la formation de ces rameaux feuilles sur le sujet, et alors meine
que la quantite d'acide cyanhydrique fournie par eux depassait 0,050 g dans
plusieurs cas, aucune trace de ce corps ne put etre obtenue avec le greffon.

Dans la greffe inverse, c'est-a-dire lorsque le Ph. lunatus servrait de
greffon, on n'obtint pas non plus la moindre reaction de l'acide cyanhydrique
avec le Haricot vulgaire, soit que celui-ci füt represenfce simplement par une
tige courte et nue, soit qu'on eut laisse se developper, comme dans la premiere
sorte de greffe, un ou plusieurs rameaux feuilles au-dessous de la soudure, de
facon ä determiner un appel des materiaux elaboros par le greffon.

En aucun cas, dans ces deux sortes de greffes, dont le nombre depassa
la centaine il ne fut possible de constater la migration de l'acide cyanhydrique,
ni du sujet dans le greffon, ni du greffon dans le sujet.

2. Les greffes etudiees chez les Rosacees etaient celles du Photinia
serrulata et de plusieurs Cotoneaster (C. frigida, C. micropJiylla, C. bacillaris, C.
affinis, C acuiifolia). Ces diverses plantes fournissent, comme je Tai montre
l'an dernier, de l'acide cyanhydrique en quantite tres notable et parfois meme
aussi elevee que chez le Laurier-cerise. Le glucoside qui lui donne naissance,
en meme temps qu'ä Taldehyde benzylique et au glucose, est-il identique dans
ces differentes especes, ou bien existe-t-il plusieurs glucosides distincts? On
ne le sait pas encore. C?est la feuille qui en renferme la plus forte proportion;
mais la tige elle-meme en contient aussi dans son ecorce une quantite süffi-
sante pour donner, suivant les especes, de 0,020 ä 0,080 g pour 100 d'acide
cyanhvdrique.

Des deux plantes prises comme sujets, le Cognassier et l'Aubepine. la
premiere renferme egalement une petite quantite de principe cyanhydrique
dans ses jeunes feuilles et dans l'ecorce des rameaux feuilles; mais ce prin-
cipe tend ä disparaitre des que les rameaux ne portent plus de feuilles. Chez
la seconde, les tres jeunes pousses seules donnent les reactions de l'acide
cyanhydrique. Par consequent, la tige de l'une ou de l'aiitre de ces plantes
pouvait etre employee comme sujet, dans le cas actuel, au meme titre que le
Haricot vulgaire dans les experiences precedentes.

D'autre part, en raison meme de la propriete que ces deux plantes
possedent de former normalement. tout au moins dans leurs organes jeunes,
une petite quantite d'un glucoside cyanhydrique, il etait interessant de re-
chercher si les glucosides du meme genre, fabriques par le Pliotinia et les
Cotoneaster, circuleraient plus facilement dans la tige du Cognassier ou de
l'Aubepine que dans Celles des plantes qui sont depourvues de cette propriete
physiologique.

La plupart des greffes ayant ete faites vers la base de la tige du sujet,
ä une hauteur de 5 ä 15 cm, l'analyse eut lieu soit 1 an, soit 2 ou meme
parfois 3 ou 4 ans apres le greffage. Pour rechercher l'acide cyanhydrique, on

524 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. [HO

6corcait la partie du greffon et celle dir sujet adjacentes au bourrelet, en ne
laissant sur ce dernier qu'un anneau d'ecorce ayant ä peine 2 cm de hauteur.

L'examen comparatif des deux lots d'ecorce ainsi prelevee sur le greffon
et sur le sujet n'a permis de constater aucune migration du principe cyanhydrique
du premier dans le second. Et pourtant, ce compose existait parfois en pro-
portion relativement elevee dans le greffon au voisinage immediat du bourrelet.
Par exemple, dans l'une des greffes de Photinia, l'ecorce donnait jusqu'ä
0,078 g pour 100 d'acide cyanhydrique ; au contraire, celle du sujet, constitue
par le Oognassier, n'en fournissait pas la moindre trace. Les choses sernblent
se passer comme si les tissus du Cognassier, habitues en quelque sorte, soit
ä la nature speciale du glucoside qu'ils fabriquent, dans l'hypothese oü ce
compose n'est pas identique a celui du Photinia, soit ä une certaine dose de
ce glucoside, dans le cas oü il est le meme pour les deux plantes, ne pouvaient
s'accommoder ni d'un autre compose cyanique, ni d'une proportion du meme
compose plus elevee que celle qu'ils elaborent dans les conditions normales.

Toutefois, le resultat est different lorsque les individus associes appar-
tiennent, non plus ä deux genres distincts, comme dans les cas dont il vient
d'etre question, mais ä un meme genre, comme par exemple le Cotoneaster
microphylla et le C frigida. Ici, le glucoside cyanhydrique est sürement
identique dans les deux especes et, si Ion greffe la premiere sur la seconde,
on constate nettement, par les analyses comparatives faites sur des pieds
greffes ou non greffes, le passage du glucoside du greffon dans l'ecorce
du sujet.

En resume, lorsqu'une plante ä glucoside cyanhydrique est greffee sur
une autre plante totalement depourvue de ce compose. ou inversement, il n'y
a aucun transport du glucoside ni du greffon dans le sujet, ni du sujet dans
le greffon.

Ohez Celles des Rosacees qui possedent comme caractere physiologique
commun la faculte d'elaborer des glucosides cyanhydriques, la migration de
ces substances n'a lieu entre les individus associes par le greffage qu'autant
que ces individus representent deux especes d'un meme genre et renferment
le meme glucoside.

Malgre les echanges de matieres qui s'effectuent pour la nutrition et le
developpement chez les plantes greffees, certains prinoipes organiques restent
localises dans Tun ou dans l'autre des conjoints: c'est lä un fait que l'etude
des plantes ä acide cyanhydrique me parait mettre tres nettement en evidence.
Dans la Symbiose artificielle que realise le greffage, chaque espece conserve
son chimisme propre et son autonomie.

322a. (xiiignard, L. Die Blausäurebohne. (Kev. di Viticult., 1906.

Der Forscher hat in seiner umfassenden Arbeit über Phaseolus lunatus,
in der auch die gesamte Literatur über die „Blausäurebohnea zu finden ist,
zwar nicht bestimmt ausgesprochen, dass das Linamarin durch Mandelemulsin
nicht gespalten werde; aber er findet doch, dass dessen Wirkung ausser-
ordentlich schwach sei, und äussert Zweifel darüber, dass die von einigen
Beobachtern mit Emulsin erhaltenen Resultate überhaupt auf das Mandel-
emulsin zurückzuführen seien. Man kann danach sagen, dass die Ergebnisse
des Herrn Guignard denen der Herren Jorissen, Dunstan, Henry und Auld in
dieser Hinsicht zum mindesten sehr nahe kommen.

Die verschiedenen Varietäten von Phaseolus lunatus zeigen nach Herrn
Guignard einen verschiedenen Gehalt an Linamarin sowohl wie an dem das

1111 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. 525

Glucosid spaltenden Enzym. Die, welche die grössten Mengen von Blau-
säure liefern, sind auch die enz3^mreichsten ; anscheinend wächst der Enzym-
gehalt mit dem Glucosidgehalt. Immer aber ist eine grössere Enzymmenge
vorhanden, als zur Spaltung des Linamarins nötig ist.

Der Autor hat bei der Entwickelung von Blausäure aus den Samen
von Phaseollis lunatus eine eigentümliche Erscheinung beobachtet. "Wenn man
die Bohnen pulvert, das Pulver einige Zeit bei geeigneter Temperatur in
Wasser macerieren lässt und dann destilliert, so erhält man auch unter den
günstigsten Bedingungen zuerst immer nur einen Teil der Blausäure. Um die
ganze Menge zu gewinnen, muss man zu dem Rückstande der ersten Destil-
lation Bohnen enzym zusetzen, macerieren lassen und zum zweiten Male destil-
lieren. (Die Destillation erfolgt durch Einleiten von Wasserdampf.) Zur Er-
klärung dieses bisher nicht beachteten Verhaltens nimmt Herr Guignard an,
dass die anfänglich der Hydrolyse entgehende Glucosidmenge in den Stärke-
körnern enthalten sei, aus denen sie erst durch das Kochen gelöst und für
die Enzymwirkung zugänglich werde.

323. Guignard, L. Neue Beobachtungen über die Bildung und
die quantitativen Veränderungen des Blausäurebildners des
Holunders. (Bull. Scienc. pharm., XIII, 1906, p. 65 — 7L)

Der Verf. hat seine ersten Untersuchungen über den Holunder durch
weitere ergänzt, die sich auf jüngere und ältere Blätter und die grüne
Rinde verschiedenaltriger Zweige erstreckten; ausserdem wurde der Anwesen-
heit des Enzyms in der Wurzelrinde und den Früchten nachgeforscht. Gegen-
über gewissen Angaben Bourquelots und Danjous stellt Verf. fest, dass sich
in den Blättern mehr von dem Enzym (das Amygdalin spaltet und daher vor-
läufig Emulsin genannt werden kann) vorfindet, als zur Spaltung des Sambu-
nigrins notwendig ist. Wie in anderen Fällen, so ist das Emulsin auch hier
selbst in Organen der Pflanze enthalten, in denen sich das Glucosid nicht
findet. Beim Altern der Blätter zeigt es keine Verminderung, und auch das
Sambunigrin nimmt kaum mit dem Älterwerden der Blätter ab. Allerdings
ergaben die Versuche, dass jüngere Blätter mehr Glucosid enthalten als ein
gleiches Gewicht älterer Blätter; aber dieser Unterschied rührt viel weniger
von einer wirklichen Abnahme des Glucosids mit dem Alter, als vielmehr von
der durch Verdickung der Membranen und Einlagerung von Mineralstoffen
in sie bedingten Gewichtsvermehrung her. Ähnliche Verhältnisse zeigt die
grüne Rinde verschiedenaltriger Zweige. In der Rinde wie in den Blättern
scheint die Menge des Glucosids zu der des Chlorophylls in Beziehung zu
stehen. In den Knospen ist sie zu Beginn des Winters nicht grösser als in
der Rinde. Die Früchte enthalten nur so lange Glucosid, wie sie grün sind;
bei der Reife verschwindet es vollständig.

Die Geringfügigkeit der Abnahme des Sambunigrins in alternden
Holunderblättern zeigt, dass das Glucosid gegen das Ende der Vegetations-
periode nicht aus den Blättern in die Zweige auswandert. Dieses Ergebnis
steht nicht in Übereinstimmung mit den Untersuchungen Treubs an Pangium
edide und Phaseolus lunahis. Der genannte Forscher hatte nämlich gefunden,
dass die Blausäure oder die Verbindungen, in denen sie enthalten ist, in den
Blättern der genannten Pflanzen mit \orschreitendem Alter abnehmen und im
Augenblicke des Blätterabfalles verschwinden. Dieses Verhalten steht im Ein-
klänge mit der von Treub begründeten Anschauung, dass die Blausäure eine
hohe Bedeutung für den Stoffwechsel habe, insofern sie das erste erkennbare

526 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [112

Produkt der Stickstoffassimilation darstelle. Der herrschenden Annahme ge-
mäss wird ein so wertvoller Stoff vor dem Abfallen des Blattes in den Stamm
zurückwandern müssen (wobei allerdings nicht verschwiegen werden soll,
dass die Frage der Blattentleerung vor dem Laubfalle noch keineswegs er-
ledigt ist).

324. Guigues, P. Über Scammoniaharze, (Journ. Pharm, et Chim.,
XXIV, 1907, p. 404.)

325. Guillain und Gy. Zur Giftwirkung nikotinfreier Tabaks-
sorten. (Compt. rend. de la Soc. de Biol., LXIII, 1907, No. 37.) (Ref.
Ceutrbl. f. Pharm, u. Chemie, IV, 1908, p. 535.)

Die beiden Autoren haben Tierversuche mit nikotinfreiem Tabak gemacht
und gefunden, dass der Gebrauch von nikotinfreiem Tabak beim Menschen
schädlich wirkt und Herz-, Leber-, Magen- und Nervenleidenden nicht gegeben
werden sollte.

326. Guillaume, G. und Guerin, F. Verfälschungen von Belladonna-
Blätter n. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 510.)

Immer mehr werden Belladonna-Blätter verfälscht mit Blättern von
Phytolacca decandra L. und Ailanthus glandulosa Dsf. Ferner werden als Ersatz
sehr häufig genommen Scopolia atropoides (= Scopolia camiölica), denen eine
mydriatische Wirkung zukommt.

Verf. gibt dann die genauen Unterschiede der einzelnen Drogen gegen-
über den echten Belladonna- Blättern an.

327. Guiliiermond, A. Bemerkungen über die Struktur des
Aleuronkornes des Gräser. (C. R. Acad. Sei. Paris, 1907, CXLV, p. 768.)

328. Guigues, P. Analyse der Scammoniumharze. (Bull. Soc.
Chim, France, 3/4, IV, 1908, E. 872 ff.)

Die Prüfung des Scammoniumharzes durch seine Ätherlöslichkeit ist aus
den verschiedensten Gründen unzureichend.

Wendet man an Stelle des Äthers aber Terpentinöl, Tetrachlorkohlenstoff
an, so kann mit Leichtigkeit auf die eventuelle Anwesenheit von Verfälschungen
geschlossen werden. Der Grad der Reinheit des Harzes wird sofort durch die
Bestimmung des optischen Drehungsvermögens dargetan,

Verf. gibt dann die verschiedenen Verfahren ap, die zur Ermittelung
des optischen Drehungsvermögens dienen können.

329. Gulli, S. Bergamottöl. Bestimmung der Säurezahl. (Chem.
u. Drugg., LXX, 1907, p. 475.)

330. <■ ii 11 man n, Oscar. Zur Kenntnis der Kollodion wolle. (Zeit-
schr. angew. Chem., XX, 1907, p. 262.)

331. Haar, van der. Das Saponin der Blätter von Polyseias nodosa-
(Pharm. Weekbl., LXV, 1908, p. 1184.)

Dem in den Blättern von Polyseias nodosa gefundenen Saponin der
Analyse und der Moleculargewichtsbestimmung die Formel CgsH^On).

Durch Kochen mit 2 prozentiger Schwefelsäure oder mit 12 prozentiger
Salzsäure wird das Saponin invertiert. Dabei bilden sich annähernd gleiche
Teile Sapogenin, 1-Arabinose und d-Glycose.

3:52. Hada. Mosla japonica, eine Thy molpflanze. (Orient. Drugg.,
1907, p. 15.)

Die bekannte Thymolpflanze Mosla japonica. eine Labiate, war schon
seit langen Jahren in Japan nicht mehr aufzutreiben. Sie enthielt nach des
Verf. Untersuchungen 58 °/0 Thymol.

1131 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 527

In der letzten Zeit gelang es nun Verf., diese Pflanze wieder aufzu-
finden und zwar im Bezirk Sanyo. Er will sie jetzt im grossen anbauen, um
ihren Gehalt an Thymol industriell auszunützen.

333. Haensel, H. Acroidesöl. H. Haensel, Frühjahrsber. 1908.

334. Haensel, H. Das Schöllkraut öl. (Frühjahrsber. 1908.)

Es könnte Schöllkrautöl gewonnen werden aus Chelidonium wams durch
Destillation des getrockneten Schöllkrautes mit gespannten Wasserdämpfen.

160 kg getrocknetes Schöllkraut ergaben 12,72 g ätherisches Öl von
brauner Farbe und angenehmem Geruch.

Das Schöllkrautöl erstarrt bei +30° 0; di0° = 0,9374. Ein Teil ist in
45 Teilen 9 prozentigen Alkohols löslich.

335. HaerteJ, P. I ntersuch ung und Be urteilung von gemahlenem
schwarzen Pfeffer. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs- u. Gennssm.. XIII,
1907, p. 665.)

Erkennung der Verfälschungen wird im wesentlichen auf die Stärke-
untersuchung zurückgeführt.

Bezüglich der Einzelheiten muss auf das Original verwiesen werden.

336. Hafner, B. und Krist, J. Bemerkungen zur Aschenbestimmung
der Drogen mit besonderer Berücksichtigung des Mangangehaltes
derselben. (Zeitschr. d. allgem. österr. Apothekervereins, LXI, 1907, p. 387
u. 399.)

Die neue österreichische Pharmakopoe schreibt den Drogenaschen eine
bestimmte Farbe vor. Die Verff. meinten nun mit Recht, dass die Farbe des
Aschenrückstandes sehr wesentlich abhängt von der Temperaturhöhe, die beim
Veraschen angewendet worden ist.

Es kann vorkommen, dass bei ein und derselben Droge die Veraschung
ganz verschieden ausfällt.

Die Verff. haben zu diesem Zwecke alle in der Pharmakopoe angeführten
und auch einige nicht offizineile Drogen untersucht und vorzüglich auf den
Mangangehalt geachtet.

Im ganzen wurden 156 Drogen untersucht.

Die Verff. fanden, dass grüne Aschenfarbe immer auf einen Mangan-
gehalt hindeutet. Da nun fast alle Drogen mehr oder minder manganhaltig
sein dürften, kann die grüne Farbe der Asche als ein charakteristisches
Identitätsmerkmal nicht in Betracht kommen.

Jener Frage, ob die vielfach beobachteten Wirkungsunterschiede wild-
wachsender und kultivierter Pflanzen, wie Digitalis, Belladonna usw. von dem
Mangangehalt des Ackerbodens abhängig ist, ev. durch Mangan düngung erhöht
werden können, dieser Frage sind die Verff. nicht nähergetreten.

337. Hafner, B. Über die Wertbestimmung von Semen Strychni
und der daraus hergestellten offizinellen Präparate. (Zeitschr. d.
allgem. österr. Apothekervereins, LXI, 1907, p. 327.)

Verf. gibt zunächst eine Kritik der Pharmac. austriaca, ed. VII und ver-
langt eine Abänderung der Prüfungsvorschriften. Er schlägt für Extractum
Strychni folgende Untersuchungsmethode vor:

Man nimmt 1,5 g Extrakt in einem 250-ccm-Kolben unter schwachem
Erwärmen in 5 ccm Wasser auf, setzt dann 5 ccm Ammoniak (10 prozentig)
hinzu, übergiesst nach dem Erkalten das Ganze mit 150 g einer Mischung aus

528 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [114

drei Teilen Äther und einem Teil Chloroform und schüttelt dann ein bis zwei
Stunden lang. Man lässt absetzen, giesst 100 g = 1 g Extrakt vorsichtig ab
und schüttelt in einem Scheidetrichter nach und nach mit 20, 10, 10,5 ccm einer
ungefähr einprozentigen Salzsäure aus.

Die vereinigten salzsauren Auszüge werden mit Ammoniak übersättigt
und dann dreimal mit je 50 ccm der erwähnten Ätherchloroformmischung
ausgeschüttelt.

Die Ätherchloroformlösung wird in einem genau tarierten Kolben auf
dem Wasserbade vorsichtig eingedampft, der Eückstand bei 100° getrocknet
und gewogen. Der gewogene Rückstand mit 100 multipliziert, zeigt die 100 g
des Extraktes enthaltene Alkaloidmenge.

Ebenso werden die Untersuchungen zur Bestimmung des Alkaloidgehaltes
in Tinctura Strvchni angegeben.

338. Hager. Handbuch der pharmazeutischen Praxis für
Apotheker, Ärzte, Drogisten und Medizinalbeamte. Unter Mit-
wirkung von Max Arnold, G. Christ, K. Dietrich, Ed. Gildemeister, P. Janzen,
C. Scriba, vollständig neu bearbeitet und herausgegeben von B. Fischer und
C. Hartwich. 2 Bde., 5 Abdr., mit Holzschnitten.

339. Hager. Handbuch der pharmazeutischen Praxis. Ergänzungs-
band. Bearbeitet und herausgegeben von W. Lenz & G. Arends. Verlag Julius
Springer, 1908.

340. Hager-Mez. Das Mikroskop und seine Anwendung. Hand-
buch der Mikroskopie und Anleitung zu mikroskopischen Untersuchungen;
unter Mitarbeit von Appel-Dahlem, Brandes-Halle, Lochte-Göttingen. 10. stark
vermehrte Auflage. Springer, Berlin 1908, 444 pp. Mit 463 Fig. Preis 10 M.

Das vorliegende Buch umfasst, wie bereits Schindler bei Besprechung
der 9. Auflage (Bot. Centrbl., 96 [1904], p. 419) hervorgehoben hat, die gesamte
praktische Mikroskopie und bietet in kurzer, prägnanter Darstellung alles für
die Praxis Notwendige und Wissenswerte. Es gibt wenig Bücher, in welchen
auf so engem Raum eine solche Fülle wichtiger Kenntnisse geboten wird.
Hervorzuheben ist die originale Darstellung aller Untersuchungen, die beweist,
dass keine Compilation, sondern durchweg eigene Arbeit der Verff. vorliegt.
Alle Anweisungen tragen den Stempel, aus sicher geübter Praxis hervor-
gegangen zu sein.

Der erste Teil des Buches (Theorie des Mikroskops) ist durch Aufnahme
der Mikrophotographie sowie des Ultramikroskops erweitert worden.

Der zweite Teil (Mikroskopische Objekte) enthält wie bisher die gesamte
Nahrungs- und Genussmittelmikroskopie, die botanisch-technische Mikroskopie
(Hölzer, Gespinstfasern, Papier usw.), mykologische Untersuchungen (Haus-
schwamm, Pflanzenkrankheiten, Abwässerbeurteilung) sowie die praktisch
wichtigen bakteriologischen Untersuchungsmethoden.

Im medizinischen Teil sind neben den gerichtsärztlichen Untersuchungen
besonders auch die für den Apotheker wichtigen (Harn usw.) behandelt.

Der zoologische Teil ist, hauptsächlich was die tierischen Pflanzen-
krankheiten, die menschlichen Parasiten und die Untersuchung -von Pelzwerk
betrifft, erweitert.

Mit Recht kann der Herausgeber im Vorwort zu der neuen Auflage
betonen, dass sein Buch an der sieghaften Ausbreitung der Mikroskopie in

\ 1 5| Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 529

allen Gebieten der angewandten Wissenschaft keinen geringen Anteil hat.
Die neue Auflage ist allen Fortschritten der Mikroskopie auf den behandelten
Gebieten gefolgt. Sie ist nicht nur den Praktikern wäimstens zu empfehlen,
sondern eignet sich auch als Lehrbuch bei an Universitäten und technischen
Hochschulen stattfindenden angewandt mikroskopischen Kursen.

Besonders hervorzuheben sind die vielen, ungewöhnlich schönen Text-
figuren.

341. Hal!a-Prag. Zur Beurteilung des Leims und der Gelatine.
<Zeitschr. angew. Chemie, XX. 1907. p. 24 tu

342. Hai ler, A. Alkohol yse des Ricinus öl es. (Chem. Ztg., XXXI,

1907, p. 759.

Ler Verf. hat die Glyceride der Stearin-, Ricinol- und Dioxystearinsäure
durch Alkoholyse mit Methyl-, Äthyl-, Propyl- und Isobutylalkohol unter
Zusatz von 1— 2°/0 Salzsaure erhalten können. Es gelang aber nicht, die
1 leiden isomeren Ricinoleine von Hazura und Grüssner zu bekommen.

Bei geeigneter Oxydation des Meth3'lricinols gelangte er zu einem bei
87° schmelzenden Trioxystearinester Oi9H3S03.

Wenn man den Ricinolsäuremethyl- oder -äthylester zweimal bei ge-
wöhnlichem Drucke destilliert, so tritt gute Spaltung in Heptanal (Önanth-
aldehyd) und Undecylenmethyl bzw. Äthylester ein, nach der Formel:

C18H3303R = C7H140 + OuH10O2R.

343. Haller. A. Über das Wachs der Raph>a-lJ alme von Madagaskar
und über den Arachisalkohol. (Chem. Ztg., XXXI. 1907, p. 387.)

Das Wachs setzt sich im wesentlichen zusammen aus dem Alkohol der
Formel Co0H4oO, dem Arachisalkohol.

Gewonnen wird es als Nebenprodukt in grossen Mengen neben den
Fasern der Baphia-Palme.

Am ähnlichsten ist es dem aus den grünen Blättern der Geranien ge-
wonnenen Produkt.

:U4. Haller. A. Alkoholyse des Leinöles. (C. R. Acad. Sei. Paris,

1908, p. 259.)

Verf. macht folgende Angaben:

Dans nos recherches anterieures sur ralcoolyse des Corps gras, nous
avons etndie le beurre de coco dont les prineipes constitutifs dominants sont
des glycerides d'aeides satures, CnH2n02, et l'huile de ricin qui est caracterisee
par la presence d?un glyceride ä acide-alcool non sature, l'acide ricinoleique,

L"huile de lin constitue un autre type de corps gras, celui des huiles
siccatives.

L'importance que presente cette huile dans 1'industrie fait qu'elle a ete
l'objet de nombreuses recherches sur lesquelles il nous est impossible d"insister
dans cette courte Note.

Remarquons d'abord que, suivant son äge et sa provenance, cette huile
possede, selon des techniciens, des proprietes differentes.

I. Pour nos essais nous avons eu recours ä quatre echantillons mis
obligeamment ä notre disposition par M. Guary. chef de la maison Lorilleux
et Cie, ä Paris.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 6. 5. 11.] 34

530 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [116

Oes huiles possedent les indices d'iode et de saponification suivants:

Origine de Fhuile

Indices d'iode

Indices de
saponification

de Bombay

„ des Etats-Unis . . .
„ de la Plata

176

168
171
172

185
190
189
191

Bezüglich der Zahlenverhältnisse resultiert folgendes:

Sous 15 mm

De pays

O'

Bombay

Etats-Unis

O'

o

Plata
g

Au-dessous de 200° . .
De 200° ä 202° ....
De 2020 ä 2050 ....
Au-dessous de 205° . .

60
333

75
30

50
175
212

30

70
115
240

70

75
195
185

30

498

467

495

485

Ethers

Ind

ices d'iode

Pouvoirs refringents
moleculaires

Palmitate de methyle . .

0

82 059

Stearate de methyle . .

0

91 265

Oleate de methyle . . .

S5

90 870

Linoleate

172

90 475

Linolenate (et iso) . . .

260

90 080

Üonclusion. — Les divers auteurs qui se sont occupes des huiles de lin
ont conclu ä la presence, dans ces huiles, de glycerides des acides myristique,
palmitique, oleique, linoleique, linolenique et isolinolenique.

Si la methode d'analyse que nous avons employee n'a pas permis de
separer et de caracteriser tous les constituants de Fhuile de lin, eile a cepen-
dant conduit ä isoler deux autres acides de la serie saturee: l'acide stearique
qui existe dans cette huile en quantites appreciables et l'acide arachique qu"on
ne trouve qu'en tres petites proportions.

345. Halpera, Karl. Über das Härten von Ölsäure nach Knorre.
(Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 845.)

Der Verf. gibt an, dass bei dem Verfahren von Knorre keine feste Fett-
säure entsteht, sondern dass das Eeaktionsprodukt aus Ölsäure, Formaldehyd
und Zinkstaub nur eine Lösung von Zinkseife und Fettsäure ist.

346. Hanausek, T. F. Die .Seifenbeeren. (Pharm. Post, XL, 1907,
p. 359 u. 375.)

In einer mit zahlreichen, sehr guten Abbildungen geschmückten Arbeit
zeichnet der Verf. den mikroskopischen Aufbau und die Entwickelungsgeschichte
der Samen von Sapindus saponaria und Sapindus trifoliatus.

117] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 531

Die Samen dieser beiden Species sind es, die vor allem als Seifenbeeren
in den Handel kommen.

347. Hanausek, T. F. Die Ipeknolle. (Zeitschr. allgem. österr. Apoth.-
Ver., LXI, 1907, p. 149.)

Die kalifornische Haarwuchsknolle, als Ipeknolle im Handel bekannt,
ist dem Verf. zufolge die bekannte Klettenwurzel aus der Familie der Compositen.

Das Haarwaschmittel besteht aus Wurzel und Stengelstücken, die mit
Soda uckocht sind, dann eingedampft und getrocknet worden sind.

Zur Parfümierung ist eine Art Eau de Cologne hinzugesetzt.

348. Hannig, E. Über pilzfreies Lolium temulentum. (Bot. Ztg., 1907,
p. 2.1.)

Der Verf. fasst seine Resultate wie folgt zusammen:

Pilzfreie Lolium-Fvüchte treten in vielen Gegenden nur sehr selten auf
(Prag, Strassburg). in anderen relativ häufig (Cambridge, Upsala). Sie haben
zweierlei Ursprung: der eine Teil entsteht an pilzhaltigen Pflanzen dadurch,
dass vereinzelte Körner nicht infiziert werden, der andere stammt von pilz-
b'^en „Rassen", die aus pilzfreien Rückschlägen ihren Ursprung genommen
haben.

Die pilzfreien Früchte lassen sich äusserlich nicht von den pilzhaltigen
unterscheiden, sondern nur bei mikroskopischen Untersuchungen erkennen.
Körner, die zu diesem Zwecke durchschnitten sind, können ohne weitere
Vorsichtsmassregeln eingepflanzt werden und wachsen, auch wenn sie des
grössten Teiles ihres Endosperms beraubt waren, zu normalen Pflanzen aus.
Zeigen die Früchte auf einem Querschnitt keinen Pilz, so ist die ganze daraus
erwachsene Pflanze pilzfrei. Obwohl vier Generationen pilzfreier Pflanzen im
Freien kultiviert wurden, trat niemals eine Neuinfektion auf. Pilzfreie und
pilzhaltige Pflanzen scheinen gleich ertragsreich zu sein.

Durch Vergleich von pilzfreien und pilzhaltigen Früchten Hess sich fest-
stellen, dass letztere ein Alkaloid enthalten, erstere nicht. Die Giftigkeit von
Lolium temulentum beruht also auf der Anwesenheit des Loliiim-Pilzes.

349. Hanriot, M. Über die wirksamen Substanzen in Tephrosia
Vogelii. (C. R. Acad. Sei. Paris, OXLIV, 1907, p. 151.)

Le tephrosal est un liquide tres odorant. ayant pour formule brüte
1 HltjO, volatil, mais en se polymerisant. II commence ä distiller dans le
vide vers 60° (H = 0,02), mais la majeure partie du liquide passe plus haut
sans qu'il soit possible d'avoir un point d'ebullition absolument fixe. Ce corps
est un peu soluble dans l'eau, plus soluble dans l'alcool et surtout dans l'ether,
la benzine et le chloroforme.

Sa Solution aqueuse reduit ä froid le nitrate d'argent ammoniacal et la
liqueur cupropotassique; eile ramene au rouge la fuchsine decoloree par l'acide
sulfureux. Ce sont lä les reactions des aldehydes; toutefois je n'ai pu isoler
de produit defini par l'action sur ce corps de la Phenylhydrazine, de l'hydro-
xylamine ou de la phenylsemicarbazide.

La tephrosine forme de petits prismes brillants, fusibles ä 187°, volatils
ä haute temperature avec decomposition partielle; eile peut etre di stille e dans
le vide sans s'alterer.

Par ebullition avec l'eau, eile est un peu entrainee, comme le montre le
pouvoir toxique de la Solution. File est presque insoluble dans l'eau, peu
dans l'alcool ä 96° (0,542 pour 100 en poids ä 19°; 3,89 pour 100 ä l'ebullition):

34*

532 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [118

eile est plus soluble dans Tacetone (6,02 pour 10(1 ä 18.5°) et surtout dans le
chloroforme (8,60 pour 100 ä 18,5 °).

La glycerine en dissout un peu : dans les experiences de toxicite que je
relaterai plus tard, je me suis servi de Solutions alcooliques ou glycerinees
que j'additionnais de beaucoup d'eau; ces Solutions, bien que tres etendues,
precipitaient partiellement et devenaient opaleseentes.

La tephrosine n'est pas azotee: eile repond ä la formule U31H.260i(1.
C'est un corps neutre, ne donnant pas de glucose par hydrolyse. II n'est
pas reducteur; par l'action de l'acide azotique ä chaud, il m"a fourni exclusive-
ment de l'acide oxalique.

En Solution chloroformique, il s'unit ä froid avec le brome: cette Solution
evaporee laisse un residu jaune, tres soluble dans l'ether dont il est precipite
par addition d'alcool methylique. 11 cristallise, mais difficilement, et fond ä 133°.

Divers auteurs ont dejä isole des Legumineuses, et meme d'un Tephrosia,
des principes analogues doues de proprietes toxiques sur les Poissons. Notons
la timboi'ne, retiree par Pf äff du Timbo, melange du Tephrosia toxicaria et du
Paullinia pinnata: la derride et la pacbyrizide, isolees par Van Sillevold du
Derris elliptica et du Pachyrizus anqulatus. Le Tableau suivant montrera que
ces corps, malgre des analogies tres grandes, ne sont pas identiques.

Tephrosine Timboine Derride Pacbyrizide

C31H26O10 C34H3o010 O33H30C10 C30Ho4O10

Fond ä 187° Fond ä 83° Fond a 730 p0nd ä 81°

Derive brome fond Derive brome fond
ä 1330 ä 2590

Tres peu sol. en ether Sol. en ether Sol. en ether Tres sol. en ether

Insol. en alcalis „ Sol. en alcalis Sol. en alcalis

350. Hanui, Joseph. Ein charakteristisches Cnterscheidungs-
merkmal des Kokosfettes von Butter und anderen Fetten und
Ölen. (Zeitschr. f. Nahrungs- u. Genussmittel, XIII, 1907. p. 18 ff.)

351. Harlay, V. Vorkommen von giftigem Sternanis im Handel.
(Journ. Pharm. Chim., VI, 1908, p. 112.)

Der Verf. fand in einer Sendung Sternanis Früchte von Illicium
religiosum.

Diese Früchte sind ausserordentlich giftig. Obgleich der Bau der giftigen
Früchte dem der guten im wesentlichen glich, konnten doch folgende Merk-
male gefunden werden.

1. Es fanden sich die stark bauchigen Samen vom giftigen Strauch,
während die Samen von Illicium verum flach allgeplattet sind.

2. Die Innenseite der Carpelle ist beim falschen Sternanis viel blasser als
bei der echten Droge.

3. Beim Kauen eines verdächtigen Stückes empfindet man sofort den
starken scharfen Geschmack, der absolut nicht anisartig ist.

352. Harries, C. und Hinnnelmann, A. Die Einwirkung von Ozon auf
Citral. (Berl. Ber., 1907, p. 2883.)

353. Harries, ('. Über Kautschuk. (Zeitschr. f. angew. Chemie, XX.
1907, p. 1265.)

Verf. hat die Einwirkung von Salpeteressigsäureanhydrid und Stickstoff-
dioxyd auf Kautschuk studiert. Ferner hat er untersucht den Abbau des

1191 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 533

Parakautschuks durch Ozon und auch Versuche gemacht zur Synthese des
8-Ringes, den der Stammkohlenwasserstoff des Kautschuks enthält.

354. Harrison, E. F. Bemerkungen über die Bestandteile von
Combretum Sundakum. (Pharm. Journ, IV. 1908, p. 2(5, 52.)

Versuche, die der Verf. vornahm, um festzustellen, welches das wirk-
samste Prinzip der Anti-Opiumpflanze, der Combretaeeae Combretum Sundaicum
sei, verliefen negativ.

Weder Stamm noch Blätter zeigten Alkaloide. In den gleichen Organen
waren Glykoside nicht eindeutig nachweisbar.

Dem Verf. gelang es, sowohl aus der rohen wie auch aus der gerösteten
Droge, ein Harz zu isolieren, das sich teilweise in Äther löst.

Verf. glaubt, in ihm vielleicht den Wert der Droge annehmen zu dürfen.

355. Hart. Rohrkrankheit in Trinidad. (Int. Sugar. Journ., IX,
1907, p. 35.)

356. Hart. J. E. Einige vorläufige Bemerkungen über die
Giftigkeit von Digitalis- Blättern. (Pharm. Journ.. XXVI, 1908, p. 440.)

An Froschversuchen gelang es dem Verf., die bedeutend stärkere Giftig-
keit der einjährigen Blätter gegenüber der verminderten Wirkung der zwei-
jährigen Pflanzen festzustellen.

Durch starkes Trocknen büsst die Droge ganz ausserordentlich an Wirk-
- mkeit ein.

Man soll Stiel und Blattrippe nicht mit zum Infus verwenden, da auch
hierdurch die Wirksamkeit wesentlich beeinträchtigt wird.

357. Härtel, F. Untersuchungen und Beurteilung von ge-
mahlenem schwarzen Pfeffer. (Zeitschr. f. Untersuch, d. Nahrungs- u.
Genussmittel. XIII, 1907. p. 665 ff.)

358. Bartwich, C. Weitere Bemerkungen über Semen Strophanthi.
(Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 1017.)

359. Hartwich, C. Die Sedimentiermethode, ein Hilfsmittel
zur mikroskopischen Untersuchung von Pulvern. (Schweiz. Wochenschr.
Chem. u. Pharm., XLV, 1907, p. 544—551.)

Seit Jahren befolgt der Verf. folgende Methode, um stärkereiche Pulver
zu untersuchen:

Die Stärke wurde durch Kochen mit verdünnter Salzsäure verzuckert.
Darauf wurde der Rückstand mit überschüssiger Natronlauge behandelt. Der
im Spitzglas sich ansammelnde Bodensatz wurde mikroskopisch untersucht.

Sehr erleichtert wird diese Untersuchung nun, wenn man die sich an-
sammelnden Schichten einzeln untersucht. Hierzu benutzte der Verf. kleine
Gläser.

Aus diesen Versuchen ging klar hervor, dass man für die Methode keine
allgemeine Norm für den Ort angeben kann, an dem sich die ähnlichen Be-
standteile der verschiedenen Pulver absetzen. Je nach der Art des Pulvers
setzen sich die einzelnen Bestandteile verschieden ab. Das Auffinden der
einzelnen Bestandteile wird dadurch ermöglicht, dass sie sich in bestimmten
Zonen doch immer mehr als in anderen anreichern.

Die Untersuchungen erforderten ausserordentliche Präzision und Vorsicht
im Schliessen, da leicht Verunreinigungen und Verfälschungen ein anderes
Bild der Analyse hervorrufen können.

360. Hartwich, C. Noch einmal die indischen Bohnen. (Schweiz.
Wochenschr. Chem. u. Pharm., XLV, 1907, p. 75—77.)

534 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [120

Verf. weist erneut darauf bin, dass der Gehalt an Blausäure bei den
Samen von Phaseolus lunatus auf 100 g zwischen 0,25 mg bis 250 mg schwankt
und dass die letzteren infolgedessen als menschliches Nahrungsmittel kaum
zulässig seien. Da die in den Handel kommenden indischen Bohnen oft mit
anderen Sorten vermischt sind, empfiehlt es sich, auf die charakteristischen
Merkmale zu achten. Ein wichtiges mikroskopisches Merkmal besteht darin,
dass bei den giftigen Bohnen die sog. Trägerzellen, d. b. die Zellen der zweiten
Schicht der Samenschale, nach oben kelchartig verbreitert sind und keine
Kristalle führen, während sie bei gewöhnlichen Bohnen prismatische Form
besitzen lind Oxalatkristalle enthalten. Ein weniger scharfes, aber leichter
wahrzunehmendes Trennungsmerkmal besteht in der verschiedenen Färbung
der sog. Zwillingshöckerchen, die der Mikropyle gegenüber auf der einen
Seite der Nabelspalte liegen und bei der Gartenbohne weiss, bei der indischen
Bohne dagegen gelb und etwas durchscheinend gefärbt sind. Immerhin ist
dieses letztere Merkmal, zu dessen Beobachtung schon eine einfache Lupe
genügt, von geringerer Genauigkeit als das zuerst erwähnte.

361. Hartwich, C. Über Smilax aspera. (Schweiz. Wochenschr. Chem.
u. Pharm., XLY, 1907, p. 134.)

Der Verf. gibt zuerst eine eingehende Schilderung des Habitus der
Pflanze. Dann weist er nach, dass das Gewächs bereits den Römern und
Arabern bekannt war.

Hierauf wird eine eingehende Schilderung des anatomischen Aufbaues
gegeben.

Bezüglich der Einzelheiten muss ihrer Reichhaltigkeit wegen auf das
Original verwiesen werden.

362. Hartwich, C. Einige Bemerkungen über die Sarsaparillen.
(Ber. D. Pharm. Ges., XVII, 1907, p. 250.)

363. Hartwich, C. Noch einmal die indischen Bohnen. (Schweiz.
Wochenschr. Chem. u. Pharm., XLV, 1907, p. 75.)

Arragou hatte bei der Untersuchung von Bohnen 4,68 mg Blausäure
nachgewiesen.

Der Verf. stellt fest, dass die von dem obengenannten Forscher unter-
suchten Bohnen aus weisslichgelben Früchten von PJiaseohis lunatus und Phaseolus
multiflorus stammten.

In einigen Mustern verschiedenen Ursprunges fanden sich Samen von
Dolichos Lablab, die aber nie giftig sind.

Bohnen mit Blausäure müssten stets zurückgewiesen werden.

364. Hartwich, C. Eine zweite falsche Senegawurzel. (Pharm.
Centralh., XLIX, 1908, p. 749.)

Von Italien aus werden falsche Produkte als Senegawurzeln in den
Handel gebracht. Verf. untersuchte die Materialien ganz genau und glaubt
es entweder mit einer Polygaiacee oder mit einer Rubiacee zu tun zu haben.
Für letztere Annahme spricht der Umstand, dass keine Markstrahlen nach-
zuweisen waren.

365. Hartwich, €. Eine falsche Senegawurzel. (Schweiz. Wochen-
schrift, 1908, p. 537.)

366. Harvey, P. J. Ätherisches Salbeiöl. (Chem. u. Drügg., LXXIII,
1908, p. 393.)

367. Hatscher, R. H. Cactus grandiflorus und Cactin oder Cactina.
(Journ. Am. Med. Assoc, 1907, p. 1021.)

121] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 535

Unter der Bezeichnung Cactin oder Cactina kommen Präparate in den
Handel, die den wirksamen Bestandteil von Cactus grandiflorus enthalten
sollen. Sie werden als Herztonicum in sehr kleinen Dosen empfohlen.

Der Verf. zeigt nun. dass diese Produkte vollkommen wertlos sind,
auch dann noch, wenn das Hundert- bis Tausendfache der vorgeschriebenen
Dosierung angewendet wird.

368. Hänssemiann. Über einige Erfahrungen mit Esbachs
Reagens. (Journ. d. Pharm. Elsass-Lothr., 1906, p. 318.)

369. Heary, T. A. und Auld, S. M. J. Das Vorkommen von blau-
säurehaltigen Glykosiden in Futtermitteln. (Chem. Ztg., XXXII,
1908, p. 1179.)

Glykoside, die durch Einwirkung von Enzymen Blausäure entwickeln,
sind in den Javabohnen, den Leinölsamenpresskuchen und in den Samen des
Paragummibaumes nachgewiesen worden.

Will man die Menge der zu erhaltenden Blausäure bestimmen, so muss
zuerst das blausüurehaltige Glykosid durch ein passendes Lösungsmittel aus-
gezogen werden.

Dann wird durch Säure hydrolisiert und dann kann man die freiwerdende
Blausäure bestimmen.

370. Hebert, Alexandre. Über die wirksamen Stoffe einer
afrikanischen Strychnos- Art, Strychnos aculeata. (Journ. de Chim. et Pharm.,
1908, p. 151.)

Die vom Verf. untersuchten Früchte von Strychnos aculeata Soler.
stammen von der Elfenbeinküste. Die Analyse gab folgende Zahlen:

Hülle Kern

°/o °/o

Feuchtigkeit . . . 0,60 3,10

Mineralstoffe . . . 7,44 2,25

Stickstoffkörper . . 3,18 11,05

Fettstoffe .... 2,73 7,72

Gummi 8,25 19,25

Zellulose 42,40 21,60

Bezüglich der näheren Einzelheiten sei auf das Original verwiesen.

371. Heekel, E. Über eine neue Sarcocaulon- Art von Süd-Mada-
gaskar (Sarcocaulon Currali nov. spec.) und über die harzhaltige Rinde
der Sarcocaulon- Arten. (Compt. rend., 1908, p. 906.)

372. Hefelmann. R. Über den Coffeingehalt des marktgängigen
Rohkaffees und eine Modifikation des Juckenack-Hilgerschen
Verfahrens der Cof f einbestimmung. (Zeitschr. f. öffentl. Chem., XIV.
1^08, p. 448.)

•173. Heidnschka, A. und Herb, 0. Über Kakaofett. (Pharm. Oentralh.,
XLIX, 1908, p. 375.)

374. Heikel, G. Eine Fehlerquelle in der Untersuchungs-
methode der U. St. P. für Pf ef ferminzöl. (Ann. Journ. Pharm., LXXX.
1908, p. 96.)

375. Heikel, Gnnnar. Neue Bestimmungsmethode für Pflanzen -
alkaloide mit Kaliumquecksilberjodid. (Chem. -Ztg., XXII, 1908, p. 1149,
1162, 1186, 1212.)

37li. Heinz, R Lehrbuch der Arzneimittellehre. Jena, 1907, 426 pp.

536 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. [122

377. Heijnsbergen, S. van. Giftwirkungen einiger Pflanzen-
auszüge. (Pharm. Weekbl., XLIV, 1907, p. 85.)

Verf. wandte die Methode von Verschaffelt an, um die Wirkung von
Pflanzengiften zu bestimmen, soweit sie auf das lebende Protoplasma ein-
wirken.

Als giftig wurden festgestellt folgende Auszüge aus Pflanzen:

Blätter von
Taxus baccata Prunus laurocerasus

Trollius europaeus Arctostaphylos Uva TJrsi

Eranthis Mentalis Atropa Belladonna

Datum metalloiäes Digitalis purpurea

Rosmarinus officinalis Salvia officinalis

Cucurbita Pepo Petasites officinalis

Wurzeln von
Lychnis chakedonica Raphanus niger

Wurzeln und Kraut
Saponaria officinalis Cicuta rirosa

Blätter und Wurzeln
Aconitum Napellus A. Lycoctonum A. variegatum

Samen von
Brassica nigra Ricinus sanguineus

Rinde von
Quillaja Saponaria
TJngiftig waren Auszüge aus den

Blättern von

Quercus spec. Juglans regia

Melissa officinalis Mentha piperita

Origanum vulgare

des Krautes von

Euphorbia palustris

der Wurzel von

Polygonuni bistorta

der Knolle und Blätter von

Arum maculatum.

378. Hellströni, Arthur. Untersuchung über die Bewertung von
Asa foetida. (Farmac. Notisbl , 1907, p. 175.)

379. Henderson, J. Über Öl von Mentha viridis. (Pharm. Journ., LXXIX,
1907, p. 506.)

380. HendrK'k, J. Der Gehalt der Zimt- und Cassiarinde an
Calciumoxalat. (Analyst, XXXII, 1907, p. 14—18.) #

Verf. konnte feststellen, dass eine Probe gemahlenen Zimts den auf-
fallend grossen Aschengehalt von 1 1,2 °/0 besass, von dem 4,84 % Kalk in
Form von Calciumoxalat waren. Er untersuchte im Anschluss daran eine
grössere Anzahl von Zimt- und Cassiaproben verschiedener Herkunft und
konnte dabei ermitteln, dass beim Zimt stets ein hoher Gehalt an Calcium-
oxalat vorkommt, der bei 5 Proben zwischen 2,5 °/0 und 3,81 % schwankte
und bei einem wilden Oeylonzimt sogar auf 6,62 °/0 stieg. Im Gegensatz dazu
ist der Gehalt an Oalciumoxalat bei den Cassiarinden ein viel niedrigerer und
beträgt durchschnittlich nur 0,05% bis 1,34 °/0, so dass der höchste Gehalt an

1231 Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 537

Calciumoxalat in den Cassiaproben stets weit hinter dem niedrigsten der Zimt-
proben zurückbleibt. Verf. empfiehlt diesen grossen Unterschied in dem Gehalt
an Calciumoxalat zur analytischen Unterscheidung von Zimt und Cassia, die
jetzt, wenn beide in Pulverform vorliegen, ziemlich schwierig ist.

K. Krause.

381. Henri, V. Studie über die Coagulation des Kautschuk
Latex. iSoc. biol., LX, 1906, p. 700.)

Die .Resultate, zu denen der Verf. gelangt, können wie folgt zusammen-
gefasst werden :

1. Der dialysierte Kautschukmilchsaft wird durch Methyl- und Amylalkohol
weder koaguliert und noch agglutiniert.

2. Ebensowenig wirken die einwertigen Metallsalze wie K, Na, NH4 und
alle Alkali.

3. Die Salze der alkalischen Erden bewirken in Konzentrationen, welche
höher als die der molecular-normalen Lösung sind, Agglutination,
während die Salze der Schwermetalle Mn, Fe, AI, Ni, Co, Cu, Kn und
Pb dies schon in einer Konzentration von u/.;>o bewirken.

4. n/2 Säuren bewirken Agglutination und einzelne in höherer Konzen-
tration Beginn von Coagulation, Trichloressigsäure schon in schwacher
Konzentration, Aceton bewirkt die Coagulation des Saftes zu einem sehr
elastischen Gerinnsel.

5. Wird der Milchsaft mit einem einwertigen Metallsalz und Alkohol
behandelt, so tritt, wenn die Salzkonzentration 10 — 20 °/0 beträgt, Agglu-
tination ein, bei Verwendung von Salzen, zweiwertiger Metalle tritt
schon bei n/ioo Lösungen durch Alkohol Coagulation ein, ebenso bei
einer Kombination von Säure und Alkohol.

6. Alkalescenz des Gemisches n/i0ooo lässt bei einer Versuchsanordnung, bei
der sonst Agglutination auftreten würde, diese ausbleiben, in Fällen, wo
sonst Coagula gebildet werden, würde es nun zur Agglutination kommen.
38la. Henry, T. A , Dnnstan, R. W. und Auld, S. J M. Cyanogenesis in

den Pflanzen. IV. Über Phaseolunatin und die ihn begleitenden
Enzyme im Flachs, der Kassave und der „Limabohne". (Proc. Roy.
Soc, 1907, Ser. B, LXXIX, p. 315 ff.)

Auch in ihrer neuesten Arbeit halten Dunstan und Henry an dem Namen
Phaseolunatin fest. Ihre Untersuchungen knüpfen an die Angabe Kohn-
Abrests an, dass die „Javabohnen" (die in Java von Phaseolus lunatus erzeugten
Samen) nicht ein einziges Blausäureglucosid, sondern deren mehrere enthalten,
und dass keins von diesen bei Hydrolyse mit heissen verdünnten Mineralsäuren
oder mit den in den Bohnen enthaltenen glucosidspaltenden Enzymen Aceton
liefert (neben Zucker und Blausäure), was doch von den Verff. als eine
charakteristische Eigentümlichkeit des Phaseolunatins erkannt worden war.
Bei deshalb angestellter Prüfung von Javabohnen vermochten die Verff. nicht
die Gegenwart irgend eines anderen Bläusäureglucosids ausser Phaseolunatin
in ihnen zu entdecken, und sie fanden dessen Eigenschaften vollsändig über-
einstimmend mit denen des Phaseolunatins, das sie aus wilden oder verwilderten
Phaseolus lunatus von Mauritius gewonnen hatten. Sie konnten ihre früheren
Angaben bestätigen, wonach dieses Glucosid bei der Hydrolyse Aceton liefert.
Im übrigen bezeichnen die Verff. das Phaseolunatin noch einmal ausdrücklich
als identisch mit dem Linamarin Jorissens. Ja sie bestätigen sogar jetzt die
Richtigkeit der bereits von Jorissen und Hairs für ihr Linamarin gemachte

538 Berichte über die pharraakognostische Literatur aller Länder. [124

Angabe, dass das Emulsin der Mandeln dieses Glucosid nicht zersetze, auch
für das in Javabohnen enthaltene Glucosid, während sie früher (wie auch
Jorissen selbst in einer früheren, schon 1884 erschienenen Mitteilung) die
gegenteilige Angabe gemacht haben. Die Beiseiteschiebung des Namens
Linamarin erscheint nach alledem als ein wunderliches A7erfahren; wir setzen
ihn im folgenden an die Stelle von Phaseolunatin.

Das Emulsin, das Amygdalin und Salicin zersetzt, ist also ohne Wirkung
auf das Linamarin, wogegen die Enzyme von Phaseolus limatus, Flachs und
Kassave (in der, wie die Verff. gezeigt haben, gleichfalls Linamarin enthalten
ist, alle drei Glucoside zersetzen. Die Autoren Dunstan, Henry und Auld
geben auch die Erklärung für diese Erscheinung: die genannten drei Pflanzen
enthalten zwei Enzyme, eins vom Emulsintypus, das andere vom Maltasetypus.
Die Zersetzung des Linamarins wird wahrscheinlich durch die Maltase ver-
anlasst.

Fischer hat (1898) gezeigt, dass die glucosidspaltenden Enzj^me sich in
zwei Gruppen sondern, indem die einen die «-Alkyläther der Hexosen, die
anderen die stereo-isomeren ß-Alkyläther dieser Zucker zersetzen. Der typische
Vertreter der ersteren ist die Maltase der Hefe, der der zweiten das Emulsin
der Mandeln. E. F. Armstrong fand dann (1903), dass die bei der Hydrolyse
entstehenden Zucker im ersten Falle die «-Formen der Hexosen, im zweiten
Falle die ß-Formen der Hexosen sind. In beiden Fällen verändern sich die
zuerst in der Lösung entstandenen Hexosenformen allmählich, wenn sie sich
selbst überlassen sind, oder sofort, wenn eine Spur Alkali hinzugefügt wird,
und es entsteht eine ausgeglichene Mischung der «- und ^'-Formen der Hexosen;
wir haben hier die Erscheinung der Mutarotation, die Lowry (1899) zuerst in
dieser Weise erklärte.

Die Verff. Hessen nun Malzdiastase auf Linamarin wirken und fanden,
dass es dadurch unter Bildung von Blausäure und Dextrose zersetzt wird.
Linamarin ist also ein «-Glucosid. Weiter ermittelten sie auch, dass bei Ein-
wirkung des Enzyms der Javabohnen auf Linamarin Dextrose entsteht, und
die von ihnen beobachteten Änderungen des Drehungsvermögens der durch
das natürliche Enzym teilweise hydrolisierten Linamarinlösung nach Zusatz
von Ammoniak führen zu dem Schlüsse, dass der gebildete Zucker «-Dextrose
und das Glucosid selbst der «-Dextroseäther des Acetoncyanhydrins ist. Das
Linamarin ist bisher das einzige in der Natur vorkommende «-Glucosid, denn
alle anderen Glucoside ergaben, so weit sie geprüft worden sind, bei voll-
ständiger Hydrolj^se durch Enzyme die ^-Formen der Zucker.

Die Identität des «-Enzyms von Phaseolus lunatus mit Hefemaltase lässt
sich nicht sicher behaupten, da «-Methylglucosid und Maltose durch Hefe-
maltase rascher zersetzt werden als durch das «-Enzym von Ph. lunatus,
während dieses wieder Linamarin schneller spaltet, als es Hefemaltase tut.
Da das aus den Javabohnen gewonnene Enzympräparat auch Amygdalin und
Salicin spaltet und in dieser Hinsicht dem Emulsin der Mandeln gleicht, so
muss es auch ein ^-Enzym enthalten, das mit Emulsin identisch oder ihm
ähnlich ist. Ein Gemisch dieser beiden Enzyme muss sich auch in der Kassave
und im Flachs finden. Da endlich auch Hefe alle drei Glucoside zu spalten
vermag, so ist bereits von Henry und Auld (1905) geschlossen worden, dass
sie ausser Maltase ein emulsinähnliches Enzym enthält. Zu dem gleichen Er-
gebnis ist Guignard gekommen.

1251 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. 539

382. Herissey, E. Über die chemische Natur des blausäure-
abspaltenden Glykosides der Samen von Eriobotrya japonica. (Journ.
Pharm. Chem., XXIV, 1906, p. 330.)

38:!. Herissey, H. Über das Vorkommen des Prulaurasins in
Cotoneaster microphylla Wall. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p, 4~:'>.)

383a. Herissey, H. Über das Prulaurasin, ein blausäurebildendes
kristallinisches Glucosid aus den Blättern des Kirschlorbeers.
(Journ. Pharm, et chim., XXIII, 1906, p. 514.) — Über das Auftreten des
Prulaurasins in Cotoneaster microphylla Wall. (Journ. pharm, et chim., XXIV.

1906, p. 537—539.)

Dass der Holunder (Sambucus nigra) namentlich in den Blättern ein
blausäurebildendes Glucosid führt, hat zuerst Guignard gezeigt. Gleich nach
ihm veröffentlichten auch die Chemiker Bourquelot und Danjou eine Mit-
teilung über dieses Glucosid und gaben ihm den Namen Sambunigrin (Journ.
de pharm, et de chim., 1905, XII, p. 119—221 und 385—391). Es kristallisiert
in langen, farblosen Nadeln, löst sich leicht in Wasser und kaltem Alkohol,
ziemlich leicht in Essigäther, ist linksdrehend ( — 76,3°) und schmilzt bei 151
bis 152°. Seine Formel ist C14H17N06. Die gleiche Zusammensetzung hat
ein von Herissey aus den Blättern des Kirschlorbeers und denen von
Cotoneaster microphylla isoliertes Glucosid, das der Entdecker Prulaurasin nennt.
Es bildet auch farblose Nadeln, schmilzt bei 120—1220, dreht links (—52,4°)
und ist leicht löslich in Wasser, Alkohol und Essigäther. Beide Glucoside
sind isomer dem Amygdonitrilglucosid Fischers (1895). Alle drei Glucoside
liefern bei Gegenwart von Emulsin oder verdünnten Säuren Glucose, Blau-
säure und Benzaldehyd. Bei Behandlung mit rauchender, heisser Salzsäure
geben sie Glucose und Phenylglycolsäure. Das Fischersche Glucosid gibt
Links-Phenylglycolsäure, aus dem Prulaurasin entsteht nach Caldwell und
Courtauld (Journ. of the Chem. Soc, 1907, p. 671) inaktive Phenjdglycolsäure.

384. Herissey, H. Presence de l*amygdonitrileglucoside dans
le Cerasus padus Del. (Journ. de Pharm, et de Chim., 6. ser., XXVI, 1907,
p. 194-198.)

Verf. konnte bei seinen Untersuchungen über die Glucoside der Blätter
und Rinde des Kirschlorbeers ein Glucosid im reinen kristallinischen Zustande
gewinnen, das er auf Grund seiner charakteristischen, in der vorliegenden
Arbeit weiter ausgeführten Eigenschaften mit dem schon früher von E. Fischer
entdeckten Amygdonitrilglucosid identifizieren zu können glaubt.

K. Krause.

385. Herissey, H. et Lefebvre, Ch. Sur la presence du raff in ose
dans le „Taxus baccata L.". (Journ. de Pharm, et de Chim., 6. ser., XXVI,

1907, p. 56—62.

Es ist dem Verf. gelungen, eine Raffinose, wie sie bisher aus Melasse.
Baumwollsamen und Eucalyptus manna bekannt war, in kristallisiertem Zu-
stande auch aus den vegetativen Teilen, vorwiegend aus Blättern und jungen
Stengeln von Taxus baccata L. zu isolieren. Im Verlauf seiner Untersuchungen
konnte er bei Taxus auch noch ein neues Glucosid nachweisen, das er als
Taxikatin bezeichnet und auf das er in einer anderen Arbeit näher eingeht.
In der vorliegenden Arbeit beschäftigt er sich besonders mit einem Vergleich
der Raffinose und anderer Zuckerarten, sowie mit dem gleichzeitigen schon
mehrfach festgestellten Vorkommen von Saccharose und Raffinose bei der-
selben Pflanze. K. Krause.

540 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [126

386. Herissey, H. Über das Prulaurasin. dai. blausäurelief ernde
Glykosid der Blätter von Prunus laurocerasus. (Arch. Pharm., CCXLV,
1907, p. 534.

387. Herissey, H. und Bourdier, L. Über ein neues durch Emulsin
spaltbares Glykosid aus Erythraeu centaurium Pers., das Erytaurin.
(Journ. Pharm. Chim., II, 1908, p. 252.

388. Herissey, H. und Bourquelot, Em. Neue Untersuchungen über
das Bakankosin. (Compt. rend., CXLVII, 1908, p. 750.)

389. Herrmann, F. Zur Kenntnis des Rottlerins. (Arch. Pharm.,
1907, p. 154.)

390. Hertkorn, J. Die Darstellung von Kampfer. (Apoth.-Ztg.,
XXIII, 1908, p. 891.)

391. Herty, Ch. H. Die optische Drehung von Terpentinölen
(Journ. Soc. Chem. Ind., XXVI, 1907, p. 847.)

Die Harze einzelner Bäume von Pinus führen während einer Saison
flüchtige Öle mit sehr verschiedenen Eigenschaften. Verf. konnte rechts- und
linksdrehende Öle nachweisen.

Die Drehung war stets in jedem Falle während des ganzen Jahres
konstant.

392. Herty, Ch. H. Die optische Drehung von Terpentinölen.
(Ann. Journ. Chem. Soc, XXX, 1908, p. 863.)

393. Herty, Ch. H. und Dickson, W. S. Das flüchtige Öl von Pinus
serotina. (Journ. Amer. Chem. Soc, XXX, 1908, p. 872—874.)

Das Öl von Pinus serotina wird ebenso wie das anderer Pirms-Arten in
Nordamerika zur Terpentinölbereitung verwendet. Das Harz des genannten
Baumes gleicht dem von Pinus heterophylla. Wird es der Wasserdampf-
destillation unterworfen, so hinterbleibt ein hellgelber Rückstand. Das wasser-
freie Öl selbst stellt eine helle Flüssigkeit von angenehmem, limonenähnlichem
Geruch dar. Seine Konstanten sind folgende: Spezifisches Gewicht bei 20°
0,8478, spezifische Drehung bei 20° —105° 36', Brechungsindex bei 20° 1,4734,
Säurezahl 0, Verseifungszahl 1,54, Jodzahl 378.

394. Herty, Ch. H. und Dickson, W. S. Das flüchtige Öl von Pinus
serotina. (Journ. Amer. Chem. Soc, XXX, 1908, p. 872.)

Die Öle sind nach den Angaben des Verfs. ziemlich identisch mit denen
der gewöhnlichen longleaf pin und Puba pine.
Als wirksames Prinzip erwies sich Pinen.

395. Herzog, J. und Hancn, V. Zur Kenntnis des Pimpi nellins.
(Arch. Pharm., 1908, p. 402.)

396. Herzog, R. 0. und Ripke, 0. Notiz über die Umwandlung von
Zimtsäure in Styrol durch Schimmelpilze. (Ztschr. physiol. Chem.,
LVII, 1908. p. 43 ff.)

397. Hesse, 0. Rhapontikwurzel und österreichischer Rha-
barber. (Journ. prakt. Chem., LXXVII, 1908, p. 321.1

398. Hesse. 0. Beitrag zur Kenntnis der Flechten und ihrer
charakteristischen Bestandteile. 11. Mittig. (Journ. Soc. Chem. Ind.,
XXVI, 1907, p. 388.

399. Hildebrandt, H. Über das pharmakologische Verhalten von
Oxy benzyltanninen. (Münch. med. Wochenschr., 1907, p. 1219.)

400. Hildebrandt, H. Zur Pharmakologie der Chinatoxine. (Arch.
f. experim. Pathol. u. Pharmak., LIX, 1908, p. 127.

127] Berichte über die pharmakognustische Literatur aller Länder. 54 1

401. Hookauf, J. Über Safranverfälschungen. (Zeitschr. allgem.
österr. Apoth.-Ver.. XLV. 1907. No. 24.)

Verf. hat sich besonders mit Safran beschäftigt, der mit Zucker beschwert
war. Derselbe lässt bei einer oberflächlichen äusseren Untersuchung nichts
erkennen, ist aber schon dadurch gekennzeichnet, dass er beim Eintauchen in
Wasser nicht wieder zur Oberfläche gelangt, sondern untersinkt. Die mikro-
skopische Untersuchung zeigt dann eine reiche Bedeckung der einzelnen
Narben mit Kristallen und anderen kristallinischen Aggregaten, deren Natur
durch die chemische Untersuchung dann noch genauer festgestellt werden
kann. Im allgemeinen schwankt die Zuckermenge im Safran zwischen 14.0
und 15,3°/0. Von anderen Beobachtungen bei der Untersuchung von Safran-
narben führt Verf. noch die Beschwerungen mit Schwerspat an, ferner mit
Borax sowie Anhaften von Schimmel oder auch von Milben. K. Krause.

402. Hoffinann, L. Über vegetabilische Talgsamen. (Seifensieder-
Zeitung, 1908, p. 332.)

403. Holfert. 0. .1. Volkstümliche Namen der Arzneimittel,
Drogen und Chemikalien. Eine Sammlung der im Volksmunde gebräuch-
lichen Benennungen und Handelsbezeichnungen. 5. verb. u. vermehrte Auf-
lage. Verlag Julius Springer, 1908.

404. Holm. Der innere Bau von Stamm und Laub bei Ruellia
ciliosa Pursh., Phlox ovata L. und Spiyelia marylandica L. (Americ. Jouru.
Pharm., LXXIX, 1907. p. 51.)

Die genaue und ziemlich umfangreiche Arbeit gibt eingehende Schilde-
rungen vom anatomischen Aufbau sowohl der Blatt- als auch Stammesorgane
von den im Titel genannten Arten.

Zwei sehr gute Abbildungen erläutern die gefundenen Resultate.

405. Holm. Th. Cypripedium pubescens Willd. (Mercks Rep., XVli.
1908, p. 00.)

406. Holmes, E. H. Kaloonüsse. (Pharm. Journ.. LXXVIII, 1907,
p. 241.)

Die Kaloonüsse stammen dem Verf. zufolge von der Euphorbiabee
Aleurites Fordii Hemsl. Sie liefern vor allem das chinesische Tung- und
Holzöl. Verf. gibt dann genaue Beschreibungen der Früchte.

Bezüglich der Einzelheiten sei auf das Original verwiesen.

407. Holmes, E. M. Das chemische Tung- oder Holzöl. (Pharm.
Journ., LXXVIII, 1907. p. 128.)

Das chinesische Tung- oder Holzöl soll nach den eingehenden Unter-
suchungen von E. M. Holmes nicht abstammen von Aleurites eordata R. Br..
sondern von Aleurites Jordii Hemsl., eventuell auch von Aleurites trisperma.

408. Holmes, E. M. Eine neue Varietät der Bukkoblätter. (Pharm.
Journ., LXXIX, 1907, p. 598.)

Eine neue Art von Bukkoblättern. die auf dem Londoner Markt aufge-
taucht ist, hat der Verf. untersucht. Sie ist mit den Blättern von Barosma
betulina leicht, zu verwechseln. Nur durch ihre eiförmige Gestalt ermöglichen
sie eine Unterscheidung.

Ferner findet sich im Geruch noch neben dem charakteristischen Bukko-
geruch ein Nebengeruch nach Citronellen.

Die Blätter stammen von Baros,na piilchella.

Eine Verwechselung mit Blättern von Barosma betulina verhindert am
ehesten der Nebengeruch.

542 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. |128

409. Holmes, E. M. Die Antiopiumpflanze. (Pharm. Journ., LXXVÜI,
1907, p. 77.)

■±10. Holmes, E. M. Über eine Antiopiumpflanze aus Chungking.
(Pharm. Journ., LXXIX, 1907, p. 358.)

Verf. hat eine der Pharmaceutical Society in London übergebene Pflanze
die als Antiopiumpflanze in China benutzt wird, untersucht.

Verf. hält das Gewächs, das unfragmentarisch vorliegt für eine Composite
aus der Gattung Blumea. Wahrscheinlich Blumea laciniata DO.

Der einheimische Name is Chung-Asing.

Ein Schlinggewächs, die aus den Ebenen bei Kuala Lumpen in Selangor
stammt, wird dort als Antiopiumpflanze angepriesen.

Verf. identifizierte das Gewächs mit der Combretaceae Combretum
sundaicum.

Er gibt eine genaue Beschreibung und Abbildung der Pflanze.

Alkaloide waren nicht nachzuweisen, dagegen ein Gerbstoff.

411. Holmes, E. M. Handelsbenzoe. (Pharm. Journ., LXXV1II.
1907, p. 128.)

412. Holmes, E. H. Maquibeeren. (Pharm. Journ., LXXIX. 19(17,
p. 639.)

Es handelt sich um die Früchte der bekannten Tiliaceo Aristotelia Maqui
L'Herit. Diese werden auf dem Londoner Markt angeboten.

In Chile werden sie zum Färben des Weines benutzt.

Auch sonst finden die Früchte die weitgehendsten Anwendungen als
Gurgelwasser, Fiebermittel usw.

413. Holmes, E. M. Sisiak. (Pharm. Journ., LXXVIII, 1907, p. 128.)
Der Eingeborenenname Sisiak bezieht sich auf eine Siliacee Dianella

oerulea, die in der Umgebung von Singapore zum Vergiften von Ratten in
Reisfeldern angewendet wird.

414. Holmes, E. M. Bemerkungen über Origanum von Cypern.
(Pharm. Journ., LXXIX. 1907, p. 378.)

Verf. konnte feststellen, dass die Origanum-Avt, aus welcher auf Cypern
ätherisches Öl mit 82,5 °/0 Carvacol gewonnen wird, Origanum maior anoides L. ist.

415. Holmes, E. M. Bemerkung über afrikanisches Ammoniacum.
(Pharm. Journ., LXXIX, 1907, p. 570.)

Verf. gibt eine Aufzählung der verschiedenen Ferula-A.rten, die als
Stammpflanzen von Ammoniacum angesprochen worden sind.

Er beschreibt Ferula communis L. var. brevifolia Stapf und gibt eine
Abbildung dieser Species.

410. Holmes. M. Drogenverfälschungen und Schutzmassregeln
dagegen. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 353 ff.)

Mit der grossen Verfeinerung der Drogen geht Hand in Hand eine
wissenschaftlichere Arbeit der Verfälscher.

Für diese Tatsache führt der Verf. zahlreiche interessante Beispiele an.

Die vom Verf. vorgeschlagenen Schutzmassregeln gegen diese Ver-
fälschungen sind in erster Linie für englische Verhältnisse berechnet, aber
auch für den deutschen Pharmazeuten von Wert.

Verf. will die gleichen Normen, die für Nahrungsmittel und offizinelle
Drohen im Gesetze geltend sind, auch übertragen haben auf technische Drogen.
Auf den Schildern soll zur Orientierung des Publikums verzeichnet werden.
ob es sich handelt um eine Handels-Medizinal- oder chemisch reine Ware.

1291 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. 543

Bezüglich der anderweitigen Ausführungen muss auf das Original ver-
wiesen werden.

417. Holmes, E. M. Über Punaria Ascochingae. (Pharm. Journ., 1908,
p. SO und 316.)

Als Asthmacarbon ist in den letzten Jahren in Tablettenform ein Mittel
in den Handel gekommen, das das Pulver der Composite Pimaria Ascochingae
sein soll. Eine derartige Pflanze ist vollkommen unbekannt. Die Droge ent-
stammt einer Butisieae (Composite), die in Argentinien heimatet. Es ist Brachy-
cladus StucJcertii. Als Herba und Radix Brachycladi Stuchertii ist sie in Mercks
Bericht bereits im Jahre 1910, p. 145 aufgeführt und beschrieben. Diese
Pflanze soll von den Eingeborenen im Absud als Mittel gegen die Bergkrank-
heit verwendet werden.

Versuche ergeben, dass sie in Zigarettenform den Asthmatikern Linderung
verschafft.

In der Wirkung ähnelt sie Herba Cannabis indicae, obgleich sie weniger
stark ist. Störende unangenehme Nebenwirkungen fehlen dieser Pflanze völlig.

418. Holmes, E. M. Bemerkungen über Handelsmacis. (Pharm.
Journ., XXVII, 1908, p. 652.)

419. Holmes, E. M. Über Johore-Ipecacuanha. (Pharm. Journ, XXVI,
4, 1908, p. 54.)

420. Holmes, E. 31. Bemerkungen über Patchouli. (Pharm. Journ.,
LXXX, 1908. p. 349.)

Als Stammpflanzen für Patchouli sind die folgenden anzusehen :
I. Patchouli des europäischen Handels:

Pogostemon Patchouli Pellet.
IL Patchouli von Bombay (Patcha):

Pogostemon Heyneanns Benth.

III. Patchouli von Java (Dilem) :

Pogostemon cornosus Miq.

IV. Blütenloser Patchouli von Java:

Pogostemon Patchouli Pellet.
V. Patchouli von Nordindien und Assam:

Microtaenia cymosa Premi.

421. Hooper. D. Antiopiumblätter. (Pharm. Journ., LXXVIII. 1907,
p. 453.)

Verf. sagt, dass das Laub der Sapindaceen-Gattung Mitragyna gegen
Opiumsucht vielfach Verwendung finde.

Es handelt sich vor allem um die Blätter von Mitragyna parvifolia Korth.

Gefunden wurden in dein Gewächse Gerbstoffe und ein kristallinischer
Alkohol (0,15%).

422. Hooper, David. Über den Balsam von Hardwickia pinnata.
(Pharm. Journ., 1907, p. 4.)

423. Hooper, D. Das Gummiharz des Mangobaumes (Mangifera
indica). (Pharm. Journ., LXXVIII, 1907, p. 718.)

424. Hooper, D. Amphicome Emodi. (Pharm. Journ., LXXIX, 1907,
p. 50(5.)

425. Hooper, l). Bemerkungen über indische Drogen. (Pharm.
Journ., XXVI, 1908, p. 161 ff.)

Garcinia Coroa Roxb. erzeugt als immergrüner Baum eine Gummigutti-
art, die in Färbung heller ist als die von Garcinia Morella. Sie ist wasser-

544 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. |130

unlöslich und liefert mit Terpentin gemischt einen sehr guten Firnis für
metallische Oberflächen.

Garcinia pedunculata Roxb. hat saure Früchte, aus denen nach Trocknung
und Zerkleinerung ein Beizmittel, ein Futterzusatz und ein erfrischendes Ge-
tränk gewonnen werden kann.

Mesua ferrea L., der indische Eisenholzbaum, gibt ein Öl, das gegen
Eheumatismus und Geschwüre Verwendung finden kann.

Crozophora rerbascifolia Willd. liefert in den Samen ein Öl, das am
Persischen Golf als Ersatz für Butter genommen wird.

Jatropha Curcas 1

Xylia dolabriformis \ liefern neue Kinoextrakte.

Parkia insignis \

Bombax malabaricum wird mit Mehl als Kuchen gebacken genossen.

Es werden dann noch einige weniger wichtige Drogen angegeben.

426. Hooper, D. Ex tr actum Cannabis indicae. (Pharm. Journ.,
XXV11, 1908, p. 347.)

427. Hoojier, I>. Über das Öl von Lausonia alba- (Pharm. Journ.,
XXVI, 1908, p. 781.)

428. Hoppe, E. Die Grössenbestimmung der Fragmente des
Kakaopulvers. (Zeitschr. f. angew. Chemie, XXI, 1, 1908. p. 1140.)

Verf. hat in Würfeln gepresstes Kakaopulver mikroskopisch auf die
Urüsse der einzelnen Pulverbestandteile hin untersucht und für dieselben
folgende Werte gefunden:

Maximalläage: 38,1 t. i

Minimallänge: 10.4 ,« \

Maximalbreite: 20,1 u /

Minimalbreite: 8,8 ,« \

Maximaldicke: 4,0 ,u j

Minimaldicke: 2,2 fj. \

Wünschenswert wäre es unbedingt gewesen, wenn der Verf. auch die
anatomische Beschaffenheit der einzelnen Pulverfragmente angegeben hätte.

K. Krause.

429. lloughton. Ell. und Hamilton, H. C. Eine pharmakologische
Studie über Cannabis americana. (Amer. Journ. Pharm., LXXX, 1908, p. 16.)

430. Hovorka, 0. von und Kronfeld. A. Vergleichende Volksmedizin.
Eine Darstellung volksmedizinischer Sitten und Gebräuche, An-
schauungen und Heilfaktoren, des Aberglaubens und der Zauber-
medizin. 28 Tafeln mit 500 Textabbildungen, Stuttgart 1908.

Ein Monumentalwerk ersten Ranges, das die medizinischen Sitten und
Gebräuche der Völker schildert.

431. Hoyer, E. Über fermentative Fettspaltung. (Zeitschr. f.
physiol. Chemie, L, 1906, p. 414—435.)

Wie wir schon seit einigen Jahren wissen, enthält der Ricinussame ein
Ferment, welches Fett spaltende Wirkung hat und z. B. das neutrale Öl des
Ricinussamens in Glycerin und Ricinusölsäure zerlegt. Von dieser Eigen-
schaft hat man in der Technik Gebrauch gemacht. Bei näherer Beobachtung
wurde bemerkt, dass die Wirksamkeit des Ferments nicht sofort, sondern erst
nach einiger Zeit sprungweise einsetzt. Wie sich herausstellte, hängt das
damit zusammen, dass für den Vorgang die Anwesenheit einer gewissen Menge
Säure notwendig ist. Dieselbe kann entweder in geeignetem Verhältnis zu-

im Mittel 23,0 u
im Mittel 10,13 //
im Mittel 3,0 u.

131] Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 545

gesetzt werden, was ein sofortiges Aktivieren des Ferments zur Folge hat,
oder sie bildet sich nach einiger Zeit im Samen selbst, ohne künstliche Zutat.
Durch quantitative Versuche ist vom Verf. festgestellt worden, dass ein
Optimum für die Menge der entstandenen Samensäure existiert, bei welchem
die Spaltwirkung des Ferments am stärksten ist und durch weitere Säure-
bildung im Samen nicht vermehrt wird. Die Samensäure verdankt ihre
Entstehung einem besonderen Enzym, welche durch Erhitzen auf 30 — 35° ver-
nichtet werden kann. Dasselbe ist im Gegensatz zum Fett spaltenden Ferment
wasserlöslich, da im wässerigen Auszug von Ricinussamen die Bildung von
Säure beobachtet wird. Die entstandene Samensäure ist keine einheitliche
Substanz, sondern besteht aus einem Gemenge von viel Milchsäure mit Ameisen-
säure und Essigsäure.

Weitere Versuche des Verls, beschäftigten sich mit der Isolierung des
Fett spaltenden Enzyms. Da es wahrscheinlich war, dass dasselbe im Proto-
plasma des Samens enthalten ist, wurde zuerst eine Methode angewandt, bei
welcher es sich um eine Trennung des Protoplasmas von den anderen
schwereren Samenbestandteilen handelt. Es wurden dazu Öllösungsmittel von
geeignetem spezifischen Gewicht benutzt, wie Gemische von Benzin, Äther usw.
mit Chloroform, Tetrachlorkohlenstoff und anderen Substanzen. Das suspen-
dierte Protoplasma kann von den unwirksamen Teilen, die sich zu Boden ge-
setzt haben, verhältnismässig leicht getrennt werden, doch verliert die Methode
durch die Benutzung so teurer Mittel an Wert für die Technik. Bei den
Versuchen, einen anderen Weg zur Isolierung des Ferments zu finden, ist
vom Verf. eine neue wichtige Beobachtung gemacht worden. Es zeigte sich,
dass durch Behandlung der Ricinussamen mit Wasser und Auspressen eine
„Pressemulsion" von grosser Aktivität erhalten werden kann. Wenn also
zwar das Wasser nicht als Lösungsmittel des Ferments benutzt werden kann,
so lässt es sich doch, ohne dass das Enzym geschädigt wird, zur Bildung
einer wirksamen Emulsion gebrauchen. Künstlicher Säurezusatz zur Aktivierung
ist überflüssig, da das wasserlösliche Säure bildende Enzym ebenfalls in die
Emulsion übergegangen ist und die Bildung der Samensäure veranlasst, Man
kann die f er m enthaltige Emulsion „als dicke Sahne" von dem Wasser trennen.
Sie ist sehr empfindlich gegen Zugabe eines Säureüberschusses. Anderseits
aber kann sie bei langem Auswaschen mit Wasser die ihr zuerst anhaftende
Samensäure und damit ihre Wirksamkeit allmählich einbüssen. Durch gewisse
Salzzusätze, worunter besonders Mangansulfat zu nennen ist, wird hinwiederum
ihre Aktivität beträchtlich erhöht. Bei einer technischen Verwertung der be-
schriebenen Methode zum Zwecke von Fettspaltungen spielt auch noch die
Frage der Haltbarkeit des dargestellten Ferments neben vielen anderen Punkten
eine wichtige Rolle.

432. Huchard, H. Digitalis und Digitalin. (Bull, scienc. pharmac.
XIV, 1907, p. 105.)

433. Huerre, R. Über Gummi des Mandelbaumes. (Journ. Pharm.
Chim., XXVII, 1908, p. 561.)

Der Verf. untersuchte die von ihm gesammelten Gummiabsonderungen
eines alten Mandelbaumes.

Besonders reich traten diese Absonderungen im Herbst auf. Der Verf.
fand in der Asche Eisen.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 6. 5. 11.] 35

546 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. [132

Bei der Hydrolyse des Gummis bekam er zwei Zuckerarten, Galaktase
und Arabinose.

Was die Löslichkeit angeht, unterscheidet sich der gewonnene Gummi
sehr von dem des Aprikosen- und Zwetschenbaumes. Chemisch aber steht er
beiden sehr nahe.

Eine ausführliche Tabelle schildert die Ergebnisse der Arbeit.

434. Hurrier, P. und Perrot, E. Die hauptsächlichsten Ver-
fälschungen und Ersatzmittel der Ginsengwurzel. (Bull, scienc.
pharmac, 1906, p. 317.)

435. Hurrier, Paul. Matiere medicale et Pharmacopee Sino-
Annamites. Vigot Freres, Paris 1907.

436. Ilatys, T. Über die chemische Natur und Struktur der
Stärke. (Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 489.)

437. Iljin, L. F. Zur Frage der Konstitution des Tannins.
(Journ. russ. phys.-chem. Ges., 1908, p. 740.)

438. Itallie, J. van und Nieuwland, C. H. Über die Samen und das
Öl von Moringa pterygosperma. (Arch. Pharm., p. 159 — 160.)

Der Samenkern enthält 70 %, die Samenschale 30 °/0 des ganzen Samen-
gewichtes. Die Kerne geben mit Petroläther 36,4 % fettes öl. Die so ent-
ölten Kerne zeigen 6,08% Wasser, 9,4 o/0 Stickstoff, 58,75% Eiweiss, 5,45 %
Zellulose, 5,55 °/0 Asche. Das Behenöl hat ein spec. Gewicht bei 15° von
0,9120. Bei 10—12° wird ein fester Teil abgeschieden. Das hiervon abge-
nommene Öl hat ein spec. Gewicht bei 15 ° von 0,9129.

439. Itallie, J. van und Nieuwland, C. H. Über die Samen und das
Öl der Vogelbeeren. (Arch. Pharm., 244, 1906, p. 164 ff.)

Durch Petroläther bekamen die Verff. aus den Samen der Vogelbeere
(Sorbus aucuparia) ein fettes Öl. Der vom Öl befreite Samen enthielt 9,2 °/0
Wasser, 5,44 °/0 Stickstoff, 34% Eiweiss, 13,2% Zellulose, 5,21 % Asche,
24,2 °/0 Kohlehydrate. Das gewonnene Öl trocknet sehr rasch an der Luft und
stellt eine süsslich schmeckende dünnflüssige, schwach gelbbraune Flüssigkeit
dar vom spec. Gewicht 0,9317.

440. Ito, E. Über das japanische Farbholz Doss. (Journ. of the
College of Engineering Tokyo, IV, 1908, p. 57.)

Als Stammpflanze des bekannten japanischen Farbholzes „Doss" ist
Hex Mertensii Maxim., ein immergrüner Baum aus der Familie der Stechpalmen
(Aquifoliaceae), anzusprechen.

Der Baum gedeiht auf Ogasawara und auf Ckinawa.

Wird das zu Pulver zermahlene Extractum des Holzes dieses Baumes in
Wasser aufgelöst und wird dann die Lösung in Vakuum eingedampft und der
Rückstand in Alkohol gelöst und endlich diese Lösung stehen gelassen, so
bekommt man einen gelben Körper, der durch Reinigung in Form gelber
Nadeln auskristallisiert. Sein Schmelzpunkt liegt zwischen 271 und 272°.

Die Formel lautet C15H905.

Dieser Körper wird als „Dossetin" bezeichnet. Er ist in heissem
Alkohol, Benzin und Äther schwer löslich.

In konzentrierter Schwefelsäure löst er sich mit dunkelgelber Farbe.

441. Ivanow, S. Über die Kohlenhydrate der Steinnusssamen
(Coelococcus und Phytelephas). (Journ. Landw., LVI, 1908, p. 217.)

1331 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 547

442. Jadin, J. und Boncher. V. Ursprung und Erzeugung des
Gummis bei Moringa. (Bull. Scienc. Pharmacol., XV, 1908, p. 247.)

Die in den Tropen und Subtropen heimische Leguminose Moringa
pterygosperma ist eine als gummiliefernd sehr bekannte Pflanze. Die Verff.
schildern genau wie und wo die Gummibildung stattfindet. Sie fassen ihre
Resultate wie folgt zusammen:

„Mit Ausnahme der verholzten und verkorkten Elemente zeigen im
Stamme von Moringa fast alle Zellvvandungen das erste Stadium der Gummi-
bildung, aber beim Fortschreiten dieses Prozesses entstehen auf zwei völlig
verschiedenen Wegen gummiführende Hohlräume. Bildet sich im Innern, im
Marke ein gummiführender Hohlraum, der nicht mit der Aussen weit in Ver-
bindung steht, so ist dieses das normale Verhalten. Gummiführende Räume,
die mit der Umgebung in Kommunikation stehen, sind pathologische Er-
scheinungen. Sie entstehen infolge von Verwundungen.

442a. Jacqiiemin, Alb. Über die Lokalisation der Alkaloide bei
den Leguminosen. (Vergleichende mikrochemische Untersuchungen.)
(Recueil de l'Institut botanique Leo Errera [Universite de Bruxelles], 1906,
t. Ü. p. 257—297.)

Seit den Untersuchungen Clautriaus lässt sich annehmen, dass Alkaloide
in allen Pflanzengruppen, sowohl bei den Phanerogamen, wie bei den
Thallophyten, Moosen und Farnen vorkommen. Unter den Blütenpflanzen
finden sich Alkaloide bei den dicotylen Familien der Papaveraceen, Solanaceen,
Ranunculaceen, Leguminosen, Umbelliferen, Compositen, Labiaten, Asclepiada-
ceen, Fumariaceen, Loganiaceen und anderen. Von Monocotylen sind nament-
lich die Liliifloren (Colchicum, Veratrum, Narcissus, Clivia) und die Orbidaceen
zu nennen.

Verf. hat eine Reihe von Leguminosenarten (5 Mimosoideen, 2 Uaesal-
pinioideen und etwa 30 Papilionoideen) nach den von Errera und seinen
Schülern angewandten Methoden mikrochemisch auf das Vorkommen von
Alkaloiden und deren Verteilung in den verschiedenen Pflanzenorganen unter-
sucht und die Ergebnisse mit denen anderer Forscher verglichen. Der Nach-
weis der Alkaloide gelang bei 20 Arten, darunter Pithecolobium Saman,
2 Akazien. Sophora tomentosa, 6 Lupinus, Spartium juneeum, Labumum vulgare,
2 Cytisus, Genista canariensis, 2 Erythrina u. a. Die Verteilung des Alkaloids
in der Pflanze zeigt überall die gleichen allgemeinen Züge. Die alkaloid-
reichsten Gewebe sind die Epidermis, das Parenchym und das Mark. Von den
verschiedenen Organen pflegen die Cotyledonen, sowohl die im Samen ein-
geschlossenen, wie die ergrünten, am meisten Alkaloide zu enthalten, während
die Samenschale immer frei davon ist. Auch an den Stellen, die der Sitz sehr
kräftiger Lebenstätigkeit sind, an den ober- und unterirdischen Vegetations-
punkten, finden sich reichliche Mengen von Alkaloiden.

Diese für die Leguminosen gewonnenen Ergebnisse stehen in Überein-
stimmung mit der Mehrzahl der bei den anderen Familien, z. B. den Solanaceen,
gemachten Beobachtungen.

443. Jeaneard, P. und Satie, P. Analytische Bemerkungen über
die Lavendelöle. (Bull. Soc. chim. Franc, III, 4, 1908, p. 155.)

444. Jentys, E. Sur la nature chimique et la structure de
l'Amidon. (Cracovie Acad., 1907, 50 pp.)

35*

548 Berichte über die pkarniakognostisehe Literatur aller Länder. [134

44."). Joachim, G. Über ein neues Santatolpräparat, das Thyresol.
(Therap. d. Gegen w.. 1908, p. 527.)

440. Jonescn, D. und Loewi. 0. Über eine spezifische Neben-
wirkung der Digitaliskörper. (Arch. f. experiment. Path. u. Pharmakol.,
L1X, 1908, p. 71.

447. Jong, A. W. K. de. Über den Ölgehalt der Pflanzen. Teyss-
mannia, 1900, No. li.

Folgendes Referat ist entnommen Schimmel, „Berichte", 1908, p. 96 ff. :
„Der Verf. hat in Buitenzorg (Java) Untersuchungen über den Ölgehalt
der Pflanzen in den einzelnen Entwickelungsstadien begonnen, um zu er-
mitteln, wann die für die Ernte günstigste Zeit ist. Es wurden zu diesem
Zwecke Vergleichsdestillationen (Wasserdestillation) mit verschieden weit in
der Entwickelung vorgeschrittenem Material vorgenommen, also beispielsweise
bei Blättern alle ersten (von der Zweigspitze aus gerechnet), zweiten, dritten,
vierten usw. Blattpaare für sich destilliert, um zu sehen, ob der Ölgehalt mit
der Entwickelung des Blattes Schritt hält. Dabei wurden die Blätter dem
Gewicht und der Anzahl nach bestimmt. Ferner wurden noch andere Pflanzen-
teile auf ihren Ölgehalt geprüft, um zu ermitteln, ob ihre Destillation sich
lohnt oder nicht. Wir verweisen bezüglich der Einzelheiten auf die Original-
arbeit. Die bisherigen Studien erstreckten sich auf Patchouli und auf Lemon-
gras. Von ersterem untersuchte Verf. die Singaporevarietät (Pogostetnon
tomentosus Hassk.?) und stellte fest, dass das Öl hauptsächlich in den drei
ersten, d. h. in der Entwickelung jüngsten Blattpaaren gebildet wird, dann aber
konstant bleibt, obgleich das Blatt noch bedeutend an Gewicht zunimmt.
Auf das Drehungs vermögen hat das Alter der Blätter so gut wie keinen
Einfluss.

Es wurden noch die Blattstiele sowie die Wurzeln auf ihren Ölgehalt
untersucht. Dieser ist bei den ersteren sehr gering, bei den Wurzeln etwas
höher. Das Wurzelöl war spezifisch schwerer als Wasser und mithin anders
zusammengesetzt als das Blätteröl.

Verf. kommt nach seinen Versuchen zu dem Schluss, dass es
empfehlenswert ist, die Pflanzen zu schneiden, wenn sie 5 Blattpaare haben,
und nur die Blätter zu destillieren, da der geringe Ölgehalt der Stiele deren
Verarbeitung nicht lohnt.

Das Öl frischer Blätter soll nicht brauchbar sein. Zur Verbesserung
des Geruches vermischt man die Singaporeblätter mit Java-Dilemblättern, auch
sollen sie nach dem Trocknen einer Gärung unterworfen werden. Über alle
diese Fragen stellt Verf. weitere Mitteilungen in Aussicht.

Aus den nachstehend angeführten Untersuchungsresultaten einer Reihe
von Ölen, die der Verf. aus verschieden vorbehandeltem Material gewonnen,
und wovon er uns in lieben würdigster Weise Muster zugesandt hatte, scheint
hervorzugehen, dass eine verschiedene Behandlungsweise der Blätter vor der
Destillation bei den einzelnen Varietäten von ungleicher Wirkung ist. Während
bei Singaporeblättern die aus frischem, getrocknetem oder fermentiertem
Material erhaltenen Öle nur wenig voneinander abweichen, war eine ver-
schiedene Vorbehandlung der Javablätter von ganz bedeutendem Einfluss auf
die Beschaffenheit der Öle.

135J

Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder.

549

Be-
schaffen-
heit der
Blätter

Farbe Geruch

di

5"

«D

nD20°

S.Z.

E.Z.

1 frisch

ge-
trocknet

fer-
mentiert

4 frisch

hell-
gelb

frisch

hell-
gelb

ge-
trocknet

schwach

fer-
mentiert

stark fer-
mentiert

I. Singaporeöle.
0,9655

schwacher
Patchouli-
geruch

0,9587

0,9628

IL Javaöle.

terpen-

0,9344

artig

schwacher

0,9450

Patchouli-

geruch

kalmusöl-

0,9168

artig

kalmusöl-

0,9229

artig

schwacher

0,9210

l atcnoun-
geruch

— 150 20'

+ 30 15'

+ 2«32'

00 26'

510 18'

1,50820

1.5

2,0

500.58'

1,50766

—

1,1

520 33'

1,50784

0,9

1,5

1,50050

0,8

9,9

1,50483

—

5,8

1,50030

—

6,1

1,50058

0,8

4,9

1 ,50207

—

5,0

Löslichkeit

in

90 proz.

Alkohol

löslich in 0,8
Vol., bei Zu-
satz von 1,5
bis 5 Vol.
trübe, dann
wieder klar

löslich in 6

bis 7 Vol. und

mehr

lösl. in 7 Vol.
und mehr

löslich in 0,3
Vol. u. m.
(löslich in ca.
10 Vol. u. m.
85 proz. Al-
kohols)

löslich in 0,6
Vol. u. m.
(nicht löslich
in 10 Vol.
85 proz. Al-
kohols)

löslich in ca,
10 Vol. n. m.

löslich in ca,
10 Vol. unter

Paraffin-
abscheidung

lösl. in 8 Vol.
und mehr

Die unter 1 bis 3 angeführten Singaporeöle stimmen bis auf unbedeutende
Unterschiede miteinander überein und entsprechen bis auf den erheblich
schwächeren Geruch den in den Straits Settlements destillierten Ölen. Aus
der etwas besseren Löslichkeit des aus frischem Material gewonnenen Öles
kann man vielleicht schliessen, dass beim Trocknen und Fermentieren schwer
lösliche Spaltungsprodukte auftreten und in das Destillat mit übergehen. Die

550 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [136

übrigen, aus Javablättern abgeschiedenen Öle weichen nicht nur von den ge-
wöhnlichen Patchouliölen stark ab, sondern sind auch untereinander sehr ver-
schieden, je nachdem, wie das Destillationsmaterial vorher präpariert wird.
Der zwar schwache, aber doch deutlich patchouliartige Geruch des aus frischen
Blättern gewonnenen Öles No. 5 (Öl No. 4 zeigte merkwürdigerweise einen
wenig ausgesprochenen Geruch) bekommt beim Trocknen und schwachen
Fermentieren der Blätter einen kalkigen ölartigen Charakter, wird aber beim
stärkeren Fermentieren der Blätter wieder patchouliartig. Diese Unterschiede
traten nach monatelangem Stehen der Öle nicht mehr in der gleichen Stärke
hervor wie im Anfang. Auch die Drehung des Öles wird durch den Trocken-
resp. Fermentierungsprozess beeinflusst. Sie wird zunächst schwach rechts,
um bei stärkerem Fermentieren wieder in schwache Linksdrehung überzugehen.
Dieses Verhalten ist ein so sonderbares, dass hier ganz einschneidende
Veränderungen stattfinden müssen, deren Aufklärung weiteren Studien vor-
behalten bleibt.

448. .long, A. W. K. de. Über das Vorkommen von <v)uebrachin in
Latex von Hevea. (Teyssmannia 1906, No. 5.)

449. Jong, A. W. K. de. Patchouliöl. (Teyssmannia, 1906, No. 6.)

450. Jong, A. W. K. de. Trennung von Benzoesäure und Zimt-
säure. (Pharm. Weekbl., 1908, p. 1145.)

451. Jong, A. W. K. de. Die Ekgoninbestimmung in Javacoca.
(Pharm. Weekbl., XLV, 190S, p. 42.)

452. Jong, A. W. K. de. Die Bestimmung des Gesamtalkaloid-
gehaltes der Cocablätter. (Chem. Weekbl., V, 1908, p. 225.)

453. Jong, A. W. K. de. Kommt in der Javacoca kristallisiertes
Cocain vor? (Chem. Weekbl., V, 1908, p. 645.)

454. Jong, A. W. K. de. Individuelle Unterschiede in dem
Alkaloidgehalt der Cocapflanzen. (Rec. trov. chin. Pays-Bas, XXVII.
1908, p. 16.)

454a. Jong, A.W. R. de. Einige Bemerkungen über die Blau-
säurepflanzen. (Annales du Jardin botanique de Buitenzorg, 1908, ser. 2
vol. VII, p. 1—17.)

Wie in früheren Berichten der Verf. bereits eingehend beweisen
konnte, tritt die Blausäure, in den Blättern von Pangiwn eduJe nach den
Untersuchungen von Treub teils in stabiler Form (als Glucosid), teils in
freiem oder schwach gebundenem Zustande auf. Verf. ist nun daran ge-
gangen, das Glucosid zu isolieren und festzustellen, ob die Blätter ausserdem
wirklich freie Blausäure enthalten.

Das Glucosid wurde in folgender Weise gewonnen. Die in grössere
Stücke zerschnittenen Blätter wurden in siedendes Wasser gebracht, so dass
die Tätigkeit des Enzyms möglichst rasch unterdrückt wurde. Die so ge-
kochten Blätter presste man aus, und den gewonnenen Saft dampfte man bis
zur Sirupkonsistenz ein, behandelte ihn dann in der Kälte mit 95 °/0 Alkohol,
verdampfte die Lösung und nahm den Rückstand mit absolutem Alkohol auf.
Zur alkoholischen Lösung wurde Äthyläther gefügt, bis sich kein Nieder-
schlag mehr bildete. Beim Abdestillieren der Lösung erhält man einen leicht
kristallisierenden Sirup. Die Kristalle werden in der Kälte mit wasserfreiem
Aceton gewaschen, und dann in demselben zum Kochen erhitzten Lösungs-
mittel aufgelöst. Nach dem Abdestillieren und gänzlichen Verdampfen wieder-
holt man dieses Verfahren zwei- oder dreimal, bis das Produkt fast farblos

137]

Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder.

551

geworden ist. Dann löst man die Kristalle in kochendem, wasserfreiem Aceton
auf und destilliert die Lösung ab, bis die Flüssigkeit sich trübt. Beim Er-
kalten setzen sich prächtige Kristalle ab. Man kristallisiert in derselben Weise
um, bis der Körper völlig weiss ist. Dann wird er in etwas Wasser gelöst
und die Lösung verdampft. Die nach dem Erkalten erhaltenen Kristalle
werden zwischen Filtrierpapier von dem anhaftenden Wasser befreit und bei
120° völlig getrocknet.

Der so gewonnene Körper schmilzt zwischen 160° und 161°, wobei er
sich zersetzt. Er enthält nach drei Elementaranalysen 46,96 — 46,57 % 0,
6,0 — 5,80% H und 4,10 °/0 N, eine Zusammensetzung, die der Formel des von
Power und Lees aus Samen von Gynocardia odorata erhaltenen Gynocardins,
C13H19ON, entspricht. Das hierfür berechnete Moleculargewicht ist 333; die
Siedepunkterhöhung ergab für den fraglichen Körper ein Molekulargewicht
von 351. Der Schmelzpunkt des Gynocardins wird von Power und Lees auf

162—163°, sein Drehungsvermögen auf [«] ß10 = + 72,5° angegeben.

Verf. fand für das Glucosid von Pangium edule in verschieden konzen-

trierter Lösung:

, 28"
28«

MdC-7'0« = + 69,70,

[«]gu (16,885 o/0) = + 62,60.
Ein Vergleich der beiden Acetate ergab auch Übereinstimmung:

Gynocardinacetat

Acetat des Pangium-
2,-lucosids

Formel . .
Schmelzpunkt
Ablenkung .

CjgHiAcaHgO^N
118°—1190

[«] = 4-40,40

U13H1209(02H30)7N
1180—119°

28»

[«] £" (4,912 o/0) = + 38,50

Hieraus folgt wohl die Identität des Pangiumglucosids mit dem Gyno-
cardin. Über die noch nicht vollständig bekannte Struktur dieser Substanz
will Verf. weitere Mitteilungen veröffentlichen.

Zur Feststellung der Anwesenheit von Blausäure in freiem oder schwach
gebundenem Zustande (neben dem Glucosid) hatte Treub auf die Blätter
siedenden absoluten Alkohol gegossen und einige Zeit im Kochen erhalten ;
auf diese Weise gedachte er die Enzymwirkung soviel wie möglich aus-
zuschliessen. Immerhin war es möglich, dass ein Teil der gewonnenen Blau-
säure durch die Einwirkung des Enzyms auf das Glucosid entstanden sein
konnte. Es galt also, diese etwaige Fehlerquelle zu beseitigen.

Zu diesem Zwecke machte Verf. einige Versuche bei niederen Tempe-
raturen, wo die Enzyme weniger wirksam sind. Es wurde zuerst geprüft, ob
das Enzym das Gynocardin in einer alkoholischen Lösung, die geringe Mengen
Wasser enthält und auf — 10ö abgekühlt ist, zu zersetzen vermag. (Das
Enzym wurde dadurch gewonnen, dass man die Blätter einem starken Druck
unterwarf, den Saft mit Alkohol versetzte, den Niederschlag in etwas Wasser
löste, und von neuem mit Alkohol niederschlug. Das Produkt zersetzte das
Glucosid in wässeriger Lösung sehr rasch, während dies vom Emulsin nur
sehr langsam angegriffen wurde.) Bei diesen Versuchen unter niederer
Temperatur wurde nur eine sehr geringe Menge Blausäure titriert, nnd diese
blieb auch noch nach fünf Stunden die gleiche, sie war also wohl nur durch

552 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. [138

momentane Einwirkung des Enzyms vor der völligen Mischung einer wässerigen
Lösung mit der alkoholischen Gynocardinlösung entstanden. Daraus liess sich
schliessen, dass das Enzym das Glucosid unter den angegebenen Bedingungen
nicht zersetzen kann. Dieser Schluss wurde durch weitere Versuche bestätigt,
in denen Verf. zu 400 cm3 absolutem Alkohol von — 10° kleine Stücke Filtrier-
papier brachte, von denen die einen mit 3,5 cm3 wässeriger Enzymlösung, die
anderen mit einer gleichen Menge Gynocardinlösung (0,3 g) Gynocardin) ge-
tränkt und dann zum Gefrieren gebracht waren. Nach dem Einbringen ia
den Alkohol wurde das erhärtete Papier gepulvert und der Alkohol sogleich
filtriert und destilliert. Die Titrierung ergab, dass sich keine Blausäure ge-
bildet hatte.

Nachdem so festgestellt war, dass die Enzyme bei — 10° nicht wirksam
sind, prüfte Verf. in ähnlicher Weise Pangiumblätter auf die Anwesenheit
von nichtglucosidischer Blausäure. Die zerschnittenen Blätter wurden in
absoluten Alkohol von — 10° gebracht und in einem Teil der Versuche ge-
pulvert, in einem anderen unverändert gelassen. Nachher wurde destilliert
und titriert. Nebenher stellte Verf. Versuche mit siedendem Alkohol nach der
Treubschen Methode an. Es wurden in allen Fällen ansehnliche Mengen von
Blausäure erhalten, bei gepulverten Blättern von — 10° ungefähr ebensoviel
wie bei der Anwendung siedenden Alkohols. Ungepulverte Blätter ergaben
noch beträchtlich grössere Blausäuremengen; hier muss noch das Enzym mit-
gewirkt haben, das selbst durch einen dreistündigen Aufenthalt der Blätter in
dem Alkohol von — 10° augenscheinlich in den Zellen noch nicht völlig un-
schädlich gemacht wird.

Diese Versuche bestätigen mithin völlig die Angabe Treubs, dass in dem
Pangiumblättern Blausäure in freiem oder schwach gebundenem Zustande
(oder in beiden Formen) vorhanden ist. Enthält die alkoholische Lösung
Blausäure in Gestalt einer wenig stabilen Verbindung, so kämen die Cyan-
hydrine (HCy -+- einem Aldehyd oder Keton) in Betracht. Da diese Körper
mit Silbernitrat kein Silbercyanür bilden, so erschien es möglich, die Frage,
ob sich die Blausäure der Lösung in freiem oder schwach gebundenem Zu-
stande befindet, zu entscheiden. Aus den diesbezüglichen, wieder mancherlei
Vorsichtsmassregeln erfordernden Untersuchungen, zu denen Verf. sich eines
eigenen Apparates bediente, ging hervor, dass die grösste Menge der Blau-
säure in den Blättern von Pangium edule sich im freien Zustande befindet,
während sich nicht mit Sicherheit feststellen liess, ob sie von einer kleinen
Menge schwach gebundener Säure begleitet ist oder nicht.

Verf. fügt hinzu, dass in den Blausäurepflanzen ein Gleichgewichts-
zustand bestehe zwischen Aldehyd oder Keton, der Blausäure und dem Zucker,
und dass von den relativen Mengen dieser Verbindungen die Anwesenheit
dieser oder jener Cyanwasserstoff Verbindungen abhänge. Produziert die Pflanze
viel Blausäure im Verhältnis zu den anderen Verbindungen, so enthalten die
Blätter viel freie Blausäure und wenig Glucosid und Cyanhydrin, ist der
Zucker im Überschuss vorhanden, so findet sich Glucosid und wenig von den
anderen Körpern; wenig Zucker bei Anwesenheit von viel Blausäure und viel
Aldehyd oder Keton ergibt Cyanhydrin in grosser Menge, freie Blausäure
und wenig Glucosid usw.

Bei Pangium edule würde sich hiernach Blausäure in grösserer Menge
bilden als die anderen Körper; auch Zucker ist in ansehnlicher Menge an-
wesend; von Aldehyd oder Keton aber tritt nur verhältnismässig wenig auf.

1391 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 553

In derselben Weise, wie Verf. das Gynocardin aus den Blättern von
Pangium edule isoliert hat, gewann er auch das Phaseolunation oder Linaniarin
aus den Blättern der Mondbohne (Phaseolus lunatus), aus deren Samen es bisher
bekannt war. Die schon von Dunstan und Henry widerlegte Angabe von
Kohn-Abrest, es seien mehrere Glucoside vorhanden, wird auch vom Verf.
zurückgewiesen.

■±55. Jörgensen, Gnmer. Über die Bestimmung einiger der in
den Pflanzen vorkommenden organischen Säuren. (Zeitschr. f. Unters.
Nahrungs- u. Genussmitt., XIII, 1907, p. 241 ff.)

Der Mangel eines zuverlässigen Verfahrens zur Trennung und Be-
stimmung der in den verschiedenen Frucht- nnd Obstsäften vorkommenden
Säuren veranlasste den Verf., sich eingehend mit dieser Frage zu beschäftigen.

Die organischen Säuren, deren quantitative Bestimmung dem Verf. ge-
lungen ist, sind Weinsäure, Bernsteinsäure, Zitronensäure und Äpfelsäure.
Einige Untersuchungen hat der Verf. auch über Milchsäure, Oxalsäure und
Salicylsäure gemacht.

Auf die Einzelheiten der speziellen Verfahren kann hier nicht näher
eingegangen werden.

455a. Jorissen, A. Das Linamarin, ein blausäurebildendes-
Glykosid. (Bull. Sei. de l'Acad. de Belg., 1907, p. 12—17.)

Der Verf. wünscht, dass man seinem Ausdruck Linamarin den Vorzug
gebe vor Phaseolunatin, da diese Bezeichnung erst später als die seine, die
mit jener identisch ist, aufgekommen sei.

456. Joyce, T. (J. Untersuchungen von dem englischen Markte
entnommenen Mustern der Jalapenwurzel. (Uhem. u. Drugg., 1907,
p. 488.)

457. Jungfleisch, E. und Leronx, H. Über das Lupeol. (Compt. rend.,
OXLIV, 1907. p. 1435.

458. Justin-Miieller, E. Theoretische Betrachtungen über die bei
der Einwirkung von Salpetersäure auf Zellulose erhaltenen Pro-
dukte. (Rev. gener. Ohin. pure appl., X, 1907, p. 263.)

459. Karpow. LTntersuchung einiger Teesorten in Turkistan.-
(Farmaz. Journ., XL VII, 1908, p. 121.)

459a. Kastner, J. Über ein neues Rhamnosid aus Ipomoea turpethum.
(Zeitschr. f. Zuckerindustr. i. Böhmen, 1907, p. 307.)

460. Katajama, T. Über das Aroma des schwarzen Tees. (Bull.
Imp. Centr. Agric. Exp. Stat. Japan, I, 1907, 1, p. 149.)

461. Keller, 0. Studien über die Alkaloide der Nigella- Arten.
(Arch. Pharm., 1908, p. 1.)

462. Kimpflin, P. Über die Gegenwart von Methanal (Formal-
dehyd) in den grünen Pflanzen. (Comptes rendus, CXLIV, 1907, p. 148. >

Der benutzte Methyl-p-amino-m-Kresol als Reagens auf Formaldehyd.
Es wird hierbei eine rote Färbung erzeugt. Die Versuche fanden wie
folgt statt:

Eine konzentrierte mit überschüssigem Methyl-p-amino-m-Kresol ver-
setzte Natriumbisulfitlösung wird in eine lange, vertikale mit feinausgezogener
kapillarer Spitze versehene Röhre gebracht. Diese Spitze wird in das grüne
Pflanzenorgan eingeführt.

Der Verf. benutzte; das Blatt einer Agave mexicana. Die Pflanze wurde
einige Zeit im Sonnenlicht stehen gelassen.

554 Berichte über die pbarmakognostische Literatur aller Länder. [140

Sobald in das Blatt die Flüssigkeit eingetreten ist, wird der imprägnierte
Teil abgeschnitten; dann legt man denselben in absoluten Alkohol und beob-
achtet die Schnitte im Wassertropfen unter dem Mikroskop.

In vielen Parenchymzellen zeigt sich roter Niederschlag, der von der
Formaldehydreaktion herrührt.

463. Klasen, P. und Köhler, J. Chemische Untersuchungen der
Säuren im Harze der Fichte (Pinus abies~L-). (Joum. prakt. Chem, LXII1,
1907, p. 337—358.)

Es sind Sommerharze und Winterharze zu unterscheiden. Zum ersteren
gehören drei untereinander schwer zu unterscheidende Gruppen. Alle drei
kommen auch zusammen viel vor.

Das Winterharz ist ganz weiss und gleicht fast bis aufs kleinste dem
Zucker. Gefunden wird es unter Borken auch an den Föhren.

Die im Harze ursprünglich auftretenden Säuren sind als Sapinsäuren
bezeichnet worden. Sie sind alle sehr leicht oxydierbar. Die Oxydations-
produkte sind amorph. Das Drehungsvermögen des Winterharzes ist viel
stärker als das des Sommerharzes; ein rechtsdrehendes konnten die Verff.
nicht nachweisen.

464. Klason-Köhler und Friedmaim. Untersuchung des Teers von
Taxus baccata. (Arch. Kern. Min. Geol., IL 1907, p. 164.)

465. Klobb. T. Über das Phenylurethan des Arnidiols. (Bull.
Soc. chim. Paris, XXV, 1906, p. 741.)

466. Klobb, T. Untersuchungen über die Linariaglykoside.
(Bull. Soc. chim. France, 1908, p. 858.)

467. Klobb, T. und Bloch, A. Über das Phytosterol der Soja. (Bull.
Soc. Chim. France, 1907, p. 422.)

468. Knöpfer, G. Beiträge zur Kenntnis der Chinasäure. (Arch.
d. Pharm., 245, 1907, 77.)

469. Knopf, H. E. Herstellung eines in der Rinde von Rhamnus
Frangula oder Cascara sagrada enthaltenen Abführmittels. (Chem. Ztg.
XXXI, 1907. p. 222.)

470. Kobert, A. Zur Phloroglucin-Salzsäurereaktion. (Zeitschr.
f. analyt. Chem, XLV, 1907, p. 711.)

471. Kobert. Über Jutesamen. (Sitzber. naturf. Ges. z. Rostock,
1906, p. 14.)

472. Kobert, R. Einiges Pharmakognostisches für die Medizinal-
beamten. (Zeitschr. f. Medizinalbeamte, 1908, Beil. 2.)

473. Koch, Fr. 0. Über den Kampfer in unseren Kolonien.
(Seifenfabrik, 1908, p. 280.)

473a. Koch, L. Einführung in die mikroskopische Analyse der
Drogenpulver. Eine Anleitung zur Untersuchung von Pflanzen-
pulver. Zum Selbststudium wie zum Gebrauche in praktischen
Kursen der Hochschulen für Apotheker, C rossdrogisten, Sanitäts-
beamte, Studierende der Pharmazie. Mit 49 Abbildungen. Berlin,
Verlag von Gebrüder Borntraeger, 1906. Preis geb. 4 M.

Da die neuen Pharmakopoen eine strenge mikroskopische Prüfung der
Drogen und der aus ihnen bereiteten Pulver verlangen, ist es begreiflich, dass
der Apotheker speziell nach einem brauchbaren Buche sucht, aus dem er das
Nötige schöpfen kann. Die Einleitung befasst sich mit den verschiedenen
Präparationsmethoden und mit der Art des Untersuchungsganges. 37 ver-

141] Berichte über die pharrnakognostisohe Literatur aller Länder. 555

schiedene Drogen werden hierauf erläutert, wobei besondere Rücksicht auf
eine genaue Darstellung der Methodik der Untersuchungen gelegt wird. Die
Reihenfolge der Drogen ist folgende: Rinden (China, Quercus, Oranatum, Con-
durango, Cinnamomum), Hölzer (Quassia), Rhizome (Acorus, Bis, Zingiber),
Wurzeln (Althaea, Genticma, Ipecacuanha, Liquiritia, Rheum, Valeriana),
Knollen (Jalapa, Salep), Blätter (Digitalis, Senna, Saloia, Belladona, Stra-
moniutn), Blüten (Cina, Caryophyllus, Crocus), Kräuter (Alesynthecium), Samen
(Foenum graecum, Areca, Linum, Strychnos, Synapis), Früchte (Cardamomvm,
Cidtebae, Anisum, Foeniculum, Launis). Die Abbildungen sind wertvoll und dem
grossen Werke des Verfassers (Über die mikroskopische Analyse der Drogen-
pulver) entlehnt. — Bezüglich des pädagogischen Momentes muss zweierlei
hervorgehoben werden: die Gründlichkeit, mit der der Stoff behandelt wird,
und das Vorschreiten von leichterem Materiale zu schwererem. Die Übersicht
wird gewahrt durch Anwendung grossen und kleinen Druckes. Verf. wählt
Schab- oder Quetschpräparate.

474. Koch, L. Die mikroskopische Analyse der Drogenpulver
Atlas für Apotheker, Drogisten und Studierende der Pharmazie. Bd. IV.
Samen und Früchte. Lief. 3, Leipzig 1907.

475. Koch, L. und Gilg, E. Pharmakognostisches Praktikum
Anleitung zur mikroskopischen Untersuchung von Drogen und Drogenpulvern.
Berlin 1907, 272 pp.

476. König, J. Die hauptsächlichsten Ergebnisse der wissen-
schaftlichen Forschung für die Ernährung des Menschen. (Zeitschr.
f. Untersuchung d. Nahrungs- u. Genussmittel, XII, 1907, p. 577 — 588.)

Der Verf. bietet eine sehr gedrängte Übersicht über die Entwickelung
und den gegenwärtigen Stand der Ernährungslehre und ihrer praktischen Niitz-
anwendung auf den Menschen.

476a. König, J. Über die einer geregelten Lebensmittel-
kontrolle zurzeit noch entgegenstehenden Hindernisse. (Zeitschr.
f. Unters, d. Nahrungs- u. Genussmrttel, XII, p. 4 — -9.)

477. Koenig, P. Die Kultur des Spinats als Eisenpflanze. (Südd.
Apoth.-Ztg., 1907, No. 38.)

477a. Kohl, F. G. Über die Reversibilität der Enzymwirkungen
und den Einfluss äusserer Faktoren auf die Enzyme (Invertase,
Maltase). (Beihefte zum Bot. Centrbl., 1908, Bd. 23, erste Abteilung, p. 64b
bis 64 o.)

Zahlreiche neuere Untersuchungen haben ergeben, dass die Enzyme
nicht nur eine spaltende, sondern auch eine aufbauende Tätigkeit auszuüben
vermögen. So gelang Groft Hill als erstem der Aufbau der Maltose aus
Glucose vermittelst der Hefemaltase; Emmerling fand wenige Jahre später die
Amygdalinsynthese; Kastle und Loevenhart beobachteten den Aufbau von
Fettsäureestern mit Hilfe des Fett spaltenden Enzyms, der Lipase; in einer
zweiten Untersuchung zeigte Hill, dass auch die Takadiastase aus Glucose
Maltose zu bilden vermag; G. Fischer und Armstrong wiesen die Bildung der
Lactose aus Glucose und Galactose vermittelst der Lactase nach; endlich
beobachtete Cremer die Kondensierung von Lävulose zu Glycogen unter An-
wendung von Hefepresssaft. Die Synthese des Rohrzuckers dagegen war bis-
her nicht gelungen, so dass es schien, als sollte dieser wichtige Vorgang der
Tätigkeit der lebenden Pflanzenzelle vorbehalten sein.'

556 Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. [142

Zwar hatten bereits Visser und Pantanelli versucht, die synthetische
Wirkung der Invertase, die den Rohrzucker in Glucose und Lävulose spaltet,
darzutun. Bei Visser war jedoch die Menge des entstandenen Rohrzuckers —
kaum 1 °/0 nach monatelanger Einwirkung des Enzyms — eine so geringe, dass
ein sicherer Beweis für die Existenz einer Synthese in den Versuchen nicht
erblickt werden kann. Die Versuche von Pantanelli aber sind deshalb nicht
einwandfrei, weil der Autor mit zu stark sauren und alkalischen Lösungen
gearbeitet hat. Durch Säuren und Alkalien wird nämlich die Glucose und
Lävulose zerstört, so dass die Abnahme dieser Hexosen in der Versuchs-
flüssigkeit unter solchen Umständen nicht ohne weiteres als untrügliches
Zeichen eines Aufbaues von Rohrzucker, d. h. einer Reversion, gedeutet
werden darf. Es wäre unbedingt erforderlich gewesen, dass der Autor bei
jedem Versuche durch Hydrolyse mittelst stärkerer Säure geprüft hätte, ob
die Gesamtmenge an Zucker — reduzierendem und durch Hydrolyse reduzierend
gemachtem — dieselbe geblieben war. Da das nicht gesehen ist, hat der
Autor die Frage von neuem in Angriff genommen. Im Gegensatz zu Pantanelli
wurden die grundlegenden Versuche ausschliesslich mit neutralen Lösungen
angestellt.

Verfasser untersuchte Hefeextrakte, die auf verschiedene Weise her-
gestellt wurden, auf ihren Enzymgehalt und wählte von ihnen diejenigen aus,
bei denen die Invertase bedeutend überwog. Diese Invertaseflüssigkeit Hess
er auf Rohrzuckerlösung bekannter Konzentration im Dunkeln und bei kon-
stanter Temperatur einwirken. Bakterieninfektion war durch Zugabe von
Thymol, Chloroform usw. ausgeschlossen. Die in bestimmten Zwischenräumen
vorgenommenen titrimetrischen Bestimmungen nach der überaus empfind-
lichen Methode von G. Bertrand ergaben zunächst eine regelmässige, stetige
Zunahme an Glucose und Lävulose (d. h. Invertzucker). Nach einiger Zeit
trat in der Regel ein Stillstand bzw. ein Vor- und Rückwärtsschreiten der
Enzymwirkung ein. Die Zeit kt nach dem Konzentrationsverhältnisse der
Zuckerlösung und nach der Temperatur verschieden.

Die Tatsache, dass die Hydrolyse durch Enzyme häufig zum Stillstand
kommt, ohne zu Ende geführt zu werden, ist längst bekannt. Zu ihrer Er-
klärung haben auf der einen Seite Tammann u. a. eine Überführung des
jeweiligen Enzyms in eine unwirksame Modifikation durch die sich anreichern-
den Spaltungsprodukte angenommen. Auf der anderen Seite dagegen (Hill
u. a.) nimmt man an, dass die Enzyme nach zwei entgegengesetzten Richtungen
zu arbeiten imstande sind und der Stillstand eintritt, wenn die hydrolytische
Spaltung der enzymatischen Synthese das Gleichgewicht hält. Die Enzyme
verhalten sich nach dieser Auffassung wie die Säuren bei der Esterbildung.

Da bei den Versuchen des Verf. die Reaktion nach dem Stillstand bzw.
Rückgang immer wieder im hydrolytischen Sinne fortschritt, kann von einem
Unwirksamwerden der Invertase nicht die Rede sein. Für dieses Enzym ist
also die Tarn mann sehe Auffassung nicht richtig. Verf. erklärt daher seine
Versuche so, dass die anfangs gleichmässig fortschreitende Inversion der
Reversion Platz macht. Die gefundene Menge von Invertzucker stellt somit
immer die Resultante aus den Wirkungen dieser beiden entgegengesetzt ver-
laufenden Prozesse dar.

Von den äusseren Faktoren wirkt bereits das zerstreute Tageslicht deut-
lich hemmend auf die Inversion des Rohrzuckers ein. Wahrscheinlich ist
dieser Einfluss auf eine teilweise Zerstörung des Enzyms durch das Licht

143] Berichte über die pkarmakognostische Literatur aller Länder. 557

zurückzuführen. Bisher wurde ein ähnlicher schildlicher Einfluss des Lichtes
nur für Diastase nachgewiesen (Green, Brown und Morris). Bei der Invertase
konnte Verf. nun nicht nur beobachten, dass die Inversion im Dunkeln be-
deutend schneller vorwärts schreitet als im Lichte; es Hess sich auch zeigen,
dass unter diesen Umständen die Inversion viel früher einer Reversion Platz
macht. Von den Substanzen, die die Hydrolyse des Diastaseenzyms sehr stark
beschleunigen — Calcinmphosphat 0,5 °/0, Ammoniakalaun 0,25%, essigsaure
Tonerde 0,25%, Asparagin 0,05% — hat Verf. aus verschiedenen Gründen
nur das Asparagin untersucht. Eine Dosis von 0,05% brachte jedoch keine
Beschleunigung der Invertasehydrolyse hervor.

Bei einzelnen Versuchen blieb die Reversion entweder vollständig aus,
oder aber sie setzte erst sehr spät ein. Da die Untersuchungen des Verf. über
die Abhängigkeit der Enzymwirkungen von äusseren Verhältnissen noch nicht
abgeschlossen sind, soll diese Frage später behandelt werden.

478. Kollo. Neue Methode zur Säurebestimmung im Harn.
(Schweizer. Wochenschrift f. Pharm, u. Chem., 1907.)

Der Verf. empfiehlt auf seine Erfahrungen hin eine volum. Kalklösung
zur Säurebestimmung.

Die Kalklösung wird hergestellt aus 10 g chemisch reinem CaO und
einem Liter ausgekochtem und bei Luftabschluss wieder erkaltetem, destil-
liertem Wasser.

Bezüglich der näheren Einzelheiten sei auf das Original verwiesen.

479. Komppa, G. Zur Totalanalyse des Kampfers. (Ber. Deutsch.
Chem. Ges., XLI, 1908, p. 4470.)

480. Koritsclioner. Beiträge zur Kenntnis der Abieti nsäure.
•(Zeitschr. ang. Chem., 20, 1907, 641.)

481. Kossowk'Z. Die Zerstörung des französischen Senfes durch
Bakterien. (Zeitschr. f. landw. Versuchswesen Östr., IX, 1906, p. 111 — 116.)

4<S2. Kosiltany, Tli. Über ungarischen Weizen und ungarisches
Weizenmehl. (Chem. Ztg., XXXI, 1904, p. 100.)

483. Kotake, Y. Coffeinabbau durch Auszug aus der Rinder-
leber. (Zeitschr. physiol. Chem., LVII, 1908, p. 378.)

484. Kowalew, S. G. Über die asiatische Süssholz wurzel. (Chem.
Ztg., XXXI, 1907, p. 1162.)

485. Kraemer, H. Textbook of Botany and Pharmacognosy.
2., revised and enlarged edit, Philadelphia 1907.

486. Kraemer, H. Die Struktur der Stärkekörner. (Amer. Journ.
Pharm., LXXIX, 1907, p. 217.)

Nach sorgfältigem Literaturstudium und genauen eigenen Untersuchungen
glaubt der Verf. annehmen zu müssen, dass die Stärkekörner aus kolloiden
und kristalloiden Substanzen bestehen, die gewöhnlich in verschiedenen von-
einander getrennten Lamellen gelagert sind.

Im Beginn des Wachstums und der alternierenden Lamellen überwiegt
die kolloide Substanz, die mit kristalloider Zellulose vereinigt ist.

Die anderen Schichten bestehen fast durchweg aus kristalloider
Siibstanz.

487 Kraemer, Henry. Einige morphologische Merkmale zur
Unterscheidung von Belladonna und Scopolia. (Amer. Pharm. Journ.,
LXXX, 1908, p. 459.)

558 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. [144

488. Kraemer, H. und Sindall, H. A. Mikroskopische und chemische
Untersuchung von Handelsingwer. (Amer. Journ. Pharm., LXXIX,

1907, p. 326.)

489. Kraemer, H. und Sindall, H. A. Mikroskopische und chemische
Untersuchungen von seh warzem Pf elf er. (Amer. Journ. Pharm., LXXX,

1908, p. I.)

490. Kramer-Osterbnrg, Hans. Mikroskopisch-pharmakognostische
Beiträge zur Kenntnis von Blättern und Blüten. (Ber. D. Pharm.
Ges., XVII, 1907, p. 308-367, 21 Taf.)

A. Meyer hatte sich mit der Untersuchung von Folia und Herbae befasst,
die in der Pharmacopoea germanica 1. Auflage in offizinellem Gebrauch
standen. Verf. hat nun eine grosse Anzahl solcher Blätter und Blüten unter-
sucht, die zwar nicht offizinell sind, aber häufig noch arzneilich verwendet
werden. Einer ausserordentlich genauen Untersuchung unterworfen wurden:
Flores Convallariar, majalis, Primulae, Lamii albi, Malvae arborea«, Pulmonariae,
Bosae gallicae, RJioeados; Folia Castaneae, Adonidis, Bucco, Eucalypti, Hamame-
lidis, Laurocerasi, Matico, Pulmonariae officin., Pulmonariae angustifol, Pulmo-
nariae mollis-

Verf. untersuchte nicht nur in histologischer, sondern auch in mikro-
chemischer Beziehung, wobei er einige auch für die Diagnose wichtige Merk-
male fand. Die Tafeln ergänzen den Text in guter Weise.

490a. Kratter. Über Giftwanderungen in Leichen und die Mög-
lichkeit des Giftnachweises bei später Enterdigung. (Vierte ljahrschr.
ger. Mediz. u. öffentl. Sanitätsw., 1907, p. 119—135.)

In den Leichen wandern die Gifte bekanntlich nach den tieferen Teilen.
Leichter als Metallgifte wandern Pflanzengifte. Der Erfolg der Untersuchung
hängt ab von der sachkundigen Entnahme der Bodenteile usw.

Verf. erwähnt einen Fall, wo der Nachweis einer Strychninvergiftung
noch nach 6 Jahren gelang.

491. Kraus, A. Untersuchungen über Desinfektionsmittel, I
und IL (Beihefte zu den Veröff. des K. Gesundheitsamt., vol. XXVI, 2, 1907.)

492. Kreis, H. Nachweis von Cichorien im Kaffee. (Ber. kanton.
ehem. Labor. Bas. Stadt, 1906, p. 24.)

493 Kress, 0. Einige Eigenschaften von Fichtenholzölen.
(Chem. Rev. Fett- u. Harzindustr., 1908, p. 54.)

494. Krüber, Ludwig. Über Frangula und Sagrada. (Pharm. Praxis,
1907, p. 331.)

495. Kromer, N. Zur Kenntnis der Ersatzmittel für Extractum
Belladonnae. (Pharm. Centrbl., XLIX, 1908, p. 499)

496. Kromer, N. Über das Vorkommen von Saccharose in Rhizoma
Valerianae. (Pharm. Centralh., XLIX, 1908, p. 397.)

497. Krüer, H. Über Perubalsam. (Pharm. Ztg., LH, 1907, p. 880.)

498. Kruyff, E. de. Quelques recherches sur la composition de
l'eau et sur les diastases du fruit de Cocos nueifera. (Bull, du Depart. de
TAgricult. aux Ind. Neerland., 1906, IV, p. 1 — 17.)

Der Verf. bringt seine Resultate in folgende Zusammenstellung:

1. L'eau de la noix de Coco contient du Saccharose. — Ce sucre est inter-
verti pendant la maturation de la noix.

2. (Jette inversion de fait par l'action de la diastase sucrase, qui est dis-
soute dans l'eau du fruit.

145] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 559

3. Cette diastase est secretee par les celhiles de l'albumen.

4. A part la sucrase, l'eau contient encore les diastases suivantes:

1. l'oxydase.

2. la catalase.

5. De ces trois diastases l'eau de fruit tres jeune ne contient que l'oxydase
et la catalase.

6. Le haustorium contient e. a. dans ses cellules: la lipase, la diastase
proteolique, l'amylase, la catalase et la peroxydase.

499. Krzizan, Rieh. Zur Kenntnis des Brombeerkernöles. (Obern,
Rev. Fett- u. Harzindustrie, XV, 1908, p. 7 ff.)

500. Kubier, K. Beiträge zur Chemie der Condurangorinde.
(Arch. der Pharm., 1908, p. 620.)

Äther zieht aus der Condurangorinde ungefähr 8°/0 ihres Trockengewichts
auf. Es sind ätherisches Öl, Fett, Kautschnck, Harz, etwas Zucker und
Bitterstoff.

Wird die mit Äther extrahierte Rinde mit 96prozentigem Alkohol be-
handelt, so gibt sie 12,7% des Trockengewichtes ab.

Im alkoholischen Extrakt findet sich fast das gesamte Glykosid der
Rinde, ferner grosse Teile von Kohlehydraten und einige ätherlösliche Harze-
Nie finden sich Alkaloide.

Mittelst besonderer Verfahren gelang es dem Verf., aus dem Rohcon-
durangin durch Reinigung Condurangin zu gewinnen.

Dieses ist ein Colloid.

Wesentlich zur Erkenntnis der Reinheit ist die Tatsache, dass die Chloro-
formlösung eines Präparates auch bei sehr grosser Verdünnung mit Chloroform
nicht getrübt wird, ferner der Umstand, dass das Präparat bei einer Temperatur
von 146° — 147° sich nicht verändert.

Das Condurangin ist ein amorphes hellgelbes, sehr hygroskopisches Pulver,
das in Äther und Benzol unlöslich ist.

Die Analysenwerte leiten zu folgender Formel: C40H60O16.

Bei der hydrolytischen Spaltung ergibt sich Glykose.

Daneben bildet sich eine organische Substanz, die nicht identifiziert
werden konnte. Aus dem alkoholischen Extrakt der Droge ist es gelungen,
ein Kohlenhydratgemisch zu bekommen, das neben der d-Glykose wahrschein-
lich auch d-Fruktose enthält.

Ferner wurde gewonnen ein neuer Alkohol, „Condurit", dem folgende
Formel zukommt: C6H10O4.

Durch Wasserdampfdestillation des ätherischen Extraktes wurden 0,3°/0
eines gelbgefärbten ätherischen Öles erhalten. Dieses Öl hat sehr intensiven
Geruch, d 18° = 0,9741 • [a]D = -4- 6,724«. Siedepunkt 140".

•~>(U. Knbler, Konrad. Über die Bestandteile von Radix Vince-
toxii. (Arch. der Pharm., 1908, p. 660.)

Aus der trockenen Droge wurden 4,1 % ätherisches Extrakt gewonnen,
dessen Hauptbestandteile Fette waren.

Der Verf. isolieite nach der bekannten Methode von Tanret das Glykosid
Vincetoxin. Dieses ist stark linksdrehend («j = — 75°). Die Formel ist zu
fassen wie folgt: C50H82O.;;0.

Mit Condangurin hat es eine gewisse Ähnlichkeit. Jedoch kommt dem
Vincetoxin eine andere Zusammensetzung und optische Aktivität zu.

Aus beiden Glykosiden wird bei der Hydrolyse Glykose abgespalten.

560 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [146

Im alkoholischen Extrakt tritt kein Condurit auf. Es lassen sich, daraus
aber ungefähr 3°/0 der verarbeiteten Droge an kristallisierter Saccharose
gewinnen.

502. Kümmel, F. Die Erflehte und ihre Verbreitung. (Pharm. Ztg.,
LH, 1907, p. 719.)

503. Kuntze, M. Das ätherische Öl von Brassica rapa var. rapifera.
(Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 662.)

Der Verf. fand bei seinen eingehenden Untersuchungen, dass sich in der
Randpartie der weissen Rübe, der sogenannten Wasserrübe ein Glykosid und
ein Ferment vorfinden.

Das Glykosid liefert Phenyläthylsenföl.

504. Kuntze, M. Über das Öl von Cardamine amara. (Arch. d. Pharm.,
1907, p. 657 ff.)

Der Verf. hat das schon früher gefundene Butylsenföl untersucht. Der
gewonnene Butylthioharnstoff hat seinen Schmelzpunkt bei 136° und zeigt
[«]D + 19,96° in alkoholischer Lösung.

Ein anderer gefundener Thioharnstoff lässt auf eine Versetzung mit
Lepidium sativum schliessen.

505. Kinil/c. 31. Die massanalytische Bestimmung des Allyl-
senföles. (Arch. Pharm., 1908, p. 58.)

506. Kutscheroff, M. Über die sogenannte Vanillinreaktion der
Ketone. (Zeitschr. anal. Ohem., XLIV, p. 622—625.)

507. Labesse. Über einen Champignon, der hei den Völker-
schaften Innerafrikas zur Darstellung heftiger Gifte dient. (Rep.
Pharm.. XX. 1908, p. 343.)

508. Lohache J. Die Kopra und die gereinigte Kokosbutter.
<Rev. gen. Ohim. pure et appl., IX, p. 309 — 314.)

Verf. schildert die Ölindustrie von Marseille. Fast alle Teile der Kopra
werden hier verwendet. In der Kopra von Cochinchina finden sich 70%, in
der von Zanzibar 69 %, in der von Ceylon 68 °/0 und in der von Manila
66,25% Öl. Völlig reines Kokosfett zeigt bei 100° ein speeifisches Gewicht
von 0,863 und einen Schmelzpunkt von 26°.

Nähere Einzelheiten sind im Original einzusehen.

509. Lalone, (i. und (harabot, E. Aufeinanderfolgende Verteilung
der Terpenverbindungen auf die verschiedenen Organe einer aus-
dauernden Pflanze. (Compt. rend., CXLIV. 1907. p. 435.)

510. Lamothe, Leopold. Lavande et Spie. 2. Aufl., Le Grand Serre, 1908.
Die Arbeit sei hier im Ref. wiedergegeben, wie es sich findet in

„Schimmel & Co.", Berichte, 1908, p. 69 ff.

Der Verf. gibt eine genaue botanische Beschreibung der einzelnen
Lavandu la-Arten und äussert sich über die für Lavendel günstigsten Lebens-
bedingungen, über Beschaffenheit und Bearbeitung des Bodens zur Anlage
von Kulturen und über die Art der Anlage selbst, ferner über die Erträge an
Blüten wie an Öl und den damit zu erzielenden Gewinn. Die letzteren Aus-
führungen sind äusserst optimistisch gehalten, indem Lamothe mit den hohen
Ölpreisen der letzten Jahre rechnet und dabei natürlich zu überaus günstigen
Resultaten kommt. Wir halten das für verfehlt. Man sollte die Lavendel-
bauern nicht darüber im unklaren lassen, dass Preise von 24 Fr. pro kg Öl zu
den Ausnahmen gehören, es bleiben ihnen sonst arge Enttäuschungen nicht
erspart. Durch Übertreibungen konnte man leicht das Gegenteil von dem

347] Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 5ßl

erreichen, was man beabsichtigt. Hoffentlich zieht man aus dem starken
Niedergang der Ölpreise in diesem Jahre den Schluss, dass man an die Kultur
von Lavendel auch nicht gar zu grosse Hoffnungen knüpfen darf. Ein be-
scheidener Nutzen lässt sich unter allen Umständen mit Sicherheit voraussagen.
Wie wir dem Lamo theschen Buche entnehmen, werden die Lavandula-
Arten nach C. Chatenier folgendermassen eingeteilt:

1. Lavandula latifoJia Vill., L. Sjrica var. ß L. (grande lavande, 1. male),
1. branchue, spie, aspic).

2. Lacandula officinalis Chaix. L. vera D. (J., L- Spica var. « L. (lavande
veritable, 1. femelle).

Letztere teilt Jordan in zwei weitere Unterabteilungen, in
Lavandula fragrans (lavande odorante, 1. mojenne) und in die das beste
Öl liefernde

Lavandula Delphinensis Jord. (petite lavande, 1. fine). Die erstere dieser
beiden Spezies ist sehr verbreitet. Sie findet sich in den niedrigeren Höhen-
lagen, während L Delphinensis ausschliesslich in den höchstgelegenen Regionen
vorkommt.

Daneben tritt nur noch eine Kreuzung zwischen L. latifulia und L.
fragrans auf, die von Reverchon L. hgbrida, von Chatenier L. fragrans X lati-
folia genannt wird (grosse lavande, 1. bätarde. lavandin, spigoure).

Die Destillateure haben noch Lamothe für die verschiedenen Lavendel-
sorten folgende Bezeichnungen:

1. Petite lavande. Sie liefert das beste Öl und ist widerstandsfähiger und
anspruchsloser als die beiden folgenden, in niedrigeren Regionen vor-
kommenden Arten.

2. Lavande moyenne. Liefert ein weniger feines, aber immer noch brauch-
bares Lavendelöl.

3. Grosse lavande. Bastard, gibt ein minderwertiges Öl. Nicht zu ver-
wechseln hiermit ist die grande lavande (Spik).

Was die Zusammensetzung des Bodens und die Anlage der Kulturen
betrifft, so können wir in der Hauptsache auf unsere früheren Referate ver-
weisen, da Verf. hierüber nichts wesentlich Neues bringt. Dagegen wollen
wir kurz auf die Kostenfrage eingehen. Den Preis für ganze Pflanzenstöcke
gibt Verf. mit 4,50 bis 5 Fi-, für 100 Stück an, während Samen mit 15 bis
20 Fr. pro kg bezahlt werden sollen. Rechnet man pro ha 14000 Pflanzen, so
betragen die Kosten für die Anpflanzung 600 bis 700 Fr., während bei Ver-
wendung von Samen, von denen 9 bis 10 kg auf 1 ha kommen, die Anlage
200 Fr. kosten würde. Stecklinge erfordern eine Ausgabe von 250 Fr. pro ha.

Um Kulturen mit Erfolg anzulegen, empfiehlt es sich, eine Pflanzschule
einzurichten, die mit aller Sorgfalt zu pflegen und entsprechend zu düngen ist:
vom dritten Jahre ab kann man dieser die jungen Pflänzchen zum weiteren
Auspflanzen entnehmen.

Der beste Dünger für Lavendel ist nach Verf. der künstliche, der
sowohl die Ausbeute an Blüten als auch deren Ölgehalt vermehrt. Für flach-
gelegene Felder empfiehlt er eine Mischung von 100 bis 120 kg Natronsalpeter.
300 kg Superphosphat und 100 bis 150 kg Kainit; bei Kulturen, die an ab-
schüssigen Stellen gelegen sind, ist an Stelle von Natronsalpeter Ammonium-
sulfat (120 bis 150 kg) zu verwenden. Denen, die diese Methode wegen der
zu hohen Kosten nicht anwenden mögen, rät Verf., die Lavendelzeilen
1.50 bis 2 m voneinander anzulegen und dazwischen den unter dem Namen
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 15. 5. ll.| 36

562 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [148

Esparsette bekannten Süssklee (Onobrychis sativa L., Papüionaceae) anzupflanzen,
der dann ähnlich wie die Lupine alle 2 bis 3 Jahre untergepflügt wird, um
dem Boden Stickstoff zuzuführen. Abgesehen von der Düngung, ist nur eine
oberflächliche Bearbeitung des Bodens Ende März und eine gründlichere in
längeren Zwischenräumen erforderlich, ausserdem sind zweimal im Jahre das
dürre Holz und die abgestorbenen Pflanzen zu entfernen.

Um die Felder möglichst ertragreich zu machen, schlägt Lamothe vor,
die Lavendelkultur mit der Trüffel zu verbinden, was schon einige Landwirte
getan haben sollen. Da die Trüffeleichen in Abständen von 7 bis 8 m ge-
pflanzt werden, so lässt sich der dazwischenliegende Raum sehr gut für den
Anbau von Lavendel ausnutzen. An die Stelle der Trüffeleiche könnten auch
Mandel- resp. Nussbäume treten.

Mit dem Schneiden des Lavendels sollte nach Verf. nicht zu früh
begonnen werden, sondern etwa erst Anfang August, damit die Samen gut
reifen und auch noch nebenbei erhalten werden können, was bei deren Preis
von 15 bis 20 Fr. pro kg ein weiterer pekuniärer Gewinn sein würde. Man
hüte sich aber auch, zu lange zu warten, da die Septembernebel den Blüten
sehr schaden, indem sie die Entwickelung eines zerstörend wirkenden Pilzes
hervorrufen resp. begünstigen, über den noch nichts Genaueres bekannt ist.
Schädlich wirkt auch der Regen, die Blüten sollten daher nur bei trockenem
Wetter geschnitten werden. Ein weiterer Feind des Lavendels ist das Unkraut,
vor allem Flachsseide (Cuscuta), das sorgsam auszurotten ist. Auch durch die
Ziegen- und Schafherden wird den Feldern viel Schaden zugefügt.

Ein begehrter Handelsartikel sind die Lavendelbliiten selbst, wovon drei
Qualitäten unterschieden werden. Die beste Sorte wird jetzt mit 130 — 150 Fr.
für 100 kg bezahlt, die zweite mit 30 — 40 Fr. und die dritte, aus Abfällen be-
stehende, mit 10—15 Fr. Auch ausdestillierte Blüten finden zu 5 Fr. für 100 kg
Abnehmer, die sie zum Verfälschen der anderen Sorten benutzen. Vor 5 bis
6 Jahren wrurden nach Lamothe für die beste Sorte noch 280 Fr. für 100 kg
bezahlt. Der Hauptmarkt für die Lavendelblüten ist Buisles-Baronnies
(Dröme), wo im Jahre etwa 40000 bis 60000 kg zum Preise von 70000 bis
90000 Fr. umgesetzt werden.

Die zurzeit in Südfrankreich für Lavendelöl übliche Destillationsmethode
über freiem Feuer hält Lamothe mit Recht für ganz ungeeignet, da dadurch
teilweise Zersetzung der Ester eintritt, nur übersieht er bei der Begründung
seiner Behauptung den Kernpunkt der Sache, indem er die Ursache der Ester-
spaltung lediglich in den im Wasser enthaltenen Kalksalzen erblickt, die noch
dadurch angereichert werden, dass das nach beendeter Destillation in der
Blase noch vorhandene Wasser nicht mit dem Kraut entfernt wird, sondern
für die neue Destillation darin bleibt. Wenn auch die kleine Menge der Kalk-
salze des Wassers in geringem Masse verseifend wirken kann, so ist der
Hauptgrund für die Esterspaltung bei der Wasserdestillation (distillation a feu
nu) doch ein ganz anderer. Wir haben durch unsere Versuche in Barreme
festgestellt, dass bei dieser Art der Destillation die Spaltung der Ester durch
das längere Zusammensein des Öles mit dem siedenden Wasser, unabhängig
von dessen Salzgehalt, verursacht wird, und dass daher die Hauptbedingung
für die Schonung der Ester darin liegt, das Öl so schnell wie möglich aus der
Blase herauszuschaffen, um es der Einwirkung des Wassers oder Wasser-
dampfes zu entziehen. Das erreicht man durch eine möglichst flotte Destillation
mit Wasserdampf.

149]

Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder.

563

Richtig ist. wenn Verf. den kleinen Destillateuren rät, für eine bessere
Kühlung des Destillates zu sorgen.

Die Ausbeuten an Öl betragen nach Verf. unter gewöhnlichen Verhält-
nissen 0,69 °/0, in trockenen Jahren 1 °/0. Günstiger sollen sich die Zahlen für
die künstlichen Lavendelanlagen gestalten, nämlich auf mindestens 0,8 °/0.

Für die Lavendelölgewinnung kommen nach Verf. folgende Departements
in Betracht: Dröme mit 28000 kg, Basses- Alpes mit 12000 kg, Vaucluse mit
etwas über 10000 kg, Ardeche mit 200 kg, im ganzen über 50000 kg. Die
Produktion der übrigen Departements ist unbedeutend und kommt für den
Handel nicht in Frage.

Erwähnen wollen wir schliesslich noch, dass Verf. dem Öle auch medi-
zinischen Wert nachrühmt. Es soll antiseptische Eigenschaften haben und
bei Bienenstichen, Brandwunden und dergleichen wirksam sein, auch soll es
sich als — äusserlich anzuwendendes — wurmtreibendes Mittel bewährt haben.

Aus der Feder desselben Verfs. stammt ein im Journal de la Parfumerie
et Savonnerie francaises veröffentlichter Artikel „Lavande et Essence", der als
ein Appell an die kleinen Lavendeldestillateure aufzufassen ist, ihre Fabrikations-
weise mehr den Fortschritten und der Erfahrung der Technik anzupassen, um
gehaltreichere Öle und bessere Ausbeuten zu erzielen.

511. Langgaard, A. und Maass, A. Racemischer Kampfer. (Therap .
Monatshefte, 1907, No. 11.)

Die von den Autoren angestellten Versuche haben ergeben, dass nach
Versuchen mit Tieren und an Menschen synthetischer Kampfer dieselbe thera-
peutische Wirkung hat wie das Naturprodukt.

512. Lange, Wilhelm. Untersuchung der Samen der Mondbohne,
Pliascolus lunatus L. (Arb. Kais. Gesundheitsamt, XXV, 1907, Heft 1.)

Verf. untersuchte Bohnen, die einer aus Java über Hamburg eingeführten
Sendung entstammten. Die Probe bestand aus einem Gemisch verschieden
farbiger Bohnen.

Der Blausäuregehalt der Bohnen konnte wie folgt festgestellt werden:

Farbensorte

Von dieser Sorte waren

in dem ursprünglichen

Gemische vorhanden

Gefundene Prozent
Blausäure

°/o

Versuch I ! Versuch II

1

Weisse

3,95
17,59

0,12
0,24

0,12

2

Hellbraune

0,24

3

Dunkelbraune

16.67

0,16

0,16

4

Kot- bis blau violette .•

22,47

0,19

0,19

5

Schwarze

2.16

0,12

—

6

Gesprenkelte

37,16

0,18

0,20

Von Interesse ist die Tatsache, dass auch die
stark blausäurehaltis sind.

ganz weissen Bohnen

513. Laubert, R. Der falsche Meltau des Spinats. (Gartenfl., 1907. p.95.)
Der falsche Meltau ist zwar häufig, aber nicht allzii schädlich, weil er

nirgend epidemisch auftritt. Wird ein Beet von falschem Meltau befallen, so

erkranken niemals alle Pflanzen.

Als Erreger ist Peronospora eff'usa anzusehen.

36

564 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [150

Auf die übrigen zahlreichen Details der interessanten Arbeit kann hier
nicht eingegangen werden.

514. Laurent, M. J. Recherche du Saccharose et des glucosides
dans quelques graines de la famille des Loganiacees. (Journ. de
Pharm, et de Ohimie, 6. ser., XXV, 1907, p. 225-228.)

Verf. hat bei seinen Untersuchungen folgende Arten berücksichtigt:
Strychnos nux vomica L., St. Ignatii Berg, St. potatorum L., St. spinosa, St- Ba-
Jcanko. Er stellt seine wichtigsten Ergebnisse in Form einer Tabelle zusammen,
aus der hervorgeht, dass der Gehalt an Saccharon bei den einzelnen Arten
ganz erheblich schwankte, indem er 1 g, 22 bis 8 g, 60 p. 100, beträgt. Doch
scheinen diese grossen Differenzen angesichts gleicher Unterschiede, die man
bei anderen Familien beobachtet hat, nicht besonders auffallend.

K. Krause.

515. Leersuin, von. Neue Untersuchungen über die Ontogenie
der Uhinaalkaloide. Jahresb. d. Gouvern. Kina-onderneming f. 1907.

516. Lefebvre, Cll. Anwendung der biochemischen Methode zum
Nachweis der Familie der Glykoside in den Pflanzen der Zucker-
arten der Taxineen. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 493.)

516a. Lefebvre, C. Sur la taxioatine, glucoside nouveau retire
du Taxus bacccita L. (.Journ. de Pharm, et de Chimie, 6. ser., XXVI, 1907.
p. 241—254.)

Verl' hat aus Blättern und jungen Zweigen von Taxus baccata L. ein
neues Glucosid isolieren können, das er als Taxikatin bezeichnet; er beschreibt
in der vorliegenden Arbeit zunächst die Herstellungsmethode dieses Körpers,
sowie weiter seine verschiedenen chemischen und physikalischen Eigenschaften
und geht endlich auch noch darauf ein, in welchen Mengen sich das Glucosid
während der verschiedenen Jahreszeiten in der Pflanze \orfindet. Er kommt
dabei zu dem Ergebnis, dass es im Herbst und im Winter in grösserer Menge
auftritt als in der Zeit vom April bis Juli. K. Krause.

517. Lefebvre, Ch. Über das Taxikatin, das Glykosid der Blätter
von Taxus baccata. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 486.)

Der Verf. gibt einen ausführlichen Bericht über eine schon früher an-
gezeigte Arbeit.

518. Leger, M. E. Sur les aloes de Jafferabad et de 1'Ouganda.
(Journ. de Pharm, et de Chimie, 6. ser., XXV, 1907, p. 476—483.)

Verf. beschäftigt sich zuerst mit den Eigenschaften einer in Indien ge-
wonnenen und vorwiegend auf dem Markte von Bombay in den Handel kom-
menden Aloe, der sog. Aloe von Jafferabad; dieselbe ist bisher noch nicht in
Europa verwendet worden, wird aber in ihrem Ursprungslande ziemlich viel
benutzt. Die zweite untersuchte Sorte, die Ugandaaloe, stammt wahrschein-
lich von Aloe ferox Miller ab und ist jedenfalls identisch mit der bekannten
Kapaloe und der Barbadosaloe. Weitere Untersuchungen zum genaueren
Nachweis dieser Identität stellt der Verf. für die nächste Zeit in Aussicht.

518a. Leger, M. E. Sur la barbaloi'ne; son existence dans la
plupart des aloes, composition et formule. (Journ. d. Pharm, et de
Chimie, 6. ser., XXV, 1907, p. 513-517.)

Verf. beschäftigt sich mit dem Vorkommen des schon früher von ihm
studierten Barbaloins bei verschiedenen Aloe-Arten und mit dessen Zusammen-
setzung. Auf Grund seiner Untersuchungen glaubt er für das Barbaloin die
Zusammensetzung C.iiH20Oy annehmen zu müssen.

151] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 555

."> 1 9. Leger, E. Umwandlung des Barbaloins in ein isomeres
Aloin: das,:? -Barbaloin und das Vorkommen dieses letzteren in den
verschiedenen Aloeorten. (Compt. rend., CXLV, 1907 p. 1 179.)

Wird Barbaloin auf lßO— 165° erhitzt, so tritt ein in gelben Nadeln
kristallisierendes Chlorderivat auf, dem die Formel C:iH]0Cl4O9 -f- 4 H20 zu-
kommt.

Das ^-Barbaloin hält der Verf. für optisch isomer mit Barbaloin.

Lässt man auf rohe Kap- oder Ugandaaloe Salzsäure und Kaliumchlorat
einwirken, so entsteht ein gelbweisser, Nadeln kristallisierender Stoff CUHUC1403.
Er ist also anzusprechen als ein Tetrachloroxymethylnaphthoohinon.

Bezüglich der weiteren interessanten Ausführungen der Arbeit sei auf
das Original verwiesen.

520. Leger, E. Über Aloe von Jafferabad und von Uganda.
(Journ. Pharm China., XXV, 1907, p. 476.)

Aus dem echten Aloe von Jafferabad stellte der Autor ein Aloin (13,6%)
her, über das er genaue Angaben macht. Die auf dem Londoner Markt mit
L'gandaaloe bezeichnete Ware stammt nicht aus Uganda, sondern wird in'
der Kapkolonie gewonnen.

Sie stammt von Aloe ferox Miller, \ on welcher Species aus der Kapaloe
gewonnen wird.

Dem Verf. gelang u. a. der Nachweis, dass die sogen. Ugandaaloe nur
ein Barbadosaloe ist.

521. Leger, E. Über das Barbaloin, sein Vorkommen in den
meisten Aloearten, seine Zusammensetzung und Formel. (Journ.
Pharm. Chim, XXV, 1907, p. 513.)

Die als Socaloin, Jaffaloin, Barbaloin, L-gandaaloin beschriebenen Pro-
dukte sind weiter nichts als Barbaloin.

Für dieses gibt der Verf. die folgende Formel an: CLi1H20Ot).

Danach ist das Barbaloin ein Isomeres des Frangulin. Es ist also ein
besonderes Glykosid, Derivat des Methylisooxychrysatins und einer Methvl-
aldopentose.

522. Lemaire, P. Arbutin und seine Unterscheidung von Hydro-
chinon. (Ann. Chim. analyt. appL, XIII, 1908, p. 105.)

523. Lendrich, K. und Mnrdfield, R. Über coffeinfreien Kaffee.
(Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungsm.- u. Genussm., XV, 1908, p. 705.)

Der Verf. fand, dass der „cof feinfreie" Kaffee der Bremer Kaffee-
Handels-Aktiengesellschaft etwa noch '/6 des Coffeins des natürlichen Kaffees
enthält.

524. Lendrich, K. und Mnrdfield, R. Über eine erhebliche Fehler-
quelle bei der Bestimmung des Coffeins nach dem Verfahren von
Juckenack und Hilger. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs- u. Genussm^.
XVI, 1903, p. 647.)

525. Lengerken, Otto von. Handbuch neuerer Arzneimittel. Frank-
furt a. O., 1907.

Im ersten Teil des Werkes bringt der Verf. eine Aufzählung von Arznei-
mitteln und Nährstoffpräparaten. Die Ausführungen über die einzelnen Stoffe
sind sehr genau.

Im zweiten Teil sind Mittel mehr in lexikalischer Art und Weise auf-
gezählt.

566 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [152

526. Lenbartz, H. Mikroskopie und Chemie am Krankenbett.
5. umgearb. Aufl., Berlin 1907, 405 pp.

527. Lenz, W. Anleitung zu medizinisch-chemischen Unter-
suchungen für Apotheker. Verlag Springer, 1907.

528. Lepeschkin, X. Über Oleum cadinum. (Journ. russ. phys.-chem.
Ges., XL, 1903, p. 126.)

In Oleum cadinum gelang es dem Verf.. ein neues Sesquiterpen von der
Formel Ci5H14 nachzuweisen.

Das Chlorhydrat dieses Sesquiterpens ist flüssig. Kristallisierte Derivate
konnten nicht erzeugt werden.

529. Leprince. Beitrag zum chemischen Studium der Mistel
(Viscum album). (Compt. rend., CXLV, 1907, p. 940.)

530. Leucbs, H. Zur Kenntnis der Strychnosalkaloide. (ßerl. Ber.,
1908, p. 1711.)

531. Lenobtenberger, C. Über ein ialsches Euphorbium. (Arch.
Pharm., 1907, p. 690.)

532. Leuchtenberger, C. Über das Harz von Pinus Jeffreyi Murr.
(Arch. Pharm., 1907, p. 701.)

533. Levy, Fritz. Über das Bornyval (Borneolisovaleriansäure-
ester) und sein Verhalten im Organismus. (Therapeut. G-egenw., 1907,

p. 18.)

Bornyval ist das „wirksame Prinzip" der Baldrianwurzel. Im Organismus
geht die Glykuronsäurepaarung mit Borneol vor sich.

Verl, nennt das Bornyval auf Grund seiner eigenen genauen und weit-
läufigen Untersuchungen ein hervorragendes Hilfsmittel bei der Behandlung-
vielseitiger nervöser Störungen, wie Hysterie in ihren einzelnen Erscheinungen.

534. Levy, P. Zur Kenntnis des amerikanischen Kolophoniums.
(Berl. Ber., XL, 1907, p. 3658.)

Verf. konnte bei seinen eingehenden Untersuchungen nachweisen, dass
das aus Harzöl von Krämer und Spilker gewonnene Produkt, für das die ge-
nannten Verff. (Berl. Ber., XL [1907], p. 3658) die Formel C18H28 festgelegt
hatten, identisch ist mit dem vom Verf. bei der Vakuumdestillation von
Abietinsäurechlorid erhaltenen Abietin C19H28.

535. Lingner, R. A. Herstellung fester Kondensationsprodukte
aus Copaivabalsam. (Chem. and Drugg., X, 1907, p. 521.)

536. Litzendorff, Jac Über die Verwendung des Nitrons zur Be-
stimmung der Salpetersäure im Boden und in Pflanzen. (Berl. Ber.,
XXXVIII, 1907, p. 861.)

537. Lloyd, J. N. Der Anbau von Hydrastis. (Pharm. Rev., XXVI,
1908, p. 140.)

Als wild vorkommende Pflanze ist Hydrastis so ziemlich ganz ausgerottet.
Hand in Hand damit geht die grosse Preiserhöhung, die die Droge in den
letzten Jahren bekommen hat.

Verf. meint, das nicht allzuschwer zu kultivierende Hydrastis sollte in
geeigneten Gegenden in hinreichender Menge angebaut werden.

538. Lloyd, St. J. Vorläufige Notiz über die Konstitution der
Gallusgerbsäure. (Chem. News, XCVII, 1908, p. 133.)

Nach sehr genauen Moleculargewichtsbestimmungen einzelner kristalli-
nischer Gallusgerbsäureverbindungen kommt der Verf. zur Ansicht, dass die

153] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 557

natürliche Gallusgerbsäure aus drei zu einem Sechs-Element-Ring vereinigten
Pigallusgruppen gehört:

OH COOH

t> O Cx Rj

Rl / l\

K R 0 worin P = < >0H,Rl = _0- .^

-X \ I / OH OH OH

K O C— -Rj

539. Lob, W. Über den Aufbau und Abbau des Zuckers in der
Natur. (Ber. D. Pharm. Ges., 17, 1907, p. 117.)

540. Löhr, H. Über das spezifische Gewicht des ostindischen
Sandelholzöles. (Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 1040.)

541. Loew, 0. und Aso, K. Benzoesäure in Pinguicula vulgaris. (The
botan. Mag. of Colleg. of Tokyio, XXI, 1907, p. 107 ff.)

Verff. kommen zu folgenden Ergebnissen:

„Es ist eine auffallende Tatsache, dass Insekten, welche auf den
schleimigen Blättern von Pinguicula vulgaris sich oft in grösserer Menge
niederlassen und da absterben, keinen Fäulnisgeruch erkennen lassen. Die
Wahrscheinlichkeit, dass eine antiseptische Substanz von den Blättern mit
dem Schleim secerniert werde, führte schon vor Jahren den einen von uns
(L.) zu einem Versuch mit den Blättern. In eine 0,5 prozentige, neutrale
Lösung von Pepton wurden zahlreiche frische Blätter von Pinguicula gebracht
und nach Stunden die Flüssigkeit in einen Kolben abgegossen. Weder Pepton
noch Kolben war sterilisiert worden, der Kolben wurde nicht verschlossen.
Selbst nach drei Wochen zeigte diese Flüssigkeit keine Spur von Fäulnis-
geruch. Eine geringfügige Bakterien Vegetation war zwar voi-handen, dieselbe
rief aber nur einen schwachen Geruch nach rohem Leim hervor. Durch Er-
hitzen auf 75 ° wurde die antiseptische Wirkung nicht zerstört.

Da die Möglichkeit vorlag, dass Benzoesäure das antiseptische Agens
sei, haben wir an der Sonne getrocknete Pinguicula-I'ila.rizen mit Wasser
extrahiert und die sauer reagierende Flüssigkeit mit Äther ausgeschüttelt.
Dieser hinterliess nach dem Verdunsten eine kristallinische Masse, gemengt
mit gelber amorpher Substanz und etwas Gerbstoff. Durch zweimaliges Um-
kristallisieren aus wenig heissem Wasser konnten jene Kristalle rein erhalten
werden. Ihr Schmelzpunkt wurde zu 122 ° gefunden, während für Benzoesäiire
120 — 121,4 ° angegeben wird. Der Habitus der Tafeln und Nadeln glich genau
dem der reinen Benzoesäure, ebenso der Geruch. Die Formen des Kalksalzes
glichen genau denen des benzoesauren Kalks, so dass über das Benzoesäure-
vorkommen in Pingiticula kein Zweifel mehr obwalten kann. — Die Pinguicula
lässt es also nicht zu einer Fäulnis der gefangenen Insekten kommen, wie die
Ufricularia es tut.

Dass verschiedene Harze Benzoesäure enthalten, ist seit lange bekannt;
der eine von uns fand sie ferner in den Preisseibeeren, und kürzlich wurde
sie von Ootton auch in Rhinanthus major und Rh. minor beobachtet. In
Husemanns und Hilgers „Pflanzenstoffe" findet sich angegeben, dass sie auch
in den Samen von Euonymus europaea und in den Wurzeln von Acorus Calamus,
Pimpinella Saxifraga und Inula Helenium vorkomme. Vielleicht findet sie sich
noch in anderen Pflanzen; denn Wiesner berichtet, dass aus seinen Versuchen
das Vorhandensein antiseptisch wirkender Substanzen in Lysimachia, Begonia,
Tradescantia, Ranunculus aquatilis, Danen s Carola und Chenopodium gefolgert

568 Berichte über die pharrnakognostisehe Literatur aller Länder. (154

werden müsse. Wiesner vermutet, dass sieb Bodenwurzeln und Wasserpflanzen
durch antiseptische Mittel gegen Angriffe von Bakterien schützen. In Daums
Carola kommt nun ausser einem ätherischen Öl, auch eine sehr geringe Menge
einer sich der Benzoesäure ähnlich verhaltende Säure vor. Aus 800 g Wurzeln
erhielten wir jedoch nicht genügend, um nach weiterer Reinigung wenigstens
eine Schmelzpunktbestimmung ausführen zu können.

542. Lohmann, W. Das Stovain in der Infiltrationsanästhesie.
(Ex Zeitschr. f. angew. Chem., XX, 1907, p. 29.)

Stovain ist 1904 von Fourneau dargestellt worden. In Wasser löst es
sich sehr gut und bleibt dauernd gelöst, wodurch es sich vom Eucain vorteil-
haft unterscheidet. Der Infiltrations- und Nährschmerz ist geringer als beim
Eucain. Es besitzt antiseptische Eigenschaften, ohne kollabierende, sondern
tonisierende Wirkungen auf die Herzfunktionen. Nebenwirkungen fehlen ihm
gänzlich. Medizinisch ist es in 0,5 — 1 prozentigen Lösungen zu gebrauchen.

543. Loock. Zur Beurteilung von Zimt. (Zeitschr. f. öffentl. Chem.,
XIV, 1908, p. 86.)

544. Lorenzen, J. Kautschuk. (Apoth.-Ztg., 1908, p. 295.)

Der Verf. empfiehlt für die fünfte Ausgabe des Deutschen Arzneibuches
nur den von Hevea guineensis stammenden Kautschuk. Der Verf. meint, dass
sich nur dieser besonders zur Pflasterfabrikation eigne.

Nötig wäre eine Prüfung auf den Gehalt an Kautschukharzen, die un-
verseifbar sind.

545. Lubimenko, W. Einfluss des Lichtes auf die Entwickelung
der Früchte und Samen. (Compt. rend., CXLVII, 1908, p. 1326.)

Zur Fruchtbildung ist nach Ansicht des Verfs. Licht nur im ersten
Stadium notwendig. Später kann sich die Frucht auch ohne Belichtung gut
weiterentwickeln.

Sehr wird durch Dunkelheit die Bildung der Trockensubstanz in den
Früchten herabgesetzt. Das Belichtungsoptimum entspricht dem stark abge-
schwächten Tageslicht.

546. Lucchini, V. Über eine neue Verfälschung des Santonins.
(Boll. Chim. Farm., XL VII, 1908, p. 7.)

In einigen Santoninhandelsproben konnte der Verf. Zitronensäure und
Weinsäure feststellen.

Die Zitronensäure war schon geschmacklich bemerkbar und liess sich
durch Erhitzen von 0,1 — 0,2" g der Probe auf 110° leicht nachweisen.

Das Stintonin schmilzt hierbei schon bei einem G-ehalte von 10°/0
Zitronensäure.

Die geschmolzene Masse nimmt dabei gelbe Färbung an.

547. Lücker, E. Oleum Caryophyllorum. (Apoth. Ztg., XXII, 1907,
p. 1045.)

Der Verf. betont, zur Prüfung auf Terpentinöl das Verhalten des ver-
fälschten Produktes gegen Natronlauge heranzuziehen.

Mit der vierfachen Menge Natronlauge vermischt, wird das Eugenol-
natrium in wunderschönen gelben Nadeln erhalten. Durch Erwärmung wird
eine klare Lösung erzielt. Terpene verraten sich durch Trübung.

548. Liidy. Oleum Tempiini und seine Darstellung. (Schweiz.
Wochenschr. ühern. Pharm., XLV, 1907, p. 818.)

549. Liihrig, H. Zur Kenntnis des Wacholderextraktes. (Pharm.
Centralh., XLIX, 1908, p. 277.)

155] Berichte über die puarmakognostische Literatur aller Lanier. 5ß9

550. Lyons, A. B. Hyoscyamus muticus- (Amer. Drugg., LI, 1907, p. 1390.)
Der Verf. warnt eindringlich davor, an Stelle von Hyoscyamus-niger-

Blättern solche von Hyoscyamus muticus zu verwenden, da diese bedeutend
weniger Hyoscyamin enthalten sollen.

551. Lyons, A. B. Zur Bestimmung des Alkaloidgehaltes im
Fluidextrakt aus Folia Belladonnae. (Pharm. Rev., 1908, p. 22.)

552. Majoina, R. und Cho, S. Über einen Hauptbestandteil des
japanischen Lackes. (Ber. D. Chem. Ges., XI, 1907, p. 4390— -1393.)

Der japanische Lack wird aus dem Stamm der Anacardiacee Rhus verni-
cifera DC. gewonnen. Sein Hauptbestandteil ist die von Yoshida zuerst isolierte
Urushinsäure, die sich je nach Pflanzenort und Jahreszeit zu 60—80 °/0 in der
Lackflüssigkeit vorfindet und denselben ihre ausgezeichneten Eigenschaften
als Anstrichmittel gibt. Verff. haben sich nun vorwiegend damit beschäftigt,
die chemischen Eigenschaften dieser Säure, die bisher mir unvollkommen
bekannt waren, genauer zu studieren und auch soweit wie möglich deren
Zusammensetzung festzustellen. Nach ihren Beobachtungen besteht die Säure
aus C 79,65 %, H 9,75 °/0. Des weiteren geben sie eine ganze Anzahl charak-
teristischer Reaktionen sowie Bemerkungen über das Verhalten der Säure bei
der Methylierung, Acetylierung usw., alles Angaben, die fast ausschliesslich
chemisches Interesse besitzen. K. Krause.

553. Majima. R und Cho, S. Japanischer Lack. (Berl. Ber, 10, 1907r
p. 4391.)

554. Makoshi, K. Über die Alkaloide der chinesischen Corydalis-
Kn ollen. (Arch. d. Pharm., CCXLVI. 1908, p. 381.)

555. Malagnini, G. und Armanni, 0. Über das Sesamöl. (Chem. Ztg. ,.
XXXI, 1907, p. 884.)

556. Mameli, E. Über das Cubebin. (Gaz. chim. ital., XXXVII, 1907,
p. 37.)

557. Mann, E. und Jnce, W. H. Beiträge zur Kenntnis der Gift-
pflanzen Westaustraliens. (Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 10.)

558. Marchlewski, L. Studren in der Chlorophyllgruppe. ^Berl.
Ber., XLI, 1908, p. 453.)

559. Marcille, R. Über die Entkernung der Oliven. (Seifensied.-
Ztg., XXXV, 1908, p. 644, 664, 689, 729.)

560. Marsh, E. und Jersey, R. de. Dijodkampfer. (Proc. Chem. Soc,
XXIII, 1907. p. 119.)

561. Martenson, J. Über eine Teeuntersuchung. (Pharm. Post,
XL, 1907, p. 912.)

562. Martinand, V. Untersuchung über das In vertin oder Sucrase
und die Saccharose in den verschiedenen Organen des Weinstocks
und in einigen Früchten. (Compt. rend., CXLIV, 1907, p. 1376.)

563. Mastbaum, Hugo. Über ein fettspaltendes Enzym in der
Kolanuss. (Chem. Rev., 1907, p. 44.)

564. Mattlies, H. Analysen einiger Nahrungs- und Genuss-
mittel, Gebrauchsgegenstände und Medikamente der Hottentotten
und Kalaharibewohner. (Ber. D. Pharm. Ges., XVII, 1907, p. 308.)

Dem Verf. wurden eine Reihe Gegenstände zur Untersuchung gegeben,
die der bekannte Forschungsreisende Leonhard Schnitze in Südwestafrika ge-
sammelt hatte. Der Arbeit sind zahlreiche Abbildungen beigegeben. Es
werden besprochen :

570 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [156

Narakürbisse. Sie stammen von Acanthosicyos horrido, Welw. Man
gebraucht sie als Nahrungsmittel in der Weise, dass die ausgeschälten Früchte
in walnussgrosse Stücke zerschnitten werden. Die reifen Früchte werden nur
mit Fettzusatz, die teilweise unreifen mit Wasser angesetzt, dann gekocht und
mit einem Quirl verrührt. Die Masse wird dann durch ein Sieb gerührt und
dann lässt man den erhaltenen braungelben Brei auf Sand erstarren. Die er-
starrte Masse heisst Narakuchen. Sie riecht wie frischer Pumpernickel,
schmeckt süss, kräftig und aromatisch.
Aus der Analyse ergab sich:
15,3 °/0 Wasser, 40,2 (l/o Zucker nach der Inversion,

47,9 °/0 wasserlösliches Extrakt, 3,12 °/0 P205,

16,7 °/0 Ätherextrakt, 27,8 °/0 Zucker vor der Inversion,

1 9,52 o/0 Mineralstoffe, 4,4 o/„ Mineralstoffe.

7,62 °/0 Eiweisssubstanzen,

Aus den angenehm schmeckenden Samen der Narafrucht wird ein hell-
gelbes fettes Öl gepresst, das einen angenehmen und milden Geschmack hat
Ihm kommt die Jodzahl 105,8, die Verseifungszahl 196,7 und die Refraktion
bei 25« nD 1,4720 zu.

Feld zwiebeln. Sie stammen von einer Irideae (Babiana spec). Sie
haben die Grösse einer Haselnuss und das Gewicht von 1 g. Sie sind um-
schlossen von braunen trockenhäutigen Niederblättern. Die enthüllten Zwiebeln
enthalten :

74,96% Stärke, 82,73 °/0 stickstofffreie Extraktivstoffe,

1,62 u/0 Mineralstoffe, 0,7286 o/0 P2Os.

Greioia flava- Die Früchte dieser Tiliaceae enthalten 4,19 °/0 Eiweiss-
substanzen und 63,792 o/0 Zucker aus Dextrose. Diese Früchte werden von
den Eingeborenen zur Herstellung eines vorzüglichen Bieres verwendet.

Es werden dann noch einige Kosuretika usw. besprochen, derentwegen
aber auf das Original verwiesen sei.

565. Matthes, R. H. Zur Bestimmung der Kakaorohfaser. (Ber.
d. Deutsch. Chem. Ges., XLI, 1908, p. 400.)

566. Matthes, H. und Raniiistedt, 0. Die Verwendbarkeit der Pik ron-
säure (Dinitrophenylmethylpyazolon) zur Wertbestimmung narko-
tischer Drogen, Extrakte und Tinkturen. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907,
p. 112.)

567. Matthes, H. und Sander, H. Über Lorbeerfett, insbesondere
dessen un verseif bare Bestandteile. (Arch. Pharm., 1908, p. 246.)

567a. Mathewson. Die optische Drehung des Gliadins in ge-
wissen organischen Lösungsmitteln. (Jourm Amer. Soc, XXVIII,
p. 1482 ff.)

568. Mc Bridel. Neue Bemerkungen über die Darstellung des
Aqua Lauro-cerasi des neuen Codex. (Journ. Chim. Pharm., XVIII,
1908, p. 358.)

569. Mc Ilhyiney. Analysenmethode für Gummilacke. (Ref.
Gummiztg., 1908, p. 1376.)

Wird eine Lösung des Harzes des Gummilacks in absolutem Alkohol
oder in Eisessig mit Petroläther gemischt, so treten nach Wasserzusatz zwei
Schichten auf; bei diesem Vorgang nimmt der Petroläther das Harz und das
Wachs des Gummilacks in sich auf.

157] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 571

In der anderen Schiebt sind die übrigen Bestandteile des Lackes. Zur
Analyse werden 2 g Substanz, in 20 cem Eisessig oder absolutem Alkohol
gelöst, dann die erkaltete Lösung allmählich mit 100 — 300 cem Petroläther
(Siedepunkt 80° C) behandelt, hierauf wird tropfenweise unter fortwährendem
Umrühren 100 cem Wasser hinzugetan.

In einem vorher gewogenen Kolben wird dann der Petrolätherauszug
abgelassen, er wird nun eingedampft und der Rückstand gewogen.

Dieser Rückstand besteht aus Harz und Wachs.

Um zu trennen, verseift man mit überschüssigem, alkoholischem Kali
die Harzsäuren.

Beim Ausschütteln geht dann nur das Wachs in den Petroläther über.

Die alkoholische Seifenlösung wird jetzt weiter in einem gewogenen
Kolben erhitzt und der Alkohol verflüchtigt: die Harzsäuren können dann
nach Ausscheidung mit Salzsäure bestimmt werden.

Nach dieser Methode können bestimmt werden:

1. Die Kopalharze, 2. die Kauriharze, 3. die Sandarakharze, 4. die
Dammarharze.

570. Mc Illiviney. P. C. Die Schellackanalyse. (Journ. Americ. Chem.
Soc. XXV, 1908, p. 867.)

571. Mannich und Herzog. Karite-Gutta von Butyrospermum Parkii.
(Arb. a. d. Pharm. Inst. d. Univ. Berlin. V, 1908, p. 278.)

Es wurden gefunden:

4,85 °/o mechanische Verunreinigungen,
10,:> (,/n Wasser,
66,2 o/0 Harz,
24 ö/0 kautschukartige Bestandteile.

Karite-Gutta hat also zwar einigen Wert, kann aber nicht als voll-
wertiger Ersatz für Guttapercha angesehen werden.

571a. MaqiHMiue, L. Über die Stärke und ihre diastatische Ver-
zuckerung. (Bull. d. 1. Soc. Chim. de Paris, 1906, 3, t. XXXV, p. 1—15.)

Verf. gibt zuerst einen Rückblick über das von früheren Forschern auf
diesem Gebiete gesammelte Material, das ihm bei Beginn seiner Arbeit vorlag.
Allgemein wurde für Stärke, Dextrin und ähnliche Substanzen die Summen-
formel (C6H10O5)n angenommen, was aber nach Verf. nur einem Grenzzustand
entspricht und daher ungenau ist. Er formuliert die Zusammenstellung dieser
Körper als (C6H1206)n — (n — 1) H.:0.

Allen diesen verwandten Substanzen ist die Eigenschaft gemeinsam,
durch Hydrolyse erst in Maltose, dann weiter in Dextrose überzugehen. Durch
die Leichtigkeit, mit welcher sich Stärkekörner aus der Pflanze isolieren lassen,
verlockt, haben viele das nähere Studium und besonders auch die Ermittelung
der Molecnlargrösse der Stärke versucht. Verf. weist auf die Aussichtslosig-
keit eines derartigen Unternehmens hin, da die Stärke ein unentwirrbares
Gemenge homologer Substanzen darstellt, also keinem einheitlichen Molecular-
gewicht entsprechen kann. Diese Ansicht, dass die Stärke ein Gemisch darstellt,
ist schon früher von vielen anderen Gelehrten geäussert worden. Insbesondere
unterschied man zwischen einem löslichen und einem unlöslichen Teil in der
Stärke, von welchen der erste unter dem Namen Amidin, Amidon, Granulöse
oder lösliche Amylose, letzterer als unlösliche Amylose oder Amylozellulose
in der Literatur zu finden ist. Was endlich das Verhalten der Stärke bei der
Einwirkung der Diastase anbelangt, so hatten O'Sullivan, Brown und Morris

572 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 1158

die Ansicht aufgestellt, dass dabei das Stärkemolecül zu Maltose und Dextrin
aufgespalten, letzteres weiter in Maltose und ein weniger komplexes Dextrin
zersetzt würde, und dass diese Spaltung bis zu einer bestimmten Grenze fort-
schreite, die von der Temperatur in der Weise abhänge, dass bei Anwendung
von 60° im Endzustande neben 5 Teilen Maltose 1 Teil Dextrin, bei 80° aber
gar keine Maltose mehr neben Dextrin vorhanden sei. Man hatte dies Ver-
halten sogar in Analogie mit den Vorgängen bei der Verseifung der Ester
und dem sich dabei herausbildenden Gleichgewichtszustand gebracht.

Die genaueren Untersuchungen des Verfs. lassen ihn die meisten dieser
Angaben als falsch oder ungenau erkennen. Bei seinen Arbeiten ging er aus
von der Erscheinung der sogenannten „Retrogradation" der Stärke, worunter
er den Rückgang der gelösten Stärke in den unlöslichen Zustand versteht.
Es bilden sich dabei in der Lösung erst kleine Klümpchen, die sich immer
mehr zusammenballen und schliesslich abfiltriert werden können. Dies Coagulum
ist kaum löslich in kochendem Wasser, wird aber durch Alkali leicht in Lösung
gebracht und wird als solche durch Jod intensiv blau gefärbt, während Jod
auf die feste Substanz ohne Einwirkung ist. Diese Eigenschaften zeigen die
Identität des Körpers mit der Arnylozellulose früherer Forscher. Während
jene aber nur 3 — -4 °/0 davon in der Stärke vorfanden und sie deshalb gleichsam
nur als Verunreinigung derselben betrachteten, hat Verf. fast ein Drittel daraus
gewonnen. Durch Variation der Bedingungen, vorsichtigen Säurezusatz oder
Zugabe von Malz, welches auf 80° erhitzt war, insbesondere durch Verwendung
eines besonderen, die Retrogradation begünstigenden Enzyms, der Amylo-
coagulase, ist es Verf. gelungen, diese Substanz leicht zu erhalten; auch konnte
er sie durch Lösen in Wasser unter Druck bei 150° und Abscheiden in der
Kälte in reinen Zustand überführen. Sie zeigt dann grosse Ähnlichkeit mit
der natürlichen Stärke, von der sie sich fast nur durch ihre Löslichkeits-
verhältnisse unterscheidet.

Diese „künstliche Stärke" stellt nicht etwa ein durch die angewandte
Behandlungsweise entstandenes Kondensationsprodukt dar, denn es konnte
gezeigt werden, dass sie im Gegenteil durch längeres Erhitzen auf 150° durch
partielle Hydrolyse in löslichere Produkte übergeht. Sie muss vielmehr schon
als solche in ihrer ganzen Menge in dei ursprünglichen Stärke vorhanden sein,
und Verf. belegt die Substanz daher, da sie einen so wesentlichen Bestandteil,
der Stärke ausmacht, mit dem Namen Amylose, die, wenn sie in ganz reinem
Zustande vorliegt, die künstliche Stärke bildet. Die Amylose existiert also
in zwei Zuständen: Erstens in der festen Form, die durch Jod nicht gefärbt,
durch Diastase nicht angegriffen wird und in kochendem Wasser unlöslich ist.
Diese kann durch beigemengte niedere Homologe, wie sie in der natürlichen
Stärke sich neben ihr vorfinden, in Lösung gebracht werden. Zweitens:
Durch Erhitzen mit Wasser unter Druck auf 150° geht sie in die gelöste Form
über, die sich mit Jod intensiv blau färbt und vollständig durch Diastase ver-
zuckert wird. Die gelüste Amylose geht durch Retrogradation wieder in die
unlösliche über. Vielleicht haben wir es hier mit zwei verschiedenen Poly-
merisationszuständen zu tun.

Der andere Gemengteil der natürlichen Stärke, der sie schleimig und
teilweise unlöslich in Alkali macht, wird von Verf. als Amylopektin bezeichnet.
Es konnte bisher nicht isoliert werden. Bei Behandlung der Stärke mit
kochendem Wasser löst sich die Amylose, während das Amylopektin aufquillt.
Fällt nun beim Abkühlen die Amylose schwer löslich aus, so mengt sich mit

159] Berichte über die pharrnakognostisehe Literatur aller Länder. 573

ihr gleichzeitig das Amylopektin, indem die charakteristischen Klümpchen in
der Lösung entstehen. Eine Trennung der beiden Bestandteile kann nur durch
Behandlung mit Malz erreicht werden, welches die fest gewordene Amylose
nicht angreift, das Amylopektin aber zerstört. Immerhin lassen sich die Eigen-
schaften des Amylopektins ableiten aus den Unterschieden, die noch zwischen
der künstlichen Stärke (reiner Amylose) und der natürlichen Stärke bestehen.
Da ist vor allem das verschiedene Verhalten konzentrierter Lösungen gegen
Jod zu bemerken, indem Lösungen von Amylose damit ein viel intensiveres
Blau (etwa um '/4 stärkeres) geben, als gewöhnliche Stärkelösungen. Man
muss daher annehmen, dass die Stärke einen entsprechenden Teil, also etwa
J/ft einer Substanz enthält, die durch Jod nicht gefärbt wird. Verf. macht es
wahrscheinlich, dass diese Eigenschaft, durch Jod nicht gefärbt zu werden,
dem Amylopektin zukommt.

Ein eingehendes Studium, welches auch wieder einen Schluss auf die
relative Menge des Amylopektins in der natürlichen Stärke zulässt, widmet
Verf. der Verzuckerung. Wie bereits erwähnt, nahm man früher an, dass die
Umwandlung der Stärke in Maltose bis zu einer Grenze von */5 möglich sei,
der Rest aber in Form von Dextrin zurückbleibe. Verf. stellt vor allein fest,
dass der Malzauszug, je nach den Bedingungen, von sehr wechselnder Wirk-
samkeit sein kann. Beim Aufbewahren in Gegenwart antiseptischer Mittel
steigt seine Wirksamkeit mit der Zeit. Diese Autoexzitation, welche wahr-
scheinlich verursacht wird durch eine Zersetzung der Eiweisskörper des Malzes
und einer damit zusammenhängenden Vermehrung der Enzyme, kann nach-
gewiesen werden durch die kräftigere Hydrolyse, welche die Stärke mit einem
solchen Malzauszug erfährt. Beim Erwärmen einer derartigen Malzflüssigkeit
steigert sich ihre Aktivität bis zu einem Maximum, um dann durch das Ein-
setzen der zerstörenden Wirkung von zu grosser Hitze, wieder zu sinken.
Eine ähnliche, aber schnellere Erregung des Malzauszuges wird erreicht durch
gemässigten Zusatz von starker Säure. Verf. hat das Reaktionsoptimum, bei
welchem schnellste und reichlichste Maltoseproduktion aus der Stärke erfolgt,
ermittelt. Es liegt bei einer Alkalinität, die ungefähr 3/5 der ursprünglichen
Malzalkalinität entspricht. Der Vorgang, der bei der Autoexzitation langsam
stattfindet, die Erreichung eines gewissen Gleichgewichtszustandes im Malz,
wird also durch die Säure beschleunigt. Mit einem derartig zubereiteten
Malzauszug konnte nahezu die theoretische Menge an Maltose (105,5% der
reinen Stärke) gewonnen werden. Es wurden nämlich 103,4 % erhalten. Es
zeigt dies also, entgegen den früheren Anschauungen, dass die gesamte Stärke
in Maltose übergeführt werden kann, dass sie somit ganz aus Maltosanen
besteht.

Die hydrolytische Reaktion verläuft dabei in zwei Phasen. ijb der
Stärke werden sehr schnell, in einigen Stunden, in Maltose verwandelt. Das
letzte Fünftel aber braucht bis zur Beendigung der Reaktion mehrtägiges Er-
hitzen und wurde deshalb von früheren Forschern übersehen. Die zweite
Phase wird wahrscheinlich verursacht durch die Autoexzitation des Malzes
und ein hierdurch erzeugtes neues Enzym. Die Stärke hesteht demnach zu
•/5 aus einer Substanz, die von der Diastase des frischen Malzes nicht, sondern
erst von dem durch Autoexzitation entstehenden Enzym angegriffen wird.
Diese Substanz ist nach Verf. das Amylopektin, da ja Amylose in gelöstem
Zustande vollständig und ohne Auftreten der zweiten langsamen Phase in
Maltose verwandelt wird. Wird die Autoexzitation nicht abgewartet, so findet

574 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. [160

sich das Amylopektin in Form von Dextrinen, wie sie von den früheren Ge-
lehrten beobachtet wurden, vor. Da reine Amylose im Laufe der ersten Phase
während derselben Zeit 20% mehr Maltose gibt als dasselbe Gewicht ge-
wöhnlicher Stärke, so werden wir auch durch diese Untersuchung zu dem-
selben Resultat geführt wie bei der Beobachtung der verschiedenen Färbung
durch Jod. Es ergibt sich wiederum, dass die Stärke neben 80% Amylose
etwa 20% Amylopektin enthalten muss. Das steht in einem auffallenden
Kontrast zu der früheren, von anderen Forschern gemachten Annahme von
97 % Granulöse und 3 % Amylozellulose (die entspricht unserer Amylose).
Die Untersuchungen des Verfs. haben ihn zu einer vollständigen Umwälzung
der alten Theorien geführt und lassen in ihrem künftigen Verlauf noch
manches überraschende Resultat ahnen.

572. Mansfeld, M. Kaffeeersatzmittel. (Jahresb. d. Unters, des Allg.
österr. Apoth.-Ver., 1907.)

Ein Gemisch aus Kaffee, Roggen und Cichorie wurde als Billigin
verkauft.

Eine untersuchte Kaffeekonserve enthielt neben Kaffee, Feigen, Cichorie,
Gerste und Saccharin.

573. Farbwerke vorm. Meister Lueius u. Brüning, Höchst a. M. Verfahren
zur Darstellung von Tan nin-Zimtsäure Verbindungen.

Verwendung bei allgemeiner Tuberkulosebehandlung in kleineren Dosen
und bei Darmkatarrhen, besonders tuberkulösen Dannkatarrhen.

574. Marshall. Über die Anwendung von Petroleumäther beim
Ausziehen medizinischer Drogen. (Am. Journ. of Pharm., 1907, p. 315 ff.)

Der Verf. hat gefunden, dass man keinen Rückstand erhält, wenn man
sofort nach der Destillation Verdampfung eintreten lässt. Grosser Rückstand
bleibt aber zurück, wenn man das Destillat in verschlossenen Flaschen bei
gewöhnlicher Temperatur und zerstreutem Lichte aussetzt und in den Flaschen
oberhalb der Flüssigkeit einen Abstand von ca. 1 1 lässt.

Diesen Umstand haben die ausgedehnten Versuche des Verf. bewiesen.
Aus 1900 ccm Flüssigkeit erhielt der Verf. nur 6,5062 g Rückstand von
gelbem und fettigem Äussern.

Verf. meint, dass Petroleumäther zum Erschöpfen medizinischer Drogen
nicht verwendet werden soll.

575. Merck, E. Jahresberichte. XXI, 1907, 317 pp.
Aus dem reichen Inhalt sei nur das folgende mitgeteilt:

Boldoa fragrans.

Die Blätter der Boldoa fragrans (Pemnus Boldus, einer in Chile und
Peru einheimischen Monimiacee) und die aus denselben dargestellten pharma-
zeutischen Präparate finden schon seit längerer Zeit als ein wirksames
Diureticum eine ziemlich ausgedehnte Anwendung in der Therapie der Leber-
und Blasenleiden. So hat man die Boldotinktur in 3 täglichen Dosen von
10—20 Tropfen erfolgreich bei Gonorrhoe, Dyspepsie und Blasenkatarrh, das
Fluidextrakt auch bei Rheumatismus, chronischen Leberkrankheiten und
atonischen Zuständen verschiedener Organe, teilweise auch als Tonicum an
Stelle von Chinin, in Dosen von 0,25—0,5 g mehrmals des Tages mit Vorteil
angewendet. Auf den Nutzen der Boldopräparate bei Cholelithiasis macht
neuerdings M. Fedeli aufmerksam. Er gab zweimal täglich 10—50 Tropfen
Boldotinktur nach den Mahlzeiten in Wasser und erzielte damit bei Gallenstein-
koliken das allmähliche Arerschwinden der Anfälle, sowie infolge Anregung der

161] Berichte über die pnarmakognostisohe Literatur aller Länder. 575

Magen- und Darmfunktionen einen besseren Abgang der Konkremente.
Ebenso bewährte sich die Medikation bei Cholecystitis und Perihepatitis. Die
Wirkung der Boldopräparate beruht nach Angabe des Autors auf deren
Cholagogen und sedativen Eigenschaften. In Kombination mit geeigneten
Mineralwässern dürften deshalb die Boldopräparate bei der Behandlung der
Gallensteine besonderer Beachtung wert sein.
Collinsonia canadensis.

Die Collinsonia canadensis L. ist eine in den atlantischen Gebieten Nord-
amerikas einheimische Labiate (Stachyoidea-Perillinae). deren Wurzel in der
Heimat der Pflanze schon seit längerer Zeit als Antispasmodicum, Adstringens
und bei Harnkrankheiten verwendet wird. C. N. Lochmann hat in der Droge
ein Harz und Gerbsäure nachgewiesen. Die Blätter der Pflanze sollen ein
ätherisches Öl enthalten. J. Chevalier fand in der Wurzel einen saponin-
artigen Körper. Letzterem schreibt er eine schwache tonische Wirkung auf
das Herz zu. womit die diuretische Kraft der Wurzel ihre Erklärung findet.
Als Dosis gibt er für Kinder 10—20 Tropfen der Tinctura Collinsoniae an.
Erwachsenen kann man 0,5-0,4 g der getrockneten, gepulverten Droge,
1 — 6 g der Tinktur, 0.1 — 3 g des Fluidextraktes oder eine entsprechende
Menge eines Infusums geben. Indiziert ist das Mittel bei Blasenkatarrh,
Leukorrhoe, Griesleiden, Wassersucht usw. Auch äusserlich sollen sich die
Collinsoniapräparate verwenden lassen. Zu Ca.taplasm.en für die Behandlung
von Wunden, Verbrennungen, Soor usw. hat man meines Wissens bisher die
Blätter der Pflanze bevorzugt.
Combt et mit Sundaicum-

Combretum Sundaicum Miquel ist nach E. M. Holmes ein auf Sumatra
einheimischer Strauch aus der Familie der Combretaceen, dessen Blätter von
den Chinesen schon seit längerer Zeit als Abgewöhnungsmittel des Opium-
rauchens verwendet werden sollen. Die Blätter und Stengel der Pflanze, der
sogenannten Antiopiumpflanze, werden nach dem Kosten in Form eines Auf-
gusses getrunken und sollen in kurzem einen Widerwillen gegen das Opium-
rauchen erzeugen. Da in der genannten Combretacee wie auch bei verwandten
Pflanzen, so dem Combretimi erianthum oder argenteum und dem Combretum
extensum oder latifolium, nur Gerbstoffe und Gummi nachgewiesen worden
sind, so ist die Wirkung der Droge schwer verständlich, es müsste denn sein,
dass sie Coffein enthält, das ja bekanntlich als Gegengift gegen akute Opium-
vergiftung verwendet wird. Ob sich die anderen oben genannten Combretaceen,
von denen die eine oder andere vielleicht mit Combretum Sundaicum identisch
ist. ferner Comh-elum Raimbaultii für den gleichen Zweck verwenden lassen,
ist sehr wahrscheinlich, müsste aber erst durch Versuche genau festgestellt
werden. Das Interesse für die neue Droge dürfte sich auf die Therapie des
Morphinismus beschränken.

Nach den Mitteilungen D. Hoopers existiert noch eine andere Anti-
opiumpflanze, die von H. N. Ridley beschrieben worden ist. Es ist das die
Mitragyna speciosa Korth. (Stephegyue Korth., Platanocarpus Hook.) eine im
tropischen Asien einheimische Rubiacee, deren Blätter ebenfalls als Mittel zum
Abgewöhnen des Opiumrauchens empfohlen worden sind. Sie sollen neben
Gerbsäure auch ein Alkaloid enthalten. Diese Droge ist nicht im Handel.

Hemiaria glabra-

Ähnlich wie der Arenaria rubra kommt bekanntlich auch der Hemiaria
glabra ein nicht unbedeutender diuretischer Effekt zu, doch ist bis heute noch

576 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [162

nicht festgestellt, welcher Bestandteil des Herniaria-Kvautes die wirksame
Substanz repräsentiert. Nach Gobley, Barth, Schneegans und Schulz, die über
diese Pflanze berichtet haben, enthält sie ein Alkaloid (Paronychin) und einen
saponinartigen Stoff, welchen beiden vielleicht die Wirkung des Krautes zu-
geschrieben werden darf, ausserdem noch Cumarin und den Methyläther des
Lmbelliferons, das sogenannte Herniarin. In den letzten Jahren haben sich
Goliner und M. Bauhölzer mit der therapeutischen Prüfung der in Vergessen-
heit geratenen Herba Herniariae befasst und nicht nur deren harntreibende
Wirkung erneut nachgewiesen, sondern auch festgestellt, dass die Droge keine
nachteiligen Nebenwirkungen erzeugt, wie dies von den neueren Diuretika
behauptet worden ist. Die beiden Autoren benützten für ihre Versuche das
sogenannte Herniol, eine Mischung der Fluidextrakte von Herniaria glabra und
der Folia uvae ursi oder auch einen Aufguss des Herniaria-Krautes. Vom
Herniol gibt man dreimal täglich 25 Tropfen in Wasser. Es soll sich besonders
bei Stauungserscheinungen infolge von Herz-, Nieren- und Gefässerkrankungen
bewähren, in seiner diuretischen Kraft sogar Coffein, Theobromin und Digitalis
übertreffen. (?) Ausserdem beeinflusst es die Eiweisausscheidung in sehr
günstiger Weise. Goliner konnte nach Darreichung von 15 g Herniol kein
Albumin mehr nachweisen und hält es deshalb auch für Nephritiker indiziert.
Bei ganz frischer akuter Nephritis ist das Präparat dagegen, wie Banholzer
feststellte, unwirksam. Erst nach Verlauf der ersten stürmischen Erscheinungen
ist eine Wirkung davon zu erwarten. Für die Hemiaria-Thera-pie kommen
ferner noch chronische Cystitis und Morbus Brightii in Betracht.
Mespilus germanica.

Die Früchte der Mispel, die in reifem Zustande als Speise genossen
werden können, sind im unreifen Zustande auch zu therapeutischen Zwecken
verwendet worden. So benützte man sie als Mittel gegen Durchfall und
Dysenterie. Die Blätter der Mispel haben vereinzelt in Form von Aufgüssen
zu Gurgelwässern gedient. Neuerdings empfiehlt A. Mercier, der den Wert
der reiten Früchte an sich selbst feststellen konnte, die Mispelfrucht, frisch
oder in konservierter Form gegen Enteritis chronica und besonders gegen
Colitis mucosa. In 22 Fällen beobachtete der Autor eine äusserst günstige
Beeinflussung der Krankheitssymptome, die sich bereits 2—3 Tage nach Beginn
der Mispelkur bemerkbar machte. Mercier schlägt deshalb folgende Be-
handlungs weise der chronischen Enteritis vor: Man verabreicht den Kranken
pro die nur 2 Liter Milch und lässt sie 230 g Mispeln essen, die von Schalen
und Kernen befreit worden sind. Erst wenn der Stuhl normal geworden ist
geht man allmählich zu kräftigerer Kost und zwar zunächst zur Darreichung
roher Eier, Reisbrei, Fisch, Gehirn, Huhn usw. über. Bei akuten Fällen von
Dysenterie müssen aber vor der genannten Behandlung erst die blutigen
Stühle durch Radix ipecacuanhae deemetinisata, Glaubersalz usw. beseitigt
werden. Nach Mercier ist die Wirkung der Mispel auf deren Gehalt an
Zitronensäure, Apfelsäüre, Kaliumtartrat, Magnesiumsalzen und Kaffeegerb-
säure begründet. Als Ersatz der frischen Mispeln bringt der Autor eine Ab-
kochung von 1000 g Mispeln, 800 g Zucker und 500 g Wasser, nach Art ein-
gemachter Früchte zubereitet, in Vorschlag.
Polygonum cuspidatum.

Wie das von Tunmann empfohlene Polggonum dumetorum soll sich
nach den Mitteilungen von Goris und Crete auch das Polggonum cuspidatum
Sieb, und Zucc. als Abführmittel verwenden lassen. Diese Polygonacee ist

163] Berichte über die pharoiakognostische Literatur aller Länder. 577

eine in China und Japan einheimische strauchartige Pflanze, die wegen ihres
schönen Aussehens auch als Ziergewächs beliebt ist.

Das Rhizom derselben enthält hauptsächlich in der Rinde und seinen
jüngeren Teilen Emodin. Genannte Autoren fanden im getrockneten Rhizom
0,Ü7°/o, während in der trockenen Rinde l,2°/0 und im trockenen Mark 1,4 %
davon enthalten sein soll. Man soll deshalb von den älteren Wurzelstöcken
nur die Rinde und junge Rhizome nur bis zur Dicke eines Bleistiftes zu thera-
peutischen Zwecken verwenden. Die Droge kann in Pulverform wie Rhabarber-
pulver gegeben werden, nur ist etwa eine doppelt so grosse Dosis als von
letzterem nötig.
Yohimbin.

Aus einer Studie über die pharmakodynamischen Eigenschaften des
Yohimbins, die F. Müller veröffentlicht hat, ist zu entnehmen, dass das
Präparat schon in kleinen Dosen eine Steigerung der Erregbarkeit des Atem-
zentrums hervorruft, während tödliche Dosen eine Atemlähmung bei fort-
gesetzter Herztätigkeit verursachen. Auf den Blutdruck haben die geringsten
noch wirksamen Gaben bei den künstlich ventilierten Tieren keinen oder doch
nur sehr geringen Einfluss, der sich in geringer Steigerung, in Erweiterung
der Haupt- und Nierengefässe und der Kontraktion der Milz äussert. Nach höheren
Dosen ist dagegen eine vorübergehende Blutdruckerniedrigung zu bemerken,
wobei sich nach den Haupt- und Nierengefässen auch die Darmgefässe erweitern
und ein erhöhter Blutzufluss nach den äusseren Genitalien stattfindet. Das
Herz ist an den bald wieder verschwindenden Symptomen des Blutdrucks nicht
beteiligt. Die Wirkung des Yohimbins beruht vielmehr auf der Beeinflussung
der Gefässwand selbst, die sich auch bei lokaler Anwendung gefässerweiternd
und anästhesierend kundgibt. Hohe Dosen bewirken eine anhaltende Er-
niedrigung des Blutdruckes, und tödliche Dosen lähmen auch das Herz durch
Schädigung des Herzmuskels. Was die Wirkung des Yohimbins auf die
Genitalreflexe anbetrifft, so fand der Autor, dass kleine wirksame Dosen die
Erregbarkeit im Sakralmark steigern. Die somatische Erektion wird hierdurch
leichter auslösbar, ohne dass zugleich eine Steigerung der allgemeinen Reflex-
erregbarkeit ausgelöst wird.

Von besonderer Wichtigkeit sind diese Befunde deshalb, weil sie unter
anderem zeigen, dass bei therapeutischen Dosen keine Schwächung des Herzens
zu befürchten ist, wenigstens nicht für das normale Herz. Nach den Er-
gebnissen der Müllerschen Arbeit ist das Yohimbin da von Vorteil, wo die
spinale Erregbarkeit herabgesetzt, wo Impotentia coeundi infolge mangelnder
Erektionsfähigkeit vorhanden, und wo vorzeitige senile Impotenz eingetreten
ist. Bei psychischer Impotenz dürfte dagegen von diesem Mittel nicht viel
zu erwarten sein. Für die Humanmedizin eignen sich, wie bekannt, 3—4 täg-
liche Gaben von einer Yohimbintablette (ä 0,005 g) der os.

K. Dragendorff hält das Yohimbin für ein gutwirkendes Medikament,
welches erloschene oder herabgeminderte Potenz beim Manne oder die Libido
bei der Frau neu anzufachen imstande ist. Nach den vielen Erfolgen, die das
Mittel schon gezeigt hat, ist nach seiner Ansicht der von anderer Seite ge-
äusserte Skeptizismus nicht berechtigt, da er unberechenbaren Schaden stiften
könne. Auch Fürbringer berichtet, dass mehrfach bei Klienten, die der Sug-
gestion kaum zugänglich waren, sehr günstige Resultate erzielt worden sind,
während die von ihm selbst veranlasste Prüfung des Yohimbins weniger
günstig ausgefallen ist.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. |Gedruckt 15. 5. 11.] 37

3—6 mal täglich
als Sexuale

6 — 10 mal täglich
bei Lähmung

578 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. [1Ö4

Für die Tierarzneikunde wichtige Mitteilungen liegen von Daels, Holter-
bach, Schmidt, Kluge und L. Freyberger vor.

Daels stellte fest, dass sich bei geschlechtsreifen Tieren die Brunst durch
Yohimbin sowohl hervorrufen als auch bis zu hämorrhagischem Ausfluss und
zu Hämorrhagie des Parametriums verstärken lässt, Erscheinungen, die durch
Ovariektomie nicht zum Rückgang gebracht werden konnten. Diese Wirkung
ist bei geschlechtsunreifen Tieren und solchen, die vor einem Monat geworfen
haben, nicht zu beoachten.

Holterbach berichtet von einem Falle, in dem eine infolge von chronischer
Metritis sterile Kuh durch Darreichung von Yohimbin geheilt wurde. Er
weist ferner darauf hin, dass das Yohimbin, dessen anästhesierende Wirkung
als bekannt vorausgesetzt werden darf, ein vorzügliches und völlig unschäd-
liches Mittel gegen anhaltendes Erbrechen ist. Volle Beachtung verdient auch
seine Wirkung bei spinaler Lähmung.

Als Dosierungsverhältnise stellt Holterbach die folgenden auf:
für Pferd und Rind .... 0,05

Schwein 0,01

Schaf und Ziege .... 0,01
Hunde bis zu 10 kg . . 0,00025
„ „ 25 „ . . . 0,001
„ über „ 25 „ . . . 0,025
R. Schmidt hat auch bei subkutaner Anwendung, in den meisten Fällen
schon nach einmaliger Applikation, eine genügende 30 — 40 stündige Brunst
erzielt, die 90°, 0 der Fälle zur Befruchtung führte. Ein weiterer Beweis für
die Wirkung des Yohimbins bei männlichen Tieren ist aus einer Mitteilung
Kluges zu ersehen. Dieser Autor Hess einem Bullen 5 mal täglich einen Ess-
löffel voll Yohimbinlösung (1 : 200) mit vollem Erfolg darreichen.

576. Merrill. Die Stammpflanze von Manila- Elemi. (Chem. a. Drugg.,

1906, p. 678.)

577. Meyer, Arthur. Zu Ernst Gilg: Welche Strophanthus- Art verdient
in das neue Arzneibuch aufgenommen zu werden?

Der bekannte Pharmakognost spricht sich hier entschieden gegen die
Ansichten von Ernst Gilg aus und verteidigt seinen schon früher präzisierten
Standpunkt, nämlich die Beibehaltung der Kombedroge.

578. Meyer, Arthur. Über Semen Strophanthi. (Arch. Pharm., 1907, p. 351
bis 359.)

579. Meyer, Arthur, Der Artikel „Flores Koso" des Arzneibuches
und eine neue Methode der quantitativen mikroskopischen Analyse.
(Chem. Ztg., XXXII, 1908, p. 343.)

580. Meyer, Gustav. Über eine eigenartige Verwendung der
Caryophylli. (Pharm. Ztg., L1II, 1908, p. 279.)

581. Meyer, Th. Erfahrungen auf dem Gebiet der Kultur und
des Handels mit Arzneikräutern. (Pharm. Ztg., 1908, p. 53.)

582. Meyer, V. J. Über das Baumwollsamenöl. (Chem. Ztg., XXXI.

1907, p. 793.)

583. Miller, A. VV. Die Destillation von Corianderöl. (Am. Journ.
Pharm., LXXX, 1908, p. 15.)

584. Milliau, Ernst. Verfahren zur Ermittelung der Reinheit
des Kopraöls. (Les corps gras industriels, XXXIL p. 18—20.)

1651 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 579

Mit Kopraöl gemischt gibt das Cottonöl eine ganz ausgezeichnete
Phloroglucin-Resorcinreaktion. Gibt man der Lösung frisches Sesamöl und
schüttelt nun mit gleichem Volumen reine Salzsäure, so setzt sofort im
sauren Teil die charakteristische Grünfärbung ein.

585. Mindes. Der Apothekenrevisor. Ein kurzgefasstes Hilfsbuch
zur Identifizierung und Prüfung offizineller und nichtoffizineller Arzneimittel
mit Berücksichtigung des Deutschen Arzneibuches IV. und Pharmacopoea
austr. VIII für Apotheker, Sanitätsbeamte und Drogisten. Leipzig und Wien.
Verlag von Deuticke.

5S6. Mindes, J. Manuale der neuen Arzneimittel. Fr. Deuticke,.
Wien.

587. Mitlacher, von. Über den mikrochemischen Nachweis einiger
Emodindrogen. (Pharm. Post, 1906, No. 46.)

Verf. machte Versuche mit Oxymethylanthrachinonen in ('ortex frangulae,
Rhamni purshioni, Radix Rhei und Folia Sennae.

Bringt man kleine Mengen dieser Drogen in ein mit einem Objektträger
bedeckte Uhrgläser, erwärmt vorsichtig, so sublimieren die Anthrachinone aus.
Bei jeder Droge zeigt das Sublimat ein anderes Verhalten.

Bei Frangula und Rheum treten in grossen Mengen gelbgefärbte Kristall -
nadeln und spiessförmige Kristalle auf, die sich in alkoholischem KOX mit tief-
roter Farbe lösen.

Rhamnws und Sennae bilden unregelmässig erstarrte gelbe Kristallmassen r
die ebenfalls in KOX tiefrot löslich sind.

588. Modeen, Hjalmar. Über Semen Strophanthi. (Apothek.-Zg.,
XXIII. 1908, p. 596.)

Bei seinen umfangreichen Untersuchungen hat der Verf. gefunden, dass
die im Handel befindliche Droge von Strophanthus fast stets unrein ist und
meist aus einem Gemisch von Samen mehrerer Strophanthus- Arten bestehe.

Augenblicklich sind nur zwei absolut reine Drogen zu verwenden:

1. Semen Strophanthi Ph. G. IV. Kombe clepur. ver. der Firma Caesar
& Loretz, Halle;

2. Semen Strophanthi hispidi. aus den Halbkulturen des Hinterlandes
von Togo.

Daneben tritt als Droge noch rein, aber in sehr geringen Mengen auf:

3. Strophanthus gratus.

Es ist voi läufig schwer, welcher von den beiden erstgenannten Sachen
der Vorzug zu geben ist.

Für Strophanthus hispidus ist Güte sicher festgestellt.

In Betracht zu ziehen ist auch, welche Droge hinsichtlich ihres Stro-
phanthingehaltes am billigsten kommt.

588a Moeller, Jos. Dr. Lehrbuch der Pharmakognosie. 2. Aufl., mit
373 Abbildungen, Wien 1906, Alfred Holder. Preis 12,40.

Der Verf , welcher als Professor der Pharmakologie und Pharmakognosie
und Vorstand des Pharmakologischen Institutes an der Universität Graz wirkt,
bringt im vorliegenden Werke ein neues Lehrbuch aus seiner umfangreichen
Praxis. Die erste Auflage erschien im Jahre 1888. Der Schwerpunkt ruht
bei der mikroskopischen Charakteristik, jedoch ist auch der makroskopischen
Beschreibung ein weiterer Kaum gelassen und diese ist durch zahlreiche Ab-
bildungen in Maturselbstdruck oder in guten Reproduktionen weiterem Ver-
ständnis näher gebracht. Auch die chemischen Bestandteile der Drogen sind

37*

580 Berichte über die pbarmakognostisohe Literatur aller Länder. [166

angeführt, soweit dieselben für die Wirkung und Anwendung massgebend sind.
Die natürlichen PfJanzenfamilien enthalten eine Aufzählung der zugehörigen
Nutzpflanzen, sowie medizinische Drogen, technisch und ökonomisch wichtige
Pflanzen. In einer systematischen Aufführung finden wir die in Österreich
Deutschland und der Schweiz offizinellen Drogen übersichtlich zusammen-
gestellt. Auf diese Weise hat der Verf. ein Buch geschaffen, welches den
allermodernsten Anforderungen genügt, die von dem Apotheker und Nahrungs-
mittelchemiker an die Drogenkunde gestellt werden.

Die neueren Pharmakopoen haben die Mikroskopie der Drogen etwas
mehr berücksichtigt, aber auch bei der Untersuchung der Nahrungsmittel.
Genussmittel und Gewürzen ist die mikroskopische Untersuchung wesentlich
und sehr häufig ausschlaggebend. Selbst bei getrockneten Drogen, die sehr
häufig im zerkleinerten Zustande in den Handel gebracht werden, gebraucht
man das Mikroskop, um an spezifischen Fasern, Haaren, Spaltöffnungen und
dergleichen die Identität der Droge festzustellen. Bekanntlich ist diese Mikro-
skopie die schwächste Seite unserer heutigen Nahrungsmittelchemiker, die in
der Botanik und deren Hilfswissenschaften zu wenig ausgebildet werden und
für diese, sowie für die Pharmazeuten von Fach dürfte das Werk zu den
wichtigsten Lehrbüchern gehören.

589. Mö'ller-Thoms. Reale ncyclopädie der gesamten Pharmazie.
Handwörterbuch für Apotheker und Medizinalbeamte, begründet von Dr. Ewald
Geiseler und Jos. Möller. Zweite, gänzlich umgearbeitete Auflage. IX. „Milben-
Panicum". Urban & Schwarzenberg, Berlin-Wien.

590. Mollianl. Sur Menthe basiliquee. (Zeitschr. f. angew. Chem.,
XIX, 1906, p. 1724.)

591. Monier, M. Experimentaluntersuchungen über das Ferment
von Phoenix dactylifera als Beitrag zum Studium der Fermenttherapie.
(Journ. Pharm. d'Auvers., LXIII, 1907, p. 121.)

592. Morstatt, H. Die Bestimmung des Aschengehaltes in den
Handelssorten des Rhabarbers. (Süd. Apoth.-Ztg., 1907, No. 56.)

593. Mossler, G. Über die Einwirkung von Brom auf ätherische
Öle und die Bestimmung der in der gesamten umgesetzten und
der zu Bromwasserstoff verwandelten Bromm enge. (Zeitschr. allgem.
österr. Apoth -Ver., XLV, 1907, p. 223.)

59-1. Mossler, G. Chemische Untersuchung von Eryodictyon gluti-
nosum. (Liebigs Ann. Chem., CCCLI, 1907, p. 233.)

595. Mossler, G. Die Prüfungen der nichtof f izinellen Präparate.
I. Heft. Wien 1908, Verlag Carl Fromme.

596. Moszkowski. Über die Entstehung und Gewinnung des
Damarharzes. (Notizbl. Kgl. Bot. Gart. Dahlem, V, 1908, No. 43.)

597. Mouneyrat, A. Eisen im pflanzlichen und tierischen Ge-
webe. (Compt. rend., CLXIV, 1906, p. 1067.)

598. Mücke, M. Über den Bau und die Entwickelung der
Früchte und über die Herkunft von Acorus Calamus L. (Bot. Ztg.,
1908, p. 1.)

Die ausserordentlich genaue Untersuchung lässt sich in ihren Resultaten
wie folgt zusammenfassen:

Die Heimat von Acorus Calamus ist im heissen Ostasien zu suchen.
Nach Europa wurde die Pflanze gebracht um die Mitte des 16. Jahrhunderts.
In Deutschland kultiviert wird das Gewächs seit ungefähr 1700.

167] Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. 581

Acorus besitzt ein einschichtiges Perisperm, das aus dünnen Zellen be-
steht, denen ein eiweissartiger Inhalt eigen ist.

Die Entstehung dieses Perisperms ist dahin zu erklären, dass dieses
Gewebe aus der äusseren Zellage des zweischichtigen Nucellus hervorgeht,
dessen Gewebe resorbiert wird von dem Bindegewebe des heranwachsenden
Embryosackes.

Pollen und Ovula kommen bei Acorus Calamus in eine Entwickelungs-
hemmung, wodurch Samenbildung verhindert wird.

Acorus gramineus besitzt normal ausgebildete Pollenkörner und Ovula.
Diese Pflanze bringt also keimfähige Samen hervor.

Den Grund der Entwickelung bei Acorus Calamus sucht der Verf. in
klimatischen Verhältnissen der neuen Heimat der Pflanze.

599. Müller, Hugo. Cocosit, ein Bestandteil der Blätter von
Cocos nucifera und Cocos plumosa. (Proc. ehem. Soc, XXIII, 1908, p. 219.)

599a. Müller-Thurgau, H. Mannitgärung in Obst- und Trauben-
weinen. (S.-A. a. d. Landwirtsch. Jahrb. d. Schweiz, 1907, 10 pp.)

Das v orkommen von Mannit in Traubenweinen, namentlich solchen von
südlicher Herkunft, ist schon seit einiger Zeit bekannt; Verf. hat es jetzt auch
in Obstweinen nachgewiesen. Der Mannit ist kein Produkt der Rebe oder des
Obstbaumes, sondern entsteht durch einen neben der normalen Alkoholgärung
verlaufenden Gärvorgang, der durch Bakterien verursacht wird. Näheres
darüber haben in neuerer Zeit Gayon und Dubourg mitgeteilt (1894 und
1901). Die Mannitbildung des Obstweines ist nach des Verfs. Untersuchung
mit der Milchsäuregärung verknüpft. Sie tritt namentlich ein, wenn überreifes
Obst (Birnen, Äpfel) zur Verwendung gekommen ist. Der geringe Gehalt an
Säure ermöglicht es in diesem Falle gewissen Bakterien, sich rasch zu ver-
mehren und einen Teil des Zuckers unter Eildung von Milchsäure und Essig-
säure zu zersetzen. Solche „milchsäurestichige" Obstweine haben einen
scharfen, im Gaumen kratzenden Geschmack und einen eigentümlich säuer-
lichen Geruch; beides kommt nach Ansicht des Verfs. ausser durch Milch-
und Essigsäure auch durch Ester dieser beiden Säuren zustande. In den mit
der eigenen Hefe vergorenen, milchsäurestichig gewordenen Obstweinen fand
Verf. nun auch Mannit, um so mehr, je höher die Gärtemperatur war. Die
grösste beobachtete Menge war 7,1 g im Liter. In sterilisierten und dann
mit Reishefe vergorenen Obstweinen findet sich kein Nannit: er fehlt auch,
wenn die Milchsäurebakterien nicht aufkommen können. Dass diese tatsächlich
Mannit zu bilden vermögen, zeigte Verf. durch Versuche mit Bakterien, die
aus milchstichigen Birnweinen reingezüchtet waren. Nach den bisherigen
Erfahrungen wird Mannit durch Bakterien nur aus Lävulose gebildet.

Das Vorkommen des Mannits in südlichen Weinen erklärt sich dadurch,,
dass die hohe Temperatur bei der Weinlese und der Gärung die Entwickelung
der Milchsäure- oder Mannitbakterien stärker begünstigt als die der Alkohol-
hefen. Aber auch in Weinen kühlerer Gegenden kann sich die Mannitgärung^
bemerklich machen, wenn die Traubensäfte einen niederen Säuregehalt besitzen,
sei es infolge hohen Reifegrades der Trauben (säurearme Sorten, Rotwein-
trauben in guten Herbsten), oder infolge künstlicher Entsäuerung mit kohlen-
saurem Kalk oder durch starkes Gallisieren. Ferner kann sich Mannitgärung
in unseren Weinen einstellen, wenn die Alkoholgärung schleppend ist oder
die Hauptgärung unvollständig verläuft oder unterbrochen wird, so dass den
Mannitbakterien günstige Gelegenheit zur Vermehrung geboten wird.

582 Berichte über die pbannakognostische Literatur aller Länder. 1 igg

„Dass die Qualität der Weine durch die Mannitgärung in ungünstigem
Sinne beeinflusst wird, ist zweifellos; denn stets erscheinen als wesentliche
Produkte Milch- und Essigsäure und die begleitenden Ester, also der Milch-
säurestich. Sonstige ungünstige Geschmacksänderungen und Trübungen sind
ziemlich regelmässige Begleiterscheinungen. Sowie bedeutendere Mengen von
Zucker in Mannit umgewandelt werden, kann natürlich nur eine entsprechend
geringere Menge von Alkohol entstehen: denn die Hefen vermögen den Mannit
nicht zu vergären ; dieser Verlust wirkt aber ungünstig auf die Haltbarkeit
der Getränke ein. Möglicherweise begünstigt die Anwesenheit des Mannits
zudem noch direkt das Überhandnehmen gewisser Krankheitsorganismen wie
Bact. xylinum u. a. Mannit hat einen süsslichen Geschmack, der in mannit-
reichen Obstweinen sich ebenfalls unangenehm bemerkbar machen kann. Wie
sich der Mannit im menschlichen Körper verhält, ist noch nicht genau fest-
gestellt; es darf aber wohl angenommen werden, dass er in ähnlicher Weise
wie der Zucker in den Stoffwechsel eintritt. Von einigen Autoren wird allerdings
angeführt, er wirke als schwaches Abführmittel; doch dürfte dies erst bei
grösseren Mengen der Fall sein. Wenn man danach trachten muss, die
Mannitgärung bei Obst- und Trau benweinen nach Möglichkeit zu verhindern,
so ist dies also weniger geboten wegen des entstehenden Mannits als wegen
der geringeren Alkoholbildung, namentlich aber wegen der Erzeugung der
Milch- und Essigsäure und ihrer Ester, sowie ev. noch anderer Nebenprodukte.
Durch den Milchsäurestich verlieren die Getränke nicht nur von ihrem Wohl-
geschmack, sondern sie werden auch der Gesundheit weniger zuträglich."

Verf. gibt zum Schluss einige Vorschriften, wie dem Milchsäurestich
und der Mannitgärung entgegengewirkt werden kann.

600. Müller, R. Folia Combreti Raimbaulti. (Pharm. Prax., LXXVII1.
1907, p. 452.)

601. Müller, R. Über Chlorocodon Whitei Hook. fil. (Pharm. Post.
XL1, 1908, p. 518.)

Die mit guten Abbildungen versehene Arbeit bringt Data über die
Wurzel der Asclepiadacee Chlorocodon Whitei Hook, fil., die von den Ein-
geborenen Natals als Stomachium verwandt wird. In der Literatur finden
sich Angaben, wonach diese Wurzel als Verfälschung der Senegawurzel ver-
wendet wird; obgleich sie mit letzterer nur eine entfernte Ähnlichkeit besitzt.

Sie ist stets dicker als die Senegawurzel, der Wurzelkopf und Wurzel-
kiel sehen ganz anders aus als bei dem Senegaprodukt.

Die ungefähr 1 cm dicken Stücke der Droge zeigen aul dem geglätteten
Querschnitt nach der Peripherie hin eine feine, lichte Begrenzungslinie, unter
dieser eine ähnliche aber dunkelbraune Linie (Phelloderm). Hieran schliesst
sich die 1 mm breite Rinde, die sich gegen das Innere mit einer scharfen,
dunklen Linie abgrenzt.

Der Holzkörper hat eine gelbliche Färbung, ist aber im Zentrum dunkel-
braun und sehr locker.

Schon makroskopisch sind die Gefässe erkennbar.

Der der frischen Droge anhaltende Cumaringeruch fehlt dem getrockneten
Produkte ganz.

Der Geschmack der Droge ist ein schwach aromatischer.

Sehr gute Abbildungen zeigen den genauen anatomischen Aufbau von
Rinde und Holz. Reicher Stärkeinhalt zeichnet die parenchymatischen Elemente
der primären und sekundären Rinde aus.

169 1 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 533

Die Stärkekörner selbst sind teils einfach, teils zusammengesetzt. Die
einfachen Körner zeigen randliche oder oval-rundliche Form. Nur selten
treten eckige Gebilde auf. Sie haben einen Durchmesser von 4—10 p.

Die zusammengesetzten Körner bestehen aus 3 — 5 unter sich ziemlich
gleich grossen Teilkörnern. Jedes einzelne dieser Körner zeigt eine rundliche
eckige Form. Ganz gesehen haben sie oval-rundliche Form. Ihr Durchmesser
beträgt 10—20 u.

602. Müller, R. Über das Acokanthera-H.olz und das Herzgift
Ouabain. (Zeitschr. d. allgem. österr. Apoth.-Ver., LXIL 1908, p. 343 ff.)

Verf. hat bei seinen Untersuchungen folgende Tatsachen gefunden:
Das Holz der Acokanthera-Arten, die alle im östlichen Afrika heimaten, hat den
Eingeborenennamen „Ol morizoi".

Das Holz ist nicht allzu schwer, zeigt weissgelbliche Färbung und
hat einen stark bitteren Geschmack. Seine Struktur ist eine ausser-
ordentlich dichte.

Die Rinde ist an der Aussenseite von graubrauner Färbung mit stellen-
weise gelblichen oder grauweissen Schüppchen und tiefen parallelen Längs-
furchen.

Der Querschnitt zeigt eine körnig bröckelige Struktur, die oft etwas
blätterig ist.

Die mikroskopische Untersuchung zeigt, dass die Hauptmasse des Holzes
von Libriformfasern gebildet wird, deren Wände stark verdickt sind und mit
behöften Tüpfeln versehen sind. Gefässe finden sich im Holz sehr zahlreich.

Zwischen den Holzfasern verstreut finden sich Parenchymzellen, die
eine sehr kleinkörnige Stärke führen, die in eine gelblichbraune Masse ein-
gebettet ist.

In einzelnen Zellen finden sich schön ausgebildete Zwillingskristalle
von Calciumoxalat.

Die Markstrahlen sind gewöhnlich ein-, in seltenen Fällen zweireihig.
Sie liegen 5 — 8 Zellreihen hoch. Die dünnen Wände sind knotig verdickt.
Wie die Parenchymzellen führen auch sie Stärkekörner.

Diese anatomischen Befunde gelten für Acokanthera Deflersii Schweinf.,
.4. Schimperi (A. DG) Benth. et Hook, und A. Ouabolo Chatel.

603. Müller, R. Zur Pharmakognosie von Samaäera indica Gärtn.
(Pharm. Post, LI, 1908, p. 293.)

Samadera indica ist eine Simarubacee, die in den Tropen als Heilpflanze
geschätzt wird. Verwendet werden fast alle Teile der Droge.

Bezüglich der einzelnen, meistens rein medizinischen Angaben, sei auf
das Original verwiesen.

604. Mnschler, Reno. Monographie der Gattung Coronopus. (Engl.
Bot. Jahrb., XLI, 1908, p. 112—147.)

Im vierten Kapitel seiner sonst rein botanischen Arbeit gibt der Verf.
einige auch hier interessierende Daten. Er schreibt:

„Reichlich vertreten in unserer Gattung ist das bei den Cruciferen so
dominierende Enz}-m Myrosin, welchem die Fähigkeit innewohnt, das Glykosid
Kaliummyronat zu spalten in Allylthiocarbimid, Traubenzucker und Kalium-
bisulfat nach der Formel:

C10H16NS2KO9 + H20 = OS : N • C3H5 + C6Hi206 + KHS04.

Bisher war dasselbe nur für Coronopus verrucarius nachgewiesen. Es
finden sich bei dieser Art Myrosinzellen vereinzelt in den Nervenparenchym-

584 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. (170

scheiden. Es wurde ferner von mir reichlich gefunden in den Wurzeln und
zwar im Leptomparenchym von Coronopus niloticus, in der primären Rinde da-
gegen bei Coronopus integrifolius, ferner im Pericjkel der Zweige von Coronopus
verrucarius, hier allerdings nur in sehr geringen Mengen.

605. N.... Scopolia versus Belladonna. (Centrbl. f. Pharmac. u. Chem.,
1908, p. 70.)

Gute Belladonna -Wurzel wird immer seltener, wogegen der therapeutische
Wert von Rad. Scopol, carniolica immer mehr steigt. Es drängt sich die Frage
auf, ob Scopolia imstande sein wird, Belladonna zu ersetzen. In therapeutischer
wie chemischer Hinsicht gleichen sich alle beiden Drogen fast vollkommen.
Beiden ist Hyoscyamin als wesentlichster Bestandteil gemeinsam, daneben
führen beide Atropin und Hyoscin. Auf ersterem beruht bekanntlich die thera-
peutische Wirkung der Droge. Hyoscyamin und Atropin haben bekannter-
massen die gleiche therapeutische Wirkung, da sie isomere Verbindungen sind,
Hyoscyamin findet sich aber hauptsächlich in der Pflanze und kann leicht in
Atropin verwandelt werden. Der Unterschied zwischen Belladonna und Scopolia
ist darin zu suchen, dass Scopolia reicher an mydriatischen Alkaloiden ist.
Hierin liegt auch der Grund, dass letztere therapeutisch viel wirksamer ist.
Während es schwerer ist, eine Belladonna- Wurzel zu bekommen mit 0,5 °/o
Totalalkaloiden, gibt es sehr leicht Scopolia-Wurzeln mit 0,6—0,7%. Der
therapeutische Wert von beiden ist nach genauen Untersuchungen ein gleiches,
eher kann Scopolia grössere Wirkungen hervorbringen. Angewendet wurde
es bei Lungenentzündungen, rheumatischem Fieber und Ohlorosis.

Zu beachten ist auch, dass der Preis von Sco^m-Wurzeln ein wesent-
lich geringerer ist, als der von Belladonna.

606. Naylor, W. and Chappel, E. On Cucumis trigonus Roxb. and colo-
cynthis. (Pharm. Journ., XXV, 1907, p. 117.)

Verff. konnten aus den Früchten des in Indien ziemlich häufigen Cucumis
trigonus Korb, ein Glucosid isolieren, das sich identisch erwies mit dem bereits
bekannten, aus C- colocynthis gewonnenen Colocynthin, das sie nun auf Grund
ihrer Befunde noch näher beschreiben.

Gleichzeitig gelang es ihnen, aus C. colocyntliis einen anderen, kristalli-
sierten Stoff herzustellen, der wahrscheinlich identisch ist mit dem Colocyn-
thetin von Wals. K. Krause.

607. Eldredge, C. G. and Liddle, L. M. The fruit of Smilacina racemosa
and bifolia. (The chemical News, 1907, 182—183.)

Verff. geben eine kurze Darstellung der Bestandteile der Früchte und
Samen von Smilarina racemosa und von S. bifolia, die nichts wesentlich Neues
bringt. Sie konnten in den Früchten zunächst Wein- und Oxalsäure nach-
weisen, ferner Gerbsäure, Oxalalkri stalle, Fruktose, vielleicht auch etwas
Glucose, Oe'fn und Palmitin sowie in beiden Fällen etwas Gummi.

K. Krause.

608. Nestler, A. Über sogenannten capsaicinfreien Paprika.
(Zeitschr. f. Unters. Nahrungs- u. Genussmittel, 1907, p. 739)

Zur Untersuchung gelangte ein völlig geschmackloses als capsaicinfreies
Paprikapulver. Zum Vergleich wurde ein scharf schmeckendes Präparat an-
gewendet.

Ausserlich unterschied sich der geschmacklose vom scharfschmeckenden
Paprika nur durch seine hellere Farbe. Die mikroskopische Untersuchung

J71] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 585

bewies die Abstammung von Capsicum annuiim L. Die Ursache, weswegen
dieser Paprika keine Schärfe zeigt, kann eine dreifache sein:

1. Aus normalen Früchten wurden vor ihrem Vermählen die Träger der
Capsaicindrüsen, die Fruchtscheidewände, vorsichtig herausgeschnitten.

2. Es gibt gegenwärtig eine Kulturrasse, die kein oder nur sehr wenig
Capsaicin enthält.

3. Ein normaler, scharf schmeckender Paprika wurde zum Zwecke der Ge-
winnung des Capsaicins extrahiert und dieses extrahierte Pulver in den
Handel gebracht.

Der Verf. fährt bezüglich der beiden ersten Annahmen fort:

Bezüglich der ersten Annahme könnte man an den „Rosenpaprika" des
Handels denken, der in Ungarn ausschliesslich aus der sorgfältig isolierten,
roten, äusseren Membran hergestellt wird, aber trotzdem noch eine genügende
Schärfe besitzt.

Obwohl ich nach meinen früheren Bemerkungen und den folgenden
Untersuchungen in Übereinstimmung mit A. Meyer und H. Molisch überzeugt
bin, dass das Capsaicin einzig und allein in den Drüsen der Fruchtscheide-
wände vorkommt, daher durch das vorsichtige Herausschneiden derselben ganz
entfernt werden kann, so glaube ich doch nicht, dass hier ein solcher „Rosen-
paprika" vorliegt. Denn eine Ware, der die charakteristische Eigenschaft eines
als Gewürz verwendbaren Paprikas vollständig fehlt, würde ein Grosshändler
wahrscheinlich überhaupt nicht auf den Markt bringen. Zudem kommt noch
wesentlich in Betracht, dass dieser wirkungslose Paprika auch die Fragmente
der Samen und der Fruchtscheidewände besitzt, daher nicht ein „Rosenpaprika"
sein kann.

Die zweite, an und für sich sehr naheliegende Erklärung, welche Ana-
loga in der Pflanzenwelt hat, ist die, dass es eine Kulturrasse von Capsicum
annuum gibt, die keine oder nur sehr wenig Capsaicindrüsen entwickelt.

„Milde Paprika" (Speise- und Einlegepaprika) im Gegensatz zu „scharfen
Paprika" werden bekanntlich seit längerer Zeit kultiviert und angepriesen
unter den Namen: Bulgarischer stumpfer Riesen, Prokopp Riesen, Rubi-King,
Serbischer langer Riesen, Elefantenrüssel, Goldgelber stumpfer Riesen, Colum-
bus, Chinesischer Giant u. a. Ich habe im verflossenen Sommer diese „milden
Sorten" zum Studium des eigentümlichen Vorkommens von Eiweisskristallen
kultiviert und bei dieser Gelegenheit festgestellt, dass ihre Früchte, bzw. die
Scheidewände derselben noch eine sehr bedeutende, sofort merkbare Schärfe
besitzen.

Nun könnte durch die Kultur in neuester Zeit eine Rasse entstanden
sein, welche capsaicinfrei ist und daher ein ganz geschmackloses Pulver gibt,
aber auch auf diese Ursache ist jener wirkungslose Paprika nicht zurückzu-
führen; denn es wäre gewiss als eine botanische Neuheit sofort bekannt ge-
worden, dass es eine „Beissbeere" gibt, die keinen scharfen Stoff besitzt, also
ihren Namen nicht mehr verdient.

Meine Umfragen in dieser Richtung hatten keinen Erfolg.

Die dritte Annahme: Ein scharfer, normaler Paprika wurde exterahiert
und das getrocknete, seines Capsaicingehaltes schinbar ganz beraubte Pulver
wurde in den Handel gebracht, erwies sich bei genauer Untersuchung als die
richtige.

608a. Nestler, A. Die hautreizende Wirkung der Primula molHs
Hook, und Pr. Arendsii Pax. (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908, H. 7, p. 468.

586 Berichte über die pharuiakognostisohe Literatur aller Länder. [172

(i08b. Nestler, A. Über „hautreizende" Pflanzen. (Lotos, LVI,
1908, H. 6.)

Verf. schildert neben anderem die mikrochemischen Eigenschaften der
von Primeln und anderen hautreizenden Pflanzen gelieferten Sekrete.

Hebt man das Sekret von Primula ohconica und Pr. mollis auf einem
Objektträger ab, so zeigt sich, dass das Sekret der erstgenannten Species sehr
leicht in schönen grossen Kristallen auskristallisiert, das der anderen Art nie-
mals Kristalle bildet. Wird das Sekret von Pr. mollis in Äther gelöst, so
bilden sich nach dem Verdampfen des Lösungsmittels erst nach 24 Stunden
Kristalle, die im Gegensatz zu denen des Obconicasekrets in Alkohol unlös-
lich zu sein scheinen. Das Sekret von Pr. Arendsii kristallisiert ähnlich wie
das von Pr. ohconica auf dem Objektträger aus: lässt man zu der mit einem
Deckglas bedeckten Substanz einen Tropfen konzentrieter Schwefelsäure zu-
fliessen, so werden die homogene Grundsubstanz, sowie die Kristalle sofort
mit anfangs grünlich gelber, dann smaragd- oder dunkelgrüner Farbe gelöst;
nach 10 Minuten, in anderen Fällen später entwickeln sich sehr lange blaue
Kristalle, daneben tiefblaue, aus feinen blauen Nadeln gebildete Kugeln.
Ebenso verhält sich das Sekret von Pr. obcoi/ica.

Sekretmasse, die man von den Blättern des Cypripedium spectabile ge-
winnt, bildet niemals Kristalle, färbt sich kräftig mit Safranin, Anilinblau,
Lackmus u. a. und bildet nach Zusatz von zweiprozentiger Kalilauge schöne
Myeiinformen; diese Eigentümlichkeit spricht für den Gehalt des Sekrets an
Ölsäure. Nach Zusatz von Ammoniak färbt sich das Sekret karminrot bis
violettrot, ähnlich wie die Chinone.

608c. Neuberg, Carl. Zur Kenntnis der Raffinose. Abbau der
Raffinose zu Rohrzucker und d-Galaktose. (Biochem. Zeitschr., 1907,
Bd. 3, p. 519—534.)

Die Raffinose hat für den Chemiker in verschiedener Hinsicht ein ganz
besonderes Interesse. Ihr störendes Vorkommen bei der Fabrikation des Rohr-
zuckers ist bekannt. In wissenschaftlicher Beziehung hat sie dadurch Be-
deutung, dass sie der Hauptvert reter derjenigen natürlich vorkommenden
Zucker ist, die sich aus drei einfachen Zuckern aufbauen. Während die
Raffinose selbst keine Reduktionswirkung ausübt, kann sie mit Leichtigkeit
durch Säuren in reduzierende Zucker gespalten werden, und zwar entstehen
dabei, wie man weiss, in erster Phase Fruktose und ein Disaccharid Melibiose,
welch letzteres bei weiterer Hydrolyse in Galaktose und Glucose zerfällt, so
dass also die Raffinose sich aus Fructose, Galaktose und Glucose zusammen-
setzt. Auch in bezug auf die intermediär auftretende Melibiose war schon
bekannt, dass sie zu den reduzierenden Zuckern gehört, also eine freie Aldehyd-
gruppe enthält, und dass diese Aldehydgruppe dem Glucoserest angehört.

Hiernach konnte man sich ein Bild machen, in welcher Weise Glucose
und Galaktose kondensiert sind. In der nicht mehr reduzierenden Raffinose
konnte keine freie Carbonylgruppe mehr vorhanden sein, und es fragte sich
daher, in welcher Weise Fructose und Melibiose kombiniert sind, um einen
nicht reduzierenden Zucker zu erzeugen.

Um eine klare Beurteilung der Verhältnisse zu gewinnen, hat Verf. es nun
unternommen, die Spaltung des Trisaccharids so zu leiten, dass statt der Meli-
biose ein die Fructose enthaltendes Disaccharid sich bildet. Die Erreichung
einer derartigen Spaltung ist aber, wie sich im Verlauf der Untersuchung

173] Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 5^7

zeigte, mit grossen Schwierigkeiten verknüpft, denn es findet sich, dass nicht
nur durch alle Säuren, sondern auch durch fast alle Fermente, Hefen, Spross-
und Schimmelpilze, sowie Bakterien eine mit Melibiosebildung verknüpfte
Hydrolyse bewirkt wird. Endlich hat Verf. im Emulsin ein Ferment gefunden,
durch welches eine andere Spaltung der Raffinose erreicht werden kann. Es
zeigte sich bei Untersuchung der entstandenen Reaktionsprodukte, dass Galak-
tose gebildet wird. Ausserdem entsteht noch ein Disaccharid, welches im
Gegensatz zur Melibiose nicht reduziert. Die Vermutung, dass hier Rohr-
zucker vorliegt, wurde noch durch weitere Beobachtungen erhärtet. Die Sub-
stanz schmeckt intensiv süss, dreht die Ebene des polarisierten Lichtes nach
rechts, nach dem Kochen mit Säuren oder Behandeln mit Invertin nach links.
Sie wird ferner durch Hefe vergoren. Zum endgültigen Beweis aber musste die
Substanz isoliert werden, ein Prozess, der ziemlich schwer durchzuführen ist.
Es gelang Verf. schliesslich, mit Hilfe der Barytverbindung, das Disaccharid
zu kristallisieren und mit Rohrzucker zu identifizieren. Durch diese Spaltung
ist bewiesen, dass in der Raffinose der Rohrzuckerkomplex vorhanden ist, und
es ist nun möglich, sich ein Bild von der Bindungsweise der drei Zucker in
dem Trisaccharid zu machen.

Ferner knüpft Verf. an seine Untersuchung noch Bemerkungen über die
wahrscheinliche Entstehungsgeschichte der Raffinose. Dieselbe tritt in ihrem
Hauptfundort, der Zuckerrübe, in sehr verschiedenen Mengen, die von geo-
logischen und klimatischen Einflüssen abzuhängen scheinen, auf. Verf. denkt
sich nun, dass bei gewissen Bedingungen (Frost usw.) aus den Pektinstofi'en
durch Hydrolyse reichlich Galaktose entsteht, die sich dann mit dem vor-
handenen Rohrzucker in Gegenwart von Enzymen zu Raffinose verbindet.
Endlich dürfte vorliegende Arbeit auch für die Technik Bedeutung haben,
indem sie auf die Möglichkeit hinweist, die dem Rohrzucker beigemengte
Raffinose, die nur geringe Süsskraft hat und durch ihr Auskristallisieren das
Aussehen des Zuckers beeinträchtigt, auch in den wertvollen Rohrzucker
überzuführen.

608d. Neubnrg, C. Chemische Umwandlungen durch Strahlen-
arten. I. Katalytische Reaktionen des Sonnenlichtes. {Bioch. Zeit-
schrift, 1908, 13, p. 305—320.)

Wenn die vorliegende Arbeit auch rein chemischen Charakters ist,
dürfte es doch angebracht sein, an dieser Stelle kurz auf dieselbe hinzuweisen.
Sie bietet für eine Reihe biochemischer Probleme gerade der Pflanzenphysio-
logie hohes Interesse, da sie speziell von solchen katalytischen Lichtreaktionen
handelt, die mindestens ebenso schnell verlaufen, wie die physiologischen
Strahlenwirkungen. Bedingung für derartige Reaktionen ist die Gegenwart
eines passenden Katalysators und Berührung mit Sauerstoff. Besonders ge-
eignet erwiesen sich als Sauerstoff Überträger das Uranoxyd und seine Salze
(worauf übrigens schon im Jahre 1865 Seekamp hingewiesen hatte). Bei 62
biochemisch wichtigen Körpern (Alkohole, organische Säuren. Kohlehydrate,
Amide, Nukleine, Peptone u. a.) wurden in den belichteten Proben beträcht-
liche Veränderungen festgestellt, während die unbelichteten keinerlei Um-
wandlungen aufwiesen. Von den hierbei zutage tretenden Gesetzmässigkeiten
seien erwähnt die Oxydation von Alkoholen zu Ketonen, Säuren zu Aldehyd,
und Ketoverbindungen, Monosacchariden zu Osonen, die Hydrolyse von Poly-
sacchariden und Glykosiden, sowie die Aldehydabspaltung von Aminosäuren

588 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [174

unter Bildung von NH3. Mit anderen Worten, es werden aus zahlreichen in-
differenten Stoffen des Tier- und Pflanzenreichs karbonylhaltige Substanzen,
Aldehyd- oder Ketoverbindungen erzeugt, die bekanntlich durch starke
Reaktionsfähigkeit ausgezeichnet sind. Von besonderer Wichtigkeit für den
Physiologen ist die Tatsache, dass die Photosensibilität nicht nur bei direktem
Sonnen-, sondern auch bei diffusem Tageslicht nachweisbar ist. Es ist kaum
zu bezweifeln, dass im Organismus der Tiere und Pflanzen ähnliche Katalysa-
toren, welche die Lichtenergie in kurzer Zeit zu übertragen vermögen, vor-
handen sind; gilt die angeführte Lichtwirkung doch nicht nur für Uran-
verbindungen, sondern z. B., wenn auch in geringerem Grade, ebenso für
andere Schwermetallsalze. Man wird daher den Gedanken des Verfassers nicht
abweisen können, dass derartige schnell verlaufende Lichtwirkungen vielleicht
bei phototropischen Erscheinungen eine Rolle spielen. Möglicherweise stehen
ferner, worauf Referent zum Schluss noch hinweisen möchte, die Förderung
der Eiweissbildung durch das Licht, ebenso die Steigerung der Zuckerassimilation
(Lubimenko) in Beziehung zu diesen katalytischen Reaktionen des Sonnen-
lichtes.

609. Nevinny, Jos. Die Rauschbeere (Vaccinium uliginosum L ), ihre
Verwechselung mit der Heidelbeere (Vaccinium Myrtilhis L.) und ihr
Nachweis in den Fäces. (Zeitschr. f. Hyg. u. Infektionskrankh., 1908,
p. 95 ff.)

Der Verf. beschäftigte sich mit den Vaccinium- Arten hauptsächlich des-
halb, weil ein Kind angeblich an Vergiftung durch solche Rauschbeeren ge-
storben sein soll.

Verf. gibt in ausgezeichneter übersichtlicher Weise die Gegenüber-
stellung von Vaccinium uliginosum und Vaccinium Mgrtillus.

Die Samen beider Arten bleiben stets auch in den Fäces erhalten.

Verf. verspricht eine chemische und pharmakognostische Untersuchung
in nächster Zeit.

610. Nicola Die Sterilisation wässeriger (Jocainlösungem
(Giorn. Farm. China., 1906, p. 433.)

Am besten eignet sich zur Sterilisation der strömende Dampf bei 100°.

611. Nierenstein, M. Über das Tannin. (Chem. Ztg., 31, 1907, p. 880.
Der Verf. verteidigt gegenüber C. Glücksmann seine Untersuchungen

über die Konstitution des Tannins. Dieses soll ein Gemenge sein von zwei
Substanzen, von denen eine jedenfalls Digallussäure ist.

612. Nierenstein, M. Zur Konstitutionsfrage des Tannins IL
(Berl. Ber., 40, 1907, p. 916.)

Die von Dekker neu aufgestellte Konstitutionsformel für das Tannin
hält der Verf. für überflüssig. Die bisherige Formel

CO-O

HCK

oll

OH H02C

OH

steht im Einklang mit dem Verhalten des Tannins bis auf die Bildung eines
Hexaacetylderivates und die Konstanz des Drehungs Vermögens.

Verf. stellte ein Pentaacetyltannin dar, das bei der Oxydation Ellag-
säure lieferte: auch dieses Verhalten spricht für die Digallussäureformel.

175| Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 5^9

<>13. Nierenstein, M. Beitrag zur Kenntnis der Gerbstoffe. (Beil.
Ber., XL, 1907, p. 4575.)

Der Quebrachogerbstoff lieferte bei der Oxydation mit Kaliumpersulfat
Kufiquebrachosäure, die sich erwies als ein Anthracenabkömmling.

614. Nigoul, M. Über die sedativen Eigenschaften des Bornyvah
des wirksamen Prinzips des ätherischen Baldrianöles. (D. Mediz.
Ztg., 1907, p. 220.)

<)15. Nock, Über die Kampferkultur in Ceylon. (Chem. a. Drugg..
LXXI, 1907, p. 319.)

Der Verf. gibt eine genaue Schilderung über die Vermehrung des
Kampferbaumes durch Senkreiser, durch abgeschnittene Zweige, durch Wurzel-
teilung und auch durch Schösslinge.

610. Normann, W. Zur Kenntnis des chinesischen Holzöles.
(Chem. Ztg., XXXI, 1907. p. 188.)

Selbst bei wochenlanger Belichtung in zugeschmolzenen Glasröhren
findet keine Polj-merisation statt.

Infolge der Belichtung aber tritt dann eine reichliche Kristallbildung
ein, die ihren Grund hat in dem Gehalt an Elaeomargarinsäure.

Bei 290° wird das Öl fester ohne Sauerstoffaufnahme. Durch Hitze
tritt Polymerisation ein, auch bei dem durch Licht festgewordenen Öle.

617. W. 0. . . . Karitebutter. (Seifenfabrik, 1907, p. 532.)

Diese „Butter" wird aus den Früchten der Sapotacee Butyrospermum
Parkii gewonnen. Dieser Baum heimatet im westlichen Afrika. Die Kerne
enthalten 60°/0 Öl.

Der Schmelzpunkt des Öles liegt bei 30°.

618. Oesterle, 0. A. Über einen Bestandteil des Holzes von
Morinda citri folia. (Arch. d. Pharm., CCXLV, 1907, p. 287—290.)

In Indien werden zu Färbezwecken vor allem Morinda umbellata und
M. citrifölia gesammelt und kultiviert.

Zum Färben dient die Wurzelrinde. Das Holz, dem ein sehr feines
Färbevermögen zukommt, wird nur als Zusatz verwendet.

Im Holze von Morinda citrifölia fand der Verf. einen Körper, der aus
langen, goldig glänzenden Kristallen bestand, die bei 216° schmelzen.

Die Anah'se ergab, dass der Körper der Monomethyläther eines Trioxy-
methylanthrachinons ist, dem die Formel C16H1205 zukommt.

Der Verf. verspricht weitere eingehende Untersuchungen.

619. Oesterle, O.A. u. Tisza, E. Über die Bestandteile der Wurzel-
rinde von Morinda citrifölia L. (Arch. d. Pharm., 1908, p. 150ff.)

Die Verff. isolierten folgende Stoffe:

1. Alorindin, C27H30O15, hellgelbe Nadeln. Schmelzpunkt 245°. Acetat
C-27H:1015 (OC • CH3)9, Schmelzpunkt 236«; Benzoat, C^HgAs (OC • C6H5)9.
Schmelzpunkt 186°. Durch Hydrolyse tritt Zersetzung ein in Morindon
und in nicht vergärtem Zucker.

2. Trioxy methylanthrachinonmonomethyläther, C16H1205, zitronen-
gelbe Nadeln vom Schmelzpunkt 172°. In Alkalien und Schwefelsäure
mit orangeroter Farbe löslich. Acetat Schmelzpunkt 148°.

3. Morindadiol, C15H10O4 (Dioxvmethylanthrachinon). gelbe Nadeln vom

590 Berichte über die pbarmakognostische Literatur aller Länder. [\1Q

Schmelzpunkt 244°. In Alkalien mit orangeroter, in Schwefelsäure
mit kirschroter Farbe löslich. Acetat Schmelzpunkt 229°.

4. Soranjediol, C^H^O! (Dioxyinethylanthrachinon), rotbraune Nadeln
vom Schmelzpunkt 276°. In Alkalien mit blauvioletter, in Schwefelsäure
mit kirschroter, nach einiger Zeit in Violett übergehender Farbe löslich.
Acetat Schmelzpunkt 230°.

."). Substanz C16Hl0O5, gelbe Nadeln vom Schmelzpunkt 210°. In Alkalien
und in Schwefelsäure mit orangeroter Farbe löslich.

6. Wales C18H180, weisse Nadeln vom Schmelzpunkt 124,5°.

620. Öfter, Theodor. Analyse der Fette und Öle. Mit 2 Tabellen
und 11 Abbildg. Dr. Max Jänecke, Hannover 1907.

Das kleine Buch ist hauptsächlich zum Gebrauch für den Studierenden
berechnet. Aber auch für den Chemiker, der sich der Fettindustrie zuwendet,
soll es Anhaltspunkte bei der Analyse der Fettprodukte geben.

Die Tabellen sind ausserordentlich genau und sehr übersichtlich.

621. Ogden, A. W. Zusammensetzung bekannter Paprikasorten.
(Journ. Americ. Soc, XXV, 1908, p. 1481.)

Bezüglich der sehr eingehenden Untersuchungen muss auf das Original
oder auf das genaue Referat in der Zeitschr. f. Nahrungs- und Genussmittel
hingewiesen werden.

622. Olim, M. Die Balata. (Apothek.-Ztg., XXIII, 1908, p. XXXIII.)

623. Ohm, H. Das Pfeilgift Curare. (Apothek.-Ztg., XXIII, 1908,
p. 113.)

624. Okazaki. K. Digestin. (Journ. Pharm. Chim., XXVII, 1908, p. 293.)

625. Oliver, G. E. Notizen über medizinisch interessante Pflanzen
aus Südafrika. (Chem. a. Drugg., LXII, 1908, p. 645 ff.)

626. Osborne und Harris. Proteinkörper des Weizenkorns. (Zeitschr.
analyt. Chem., XLVI, 1907, p. 749.)

627. Oslmro, M. Über die Wurzel von Paeonia albtflora P all. (Yakuga-
kuzasshi, 1907, No. 309.)

627a. Osterhont, W. J. V. On the importance of physiologically
balanced solutions on plants. I. Marine plants. (Bot. Gaz., 1906, 42
p. 127—134.)

Der Verf. untersuchte verschiedene Meeresalgen und fand zunächst, dass
man sie auf Grund ihres Verhaltens zu destilliertem Wasser in zwei Gruppen
einteilen kann: Die Vertreter der ersten Gruppe bleiben in destilliertem Wasser
einige Zeit am Leben, die der zweiten Gruppe sterben darin schnell ab. Der
ersten Gruppe schliesst sich von Meeresphanerogamen Ruppia maritima an.
In künstlichem Seewaser, welches die wichtigsten Ionen des natürlichen Na,
K, Mg, Ca, Cl, S04 in richtigem gegenseitigen Mengenverhältnis enthält,
bleiben sämtliche untersuchten Formen ebenso lange am Leben als in natür-
lichem Seewasser.

Bemerkenswert ist das Verhalten gegenüber den Lösungen der einzelnen
Salze des Seewassers. Diese zeigen sämtlich eine mehr oder minder schnell
hervortretende Giftwirkung, welche Giftwirkung durch gleichzeitigen Zusatz
eines oder mehrerer der anderen Salze behoben oder doch vermindert werden
kann. Wählt man z. B. als Versuchsobjekt eine Alge der ersten Gruppe, die
also in destilliertem Wasser längere Zeit lebendig bleibt und setzt sie in eine
mit Seewasser isosmotische Kochsalzlösung, so stirbt sie darin schnell ab; bei

177] Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. 59 1

gleichzeitigem Zusatz von etwas CaCL bleibt sie ebenso lange am Leben als
in destilliertem Wasser, fügt man noch KCl hinzu, so bleibt sie in dem Gemisch
der drei Salze länger lebend als in destilliertem Wasser und fügt man endlich
noch MgClo und MgS04 hinzu, so bleibt sie ebenso lange frisch wie in natür-
lichem Seewasser. Weitere Untersuchungen zeigen, dass die Giftwirkung des
Kochsalzes durch KCl und MgCl2 nur in geringem Masse herabgesetzt wird,
dass die Kombination NaCl -f- KCl 4- CaCl2 günstiger ist als NaCl-j-Mg012
4- CaCl2 und diese wiederum günstiger als NaCl 4- MgCl2 4" KCl. Nach dem
Verf. scheint die erstgenannte Mischung (NaCl 4- KCl + CaCl2) „to be quite
generali^- beneficial for animals and plants". Da dieser Mischung wichtige
Nährstoffe fehlen, nämlich Mg von S04, von N- und P-haltigen Nährsalzen
ganz zu schweigen, handelt es sich offenbar bei den Versuchen des Verfs. nicht
um eigentliche Kultur versuche, vielmehr nur darum, Salzmischungen ausfindig
zu machen, in welchen die Algen möglichst lange ihr Leben fristen können,
ohne zu gedeihen. Algen der zweiten Gruppe zeigen ein im wesentlichen
gleiches Verhalten gegenüber den einzelnen Salzen.

Es leuchtet ein, dass es sich um eine Funktion der Kationen handelt ;
dass der osmotische Druck keine wesentliche Rolle dabei spielt, ergibt sich
aus der Tatsache, dass einerseits alle Algen in Brackwasser gut gedeihen,
anderseits Kochsalzlösungen, auch wenn sie bedeutend stärker sind als die
oben erwähnten, nicht giftig wirken, falls nur andere Salze in geeigneter
Konzentration gleichzeitig geboten werden.

Auf Grund dieser Erfahrungen nennt nun der Verf. Salzgemische,
welche die einzelnen Salze in solchem Verhältnis enthalten, dass sie den Algen
zuträglich sind, physiologisch ausgeglichene (balanced) Lösungen.

Mit Recht vergleicht der Verf. seine Ergebnisse mit ähnlichen Befunden
auf zoologischem Gebiet, z. B. der bekannten Erscheinung, dass die Eier des
Teleostiers Fundulus, die sich in destilliertem Wasser und in Seewasser ent-
wickeln können, in Kochsalzlösungen absterben, falls diesen nicht geringe
Mengen eines Salzes mit mehrwertigem Kation zugefügt werden.

027b. Osterhout, M. J. V. Über die Bedeutung physiologisch aus-
geglichener Lösungen für die Pflanzen. IL Süsswasser- und
Landpflanzen. (Bot. Gaz., 1907, vol. 44, p. 259—272.)

Als Material dienten niedere und höhere Algen, Lebermoose (Lunularia).
Schachtelhalme (Equisetum) und mehrere Arten von Blütenpflanzen, sowohl
solche des Süsswassers wie auch des festen Landes (namentlich Weizen). Die
Lösungen wurden wie früher mit destilliertem Wasser und völlig reinen Salzen
hergestellt und hatten auch dieselbe Zusammensetzung wie die bei den
Meerespflanzen verwendeten, nur dass niedere Konzentrationen benutzt wurden.
Die Pflanzen waren hellem Licht, aber nicht dem direkten Sonnenlicht aus-
gesetzt; die Temperatur betrug 18 — -20°.

Von Algen kamen vorzugsweise Vaucheria und Spiroqyra zur Verwendung.
Folgende Tabelle lässt bequem das Versuchsergebnis überschauen. Das 4- zeigt
an, dass die Algen am Leben waren, als der Versuch abgebrochen wurde. Die
Mengen der Salze sind in Kubikzentimetern von 3 mol./32-Lösungen gegeben.
Das verdünnte künstliche Meerwasser war aus NaCl (1000 ccm 3 mol./32-Lösung),
MgCL (78 ccm), MgS04 (38 ccm), KCl (22 ccm;, CaCl2 (10 ccm) hergestellt.
Bei den früheren Versuchen mit Meeresalgen waren überall 3 mol./8-Lösungen
benutzt worden.

592

Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder.

[178

Kulturflüssigkeit

Lebensdauer in Tagen

Vaucheria Spirorjyra

Verdünntes Meerwasser (0,6 °/0 Salze) . . .
„ künstliches Meerwasser . . .

Wasserleitungswasser

NaCl

1000 NaCl + 22 KCl + 10 CaCla

1000 NaCl + 78 MgCL+10 ÜaCl, ....

1000 NaCl + 78 MgCL + 22 KCl

1000 NaCl + 22 KCl

1000 NaCl + 78 Mo'Cl2

1000 dest. H20 + 78 MgCl2 (= m/147 MgClo)
1000 dest. H.:0 + 22 KCl (= m/495 KCl) . .
1000 dest. HoO + 10 CaCl2 (= m/1077 CaCL)

40 +
40 +

40 +
40 +

■/ioo
21

40 +

40 +

2/3
'/8
2/3

i1/«

2 i/o
9

95 +
95 +
95 +
95 +

3/4

60
65
65
2
2

l»/4
2

3

95 +

Aus dieser Übersicht geht der ausserordentlich günstige Einfluss des
Chlorcalciumzusatzes zur Chlornatriumlösung deutlich hervor; die Wirkung
von KCl oder von MgCl2 tritt dagegen weit zurück, wenngleich es ersichtlich
ist, dass diese Salze, wenn sie für sich allein oder wenn sie beide zusammen
dem NaCl zugefügt werden, dessen Giftigkeit etwas herabmindern. Anderseits
sind KCl und MgCl2, wenn sie neben CaCl2 in der Chlornatriumlösung vor-
handen sind, namentlich bei Vaucheria von auffallend günstiger Wirkung.

Dieselbe Erscheinung zeigt sich bei den Versuchen mit anderen Pflanzen,
namentlich bei denen mit Brutknospen von Lunularia (einem Lebermoose).
Von Algen wurden noch geprüft: Oscillatoria, Chlamydomonas, Desmidien, eine
Diatomee und Oedogoniwm. Überall wurden die gleichen Ergebnisse gewonnen.
Danach ist kaum ein Zweifel, dass die Süsswasseralgen demselben Gesetze ge-
horchen wie die Meeresalgen.

Interessant sind auch folgende Zahlen, die Verf. über das Längen-
wachstum der Keimschläuche auskeimender Zoosporen von Vaucheria erhalten
hat (Lösungen: mol./lOO, Zeitdauer 25 Tage):
Detilliertes Wasser . . 9,4 cm
1000 NaCl + 10 CaCla • 9>4 »

NaCl 0,18,,

CaCl«, 0,18 „

Hier zeigt sich unter anderem eine
wenn es allein in der Lösung vorhanden ist.

Zunahme 5000 °/0
5000 „
0.4 „
0 „
schädliche Wirkung des CaCL,
Das ist nicht immer der Fall,

wie bereits die oben mitgeteilten Versuche des Herrn Benecke beweisen.

Aus

den vom Verf. angegebenen Zahlen geht hervor, dass das Wachstum des
Lunular ia-Tha\lus und der Equisetum- Prothntiien in reinen CaCl2-Lösungen
hinter dem in Gemischen von NaCl und CaCl2 nicht allzuweit zurückstand.
Unsere erste Tabelle zeigt auch eine sehr günstige Wirkung reiner CaCL-
Lösungen auf die Lebensdauer von Spirogyra : Lanularia-Knospen lebten
darin ebenso lange wie in NaCl-CaCl2-Lösung (100 Tage, in NaCl-Lösung nur
4 Tage).

1791 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 593

„Im allgemeinen", sagt Verf., „können wir erfahren, wann die Lösung
richtig ausgeglichen ist, indem wir ihre Wirkungen mit denen des reinen
destillierten Wassers vergleichen. Wir erwarten, dass in einer richtig aus-
geglichenen Lösung der Organismus annähernd so lange lebt wie in destilliertem
Wasser, und wenn er auch nicht so schnell wächst (wegen des osmotischen
Druckes), so müsste doch die schliesslich erreichte Entwickelung mit der ver-
gleichbar sein, die in destilliertem Wasser erzielt wird."

Über die Erklärung der besprochenen Erscheinungen äussert sich Verf.
ebenso vorsichtig wie Herr Benecke. Übereinstimmend aber weisen beide auf
die Bedeutung derartiger Untersuchungen für die Ergründung der Beziehungen
zwischen Tier- und Pflanzenphysiologie hin.

627c. Palladin, W. Die Atmungspigmente der Pflanzen. (Hoppe-
Seylers Zeitschr. f. physiol. Chemie, 1908, LV, p. 207—222.)

Als Verf. Weizenkeime einen Tag lang unter einer dünnen Wasserschicht
einweichte und dann in Chloroformwasser bei Zimmertemperatur der Selbst-
verdauung überliess, bildete sich an der Oberfläche der Flüssigkeit eine dunkel-
braune Schicht, die beim Umrühren wieder verschwand. Bei weiterem Stehen-
lassen erschien die braune Schicht von neuem und nahm an Dicke zu. Nach
einem Monat wurde die Flüssigkeit abfiltriert; das dunkelgelbe Filtrat wurde
beim Umrühren und bei Luftzutritt erst dunkelrot, dann schwarzbraun. Die
Keime selbst nahmen bei Luftzutritt erst eine violette, dann eine dunkelbraune
Färbung an. Es befand sich also unter den bei der Selbstverdauung ent-
stehenden Abbauprodukten der Eiweisskörper eins (oder mehrere?), das bei
allmählicher Oxydation verschiedenartig gefärbte Pigmente lieferte.

Diese Oxydation kommt nach Verf. unter Mitwirkung eines in den
Keimen vorhandenen oxydierenden Enzyms, der Peroxydase, zustande. Die
chromogene Substanz bildet sich in den Weizenkeimlingen erst infolge der
Selbstverdauung; in vielen anderen Pflanzen ist sie aber in mehr oder weniger
bedeutender Menge zu jeder Zeit vorhanden. So hat G. Bertrand (1897)
nachgewiesen, dass sich im Safte des Lackbaumes ein oxydierendes Enzym,
die Laccase vorfindet, die das Laccol zu einem schwarzen Pigment oxydiert.
Bei den Pilzen wird Tyrosin nach Bourquelot und Bertrand (1896) durch
Tyrosinase zu einem dunkelbraunen Pigment oxydiert. Nach einigen, wie
Czapek (1902), tritt bei dieser Oxydation Homogentisinsäure als Zwischen-
produkt auf. Bertrand hat auch im Verein mit Muttermilch gezeigt, dass die
Färbung des Schwarzbrotes (pain bis) auf zwei Prozessen beruht: Zuerst
werden Eiweissstoffe durch proteolytisches Enzym gespalten, dann wird ein
Spaltungsprodukt, Tyrosin, durch Tyrosinase oxydiert unter Bildung eines
dunkelbraunen Pigments. Etwas Ähnliches geht bei des Verfs. Versuch mit
den Weizenkeimlingen vor sich. Dass aber, wie vielfach angenommen wird,
die Schwarzfärbung der Pflanzensäfte allgemein auf einer Oxydation des
Tyrosins beruht, bezweifelt Palladin auf Grund von Beobachtungen E. Schulzes.

In der lebenden Pflanze kommen die Atmungspigmente nicht zum Vor-
schein. Dies ist die LTrsache davon, dass sie von vielen für Abfallstoffe ange-
sehen werden. Nur Reinke hat schon früher auf ihre physiologische Be-
deutung hingewiesen. Er nannte sie „Autoxydatoren" und schrieb ihnen eine
wichtige Rolle beim Atmungsvorgange zu. Indessen ist dieser bedeutend
komplizierter als Reinke annahm.

Die von Palladin mit der von Weizenkeimlingen erhaltenen braunen
Flüssigkeit ausgeführten Versuche zeigten (in Übereinstimmung mit Reinke),
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908^ 3. Abt. [Gedruckt 19. 5. 11.1 3^

594 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. [180

dass die Pigmente reduziert werden können, besonders gut durch Zinkstaub
bei Gegenwart von Essigsäure; es entsteht eine strohgelbe Lösung, deren
Oberfläche sich bei Luftzutritt wieder dunkel färbt. Auch eine gekochte Lösung
erwies sich als reduzierbar, oxydierte sich aber nachher nicht von selbst wieder,
sondern erst nach Zusatz von Peroxydase und Wasserstoffsuperoxyd; dabei
entstand eine rote, keine schwarze Lösung. Das Atmungspigment des Weizen-
keimlings ist also kein Autoxydator, d. h. es wird nicht unmittelbar durch
molecularen Sauerstoff oxydiert, sondern nur bei Gegenwart neuer Oxydase.

Die Atmungspigmente (die Verf. auch an anderen Objekten, wie
Kartoffelknollen und Champignons, studierte) können durch die Pflanze selbst
reduziert werden, wie schon das eingangs erwähnte Verschwinden der Färbung
beim Umrühren zeigt; die von den Weizenkeimlingen abfiltrierte dunkelbraune
Flüssigkeit wird durch Weizenkeime bei Lnftabschluss und Gegenwart von
Chloroform zu einer hellgelben Lösung reduziert. Es müssen also Reduktasen,
deren Anwesenheit in Tiergeweben sichergestellt ist, auch in den Pflanzen
auftreten, wofür erst wenig Zeugnisse vorliegen (Hahns Reduktase der Hefe,
Rey-Pailhades Philothion in Zellen von Samenpflanzen, Loews Silberreduktion
durch Protoplasma). Verf. hat nun zum Nachweis der Anwesenheit von
Reduktasen in Samenpflanzen noch einige besondere Versuche ausgeführt, wobei
Weizenkeimlinge mit einigen Tropfen Chloroform in Reagenzgläser gebracht und
mit der Lösung eines leicht zu reduzierenden Stoffes (wie Methylenblau, Indigo-
farbstoffe, Hämatoxylin usw.) übergössen wurden; die Reagenzgläser wurden
dann luftdicht verschlossen. Nach 1 — 2 Tagen war die Lösung entfärbt, nahm
aber beim Öffnen des Reagenzglases wieder ihre ursprüngliche Färbung an.

Der Grundprozess des Atmungsvorganges ist bei Pflanzen ebenso wie
bei Tieren eine anaerobe Spaltung komplizierter organischer Verbindungen.
Den anaeroben Enzymen, die hierbei beteiligt sind und deren bekanntestes die
Zymase, die Erregerin der Alkoholgärung, ist, fügt Verf. auf Grund seiner
Beobachtungen die Reduktasen hinzu, indem er auf seine und Kostytschews
Beobachtungen über anaerobe Kohlensäureentwickelung ohne Alkoholbildung
und auf dns Vorkommen von Reduktase und Katalase neben Zymase in der
Hefe hinweist. Die Reduktasen „werden besonders häufig bei Organismen
gefunden, die einen mehr oder weniger beträchtlichen Teil ihres Lebens bei
Sauerstoffmangel verbringen, namentlich bei Hefe und Bakterien". Das gleiche
gilt für die Katalase. Diese drei Arten von Enzymen (Zymase, Reduktase,
Katalase) rufen also nach des Verfs. Ansicht den primären Prozess hervor,
durch den Energie freigemacht wird. Bei Sauerstoffzutritt erfolgt dann eine
weitere Oxydation von Spaltungsprodukten des anaeroben Stoffwechsels.
Auch hierbei wirken nach Verf. die Reduktasen mit. In welcher Weise
dies geschieht, wird nicht näher erläutert. Nach den oben geschilderten Ver-
suchen sollen sie anscheinend die Atmnngspigmente reduzieren und den diesen
entrissenen atomistischen Sauerstoff auf andere Substanzen übertragen. Die
Oxydasen tun weiter nichts, als dass sie bei Luftzutritt molecularen Sauerstoff
absorbieren und auf die Atmungschromogene übertragen; einige tun dies
selbständig (Laccase), andere dagegen (Peroxydase) bedürfen der Anwesenheit
eines Superoxyds (Oxygenase). Für das beschränkte Oxydationsvermögen der
Oxydasen beruft sich Verf. auf Bertrands und seine eigenen, mit Kostytschew
angestellten Beobachtungen. Die oxydierten Chromogene werden (so hat man
wohl die Sache aufzufassen) sofort durch die Reduktasen reduziert. Daher wird
das Pigment, das das Endprodukt der durch die Oxydase bewirkten Oxydation dar-
stellt, in der lebenden Pflanze gar nicht sichtbar. Es erscheint erst nach dem

181]

Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder.

595

Tode der Zellen, namentlich (wie Verf. annimmt) durch die Verstärkung der
Oxydasenwirkung, weniger infolge der Hemmung der Reduktionstätigkeit.

Die Atmungsoxydasen sind also als pigmentbildende Enzyme aufzufassen.
Zu den Atmungspigmenten gehören nach Verf. verschiedene Farbstoffe höherer
Pilze, die Flechtenfarbstoffe, Indigo, Hämatoxylin usw. Neben den farblosen
Ohromogenen in der lebenden Pflanze gibt es auch unter normalen Verhält-
nissen gefärbte Farbstoffe, wie z. B. die der roten Rübe und des Rotkohls, die
sich durch Reduktion entfärben und bei Luftzutritt wieder rote Lösungen geben.

Verf. schlägt vor, alle Atmungspigmente der Pflanzen ohne Rücksicht
auf ihre chemische Struktur als Phytohämatine zu bezeichnen, um der Identität
ihrer physiologischen Bedeutung mit derjenigen des Bluthämatins Ausdruck
zu geben. Der Nachweis von Oxydasen im Blute mache es wahrscheinlich,
dass sie auch hier als Sauerstoffüberträger auf das (Jhromogen (das dann zu
Hämatin wird) tätig seien. Niedere Tiere ständen den Pflanzen noch näher.
da ihr Blut farblos sei und sich nur bei Luftzutritt färbe. Auch seien die
Blutfarbstoffe der niederen Tiere ebenso wie die der Pflanzen verschiedenartig
gefärbt und zusammengesetzt. Der Zellsaft der Pflanzen könne danach als
Pflanzenblut betrachtet werden.

628. Panoliaud. (Jortex Oascarae sagradae. (Schweiz. Wochenschr.
Chem. Pharm., 1906, p. .">20.)

Der Verf. warnt vor der Entbitterung der Sagradarinde durch gebrannte
Magnesia, denn durch diese wird das Oxymethylanthrachinon unlöslich.

Anderseits aber haben Caesar und Loret gezeigt, dass gerade Sagrada
Fluidextrakte, die mit Magnesia entbittert worden waren, ausgezeichnet an
Wirkung waren.

629. Pancoast, R. 0. und Pearson, A. \V. Verfälschung von ätherischen
Ölen. (Amer. Journ. Pharm., LXXX, 190-!, p. 216.)

630. Parkes, A. E
Verfälschung. (Pharm. Journ., 1908, p. 267.

Bemerkungen über den Safran und seine

Die Untersuchungen des Verls, kann man wie folgt zusammenfassen:

Stoffe

Prob

e

A.

B.

C.

D.

E.

F.

G.

Gesamtasche

37,90

14,90

37,75

26,15

20,10

4,95

5,00 o/0

\ wasserlöslich

Davon \ , .. ,. ,
/ wasserunlöslich

34,7
33,16

1,70
0,50

1,65
0,10

13,80

10,70

5,45
1 ,25

1,75
0,50

1.60%
0,25 o/0

Alkalität der Asche von

1 g Substanz, ausge-

drückt in Kubikzenti-

l

metern n/10 Säure .

0,5

15,8

40,0

6,25'

13,5

2,75

2,8 ccm

Gewichtsverlust bei 100°

12,00

13,90

14,00

12,90

13,80

10,86

12,40 o0

Mit kaltem Wasser extra-

hierbar

36,70

58,50

77,00

41,50

57,50

51,50

50,3 o „

Aschengehalt des Ex-
traktes

Rohfaser

Kaliumoxyd (KoO) . .
Bortrioxyd (B203) . . .

3,80

14,10

4,19
3,01

33,00

10,07
9,60

10,90
4,(1")
3,80
1 ,66

1 6,30
6,80
5,18
2,62

3,60
3,70
2.37

3,2 o/o
3,21o/o
2,39 o/0

Farbreaktion mit H.,S04 .

braun

blau

rot

braun

braun

blau

blau

Bezüglich der näheren Angaben

sei auf das Original verwiesen.

38^

596 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 1182

631. l'arry. Bösen öle. (Chem. and Drugg., LXIX, 1906, p. 230.)
Gerade Rosenöle werden in der stärksten Weise verfälscht. Sie wiesen

nach dem Verf. Konstanten auf, die bei 15 Mustern innerhalb der folgenden

Grenzen lagen:

d 300 0,862—0,880 «d-1 ° 10' bis — 3« 20'

ud 1.465°—1,475 Schmelzpunkt 20—22».

Das spezifische Gewicht des gewöhnlichen bulgarischen Rosenöles ist

höher und liegt über 0,855. Gewöhnlich liegt es bei 0,850—0,853 bei 30».

632. Parry, J. Ernest. Verfälschtes Zitronenöl. (Chem. and Drugg.,
LXX1I, 1908, p. 275.)

Der Verf. fand auf dem Londoner Markt verfälschte Zitronen von ganz
abnormem Charakter, was die Alkohollöslichkeit, sowie das Drehungsvermögen
angeht. Auch Refraktion und Citralgehalt sind abnorm.

Die Verfälschung besteht aus Petroleum oder Terpenen.

1)33. Parry, E. Verfälschung des Pfefferminzöles mit Petroleum.
(Chem. and Drugg., LXXII, 1908, p. 770.)

Derartige Verfälschungen fanden sich in letzter Zeit häufig auf dem
Londoner Markt.

Fünf verschiedene Ölproben enthielten bei einem spezifischen Gewichte
von 0,895 — 0,887 und der optischen Drehung von — 12° bis — 14° 30', die
grosse Quantität von 44 — 49% Petroleum.

Der Mentholgehalt der untersuchten Ölproben schwankte zwischen
29-31 o/0.

634. Parry, E. J. Über Rosenöl. (Chem. and Drugg., LXXII, 1908,
p. 244.)

Der Verf. berichtet über die im Londoner Markt aufgefundenen Ver-
fälschungen des Rosenöles, über die im Original nachzulesen ist.

635. Pastrovich, P. Über das Fett der Samen von Canarium commune-
(Chem.-Ztg., XXXI, 1907, p. 781—782.)

Die Samen der genannten Burseracee, die auch als Javamandeln bekannt
sind, stellen ovale, am unteren Ende schwach zugespitzte, nutlose Steinkerne
dar mit drei schwachen, schmalen Längsrippen; sie bestehen aus der drei-
fächerigen, äusserst harten Samenschale und den Samenkernen, von denen in
der Regel nur zwei entwickelt siud, während der dritte abortiert. Aus den
Kernen Hess sich durch Petrolätherextraktion 65,73%, durch Pressen 56,12%
Öl gewinnen. Das erhaltene Öl ist geruchlos, von hellgelber Farbe, angenehmem
reinen Geschmack und als Speisefett zu empfehlen. Es erstarrt bei 17°,
schmilzt bei 18° zu einer schwach opalisierenden Flüssigkeit, die erst bei 28°
vollkommen klar wird. Die Gegenwart eines fettspaltenden Fermentes konnte
in den Samenkernen nicht nachgewiesen werden. Zum Schluss führt Verf.
noch die verschiedenen chemischen Variabein und Konstanten auf.

636. Pavesi, V. Weiteres über Aporein und andere AI kaloide
von Papaver dubium. (Gazz. chim. Ital., XXXVII, 1907, p. 629.)

637. Pearson, VV. A. und Roberts, J. (J. Die Alkaloidbestimmung in
der Belladonnawurzel. (Amer. Journ. Pharm , LXXX, 1908, p. 459.)

638. Pelly, R. ti. Das flüchtige Öl der Blätter von Ocimwm virkle.
(Proceed. Chem. Soc, XXIV, 1908, p. 63.)

Dem Verf. gelang es, bei der Wasserdampfdestillation ein orangegelbes
Öl zu isolieren, dessen Konstanten dl5° 0,9115; [«]d + 1,3U' waren. Es ist in
jedem Verhältnis mit 90 proz. Alkohol mischbar.

183] Berichte über die phanuakognostische Literatur aller Länder. 597

Es besteht aus 32 <V0 Thymol, 10 °/0 Alkoholen, 2 o/0 Estern und einem
Terpen C:0H]6, Siedepunkt liegt bei 160—1660; i™,B456; [«]d+0° 10'.

639. Pepin, P. Hecherches sur l'huile de cade vraie. Paris 1908.

Da mir das Werkchen nicht erreichbar war, gebe ich das Referat in
Schimmels „Bericht" von 1908, p. (52 ff. wieder:

„Verf. gibt zunächst einen Überblick über die Etymologie und Geschichte
des Kadeöls, geht dann auf die botanische Herkunft und die Gewinnung des
Öles näher ein und bespricht schliesslich dessen Eigenschaften und Prüfung.

Für die Fabrikation des echten Kadeöles kommt ausschliesslich der
Cedernwacholder, Juniperus Oxycedrus, in Betracht, ein oft buschartiger Strauch,
selten ein kleiner Baum, der sich von anderen Juniperus-Arten durch das
gleichzeitige Vorhandensein nadeiförmiger Blätter und in reifem Zustande
orangeroter Früchte unterscheidet. Er wächst auf kalkigem und mergeligem
Bodeu und gedeiht am besten bei südlicher Lage. Kultiviert wird er nicht,
sondern kommt, besonders in der Provence, in reichlichen Mengen wild vor.
Stark beeinträchtigt wurden die Bestände durch die 1901 und 1907 in der
Umgebung von Toulon ausgebrochenen Feuersbrünste.

Die Holzhauer unterscheiden zwei Sorten Holz, die „cades gras" und
die „cades maigres", nur die ersteren werden für die Destillation verwendet,
die letzteren dienen als Brennholz. Nach Ansicht der Fabrikanten ist das
Kernholz das ölreichste, ebenso soll der Ölgehalt nach der Wurzel hin zu-
nehmen. Zur Destillation wird das Holz von der Rinde befreit und möglichst
zerkleinert. Die Art der Zerkleinerung ist nach Verfs. Versuchen von grosser
Bedeutung für die Ölausbeute. Bei Verarbeitung von Hobelspänen (copeaux)
erhielt er 10% Ol, während gröbere Späne (büchettes) sehr viel weniger
gaben.

Das Öl wird nach zwei Methoden gewonnen, nach der „destillatio per
descensum" und nach der „combustion en milieu confine".

Die erstere Methode wird ausschliesslich im Kleinbetrieb angewendet:
Ein gussei^erner Kessel wird mit Spänen gefüllt und dann umgekehrt auf
seinen Deckel oder auf eine ausgehöhlte Steinplatte aufgekittet; in der Mitte
dieser Unterlagen befindet sich ein Loch, an dem ein Abflussrohr angesetzt
ist. Man zündet nun ein lebhaftes Feuer an, so dass der Kessel allseitig von
Flammen umgeben ist. Die Destillation beginnt mit dem Auftreten dicker
Dämpfe, und bald darauf fliesst eine schwärzliche, dicke Flüssigkeit ab, be-
gleitet von scharfen, russigen Dämpfen. Der Prozess dauert je nach der Menge
des Holzes '/2 bis mehrere Stunden. An Stelle der Kessels tritt bisweilen
eine Grube, deren Boden aus einer Steinplatte besteht, die ebenfalls mit einem
Abflussrohr versehen ist. Die Späne werden in der Mitte der Grube zu einem
Haufen aufgeschichtet und mit Ziegelsteinen überdeckt, die durch Lehm oder
dergl. miteinander verbunden werden. Der übrige Teil der Grube dient für
das Brennmaterial.

Bei der Kadeölgewinnung im grossen wird allgemein das Verfahren der
unvollkommenen Verbrennung unter Luftabschluss (combustion en milieu con-
fine) angewendet. Man benutzt dazu einen gemauerten Ofen von 6 bis 7 m
Länge und ca. 2 m Höhe, dessen Boden geneigt und mit einer Rinne ver-
sehen ist, durch die das Öl in ein Gefäss abfliessen kann, das vor der Aus-
flussstelle in einer Grube steht. Der Ofen ist ausser an der für die Grube
vorgesehenen Stelle mit Erde überdeckt und zum Einfüllen und Anzünden

598 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [ IS4

des Holzes oben sowie an den Seiten mit grossen Öffnungen versehen. Un-
mittelbar nach dem Anzünden des Holzes werden sämtliche Öffnungen luft-
dicht verschlossen, und nunmehr vollzieht sich im Innern unter gleichzeitiger
Yerkohlung des Holzes die Destillation. Ein solcher Prozess dauert oft
mehrere Tage.

Die Ausbeute an Öl hängt sehr von verschiedenen Umständen ab. so
dass sich genaue Angaben darüber nicht machen lassen. Direkt entscheidend
für eine gute Ausbeute ist nach Verf. eine möglichst feine Zerkleinerung des
Holzes, dagegen scheint der Gang der Destillation ohne Einfluss darauf zu sein.
Bei zu starkem Feuer erhält man ein dickeres und schwärzeres Öl als unter
normalen Verhältnissen.

Die Destillation wird das ganze Jahr hindurch betrieben, vorzugsweise
aber von September bis Mai. Das frische Destillat wird zunächst mindestens
14 Tage bis 3 Wochen der Ruhe überlassen ; es hat sich dann in drei Schichten
getrennt, wovon die oberste das Kadeöl ist. darunter kommen Wasser und
schliesslich teerige Produkte.

Verfs. Angaben über die P]igenschaften des Kadeöls stehen vielfach im
Widerspruch mit denen anderer Forscher, doch sind sie deshalb massgebend,
weil sie an wirklich authentischem Material festgestellt wurden, während für
die von anderer Seite ausgeführten Untersuchungen kein verbürgt reines Öl
verwendet worden war. Verf. benutzte teils eigene Destillate, teils Öle, die
unter seiner Aufsicht hergestellt worden waren. Daneben wurden natürlich
auch zum Vergleich Handelsprodukte untersucht Er kommt zu folgenden
Schlüssen:

Kadeöl ist eine klare, rotbraune, noch einigermassen bewegliche Flüssig-
keit von stark hervortretendem Rauchgeruch. Das spezifische Gewicht liegt
etwas unter 1, so dass in Wasser fallende Tropfen alsbald wieder an die
Oberfläche steigen. Es löst sich klar in 8 — 10 Vol. 96prozentigen Alkohols
und in jedem Verhältnis in Äther, Amylalkohol, Chloroform, Essigsäure,
Anilin und Benzol. Nur teilweise löslich ist es in 90prozentigem Alkohol,
ferner in Terpentinöl, Petroläther und Schwefelkohlenstoff.

Der Säuregehalt, als Essigsäure berechnet, soll nicht über 1,5°/,, betragen.
Die Ausführung der Bestimmung geschieht in folgender Weise: 10 ccm Kadeöl
werden in einem Scheidetrichter mit 20 ccm destillierten Wassers kräftig
durchgeschüttelt und das Gemisch ca. eine Stunde lang der Ruhe überlassen.
Hierauf wird das Wasser durch ein angefeuchtetes Filter in einen 250 ccm
fassenden Messkolben filtriert und das Öl in gleicher Weise wie oben noch so
oft mit je 20 ccm Wasser nachgewaschen, bis der Messkolben bis zur Marke
gefüllt ist. 200 ccm der wässerigen Lösung (entsprechend 8 ccm Kadeöl)
werden sodann unter Benutzung von Lackmus als Indikatur mit Barytlösung
titriert. Der Farbenumschlag ist schlecht zu sehen, man tut gut, gegen Ende
der Reaktion Tüpfelproben auf angefeuchtetem blauem Lackmuspapier zu
machen.

Bei den authentischen Ölen fand Verf. zwischen 0,93 und 1,21 °/0.

Ein weiterer Faktor zur Bewertung des Kadeöls soll die Prüfung des
Siedeverhaltens sein. Verf. destillierte die Öle sowohl unter gewöhnlichem
als auch unter vermindertem Druck. Im ersteren Falle ergab sich, dass bei
reinen Kadeölen die zwischen 150 und 300° siedende Fraktion 68 bis 80°/0
betrug, bei Fichtenteeröl dagegen nur 1 5 °/0 . Unter einem Druck von 65 mm
gingen bei reinem Öl bis 215° 77 — 83l7o über, bei Fichtenteeröl nur 23%.

185] Berichte über die phartnakognostische Literatur aller Länder. 599

Verf. benutzte zu den Destillationen einen gewöhnlichen Kolben mit in der
Mitte des Halses angesetztem Abflussrohr.

Die Farbreaktionen mit Ammoniak (Gelbfärbung des Teervvassers), Kalk-
wasser (ebenso) und Eisenchlorid (Rotfärbung des Teerwassers) hält Verf. für
zwecklos, da Fichtenteer ganz ähnliche Reaktionen gibt und folglich diese
häufigste aller Verfälschungen dadurch gar nicht entdeckt werden kann.

Furfurol, über dessen Gegenwart im Kadeöl die Meinungen bisher geteilt
waren, konnte Verf. mit aller Sicherheit darin nachweisen, was auch bei der
Herstellung des Öles ganz natürlich ist. Damit ist die Prüfung auf Furfurol
zur Erkennung einer Verfälschung des Kadeöles hinfällig. Dasselbe gilt für
den Nachweis von Brenzcatechin.

Ein sehr gutes Mittel, um einen Zusatz von Fichtenteeröl zu erkennen,
ist nach Verf. die Kupferacetatprobe: 1 ccm des zu prüfenden Öles wird mit
15 ccm Petroläther tüchtig durchgeschüttelt und die Mischung sodann filtriert.
Zu 10 ccm des Filtrats setzt man das gleiche Volumen einer fünfprozentigen
Lösung von neutralem Kupferacetat, schüttelt wiederum kräftig durch, ver-
dünnt 5 ccm der Petrolätherschicht mit 10 ccm Äther und filtriert. Das
Filtrat ist bei Gegenwart von Fichtenteeröl intensiv grün gefärbt, während
reines Kadeöl eine kastanienbraune Färbung verursacht. Auf diese Weise
konnte Verf. noch einen Zusatz von ) 0°/0 Fichtenteer erkennen. Die Öle
anderer Juniperusaiten zeigen ebenfalls nicht die Färbung des echten Kadeöles.
Die von Hirschsohn für Kadeöl angegebene Grünfärbung beruht sonach auf
einem Irrtum.

Die vielfache Verfälschung des Kadeöles hat seinen Preis derartig herab-
gedrückt, dass seine Fabrikation nicht mehr rentabel ist und nur noch ver-
einzelt betrieben wird, besonders in den südfranzösischen Departements Var
und Gard. Diesen Niedergang der Produktion bedauert Verf. wegen des thera-
peutischen Wertes des Öles um so mehr, als in einem grossen Teil der Pro-
vence reichlich Destillationsmaterial vorhanden wäre. Ein Steigen der Preise
würde alle diejenigen der Fabrikation wieder zuführen, die sie wegen des
geringen Nutzens aufgegeben haben. Hoffentlich tragen die Untersuchungen
des Verfs. dazu bei, dass man reine und verfäschte Kadeöle besser voneinander
unterscheiden kann als bisher, denn nur dann lässt sich eine Besserung der
jetzigen Zustände erwarten."

640. Perkill, A. G. Eine Indigopflanze. (Journ. Soc. Chim. Ind.,
XXVI, 1907, p. 389.)

Im Westsudan und in der Sierra Leone gijt es unter dem Namen „Gara"
eine Indigopflanze, die als die Leguminose Lonchocarpus cyanescens bestimmt
wurde.

Die Eingeborenen benutzen sie unter Zusatz von der Rubiacee Morinda
citrifolia zur Küpe.

Dem Verf. gelang es, aus den lufttrockenen oberirdischen Organen etwa
0,7% Indigotin zu gewinnen.

bloa. Perkin, "William Henry jun. und Robinson, Robert. Brasilin und
Hämatoxjlin, VIII. (Journ. of the Chemical Society, vol. 93 — 94, p. 489
bis 517.)

Vor Erfindung der Anilinfarben, deren erste bekanntlich William Henry
Perkin sen. gefunden hat, spielten die tropischen Farbhölzer eine grosse Rolle
und besonders die zur Unterfamilie der Caesalpiniaceen gehörigen Farbstoffe
des Rotholzes von Caesalpinia echinata [und des Blauholzes von Haematoxylon

600

Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

1186

Campechianum fanden eine ausgedehnte Verwendung als Beizenfarbstoffe. Die
Farbstoffe Brasilei'n und Hämatein entstehen durch Oxydation aus den um
zwei Wasserstoffatome reicheren kristallisierenden Körpern Brasilin, C10Hi4O5t
aus dem brasilianischen Rotholz, und Hämatoxylin, C10HuO6, aus dem mexi-
kanischen Blauholz, die schon Gegenstand vieler chemischer Untersuchungen
gewesen sind. Seit Jahren beschäftigt sich auch der Sohn des vorerwähnten
Chemikers Perkin mit der Konstitutionsaufklärung dieser Verbindungen und
seine Untersuchungen haben ihn nunmehr zur Aufstellung einer, durch zahl-
reiche Experimentalbefunde gestützten Strukturformel geführt.

Das Brasilin enthält drei Phenolgruppen, die vor dem Abbau mit Oxy-
dationsmitteln methyliert werden müssen. Es können an dieser Stelle unmög-
lich die vielen, im Laufe siebenjähriger Untersuchungen erhaltenen und nun-
mehr auch durch Synthese in ihrer Konstitution aufgeklärten Verbindungen
genannt werden.

Erwähnt seien nur die sogenannte Brasilsäure (1) und die Brasilin-
säure (II).

I. II. III.

O O ■ O

CH30/' XCH2 ÜH3O/' \CRa OH/' XCH2

CO

<XT2

-Ü(OH)
^CH2

COOH

CO

COOH
COOH

CH

— O(OH)

' CH.

// \

// %

OCH3 OCH3 OH OH

Diese beiden, durch Oxydation des Trimethylbrasilins erhaltenen Körper
konnten durch Synthese aus einfacheren Systemen bekannter Konstitution in
einer Weise aufgebaut werden, die keinen Zweifel an der Richtigkeit der auf-
gestellten Strukturformel mehr aufkommen lässt.

Für das Brasilin folgt daraus die mit III bezeichnete Formel, durch die
seine Bruttoformel C10H14O5, die Existenz dreier freier Phenolgruppen und
zweier Benzolkerne in Molekül sowie das Auftreten der genannten Spalt-
produkte erklärt wird.

In Hämatoxylin befindet sich an dem mit einem Stern bezeichneten
Kohlenstoffatom eine Phenolgruppe statt des Wasserstoffs, sonst stimmt seine
Konstitution durchaus mit der des Brasilins überein.

Ein sauerstoffhaltiger Kern, wie wir ihn hier antreffen, ist auch in
anderen Pflanzenfarbstoffen, besonders in den gelben der von Kostanecki
untersuchten Flavonreihe festzustellen, zu denen die der G-elbbeeren, der
Färbereiche, des Gelbholzes usw. gehören. Die Synthese solcher Produkte
ist bereits geglückt. Hämatoxylin und Brasilin dagegen konnten selbst noch
nicht synthetisch dargestellt werden und an ihre technische Fabrikation aus-
den Produkten des Steinkohlenteers kann noch viel weniger gedacht werden.

641. Perrot, E. Die Pseudo-Gutta von Karite oder Gutta-Ci
des Sudans. (Le Cautch. et la Guttap., 1907, No. 4.)

Verf. meinte, dass trotz aller gegenteiliger Versicherungen die Gutta
durchaus für die Technik nicht so wertlos sei.

Er gibt dann einen interessanten Überblick über die Geschichte dieser
bekannten afrikanischen Sapotacee.

187] Berichte über die phartnakognostische Literatur aller Länder. Q(j{

642. Perrot, E. Über Verwechselung und Verfälschung einiger
Medizinaldrogen. (Bull, scient. pharmaeol., XIV, 1907, p. 346.)

Flores Tilia stammen von Tilia silvestris- Verl. fand häufig dazwischen
gemengt solche von Tilia argentea. Diese Verfälschung ist an sich zwar
geringfügig, gibt aber dem Tee einen völlig anderen Geruch.

Cortex Radicis Granati. Als Verfälschung finden sich oft Rindenstücke
von Stammteilen.

Folia Jaborandi (Pilocarpins microphyllus). Es finden sich als Verfälschung
bis zu 30 n/0 Blätter der Leguminose Swartzia decipiens. In Folia Jabo-
randi von Pilocarpus Jaborandi und pinnatifolius finden sich Blätter
fremder Arten aus Brasilien und von den Antillen, auch extrahierte
Blätter fanden sich im Tee.

Rhizoma Hydrastis canadensis. Verfälschungen wie Wurzeln von
Moneses und von Wegerich.

Flores Sarothamni scoparii. Es finden sich Vermischungen mit Blüten
von Spartium jwnceutn. Es ist dies eine recht gefährliche Verwechselung,
die aber sehr häufig auftritt.

Herba violae tricoloris. Hierin finden sich oft Bruchstücke einer Legumi-
nose, die nicht identifiziert werden konnte.

Summitates Sabinae. Statt deren werden oft die vollkommen wirkungslosen
Nadeln einer Juniperus- Art gegeben, vor allem von S. phoenicea-

Pfirsichblüten. Diese werden oft versetzt mit Mandelblüten, oft auch mit
denen der Judenkirsche (Cercis siliquastrum).

Französische Belladonna. Hier wird oft ein Ersatz mit der gänzlich un-
wirksamen italienischen Tollkirsche versucht.

Sternanis. Dieser wird trotz aller gegenteiligen Publikationen immer wieder
ersetzt durch japanischen und chinesischen Sternanis,

Arnica. Hier finden sich häufig Verfälschungen mit anderen Kompositen-
blüten.

Flores pectorales. Als Verfälschungen finden sich sehr oft Eibisch, Huf-
lattich und Katzenpfötchenblüten.

Radix Sarsaparillae. Als Verfälschungen dienen alle möglichen amerikanischen»
auch französischen Smilax-Arten. Auch ganz fremde Wurzeln finden
sich darunter.
Als weitere Produkte, die vielfachen Verfälschungen unterließen, nennt

der Verf.

Flores Anchusae,
Hanf,

Convolvnlaceenharze (Scammoniwm, Remia Jalappae, Turpethum)-
Am meisten unterliegen den Verfälschungen die Pflanzenpulver.
Schärfste Überwachung erfordern:
Oleum Santali, Oleum Cacao, Balsamum Peruvianum, Balsamum Tolu-

tanum, Balsamum Copaivae, Balsamum Canadense, Sanguis Draconis.

643. Perrot, E. Der Kampferbaum in Tonkin. (Bull, scienc.
pharmaeol., XIV, 1907, p. 261.)

644. Perrot, E. und Goris, A, Die Frage der Cinchona- Arten und
die französischen Kolonien. (Bull, scienc. pharmaeol , XIV, 1907, p. 529.)

645. Perrot, E. und Goris, A. Die chemische Zusammensetzung
der Kolanüsse. (Bull, scienc. pharmaeol., XIV, 1907, p. 576.)

602 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 1188

646. Perrot, E. und (ioris, A. Die Teeblüte. (Bull, scienc. pharmacol.,
XIV, 1907, p. 396.)

Die Autoren «eben eine eingehende Beschreibung der Teeblüten-
charaktere.

Folgende Analysen werden geben:

I

11

Feuchtigkeit

10 °/o
2,80 „
2,10 „

9,20 o/0
2,50 „
2,18 „

Von Interesse ist der grosse Mangangehalt und auch der starke Eisen-
gehalt.

Die Blüten werden genau wie die Blätter angewendet, aber sie brauchen
viel weniger subtilere Behandlung.

647. Perrot, E. und Tassily, E. Chemische Untersuchung einer
zuckerhaltigen Graminee „Bourgou". (Bull. Soc. Chim. Franc, IV,
1908, p. 740.)

648. Perry und Bennet. Über verfälschtes Sandelöl. (Chem. a. Drugg.,
LXX1, 1907, p. 19.)

649. Pesci, E. Veratrum viride. (Gazz. degii osped. clinich., 1906,
No. 5.)

Der Verf. hat an einer ganzen Reihe von Fällen die blutdruckerniedrigende
Wirkung von Veratrum viride nachgewiesen.

Bei Verwendung von Tinctura Veratrii in Dosen von 60 — 90 Tropfen
und von Extractum fluidum Veratri viridis in Dosen von 10 — 15 (höchstens 30)
Tropfen erhielt der Autor sehr gute Wirkungen.

650. Petkonf, Nie. Eine neue Pfefferverfälschung. (Zeitschr. f.
öffentl. Chem., 1908, p. 133.)

651. Petrisot, C. M. Der Sternanis und seine Kultur in Tonkin.
(Bull, scienc. pharmacol., XIV, 1907, p. 277.)

Die Kultur des Sternanis stammt aus der Zeit der chinesischen
Herrschaft.

Der Baum wird bis zu 200 Jahre alt und hat in Südchina günstige Be-
dingungen zum Gedeihen.

Der Verf. gibt genaue Angaben über die sehr ausgedehnten Kulturen.

652. Petrisot, (!. M. Blätter von Belladonna, Datlira und Hyoscyamus,
Charaktere der mikroskopischen Diagnose. (Bull, scienc. pharmacol.,
XIV, 1907, p. 569.)

653. Pfannenstiel, A. und Willstätter, R. Über Rhodophyllin. (Liebigs
Ann. Chem., CCCLVIH, 1907, p. 205.)

654. Pfyl und Kcheitz, W. Über kristallisierte Salze des Safran-
farbstoffes. (Chemik.-Ztg., 1906, p. 299.)

Die Verff. weisen im Hinblick auf eine Arbeit von F. Decker „Über den
Farbstoff im Safran", darauf hin, dass sie sich seit längerer Zeit mit der Unter-
suchung des Crocetins beschäftigen.

Sie sprechen Crocetin als starke Säure an, die aus Bicarbonat die Kohlen-
säure austreibt.

Crocetin bilde nur mit Ammoniak, Chinin und Brucin kristallisierende Salze.

Die Verff. versprechen weitere Mitteilungen über dieses Thema.

189] Berichte über die pharmakugnostisclie Literatur aller Länder. 603

655. IM'yl. B. und Selieitz, W. Über ein Verfahren zur Wert-
bestimmung des Safrans. (Zeitschr. f. Untersuch, d. Nähr.- u. Genuss-
mittel, XVI, 1908, p. 347-352.)

Die Verff. kommen zu folgender Zusammenfassung ihrer Ergebnisse:

1. Der Chloroformextraktrückstand der scharf getrockneten und mit Petrol-
ather behandelten Safrannarben, in welchem durch frühere Unter-
suchungen Fructose und ein diesen Zucker lieferndes Glykosid nach-
gewiesen sein dürften, reduziert auch bei Anwendung relativ kleiner
Mengen von Substanz (unter 1 g) Fehlingsche Lösung sehr stark,
während kleinere Mengen (unter 5 g) von Griffeln sowie der üblichen
Verfälschungen des Safrans unter denselben Umständen nicht oder in
kaum wägbarer Menge reduzieren. 5 g feinster Crocus Gatinais electus
geben nach dem beschriebenen Arbeitsverfahren 0,2090, 0,1996, 0,2010 g
Kupfer, während französischer Safran im Mittel etwas weniger Kupfer
liefert. Die Kupferzahlen von griffelhaltigen Safranen liegen bedeutend
tiefer. Nach demselben Verfahren liefern 5 g Griffel und 5 g des
häufigsten Verfälschungsmittels des Safrans, Carthamus ünctorius und
Calendula officinalis, nicht eine Spur Kupfer. Auch die anderen Ver-
fälschungsmittel reduzieren nicht oder kaum messbar. Etwas Vorsicht
dürfte vielleicht nur bei Curcuma und Sandelholz am Platze sein.

2. Unter Benutzung einer von den Verff. gegebenen Interpolationstabelle
und unter der Voraussetzung, dass man den von ihnen gewählten
besten Crocus Gatinais electus als Massstab für die Bewertung heran-
zieht, kann daher voraussichtlich in allen üblichen Verfälschungen des
Safrans die Menge des Reinsafrans quantitativ bestimmt werden. In
drei unbekannten Mischungen von feinstem spanischen Safian mit der
Kupferzahl 0,2090 g mit Carthamus tinctorius wurde die Menge des
Reinsafrans einmal auf 2%, einmal auf 1% und einmal ganz genau
gefunden. Eine häufigere Verwendung des Verfahrens und Mit-
teilungen über seine Brauchbarkeit wären deshalb sehr erwünscht.

K. Krause.

656. Plyl, B. und Scheitz, \Y. Ein Beitrag zur Kenntnis der im
Safran vorkommenden Stoffe. (Zeitschr. f. Untersuch, d. Nähr.- u. Genuss-
mittel, XVI, 1908, p. 337—346.)

Die Verff. geben die Ergebnisse ihrer Untersuchungen in folgenden
Sätzen wieder:

1. Das Verfahren von Quadrat und Weiss führt zu keinem reinen Crocin,
weil dabei die Abtrennung der von uns nachgewiesenen Glykoside vom
Safranfarbstoff nicht erzielt wird. Der von Kayser mit Tierkohle ab-
getrennte Farbstoff wird durch Einwirkung von Alkohol verändert. Es
ist nicht gelungen, das Crocin zu kristallisieren.

2. Ebensowenig konnte das Crocetin als solches rein oder kristallinisch er-
halten werden: hingegen gelang es, davon kristallisierte Salze darzustellen.

3. Bei der Spaltung des Crocins tritt Glykose auf, welche als Glykose-,?-
Naphthylhydrazon nachgewiesen wurde.

4. Der von Schüler beschriebene, aus dem Petrolätherextrakt erhaltene
Kohlenwasserstoff war nicht rein. Nach völliger Reinigung schmilzt
dieser bei 63° und scheint dann identisch zu sein mit einigen anderen
Kohlenwasserstoffen, die in ebenfalls rotgelben Pflanzenfarbstoffen ge-
funden wurden.

604 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [190

5> Das von Kayser beschriebene Pikrocrocin konnte nicht kristallinisch
erhalten werden. Nach der von Kayser gegebenen Vorschrift wurde
einmal eine weisse Substanz vom Schmelzpunkt 67° erhalten, die nicht
reduzierte.

G. Die eingehende Untersuchung des Petroläther und Chloroformextraktes
führte zur Auffindung von drei kristallisierten Substanzen. Die in
Chloroform übergehende Substanz hat Ähnlichkeit mit dem Kayserschen
Pikrocrocin, indem als Spaltungsprodukte ätherisches Öl mit Safran-
geruch und Zucker auftreten. Dieser Zucker aber ist linksdrehend, gibt
kein Glykose-/?-Naphthylhydrazon, wohl aber der Glucose oder Fructose
entsprechend Osazon und die Fructosereaktion

7. In dem absolut alkoholischen Extrakt (nach erschöpfender Behandlung
mit Petroläther und Chloroform) wurde ein freier Zucker nachgewiesen,
der ebenfalls kein Glykose-ß-Naphthylhydrazon. wohl aber das der
Glykose oder Fructose entsprechende Osazon und die Fructosereaktion
gibt. Neben diesem freien Zucker konnte ferner ein Glykosid festgestellt
werden, das bei der Spaltung ätherisches Safranöl und einen Zucker
von den eben erwähnten Eigenschaften liefert. Da die Lösung der
Gemenge vor und nach der Hydrolyse links dreht, so handelt es sich
zweifellos in beiden Fällen um Fructose.

<>57. P/'yl, B. u. Schutz, \V. Ein Verfahren zur Wert bestimmung
des Safrans. (Zeitschr. f. Nähr.- u. Genussm., XVI, 1908, p. 347.)

658. Pharmacopoea danica 1907. Siebente Auflage. Ref. in Apoth.-Ztg.,
1908.

659. Pickleis, S. S. Cy prisches Origanumöl (Spanisches Hopf enö 1).
(Journ. ehem. Soc, XCI1I, 1908, 862.)

660. Pictet, Arne. Über einige neue Pf lanzenalkaloide. (Bull.
soc. chim., Paris, 1907, p. 1001.)

660a. Pictet, Am«* u. Court, G. Über einige neue Pflanzenalkaloide.
(Berichte der D. Chem. Gesellsch., 1907, Jahrg. 40, p. 3771—3783.)

Die langjährige Beschäftigung mit den Alkaloiden haben Pictet dazu
geführt, folgende Hypothese über die Bildung der Pflanzenbasen aufzustellen:
Die stickstoffhaltigen Gewebsbestandteile, wie Eiweiss, Nuclei'ne, Chloro-
phyll usw., zerfallen in einfachere Produkte von basischem Charakter. Aus
diesen bauen sich dann durch mancherlei Umformungen und Kondensationen
mit anderen bereits in der Pflanze vorhandenen Verbindungen die kompliziert
zusammengesetzten Alkaloide auf. Auf Grund dieser Anschauungen musste
man in den Pflanzen das Auftreten derartiger primärer Spaltprodukte, die erst
in einer zweiten Phase zur Bildung der Alkaloide benutzt werden, annehmen,,
und es konnte als wesentliche Stütze der aufgestellten Theorie gelten, wenn
sich solche einfache Basen in den Pflanzen auffinden Hessen.

Verff. haben nun versucht, derartige „Protoalkaloide" aus verschiedenen.
Pflanzen zu isolieren. Zu diesem Zweck wurden die zu untersuchenden
Pflanzenteile zerkleinert und mit Natriumbicarbonat behandelt, um basische
Bestandteile in Freiheit zu setzen. Durch darauffolgende Wasserdampfdestilla-
tion wurden alkalisch reagierende Destillate erhalten, aus denen durch Be-
handlung mit Salzsäure die Chlorhydrate der Basen gewonnen wurden. Zur
Untersuchung kamen Tabakblätter, schwarzer Pfeffer, Blätter und Samen von
Mohrrüben, Petersilie und Cocablätter. Überall Hess sich die Bildung flüchtiger
Basen beobachten, und zwar wurde merkwürdigerweise, so verschieden auch.

19 1J Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 605

die angewandten Pflanzenarten waren, fast in allen Fällen die Entstehung
von Pyrrolin- oder Pyrrolidinkörpern konstatiert.

Dieser Befund ist deshalb besonders wichtig, weil der Pyrrolkern
auch in zwei anderen wichtigen, an dem Aufbau der Pflanzen beteiligten
Substanzen vorkommt, nämlich im Chlorophyll und im Eiweiss. Danach
würde man also auf Grund der oben erwähnten Hypothese einen dieser
beiden Stoffe als Ausgangsmaterial für die Bildung der Protoalkaloide an-
zusehen haben; aus den Protoalkaloiden würden sich dann die Alkaloide
durch mannigfaltige Prozesse der Kondensation, Ringerweiterung, Methy-
lierung usw. aufbauen. Während eine Abspaltung des Pyrrolkerns aus
dem Chlorophyll, in dem er ziemlich fest gebunden vorzuliegen scheint, wenig
wahrscheinlich ist, findet sich in dem durch Lostrennung aus dem Eiweiss-
molekül so leicht und häufig entstehenden Prolin (Pyrrolidin-fc-carbonsäure)
eine Substanz, die nahe Verwandtschaft mit den extrahierten Protoalkaloiden
zeigt. Da sich also aus dem Eiweiss so leicht ein Körj)er mit einem Pyrrolidin-
kern abspalten lässt, der die Bildung der Protoalkaloide veranlassen könnte,
so betrachten Verff. das vegetabilische Eiweiss als Crsprungsquelle der
Alkaloide.

661. Fluid, Wilhelm. Über Heidelbeersäfte und eine darin unter
bestimmten Verhältnissen auftretende Reaktion. (Zeitschr. f. Nahr.-
u. Genussm., XIII, 1907, p. 1 ff.)

Verf. stellte fest, dass hei Analysierung eines Heidelbeerciders nach ein
paar Minuten dauernder Erwärmung eine Blaufärbung eintrat. Die Erhöhung
der Temperatur hielt sich zwischen 67—70° C. Die Blaufärbung fiel um so
mehr auf. als infolge des Zusatzes von Salzsäure eine saure Flüssigkeit vorlag.
Micht nur bei Heidelbeeren (Vaccinium Myrtillus), sondern auch für V. vitis Idaea
und V. oxycoccus tritt die gleiche charakteristische Blaufärbung auf, so dass der
Verf. annnimmt, dass sie sich wohl bei fast allen Vertretern der Vaccinoideae
{'. nicht Vacciniaceae Ref.) findet. Für den fraglichen Körper nimmt der Verf.
glykosidische Natur an; die Blaufärbung kann auch eine Nebenerscheinung
sein. Bei Versuchen mit Weichsela, Himbeeren, "Weintrauben, Johannisbeeren
trat diese Blaufärbung nicht ein.

602. Planchoii, L. Zur Prüfung der Calisaya- Rinde. (Bull. Pharm.
Süd-Est, XIII, 1908, p. 20ö.)

663. Pleijel, ('. Zur Prüfung des Senföls auf den Gehalt an
Allylisothiocyanat. (Farmac. Revy, 1907, p. 204.)

664. Pollatschek, P. Über Olivenöl von den spanischen Inseln.
(Chem. Revue, XIV, 1907, p. 4.)

Verf. konnte in verschiedenen von ihm untersuchten spanischen Olivenöl-
sorten auffallend grosse Schwankungen im Fettsäuregehalt feststellen; es ergab
sich, dass die Öle von der Insel Malorka stammten und die verschiedenen
Werte für die Fettsäurezahl mit der Herstellung dieser Öle zusammenhing.
Die Früchte werden auf der genannten Insel nur teilweise gepflückt, sondern
häufig durch Abschütteln geerntet. Verf. gewann nun durch Pressen aus
1. einer Probe frisch gepflückter, 2. einer Probe frisch abgeschlagener, 3. einer
Probe gepflückter nach 24 Stunden, 4. aus einer Probe allgeschlagener Oliven
nach 24 Stunden die einzelnen Ölsorten und konnten in ihnen folgenden Fett-
säuregehalt feststellen.

60(3 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [192

Es enthielt das Öl von

1. bei der Talolive 0,8 o/0, bei der Bergolive 0,85°/0

2. „ . „ „ 1,4 ■»/„, „ „ „ 1,800/0

3. „ „ „ 0.85 o/0, „ „ „ 0,85 o/o

4. „ „ „ 5,4()o/0, „ „ „ 6,65 o/o
Fettsäure auf Ölsäure berechnet. Die Olivenöle der spanischen Inseln sind
infolge der dortigen primitiven Gewinnungsmethoden meist sehr schleimig und
trübe.

665. Pomeranz, C. Über Allylcyanid und Allylsenf Ol. (Pharm.
Post., XL, 1<)07, p. 25.)

666. Poml, F. J. Kampfersynthesen. (Journ. Soc. Chem. lad, XXVI,
1907, p. 383.)

667. Ponlson, E. Über isländisches Moos als Nahrungsmittel.
(Nord. Tidskr. of Terapi, VI, 1908, Heft 3.)

668. Power, Fr. B. u. Sahvay, A. H. Chemische Untersuchung der
Früchte von Brucea anticlysenterica Lam. (Pharm. Journ., LXXIX, 1907, p. 126.)

Die Verff. konnten folgende wichtige Produkte nachweisen:

I. 22,16% eines fetten Öles, das Ölsäure, ein wenig einer anderen un-
gesättigten Säure, Linolsäure, Palmitin- und Stearinsäure enthielt.

Es fanden sich darin ferner geringe Mengen eines Phy toste rolsT
C20H34O1G0O, Schmelzpunkt 135 — 136°, und ein zweites Phytosterol, dessen
Schmelzpunkt bei 147° liegt.

IL Wenig Ameisen- und Buttersäure.

III. Gegen 1% Harz.

IV. Einen (oder mehrere) amorphe Bitterstoffe.
V. Grosse Mengen eines gelben Farbstoffes.

VI. Sehr reichlich Glykose.
Die vorliegenden Früchte stimmen also in chemischer Hinsicht sehr
überein mit denen von Brucea sumatrana Roxb., die in die niederländische
Pharmakopoe als Fruchis Brucea aufgenommen worden sind. Sie enthalten
nur wenig Bitterstoff.

669. Power, Fr. B. u. Tulin, Fr. Chemische Untersuchung der Lippia
seaberrirna Sonder (Beukess Boss.). (Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 337.)

670. Power, Fr. B. u Sahvay, A. H. Die Bestandteile des ätherischen
Muskatnussöles. (Trans. Chem. Soc, 1907, p 2037.)

671. Power, Fr. B. u. Tutin, Fr. Einige Bemerkungen über Oleu-
ropein aus Olivenblättern. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 714.)

Entgegengesetzt den Ergebnissen von Bourquelot und Vintilesco haben
die Verff. gefunden, dass der Ölbaum in den verschiedensten Organen Sub-
stanzen beherbergt, die bei der Hydrolyse Glykose liefern. Diese Substanzen
sind aber amoiph und zeigen durchaus gar keinen Glykosidcharakter.

Nach den Verff. ist das Oleuropein nicht als ein einheitlicher Stoff
anzusehen.

(i72. Power, Fr. B. u. Tutin, Fr. Die Bestandteile der Oliven-
blätter. (Transact. Chem. Soc, 1908. p. 891.)

673. Powrer, Fr. B. u. Sahvay, A. H. Chemische Untersuchung und
physiologische Wirkung der Muskat nuss. (Americ. Journ. Pharm,, LXXX,
190S, p. 563.)

Die narkotischen Wirkungen der Muskatnuss kommen ohne Zweifel dem
Myristicin, O^H^O^ zu.

193 1 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 607

Dieses Produkt wird in Gegenwart anderer Bestandteile viel leichter als
in seinem Zustande absorbiert.

Niedere Tiere sind viel weniger empfindlich gegen das Myristicin als
höhere. Das ist aber bei anderen Narkoticis das gleiche.

Im Petroläther und Alkoholextrakt der Droge fanden sich

Zucker Gerbsäure

Farbstoffe Harze.

Kleine Mengen des kristallinischen Alkohols Ipuranol Uo3H38Oo(OH)2.

674. Power, Fr. B. u. Salway, A. H. Chemische Untersuchung von
Micromeria Chanonis (Verba Buena). (Journ. Amer. Chem. Soc., XXX, 1908,
p. 251.)

675. Power, Fr. B. und Putin, Fr. Chemische Untersuchung der
(hindelia. IL Teil. (Abhandl. Welle. Chem. Res. Lab., 75. 1908, p. 1 ff.)

676. Power, Fr. B. und Kogerson, II. Chemische Untersuchung
von Ipomaea purpurea. (Amer. Journ. Pharm., 1908. p. 251.)

677. Power, Fr. B. und Tutin, Fr. Die Bestandteile der Oliven-
rinde. (Transact. Chem. Soc, 1908, p. 904 ff.)

677 a. Pringsheim, Hans. Der Ein flu ss der chemischen Kon-
stitution der Stickstoff nahrung auf die Gärfähigkeit der Hefe.
(Ber. D. Chem. Ges., 1906, Jahrg. 39, p. 4048—4055.)

Die zuerst mitgeteilten Versuche des Verf. beziehen sich auf die Züch-
tung von Hefe, ohne Gegenwart von Zucker, auf anderer kohlenstoffhaltigen
Nahrang unter Zusatz geeigneter Stickstoff Verbindungen. Als Kohlenstoff-
quellen kommen zur Verwendung Apfelsäure und Bernsteinsäure, und es wird
nun geprüft, ob die derartig gewachsene Hefe noch Zucker vergärt oder diese
Fähigkeit, bzw. das Enzym Zymase eingebüsst hat. Bei der Einwirkung auf
Zucker lindet sich, dass derselbe in normaler Weise vergärt wird, dass die
Veränderung der kohlenstoffhaltigen Nahrung also ohne Einfluss auf die Eigen-
schaften der Hefe ist.

Die weiteren Versuche führen zu dem interessanten Ergebnis, dass durch
geeignete Wahl der Stickstoffnahrung die Hefe derart modifiziert werden kann,
dass sie, selbst wenn Zucker als Kohlenstoffquelle für ihr Wachstum gedient
hat, diesen nicht mehr zu vergären vermag. Die Prüfung einer grossen Anzahl
stickstoffhaltiger Substanzen, mit welchen sich die Hefe entwickeln kann,
zeigt, dass überhaupt nur Verbindungen, die eine ganz bestimmte Atom-
gruppierung im Molekül enthalten, eine gärfähige Hefe zu erzeugen vermögen.
Es muss sich nämlich in ihnen die Gruppe — NHCHCO — befinden. Bekannt-
lich ist gerade dieser Komplex für die aus dem Eiweiss durch Abbau ent-
stehenden Aminosäuren und Peptide charakteristisch, wodurch die Gärfähig-
keit der Hefe als in naher Abhängigkeit von der Konstitution des Eiweiss er-
scheint. Das beobachtete Verhalten kann ferner zu einem vorteilhaften Mittel
werden, um auf das Vorhandensein der wichtigen biologischen Gruppe
— NHCHCO — in einem Körper zu prüfen. Es muss bemerkt werden, dass
die übrige Struktur des Moleküls auf die Erzeugung einer gärfähigen Hefe
ohne Einfluss ist, vorausgesetzt, dass der Komplex - - NHCHCO — erhalten
bleibt.

So sind folgende Substanzen als Stickstoffquellen für gärfähige Hefe
geeignet gefunden worden: Glykokoll, Alanin, Leucin, Asparagin, Tyrosin,
Phenylaminoessigsäure, Phenylalanin, Hippursäure, Allantoin, Guanin, Harn-

608

Berichte über die pharruakognostische Literatur aller Länder.

[194

säure. Die beiden zuletzt genannten Verbindungen enthalten die nahe ver-
wandte Gruppierung — NH • C — CO — . Eine Ausnahmestellung nimmt noch

das Ammoniumion ein, welches sich in seiner Wirkung den genannten Sub-
stanzen anschliesst. Ein Vergleich der verschiedenen Aminosäuren zeigt, dass,
je länger die in ihnen enthaltene Kohlenstoffkette ist, um so kräftiger und
schneller die erzeugte Hefe zu vergären vermag.

Von Substanzen, welche die Entwickelung von Hefezellen ermöglichen,
denen die Gärfähigkeit abgeht, sind folgende untersucht worden : Sulfanilsäure,
Metanilsäure, Naphthionsäure, Anilin, Benzamid, Benzylamin, Acetamid, Ace-
tanilid, Methylaniliri, Diphenylamin, Dimethylanilin. Wie man sieht, sind be-
sonders solche Verbindungen ausgewählt wrorden, die eine der Atomkette —
NHüHCO — nahestehende Gruppierung, wie — CHCONH — usw , enthalten
und die doch keine gärfähige Hefe erzeugen. Es wird daher durch diese bio-
logische Methode ein scharfer Nachweis der Gruppe — NHCHCO — ermöglicht,

678. Programa de Botanica descriptiva y determinacion de
Plantas medicinales. Madrid, 26 pp., 1906.

679. Puckner, W. A. Die Bestimmung des Hydrastins. (Pharm.
Rev. XII. 1908, p. 132.)

680. Pyman und Reynolds. Meteloidin. (Chem. and Drugg., 1908,
p. 842.)

Den Verff. gelang es, aus Datura meteloides neben Atropin und Hyoscin
noch ein neues Alkaloid, das Meteloidin zu gewinnen.

Bei der Hydrolyse soll es Tiglinsäure liefern, die bislang von den Sola-
naeen unbekannt ist.

Ferner wurde eine neue Base, Teloidin, gefunden.

681. Rabak, Fr. Über Artemisiaöle. (Pharm. Rev., XXIV, 1906, p. 324.)
Der Verf. hat in dieser Arbeit seine schon früher begonnenen umfang-
reichen Untersuchungen fortgesetzt.

Er gibt folgende Zahlen über die einzelnen Öle:

I. Öl von Artemisia frigida Willd.

Destil-
liert

Specif.
Gewicht

v.V

S.Z.

E. Z.

V. Z.

V. Z.

nach
Acetylierung

1904
1904
190.")

0,927

0,1*31
0,933

-24° 48'
— 25° 10'
-23« 40'

1,2
3,0
2,0

31,8
45,0
35,0

33,0
48,0
37,0

143
139

IL Öl von Artemisia Ludoviciana Nutt.

Destil-
liert

Specif.
Gewicht

«D

S. Z.

E. Z.

V. z.

V. z.

nach
Acetylierung

1904

0,929

— 16° 14'

4,0

10,6

14,0

1904

0,930

- 13<> 32'

4,3

14,0

18,3

—

1905

0,931

— 170 20'

0,0

26,0

26,0

in;

195]

Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 609

III. Öl von Artemisia caudata Michaux.

Destil-
liert

Specif.
Gewicht

«D

S. Z.

E. Z.

V. Z.

V. z.

nach
Acetylierung

1904
1901
1905

0,920

0,887
0,848

— 12« 30'
inaktiv

— 240 20'

0,0

20,0

0,0

17,0
73,0
29,0

17,0
93,0
29,0

Nicht bestimm-
bar wegen zu
gering. Mater.

682. Rahak, F. Über Erigeronöl. (Pharm. Rev., XXIV, 1906, p. 326.)

683. Reeb, E. Die wirksamen Bestandteile der Flores Koso.
(Jouin. Pharm. Elsass-Lothr., 1906, p. 266.)

684. Rabak, Fr. Harzöl von Pinus Sabiniana. (Pharm. Rev., XXV, 1907,
p. 212.)

685. Rabe, P. Über die Konstitution des Cinchonin. (Berl. Ber.,
XLI, 1908, p. 67.)

685a. Raciborski, M. Über die Assimilation der Stickstoffver-
liindungen der Pilze. (Bull. acad. Cracovie, cl. d. sc. mat. et phys., 1906,
p. 733—770.)

Die interessante, an originellen Fragestellungen reiche Arbeit behandelt
zunächst die Assimilation von Nitrit durch Pilze. In Übereinstimmung mit
Treboux wird festgestellt, dass Nitrite in saurer Lösung schädlich, in neutraler
oder alkalischer aber gut assimilierbar sind. Z. B. konnte mit Hilfe elektiver
Methoden auf nitrithaltiger Nährlösung ein Cylindrotrichwm gefunden und
isoliert werden, welches auf gleichen Lösungen weiter gezüchtet hohe Ernten
ergab. Aspergillus wächst auf nitrithaltiger Nährlösung nur dann, wenn stets
für Neutralisation der vom Pilz gebildeten Säure gesorgt wird, ergibt aller-
dings bei derartiger Kultur nur geringe Ernten. Pilze, die nur in saurer
Lösung wachsen, können begreiflicherweise Nitrit nicht verwerten. Ein
Saccharomyces cerevisiae konnte in alkalischer Nährlösung nicht gedeihen und
Nitrit nicht assimilieren; auf nitrathaltiger Nährlösung wuchs er langsam, aber
nur kurze Zeit, vielleicht weil er die Nitrate zu Nitriten reduzierte, die dann
giftig wirkten. Hingegen ist nach Raciborski Willia anomala kein „Sauerpilz",
wächst in alkalischer Lösung und assimiliert in solcher Nitrite.

Ein zweites Kapitel behandelt die Frage, inwieweit die Assimilation des
Ammoniakstickstoffs einerseits, des Salpeterstickstoffs anderseits durch Zusätze
oxydierender und reduzierender Mittel beeinflusst wird. Die einzelnen Ergeb-
nisse müssen im Original nachgelesen werde; ich beschränke mich darauf, zu
referieren, dass solche Zusätze die Aufnahme des Ammoniaks und Salpeters
bald in gleicher, bald in sehr verschiedener Weise beeinflussen, dass es sich
ferner bald um extracelluläre, bald um intracelluläre Wirkung handelt. Eine
intracelluläre Wirkung (unbekannter Art) ist es z. B., dass Chlorationen die
Assimilation des Salpeterstickstoffs verhindern. Eine extracelluläre Wirkung
liegt z. B. dann vor, wenn durch reduzierende Mittel Nitrate in Nitrite über-
führt werden. Als Versuchsobjekt dieser Versuche diente Aspergillus niger,
der auf rohrzuckerhaltiger Nährlösung gezüchtet wurde.

In einem dritten Kapitel wendet sich Verf. der Frage nach der Assimi-
lation des Hydroxylamins und Hydrazins zu. Die Salze derselben sind, wie

Botanischer Jahesbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 20. 5. 11.] 39

QIQ Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 1196

er nachweist, nicht als durchweg giftig zu bezeichnen und werden von ver-
schiedenen Pilzen, die nicht rein kultiviert wurden, assimiliert.

Das vierte Kapitel handelt von der Assimilation aliphatischer Amino-
säuren durch Aspergillus. Es kam hauptsächlich darauf an, zu ermitteln, ob
diese ausgezeichneten Stickstoffquellen als Ganzes assimiliert, oder aber vorher,
sei es im Moment der Assimilation, sei es bereits früher, in Ammoniak und
Oxysäure gespalten werden. Indem wir wegen vieler, zumal theoretischer
Ausführungen auf das Original verweisen, erwähnen wir hier nur folgendes:
Es wurden u. a. Versuche angestellt, in welchen ausser den betreffenden
Aminosäuren auch noch Zucker geboten, bei welchen also dem Pilz ein Über-
schuss an Kohlenstoff im Gegensatz zum Stickstoff zur Verfügung gestellt
wurde. Falls sich gleichwohl in diesen Kulturen Ammoniak nachweisen Hess,
so konnte daraus geschlossen werden, dass die Hydrolyse der Aminosäuren
primär, vor der Assimilation verläuft.

Aus dem Ammoniaknachweis in solchen Kulturen konnte der Verf. tat-
sächlich schliessen, dass durch Aspergillus niger von denjenigen Aminosäuren,
welche normale Abbauprodukte der enzymatischen Eiweissverdauung darstellen,
Ammoniak abgespalten, Eiweissstickstoff also erst als Ammoniak assimi-
liert wird.

Das fünfte Kapitel behandelt die Assimilation aromatischer Aminosäuren
durch Aspergillus, soweit sie normale Abbauprodukte tryptischer Eiweiss-
spaltung sind (d. h. Tyrosin und Phenylalanin, während Tryptophan und Prolin
dem Verf. nicht zur Verfügung standen).

Mit Zucker und Tyrosin gefüttert, bildet Aspergillus eine PheinTlsäure,
die nicht Homogentisinsäure ist; wahrscheinlich trägt sie an der Seitenkette
eine Milchsäure, die mit einem einfach oder mehrfach hydroxylierten Benzol-
ring verbunden ist. Die nähere Kenntnis derselben hält der Verf. deshalb
für wichtig, weil sie nach seiner Ansicht wohl auch bei der Desamidierung
des Tyrosins in höheren Pflanzen entsteht und dann weite r oxydiert wird zu
aromatischen, reduzierend wirkenden, eisenbläuenden oder grünenden Stoffen,
die Millons Reagens färben und als „Gerbstoffkörper" (nach Kraus sekundärer,
nach Raciborski besser primärer Gerbstoff) zusammengefasst werden. Wäre
also die betreffende Säure sicher bekannt, so wäre die Vorstufe der „Gerb-
stoffe" bekannt. — Weiter ergaben Tyrosinkulturen des Aspergillus folgendes :
Tyrosin ist eine weit schlechtere Stickstoffquelle als Ammoniak; als Kohlen-
stoffquelle (d. h. ohne Zuckerzusatz) wirkt es ganz besonders schlecht. (Nach
Emmerling soll es ganz untauglich sein. Ref.) Es zeigen sich Unterschiede
zwischen den Abbauprodukten, je nachdem Zucker anwesend ist oder nicht.
Bei Darbietung von Chinasäure neben T}Trosin entsteht eine der Protokatechu-
säure sehr ähnliche Säure (während bei Zufuhr von Chinasäure und Ammon
oder Nitrat die Chinasäure zu Ameisen- und Essigsäure abgebaut wird.

Andere Pilze bauen Tyrosin anders ab als Aspergillus: In Kulturen von Basi-
diobolus ranarum, von Thamnidium, von Saprolegnia sp. wird kein ammoniakalische
Silberlösung reduzierender Körper gebildet. Willia anomala bildet aus Tyrosin
wahrscheinlich Paraoxyphenyl Propionsäure, die als Produkt der Tyrosinver-
dauung anaerober Bakterien bereits nachgewiesen ist. Wird Aspergillus mit
Phenylalanin gefüttert, so bildet er eine Phenylsäure, die wiederum keine
Homogentisinsäure, aber auch nicht mit der aus Tyrosin entstehenden Säure
identisch ist. Man sollte auf Phenylmilchsäure schliessen, „die starken

1971 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. QU

Reduktionen scheinen jedoch auf eine weitere Oxydation, nämlich auf Hydroxy-
lierung des Benzolringes, hinzudeuten".

686. Kackwitz, H. Über die westafrikanischen Kopale, speziell
den Angolakopal (rot) und den Kamerunkopal. (Arch. Pharm., 1907,
p. 415.)

Verf. legte folgende Konstauten fest für Schmelzpunkt, Säurezahl,
Verseifungszahl und Jodzahl. Er untersuchte westafrikanische Kopale aus:
Sierra Leone, Accra, Benin, Kamerun, Loango, Angola und Benguela.

Der Angolakopal (rot) ergab folgende Zusammensetzung:

Angokopalsäure C23H3603, «-Angokopalresen U3(lH5404, ätherlöslich,
p'-Angokopaloresen C30H54O4 (alkoholätherlöslich) ätherisches Öl, ein bassorin-
artiger Körper und 5,7 °/0 Asche.

Der Kamerunkopal zeigte folgende Zusammensetzung :

Kamerunkopalosäure C31H3603, das «-Kamerunkopaloresen, das ß-
Kamerunkopaloresen C25H3S04, ätherisches Öl, einen bassorin artigen Körper
und 2°/0 Asche.

686a. Rakasin, M. A. Die Untersuchung des Erdöls und seiner
Produkte. Eine Anleitung zur Expertise des Erdöls, seiner Produkte und
der Erdölbehälter. Mit 59 eingedruckten Abbildungen. XV1I1 u. 271 pp.
Braunschweig 1906, Friedr. Vieweg & Sohn. Preis geh. 12 M., geb. 13 M.

Das Herrn C. Engler gewidmete Buch eines auf dem Gebiete der Erdöl-
chemie rühmlichst bekannten Fachmannes behandelt die physikalisch-chemischen
Methoden zur Untersuchung der Mineralöle, soweit sie praktisch erprobt sind,
mit dem Zwecke, die Aufstellung einheitlicher Bestimmungen in dieser
Richtung für die kaukasischen Naphthaprodukte zu unterstützen. Dass ein
immer dringender werdendes Bedürfnis dafür, zumal in Russland, sich geltend
macht, ist leicht begreiflich: es ergibt sich dies schon aus der Aufstellung
dreier Kommissionen, von denen zwei, eine in St. Petersburg, eine in Baku,
Russland allein angehören, während eine dritte auf dem Internationalen
Kongress für angewandte Chemie in Wien 1898 gewählt wurde. Sie haben
ihre Arbeiten und Beschlüsse in drei Schriftstücken niedergelegt, welche die
Grundlage des vorliegenden Werkes bilden. In ihm werden sie zusammen-
gefasst, kritisch beleuchtet, gesichtet und ergänzt. Da die hierher gehörenden
Forschungen, welche in Russland aus leicht verständlichem Grunde besonders
eifrig gepflegt werden, bei uns in Deutschland nicht oder nur wenig bekannt
sind, so ist das Buch des Verfs., das sie leicht zugänglich macht, für uns
höchst wertvoll.

Der erste Teil behandelt die Eigenschaften, die chemische Beschaffenheit
und die Prüfungsmethoden der Erdöle und ihrer Produkte, wobei besonders
auf ihre kalorimetrische und optische Untersuchung, ihr Verhalten gegen den
polarisierten Lichtstrahl, hingewiesen sei, von welchen hier zum ersten Male
eine zusammenhängende Darstellung gegeben wird. Auch die von Lidoff
zuerst unternommene Übertragung der Methoden zur Untersuchung der Fette
auf das Erdöl sei erwähnt.

im zweiten Teile wird die Aufbewahrung der Erd- und Mineralöle und
ihre Kontrolle besprochen. Hier sei besonders auf die zum ersten Male be-
schriebene direkte Wägung von Flüssigkeiten in stationären Behältern auf-
merksam gemacht. Kurz, wir finden in der Schrift eine Fülle interessanter,
zum Teil völlig neuer Tatsachen und Ideen, welche das Studium nicht nur

39*

(312 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [198

für den Fachmann, sondern auch für alle, welche sich mit dem Gebiete der
reinen Chemie befassen, sehr anregend und nutzbringend machen.

687. Ranninger, F. Unsere Kautschukplantagen und deren
Zukunft. (Tropenpflanzer, 1907, p. 3 ff.)

688. Rasenack, P. Über ein neues Verfahren zur Herstellung
von reinem Gly cyrrhizin aus Süssholz. (Arb. a. d. Kaiserl. Ges., XXVIII,
1908, 2. Heft.)

689. RastMiatk, P. Über die Süssstofi'e der Eujxäorhim Rebaudianum.
(Arb. a. d. Kaiserl. Ges., XXVIII, 1908, p. 420.)

690. Rassow, B. und ßouge, W. von. Über die Einwirkung wasser-
freier Salpeter- und Schwefelsäure auf Zellulose. (Zeitschr. f. angew.
(Jhem., XXI, 1908, p. 732.)

Die Verff. untersuchten die Einwirkung der im Titel genannten Säuren
einzeln und in Gemischen. Sie fanden, dass die Bildung von wasserunlöslichen
Salpetersäureestern erst bei einem Gemisch von sieben Teilen Schwefelsäure
und einem Teil Salpetersäure eintritt.

Sie fanden ferner, dass der Stickstoffgehalt der Produkte mit steigendem
Salpetersäuregehalt der Nitriermischung bis zu 13,48 °/0 (Penta- und Hexanitro-
zellulose) anwächst und bei Verwendung von einem Teil Schwefelsäure und
drei Teilen Salpetersäure fällt, bei reiner Salpetersäure sogar auf 10,98 °/0.

Die Verf. stellen die Resultate in sehr übersichtlichen Tabellen zusammen,
bezüglich deren aber auf das Original verwiesen werden muss.

691. Kathie, Arnold. Neuere Untersuchungen der Fette von
Lycqpodium, Seeale cornutum, Semen Arecae und Semen Aleuritis cordatae. (Arch.
d. Pharm., 1908, p. 692.)

Die Untersuchung erfolgte nach den jetzt üblichen Methoden. Die ge-
wonnenen Werte sind in genauen Tabellen zusammengestellt. Es ist hier
unmöglich der Raum, darauf einzugehen und muss diesbezüglich auf das Original
verwiesen werden.

Im Mutterkornöl gelang es, qualitativ Pyridin nachzuweisen. Es be-
steht aus :

Ölsäure 68 c/0 Un verseif bares 0,35%

Oxyölsäure 22 °/0 Anorganische Substanz 0,2 %

Palmitinsäure 5% Alkaloide 0,6 %

Glycerin 7,5 °/0.
Die Gesamtresultate der Untersuchung der quantitativen Untersuchung
des Lycopodiumöles waren folgende:

Lycopodiumölsäure 81 % Myristinsäure 2,0 °/0

Lycopodiumsäure (Dioxystearin- Glycerin (Mittelzahl) 7,8 °/0

säure) 3,2% Unverseifbares 0,43 %

Stearinsäure 1,13% Anorganische Substanz 0,03%

Palmitinsäure 0,85 %.
Zwei Probeuntersuchungen von Arecafetten zeigen folgende Be-
standteile:

Fettsäuren 92 bzw. 91% Glycerin 5%

Unverseifbares 1% Anorganische Substanz 0,02 bzw. 0,03%

Über die Zusammensetzung der Fettsäuren wird das folgende gesagt:

Stearinsäure 2,25 bzw. 3,3% Lanrinsäure 43,65 bzw. 53,3%

Palmitinsäure 3,1 bzw. 24,7% (!•') Caprinsäure 1 %

Myristinsäure 21,0 bzw. 24.7% Ölsäure 29,0 bzw. 14,5%

199] Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Lander. g]3

Das Tungol zeigt folgenden Aufbau:

Fettsäuren 96 ü/0 (Vt Elaeomargarinsäure, !/4 Ölsäure)

Glycerin 9,1 <» 0

Un verseif bares 0,17 %.

692. Ravenna, <'. und Peli. A. Blausäure und die Assimilation
des Stickstoffes in den grünen Pflanzen. (Gaz. chim. ital., XXXVII.
L907, p. 586.)

693. Reed, H. S. Der Nachweis und die Bestimmung von Benzoe-
säure in Saucen, Früchten und Obstsäi'ten. (Journ. Am. Chem. Soc,
XXIX, 1907, p. 1626.)

694. Reed, H. S. Modern and early work upon the question of
root excretions. (Pop. Sc. Mo., LXXIII, S. 1908, p. 207—266.)

695. Reed, E.V. und Vanderkleed, Ch. E. Die Einstellung von Digi-
taliszubereitung auf physiologischem und chemischem Wege.
(Am. .Journ. Pharm., LXXX, 1908, p. 110.)

696. Reichard, C. Beiträge zur Kenntnis der Alkaloidreaktionen.
Papaverin. (Pharm. Centralh., XLVIII, 1907. p. 288.)

697. Reichard, C. Beiträge zur Kenntnis der Alkaloidreaktionen.
Pilocarpin. (Pharm. Centralh.. XLVIII, 1907, p. 418.)

698. Reichard, C. Über den Nachweis und die Reaktion des
Santonins. (Pharm. Ztg., 1907, p. 88—89.)

699. Remeaud, 0. Über das Vorkommen von Saccharose und
Glykosiden in einigen Ranunculaceen. (Soc. Biol., LXI, 1906, p. 400.)

Der Verf. fand, dass sich in allen untersuchten Ranunculaceen durch
Invertinwirkung ein reduzierender Zucker bildet, der mit nur wenigen Aus-
nahmen völlig von aufgespaltener Saccharose herstammt.

In zwei Drittel aller untersuchten Specimina wurden Glykoside nach-
gewiesen, die durch Emulsin gespalten waren. Ferner fand sich in der
gleichen Anzahl der untersuchten Pflanzen ein Ferment von den Eigenschaften
des Emulsins.

700. Rentsch. R. Unterscheidung des Extractum Rhamni Pur-
shianae von Extractum Frangulae. (Pharm. Post, XLI, 1908, p. 981.)

Wenn man Faulbaumrindenfluidextrakt auf dem Wasserbade trocknen
lässt, dann zerrieben auf ein kleines Uhrschälchen bringt, das mit einem
Objektträger bedeckt ist und nun auf kleiner Flamme erhitzt, so sublimieren
bei 140° an den Objektträger nach relativ kurzer Zeit schöne nadeiförmige
Kristalle, die sich vielfach durchkreuzen.

Wenn man Sagradaextrakt selbst mehrere Stunden in der gleichen Art
behandelt, tritt doch niemals eine Kristallbildung ein.

701. Rihant, H. Abnehmen des Alkaloidgehaltes der Solaneen-
extrakte während der Auf bew ahrung. (Bull.scienc. pharm., XV, 1908, p.495.)

B ran et hatte gezeigt, dass der Alkaloidgehalt der Solanaceenextrakte
während der Aufbewahrung in fünf Monaten etwas abnimmt.

Der Verf. hat dieselben Produkte nach der gleichen Methode untersucht
und gefunden, dass der Alkaloidgehalt in vier Jahren abgenommen hatte:

1. bei Extract. Belladonn. fol. um 3, 4."), 22 und 3 °/0,

2. bei Extract. Hyoscyami fol. um 69 %,

3. bei Extract. Stramon. fol. um 31 und 8 °/0,

4. bei Extract. Belladonn. radic. um 4, 3, 1 und 12 1J 0,

5. bei Extract. Hyoscyam. semmi. um 19, 25 und 24 %.

614 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [200

Der Grund ist nach dem Verf. ein rein biologischer. Es wird vor allem
Schimmelpilze, die eine Verminderung des Alkaloidgehaltes herbeiführen.

Ganz ähnliche Beobachtungen hatte übrigens schon J. Fricotl auch für
andere Extrakte gemacht.

702. Richter, 0. Über die Konstitution des Myristicins und
seiner Derivate. Vorläufige Mitteilung. (Ber. D. Pharm. Ges., XVII, 1907,
p. 152.)

703. Richter, 0. Die Bedeutung der Reinkultur. Eine Literatur-
studie. 1907, Gebr. Bornträger.

704. Rijn, W. van. Zinkhaltiges Ricinusöl. (Pharm. Weekbl., LXY,
1908, p. 346.)

Für Sesamöl hatte der Verf. schon in einer früheren Arbeit eine deut-
liche Lösungsfähigkeit gegenüber Zink nachweisen können. Das gleiche ist
ihm nun gelungen für Ricinusöl nachzuweisen und warnt er davor, selbiges
in metallenen Gefässen aufzuheben.

705. Rijn, W. van. Über die Einwirkung feinverteilter Metalle
auf Olivenöl. (Pharm. Weekbl., XLV, 1908, p. 847.)

Der Verf. hat gefunden, dass sich in Olivenöl lösen: Magnesium, Zink,
Mangan, Eisen, Kupfer und Blei. Unlöslich waren: Aluminium, Nickel
und Zinn.

Die ursprüngliche Säurezahl von 3,24 wurde verändert nach dem Er-
wärmen mit auf

Mg 0,8

Zn 0,9

Fe 2,3

Cu 1,8

PI» 2,1

706. Rimini, E. Über die Oxydationsprodukte des Artemisins.
(Atti R. Acad. Line. Rom, XVII, 1908, p. 590.)

Ganz reines Artemisin vom Schmelzpunkt 202° blieb bei der Oxydation
mit der Hälfte des Gewichts an Kaliumpermanganat unverändert.

Wird mehr Kaliumpermanganat, wurde unter gewissen Bedingungen eine
Ketonsäure C15H2205 erhalten.

Setzt man sehr viel Kaliumpermanganat zu, so entsteht aus 1 Molek.
Artemisin 1 Molek. Oxalsäure.

707. Rippetoe, J. B. Folia Atropae Belladonnae. (Americ. Journ. Pharm..
LXX1X, 1907, p. 528.)

Der Verf. konnte in den Blättern von kultivierten Atropa- Bell adonna-
Exemplaren 0,32, 0,38, 0,48, 0,68% mydriatische Alkaloide nachweisen.

Er empfiehlt deshalb sehr den Anbau dieser medizinisch so überaus
wichtigen Pflanze.

708. Rilsling, Richard. Cof feinfreier Kaffee. (Chem. Ztg., XXXII,
IDOS, p. 495.)

Verf. beschreibt ein Verfahren zum Ooffeinentziehen des Kaffees, wobei
bei den verschiedenen Kaffeesorten der Coffeingehalt von 1,21 und 1,47 °/o auf
0,18 und 0,02 °/0 herabgesetzt wird.

Dabei ist von grosser Bedeutung, dass sämtliche übrigen wertvollen
Produkte der Kaffeebohne erhalten bleiben.

Dann beschreibt der Verf. die Einrichtungen der Brenner-Kaffee-Handels-
Aktiengesellschaft.

2011 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 615

709. Ri viere. Über die Kampfergewinnung in Nordalgier.
(Journ. d'agric. trop., 1908, p. 129.)

710. Riviere. Über den Kampferbau in Nordalgier. (Agric. Trop.)
Der Verf. fast seine Resultate wie folgt zusammen:

Die Mengen des bisher aus den Blättern einzelner Kampferbäume be-
stimmten Kampfers sind ungenügend, wenn nicht gleich Null.

Der regelmässige Blattschnitt ist kostspielig und für den Baum schädlich.

Die Bepflanzung eines Hektars ist kostspielig, weil sie auf einem guten
und in guter Pflege gehaltenen Boden erfolgen muss. der, wenigsten in Nord-
afrika, während mehrerer Jahre zu bewässern ist.

Die zur Anzucht verwendeten Pflanzen müssen gepfropft werden, ein
Gegenstand, über den man noch wenig weiss.

Ein sehr ausführlicher Bericht über diese sehr interessante Arbeit findet
sich in Schimmel & Co., Berichte Oktober 1908, p. 30 ff.

711. Rodie, J. Beitrag zur Kenntnis des Öles von Juniperus
phoenicea. (Bull. Soc. chim. France, 1907, p. 492.)

Die über 180° übergehende Fraktion des Juniperusöles ist. eine rötlich-
braune, dickliche Flüssigkeit von eigentümlichem Geruch, der an Wacholder-
liolz erinnert.

Diese Fraktion hat bei 15° das spezifische Gewicht 0,940 und im 100-mm-
Rohr das Drehungsvermögen — 1 ° 10'.

Aus der Verseifung oder Acetylierung liess sich ein Estergehalt von
6,37% bestimmen, ferner au Gehalt an freien Alkoholen zu 20,1 4 °/0.

In der Fraktion konnte auch noch eine geringe Menge von einem Aldehyd
nachgewiesen werden, das einen sehr ausgeprägten Geruch hat.

Essig- und Capronsäure konnten als sicher nachgewiesen werden.

712. Rodie. Analytische Angaben über das spanische Thy-
mianöl. (Bull. chim. France, 1907, p. 236.)

713. Roeder, Ph. Zur Bestimmung des Alkaloidgehaltes in
Cortex Chinae. Ph. Roeder, Jahresber., Wien 1906.

Die vom Verf. angegebene Methode lehnt sich an die von Caesar
& Loretz gegebene an mit kleineren Abweichungen.

714. Rosendahl, H. V. Unterscheidendes Merkmal einiger Pru-
noi denf rückte. (Svensk. Farm. Tidskr., 1907, p. 3.)

715. Rosenfeld, A.W. Über Oxyclase aus Rettichwurzel (Baphanus
sativus L.) und den Einfluss der Alkaloide auf dieselbe. Diss.
St. Petersburg 1906.

Die aus der Wurzel von Raphanus sativus stammende Oxydase gehört
nicht zu den Eiweisssubstanzen.

In der Rettichwurzel ist keine Katalyse nachzuweisen.

Die Rettichoxydase ist eine kristallinische Substanz. Es finden sich in
ihr C. N. P. S. K. Fe. u. Mg. sind nicht nachweisbar.

Sowohl bei An- wie Abwesenheit von Wasserstoffsuperoxyd wirkt die
Oxydase des Rettichs oxydierend.

Diese oxydierende Fähigkeit kann durch einige Alkaloide geschwächt,
durch andere absolut gar nicht beeinflusst werden.

716. Rosenthaler, L. Notiz über das Amygdalin. (Arch. d. Pharm.,
CCXLV, 1907, p. 684.)

Dem Verf. ist es gelungen nachzuweisen, dass entgegen den vielen
Literaturangaben im Amygdalin keine Maltose enthalten ist.

ßlß Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [202

717. Rosenthaler, L. u. Stadler, P. Über die Maracaibo-Simaruba-
rinde. (Ber. D. Pharm. Ges., XVJI, 1907, p. 136.)

718. Rosenthaler, L. Über die Rinden der Cinchona robusta und des
Pfropfpaarlings Cinchona succirubra X Ledgeriana. (Ber. D. Pharm. Ges.,
XVIII, 1908, p. 128.)

719. Rosenthaler, L. Die Chinarinde des Fünften Deutschen
Arzneibuches. (Apoth.-Ztg., XXIII, 1908, p. 261.)

720. Rosenthaler, L. u. Stadler, P. Ein Beitrag zur Anatomie von
Cnkus benedictus. (Arch. d. Pharm., 1908, p. 432.)

Die Verf. geben eine vorzüglich mit guten Abbildungen versehene Arbeit,
die die anatomische Struktur von Cnicus benedictus schildern.

Der Inhalt zerfällt in: Keimpflanze, Blatt, Stengel, Drüsen und Haare,
Wurzel, Blüte. Frucht, Sekretgänge u. Textentwurf für das Arzneibuch.

721. Ronre-Bertrand Fils. Über den Anbau der zur Herstellung
des Absinths in gebräuchlichen Pflanzen. Bericht von Roure-Bertrand
Fils, 1907, p. 43.

Verf. beruft sich auf die grundlegenden Arbeiten von J. Boger. Berück-
sichtigt sind:

Artemisia Absinthium, Hyssopas officinalis,

Artemisia pontica, Melissa, officinalis.

722. Royer, L. u. Dumesnil, E. Über die Torffaser. (Bull, scienc,
pharmacol., 1900, No. 12.)

Die Verff. geben eine genaue Beschreibung der Konstruktion und aus-
führliche Angaben zur Erkennung der Torffaser. Die Torfmasse erscheint
unter dem Mikroskop als ein Gemenge von feinen, leicht zerreibbaren Fäden.
Diese haben eine Länge von 1 — 3 cm; oft erreichen sie auch 3 — 8 cm Lauge.
Faserzellen und Holzzellen sind deutlich erkennbar. Als ein sehr gutes
Charakteristikum der meisten Torf arten sind die Sphagnumzellen zu bezeichnen,
die sich in fast den meisten Torfen vorfinden.

Chemische Untersuchungen zeigten das Vorkommen von Lignin, Zellu-
lose und Pektinstoffen.

Bezüglich dieses letzteren Abschnittes sei auf das Original selbst ver-
wiesen.

723. Rnpe, H. Über Cur cumaöl. (Berl. Ber., XL, 1907, p. 4909.)

724. Rupp, E. u. Zinnius, A. Zur Alkaloidbestimmung in Bella-
donna- und Hy oscy amusextrakten. (Pharm. Ztg., LIII, 1908, p. 737.)

725. Rusby, H. H. Die Herkunft und Gewinnung von Kampfer.
(Journ. Soc. Chem. Ind., XXVI, 1907, p. 380.)

726. Rusby. Über die Untersuchung von Drogen. (Ref. Pharm.
Ztg., XLIII, 1908, p. 847.)

Der Verf. berichtete vor der Jahresversammlung der American Pharma-
ceutical Association über die Untersuchung von Drogen, die im Laufe des
Jahres 1908 in den Hafen von New York eingeführt worden sind.

727. Rasting, N. Über die Bestimmung des Hydrastins in
Hydrastis-Fluidextrakt. (Apoth.-Ztg., XXIII, 1908, p. 624.)

728. Ryan, L. A. u. Marshall, J. Der Einfluss von Sauerstoff und
Stickstoff, von Sonnenlicht und Dunkelheit auf die Jodzahl, Ver-
seifungszahl und Ranzigkeit von Olivenöl. (Amer. Journ. Pharm.,
1907. p. 308—315.)

2031 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. 617

Verff. benutzten bei ihren Versuchen irisches, erstklassiges Olivenöl aus
Val di Pesa in Italien. Sie konnten zunächst feststellen, dass die Jodzahl des
Olivenöls unter dem Einfluss von Sauerstoff abnimmt, während anderseits die
Verseifungszahl unter denselben Bedingungen zunimmt. Desgleichen wird
durch Sauerstoff die Neigung des Öles, ranzig zu werden, erhöht und die
Farbe des Öles aufgehellt. Bei Einwirkung zerstreuten Sonnenlichtes gibt un-
sterilisiertes Öl eine etwas höhere Jodzahl als sterilisiertes, dagegen hat
letzteres eine etwas höhere Verseifungszahl. In der Dunkelheit wird beim
sterilisierten Öl die Jodzahl höher als bei der Einwirkung des zerstreuten
Sonnenlichtes, die Verseifungszahl dagegen etwas niedriger. Stickstoff bleibt
sowohl beim sterilisierten wie auch beim unsterilisierten Olivenöl auf die Jod-
zahl von keinem Einfluss, wohl aber bewirkt er wenigstens beim sterilisierten
Öl eine Erhöhung der Verseifungszahl; ebenso wird das Ranzigwerden durch
die Gegenwart von Stickstoff verhindert. Damit erscheint die Ansicht Winklers,
dass das Ranzigwerden von Fellen nicht durch die Tätigkeit von Enzymen,
sondern in erster Linie von Sauerstoff hervorgerufen wird, weiter bestätigt.
Anderseits scheinen Licht und Feuchtigkeit bei dem Ranzigwerden des Oliven-
öles keine Rolle zu spielen.

729. Sage, E. E. Buccoblätter und Anisgeruch. (Pharm. Journ.,
LXXX, 1908, p. 125.)

730. Saito, K. Über Säurebildung bei Aspergillus Oryzae. (The Bot.
Magaz. of Tok. Bot. Soc, XXI, 1907, p. lff.)

Verf. kommt auf Grund dieser und anderer Arbeiten zu folgenden
Schlüssen :

1. Die Kristalle bilden feine Nadelbüschel oder Säulen. Sie sind leicht
löslich in kaltem und heissem Wasser, Alkohol und Äther, unlöslich
aber in Chloroform, Benzol und Petroleumäther. Die wässerige Lösung
schmeckt stark säuerlich.

2. Im auffallenden Licht erscheinen die Kristalle weisslich seidenglänzend.
Im polarisierten Licht zeigen sie starke Doppelbrechung. Die Kristall-
form gehört anscheinend dem monoklinen System an, doch soll eine
einwandfreie Bestimmung noch vorgenommen werden.

3. Die Kristalle sind leicht sublimierbar; ihre Dämpfe reizen zum Husten.

4. Die wässerige Lösung rötet blaues Lackmuspapier und bläut Kongorot.
Wird die wässerige Lösung mit Natriumcarbonat oder Kreide behandelt,
so braust sie gleich lebhaft auf. Diese sind zwei untrügliche Reaktionen
für Gegenwart von freier Säure.

:.. Mit Methylorange zeigte die Flüssigkeit die Säurereaktion, dagegen
findet man keine Farbenänderung durch Methylviolett. Da die Resultate
von Paralleltitrierungen mit beiden Indikatoren nicht übereinstimmen r
so müssen wir die Kristalle einer freien organischen Säure (ausgenommen
die Oxalsäure) zuschreiben.

6. Nach dem Verbrennen der Kristalle bleibt kein Rückstand.

7. Eine charakteristische Reaktion ist die nach Behandeln der wässerigen
Lösung mit Eisenchlorid eintretende, zwischen weinrot und purpurrot
schwankende Färbung. Dieselbe Reaktion wird auch bei den mit
Ammoniak, Natriumcarbonat oder Kreide neutralisierten Lösungen
konstatiert. Mit Eisenoxydulsulfat trat keine Farbenreaktion ein.

5. Nach Abdampfen der Lösung, in welcher mit Eisenchlorid die charakte-
ristische Färbung erzeugt wurde, bleibt ein gleichfarbiger Rückstand.

Qlft Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. [204

Beim Behandeln mit Schwefelsäure verschwindet plötzlich die Färbung,
welche aber durch Neutralisieren mit Kalilauge wieder hervortreten kann.
9. Die wässerige Lösung zeigt mit Nesslerschem Reagens keine Reaktion.
In bezug auf das Vorhandensein des Stickstoffes ergab die übliche Er-
kennungsmethode ein negatives Resultat.

10. Fehlingsche Lösung, Millonsches Reagens, Phosphormolybdänsäure und
Bleiacetat ergaben weder bemerkbaren Niederschlag noch irgendwelche
Färbung.

11. Die neutralisierte wässerige Lösung ergab mit Calciumchlorid keinen
Niederschlag, selbst beim Erhitzen nicht.

Die Löslichkeitsverhältnisse der Kristalle und das Verhalten der wässe-
rigen Lösung gegen Eisenchlorid weisen darauf hin, dass wir es weder mit
den verbreiteten Pflanzensänren, wie Oxalsäure, Bernsteinsäure, Äpfelsäure,
Weinsäure, Zitronensäure usw., noch mit Benzoesäure zu tun haben. Es ist
auch wahrscheinlich, dass diese Substanz mit der von Kitao und Akiyama aus
Soya und Miso isolierten Substanz, welche mit Eisenchlorid eine der Salicyl-
säure ähnliche Farbenreaktion erkennen lässt, nicht identisch ist. Die oben
erwähnten Reaktionen lassen mich jedoch annehmen, dass diese Kristalle einer
aromatischen Säure angehören. Am wahrscheinlichsten liegt ß-Resorcylcarbon-
säure vor, welche dieselbe tiefrote Färbung mit Eisenchlorid gibt. Die Kristall-
form ist leider nicht entscheidend, weil die ganz gleichen prismatischen Kristall-
formen sich auch bei vielen anderen Säuren der Benzolreihe findet. Leider
sind die letzten Spuren eines gelben ölartigen Körpers schwer zu beseitigen,
weshalb auch eine Schmelzpunktbestimmucg unterbleiben musste.

731. Salway, A. und Thomas, W. Chemische Untersuchung der
Rinden von Brucea antidysenterica Lam. und Brucea sumatrana Roxb.
(Pharm. Journ., LXXIX, 1907, p. 128.)

Die Rinde enthält ebenso wie die Früchte wenig Bitterstoff. Diese
können in reinem Zustande nicht isoliert werden. Es zeigten sich:

Ein Phytosterol, eine nicht identifizierte Fettsäure,

Glykose, Gerbstoff,

Ameisensäure, Buttersäure,

Essigsäure.
Die Rinde von Brucea sumatrana enthielt in allerdings geringeren Mengen
ähnliche Bitterstoffe.

732. Sani, G. Über das Öl von Arbutus Unedo. (Atti Roy. Acad.
Lincei, XIV, 1905, p. 6190

Das im Destillationsrückstande verbleibende Öl aus den Samen von
Arbuhis Unedo kann durch Extraktion gewonnen werden. Die Samen ent-
halten 39,K3 °/0 Öl von süssem Geschmack und gelber Färbung. Trübung tritt
ein bei 9°, Festigkeit bei — 23°.

Specif. Gew. 0,9208 bei 15°. V. Z. 208,
.1. Z. 147,80. innere J. Z. 155,84,

R. W. Z. 0,861, Helmer Z. 92,48,

Maum. Z. 103,50, V. Z. der flüssigen Säuren 198,26.

Das setzt sich im wesentlichen zusammen aus Glyceriden der Linol- und
lsolinolensäure, ferner aus Palmitin- und Ölsäure.
Es ist also zu den trockenen Ölen zu zählen.

733. Sato, S. Über die wirksamen Bestandteile des Insekten-
pulvers. (Journ. pharm. Soc. of Japan, 1907, p. 304.)

2051 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. fjiy

734. Scliaal. K. Über hochschmelzende Säuren des Japan-
wachses. (Berl. Ber, XL, 1907, p. 4784.)

Das Japanwachs setzt sich im wesentlichen zusammen aus Palmitin.

Es enthält eine Gruppe von Dicarbonsäuren, die hochmolekulare Homo-
loge der Oxalsäure darstellen. Vor allem fand sich Nonadecamethylendicarbon-
säure C02H • (CH2)i9 • C02H, Schmelzpunkt 117.5°. Ferner waren die beiden
nächstniedrigen Homologen nachweisbar.

785. Schade, H. Über die Vergärung des Zuckers ohne Enzyme.
(Zeitschr. f. physik. Chem., LVII, 1906. p. 1—40.)

In der Auffassung der Gärungsvorgänge standen sich lange Zeit zwei
Anschauungen schroff gegenüber. Die Vertreter der einen Ansicht, wie z. B.
Pasteur, nahmen an, dass diese Prozesse mit dem Vorhandensein kleiner Lebe-
wesen und dem sich in ihnen abwickelnden Lebensprozess untrennbar verknüpft
seien. Dagegen waren Liebig, Hoppe-Seyler, Traube eifrige Verfechter der
mechanischen Theorie, die dadurch charakterisiert ist, dass sie auch die Vor-
gänge bei der Gärung unter denselben Gesichtspunkten wie andere Reaktionen
zu betrachten sucht. Eine Hauptstütze dieser zweiten Lehre bilden die Ver-
suche von Buchner, der aus den Organismen sog. Enzyme abtrennen konnte,
die, trotzdem sie von dem Lebensprozess losgelöst waren, doch dieselbe
Gärungswirkung bei Zucker bzw. Alkohol (Essiggärung) zeigten.

In seiner interessanten Arbeit ist es Verf. gelungen, die viel um-
strittenen Gärungserscheinungen ganz in das rein chemische Gebiet über-
zuführen, d. h. sie ganz ohne Zuhilfenahme von Enzymen, auf rein chemischem
Wege, zu reproduzieren. Den Ausgangspunkt für diese Untersuchung bildete
die Beobachtung, dass bei einer alkalischen Zuckerlösung das allmähliche Ein-
treten der Braunfärbung und Verharzung, das ja als typische Reaktion auf
Zucker benutzt wird, verhindert werden kann, wenn man derselben Wasserstoff-
superoxyd zusetzt. Dies war deshalb von Wichtigkeit, weil es nun gelingen
konnte, die Zersetzungsprodukte des Zuckers in alkalischer Lösung eingehender
zu studieren, was sich früher, wegen der Dunkelfärbung und Verunreinigung
durch das Harz, nicht hatte bewerkstelligen lassen. Vorerst aber wurde vom
Verf. klargestellt, worauf die Verhinderung der Braunfärbung durch das
Wasserstoffsuperoxyd eigentlich beruht. Durch das Studium der Beobachtungen
früherer Forscher, wie Framm und Duclaux, sowie eigene weitere Experimente
erkannte er, dass die Bräunung von der Bildung von Acetaldehyd und seiner
Verharzung herrührt, und dass alle Mittel, welche geeignet sind, diese Ver-
harzung zu verhüten, die Wirkung haben, die Lösung farblos zu erhalten. Es
wurde entweder der Aldehyd durch einen starken Gasstrom aus der Lösung
fortgeschafft oder er wurde durch Ammoniak-, Cyanwasserstoff- oder Natrium-
bisulfitzusatz (die gewöhnlichen Aldehydreagentien) in der Lösung gebunden
oder endlich durch Oxydationsmittel, wie Wasserstoffsuperoxyd oder Ozon, zu
Essigsäure oxydiert und so das Eintreten der Verharzung verhindert.

Das erste wichtige Ergebnis also war, dass sich aus alkalischer Zucker-
lösung Acetaldehyd bildet, der in einer kleinen Menge in einer Vorlage ge-
sammelt und nachgewiesen werden konnte. In der zurückbleibenden farblosen
Lösung war es nun möglich, nach weiteren Spaltprodukten zu forschen. Es
fand sich durch quantitative Untersuchungen, dass sich, neben Spuren von
Milchsäure, auf je ein Mol Zucker zwei Mole Ameisensäure gebildet hatten;
durch geeignete Versuchsmassregeln konnte ferner auch die gebildete Menge
Acetaldehyd zu je zwei Molen auf ein Mol Zucker bestimmt werden. Es

620 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 1206

ergab sich also für die Spaltung von Zucker in alkalischer Lösung die ein-
fache Gleichung:

C6H1906 = 2 CH3C^ -f- HCOOH
L H

Zucker Acetaldehyd Ameisensäure

Da es möglich schien, dass diese beiden Produkte nur eine Zwischen-
stufe bei der Entstehung von Alkohol und Kohlensäure aus Zucker bilden,
prüfte Verf., ob Acetaldehyd und Ameisensäure befähigt seien, sich mit ein-
ander zu den Endprodukten der Gärung umzusetzen. Die Reaktion musste
dann in der Weise erfolgen, dass die Ameisensäure sich zuerst in Kohlen-
dioxyd und Wasserstoff spaltete, der gebildete Wasserstoff darauf den Acet-
aldehyd zu Alkohol reduzierte:

HCOOH -> C02 + H2; CH3COH + H2 = CH3CH2OH.

Da sich diese Umsetzung unter gewöhnlichen Verhältnissen nicht merk-
lich vollzog, wurde versucht, sie katalytisch zu beschleunigen. Es wurde in
dem Metall Rhodium ein Katalysator gefunden, der diesen Vorgang wirklich
ermöglichte, indem er eine Zersetzung der Ameisensäure herbeiführte. Ameisen-
saures Natrium zerfiel in schwach saurer Lösung bei 60° in Berührung mit
Rhodium in der angegebenen Weise. Als in die Lösung Dämpfe von Acet-
aldehyd eingeleitet wurden, konnte nach Abbrechung des Versuches nach etwa
drei Stunden, konstatiert werden, dass 60 — 70 % des Acetaldehyds sich in
Alkohol umgewandelt hatten. Die Gärung von Zucker zu Alkohol ist al'-o
hiermit auf rein chemischem Wege bewerkstelligt worden. Dabei wurden
folgende zwei katalytisch beeinflusste Teilreaktionen durchlaufen: Zuerst wurde
Zucker durch die katalytische Wirkung der Hydroxylionen (Alkali) in Acet-
aldehyd und Ameisensäure gespalten, darauf fand die Umsetzung von Ameisen-
säure und Acetaldehyd zu Alkohol und Kohlensäure mit Hilfe des Katalysators
Rhodium statt.

Das Auftreten kleiner Mengen von Milchsäure liess nun vermuten, dass
der Prozess auch einen anderen Verlauf nehmen könne. Es zeigte sich, dass
bei grösserer Konzentration der Hydroxylionen grössere Milchsäuremengen
gebildet wurden, die ihren Grund in einer anderen Spaltung des Zuckers
haben mussten. Doch ist bei genügender Entfernung des Acetaldehyds die
erste Reaktion unter gewöhnlichen Bedingungen die entschieden bevorzugte.
Verf. kommt daher für die Entstehung von Alkohol und Kohlensäure aus der
alkalischen Lösung der Zucker Dextrose, Fructose und Mannose zur Auf-
stellung folgenden Schemas:

Dextrose < > Fructose _<_i ;.*" Mannose
Zwischenkörper (hypothetisch )

III
Harz usw. m-

CHgCOH

II
l -*• Milchsäure

- HCOOH

COo -f- CH3CH0OH.
Reaktion III findet bei ungenügender Entfernung des Acetaldehyds statt.
Reaktion II bei starker Alkalikonzentration.
Reaktion I ist Hauptreaktion bei mittlerer Konzentration des Alkalis.

207 | Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. Q){

Die rein chemisch durchgeführte Darstellung von Alkohol aus Zucker
zeigt in zahlreichen Einzelheiten, Beeinflussung- durch äussere Faktoren usw.,
eine so grosse Übereinstimmung mit der durch Hefezellen bewirkten Gärung,
dass es sehr nahe liegt, anzunehmen, dass auch dieser Prozess der Hauptsache
nach über die Zwischenstufe Acetaldehyd und Ameisensäure verläuft und nur
zum geringeren Teile auf eine intermediäre Milchsäurebildung, wie dies von
mancher Seite angenommen wird, zurückzuführen ist. Verf. will aber ein end-
gültiges Urteil über diese Frage erst auf Grund weiterer Untersuchungen auf
diesem Gebiete aussprechen.

736. Schaffnil, E. Ei ne Schätzungsmethode der Verunreinigungen
in Leinsamenpresskuchen durch fremde Samen oder Früchte.
(Landwirtsch. Versuchsstat., 1907, p. 13.)

Der Autor empfiehlt eine Methode, nach der es möglich ist, die Menge
der als Verfälschung in dem Leinsampresskuchen enthaltenen fremden Samen
und Früchte festzulegen.

Die Methode beruht auf dem Zählen der fremden Gewebspartikelchen
in einem besonders vorbereiteten Muster.

• 737. Sfliaub, Fr. Zur Prüfung von Semen Strophantin. (Apothek.-Ztg.,
XXIII, 1908, p. 920.)

Der Verf. hat untersucht, in welchem Grade die Konzentration der
Schwefelsäure den Verlauf der Strophanthinreaktion der Strophanthus-S&men
beeinflusst.

Er fand, dass die Eeakfeion am sichersten und besten dann zustande
kommt, wenn mit etwa 7"> proz. Schwefelsäure, die durch Mischen von acht
Teilen konzentrierter Schwefelsäure mit zwei Teilen Wasser hergestellt wird,
benutzt.

Verf. empfiehlt die Samen nicht zu schälen, sondern möglichst dünne
(Querschnitte mit dem Rasiermesser herzustellen.

738. Sehelenz. Chireta. (Pharm. Centralh., XLVIII, 1907. p. 377.)

738a. Schellenberg, H. C Untersuchungen über das Verhalten
einiger Pilze gegen Hemizellulosen. (Flora, 1908, Bd. 98, p. 257 — 308.)

Als Hemizellulosen bezeichnet man nach E. Schulze diejenigen Bestand-
teile der Zellmembran, die sich mit Säuren am leichtesten hydrolysieren lassen.
Die schwer angreifbaren Membranbaustofie dagegen werden Zellulosen genannt.
Zu den Hemizellulosen gehören vor allem die Reservezellulosen, die oft
mächtige Wandverdickungen bilden, das Galaktan, das Mannan und die
Pentosane.

Nun ist seit langem bekannt, dass viele Pilze, besonders die parasitisch
lebenden, die Fähigkeit besitzen, die Zellmembran aufzulösen. Die Auflösung
soll nach der gegenwärtig herrschenden Anschauung durch Enzyme erfolgen,
die von den Pilzen ausgeschieden werden. Die meisten Forscher nehmen
weiter an, dass das jeweilige Enzym alle Formen der Zellulose zu lösen ver-
möge. Dem widersprechen aber die Beobachtungen, die man an Pflanzen
macht, die von parasitären Pilzen bewohnt werden. Verf. hat sich deshalb
die Frage vorgelegt, wie sich die Pilze gegen die verschiedenen Formen der
Zellulose verhalten.

Die Versuche wurden mit Reinkulturen von verschiedenen Mucorineen
(Mucor racemosus, M. globosus, M. neglectus, M- piriformis, Rhizopus nigricans.
Thamnidium elegans), Penicillium, Sclerotinia fructigena und cinerea. Botrytis
vulgaris, Nectria cinnabarina, Cladosporium u. a. angestellt. Als reine Zellulose

(322 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. [208

benutzte Verf. hauptsächlich Baumwoll- und Flachsfasern. Um eventuell vor-
handene geringe Mengen von Hemizellulosen zu entfernen, wurden sie vor
dem Versuch zwei Stunden lang mit dreiprozentiger Schwefelsäure ausgekocht
und dann ausgewaschen. Für die Untersuchung der Hemizellulosen kamen
ausschliesslich solche Objekte in Betracht, die in chemischer Hinsicht gut
bekannt sind: Cotyledonen von Lupinus hirsutus, Impatiens bahamina, Cyclamen
europaeum und Tropaeolum majus, Endosperm im Samen von Phönix dactylifera
und junge Keimpflanzen von Molinia coerulea. Das Pilzmycel wurde in kleinen
Flocken auf die Schnitte gebracht und deren Veränderung während der
weiteren Entwickelung des Pilzes mikroskopisch verfolgt.

Als wichtigstes Resultat ergaben die Untersuchungen, dass sich die Pilze
den verschiedenen Zellulosearten gegenüber sehr verschieden verhalten. So
vermochte z. M. Mucor racemosus nur die Hemizellulose von Molinia coerulea
aufzulösen; sowohl die reine Zellulose, als die Hemizellulose der übrigen
Untersuchungsobjekte liess er vollständig intakt. Verf. schliesst hieraus, dass
Mucor racemosus besonders auf die Lösung der Hemizellulose der Gräser „ein-
gerichtet" sei. Das dürfte auch sein Vorkommen in der freien Natur auf
faulendem Stroh, Mist usw. erklären.

Von den übrigen Pilzen lösten Mucor neglectus, M. piriformis und RInzopus
nigricans die Hemizellulose in den Lupinensamen. Trichothecium roseum besitzt
ein starkes Lösungsvermögen für die Hemizellulose der Dattelkerne. Peni-
cillin»! glaucum löst aus den amyloidhaltigen Membranen der Endosperme von
Impatiens, Cyclamen und Tropaeolum das Amyloid heraus, die Grundmasse der
Membran dagegen lässt er ungestört zurück. Kein einziger Pilz dagegen ver-
mag die reine Zellulose in Lösung zu bringen.

An den Versuchen des Verf. war gleichzeitig interessant, dass auch die
Mittellamelle von vielen Pilzen aufgelöst wurde, die nach den Untersuchungen
von Magnin und seinen Schülern aus Pektin oder verwandten Körpern des
Pektins bestehen soll. Über die chemische Natur dieses Körpers bzw. dieser
Körper geben aber die Untersuchungen der genannten Autoren keine be-
friedigende Antwort. Verf. ist auf Grund seiner Versuche zu der Überzeugung
gekommen, dass die Mittellamelle zum grössten Teil aus Hemizellulosen
besteht. Für diese Annahme sprechen ausser der Löslichkeit durch Pilze auch
andere Gründe, auf die der Verf. aber nicht näher eingeht.

Dass die Pilze Enzyme ausscheiden, liess sich durch die Guajakwasser-
stoffsuperoxydreaktion leicht zeigen. Besonders in der Umgebung der Hyphen-
spitzen trat die für diese Reaktion charakteristische intensive Blaufärbung auf .
Von den bei der Hydrolyse der Hemizellulose entstehenden Zuckerarten
konnte Verf. nichts nachweisen. Er schliesst hieraus, dass die Pilze den
Zucker sofort aufnehmen und im eigenen Stoffwechsel verwenden. Daher
zeigen sie in Kulturen, in denen Hemizellulosen gelöst werden, ein lebhaftes
Wachstum, und ihr Mycel ist reich an Reservestoffen (Glykogen und Fett).

Aus der Unfähigkeit eines Pilzes, eine bestimmte Form der Zellulose zu
lösen, schliesst Verf. 1. dass der Pilz das zur Lösung notwendige Enzym
nicht absondern kann, 2. dass dieses Enzym verschieden sein muss von dem
Enzym, das eine andere Zelluloseform in Lösung bringt. Er sieht sich daher
genötigt, für die Lösung der von ihm benutzten Hemizellulosen wenigstens
vier verschiedene Enzyme anzunehmen. Bisher hatte man sich mit der An-
nahme eines einzigen Enzyms begnügt und für dieses den Namen Gytase
gewählt. Unter Benutzung dieses Namens nennt Verf. die vier Enzyme nach

2091 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 623

dem Material, dessen Hemizellulose sie lösen, Moliniacytase, Lupin uscytase,
Phönixcytase und Impatienscytase. Von den vier Oytasen ist das Enzym, das
reine Zellulose zu lösen vermag, die Zellulase, die in zahlreichen, das Holz
der Bäume zerstörenden Pilzen entsteht, wohl zu unterscheiden.. Wie Verf.
an der Hand der Literatur zeigen konnte, werden die experimentell ge-
wonnenen Ergebnisse gestützt durch Beobachtungen an toten und lebenden
Pflanzenkörpern, in denen Pilze allerlei Zersetzungserscheinungen hervorrufen.
E. Schulze hat gezeigt, dass die verschiedenen Hemizellulosen zu ihrer
H}^drolyse annähernd derselben Säurekonzentration bei einer bestimmten
Temperatur bedürfen. Unter diesen Umständen geht auch die Hydrolyse
gleich schnell vor sich. Da nun nach den Untersuchungen von Verf. jedes
Enzym nur eine bestimmte Hemizellulose löst, kann für das Lösungsvermögen
der Pilze gegenüber den verschiedenen Hemizellulosen nicht deren Löslichkeit
in Säuren massgebend sein. Die Lösung erfolgt vielmehr deshalb verschieden,
weil die Konstitution der Hemizellulosen verschieden ist. Auch für diese
Enzymwirkungen lässt sich somit das Gleichnis E. Fischers anwenden, dass
das Enzym zur Konstitution der Substanz passen muss wie der Schlüssel zum
Schloss.

739. Schellmann, Walter. Amerikanischer Manihot -Kaut sch.uk.
(Pflanzer, III, 1907, p. 348 ff.)

Es wurden drei Proben Manicoba im Vergleich mit ostafrikanischem
Mam'Äoi-Kautschuk untersucht.

Zwei Proben waren besser als der Plantagenkautschuk, die dritte (auch
schon äusserlich) bedeutend geringer.

Der Harzgehalt der beiden ersten Proben war ein sehr reicher, bedeutend
besser jedenfalls als der der ostafrikanischen Muster.

Grösser aber bei den Manicobaproben war der Aschengehalt.

7-40. Sehellmann, W. Castilloa- und ify'cMs-Kautschuk des Dares-
salamer Versuchsgartens. (Pflanzer, III, 1907, p. 360 ff.)

In Amani werden wiederum Castilloa- und Ficus -Bäume untersucht.
Die untersuchten Exemplare waren alle in zapffähigem Alter.

Die genauen Analysen zeigen, dass kein einziger Baum jemals fähig sein
wird, einen brauchbaren Kautschuk zu liefern.

740a. Schellmann, W Manihot- Kautschuk aus der Kilimandjaro-
gegend. (Pflanzer, IV, 1908, p. 15 ff.)

Die untersuchten kleinen Proben von Ceara-Kautschuk vom Kilimandjaro
lieferten recht günstige Resultate, so dass die Ansicht hinfällig wird, Ceara
aus höheren Lagen sei ohne Wert.

Der Harzgehalt betrug 9,59 b/.w. 11,92%.

741. Schellmann, W. Manihot- Kautschuk aus Gebirgsgegenden.
(Pflanzer, IV, 1908, p. 16.)

Untersucht wurden zwei Proben von 14 Monaten bzw. drei Jahre alten
Bäumen aus 1350 bzw. 1200 m Höhe.

Gefunden wurden 10,73% bzw. 10,55 °/0 Harz und 4,42 bzw. 5,02% Asche.

Beides sind trotz hohen Harzgehaltes gut benutzbare Sorten.

741a Schellmann, W. Untersuchung von MaraiAotf-Kautschuk.
(Pflanzer, IV, 1908, p. 39.)

Vom Verf. wurden auf den ostafrikanischen Plantagen Kwamuhanja

624 Berichte über die pbannakognostische Literatur aller Länder. 1210

und Lewa 48 Manihot, im Alter von 10 Monaten bis 11 Jahren angezapft
und der gereinigte Kautschuk untersucht.

Das Alter der Bäume hat auf die Wertigkeit des Kautschuks keinen
Einfluss. Die Altersgrenze der Bäume liegt über 11 Jahre. Tabellen zeigen,
dass mit zunehmendem Alter sogar der Harzgehalt geringer wird.

742. Schellmann, W. Kautschuk von Landolphia Stolzii Busse.
(Pflanzer, IV, 1908, p. 366.)

Die kleinen zur Untersuchung vorliegenden braungefärbten Kugeln
lieferten beim Waschen 22,41 % Verlust und ein rotbraunes, sehr nerviges
Fell. Sie enthielten:

Harz 9,4%,

Kautschuk 89,16%,

Unlösliches 0,97 %,

Asche 0,41 °/0.

743. Chemische Fabrik vorm. E. Schering. Verfahren zur Darstellung
von Benzo ylalkylamin oäthanolen. Berlin, No. 175080.

Die bis jetzt noch unbekannten Produkte sind durch anästhesierende
Eigenschaften gekennzeichnet.

Es wird näher geschildert das Diäthyl-, das Dimethyl-, das Monomethyl-
und Diisoanylderivat.

744. Scheringa, K. Trennung der Benzoesäure und Zimt säure.
(Pharm. Weekbl., 44, 1907, p. 984.)

745. Schimmel & Co. Bericht Oktober 1907.

Aus dem Inhalte sei nur folgendes wiedergegeben:

Betelöl. Gelegentlich der Isolierung von Betelphenol aus einem aus
Java stammenden Betelblätteröl machten wir die interessante Beobachtung,
dass das betreffende Öl neben dem Chavibetol noch ein anderes, festes Phenol
enthielt, das bisher weder auf synthetischem Wege dargestellt, noch im
Pflanzenreich angetroffen worden ist. Obwohl das Öl nur 1,8 bis 2 °/0 davon
enthielt und wir nur 8 g des reinen Körpers zur Verfügung hatten, war es
uns doch möglich, seine Konstitution aufzuklären. Das Ol, welchem das
Phenolgemenge durch Schütteln mit verdünnter Natronlauge entzogen wurde,
hatte sich im Laufe der Jahre dunkelbraun gefärbt und besass folgende
physikalische Konstanten: diso 1,0325, «v — 1 ° 55', nD20» 1,51362. Für das
reine, mehrmals fraktionierte Betelphenol fanden wir nachstehende Werte:
diso 1,0690, nD20° 1,54134, Sdp. 107 bis 109° (4 mm Druck). Im Kältegemisch
erstarrte es zu einer kristallinischen Masse, die bei 8,5 ° wieder schmolz, eine
Beobachtung, die früher noch nicht gemacht worden war.

Zur Gewinnung des neuen Phenols wurde der über 113° (4 mm Druck)
siedende Destillationsrückstand des Betelphenols weiter fraktioniert und dabei
ein bei 137 bis 139° konstant destillierendes Öl erhalten, das beim Abkühlen
fest wurde.

Die aus Petroläther allein oder besser aus Benzol und Petroläther
gereinigte Verbindung bildet lange, farblose, filzige Nadeln vom Smp. 48 bis 49°
und dem Sdp. 139 ° (4 mm Druck). Ihre alkoholische Lösung wird durch
Eisenchlorid tief grün gefärbt. Eine alkalische Lösung des Phenols färbt sich
sehr schnell dunkelrot. Sein Geruch ist ziemlich schwach und entfernt an
Kreosot erinnernd. In Wasser ist das Phenol leicht löslich.

Einige der genannten Eigenschaften Hessen darauf schliessen, dass der

2111 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 625

Körper ein Brenzkatechinderivat sei. Wie aus der Analyse hervorgeht, kommt
dem Phenol die Bruttoformel CyH10O, zu:

I. 0,1560 g Sbst.: 0,4101 g CO,, 0,0978 g HaO
IL 0,1737 g „ 0,4593 g „ 0,1121 g „

III. 0,1665 g „ 0,4400 g „ 0,1046 g ,.

Gefunden: Berechnet für C9Hi0O,:

I. IL III.

C 71,69 o/0 72,19% 72,07 % 72,00%

H 6,97 o/0 7.17 o/0 7,00% 6,67 o/0

Die Methoxylbestimmung nach Zeisel zeigte, dass das Molekül keine
Methoxylgruppe enthielt. Die nach der Schotten-Baumannschen Methode darge-
stellte Benzoylverbindung bildet derbe, schwach rötliche Prismen vom Smp. 71
bis 72 °. Nach der Elementaranalyse liegt eine Dibenzoylverbindung in ihr vor.
I. 0,1714 g Sbst.: 0,4836 g CO,, 0,0792 g H,0

II. 0.1680 g „ 0,4750 g „ 0,0804 g ,.

Gefunden: Berechnet für C23Hls04:

I. IL

C 76,95% 77,08% 77,10 %

H 5,13% 5,31 % 5,03%

Die Dibenzoylverbindung gab keine Eisenchloridreaktion mehr. Eine
Diacetylverbindung wurde als farbloses Öl vom Sdp. 157 u (7 mm Druck),
299 u (Atmosphärendruck) erhalten. Dieses zeigte zwar Neigung zum Fest-
werden, die Menge war aber so minimal, dass eine Isolierung fester Substanz
nicht zu bewerkstelligen war. Bei der Methylierung mit Dimethylsulfat wurde
das Phenol in Eugenolmeth}'läther übergeführt. Das mit Wasserdampf über-
getriebene Eeaktionsprodukt hatte folgende Konstanten: Sdp. 108 bis 109°
(4 mm Druck), 248 bis 249° (gew. Druck), nD20<> 1,53715. Dass hier in der
Tat der Eugenolmethyläther vorlag, wurde sowohl durch die Oxydation mit
Kaliumpermanganat, als auch durch die Bromierung bewiesen. Im ersten
Falle entstand die Dimethylprotokatecbusäure oder Veratrumsäure vom Smp.
179 bis 180°, im anderen das beim Verrühren mit Alkohol festwerdende
charakteristische Tribromid vom Smp. 79 bis 80°. Ein Gemisch dieser Ver-
bindung mit einem aus reinem Eugenolmethyläther dargestellten Produkt
schmolz ebenda. Eine Oxydation der Diacetylverbindung mit zweiprozentiger
Permanganatlösung hatte leider nicht den gewünschten Erfolg.

Die Umwandlung des zweiwertigen Phenols zum Eugenolmethyläther

lieferte den Beweis, dass der Körper Allylbrenzkatechin ist, also ein Allyl-( 1 )-

phen-(3, 4)diol, von dem sich sowohl das Eugenol als auch das Betelphenol

und auch das Safrol ableiten:

OH OH

OH2 : CH • CH2<^ NoH. CH2 : CH • CH«/ NoCH3.

Allylbrenzkatechin Betelphenol

OCH3 OCHj

CHo : CH • CH,/ NoH. CH, : CE • CH,/ ^>OCH3,

Eugenol Eugenolmethyläther
_0 CH,

CH, :CH-CH No^

Safrol (Allylbrenzkatechinmethvlenäther)
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt, [Gedruckt 29. 5. 11] 40

ß26 Berichte über die pbarmakognostische Literatur aller Länder. [212

Eugenol und Chavicol waren in dem Öl nicht nachweisbar, obwohl wir
die Betelphenolfraktion sehr eingehend daraufhin prüften.

Wir haben dann auch das von Phenolen befreite Betelblätteröl berück-
sichtigt und darin noch nachstehende Körper aufgefunden. Die niedrigst
siedenden Ölanteile (Sdp. 155 bis 162°, 43 bis 45" [4 mm Druck], kd — 9 ° 4 *)
wurden auf Pinen geprüft. Zu einer Abscheidung von festem Nitrosochlorid
kam es jedoch nicht. Die bei 170 bis 17(>° destillierende Fraktion enthielt
Cineol. Die Jodoldoppelverbindung schmolz, aus Benzol gereinigt, bei 112°
und entwickelte beim Erwärmen mit Natronlauge den charakteristischen
Cineolgeruch. Ein zwischen 100 und 107 ° (4 mm Druck) übergehendes Öl
sott bei gew. Druck im wesentlichen bei 247 bis 254 ° und gab bei der Oxy-
dation mit Permanganat nach der Vorschrift von Tiemann und Matsmoto sehr
geringe Mengen einer bei 179 ü schmelzenden Säure, die jedoch ausreichten,
um sie als Veratrumsäure zu erkennen. Danach ist es wahrscheinlich, dass
der Eugenolmethyläther ein Bestandteil des vorliegenden Öles war. Schliess-
lich konnte noch Uaryophyllen, das den Hauptbestandteil des phenolfreien
Öles bildete, durch das Nitrosat vom Smp. 158 ° identifiziert werden. Zu
seinem Nachweis diente eine Fraktion mit folgenden Eigenschaften: Sdp. 258
bis 261 °, diö« 0,9131, «d + 6°34'( hd 200 1,50720. Eine Fraktion vom Sdp.
ca. 275 ° und den sonstigen Eigenschaften des Cadinens, das in dem von
Bertram und Gildemeister untersuchten Öle enthalten war, wurde nicht
beobachtet.

Die vorstehende Untersuchung hat demnach ergeben, dass im Betel-
blätteröl ausser den bereits bekannten Bestandteilen enthalten sind; Allylbrenz-
katechin, ein Terpen, Cineol. Eugenolmethyläther und Oaryophyllen.

Öl von Cinnamomum pedunculatum. In unserem letzten Bericht
referierten wir über eine Arbeit von S. Keimazu und S. Asahina über das Öl
der Rinde von Cinnamomum pedunculatum Nees. Heute sind wir in der Lage,
über dasselbe Öl einige Mitteilungen zu machen, die sich auf eigene Unter-
suchungen stützen. Das uns von einem Geschäftsfreunde aus Japan über-
mittelte Muster hatte eine hellgelbe Farbe und folgende Konstanten:
diö» 0,9316; aD — 1 4 " 32 ' ; nicht völlig löslich in 10 Vol. 70 prozentigen Alkohols;
löslich in 1,2 Vol. u. m. SOprozentigen Alkohols. Das Öl enthält ca. 6°/0 Phenole,
die einen kresolartigen Geruch besitzen; die Nichtphenole enthalten Phellandren
und wahrscheinlich Linaiool.

Möhrensamen öl. Wir destillierten in letzter Zeit ein Öl aus deutschen,
nicht abgeriebenen Früchten von Daucus Carola L. und fanden, dass seine
Konstanten von denen der in früheren Jahren erhaltenen Öle etwas abwichen.
Das bräunlichgelbe, den charakteristischen Möhrengeruch nur in geringem
Masse besitzende Öl war in einer Ausbeute von 1,26 % gewonnen worden und
hatte folgende Eigenschaften: diso 0,9440; aD — 13°5'; S. Z. 2,2; E. Z. 17,8;
E. Z. nach Acetylierung 77,5; löslich in 1,8 Vol. u. m. SOprozentigen Alkohols.

Die Konstanten früher von uns destillierter Öle waren folgende:

Destillat von 1902: di5oO,9226; aD — 230 16'; S.Z. 4,6; E. Z. 30,6; löslich
in 4,5 Vol. u. m. SOprozentigen Alkohols.

Destillat von 1904 aus französischem Karottensamen (Ausbeute 0,5 °/0):
diso 0,9117; aD — 180 18'; S.Z. 1,24; E. Z. 51,93; E. Z. nach Acetylierung 95,7;
nicht völlig löslich in 10 Vol. SOprozentigen Alkohols; löslich in 0,4 und mehr
Vol. 90 prozentigen Alkohols; in diesem Falle waren abgeriebene Früchte
destilliert worden.

2131 Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. 627

Ob die Verschiedenheiten der Öle auf die mehr oder weniger einheit-
liche Beschaffenheit des Materials, auf verschiedenes Alter (längeres Lagern?)
der Früchte oder lediglich auf verschiedene Herkunft zurückzuführen sind,
können wir leider nicht mit Sicherheit feststellen.

Moschuswurzelöl. Ein von uns destilliertes, ziemlich dickflüssiges
Moschuswurzelöl, das in einer Ausbeute von 1,37% aus frischen, schwach
getrockneten Wurzeln gewonnen war, besass eine olivgrüne Farbe und einen
an Angelikaöl erinnernden Geruch. Seine Konstanten waren folgende:
di5»0,9410; «d + 6°20'; S.Z. 7,0; E. Z. 24,1; nicht völlig löslich in 10 Vol.
Sil prozentigen Alkohols; löslich in jedem Verhältnis in 90 prozentigem Alkohol.

746. Schimmel & Co. in Miltitz. Bericht April 1908.

Aus dem reichen Inhalt sei nur einiges herausgegriffen :

Ayapanaöl Vor einem Jahre berichteten wir über ein Ayapanaöl, das
auf der französischen Insel Mayotta aus Ewpatorium triplinerve Vahl destilliert
und uns als „Essence d'Ayapana" zugestellt worden war. Inzwischen erhielten
wir nun aus Ceylon, wo das Öl oder der Aufguss der Blätter als Heilmittel
gegen körperliche Beschwerden aller Art Anwendung findet, eine kleine
Quantität Blätter jener Pflanze und kamen so in die Lage, ein authentisches
Destillat selbst herzustellen, für das wir nachstehende Konstanten ermittelten:
di5«0,9806, «d + 2055', S. Z. 5,5, E. Z. 5,9, löslich in 1,5 u. m. Vol. 90 pro/.
Alkohols. Die Ausbeute an Öl betrug 1,14 °/0. Ausserdem erhielten wir von
Mayotta noch ein zweites Muster Ayapanaöl, das sich ganz ähnlich verhielt
wie das früher beschriebene. Es hatte das spezifische Gewicht 0,9662 (15 °),
die optische Drehung -J- 6 ° und löste sich mit Opalescenz in 4,2 u. m. Vol.
90 prozentigen Alkohols. Eine nähere Untersuchung ist vor kurzem von
Semmler veröffentlicht worden, dem wir zu diesem Zwecke das Öl zur Ver-
fügung gestellt hatten. Die von ihm ermittelten Konstanten waren: d20° 0,9622,
«D + 5°45\ nD 1,50882. Bei 12 mm Druck siedeten 8 °/0 des Öles bei 55 bis
116°, 80°/0 bei 116 bis 119 u, 12% bei 119 bis 123°. Die Hauptfraktion be-
stand aus einem Gemisch eines sauerstoffhaltigen Körpers mit einem Sesijui-
terpen. Um die erstere Verbindung rein darzustellen, wurde die nach dem
Kochen über Natrium konstant bei 118" (12 mm Druck) siedende Fraktion
mit Permanganat bis zur bleibenden Rotfärbung behandelt. Der Körper, dessen
Zusammensetzung zu 012H18Ö2 gefunden wurde, zeigte folgende Eigenschaften:
Sdp. 118° (12 mm Druck), d'20" 0,9913, nD 1,51339, «d±0°, Mol.-Refr. gefunden
58,88, berechnet für C1oH1802/¥57,42. Da die Beständigkeit gegen Natrium auf
einen ätherartigen Körper hinwies, wurde die Substanz mit Jodwasserstoff
und rotem Phosphor behandelt, wodurch sie in Thymohydrochinon überging
(Sdp. 150 bis 160° unter 12 mm Druck; Smp. 143°), das durch Oxydation
zu Thymochinon (Smp. 48 °; Monoxim, Smp. 160 bis 161 ÜJ näher charakterisiert
wurde. Daneben war als Zwischenprodukt der Reaktion der Monomethyläther
(-'iiHi602 (Sdp. 117 bis 130 u unter 12 mm Druck; d-ao» 1,0111; nD 1,5188) ent-
standen. Den Hauptbestandteil des Öls bildete also der Dimethyläther des
Thymohydrochinons, der bis jetzt nur von Sigel im Arnikawurzelöl aufgefunden
worden war.

Curcumaöl. Von uns aus der rohen Wurzel destilliertes Curcumaöl
ist von Rupe in Gemeinschaft mit Luksch und Steinbach näher untersucht
worden. Das Öl (d20° 0,9013) siedete zu 80% zwischen 150 und 160 0 (10 mm
Druck). Durch Kochen des Öls mit verdünnter Natronlauge entstand ein
noch nicht näher untersuchter sauerstoffhaltiger Körper vom Sdp. ca. 156°

40*

628 Berichte über die phariuakognostische Literatur aller Länder. [214

(12 mm Druck). Durch Kochen mit starker Natronlauge bildete sich daraus
oder auch aus dem Rohöle selbst neben einem Phenol vom Smp. 73 ° ein
Keton Cj3Hj80, das isomer mit dem von Jackson und Menke aus dem Öl
isolierten Turmerol ist. Das über die Bisulfitverbindung gereinigte farblose
Keton wurde aus dem Rohöle in einer Menge von 50 °/0 erhalten. Aus dem
Semicarbazon (Smp. 119,5 bis 120,5°) regeneriert hatte es folgende Eigen-
schaften: Sdp. 120 bis 120,5" (10 mm Druck), d20° 0,9508; stark optisch aktiv.
Derivate: Oxim, Sdp. 159° (11 mm Druck), Phenylhydrazon, Smp. 90 °, p-Brom-
phenylhydrazon, Smp. 71 ü, Benzylidenverbindung, Smp. 102 ü, Piperonalderivat,
Smp. 113 °. Unter den Oxydationsprodukten des Ketons mit Permanganat
wurden Terephthalsäure und p-Methylacetophenon aufgefunden; mit Hypobromit
entstand aus dem Keton neben einer Oxysäure C^H^Os, Smp. 150°, eine
Säure CtoH^Oo, Smp. 33 bis 34 °, die bei der Oxydation mit Permanganat eine
Dicarbonsäure C12H1404, Smp. 228 °, lieferte. In dem Vorlauf des aus dem Öl
erhaltenen Spaltungsproduktes wurde Phellandren nachgewiesen (Nitrit, Smp.
1(18°), das von uns bereits früher in dem Öle aufgefunden war.

Zedernholzöl. Über dieses Öl liegen ausser Beobachtungen aus
älterer Zeit Untersuchungen von Rousset vor, über die von uns seinerzeit
ausführlicher berichtet wurde.

Neuerdings unterwarfen F. W. Semmler und A. Hoffmann den im Öl
enthaltenen Kohlenwasserstoff, das „natürliche Cedren", einer näheren Unter-
suchung, deren Ergebnisse mit denen Roussets nicht übereinstimmen.

Für Rohcedren fanden Semmler und Hoff mann folgende Eigenschaften:
Sdp. 124 bis 120° (12 mm Druck), diso 0,9354, «d — 55°, nD 1,50233. Dieses
Rohcedren bestand zum grössten Teil aus einem einfach ungesättigten,
tricyclischen Sesquiterpen, dem Cedren, Ci5H24, daneben enthielt es noch
geringe Anteile von schwächerem Drehungsvermögen.

Das Cedren wurde mit Permanganat in Acetonlösung oxydiert und die
entstandenen indifferenten Produkte durch fraktionierte Destillation getrennt.
In einer Ausbeute von 12 bis 15 °/0 wurde Cedrenglycol, C15H2602 erhalten; es
kristallisiert aus Aceton in grossen, säulenförmigen Prismen, Smp. 160°; Sdp.
]S(i bis 187° (12 mm Druck); diso 1,053 im überschmolzenen Zustand. Das
Glycol ist sublimierbar, reagiert nur träge mit Essigsäureanhydrid, gibt beim
Erwärmen mit verdünnter Schwefelsäure eine Trübung und ist sehr beständig
gegen Permanganat. Dieser Körper dürfte zum Nachweis des Cedrens ge-
eignet sein.

Neben dem Glycol bildete sich eine Verbindung ClsH2402, die Semmler
und Hoffmann als einen Ketoaldehyd oder ein Diketon ansprechen, Sdp. 165 °
(10 mm Druck), diso 1,055. Aus dem Disemicarbazon (Smp. 234°) Hess sich
mit Phthalsäureanhydrid die zugrunde liegende Substanz nicht unzersetzt
regenerieren. Die gleiche Verbindung entstand bei der Oxydation des Cedrens
mit Ozon bei Gegenwart von Wasser.

Hauptsächlich entstanden bei der Oxydation des Cedrens mit Permanganat
Produkte saurer Natur, aus denen eine Cedrenketosäure, C^Ho«^, isoliert
wurde, die bei 215 bis 222° (11 mm Druck) siedete (Semicarbazon Smp. 245°;
Oxim Smp. unscharf bei 60°, bei 100° Aufschäumen: Methylester, CieHofi03.
Sdp. 160 bis 165" bei 8 mm Druck, diso 1,054, np 1,484, Semicarbazon Smp.
180°). Mit Bromlauge entstand aus der Ketosäure die Cedrendicarbonsäure,
C14Hoo04. zähflüssiges Öl, Methylester. Clt;H2(;04, Sdp. 105 bis 1730 (11 mm Druck);
diso 1,081: np 1.47936.

215] Berichte über die pharraakognostisohe Literatur aller Länder. 629

Die Oxydation des Cedrens mit Chromsäure in Eisessiglösung führte zu
einem Gemisch zweier Ketone von verschiedenem Rotationsvermögen, die sich
mittelst der Semicarbazone zum Teil trennen Hessen. Daneben bildeten sich
auch aldehydische Bestandteile. In der Hauptmenge bestand das Oxydations-
gemisch aus „Cedron", C15H220, für das Rousset die Formel C15H240 ange-
nommen hatte. Das intensiv nach Zedernholz riechende, schwach gelb ge-
färbte Keton hatte die folgenden Eigenschaften: Sdp. 147 bis 150,5° (9 mm
Druck), di2,öo 1,011, nD 1,51202, «D — 910 30', Mol.-Refr. gefunden 64,68, be-
rechnet für C15H220 63,03, für C15H220/= 64,72. Das Semicarbazon schmolz bei
242 bis 243 ".

Bei der Reduktion mit Natrium in alkoholischer Lösung entstand aus
dem Keton Dihydroisocedrol, Ci5H260 : Sdp. 14S bis 151° (9,5 mm Druck),
diso 1,007, nD 1.51202, «D — 20° 30', Mol.-Refr. gefunden 66,12, berechnet für
einen Alkohol C15H.jr,0 66,36.

Neben dem Cedron enthielt das Oxydationsgemisch ein in nicht einheit-
lichem Zustande isoliertes Keton, Sdp. 148 bis 152° (10 mm Druck), di6» 1,005,
«D — 40°. Dargestellt wurde aus einem Rohcedron mit «d — 36° ein Oxim,
Sdp. 160 bis 180° (11 mm Druck) und aus diesem durch Reduktion ein
Amin, 015H27N, Sdp. 145 bis 150 ° (9 mm Druck); di5° 0,979; nD 1,5097;
aD — 20° 36'.

Durch Erhitzen von Cedren mit Jodwasserstoff und rotem Phosphor auf
180 bis 210 n und Reduktion des entstandenen Produktes mit Natrium und
Alkohol entstand ein Körper C15H26, der Dihydrocedren genannt wurde : Sdp.
116 bis 122° (10 mm Druck), diso 0,9052, nD 1,48721.

Nach der vorliegenden Untersuchung werden von Semmler und Hoff-
mann im Cedren (I), Cedrenglycol (II), in der Ketosäure (III) und dem Cedron
(IV) folgende Atomgruppierungen angenommen:

I. II. III. IV.

c c c c

I i I

C CH C CH-OH C COOH C CO

\// \/ \ ^/

CCH3 C(OH)-CH3 CO.CH3 C-CH3

Öl von Hamamelis uirginiana. Wenn die Zweige von Hamamelis Virgi-
nia na („witch-hazel") in grösserem Massstabe destilliert werden, scheiden sich
im Destillat geringe Mengen einer grünen, fettigen, stark riechenden Substanz
ab, die lange für den wirksamen Bestandteil des Destillates gehalten wurde.
Die vonW. L. Scoville näher untersuchte Substanz stammte von E. E. Dickinson,
Essex, Conn.

Das weiche, schmierige, grüngefärbte, stark riechende „Öl", das etwas
Wasser enthielt, wurde mit Wasserdampf destilliert und so lange kohobiert,
bis das Destillat fast klar überging. Das nur sehr langsam übergehende gelb-
liche Öl besass einen starken Geruch, der deutlich an Aqua hamamelidis erinnerte,
ohne ihm jedoch gänzlich zu gleichen. Vielleicht beruht dies darauf, dass das
natürliche Öl einen Bestandteil enthält, der in Wasser leichter löslich ist als
in den anderen Bestandteilen des Öles, ähnlich wie beim Rosenöl.

Es wurden zwei Proben des Öles aus verschiedenen Anteilen des Unter-
suchungsmateriales erhalten mit folgenden Eigenschaften: d250 0,8984 und 0,8985 ;
nD200 1,4830 und 1,4892; «D -f- 4,6° und +5,05; V. Z. 3,80; V. Z. nach Acety-
lierung 30,3.

g30 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [216

Die Hauptmenge des Öles siedete zwischen 250 und 263°.

Das Öl bestand hauptsächlich aus einem Terpen (Sesquiterpen?), zu
etwa 7°/p aus einem Alkohol und aus einem in noch kleinerer Menge vor-
handenen Ester.

Das nicht flüchtige, noch stark riechende, durch Chlorophyll grüngefärbte
Wachs, das ca. 72°/0 des Ausgangsmaterials ausmachte, zeigte einen körnigen
Bruch wie Bienenwachs.

Öl von Heracleum giganteum. Ein von uns in allerdings nur geringer
Menge destilliertes Öl, das aus trockenen Samen von Heracleum giganteum in
einer Ausbeute von 2,94 °/0 gewonnen war, hatte iolgende Konstanten:
d150 0.8738, «D -f 1°0', nD200 1,42402, S.Z. 3,7, E. Z. 281,9, E. Z.
nach dem Acetylieren 311,8, löslich in 1,2 Vol. u. m. 80 prozentigen Alkohols.

Öl von Lippia scaberrima. Die in der Oranjeflusskolonie, Süd-Afrika,
vorkommende, im Volksmunde „Beukess Boss" genannte Pflanze Lippia scaber-
rima Sonder (Familie der Verbenaceae) wurde von F. B. Power und F. Tutin einer
eingehenden Untersuchung unterworfen, der wir das uns Interessierende, das
sich auf das daraus gewonnene ätherische Öl bezieht, entnehmen.

Das alkoholische Extrakt der Pflanze, deren Geruch an Lavendel und
Salbei erinnerte, wurde mit Wasserdampf destilliert. Das Destillat enthielt in
einer Ausbeute von 0,25 °/0 der getrockneten Pflanze ein gelbbraunes ätherisches
Öl, dessen Geruch dem der Pflanze ähnlich und deutlich kampferartig war.

Sdp. 2200 bis 230°; d^ 0,9500: «D + 7°36\ Leicht löslich in öOprozentigem

Alkohol. Mit Eisenchlorid entstand eine hellbraune Färbung, Im Destillations-
wasser konnten Ameisensäure und Buttersäure in geringer Menge nach-
gewiesen werden.

Schlangen wurzelöl, kanadisches. Die in den Vereinigten Staaten
als indianische Ingwerwurzel (Wild Ginger) bekannte Schlangenwurzel (von
Asarum canadense L.) haben wir nach längerer Zeit wieder einmal destilliert
und teilen hier unsere Ergebnisse mit.

Wir erhielten die lufttrockene Wurzel, und zwar sowohl in naturellem
Zustande, d. h. die Wurzel mit den Fasern, als auch die von den Fasern be-
freite Wirrzel und die Fasern allein.

Die Konstanten des aus der zerkleinei'ten Wurzel mit Fasern in einer
Ausbeute von 3,30% erhaltenen gelbbraunen, aromatischen Öles waren folgende:
d150 0,9508, «D — 2200', nD2Qo 1,48537, S.Z. 3,7, E. Z. 115,9, E. Z. nach Acety-
lieren 140,1, löslich in 2,7 Vol. u. m. 70 prozentigen Alkohols.

Das aus den Wurzeln ohne Fasern gewonnene Öl (Ausbeute 3,83 °/„) ist
mehr rein gelb gefärbt und hat folgende Konstanten: d160 0,9516, «D — 2° 50'.
nD20o 1,48508, S.Z. 3,7, E. Z. 117,6, E. Z. nach Acetylieren 137,2, löslich in
2,3 Vol. u. m. 70 prozentigen Alkohols.

Das aus den Fasern der Schlangen wurzel gewonnene Öl (Ausbeute
l,20°/0) hatte nachstehende Eigenschaften: d13„ 0,9659, «D— 39° 40', nD20„ 1,50280,
S.Z. 2,2, E. Z. 39,2, E. Z. nach Acetylieren 110,2, nicht löslich in 10 Vol.
70prozentigen Alkohols, löslich in 0,9 Vol. u. m. 80 prozentigen Alkohols.

Da wegen zur Verfügung stehenden Raumes nur ein kleiner Teil des
reichen Inhaltes wiedergegeben werden konnte, sei hier auf das Original
verwiesen.

747. Schimmel & Co. Bericht. Oktober 1908.

Aus dem reichen Inhalte sei das folgende mitgeteilt:

217] Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 631

(Jopaivabalsamöl, afrikanisches. Wir geben nachstehend die
Eigenschaften eines afrikanischen Copaivabalsams an, von dem wir kürzlich
aus London ein kleines Quantum erhielten. Von Interesse dürfte die Mitteilung
sein, dass der Balsam nach der steueramtlichen Vorschrift bei der Einfuhr nach
England neuerdings nicht mehr wie bisher als „African Copaivabalsam"
deklariert werden darf, um seiner vielfachen Anwendung zum Verfälschen der
westindischen Balsame nach Möglichkeit entgegenzuwirken. Der Balsam war
von dunkelbrauner Farbe mit deutlich grünlicher Fluorescenz. Sein Geruch
war sehr schwach und deutlich verschieden von dem anderer Balsame.
d15„ 0,9919: «D — 2° 15'; S.Z. (51,4; V. Z. 68,5; E. Z. 7.1; selbst in 98prozen-
tigem Alkohol nur unter starker flockiger Abscheidung löslich. Mit Wasser-
dampf wurden 46,5°/0 eines nahezu farblosen rechtsdrehenden Öles abgeschieden,
das in 98 prozentigem Alkohol zunächst klar löslich war, während bei Zusatz
von mehr als 2 Vol. Lösungsmittel ganz schwache Opalescenz eintrat. In
95 prozentigem Alkohol löste sich das Öl im Verhältnis 1 : 10 mit Opalescenz.
d15„ 0,9215; «D + 220 26'; s.Z. 2,2: E. Z. 0.

Dillkrautöl. In unsere Listen haben wir ein aus spanischem Dillkraut
destilliertes Öl aufgenommen, das uns wegen seines charakteristischen Ge-
ruches sehr brauchbar erscheint. Es ist grünblau und hat folgende Konstanten:
d15„ 0,9062, nDO()0 1,49185, ist löslich in 3,4 Vol. 90 prozentigen Alkohols und
dreht stark rechts. Der Drehungswinkel konnte jedoch wegen der dunklen
Farbe des Öles nicht genau bestimmt werden. Bei der Destillation im Vacuum
unter 4 mm Druck gehen ungefähr 75°/0 des Öls zwischen 45 und 60° über,
20% zwischen 130 und 132°.

Der Teil des Öls, dessen Siedepunkt zwischen 45 und 60° liegt, be-
steht aus Kohlenwasserstoffen («D+68° 17', d15„ 0,8528). Bei einem Drucke
von 752 mm ging die Hauptmenge zwischen 173 und 176° über. Dieser Teil
ist fast reines «-Phellandren («D + 88° 22', d150 0,8494). Das Nitrit hatte den
Schmelzpunkt 109 bis 113°. Die um 180° siedenden Anteile enthielten auch
noch «-Phellandren, jedoch war bei diesen Fraktionen die Ausbeute an a-
Phellandrennitrit schon bedeutend geringer als bei dem um 175° siedenden
Anteil. Der Drehungswinkel hatte auch bedeutend abgenommen (aD + 24° 58',
d15„ 0,8578). Demnach musste ein anderer optisch inaktiver Kohlenwasserstoff
in grösserer Menge in dieser Fraktion vorhanden sein. Ein Tetrabromid und
ein Nitrosochlorid konnten nicht erhalten werden, dagegen zeigte der Kohlen-
wasserstoff die Terpinenreaktion. Das Nitrit, aus Methylalkohol umkristallisiert,
hatte den Schmelzpunkt 155 bis 156°. Mit Salzsäure in Eisessiglösung gab
der Kohlenwasserstoff ein festes Dihydrochlorid vom Smp. 51 bis 52°. Beim
Schütteln des rohen, noch nicht aus Äthylalkohol umkristallisierten Dihydro-
chlorids mit verdünnter Kalilauge bei 50° erhält man neben Terpinenterpin
vom Smp. 136 bis 137° auch noch cis-Terpinhydrat vom Smp. 116 bis 117°.
Ganz reines Dihydrochlorid vom Smp. 51 bis 52° gibt aber nur Terpinenterpin
vom Smp. 136 bis 137°. Die Entstehung von cis-Terpinhydrat legt die Ver-
mutung nahe, dass möglicherweise neben Terpinen auch noch Dipenten oder
Limonen in dem Öle vorhanden sein kann. Die neben den Glycolen ent-
stehenden Alkohole und Kohlenwasserstoffe sind nicht untersucht worden.

Die Fraktion des ursprünglichen Öles, deren Siedepunkt unter 4 mm
Druck zwischen 60° und 125° liegt, betrug aus 300 g nur 15 g und enthielt
noch grösstenteils Kohlenwasserstoffe. In ganz geringer Menge (höchstens
l/;0o) fand sich hierin Carvon, dessen Semicarbazon bei 161 bis 163° schmolz.

(532 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. [218

Ob Rechts- oder Linkscarvon vorlag, konnte wegen der geringen Menge des
erhaltenen Carvonsemicarbazons nicht entschieden werden.

Die Fraktion vom Sdp. 130 bis 132° (4 mm Druck) war blau gefärbt
und scheint neben dem schon von Ciamician und Silber näher untersuchten
Dillapiol noch einen blauen Körper zu enthalten, der auch bei einzelnen
anderen ätherischen Ölen, wie Kamillenöl, die blaue Farbe verursacht. Das
Dillapiol (d15„ 1,1418) Hess sich mit alkoholischem Kali leicht in seine Propenyl-
verbindung, das Dillisoapiol vom Smp. 44 bis 45° überführen, Bei der Oxy-
dation mit Permanganat entstand die Dillapiolsäure vom Smp. 150 bis 151°.

Aus dem ursprünglichen Öle schieden sich bei längerem Stehen klare
lange Prismen aus vom Smp. 40 bis 44°. Wahrscheinlich ist dieser Körper
mit Dillisoapiol, Smp. 44 bis 45°, identisch. Die geringe Menge erlaubte aber
keine eingehendere Untersuchung.

Aus den Resultaten dieser Untersuchung geht hervor, dass in dem Dill-
krautöl an Kohlenwasserstoffen d-«-Phellandren, Terpinen und

Fenchelkrautöl. Die Eigenschaften eines von Dr. Carthaus in Java
destillierten Fenchelkrautöles (Stengel und Blätter von Foeniculum officinale)
finden wir im Buitenzorger Jahresbericht von 1906 angegeben: d9(30 0,970,
r<D26o + 4° 50', Erstp. -}- 12,8°. Das Öl siedete in der Hauptsache zwischen
227^ und 235°.

Ein uns von demselben Herrn übersandtes Öl hatte ganz ähnliche Eigen-
schaften: d150 0,9837, «D + 5° 34', Erstp. -f 16,2», löslich in 2 Vol. u. m. 90 pro-
zentigen Alkohols. Der hohe Erstarrungspunkt der beiden Öle deutet auf
einen besonders hohen Anetholgehalt hin.

Öl von Monarda Didyma L. Nachdem wir bereits vor längerer Zeit
über ein selbstdestilliertes Öl aus dem Kraut von Monarda didyma L. berichtet
hatten, haben wir in diesem Sommer zwei verschiedene Öle von dieser Pflanzen-
species hergestellt.

Wir destillieren einmal ausschliesslich die halbwelken Blüten und er-
hielten 0,32 °/0 eines blassgelben, paraffinreicheren und darum schlechter lös-
lichen Öles mit den Konstanten: d150 0,8665, uD~ 7° 30', nD20„ 1,46892, S.Z.
2,4, E. Z. 4,4, löslich in ca. 20 und mehr Volumen 70 prozentigen Alkohols
unter Paraffinabscheidung. Anderseits unterwarfen wir nur die fast trockenen
Stengel und Blätter der Dampfdestillation und erzielten die geringe Ausbeute
von 0,096% an einem zitronengelben, besser löslichen Öle, das folgende Eigen-
schaften zeigte: d150 0,8855, «D — 32»38', nD200 1,46892, S.Z. 5,5, E. Z. 20,4,
löslich in ca. 2 und mehr Volumen 70 prozentigen Alkohols, die verdünnte
Lösung trübt sich ebenfalls infolge Paraffinabscheidung.

Der Geruch beider Öle war fast übereinstimmend lavendelartig, das
früher beobachtete Ambraaroma war bei den diesjährigen Destillaten viel
schwächer.

Öl von Tagetes patula L., Compositen. Diese bei uns in Gärten viel-
fach gezogene, in Mexiko einheimische Pflanze findet dort als stimulierendes,
harn- und schweisstreibendes, die Menstruation beförderndes, in grösseren
Gaben brechenerregendes Mittel sowie gegen intermittierendes Fieber An-
wendung. Früher waren ihre Blüten in Europa unter dem unrichtigen Namen
^Flores africani" offizineil. Wir destillierten die frischen Blütenköpfe mit dem
Hüllkelch und erhielten eine Ausbeute an Öl von 0,1 °/0. Das Öl besitzt eine
goldgelbe Farbe und einen aromatischen, kräftigen Geruch, der etwas an
Fruchtäther und olefinische Terpene erinnert. Die Konstanten des Öles, das

2191 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. 633

anscheinend sehr leicht verharzt, sind die folgenden: d1B„ 0,8856, «D — 5° 35',
nD200 1,49714, S.Z. 2,0, E. Z. 18,7, E. Z. nach Acetylierung 74,3, löslich in
ca. 6 Vol. 90 prozentigen Alkohols u. m. mit Opalescenz.

7-48. Schindelmeiser, J. Kristalle aus französischem Thymianöl.
(Apoth.-Ztg., XXII, 1907. p. 853.)

749. Schindelmeiser, ,T. Das Öl von Artemisia Cina. (Vortrag, geh. auf
der 79. Naturforscherversammlg. Dresden, 1907.)

Dem Öl kommen folgende Konstanten zu:

«D —20 18' d20° 0,924

iid 20» 1,6.32 Siedepunkt zwischen 160—230°.

Neben Cineol finden sich in ihm Pinen, Terpinen und flüssiges rechts-
drehendes Terpineol, teils frei, teils als Ester.

750. Schindelmeiser, J. Über die Früchte von Cornus mos. (Apoth.-
Ztg., XXII, 1907, p. 482.)

In Russland werden unter dem Namen „Kisie" die Steinfrüchte von
Cornus mos als Konserve in Zucker gekocht und viel gegessen.

Im Kaukasus werden die Früchte einfach an der Sonne oder in einer
primitiven Darre getrocknet.

Der Verf. fand in solchen Früchten neben Kohlehydraten Glyoxalsäure.

751. Schindelmeiser, J. Öl von Abies sibirica. (Chem., XXXI, 1907,
p. 760 u. 1198.)

Neben Terpenverbindungen fand der Autor noch d-Phellandren und
Dipenten.

Die Hauptmenge der Fraktionen 169—172° und 175—182° besteht aus
Dipenten.

Ferner wurde gefunden ein optisch inaktives Isohorneol, sowie ein links-
drehendes, sehr flüchtiges Chlorhydrat.

752. Schindelmeiser, J. Über russisches Terpentilöl und russisches
Kien öl. (Chem.-Ztg., XXXII, 1908, p. 8.)

753. Schkateloff, W. Über die Eigenschaften des Harzes ver-
schiedener Ooniferen und die Gewinnung des Harzes aus Pinus
maritima, P. silvestris und anderen Pimts-Arten. (Monit. scientif., IV, 1908,
p. 21, 217.)

Der Verf. isolierte aus dem Harze der Pinus silvestris eine Säure, die
den drei hauptsächlichsten Harzsäuren, die schon beschrieben worden sind,
sehr ähnelt.

Der ATerf. dehnte seine Untersuchungen nun auf folgende Harze aus,
die er selbst in den verschiedensten Gegenden Europas gesammelt hat. Es
sind das:

P. laricio pollasiana, P. strobus, P abies. P- cembra, P- maritima, Larix
sibirica, Abies sibirica.

Aus all diesen hat der Verf. dieselbe Harzsäure in drei verschiedenen
Modifikationen isoliert

a) in Form eines weissen kristallinischen Pulvers |«]d = — 73°, 67, Schmelz-
punkt 143—1440,

b) bei langsamer Kristallisation aus Alkohol in wohlausgebildeten mess-
baren Kristallen; [«]D = — 92°, 5, Schmelzpunkt 160°,

c) in langen Nadeln. Schmelzpunkt 179°— 180°, [«]D = 0.

634 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [220

Andere Autoren haben diese Modifikationen als eigene seit ständige
Säuren aufgefasst.

Der Autor bezeichnet sie als «-. ß-, y-Sylvinsäure. Nach der Literatur
konnte der Verf. feststellen, dass es wenigstens fünf kristallinische Modi-
fikationen dieser Harzsäure gibt.

Bezüglich der Gewinnung usw. der harzartigen Produkte sagt der Verf. :

Je vollkommener man die Luft bei der Verarbeitung der sehr oxydablen
Harze ausschliesst. um so bedeutender wird die Ausbeute an Terpentilöl. Von
gröberen Verunreinigungen ist das durch Wasserdampf geschmolzene Roh-
produkt durch Sieben zu reinigen.

Die flüssigen Bestandteile, wie Terpentin, Oxydatioi.sprodukte, Wasser
und färbende Stoffe werden durch Pressen verflüchtigt.

Als Rückstand bleibt eine weissliche und zei reibbare Menge, die
Sylvinsäure, in ziemlich reinem Zustande zurück.

Reiner noch kekommt man sie, wenn sie aus Alkohol umkristallisiert wird.

Die so gewonnene Sylvinsäure ist sehr rein, schmilzt ausserordentlich
ruhig und liefert ein farbloses Kolophonium.

754. Schlesinger, H. und Ford, W. W. Die chemischen Eigen-
schaften des Amanitatoxins. (Journ. Biol. Chem., III, 1907, p. 279.)

755. Schmidt, E. Neues und Altes aus der Alkaloidchemie.
(Vortrag, gehalten auf der 3ü. Hauptversammlung des deutsch. Apothekerver.,
Eisenach 1907.)

756. Schmidt. Ernst. Notiz über die Alkaloide der Knollen von
Corydalis cava. (Arch. d. Pharm , CCXLVI, 1908, p. 575.)

Makoshi hatte das Protopin als das Leitalkaioid der Papaveraceen
erkannt.

Protopin aus den Knollen von Corydalis cava zu gewinnen war bisher
unmöglich; gefunden wurde aber Dehydrocorydalin.

Dabei wurde gefunden, dass sich Corytuberin ziemlich leicht und einfach
aus dem Extrakt der Knollen von Corydalis cava abscheiden lässt.

757. Schmidt, E. Zur Kenntnis der Rhamnoside. (Arch. Pharm.
1908, p. 214.;

758. Schmidt. E. Über Ephedrin und Pseudoephedrin. (Arch.
Pharm., 1908, p. 210.)

758a. Schmidt. Julius. Über Chinone und chinoide Verbindungen.
(Sammlung chemischer und chemisch-technischer Vorträge, herausgegeben von
Felix Ahrens. Stuttgart, 1907.)

In dem vorliegenden Hefte werden die verschiedenen Klassen organischer
Körper, welche unter den Gesamtbegriff der Chinone fallen, kurz charakterisiert
und besprochen. Bei der Fülle von Material, das gerade auf diesem Gebiete
vorliegt und immer mehr anschwillt, ist die knappe und klare Übersicht,
welche uns hier gegeben wird, sehr willkommen. In der Einleitung wird
zuerst auf die historische Entwickelung der Chinonchemie und besonders auf
die verschiedenen für das p-Chinon autgestellten Formen hingewiesen. Dann
wird die wichtige Rolle, welche die chinoiden Körper in der Theorie der Farb-
stoffe spielen, besprochen. Die Ansichten von v. Baeyer, Hartley, Hantzsch
werden gestreift, ohne einer Kritik unterzogen zu werden. Man vermisst hier
ein wenig eine Stellungnahme des Verfs.

Im speziellen Teil werden zuerst die orthochinoiden Verbindungen einer
genaueren Betrachtung unterzogen und auf die in ihrer Darstellung in An-

•>2ll Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. 635

Wendung gekommenen Methoden hingewiesen. Eine Tabelle der additioneilen
Verbindungen der o-Benzochinone illustriert das grosse Additionsvermögen
dieser Körper. Darauf folgt die Besprechung der Parachinone, wozu beim
Parabenzochinon seine Bildungsweisen aus Anilin und durch Ringschluss aus
aliphatischen Ketokörpern näher erläutert werden. Von den bekannten Chinon-
eigenschaften wird auch hier wieder besonders auf die Fähigkeit, andere
Moleküle zu addieren, eingegangen.

Es folgt eine Aufzählung der zahlreich realisierten Reaktionen und
Produkte, die auf dieser Eigenschaft begründet sind. Dabei bietet sich beim
Phenochinon und Chinhydron wieder Gelegenheit zu theoretischen Erwägungen,
in denen besonders auch die neueren Untersuchungen von Posner eine
Würdigung finden. Weiter werden die Kondensationsprodukte aus Chinonen
mit Hydroxvlamin und Hydrazinkörpern behandelt und die dabei auftretenden
Tautomerieerscheinungen. denen sich weiter die neuerdings von Meisenheimer
erhaltenen diaci-Dihydrodinitrobenzole anschliessen.

Als dritte Klasse der Chinone reihen sich die Diphenochinone an, deren
Kenntnis gerade in jüngster Zeit durch die Arbeiten von Willstätter sehr
erweitert worden ist. Es gehört hierzu, als längst bekannte Verbindung, das
Coerulignon. Dann kommt Verf. auf die Chinomethane, deren einfachster Ver-
treter die Formel

\

O = / N> = CH

hat, zu sprechen. Wichtig ist diese Verbindungsklasse hauptsächlich wegen
ihrer Beziehungen zu den Thiophenvlmethanfarbstoffen. Während bis vor
kurzem von diesem Typus nur Paraverbindungen bekannt waren, ist es in
jüngster Zeit auch gelungen, Orthoderivate zu erhalten.

Grosses Interesse bieten auch die chinoiden Kohlenwasserstoffe, die, im
Gegensatz zu den gewöhnlichen Kohlenwasserstoffen, gefärbt sind. Dem alt-
bekannten Fulven werden hier noch andere Beispiele an die Seite gestellt,
und es wird ferner ein Vergleich mit den ebenfalls gefärbten Fulgiden von
Stobbe durchgeführt. Bei dieser Gelegenheit kommt auch das Problem des
Triphenvlmethyls von Gomberg zur Sprache, da diese Substanz ja vielfach als
chinoider Kohlenwasserstoff aufgefasst wird.

Ein weiteres Kapitel behandelt die (Jhinonimine und beschäftigt sich
mit der auffallenden Tatsache, dass die einfachsten Glieder farblos sind im
Gegensatz zu den stark gefärbten Derivaten. Zu diesen gehört auch das
Emeraldin und Anilinschwarz. Azophenin-, Indulin- und Mauvei'nfarbstoffe
leiten sich von Chinoniminen ab. Auch von o-Chinonen und Diphenochinonen
sind entsprechende Imine bekannt geworden.

Im letzten Kapitel werden die Chinole. d. h. Substanzen von folgender
H OH
/

einfacher Formel

behandelt. Es ist seinerzeit in der Rundschau (1905,

H
O

XX, p. 420, 429. 4-41) eine Besprechung dieser interessanten Körperklasse er-
schienen, zu der das vorliegende Kapitel wichtige Ergänzungen, besonders
auch über o-Chinole und über die mannigfachen Umlagerungen. enthält.

636 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. [222

Für jeden, der sich über die verschiedenen Arten der chinoiden Körper
und die Bedeutung, die sie für die chemische Forschung bis in die neueste Zeit
besitzen, zu unterrichten wünscht, wird dieses Buch eine ergiebige Quelle sein.

759. Schneider, W. Cheirolin, das Alkaloid des Goldlacksamens,
(Berl. Ber., 1908, p. 4466.)

Das von Wagner gefundene schwefelhaltige Alkaloid Cheirolin aus den
Samen von Cheiranthus Cheiri ist aufgebaut nach der Formel C9H1605N2S3.

Es kristallisiert aus Äther in färb- und geruchlosen Nadeln. Schmelz-
punkt 47 — 48°. Mit verdünnter Natronlauge wird Spaltung des Cheirolins
hervorgerufen.

Wird die Lösung mit HCl angesäuert, so entweichen Kohlendioxyd und
Schwefelwasserstoff.

Es gelang, aus der Mutterlauge das salzsaure Salz einer sehr starken,
noch schwefelhaltigen Base zu isolieren.

Dem Hydrochlorid kommt die Formel C4H.uO.1NS : HCl zu. Die freie
Base erwies sich als stark hygroskopisch.

760. Schmidt, E. u. Meyer, Arthur. Die Wanderung der Alkaloide
aus dem Pfropfreise in die Unterlage. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907,
p. 329-336.)

761. Schnepphaus, R. ('. Technische Anwendung des Kampfers
(Journ. Soc. Chem. Ind., XXVI, 1907, p. 386.)

In der Zelluloseindustrie werden nicht weniger als zwei Drittel des
Gesamtkampfers verwendet.

Sehr gering ist der Kampferverbrauch zu Sprengzwecken.

762. Schiine, Albert. Lävulose (Fruchtzucker) aus lnulin bzw.
lnulinhaltigen Pflanzen. (Centrbl. f. Pharm, u. Chemie. IV, 1908, p. 413— 414.)

763. Scholl, E. Chitin aus Boletus edulis. (Monatsh. f. Chem., XXIX,
1908, p. 1023.)

Der Verf. konnte aus Boletus edulis, dem Steinpilz in der Siedehitze
unter Einwirkung von lOprozentiger Kalilauge reines Chitin darstellen, das
sich chemisch vollkommen genau wie tierisches Chitin verhielt.

Es bestehen die Membranen von Boletus edulis der Hauptsache nach aus
reinem Chitin, das in höchst lockerer Verbindung mit stickstofffreien Kohle-
hydraten steht.

764. Schröder, Fr. Über den Nachweis und die quantitative Be-
stimmung von Reisspelzen in Futtermitteln. (Arb. Kais. Gesundh.-Amt,
XXVIII, 1908, p. 213.)

764a. Schroeder; G. Über den Einfluss des Cyankaliums auf die
Atmung von Aspergillus niger nebst Bemerkungen über die Mechanik
der Blausäurewirkung. (Jahrb. f. wiss. Bot., 1907, Bd. 44, p. 409—481.)

In der Tierphysiologie ist seit langem bekannt, dass die Blausäure die
Atmung von Tieren sehr stark herabsetzt. Eine ähnliche Beeinflussung der
Atmung wurde für höhere Pflanzen durch Untersuchungen von A. Mayer, für
die Hefe durch denselben Autor, sowie durch Schönbein und Fiechter wahr-
scheinlich gemacht. Verf. stellte sich nun von neuem die Aufgabe, zu prüfen,
ob in der Tat die Pflanzenatmung durch Cyankalium in derselben Weise ver-
langsamt werde wie die Atmung von Tieren. Er hat darüber sehr eingehende
Untersuchungen angestellt.

Im Gegensatz zu Mayer sah Verf. von der Verwendung höherer Pflanzen
ganz ab, da bei diesen die Darreichung des Giftes grosse Schwierigkeiten

223] Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. 637

bietet, und prüfte einzig und allein den bekannten Schimmelpilz Aspergillus
niger. Dieser erwies sich deshalb als besonders geeignet, weil er einmal leicht
zusammenhängende Massen an der Oberfläche der Nährlösung bildet, sodann,
weil er bereits bei Zimmertemperatur mit genügender Intensität atmet, und end-
lich, weil er nicht imstande ist, in grösserem Massstabe Gärungen hervorzurufen.
Zur Bestimmung des Sauerstoffverbrauches brachte Verf. den Pilz mit
einem Absorptionsmittel für die gebildete Kohlensäure in einen durch Queck-
silber abgesperrten Luftraum und beobachtete die Volumabnahme der Luft.
Diese setzte er gleich dem Sauerstoffverbrauch durch de7i Pilz. Mit dem Luft-
räume stand ein Skalenrohr in Verbindung, dessen freies Ende in einen kleinen
Glaszylinder mit Quecksilber tauchte. Aus dem Steigen der Quecksilbersäule
in dem Skalenrohre Hess sich die Volumabnahme berechnen. Die produzierte
Kohlensäure wurde nach dem von Pfeffer modifizierten Pettenkoferschen Ver-
fahren gemessen. Die benutzten Cyankaliummengen schwankten zwischen
0,0164 und 0,8 g einer 50 bzw. 90 bis lOOprozentigen Üyankaliurnlösung auf
150 cm3 Nährlösung.

Aus den so angestellten Verfahren ergibt sich, dass durch das Cyan-
kalium die Atmung von Aspergillus niger ganz bedeutend herabgesetzt wird.
Die Herabsetzung betrifft sowohl die Kohlensäureabgabe wie die Sauerstoff-
aufnahme. Die Kohlensäureabgabe geht bis auf einen innerhalb der Fehler-
grenze der Methodik gelegenen Betrag zurück, so dass man in diesem Falle
von einer vollkommenen Sistierung reden kann. Dagegen konnte Verf. mit
Sicherheit nicht beobachten, dass die Sauerstoffaufnahme gleichfalls bis unter
diese Grenze sinkt. Er rechnet darum mit einem geringen Rest einer Sauer-
stoffaufnahme. Ob diese geringe Aufnahme als ein vitaler Vorgang anzusehen
ist, oder ob sie ein rein chemisches Geschehen darstellt, konnte nicht ent-
schieden werden. Die Sauerstoffaufnahme ohne Kohlensäureabgabe sucht Verf.
durch die Annahme zu erklären, dass gewisse Oxydationen im Mycel über-
haupt nicht bis zur Bildung von Kohlendioxyd führen, sondern schon früher,
etwa auf der Stufe von Milchsäure, Oxalsäure u. dgl., Halt machen. Er
schliesst sodann aus den experimentellen Befunden, dass das vorübergehende
Aufhören der Kohlensäureausscheidung kein zuverlässiges Kennzeichen des
Todes ist. Das Leben kann vielmehr kürzere Zeit auch ohne Kohlensäure-
bildung bestehen.

Als Verf. den Pilz aus der gifthaltigen Nährlösung entfernte und nach
Aiiswaschung in eine giftfreie Nährlösung brachte, trat bald ein langsames
Ansteigen der Kohlensäurebildung ein, und bereits nach einigen Stunden hatte
in der Regel die normale Kohlensäureproduktion wieder Platz gegriffen. Das-
selbe gilt für die Sauerstoffaufnahme. Der durch Cyankalium verursachten
Herabsetzung der Atmung folgt also eine vollkommene Erholung, voraus-
gesetzt, dass das Gift nicht zu lange einwirkte. Anderseits konnte niemals eine
Steigerung der Atmungsintensität nach Entfernung des Giftes beobachtet werden.

Dass das Anwachsen des Gasaustausches zur früheren Grösse in der Tat als
eine Rückkehr der normalen Atmung des gesamten Mycels bezeichnet werden
muss und nicht etwa durch ein Auswachsen von überlebenden Teilen des
durch das Gift abgetöteten Pilzes, oder durch ein Auskeimen von Sporen,
oder endlich durch Bakterienentwickelung vorgetäuscht wurde, ergibt sich aus
folgenden Erwägungen: Die Rückkehr zur normalen Atmung vollzieht sich
über die Massen schnell. Sie erforderte z. B. in einem Versuche nur eine
Stunde, in einem anderen etwa vier Stunden Zeit. In einem derart kurzen

638 Berichte über die pkaruiakognostische Literatur aller Länder. [224

Zeiträume ist aber ein so schnelles Auswachsen überlebender Teile, woraus
die beobachtete starke Atmung erklärt werden könnte, einfach unmöglich.
Dazu kommt, dass bei zwei Versuchen eine eigentliche Erholungsperiode über-
haupt nicbt vorhanden war.

Auch auf Bakterienwirkung lässt sich das Anwachsen der Atmung nicht
zurückführen. Wie Verf. betont, hatte er bis zu Beginn der Versuche immer
eine Reinkultur des Pilzes in den Händen. Die wenigen Bakterienkeime aber,
die während der Versuchsanstellung in die Nährlösung gelangt sind, konnten
sich unmöglich so rasch vermehren, dass man ihrer Tätigkeit einen nennens-
werten Bruchteil des gefundenen Gasumsatzes zuschreiben dürfte.

Als Verf. die Dauer der Giftwirkung auf 9, 14 1/o, 19, 21 Stunden aus-
dehnte, trat niemals eine vollkommene Erholung ein, auch wenn die benutzte
Giftmenge sehr gering war. Umgekehrt erholten sich die Organismen bei An-
wendung grösserer Giftmengen auf kürzere Zeit hin. Das Studium des Ver-
haltens von Aspergillus niger bestätigt also vollkommen die tierphysiologische
Tatsache, dass eine grössere Giftdosis bei nur kurzer Einwirkung weniger
schädigt als eine verhältnismässig geringe bei längerer Dauer.

Aus den vorliegenden Versuchen ergibt sich somit, dass die durch das
Tierexperiment gewonnene Erkenntnis, wonach die Blausäure die Atmungs-
tätigkeit herabgesetzt, mit aller Schärfe auch für einen niederen pflanzlichen
Organismus gilt. Die Versuche stehen auch im Einklänge mit den bekannten
Untersuchungen Loebs, nach denen verdünnte Oyankaliumlösung unter
anderem die parthenogenetische Entwickelung von Seeigeleiern ebenso ver-
hindert wie Sauerstoffentziehung.

Verf. legte sich nun die Frage vor, ob die durch Blausäure bewirkte
Atmungslähmung eine primäre Giftwirkung sei, oder ob sie erst sekundär die
Folge einer solchen darstelle. Zur Beantwortung der Frage wurde ein anderer
Körper zum Vergleiche herangezogen, der die Atmung gleichfalls, aber nicht
primär, beeinflusst: der Äthyläther.

Die Versuche mit Cyankalium einerseits und mit Äthyläther anderseits
ergaben folgende Differenzen: Beim Cyankalium tritt die lähmende Wirkung
unmittelbar nach deiu Zufügen des Giftes in voller Stärke auf. Beim Äther
dagegen ist die Herabsetzung der Atmung bei geringen Dosen eine langsame,
derart, dass in jedem folgenden Beobachtungsintervall weniger Kohlensäure
ausgeschieden wird als im vorausgegangenen. Wie bereits oben ausgeführt,
tritt beim Cyankalium nach einer Dauer der Giftperiode von zwei bis vier
Stunden vollkommene Erholung des Organismus ein. Im Gegensatz hierzu
Hess sich bei Anwendung von Äther nie eine vollkommene Erholung des
Organismus beobachten, wenn die Kohlensäureabgabe unter dem Einflüsse des
Giftes ganz aufgeführt hatte.

Verf. schliesst aus diesen Versuchen, dass die Wirkung des Äthers auf
die Atmung keine primäre, sondern eine sekundäre Erscheinung sei, dass also
die Atmung infolge anderweitiger Schädigung herabgesetzt werde. Dagegen
ist die Wirkung des Cyankaliums als primäre anzusprechen, d. h. hier wird
zunächst die Atmung gelähmt, und erst dadurch werden andere Vorgänge
(nachträglich) in Mitleidenschaft gezogen.

7ti4b. Seliroeder, H. Über den Nachweis einiger Enzyme in dem
Fruchtkörper der Lohblüte (Fuligo varians). (Beitr. z. ehem. Physiol. u.
Pathol., IX. 1907, p. 153.)

Die Enzymforschung ist die Parole des Tages: je mehr sich die — nach

225] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 539

Überzeugung des Referenten freilich wohl etwas zu weitgehende — Ansicht
verbreitet und befestigt, dass nur die Enzyme die eigentlichen Argentien der
Lebewesen seien, wenigstens soweit es sich um den Chemismus handelt, um
so mehr häufen sich die Untersuchungen über die Enzyme, speziell über ihre
Verbreitung in den Lebewesen. Im Interesse des Fortschrittes der Wissen-
schaft ist das sehr erfreulich, und so seien auch die beiden oben angeführten
Studien notiert, unter denen die letztere allerdings die Kohlenhydratenzyme
von vornherein ausschliesst, auf später vertröstend. Verf. findet in den zur
Fruchtkörperbildung sich anschickenden Plasmodien im I uligo rarians ein
lebendes, ferner nur in saurer Lösung schwach wirksames proteolytisches
Enzym, reichlich Katalase, endlich Tyrosinase und Oxydase, Guajakol bläuend
und Hydrochinon bräunend. In den Fruchtkörpern von Polyporus squamosus
wies Buller nach Diastase, Laccase (Oxydase), Ty-rosinase, ein protolytisches
Enzym, Emulsin, Labenzym, Lipase und Coagulase (Stärkelösung coagulierend),
dagegen nicht Pektase, Invertase, Maltase, Prehalase oder Cytase (Zellwand
lösend). Vom Mycel werden zweifellos Cytase und Hadromase (Holz in
Hadromal und Zellulose spaltend) gebildet, wie aus der Tatsache der Holz-
zersetzung durch den Pilz ohne weiteres folgt.

765. Schnitter, H. und Weitzenüück, R. Zusammengehörigkeit des
Cholesterins und der C h o 1 a 1 s ä u r e mit dem Kampfer und dem
Terpentinöl. (Monatsh. Chem., XXIX, 1908, p. 395.)

766. Schulz, R. L. Die Asche der Kamala. (Pharm. Rew.. XXV. 1907,
p. 129.)

766 a. Schulze, E. und Castoro, N. Bildet sich Homo gen tisinsäure
beim Abbau des Tyrosins in den Keimpflanzen? (Hoppe - Seylers
Zeitschr. f. physiol. Chem., XL VIII, 1906, p. 396—411.)

Die Mitteilung Beitels (Ber. D. Bot. Ges., XX, 1902, p. 454), dass beim
Abbau des Tyrosins in den Keimpflanzen von Lupinus Homogentisinsäure
entsteht, hat seinerzeit viel Aufsehen erregt, einerseits wegen der Bedeutung
dieses Oxydationsvorganges für den Eiweissabbau, anderseits wegen der von
Czapek damit in Zusammenhang gebrachten Anhäufungen von „Homogentisin-
säure" bei verschiedenartigen Reizerscheinungen. E. Schulze, für dessen An-
sichten über den Eiweissabbau in Keimpflanzen die Bildung von Homogentisin-
säure aus Tyrosin unter Sauerstoffaufnahme und Abgabe von C02 und XH3
eine willkommene Bestätigung gewesen wären, versuchte im Verein mit Castoro
die von Bertel nicht in Angriff genommene Isolierung der Hydrochinonessig-
säure auszuführen, aber alle Versuche verliefen völlig negativ! Gegenüber
den Reaktionen, auf die sich Berteis Angabe stützt, sind die Untersuchungen
der Verff. durchaus überzeugend. Verff. haben sowohl das Verfahren von
Walkow und Baumann zur Isolierung der Säure, als auch das von Garrod an-
gewendet und stets, da die Ausscheidung der Säure bzw. des Bleisalzes unter-
blieb, die Rückstände auf die sehr charakteristischen und empfindlichen
Reaktionen der Säure geprüft. Um weiter zu ermitteln, ob die Pflanzensäfte
etwa die Reaktionen der Säure hindern, wurde Homogentisinsäure zugesetzt
und festgestellt, dass sich mit ammoniakalischem Silbernitrat noch 0,005 °/0 der
Säure nachweisen lassen. Als Versuchsobjekte dienten Keimpflanzen von
Lupinus albus und von Cucurbita Pepo, die beide reich an Tyrosin sind. Es
wurden 100 — 150 g frischer Wurzeln von zweitägigen, dann von sechs- bis
siebentägigen Keimpflanzen, dann die nach Abtrennung der Wurzeln ge-
bliebenen Teile geprüft. Da Bertel angegeben hatte, dass im Wurzelbrei in

640

Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder.

[226

Chloroformautolyse die Säure in grösseren Mengen gebildet wird, wurden auch
Versuche mit solchem Wurzelbrei arjgestellt und bei dem negativen Ausfall
auch dieser in weiteren Versuchen auch noch die Wurzelspitzen abgetrennt,
da nach Bertel in ihnen ein die Homogentisinsäure oxydierendes Ferment ent-
halten sein soll. Alles vergebens. Gegenüber den entgegengesetzten Ergeb-
nissen von Berteis Untersuchungen weisen die Verff. darauf hin, dass die
Reduktion von ammoniakalischer Silberlösung, sowie die Reaktionen mit Eisen-
chlorid und Millonschem Reagens mehrdeutig sind und auch durch Gegenwart
anderer Körper unsicher gemacht werden können. — Mit diesen Feststellungen
der Verff. fällt das schöne Beispiel von der Oxydation eines Eiweissspaltungs-
produktes (des Tyrosins) unter C02- und NH3-Abgabe. Wie sich die von
Czapek gemachten Beobachtungen an geotropisch, phototropisch und hydro-
tropisch gereizten Pflanzenteilen jetzt erklären, bleibt abzuwarten.

767. Schulze, E. Zum Nachweise des Rohrzuckers in Pflanzen-
samen. (Zeitschr. f. physiol. Chem., LH, 1907, p. 404.)

Am besten verwendet man zur Dai Stellung von Rohrzucker aus Pflanzen-
samen 95 °/0 Alkohol.

Auf diese Weise wurden untersucht Samen von Pinus Cembra, Corylus
avellana, Soja hispida, Picea excelsa und Weizenkeimlinge. Bei der Extraktion
empfiehlt es sich, die Temperatur auf 50° zu erhalten.

Ist der Zuckergehalt gering,

so wendet man zur Isolierung am besten

das Strontianverfahren an.

768. »Schulze, E. Phosphorgehalt einiger aus Pflanzensamen
dargestellter Lecithin präparate. (Zeitschr. f. physiol. Chem., LH, 1907,
p. 54.)

7(>9. Schulze, E. Über die zur Darstellung von Lecithin und
anderen Phosphatiden aus Pflanzensamen verwendbaren Methoden.
(Zeitschr. f. physiol. Chem., LV, 1908, p. 338.)

770. Schulze, E. und (iodet, Ch. Calcium und Magnesiumgehalt
einiger Pflanzensamen. (Zeitschr. 1. physiol. Chem., LVIII, 1908, p. 156 ff.)

In der Pflauzenasche findet sich Magnesium gewöhnlich in grossen
Mengen, aber daneben tritt auch Calcium ziemlich reich auf. Eine Tabelle
zeigt die einzelnen Gehalte der Asche von Kernen:

Pinus Cembra . .
Lupinus angustifolius
Cucurbita Pepo ■ .

29.4
31,4

18,8

6,7
5.1 1

1,1

9,9
14,6
19,0

42,8
40,5
55,8

Reicher an Magnesia als an Kalk sind die entschälten Samen. Die
Asche der Samenschalen weicht von der der Kerne ab.

K,0

CaO

MgO

P.,0

44,9

12,6

11,0

3,2

27,5

38.7

9,4

6,1

35.0

8.5

7,6

6.4

23,7

49.9

4,3

0,6

Pinus Cembra . .
Lupinus angustifolius
Cucurbita Pepo . ■
Ricinus communis .

2271 Berichte über die pbarmakognostische Literatur aller Länder. 641

771. Schulze, Fr. Berberitzensaft. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs-
u. Genussm., XVI, 1908, p. 289.)

772. Schulze, G. Über die Bestandteile der Samen von Pinns
Cembra. (Landw. Versuchsstat., LXVII, 1907, p. 57.)

773. Schulze, H. Einwirkung von Phenylmagnesiumbromid auf
Coffein und einige Derivate. (Berl. Ber., XL, 1907, p. 1744.)

774. Schulze, H. Oxydationsprodukte desAconins. (Arch. Pharm.,
1908, p. 281.)

775. Schultze, W. Beiträge zur Kenntnis des Harzöles. (Liebigs
Ann. Chem., 1908, p. 129.)

Harzessenz und Harzöle sind bei den Destillationsprodukten des Kolopho-
niums zu unterscheiden.

Raffiniertes Harzöl ist nochmals destilliert, Siedepunkt 300 — 350°. Auch
oft von alkalilöslichen Produkten befreit.

Der Verf. konnte feststellen, dass.es sich handelt um ein sehr kom-
pliziertes Gemisch ungesättigter und gesättigter Kohlenwasserstoffe.

776. Schürmanu, W. Übersicht über die in der Schweiz ge-
sammelten Drogen. (Schweiz. Wochenschr. f. Chem. u. Pharm., XLVI,
1908, p. 201.)

777. Schwabe jun., W. Über das Pseudotheobromin. (Arch. d.
Pharm., 245, 1907, p. 398.)

778. Schwabe jun., W. Über einige Alkylderivate des Theo-
phyllins. (Arch. d. Pharm., 245, 1907, p. 312.)

779. Schwalbe, C. Über sogenanntes Sonnenharz. (Wochenbl.
Papierfabr., 1907. p. 1303.)

Man nennt den öfters im Kolophonium zu beobachtenden trüben, gelb-
weissen kristallinischen Teil „Sonnenharz".

Verf. fand, dass dieses einen grösseren in Petroläther unlöslichen Anteil
enthält und einen höheren Schmelzpunkt besitzt als das normale Kolophonium.

Die Säurezahl ist bei beiden die gleiche.

Der obengenannte Anteil ist wohl als Ursache anzusprechen der schlechten
Leimfertigkeit und der trüb-gelblichen Färbung derjenigen Papiere, die mit
trübem Harz geleimt sind.

780. Schwalbe, CG. Über das Reduktionsvermögen einiger
Zellulosearten. (Berl. Ber., XL, 1907, p. 1347.)

781. Scovilla, W. L. Das Öl von Hamamelis virginiana. (Chem. Ztg.,
XXXI, 1907, p. 1136.)

Das aus Hamamelis virginiana gewonnene Öl besteht zum grössten Teile
aus Terpenen, 7% Alkohol und einer geringen Menge Ester, deren Natur
nicht untersucht wurde.

72% der Fette sind ein körniges Wachs, das bei 37° schmilzt und bei
60° einen Brechungsexponenten von 1,4450 hat. Die Verseifungszahl ist 54,3,
die Jodzahl 73,6.

782. Scurti, F. und Parrozani, J. Über das lipolytische Vermögen
der Croton-Tiglium-S amen. (Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 229.)

Es gelang, die Anwesenheit eines Enzymes nachzuweisen, das die
Glyceride hydrolytisch in freie Fettsäure und in Glycerin zerlegt.

783. Scurti, F. und Perciabosco, F. Über die Gegenwart von
Allantoin in den Tabaksamen und über die Abwesenheit von

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 29. 5. 11.1 ^

g42 Berichte über die pharrnakognostisehe Literatur aller Länder. [228

Solanin in denselben. (Gaz. chim. ital., XXXVI, 2, 1906, p. 626 — 632,
Chem. Centralbl., I, 1907, p. 282.)

Nach früheren Untersuchungen von Albo findet sich in den Samen des
Tabaks kein Nikotin, wohl aber Solanin; etwas später wurde dann aber die
Gegenwart des letzteren von Starke bestritten. Verff. konnten nun auf Grund
der Untersuchung einer grösseren Menge von Tabaksamen feststellen, dass in
denselben kein Alkaloid und auch kein Solanin enthalten ist, dafür aber neben
einem cholesterinartigen höheren Alkohol Allantoin vorkommt. Es ist wahr-
scheinlich, dass dieses Ureid physiologisch eine ähnliche Bedeutung und
Wirkung besitzt wie das Asparagin. K. Krause.

784. Scai'ti, F. und Pereiabosco, F. Myrtensamenöl. (Chem. Rev.
Fett- u. Harzind., 1908, p. 282.)

785. Scurti, F. und Parrozzani, A. Über die beim Keimen der
Samen auftretenden chemischen Umwandlungen. (Chem. Ztg.,
XXXII, 1908, p. 65.)

786. Semmler, F. W. und Bartelt, K. Myrtenol. (Berl. Ber., XL, 1907,
p. 1363.)

Das ätherische Öl des Myrtus communis hat einen angenehmen Geruch.
Es enthält in den hochsiedenden Esterteilen eines primären Alkohols Ci0H16O,
das Myrtenol.

Von diesem Myrtenol rührt der angenehme Geruch her. Airs diesem
Produkt lässt sich ein stark rechtsdrehendes Pinen C10H]t5 erhalten, das zum
ersten Male künstlich dargestellt wurde.

Bezüglich der genaueren Einzelheiten sei auf das Original verwiesen.

787. Semmler, F. W. und Bartelt, K. Sandelholzöl. (Beil. Ber., XL,
1907, p. 1124.)

Sandelholz besteht zu mehr als 90 °/0 aus einer Mischung des bicycli-
schen, einfach ungesättigten /9-Santols und des tricyclischen «-Santols. Es
fanden sich :

Santen C9H14, ein Keton C]0H16O,

Teresantalsäure C10H]4O.:, Sesquiterpene C]5H.i4.
Die Verff. haben versucht, die Konstitution wie folgt zu veran-
schaulichen.

CHo
CH

CCEJ3

788. Semmler, F. W. und Bode, K. Über Santalol. (Berl. Ber., 1907,
p. H24.)

789. Senft, E. Über die Myelinformen bildende Substanz in
Ginkgo-Samen, sowie über die sogenannten Myelinformen über-
haupt. (Pharm. Post, XL, 1907, p. 265, 288, 304 u. 319.)

789a. Senft, E. Über das Vorkommen von ,,Physcion" (Hesse)
= „Parietin" (Thomson, Zopf) in den Flechten und über den
mikrochemischen Nachweis desselben. (Wiesner-Festschrift, 1908, Wien
[C. Konegen], p. 176.)

Physcion (Parietin) lässt sich auf mikrochemischem Wege in gepulverten
Flechten oder in Schnitten folgendermassen nachweisen:

229] Berichte über die pharuiakognostiscke Literatur aller Länder. 643

1. Kalilauge gibt Rotfärbung; der Niederschlag bleibt amorph.

2. Bei Zusatz von konzentrierter Schwefelsäure löst sich Physcion mit
schon purpurroter Farbe. Bei reichlichem Gehalte an Physcion bilden
sich insbesondere am Rande des Gläschens gerade, etwa 4 — 14 « lange
und kaum 0,5 u breite, an beiden Enden zugespitzte, farblose Nadeln,
welche zu Rosetten vereinigt sind.

3. Aus heisser Salpetersäure kristallisiert Physcion in geraden, gelben, zu
Rosetten vereinigten Kristallen aus.

4. Gewinnt man aus dem Material auf dem Wege der Sublimation Physcion-
kriställchen, so kann man an diesen eine Reihe von Reaktionen aus-
führen ; zehnprozentige Kalilauge gibt mit reinem Physcion eine kirsch-
rote Lösung unter gleichzeitiger Bildung eines flockigen kristallinischen
Niederschlags.

5. Aus heissem Öl, das man auf Flechtenpulver oder Schnitte einwirken
lässt, scheiden sich — reichlichen Physciongehalt des Materials voraus-
gesetzt — garben- und büschelähnlich gruppierte Nadeln und dünne
Blättchen beim Erkalten und längerem Stehen ab.

6. Kalk- und Barytwasser wurde schon von Fr. Schwarz zum Nachweis
des Physcion empfohlen.

Physcion ist z. B. in Theloschistes parietinus (Xantkoria parietina), Th.
lychneus (X- lychnea), Calloplaca elegans usw. nachweisbar.

790. Sharp, G. Wie lange behält Extractum Seealis cornuti
fluidum seine pharmakologische Wirkung- (Pharm. Journ., XXVI,
1908, p. 82.)

Bei richtiger Aufbewahrung behält das Extractum seine Wirkung bis
zu einer Dauer von 12 Monaten.

Aufbewahrung länger als ein Jahr hält der Verf. für gewagt.

791. Scharp, G. Ein kurzes Kapitel aus der Geschichte der
Digitalis. (Pharm. Journ., LXXX, 1908, p. 667.)

792. Siegfeld, M. Der Einfluss von Rübenblättern und Rüben-
köpfen auf die Zusammensetzung des Butterfettes. (Zeitschr. f.
Unters, d. Nahrungs- u. Genussin., XIII, 1907, p. 491 )

793. Sievers, A. Ätherisches Öl von Achillea millefolium L. (Pharm.
Rev., XXV, 1907, p. 215.)

794. Singer, Leopold. Zur Vereinheitlichung der Untersuchungs-
methoden von Mineralölen. (Chem. Rev. Fett- u. Harzindustr., XV,
1908, p. lff.)

795. Smith, W. B. Die Anwendung der Renardschen Probe zum
Nachweis von Erdnussöl bei Gegenwart fester Fette. (Journ. Am.
Chem. Soc, XXIX, 1907, p. 566.)

795a. Soave, Marco. Die blausäurebildenden Glukoside der
Pflanzen und der Verbrauch des Reservestickstoffes. (Annal. Bot.,
V. 1906, p. 69—75.)

Treub hatte in seiner Arbeit über Phaseolus lunatus die vom Verf.
an bitteren und süssen Mandeln ausgeführten Untersuchungen erwähnt, die
diesen Forscher zu dem Schlüsse führten, dass die Blausäure eine der Um-
wandlungs- und Wanderungsformen des Reservestickstoffs der bitteren Mandeln
darstellen, und dass auch in den amygdalinfreien süssen Mandeln beim Beginn
der Keimung Amygdalin und mit ihm Blausäure entsteht. Eine Bestätigung
für diese Anschauung ergaben die Versuche, die Verf. neuerdings mit Samen

41*

644 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [230

von Mespihts japonica Thbg. ausgeführt hat; nach alten Angaben Ballards
findet sich in diesen Samen Amygdalin. Verf. stellte zunächst fest, dass sie
Blausäure in freiem Zustande oder in einer labilen Form nur in geringen
Spuren enthalten. Die nach dem Rjeldahlschen Verfahren ausgeführte Stick-
stoffbestimmung ergab, dass die Frischsubstanz der Samen durchschnittlich
0,508 °/0 Stickstoff (also eine verhältnismässig geringe Menge) enthält. Der
Amygdalinstickstoff macht 0.035 °/0 des Frischgewichtes, also 6,89 °/0 des
Gesamtstickstoffs aus. Mit der Keimung der Samen erscheint Blausäure in
freiem Zustande oder in einer äusserst labilen Form. Der Stickstoff dieser
Blausäure beträgt 9, in einer gewissen Entwickelungsperiode 1,93 des Gesamt-
stickstoffs. Zu gleicher Zeit steigt der Amygdalinstickstoff auf 7,22 °/0 des
Gesamtstickstoffes.

795b. Solereder, H. Bemerkenswerte anatomische Vorkomm-
nisse einiger Drogen. (Arch. Pharm., 1907, p. 48.)

Verf. hat genauen Untersuchungen unterzogen die inneren haarartigen
Secretdrüsen des Patschuliblattes, ferner die Inkrustation der Korkzellwände
mit Kalkoxalatkristallen bei Cortex Cascarillae und die Deckhaare der Piment-
früchte und der Myrtaceen.

796. Soltsien, P. Zum Nachweis des Baumwollsamenöls. (Seifen-
siederztg., XXXII, p. 702.)

Die sogenannte Halphensche Reaktion tritt nach dem Verf. bei allen
Malvaceenölen ein, doch muss stets Schwefelkohlenstoff zugegen sein, da
Schwefel allein die Reaktion nicht bewirkt. Bei Hinzutun von 3 °/0 weissem
Baumwollsamenöl zu Schweineschmalz ist die Halphensche Reaktion nicht zu
beobachten. Erst bei Zusatz von 7,5 °/0 weissen Baumwollsamenöles zu
.Schweineschmalzes tritt nach ca. einer halben Stunde geringe Orangefärbung
ein, die sich nicht mehr verstärkt. Starke Halphensche Reaktion setzt erst
bei Zusatz von 10% gelbem Cottonöl ein und zwar schon nach einer Viertel-
stunde, die sich allmählich noch verstärkt. Stärker prozentische Dosierungen
von Cottonöl geben keine intensivere Färbungen.

797. Soltsien, P. Zur Reaktion von Benzoe und Gewürzen auf
Zinnchlorür bei Prüfungen aufSesamöl. (Chem. Revue, XIV, 1907, p. 242.)

Schon früher war festgestellt worden, dass Benzoe, Vanille, Nelken und
Zimtauszüge mit Furfurolsalzsäure und Zinnchlorür dieselbe Reaktion geben
wie Sesamöl. Verf. konnte als Unterschied aber ermitteln, dass die Zinn-
chlorürreaktionen der Gewürze schon in der Kälte eintreten, während sie
beim Sesamöl erst in einer Temperatur von 70 — 80° beobachtet werden.
Anderseits weichen sie von den Färbungen des Zinnchlorürs mit gewissen
Teerfarbstoffen und Curcuma durch die Beständigkeit in der Wärme ab. Um
Sesamöl bei Gegenwart von Benzoe nachweisen zu können, muss man vorher
mit Salzsäure ausschütteln. K. Krause.

798. Sonlets. Chimaphila umbdlata als Mittel gegen Diabetes.
(L'Am. pharm., II, 1908, p. 34.)

Der Verf. hat gefunden, dass das Fluidextrakt von der Ericacee Chima-
phila umbdlata in täglichen Dosen von zwei Drachmen sehr gut gegen Diabetes
mellitus wirke.

Es muss bei strengster Diät einen Monat hindurch verabfolgt werden,
dann muss eine Arsenkur folgen, dann soll der Patient zu seiner altgewohnten
Lebensweise zurückkehren.

Findet sich wieder Zucker, so muss nochmals begonnen werden.

2311 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 645

799. Spaeth, Eduard. Der Nachweis von Zucker in Macis und
Zimt. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs- u. Genussmittel, XI, p. 447 — 450.)

800. Spaeth, E. Zur Prüfung und Beurteilung des gemahlenen
weissen Pfeffers. (Zeitschr. f. Unters, d. Nahrungs- u. Genussmittel, XV,
1908, p. 472-484.)

Verf. fasst die Ergebnisse seiner Untersuchungen in folgenden Sätzen
zusammen :

1. Die für weissen Pfeffer sowohl in den „Vereinbarungen" wie in den
neuen Vorschlägen des Ausschusses der Freien Vereinigung aufgestellten
Grenzzahlen an Mineralbestandteilen wie an Rohfaser, und zwar 4 °/0
Mineralbestandteile und 7,5 °/0 Rohfaser, sind voll und ganz berechtigt
und zutreffend. Die Ansicht, dass das Perisperm des unreifen schwarzen
Pfeffers einen höheren Gehalt an Rohfaser aufweisen müsste, wie das
des reifen weissen Pfefferkornes ist eine irrige; sie ist durch die Er-
gebnisse der vorgenommenen Versuche widerlegt.

2. Zum Nachweis von Schalenzusätzen ist vor anderen Methoden als
beste, einfachste und sicherste Probe die Bestimmung des Rohfaser-
gehaltes in der gebräuchlichen Ausführung zu empfehlen.

801. Spaeth, E. Die chemische und mikroskopische Unter-
suchung der Gewürze und deren Beurteilung. (Pharm. Centralh.,
XLIX, 1908, p. 518.)

Mit Hinweisen auf Literaturangaben gibt der Verf. eine mikroskopische
Schilderung der Gewürze, sowie deren Fälschungsmittel und den Nach-
weis dieser.

Bezüglich der Einzelheiten muss auf das Original verwiesen werden,
das auch im Buchhandel zu haben ist.

802. Speiice, D. Beitrag zur Kenntnis der Albane von Ficus
Vogelii. fBerl. Ber., XL, 1907, p. 999.)

Ans dem Harze des Kautschuks von Ficus Yogelii gelang es, zwei
kristallinische Körper zu isolieren, deren einer bei 201 — 205° schmilzt und in
Form warzenähnlicher Nadeln auskristallisiert. Diese Nadeln sind leicht lös-
lich in Benzol, Chloroform und Äther, schwer löslich in kaltem Alkohol und
Aceton.

Der andere Körper schmilzt bei 154°, kristallisiert in Spiessen und hat
das gleiche Löslichkeitsvermögen.

Der Verf. schlägt die Namen «-Alban und ^-Alban vor. Als Formel ist
anzusgrechen C32H52O2.

803. Spence, D. Über Protein im Parakautschuk. (Gummizeitung,
1908, p. 602.)

Eine an Quantität veränderliche Rückstandsmasse bleibt beim Lösen
von Parakautschuk stets übrig. Dieser Rückstand erscheint als voluminöse
gallertartige Masse.

Die gefundenen Proteine sollen dem Verf. zufolge eine andere chemische
Zusammensetzung besitzen, als die gewöhnlichen Proteine. Sie haben eine
komplexere Natur und gleichen den Glvkoproteiden.

Bezüglich der sehr interessanten Untersuchungsmethoden sei auf das
Original verwiesen.

804. Spence, D. Die Gegenwart von Oxydasen in Kautschuk
und eine Theorie über die Funktion im Latex. (Gummiztg, 1908,
p. 1121.)

646 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Länder. [232

805. Spenee, D. Analyse des Latex von Ficus Vogelii Miq. und
den daraus gewonnenen Memleku-Gummi. (Quart. Journ. Inst. Com.
Res. Liverpool Univ., III, 1908. 1 ff.)

806. Spenee, D. Die sogenannte Karite-Gutta von Sierra-Leone.
Die Resultate fallen fast zusammen mit denen von Fendler für Butyro-

spermum Parkii gefundenen Tatsachen.

Die Analyse gab folgenden Befund:
18,4% Gutta,
75,7 °/0 Harz,
1% Asche.

5,6°/o Unlösliches (darin 11.13% X = 70% Pflanzeneivveiss).
Die zeigen dasselbe Verhalten wie normale Guttaharze. Sie sind amorph
und hart und verseifen sich gut mit alkoholischer Lauge.

Die Harzsäure vom Schmelzpunkt 131 — 133° Hess aus Wasser Um-
kristallisieren.

Die aus Chloroformlösung mit Alkohol gefällte Guttasubstanz hatte mehr
Ähnlichkeit mit Kautschuk als mit Gutta.

Das Produkt scheint mit Karite-Gutta identisch zu sein.

807. Stadelmann. Ouabain und Lignum Acocantherae. (Korre-
spondenzbl. Schweiz. Ärzte, 1907 u. 1908.)

808. Stadler, P. Über das Rhizom von Panax repens Max. (Ber. D.
Pharm. Ztg., XVII, 1907, p. 450.)

809. Stapf, 0. The Gums Ammoniac of Marocco and the Cyre-
naica. (Kew Bull.. X, 1907, p. 375ff.)

Die Arbeit gliedert sich in folgende Kapitel:
I. Recent History (fecom the beginning of the 19*li Century) of the Gum
Ammoniac of Marocco.

IL Early history of the gum ammoniac of Marocco.

III. The Ammoniakon of Dioscorides.

IV. Origin of the vernocular Names.
V. Export.

VI. Chemistry.
VII. Botany. "

Aus dem reichen Inhalt sei nur das folgende herausgegriffen :

In Kew kultivierte Exemplare einer aus Marokko als Stammpflanze des
Ammoniakums eingesandten Pflanzen erwiesen sich als Ferula communis var.
brevifolia Mariz.

Die lange im Dunkeln gewesene Frage, welches ist die Stammpflanze
des Ammoniakums scheint damit erledigt zu sein.

Wir können jetzt also Vergleiche anstellen zwischen der marokkanischen
Droge und der des Dioscorides.

Das durch Verwundungen der Pflanzen austretende Wachs dient in
Marokko zu medizinischen Zwecken. Es wird auch als Räuchermittel benutzt.

Der Eingeborenenname ist Faschook-Feschuk-Fasook usw.

Exportiert wurde es nach Ägypten und Arabien. In diesen Ländern
kennt man es als Kalch und Oschak.

Verf. weist die Annahme zurück, wonach alles Oschak, das in Ägypten
feilgeboten wurde und oftmals von hier bis nach Europa kam. aus Marokko
stamme.

233]

Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder.

647

Dioscorides erwähnt den afrikanischen Ammoniakgummi als Ester.
Dieses Gummiprodukt wurde aber bald vom persischen Ammoniakgummi ver-
drängt, dessen Stamm pflanze Dorema ammoniacum ist. Aus diesem Grunde
haben auch die arabischen Gelehrten, die den Dioscorides auslegten und über-
setzten und die ja teilweise Perser waren, fälschlicherweise den persischen
Eingeborenennamen „Uchaq" auf den afrikanischen Ammoniakgummi über-
tragen und auch auf das Produkt des Dioscorides.

Bei genauem Studium des Dioscoridischen Textes scheint es, dass die
Pflanze, die diesem griechischen Forscher vorgelegen hat, die in der Cyrenaica
vorkommende Ferula marmarica Aschers, et Taub, gewesen sein muss.

Es scheint ganz sicher, dass ihr Ammoniakgummi bis zur Zeit der Er-
oberung der Cyrenaica durch die Araber aus den cyrenaischen Häfen auch
von Alexandria gekommen ist.

Später gibt der Verf. Libyen als Heimatsland an.

Das persische Produkt der Dorema ammoniacum hat infolge seiner
feineren und reineren Beschaffenheit das marokkanische Produkt der Ferula
communis ganz aus dem Handel gedrängt.

Der bedeutendste Hafen für den Export des marokkanischen Ammoniak-
gummis ist der Hafen von Mazagan. Von dort aus gelangt es über Gibraltar
nach Alexandrien.

Eine geringe Menge gelangt auch nach Mogador.

Über die Zusammensetzung des cyrenaischen Ammoniakgummis liegen
chemische Untersuchungen nicht vor.

Das marokkanische Produkt ist dagegen öfters Gegenstand von chemischen
Untersuchungen geworden. Trotzdem sind seine einzelnen Bestandteile noch
nicht mit völliger Sicherheit festgestellt. Die Droge zeigt einen streng
bitteren Geschmack, ist aber nicht so scharf wie die persische.

Der Verf. sieht als Stammpflanze des marokkanischen Ammoniakgummis
die Ferula communis var. brevifolia Mariz an.

Verschieden von dieser ist diejenige Pflanze, die die cyrenaische Droge
liefert. Sie muss bezeichnet werden als Ferula cyrenaica Aschers, et Taub.

810. Stazyzowski. Ein einfaches Verfahren zur raschen Er-
mittelung von Arten in Lebensmitteln und Tierobjekten. (Pharm.
Post, 1907.)

811. Sterling, Ch. M. Zur Histologie von Ryoscyamus muticus. (Americ.
Journ. Pharm.. LXXX, 1908, p. 361.)

Herba Hyoscyami stammen aus dem Kraute, das bei der beginnenden
Fruchtreife gesammelt wird.

Der Verf. gibt anschauliche Abbildungen, die seinen Text über den
histologischen Aufbau der Droge sehr erleichtern bezüglich einer Drogenprobe
aus Ägypten. Folgende Merkmale unterscheiden Ryoscyamus muticus und Hyos-
cyamus niger:

Merkmal

H. muticus

H- niger

Hellgelblich.

Grünlich.

Stengel- und Kelchreste .

In sehr grosser Anzahl.

Viel geringer.

An Stengeln, bei den
Blattseiten, Kelche.

An Stengeln u. Kelchen.

648 Berichte über die pharuiakognostisohe Literatur aller Länder. [234

Ausserdem sind noch Merkmale angegeben, derentwegen aber auf das
Original verwiesen werden muss.

812. Stevens, A. B. Giftiger Sumach. (Chem. Ztg., XXXI, 1907,
p. 1136.)

Die Verf. untersuchten Rhus Vernix L. Ihrer Meinung nach müsste der
aus dieser Species gewonnene Saft ebenso zu verwenden sein, wie der japa-
nische Lack.

Hinsichtlich der Giftwirkung stimmen beide im chemischen Sinne völlig
überein.

813. Stevens, A. B. u. Warren, L. E. Gifts u mach. (Americ. Journ. Pharm.,
LXXIX, 1907, p. 499.)

Der Saft von Rhus venenata besteht aus Gummienzym, ferner benzin-
löslichem und benzinunlöslichem Harze.

814. Stevens, A. B. Die Früchte von Rhus radicans. (Americ. Journ.
Pharm., LXXX, 1908, p. 93.)

Der Verf. fand bei seinen genauen Untersuchungen, dass als giftig nur
die unreifen Früchte von *Rhus radicans anzusehen sind. In den reifen Früchten
war es unmöglich, irgendwelche Giftstoffe nachzuweisen.

815. Stich, C. Zum Anbau von Medizinalpflanzen. (Apoth.-Ztg.,
XXII, 1907, p. 956.)

816. Stiles, M. H. Mikroskopische Untersuchung sogenannter
falscher Belladonnablätter. (Pharm. Journ., LXXX, 1908, p. 189.)

Folgende Merkmale fand der Autor für die falsche Droge:

I. Mittelrippe: Auf dem Querschnitt biconvex, Holzteil umschlossen.
Das Phloem enthält dichte Massen von Oalciumoxalatraphiden.

IL Epidermis: Cuticula stark gestreift. Stomata nur auf der Blatt-
unterseite, von verschiedener Grösse. Zellumrisse nie gewellt.

III. Haare: Einzellig, gekrümmt, dickwandig.

Äussere Anzeichen zur Unterscheidung der echten und falschen Droge
fehlen fast völlig.

Die Stammpflanze der falschen Art war nicht zu ermitteln.

817. Stockberger, W. W. Über Radix Spigeliae Marilandicae L. (Pink-
root). (Pharm. Rev., XXV, 1907, pp. 2, 33, 66, 97.)

818. Stoklasa, J. Glykolytische Enzyme im Pflanzenorganismus.
(Zeitschr. physiol. Chem., L, 1907, p. 303.)

In den Pflanzen sind Atmungsenzyme vorhanden, die eine Milchsäure-
und alkoholische Gärung hervorrufen.

Diese Enzyme ähneln sehr der Zymase und Lactacidase. Verf. unter-
scheidet zweierlei Arten von Atmungsenzymen, in denen die im Protoplasma
vor sich gehenden Prozesse bewirkt werden :

I. Durch die Enzymezymase. — Milchsäurebildung.

IL Durch die Lactacidase. — ■ Alkohol- und Kohlendioxydbildung.

Bei Sauerstoffanwesenheit vollenden sich die sekundären Prozesse, die
sich durch eine weitere Degradation der Abbauprodukte kennzeichnen.

Essigsäure bildet sich unter Einwirkung neuer Enzyme, jedenfalls auch
Methan, Ameisensäure und endlich Wasserstoff.

Die entstandenen Spaltungsprodukte, soweit sie noch oxydierbar sind,
werden durch den hinzutretenden Sauerstoff der Luft zu Kohlendioxyd und
Wasser verbrannt.

2351 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. (349

818a. Stoklasa, J. und Ernest, A. Beiträge zur Lösung der Frage
der chemischen Natur des Wurzelsecr etes. (Jahrb. f. wissensch. Bot.,
46, p. 55—102.)

Zwei Fehlerquellen sind den experimentellen Untersuchungen über das
obige Thema in erster Linie vorgehalten worden, und nach dem subjektiven
Ermessen wurde bald die eine, bald die andere betont. Einmal wurde hin-
gewiesen auf den Einfluss von Substanzen, die aus abgestorbenen Wurzel-
haaren, abgestossenen Haubenzellen, oder sonstigen verletzten oder toten
Wurzelteilen stammen; anderseits wurde die Frage erörtert: sind die Methoden
der analytischen Chemie genügend feine, um die eventuell sehr minimalen
Stoflmengen nachzuweisen. Immerhin hat sich mit der Zeit mit Sicherheit
ergeben, dass eine Ausscheidung freier Mineralsäuren nicht stattfindet, aber
weiterhin legt z. B. Czapek neben der Kohlensäure, der er die erste Rolle bei
der Aufschliessung der Bodenmineralien durch die Wurzel zuschreibt, saueren
Salzen (vor allem Monokaliumphosphat) eine gewisse Bedeutung bei, wogegen
neuerdings Kunze — wenigstens bei einer Anzahl von Pflanzen — mehr für
organische Säuren plädiert. Bei dieser Sachlage und der grossen biologischen
Bedeutung des Problemes muss jede neue Untersuchung willkommen sein.

Verff. machen auf die Wichtigkeit einer hinreichenden Versorgung mit
Sauerstoff aufmerksam. Sie untersuchten die Ausscheidungen von im feuchten
Räume kultivierten Wurzeln, und zwar in Parallelversuchen, einmal bei reich-
licher Zufuhr von freiem Sauerstoff (atmosphärische Luft) und dann bei un-
genügender Aeration (94°/0 N2, 6% 02), und fanden nur im letzteren Falle
Milchsäure, Ameisensäure, Essigsäure oder Oxalsäure (Beta vulgaris) einzeln
oder zusammen im Kultur- bzw. Waschwasser. Bei genügender Durchlüftung
waren dagegen niemals nachweisbai-e Mengen dieser Säuren vorhanden, woraus
die Verff. schliessen, dass die oben genannten Säuren nicht als normale Aus-
scheidungen der Wurzel betrachtet werden dürfen, sondern lediglich die Pro-
dukte einer bei mangelhaftem Sauerstoffzutritt verlaufenden Atmung darstellen.
Ob im gedüngten Ackerboden immer derartige Sauerstoffmengen zur Verfügung
stehen, wäre dann weiterhin noch zu untersuchen. Die Angaben Czapeks be-
treffend Secretion von Monokaliumphosphat konnte nicht bestätigt werden,
auch die von dem gleichen Forscher gefundene Abgabe von Oxalat durch
Hyazinthenwurzeln, die von Kunze bestritten wurde, fand nur in einer Ho-
Atmo Sphäre statt.

Wenn nun in der Tat die Kohlensäure allein die Aufschliessung der
Bodenmineralien besorgt, so gewinnen vergleichende Studien über die Atmungs-
intensität des Wurzelsystems verschiedener Pflanzen erneutes Interesse. Die
Verfasser führten eine derartige Versuchsserie mit unseren vier Hauptgetreide-
arten durch und fanden, dass in vier differenten Entwickelungsstadien — die
allerdings nicht weit auseinanderlagen, 68, 78, 80 und 84 Tage — pro 1 g
Trockensubstanz berechnet, der Hafer die grösste Menge COo produziert, und
dass gegen ihn Roggen, Weizen und Gerste in der angeführten Reihenfolge
zurückstehen; in derselben Ordnung rangieren auch — nach Angaben des
letzten Teiles der Arbeit — die obigen Gramineen im Hinblick auf ihr Ver-
mögen, dem Granit oder Basalt Phosphorsäure zu entziehen. Zuvor wurde
von den Verff. der Nachweis geführt, dass kohlensäurehaltiges Wasser für sich
allein aus diesen Gesteinen geringe Mengen von Phosphorsäure und Kali zu
lösen vermag und damit eine von Prianischnikow gestellte Forderung erfüllt.
Von Interesse dürfte in diesem Zusammenhang die Beobachtung Kunzes sein,

650 Berichte über die pbarinakognostische Literatur aller Länder. [236

dass die nach den Verff. wirksamsten Arten (Hafer und Roggen) zu den
Pflanzen gehören, deren Wurzeln Lakmuspapier ziegelrot färben, wogegen die
von Weizen und Gerste nur den weinroten Kohlensäureton hervorrufen.

Gelingt den Verff. der Nachweis, dass dieser Parallelismus auch anders-
wo anzutreffen ist und dass die gebildete Kohlensäure zur Erklärung der ge-
fundenen Korrosions- und anderer Erscheinungen ausreicht, so dürfte damit
die Frage nach der Natur der Wurzelsecrete gelöst sein, andernfalls bliebe der
naheliegende Einwand, dass eben andere als die gesuchten Säuren wirksam
gewesen seien. Dazu müssen vor allem die von den Verfassern in Aussicht
gestellten Versuche mit Leguminosen abgewartet werden, denn nach den Mit-
teilungen von Prianischnikow ist deren Aufschliessungsvermögen für Phos-
phorit — wie sich aus dem Erntegewicht erschliessen liess — ein viel beträcht-
licheres als das der angeführten Gramineen. Unberührt bliebe dadurch aber
der Hinweis Kunzes auf die Bedeutung von Pilzen für die Bodenzerlegung.

819. Stoklasa, J., P.nllik. V. und Jnst, J. Ist der Phosphor am Auf-
bau des Chlorophylls beteiligt? (Ber. D. Bot. Ges., XXVIa, 1908, p. 69.)

820. Stoepel, P. Frudus Vanülae. (Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 1064.)
Der Verf. schlägt vor, für das Arzneibuch die vorgeschriebene Länge der

Schoten von 20—25 cm auf 17 — 20 cm herabzumindern.

821. Stoepel, P. Über Aloe. (Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 793.)

Verf. gibt Abänderungen des Aloeartikels des Arzneiartikels des Arznei-
buches an, bezüglich deren auf das Original verwiesen werden mag.

822. Stoepel, P. Tragacantha. (Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 1064.)
Der Verf. meint, für Tragacantha sei sowohl Geruch- wie Geschmack-
losigkeit zu verlangen. Es befinden sich im Handel sehr viele Sorten mit
stark bitterem Geschmack.

823. Stoepel, P. Über zwei neue Reaktionen für Elemi. (Apoth.-
Ztg, XXIII, 1908. p. 440.)

Elemi schwitzt nach den LTntersuchungen des Verf. im Wasserbade zu
einer klaren, gelblichgrünen Flüssigkeit. Diese wird durch verdünnte Schwefel-
säure (1 : 4) eosinrot gefärbt.

Verfälschungen mit Terpentin stellte der Verf. stets sehr leicht fest
durch Auflösen in absolutem Alkohol (1 : 10).

Die alkoholische Elemilösung reagiert neutral, die Terpentinlösung da-
gegen färbt blaues Lackmuspapier. Ist reines Elemi gelöst, so entsteht bei
Zusatz von Wasser eine rein weisse, milchige Trübung (Emulsion). Bei Ter-
pentinverfälschungen aber werden harzige, bräunlichgelbe Flocken ab-
geschieden.

824. Stoepel, P. Zur Erkennung echter Macis. (Apoth.-Ztg.. XXIII,
1908, p. 34.)

824a. Stscliei'batscheff, D. Beiträge zur Ent wickelungsgeschichfce
einiger offizineller Drogen. (Arch. f. Pharmaz., 1907, p. 48.)

Der Verf. hat eingehend die Entwickelungsgeschichte der Früchte, Samen
und Wurzeln von Atropa belladonna, Glycyrrhiza c/labra, Althaea officinalis und
Iris germanica einer Untersuchung unterzogen.

824b. Strakoscll, S. Ein Beitrag zur Kenntnis des Kohlehydrat-
stoffwechsels von Beta vulgaris (Zuckerrübe). (Sitzungsber. d. Wien.
Akad. d. Wiss., 1907, Abt. I, Bd. 116, p. 855-869.)

Brown und Morris, Lindet, Girard und Pagnoul haben gefunden, dass in
den Blättern der Zuckerrübe als direktes Assimilationsprodukt Rohrzucker

237] Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. 651

gebildet wird. Aus dem Rohrzucker sollen dann durch Hydrolyse Mono-
saccharide entstehen, die nach der Wurzel der Pflanze hinabwandern. Eine
Wanderung des ungespaltenen Rohrzuckers dagegen findet nach der Annahme
der meisten Forscher nicht statt.

Verf. hat die Frage des Kohlehydratstoffwechsels in deu Blättern der
Zuckerrübe studiert, indem er zunächst die Veränderungen verfolgte, denen
die Assimilate des Blattes während dessen Verdunkelung ausgesetzt sind:
dann wandte er auch den Vorgängen in den von neuem belichteten Blättern
seine Aufmerksamkeit zu. Die (vollständig gesunden) Versuchspflanzen wurden
72 Stunden lang im Dunkeln gehalten. Alle sechs Stunden wurde ein Blatt
von ihnen abgeschnitten und untersucht. Auf diese Weise ergab sich eine
Versuchsreihe mit zwölf Blättern, in der zwölf verschiedene Phasen der Aus-
wanderung der Assimilate zum Ausdruck kamen. Andere Pflanzen wurden
nach 72 stündiger Verdunkelung wieder dem Tageslicht ausgesetzt. An den
von Stunde zu Stunde geschnittenen Blättern Hess sich dann die unter dem
Einfluss des Lichtes fortschreitende Bildung der Assimilate studieren. Die
Bestimmung der Kohlehydrate erfolgte mikrochemisch und makrochemisch.
Um die Assimilate nach Möglichkeit zu lokalisieren, was bei den bisherigen
Arbeiten nicht geschehen war, wurden die Nerven der Blätter bis in ihre
feinsten Verästelungen von dem Parenchym getrennt.

Die strenge Lokalisierung führte zu dem unerwarteten Ergebnis, dass
sich im Parenchym des Zuckerrübenblattes nur eine einzige Zuckerart vor-
findet: Dextrose. Lävulose und Rohrzucker treten erst in den Seitennerven
auf. Sie finden sich dann weiter in der Mittelrippe und im Blattstiel. Zu-
weilen lässt sich im Blattstiel auch Maltose beobachten. Doch sind die Mengen
so gering, dass diese Zuckerart kaum als normale Zwischenphase der Kohle-
hydratproduktion angesehen werden kann.

Die Auswanderung der Assimilate geht in den verdunkelten Rüben-
blättern äusserst langsam vor sich. Selbst nach 72 stündiger Verdunkelung war
von einer Verminderung der Monosaccharide nichts zu erkennen. Dagegen
wandert der Rohrzucker allmählich aus den Seitennerven in die Mittelrippe
und den Blattstiel. Nach 18stündiger Verdunkelung hat der Rohrzuckergehalt
der Blattfläche stark abgenommen, jener des Blattstieles dagegen eine wesent-
liche Zunahme erfahren. Auf eine Stauung des Rohrzuckers im Blattstiel
weist auch das Vorhandensein transitorischer Stärke in dem Parenchym hin.
das die Gefässbündel des Blattstieles umgibt. Nach 48 Stunden hat sich der
Rohrzucker im Blattstiel stark vermindert.

Das nach 72 stündiger Verdunkelung belichtete Blatt zeigt zunächst eine
Verminderung der Monosaccharide und eine Vermehrung des Rohrzuckers.
Nach etwa zwei Stunden hat der Dextrosegehalt in dem Parenchym wieder
zugenommen. Bei längerer Belichtung lässt sich jedoch weder hier, noch in
den Nerven oder im Blattstiel eine weitere Vermehrung der Monosaccharide
konstatieren, während der Gehalt an Rohrzucker stetig zunimmt.

Da im Parenchym des Blattes nur Dextrose vorkommt, muss diese als
die primäre Zuckerart bezeichnet werden. Von der in die Nerven einwandern-
den Dextrose wird „möglicherweise'" ein Teil in Lävulose übergeführt. Den
Rohrzucker denkt sich Verf. aus Dextrose und Lävulose (unter Austritt von
Wasser) entstanden. Für diese Annahme spricht 1. die Tatsache, dass der
Rohrzucker später als Dextrose und Lävulose entsteht: 2. die Beobachtung
(vgl. oben !'), dass ein auf 72 Stunden verdunkeltes Blatt, das wieder dem Licht

652 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. [238

ausgesetzt wird, während der ersten zwei Stunden den Rohrzucker auf Kosten
der vorhandenen Monosaccharide aufbaut; 3. die weitere Beobachtung, dass
beim Fortschreiten des Assimilationsprozesses in den belichteten Blättern allein
der Rohrzucker eine stete Vermehrung erfährt, während seine Menge bei
längerer Verdunkelung des Blattes infolge der Auswanderung in die Wurzel
allmählich abnimmt.

Nach 72 stündiger Verdunkelung ist der Blattstiel vollständig frei von
Rohrzucker und Stärke; Dextrose und Lävulose dagegen finden sich in un-
verminderter Menge vor. Verf. nimmt daher an, dass der Rohrzucker im
Rübenblatte nicht als Zwischenprodukt entsteht (Brown und Morris u. a.),
sondern einen fertigen Reservestoff darstellt, der ohne vorherige Umwandlung
in die Rübenwurzel wandert.

Briem und Strohmer fÖsterr.-ungar. Zeitschr. f. Zuckerindustrie, 1906,
Heft 1) sind zu gleicher Zeit unabhängig vom Verf. zu demselben Ergebnis
gelangt. Sie fanden in den Blattstielen zweier Zuckerrüben durchschnittlich
4 bzw. 6% Rohrzucker bei gänzlicher Abwesenheit reduzierenden Zuckers. Da
eine Wanderung des Rohrzuckers in Gestalt reduzierenden Zuckers den Nach-
weis dieser Zuckerart hätte ergeben müssen, schlössen sie aus deren Abwesen-
heit auf die Wanderung des Rohrzuckers in unveränderter Form.

825. Streitberger, F. Über die Zusammensetzung der Kakao-
Rohfaser. (Berl. Ber., XL, 1907, p. 419 5.)

826. Strohmer, F. und Fallada, 0. Über die chemische Zusammen-
setzung des Samens der Zuckerrübe (Beta vulgaris Li.). (Mitt. chem.-
techn. Versuchsst. Centr.-Ver. f. Rübenzucker-Ind. in Österr.-Lng. Mon., 1906,
CLXIX.)

Wenn man die Pflanzensamen, wie Verff. es tun, nach ihren Inhalts-
stoffen in 1. kohlehydratreiche, aber fettarme, 2. in proteinreiche, fettarme und
3. in fettreiche Samen teilt, ist nach den durchgeführten Analysen der Same
von Beta vulgaris in die dritte Gruppe einzureihen. Er ähnelt darin dem
Samen der Baumwollpflanze und ist wesentlich von jener der Leguminosen
und Gramineen verschieden. Der Gesamtstickstoff beträgt 3,7 °/0, davon in
Eiweissform 2,9 °/0, wovon auf Reineiweiss 2,45 °/0, der Rest auf Nuclei'n ent-
fällt. Stickstoff in Nichteiweissform erreicht 0,82 %, was dieselbe Form des
Stickstoffs bei anderen Pflanzenformen übersteigt. Ferner finden sich 0,85 °/0
Phytosterin und 0,41 % Lecithin. Dagegen ist weder Rohrzucker noch ein
reduzierender Zucker, ebensowenig entgegen früheren Befunden Oxalsäure
vorhanden. Als Reservestoff fungiert hauptsächlich Stärke.

827. Strzyzowski. Über Farben-, Geruchs- und anderweitige
Veränderungen, welche gewisse Chemikalien, Drogen, sowie
manche Organismen im Fluidbade — 190° erleiden. (Pharm. Post,
XLI, 1908, p. 269)

828. Stiiber, W. Über Apfelsinensaft. (Zeitschr. f. Unters, d.
Nahrungs- u. Genussm., XVI, 1908, p. 273.)

Verf. hat Apfelsinensäfte selbst hergestellt, dann analysiert und teilt
min seine diesbezüglichen Ergebnisse mit.

829. Sztankay, von. Anisotheobromin. (Pharm. Post, XL, 1907,
p. 322.)

Das Theobrominnatrium-Natriumanisat enthält 47,87 % Theobromin. Es
stellt ein weisses, wenig hygroskopisches Pulver dar, das in kaltem Wasser
wenig, in heissem leicht löslich ist.

2391 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. ß53

Es wirkt wie das Diuretin, doch fehlt die unangenehme Nebenwirkung
auf das Herz, die beim Diuretin durch die Salicylsäurekomponente hervor-
gerufen wird.

830. Suyver, J. F. Über Teeverfälschung. (Pharm. Weekbl., XLIV,
1907, p. 1058.)

831. Tabata, S. Über die Früchte und Keimpflanzen von Uhus
succedanea L. (Journ. of the College of Science, Imp. Univ. Tokyo, XXIII,
Article 1, 1907, p. 1—12, mit einer Tafel.)

Der Verf. hat die Reservestoffe untersucht in den Samen von Rhus
succedanea und deren Verwandelungen während der Keimung. Die Haupt-
resultate sind die folgenden:

1. In den ungekeimten Cotyledonen sind Magnesia. Ei weiss und Fett
reichlich aufgespeichert.

2. In den gekeimten Cot^dedonen tritt ausserdem viel Stärke auf.

3. Das Fett ist im Mesocarp, Endosperm, in den Cotyledonen, in der
Radicula, im Stamm und Zweig vorhanden. Nur im Mesocarp der reifen
Früchte nimmt es eine wachsartige Konsistenz an: es tritt hier in Form
einer weissen Kruste auf Zellmembranen auf.

4. Das Fett in den Cotyledonen spielt eine physiologische Rolle bei der
Keimung, indem es zu Stärke umgebildet wird. Der Vorgang dieser
Stärkebildung ist aber noch nicht näher erforscht.

832. Tarbourich, J. von und Hardy, .1. Ein aus EcMnophora spinosa L.
gewonnenes Phytosterin. (Bull, scienc. pharmacol., XIV, 1907, p. 387.)

833. Tarbourich, J. Die Kampfergärten im Mittelmeergebiet.
(Bull. Pharm. Sud-Est, XII, 1907, p. 180.)

834. Tauret, Georges. Über die Inosite der Mistel. (Compt. rend.,
CXLV, 1908, p. 1196.)

Die frischen Beeren von Viscum album enthalten neben den reduzierenden
und vergärbaren Zuckern auch noch Inosit und zwar 1,2 °/0 inaktiven und
0,4 °/0 racemischen Inosit.

Es ist dies der erste Fall, dass racemischer Zucker in einem lebenden
Organismus nachgewiesen werden konnte.

In den Blättern der Mistel tritt das Inosit sehr wenig auf, obgleich
auch hier die Scherersche Reaktion stark einsetzt.

835. Taylor, A- E. On Fermentation. (Chemical reactions of Fermen-
tations; Fermentation of Carbohydrates, Monosaccharide, Fat etc.). Berkeley.
(Publ. of Calif. Univ.. 1907. 255 pp.)

836. Taylor, S. Falsche Colombowurzel. (Pharm. Journ.. LXXIX,
1907, p. 121.)

In einer Sendung fand sich neben der echten Menispermaceenwurzel ein
falsches Produkt in geringer Menge, das der echten Droge ähnlich sah.

Verl. beschreibt diese Verfälschung genau und gibt folgende Unter-
schiede an:

I. Vorhandensein von Sphäroraphiden und auch Nadelraphiden, völliges
Fehlen von Einzelkristallen.

II. Vorhandensein eines roten und Nichtvorhandensein eines gelben
Farbstoffes.

Die Untersuchuner der Verfälschung; auf Alkaloide verlief negativ.

654 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. [240

837. Taylor, F. 0. Das Bittermandelöl. (Am. Journ. Pharm., LXXX,
1908, p. 154.)

Das Bittermandelöl des amerikanischen Marktes ist oft sehr stark chlor-
haltig und besteht also aus synthetischem Benzaldehydcyanhydrin.

Der Verf. gibt an, dass die von der Unit. Stat. Pharmac. angegebene
Methode zur Benzaldehydbestimmung völlig ungenügend ist.

838. Taylor, S. Über die Alkohollöslichkeit des Podophyllins.
(Pharmac. Journ., XXVII, 1908, p. 346.)

Mit dem zunehmenden Alter lässt die Löslichkeit des Harzes von Podo-
phyllum (einer Berberidaceae) in 90 prozentigem Alkohol nach.

Der Verf. untersuchte Podophyllin, das sich in frischem Zustande völlig
in 90 prozentigem Alkohol aufgelöst hatte und das nun zwölf Monate gelagert
hatte und fand, dass es 0,4 °/0 und nach abermaligem Lagern von zwölf Monaten
0,7 °/0 Alkoholunlösliches enthielt.

Im Handel findet sich Podophyllin mit mehr als 10 °/0 Unlöslichem; je
geringer die Alkohollöslichkeit ist, um so geringer ist auch die Löslichkeit in
Äther und Chloroform.

Verf. meint, es sollten bei Podophyllin 2 °/0 Bestandteile zugelassen
werden, die in Alkohol unlöslich sind.

Bezüglich der genaueren Einzelheiten sei auf den Originalartikel ver-
wiesen.

839. Teeple, J. E. Terpineol als Bestandteil des Öles von Pinus
palustris. (Am. Journ. Chem. Soc, XXX, 1908, p. 412.)

840. Teile, H. Über Kamala und Rottlerin. (Arch. Pharm., 1907,
p. 69.)

Verf. macht gegenüber anderen Autoren Prioritätsansprüche geltend.

841. Thaussing, J. E. Theorie und Praxis der Malzbereitung und
Bierfabrikation. 2 Teile, Leipzig 1907, Lex.-8 o, 3 Taf.

842. The Garn Tragasol Supply & Co., Hooton. Gewinnung von

rr

Tragaso Igummi aus Johannisbrotkernen.

843. Theopold, Wilhelm. Anacardien als Nuss- und Mandelersatz
(Pharm. Centralh., XLIX, 1908, p. 1057.)

Als „ostindische Mandeln" kommen seit einiger Zeit von Hamburg aus
Anacardiensamen in den Handel. Sie sollen als Ersatz dienen für Nüsse und
Mandeln.

Die chemische Untersuchung gab folgende Werte :

Trockenverlust 3,8 %

Fettes Öl (Petrolätherextrakt) . . . 47,15 %

Ätherextrakt 6,4 o/0

Alkoholextrakt 7,2 %

Reduzierende Substanzen 8.1 %

Stickstoffsubstanzen 9,7 ü/0

Stärke 8,9 %

Als Fettkonstanzen legte der Verf. die folgenden fest:

Jodzahl 77,0 (83,6) Verseifungszahl 182,0 (187,0)

Refraktion bei 25» 58,8 (58,1).
Anacardien sind von Mandeln und Nüssen also durch die Jodzahlen des
Fettes verschieden. Der Mandelersatz wird vor allem in der Schokoladen-
industrie verwendet. Untersuchung ist durch das Mikroskop leicht ausführbar.

2411 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. (555

844. Thiele, Ottomar. Gewinnung von ätherischen Rohölen aus
samoanischen Pflanzenblüten und Drogen. (Chem. Ztg., XXXI, 1907,
p. 629.)

Die Südseeinseln sind klimatisch zur Gewinnung ätherischer Öle sehr
geeignet. Vor allem die deutschen Besitzungen.

Vor allem macht der Verf. auf Ylang-Ylang-Rohöl aufmerksam, das aus
der dort heimatenden Cananga odorata gewonnen wird. Als andere Riech-
materialien nennt der Verf. :

Mehrere Gardenia-Arten,

Fala- oder .Frtsa-Blüten,

den Gummibaum (Drymispermitm Bumettianum),

Cestrum-Arten,

Melocliia odorata.

845. Thoms, H. Arbeiten aus dem pharmazeutischen Institut
der Universität Berlin. IV, 1907, Verlag TJrban & Schwarzenberg. Berlin.

846. Thoms, H. Über Mohnbau und Opiumgewinnung. (Ber. D.
Pharm. Ges.. XVII, 1907, p. 4—61.)

Klima und Bodenverhältnisse sind in Nord- und Süd-Deutschland für
den Mohnbau sehr geeignet, wie schon 1829 und 1830 Fr. Heinrich Biltz in
Erfurt gefunden hatte. Trotzdem wird in Deutschland nur wenig Mohn ge-
baut. Der Hauptgrund ist die oft ungünstige Witterung und nicht zum letzten
die hohen Arbeitslöhne. Verf. ist nun der Frage der Opiumkultur näherge-
treten, um ziffernmässig festzustellen, wie sich verhalten Ertrag, Beschaffenheit
der erzielten Produkte und ihre Herstellungskosten. Als Kulturboden wurde
angewendet der sandhaltige Lehmboden von Dahlem, der einige Jahre brach
gelegen hatte. Ausgesäet wurde weisser Mohnsame. Im Durchschnitt lieferten
100 unreife Mohnkapseln 1,27 g lufttrockenes Opium. Der Gehalt des Opiums
an Morphin betrug nur 6,7 °/0. Der ausgesäete Mohn stammte aus Persien
und der Türkei, weil der Verf. feststellen wollte, ob dieser morphinreicheres
Opium liefere, als der aus weisser und blauer deutscher Saat gezogene
Mohn.

Die Versuche wurden angestellt in Dahlem im Sommer 1905 und 1906.

Bezüglich der genaueren Kinzelheiten, der Kulturen usw. sei auf die
Originalarbeit hingewiesen.

847. Thoms, H. Zur Kenntnis der Agaricinsäure. Vortrag, geh.
auf der 79. Naturforschervers. Dresden 1907.

Agaricinsäureäthylester und Agaricinsäure liefern unter Einwirkung von
alkoholischem Kali Stearinsäure und Essigsäure. Hieraus folgert, dass die
Formel der Agaricinsäure nicht als C^H-jqO^ sondern als Co.>H40O7 angenommen
werden muss. Ferner ist sie nicht als eine zweibasische, sondern als drei-
basische Oxysäure aufzufassen. Lässt man konzentrierte Schwefelsäure auf
Agaricinsäure einwirken, so entsteht Methylheptadecylketon Ci9H380.

Die Agaricinsäure kann also angesprochen werden als Zitronensäure, in
der ein Wasserstoffatom durch den normalen gesättigten Rest C16H33 sub-
stituiert ist:

COOH COOH COOH

I I I

ÜJ6H33 uii O GH-;

I
OH

656 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 1242

Im Einklänge mit dieser neuen Konstitutionsformel ist der Umstand,
dass Agaricin säure beim Erhitzen auf 150 — 160° COo abspaltet und in eine
substituierte Citraconsäure. nämlich in «-Methyl-;'-Pentadecylcitraconsäure-
anhvdrid

O

CO

CO

1

CH2

y

i

-0 =

ß

= C-

cc

Ü15H31 — CH9 — C = C — CH

übergeht.

Agaricinsäure lenkt die Ebene des polarisierten Lichtes nach links ab,
was zu erwarten war, da die Formel ein asymmetrisches Kohlenstoffatom
aufweist.

848. Tlioms, H. Über den Alkaloidgehalt der Mohnpflanze.
(Chem. Ztg., XXXII, 1908, p. 441.)

Der Verf. fand, dass die Opiumalkaloide Narkotin, Kodein und Morphin
sich bereits im Extrakte junger Mohnpflanzen finden, die noch keinerlei
Blütenansätze zeigen.

Die Alkaloide bilden sich also nicht erst bei dem Saftaustritt nach dem
Kitzen der Kapseln.

849. Thoms, H. Französisches Petersilienöl und ein neuer
Phenoläther. (Berl. Ber., 1908, p. 2733.)

Das Untersuchungsmaterial stammte zum Teil aus französischen, zum
Teil aus Samen, die in Dahlem-Berlin geerntet worden waren.

Die Untersuchungen ergaben, dass im französischen Petersilienöl neben
den schon früher ermittelten Stoffen noch ein bislang unbekannter Phenol-
äther C^HjyOx enthalten ist. Sein Schmelzpunkt liegt bei 25 °. Es wurde
erkannt als l-Allyl-2.3.4.5.-tetramethoxybenzol C6H(OCH3^(C3H5).

850. Thornewill, A. R. Handelsbenzoe: Ein Beitrag zur Menge
der darin enthaltenen unlöslichen Bestandteile. (Chem. and Drugg.,
LXXI, 1907, p. 824.)

Der Verf. löste 5 bzw. 10 g Substanz in 90 prozentigem Alkohol, sammelte
das Ungelöste nach mehrmaligem Dekantieren auf einem gewogenen Filter,
wusch mit Alkohol so lange aus, bis eine Probe des Ablaufenden beim Ver-
dampfen keinen Rückstand hinterliess. Dann trocknete er im Wassertrocken-
schrank bis zum konstanten Gewicht.

Die freie Säure wurde nach der Methode Barcley-Mann, die Gesamtsäure
nach 24 stündigem Stehenlassen mit ^.alkoholischer Kalilauge in der bekannten
Weise bestimmt. Die auf Benzoesäure berechnete Differenz ergab die ge-
bundene Säure.

Verf. kam zu folgenden Resultaten : In 90 prozentigem Alkohol unlösliche
Substanz:

Probe 1: Siam . . 0,865% Freie Säure = 3,53% Gebundene Säure = 33,53 °/0
Probe 2: Siam . . 5,87 % Freie Säure =12,07% Nicht bestimmt.

Probe 3: Sumatra 17,28 %
Probe 4: Sumatra 16,95 %
Probe 5: Sumatra 18,35 %
Probe (i: Sumatra 13.35 "

2431 Berichte über die pharrnakognostiscbe Literatur aller Länder. 657

851. TicllOmirow, Wladimir. Über die intrazellularen Einschlüsse
der Blätter von Rhamnus cathartica L. (Compt. rend.. CXLIII. 1907, p. 222.)

852. Tissier, P. L. Über die Anwendung des Rhizoms von Filix
mas gegen Lymphentzündungen bei gewissen Arten der Tuber-
kulose. (Nouv. Remed.. XXIV, 1908, p. 121.)

853. Tonil uz, A. El Balsamo de El Salvador. (Der Balsam von
Ei Salvador.) (Boletin de la Soc. Xac. de Agricultura San Jose, Costa Rica,
II, No. 12, 1908, p. 274—278.) [Aus der Revista medico farmaceutica, V,
No. 5, p. 78-80.]

Der den „Perubalsam" liefernde Baum in El Salvador ist Myroxylon
so7isonatcnse- Die Republik exportiert jährlich 250000 Pfund Balsam im Werte
von 200000 Duros. Der Baum wird angeblich auch M. Pereirae genannt. Es
folgen eine genaue Beschreibung der Art, eine Analyse des Balsams (von
Stolz) und Daten über die Methode der Balsamgewinnung. Nach Guzmän
(Estudio sobre el cultivo de algunas plantas y arboles industriales . . . San
Jose, 1892, p. 45 — 47) ist der Balsambaum von El Salvador mit dem Chirraca
von Costarica identisch. Dieser Baum ist in vielen Kantonen häufig, besonders
in Guanacaste, Golfo, Dulce, San Carlos, Puriscal, San Mateo usw. Guzmän
fand prachtvolle C7t?V>-flca-Wälder, die den Eingeborenen so gut wie unbekannt
wären. Sehr beliebt ist in ganz Zentralamerika eine alkoholische Tinktur, die
aus den zerquetschten Samen und 60 prozentigem Alkohol im Verhältnis 1 : 5
hergestellt wird.

853a. Toth. J. Beitrag zur Einzelbestimmung der im Tabak
vorkommenden nichtflüssigen organischen Säuren. (Chem.-Ztg..
XXXI, 1907, p. 374.)

Bei 15 verschiedenen Tabaksorten schwankte der Gehalt an Oxalsäure
zwischen 0,42 und 2,57%, an Zitronensäure zwischen 0.92— 2,49 °/0, an Apfel-
säure zwischen 1,56—7,81 °/0.

854. Toth, Julias. Beiträge zur Bestimmung der organischen
flüchtigen Säuren des Tabaks. (Chem.-Ztg., XXXII, 1908, p. 242.)

854a. Treub, M. Neue Untersuchungen über die Rolle der Blau-
säure in den grünen Pflanzen. (Annal. Jard. Bot. Buitenzorg. V, Ser. II.
1907, p. 79—106.)

Um festzustellen, ob das von Guignard beim Holunder beobachtete
Verbalten auch anderen Blausäurepflanzen eigen ist, prüfte Verf. (9a) im
botanischen Garten zu Buitenzorg 40 weitere Arten, und die von ihm mit-
geteilten Zahlen lassen deutlich erkennen, dass die Blausäure mit einer
einzigen Ausnahme (Indigofera galegoides) stets aus den vor dem Abfalle
stehenden Blättern verschwindet. Dagegen ist Emulsin noch in alten Blättern
vorhanden, was mit den Erfahrungen Guignards übereinstimmt.

Der Gang der Blausäureabnahme in den Blättern ist nach Verf. nicht
überall der nämliche. Er ist meistens gleichmässig, zuweilen aber erfolgt die
Abnahme rasch auf einer bestimmten Entwickelungsstufe. Im allgemeinen
enthalten bei jeder Art diejenigen Blätter, bei denen die Lebenstätigkeit am
stärksten ist, am meisten Blausäure. Dieses Ergebnis entspricht ganz der
wichtigen physiologischen Rolle, die Verf. der Blausäure zuschreibt. Das ab-
weichende Verhalten von Sambuciis nigra und Indigofera galegoides harrt noch
der Erklärung.

Um zu ermitteln, ob die ganze Blausäure, die man aus Blättern von
Phaseolns lunatus entwickeln kann, einem Glucosid entstammt, hatte Verf. zwei
Botanischer Jahresbericht XXXVI (1008) 3. Abt. [Gedruckt C. 6. 11.1 42

658 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. [244

verschiedene Methoden nebeneinander zur Anwendung gebracht, die er als
„direkte Destillation" und als „Destillation nach Maceration" bezeichnet.
Erstere besteht im wesentlichen darin, dass eine gewisse Menge ganzer oder
(wenn sie zu gross sind) zerschnittener Blätter eine Viertelstunde lang mit
kochendem Wasser behandelt und das Destillat in Natronlösung aufgefangen
wird; bei der anderen wird eine gleiche Menge Blätter rasch zwischen den
Händen zerquetscht, in Wasser gebracht und nach 6- bis 20 stündigem Mace-
rieren der Destillation unterworfen. Dieselben beiden Methoden hat Verf.
neuerdings bei über 50 blausäurebildenden Pflanzenarten zur Anwendung
gebracht. Stets wurden bei der „Destillation nach Maceration" höhere Mengen
von Blausäure aus den frischen Blättern erhalten als bei der „direkten
Destillation". Es geht daraus hervor, dass ein Teil, und sehr häufig der
grosste Teil der Blausäure, welche die Blätter liefern können, aus glucosid-
artigen, durch Enzyme spaltbaren Verbindungen stammt. Denn diese können
(so argumentierte Verf. in seiner früheren Arbeit) nur bei der „Destillation
nach Maceration". nicht aber bei der „direkten Destillation" zur Wirkung
kommen, da sie durch das kochende Wasser getötet oder inaktiv gemacht
werden und die Enzymwirkungen ausserdem nicht augenblicklich eintreten,
sondern eine gewisse Zeit erfordern. Die bei der „direkten Destillation" er-
haltene Blausäure sollte nach des Verf. früherer Annahme nicht von Gluco-
siden, sondern ausschliesslich von leichter zersetzbaren Verbindungen stammen.
Auf Grund von neuen Versuchen, bei denen (nach Guignards Vorgange)
kochender Alkohol und ferner Salzlösungen zur Verwendung kamen, schränkt
Verf. jetzt diese Behauptung ein. Er findet, dass auch bei der „direkten
Destillation" ein Teil der entwickelten Blausäure durch Spaltung von Gluco-
siden gebildet wird. Die Enzyme müssen ausserordentlich rasch in Wirksam-
keit treten, wie sich auch aus anderen Versuchen ergibt. Führt man die
„direkte Destillation" so aus, dass man die frischen Blätter nicht mit kochendem,
sondern mit kaltem Wasser übergiesst und dies dann erhitzt, so erhält man
vielmehr Blausäure, als wenn man mit kochendem Wasser beginnt, ja, zuweilen
wird dabei sämtliche Blausäure des Blattes im Verlaufe einer guten halben
Stunde gewonnen; und doch vermögen während des grösseren Teiles dieser
Zeit die Enzyme nicht mehr zu wirken, da der ganze Gefässinhalt die Tempe-
ratur des kochenden Wassers hat.

Anderseits aber beweisen auch diese Versuche, dass (namentlich bei
den Panf/ium- Arten) beträchtliche Mengen von Blausäure nicht durch Spaltung
von Glucosiden entstehen, sondern aus weniger stabilen Verbindungen stammen,
wie Verf. dies früher dargelegt hat.

Nach den früheren Darlegungen des Verf. beeinflusst das Licht nicht
direkt die Bildung der blausäureliefernden Verbindungen, sondern nur als Be-
dingung der Chlorophyllassimilation und der Erzeugung von Kohlenhydraten,
die zur Blausäurebildung notwendig sind. Eine weitere Bestätigung für diese
Beziehung zwischen Kohlenhydraten und Cyanwasserstoff in den Blättern
Lieferten Beobachtungen an einer weissfleckigen Dieffenbachia, die nur in den
grünen Zellen, aber nicht in den kohlenhydratfreien Zellen der hellen Flecke
Blausäure aufwies.

Verf. hat auch die Wirkung des Emulsins auf Blätter verschiedener
Blausäurepflanzen, die der „direkten Destillation" unterworfen worden waren,
geprüft und gefunden, dass es in einigen Fällen kräftig und rasch, in anderen
weniger prompt, und in noch anderen gar nicht oder sehr langsam wirkte.

2451 Berichte über die pharniakognostische Literatur aller Lander. 659

Er hat ferner Versuche ausgeführt, um die Enzymwirkung der Blätter einer
Art auf die Glucoside der Blätter einer anderen Art zu ermitteln, und in den
meisten Fällen gute Wirkung festgestellt.

Wie Verf. früher an Pangium edule und besonders an Phaseolus lunatiis
beobachtet hatte, nimmt die Blausäure in mehr oder weniger lange ver-
dunkelten Blättern bis zum völligen Verschwinden ab und erscheint erst
wieder bei erneuter Belichtung. Neue Versuche mit Manihot utilissima ergaben
gleichfalls eine Abnahme der Blausäure nach mehrtägiger Verdunkelung der
Blätter und eine Zunahme in den wieder beleuchteten Blättern. Diese Zu-
nahme erfolgt allerdings sehr langsam, was Verf. aus der durch die Dunkel-
heit verminderten Funktionsfähigkeit der Blätter und aus der Natur der blau-
siiurebildenden Verbindung als eines plastischen Reservestoffes, der nur bei
günstigen Bedingungen abgelagert wird, erklärt.

854b. Tschircb, A. Die Harze und die Harzbehälter, mit Ein-
-•chluss der Milchsäfte. Zweite stark erweiterte Auflage, 2 Bde. Gebr.
Borntraeger, Berlin-Leipzig 1906, 1268 pp.

Die rastlose Tätigkeit, welche Verf. in Gemeinschaft mit zahlreichen
Schülern des Berner pharmazeutischen Laboratoriums der Chemie der Harz-
drogen bis in die jüngste Zeit gewidmet hat, äussert sich in der bedeutenden
Erweiterung des Umfanges vorliegenden Werkes gegenüber der vor sechs
Jahren erschienenen ersten Auflage. Der Phytochemiker findet hier nicht nur
die Resultate der langen Reihe von Publikationen aus dem „Archiv für
Pharmazie" erschöpfend zusammengestellt, sondern auch eine nicht geringe
Anzahl bisher nicht veröffentlichter Arbeiten über verschiedene wenig bekannte
Harzsorten zum ersten Male verwertet. Verf. hat jedoch in dieser Auflage
auch die Untersuchungen anderer Harzchemiker, von den ältesten Zeiten der
Forschung an, ausführlich berücksichtigt, und es erhöhen die aus alten Schriften
mit vielem Fleisse und Geschick zusammengetragenen historischen Daten,
welchen sich auch Reproduktionen alter Buchillustrationen anschliessen, das
Interesse an der Darstellung auf das wirksamste. Alle diese Momente
stempeln das Werk zu einem unentbehrlichen Handbuch für jeden, welcher
sich in irgendeiner Fachrichtung mit dem schwierigen Gebiete der Harzchemie
zu befassen hat. Dem Pharmazeuten und Technologen werden ausserdem
noch die weitläufigen Exkurse über Harzgewinnung und die zugehörigen nicht
ohne viele Mühe gesammelten Abbildungen von grösstem Werte sein.

Auf die Unsumme chemischer Tatsachen, die Verf. gesammelt hat, näher
einzugehen ist hier nicht möglich. Es zeigt übrigens auch die „Schluss-
betrachtung" des ersten Bandes, wie wenige spezielle Charaktere in eine all-
gemeine Betrachtung der Harzchemie aufgenommen werden können, und wie
die Gruppenteilung in Resinotannolharze, Resenharze und Resinolsäureharze
vorläufig nur gewisse wenig eingreifende Differenzen betonen kann. Wieviel
wird sich noch auf diesem phytochemischen Gebiete im Laufe der jetzt in
vollem Flusse befindlichen Arbeit ändern! Die ausführlichen tabellarischen
Zusammenstellungen am Schlüsse des ersten Bandes illustrieren den Stand
unserer heutigen Kenntnisse in dankenswerter Klarheit.

Alle Botaniker werden dem zweiten Bande des Werkes, der sich mit
der Genese der pflanzlichen Secrete befasst, grosses Interesse entgegenbringen.
Die als bekannt vorauszusetzenden Ansichten des Verf. über die Vorgänge
der Secretbildung in der Zelle, das erste Auftreten von Secret innerhalb einer
„resinogenen Schichte" an der Grenze von Cytoplasma und Zellmembran,

-42 r

ßßO Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [246

werden auch hier ziemlich unverändert wieder vorgetragen. Neu hinzu-
gekommen ist das wichtige Kapitel über die Resinosis (Harzfluss), in welchem
ausführlich begründet wird, dass wir einen primär erfolgenden Harzaustritt
aus normalen Secretgängen wohl zu unterscheiden haben von dem sekun-
dären Prozesse, welcher die eigentliche ergiebige Harzproduktion durch Bildung
eines pathologischen, an Harzkanälen sehr reichen Wundparenchyms bedingt.
Schliesslich werden auch die Verhältnisse der Milchsaftbehälter unseren heutigen
Kenntnissen entsprechend ausführlich dargestellt.

855. Tschirch, A. und Cederberg, H. Über das Glycyrrhizin. (Arch. d.
Pharm., CCXLV, 1906, p. 97.)

855a. Tschirch, A. Grundlage einer physiologischen Chemie der
pflanzlichen Secrete. (Archiv d. Pharm., 1907, p. 380.)

856. Tschirch, A. Die Stammpflanze des chinesischen Rhabarbers.
(Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 680.)

Der Verf. bekam ans China, aus dem Kuku-moor-Gebiete Rhabarber-
früchte und züchtete aus den Samen Pflanzen. Die Eigenschaften der Blätter
dieser Pflanzen stimmten auf die Blätter von Eheum palmaium ß tangitticum.

Der Verf. meint, dass der südliche Rhabarber aus Szetschwan von
Rheum officinale, der nördliche vom Kuku-moor von Rheum palmaium ß iangu-
ticum stammt.

857. Tschirch, A. und Edner, J. Wertbestimmung des Rhabarbers,
(Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 150—153.)

8F)8. Tschirch, A. und Edner, J. Über den englischen und fran-
zösischen Rhabarber. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 139—149.)

859. Tschirch, A. und Schulz, H. Über den zur Herstellung des
Resinatweines benutzten Harzbalsam von Pinus lialepensis. (Arch.
Pharm., 1907, p. 156.)

860. Tschirch, A. Handbuch der Pharmakognosie. Vollständig in
ca. 30 Lieferungen ä 20 M. Verlag Tauchnitz, Leipzig, 1908.

Auf den Inhalt dieses Standardwerkes der Pharmazie kann hier leider
nicht eingegangen werden.

861. Tschirch, A. und Wolft, M. Über das Vorkommen von Abietin-
säure im Harzöl. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907, p. 1.)

Die Verff. isolierten aus den sauren Bestandteilen der Harzessenz bzw.
des Harzöles Abietinsäure und kleine Quantitäten phenolartiger Körper.

Am bedeutendsten ist die Ausbeute dann, wenn die Ausgangsmaterialien
durch Vacuumdestillation gewonnen werden.

Säurefreie Produkte erhält man durch Destillation über Ätzkalk.

862. Tschirch, A. und Gaiiclnnanil, S. Über das Vorkommen von
Glycirrhizinsäure in anderen Pflanzen. (Arch. Pharm., 1908, p. 558.)

Man kannte bis jetzt Glycirrhizin mit voller Sicherheit nur von G-lycir-
rhiza glabra-

Der Süssstoff von Evpatorium Rcbaudianum erwies sich als nicht
identifizierbar mit Glycirrhizin.

Die Verff. haben nun zwei nach Süssholz schmeckende Drogen, nämlich
Periandra mediterranea und Pradosia lactescens. die sogenannte Monesiarinde.

Die Verff. kamen zu dem Resultate, dass der Süssstoff der beiden Drogen
mit Glycirrhizin vollkommen identisch ist.

86a. Tschirch, A. und Gauehmann, S. Weitere Untersuchungen über
die Glycirrhizinsäure. (Arch. Pharm., 1908, p. 545.)

247 1 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. QQ [

86L Tschirch, A. und Pore, J. F. A. Vergleichende Studien über
die Rinden von Wiamnus Franqula und Rhamnvs Purshiana. (Arch. Pharm.,
1908, p. 315.)

865. I iiimiaiiii. 0. Über Berba Grindeliae robustae. (Pharm. Centralh.,
XLIX, 1908, p. 457.)

Querschnitte durch die obersten Internodien des Stengels zeigen uns in
der Mitte ein Mark, dessen Zellen Interzellularräume erkennen lassen, derbe,
getüpfelte Wände besitzen, an der Peripherie kleiner sind und dort bereits zu
verholzen anfangen. Einzelne Zellen sind mehr oder weniger mit kleinen
Calciumoxalatkristallen (Nadeln) erfüllt. Bereits dicht unter dem Blüten-
körbchen ist das Mark von einer Anzahl Gefässbündel umgeben, deren Zahl
nicht konstant ist. Da die Bündel durch schmale Streifen parenchymatischen
Gewebes voneinander getrennt sind, kommt es hier noch nicht zu einem
geschlossenen Holzzylinder. In der Regel zählt man 12 — 16 Bündel. Bis-
weilen wechseln breitere Bündel, die mehr nach innen liegen, mit kleineren
ab, welche etwas nach aussen geschoben sind. Dadurch entsteht ein stern-
artiger Holzteil mit 6 — 8 mehr oder minder stark hervorgezogenen Strahlen.
Nach innen grenzen die einzelnen Bündel in konvexen Bögen, daher erscheint
auch das Mark sternartig, so lange es noch nicht verholzt ist. Das Cambium
stellt innen gebogene Linie dar. Im Holzteil sind, durch einreihige Mark-
strahlen getrennt, die Gefässe in radiale, an den Seiten sich verjüngende
Reihen gestellt. Die ersten Gefässe sind spiraliger Natur, die späteren be-
höfte Tüpfelgefässe, deren Querwand nur wenig geneigt und völlig durch-
brochen ist. Bei weiterem Wachstum werden vorzugsweise Tracheiden und
Libriform gebildet. Der Siebteil lehnt sich mit seiner konvexen Seite an den
Holzteil. Seine Elemente sind vorwiegend dickwandig und lassen — in vielen
Fällen wenigstens — durch ihre reihenartige Anordnung die Entstehung aus
der zugehörigen Cambiummutterzelle erkennen. Aussen wird jedes Bündel
von einem starken Belag langer, starkwandiger, verholzter und manchmal
stumpfendender Bastfasern umgeben.

Die Bastbeläge vereinigen sich nicht zu einem geschlossenen Ringe,
werden dagegen von einer Scheide umgeben, deren regelmässige, im Quer-
schnitte meist quadratische Zellen zwar wenig verdickte, aber schwach ver-
holzte Wände haben. Die tangentialen Innenseiten dieser Zellen, sowie ihre
Radialseiten, sind mit einer zarten Korklamelle überzogen. Die Durchlass-
stellen (1—2 Zellen breit) befinden sich zumeist zwischen den Bastbelägen.

Dicht der Scheide angrenzend, gewöhnlich vor der Mitte eines Bündels
liegt ein schizogener Secretgang. Er ist teils nicht grösser als eine benach-
barte Parencbymzelle und kann dann leicht übersehen werden, teils grösser
als diese und oft tangential gedehnt. Das durchlüftete Rindenparenchym ist
nicht besonders mächtig, meist 10 — 14 Zellenreihen stark. Die einzelnen
Elemente sind in der Richtung der Achse gestreckt, ihre getüpfelten Zellulose-
wände quellen in Chloralhydrat usw. stark auf. Auf Längsschnitten sehen
sie Siebröhren ähnlich, da ihre Querwände callusartig erscheinen. Bei dem
Hervortreten mechanischer Elemente dürfte diesen Zellen ein grosser Anteil an
der Stoffleitung zufallen. In den folgenden Internodien wird das Parenchym
durch den Druck des wachsenden Gefässzylinders etwas zusammengedrückt.

Die Zellen der Rinde enthalten eine reichliche Menge Calciumoxalat-
kristalle ganz verschiedener Ausbildung. Die meisten sind Würfel und

662 Berichte über die phartnakognostische Literatur aller Länder. [248

Oktaeder oder Kombinationen beider; seltener findet man Drüsen oder kleine
Nadeln.

Die Epidermiszellen sind nach aussen gewölbt; ihre Aussenwand, welche
durch Kalilauge oder Chloralhydrat ungemein aufquillt, ist entsprechend der
Cuticula gefurcht. Die Spaltöffnungen sind stark emporgehoben und haben
eine grosse Atemhöhle. Die Hauptdrüsen sind am Stengel nicht der Epidermis
eingesenkt; namentlich die Blütenstiele sind dicht mit Drüsen übersäet. Haare
konnte ich nicht auffinden, auch Narben waren äusserst selten — die Pflanze
scheint an ihren oberen Teilen kahl zu sein.

In Flächenansicht sehen wir die Blattepidermis gefeldert. Diese Felde-
rung kommt durch die reiche Nervenverzweigung zustande und wird besonders
dadurch hervorgehoben, dass unter der Kpidermis nur chloroph3rllfreie
Elemente und xinter derjenigen der Blattfläche die chlorophyllhaltigen liegen.
Die Nervenepidermis ist spaltenfrei, trägt hingegen fast ausschliesslich die
Drüsen.

Die Zellen der eigentlichen Blattfläche haben buchtigen Lmriss. Hier
fehlen die Drüsen, jedoch treffen wir Spalten an, die in Gruppen zu ß— 10 den
kleinen Nervenmaschenraum ausfüllen. Bisweilen finden sich Spalten, die
ihrer Ausbildung nicht zur Vollendung gekommen sind. Die Spaltöffnungen
liegen über einer grossen Atemhöhle, ihr Spalt ist weit geöffnet und in ihrem
kleinen Vorhof finden sich manchmal kleine wachsartige Körnchen, doch kommt
es hierdurch nie zu einer eigentlichen Verstopfung.

Typisch sind jene länglichen Spalten, welche an ihren Enden etwas
von zwei kleineren Nebenzellen umfasst werden, so dass der Umriss einer
8 entsteht, während die beiden anderen und grösseren Nebenzellen sich den
Längsseiten der Spalte anlehnen ; die Spaltöffnung ist dann gewissermassen
an ihren beiden aufgehängt. Die Anzahl der Spalten ist recht verschieden.
Oberseits kommen oft 170 auf ein Quadratmeter, unterseits stets etwas mehr.
Die Cuticula ist gefaltet.

Stets findet sich am Siebteil der Blattrippe ein schizogener Secret-
behälter.

Die mehrfach erwähnten Hautdrüsen reichen in ihrer Gestalt von dem
Compositentyp Tschirchs vollständig ab. Es sind sitzende Köpichendrüsen,
welche 3 — 4 Zelletagen hoch sind. Sie entstehen aus einer Epidermiszelle,
die durch Eadialteilungen 3 — 4 zellig und zum Fuss wird. Die Elemente der
beiden folgenden Etagen sind relativ hoch und bilden gewissermassen den
Stiel, während die zahlreichen eigentlichen Sezernierungszellen von mehr
quadratischer Gestalt sind. Ihre Anzahl ist eine ganz verschiedene und steht
mit der Grösse der Drüse und mit dem Alter derselben in gewissem Zu-
sammenhang. An kleineren Drüsen zählt man 14 — 18 sezernkrende Zellen,
die meisten Drüsen haben 32—48 Zellen, jedoch kann ihre Zahl bis auf 60
steigen. In jeder dieser Zellen liegt eine kleine zierliche Calciumoxalatdrüse
mit zentralem Hohlraum.

806. Tuillliann. 0. Über Zwillingsköpfchen von Spilanthes oleracea
Jacq. und über die wirksamen Bestandteile dieser Pflanze. (Apoth.-
Ztg.. LIII, 1908, p. 53.

Bezüglich der Einzelheiten der sehr genauen Abhandlung des bekannten
Verfs. sei auf das Original verwiesen. Als wirksamer Bestandteil wird das
Spilanthol genannt, das sich nur im Secret der schizogenen Gänge findet.

249] Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. gß3

867. Tumiiann, 0. Mikroskopisch-pharmakognostische Beiträge
zur Kenntnis einiger neuerer Arzn eidrogen. (Pharmaceut. Centralk.,
1908, p. 159 — 166, Fig. 1—4.)

Betrifft: I. Folia Eriodictijon California.

Über die Anatomie sei folgendes hervorgehoben:

Bei Betrachtung eines Querschnittes durch die Fläche des Blattes fallen
die einzelnen Schichten durch ihre verschiedene Mächtigkeit auf. So kommen
bei einer Stärke der Blattfläche von reichlich 0.2 mm in ungefähren Werten
35 — 40 u auf die obere Epidermis, 120« auf die Palisadenschicht und nur 50//
auf das Schwammparenchym nebst unterer Epidermis. Auf der Unterseite
pflegt der Haarfilz gleiche Höhe wie die angrenzenden Nerven zu erreichen,
gewöhnlich also 140 m. Die Harzschicht der Oberseite kann bis 100 fj stark
werden.

Die Epidermis der Oberseite besteht aus Zellen, welche in Flächen-
ansicht gerade oder schwach buchtige Seitenwände zeigen, im Querschnitt
quadratisch bis rechteckig und im Mittel 35 — 40 /u hoch sind.

Fast alle Blätter hatten auf der Oberseite nur ganz vereinzelt eine Spalt-
öffnung, an zwei Blattstücken wurden mehrere Spalten gefunden. Entweder
hängt dieses Vorkommen mit der betreffenden Art oder vielleicht mit der
Stellung des Blattes zusammen. Diese Spalten waren etwas über die Fläche
des Blattes emporgehoben, hatten vier bis fünf Nebenzellen ; die Schliesszellen
führten zahlreiche kleine Stärkekörnchen.

Von der unteren Epidermis ist eine Flächenansicht sehr schwer zu er-
halten, da die allermeisten Zellen zu langen Haaren auswachsen. Die wenigen
Zellen, die keine Haare tragen, sind von buchtigem Umriss, nur 8 u hoch,
quadratisch bis rechteckig im Querschnitt, besitzen dünne Zellulose wände und
sind von einer zarten Cuticula bedeckt. Die nicht sehr zahlreichen Spalt-
öffnungen sind von oben beschriebenem Bau, jedoch mehr emporgehoben.
Die Wollhaare der Fläche, die den hellen Pilz bilden, sind einzellig, an der
Basis etwas angeschwollen, vielfach geschwunden, stumpf endend und behalten
ihre Breite von 7 — 9 u bis nahe der Spitze. Sie sind stark verdickt und lassen
gewöhnlich nur an der Basis ein kleines Lumen erkennen.

Während die Höhe der Palisadenschicht eines Blattes die gleiche bleibt,
schwankt die Anzahl der dieselbe bildenden Palisaden von drei bis sieben Zellen,
so dass drei Palisaden in ihrer Gesamtheit ebenso hoch sind, als die daneben
befindlichen fünf oder sieben Zellen. Gewöhnlich stehen die Palisaden senk-
recht übereinander, doch kommt es auch vor, dass sie gabelartig gestellt sind,
sich z. B. eine zweizeilige Eeihe in zwei dreizellige Reihen gabelt und die
unteren Palisaden dann gewissermassen als Sammelzellen fungieren. Sie
haben dünne Tangentialwände, einen Breitendurchmesser von nur 5—9 u, so
dass 6 — 20 Palisaden auf eine darüber liegende Epidermiszelle kommen und
führen reichliche, wenn auch nur kleine Interzellularräume. Die Palisaden
werden von Zellen unterbrochen, in denen sich Drüsen von Calciumoxalat
finden. Diese Drüsen liegen wie bei Folia Jaborandi in besonderen Zellen
Eine solche drüsenhaltige Zellenreihe pflegt breiter als die benachbarten Pali-
sadenreihen zu sein. In der Mehrzahl der Fälle durchsetzen die Oxalatzellen
die gesamte Palisadenschicht: sie können dann bis neun Zellen hoch sein.

Das reichdurchlüftete Schwammparenchym besteht aus wenigen Lagen
niedriger, aber gut ausgebildeter Armparenchymzellen. Die Gefässe der Nerven
höherer Ordnung oder die diese begleitenden, kurzgliedrigen und netzförmig

(364 Berichte über die pharniakognostisohe Literatur aller Länder. [250

verdickten Trache'iden verlaufen direkt unter den Palisaden, so dass eigentliche
»Sammelzellen entbehrlich sind.

Die Nervenbündel zeigen natürlich ein etwas verschiedenes Querschnitts-
bild, je nachdem sie dem Hauptnerven, den Sekundärnerven oder den Nerven-
endungen angehören. Der Hauptnerv tritt in seinem unteren Verlauf unter-
seits sehr stark hervor, oberseits nur wenig. Man findet hier drei Bündel.
Das untere ist weitaus am stärksten ausgebildet und halbkreisförmig geordnet.
Die Gefässe bilden regelmässige, strahlig radiale Reihen, welche sich beider-
seits verjüngen. Die Gefässe sind in der oberen Hälfte am weitesten. Sie
werden durch einreihige Markstrahlen getrennt, die an ihren gestreckten
Zellen leicht erkenntlich sind und sich in den Siebteil fortsetzen, welcher sich
an die untere konvexe Seite des Gefässteiles bogenförmig anlehnt. Etwas
oberhalb dieses Bündels, und zwar an den Enden, befinden sich zwei kleinere,
isolierte Bündel von gleichem Bau, den Siebteil aber nach oben gekehrt.
Diese Bündel treten niemals in der Mitte miteinander zusammen. Der Sieb-
teil, namentlich derjenige des unteren Bündels, wird von ein bis zwei Zell-
reihen umschlossen, welche zwar nicht durch ihre Gestalt, wohl aber durch
ihren Inhalt als Stärkescheide aufzufassen sind. Ausserdem sind einzelne
Zellen des zentralen Parenchyms stärkehaltig. Ein Bastbelag fehlt. Die
Stärkescheide wird von Zellen begleitet, die mit grossen Calciumoxalatdrüsen
erfüllt sind.

Der Sekundärnerv zeigt ähnliche Verhältnisse wie der Hauptnerv an
seiner Spitze, doch ist die Spreite des Blattes nur über ihm etwas eingesenkt.

In dem häufig nur wenige Millimeter langen Blattstiel treten die beiden
kleinen Bündel, welche im Mittelnerv isoliert waren, ganz nahe an das grosse
untere Bündel heran. In einzelnen Fällen erfolgt sogar eine Vereinigung, so
dass wir nur ein Bündel finden, welches sich jedoch auf der Oberseite niemals
zu einem Kreise schliesst. Charakteristisch sind wieder die radial strahlige
Anordnung der Gefässe, die einreihigen Markstrahlen und der gut ausgebildete
Siebteil.

868. Tumuaun, 0. Mikroskopisch-pharmacognostische Beiträge
zur Kenntnis einiger neuerer Arzneidrogen. (Pharmaceut. Centralh.,
1U08, p. 219-224, Fig. 1—8.)

Betrifft: Folia Orthosiphonis staminei.

Die Epidermis der Blattoberseite wird von im Querschnitt quadratisch
bis rechteckigen Zellen gebildet, deren Seitenwände buchtig verlaufen und die,
von oben betrachtet, an den Buchten öfters kleine Verdickungen zeigen. Die
Zellen der unteren Epidermis sind niedriger, ihre Seitenwände sind welliger
verbogen und bisweilen scharf geknickt. Zu den grossen Haaren laufen die
Zellen gradwandig hin, zu den Drüsen in welligen Linien; bei den kleinen
Köpfchendrüsen zeigt sich keine Regelmässigkeit. Über den Nerven verlaufen
die Zellen gradwandig und gestreckt. Spaltöffnungen kommen auf beiden
Blattseiten vor. Auf der Oberseite sind die der Epidermis eingesenkt, weil
die Schliess- und Nebenzellen nur halb so hoch als die übrigen Epidermiszellen
sind, unterseits sind sie über die Fläche emporgehoben.

Der Epidermis sind 3 Arten von Haaren aufgesetzt. Makroskopisch er-
scheinen allerdings die Spreiten ausgewachsener Blätter kahl, und die Zahl
der gewöhnlichen, feine Cuticularfalten, namentlich nach Behandeln mit Chlor-
zinkjod, aufweisenden Haare auf der Blattfläche ist relativ gering. Hier sind
lieselben auch nur ein- bis zweizeilig. Diese sowie die kleinen einzelligen kegel-

251 j Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. ßß5

förmigen oder papillenartigen Haare sind sehr dickwandig. An den Blatt-
rändern, auf der Unterseite der Hauptnerven, aber vor allem Stiel, am Stengel
und Blüte werden die Haare fünf- bis secbszellig und bis 400 tu lang.

Ausserdem finden wir beiderseits kleine Köpfchenhaare, deren Secret-
mengen gering sind; sie besitzen Basal- und Stielzellen und stets einen zwei-
zeiligen Drüsenkopf, welcher 25 tu breit und 22 ,« hoch ist. Am zahlreichsten
sind dieselben am Kelche, und dort erscheinen sie höher, weil sich ihre Stiel-
zellen gestreckt haben.

Schliesslich kommen noch ziemlich gleichmässig über beide Flächen des
Blattes verteilt typische Labiatendrüsen vor mit vier bis sechs Sezernierungs-
zellen und einer, sehr selten zwei Stielzellen.

Das Palisadengewebe ist in der Kegel einschichtig; an grösseren Blättern
reihen sich die darunter liegenden Zellen gleichfalls etwas palisadenartig an-
einander, so dass man dann von einer zweireihigen Palisadenschicht sprechen
könnte, deren zweite Keihe jedoch bedeutend unregelmässiger und niedriger ist.
Auf eine Epidermiszelle pflegen drei bis sechs Palisaden zu kommen. In die
Atemhöhlen der Spaltöffnungen ragen kürzere Palisaden hinein. Die Sammel-
zellen sind breiter als die Palisaden. Sie bilden häufig an ihren Radialwänden
Ausbuchtungen, entweder nur eine grössere, dann ist im typischen Falle der
Umriss annähernd eine 8, oder mehrere kleinere. Die Ausbuchtungen benach-
barter Zellen passen aufeinander. Das 5 — 8 Lagen hohe Schwammparenchym
besteht vorwiegend aus rundlichen Zellen, Armparenchymzellen sind selten.

Auf dem Querschnitt des namentlich auf der Oberseite stark behaarten
und dort mit einer Einbuchtung ausgezeichneten und auf der Unterseite kon-
vexen Blattstieles sehen wir vier Bündel. Ungefähr etwas unterhalb der Mitte
des grosszelligen Grundparenchyms liegen zwei grössere, schwach bogenförmig
angeordnete Gefässbündel, welche durch nur wenige Reihen Parenchym von-
einander getrennt sind. Der Holzteil jedes Bündels pflegt sich aus sieben bis
neun Reihen Spiralgefässen zusammenzusetzen, welche sich nach den Seiten
hin verjüngen. Die Markstrahlen sind ein- bis dreireihig. An der unteren,
konvexen Seite des Gefässbündels liegt der Siebteil. In beiden oberen Ecken
ziehen zwei kleine Bündel, welche aus vier bis fünf engen Gefässen und
relativ grossem Siebteil bestehen. Auf der Ober- und Unterseite sind unter
den im Querschnitt quadratischen Epidermiszellen vier bis fünf Reihen Zellen
kleiner. Dieselben sind collenchymatisch verdickt.

Der vierkantige Stengel zeigt typischen Labiatenbau. Die Ecken sind
von Collenchym gebildet, unter diesen liegen strahlige Bündel: hier sind die
Gefässe am giössten, bis 35 tu weit. Da in den Stengeln, wie sie in der Droge
vorliegen, das interfaseikulare Wachstum noch nicht weit vorgeschritten ist, so
finden wir in den Seiten nur ein kleineres Bündel, deren Gefässteil sich nur
aus vier bis fünf Gefässen zusammensetzt. Innen liegt ein grosszelliges Mark-
parenehym.

869. Tunniann, 0. Folia Boldo. (Südd. Apoth.-Ztg., 1908, p. 108.)
Verf. schildert eingehend die Blattstruktur, und geht auch auf Blattstiel

und Zweige ein. In der ersten Palisadenschicht des Blattes und im Schwamm-
parenchym hat das charakteristische Alkaloid Boldin seinen Sitz. Ebenso im
Blattstiel, dessen Parenchym auch kleine Ölzellen führt.

870. Tunmann, 0. Über eine neue Beimengung der Senega-
wurzel. (Pharm. Centralh., XLIX, 1908, p. 61.)

666 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [252

871. Tiimiiann, 0. Zur Anatomie der Wurzel von Morinda citri-
folia L. mit besonderer Berücksichtigung der mikrochemischen
Verhältnisse. (Pharm. Centralh., XL1X, 1908, p. 1013.)

Das Holz bestand aus 10 cm langen, 5 cm breiten und bis 1 cm starken,
gelben bis rötlichgelben, massiven Stücken. Auf der geglätteten Querfläche
der leicht längsspaltbaren, jedoch schwer querbrechenden Holzstücke entsteht
durch Betupfen mit Kalilauge ein dunkelroter, mit Kalkwasser ein schmutzig
blauroter, mit Eisenchlorid ein dunkelbrauner und mit Jodreagenzien ein blau-
schwarzer Fleck. Gefässe und Markstrahlen sind mit blossem Auge sichtbar.
Die dichtlaufenden, stärkeführenden Markstrahlen sind meist 3— 4 reihig, selten
an den breitesten Stellen 5 reihig und in der Regel 15 — 30 Zellen hoch. Ihre
Zellen sind stark radikal gestreckt, verholzt und mit unregelmässig gestellten,
verschieden grossen einfachen Tüpfeln versehen. Die Holzstränge bestehen
bei dem untersuchten Material, das von älteren Stämmen herrühren dürfte und
bei dem kambiale Teile oder anhaftende Binde völlig fehlten, in der Mehrzahl
überwiegend aus Libriform, bei der Minderzahl sind Parenchym und Libriform
der Menge nach gleich. Das Libriform ist lang, an den Enden wenig zu-
gespitzt, die starke Membran zeugt deutlich Tüpfelung. Bei einer Lichtweite
von nur 5 (x kommt bisweilen auf die Wand eine Stärke von u. Das Holz-
parenchym lässt in seiner Anordnung keinerlei Regelmässigkeit erkennen.
Die Elemente stehen wenig Zelletagen hoch, meist in Gruppen, seltener in
Bändern, welche die Markstrahlen und die Gefässe miteinander verbinden.
Ihre Tüpfel sind unregelmässig gestellt, bisweilen aber an den Radialwänden
in Längsreihen zu je zwei angeordnet. Einzelne Parenchymzellen sind ihrer
Längsrichtung nach fast ganz mit Raphiden von Calciumoxalat erfüllt. Die
Kristalle sind bis 100 ju lang. Die Gefässe von Parenchym umgeben, — nur
selten grenzt Libriform an die Gefässe — stehen teils einzeln, teils in Gruppen.
Die Gefässwand lässt feine Spiralstreifung erkennen und hat regelmässige
Hoftüpfel. Die Hof weite beträgt 4—5 a. Die einzelnen Glieder sind ziemlich
lang; ihre Querwände sind nicht immer völlig durchbrochen, sondern zeigen
bisweilen nur an einer Stelle eine grössere kreisförmige Durchbrechung. Selten
finden sich zwei kleinere Löcher. Da nun die Enden der Gefässglieder sehr
lang und schief ausgezogen sind, so treffen wir die kreisförmigen Durch-
brechungen der Gefässe auch an Tangentialschnitten an.

872. Tnnmann, 0. Zur Kenntnis der Laminaria. (Pharm. Centralh.,
XLVI1L 1907, p. 241.)

Verf. findet folgende Resultate:

Der Laminariaschleim entsteht nur aus den Membranen.

Kupferacetat ist ein sehr brauchbares Härtungsmittel für Schleim.

Der Membran sind ausser grossen Mengen Calciumpectat voraussichtlich
noch andere Salze eingelagert.

Zucker scheint erst bei der Hydrolyse zu entstehen.

Die geformten und ungeformten Zellinhaltskörper haben gleiche Re-
aktionen und sind bei Drogenmaterial wenigstens plasmatische Reste mit
wechselndem Gerbstoffgehalt, welch letzterer zu dem Phloroglucin in näherer
Beziehung steht. Kohlenhydrate sind bei der Droge nicht nachweisbar.

<S73. I iiiiiiiuim. 0. Über das Jod und den Nachweis desselben in
der Laminaria. (Pharm. Centralh., XLVII1, 1907, p. 505.)

874. Tiiiiiiiann. 0. Über den anatomischen Bau von Rhizoma Gel-
semit. (Pharm. Centralh., XL VIII, 1907, p. 080.)

2531 Berichte über die pharmakognostiscbe Literatur aller Länder. (367

Fasst man die Ergebnisse kurz zusammen, so ergibt sich folgende s :
„Die Hauptmenge der im deutschen Handel befindlichen Droge besteht
aus ausläuferartigen Wandersprossen des Rhizoms. Dieselben sind rund.
walzenförmig, bisweilen angeschwollen und bis 28 mm stark. Manchmal
unterscheiden sie sich bereits durch einen bläulichen Farbenton von den
Wurzeln. Sie besitzen einen zentralen, stark obliterierten Siebteil, deren
Markstrahlenzellen im Zentrum häufig sklerosieren. Der innere und äussere
Siebteil zeichnet sich durch Mächtigkeit aus. Zahlreiche Bänder obliterierter
Siebstränge treten in der Rinde auf. In der primären Rinde finden sich
Bastfasern, die, je älter und stärker das Organ ist, um so zerstreuter liegen.
Schon an 3 mm starken Stücken beginnen vereinzelte Parenchymzellen der
primären Rinde zu sklerosieren. Mit dem Alter dringen die entstandenen
Skiereiden in die sekundäre Rinde vor, und erfahren durch nachträgliches
Wachstum eine axiale Streckung. Der Calciumoxalatgehalt der Markstrahlen
der Rinde nimmt mit dem Alter zu.

Die Wurzeln treten in der Droge der Menge und dem Gewichte nach
bedeutend zurück. Die stärksten Wurzeln hatten einen Durchmesser von 8 mm
und waren von gelblichbrauner Farbe. Sie besitzen einen zentrisch geschlossenen
Holzkörper: der Siebteil war, wenigstens bei den vorliegenden Exemplaren,
nicht so mächtig entwickelt, obliterierte Siebstränge selten. Ualciumoxalat-
kristalle finden sich gleichfalls in den Markstrahlen der Rinde vor. Mechanische
Elemente fehlen der Mehrzahl der Wurzeln, während einzelne Wurzeln von
2 — 5 mm Durchmesser Skiereiden besassen. Vielleicht hängt das Vorkommen
derselben von einer verschiedenen Funktion der Wurzeln ab. Die Pflanze
neigt offenbar dazu, Parenchymzellen zu sklerosieren."

875. Tiuniianii, 0. Über eine Beimengung der Sen egawu rzel.
(Pharm. Centralh., Halle 1908, JNfo. 4.)

Bei Untersuchungen von fein zerteilten und normal sehr gut aussehen-
den Drogen beobachtete der Verf. 3 — 5 mm lange und ca. 2 mm dicke, gelb-
liche stielrunde hohle Stücke, die Ähnlichkeit hatten mit zerschnittener Quecken-
wurzel. Es handelte sich offenbar um zerschnittene Stengelteile von Polygala
senega. Der Verf. schliesst aus dem grossen Teil der Beimischung, dass es
sich um eine absichtliche Verfälschung handelt.

Diese Hinzusetzung lässt sich mikroskopisch sehr leicht nachweisen,
denn die Stengelbasen sind sehr leicht an den weissen, stark lichtbrechenden.
unverholzten Bastfasern zu erkennen.

Der Saponingehalt liess sich nur in vereinzelten Fällen nachweisen auf
mikrochemischem Nachweise.

Da nun Saponin der Hauptbestandteil der Radix Senegae ist, trägt die
ziemlich saponinlose Beimischung zur Herabsetzung der Droge bei.

Beim Einkauf geschnittener Senegawurzel ist also grosse Vorsicht nötig.

876. Tiiiiinaiiii. 0. Cortex Kanakugi cum ligno. (Schweiz. Wochen-
schrift f. Chemie u. Pharmaz., XLIV, 1908, p. 782.)

Die Droge liefert das gegen Syphilis neuerdings viel verwendete
Extractum Kanakugifluidum. Dem Verf. war es unmöglich, die Droge im
Ganzzustand zu erhalten. Die Untersuchung musste an feingeschnittenem
Material ausgeführt werden. Zu folgenden Schlüssen gelangte der Verf.:

Der anatomische Aufbau der Droge weist sie in die Familie der Laura-
ceae (Ölzellen und epidermale Korkentwickelung). Was aber wieder Zweifel
an der Zugehörigkeit aufkommen lässt. sind: das Fehlen eines geschlossenen

66$ Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [254

Sklerenchjmringes, selbst in ganz jungen Achsen, das Auftreten geschlossener
Bastbelege im sekundären Bast, die sehr langen Bastfasern, sowie Vorkommen
von oxalsaurem Kalk in grösseren Drüsen.

Vielleicht setzt sich die Droge aus zwei verschiedenen Pflanzen zu-
sammen. Die zur Untersuchung gelangten Drogenmuster enthielten so zahl-
reiche fremde Beimengungen, dass sie fast als Teegemisch zu bezeichnen waren.

877. Tunmann, 0. Radix Apocyi cannabini. (Pharm. Centralh.,
XLIX, 1908, p. 299, mit Abbild.)

Der Verf. bespricht in sehr genauer Art den anatomischen Aufbau der
Wurzel des kanadischen Hanfes (Apoctjnum cannabinum).

Die Wurzeln dieses Gewächses sind in Nordamerika offizineil. Auch in
Europa sind sie bereits vor 20 Jahren als wirksames Diureticum und als Ersatz
für Digitalis eingeführt worden.

878. Tunmann, 0. Zur Anatomie der Muira-puama. (Südd. Apoth.-
Ztg., 1908, p. 243.)

Es wird eine genaue anatomische Schilderung der Holz- und Wurzel-
verhältnisse der Pflanze gegeben.

879. Tunmann, 0. Zur Abstammung der Muira-puama. (Pharm. Ztg.,
XL11I, 1908, p. 279.)

Der Verf. korrigiert einen von Weigel in die Literatur gebrachten Fehler.
Die mutmassliche Stammpflanze von Muira-puama ist Liriosma ovata Miers.
Diese Pflanze gehört zu den Olacaceen, nicht, wie Weigel angab, zu Oleaceen.

880. Tunmann, 0. Beitrag zur Kenntnis der Hautdrüsen. (Ber.
D. Pharm. Ges., XVIII, 1908, p. 491.)

Die ausserordentlich interessante Arbeit gliedert sich in folgende Teile:

1. Einleitung.

2. Die Secretbildung, kritische Besprechung und Nachprüfung der diese
Frage behandelnden Arbeiten.

3. Aus welchem Grunde gestaltet sich die Differentialdiagnose zwischen
dem Zellinhalte und dem Secret schwierig?

4. Die neuerdings angewandten Methoden und die mit denselben bei der
Nachprüfung der Arbeiten von Behrens und Hanstein ermittelten
Resultate.

5. Zusammenstellung sämtlicher bisher untersuchten Pflanzen.

(i. Was lässt sich mit unseren gegenwärtigen Hilfsmitteln direkt an den
Drüsen beobachten, wie weit können wir die Secretion auf optischem
Wege verfolgen und welche Körper stehen mit der Genese des Secretes
im Zusammenhang?

7. Der Ort der Secretbildung. Die resinogene Schicht Tschirchs. All-
gemeine Methoden zur Auffindung der Schicht. Die ermittelten Resultate.
Verschiedene Typen der Schicht und ihr Einfluss auf die Zusammen-
setzung des Secretes.

8. Die Beschaffenheit der (Juticula und die Entleerung des Secretes.

9. Einige Bemerkungen zur Biologie der Hautdrüsen.

10. Der Zeitpunkt der Secretbildung.

11. Über die Veränderung der chemischen Zusammensetzung des Secretes
während der Vegetationsperiode und die sich hieraus ergebende Nutz-
anwendung.

12. Schlusswort.

Bezüglich des reichen Inhalts muss auf das Original verwiesen werden.

2551 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. QQQ

881. Tunman», 0. Über Hyssopus officinalis. (Zeitschr. allgem. österr
Apoth.-Verein, LX, 1906, p. 407 u. 41!'.)

882. Tiiiiniaiiii. 0. Zur Kenntnis des Faulbaums und seiner
Glykoside. (Pharm. Centralh., XLVIII, 1907, p. 99.)

883. Tiiinnaiin. 0. Über die Bildung der Luftlücken bei den
Wurzeln der Umbellif eren. (Pharm. Centralh., XLVIII, 1907, p. 885.)

Die Untersuchungen betrafen: Torilis ififesta Koch, Daums carota L.,
Aegopodium Podngraria L, Pastinaca satira L., Heracleum SpJ/ondylium L.,
Angel ica süvestris L., Bupleurum falcatum L. und Pimpinella Saxifraga L.

Es ergab sich folgendes:

„Die Bildung der grossen Luftlücken bei den Wurzeln der Umbelliferen
ist eine direkte Folge des grossen Pektingehaltes der betreffenden Wurzeln.
Das Pektin geht ausschliesslich aus der primären Membran hervor. Zu dieser
Feststellung ist einerseits verdünnte Chromsäurelösung, anderseits konzen-
trierte Rohrzuckerlösung (Mangln), mit Methylenblau gefärbt, am besten
geeignet. Nur die primäre Membran ist bei der Pektinbildung beteiligt, nicht
aber die zellulosehaltige sekundäre Membran. In der primären Membran ent-
steht eine Pektinschicht, welche an Mächtigkeit mehr oder weniger zunimmt,
während die sekundäre Membran, wie Messungen an gefärbten Präparaten
verschiedener Entwickelungsstadien gezeigt haben, gleich stark bleibt. Wenn
der Durchmesser der Zellulosemembranen an einzelnen Stellen etwas geringer
geworden ist, so hat dieses seinen Grund darin, dass die Wände derartiger
Zellen beim Erweitern der Lücken gespannt und ausgedehnt wurden. Grenzt
an die Lücke eine Zelle in ihrer ursprünglichen Gestalt, deren Wandungen
nicht verzerrt wurden, so lässt sich feststellen, dass der Wanddurchmesser
selbst an älteren Wurzeln der gleiche geblieben ist. Hat die Pektinbildung
einen gewissen Grad erreicht, so beginnt ihre Auflösung, der eine Umwandlung
in Pektinschleim vorausgeht. Die sekundäre Membran löst sich nicht. Die
Auflösung der Pektinschicht setzt in ihrer Mitte ein und schreitet schnell
nach den beiderseitigen Zellulose wänden zu fort. Während aber bei der
Bildung gewöhnlicher Interzellularen die Auflösung auf die Mittelschichten
der Pektinmembran beschränkt bleibt, die an den Interzellularraum grenzenden
Zellwände mithin noch mit einer Pektinlamelle bedeckt bleiben, schreitet die-
selbe jedoch bei der Pektinbildung weiter bis zum völligen Schwinden des
Pektins. Die im Anfangsstadium der Lücke angrenzenden Zellwände bestehen
demnach aus mit Pektose vermischter Zellulose. Mit Sicherheit konnte dieser
Vorgang bei Torilis und Blupleurum beobachtet werden.

Die Lückenbildung setzt sehr frühzeitig ein, bald nachdem der Gefäss-
bau kollateral geworden ist, und die ersten sekundären Gei'ässe entstanden
sind. Zuerst bilden sich tangentiale Lücken in den Zellen unterhalb des
Phelloderms. Vereinzelt können dieselben schon bei 1 mm starken Wurzeln
so gross werden, dass das Periderm nur mittelst der primären Phloemstränge
mit der Achse zusammenhängt. Die Tangentiallücken entsprechen in ihrer An-
ordnung den Markstrahlen. In den Fällen, in denen ausschliesslich oder doch
vorwiegend tangentiale Lücken auftreten, wird dieses dadurch bedingt, dass
dir Kinde relativ dünn bleibt, und die Markstrahlen nicht mächtig entwickelt
sind, so dass eine ergiebigere Pektinbildung in ihnen gar nicht stattfinden
kann. Es reissen derartige Lücken nur wenig nach innen, nach den Enden
der Markstrahlen, ein. Das geschieht aber häufig erst beim Trocknen oder

ß70 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [256

Präparieren. Bei Wurzeln mit Tangentiallücken ist der Holzkörper in seinen
Elementen fast ganz verholzt, und im Holzkörper treten dann keine Lücken auf.

Bei den meisten Wurzeln, so bei denen der olfizinellen Umbelliferen,
bei Pastinaca, Heracleum u. a. findet, neben der tangentialen Lückenbildung
in der Mittelrinde, radiale in den Enden der Markstrahlen, also in der äusseren
Innenrinde statt. Die Zellen der Markstrahlen sind in regelmässigen Radial-
reihen angeordnet, und die Grösse der einzelnen Zellen nimmt nach aussen
hin ununterbrochen zn. Zuerst trennen sich die einzelnen Reihen vonein-
ander. Bis zum Cambium erweitert sich aber selbst durch nachträgliches Ein-
reissen oder beim Trocknen die Luftlücke nicht. Vielmehr wird die Basis
der Markstrahlen nicht angegriffen. Es bleibt mithin stets, auch bei aus-
giebigstem Zerfall, ein aus Markstrahlen und funktionsfähigem Phloem be-
stehender Bing um das Cambium erhalten. Die radiale Lückenbildung findet
entweder zu beiden Zeiten des Markstrahles statt (die Mehrzahl der Fälle), so
dass Phloemstränge und Markstrahlen in ihrem weiteren Verlaufe getrennt
werden oder in der Mitte, dann haften den benachbarten Phloemsträngen
Reste des zerrissenen Markstrahles an. In den Phloemsträngen entstehen
keine Luftlücken, höchstens sind bei ganz alten Wurzeln die Enden nahe dem
Periderm beiderseits eingerissen. Es ist das bemerkenswert, weil auf solche Weise
die Secretbehälter in geschützter Lage bleiben und ein Aufreissen derselben
selbst an alten Wurzeln verhindert wird.

Bei den Wurzeln, bei denen die Ersatzfasern und Markstrahlen des
Holzes sämtlich oder zum grössten Teile unverholzt bleiben, kann dort gleich-
falls in der primären Membran eine Pektinschicht entstehen, welche durch
Lösen Lückenbildung bewirkt. Solche Lücken sind kleiner und ein Anzeichen
dafür, dass ältere Wurzeln vorliegen. Die Lücken bilden sich meist zuerst, in
den Markstrahlen und dehnen sich später auf die Ersatzfasern aus. Selten trifft
man Lücken im Ersatzfasergewebe an. Die Gefässe bleiben durch einen Ring
von Ersatzfasern geschützt. Der Holzkörper älterer Wurzeln wird dadurch
bisweilen halbiert.

Die Pektinbildung veranlasst zwar die Lückenbildung, jedoch sind einzig
und allein auf diese Weise gebildete Luftlücken nicht von grosser Dimension.
Die Vergrosserung geschieht durch mechanisches Zerreissen der Membranen,
welche vorher eine grosse Spannung erfahren. Das Auseinanderpressen ist
eine Folge des Dickenwachstums. Hierzu kommt noch, dass der Periderm-
mantel dem Dickenwachstum nicht genügend folgt Die durch Lösung ge-
trennten radialen Zellreihen werden daher auseinander und gegen das Periderm
gedrückt, wodurch die getrennten Markstrahlen und Phloemstränge einen ge-
schlängelten Verlauf erlangen, und die Rinde mancher Wurzeln jene bekannte
.geflammte' Zeichnung erhält. Bei den Tangentiallücken wird das Abtrennen
des der Lückenbildung anheimfallenden Gewebes von dem Phelloderm dadurch
unterstützt, dass letzteres bei weiterem Wachstum sich nicht streckt, während
das darunterliegende Parenchym eine starke Streckung erfährt."

S84. Tuiimann, 0. Über die resinogene Schicht der Secret-
behälter der Umbelliferen. (Ber. D. Pharm. Ges., XXVII, 1907, p. 456.)

Die Secretbildung bei den schizogenen Gängen der Umbelliferen sind in
letzter Linie anzusehen als eine Lebenstätigkeit der primären Membran,
analog der Secreterzeugung bei den sogenannten „Zischenwanddrüsen" der
Azaleen.

2571 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 671

88"). Tumnann. 0. Die Bedeutung der Mikrochemie für die
Drogenwissenschaft. (Schweiz. Wochenschr. f. Chemie u. Pharm.. XLVI,
1908, p. 813.)

885a. Tunmann, 0. Über die Kristallausscheidungen in einigen
Drogen (Hesperidine) und über die physiologische Bedeutung
dieser Körper. Nach einem Vortrage, gehalten in der Abt. XIII der
81. Naturforsch.- Versammig. in Salzburg. (Schweiz. Wochenschr. f. Ghem. u.
Pharm., 1909, p. 1—9.)

Verf. kommt zur Ansicht, dass die Hesperidine keine ausnutzbaren Pro-
dukte der Zelltätigkeit sind, was bislang stets behauptet wurde.

885b. Tumnann. 0. Über Folia Uvae Ursi und den mikroskopischen
Nachweis des Arbutins. (Pharm. Centralh., 1906, No. 46.)

885c. Tnnmann, 0. Polygonum dumetorum L., ein gut wirkendes
Abführmittel. (Pharmaz. Centralh., 1906, No. 41.)

Verf. gibt eine genaue Beschreibung dieser Polygonacee.

885d. Tnnmann, 0. Über das Vorkommen von Calciumoxalat
in der Radix Colombo. (Pharmaz. Centralh., 1906, No. 52.)

Über des Vorkommen von Calciumoxalat in Radix Colombo sagt das
D. A.-B. in Übereinstimmung mit neueren pharmakognostischen Lehrbüchern,
dass Oxalatkristalle nur in vereinzelten Sklerenchymzellen der Rinde auftreten.
Diese Angabe ist nach Untersuchungen von Verf. nicht richtig. Es hat sich
vielmehr ergeben, dass nicht nur die Steinzellen der Rinde, sondern auch die
übrige Rinde und der gesamte Holzkörper der Wurzel Oxalatkristalle führt.
Dieselben treten aber nicht auffällig hervor, da sie durch Stärke verdeckt
werden, und sind selbst in aufgehellten Präparaten in grossen Parenchym-
zellen leicht zu übersehen. Bei Zusatz von massig verdünnter Schwefelsäure
wird sich aber fast jedes Präparat nach einigen Augenblicken mit den be-
kannten Gipsnadeln bedecken. Was Bödeker seinerzeit für auskristallisiertes
Columbin gehalten hat, sind nach Verf. Oxalatnadeln und -prismen, die sich
auch öfters in grösserer Menge in der Innenrinde in der Nähe des Cambiums
finden.

885e. Tunmann, 0. Über Semen Lini pulveratum. (Pharm. Centralh.,
1906, No. 36.)

886. Turner, Joseph L. Über den Nachweis von G urj unbalsam
in Oopaivabalsam. (Pharm. Centralh., XLV1II, 1907, p. 424.)

887. I/bbeloh(le, L. Handbuch der Chemie und Technologie der
Öle und Fette. Bd. I, Leipzig, S. Hirzel.

888. Umney, J. ('. und Bennett. Grenzzahlen für alkaloidhaltige
Drogen und deren Fluidextrakte. (Pharm. Journ., XXVII, 1908, p. 344.)

Die Verff. negieren die Methoden, bei denen aliquote Teile zur Ver-
wendung kommen.

Wird mit nicht mischbaren Solventien geschüttelt, so muss dieses mit
wenigstens drei Anteilen hintereinander geschehen, denn bei zweimaligem
Auswaschen wird nicht alles Alkaloid entzogen.

Gewöhnliches Filtrierpapier darf für geringe Mengen Lösungsmittel
nicht angewendet werden, wegen der entstehenden Verluste. Viel besser ist
ein Flöckchen Watte.

Es finden sich dann noch viele eingehende Beobachtungen über
Titration usw. bezüglich deren auf das Original verwiesen sei.

(372 Berichte über die pharraakognostische Literatur aller Länder. [258

889. Utz. Ist gegen den Verkauf von verdünntem Zitronenöl
einzuschreiten? (Pharm. Centralh., 1906, p. 270.)

Verf. will, dass man den Verkäufern von Zitronenöl keine Zugeständnisse
macht, sondern dass der Verkauf von verdünntem Zitronenöl beanstandet
werden soll. Jedenfalls muss eine klare Deklaration der Verdünnung vor-
liegen.

890 Utz. Über Segurabalsam (Chem. Rev. Fett- u. Harzindustrie,
1907, p. 296.)

891. Utz. Über das sj^ezifische Gewicht des Leinöles. (Chem.
Rev. Fett- u. Harzindustrie, XIV, 1907, p. 137—138.)

Verf. hat eine grosse Anzahl verschiedener Leinölsorten auf ihr
spezifisches Gewicht hin untersucht und dabei als Endi'esultat gefunden, dass
die vom D. A. B. verlangten Gewichtsgrenzen von 0,936 — 0,940 zu strenge ge-
nommen sind. Bei seinen Untersuchungen war das niedrigste, von ihm beob-
achtete spezifische Gewicht 0,92235, das höchste 0,9370. K. Krause.

892. Utz. Die Farbenreaktion zum Nachweis von Gurjun-
balsam im Copai vabalsam. (Chem. Rev. Fett- u. Harzindustrie, 1908,
p. 218.)

Der Verf. hat die Tunersche Probe zum Nachweis von Gurjunbalsam
im Copaivabalsam verschiedentlich nachgeprüft und stets sehr gute Resultate
damit erzielt.

Der Verf. sagt, dass sich die Empfindlichkeit der Reaktion noch wesent-
lich steigern lässt, wenn man statt des zu untersuchenden Balsams das ab-
destillierte ätherische Öl verwendet.

892a. Utz. Zinnchlorur als Reagens bei der Untersuchung des
Balsams (Chem. Rev. Fett- u. Harzindustrie, 1907, p. 185.)

Der Verf. hat gefunden, dass sich Zinnchlorur vorzüglich eignet zur
Untersuchung und Unterscheidung von natürlichem und künstlichem (syn-
thetischem) Perubalsam.

Wenn man nämlich natürlichen Perubalsam mit Zinnchlorürlösung
schüttelt, so wird diese karmoisinrot gefärbt, während bei dem Schütteln mit
künstlichem Perubalsam eine dunkelgrüne Färbung sich zeigt.

Beide Reaktionen können mithin nicht miteinander verwechselt werden.

Mit Copaivabalsam färbt sich das Reagens orange.

Mit Gurjunbalsam ist die gesamte Flüssigkeit zunächst ganz schwach
rosa. Lässt man absetzen, so ist die obere Schicht kirschrot und klar, wo-
gegen die untere Schicht nur eine Rosafärbung hat.

893. Valilen, E. Clavin, ein neuer Mutterkornbestandteil. (Arch.
exper. Path., LV, 1906, p. 131.)

894. Vahlen, E. Über Mutterkorn. (Arch. f. exper. Path., LX, 1908, p. 42.)

895. Vanbel. Über Geheimhaltung von Untersuchungsmethoden.
(Zeitschr. f. öffentl. Chemie, 1906, p. 430—431.)

896. Velardi. Die Giftigkeit der bitteren Mandeln. (Boll. Chim.
Farm., XLV, 1906, p. 65.)

897. Versehaffelt, E. Blumenduft. (Chem. Weekbl., V, 1908, p. 441.
Verf. stellt die Ergebnisse der verschiedenen Arbeiten über dieses Thema

zusammen.

Bestimmte dufterzeugende Zellen sind nicht nachweisbar. Man muss
annehmen, dass die Oberhautzellen, die doch den Duft an die umgebende
Luft abgeben, bei der Erzeugung der Riechstoffe eine grössere Rolle spielen.

259] Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. 673

898. VesterblTg, Th. Zur Kenntnis der Coniferenharzsäuren.
(BerL Ber., XL, 1907, p, 120.)

Gegenüber anderen Ansiebten ist für die Abietinsäure die Formel C20H30O-2
festzulegen.

Dextropimarsäure ist im Gegensatz zur Abietinsäure vollkommen luft-
beständig, während die Abietinsäure an der Luft allmählich unter Gelbfärbung
oxydiert.

899. Vetolitzky, F. Sumachblätter als Verfälschungsmittel für
Pfeffer. (Arch. f. Chem. u. Mikrosk., I, 1908, p. 239.)

900. Vevey, S. A. de. Die einheimischen Euphorbien. (Bull. Sc.
Pharm., XV. 1908, p. 444 ff.)

Die meisten einheimischen Euphorbien haben abführende Wirkung.
Besonders eignet sich Euphorbia Peplus als Asthmamittel. Es ergaben sich
folgende Analysenzahlen iür 100 g der frischen Pflanze:

Wasser 88 g, Chlorophyll 3,55 g,

Gummi 0,75 g, sonstige organische Substanz 0,75 g,

Harzbestandteile 4,80 g, Salze 2,15 g.

Die Wirkung beruht auf den Harzbestandteilen. Alkaloide und Glykoside
sind nicht vorhanden.

900a. Vines, S. H. Die Proteasen der Pflanzen. V. (Ann. of Bot.,
1908, XXII, p. 103-113.)

In mehreren Abhandlungen hat Verf. von seinen Untersuchungen über
die Enzyme berichtet, die an den Umwandlungen der Eiweisskörper in den
Pflanzen beteiligt sind. In der Veröffentlichung, die der vorliegenden voran-
ging (1906), waren Versuche mitgeteilt worden, aus denen sich ergab, dass in
stärkehaltigen Samen (Leguminosen und Mais) yor der Keimung eine Protease
vorhanden ist, die unmittelbar auf Witte- Pepton wirkt, und dass sie eine oder
mehrere Proteasen enthalten, die rascher oder langsamer . auf. die Reserve-
ei weissstoffe der Samen wirken; ferner war ermittelt worden, dass die Samen
nach der Keimung alle eine Protease enthielten, die Fibrin verdaute, und dass
sich diese auch in gewissen Fällen während des Versuchs in ungekeimten
Samen entwickelte. Der Zeitunterschied in der Wirkung auf Witte-Pepton
und auf Fibrin führte den Verf. zu dem Schluss, dass beide Vorgänge durch
verschiedene Proteasen hervorgerufen würden.

Diese Versuche hat Verf. nun mit ölhaltigen Samen, namentlich Hanf-
samen, fortgeführt. Er beobachtete, dass diese proteolytisch weit aktiver sind
als die Stärkesamen, und er konnte daher fast ausschliesslich mit ungekeimten
Samen experimentieren.

In dem ersten Versuch wurden 15 g zerquetschte Samen in zwei
Flaschen mit je 100 cm3 destilliertes Wasser gebracht; eine Probe der Flüssig-
keit gab noch keine Tryptophanreaktion (die auf Peptolyse hindeutet). No. 1
empfing keinen Zusatz; zu No. 2 wurden 0,2 g Fibrin gebracht. Nach
20 Stunden gab No. 1 deutliche Tryptophanreaktion; es musste also ein pepto-
lysierendes Enzym vorhanden sein. Die Selbstverdauung (Autolyse) war ein-
getreten und schritt während des Versuches fort. No. 2 zeigte gleichfalls die
Tryptophanreaktion und zudem war das Fibrin gänzlich verschwunden, was
direkt auf die Anwesenheit eines peptonisierenden Enzyms hinwies. Es
wurden nun noch 0,5 g Fibrin zu No. 2 gefügt. Nach 48 Stunden gaben beide
Flüssigkeiten starke Tryptophanreaktion, und das Fibrin in No. 2 war ver-

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedrnckt 6. (j. 11.] 43

(574 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. [260

schwunden. Als zu No. 1 0,3 g Fibrin gefügt wurden, waren sie nach
24 Stunden verdaut. Wie Verf. bemerkt, ist es in solchen Versuchen schwer,
die tatsächliche Eildung von Peptonen nachzuweisen, da die Flüssigkeit
die Biuretreaktion gleich zu Anfang gibt, infolge der Anwesenheit von
Albumosen.

In den weiteren Versuchen wurde die Flüssigkeit von den zerquetschten
Samen erst abfiltriert und nur dieser Extrakt geprüft. Neben reinen Wasser-
auszügen kamen auch Kochsalzlösungen zur Verwendung; in diesen war die
peptonisierende Wirkung stärker, was zum Teil wohl auf einer die Verdauung
unmittelbar fördernden Wirkung des NaCl, zum anderen aber augenscheinlich
darauf beruht, dass die fibrinverdauende Protease in Kochsalzlösung leichter
löslich ist als im destillierten Wasser. Der beim Kochen der Flüssigkeiten
entstehende Niederschlag nahm während der Versuche allmählich ab, ein Be-
weis für Verdauungs Wirkung auf die coagulierbaren Eiweissstoffe, die im
Extrakt gelöst sind. Witte-Pepton wurde in den Flüssigkeiten rasch pepto-
lysiert, wie die mehr oder weniger starke Tryptophanreaktion anzeigte. Zu-
weilen gaben die Extrakte gleich im Anfang eine Tryptophanreaktion ; bei
10 proz. Wasserextrakt war sie im besten Falle nur schwach, in 20 proz.
Wasserextrakt oder in 10 proz. Kochsalzlösung erschien sie aber deutlich.

Auch die Versuche mit anderen ölhaltigen Samen (Senf, Haselnuss,
Eicinus, Flachs) zeigten, dass diese Samen stärker proteolytisch aktiv sind als
die Stärkesamen, und dass sie peptonisierende und peptolytische Proteasen
entweder schon im Anfang enthalten oder während des Versuchs entwickeln.
Dass ein peptolysierendes Enzym, eine Ereptase, auch in anderen Pflanzen-
geweben allgemein vorkommt, hatte Verf. schon früher nachgewiesen; in den
Laubblättern tritt diese Protease allein auf.

Es blieb nun die Frage zu beantworen: Welcher Art ist die fibrin-
verdauende Protease? Ist es eine Tryptase oder eine Peptase? Um dies zu
entscheiden, suchte Verf. sie von der Ereptase zu trennen. Hierzu bot sich
eine Handhabe in dem oben erwähnten Umstände, dass die fibrinverdauende
Protea-e in Kochsalzlösung leichter löslich ist als in Wasser, und ferner in
der Beobachtung, dass Kochsalzlösungen auch eine grosse Menge Eiweiss-
stoffe aus den Samen extrahieren; es schien daher möglich, dass der Nieder-
schlag des Eivveisses in solchem Extrakt die fibrinverdauende Protease mit
niederreissen würde. Diese Annahme bestätigte sich. Mit 10 proz. Kochsalz-
lösung wurde ein Auszug aus Hanfsamen hergestellt und mit der geringsten
zulässigen Menge Essigsäure (0,2%) versetzt. Dadurch wurde ein dichter
Niederschlag von Eiweissstoffen erhalten. Das Filtrat peptolysierte lebhaft,
hatte aber keine Wirkung auf Fibrin; die fibrinverdauende Protease war also
augenscheinlich in dem Niederschlag verblieben. Dieser wurde mit 10 proz.
Kochsalzlösung ausgewaschen, die 0,2 °/0 Essigsäure enthielt; die durchlaufende
Flüssigkeit wirkte anfangs auf Witte-Pepton, aber diese Wirkung nahm
allmählich ab und hörte endlich ganz auf. Hierauf wurde ein Teil des aus-
gewaschenen Niederschlages mit destilliertem Wasser ausgezogen und filtriert:
das etwas irisierende Filtrat verdaute Fibrin lebhaft, wirkte aber nicht auf
Witte-Pepton, wie das Ausbleiben der Tryptophanreaktion bewies.

Es ist mithin dem Verf. gelungen, zum ersten Male aus einem Pflanzen-
gewebe eine Protease zu isolieren, die in ihren Eigenschaften ausgesprochen
peptisch ist, indem sie Fibrin zu Albumose oder Pepton verdaut, aber nicht
auf Albumose oder Pepton einwirkt, weder auf Witte-Pepton noch auf die

•;(3l] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 675

Produkte der von ihr selbst bewirkten Fibrinverdauung. Der Hanfsamen
enthält hiernach zwei Proteasen: eine Ereptase und eine Peptase.

901. Vintilesco, J. Untersuchungen über die Glykoside einiger
Pflanzen aus der Familie der Oleaceae. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907,
p. 180—199.)

902. Vintilesco, J. Über die Gegenwart von „Mannit" in den
Jasmineen. (Journ. Pharm. Chim., XXV. 1907, p. 373.)

Der Verf. konnte nachweisen, dass das früher von ihm aus Jasminurn
officinale L. gewonnene kristallinische Produkt Mannit ist. Er beschreibt die
Herstellung und Eigenschaften dieses Stoffes. Es gelang ihm auch, ihn aus
Jasminurn nudiflorum Lindl. zu gewinnen.

903. Vintilesco, J. und Bourquelot, Em. Über das Oleuropein, ein
neues Prinzip glykosidischer Natur, gewonnen aus dem Ölbaum
{Olea Europaea L.). (Compt. rend., CXLVII, 1907, p. 533.)

904. Vintilesco, M. J. Sur la presence de la „manniti" dans les
• lasminees. (Journ. de Pharm, et de (Jhim., 6. ser., XXV, 1907, p. 373— 377.)

Verf. hat das Vorkommen von Mannit sowohl für Jasminurn officinale L.
wie auch für J. nudiflorum Lindl. mit Sicherheit nachweisen können und das-
selbe auch für J. fruticans L. sehr wahrscheinlich gemacht; Mangel an aus-
reichendem Material hinderten ihn aber bei der letzten Art an einem be-
friedigenden Abschlüsse seiner Untersuchungen. K. Krause.

905. Voley-Boncher. Natur der löslichen Fermente in den Gummi-
arten. (Bull, de Pharm, de Süd-Est, VII, 1908, p. 297.)

905a. Wächter, W. Über das Verhältnis der in den Zwiebeln
von Alliitm Cepa vorkommenden Zuckerarten. (Jahrb. f. wiss. Bot., XLV,
1907, p. 232—255.)

Früher nahm man allgemein an, dass der Zucker in den Zwiebeln von
Allium Cepa ausschliesslich als Glykose gespeichert werde. Neuerdings konnten
R. Kavser und E. Schulze in Gemeinschaft mit S. Frankfurt neben der Glykose
Rohrzucker bzw. einen anderen, nicht direkt Fehlingsche Lösung reduzierenden
invertierbaren Zucker nachweisen.

Die Frage nach dem Vorkommen der verschiedenen Zuckerarten in den
Zwiebeln gewinnt eine grössere Bedeutung, wenn es sich darum handelt, eine
Vorstellung über die physiologische Bedeutung dieses Reservestoffes zu ge-
winnen. Es ist dabei von Wichtigkeit, alle diejenigen Bedingungen kennen
zu lernen, unter denen die verschiedenen Zuckerarten entstehen, sich gegen-
seitig ersetzen usw. Von den in Betracht kommenden äusseren Einflüssen hat
Verf. in der vorliegenden Arbeit die Temperatur , genauer studiert. Da es
kaum möglich ist, die verschiedenen Zuckerarten in Gemischen zu identifizieren,
beschränkte er sich bei seinen Versuchen darauf, den direkt reduzierenden und
den invertierbaren Zucker zu bestimmen.

An verschiedenen Varietäten nicht ausgetriebener Zwiebeln Hess sich
zeigen, dass eine Verminderung der Temperatur von -4- 19° auf — 7° keine
Änderung in der Zusammensetzung des Zuckers bedingt. Innerhalb dieser
Temperaturgrenze bleibt sich auch die Gesamtmenge an Zucker gleich. Wird
dagegen die Temperatur auf 35° bis 43° erhöht, so nimmt die Menge des
invertierbaren Zuckers ganz bedeutend zu, während die Gesamtmenge an
Zucker wieder dieselbe bleibt. Gelegentlich wurden bei derartig hohen
Temperaturen Stärkekörner in den Zwiebeln gefunden. Verf. vermutet, daher,

43*

676 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [262

dass hohe Temperatur eine wesentliche Bedingung für die Bildung von Stärke
]>ei der Küchenzwiebel ist.

Beim Austreiben der Zwiebel geht der Gehalt an invertierbarem Zucker
stark zurück, so dass der direkt reduzierende Zucker bedeutend überwiegt.
Zuweilen verschwindet der invertierbare Zucker ganz. An treibenden Zwiebeln
lässt sich fast regelmässig beobachten, dass die Inhaltsstoffe der äusseren
Schuppen zuerst verbraucht werden. Doch gehen die Zuckerumwandlung und
der Zuckerverbrauch der äusserlich sichtbaren Entleerung der Schuppen
durchaus nicht parallel. Beide Vorgänge finden vielmehr gleichzeitig in allen
Zwiebelschalen statt. Dabei können die Schuppen, besonders die inneren, ein
völlig normales Aussehen zeigen. Dass die inneren Zwiebelschalen beim Aus-
treiben scheinbar nicht entleert werden, sucht Verf. darauf zurückzuführen,
dass der osmotische Druck durch die Umwandlung des invertierbaren Zuckers
in reduzierenden Zucker reguliert wird und dass ausser dem Zucker vorläufig
keine anderen Stoffe verbraucht werden, was offenbar bei den äusseren
Schuppen der Fall ist. Somit wären an der Zwiebel beim Austreiben zwei
gleichzeitig verlaufende Vorgänge zu unterscheiden : 1. die absolute Entleeiung
der äusseren Zwiebelschalen; 2. die teilweise, wahrscheinlich auf den Zucker
beschränkte Entleerung der inneren Schalen.

906. Wagner, B. Zur Bestimmung des Antimongehaltes im
vulkanisierten Kautschuk. (Ohemiker-Ztg., 190G, p. 638.)

Verf. wendet folgende Methode an:

In einem kleinen, aber nicht zu kleinen Porzellantiegel wird 0,5—1 g
möglichst fein zerschnittener oder geraspelter Kautschuk in dem fünffachen
Quantum eines Gemenges von 1 Teil Natriumnitrit und 4 Teilen Kalium-
carbonat möglichst gleichmässig verteilt. Über diese Menge wird eine 3 mm
hohe Schicht eines reinen Salzgemisches verteilt. Nun wird erhitzt. Erst
destilliert etwas Wasser, dann eine aus Kohlenwasserstoffen bestehende
Flüssigkeit. Wird nun die Hitze verstärkt, so tritt weisse Rauchbildung ein.
der Deckel kann abgenommen werden, doch ist streng darauf zu achten, dass
die Dämpfe nicht in Brand geraten. Tritt kein Rauch mehr auf, so wird
erhitzt, bis die Salzmasse zu schmelzen beginnt. Es zeigen sich in diesem
Stadium gewöhnlich immer noch unverbrannte Kohlepartikel auf der Ober-
fläche der Reaktionsmasse. Deshalb werden 1 — 2 Messerspitzen fein gepulverten
Salpeters zugegeben und bei geschlossenem Tiegel wird weiter erhitzt. Die
unverbrannten Teilchen werden nun zerstört.

Die erkaltete Schmelze wird in Wasser gelöst, dann wird sie im Becher-
glase angesäuert mit Salzsäure und mit Kieselsäure abfiltriert. Im Asbest-
filterrohr wird der Niederschlag gesammelt, dann im Kohlensäurestrom ge-
trocknet und geglüht und als Sb2Sa gewogen.

Werden noch andere Metalle angenommen, so sammelt man den Sulfit-
niederschlag zuerst auf Papier, löst in Schwefelammonium und fällt das Filtrat
durch Salzsäure.

907. Wagner, H. und Clement. J. Zur Kenntnis des Baumwollen-
samens und des daraus gewonnenen Öles. (Zeitschr. f. Nahrungs- u.
Genussm., XV, 1908, p. 326.)

908. Walbnni, L. E. Eine neue Methode zum Nachweis einer
Verfälschung des venetianischen (Lärchen-) Terpentins mit ge-
wöhnlichein Terpentin. (Pharm. Centralh., XL1X. 1908, p. 911.)

2631 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 677

Es werden 10,0 g des zu untersuchenden venetianischen Terpentins in

30,0 g Äther gelöst und in einer verschlossenen Flasche in ein kleines Wasser-

bei gleich massiger Temperatur von 20,5 ° C gestellt. Nach ungefähr

10 Minuten gibt man 8 ccm Bn/j N-Ammoniakflüssigkeit, die auf gleiche Tem-
peratur gebracht worden ist, hinzu.

Es entsteht eine vollkommen klare Flüssigkeit, die nach ungefähr

11 Minuten zu einer Gallerte erstarrt ist.

Ist gewöhnliches Terpentin beigemischt, so löst sich dieses bei der
Untersuchung zwar auch, aber es erstarrt nicht.

Mischungen mit Lärchenterpentin erstarren entweder auch gar nicht
oder erst nach sehr langer Zeit zu einer Gallerte.

Sehr wesentlich für das richtige Ergebnis ist das genaue Einhalten der
Temperatur. Eine Erhöhung auf nur wenige Grad mehr bewirkt, dass eine
Erstarrung nicht eintritt.

Diese Methode liefert bei quantitativen Nachweisen gute Resultate.

909. Wall, H. Über Acetanilid enthaltendes Wasserstoff super-
oxyd. (Amer. Journ. Pharm., 1906, p. 582.)

Dem Verf. wurden Proben von BLOo gebracht, die deutlich nach Nitro-
benzol rochen, das sich durch Ausschütteln mit Äther und Reduktion zu
Anilin auch nachweisen liess.

Nachforschungen ergaben, dass dem HoO? zur besseren Konservierung
Acetanilid zugesetzt war.

910. Wall, Ch. H. Der Gambir des Handels. (Amer. Journ. Pharm..
LXXIN, 1907, p. 203.)

Die Unit. Stat. Pharmac. schreibt vor, dass der Gambir nicht weniger
als 70 °;0 Alkohollösliches und höchstens 5 °/0 Asche enthalten soll.

Bei Untersuchung von 12 Handelsproben fand der Verf., dass diejenige
Sorte den Anforderungen am meisten genügt, die in hellfarbigen Würfeln in
den Handel kommt.

Geringere Sorten haben einen starken Modergeruch, der besonders an
dem wässerigen und alkoholischen Auszug zu bemerken ist.

911. Wallach. 0. Thujaöl. (Lieb. Ann. Chem., CCCLIII, 1907, p. 209.)

912. AVallacli. 0. und Büdecker, F. Über das Terpineol des Majoran-
öls. (Berl. Ber., XL, 1907, p. 596.)

Der Alkohol des Majoranöls C1(IH]7 • OH ist mit dem Terpineol des
Cardamomenöls identisch.

912a. Walther, 0, Zur Frage der Indigobildung. (Ber. D. Bot. Ges.,
XXVII, 1909, p. 106.)

Die Mitteilung behandelt nur nebenbei die Frage der Indigobildung;
wesentlich bemüht sich der in Palladins Laboratorium tätige Verf. zu zeigen,
dass das Verhalten der Indigopflanze, wenigstens des allein untersuchten
Polygonuni tinetorium, in den Uahmen der bekannten Palladinschen Theorie
der Atmungschromogene passt. Ausser einem solchen, dem Indoxyl, das in
gebundener Form (Glykosid) vorhanden ist, „scheint" dem Verf. die Anwesen-
heit einer Peroxydase, eines oxydierenden Enzyms, in Polijgonuni tinetorium
durch seine Versuche erwiesen zu sein, und „wahrscheinlich" kommt auch ein
— jedenfalls sehr schwaches — reduzierendes Enzym vor. Die Rolle der
Peroxydase bei der Indigobildung ist nicht erwiesen, und wie überall, so
bleibt der Zusammenhang, der zwischen dem oxydierenden Enzym, dem
( 'hromogen und dem reduzierenden Enzym nach der Lehre von der Atmungs-

678 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [264

chromogene bestehen soll, auch für die untersuchte Indigopflanze noch nach-
zuweisen.

Ref. möchte die Gelegenheit zu einem Hinweis darauf benutzen, dass
bei der Biochemie neuerdings der Kurswert der in so reicher Menge ge-
schaffenen oxydierenden und reduzierenden „Enzyme" infolge der Unter-
suchungen von Donv-Henault, Heffter u. a. nicht unbeträchtlich gesunken ist.
Es dürfte daher das Wort „Enzym" in diesem Zusammenhange vielleicht besser
durch den allgemeinen Ausdruck „Stoff" zu ersetzen sein.

913. Wang. Norwegische Digitalisblätter. (Norsk. Meg. f. Laegevid.,
1907. No. 1.)

Norwegische Digitalisblätter gingen mit Durchschnittswerten von 5,2 — 5.9
über den normalen toxischen Wert hinaus.

Zwei deutschen Blättersorten hatten die Werte 4,9 und 4,5.

Je älter die Droge, je geringer die Werte. Doch findet sich bei einem
Alter von 21 Jahren noch der Wert 3,2.

914. Warin, .1. Untersuchungen und Betrachtungen über den
Alkaloidreich tum des nach der internationalen Vorschrift be-
reiteten Belladonnaextraktes. (Journ. de Pharm, et Chim., 1908, p. 321.)

915. Watt, H. E. Bestimmung des Orcins in Roccella- (Journ. Soc.
Chem. Ind., NX VII, 1908, p. 612.)

910. Watts, F. und Temnany, H. A. Die Wirkung der Klärung mit
basischem Bleiacetat auf Zuckerrohrsaft. (Chem. Ztg., 31, 1907, p. 1273.)

917. Wauters, J. Über den Nachweis von Kokosfett. (Milw.
Centrbl., III, 1908, p. 532.)

918. Weber, D. Beiträge zur Entstehung des Akaloidharzes.
(Zeitschi-, allgem. österr. Apoth.-Verein, LXI, 1907, p. 424.)

919. Webster. H. u. Pursei, R. C. Die Bestimmung des Strychnins
in Strychnospräparaten nach dem Salpetersäureverfahren. (Am.
Journ. of Pharm., 1907, p. 1.)

920. Wedeineyer, K. Njavebutter. ((Jhem. Rev. Fett- u. Harz-Ind..
XIV, 1907. p. 35—36.)

Die Njavebutter und das Njaviöl stammen von den Samen einer Sapo-
tacee, Mimusops djave. Durch Äthyläther kann aus ihnen 50% Fett extrahiert
werden, das im erstarrten Zustande weiss aussieht und bei gewöhnlicher
Zimmertemperatur fest ist. Bei etwa 19° beginnt es zu schmelzen und bei
31° beginnen in ihm Ausscheidungen. Der Geruch ist schwach ranzig und
erinnert an Sheabutter. In dem extrahierten Fleisch der Djavenüsse waren
19,7°/0 Protein vorhanden; die Rückstände besassen einen unangenehmen, zu-
sammenziehenden, bitteren Geschmack. K. Krause.

921. Wedeineyer, K. Über das Canariaöl. (Seifensieder-Ztg., XXXIV,
1907, p, 26.)

Das Canariaöl stammt aus den Samen von Canarium commune und stellt
äusserlich ein schwach gelb gefärbtes Öl dar von angenehmem milden Ge-
schmack. Bei 15° legieren in ihm Kristallausscheidungen:

Spez. Gewicht bei 40° 0,8953

Hehnersche Zahl 95,5

Reichert-Meisl-Zahl 0,1

Verseif ungszahl 193,7

Jodzahl 64,7

Säurezahl 22,8

265] Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. (379

Acetylzahl 8,4

Refraktion (nach Zeiss) bis 40° . . . 45.-~>
daraus D = 1.4589

Konstanten der Fettsäuren:

Erstarrungspunkt 37,2°

Schmelzpunkt 40,4°

Sättigungszahl 191 .1

Das Canariaöl dient als Ersatz für Mandelöl und auch als feines Speiseöl.

K. Krause.

922. Weehnizen, J. Über salpetrige Säure in Erythrina Fr. (Pharm.
Weekbl., XLIV, 1907, p. 1229.)

923. Weevers, F. Physiologische Bedeutung des Koffeins und
Theobromins. (Ann. Jard. bot. Buitenz., vol. 21, Sei-. II, 6, Leiden 1907.)

924. Wefers-Bettuck, H. Verfäschtes Safran. (Pharm. Weekbl., XLV,
1908, p. 73)

925. Weigel, G. Über Cortex Yohimbe und Yohimbin. (Pharm.
Centralh., XLVIII, 1907, p. 967 u. 985.)

926. Weigel, G. Ersatzmittel für Kanadabalsam. (Pharm. Centralh.,
XLIX, 1908, p. 891.)

Der Verf. berichtet, dass häufig als Ersatz für Kanada baisam
Oregon baisam von der Conifere Pseudotsuga Douglasii Carr. stammend an-
geboten wurde Die Säurezahl des Oregonbalsams schwankt zwischen 103
und 108. Die Verseif ungszahl hält sich zwischen 111,5 — 122.

Der Oregonbalsams scheint auf jeden Fall geeignet zu sein, den im
Preise immer mehr steigenden Kanadabalsam zu ersetzen.

927. Weigel, G. Semen Strophanthi Kombe. (Pharm. Centralh., XLIX,
1908, p. 961.)

Der Verf. sagt, dass die Kombedroge stets rein und unverfälscht im
Handel zu haben sei und deshalb auch beibehalten werden sollte.

928. Weigel, G. Lignum et Radix Muira-puama. (Pharm. Centralh.,
XLIX, 1908, p. 139.)

Es wird eine brasilianische Droge beschrieben, die als Mittel gegen
Impotenz empfohlen wurde.

Die Stammpflanze konnte nicht mit Sicherheit festgestellt werden. Die
einen sagen, es sei Liriosma ovata Miers, eine Olacaceae (nicht Oleaceae, wie
Verf. falsch angibt), die anderen halten sie für die Acanthaceae Acanthus viridis.

Die Droge enthält Stamm- und Wurzelteile.

Es folgt eine genaue morphologische Schilderung der einzelnen Teile.

Irgendwelchen charakteristischen Geschmack oder Geruch geht der Droge
völlig ab.

Nach den Untersuchungen von Rebourgeon enthält die Droge:
Ätherisches Öl, Gerbstoff,

Eine kristallinische Substanz, Phlobaphem,

Indifferente Stoffe.

Nach Peckoldt fehlt ihr ätherisches Öl, Dagegen fand dieser Forscher
eine bitterschmeckende Substanz, die er Muyra puamin nannte.

Goll erklärt die Pflanze ähnlich wie China und Condurango als ein
Tonicum.

929. Weigel, G. Neues vom Drogenmarkt. (Pharm. Centrbl., XLIX,
1908, p. 891.)

680 Berichte über die pharuiakognostische Literatur aller Länder. [266

930. Weigel, G. Verfälschung von Hydrastisrhizom. (Pharm.
Oentralh., XLIX, 1908, p. 977.)

931. Weigel, G. Lignum Quassiae. (Pharm. Centralh., XLIX, 1908,
No. 48.)

Häufig findet eine Substituierung des wertvollen Surinam-Quassia durch
die billigere Jamaika-Quassia. Selbst in geschnittenem Zustande sind aber
beide Drogen leicht zu unterscheiden.

932. Weigel, G. Tubera Aconiti Ferox. (Pharm. Oentralh., XLIX, 1908.
p. 958.)

Tubera Aconiti Ferox aus Indien enthielten ebensoviel Gesarntalkaloide
wie die europäischen Akonitknöllen. Allerdings sind die Einzelalkaloide ver-
schieden.

933. Weigel, G. Radix bzw. Rhizoma Coptidis von Coptis ancmonae-
folia. (Pharm. Centralh., XLIX, 1908, p. 916.)

Diese Ranunculacee wird bei Malaria, Dyspepsie usw. angewendet.
Die Droge erinnert äusserlich sehr an Hydrastis, schmeckt sehr bitter
und ist geruchlos und berberinhaltig.

934. Weigel, G. Scopoliawurzel. (Pharm. Centralh., XLIV, 1908, p. 91.").}

935. Weigel, G. Mexikanische Cocablätter. (Pharm. Centralh., XLIX.
1908, p. 976.)

Die mexikanischen Cocablätter ähneln, wie der Verf. gefunden hat, den
Javablättern von ErytJ/roxylon truxillense. Der Gesanitalkaloid^ehalt belief sich
auf 1%. Cocablätter mit 0,82 % G-esamtalkaloiden sind von Westafrika in den
Handel gelangt.

936. Weigel, G. Über Safran. (Pharm. Centralh., XLIX, 1908, p. 977.1
Safran gehört zu den am meisten verfälschten Drogen. Es kam sogar

solcher mit Soda beschwerter Safran in den Handel.

937. Weil, R. Die Entstehung des Solanins in den Kartoffeln
als Produkt bakterieller Einwirkung. (Arch. Pharm., CCXLV, 1907,
p. 70—77.)

Verf. widerlegt die Angaben Wintgens gegen seine Annahme, dass die
Entstehung des Solanins in den Kartoffeln als Produkt bakterieller Einwirkung
anzusehen sei.

938. Wellborn, G. Nachweis von Strychnin in Vergiftungs-
f allen. (Pharm. Joum., LXXIX, 1907, p. 639.)

939. Wells, A. and Reeder, G. S. The fruit of the Celastrus scandens
and Solanum dulcamarum. (Chem. News, 1907, p. 199 — 200.)

Die Verf. untersuchten die Erüchte von Celastrus scandens und Solanum
dulcamarum auf ihren Gehalt an Wasser, Zucker, Öl und den wesentlichsten
Hestandteilen.

Der Arbeit ist eine Übersicht der diesbezüglichen bis jetzt schoD vor-
genommenen Untersuchungen beigegeben.

940. Welwart. Pormalinstärke. (Chem. Ztg., XXXI, 1907, p. 27.)

941. Welwart. Verfälschung von Naturschellack. (Chem. Ztg.,
XXXI, 1907, p. 143.)

Einige bei ihrer Verwendung zu Appretur- und Politurzwecken völlig
unbrauchbare Schellacksorten erwiesen sich bei näherer Untersuchung als in
hochprozentigem Alkohol zwar löslich, in heisser Boraxlösung dagegen voll-
kommen unlöslich. Natürliche Haize, die normal bei der Fabrikation von
Schellack Verwendung finden, wie Kolophonium, Harz, Leinölsäure oder Olein,

2671 Berichte über die pharinakognostische Literatur aller Länder. Q$\

waren in ihnen nicht nachweisbar. Dagegen ergaben die wässerigen Auszüge
der gepulverten Probe freie Schwefelsäure, Aldehyd und Phenol, so dass das
ganze Gemenge wahrscheinlich aus Kondensationsprodukten von Phenolen und
Aldehyden bestand, die mit natürlichem Schellack in verschiedenen Verhält-
nissen zusammengeschmolzen waren, und infolgedessen ein ähnliches Aussehen
wie letztere selbst in normalem Zustande zeigten, aber natürlich für eine gleich-
artige Verwendung völlig ungeeignet waren.

942. Wheeler, A. S. und Bemerkung dazu von Grandmougin, Z. Eine
neue Farbreaktion der Lignozellulosen. (Berl. Ber., 40, 1907, p. 1888.)

94:5. Wiechowski, W. Pharmakognosie des Laubblattes von
Mangifera indica L. (JLotos, LVI, 1908, Heft 5, p. 141 — 150.)

Die von schönen Figuren begleitete Arbeit gibt in ausführlicher Weise
anatomische Angaben über Mangifera indica L. Im Mesophyll der Blätter
wurden nach der unterseitigen Epidermis zu orientiert zahlreiche Secretzellen
gefunden, die einen dunklen körnigen Inhalt aufwiesen.

Der Inhalt löst sich ganz auf, wenn man die Schnitte mit Wasser,
Alkohol oder Lauge behandelt. In Lauge tritt eine intensiv sattgelbe
Färbung auf.

Mit Alkohol kann man aus den Blättern einen hellgelben, gut kristalli-
sierenden Stoff gewinnen. Dieser Stoff stellt die Muttersubstanz des Piuri
dar. Wird er an Kaninchen verfüttert, so bewirkt er Ausscheidung von
Euxanthon und Euxanthinsäure.

Der Schmelzpunkt dieses Produktes liegt zwischen 273° und 280°. Die
Analysen führen zur Formel

CigHigOii-

Vom Verf. wird es bezeichnet als Euxanthogen.

944. Wiegand, 0. und Lehmann, M. Über die Bestimmung von
Üineol (Eucalyptol) in Eucalyptus -Ölen. (Chem.-Ztg., XXXII, 1908, p. 109.)

944a. Wieler, A. Untersuchungen über die Einwirkung schwef-
liger Säure auf die Pflanzen. Berlin, Gebr. Borntraeger, 427 pp., 19 Ab-
bildungen im Text u. einer Tafel.

Verf. hat eine systematische Prüfung der Einwirkung schwefliger Säure
auf die verschiedenen Funktionen der Pflanze vorgenommen. Dabei stellte
sich heraus, dass die Assimilation in hohem Masse beeinträchtigt wird. Die
Beeinträchtigung ist abhängig von der Versuchspflanze und von der (nicht
giftig wirkenden) Konzentration der Säure. Da ein Verschluss der Spalt-
öffnungen durch die Säure nicht erfolgt, kann also auch die Herabsetzung der
Assimilation hierauf nicht zurückgeführt werden. Im Gegensatz zu der Assi-
milation erleidet die Atmung durch die schweflige Säure keine Beeinträchtigung.

In einem nach den Angaben von Wislicenus konstruierten Räucherhause
wurden Versuche mit stark verdünnter schwefliger Säure angestellt, die
längere Zeit andauerten. Sie lehrten unter anderem, dass die Ableitung der
Assimilate durch die Säure verzögert wird. Die schweflige Säure beeinflusst
ferner das Längenwachstum der Pflanzen in ungünstigem Sinne. Doch sind
dazu höhere Konzentrationen erforderlich, als man in Gebieten mit chronischen
Rauchbeschädigungen im allgemeinen beobachtet. Es ist daher wenig wahr-
scheinlich, dass die Verlangsamung des Höhenwachstums der Bäume in
solchen Distrikten durch die schweflige Säure direkt verursacht wird.

Die Versuche an Blättern aus verschiedenen Rauchschadengebieten
Hessen immer schweflige Säure erkennen. Doch waren die Mengen derselben

682 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 1268

im allgemeinen gering. Grössere Mengen zeigten sich erst, als Blätter unter-
sucht wurden, die der unmittelbaren Nähe der Rauchquelle entstammten. Ein
Gehalt an schwefliger Säure beweist aber noch nicht, dass die Blätter erkrankt
sind. Wahrscheinlich ist die schweflige Säure in den Blättern an organische
Verbindungen gebunden. Die Annahme, dass sie in diesen Organen eine Oxy-
dation zu Schwefelsäure erfährt, wird durch den Versuch widerlegt. Wie Ver-
suche mit zweckentsprechendem Verschluss der Spaltöffnungen zeigten, dringt
die gasförmige schweflige Säure hauptsächlich durch die Spaltöffnungen in die
Blätter ein. In feuchter Luft sind aber die Spaltöffnungen weiter geöffnet
als in trockener Luft. Hieraus erklärt es sich, dass bei feuchtem Wetter der
Rauch viel schädlicher wirkt als bei Trocknis.

Quantitative Untersuchungen der Luft in Rauchschadengebieten ergaben,
dass der Gehalt an Säure nicht hoch genug ist, um die Beschädigungen auf
deren direkten Einfluss zurückführen zu können. Der experimentell ermittelte
ungünstige Einfluss setzt im allgemeinen ziemlich grosse Säuremengen voraus.
Es muss also, so folgert Verf.. noch ein anderer Faktor in Betracht kommen,
auf dessen Rechnung die Beschädigungen teilweise oder womöglich aus-
schliesslich zu setzen sind. Dieser Faktor kann aber nur der Erdboden sein.
Da dieser dauernd unter der Einwirkung der Säure steht, muss er sich im
Laufe der Zeit verändern. Verf. hat deshalb der Beschaffenheit des Bodens
in Rauchschadengebieten seine besondere Aufmerksamkeit zugewandt. Er
konnte nachweisen, dass die humosen Substanzen des Bodens kleine Mengen
schwefliger Säure enthalten. Eine schädliche Wirkung dieser freien Säure bzw.
der aus ihr hervorgegangenen Schwefelsäure auf die Mikroorganismen im
Boden oder auf die feinen Würzelchen der Bäume ist nicht unmöglich, wenn
man ihre Wirkung jedenfalls auch nicht sehr hoch veranschlagen darf. Ander-
seits muss die Säure den Boden in der Weise verändern, dass sie mit den
basischen Bestandteilen desselben neue Verbindungen eingeht. Die Unter-
suchungen des Verf. zeigen nun, dass der Boden in Rauchschadendistrikten
immer stark humussauer ist. Diese Tatsache erklärt sich aus der Zersetzung

&

der Kalkverbindung der Humussäure durch die schweflige Säure. Einem
Boden mit freier Humussäure kann aber z. B. das Wasser nur sehr schwer
entzogen werden. Die Bäume müssen also in einem solchen Boden gleichsam
Wassermangel leiden.

Aus all diesen Beobachtungen schliesst Verf., dass es sich bei den
chronischen Beschädigungen und bei dem allmählichen Absterben der Bäume
in Rauchschadengebieten hauptsächlich um Ernähiungsstörungen handelt, die
ihren Ausgangspunkt vom Erdboden her nehmen. Daraus ergibt sich für ihn
die Möglichkeit, durch entsprechende Düngung, besonders durch Kalkzufuhr,
der zerstörenden (indirekten) Wirkung der schwefligen Säure eine Grenze zu
ziehen und Rauchblössen wieder aufzuforsten.

945. Wieler, A. Kattee, Kakao, Tee und die übrigen narkotischen
Auf gussgetränke. Leipzig 1907, 105 pp., 24 Fig.

'.>4«i. Willtrink, G. Tweede Verslag van de Selectie-Proe ven inet
de Natal-Indigoplant. (Dep. van Landbouw. s' Land Plantentium.)

947. Wildt, Willi. Über die experimentelle Erzeugung von
Festigungselementen in Wurzeln und deren Ausbildung in ver-
schiedenen Nährböden. (Apoth.-Ztg., XXII, 1907, p. 1105.)

948. Willstätter, R. und Benz, R. Kristallisiertes Chlorophyll.
(Liebigs Ann. Ühem., CCCLVIII, 1908, p. 267.)

269] Berichte über die pluumakognostisehe Literatur aller Länder. ßgy

949. Windaas, A. Untersuchungen über Cholesterin. (Arch.
Pharm., CCXLVI, 1908, p. 117.»

Verf. bespricht die fremden und eigenen Arbeiten über Cholesterin.
Die Formel des Cholesterins lässt sich nach seinen Untersuchungen auf-
lösen in

CH3

I
(CHs)oC18H97-CH-CH = CH,

CH, CH,

v

CHOH

Bezüglich der genauen Einzelheiten muss auf das Original verwiesen
werden.

950. Windaas, A. und Welsch, A. Über Antiarharz. (Arch. d. Pharm.,
1908, p. 508.)

Die Verf. haben gefunden, dass der Milchsaft von Antiaris toxicaria,
einer Artocarpaceae (Moraceae) ein sehr wirksames Herzgift enthält, das sie als
das Glykosid Antiarin bezeichnen.

Ein Nebenprodukt dieses Milchsaftes ist das Antiarharz. Dieses ist in
Petroläther gut löslich.

Das aus Äther und Methylalkohol auskristallisierte Harz hat einen
Schmelzpunkt bei 176°. Seine Zusammensetzung ist ersichtlich aus folgender
Formel

Vermittelst alkoholischer Kalilauge wird es in den Alkohol «-Amyrin

und in Zimtsäure zerlegt. Das kristallisierte Antiarharz ist also der Zimt-
säureester des a-Amyrins. Noch andere Alkohole als den genannten zu finden,
ist nicht "gelungen.

Ausser Zimtsäure war noch Stearinsäure in geringen Mengen nach-
weisbar.

951. Winterstein, E. und Hiestand, 0 Zur Kenntnis der pflanzlichen
Lecithine. (Zeitschr. phys. Chem., XLVII, p. 490 ff.)

Interessant ist, dass bei der Untersuchung von Kastanienblättern und
Gräsern der ätherische Auszug nach der Entfernung des Äthers einen Rück-
stand liess, der beim Kochen mit Säure eine die Fehlingsche Lösung redu-
zierende Flüssigkeit gab. Die physiologische Bedeutung des Lecithins liegt
nicht nur in der Absorbierung seitens colloidaler Körper, sondern darin, dass
ihm die Fähigkeit zukommt, mit gewissen Stoffen feste Verbindungen einzu-
gehen, die bei der Assimilation eine Rolle spielen.

Im übrigen ist wegen des reichen Inhaltes auf das Original zu ver-
weisen.

952. Wiatgen, M. Der Solaningehalt der Kartoff ein. Vortrag, ge-
halten in der Jahresversammlung deutscher Nahrungsmittelchemiker. (Schweiz.
Wochenschr. für Chemie u. Pharm.. 1907.)

Über Quantität und Herkunft des Solanins in den Kartoffeln sind schon
die verschiedensten Untersuchungen gemacht worden, so z. B. 1892 — 1893 bei
den Massenerkrankungen im Elsass. Damals gab die Tatsache, dass unter der
zusammengeschrumpften Haut mancher Kartoffeln an schwarzen Stellen Pilz-
wucherunü;en mit der Anwesenheit von Solaninmeni>en zusammenfielen, Anlass

Ö,S4 Berichte über die pharinakognostisehe Literatur aller Länder. I jf70

zur Ansicht, der hohe Solaningehalt sei auf bakterielle Ursachen zurück-
zuführen. Dem kann Verf. nicht beipflichten. Bezüglich seiner interessanten
Untersuchungsmethoden muss auf das Original verwiesen werden. Der un-
gleiche Solaningehalt ist zurückzuführen auf ungleiche Verteilung in der
Kartoffel. Das Solanin sitzt in den peripheren Schichten und nimmt nach
innen zu ab.

953. Winzheimer, £. Wie sind die neuesten Lokalanästhetica
— Stovain, Alypin, Novokain — entstanden, und welches sind
ihre Beziehungen zum Cholin? (Riedels Ber. BerL, 1906.)

954. Winzheimer, E, Beiträge zur Kenntnis der Kawawurzel.
lArch. Pharm., 1908, p. 332.)

Der Verf. fasst die Resultate wie folgt zusammen:
I. Die Kawawurzel enthält neben Wasser, anorganischen Salzen, Gummi,
Stärke und Zellulose: 5,3% Harze. 0,30 % Metkysticin, 0,268% ^-Me-
thysticin, 0,184% Yangouin, 0,022 °/0 Alkaloid, zwei Glykoside (0,69 °/0),
sowie freien Zucker, 0,7 — 0,8% amorphe in Wasser unlösliche Säure.
11. Das Harzgemisch (« -f- /j-Harz) enthält neben 23% freien Harzsauren,
77 % Harzester.

III. Die mittelst Petroläther erhaltenen Fraktionen des Harzgemisches ent-
halten grössere oder geringere Mengen an festen kristallisierenden Harz-
estern.

IV. Das aus dem Spiritusextrakt der Kawawurzel gewonnene Kristallgemenge
lässt sich durch systematisch geleitetes Kristallisieren aus Aceton in
Yangouin, Methysticin und t/; Methysticin zerlegen.

V. Dio einfachste Gewinnung des Yangouins geschieht durch Verseilung
der es begleitenden Verbindungen mittelst kalter alkoholischer Kalilauge.

VI. Das Methysticin O^H^Os ist, wie Pomeranz angenommen, ein /?-Keton-
säureester und enthält den Rest der Piperinsäure, der die Identität
des aus ihm gewonnenen Methysticols mit dem von Scholz syntheti-
sierten Piperonylenaceton erwiesen wurde.

VII. Das t/^-Methysticin ist, wie das Methysticin, ein Ester der Metbysticin-
säure.

VIII. Das Yangouin ist ein Laceton der Formel C^H^O^, die auf Grund der
bis jetzt gewonnenen Ergebnisse aulgelöst werden kann in

CH
CH30\ ^ /^CH

CHoO/ \/co

O
955. Wohnlich, Emil. Die Prüfung der Arzneimittel des Deutsche n
Arzneibuches nebst Erklärungen der chemischen Prozesse und
Berechnungen. Ferdinand Enke, Stuttgart 1907.

Nach ausführlicher Besprechung der anorganischen Arzneimittel werden
die organischen Arzneimittel geschildert. Eingeteilt sind sie in die beiden
bekannten Gruppen der aliphatischen und aromatischen Reihe. Dann folgt als
dritte Abteilung derjenigen Arzneimittel mit teilweise bekannter und unbe-
kannter Konstitution und Arzneimittel von keiner einheitlichen chemischen
Verbindung. In dieser Abteilung werden die Alkaloide, Glykoside und Harze,
eiweissartige Stoffe und Enzyme besprochen. Zu allen Untersuchungen werden
ausführliche Erläuterungen gegeben.

2711 Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. ߧ5

Genau werden auch die Drogen behandelt, soweit, sie nach dem D. A.-B.
als chemische Reaktion behandelt werden.

Betreffs der übrigen reichhaltigen Kapitel sei auf das Original ver-
wiesen.

956. Wollt", J. Schnelle Verflüssigung der Starke. (Zeitschr. f.
Spiritusind.. XXXI, 1908, p. 137.)

957. Wood, H. ('. Stellt Digitoxin das therapeutisch Wertvolle
der Digitalis vor? (Am. Journ. Pharm., LXXX, 1908, p. 107.)

Nur ein Viertel der Wirkung beruht dem Verf. zufolge auf dem
Digitoxin.

958. Woy, R. Über elektrische Kaffeeröstung. (Zeitschr. f. öff.
Chemie, XI, p. 476 ff.)

Gegen die früheren bekannten Koksröster ist der Vorzug der elektrischen
Röster die viel kürzere Zeit des Röstens ohne wesentliche Beeinflussung des
Geschmackes.

959. Wray, L. Bemerkungen über das Gegenmittel gegen Opium.
(Pharm. Journ.,* LXXV1II, 1907, p. 452.)

960. Wunderlich, A. Über das Fagopyrum-Rutin. (Arch. Pharm.,
1908, p. 241.)

961. Wunderlich. A. Notiz über die Glykoside von Capparis spinosa
und Globvlaria Alypum. (Arch. Pharm., 1908, p. 256.)

962. Wunderlich, A. Über das Viola Rutin (Viola quercitrini.
(Arch. Pharm., 1908, p. 224.)

Aus Flores Violae tricoloris gewann der Verf. etwa 2°/0 eines Rhamno-
gljkosides, das sich mit Rutin als identisch erwTies Aus den Flüssigkeiten,
die bei der Darstellung wewonnen wurden, konnten Salicylsäure, Spuren eines
alkaloidähnlichen Stoffes und geringe Mengen eines leicht veränderlichen
Farbstoffes isoliert werden.

963. Würffel, Ludwig. Über eine Verfälschung von Cortex fran-
gulae durch die Rinde von Alnus glutinosa- (Zeitschr. allg. öster. Apoth.-
Ver., LXI, 1907, p. 211.)

904. Yvon, P. Untersuchung von reifen und unreifen Mohn-
kapseln auf den Gehalt an Alkaloiden. (Journ. Pharm. Chim., XXVI,
19U7, p. 337.)

964a. Zaleski, W. 1. Über den Umsatz der Nucleinsäure in
keimenden Samen. (Ber. D. Bot. Ges., 1907, 25, p. 349—356.) 2. Über die
autolytische Ammoniakbildung in den Pflanzen. (Ber. D. Bot. G-es.,
1907, 25, p. 357—360.) 3. Über den Aufbau der Ei weissstoffe in den
Pflanzen. Vorläufige Mitteilung. (Ber. D. Bot. Ges., 1907, 25, p. 360
bis 367.)

Verf. verfolgte den Umsatz der Nucleinsäure in den wachsenden Teilen
der Keimpflanzen von Vicia Faba, indem er eine bestimmte Menge der im
Dunkeln gekeimten Samen in Cotyledonen und Achsenorgane zerlegte und
dann diese allein zur Analyse benutzte. Es wurden der Stickstoff- und der
Phosphor^ehalt der Eiweissstoffe ermittelt und der Bestimmung der Nuclein-
säure die der Purinbasen, der charakteristischen Spaltungsprodukte der Nuclein-
säure. zugrunde gelegt. Es ergab sich, dass während der Keimung der Samen
eine Zunahme des Eiweissphosphors in den wachsenden Teilen der Keim-
pflanze stattfindet. Hand in Hand damit geht eine Vermehrung der Purin-
basen in den Achsenorganen. Daraus ist zu schliessen, dass während der

686 Berichte über die pharmakognostisehe Literatur aller Länder. [272

Keimung der Samen die Nucleinsäure in den wachsenden Teilen an Menge
zunimmt. Da ausserdem gleichzeitig eine Vermehrung des Eiweissstickstoffs
in den Achsenorganen vor sich geht, so ist es wahrscheinlich, dass in diesem
Falle auch die Bildung von Nucleoproteiden stattfindet. Verf. glaubt nicht,
dass die Nucleinsäure den Achsenteilen ans den Cotyledonen zuströmt, sondern
vermutet, dass sie sich erst in den Achsenteilen bildet, und dass diesen die
Purinbasen und Phosphate, die das Material zum Aufbau der Nucleinsäure
liefern, aus den Cotyledonen zuströmen. Hierfür spricht auch der eigentüm-
liche Umstand, dass die Zunahme der Nucleinsäure in den Achsenorganen er-
folgt, obwohl in ihnen ein Enzym vorhanden ist, das Nucleinsäure spaltet
(Nuclease). Anscheinend gehen in den Achsenorganen, sei es an verschiedenen
Stellen oder zu verschiedenen Zeiten, zwei entgegengesetzte Prozesse, nämlich
Aufbau und Abbau der Nucleinsäure vor sich.

Schon früher hatte Verf. gezeigt, dass nach der Verwundung von
Zwiebeln, Knollen und Wurzeln verschiedener Pflanzen eine Zunahme des
Eiweissstickstoffs in ihnen stattfindet. Dann hat Kowschoff Versuche aus-
geführt, um zu beweisen, dass sich auch die Nucleoproteide in den verwendeten
Zwiebeln von Allium Cepa bilden, und weiter ist von Iwanoff die Zunahme
des Eiweissphosphors in verwundeten Zwiebeln beobachtet worden. Iwanoff
fand, dass das Verhältnis des Eiweissphosphors zu dem Eiweissstickstoff (P/N)
seiner Grösse nach dem der Nucleoproteide entspricht, und da es sich während
des Versuches nicht verändert, so zog er daraus den Schluss, dass sich nur
Nucleoproteide in den verwendeten Zwiebeln bilden. Verf., dem die Methode
Iwanoffs nicht einwandfrei erschien, hat selbst einschlägige Versuche an
Zwiebeln von Allium Cepa und ausserdem an Knollen von Kartoffeln und
Dahlien ausgeführt. Sie bestätigten, wenigstens für Kartoffeln und Zwiebeln,
die Unveränderlichkeit des Quotienten P/N, der seiner Grösse nach dem der
Nucleoproteide entspricht; demnach gibt nach Ansicht des Verf. dieser Quotient
kein Mittel, um daraus zu schliessen, dass alle Eiweissstoffe, die sich bilden,
zu den Nucleoproteiden gehören, da während des Versuches verschiedenartige
Umwandlungen der Eiweissstoffe eintreten können. Bemerkenswert ist, dass
Dahliaknollen und Alliumzwiebeln ungeachtet des in ihnen vor sich gehenden
Eiweissaufbaues proteolytische Enzyme enthalten, die den Abbau der Eiweiss-
stoffe verursachen. In verwundeten Zwiebeln ist die Proteolyse schwächer
als in unverletzten; wahrscheinlich bilden sich nach der Verwundung anti-
proteolytisch wirkende Stoffe.

Unter den Produkten des EiwTeissabbaues durch proteolytische Enzyme
ist mehrfach Ammoniak nachgewiesen worden. Schulze hat gezeigt, dass es
in etiolierten Keimpflanzen auftritt, und neuerdings hat Costoro Beobachtungen
über autolytische Ammoniakbildungen in solchen Keimpflanzen veröffentlicht.
Verf. teilt hierzu eine Reihe weiterer Versuche an etiolierten Keimpflanzen
von Vicia Faba und am Spargel mit. Den Ursprung der in diesen Versuchen
nachgewiesenen autolytischen Ammoniakbildung lässt Verf. unentschieden ;
doch hält er es für wahrscheinlich, dass unter Bedingungen, die zur Eiweiss-
bildung geeignet sind, Ammoniak dazu verbraucht,, aber in anderen Fällen in
Form von Asparagin gespeichert wird. Der Ammoniakverbrauch in den
Pflanzen wird wahrscheinlich durch entsprechende Enzyme verursacht.

965. Zehdei), (i. Punaria Ascochingae. (Med. Woch., 1906, No. 38.)

966. Zellner, Jalins. Chemie der höheren Pilze. Leipzig, Wilhelm
Engelmann, 1907, M. <).

273] Berichte über die pharrnakognostische Literatur aller Länder. 687

Das ausserordentlich interessante Werk basiert auf eingehendsten ge-
nauen Untersuchungen und einem überaus reichhaltigen genauen Analysen-
material. Das Werk ist als äussert willkommene Ergänzung der „Biochemie
der Pflanzen" von Czapek zu betrachten, da dieser Autor bekanntlich vor
allem den höheren Pflanzen sein Augenmerk zukommen liess.

Die einzelnen Aschengehalte wurden auf ihre Hauptbestandteile unter-
sucht und sind nach ihrer chemischen Zusammengehörigkeit in Kapiteln be-
schrieben. Die gefundenen Ergebnisse sind in übersichtlichen Tabellen erläutert.
Sehr anzuerkennen sind die genauen Literaturangaben.

Vorzüglich ist das Kapitel über die „Chemische Zusammensetzung
einiger genauer untersuchter Pilzartenu. Verf. möchte auf die Darstellung der
Chemie des Mutterkornes besonders aufmerksam machen.

Interessant sind die Kapitel über den Nährwert der Pilze.

9G7. Zemplen, 6. Über die Einwirkung vom Kaliumpermanganat
auf Zellulose. (Chem.-Ztg., 31, 1907. 1296.)

968. Zernik, F. Die wichtigsten neuen Arzneimittel des Jahres
1906. (Ber. d. pharm. Ges., XVII, 1907, p. 81.)

969. Zickgraf. Cortex Quillariae. (Therap. d. Gegenw., 1906, p. 160.)

970. Ziegler, H. Die Zichorie. (Zentralbl. allgem. Gesundheitspflege,
XXVII, 1908, p. 32.)

971. Zielstorft'. Aus der Praxis der Nahrungsmittelkontrolle.
(Chem. Ztg., 1906, p. 1263.)

972. Zimmermann, A- Über die Krankheit der Erdnüsse. (Pflanzer,
III, 1907. p. 129.)

973. Zimmermann, A. Die Wachspalme (Copemicia cerifera). (Pflanzer,
III, 1907, p. 191.)

974. Zimmermann, A. Die neuen kautschukliefernden Manihot-
Arten. (Pflanzer, IV, 1908, p. 193.)

Der Verf. gibt eine ausführliche Schilderung über die botanische
Stellung, Verbreitung und Kultur von Manihot dichotoma, Manihot heptaphijlla,
Manihot piauhyensis, Manihot violacea und Hotnima Teissonieri (Manihot Teis-
sonieri).

Es folgen Abschnitte über die Gewinnung, Qualität und die Erträgnisse
des aus diesen Pflanzen gewonnenen Kautschuks.

975. Zopf, W. Die Flechtenstoffe in chemischer, botanischer,
pharmakologischer und technischer Beziehung. 449 pp., 71 Abbild.
Jena 1907, G. Fischer. 14 M.

Die Flechten bilden, wie Schwendener anatomisch, Stahl experimentell
durch Kultur zeigte, eine Verbindung von Pilz und Alge. Nach der jetzt
herrschenden Auffassung liegt eine Symbiose vor. Dieses biologische Ver-
hältnis äussert sich speziell in einem chemischen Zusammenwirken der beiden
Komponenten, welches zur Erzeugung von Stoffwechselprodukten führt, die
erwiesenermassen im Stolfwechsel anderer Pflanzen nicht vorkommen.

Diese spezifischen Flechtenstoffe tragen meist den Charakter von säure-
artigen Verbindungen, man hat sie daher schlechthin als Flechtensäuren be-
zeichnet. Im Laufe von 80 Jahren haben nun zahlreiche Chemiker, Botaniker,
Techniker und Mediziner eine solche Fülle von chemischen, biologischen,
technischen und pharmakologischen Beobachtungen und Versuchen hierüber
angestellt, dass eine grosse Literatur entstanden ist. Diese zerstreuten Beob
achtungen und Materialien hat Verf. gesammelt und kritisch bearbeitet. Der

688 Berichte über die pharmakoguostische Literatur aller Länder. [274:

Botaniker ist an diese schwierige Aufgabe nicht herangetreten, ohne sich
durch langjährige chemische Vorarbeiten, sowie durch lichenologische, bio-
logische und physiologische Vorstudien in das Gebiet eingearbeitet zu haben.
Seine Monographie erleichtert den künftigen Forschern auf diesem noch viel
Erfolg versprechenden Gebiete der physiologischen Chemie nicht bloss die
Arbeit, sondern bietet ihnen auch neue Gesichtspunkte in Menge.

Den ersten Anstoss zur Erforschung der Flechtenstoffe gab die Praxis.
Man hatte längst gefunden, dass manche, z. B. die Roccella- Arten, wichtige
Färbeprodukte liefern, wie Orseille und Lackmus. Vor der Erfindung der
Anilinfarben spielten solche Produkte in der Färberei eine wichtige Rolle.
Das gab den Chemikern Veranlassung, die Muttersubstanzen dieser Farbstoffe
(Chromogene) ans den Flechten darzustellen und sie näher zu untersuchen.
So lernte man Lecanorsäure, Erythrin, Gyrophorsäure als Orseille und Lackmus
liefernde Chromogene kennen.

Bitter schmeckende Flechten waren seit lange zu Heilmitteln verwandt
worden. Damit war die Anregung gegeben, die bitter schmeckenden Prinzipien
zu isolieren, und so entdeckte man die Cetrarsäure, das Pikrolichenin, die
Fumarprotocetrarsäure u. a. Weitere Anregung gab der Umstand, dass manche
Flechten auffällig schwefelgelbe, gelbgrüne, zitronengelbe, orange und rote
Farben besitzen. Man suchte die Ursachen dieser Färbung zu ermitteln und
fand prächtig gefärbte Flechten säuren, so das Parietin (in der orangegelben
Wandflechte Xanthoria parietina), die Usninsäure in gelben Bartflechten
( Usnea- Arten).

Inzwischen ist nun durch die grosse Zahl von einzelnen Untersuchungen
die Zahl der gefundenen Flechtensäuren auf etwa 150 gestiegen. Davon ge-
hören 100 der aromatischen Reihe, etwa 50 der Fettreihe der Kohlenwasser-
stoffe an. Unter denen, die sich in Menge darstellen lassen, sind manche
selbst nach ihrer Konstitution fast vollständig oder vollständig bekannt. Als
Beispiel diene die 1843 entdeckte Vulpinsäure (von Volhard auch synthetisch
gewonnen). Sie hat die Formel C^E^Or,, Schmelzpunkt 148 ° und kristallisiert
monoklin in schmalen Prismen (aus Äther oder Alkohol) oder in kurzen, dicken
Platten (aus Benzol oder Chloroform). Die Säure ist von zitronengelber Farbe,
die z. B. Evernia vidpina, Cetraria pinastri u. a. am ganzen Thallus aufweisen.
Sie ist in ihrer Konstitution, ihren Löslichkeitsverhältnissen, ihrer optischen
Wirksamkeit und ihrer Spaltungsmöglichkeit ausführlich studiert und bekannt.
Eine ähnlich vollständige Charakteristik ist bisher nur noch für wenige andere,
so die Lsninsäure, das Erythrin, Lecanorsäure usw., gegeben worden. Der
Grund dafür liegt in der oft schwierigen Beschaffung des Materials. Fälle
von hohem Prozentgehalt sind das Vorkommen von Lecanorsäure in Parmelia
coralloidea zu 23,5 °/0, von Vulpinsäure in Lepraria chlorwa zu 10,5 °/0 der luft-
trockenen Substanz; dagegen machen in Physcia virella alle Flechtensäuren
zusammen kaum 0,5% aus, und im allgemeinen gehören sehr grosse Mengen
gleichartigen und von fremden Beimischungen freien Materials dazu, um solche
Untersuchungen namentlich an kleinen Formen (auf Steinen!) auszuführen. So
kennt man von vielen Flechtensäuren nur das eine oder andere Derivat (Salz.
Spaltungsprodukt usw.) oder kann die Säure selbst nur durch Schmelzpunkt.
Löslichkeit, Farbereaktionen und Kristallform charakterisieren. Die stets vor-
handene Kristallisationsfähigkeit erleichtert im allgemeinen die Rein-
darstellung.

275 1 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. 639

Die Gewinnung der Flechten säuren beginnt mit dem Ausziehen der
Flechten in indifferenten Lösungsmitteln (Aceton, Äther, Benzol). Verwendet
man, wie es früher geschah, andere, z. B. Alkalien, so erhält man statt der
Flechtensäuren nur ihre Spaltungsprodukte. Die durch Abdestillieren der
Lösungsmittel gewonnenen Kristallmassen enthalten meist mehrere Flechten-
säuren; diese sind voneinander sowie von Harz, Chlorophyll, Wachs usw.
wieder mit indifferenten Lösungsmitteln zu trennen. Durch wiederholtes Um-
kristallisieren erfolgt dann noch Reinigung der einzelnen Stoffe. Für ihre
Reinheit ist die Konstanz des Schmelzpunktes das wesentliche Kriterium.
Das ist der Weg, auf dem sich die Darstellung nach Möglichkeit zu bewegen
hat, und auf dem Verf. seine zum Teil früher in Liebigs Annalen der Chemie
(seit 1895) veröffentlichten und jetzt zusammengefassten chemischen Ergeb-
nisse fand. Aus den gegenwärtigen Kenntnissen über die Flechtenstoffe hat
Verf. in seinem Buche das für Biologie und Physiologie der Flechten Wert-
volle zum ersten Male im Zusammenhang herausgeschält.

Es wurde oben auf die Flechtensäuren als Produkt der Symbiose von
Alge und Pilz hingewiesen. Die Frage indessen, wie sie durch die Tätigkeit
der Symbionten im einzelnen zustande kommen, harrt auch jetzt noch der
Lösung. Da der in Flechten vorhandene vierwertige Alkohol Erythrit als ein
Erzeugnis frei lebender Algen {Pleurococcus und Trentepohlia) bekannt geworden
ist, so wird vom Verf. hier die Vermutung ausgesprochen, dass bei manchen
Flechtensäuren, die als Ester (d. h. aus Alkoholen mit Säuren unter Wasser-
austritt entstandene Verbindungen) von Lacton- oder Carbonsäuren aufgefasst
werden, die Alge den Alkohol, der Pilz aber die Säure liefere. Jedenfalls
sind die Flechtensäuren im allgemeinen nicht weiter zur Verwendung kommende
Auswurfstoffe des Flechtenkörpers, die in Kristallen an den Hyphen des Pilzes
zur Ausscheidung gelangen. In diesen und vielen Fällen reichlicheren Vor-
kommens wird der Sitz der Flechtensäuren bisweilen durch Farbreaktionen
leicht kenntlich. So wurde von Chemikern festgestellt, dass Erythrin- und
Lecanorsäure mit Chlorkalklösung blutrot werden, Parietin mit Kalilauge
purpurrote Lösung, mit Baryt- und Kalkwasser violette, unlösliche Salze gibt.
Mit Recht verwendeten deshalb Lichenologen wie Nylander und Th. Fries
solche Reaktionen zur Unterscheidung. Heutzutage sind die Möglichkeiten
von (vorzugsweise mikrochemischen) Mitteln zum gleichen Zweck noch ver-
mehrt um die Benutzung charakteristischer, wenngleich farbloser Kristall-
bildungen, die sich bei Verwendung von Alkalien oder alkalischen Erden
bilden. Die in [Ts/jea-Arten reichlich vorhandene Barbatinsäure bildet z. B.
mit wässerigem Natriumbicarbonat das barbatinsäure Natrium, das in grossen
Aggregaten farbloser Kristalle an Thallusschnitten zutage tritt. Bei dieser
Reaktion ist auch zu erkennen, dass die Barbatinsäure ungleich im Thallus
verteilt ist und besonders gegen die Algenzone hin auftritt. So lässt sich
allgemein durch Reagentien, wie sie heute für den Lichenologen unentbehrlich
sind, feststellen, von welchen Thalluspartien die Flechtensäuren abgeschieden
werden. Manche davon sind streng lokalisiert, Vulpinsäure z. B. nur in der
Rinde, ebenso das die Xanthoria parietina gelb färbende Parietin, die die gelb-
grüne Farbe der Landkartenflechte, RJiizocarpon geographicum, bedingende
Usninsäure u. a. m. Andere treten dagegen nur im Mark der Flechten auf:
Barbatinsäure in [Tsnea-Arten, Olivetorsäure in Pseiidovemia olivetorina- Wieder
andere linden sich an beiden Orten in der Flechte, so Salazinsäure bei Placo-

Botanischer .Tahesbericht XXXVI (190S) 3. Abt. [Gedruckt 27. 12. 11.) 44

ß90 Berichte über die pharmakognostische Literatur aller Länder. [276

dium alphoplacum in der Rinde, aber auch um die Algen und im Mark.
Übrigens treten die Flechtensäuren auch in den Fruktifikationsorganen auf.

Die Beziehungen zwischen Flechtensäuregehalt und Vorkommen der
Flechte hat Verl. zum ersten Male dargestellt. Dass geographische Verbreitung,
Art des Substrates und Jahreszeit für die Qualität der in den Flechten auf-
tretenden Säuren ohne Bedeutung sind, wird mit genügenden Beispielen be-
legt. Anscheinende Gegenbeweise waren wohl stets durch falsche Bestimmung
der Flechten, der gefundenen Säuren, durch ihre unvollkommene Reindarstellung
oder durch Spaltung der Stoffe infolge fehlerhafter Methode hervorgerufen.
Dagegen schwankt die Quantität der Säuren (zum Teil also auch die Intensität
der Färbung) je nach der Stärke der Insolation oder Feuchtigkeit beträchtlich:
Xanthoria parietina, die gelbe Wandflechte, wird auf besonnten Felsen fast
orangegelb, an schattigen Borken mehr zitronenfarben, ja unter Umständen
fast graugrün. Ebenso enthielt Evemia prunastri von feuchtem Standorte
etwa 5 % Atranorsäure, von trockenem Standorte nicht ganz 1 %. Eine
andersartige Beziehung zum Standort weisen die Träger der Flechtensäure
insofern auf, als diese Stoffe auch in der Natur vielfach unter äusseren Ein-
flüssen (z. B. der Einwirkung des Ammoniaks im Boden oder der Luft)
chemische Veränderungen eingehen. Solche können wiederum im Farbwechsel
des Flechtenthallus sichtbar werden. Dass die Flechtensäuren für die Flechte
ein Schutzmittel gegen Tierfrass darstellten, ist vom Verf. durch zahlreiche
Tierversuche als irrige Annahme nachgewiesen worden. Bei der Verwendung
von Flechten in der Medizin und Technik sind jedoch die Flechtensäuren die
spezifisch wirksamen Stoffe.

Die mit Ausnahme der Gallertflechten wohl im ganzen Bereich der
Gruppe anzunehmende Verbreitung der Flechtensäuren kann um so ent-
schiedener als wertvolles Ergebnis der chemischen Einzeluntersuchungen hin-
gestellt werden, als sich aus der bei Verf. 29 Seiten umfassenden Zusammen-
stellung der schon bearbeiteten Flechten (309 Formen oder Arten und 67 Gat-
tungen) ergibt, dass innerhalb kleinerer oder grösserer systematischer Ein-
heiten gewisse, oft höchst auffällige, chemische Übereinstimmungen, anderseits
auch wieder auffällige Verschiedenheiten auftreten. So weisen alle Calyciaceen
ein Pulvinsäurederivat, von neun Umbilicariaceen acht Gyrophorsäure (ein
Orsellinsäurederivat), 13 Stereocaulon- Arten Atranorsäuregehalt, davon sieben
auch die Psoromsäure auf u. dgl m. In vielen Fällen sind hierdurch Ver-
wandtschaften, die auf Grund der Morphologie nur vermutet worden waren,
bestätigt worden, in anderen hat die chemische Unserscheidung die morpho-
logisch sicher auch mögliche, aber um zufälliger Übereinstimmungen willen
erschwerte Trennung von Formen wesentlich erleichtert. Dass hierdurch die
Flechtensystematik, die unter nicht endender Formentrennung und Unter-
scheidung von Varietäten leidet und die Wirkung äusserer Einflüsse ausser
acht lässt, auf die höhere Stufe einer physiologisch-chemischen, die Phylo-
genese erbellenden Betrachtung gehoben wird, das ist das erreichte Ziel von des
Verfs. Arbeit. Die physiologische Chemie, die hier eine Fülle neuer Beob-
achtungen in den Schoss fällt, wird für sich allerdings noch vieler Einzelarbeit
auf verwandtem Boden bedürfen, bis sich die „Flechtenstoffe" in ein grösseres
Bild des Stoffwechsels von Pilzen, Algen und Flechten einfügen.

976. Zopf, W. Zur Kenntnis der Secrete der Farne. (Ber. D. Bot.
Ges., XXIV, 1906, p. 264, p. 272.)

277] Berichte über die pharmakognostisohe Literatur aller Länder. QQl

977. Zopf, W. Zur Kenntnis der Flechtenstoffe. (Liebigs Ann.
Chem., COCLII, 1907, p. 1.)

978. Zopf, W. Beiträge zu einer chemischen Monographie der
Cladoniaceen. (Her. D. Bot. Ges., XXVI, 1908, p. 57.)

979. Zornig, Heinrich. Arzneidrogen. Als Nachschlag für den Ge-
brauch der Apotheker, Ärzte, Veterinärärzte, Drogisten und Studierenden der
Pharmazie. I. Die offiziellen Drogen in Deutschland, Österreich und der
Schweiz. München 1908.

980. Zornig, H. Tabellen für das pharmakognostische Prac-
ticum. In der Neuausgabe bearbeitet. München, Verlag von Valentin Höfling,
127 Pp.

Das Buch soll ausschliesslich als praktisches Hilfsmittel beim Unterrichte
dienen. Es behandelt deshalb nur Drogen, zu deren Prüfung eine mikro-
skopische Untersuchung in bezug auf ihre Echtheit und Reinheit verlangt
werden muss. Das Werk zerfällt in folgende Kapitel: Pulverwurzeln, Knollen,
Wurzelstöcke, Zwiebeln, Sprossachsen, Rinden, Hülsen, Kräuter, Blätter, Blüten,
Früchte, Samen, Pilze, Algen, Flechten, Arzneistoffe ohne organische Struktur.
Eine Bestimmungstabelle der Drogenpulver findet sich am Schlüsse.

Leider fehlen der Arbeit gänzlich die unbedingt notwendigen Ab-
bildungen.

981. Brissemoret, A. Beitrag zum Studium der Farbreaktionen
der Gerbstoffe. (Bull, science pharm., XIV, 1907, p. 504.)

Verf. gibt Färbungen an, welche die verschiedenen Gruppen der Gerb-
stoffe geben, wenn folgende Reaktion angewendet wird.

Einige Milligramm der Substanz werden in ein wenig 60prozentigem
Alkohol oder Essigäther in einem Reagenzglase gelöst. Dann werden 3 cem
Eisessig zugesetzt, der in 100 cem 1 cem einer Sprozentigen Eisensulfatlösung
enthält. Nur wird gemischt.

Dann lässt man an der Reagenzglaswandung 3 cem reine Schwefelsäure
herabfliessen. Diese muss in 100 cem 1 cem obiger Eisensulfatlösung enthalten.

Die spezifischen Färbungen, die bei dieser Methode eintreten, sind an
der Berührungsfläche der beiden Flüssigkeiten oder häufiger noch in dem
oberen Teile der Schwefelsäureschicht unterhalb einer stärkeren oder schwächeren
braunen Zone zu sehen.

Diese Methode ist sehr geeignet, gerbstoffhaltige Drogen und Präparate
zu identifizieren.

982. Brooks, C. H. Temperature and toxic action. (Bot. Gaz., 1906,
42, p. 359—375.)

Der Verf. untersucht die Abhängigkeit der Giftwirkung der Schwefel-
säure, Salpetersäure und des Kupfersulfats von der Temperatur, die während
der Einwirkung herrscht. Versuchsobjekte waren: Botrytis vulgaris und Monüia
fruetigena als Beispiele von Parasiten, Sterigmatocystis nigra, Mucor Mucedo und
Penicillium glaueum als Beispiele von Saprophjten, erstere mit relativ niederem,
letztere mit höherem Temperaturoptimum. Die Pilze wurden auf Zuckerrüben-
scheiben kultiviert und ihre Sporen bzw. Conidien in Tropfen von Zucker-
rübenextrakt übertragen, die mit der betreffenden Giftlösung in der gewünschten
Konzentration versetzt waren. Solche Tropfen gelangten als hängende Tropfen
in feuchte Kammern, die bei verschiedenen Temperaturen aufgestellt wurden.
Die Resultate sind verzeichnet in Form von Kurven, die Temperaturen sind
auf der Abszisse, die Prozente gekeimter Sporen auf der Ordinate aufgetragen.

44*

692 Berichte über die phannakognostische Literatur aller Länder. [278

Es wurden zweierlei Versuche angestellt. Erstens solche, bei welchen
so starke Giltkonzentrationen verwenden wurden, dass in denselben keine
Keimung stattfand, vielmehr erst nach Übertragung in reinen Zuckerrüben-
extrakt, nachdem die Sporen 24 Stunden bei verschiedenen Temperaturen
in der Giftlösung verweilt hatten. Hier zeigte sich das Gift von um so
grösserer Nachwirkung, je höher die Temperatur während der Exposition ge-
wesen war. Die grösste Steigerung der Giftwirkung lag für Botrytis und
Mucor zwischen 5 und 10, für Penicillium zwischen 10 und 20, für Mucor
und Sterigmatocystis zwischen 15 und 20 Grad. Beachtenswert ist, dass die
Schädigung weit geringer ausfällt, wenn die Temperatur, bei welcher die
Sporen im Gift verweilen, unter dem Temperaturminimum für die Keimung liegt.
Es zeigte sich ferner, dass die beiden Pilze (Botrytis und Monilia), die über-
haupt unter den Giften am meisten leiden, auch die beiden einzigen der fünf ge-
nannten sind, die in reinem Wasser, ohne chemische Reizung, zu keimen vermögen.

Bei der zweiten Art von Versuchen fand Keimung und Wachstum in gift-
haltigen Rübenextrakttropfen statt; hier wurden alsoGiftlÖsungen von niedrigerer
Konzentration verwendet als bei den ersten Versuchen. Im Gegensatz zu oben
war bei derartiger Versuchsanordnung die Giftwirkung um so geringer, je
näher die Temperatur dem Optimum kam. Z. B. für Sterigmatocystis bei
30 Grad geringer, als bei 25, bei den anderen Pilzen umgekehrt, da letztere
ein niedriger gelegenes Optimum haben als erstere Form. Die Giftwirkung
zeigte sich am Sinken des Prozentsatzes keimender Sporen, ferner auch an der
anormalen Entwickelung des Mycels. Zur Kontrolle wurden auch Versuche
in Kölbchen mit gifthaltigem Rübenextrakt angestellt, die aber nicht durchweg
die gleichen Resultate ergaben. Jedoch zeigte sich bei tunlichster Vermeidung
aller Fehlerquellen auch hier, dass die Giftwirkung mit Annäherung an das
Temperaturoptimum sinkt; nur die Kupfersulfatkurve hat einen Knick, da bei
15, 25 und 30 Grad die Wirkung des Giftes schwächer ist als bei 20 Grad.
Salpetersäure (nicht aber Schwefelsäure) übt bei höheren Temperaturen eine
starke, in der Vermehrung des Trockengewichts sich bemerkbar machende
Reizwirkung aus (Sterigmatocystis).

983. Charabot, E. und Lalqne, G. Bildung und Verteilung des
Öles in einer lebenden Pflanze. (Compt. rend., UXLIV, 1907, p. 152.)

Der Verf. kennt bei der einjährigen Pflanze drei verschiedene Epochen,
was die Ölproduktion angeht.

I. In der ersten Epoche überwiegen die Blätter im Ölgehalt, die bis zur
elffachen Menge des in den Stielen vorhandenen Öles besitzen. In dieser
Epoche fehlt das Öl den Wurzeln.

IL In der zweiten Epoche, in der Blütezeit, besitzen die Stiele, ebenso
auch die Wurzeln und anderen Organe viel Öl. In dieser Periode enthalten
die Blätter die doppelte Menge Öl.

III. In der dritten Epoche ist ein Hauptsitz der Öle die Blütenstände;
in den Wurzeln häuft sich das Öl immer weiter an. Das meiste Öl aber findet
sich auch in dieser Periode immer noch in den Blättern.

984. Grognot, L. Die synthetischen Harze. (Rev. gener. Chim. pure
appl., X, 1907, p. 49.)

Der Verf. gibt eine Zusammenstellung aller Synthesen von Harzen aus
Aldehyden allein und von Aldehyden und Phenolen zusammen.

Prlanzengeographie von Europa 1908. Schizoaiyceten 1908. 693

XXIV. Pflanzengeographie von Europa 1908.

Von F. Tesseiidorff.

Die Literatur von 1908 soll zusammen mit der von 1909 im Jahrgange
XXXVII (1909) des Jahresberichtes veröffentlicht werden, da der Verfasser
infolge grosser Anspruchnahme durch andere Arbeiten den Bericht nicht recht-
zeitig fertigstellen konnte

F. Fedde.

XXV. Schizomyceten 1908.

Von W. Herter.

Da der Verfasser erst vor kurzem für die Folgezeit den Bericht über-
nommen hat, soll die Literatur von 1908 und 1909 zusammen im nächsten
Jahrgange veröffentlicht werden.

F. Fedde.

Autorenregister.

Die Zahlen hinter II beziehen sich auf die zweite, hinter III auf die dritte

Abal III, 467.
Abbey-Yates, Reginald II,

912. — III, 249.
Abbott, J. F. 728.
Abderhalden, Emil 181,

182. — II, 702, 710. —

II, 415, 494.
Abel III, 415.
Aberson, J. H. II, 656.
Abrams, Le Eoy II, 188.
Abromeit II, 770.
D'Abuquerque,J.P. 11,874.
Achalme II, 876.
Achard 186.

Acqua, C II, 666.
Adam, J. II, 924, 925.
Adamovic, L. II, 70. —

III, 312.
Adams, C. C. 543.
Adams, E. II, 5.
Adams, John 151, 344. —

II, 633. — III, 21.
Adeney, W. E. 354.
Aderhold, R. 203.
Adlung, R. II, 52.
Adre, Ad. 641.
Aerdschot, P. van 413.
Aggs, H. Gurney III, 112.
Ahrens III. 415.
Aigremont III, 1.
Aigret, Gl. II, 552, 769.

— III, 291.
Aisslinger, H. 516. — II,

904.

Allteilung.

Akerman, A. II, 61.
Albahary, J. M. III, 415,

416.
Albert 792. — II, 61.
Albert, A. II, 774.
Albo, G. II, 4.
Albrecht, G. 718.
Albrecht, K. II, 8, 46, 50.
Albrecht, Kuno 663.
Akock, J. H. III, 417.
van Alderwerelt van Ro-

senburgh, C. R. W. K.

II. 778, 779, 781.
Aldini, T. 399.
Aldrich, J. M. II, 604.
Aldrovandi, U. 412, 415,

416. 424.
Aleardi, A. 399.
Alexander, H. R. II, 844.
Alexander, J. A. II, 253.
Alexander, P. II, 940. —

— III, 417.
Alexander, Th. 803.
Alexandrescu 201.
Alibrandi, P. 389.
Alilaire, E. 186.
Aliseh, J. 394.
Allan, J. A. III, 46.
Allan, W. II, 41.
Allard, E. J. III, 227, 273,

330.
Allen, J. A. 68. — III,

355.
Allen, R. W. II, 77.

Allen, W. B. 107.

Allen, W. J. II. 839, 863,

864. — II, 865, 870.
Allievo, T. II, 904.
Allison, A. II, 181.
Allison, Edith 413.
Almada Negreiros, A. de

II, 821.
dAlmeida, Jose Verissima

104, 105, 816.
Almenräder II, 761.
Almijuist, Ernst 690.
Almquist, S. III, 291.
Aloisi, U. II, 11.
Alquati, P. 429.
Alströmer, 0. 424.
Alten, H v. 516.
Alwood, W. B. 186.
Ambronn, H. 711. — II,

993.
Arnes, C. T. IT, 30.
Arnes, Oakes II, 123, 167,

173,210,276.— III, 112.
Amman, P. II, 891.
Amond, R. W. II, 73.
Arnos, A. 854. — II, 21.
d Ancona, C. 395.
Anders, G. III, 1.
Anderson, J. P. 121.
Anderson, M. P. III, 60.
Anderson, T. J. II, 847,

866.
Andersson, Gunnar 692.

— II, 70.

Andes — Baker.

695

Andes, L. E. II, 92. — III,

417.
Ando, <J. 151.
d' Andre II, 854.
Andre, G. II, 677, 695.
Andres, H. II, 771.
Andrew, M. II, 856.
Andrews, E. F. II, 105.
Andrews, F. M. 32, 641.

— III, 101.
Andrews, Katherine 543.
Andrlik, K. II, 11, 21, 52.
Angelico, J. III, 417.
Angelis d'Ossat de II, 29.
Angeloni, L. II, 55.
Annett, H. E. II, 855.
Annibale, E. 111, 153.
Anstead, R. D. II, 882.
Antonelli, H. II, 633.
Apelt, A. II, 684.
Appel, Otto 110, 151, 203,

230, 392, 695, 773, 775,
793. 819, 830, 849, 852.

— III, 418.
Apstein II, 633.
Apstein, C. 344, 366.
Arbenz, P. 543.

Arber, E. A. Newell 543,

544. — III, 46.
Arcangeli, G. 794. — III.

262.
Archbutt, L. III, 418.
Arcichowsky, V. 182.
Ardisone, F. 392.
Arechavaleta. J. II, 204.
Arldt, Th. 544. — II, 735.
Armanni, O. III, 569.
Armitage, R. W. II, 259.
Armstrong, S. F. II, 41.
Arnell, H. W. 62.
Arnim-Schlagenthin, Graf

203. — II, 37, 52. —

III, 355.
Arnold, J. H. III, 419.
Arnoldi, W. 328. — II,

628.
Arnould, L. 161. — III,

512.
Arnott III, 97.
Arnstadt, A. II, 32.

Aron, H. III, 419.
Arragon, (J. HI, 419.
Arthur, J. C. 121, 161,

245, 246, 758, 832. 833,

834. — III, 49.
Arzberger, Hans III, 419.
Asashima, Y. III. 343,419,

420.
Ascherson, P. 392. 393. —

II, 118. 125. —III, 115,
309.

Ashe, W. W. II, 70.
Asimont, W. F. C. II, 945.

- III, 205.

Aso, K. II, 6, 20. 23, 659,

670. — III, 567.
Assmith, H II, 908.
Astruc, A. III, 420.
Atenstaedt, P. III, 420,

404.
Atkinson, A. 11, 38.
Atkinson, Geo F. 121, 255,

361, 828, 836.
Atterberg, A. II, 651.
Atwood, Alice C. 413.
Atwood, H. II, 9.
Aubert, L. II, 904.
Aubree, E. III, 256.
Audas, J. W. II. 258.
Auge, L. 544.
Augstin, M. II, 43.
Augustin, Bela II, 929. —

III, 422.
Augustus, J. 0. II, 883.
Aulard, A. II, 14.

Auld, S. M. J. 111,535,537.
Aumann, K. II, 2.
Austin, 0. F. II, 80, 859.
Autran, E. II, 268, 269.
Avebury, Lord 495 — II,

553.
Avon II, 801.
Awerinzew, S. 367.
Aznavour, G. V. II, 151.

— III, 101.
Azoulay, L. 151, 222.
Azzi, G. 536. - - III, 170.

Baba, K. II, 20, 666.
Babcock, N. E. III, 422.

Babkin. B. III, 415.
Babu Uma Charan Pal II,

913.
Baccarini.P. 101, 395, 538,

853. — II, 958, 977. —

III, 197, 270, 355, 356.
Bach, A. 182. — II, 702.
Bachmann, F. E. 393.
Bachmann, Hans 344. —

II, 14, 21, 29, 30, 44,

633.
Backer, C. A. II, 216.
Bacon, A. E. II, 174.
Bacon, A. F. 393.
Bacon, R. P. III, 423.
Bacon, Walter L. II. 173,

787.
Baden, Phil. II, 903.
Baenitz, C. 423. — II, 292.
Baenitz, K. G. 393.
Bäsecke, P. II, 753.
Baessler, P. II, 10. 35, 37.
Bagshawe, A. G. II, 252.

— III, 140, 173, 252.
Bahrisch, P. III, 423.
Bail, Th. 203, 641. — II,

604.
Bailay, F. M. II, 256, 257.
Bailey. L. H. II, 26, 553.

— III, 1, 21.

Bailey, W. W. 417. II,
128, 134. 138, 168, 171,
246. — III, 115, 119.

Bailhache, G. II, 85.

Baillaud, Em. II, 867. 880,
907.

Bailly, J. J. 406.

Bain, S. N. 849.

Bainbridge, J. W. II, 260.

Bainier, G. 199. 230, 266.

Bair, A. W. II, 867.

Baker, 0. F. II, 887.

Baker, E. G. II, 251, 252,
277. — III, 140,173,232.

Baker, F. G. S. II, 877.

Baker, G. H. F. II, 839.

Baker, H. P. II, 70.

Baker, R. T. II, 254, 255,
257, 934. — III, 5, 60,
260, 337, 423.

696

Baker — Beckett.

Baker, S. II, 831.

Baker, T. II, 72.

Bala Oanov, M. II, 553.

Bald, 0. II, 884.

Bald, 0. F. III, 292, 334.

Baldacci, A. 352, 423. —

II, 70, 824.
Balfour III, 1.
Balfour, B 395.
Balfour, F. ß. S. II, 187.
Balicka-Iwanowska, G. II,

21.
Balint, 8. 204.
Ball, C. F. III, 321.
Ball, C. R. II, 40. - III,

87, 858.
Ball, O. M. III, 252.
Balland II, 928. — III,

205.
Ballard, W. R. II, 73, 79.
Balle, Emile 40.
Balley, H. L. II, 46.
Ballin 151.

Ballon, H. A. II. 883, 910.
Ballou, F. H. II, 78.
Balls, W. Lawrence 688.

- III. 249.
Bally, Walter 340. — II,

629, 634, 994.
Balsiger, II, 65.
Baltet, Oh. 401.
Bamber, L. Kelway II,

933, 940, 941.
Bamber, M. K. II, 860.
Bambes, K. III, 424.
Bandke, E. II, 949.
Bann wart, J. F. II, 881.
Barber, 0. A. 811. — III,

268.
Barber, C. H. 516, 517.
Barber, M. A. 151.
Barbey, A. II, 41.
Barbier, M. 105, 255.
Barbour, John H. II, 147.
Barclay, W. III, 174, 293.
Bardet III, 424.
Baren, J. van 545.
Bargellini, G. III, 424.
Barger 182.
Barger, G. III, 424, 425.

Bargeron, L. II, 14.
Barker, B. T. B. 194.
Barkow III, 489.
Barnard, F. G. A. II, 141,

259, 260, 261.
Barnes, Charles Reid 32,

399. - II, 807.
Barnewitz, A. 392.
Barnhart, John Hendley

274, 413.— II, 174, 177,

807.
Baron, R. 395,
Baroni, E. II, 775.
Baroni, M. 16.
Barrelier 415.
Barret, J. E. II, 901.
Barrett, O. W. 204, 822,

— II, 881.
Barrington, Richard M.

395.
Barron, J. H. II, 32.
Barron, L. II, 81.
Barrowcliff, M. III, 425.
Barsali, E. 37, 495. — III,

289.
Barsch, O. 545.
Bartels, H. 256.
Bartelt, K. III, 425, 642.
Barth, H. 628.
Bartholomew, Em. 141,

142.
Bartlett, A. W. II, 922.
Bartlett, H. H. 48.
Bartmann II, 762, 805.
Bartosch II, 52.
Bartsch, G. III, 115.
Baselli, A. III, 425.
Bass, J. 395.
Bataille, Fr. 256.
Baterden, J. R. II, 897.
Bates, C. G. 822.
Bates, 0. 8. III, 216.
Bateson, W. III, 356.
Bather, F. A. 545.
Battandier, A. II, 149.
Battandier, J. A. III, 426.
Batters, A. L. 409.
Battistella, A. 395.
Baudon, A. III, 141.
Bauer, E. 68. — III, 321.

Bauer, K. III, 426.
Baiihin, C. 405.
Baum, H. II, 800.
Baumann, A. II, 58.
Baumann, Eugen 341. —

IL 771.
Baumgartner, J. III, 190.
Baur, Erwin 712, 799, 800.

— III, 356, 357.
Bauwens, L. II, 14.
Bavink, B. II, 731. — III,

426.
Baxter, J. M. 328.
Bayer, Aug. 641. — III,

317.
Bayer, E. II, 605.
Bayer et Co. III, 427.
Bayliss, J. 8. 161.
Beadle, Clayton II, 920,

941.
Beadle, C. L. III, 427.
Beal, W. J. 395. — II, 178.
Bean, W. J. 417, 418. —

II, 171, 268. - - 111, 139,

247.
Beardslee, H. C. 227.
Beattie, W. R. II, 37, 72,

80, 862.
Beauverd, Gustave 395,

396, 423, 642.— II, 114,

163, 199, 774. — III, 84,

101, 282, 316.
Beauverie, J. II, 654, 988,

989.
Beccari, O. II, 189, 196,

212, 903. — III, 125,

130.
Bechtle, A. II, 76.
Bechtle, C. II, 105.
Beck, E. II, 22.
Beck, G. 545.
Beck, R. II, 65.
Beck, G., Ritter von Manna-

getta 642. — II, 117,

118, 168, 773.
Becker, G. II, 8.
Becker, J. II, 44.
Becker, W. II, 123, 202.

— III, 343.
Beckett, T. W. N. 391.

Bookman — Bitter.

697

Beckman, N. 396.
Beckmann, E. [II, -427.
Beckmann, P. II, 266.
Beckurts, Heinrich III,

427.
Beckwell, J. E. II, 819.
Beckwith, T. D. 180.
Becquerel, P. II, 4, 708.
Beddome, R. H. II, 778.

— III, 134, 212.
Beeby, W. H. III, 174.
Beguinot, A. 353, 396,

769. — II, 775. — III,

21, 87, 88, 97, 99, 168,

190, 272.
Behnick, E. B. III, 115,

130.
Behre, A. III, 427.
Behrend, F. 545.
Behrens, J. 111. — II,

2, 4, 14, 651.
Behrens, W. III, 19.
Beijerinck, M. W. 186,

744. - III, 232, 357.
Beiklie, J. III, 2.
Beiler, J. P. II, 76.
Beide, L. II, 249, 428,

931. - III, 2.
Beissner, L. 396. II,

67. — III, 49, 60.
Bell, E. Seymour II. 856.
Bell, Farrand 160.
Bellerby, W. 41.
Belli, S. 38, 102.
Bellier, M. J. III, 428.
Bellini, R. III, 49.
Beischmer, G. III, 428.
Benecke, W. 362.
Benedict, R. C. II, 786,

788.
Benett, C. II, 184.
Bennet III, 602.
Bennet, C. T. III, 428.
Bennet, R. L. II, 907.
Bennett III, 671.
Bennett, A. II, 140, 173,

769.
Bennett, Arthur III, 88,

131, 321, 358.
Benson, A. H. II, 865.

Benson, M. 546. II,

762.
Benz, R. III, 682.
Bequaert, J. III, 337.
Berg, F. III, 61.
Bergen, J. Y. 111, 2.
Bergendal, D. 389.
Berger, Alwin II, 81, 114,

118, 185, 192, 276, 553.

— III, 102, 137. 146,

157, 174, 210, 250, 280.
Berger, E. W. 199.
Berger, H. III, 489.
Berget, Adrien 853. — II,

80.
Berghs, J. II, 745, 758.
Bergon, P. III, 116.
Bergtheil, C. 187. II,

731. — III, 429.
Berkhout, A. H. II, 818.
Berl, E. III, 429.
Berlese, Amadeo 204.
Berlin, N. J. III, 2.
Bernard, Ch. 132, 261,

347, 546, 642, 785, 817,

822. — II, 634, 884. —

III, 167, 334.
Bernard, M. 246.
Bernard, N. III, 115.
Bernardini, L. II, 12, 19,

665.
Bernatsky, J. III, 102.
Bernbeck, O. 794.
Bernegau, L. II, 148, 861,

876, 885, 886. — III,

232, 429, 431.
Bernstiel, O. II, 800.
Berry, E. W. 546, 547.
Bersch, W. II, 57, 58.
Bertani-Tomei, G. 230.
Bertarelli, E. III, 432.
Berthault, F. II, 32.
Bertolo, P. III, 432.
Bertoni, G. III, 432.
Bertoni, M. S. 187.
Bertram, W. II, 770.
Bertrand, C. 182.
Bertrand, G. E. 548, 549.
Bertrand, G. II, 703. —

III, 432, 433.

Bertrand, Paul 549, 550,

552.
Besana, G. 338. — II,

629.
Beseler, W. 44, 56.
Bessey, ^ Charles E. II, 67,

182, 7*67. — III, 358.
Bessey, Ernst A. II, 181,

— III, 51, 253, 452.
Bessey, O. E. II, 70.
Best, E. II, 785.
Betche, E. II, 255, 256,

257. — III, 4, 55.
Betten, R. 204, 798.
Beurmann, de 151.
Beusekom, Jan van 744,

807.
Beuss, H. II, 76.
Beutenmüller, W. II, 605.
Beuttner, E. III, 433.
Bevan, E. J. II, 919. —

III. 520.
Bews, J. W. 454, 509, 643.

— III, 196, 345.
Beythin, A. III, 420, 434,

435.
Bezzi, M. II, 606.
Bialosuknia, W. II, 706.
ßichet, P.-J. 406.
Bicknell, E. P. II, 177,

787.
Biechele, M. III, 435.
Bierbaum, K. III, 435.
Bierberg, W. 187, 670. —

II. 660. — III, 101.
Biers, P. M. 151.
Biffen, R. H. 204, 243,

781, 812. - II, 51. —

III, 358.
Bigeard 105.
Billings, E. II, 798.
Billings, 8. A. II, 26.
Bing, K. II, 940.

Binz, A. 423. — II, 772.
Bioletti, F. T. II, 83. 869,

925.
Bird III, 435.
Birger, S. II, 768, 770.
Bisset, P. II. 72.
Bitter, Georg III, 358.

698

Björn— Bouget.

Björn, P. 98.

Black well, E. W. II, 264.

Blacow, Ch. R. II, 888.

Blair, A. W. II, 834.

Blair, P. 411.

Blake, M. A. II, 73.

Blakesleo, A. F. 32. —

III, 358.
Blanc, L. II, 101.
Blanchard, W. H. III, 292.
Blanck. E. II, 23. — III,

193.
Blankenship, J. W. 204,

789. — II, 182.
Blareg, Ch. III, 435, 436.
Blaringhem, L. 743, 810.

— II, 46, 51, 55. — III,
88, 358, 359.

Blaschka, L. 409.
Blasdale, W. C. III, 436.
Blatter, E. II, 104, 224,

261, 778.
Blau III, 436.
Blauw, A. H. 724. - III.

89.
Blin, H. II, 84.
Blinn, P. K. II, 39, 44. 55.
Bliss, A. J. III, 261.
Blobel, E. II, 14. 16.
Bloch, A. III. 436, 554.
Block, Br. 199.
Blockader, E. H. II, 172.

- III, 73.

Blocki. B. 553. — II, 772.
Bloemendahl, W. H. III,

436.
Biossfeld, R. III, 115.
Bloxara, P. III, 500.
Bloxam, P. W. II, 893.
Blum III, 22.
Blumer, J. C. 121, Ii94.
- II, 63, 132, 171, 185,

789. — III, 22.
Blunno, M. 204, 839. —

II, 865, 869.
Bocat, L. 379.
Bock, R. 162, 832.
Bode, K. III, 642.
Bödeker III, 157, 158.
Bödecker, F. III, 677.

Boehm, R. III, 437.
Böhmer, G. III, 89, 359.
Boekhout, F. W. J. 686.

— II, 688.
Bölsche, Wilhelm 396.
Boergesen, F. 345, 358.
Boerner, C II, 606.
Böttcher, O. II, 8, 18.
Böttner, J. II, 37, 80.
Bogatschew, W. 553.
Bogolübow, N. N. 553.
Bogue, E. E. 395.
Bohlin, K. III, 22.
Bohnstedt II, 32.
Bohutinsky-Krizevci, G.

II, 37.
Bois, D. 643. — II, 198,

203, 226. — III, 74, 140,

141, 265, 269, 286, 316,

321, 472.
BoisMer, E. 396.
Boissieu, H. de III, 268,

337, 343.
Boissieu, J. D. IT, 221.
Boistel, A. 389.
Bokorny, Th. 187, 363. —

II, 677.
Bolin, P. III, 89.
Boll, J. II, 76.
Bolle, C. II, 823.
Bolle, J. 117.
Bolley, H. L. 204, 781. —

II, 2, 43, 44.
Bolten, E. II, 921.
Bolton, W. von III, 437.
Bolus, H. II, 276.
Bommer, Ch. 396.
Bonacini, Angelo II, 12.
Boname, P. II, 873.
Bonati, G. 396. —II, 157,

158, 321, 322.
Bondarzew, A. S. 99, 235.
Bonfigli, Bianca II, 606.
Bongard, M. 785. II,

143.
Bonnet, Ed. 396, 423. —

II, 248.
Bonnet, E. E. 454. -- III,

168.
Bonnevie, Kristine II, 958.

Bonney, T. G. 553.
ßonnier. Ed. 553.
Bonnier, Gaston 396, 419.
Bonstedt, C. III, 322.
Bonte II, 770.
Bontrager, W. E. II, 68.
Boodle, L. A. 643. — II,

745. — III, 190.
Boonstra, A. II, 32.
Boorsma, W. G. III, 170,

438, 450.
Boos, J. V. D. III. 454.
Booth, J. 411. — II, 67.
Booth, N. O. II, 77.
Booth-Tucker, F. II 861.
Boidas, F. III, 454.
Borel, H. J. 406.
Bordner, John S. 736.
Boresch, K. 431. — II,

713, 956.

Bornmüller, J. 396.

II.

148, 149, 151, 152, 155,
156, 276, 775, 776. —
III, 5, 75, 104, 227, 228,
232, 334.

Borodin, J. 423. — II, 143.

Borowikow, G. II, 775.

Borthwick, J. W. 204, 730,
828.

Bory de Saint- Vincent275.

Borzi, A. 419, 768. - II,
56, 82, 83, 553, 819, 843,
891, 907, 908, 938. —
III, 2, 141, 190, 196.

Bos, H. II, 21, 113.

Bosch, Fr. 732.

Böse, J. C 727.

Bottazzi, Fil. 668.

Bottini, A. 39.

Bottier, Max III, 454.

Bottomley, W. B. 179.

Bottu, H. 187.

Bouant, E. II, 15.

Boubier, H. Maurice 332.

Boucher, V. 799. — III,
256, 547.

Boudier, E. 150, 263.

Boudret, E. III, 2.

Bougault, J. III, 454.

Bouget III, 29.

Boulanger-Dausse — Brooks.

699

Boulanger-Dausse, E. III,

454.
Boule, M. 553.
Boulger, G. S. 397, 427.

- II, 63, 897.
Bouly de Lesdain, M. 11,

12.
Bouquet, R. 263.
Bourdier, L. III, 343, 455,

540.
Bourdier, R. III, 454.
Bourn, A. II, 787.
Bourquelot, Em. II, 265.

715, 862. "— III, 455.

456, 540, 675.
Bouvet, S. 40.
Bouvier, E. L. 822.
Bouvier, L. 395.
Bovell, J. R. II, 909.
Bower, F. 0. 329, 553. —

II, 117, 735, 746, 751,
782. — III, 359.

Bowers. E. H. 271.
Bowles, E. A. III, 158.
Bowman, F. H. II, 905.
Bowman, M. L. II, 32.
Boyd, A. J. II, 916.
Boyd, D. A. 107.
Boyer, G. 225.
Boy er, J. 222.
Brade, K. 394.
Braden II, 84.
Bradfield, E. ß. II, 825.
Bradford, Q. Q. II, 948.
Bradley, C. C. II, 844.
Bradley, H. H. B. III,

360.
Bradley. O. E. III, 456.
Brdlik, V. III, 650.
Bradshaw, A. II, 739,

755.
Bradshaw, M. F. II, 847.
Bradtke, W. 394.
Brainerd, Ezra II, 170. —

III, 360.
Brainerd, F. II, 1(37.
Brakenhoff, H. 554.
Brand, A. 210, 266. — III,

278.
Brand, Charles J. II, 53.

Brand, F. 355, 356, 372,
373, 682. — II, 988,
994.
Brandegee, T. S. II, 192.
Brandel, J. W. III, 61.
Brander, Md. III, 457.
Brandes II, 70.
Brandis, D. 402, 403.
Brandl, J. W. III, 456,

457.
Brandor, B. M. III, 473.
Brandt, J. III, 458.
Brandt, O. II, 32, 58.
Brandza, G. III, 213.
Brauer, J. E. II. 33.
Braun, Gustav 554.
Braun, J. III, 282.
Braun, K. 137, 794. — II,

846, 856, 914, 918. —

III, 74.
Braun, O. 753.
Bray, W. L. II, 182.
Break E. II, 4.
Breattlie, W. R. II, 80.
Breazeale. J. F. II, 11.
Brefeld, O. 162.
Brehm, V. 341. — II, 641.
Brehmer, K. II, 13.
Breitenstein III, 458.
Bremen III, 1 16.
Brenan, S. A. 409.
Brenckle, J. F. 142.
Brenner, M. 99, 643. —

III. 166, 174, 17.r», 292,

316.
Brenner, W. II, 554.
Bresadola, G. 107.
ßreslauer, M. II, 21.
Bretin, Ph. 107. II, 4.

— III. 490.
Bretschn eider, A. 845. —

III, 293.
Breuer 397.
Brick, O. 111, 235, 836,

841. - II, 804.
Bridel, M. II, 862. — III.

455, 458.
Bridges, S. J. III, 2.
Brieger II, 927. — III,

459.

Briem, H. 204, 783, 790,
809. — II, 11, 12, 15,
22, 25, 35, 36, 46, 52,
666, 667. — III, 190.

Briggs, J. F. III, 520.

Briggs, Lyman J. 204,
784.

Briggs, R.'H. III, 429.

Brindejouc, G. III, 459.

Brinkman, A. 41.

Briosi, Giovanni 102, 266,
815, 820, 830.

Briot, A. III, 459.

Briquefc, John 397, 419. —
II, 118, 155. — III, 51,
152, 228, 232.

Brissemoret, A. III, 22,
460, 461.

Britten, James 397, 400.

— III, 17.
Brittlebank, C. C. II, 554.

— III, 245.

Britton, Elizabeth G. 48,
68, 554. — II, 197, 805.

Britton, Nathaniel Lord
397. — II, 67, 168. 170,
196, 197. 807. — III,
2,5,51,52, 158, 173, 185,
250, 305, 316. 360.

Britzelmayr, M. 16, 17.

Brizi, TJ. 204, 788, 853.

Broadhurst, Jean 413.

Broadway, W. E. II, 198.

Brockmann. Christian 343.

— II, 634.
Brockmann -Jerosch, H.

814. - III, 5.
Brock-Rousseu, D. 167,

206, 784. — III, 461.
Brodie, D. A. II, 30, !>10.
Broehmer, M. II, 874.
Broggi, C. II, 873.
ßroili, J. II, 51. — III,

89.
Brookland. T. H. III, 22.
Brooks, A. H. II, 144.
Brooks, Charles 204.
Brooks, F. T. 167, 853.
Brooks. W. P. II, 37,

39.

700

Brotherus— Cabanes.

Brotherus, V. F. 51, 53,

56, 58. II, 112. —

III, 22.
Brown, Addison 419, 120.
Brown, Daniel T. II, 877.
Brown, E. II, 2, 4.
Brown, Edgar III, 20.
Brown, Harry B. 335.
Brown, J. P. III, 153.
Brown, N. E. II, 198. —

III, 14(1.
Brown, P. E. II, 14.
Brown, R. N. E. II, 142.
Brown, Stewardson II.

146.
Brown, T. W. II, 867.
Brown, W. II, 9?7.
Brown, W. H. III. 271.
Browne, J. II, 735.
Bruchmann, H. II, 741,

742.
Brück, F. 204.
Brück, W. Fr. 167, 203.
Bruders, O. II, 80.
Brüllowa, L P. 151, 358.
Brüning, H. III, 462.
Brumer, L. III, 462.
Brumhard 152.
Brun, J. 395.
Brunet, Raymond 204,

205, 839, 861. - - II, 84.
Brunnes, Jean 770.
Bruni, G. III, 462.
Brunn, Julius 735. — III,

23.
Brunnemann, E. II, 800.
Bruno, A III, 141.
Bruntz, L. II, 846.
Bruschi, Diana III, 89.
Brush, W. D. 736.
Bruttini, A. II, 877.
Bruyker, C. de 800. — 111,

360.
Bruyne, C. de II, 134.
Bryant, F. B. II, 67.
Bryhn, N. 36, 54.
Brzezinski, J. 227.
Bubäk, Fr. 117, 145, 152,

244, 814.
Bubani 415.

Buch, H. 32.
Buchan, A. 402.
Buchanan, R. E. 350.
Buchet, S. 644. --- II, 886.

- HI, 20.
Buchheister, O. II, 761,

788.
Buchheister. J. CHI, 210.
Buchmayr, A. II, 76.
Buchner, E. 187. III,

462.
Bucholtz, Fedor 99, 100,

235, 841. — III, 23
Buckhout, W. A. II, 63.
Buddle, Tb.. III, 462.
Buder, Johannes 742.
Bndinsky, K. 669.
Budrin, P. II, 8.
Büchner, E. II, 697.
Bühler II, 63.
Bünger 205, 754.
Buer, C. III, 462.
Bürger, Max III, 362.
Buesgen, M. II, 134. —

III, 2.
Büttner II, 58.
Büttner, G. 1 15.
Buffault, P. II, 70.
Bugnion, G. II, 929.
Buhlert, H. 111, 232.
Buis, J. 246, 833.
Bukowansky, J. II, 37, 38.
Bull, C. P. II, 51.
Bull, W. M. II, 26.
Bullen, G. E. 350.
Bunyard, Edward A. III,

361.
Bunyard, G. III, 2.
Burbank, L. 412.
Burck, W II, 554. — III,

23, 361, 362.
Burckhardt, G. 326.
Burdon, E R. II, 606.
Bureau, E. 263, 397, 554,

842.
Bureau, L. 554.
Burgerstein, Alfred 397,

455, 713. - II, 737. -

III, 361.
Burgtorf, K. II, 44.

Burkill, J. H. II, 156, 205,
225, 555, 596, 892, 907.

— III, 23, 84, 130, 190,
335.

Burlingame, L. Lanceolot

530. II, 978. — III,

61.
Burlingham, G. S. 256. —

II, 13.
Burluraux III, 462.
Burmester, Hermann 205,

856.
Burnat, E. 410.
Burnett, L. C. II, 32.
Burnette, F. H. II, 76.
Burnham, 8. H. II, 177,

788.
Burrell, W. H. 57.
Burtt-Davy, J. II, 254,

840, 841. III, 17, 89
Buscalioni, L. 554, 770.

- II, 40, 215.
Busch, A 394.
Busch, N. III, 190, 191.
Busch, N. A. II, 152, 153,

155.
Buschmann, E. III, 462.
Busemann, L. III, 2.
Buser, R. II, 152, 293.
Bushee, Grace L. 670.
Busse, W. 205. — II, 248,

825, 836. — III, 462.
Butkewitsch, Wl. 703. —

II, 685, 686.
Butler, C. III, 17.
Butler, E. J. 133, 818,848,

— II, 923.
Butler, O. 121.
Butman, A. B. II, 67.
Butters, Fred K. II, 144,

179.
Butz, L. II, 801.
Buysman, M. II, 890. —

III, 463.
Buzek, E. III, 104.
Bytchikhine, A. II, 22, 56.
Bywaters, H. W. 194.

Cabanes, G. 044 III,

104.

Caocia- Cheesenian.

701

Caccia, A. M. F. II. 65.
Cadell, M. 555.
Cadoret, A. II, 76.
Caesar et Loretz II, 804.
üaldarera, J. II, 872.
Calestani, V. III, 191.
Gallier III, 152.
Calvelli, F. E. 423.
Oalvet, L. E. II, 911. —

III, 464.
Calvin, M. V. II, 33.
Calzolari, F. 397.
Camara-Pestana, J. 199.
Cambage, R. H. II, 257.
Cameron, F. K. 769.
Cameron, S. S. II, 858.
Camiola, C. 182.
Camo III, 464.
Campbell, A. G. II, 259,

260.
Campbell, G. 843.
Campbell, Douglas Hough-

ton 51, 62, 152. — II,

7411, 744, 974, 978. —

III, 131.
Campbell, H. W. II, 32.
Campbell, J. W. II, 828.
Camus, E. G. II, 147. —

III, 116, 362.
Camus, Fernand III, 193.
Camus, L. 182.
Candolle, A. de III, 23.
Candolle, C. de II, 191,

205, 208, 213, 260. —

III, 149, 25^, 271.
Gane. E. du II, 104.
Cannarella, P. 413. — III,

197.
Cannon. D. II, 73.
Cannon, W. A. 517.
Capelle, G. III, 464.
Capitaine. E 517. III,

330, 344.
Capitaine, M. 044.
Capitaine, M. E. II, 229.
Capitaine Sisteron II, 838.
Capus, J. II, 84.
Carano, Enrico 11,718,995.
Garazzi, D. 274, 397. —

II, 029.

Carbone, D. II, 905.
Card, F. W. II, 51, 53, 54,

73, 79, 80.
Cardot E. II, 72.
Cardot, Jules 32. 50, 51,

52, 55, 57. — II, 167,

267.
Cardozo, A. II, 947.
Carl, A. 205.
Carles, P. III, 464.
Carleton, M. A. II, 33.
Carmody, P. J. II, 872,

875.
Caro, N. II, 15.
Carpenter, L. II, 007.
Carpentier, A. 555.
Carpiaux, E. II, 20,
Carr 182.

Carr, F. H. III, 425.
Carr, J. H. III, 465.
Carrier, Lyman II, 26.
Carruthers, J. B. 783. —

II, 943.
Carsten II, 50.
Gaitwrigbt, H. A. II, 828.
Gary, A. II, 01.
Casares, F. B. 338.
Casb, J. T. III, 205.
Cash, Th. III. 465.
Caspary, R. 555.
Castella, F. de II, 869.
Oastelli, J. B. II, 15.
Gastillo, L. II, 268.
Castoro, N. III, 406, 639
Gates, J. L II, 44.
Gausemann 200, 855.
Cavaleri, J. II, 163. — III,

280.
Cavara, F. 200, 844. - II,

007. — III, 73.
Cavers, F. III, 24.
Cavillier, Fr. III, 232.
Cavin, Ch. P. Fr. 397.
Cayeux, H. III, 149.
Gayeux, L. 550.
Cayla, V. II, 931, 932,

941.
Geccbettani, A. 550.
Gecconi, G. II, 007, 027.
Cederberg, H. III, 000.

Gelani, E. 423.

Geli, G. II, 871. — III,

253.
Center, O. D. II, 34.
Genterick, A. 398.
Cepede, C. 326. — II, 034.
Gercelet, M. 206.
Cermenati, M. 397.
Gesi, F. 398.
Cbabaud, B. III, 175.
Chabert, Alfred III, 162,

337.
Chadwick, G. H. II, 607.
Chalot, M. 137.
Cbamberlain, C. J. 427.
Chamberlain, E. B. II,

174.
Chamberlain, Houston

Steward 398.
Chamberlain, Joseph S.

III, 466.
Chamberlain, Rob. II, 825.
Chamberland, Charles 390.
Chambers, H. S. 170.
Chander, J. N. II, 913.
Chandler, Bertha 698.
Chandler, K. II, 189.
Ghapin, J. A. II, 111.
Ghapman, A. C. II, 877.
Chapman, F. 381.
Chappel. E. III. 584.
Charabot, E. II, 712, 72.".,

820. 821. — III, 230,

247, 466, 407, 560.
Charin II, 669.
Charles-Raux, J. II, 819.
Charlet, A. II, 709.
Gharvot, J. II, 607.
Chase, Agnes 413. — II,

189, 557. — III, 89.
Chassignol, F. III. 245.
Chatton, E. 230, 235.
( 'hauveaud. G. 458. — II,

758, 774.
Ghavanne, Doreste J. de

la 556.
Cheel, Edw. 200. — II,

804.
Cheeseman, T. F. II, 263,

264, 785. - III, 17, 78.

702

Cheetham — Connold

Cheetham, C. H. 41, 42.
Chemin, E. 458.
Chevalier, Aug. II, 246,

248, 249, 877, 879, 882,

899. — III, 59.
Chevalier, J. III, 467, 499,

512.
Chiej-Gamacchio, G. II,

30, 79. — III, 336.
Chifflot, J. III, 74, 175.
Chilcott, E. C. II, 30.
Chiovenda, Emilio 423. —

II, 250, 251, 252. — III,
89, 175.

Chipp, T. F. II, 129, 158.

— III, 162.
Chittenden, F. H. II, 859.
Chittenden, F. J. 206. —

III, 362.
Cho, S. III, 569.
Chodat, R. 354, 556, 557.

— 11, 266, 607.
Cholodny, N. 740.
Chomley, F. G. II, 844.
Chonchak, D. II, 7.
Choslowsky, J. v. III, 330.
Chretien, P. II, 607.
Christ, D. H. III, 293, 335,

337.
Christ, H. II, 765, 775,

776, 777, 779, 796.
Christensen, C. 413.
Christensen, P. II, 696.
Chrysler, M. A. 275. —

III, 61.
Church, A. H. 495.
Churchill, O. P. II, 35,

50.
Cibo, G. 423.
Cieslar, A. 704.
Ciaassen, C. H. II, 73.
Ciaassen, W. II, 2.
Clapp, G. L. 676.
Clark, C. C. II, 33, 37, 40,

41.
Clark, D. A. II, 67.
Clark, G. H. 683. — II,

44, 67.
Clark, H. W. 351. — II,

634.

Clark, J. III, 61, 136.
Clark, V. A. II, 33, 39.
Clarke, C. B. III, 79, 134.

196.
Clarke, G. II, 874.
Claudel, H. et V. 22.
Clausen II, 8, 11, 30. 41.
Claussen, P. 167, 168. —

II, 967.
Clemen, Rudolf 394.
Clement, J. III, 251, 676.
Clements, F. E. II, 179.

— III, 52, 362.
Clerc 201.

Cleveland, G. T. II, 788.
Clifford-Dobell, C. 152.
Clinton, G. P. 121, 122,

222, 246, 782, 816. — II,

803.
Clos, D. 390, 401. — III,

279.
Close, C. P. II, 73, 76, 79,

83.
Clouston, D. II, 857, 904.
Clover, A. M. III, 468.
Cluss, A. II, 51.
Clute, W. N. 398, 644. -

II, 113, 171, 181, 736,

752, 767, 785, 786, 787,

788, 789, 790, 791, 806.

— III, 104.
Clutterbuck, F. 206.
Coaz III, 24.
Cobb III, 468.
Cobb, Collier II, 73.
Cobb, N. A. 140.
Oobelli, R. II, 607. — III,

254.
Coblentz, V. III, 468.
Coburn, F. D. II, 841.
Cochrane, S. W. L. II, 260.
Cockayne, A. H. 230.
Cockayne, L. II, 261, 262,

263, 785. — III, 175,

305, 362.
Cockburn, B. 42.
Cockerell, T. D. A. 557.

— II, 168, 183, 184, 188,
607, 608. — III, 175,
193, 233, 265.

Cocks, R. S. 344. — II,

181.
Cöster, B. F. 390.
Coffignier, Ch. III, 468,

469.
Cogniaux, Alfred II, 199,

207, 266. — III, 116,

197, 251.
Cohen, L. II, 13, 835.
Cohen. N. H. III, 469,

470.
Coit, J. E. II, 865.
Coker, W. C. 230.
Cole, C. T. II, 863.
Cole, R. V. II, 67.
Colebatch, W. J. II, 836.
Coleman, Leslie C. 235,

837.
Coleman, W. M. II, 553.

— III, 21.
Colin, Ch. III, 344.
Collet 405.

Collier, Arthur J. II, 144.
Collin, Eug. III, 471.
Collin. M. E. II, 896. —

III, 471.
Collinge, W. E. II, 608.
Collins, F. S. 330, 350,

354, 398. — II, 806.
Collins, J. F. 48.
Collot, T. II, 15.
Colombano, A. III, 331,

471.
Colozza, A. 432, 539. —

III, 212
Columella 414.
Combes, P. fils 557, 558.
Combes, R. III, 22, 471.
Comes, O. II, 886. — III,

331. 362.
Commenda, H. III, 2.
Compton, R. H. 453. —

III, 72.
Conard, H. Sh. 48. — II,

740, 755, 764.
Conci, G. II, 557.
Conn, H. W. 350.
Connell, E. III, 116.
Conner, A. B. II, 26.
Connold, E. T. II, 608.

Connor — Üakin.

703

Connor. J. M. B. II, 844,

854, 855.
Conrad, Hans III, 158.
Conradi, A. F. II, 557.
Constantin III, 472.
Constantineanu, J. C. 814.
Conte, A. 187.
Convert, F. 263.
Conwentz II, 73.
Conzatti, C. II, 192.
Cook, L. C. II, 137.
Cook, M. C. 812.
Cook, M. Th. 530. — II,

608, 859, 978. — III,

131, 172.
Cook, 0. F. II, 46, 70,

197, 906. — III, 52, 250,

362, 363, 364.
Cook, Theodore III, 75,

81, 85, 89, 205.
Cook, V. F. II, 182.
Cooke, M. C. 152, 206.
Cooke, T. II, 224.
Coon, J. M. 227.
Cooper, C. S. III, 14.
Cooper, W. S. II, 184, 788.
Copeland, E. B. II, 210,

767, 777, 779, 780, 782,

829.
Coppenrath, E. II, 654,

655.
Coppey, A. 37, 40, 58.
Corbett, L. C. II, 30, 80.
Corbiere, L. 389.
Cordel II, 39.
Cordemoy, H. J. de 432,

509.
Cordemoy, Jacob de III,

193.
Cornet, A. 43.
Cornuault, P. 389.
Corrado, A. J. II, 886.
Correa, M. P. II, 823.
Correns, C. III, 365, 366.
Correvon. H. II, 169. —

III, 74, 155.
Corso, G. II, 12, 665.
Cortesi, Fabrizio 398, 399.

— II, 251, 252. — III, 4.
Cosens, A. II, 608.

Costantin, J. II, 192, 226.

III, 52, 141, 205.
Costanzo, G. III, 61.
Coste, H. III, 172.
Coste-Floret, P. 206, 784.
Costenoble, H. L. W. II,

831.
Costerus, J. 0. 644.
Cotte, Jules 693. — III,

246. 501.
Cotton, A. 107.
Cotton,-A. D. 369, 370,

373. — II, 146.
Cotton, J. S. 11, 41, 840.
Couchman, M. E. II, 835.
Couden, F. D. II, 608.
Couffon 264.
Coulter, John Merle 399,

427, 531. - - II, 807, 979.

— III, 72.
Coulter, S. II, 178.
Coupin, H. 152, 182, 693.

— III, 2, 25.
Couplet, J. II, 851.
Courchet, C. 432, 433.
Courchet, L. II, 227.
Court, G. III, 604.
Courtade, Denis 725.
Courtet, A. 222.
Cousins, H. H. II, 874.
Coutouly, G. de 261.
Couvert, V. 785.
Couvreur, E. II, 682.
Coville, F. V. II, 168, 197.

— III, 316.
Coward, K. H. 558.
Cowie, W. B. III, 472,

473.
Cowle, C. II, 260.
Cowles, H. C. III, 52, 367.
Cox, H. E. II, 885.
Coyon, A. 396.
Cozzi, C. 413. — III, 2.
Cradwick. W. II, 882.
Crae, J. Mc. III, 473.
Crane, J. E. III, 474.
Crawford, Albert C. 768,

804. — H, 44, 201, 847.

— III, 201.
Crawley, J. T. II, 875.

Crawshay, de B. III, 116,

367.
Crete, L. II, 712, 876. —

III, 234, 513.
Cromer, C. O. II, 29.
Crosby, M. L. II, 2.
Cross, C. F. II, 919.
Crossland, C. 107, 816.
Crosthwait, G. A. II, 8.
Crow, C. E. II, 872.
Crozals, A. de 15, 105.
Ciuchet, D. 120.
Cruchet, P. 246, 833.
Crump, W. B. II, 172.
Crusius, C. III, 130.
Cruyssen, E. van der 409.
Cserhäti, A. II, 36.
Cuboni, G. 102, 780, 815.
Uufino, L. 815.
Cugini, G. 415.
Culbertson, J. M. II, 188.
Culmann, P. 48, 58.
Cumings 410.
Cuniasse, M. L III, 474.
Curry, B. E. II. 13.
Curtis, Carlton Clarence

274, 399. - II, 175, 806.
Cushman, A. S. II, 11.
Cushman, Joseph A. 364.

— II, 787.
Cutting, E. M. III, 61.
Cyprianus 424.
Czapek, Friedrich 739.
Czeh, Andreas 230, 860.
Czerkis, M. III, 475.

Daalen, C. K. van II, 36.
Dach, L. II, 67.
Dachnowski. Alfred 517.

— II, 67, 179.
Dachs, J. 199.
Dänhardt, W. II, 798.
Dafert, F. W. 118, 813.
Daguillon, Auguste 390.
Daguillon, A.-P. 400.
Dahlstedt, Hugo II, 191.

— III, 175.
Daikuhara, G. II, 13, 15,

19, 22, 75.
Dakin, J. W. 326,

704

Dalby — Diedicke.

Dalby, W. E. II, 898.
Dale, H. H. III, 425.
Dalgity, A. D. II, 40.
Dalla-Torre, Ü. G. de 413.
Dallimore, W. 420. — III,

53.
Dallman, A. A. II, 769.
Dam, W. van II, 20.
Damann, H. II, 33, 36.
Damm, O. 728, 744. — III,

475.
Dammer, Udo 399. — III,

116.
Dammer, H. II, 50.
Dandeno, J. B. 206, 235,

246, 859.
Danforth. C. H. III, 367.
Dangeard, P. A. 366, 389.

II, 609, 629.
Danger, L. II, 20.
Dangny, Paul II, 158.
Daniel, L. 263. — II, 81,

84. — III, 367.
Danjou, E. M. III, 475.
Dannenberg 558.
Dannfeit, H. J. II, 37.
Darbisbire, A. D. 644. —

II, 5. III. 233. 367.
Darboux, G. II, 609.
Darlington. H. R. HI, 74.
Darvall, H. E. II, 858.
Darwin, Oh. 390, 396, 403.

409. — II, 557. — III,

25.
Darwin, Francis 742.
Dassonville 206.
Dauphin. J. 230.
Dauphine, A. (>44. — III,

2, 150.
Daveau II, 149.
Davenport, Charles B. II,

46, 52. — III, 367.
Davenport, G. E. 398.
Davey, F. Hamilton 399.
Davey, H. W. II, 847.
David. T. W. Edgeworth

558.
Davidson, A. II, 140, 185,

186, 187, 189. — III,

286.

Davies, J. H. 42.

Davis, Bradley Moore 357,

766. — II, 956, 965.
Davis, Oh. A. 558. — III,

286.
Davis, J. J. 837.
Davis, T. T. 122.
Davis, W. T. II, 111.
Davy, L. 554.
Day, D. L. II, 731.
Day, M. A. 399. - II, 168,

806.
Day, Wm. H. II, 832.
Dean, Bashford 413.
Deane, A. III, 25.
Deane, C. C. II, 178.
Deane, W. 645. — II, 787.

— III, 104.
Dechamps, G. J. 410.
Decher, F. III, 475.
Decher, P. 394.
Decrock, E. 495, 540.

III, 283.
Deer III, 475.
Degen, A. von II, 151. —

III. 774.
Degenkolb, Werner 188.
Degrully, L. 206.
Dehm, W. W. III, 476.
Dehnicke, J. 196.
Dehning, H. II, 68.
Deichman-Branth, J. S. 11,

98, 345.
Deike, F. A. 206.
Deistel, H. II, 826.
Dejsan, E. III, 420.
Dekker, H. 390.
Dekker, J. III, 776, 894.
Delacroix, Georges 206,

207, 275, 409, 82<i. —

II, 847.
Delbrück, M. 188.
Deleano, N. T. II, 22.
Del Guercio, G. II, 609.
DelLungo, A. II, 876,911.
Delphin, F. III, 477.
Delpino, F. 415.
Deltenre, H. 558.
Delwiche, E. J. II, 5, 28,

32, 41.

Demcker, E. III, 3.
Demcker, R. II, 168.
Demokidow, K. E. II. 609.
Demoion, A. 190, 191.
Demoussy, E. II, 2.
Demtschinsky, N. A. II,

30, 31.
Dendy, A. 11, 255.
Deneumostier, C. II, 4, 51.
Dengler II, 63. - III, 61.
Deniges III, 435.
Denniston, R. H. II, 988.
Densmore, H. II, 979.
Densmore, H. D. 111, 104.
Depince, (Jh II, 819.
Depniset, P. 221.
Deribere - Desgardes III,

313.
Derganc, A. II, 557.
Derganc, Leo II, 130. —

III, 322.
Derleth, L. II, 65.
Derrien III, 461.
De.ry, R. II, 949.
Derschau, M. v. II, 764.
Desai, A. K. 766.
Des Grottes, P. II, 935.
Despeissis, A. 257.
Desruisseaux, A. III, 197.
Desruisseaux, P. A. II, 851,

870.
De Stefani, T. II, 609.
Detmann, H. 111, 122,207.
Detmer, W. II, 216, 829.

- III, 478.
Detmers, F. II, 788.
De Toni, G. B. 326, 374,

377. - II, 629.
Detten, G. von II, 70.
Dettmer III. 478.
Detto, Carl III, 367.
Deussen, E. III, 478.
Devoto, J. A. 126.
Dewey, L. H. II, 44.
Dey, J. II, 268.
Dieckhoff, H. 43.
Dicks, A. J. III, 2.
Dickson, W. S. III, 64,

540.
Diedicke, H. 266.

Diels — Dupont.

705

Diels, Ludwig 423. — II,

81, 95, 157, 246, 264,

266. — III, 116, 140,252,

338.
Dieseldorff, E. P. II, 880.
Dietel, P. 168, 246, 832,

834.
Dietrich, K. III, 478.
Dillingham, F. T. II, 68.
Dilthey, Friedrich Otto II,

906.
Dismier, G. 40, 41, 58.
Disque, H. II, 557.
Ditmar, R. II, 935. — III,

479.
Dittmar, H. 663.
Ditz, H. III, 479.
Dix, W. II, 50. — III, 89.
Dixon, H. N. 32, 55, 58,

676.
Djebaroff, J. A. Th. II, 5.
Dobberke, W. II, 801.
Dobbin, F. II, 171. — III,

25.
Dobell, C. C. 367.
Döby, G. II, 651.
Docters van Leeuwen, W.

II. 610, 619.
Dodds, G. S. II, 183, 184.

— III, 295.

Dode, L. A. 420. — II,
68, 124, 156, 160, 193.

— III, 53, 186, 208,
216, 273, 307, 309, 323.

Dodge, 0. K. II, 179.
Dodge, L. A. II, 110, 111,

151.
Dodge, L. G. II, 26, 840.
Dodson, W. R. II, 832.
Dohme, A. R. L. III, 479.
Dohme, L. III, 479.
Doht, Walter III, 480.
Doleuc, R. 827.
Dollin du Fresnel, E. 11,861 .
Domaradsky, M. 168.
Domin, Ch. 399.
Domin, K. 645.
Domin, Karl II, 148, 255,

261. — III, 228, 338,

339, 340.

Botanischer Jahresbericht

Dominicus, A. II, 937.

Dommes, H. III, 89.

Doms, F. A. 394.

Donadoni II, 886.

Donon, D. II, 36, 76, 80.

Dop, Paul 433, 434, 435,
459. - II, 221, 226,
228. — III, 247, 248,
258.

Dorety, H. A. 458. — III,
71, 72.

Dorner, H. B. II, 178.

Doroschewsky, A. G. III,
480.

Dorsch, R. II, 9.

Dott, D. B. III, 480.

Doubek, M. III, 197.

Doudeauville, de 390.

Douglass, B. W. II, 70.

Douin, Ch. 32, 41.

Douville, H. 558, 639.

Dowell, Ph. II, 786.

Dovvzard, W. III, 331,480,
481.

Drabble, Eric 434, 459,
495, 496, 645. — II,
871, 896, 924, 927, 828,
829. - III, 3, 211, 252,

330, 368.
Drabble, E. et H. 362.
Drago, A. II, 84.
Dreier, J. 400.
Dreux-Breze, de IL 84.
Drieberg, C. II, 834.
Driver, H. 343.
Droberg, G. III, 481.
Droit, L. II, 558.
Droit, L. G. 517.
Drost, A. W. 267, 850.
Druce, G. Claridge 400.

— II, 768, 769. — III.
117.

Drude, Oscar II, 136, 772.

— III, 368.

Druery, O. T. II, 52, 752,
764, 768, 769, 797, 798,
801, 802, 807. — III,

331, 368.
Drummond, J. R. II, 192.
Drummond, P. W. 402.

XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt

Dubard III, 482, 9:>2.
Dubard, Marcel 434, 435,

459. - II. 208, 227,

228, 879, 932. — III,

248, 312.
Dubois, A. 396.
Dubois, Oh. 235, 263.
Dubois, Eug. 558.
Dubois, R. II. 682.
Ducamp, L. III, 268.
Duckwarth, J. 414.
Ducloux, R. P. II, 162.
Ducomet, V. 152, 207, 257,

785. — II, 52, 610.
Dudgeon, W. III, 175.
Dudley, W. R. II, 189.
Duerden, J. E. II, 845.
Duffort, L. 389.
Dufour, Leon 257, 420. —

II, 831. — III, 175.
Dufresne, M. III, 482.
Duggar, J. F. II, 33.
Duke of Bedford, K. G.

809. — II, 864.

Dulijansk}'. W. 559.

Dumas 137.

Dumas, A. 554.

Dumesnil, E. III, 616.

Dumont, J. II, 5, 13.

Dunn, Stephan Troyte II,
160, 162, 276. — III,
214.

Dunstan, R. Wyndham II,
843. — III, 483, 537.

Dunstan, W. R. II, 54,
855, 866, 868, 880, 885,
892, 893, 894, 895, 896,
897, 898, 904, 905, 906,
907, 909, 911, 912, 913,
914, 921, 927, 929. 930,
933, 934, 935, 938, 948,
949, 950, 952, 953. —

III, 233, 483.
Dupain, V. 105.
Dupare, L. III, 483.

Du Pa-squier, Paul II, 884.
Du Pasquier, P. A. III,

334.
Dupont II, 36.
Dupont, G. II, 928.

27. 12. 1 1.1 45

706

Dupuis — Euler.

Dupuis, A. II, 73.
Dupuis, L. 220.
Dupuy, H. 222.
Durafour, A. III, 245.
Durand III, 483.
Durand, E. 207.
Durand, Elias J. 33, 122.

— II, 972.
Durand, Th. 339.
Duret, W. III, 246.
Düsen, P. 559. — II, 202,

267, 276, 793.
Dusserre, C. II, 13.
Duthie, G. A. 179.
Duthie, J. F. II, 225.
Duval, L. II, 73.
Duvel, J. W. T. II, 2, 33.
Duyk III, 484.
Duysen, Franz 838.
Dybowski II, 884, 922. —

III, 484.
Dyer, W. Th. 418.
Dyhrenfurth, C. von II,

33.
Dykes, W. E. III, 99.

Eames, Arthur J. II, 175.
Earle, F. S. II, 822.
East, E. M. II, 22, 26, 46.

— III, 368.
Eastwood, Alice II, 186,

187.
Eaton, A. A. 398,399,404.

— II, 167, 787, 788, 806.

— III, 117.
Ebeling, F. 560.
Eberhard II, 65. — III,

482, 483.
Eberhardt, Ph. II, 927,

951, 952. — III, 484.
Ebert, A. III, 485.
Ebert, F. III, 484.
Eberth, E. II, 798.
Echtermeyer, Th. 776. —

II, 58. *
Eckart, 0. F. II, 5.
Eckelöf, Erik 152.
Eckenbrecher, C. von II,

33, 37.
Eckerson, Sophia 677.

Eckhardt. W. G. II, 27.
Edgerton, G. W. 207, 266,

828, 843, 851.
Edler, W. 829. - II, 46,

50.
Edner, J. III, 660.
Edson, H. A. II, 175.
Eduardorff II, 949.
Edwall, Gustavo 400.
Edwards, A. M. 560. —

II, 641.
Eeckhout, A. van der III,

486.
Effenberger, W. 852.
Eggleston, W. W. 400. —

II, 167, 173, 174.— III.

293.
Ehrenberg, P. II, 8, 15.
Ehrlich, Felix 188. — III,

486.
Ehrlich, Eichard 366.
Eibner, A. III, 487.
Eichinger, E. III, 137,

317.
Eichlam, F. II, 192, 195.

— III, 158.
Eijkman, C. 689.
Einecke, A. II, 16.
Einhorn, A. III, 487.
Eisenberg, Philipp 689,

736.
Eismann, G. III, 487.
Elborne III, 487.
Eldredge, C. G. III, 187,

584.
Elenkin, A. A. 11, 37,

235, 414, 774.
Ellett, W. B. II, 36.
Ellinger, A. III, 488.
Elliott, E. E. II, 38, 50.
Elliott, W. R. 391.
Ellison, F. O'B. 207.
Eimer, A. D. E. II, 210,

211, 213. — III, 205,

212, 230, 255, 257, 293,
317.

Eisler, E. 524.

Elwes, H. J. II, 68. — III,

3.
Emeis, 0. II, 64, 65, 72.

Emerson, A. J. II, 68. —

III, 3.
Emerson, R. A. II, 37.
Endemann, H. III, 488.
Endlich, R. II, 916, 917.

— III, 74.
Enesque II, 4.
Engel, A. III, 488.
Engelbrecht, Th. H. II,

853.
Engelhardt, A. III, 479.
Engelhardt, H. 381, 560.

— III, 479.
Engelke 698.
Engerrand, G. III, 368.
Engler, A. 58, 400, 435,

513. — II, 65, 105, 118,

121, 135, 229, 239, 245,

558, 793, 796. — III,

25, 75, 488.
Engler, V. II, 68.
Engstrand, Georg III, 489.
Engstrom, Ella C. II, 187,

788.
Entz, Geza jun. II, 629.
Entz, G. sen. 367.
Erdmann II, 65.
Erdmannsdörffer, O. H.

561.
Erdner, Eugen III, 344,

368.
Eriksson, Ella III, 489.
Eriksson, Jakob 207, 236,

246, 737, 833, 842. —

III, 40.
Erlenmeyer, E. jun. III,

489.
Ernest, A. II, 656. — III,

489.
Ernst, A. 356, 531. — II,

219, 220, 558, 751, 782,

979, 980. - III, 53, 649.
Errera, A. L. II, 956.
Errera, Leo 414.
Essary, S. H. 849.
Etard, A. III, 489.
Eulefeld II, 70.
Euler, A. III, 490.
Euler, H. 772. — II, 725,

759. — III, 341, 490.

Eustace — Fischer.

707

Eustace, H. J. 207, 784.

— II, 38.
Evans II, 937.

Evans, A. W. 42, 48, 49,

51, 62.
Evans, E. III, 3.
Evans, G. II, 853. — III,

89.
Evans, J. B. Pole 137, 199,

207, 247, 832.
Evers, F. III, 490.
Evesque III, 490.
Ewart, A. J. 676, 707,

768. — II, 141, 255, 258,

259,260,761,805,841,846,

847. — III, 104, 155,

175, 193, 228, 278, 331,

341.
Ewers, E. III, 490.
Ewert 826, 846, 859. —

III, 230.
Ewert, Richard 773. —

II, 558. — III, 318.
Eyck, A. M. II, 33.
Eyken, P. A. T. III, 490.

Faber, F. 0. von 137, 138,
207, 208, 227, 817, 825.

— II. 249, 610, 796, 910.
Faber, G. B. 399.
Fabri, J. 399.
Fabricius. L. 236. — II,

72.
Faes. H. II, 84, 610.
Fahringer II, 558.
Fahrion, W. III, 490.
Falck, Richard 222, 244,

683, 835. — III, 491.
Falke 395. — II, 31, 41,

42.
Falkner, C. 562.
Fallada, O. 118, 783, 809.

— II, 12, 25, 52, 666,
667, 711. — III, 652.

Falqui, Giuseppe 562.
Famintzin, A. III, 369.
Farlow, W. G. 123, 816.
Farmer, J. B. 645.
Farneti, Rodolfo 266, 788,
820.

Farnsteiner, K. III, 491.
Farr, Edith M. II, 145. -

III, 492.
Farrer, R. II, 73. — III, 3.
Fauchere, A. 208. — II,

845, 872, 878, 879, 921.
Faucheron, L. 187.
Faucon, J. II, 904.
Faull, J. H. II, 172.
Faure, M. II, 867.
Faure-Fremiet, E. 366.
Faust, Fr. 769. — III, 25.
Fawcett II, 848.
Fawcett, E. H. 180.
Fawcett, William II, 887,

916. — III, 141, 331.
Fechner, G. Th. 731.
Fedde, Fr. II, 160. — III,

3, 4, 5, 293.
Fedele, Vinc. 264.
Federley, Harry 400.
Fedtschenko, Boris 414.

— II. 163, 276. — III,
168.

Fedtschenko, Olga II, 276.
Fedtschenko, O. A. II, 130,

158, 159, 256. — III,

104.
Fedtschenko, B. A. et O. A.

18.
Feilitzen, Hj. von II, 13,

56.
Feist, K. II, 695, 717. —

III, 492, 493.
Feldt II, 33.
Felix, J. 562.
Fellows, D. W. II, 174.
Feit, E. P. II, 610.
Feltgen, J. 109, 275.
Fenton, H. J. H. III, 493.
Ferdinandsen, 0. 98, 126.
Ferguson, A. M. II, 889.
Ferguson, J. II, 889, 913.
Fergusson. J. 391.
Fergusson, M. J. II, 878.
Fernald, M. L. II, 167,

170, 172, 173, 174, 786.

— III, 81, 131, 172, 175,
201.

Fernau III, 493.

Fernbach, A. II, 702, 711,

712.
Fernekess, K. III, 90.
Fernow, B. E. II, 171,

197.
Ferraris, T. 816.
Ferrero, F. 407.
Ferris, E. B. II, 73.
Fest II, 11,

Fetherolf, J. M. II, 70.
Fettick, Otto 152.
Fichtenholz, A. IIT, 493.
Fick, R. III, 369.
Fickendey II, 883.
Fiebrig, K. III, 255.
Field, F. III, 130.
Fierens, E. 390.
Fiet. A. II, 801. — III,

74.
Figdor, W. 715, 722.
Figert, E. III, 81, 293.
Filarsky, N. II, 153.
Füsinger, F. III, 493.
Fincke, Heinrich III, 493.
Finet, E. A. II, 156, 158,

164, 221. — III, 117,

286.
Fink, Br. 19, 21. — II,

178, 179.
Finlow, R. S. III, 335.
Fiori, Angelo 264, 784,

842. — II, 775. — III,

175.
Fischbach, H. II, 61.
Fischer II, 76.
Fischer, E. 400. — II, 710.

— III, 6.

Fischer, Ed. 120, 168, 247,
248, 264, 274, 400, 562,
832, 833. - III, 369.

Fischer, Emil III, 494.

Fischer, H. 188, 645. —
II, 558, 697, 704, 719.

— III, 495.

Fischer, Hugo 714, 751,

757. — III, 323.
Fischer, J. 208, 860.
Fischer, Julius 751.
Fischer, J. G. 393.
Fischer, Ludwig 400.
45*

708

Fischer — Froehlich.

Fischer, M. II, 26.
Fischer, W. R. II, 901.
Fish, D. S. II, 768.
Fitschen, J. II, 769.
Fitting, HaDS 562.
Fitzherbert, S. W. II, 193.

— III, 99, 155, 163, 176,

187, 228, 233.
Fitzpatrick, F. J. II, 179,

180.
Flaksberger, C. II, 853.
Flamand, G. B. M. 563.
Fleischer, Max 59, 68.
Flemming 153.
Fletcher, F. 786. — II,

824.
Fletcher, J. II, 44, 80.
Fletcher, J. J. 645. — III,

285.
Flett, J. B. II, 789.
Fliehe, P. 396, 400, 563,

564. — II, 150. — III,

265.
Floericke, Kurt 390.
Flückiger, A. II, 138.
Flügge 835.
Flury, M. II, 665.
Flyna, N. F. II, 174.
Foa, A. II, 610, 611.
Foa, Carlo 188.
Foaden, G. O. II, 824.
Fobe, F. III, 158.
Focke, C. III, 495.
Focke, W. O. 400. — . III,

293, 370, 371.
Foelsing, A. III, 495.
Förster, K. II, 801.
Foex, E. 186, 248, 832. —

II, 610.
Fogel, Estelle D. II, 179.
Foitik, Th. 153.
Fomin, A. II, 152, 153,

775, 776. — III, 3.
Fondard, L. II, 81, 84.
Fontana E. 169.
Fontoynout III, 495.
Ford, W. W. III, 634.
Formiggini, L. 352, 353.
Forrest, G. II, 157. — III.

283.

Forsberg, L. II, 38.
Forster, H. III, 62.
Forti, A. 338, 564. — II,

634, 641, 642.
Fortier, E. 646. — III, 25,

199.
Fosdick, L. J. II, 79.
Foslie, M. 350, 377, 378.
Foster, A. S. 19, 67. — II,

171, 789.
Foster, H. D. II, 70.
Foster, J. H. II, 71.
Fouard, E. II, 712.
Fouillade, A. III, 53, 305.
Foulques, L. 406.
Fourmarier, P. 564.
Foussat, J. II, 76, 193.
Fowler, J. II, 147.
Fowler, W. 107.
Fox, J. W. II, 26.
Foxworthy, F. W. II, 176,

211, 213, 902.
Fraenkel, A. III, 496.
Fraine, E. de 463. — III.

21, 66.
France. R. H. 153, 390,

327, 332, 367, 629, 720,

721, 751. — III, 6, 25.
Francois, L. 513. — II,

559. - - III, 25.
Francois - Franck, Ch. A.

661.
Franck II, 45, 941.
Frank, J. III, 496.
Frank. L. II, 6, 16, 24.
Franke, M. III, 496.
Frankfurt, S. II, 5.
Franz, Erich III, 280.
Fräser, H. C. J. 169, 170.

- II, 968.
Frear, W. II, 13, 43.
Freckmann, W. II, 25, 58.
Fredholm, A. III, 234.
Freeman, E. M. 244, 831.
Freeman, Geo F. 676. —

II, 39, 51, 55.
Fremont 409.
French, C. II, 859.
French, C. jun., II, 259,

260.

French, G. T. 125, 220,

819. — II, 338. — III,

234.
Frerichs, G. III, 496.
Frese, H. II, 17.
Freudl, E. II, 2, 4(5.
Freund, Hans 331.
Freundlich, H. 661, 762,

763.
Freundlich, H. F. 513. —

II, 760.
Freundlich, J. III, 496.

497.
Frey IT, 65.
Fric III, 158.
Fricke II, 64.
Frieboes, W. III, 335.
Friede!, Jean 414, 496,

749. — II, 250.
Friedenthal, Hans III, 388.
Friederichs, K. 170.
Friderici, L. II, 849, 869.
Friedmann, III, 554.
Friedrich, A. III, 435.
Friedrich, E. II, 818.
Friedrich, Josef 684.
Friedrichs, O. von III, 497.
Friedrich, Otto III, 498.
Friedrich, R. II, 690.
Friedrich, Rudolf 743, 744,

804.
Fries, 0. R, 391.
Fries, R. E. 646. — II,

131, 190, 269, 276, 559.

— III, 4, 78, 250, 323,

335.
Fries, Th. C. E. III, 176.
Fries, Th. M. 414.
Friren, A. 43, 44, 70. —

II, 771.
Frisoni, A. 414.
Fritel, P. H. 564, 565.
Fritsch, F. E. 435. — II,

224. — III, 216.
Fritsch, J. II, 904, 921.
Fritsch, Karl 509. - II,

203, 773, 988. — III, 53.
Fritz II 20.
Fröhlich II, 49.
Froehlich, H. 170.

Froelich — Gepp.

709

Froelich, G. 410. — II, 36,

53.
Frümbling, C. II, 65.
Fröschel, Paul 724.
Froggatt, W. II, 848.
Froggatt, Walter W. II,

850.
Fromme, G. III, 498.
Fron, Ä. II, 63, 72.
Fron, G. 105.
Frost, Charles C. 275, 407.
Prost, J. II, 43.
Fruhwirth, C. II, 31, 39,

43, 45, 46, 47, 49, 51,

53. - III, 26, 90,371.
Fry, W. R. II, 834, 909.
Frye, T. C. 19. - II, 187,

788.
Fachs, J. 727.
Fucini, A. III, 158.
Führer, G. II, 770.
Fürnrohr. Oskar 182.
Fürstenberg, M. v. III,

117.
Fuhrmann, Franz 153.
Fujitani, J. III, 493.
Füller, H. R. II, 825.
Fulton, H. R, 123. — II,

857, 874, 875, 889.
Fulton, S. H. II, 77.
Funk, J. H. II, 73.
Furlani, J. 725. — III, 6.
Fuschini, C. 264, 785, 822,

842. — II, 611.
Fussell, L. II, 175.
Fyson, P. F. III, 250.

Gabelli, E. 646. — II, 265.
Gabotto, L. 102, 248, 267,

780, 833, 836. 853.
Gabriel, J. II, 261.
Gabrieli, S. II, 83, 873.
Gadamer, J. III, 498.
Gadeceau, Em. 420.
Gaedecke, K. 541.
Gärtner, R. II, 77.
Gage, A. T. 646. — III,

78.
Gager, 0. S. 646, 677,

726, 727.

Gager, S. 380.

Gagnepain, F. II, 123,
156, 205, 221, 250.
III, 54, 78, 96, 108, 134,
150, 153, 165, 168, 209,
230, 252, 253, 271, 279.

Gain, Edmond II, 98, 560.

— III, 283, 284, 373,
461.

Gale, A. II, 845.
Galjalo, M. J. III, 498.
Gallagher, F. E. 769. —

II, 6.
Gallagher, W. J. 208. —

II, 857, 938, 939, 944,

980 — III, 79.
Gallardo, Angel. II, 959.

— III, 373.

Gallaud, J. 14(J, 826. —

II, 192, 226. — III, 235.
Gallee, H. 393.
Gallöe. 0. 2.
Galloway, B. T. 123. —

II, 2, 22.
Galpin, E. E. II, 253.
Gamble II, 216.
Gamble, J. Sykes 111,141,

146, 245.
Gammie, G. A. II, 224,

907. — III, 117.
Gamolla, R. LI, 822.
Gandara, G. III, 498.
Gandoger, M. II, 149, 170,

186, 775. — III, 279.
Gandurin, A. III, 498.
Ganghofer, F. 412.
Ganong, W. III, 6.
Garbaglia, L. II, 611.
Garcia, F. II, 73.
Garcke II, 8, 33, 769.
Gard, M. 264, 496. 842.

— III, 172.
Gardner, F. D. II, 6.
Garland, Virginie 400.
Garner, W. W. II, 886.
Garnett, H. III, 499.
Garnier, L. III, 499.
Garola, 0. V. II, 836.
Garreh, A. E. II, 904.
Garrett, A. 0. 143, 208.

Garry, Robert 354.
Garsault, F. A. 416.
Gasis, D. III, 499.
Gassner 126.

Gassner, G. 795, 816. 830.
Gastine, G. II, 55.
Gates, B. N. II, 845.
Gates, R. R. II, 980, 981.

- III, 266, 373.
Gatin, C. L. 435, 459, 460,

644. — II, 708.
Gatin-Gruzewska, L. II,

989. — III, 499.
Gaucher, N. II, 77.
Gauchmann, S. III, 660.
Gaul, F. II, 2, 15, 37.
Gaulhofer, K. 517, 719,

720. — III, 26, 77.
Gaultier, R. III, 499.
Gaunt. R. III, 500.
Gaut, R. C. II, 9, 14, 38.
Gautier, E. III, 500.
Gautier, L. 199, 811. —

III, 323.
Gave, P. II, 772. — III, 5.
Gavelin, A. 565.
Gayer, Gyula III, 344.
Gedroiz, H. 804.
Gedroiz, K. K. II. 15, 22.
Geerts, J. M. II, 981. -

III, 266, 373.
Gehe et Co. III, 500.
Geheeb, A. 68.
Gehrmann, Karl II, 131,

246. — III, 205, 207.
Geisenheyner, L. 647. —

III, 309.
Geismar, L. M. II, 27. 73.
Geistbeck, M. II, 112.
Geisthoff, G. II, 20.
Geisthoff, H. II, 660.
Gennys, R. H. II, 854,

861.
Genta, Amb. 389.
Gentil, L. III, 6.
Gentner, G. III, 500.
Gentzsch, W. 199.
Georgeson, C. 0. II, 73.
Georgevitch, Peter II, 959.
Gepp, A. 337.

710

Gerard— Graham.

Gerard, G. 477. —II, 111.

— III, 176, 241.
Gerber, Oh. II, 611. —

- III, 246, 286.
Gerber, P. III, 500, 501.
Geremica, M. 414. — III, 6.
Gericke, Fritz 683. — III,

176.
Gerlach 179, 802. — II,

15, 31.
Geröme, J. III, 187, 344.
Gerstenberg II, 15.
Gerstlauer, L. III, 344.
Gertz, 0. II, 723.
Gescher, Clem. II, 611.
Geyer, Malin. 646. — III,

176, 210.
Ghigi, A. II, 611.
Giacomelli, E. IQ, 215.
Gialdini, C. III, 424.
Giard, A. 400, 401.
Giardullo, G. 208.
Gibbs, J. 816.
Gibbs, L. S. 513.
Gibbs, Th. 107, 257.
Gibbs, V. III, 54.
Gibson, Charlotte M. 370.
Gibson, H. H. III, 62, 136,

152, 153, 208, 216, 234,

261, 309, 337.
Gibson, R. J. Harvey 349,

707.
Giddings, N. J. 208, 781.
Gienapp, E. II, 66, 79.
Giersberg, Fr. II, 39, 45,

58.
Giesenhagen, K. 111. —

III, 373.
Giessen, C. III, 501.
Gifford, J. II, 902. — III,

17.
Giglio, J. III, 501, 502.
Giglio-Tos, E- III, 373.
Giglioli, J. II, 931.
Gigon, A. II, 702, 704.
Gilbert, B. D. 398.
Gilchrist, P. A. 694. —

II, 42.
Gilg, Ernst II, 246, 252,

266, 902. — III, 141,

199, 251, 263, 504, 505,

506, 555.
Gilibert 406.
Gill, A. H. III, 510.
Gill. A. Mc. III, 510.
Gillanders, A. T. II, 611,

903.
Gillet, Abbe 60.
Gillette, C. P. II, 611.
Gilling, Chr. III, 330, 510.
Gimel, C. 188.
Ginsbourg, B. 496. — III,

234.
Ginuchi, D. III, 253.
Girasoli, O. III, 78.
Girod-Chautrans 406.
Gisevius, Paul 775. — II,

3, 51.
Giunti, M. II, 84.
Glaab, L. II, 104.
Glabisz, Joseph 514, 766.

— III, 146.
Glaser, L. III, 510.
Glass II, 59.
Glatz, A. II, 77.
Glaziou, A. F. M. II, 202.
Glaziou, F. M. 397, 400.
Gleason, H.A. II, 168, 178.

- III, 273.
Glowacki, Julius 44, 45.
Glücksmann, C. III, 511.
Glücksthal, Z. 514.
Gmeiner III, 511.
Gobbetti, V. II, 856.
Goddard, L. H. II, 37,

40.
Godet, Ch. III, 640.
Godlonton, M. G. II, 845.
Goebel, K. 33, 647, 753,

757. — II, 560, 749. —

III, 26, 41, 284.
Goeschke, F. III, 54.
Goethe 398, 411.
Goethe, R. 793. - II, 112.
Gütting, Fr. II, 77.
Goeze, E. III, 62, 201.
Goffart, J. 257.
Goiran, A. III, 26.
Gola, G. 55.
Golding, J. II, 36,

Goldschmidt-Geisa, M. II,

771. — III, 211.
Goldstein, J. R. Y. II, 843.
Golenz, J. 394.
Golker, P. II. 773.
Gombocz, Endre III, 309.
Gomez, G. II, 878.
Gomez, Pamo J. R. III,

511.
Gomolla, R. 138.
Gomont, Maurice 339.
Gonnermann, M. II, 22. —

111, 511.
Gopaliat, B. II, 933.
Gordin, H. M. III, 511.512.
Gordon, W. T. 565.
Gorini, C. 153.
Goris, A. 161, 182. —III,

234, 512, 513, 514, 601.

712, 876.
Gorodkowa, A. A. 188.
Gortani, L. 395, 396, 407,

565.
Gortani, M. 565.
Gorter, K. III, 306, 514,

515.
Goss, W. L. II, 4. - - III,

20.
Gossard, H. H. II, 611.
Gothan, W. 565, 566, 5ü7,

569, 570. 571, 607.
Gougerot 151.
Goulding, E. III, 516.
Goupil II, 669.
1 Goury, G. II, 560.
Gow, J. E. 531,532. — II.

960, 981, 982. — III, 77.
Gowdey, C. C. II, 850.
Gräbener 694, 793. - - III,

54.
Graebner, P. 208. — II,

59, 81, 84, 245. — III,

63. 293, 344.
Graf, V. III, 516.
Gräfe, Victor 188, 799. —

II, 22, 720. — III, 516.
Graff, G. III, 518.
Graff, J. II, 17.
Graham, G. H. III, 518.
Graham, W. A. II, 828.

Grams— Guzmän.

711

Grams II, 42.
Gran, H. H. 334.

Granato, L. II, 834, 842,

857, 869, 912.
Grandeau, L. II, 15, 20.
Grand'Eury 572.
Grandmont, P. III, 518.
Grandmougin, E. III, 518.
Grandmougin, Z. III, (581.
Grandori, R. II, 610, 611.
Granel, J. 267.
Grantham, A. E. II, 27.
Grassi, G. B. II, 611.
Gravelius, H. II, 64.
Graves, A. H. III, 131.
Gravis, A. 572. — III, 6.
Gravis, H. 460, 461.
Gravisi, G. III, 17.
Gray 413.
Grazia,S. de 182,691.— II,

10, 13, 15.
Gredilla y Gauna II, 956.
Green, E. Ernest II, 73,

849, 944.
Green, S. B. III, 7.
Green, W. J. II, 37, 61.

68.
Greene, Edward III, 4.
Greene, Edw. L. 401. —
LI, 144, 145, 168, 172,
183, 183, 188. — III, 5,
140, 176, 269.
Greene, F. C. II, 788.
Greene. W. II, 180.
Greenman, J. M. II, 167,
172, 191. — III, 176, 234.
Gregg, O. J. II, 80.
Gregoire, A. II, 15,20, 960.
Gregory, E. S. III, 374.
Gregory, R. P. II, 253,

769. — III, 72.
Grelot, P, III, 519.
Greshoff, M. 183. — II,
715, 759, 818, 879. -
III, 100, 519.
Gressler, P. III, 176.
Grevillius, A. Y. II, 611.
Grevsmühl, E. III, 176.
Gribbler, J. 231, 828.
Grieb. C. M. W. III, 519.

Grier, Jas. III, 499.
Griff in, E. M. 518. — III,

63.
Griffiths, David 820. —

II, 40, 42, 193, 843, 844.

— III, 158.
Griffon, Ed. 208, 264. —

II, 52. — III, 26, 331,
374, 520.

Griggs, R. F. 171. — II,

969.
Grignan, G. T 401. — III,

99, 117, 155. 176, 201,

263, 293, 318.
Grigorew, A. W. 403.
Grimal, E. II, 715.
Grimaldi, Cl. II, 84. —

III, 374. 520.
Grimault, E. 189.
Grimbert, L. III, 520.
Grimme III, 520.
Grisard, J. II, 821, 847.
Grisdale, J. H. II, 27.
Grohmann II, 8.
Groom, P. II, 68.
Grosbüsch, J. J. 180.
Gross, ü. F. III, 520.
Gross, E. II, 51.
Gross- Lieb vverda, E. II,

50.
Grosse, A. 436. — III, 257.
Grosser, W. 776. — III,

112.
Grossmann, H. 666.
Grottanelli, ü. II, 902.
Grottian, W. 738.
Grout, A. J. 33, 49, 68.
Grübler, III, 520.
Grüss, J. 189, 661. — II,

698.
Gryon, H. 208.
Guarnieri, F. 181.
Gucbt, G. van der 731.
Gueguen, F. 150, 200, 223,

257, 267, 275, 401, 647.

— III, 77.
Guerin, P. III, 526.
Gurke, M. II, 185, 191,

192, 193, 195, 196, 199,

204, 246, 268, 269. -

III, 105, 158, 159, 160,

176, 228.
Guernisac, Louis de 275,

401.
Güssow, H. T. 208, 847.
Guffroy, Ch. III, 266.
Guggenheim, M. 181.
Gugler, Wilhelm III, 176.
Guignard, L. II, 715. —

III, 521, 522, 524, 525.
Guignon, J. II, 560.
Guigues, P. III, 526.
Guillain III, 526.
Guillard, Cl. 406.
Guillaume, A. II, 611.
Guillaume, G. III, 526.
Guillaumin, A. 648. — II,

128, 221. — III, 41,

156.
Guilleminot, H. 725, 726.
Guillet, C. 123.
Guiliiermond, A. 171. — II,

969, 989, 990. - III,

21, 526.
Guillon 234.
Guillon, A. 389.
Guillon, P.-A. 407.
Guinet, A. 48, 59.
Guinier, Ph. 171, 264, 402.

— II. 774. — III, 63.
Guiraud, D. 208, 812, 854.
Gulli, S. III, 526.
Gully, E. II, 58.
Gurney, W. B. II, 849,

858, 864, 903, 924.
Guse II, 64.
Gusson, H. T. 107, 848.
Gutarovich, J. II, 65.
Guthrie, F. B. II, 6. 13, 853.

— III, 834, 835.
Guthrie-Smith, H. III, 90.
Guttenberg, H. Ritter von

171, 497,735.— II, 560,

682. — III, 117.
Guttmann, Oskar III, 526.
Gutzeit, Ernst 112, 694,

786, 793.
Gutzwiller, A. 572.
Guzmän, David J. II, 821,

822.

712

Gwynne-Vanghan — Hart.

Gwynne-Vaughan, D. T.

573, 580, 581. — II, 752,

753, 756.
Gy III, 52(3.
Györffy, Istvän 45, 648. —

II, 772.

Haack, Wilhelm 573.

Haacke II, 59.

Haar, van der III, 526.

Haas 257.

Haas, F. II, 57, 59.

Haase II, 33.

Haberlandt, G. 509, 718,
719, 731, 740, 741.

Hackel, Ed. II, 128, 149,
159, 163, 202, 207, 211,
253, 270. — III, 90.

Hackenberg, H. III, 255.

Hada, III, 526.

Haecker, V. III, 374.

Haedicke 153.

Haenig, A. 573.

Haensel, H. III, 527.

Haertel, F. III, 527, 533.

Häussermann, III, 535.

Hafner, B. III, 527.

Hagem, 0. 98, 357.

Hagemann, A. II, 77.

Hagen, J. 36, 68.

Hager, III, 528.

Hagström, O. II. 229. —

III, 132.

Hahn, Gotthold 17, 44,

223.
Hahn, Karl 44.
Hahn, L. II, 922.
Hahn, M. II, 697.
Halacsy, E. de II, 775.
Halfdan, Arneberg, Mad-

son 223.
Hall, A. D. II, 15, 836.
Hall, C. J. J. van 850.
Hall, H. F. II, 79.
Hall, H. M. II, 187. — III,

17.
Hall, J. G. 125, 220, 272,

846.
Hall, J. J. van 267.
Hall, W. L. II, 71.

Halla III, 529.

Halle, Th. G. 573, 574.

Haller 400, 411.

Haller, A. II. 929. — III,

529.
Haller. A. de 414.
Hallier, Hans 575. - III,

54, 217.
Halpera, Karl III, 530.
Halstead, E. W. II, 80,

859.
Halsted, B. D. II, 52, 73,

77.
Harn, H. W. II, 842.
Hamann, G. 803. — II, 9,

673.
Hamet, R. II, 253. — III.

187, 188, 189.
Hamilton, H. C. III, 544.
Hammerschmid, Anton P.

44.
Hammond, B. II, 800.
Hammond, H. S. II, 982.
Hammond, R. L. II, 4.
Hamy, E. T. 401.
Hanamann, A. II, 53.
Hanamann, J. II, 8.
Hanausek, T. F. 498, 510.

II, 130, 995. — III, 177,

530, 531.
Hanbury, Thomas 402.
Hancu, V. III, 540.
Handel-Mazzetti, H. von

II, 152, 203. — III. 54.
Handeriog, Wilhelm 393.
Hanen, L. 60.
Haneu, V. III, 540.
Hangen, F. II, 2.
Hannezo, J. II, 150.
Hannig, E. 153, 154, 695,

818. — II, 684. — III,

531.
Hannon, P. J. II, 869.
Hans, A. II, 799, 802. •
Hansen, Emil Christ. 189,

190.
Hansen, J. II, 56.
Hansen, N. E. II, 77, 79.
Hanson, R. E. III, 422.
Hanssen, Olaf 710.

Hansteen, B. II, 670, 688.
Hanus, Joseph III, 532.
Haralson, C. II, 79.
Harcourt, R. II, 8, 59.
Hard, M. E. 223.
Harding, H. A. 180. — II,

39, 842.
Hards, H. H. II, 858.
Hardt, B. 11, 33.
Hardy, A. D. II, 261, 797.
Hardy, G. H. III, 374.
Hardy, J. II, 718. — III,

341, 653.
Hardy, W. B. 752.
Hare, R. F. II, 843, 844.
Haring, J. II, 772.
Hariot, P. 106, 139, 154,

264, 327, 348, 843.
Harlay, V. III, 532.
Harmand, J. 12, 22, 23.
Harms, H. 413,736. — II,

118, 201, 208, 248, 266,

561, 858, 934. — III. 17,

144, 145, 234, 271.
Harnoth II, 8.
Harold, H. M. 257.
Harper, Robert Almer

361.
Harper, R. M. 11,134, 141,

177, 180, 181, 788. —

III, 54.
Harraca, J. M. II, 38, 52.
Harnes, ü. II, 687. — III,

532.
Harris III, 590.
Harris, W. II, 899.
Harrison, A. K. II, 787.
Harrison, B. II, 840, 842.
Harrison, 0. K. II, 855.
Harrison, 0. S. 412.
Harrison, E. F. III, 173,

533.
Harrison, F. C. 208.
Harrison, J. B. II, 857,

875, 882, 909, 938.
Harrow, R. L. II, 193.
Harshberger, John W. 519,

699. — II, 31, 193, 197,

759. — III. 105.
Hart, H. Ch. 395.

Hart — Henderson.

713

Hart, J. H. II. 791, 881,
882, 884. — 111, 533.

Harter, L. L. 756. — II,
22, 50.

Hartlaub, G. 400.

Hartley, C. P. 209, 820.

Hartmann, B. II, 33.

Hartmann, F. 575.

Härtung, O. 401.

Hartwell, B. L. II, 11, 13,
22, 23.

Hartwich, C. III, 533, 534.

Harvey, F. J. III, 534.

Hervey, J. C. II, 193, 939.

Harvey, Le Roy H. II,

182, 561.
Harvey, N. A. III, 7.
Harwood, W. S. II, 73.
Haselhoff, E. 112, 776,

777, 802. — II, 8, 13,

15, 31, 42.
Hasenbäumer, J. 666. —

II, 654.
Hasler, Alfred 248, 833.
Hasse, H. E. 20.
Hasselbring, Heinrich 171,

183, 853.
Hassler 414.
Hastings, S. H. II, 56.
Hatschek, B. III, 374.
Hatscher, R. A. III, 534.
Hattori, H. 347. — II, 165,

634.
Hattrick, J. Montgomerie

II, 875.
Haumann-Merck, L. 126.
Haumont, L. II, 65, 925.
Hauriot, M. III, 531.
Hausmann, Emmerich 46!.

— III, 105.
Hausmann, Walther 707'

711. — II, 682.
Hautefeuille, L. II, 918.
Havelka II, 77.
Havorka, O. von III, 544.
Hawes,A. F. 11,61, 66,71.
Hawk, W. 855.
Hawkins, L. A. II, 974.
Hawley, H. C. 107.
Hawley, R. C. II, 71.

Hawson, F. E. III, 269.
Hay, G. U. 123, 401, 770.

— II, 104, 172.
Hayata, B. II, 213, 214,

215, 776.— 111,3, 4,63.
Haydon, W. T. III, 64.
Hayduck, F. 190.
Hayek. A . von II, 202, 266,

773. — III, 4, 17, 343.
Hay n es, C. C. 63, 68, 70,

401. ■ ■ II, 807.
Hays, W. M. II, 27.
Haywood, A. H. II, 841.
Hazon, T. E. II, 174.
Headley, O. T. II, 56.
Heald, F. D. 209, 244, 267,

781, 834.
Heary, T. A. III, 535.
Heath, F. G. II, 735.
Hebert, Alexandre 111,245,

535.
Heck II, 66.
Hecke H. 811.
Heckel III, 331, 374.
Heckel, E. 541. — II, 52.

— III, 535.

Heckel, Gunnar II, 921.

— III, 535.
Hecker, H. 231.
Hector, J. 402.
Hedgcock, George G. 209,

217, 784, 806.
Hedin, G. S. II, 704.
Hedlund III, 375.
Hedrick, U. P. 858. - - II,

20, 42, 75, 77, 79, 177.

— III, 344.

Heen, P. de 730. — II,
652.

Heering, W. 750.

II,

97, 561. — III, 26.
Heese, E, II, 204, 270.
Hefelmann, R. III, 535.
Hefter, G. II, 920.
Hegi, G. 120. — II, 772.
Hegnauer, L. II, 34.
Hegyi, Desiderhis von 209.

— II. 3.
Heideman, C. W. H. II,

27, 73.

Heiden 576.

Heidinger, Wilhelm 357.

— II. 966.
Heiduschka, A. III, 535.
Heijusbergen, S. van III,

536.
Heim, F. II, 823, 953. —

III, 74, 235, 312, 331.
Heimerl, Anton 814. —

II, 127, 202, 203, 266.

— III, 3, 54, 133, 262.
Heine, E. II, 15, 906. —

III, 250.

Heineck 713, 737. — II,
561, 562, 563. 564, 565,
566, 567, 568, 569, 570,
571, 572. — III, 27, 74,
79, 99, 105, 145, 163,

166, 169, 193, 197, 199,
211, 228, 270, 289, 293,
312, 331, 335.

Heinrich, Kurt 681.
Heinrich, R. II, 13.
Heinricher, E. 462, 469,
715, 717, 811. —II, 572.

- III, 21, 105, 148, 246,
265, 268, 293, 375.

Heinz, R. III, 535.
Heinze, B. 180. — II, 683,

692, 730.
Heinzelmann, R. 190.
Heinzerling, Otto II, 629.
Heisig II, 43.
Heller, A. A. II, 177, 186,

188. — III, 54, 211, 235,

294, 318.
Hellström, Arthur III, 536.
Hellweger, M. II, 572.
Hellwig, E. 394.
Helmrich, G. II, 880.
Helms, R. II, 836.
Hemmann 257.
Hemsley, A. II, 797.
Hemsley, W. Botting 401,

648. - II, 12S. 156,204,

205, 211, 252, 257, 264.

- III, 117. 133, 163,

167, 185, 207, 227, 230,
286, 313.

Henderson. J. III. 536.

714

Hendriek — Hockauf.

Hendrick, J. II, 15, 20. —

III, 536.
Henkel, A. II, 891.
Henkel, Alice II, 83.
Henkel, J. II, 144.
Henneberg, W. 190.
Hennet, Leopold von 231.
Henning, E. 209, 831, 841.
Hennings, P. 112. 126,

127, 133, 138, 139, 249,

275, 405, 817, 818. — II,

245.
Hennis, W. III, 117.
Henri, V. II, 714. - III,

537.
Henriksen, H. C. II, 868.
Henriques, J. A. 401. —

II, 253, 775. - III, 18,

73, 247.
Henry 854.

Henry, A. IL 68. - 111,3.
Henry, A. Th. III, 483.
Henry, E. 847. — II, 62.
Henry, Louis III, 265.
Henry, T. A. II, 54, 233,

843. — III, 537.
Henry, Y. II, 877, 928,

937, 946, 948.
Henshaw, J. W. II, 169.
Henslow, G. 576. II,

768. — III, 41, 42, 375.
Henslow, S. III, 193.
Hensman, G. II, 850.
Henze, A. II, 61.
Henze, M. 334.
Hepner, A. II, 6, 16, 24.
Heraud, A. III, 18.
Herb, O. III, 535.
Herbing, J. 576.
Herbst, A. II, 797.
Herdman, A. W. 344.
D'Herelle, F. H. II, 869,

918.
Heribaud, Fr. Joseph 576.
Herissey, H. 182. — II,

711, 715. III, 455,

456, 539, 540
Hermann, E. II, 63.
Hermessen. J. L. II, 193,

946.

Hernandez - Pachecho, E.

381.
Herold, Josepb II, 84.
Herriott, E. M. 519.
Herrinann II, 59.
Herrmann, F. III, 540.
Herse, F. II, 75. — III,

375.
Hersey, E. II, 19.
Herter, Guillermo 127.
Herter, W. 840. - II, 749,

767, 774, 785.
Hertkorn, J. III, 540, 832.
Hertwig, O. II, 572. - III,

27.
Hertwig, Richard II, 956.
Herty, Ch. H. III, 64,

540.
Herz III, 489.
Herzfeld 788.
Herzog III, 571.
Herzog, A. 427. - II, 904.
Herzog, J. III, 540, 954.
Herzog, R. O. 183. — II,

696. — III, 540.
Hesdörffer, Max II, 74.
Hesse, E. 229.
Hesse, 0. III, 279, 540.
Hesseling, E. II, 44.
Hesselman, A. 36.
Hesselman, H. 576.
Hesselmann, H. II, 66, 70.

— III, 64.
Hetschko, A. II, 573. —

III, 235.
Heurck, H. von 339.
Hewitt, C. G. 42.
Hewitt, G. G. A. 11.
Hewitt, John II, 889, 921.
Heydrich, F. 379.
Heyking, J. II, 8, 45.
Heyl, F. W. III, 238.
Heyl, J. H. II. 950.
Hickel, B. II, 62, 63.
Hickel, R. 402, 420. — III,

66.
Hicken, U. M. II, 269,

793.
Hickling, G. 577.
Hiern, W. P. III, 73.

Hieronymus, G. II, 266,

611, 791.
Hiestand, 0. III, 683.
Higgins, J. E. II, 74.
Hignell, H. II, 845.
Hubert 577. — II, 573.
Hilton, A. E. 227.
Hildebrand, Friedrich 649,

714, 737. — II, 81, 151,

573. — III, 27, 149,

150, 235, 269, 284, 376.
Hildebrandt, H. III, 540.
Hildt, L. II, 721.
Hilgard II, 932.
Hill, Arthur W. 510. —II,

189, 996. — III, 54, 211,

271.
Hill, E. J. III, 201.
Hill, J. K. II, 845.
Hill, J. R. 402.
Hill, T. G. 463, 667. —

III, 21, 66, 73.
Hillier, J. M. II, 951.
Hillier, L. 41.
Hillmann, F. H. 811. — II,

2, 36, 47, 134.
Hills, J. L. II, 6.
Hiltner, L. 112, 209, 210,

244, 730, 795, 796, 813,

829. — II, 3, 36, 39.
Himmelbaur, W. 525. —

III, 66.
Himmelmann, A. III, 532.
Hind 588.
Hintze, Fr. 68.
Hirth, A. II, 771.
Hissink, D. J. II, 6.
Hitchings, E. F. II, 77.
Hitchcock, A. S. II, 167,

169, 187. -III, 90, 91.
Hjort, J. 337.
Hoak, Charlotte M. II,

135.
Hoch, Hermann III, 74.
Hoch, J. II, 84.
Hochburger, M. II. «1.
Hochreutiner, B. P. G. II,

124, 216, 227, 256. —

III, 5, 7, 54, 154, 250.
Hockauf, J. III, 541.

Hodgkiss — Hutton.

715

Hodgkiss, H. E. 272, 861.
Hock, F. 772. — II, 97,

98. — III, 7, 77.
Höhnel, F. von 112, 118,

127, 140, 257, 259, 813,

821, 836.
Hörich, Oscar 577.
Hörold, R. III, 201.
Höye. K. 200.
Hoffmann, F. II, 770.
Hoffmann, K. II, 112.
Hoffmann, L. II, 929. —

III, 541.
Hoff mann. M. II, 20, 23,

59.
Hoffmann, W. 196, 690.
Hofmann, A. II, 71.
Hofmann, K. III, 345.
Hofmann-Bang, O. II, 6.
Hok, J. E. van der II,

855, 857.
Holdefleiss, P. II, 27, 47.
Holden 350.
Holder, J. II, 642.
Holfert, D. J. III, 541.
Holfert-Arends II, 818.
Holland. J. H. II, 824.
HoUandt, R. 200.
Hollick, Arthur 554, 577.
Hollös. L. 118, 814.
Hollrung. M. 210, 771. —

IL 23.
Holm, Th. 436, 437. 438,

439, 440, 441, 442. 443,

444, 445, 446. - II, 144,

184,573.-111,81.82.91.

99, 106. 117. 145, 150,
169, 177, 201, 211, 214.
228, 235, 245, 270. 271,
286, 294, 541.

Holmberg, O. R, III. 91.
Holmboe, Jens. II, 142,

152, 155.
Holmes, E. M. 399. — II,

928, 933. — III. 140,

541, 542. 543.
Holmes, J. S. II, 71.
Holson. B. 623.
Holst, N. 0. 577.
Holt, W. P. III, 27.

Holten, P. II, 849.
Holtermann, Carl 402.
Holtmeier-Schomberg II,

47.
Holtz, E. II, 59.
Holtz, L. 392.
Holy, K. II, 41.
Holzinger, F. 172, 667.
Holzinger, John M. 68.
Hood, S. C. II, 83.
Hooker, C. W. II, 622.
Hooker, J. D. 418. - III,

7, 149.
Hooker, William 418.
Hooper, David II, 890,

927, 928, 929. — III,

247, 270, 543, 544.
Hooper, E. M. III, 311.
Hopkins, 0. G. II, 6, 27.
Hoppe, E. III, 544.
Hoppe, W. II, 800.
Hornberger II, 65.
Hörne, W. T. 128. — II,

859, 866.
Horney, 0. II, 20.
Horwood, A. R. 42, 107,

108, 578.
Hosack 419.
Hosseus, C. C. Tl, 221

223, 777.
Hotchkiss W. S. II, 8.
Hotter. E. II, 9.
Houard. C. II, 803. — III.

609, 612.
Hough, R. B. II, 68, 168
Houghton, Ell. III, 544.
Houlbert. C. III, 235.
House, H. D. II, 170, 188,

192. 197. — III, 185,

186, 278.
Houzeau de Lehaie, Jean

II, 91, 111, 160, 165,

205, 249.
Howard. A. 784.
Howard. Albert 783.
Howard, C. W. 139.
Howard, G. L. C. 784.
Howe, Marshall Avery

274. 351, 402. --II, 197,

806.

Howe, R. H. 19, 20.
Howe, Wm. II, 845.
Howey, F. O. 402.
Hoyer, G. III, 544.
Hoyt, W. 372.
Hua, Henri 423.
Hubac, H. II, 890.
Hubbard, P. II, 11.
Huber 210.
Huber, Gottfried 341, 578.

- II, 634.
Huber, Jacques II, 199,

573. — III, 342.
Hubert, M. II, 33.
Hubert, Paul II, 83, 866,

867, 918.
Huchard, H. III, 545.
Hue, A. M. 10, 14, 21.
Huerre, R, III, 294, 545.
Huesmann II, 80.
Huf fei, G. II, 71.
Hugues, C. 7S4.
Hüll, T. G. III, 27.
Hume, A. N. II, 34.
Hume, H. Harold 820. —

II, 867.
Humphrey, H. B. 33, 344.
Humphreys, E. W. III,

230.
Hunger, F. W. T. 511.
Hunt, T. F. II, 27.
Huntemann, J. 210.
Hunter, Byron II. 27.
Hurrier, P. III, 546.
Hurst, C. <J. III, 376, 377.
Hus, Henri 649. — II,

180, 788. — III, 42.
Husnot, T. 70. -- III, 100.
Hustedt, Fr. 343. — II.

630, 635.
Hutchins, D. E. II, 895.
Hutchinson, D. 210, 826.
Hutchinson, H. B. II, 36.
Hutchinson, J. III, 150,

195, 306.
Hutchinson, R. R. II, 270.
Hutchinson, W. J. II. 902.
Huter, R. II, 773.
Hutt, H. L. II, 74.
Hutton, G. II, 45.

716

Hy — Jolyet.

Hyll, 884.
Hyde, E. II, 974.

Ichimura, T. II, 1G5. —

III, 92.
Ihering, Hermann von

579. — II, 114.
Ihne, F. II, 111.
Ihssen, G. II, 3.
Ilatys, T. III, 546.
Uikevic, 0. 183. — II,

996.
Iljin, L. F. III, 546.
Imaseki, T. II, 15, 40.
Immelmann, A. II, 19.
Immendorff, H. II, 19, 53.
Imperato, F. 398.
Ingham, N. D. II, 188.
Ingham, W. 60. — III,

170.
Ingle, H. II, 21.
Inglese, E. III, 186.
Innes, T. E. D. II, 851,

852.
Inouye, Naoziro II, 934.
d'Ippolito, G. 498.
Irwing, W. III, 106, 117,

270, 284, 318.
Issatschenko, B. 210. —

II, 850.
Issler, E. II, 771. — III,

377.
Istvanffy, Gy. de 267,

806, 848.
Itallie, J. van III, 546.
Iterson, G. van III, 42.
Ito, E. III, 546.
Ivanoffi, B. 249.
Ivanow, S. III, 546.
Ivolas, J. 420.
Ivolas, P. L. J. 389, 400.
Iwanoff, Boris 832.

Jaap, Otto 113, 118, 143,

144, 814.
Jablonski, M. II, 59.
Jaccard, P. 578.
Jack, J. N. II, 832.
Jack, R. W. 210, 859.
Jacques, Uh. II, 917.

Jackson, A. Bruce 42. —

II, 769. — III, 228.
Jackson, B. D. III, 7.
Jackson, H. S. 244.
Jackson, H. V. II, 864.

878, 916.
Jacobsen, E. II, 77.
Jacobstein, M. II, 44.
Jacquemin, Alb. III, 547.
Jaquet, F. III, 294.
Jaczewski, A. von 100,

774, 779, 780, 821.
Jadio. F. 799. - III, 256.
Jadin, J. III, 547.
Jaeger, Julie 210, 807. —

II, 612.
Jäggli, M. II, 772.
Jagg, H. F. 578.
Jagger, M. H. II, 3.
Jahandiez, E. II, 774.
Jahn, E. 227. — II, 962.
Jahrmann, A. 394.
Jakoby, M. II, 701.
Jaloustre, L. 183.
Jamada, K. II, 703, 710.
James, E. 409.
Jancha II, 68.
Janchen, E. 45. — II, 767,

774, 806. — III, 18, 55,

172, 193.
Janczewski, Ed. 498. —

II, 127, 574. - III,

318.
Janelli, G. S. III, 27.
Jank, F. II, 801.
Janka, Gabriel 662.
Janse, J. M. 210, 675.
Janson, A. 210. — II, 80.
Janson, 0. II, 691.
Janssonius, H. H. 427.
Jardine, W. M. II, 31, 41,

832.
Jarvis, T. D. II, 612.
Jatta, A. 16, 18.
Javillier, M. 183.
Jeancard, P. III, 547.
Jeanmaire, J. 223.
Jeanpretre, J. II, 84.
Jeffrey, E. C. 275, 536,

578, 744. — III, 66.

Jeffrey, J. A. II, 47.
Jelinek, J. 228.
Jenkins, E. H. II, 3.
Jenner, Th. 145, 326.
Jennings, O. E. 123. —

II, 174, 177, 178, 788.
— III, 4.

Jensen, C. 62. 67.
Jensen, P. III, 377.
Jensen-Haarup, A. C. II,

574.
Jentys, E. III, 547.
Jentzsch, A. 579.
Jepson, W. J. II, 169. —

HI, 216, 266.
Jepson, Willis L. II, 186,

188.
Jersey, R. de III. 569.
Jessen, Karl II, 137.
Jewell, H. W. II, 787.
Jimenez, E. II, 850.
Jitschy, P. II, 716.
Joachim, G. 111, 548.
Jöbstl, V. 210, 860.
Jodin, H. III, 2.
Jodlbauer, A. 710. — II,

703.
Joergensen, E. III, 117.
Jörgensen-Gumer III, 553.
Jösting 113.
Johannsen, W. II, 659. —

III, 235, 377.
Johansson, K. 649. — III,

177, 286.
Johnson, D. S. II, 198. —

III, 55.
Johnson, J. 244.
Johnson, J. H. II, 188.
Johnson, P. 781.
Johnson, T. 211, 267,402,

812, 825, 830. - II,

850. — III, 19.
Johnson, W. H. II, 937,

948.
Johnston, J. R. II, 198.
Johnston, Sir Harry II,

249.
Johnstone, James 335.
Jolyet, A. 420. — II, 104,

902. — III, 66.

Jonas— Kern.

717

Jonas, Rudolf 211, 774.
Jones, C. H. II, 6.
Jones, Erk. Morton II,

574.
Jones, J. II, 865.
Jones, J. E. 11, 908.
Jones, Joseph II, 882.
Jones, L. R. 211, 819. —

II, 71.

Jones, M. E. IL 186, 806.

— III, 310.
Jones, M. P. II, 3.
Jonescu, D. III, 548.
Jong, A. W. K. de II, 933.

III, 548, 550.
Jonsson, H. 345.
Jordan, A. 389, 415.
Jordan, David Starr III,

55, 377.
Jordan, Edwin O. 154.
Jordi, E. 211.
Jorissen, A. II, 716. —

III, 553.

Jörns, M. J. II, 74. — III,

167.
Jost, Ludwig 749. — II,

759.
Jouin, E. III, 66, 198.
Jourde 201, 267, 853.
Jourde, Ant. 690.
Jowitt, J. F. II, 933. —

IN. 92.
Joyce, M. C. III, 474, 553.
Juce, W. H. III, 569.
Juday, Chancey 350.
Judd, Charles S. II, 205,

843.
Juel, 0. 98, 249. 833. —

II, 574. — [II, 178.
Jugham, N. D. III, 261.
Jugoviz. A. R. II. 72.
Jugowiz, R. III, 66.
Julius, C. F. II, 841.
Julius, G. A. II, 64.
Jumelle, Henri II. 226,

228, 229. 576, 821, 826,
859, 898, 949, 954. —

III. 27. 141, Uli, 147.
Junack II, 66.

Jung II, 45.

Junge. P. II, 770.
Jungfleisch, E. III, 553.
Jurisch, W. K. II, 15.
Juritz, 0. F. II, 834, 835,

841, 848.
Jussieu III, 159.
Just, J. III, 650.
Justin, R. IL 68.
Justin-Mueller. E. III, 553.

Rabat, J. E. 117, 145, 814.
Kshle, W. II, 612.
Kahre, P. 344.
Kaiser, Paul E. 342. — II,

630.
Kakehi, S. II, 20, 666.
Kallus II, 45.
Kalms, P. 400.
Kametaka, T. II, 921.
Kammer, Alfred 740.
Kammerer, Paul 355, 770.

— IL 151. — III, 27.
Kanamori, S. II, 13.
Kanngiesser, F. III, 18,

28.
Kanomata, 0. 228, 788. —

II, 13, 16.
Kanthack, F. E. II, 832,

833.
Kanzleiter, H. III, 99.
Kanzleiter. V. II, 81.
Kappen, H. II, 15.
Karkzewski, S. 579.
Karpovv III, 553.
Karst, R. II, 16, 34, 42.
Karsten, G. 362, 748, 749.

— II, 101, 735. — III,
12.

Karzel, Rudolf 4(i4, 674.

— III. 72.
Kasan djev, S. 18.
Kastner, J. III, 553.
Katajama, T. Hl, 553.
Kauffmann, Oscar 403.
Kauf man, C. H. 123, 172.
Kaufman, P. II, 176, 787.
Kaufmann, Fr. 113.
Kaumanns II, 30.
Kausek, A. II, 10.
Kautz IL •">!>.

Kawakami, T. II. 213,

777.
Kawamura, S. 133, 134.

918. — III, 92.
Kayser, E. 190, 191. —

II, 705.

Kearney, T. H. II, 23,

909, 925.
Keartland, G. A. IL 256,

261.
Keeble, F. 362.
Keegan, P. Q. 514.
Keffer, C. A. II, 84.
Keilhack, K. 579.
Kein. W. II, 134.
Keissler, Karl von 173,

236, 650. — IT, 159,

203. — III, 55.
Kelhofer, W. 211, 391,

857.
Keller, C. II, 612, 799.
Keller, L. II, 772.
Keller, O. II, 891. — III,

286, 553.
Keller, R. III, 294.
Keller, Robert II, 266. —

III, 213, 214.
Kellerman, K. F. 180. —

II, 45.
Kellerman, W. A. 123,128.

154, 274, 275, 391, 424>
Kellogg, R. S. II, 66.
Kellogg, Vernon L. III,

377.
Kelly, H. J. II, 840.
Kennedy, B. III, 5, 178.
Kennedy, P. B. II, 182,

185, 186.
Kenyon, A. S. II, 833,

834, 903.
Kenter, J. III, 42.
Kerampoullos, A. D. III,

178.
Kerb, H. 249.
Kerchove de Deuterghem,

0. de 398, 409.
Kerkhove, G. van den II,

951.
Kern, D. 811.
Kern, E. II, 68.

718

Kern— Koltonski.

Kern, F. D. 249, 833.
Kern. Friedlich 46.
Kerner, F. von 579.
Kerner v. Marilaun, A.

404.
Kershaw, J. A. II, 259.
Kerstan, K. 733.
Kersten, H. III, 55, 378.
Kersten, W. 390.
Keysselitz, G. 367.
Khan, Bahaclur Hadi II,

874.
Khek, E. III, 178.
Kidston, R. 573, 580, 581.

— II, 756.
Kieffer, J. J. II, 612,613.
Kiehl, A. F. II, 36.
Kienitz-Gerloff 754.
Kiessling, L. II, 4, 36, 39,

49, 50, 56. — II, 92.
Kildahl, J. II, 982.
Kildahl, N. 532.
Kildahl, N. J. III, 66.
Kilroe, J. R. 581.
Kiltz, H. 747. — III, 332.
Kimbrongh, J. M. II, 23.
Kimpflin, G. II, 679. —

III, 553.
Kindberg, N. 0. 36. — III,

152.
Kindermann, V. 650. — II,

576. — III, 28.
King, George II, 216, 221.

- III, 245, 294.
Kinkelin, F. 381, 560. —

II, 55.
Kinzel, Wilhelm 717. —

II, 4, 5, 55, 650, 886.
Kirby, A. M. II, 81.
Kirby, W. F. II, 613.
Kirchmayr, H. 526. — II,

324. — III, 576.
Kirchner II, 27.
Kirchner, O. 211, 244,

813, 829,857. — II, 681.
Kirchner, O. v. III, 28, 93.
Kirk, 0. II, 68.
Kirk, G. L. II, 175, 787.
Kirk, T. W. 211.
Kirkham, V. H. II, 26.

Kirsch, S. II, 754.
Kirtikar, K. R. III, 207.
Kissel, J. II, 657.
Kitzinger II, 31.
Kjellman, F. R. 411.
Klar, J. II, 27.
Klasen, P. III, 554.
Klatte, F. 187. -- II, 697.

— III, 462.
Klausener, Carl 367.
Klantzsch, A. 581.
Klebahn, H. 237, 238, 837,

844, 846.
Klebeisberg, R. v. III,

270.
Kleberger 211, 847. — II,

16.
Klebs, R. 555.
Klein, Edmund 275, 403.
Klein, E. J. 650.
Klein, Ludw. 773. — II,

68, 114.
Klemt, F. 499. — III, 332.
Klincksieck, P. III, 19.
Klingstedt, F. W. 380.
Klitz, H. II, 664.
Klobb, T. III, 554.
Klose, K. II, 797.
Klugh, G. T. II, 891.
Klugkist, C. E. 114.
Knapp, S. A. II, 27.
Knappe, R. II, 38.
Knauer, Fr. 154.
Kneucker, A. III, 92.
Knieriem, W. von II, 9.
Knight, H. G. II, 27.
Knischewsky, O. 110, 211.
Knöpfer, G. III, 554.
Knoll, F. II, 957.
Knopf, H. E. III, 554.
Knorr, R. 394.
Knowlton, O. H. II, 787,

788. - - II, 174, 175.
Knowlton, F. H. 70, 581.
Knox, A. Ad. 650, 807.
Knox, A. M. II, 82.
Knuth, P. II, 577.
Knuth, R III, 269.
Kny, L. 150, 685, 750. —
III, 8.

Kober, Franz 119.
Kobert III, 554.
Kobert, A. III, 554.
Kobert, R. III, 554.
Kobler, J. 529. — III, 42.
Kobus, J. D. 792. II,

876.
Koch, A. II, 667.
Koch, Fr. O. III, 554.
Koch, L. III, 554, 555.
Koch, W. II, 23, 711.
Koeck, G. 119, 211, 231,

812, 813, 827, 832, 837,

844, 846, 857.
Köhler, J. III, 554.
Köhler, 0. II, 36.
Köhler, W. R. 754.
Koehne, E. 582, 650. —

II, 124. — III, 216.
Koelker, A. H. 181.
Kölpin-Ravn, F. 99, 211,

228, 229, 410, 779, 824.

— II, 5.
Koenen 676, 731.
Koenen, O. 421.

König, J. 666. — II, 3,

654. — III, 555.
Koenig, P. III, 555.
Koernicke 464, 737.
Koernicke, Fr. M. III, 246,

324.
Koernicke, M. 403. —

II, 902.
Körnig II, 42.
Köster, II, 42.
Kofahl, W. II, 44.
Kofoid, C. A. 350, 365. —

II, 630.

Kohl, F. G. 191,703. — II,
709, 720, 722, 970. —

III, 555.
Kohlhoff, C. Fr. 68.
Koken, E. 582.
Kolkunow, W. II, 23.
Kolkwitz, R. 154, 335, 336.

— II, 630, 631.
Kollo III, 557.
Kolmer, W. 711.
Koltonski, Alexander 628.

— II, 680.

Koltz — Kusnezow.

719

Koltz, J. P. J. 403.
Komarow, V. L. II, 157,
159. — III, 150, 163,
198, 235, 345.
Komers, K. II, 3.
Komiaami, K. 231.
Komppa, G. III, 557.
Koningsberger, J. C. II,

849.
Konowalow, J. II, 13.
Koorders, S. H. 134, 211,
823. — II, 218. — III,
92, 136, 170, 256.
Kordgien II, 34.
Kor ff 831, 861.
Korff G. 211.
Koriba, K. III, 178, 378.
Koritschoner III, 557.
Kornauth, K. 118, 119,
211, 231, 778, 779, 813,
827.
Korowiakow, B. II, 155.
Korschel, F. 394.
Korscheit, E. 765. — III,

379.
Kosanin, N. 337.
Kosatanj, Th. III, 557.
Koschny, F. II, 831.
Koske 151.

Koslowski, W. III, 29.
Kossowicz III, 557.
Kostytschew, S. 191. —

II, 706.
Kotake Y. III, 557.
Kotte, U. von II, 825.
Kovaf, F. 17.
Kovchoff, J. 799.
Kowalew, S. G. III, 557.
Kowarzik, Rud. 582.
Koziezkowsky, von II,

31.
Kozloff. P. K. II, 159.
Kradolfer, E. III, 29.
Kraefft, Fritz 343. — II,

635.
Krafft, G. II, 27.
Kraft, E. 183.
Kraemer, H. TI, 818, 990.
— III, 8, 332, 557, 558.
Kraemer, Henrv III, 557.

Kränzlin, Fr. II, 159, 216,
265, 266. — III, 117,
118, 324.

Kränzlin, G. 799.

Kraepelin. KarJ 403, 750.

— III, 8.
Kramer-Osterburg, Hans

III, 558.
Krasan, Franz 403. — III,

379.
Krasser, Fridolin 403, 582,

583.
Kratter, III, 558.
Kratz, C. 839.
Kraus, A. III, 558.
Kraus, B. II, 49.
Kraus, C. 793. — JI, 23,

31, 39, 56.
Kraus, G. 414.
Kraus, R. II, 671.
Krause, II, 927.
Krause, Ernst H. L. 414.

— II, 770. — III, 324.
Krause, Fritz 826.
Krause, K. 435, 513. —

II, 105, 211, 266, 558,
577. — III, 75, 306, 313.

Krause, M. III, 459.
Krauss, O. III, 150.
Krauter, Louis II, 129. —

III, 324.
Kreis, H. III, 558.
Kreitz, Wilh. 819.
Kress, O, III, 558.
Kretzer, F. II, 770.
Krieg, Aug. 759.
Krieg, W. 250, 831.
Krieger, Hermann III, 55.
Krieger, W. 60, 62, 145.
Krische, P. II, 9, 11, 31,

74. 77, 819.
Krist, J. III, 527.
Kristofowic, A. III, 118.
Kröber, Ludwig III, 558.
Kroemer, K. II, 75, 80.

84, 85.
Krogmann, II, 50. — III,

92.
Kromer, N. III, 553.
Kronfeld, A. III, 544.

Kronfeld, E. M. 404. —

III, 8.
Krüer, H. III. 558.
Krüger, Friedrich 212, 772.

— II, 613.

Krüger, W. II, 11,29, 660,

692. — III, 29, 383.
Krupar II, 920.
Kruyff, E. de 191, 229. —

II, 916, 918, 923. — III,
558.

Krzizan, Rieh. HI, 559.
Krzyrnowski, R. II, 27.
Kubart, Bruno 583.
Kubler, Konrad III, 437,

559.
Kuckuck, P. 370.
Kühle, L. 245, 857.
Kühlhorn, J. 465. — III,

42.
Kühn, M. 192.
Kükenthal, G. III, 100.
Kümmel, F. III, 560.
Kümmerle, J. B. II, 774.
Küster, Ernst 154, 366,

529, 752.
Kuhn, Eduard II, 982.
Kuhnert II, 9, 27, 43.
Kuhnt II, 804.
Kulisch, P. 114. 191, 778.

— II, 726.
Kumagiri, S. II, 655, 665.
Kumakiri, S. II, 13, 23.
Kunstler, II, J. 960.
Kuntz 650.

Kuntz, L. II, 45. — III,

92.
Kuntze, Otto II, 103.
Kupffer, K. R. 415. —

III, 21, 383.

Kupfer, Elsie 806. — II,
47.

Kurdiani, S. III, 67.

Kurozawa, G. 212, 824.

Kurth, P. II, 801.

Kurzmann, M 710.

Kusano, S. 134, 173, 229,
231, 250, 829. — II, 165,
960. - III, 268, 325.

Kusnezow, H. 404.

720

Kusnezow — Lehmann.

Kusnezow, N. III, 155.
Kusnezow. N. J. II, 152.
Kutscher, H. II, 42.
Kutscheroff, M. III, 560.
Kuttenkeuler, H. 154.
Kyas. 0. II, 37. 38.
Kyle, E. J. II, 8.
KyÜn, Harald 345.

Laage, A. II, 652.

Labergerie, J. II, 20. —
III, 332.

Labesse III, 560.

Labroy, O. II, 831, 847,
865,^871, 872, 874, 880,
889, 893, 911, 936, 943,
945, 949, 950, 952.

Lachman, J. P. 412.

de Lacy, W. E. F. II, 922.

Lämmennavr. L. 713, 752.

— IL 760.
Läuterer, B. II, 800.
Lafar, F. 191.
Laganle, J. 106.

La Gasca 400.
Lager. J. E. II, 82.
Lagerberg, T. II, 737.
Ligerheim, G. II, 614.
Lahache, J. III, 560.
Laibach. F. 110, 268, 849.
Laing. K. M. II, 264.
Lukschewitz, P. HI, 326.
Lalande, J. L. Fr. de 406.
Lalonc, G. II, 712, 725. —

III, 230, 247, 466. 467,

560.
Lamarck, J. B. 400, 413.
Lambert, L. III, 83.
Lambert, P. III, 294.
Lamorlette, L. 466. — III,

289.
Lamothe, A. II, 83.
Lamothe, Leopold II, 933.

— III, 228, 560.
Lumpe, H. II, 27.
Lamprey, E. S. II, 761.
Lamy-Torrilhon,G. 11,941,

942.
Lan, J. II, 860.
Lancy, C. C. III, 337.

Land, W. J. 32.
Landsberg, B. III, 29.
Lang, H. 245, 583. — II,

23, 47, 53, 54.
Lang, W. 830.
Lang, W. H. II, 253, 703.

— III, 72.
Lang, W. von 245.
Lange, A. II, 768.
Lange, Axel III, 178.
Lange, Th. II, 74.
Lange. Wilhelm III, 563.
Langenbeck, E. 180.
Langenberger, S. 223, 834.
Langenhan, A. 583.
Langer, G. A. II, 79.
Langgaard, A. III, 563.
Langhans, Victor H. 341.

— II, 635.
Langheld, K. II, 687.
Langhlin, E. E. III, 266.
Langlade, M. 192, 212.
Langworthy, C. F. II, 858.
Lankester, E. Ray. 361.

— III, 285.
Lakowitz 404.
Lanoir, G. LI, 898.
Lanzi, Matteo 275, 389,

410, 412.
Lanzun, Philippe 404.
Lapeyrere 264.
Lapie, G. 150.
Lapierre, J.-M. 406.
Larter, C. E. 42, 344.
Lary de Latour, Er. de

II, 982. — III, 74.
Laschke, W. II, 3. 650.
Lasnier, E. 173, 850.
Laszloffy 192.
Lau, E. II, 6.
Laubert, R. 108, 239,250,

702, 794, 813, 834, 839,

848, 849, 852. — II,

(154.
Lauby, A. 583, 584.
Laurent, C. II, 23.
Laurent, J. II, 101.
Laurent, L. 584.
Laurent, M. J. III, 564.
Laurie, Ch. L. III, 8.

Lauterbach, C. II. 207,

785. — III, 29.
Lauterborn, R. 336, 341,

342. — IL 635.
Lavialle, J. B. II, 68.
Lawrence, C. W. II, 50.
Lawrence, H. St. II, 826.
Leake, H. Martin III, 250.
Leavitt, Robert Greenleaf

404. — II, 806. — III,

384.
Lebedev, Alexander 192,

730. — II, 701.
Leberle, H. 837.
Leclair, E. 405.
Leclerc du Sablon, M. II,

577, 614. — III, 255.
Lecomte, Henri II, 158,

221, 249. — 111,85. 140,

1S5, 308.
Le Dantec, A. 192.
Ledien, F. III, 118.
Lee, F. E. II, 832, 854,

861.
Leeder, F. II, 773.
Leege, 0. IL 770.
Leeke, Paul II, 240. -

III, 92. 93.
Leendertz, R. II, 254.
Leersum, von III, 564.
Lees, F. H. II, 716.
van Leeuwen Reijnvaan,

J. und W. 33. — II,

972, 973.
Lefebvre, Ch. II, 711. —

IH, 539, 864.
Lefevre, J. II, 669, 716.
Legault, A. 466. — II, 50,

212.
Le Gendre, Ch. II, 140.

— III, 118, 172, 270.
Leger, E. II, 716. - III,

565.
Leger, F. IL 890.
Leger, L. 229.
Leger, M. E. III, 564.
Le Grand, A. 389.
Lehmann, A. III, 8.
Lehmann, Ernst II, 132.

— III. 326, 328, 385.

Lehmann— Löhnis.

721

Lehmann, H. 394.
Lehmann, M. III, 681.
Lehmann, 0. 661.
Leibelsperger. W. H. II,

177.
Leidigh, A. H. II, 40, 858.

— III, 87.
Leiningen, W. II, 64.
Lemaire, P. II, 931. — III,

428, 565.
Lemcke, A. 812.
Lemcke, Alfred 114.
Lemec, E. II, 38.
Lemee, E. II, 614.
Lemmermann, E. 329, 330,

342, 347. — II, 636.
Lemmermann, 0. II, 16,

23, 28. — III, 193.
Lendenfeld, R. von 421.
Lendner. A. 231, 232. -

II, 970.
Lendrich, K. III, 565.
Lengerken. Otto von III,

565.
Lenhartz, H. III, 566.
Leonardi, G. II, 614.
Lenz, W. III, 566.
Lepeschkin, N. III, 566.
Lepeschkin, W. W. 173,

667, 668.
Leprinte III, 566.
Le Renard, Alfr. 467. —

III, 237, 308.
Leriche, M. 584.
Leroux, H. III, 553.
Le Roux, Marc. 340.
Lesage, P. 730.
Leslie, T. N. 623.
Lestiboudois, Fr. J. Th.

405.
Lestiboudois, J. B. 405.
Letacq 264.
Lett, H. W. 42.
Letts, E. A. 354.
Leuchs, H. III, 245, 566.
Leuchtenberger, C. III,

566.
Leue, A. II, 178.
Levander, K. M. 345,

367.
Botanischer Jahresbericht

Leveille, H. II. 159, 160.
161, 164, 165, 168, 264,
776. — III, 4, 5, 83,
212, 228, 237, 266, 294,
332, 385.

Levellier LT, 215.

Le Voc, N. II, 911.

Levy, P. III, 566.

Lewinsohn, A. III, 478.

Lewis, C. J. II, 77.

Lewis, F. J. 584.

Lewis, J. II, 854.

Lewis, J. M. II, 983.
III, 67.

Levvton-Brain, L. 212, 213,

849. — II, 875.
Ley, A. III, 295.
Liddle, L. M. III, 584.
Lidforss, B. 696, 697. —

II, 133, 578, 957. — III,
385.

Liebenberg, A. von II, 16.
Liebus, Adalbert 584. —

III, 8.
Lienau, R. II, 83.
Life, A. C. 728.
Lignier, 0. 275, 584, 586,

587. - III, 42, 55.
Ligot, 0. II, 16, 20.
Lülie, David 42.
Lim Boon Heng II, 832.
Lind, J. 99, 100, 268, 814,

850. — II, 803.
Lindau, G. 18, 21, 139,

154, 268, 275, 405, 828.

— II, 266. — III.
314.

Lindberg, Harald 588. —

III, 178, 295.
Lindemuth, H. 393, 799.
Lindhard, E. II, 578. —

III, 93.
Lindinger, L. 468, 469. —

II, 82, 614. — III, 106.
Lindley, J..M. II, 181.
Lindman, CA. M. 405,424

— II, 579, 768. — III,
29, 385.

Lindner, P. 192.
Ling, R. A. II, 5.
XXXVI (1908} 3. Abt. [Gedruckt

Lingelsheim, A. 588. —

II, 265.

Lingner, R. A. III, 566.
Linhart, G. 213.
Linhart, P. II, 53.
Linko, A. H. 351.
Linne, C. 391, 396, 397,

398, 400, 401, 402, 404,

405, 407, 412, 414, 415,

424.
Linnen, C. 405.
Linsbauer, K. 415, 677,

699, 711, 734, 736, 742.

— II, 724. — III, 72.
Linton, E. E. III, 386.
Linton, W. R. 391, 404,

412. — II, 768.
Lipmann, J. G. II, 6, 14.
Lipschitz II, 23, 28.
Liro, J. Ivar 250, 251.
Lister, A. 120, 275, 411.
Lister, G. 120.
Litschauer, V. 112, 118,

259, 836.
Little, R. II, 889, 923.
Litwinow, D. II, 158. —

III, 4.

Litzendorff, Jac. III, 566.
Liversidge, M. III, 8.
Livingston, B. E. 677. —

II, 6, 75.
Ljung, E. II, 28.
Lloyd, C. G. 260, 261,262,

405. — III, 287.
Lloyd, F. E. 674, 677. —

II, 183, 188.

Lloyd, J. N. III, 287, 566.
Lloyd, St. J. III, 566.
Locher, Fr. 710.
Lochow, F. von II, 23.
Lock, R. H. III, 237.
Locquet 406.
Lodeman, E. G. 213.
Lodewijks, J. J. A. III,

266.
Loeb, W. II, 678, 730. —

III, 567.
Loeffler, K. III, 416.
Löfgren, Alberto II, 44.
Löhnis, F. II, 16.

6. 1. 12.1 46

722

Löhr — Magnin.

Löhr, H. III, 567.
Lölir, Th. 766.
Loens, H. 68.
Loesener, Th. II, 125, 127,

195, 245, 246, 268, 353.

— III, 142, 170, 171.
Loeske, L. 46.
Loew, E. 392, 393, 693,

694. — III, 28, 106.
Loew, 0. 804. — II, 23,

671, 877. — III, 567.
Loew, Oskar 192. — II,

883, 887.
Loew, V. II, 6.
Löwenberg, R. 728.
Loewi, O. III, 548.
Löwschin, A. 174, 712.
Logan, J. H. 400.
Lohaus II, 28.
Lohmann, H. 333, 334,

335. — II, 631.
Lohmann, W. III, 568.
Lolli, A. 650. — III, 93.
Lommel, V. II, 835, 927
Lonaczewski, A. III, 178.
Lonay, H. 469, 501. — III,

287.
London, William 402.
Long, B. II, 176.
Long, F. II, 104.
Longo. B. III, 197, 307.
Longyear, B. O. II, 68,

184.
Loock III, 568.
Loos, W. II, 77.
Lopez y Parra, R. II,

841.
Loppens, K. 339. — II,

637.
Lopriore, G. 470, 650,

760, 761. — III, 21.
Lorch, Wilhelm 34, 672.
Lorck, Wenk P. II, 33.
Lorentz, R. II, 77.
Lorenz, Annie 49, 63.
Lorenz, N. von II, 31.
Lorenzen, J. III, 568.
Lorie, J. 588.
Loth, H. II, 800.
Lotsy, J. P. III, 8, 386.

Lounsbury, Ch. P. 270,
828. — II, 859, 864, 871,
872.

Löwenherz, Richard 795.

— II, 21, 658.
Lowson, T. M. II, 735. —

III, 8.
Lubanski,F. 11,3, 5, 13,19.
Lubimenko, W. 704, 714,

715. — II, 5, 682. —

III, 568.
Luc, M. 137.
Lucas, G. L. II, 867.
Lucchini, Y. III, 568.
Ludwig, F. 114, 154, 174,

213, 270, 346, 650. —

II, 579. - III, 287.
Ludwig, K. II, 2.
Lücker, E. III, 568.
Lüddecke, G. 394.
Lüdy III, 568.
Lüfte negger, J. 'II, 64.
Lührig, H. III, 568.
Luerssen, A. 192.
Lüstner, Gustav 114,213,

233, 777, 798, 811. —

II, 112.
Lüthje, H. II, 683.
Lnff, G. 192.
Luise von Baden 408.
Luisier, Alphonso 40, 55.

— II, 148. — III, 5.
Lundgreen, F. III, 8.
Lunell, J. II, 181.
Lunt, Th. II, 801.
Lutz, A. 816.

Lutz, Anne M. III, 386.

Lutz, K. G. 395.

Lutz, L. 651. — II, 669,

891. — III, 332.
Lyell 229.
Lyman, G. F. 174.
Lyman, J. Briggs II, 888.
Lynch, J. III, 29.
Lynch, R. Irwin III, 386.
Lyon, T. L. II, 47.
Lyons, A. B. III, 18, 569.

Maass, A. III. 563.
Maass, G. II, 11, 45, 65.

Maberly, J. II, 825.
Mac Alpine, D. 213, 781,

856. — II, 141, 260, 853.
Mac Bride, T. H., 588. —

III, 570.
Mac Call, J. S. J. 11,908.
Macchiati, L. 415, 768. —

III, 21.
Mac Cray, A. H. II, 579.
MacCready, S. B. II, 45.
MacDermott, F. D. II,

825.
Macdonald, J. J. II, 768.
MacDougal, D. T. 758.

— II, 47, 135, 169, 171,
185, 188. — III, 56, 386,
387.

MacFarlane, J. M. 447.

— II, 119, 120, 579. —
III, 262, 313, 388.

Macfayden, J. 391.
Mach, F. II, 20, 728, 729.
Mackay, A. II, 27, 74.
Mac Kay, A. H. 123, 124.

— II, 113, 147.
Mackenzie, Kenneth Kent

II, 169. — III. 83, 107,

388.
Maclaren and Sons II, 935.
Mac Lennan, J. P. II, 259.
Macloskie, G. II, 169,267.
Macmillan, H. F. II, 579,

828, 851, 870, 871, 872,

931, 943. — III, 42, 55,

130.
Macon, W. R. II, 194.
Macoun, J. M. II, 171.

768.
Macoun, W. T. II, 27, 74.
Macvicar, Symers M. 42.
Macy, E. J. II, 834.
Mader, C. 102, 789, 860.
Madopola, M. 213.
Mährlen 213, 860.
Männel, B. 401.
Maffei, L. 102, 103, 239,

816.
Magallanes, M. M. II, 20.
Magnin, Ant. 401, 405,

406, 421.

Magnin— Maslen.

723

Magnin, L. 223.

Magnin, M. . L. II, 631,

637, 642.
Magnus, Albertus 417.
Magnus, P. 120. 128, 134,

245, 816, 830, 833, 834,

847. — III, 118.
Magnus, Werner III, 388.
Magocsy-Dietz, A. 213.
Magocsy - Dietz, Sandor

46, 651. — II, 104. —

III, 389.
Magowan, F. N. 804.
Maheu, Jacques 34, 35, 60,

758.
Maiden. J. H. 406. — II,

141, 171. 255, 256, 257,

838, 839, 842, 846, 847,

901. — III, 4, 55, 93,

140. 156, 178, 179, 261,

343.
Maier-Bode, Fr. 854. — II,

45.
Mailief er, A. 68, 734. —

III, 8, 153.
Main, F. II, 821, 831, 833,

— II, 849, 855, 857, 858,

869, 881, 883, 888, 905,

915, 917, 919, 920, 927.
Main, T. W. II, 832, 845,

863, 876, 942.
Maire, R. 106, 129, 171,

175, 223, 229, 357, 389,

814, 829. - II, 774. —

HI, 3, 63.
Majima, R. III, 140, 569.
Makino, T. II, 164, 165,

167, 776.
Makoshi, K. II, 717. — III,

270, 569.
Makowetzky, M. 629.
Makowsky, A. II, 773.
Malagnini, G. 111, 569.
Malde, 0. G. II, 80.
Maldonado, M. II, 881.
Malinowski, Edmond III,

306.
Malinvaud, Ernest 407,

415. - 111, 328, 390.
Malkoff, K. 101, 213, 814.

Mallett. G. ß. II, 170. —
III, 99, 107, 237, 335.

Mally, 0. W. II, 849, 855,
864.

Malme, G. 0. A. 24, 651.

— II, 202, 203, 204. —
III, 133, 147, 201.

Malpeaux, L. II, 16.

Malte, M. 0. II, 983. —
III, 207.

Maly, R. II, 774.

Mameli, E. III, 569.

Manceau, E. II, 85.

Manetti, 0. II, 842, 908.

Mangin, L. 154, 263, 264,
270, 327, 335, 339, 682,
795, 822. — II, 996.

Mann, Albert II, 854.

Mann, E. III, 569.

Mann, H. H. II, 884.

Mannich, C. II, 949, 954.

— III, 571.
Mansfeld II, 949. — III,

574.
Mansion, A. 43.
Mantel, H. II, 66.
Mantero, G. II, 614.
Maquenne, L. II, 695. —

III, 571.
Maiais, Ch. II, 825.
Marc, F. 15.
Marcet, A. II, 775.
Marcy, William L. II, 43.
Marchai, Em. 110, 213,

784. - II, 876.
Marchand III, 29.
Marchand, E. 421.
Marchand, H. II, 705.
Marchlewski, L. II, 721.

— III, 569.
Marcille, R. III, 569.
Marcinowski, K. II, 803,

804.
Marcone, G. 154.
Mircovvicz, B. B. II, 152
M'Ardle, David 42, 43,

108.
Marescalchi, A. 861.
Mariani, G. II, 615.
Mariani, J. 472.

Mariz, B. Joaquim de III,

328.
Marlatt, C. J. II, 615.
Marloth, R. II, 254, 796.
Marnac II, 140.
Marpmann II, 637.
Marquand, E. D. III, 284.
Marques, A. II, 867, 915.
Marquette, W. II, 764, 974.
Marquis, R. T. II, 822,

905.
Marr, J. E. 588.
Marryat, D. 260.
Marsais, P. 213, 859.
Marsden, Prosper H. II,

890.
Marsh, E. III, 569.
Marshall III, 574.
Marsball, E. S. 353, 415.

— II, 768, 769. — III,

170.
Marsball, G. A. II, 74.
Marshall, J. III, 616.
Marsball, J. G. F. II, 945.
Marsball, R. R II, 32.
Marsson, M. 154, 335, 341,

342. - II, 631, 637,

638.
Marstall 784.
Marstall, H. 124.
Martelli, U. II, 211, 212,

225.
Martelli, Valentino III, 42.
Martenson, J. 111, 569.
Martin 854.
Martin, Ob. Ed. 121.
Martin, T. M. 421.
Martinand, V. II, 709. —

III, 569.
Martinazzoli II, 886.
Martinet, G. II, 49.
Martinet, M. II, 50.
Martin-Lavigne, E. 536. —

III, 255.
Martius, C. E. P. 412.
Marty, P. 588, 589.
Marzeil, F. U, 935.
Marzell, H II, 818.
Hascre, M. 182.
Maslen, Arthur J. 619.
46*

724

Massalongo— Michiel.

Massalongo, C. 63, 214,

651. — II, 615.
Massart, J. 589, 732. —

II, 769. — III, 29.
Masse, L. 223.

Massee, G. 108, 154, 155,

223, 270, 798. — II, 24.
Masseion, Em. II, 868,

924, 935, 937, 941, 947,

948.
Mastbaum, Hugo III, 569.
Masters, M. T. II, 161,

198. — III, 67.
Matenaers 214.
Matenaers, T. F. II, 3, 31.
Mathey, A. II, 897.
Mathewson III, 570.
Mathey, A. II, 72.
Mathieu, E. II, 860, 887,

942.
Matouschek, Franz 46.
Matruchot, L. 239.
Matte, H. 472, 589. — III,

72.
Mattei, G. E. 180. — II,

225, 853, 858, 873, 951.

— III, 55, 93, 155,287,

390.
Matthes, H. 111, 333, 569,

570.
Matthes, R. H. III, 570.
Matthew, C. G. II, 777.
Matthew, G. F. 589.
Matthews, D. M. 179.
Matthiesen, F. 447. — III,

274.
Mattirolo, M. 103, 139.
Mattirolo, Oreste 407.
Matsuda, S. II, 160, 163,

776.
Matsumura, J. II, 215. —

III, 4.
Matzak II, 19.
Maublanc, A. 208, 264,

848, 851.
Maumerne, A. II, 164.
Mauriquerz, C. II, 926.
Maurizio, A. 192.
Mawley, E. II, 75, 113.
Mawson, T. H. II, 74.

Maximow, N. 694. — II,

706.
Maxon, W. E. II, 789.
Maxwell, H. II, 910.
Maxwell, W. J. III, 8.
Maxwell-Lefroy, H. 785.

— II, 849, 888, 910.
May, W. II, 887.
May et Sons II, 785.
Mayer, A. 193, 798. — II,

55.
Mayer, Andre II, 989.
Mayer, Anton II, 638.
Major, E. 121, 839.
Mayr, E. III, 457.
Mayr, Heinrich II, 62, 68.
Maza, M. G. de la II,

197.
Mazza, Angelo 328.
Mayzaron, A. 786.
McClelland, C. K. II, 30.
McClendon, J. F. 520.
McDonald, A. H. E. II,

839.
McElhinney, M. G. III,

388.
McFadyean, J. S. II, 831,

845. "
Mc Gregor, E. A. II, 187,

188.
Mcllhyiney III, 570.
Mc llhyiney, P. CHI, 571.
Mckeown, G. M. II, 840,

842, 853.
McKerral, A. II, 856.
Mc Leod, A. F. II, 7.
McNab, R. II, 919.
McNeil, J. H. 154.
Mc Nicol, Mary 588. — II,

755.
Mead, E. II, 833.
Medwedew, J. S. II, 153.

— III, 208.
Meebold, Alfred II, 224.
Meeking, E. II, 873.
Mehner, H. 691.

Meier, A. 183. — II, 696.
Meier, Ernst 214.
Meigen, W. 193.
Meinhardt, A. II, 799.

Meissner, Richard 193, 233,

860, 861.
Meli, C. D. II, 44.
Melsheimer, M. HI, 267.
Melvill, J. 0. 407.
Mendenhall, Walter C. II,

144.
Menezes, Carlos A. II, 113,

148. - III, 67, 228, 328.
Menier 224.
Mentzel, Ch. 394.
Menzel, P. 589.
Mer, E. 214.
Merck, E. III, 574.
Merck, Kl. II, 818.
Merker, G. 811.
Merker, O. 401.
Merle, C. 214, 847.
Merlin, A. A. C. E. II, 638.
Merrill, Eimer D. 415. —

II, 185, 211, 212, 213,

781. — III, 131, 153, 578.
Merrill, G. K. 18, 19, 22.
Merton, Hugo 358.
Meschede, F. III, 246.
Mestral, A. de 214. -
Metcalf, Haven 785.
Metzger, Karl 473, 663. —

II, 64, 66.
Metzler, E. 409.
Meuleman II, 845.
Meulenaere, O. de 403.
Meyer, II, 34.
Meyer, A. II, 75. 690, 962,
Meyer, Arthur III, 390,

578, 636.
Meyer, D. II, 17, 45.
Meyer, Gustav III, 578.
Meyer, Karl II, 657.
Meyer, L. II, 34, 112.
Meyer, Th. III, 578.
Meyer, V. J. III, 578.
Meylan, Ch. 41, 64.
Mez, C. 224, 835.
Michaelis II, 66.
Michaelis, L. II, 702.
Micheels, H. 730. — II,

652, 731..
Micheletti, L. III, 193.
Michiel, P. A. 424.

Michlitz — Mountmorres.

725

Michlitz II, 71.
Micholitsch, A. II, 141. —

III, 263.
Middleton, T. H. 28.
Mieckley, W. III, 160.
Miethe, E. III, 118.
Mieville II, 952.
Mi.'ye, E. II, 36.
Migliorato, E. 651, 652. —

III, 237.
Mignot, A. 406.
Migula, Walter 339, 750.

— II, 580, 761. — III,

29.
Mikosch, Carl II, 690. -

III, 390.
Miksovic II, 80.
Mikutovvicz, J. 37, 69.
Mildbraed, J. 449. — II,

120, 580.
Mildbraed, K. II, 898.
Miller, A. M. II, 74.
Miller, A. W. III, 578.
Miller, F. G. II, 71.
Miller, H. K. II, 867.
Miller, E. J. II, 890.
Milliau, Ernst II, 928. —

III, 578.
Millspaugh, C. F. II, 276.
Minakata, Kumagata 134,

354.
Mindes, J. III, 579.
Miranda, A. Chermont de

II, 837.
Miranda, J. II, 873.
Miranda, Vincente Cher-

mond de II, 30, 202.
Mirande, M. II, 724.
Miscenko, P. III, 107.
Mishke, Karl 407.
Misshach, Robert 401. —

III, 152.

Mitlacher, W. 473. — III,

228.
Mitlacher, von III, 579.
Mitscherlich, E. A. 699. —

II, 658. — III, 19.
Miyake. J. 214, 254, 833.
Miyake, K. 533. -- 11,586,

983, 986. — III. 67, 314.

Miyoshi, M. II, 165, 205,

776, 931.
Modeen, Hjalmar III, 579.
Modilewsky, J. 526. — II,

580, 984. — III, 21, 214.
Möbius, M. 155, 328, 407,

502, 511, 589, 721, 743.

— III, 56, 130, 632, 735,
991.

Möller 835.
Möller, A. II, 61. 66.
Möller, J. II, 34, 38, 53.
Moeller, Jos. III, 579.
Möller, K. J. II, 66.
Möller-Thoms III, 579.
Mönkemeyer, W. 60.
Moesz, G. 119,841. -- III,

200.
Moffat, E. 111, 19.
Mohl, C. von 193.
Mohr, P. II, 824.
Moisescou, N. 749.
Molinair, M. de II, 16, 20,

36.
Molinas, E. II, 610.
Molisch, H. 175, 660, 686,

691, 692, 698. -- II, 75.
Moll, J. W. 407, 428. —

II, 958. — III, 19.
Moller, A. F. II, 113.
Molliard, M. II, 616, 677.

- III, 579.
Mollica, N. 844.
Mollison, J. II, 856.
Molz, Emil 214, 215, 778,

787, 791, 821, 859, 860.

— II, 616.
Moncreiff, A. R. H. 421.
Monguillon 41.
Monier, M. III, 579.
Monks, P. P. II, 638.
Monnier, A. III, 483.
Monroe, J. F. II. 78, 81,
Montanelli, R. II, 985.
Montemartini, Luigi 215,

473, 739, 733, 748, 790,
853. — II, 50. - III, 93.

Montet, M. II, 844.

Monteverde, N. A. 589,
725.

Montgomery, E. G. II, 49
Montin, L. J. 424.
Moore, Albert Hanford II,

130. — III, 179.
Moore, E. 652.
Moore, F. W. III, 118.
Moore, George T. 329. —

II, 45.
Moore, J. 0. II, 882.
Moore, J. G. II, 5, 44.
Moore, R. A. II, 10, 28,

39, 41, 45.
Moore, Spencer le M. II,

246, 251, 252, 277. —

ni, 179
Moorhouse, L. A. II, 34.
Mordwilko, A. II, 616.
Morellet. L. 381. 589.
Moreschi, B. 215.
Morgan, A. P. 124, 275,

405.
Mori, K. II, 163, 746.
Morill, A. W. II, 866.
Morino, F. 415.
Morisse, L. II, 941.
Moritz, J. II, 616.
Moroto, K. 662.
Morris, D. 391.
Morris, D. B. 407.
Morris, Sir Daniel III, 31)1.
Morrison, A. II, 256.
Morse, F. W. II, 13, 75.
Morstatt 215. - - III, 579.
Mortensen, L. II, 34.
Moser, J. 401.
Mosselman du Chenoy. L.

II, 947.
Mossler, G. III, 579.
Moszkowski, M. II, 219,

898. - III, 579.
Mottareale, G. 215.
Mottet, S. II, 171. — III,

67, 140. 149, 193, 202,

261, 271, 273, 284, 295,

312, 318, 319.
Mottier, D. III, 93.
Mottier, D. M. 407, 421,

607. — II, 985.
Mougeot, Joseph A. 389.
Mountmorres II, 925.

726

Mücke— Niohols.

Mücke, M. 233, 503. — II,

138, 911, 932, 970. —

III, 77, 155, 579.
Mühle, K. II, 112.
Mühlradt, J. II, 59.
Münch, Ernst 225, 834,

845.
Müuzinger, A. II, 673.
Müller II, 38.
Müller, B. II, 77.
Müller, F. von II, 256.
Müller, Fr. III, 246.
Müller, G. II, 735.
Müller, Gerhard 394.
Müller, Gustav 155, 328,

749.
Müller, H. II, 74.
Müller, H. C. II, 3, 16,

36.
Müller, Hugo III, 581.
Müller, J. II, 77.
Müller, Karl 3, 215, 808,

821. — III, 67, 137.
Müller, Karl (Freiburg) 44,

64.
Mueller, L. 652. III,

287.
Müller, Otto 670. — II,

632.
Müller, R. III, 582, 583.
Müller, Rudolf 473, 474.

— III, 142, 330.
Müller, W. II. 36.
Müller-Knatz, J. II, 771.
Müller-Thurgau, H. 215,

828. — III, 581.
Munter, F. II, 17.
Müntz, A. II, 16.
Münzinger, A. 803. — II, 9.
Mundy, H. Godfrey 252.

II, 253.
Munerati, 0. II, 876.
Muneyrat, A. III, 579.
Munk af Rosenschöld,

Everhard 414.
Munson, W. M. II, 77.
Murbeck, Sv. II, 149, 150,

151. — III, 5.
Murdfield, R. III, 5(55.
Miuinoff, A. II, 709.

Murr, J. II. 772. — III,

118.
Murrill, W. A. 124, 134,

215, 225, 260, 275, 407,

821, 822, 845.
Muscatello, G. 770.
Muschler, Reno 349. —

II, 130, 247, 266. — III,
179, 193, 583.

Muske II, 45.
Mussa, E. 652.
Musson, C. T. II, 841.
Muth, Franz 155, 234, 791,

820.
Muttermilch, W. II, 703.

— III, 432.
Myers, A. D. II, 39.

Nacher, F. II. 887.
Nadson, G. 100. — II, 638.
Nadson, G. A. 331, 346,
358, 380, 698, 712. —

III, 330.

Nakai, T. II, 163, 164, 165.

— III, 267. 279, 287,
776.

Nakamura, M. II, 14.
Nalepa, A. II, 616.
Nalepa, E. II, 803.
Namba, J. II, 16.
Namyslowski, B. 119, 240.
Nannizzi, A. III, 285.
Nappi, G. III, 319.
Nash, G. V. II, 74, 82,

134, 196, 197, 950. —

III, 30, 94.
Nathanson, Alexander 334.

— II, 681.
Nathorst, A. G. 590, 591,

592. — II, 38.
Nation, W. 391.
Nattermüller, O. II, 77.
Naudin, Ch. V. 406.
Naumann, A. II, 134, 136,

772.
Naväs, L. 16, 20.
Nawaschin, S. G. 391.
Naylan. W. III, 584.
Nazari, V. 842.
Nazarov, G. N. II, 56.

Needham, James G. II,

617.
Neger, F. W. 114, 115,

157, 158, 252, 264, 265,

836, 837. — II, 68, 617,

902.
Negri, Giovanni 38, 55.
Negro, 0. III, 61.
Nelson, A. II, 182, 185,

187.
Nelson, Aven III, 5.
Nelson, E. II, 32, 69.
Nelson, Julius III, 30.
Nelson, R. J. II, 34.
Nemec, Bohumil 159, 749,

761, 766. — II, 964. —

III, 183.
Nernst, W. 727.
Ness, H. 69.

Nestler, A. II, 716, 717.
III, 118, 284, 584,

585, 586.
Netolitzky, F. 474. -- III,

673.
Neubauer, H. II, 3, 55.
Neuberg, Carl III, 586.
Neubert, W. II, 800.
Neuburg, C. III, 587.
Neumann, M. II, 42, 76.
Neumann, R. II, 141.
Neumann, Richard 593. —

III, 67.
Neuweiler, E. 593. — II,

137. — III, 9.
Neveu-Lemaire 200.
Nevinny, Jos. III, 588.
Nevole, J. 424.
Newcombe, F. 0. 736, 738.
Newman, C. 0. II, 28, 34.
Newman, L. J. 215.
Newman, P. M. II, 16.
Newport, Howard II, 938.
Newstead, Robert 151,

215. - II, 617.
Neytcheif, L. II, 775.
Nicholls, H. A. Alford II,

903.
Nicholls, H. M. 215. — II,

864.
Nichols, George, E. 49.

Niohols — Oven.

1727

Nichols, Maurice Barstow

379.
Nichols, M. L. II, 985. —

III, 314.
Nicholson, G. 396, 397,

401.
Nicholson, W. E. 43, 00.
Nicola III, 588.
Nicolasi-Boncati, F. 593,

730. — III, 68.
Nicolle, Ch. 200.
Nicotra, L. III, 30, 56.
Niedenzu, Franz II, 191,

266, 769. — III, 248,

249.
Niedzwiedski, J. 593.
Nielsen, H. T. II, 39, 843.

— III, 237.
Nielsen, N. P. II, 28, 34.
Nielsson-Ehle, H. III, 94.
Niemann, G. II, 806, 642.
Niemann, H. E. II, 112.
Nienburg, Wilhelm 373.
Nierenstein, M. II, 896. —

III, 368, 588, 589.
Nüssen, C. II, 85.
Niessen, F. 652.
Niessen, J. S43. — II,

611.
Niessen, Jos. II, 617.
Nieuwland, C. H. III,

546.
Niggl, E. 684. — II, 24.
Nigoul, M. III, 589.
Niklewski, B. II, 693.
Nikolajewa, E. J. 193.
Niles, G. G. II, 171, 174.
Nilsson, Heribert III, 310.
Nilsson, Herman III, 391.
Nilsson-Ehle. H. II, 49,

50, 618.
Nisbet, J. II, 71.
Nitva Gopal Mukerjii II,

826.
Noack, F. 215.
Nobbe, F. 180.
Nobbs, E. A. II, 836, 844,

847, 926.
Nock III, 589.
Noelli, A. 826

Noll, Fritz 403, 748, 749,
795. — II, 580, 735. —
III, 12, 43, 238, 392,
393.

Nomura, H. 216, 826.

Nonweiler, G. 352.

Nordenson, E. III, 341.

Nordin, G. II, 10.

Nordstedt, C. F. O. 363.

Nordstedt, 0. 64.

Nordström, K. B. II, 768.

Noren, 0. O. III, 68.

Norgard, C. P. II, 34.

Normann, W. III, 589.

Norris, G. W. II, 853.

Nottin, P. II, 16.

Nourgue 260.

Noury, E. 652. — III, 43.

Nowacki. A. II, 39.

Nowak, Jan. 593.

Nowell, H. T. II, 32.

Nüsslin, O. II, 618.

Nyarady, E. II, 772, 774.

Oakley, R. A. II, 41, 78.
Obser, Karl 408.
Oehme, M. II, 59.
Oertel, G. 847. — III,

118.
Oes, A. II, 960.
Oesterle, 0. A. III, 589.
Oestrup, Ernst II, 638.
Oi'fer, Theodor III, 590.
Offner, J. II, 261, 806.
Ogden, A. W. III, 590.
Oheimb II, 82.
Ohlendorf, O. 503. II,

580. — III, 30.
Ohlmer, W. II, 24. — III,

94.
Ohm, M. II, 954. — HI,

590.
Ohmann, M. III, 393.
Ohno, N. 734.
Okamura, K. 347.
Okamura, S. 52, 60, 652.
Okazaki, K. III, 590.
Oksenov, Boris II, 581.
Oldenburg II, 9.
Oleson. O. M. II, 179.

Olive, E. W. 175, 594. —

II, 964, 791.

Oliver, G. II, 40, 82, 83.
Oliver, G. E. III, 590.
Olsson-Seffer, Pehr II, 936,

940.
Omang, S. O. F. 61. —

III, 183.
Ono, K. III, 43.
Opitz II, 9.

Ortlepp, Karl 652, 757. —

II, 658. — III, 30, 107,
164, 394.

Orphal, K. II, 54. — III,

238.
Orsi, Alois 854. — II, 45.
Ortmann, A. E. III, 394.
Orton, W. A. 124. — II,

910.
Osborne, Th. III, 236, 590.
Oshuro, M. III, 590.
Osmaston, B. B. II, 902.
Ostenfeld, C. H. 37, 99,

346, 349, 768. — II, 246,

632, 638, 039, 767. -^

III, 132, 394.
Osterhout, Geo E. II, 184.
Osterhout, J. W. V. 333,

802, 861.
Osterhout, W. J. V. 669.

— II, 11, 24, 663. —

III, 590, 591.
Ostermeyer, Franz II, 202,

279.
Osterwalder, A. II, 75.
Oswald, E. J. II, 5.
Othmer, B. III, 56, 74,

79, 107, 118, 119, 134,

189, 202, 243, 314, 328.
Ototzky II, 64.
Otryzanev, A. II, 14.
Ottavi, O. II, 869.
Ott de Vries, J. J. II, 688.
Otten, R. II, 803.
Otth, Gustav 274.
Otto, R. 787. II, 16,

34, 80. 662, 674, 675,

676.
Oudemans, C. A. F. A. 407.
Oven, Ernst 216.

728

Owen — Penther.

Owen, E. J. II, 73.
Oxon, F. S. II, 874.

Paddock, A. E. II, 179.

Paddock, W. II, 74.

Paglia, E. 816.

Palacky, J. B. 399.

Palibin, J. 594.

Palibine, J. W. 589. — II,
151, 154, 157, 159. —
III, 208, 238, 284.

Palla, Ed. III, 18, 83.

Palladin, W. 193, 744. —

II, 699, 703, 707, 759.
- III, 593.

Palm, B. II, 614. 768.
Palmaus, L. 475.
Pammel, L. H. 154, 216,
409. — II. 179, 182. —

III, 295.
Pammer, G. II, 49.
Pampanini, R. II, 194, 775,

782. — III, 99, 107, 183,

212, 394.
Pampel, G. II, 36.
Panchaud III, 595.
Panchet, L. 449.
Pancoast, R. W. III, 595.
Pankrath, Otto 193.
Pantanelli, E. 184. — II,

704.
Pantocsek, Jözef II, 639.
Paoletti, G. II, 639.
Paoli, P. II, 618.
Päque, E. H. 43, 110, 265,

785.
Päque, R. P. E. 409.
Parde, L. 421, 422. — II,

69.
Pareuth, F. II, 69.
Paris, E. G. 52, 53, 55,

56, 57, 61.
Parish, S. B. 409, 652. —

II, 184, 189. 789, 802. —

III, 131.
Parisot, F. II, 38.
Parkes, A. E. IU, 595.
Parkin, John 543, 544. —

II, 940. — III, 46.
Parkinson, F. B. II, 833.

Parodi, D. 414.

Parrot, P. J. 861. - II,

618.
Parrozani, J. III, 641, 642.
Parry III, 596.
Parry, E. III, 596.
Parry, E. J. III, 596.
Parry, J. Ernest III, 596.
Passerini, N. 767.
Passon, Max II, 82, 926.
Passy, P. 216, 260, 784.

— III, 44.
Pasteur 411.
Pastrovich, P. III, 596.
Pastureau, J. 193.
Patch, E. M. II, 618.
Patouillard, N. 139, 140,

159, 270. - - II, 848, 875,

923, 944.
Patten, H. E. II, 6
Patterson, H. J. II, 10, 14.
Puturel, G. II, 59.
Patursson, G. II, 141.
Pau, C. II, 277.
Pau, D. C, II, 149, 277. —

III, 228.
Pauchet, L. 672. III,

44.
Paul, H. 67. — II, 59.
Paul, J 390

Paulsen, F. 810. — III, 85.
Paulsen, Ove 364, 365.
Paulson, R. 785.
Paulus, K. J. II, 3.
Pavarino, G. L. 234, 827.
Pavesi, V. III, 596.
Pavolini, A. F. III, 394.
Pavy, F. W. 194.
Pawlowski, M. II, 3.
Payne, 0. H. II, 82. —

III, 183.
Pax, F. 415, 594, 595, 596,

597.— IL 98, 269, 611,

772. - III, 5, 100, 183,

207, 284.
Peacock, R. W. II, 842,

844, 850, 851, 853, 354.

— III, 30.
Peale, A. 0. 597.
Pearce, E. B. 194.

Pearl, R. III, 395.
Pearson, A. W. III, 595.
Pearson, H. H. W. II, 253.

— III, 72, 73.
Pearson, R. Hooper 108.

— II, 802.

Pearson, R. S. 699. — II,

64.
Pearson, W. A. III, 596.
Pease, Arthur Stanley II,

173.
Pease, Oora E. II, 172.
Pechmann, L. II, 19.
Pechon, L. 216.
Peck, Charles H. 124, 125.

— II, 177.

Peckolt, Th. II, 141. —

III, 19.
Pedroso, A. II, 916.
PeglioD, V. 103, 216, 234,

240, 336, 695, 780, 809,

830. - III, 186.
Pehersdorfer, A. 17.
Peirce, M. F. III, 167.
Pekelharing, N. R. 475. —

III, 334.
Peklo, J. II, 24.
Peklo, 0. II, 709.
Pekrun, A. 861.
Pela, J. II, 883, 889.
Peli, A. III, 613.
Pellegrin, F. 449. — III,

238, 239.
Pelley, R. G. III, 516, 596.
Pelourde, F. 597, 598. —

II, 756.
Peltereau 260.
Peltrisot, C. N. 503. — III.

202, 602.
Pember, F. R. II, 11, 12,

13, 22, 23.
Pemberton, J. D. 230.
Pemberton, J. H. II. 82.

III, 295.
Penhallow, D. P. 598, 599.

— II, 69, 173.
Pennington, L.H. 180, 261,

270.
Penther, Arnold II, 152.
- III, 4.

Penzias — Plember van Baien.

729

Penzias, A. II, 34.

Penzig, 0. 423.

Peola, P. 599.

Pepin, P. II, 934. — III,

596.
Pepoon, H. S. II, 179.
Peragallo, M. A. H. II,

639.
Perciabosco, F. III, 641,

642.
Pereira, Coutinho, A. X.

III, 156, 228, 229, 328.
Pergola, Domenico di 685.
Perkin, A. G. II, 893. —

III, 596.
Perkin, William Henry

jun. III, 599.
Perkins, A. J. II, 34.
Perkins, F. II, 804.
Perotti, R. 103, 825. —

II, 16.
Perrier de la Bathie, H.

II, 226, 228, 229, 576,
898. — III, 141, 146,
147.

Perrin, G. 758. — II, 736,

737.
Perriraz, J. II, 581. — III,

75, 153, 284, 395.
Perrot, Em. 477. — II,

III, 819, 824, 867, 896,
908, 917, 924, 927, 953.

III, 241, 546, 600,

601, 602.
Perrot, L. 406.
Perry III, 602.
Peruber, F. R. II, 11.
Pesei, E. III, 602.
Pestana da Camara, J

821.
Petch, T. 135, 136, 261,

270, 818, 819, 822, 823,

831, 844. — II, 923,

943.
Petcopf, Nie. III, 602.
Peter, A. 115.
Peterfi, M. 46.
Peters 205. — II, 64.
Peters, C. II, 582. — III,

186.

Peters, Hermann III, 30.
Petersen, Erich 475. —

III, 241.
Petersen, Henning Eiler

374, 515. — II, 142,

582.
Petersen, O. G. II, 62. —

III, 9.
Petersoo, W. A. IT, 909.
Pethrybridge, Geo H. 108,

271. — II, 38.
Petit, A. II, 24.
Petit, E. 409.
Petitmengin, M. 392, 396,

404. — II, 157, 161, 162,

163, 221. — III, 3, 284,

285.
Petkoff, S. 37, 337. — II,

775.
Petrak, Franz 146. — II,

771. — III, 94, 183.
Petri, L. 181, 216, 271,

812, 837, 846, 852, 856.

— II, 618.

Petrie, D. II, 264. — III,

94, 328.
Petrollini, F. 412.
Petry, H. II, 138. — III,

207.
Pettinati, G. II, 853.
Pettis, C. R. II, 71.
Pfannenstiel, A. III, 602.
Pfeffer 414.
Pfeffer, W. 738, 749.

III, 30.
Pfeiffer, C. II, 80.
Pfeiffer, Karl 216.
Pfeiffer, Th. II, 6, 16, 24.
Pfitzer, E. 399, 407.

III, 119, 395.
Pfuhl 652, 699. —II, 113.

— III, 311.

Pfyl, B. III, 602, 603, 604.
Phelypeaux, L. 416.
Philip, R. H. II, 640.
Philipp, E. P. II, 825.
Phillips, E. P. 139, 794.
Phillips, F. J. II, 111.
Phillips, W. T. 139.
Phytian, J. ü. III, 9.

dal Pinz 861.
Picard, F. 235. 240.
Picbauer, R, 119.
Pickering, S. 216.
Pickering, Spencer M. 809.

— II, 864.
Pickles, S. S. III, 604.
Pictet, Arne III, 604.
Pidance, R. II, 856.
Pieper, G. R. 16. II,

582, 770. — III, 30, 56.
Pierce, G. J. III, 20.
Pierre II, 248. — III,

306.
Pilger, H. 378.
Pilger, R. II, 201, 246,
266. III, 56, 94,

186.
Pillichody, A. II, 6, 69.
Pilz, F. II, 19, 35, 64.
Pingree, M. H. II, 24.
Pini II, 17.
Pinkus, G. II, 805.
Pinoy, E. 159, 200, 229.
Piper, Charles V. II. 10,

42, 188.
Pirotta, R. 796.
Pit II, 916.
Pitcard, J. II, 149.
Pitcher, F. II, 259.
Pittier, H. II, 192, 196,

821.
Pittier de Fabrega, H. III,

142, 207, 231.
Pizzoni, P. 812.
Plahl, Wilhelm III, 605.
Plahn, H. II, 49, 53.
Planchon II, 582. — III.

195.
Planchon, L. 450. — III,

605.
Planck. W. 390.
Plate, L. 409.
Plateau, Felix II. 582. -

III, 246.
Platen, P. 599.
Playfair, G. J. 364.
Pleijel, ü. 111, 605.
Plemper van Baien, B. A.
III, 107.

730

Pütt— Rabault.

Pütt, Charles 0. 50. — II,

760.
Plowright, C. B. 225.
Plüss, B. II, 79. — III, 9.
Podpera, J. 46.
Poetsch. A. II, 800.
Poeverlein, Hermann 409.

— III, 328.
Pogge, 0. II, 41.
Pohl, Josef 696.
Poisson, H. II, 199, 226,

954. - - III, 52, 472.
Poisson, J. II, 654.
Pojero, L. III, 3.
Pokorny III, 9.
Pollacci, Gino 728. — III,

20.
Pollard, Ch. L. II, 168.

— III, 161.
Pollatschek, P. 111, 605.
Pollitt, J. 727.
Pollock, James B. III,

395.
Polowzow, Warwara 744.
Pomeranz, C. III, 606.
Pomeroy, C. S. II, 5, 55.
Pompeckj, J. F. 380, 613.
Pona, G. 399.
Pond, F. J. III, 606.
Pond, R. H. II, 704.
Pool, J. F. A. III, 289.
Pool, R. J. 485, 516.
Pool. V. W. 216, 267.
Popoff, N. II, 929.
Popp, M. II, 17.
Porchet, F. II, 84.
Porcius, F. v. 412.
Pore, J. F. A. III, 661.
Porodko. Theodor 740.
Porsch, 0. II, 582. — III,

1 19.
Porter, A. E. III, 100.
Porter, E. II, 9, 14, 38.
Porter, Mary W. 409.
Portheim, L. von 790. —

II, 671, 708, 722. — III,

:»16.
Poskin, M. 213, 784.
Post, Lennart von 600.
Potebnia. A. 101.

Potier de la Varde 41.
Potonie, H. 600, 601, 604,

605, 606, 607. — II, 69.
Potter, M. 0. 216, 851.
Potts, G. H. 402.
Potts, H. W. II, 840, 842.
Pouget, J. II, 7.
Poulson, E. II, 852. —

III, 606.
Powell, E. P. II, 78.
Powell, G. Harold 784. —

II, 78, 80, 83, 866.
Powell, H. II, 878, 916,

917, 924, 925, 926.
Powell, J. G. R. II, 760.
Power, Fr. B. II, 716. —

III, 186, 265, 606, 607.
Powers, J. H. 359.
Pradel, L. 225.
Praeger, R. L. 409. — II,

769.
Prain, D. II, 163, 205. —

III, 9, 84, 155, 211, 229,

241, 270, 273.
Prandi, O. 785.
Pratt, a. E. II, 939.
Pratt, M. B. II, 71, 188.
Preble, E. A. II, 145.
Preda, A. 338.
Prein, Rudolf 520, 755.
Preissler II, 11. 12.
Prest, Walter H. II, 147,

805.
Preul, Franz II, 24, 658.
Preuss, H. 608. — II, 277,

770.
Preuss, Paul 140.
Pridham, J. T. 245.
Pries II, 770
Priestley, J. H. II, 21.
Prillieux 275, 409.
Principi, P. 608.
Prior, E. II, 51.
Pringsheim , Ernst 723,

724.
Pringsheim, Hans 175, 184.
Prinzhorn II, 936, 940.
Pritzkow, A. II, 631.
Probst, R. 252.
Prochnow, O. 688, 696.

Prodinger, Marie 477. —

III, 295.
Protic, G. 337.
Proast, L. II, 149.
Prove II, 12.
Prowazek, S. 366, 367.
Prucha. M. J. II, 39.
Prudhomme, Em. II, 825.
Przibram, Hans 683, 751,

752. — II, 583, 722. —

III, 30, 69.
Puchner II, 7.
Puckner, W. A. III, 608.
Pütter, A. 327, 334. - - II,

730.
Puglisi, Michele 676.
Pugsley, H. W. III, 229.
Pulle, A. II, 198.
Puran Singh II, 895, 931.
Purpus, A. III, 107, 342.
Purpus, J. A. II, 192, 268.

— III, 160.
Pursei, R. C. III, 678.
Purvis, J. E. 175, 702, 725.
Puttemans, A. 129, 216,

263, 271. — II, 618,

914.
Pyman III, 608.
Pynaert, Ch. 409.

Quanjer, B. M. 110, 216,

843, 852.
Quante II, 7.
Quartaroli, Alfredo III.

502.
Quehl, L. II, 185, 192, 196.

— III, 160.

Queiroz Teiles, A de II,

858.
Quelle, F. 343. — II, 640.
Queritet, G. II, 71.
Querner, H. 216.
Quinn, C. E. II, 28
Quinn, Geo 216, 217.
Quint, J. II, 640.
Qvam, O. II, 707.

Rabak, Fr. II, S64. — III,

608, 609.
Rabault 234.

Rabe— Riebet.

731

Rabe, P. HI, 609.
Raciborski, M. 176, 653,

683, 778, 844. — III,

183, 609.
Rackwitz, H. III, 611.
Rader, F. E. II. 29, 73.
Radian, S. 64.
Radö, Endre 719.
Rade, Karl III, 107,. 289.
Raffill, C. P. III, 100, 139,

207.
Ragan, W. H. II, 55. —

III, 295.
Ragland, A. M. II, 78.
Rabn, Otto 160. — 11,729.
Rakowsky, A. III, 480.
Rakusin, M. A. 111, 611.
Rarnaley, F. 422. II,

184,185,224. — 111,295.
Ramann, E. 802. — II,

59.
Ramirez, R. II, 850.
Ramme, W. II, 756.
Ramon, Gargia Oses II,

925.
Rand, F. W. II, 174, 787.
Rane, F. W. II, 61, 63.
Range, P. 635.
Ranninger, F. III, 612.
Rant, A. 217.
Rapaics, R. 653. — II,

129. — III, 242, 287.
Rasanayagam, C. 217.
Rasenack, P. III. 612.
Raske, Karl III, 494.
Rassmus, W. 503.
Ra^sow, B. III, 612.
Rathie, Arnold III, 612.
Rathje, A. II, 765, 805.
Raum 245, 857.
Raumstedt, Q.^III, 570.
Raunkiaer, 0. 129, 717. —

II, 132. — III, 30.
Rave, P. 5.
Ravenna, C. III, 61 '■'>.
Rawa, M. II, 770.
Ray, J. III, 31.
Raybaud, L, 176. 712.
Rea. Uarleton 108, 109,

812.

Reade, J. M. 240, 837.
Reader, F. M. II, 256, 259.
Readhimer, J. E. II, 6, 27.
Reagan, A. B. II, 182.
Rebvtffat, 0. II, 953. —

III, 207.
Recenti, A. III. 75. 247,

251.
Rechinger. K. II, 203, 206,

207, 209, 784. — III, 3,

5, 9, 251.
Rechinger, L. II, 209.
Record, S. J. II, 71, 180.
Reddik, Donald 125, 785,

844.
Reed, A. L. II, 174.
Reed, E. V. III, 613.
Reed, G. M. 240, 840.
Reed, H. S. 176, 754. -

II, 7, 17, 24, 64, 711,
852. — III, 613.

Reeder, G. S. III. 680.
Reeker, H. 692.
Rees, B. 653.
Rees, P. III, 295.
Regel, R. II, 854.
Regensberg, F. 390.
Regnault, E. 008.
Rehder, Alfred II, 69, 173.

— III, 56, 167, 345.
Rebm, H. 115, 146, 240.
Rehmann II, 69.
Rehnelt IL 82, 799. —

III, 202, 328.
Reich, R. II, 705.
Reichard, C. III, 613.
Reiche, Karl II, 268. —

III, 84.
Reicbelt, H. 608. — II,

642.
Reichenbach, F. II, 268.
Reid, C. 608.
Reid, E. 608.
Reid, H. II, 831.
Reidenmeister, W. 853.
Reimer. F. C. II, 79.
Rein, Richard 695. — II,

802.
Reinbold, Th. 336, 349.
Reinhardt, Otto 394.

Reinke, J. III, 395.
Reiss, K. 609.
Reitmaier, 0. II, 57.
Reitsma, J. J. III, 395.
Reitz, Adolf 708.
Remeaud, O. II, 711. —

III, 013.
Remington, Stewart II,

920.
Remondino, Carlo II, 42.
Remy, Th. II, 7, 17, 24,

38, 42, 47, 70.
Le Renard, A. II, 24.
Renaudet, G. III, 313.
Rendle, A. B. 326, 422. —

II, 251, 252, 277. — III,

94, 186.
Renier, A. 010, 611.
Renkenberger, M. D. II,

919.
Renner, 0. 512, 611.
Rentsch, R. III, 613.
Repton, H. II, 74.
Resenscheck, Friedrich

194, 730.
Reukauf, E. 159, K39. —

II, 618.
Reuss, H. II, 66.
Reuter, E. 99, 053. — II,

618.
Rey nier, Alfred 415. — II,

140,619.- 111,242,341,

342.
Reynolds, C. III, 405.
Reynolds, Ernest Shaw

217, 781. — II, 175. —

III, 608.
Reynvaand II, 619.
Rhodin, J. II, 17.
Rhodin, S. II, 20.
Ribaut, H. III, 613.
Ribeiro, V. P. II, 914.
Ricca, U. 731.
Riccobono, V. II, 864, 867.

— III, 308.
Richards, H. M. III, 9.
Richardson, G. B. II, 144.
Richeson, J. M. II, 33.
Richet, Charles 194. - II.

705.

732

Richlin — Rostrup.

Richlin, E. II, 801.

Richter, L. 180.

Richter, O. 746, 747, 753.

— II, 664, 722. — III,
614.

Richter, W. II, 47.
Richters, F. 68.
Rick 147.
Ricker, P. L. 415.
Ridderstolpe, F. II, 583.
Riddle, L. W. 50.
Ridley, H. N. 53, 136. —

II, 216, 277, 778, 828,
836, 850, 863, 867, 889,
890, 891, 892, 918, 932,
936, 943, 944, 950, 952.

— Hl, 133.
Riebe, H. III, 328.
Riehm 115, 120.
Rietz, H. L. II, 52.
Riffart II. 36.

Rijn, W. van III, 614.
Rikli, M. III, 10.
Riley, L. A. III, 282.
Rilliet, Auguste 182.
Rimaud, A. M. 406.
Rimini, E. III, 614.
Rinden, A. II, 59.
RingeJmann, M. II, 833.
Ringleben, 0. II, 26, 660.
Riokind, L. III, 432.
Ripke. 0. 183. — II, 696.

— III, 540.
Rippetoe, J. B. III, 614.
Rissling, Richard III, 614.
Ritter, A. II, 17. 45.
Ritter, Georg 194, 679. —

III, 270.
Ritter, R. 504.
Rittlebank, R. S. II, 258.
Ritzberger, E. II, 736, 767.

— III, 314.
Ritzema-Bos, J. 110, 779,

786, 841, 854, 855, 861.

— II, 619.
Ritzerow, H. II, 583.
Rives, P. 265, 843.
Riviere III, 615.
Riviere, Ch. II, 932, 935.
Riviere, G. II, 75, 78, 85.

Robbins, W. W. II, 184,

185.
Robel, J. II, 721.
Roberts, H. F. II, 51, 55.
Roberts, J. G. III, 596.
Robertson, Agnes 611.
Robertson, R. II, 27, 74.
Robertson, T. B. 678.
Robertson Proschowsky,

A. II, 871.
Robinson, Benjamin Lin-
coln II, 167, 786.
Robinson, C. B. 3, 352. —

II, 147, 173, 211, 212.
Robinson, Robert III, 599.
Robinson, T. R. II, 10,

888.
Robinson, W. J. III, 119,

314.
Robitschek, C. R. 194.
Rocchetti, B. III, 187.
Roda, G. III, 10.
Rodda, J. T. II, 585.
Rodella, Antonio 181.
Rodie, J. III, 615.
Roeder, Ph. III, 615.
Roll, J. 67, 225.
Römer, Fritz II, 139, 770.
Roemer, H. 788 — II, 26,

660.
Römer, Th. II, 48.
Rörig, G. 212. — II, 613.
Rösing, G. II, 24.
Röttger, F. J. II, 78.
Rogers, A. J. II, 44.
Rogers, A. W. 611.
Rogers, T. 611.
Rogerson, H. III, 186,

607.
Rohlena, J. II, 69.
Roland-Gossehn, R. III,

160.
Rolfe, C. II, 823.
Rolfe, R. Allen 410. —

II, 170, 189, 192, 193,

194, 195, 198, 199, 203,

213, 223. — HI, 119,

120, 121, 396.
Rolfs II, 848.
Rolfs, P. H. II, 619.

Rolfs, R. H. 200.
Rolland, L. 150.
Roloff, A. II, 152, 892.
Romieux, Henri II, 150.
Romine, H. R. 653.
Rommel, W. 196.
Rompel, Josef 47.
Ronckwitz, H. II, 930.
Rood, A. N. II, 788.
Rooney, B. M. II, 174.
Roques, E. 816.
Rorer, J. B. 272, 846.
Rose, J. N. II, 170, 185,

194, 195. - III, 107,

158, 160, 242, 295.
Rose-Innes, H. 217.
Roselli, M. II, 932.
Rosen II, 585. — III, 31.
Rosen, Felix II, 250.
Rosenberg, J. 784.
Rosenberg, O. III, 199,

396.
Rosenberg, T. II, 704.
Rosenblatt, M. 182.
Rosendahl, U. 0. II, 144,

179.
Rosendahl, H. V. III, 615.
Rosenfeld, A. W. III, 615.
Rosenkrantz, K. II, 32.
Rosenstiehl, A. 194.
Rosenstock, E. II, 782,

783, 785, 791, 792, 793,

796.
Rosenthaler, L. 451. — II,

695. — III, 615, 616.
Rosing, Margery S. 674.
Ross, A. J. II, 855.
Ross, C. II, 834.
Ross, H. 194, 451. - - III,

10, 183.
Rössel, A. II, 9.
Rosselet, A. 707.
Rossi, Gino de 181. — II,

905.
Rossi, G. W. II, 911.
Rossmässler, E. 401.
Rossmann,' H. 196, 197.
Rostowzew, S. J. 159.
Rostrup, E. 410, 817.
Rostrup, O. 159.

Rota-Rossi— Sasaki.

733

Rota-Rossi, G. 103, 815.
Roth, E. 4, 184.
Roth, Gg, 61, 67.
Rothe, K. C. III, 10.
Rothpletz, Aug. 380. 612.
Rothrock, J. J. II, 934.
Rothrock, J. T. II, 141.

— III, 69, 208, 337.
Rouge, W. von III, 612.
Rougier, L. 844.
Rouhaud, R. III. 333.
Rouppert, Casimir 241,

838.
Roure-ßertrand, fils II,

930. — III, 616.
Roux, Claudius 107, 410.

415.
Roux, Eug. II. 695.
Roux, Fr. Ch. II, 908.
Roux, J. 405.
Roux, Marc Le II, 640.
Rouj, G. 415. — III, 75,

328, 344.
Rowlee, W. W. II, 176.
Rowler, Willard Winfield

II, 146.
Royer, Eugene III, 83,

121.
Royer, L. III, 616.
Rubner, K. 653. — III,

267.
Rudolf, A. 225.
Rudolph, J. II, 191.
Rudorf II, 65.
Rubel, E. 701. — III,

203.
Rübsaamen, E. H. II. 620,

803.
Rückert, A. 184.
Ruedeman, R. 612.
Rümker, K. von 810. —

II, 29, 35, 45, 48, 761.
Ruff, Johann Heinrich

393. — II, 679.
Ruffieux, L. 25.
Ruggles, B. P. II, 174.
Ruhland, W. 203, 217, 271,

661, 665, 799. 811, 834.

— II, 75.
Rumbold, C. 225, 834.

Rupe, H. III, 616.
Rupp, E. III, 616.
Ruppert, Jos. III, 319.
Rusby, H. H. 21, 51, 275.

- II, 74. - III, 616.
Rüssel, E. J. II, 760, 805.

— II, 5, 855.
Rüssel, M. H. II, 622.
Russell, Howland II, 179.
Russell, T. H. 68.
Russell, W. II, 103. — III,

31, 183, 242.
Russo, Ph. II, 585.
Rusting, N. III, 616.
Ruthe, J. F. 393.
Ruttner, F. 341.
Ruyter de Wildt, J. C. II,

10.
Ruzicka, Vladislav II, 960.
Ryan, L. A. III, 616.
Rydberg, Per Axel 37,

410. — II, 169, 182. —

III, 96, 295, 296.
Rykman, A. de II. 942.
Ryland, E. A. II, 844.
Ryssell, Eduard II, 171.
Rysselberge, H. van III,

107.
Rytz. W. 814.
Rywosch, S. 674. — II,

680. — III, 69.

Sabaschnikoff, A. II. 17.
Sabidussi, Hans 410, 416.
Sabourand, R. 200.
Sabransky, H. II, 773.
Saccardo. P. A. 160, 265,

275, 405, 410, 812.
Sachs, J. II, 869.
Sack, J. II, 883, 890.
Säurich, P. III, 31.
Sage, E. E. III, 617.
Sagorski, E. III, 183, 242.
Sagot 406.

Saillard, E. II, 12, 53.
Saint-Didier, Hubert de

406.
Saint-Hilaire, G. de 401.
Saint -Vincent, Bory de

404, 410.

Saint- Yves 410. — III, 94.
Saito, K. 160, 195. — III,

617:

Sakellario, D. II, 38.
Salem, V. II, 622.
Salfeld, H. 380, 612, (113.

— III, 72.
Salisch, H. von II, 66.
Salkowski, E. 195.
Salmon, C. E. III, 274.
Salmon, E. S. 136. 140,

217, 241, 837, 839, 842,

843, 846, 847.
Salomon, R. 839.
Salway, A. H. III, 606,

607, 618.
Samec, Maximilian 700,

790. — ' II, 708.
Sampaio, G. III, 288.
Samps.n, H. C. II, 925.
Sampson, Myra M. II,

175.
Samulski 11, 44.
Sanborn, C. E. II, 82.
Sauden, G. von II, 63.
Sander, H. III, 570.
Sanders, Miss C. B. 687.
Sandhack, H. A. III, 121,

207.
Sandmann, D. II, 884, 940,

945.
Sands, M. C. II, 972.
Sands, W. N. II, 909.
Saney, C. C. II, 168.
Sanfelice, Francesco 201.
Sani, G. III, 618.
Sannino, F. A. 842. — II.

84.
Sapehin, A. A. 53, 677,

608.
Sarauw II, 60.
Sargant, Ethel 614. — IH,

58.
Sargent, C. S. II, 69, 158,

176, 177, 179, 180, 422.

— III, 10, 296.
Sargent, 0. H. III. 121.
Sartory, A. 160, 176, 199,

201, 853.
Sasaki, S. 160.

734

Sasanow — Scholl.

Sasanow, W. II, 7.
Satie, P. III, 547.
Sato, S. III, 618.
Sauer, L. W. II, 178.
Saunders, Charles E. II,

27, 29. — III, 396.
Saunders, C. F. II, 104,

789.
Saunders, C. J. II, 82.
Saunders, J. 125.
Saunders, W. II, 29, 43.
Sauton 198.
Sauvageau, Oamille 274,

275, 326, 368, 369, 371,

372, 379, 397, 410. —

II, 632.
Savastano, L. 217.
Sawer, E. R II, 845.
Saxelby, E. M. II, 757.
Saxton, W. T. 533. - III,

242.
Sayer, W. S. 160.
Scala, A. C. 195. — III,

20.
Schaal, R. III, 619.
Schade, H. 195. — III,

619.
Schaff er, C. II, 146. '
Schaeffer, Georges II, 989.
Schaeffler, II, 35.
Schaf er, J. A. II, 67.
Schaffner, J. H. 35. — II,

178, 182, 759, 788, 974,

985.
Schaffnil, G. III, 621.
Schaffnit 115.
Schander, R. 115, 116,217,

253, 821, 832, 840.
Schanz, M. II, 908.
Scharfetter, R. 160.
Schaub, Fr. III, 621.
Schaub, J. O. II, 7.
Scheitz, W. III, 602, 603,

604.
Schelenz III, 621.
Schelle, E. 767. - II, 269.

— III, 31, 69, 145, 160,

167, 396.
Schellenber- H. C. 185,

234, 790,860.-111,621.

Schellmann, Walter II,
895, 896, 937, 942, 948.

— III, 208, 623, 624.
Schenck, Heinrich 329, 748,

749. — II, 98, 735. —

III, 12, 397.
Schepelmann, F. II, 894.
Scheremeteva, Gräfin E.

101.
Scherffel, A. 360, 361.
Schering, E. III, 624.
Schiff-Giorgini, R. 810.
Schiffner, V. 35, 47, .".3,

64, 65, 68, 69. — II,

134, 203, 793.
Schikorra, G. 850.
Schikorra, W. 837.
Schiller, J. 377.
Schüler-Tietz 759. — II,

75.
Schimmel et Co. II, 930.

— III, 624, 627, 630.
Schimper, A. F. W. 753.

— II, 98, 796.
Schinabeck III, 58.
Schindehütte, G. 614.
Schindelmeiser, J. III, 633,

719, 871.
Schindler, F. II, 10, 32,

35. — III, 244.
Schinz, Hans 121, 422, 670.

— II, 141, 247,252, 253,
277, 588, 806, 997. —
III, 4, 5, 19, 35, 312.

Schiönning, H. 195.
Scbirmer, Karl 628.
Schkateloff, W. III, 633.
Schlatter, T. II, 141.
Schlechter, R. II, 205, 207,

223, 830. — III, 121.
Schlenker, G. 615.
Schlesinger, H. III. 634.
Schleyer, A. 798. — II,

80.
Schlicke, A. 755.
Schmeck, A. II, 35.
Schmeil, O. II. 270, 769.

— III, 10.
Schmid, R. II. 39, 46.
Schmidt, A. 615.

Schmidt, C. II, 21, 586.
Schmidt, E. II, 75, 270.

— II, 690, 718.
Schmidt, Ernst III, 390.

634, 636.
Schmidt, H. 653. — II,

623.
Schmidt, J. 16. - II. 770.
Schmidt, Julius III, 634.
Schmidt, Richard III, 160.
Schmidt -Nielsen, S. II,

700.
Schmidt -Stölting, H. II,

887.
Schmitt, A. 615.
Schmitt, C. III, 31.
Schmittburg, Schenk von

II, 66.
Schmitthenner, F. 764, 765.

— III, 345.
Schmitthenner. P. 805.
Schmoldt, R. II, 42.
Schneider, C. K. II, 158,

266. - III, 152,. 289,

296.
Schneider, Georg 116.
Schneider, Guido 345. —

II, 640.
Schneider, J. M. 505, 672.

— III, 108.
Schneider, K. II, 42, 43.
Schneider, M. III, 10.
Schneider, Numa III, 58.
Schneider, W. III, 636.
Schneider-Orelli, O. 271,

768.
Schneidewind, W. II, 9,

17, 672.
Schnell, C. 185.
Schnepphaus, R. C. III,

636.
Schnetz, J. III, 296.
Schöne, Albert III, 636.
Schoene, W. J. 861.
Schönfeld, F. 196,197, 690.
Schoenichen, W. III, 10.
Schöningh, E. II, 60.
Schoenland, S. III, 11.
Scholl, E. 185. — II, 82,

722. - III, 636.

Scholz — Semler.

785

Scholz, J. B. 410.
Schonierus, J. II, 78.
Schorler, ß. II, 136, 140.

— II, 771, 772.
Schorn, F. II, 991.
Schorstein, Josef 226.
Schott, P. K. 838.
Schotte, G. 653.
Schouteden, H. II, 623.
Schrammen, F. R. 332,

731.
Schreiber III, 311.
Schreiber, C. II, 17, 19.
Schreiber, H. 67, 615. —

II, 60.

Schreiner, O. II, 7, 17, 24,

25.
Schrenk, H. von 217, 785,

793.
Schribaux, X. E. II, 49.
Schroeder, August II, 921.
Schröder, Bruno II. 641.
Schröder, E. A. 261.
Schröder, Fr. III, 636.
Schröder, G. III, 636.
Schröder, H. 626, 747. —

III, 638.

Schröter, C. 340, 411. —
II, 112, 148, 585. - III.
28, 31.

Schröter, E. 801.

Schröter, J. 116.

Schrötter, H. III, 639.

Schrohe 197.

Schrottky, C. II, 586.

Schubart, P. II, 25.

Schübe, Th. II, 71. — II,
112, 113. 114, 140, 771.

— III, 34.
Schubert, J. II, 64.
Schubert, R. J. 616.
Schücking, Karl 190.
Schürhoff, P. 721.
Schürmann, W. III, 641.
Schütte. H. 618.
Schütze, Harrie 176, 689.
Schuhmann, P. II, 3, 36.
Schullerus, Josef III, 270.
Schultheiss, C. LI, 112.
Schumann, K. III. 160.

Schulte im Hofe, A. II,

883.
Schultke, Th. 393. — III,

209.
Schultz II, 31.
Schultz, G. 217.
Schultze, B. II, 7.
Schultze, Leonhard II,

277.
Schultze, W. III, 641.
Schulz III, 660.
Schulz, A. 616. —II, 118.
Schulz. G. III, 121.
Schulz, G. E. F. II, 770.

- III, 34.
Schulz, O. E. II, 198. —

III, 343.
Schulz, P. F. F. III, 11.
Schulz, R. L. III, 639.
Schulz, Richard 394.
Schulze, B. II, 9, 17, 19,

25.
Schulze, E. III, 639, 640.
Schulze, Erwin III, 46,

184.
Schulze, Fr. III, 641.
Schulze, G. III, 641.
Schulze, H. III, 641.
Schulze-Dieckhoff II, 7.
Schuppli, P. II, 72.
Schurig II, 39.
Schuster, Julius 616, 617,

653. — III, 121, 263,

279, 280.
Schuster, Walter 520, 736.

— III, 46.
Schute, W. II, 924.
Schwabach, E. 402.
Schwabe, W. jun. 111,641.
Schwaighofer, K. F. III,

319.
Schwalbe, 0. III, 641.
Schwalbe, C. G. III, 641.
Schwappach 41 1.
Schwappach, A. II, 63, 65,

69, 71, 110, 216, 902.
Schwarz, G. F. II, 71,

175.
Schwarz, L. II. 112.
Schweickert II, 19.

Schweinfurth, G. 416. —

II, 95, 128.
Schweizer, Th. III, 121.
Schwendener 407.
Schwendt, E. III, 46.
Schwerin, F. v. II, 69. —

III, 58, 69, 72, 136, 247,
265, 266.

Schwind, H. II, 35, 51.
Scofield, Carl S. II, 32,

55, 841. - III, 242.
Scott, D. H. 275,411, 618,

619. — II, 253. — III,

72.
Scott, F. G. II, 945.
Scott, J. M. II, 40.
Scott, Rina 620.
Scott, W. M. 217, 272, 846,

861.
Scotti, L. III, 332.
Scouilla, W. L. III, 641.
Scouller, A. E. II, 761.
Scourfield, D. 356.
Scurti, F. III, 641, 642.
Sears, J. H. 620.
Seaton, S. 533. — II, 263,

985.
Seaver, F. J. 125, 176.
Sebille, R. 41, 61.
Secrest, E. II, 61.
Seddig, M. 660.
Seefried, F. 520. — III,

342.
Seelhorst, J. von II, 7, 10,

25.
Seely, H M. II, 174.
Seemen, 0. von II, 142,

213, 249. — III, 209,

311.
Seidlitz, N. 404.
Seiffert, G. 326.
Seitner, M. II, 623.
Selby, A. D. II, 178.
Seier, G. E. 394.
Seligo, A. 328.
Selk, H. 343. — II, 641.
Selland, S. K. II, 768.
Sellards, E. H. 620.
Semichon, L.-P. 234.
Semler, C. III. 328.

736

Semmler — Solla.

Semmler, F. W. III, 642.
Senion, R. 731, 737.
Semon, Richard III, 398,

399.
Senft, E. 4. — III, 642.
Senn, G. 332, 703. — II,

922.
Sergueff, M. 177, 812. —

III, 195.
Sernander, R. 620, 621.
Serre, P. II, 822.
Servettaz, Camille III, 200.
Setchell, W. A. 350, 370,

371. — II, 642, 886.
Setlik II, 920.
Sevegrand II, 17, 36.
Severini, G. 181, 481. —

III, 242.
Seward, A. C. 622, 623. —

II, 253. - III, 72.
Seymour, G. II, 861.
Seyot, P. 481. — II, 76,

83. - III, 297.
Shafer, J. A. II, 168. —

III, 2.

Shamel, A. D. II, 10, 48.
Sharp, G. III, 643.
Sharp, T. H. II, 865, 938.
Sharpe, F. A. II, 27, 74.
Shaw, C. H. II, 64.
Shaw, F. J. F. 505, 623.

III, 72.
Shaw, G. W. II, 35.
Shaw, H. B. II, 3.
Shaw, W. N. 411.
Shear, 0. L. II, 79.
Sheldon, E. P. II, 187.
Sheldon, J. L. 125, 850.
Sheppard, J. H. II, 3, 35,

50, 807.
Shepstone, H. J. II, 21.
Shibata, K. II, 586, 986.

III, 314.
Shiga, M. 766.
Shimek, B. II, 180. —III,

209.
Shirai, M. II, 165.
Shirasawa, H. III, 11.
Shoesinith, 0. M. II, 33.
Shore, N. D. II, 73.

Shorey, E. C. II, 25.
Shreve, F. II, 198.
Shriver, H. II, 177.
Shull, G. H. III, 95, 386,

399, 400.
Shutt, F. T. II, 10, 27.
Siegfeld, M. III, 643.
Siehe, Walter III, 108.
Sierig, E. 217. — II, 48.
Sievers, A. III, 643.
Silva, E. 810.
Silva, W. A. de II, 828.
Silvestri, Fr. II, 623.
Simmons, H. III, 165.
Simmons, H. G. II, 142,

146, 277.
Simon, Eug. III, 108.
Simon, Joseph 180, 181.
Simon, S. 763.
Simonkai, L. III, 136, 264.

289.
Sindall, H. A. III, 558.
Sineff, A. 697.
Singer, Leopold III, 643.
Siou, V. 201.
Sirker, J. N. II, 14.
Sirrine, F. A. 220. — II,

38.
Sjaroff, G. II. 933. — III,

297.
Sjöstedt, Yugoe II, 623.
Sjollema, B. II, 10, 36.
Skalweit, R. II, 35, 43.
Skärman, J. A. O. III, 11.
Skraup, Z. H. II, 710.
Skottsberg, G. 346.
Skubniewsky, Ch. III, 35.
Slator, A. 197, 198.
Slaus-Kantschieder, S. 217.
Sleskin, P. II, 25.
Slosson, M. II, 786.
Sluiter, C. P. 351.
Smalian, Karl 429, 749. —

III, 12.
Small, J. K. II, 168, 169,

189.
Smend II, 924.
Smith II, 825.
Smith, A. A. Dorrin III,

261.

Smith, Annie Lorrain 18,

108, 109, 161, 272, 812.
Smith, A. M. 702, 753.
Smith, C. B. II, 39.
Smith, 0. O. 217.
Smith, Chas. Piper II, 178,

187.
Smith, E. II, 888.
Smith, Erwin F. 218, 825,

826.
Smith, Ewing II, 939.
Smith, G. D. 263, 837.
Smith, Greig R. 185, 825.
Smith, Harold Hamel II,

881.
Smith, H. G. II, 255. —

III, 60, 260, 423.
Smith, Henry G. II, 934.
Smith, J. B. II, 32.
Smith, J. D. 413. — II,

195, 196.
Smith, J. G. II, 948, 888.
Smith, J. J. II, 209, 218,

653. — III, 121, 122.
Smith, K. P. II, 178.
Smith, Ralpf E. 272, 820,

853.
Smith, R. Wilson II, 986.

— III, 131.
Smith, Thomas III, 100,

184.
Smith, W. III, 429.
Smith, W. B. III, 643.
Smith, W. G. 150. — III,

311.
Smyth, Walter III, 95.
Snell, K. II, 669.
Soave, Marco III, 643.
Sobral, J. A. II, 861.
Sodiro, A. II, 270, 792.
Söderbaum, H. G. II, 17,

19, 56.
Sörensen, S. P. L. II, 700.
Solander, D. O. 424.
Solereder, H. 429, 452,

811. — III, 242, 246,

644, 934.
Solimena, F. III, 197.
Solla, Rüdiger 103, 218,

774, 780.

Solms-Laubach— Stigell.

737

Solms-Laubach, H. Graf

zu 623.
Solorzano, M. M. 623.
Soltsien, P. III, 644.
Someren Brand, J. E. van

II. 2. 820. — II, 13.
Somes, M. P. II. 179.
Sommer, R. 411.
Sommerville. Alexander

402.
Sommier, S. 338, 653. —

III. 5, 122. 151, 775.
Sonden, M. IL 767.
Sondermann, A. II, 21).
So ran er, P. 218, 796, 797,

800, 802.
Sornay, P. de II, 834.
Soskin. S. II. 936.
Soule, A. M. II. 35.
Soules III, 644.
Soursace, L. 218.
South, F. W. 453. — III,

72.
Sonza da Camara, M. de

818.
Späte, F. 623.
Spaeth, Eduard III, 242,

645.
Spafford, W. J. II, 34.
Spalding. V. M. II, 113,

171.
Spaulding, Perle y 416,

851.
Spegazzini, C. 129, 130.
Spence, D. II, 941, 942,
950, 954. — III, 645, 646.
Spence, M. III, 100, 225.
Sperlich, A. 737, 746. — II,

687, 750. — III, 328.
Sperling II, 48, 50, 64.
Speschnew, N. N. von 218,

404.
Spieckermann, A. 116,219.

— II, 3.
Spieker 219.
Spillmann, W. J. II, 29,

32, 44.
Spillner II, 72, 76.
Spinner, H. 411. — UI,
285.

Spitta, E. J. II, 643.
Spitz, L. 793.
Spitzenberg, G. K. III, 69.
Splendore, A. 784, 816. —

II, 886.
Splettstösser II, 64.
Spooner, H. III, 229.
Sprague, Th. A. II, 160,

195, 266, 268, 270. —

III, 153, 171, 195, 212,
250, 308, 335.

Sprecher, A. 512, 624. —

III, 72.
Spreng, A. 193.
Sprenger, U. II, 872. —

III, 58, 100, 140, 209.
Spribille, F. III, 127.
Spruce, R. 392.
Stadelmann III, 646.
Stadler, P. H. 451. — III,

616, 646.
Stadimann, Josef III, 184.
Stäger, Rob. 161, 177. —

II, 586.
Standley, P. C. II, 183. —

III, 160.
Stanek, V. II, 21.
Stange, B. 364.
Stanislaus, J. V. S. 198.
Stapf, Otto II, 149, 199,223,

249, 252, 270.-11,951.

952, 953. — III, 5, 95,

142, 147, 242, 256, 274,

306, 646.
Starling, H. J. 411.
Starnes, H. N. II, 78. 81.
Staubesand II, 66.
Stauffer, H. II, 51.
Stausch, K. 329. — III, 35.
Stavenhagen, R. II, 64.
Stazyzowski III, 647.
Stebler, F. G. II, 3, 29,

39.
Stebbing. E. II, 904.
Steele, A. B. 109.
Stefani-Perez, F. de 820.
Steffen, A. II, 82.
Steffen, Th. 516, 764. —

III, 401.
Steffens, -I. II, 29, 35.

Stegagno, G. 338.
Steglich, R. II, 35, 38, 50,

53.
Stein, L. II, 25, 43.
Steinach, E. 732, 733.
Steinbrinck, C. 35, 522,
670, 671. — II, 141, 588,
997. — III, 35.
Steiner, Johann Alfred

241, 838.
Steinert, K. H. 394.
Steinmann, Gustav 380,

— 624. II, 642.
Stejneger, L. II, 133.
Stengel, K. Gustav 625.
Step, E. II, 69, 768. — III,

288.
Stephani, Franz 53, 57, 65,

66, 67.
Stephens, E. L. II, 986. —

III, 271.
Stephenson, B. G. II, 739,

755.
Sterling, C. M. 453. — III,

332, 647.
Sterzel, J. T. 625, 626.
Steusloff, U, 626.
Stevens, A. B. III, 648.
Stevens. F. D. II, 29.
Stevens, F. L. 125, 151,
219, 220, 272, 820, 846,
853.
Stevens, Henry P. II, 941.

— III, 427."
Stevens, W. ü. 429. — II,

749.
Stevenson, A. P. 411.
Stevenson, John J. 626.
Stenvenson, W. II, 897.
Stevenson, W. H. II, 7, 39.
Stewart, E. L. II, 78.
Stewart, F. C. 125. 272,

819. — IL 3, 38.
Stewart, J. H. II, 9.
Stewart, J. R. II, 887.
Stich, C. III, 648.
Stickland, W. II, 256.
Stift, A. 220, 273, 790,

852. — II, 37, 53.
Stigell, R. 662, 770.

Botanischer Jahesbericht XXXVI (1908) 3. Abt [Gedruckt 13.1. 12.)

47

738

Stiles — Tarrach.

Stiles, W. 453, 481, 654. —

II, 802. — III, 69, 648.
Stingl, Georg 766. — II,

669.
Stirling-Maxwell, J. III,

69.
Stirton, J. 43.
Stobbe II, 44.
Stockberger, W. W. II,

55. — III, 648.
Stockdale,F. A. 130,823.—

11,874,883.— III, 391.
Stockhausen, F. 198.
Stockton, E. III, 187.
Stoddart, 0. W. II, 7, 10,

26.
Stodolski II, 43.
Stoepel, P. III, 650.
Störmer, K 1 17, 220, 245,

775, 783, 818. — II, 4,

II, 16.

Stoklasa, J. 198. — II, 2,
17, 25, 656, 662, 700. —

III, 648, 649, 650.
Stoll, Ph. Heinrich 854.
Stoller, J. 626, 627.
Stone, A. L. II, 28, 45.
Stone, George E. 677. —

II, 4.
Stone, W. II, 175, 176.
Stone, VV. G. M. HI, 153.
Stopes, M. C. 628.
Storck, J. II, 26, 660.
Stoward, F. III, 35.
Strachey, R. 392, 411. —

II, 225.
Strakosch, Siegfried 700. —

II, 25, 104. - III, 650.
StrampeUi, N. 784. — II,

48, 49, 85. — III, 401.

Strasburger, Eduard 351,

421, 748, 749. — II, 588,

735, 752, 960, 966. —

III, 12, 401, 402.
Strasser, Pius 814.
Straughn, M. N. II, 35.
Straw, C. E. II, 174.
Strecker II, 32.
Streitberger, F. III, 652.
Stremme, H. 628, 629.

Strigl, M. 481. — III, 148.
Stroebe, F. II, 64.
Strohmer, F. 783, 790,

809. — II, 12, 25, 666,

667, 694. — III, 652.
Strzyzowski, 0. 198. — III,

652.
Stscherbatcheff, D. III,

650.
Stuart, W. II, 81.
Stubenrauch 856.
Stuckert, T. II, 269.
Stübel, G. 669.
Stüber, W. III, 652.
Stürler, F. A. von III, 155.
Sturgis, W. 0. 825.
Sturli, Adriano 161.
Stutzer, A. 803. — II, 18,

76, 709.
Subba Rao, C. K. II, 871,

913. — III, 229.
Sudre, H. III, 297.
Sudworth, G. B. II, 69,

183, 187, 188. — III, 12.
Sündermann, F. II, 773.

— III, 320.
Suffran, F. 200.
Sukatscheff, W. 629.
Sulima-Samoila, A. 100,

346, 689. — II, 638.
Sullivan, M. Y. II, 7.
Sulzer-Buel II, 772.
Summer, G. 413.
Sumstine, D. ß. 234, 812.
Supan, A. II, 112.
Supf, K. II, 906.
Surcouf, J. II, 862, 886,

932.
Snringar, V. II, 82. — III,

203.
Sutherland, J. C. II, 172.
Sutherst, W. F. II, 21,832.
Sutton, A. W. II, 40. —

III, 195, 332, 402.
Sutton, C. S. II, 259.
Sutton, G. L. 245. — II,

853, 854, 840.
Suworow, K. 346.
Suyver, J. F. III, 653.
Suzuki, IT. II, 703, 718.

Suzuki, Y. 371.
Suzzi, F. II, 894.
Svedelius, N. 332, 374,

411. — III, 256.
Svoboda, H. II, 9, 19, 29.
Swellengrebel, N. H. 220,

819. — II, 964, 965.
Swingle, L. D. II, 987. —

III, 288.
Sycianko, W. von II, 9.
Sydow, H. 136, 147, 161,

266, 817, 818.
Sydow, P. 21, 136, 147,

148, 154, 161, 817, 818.
Sykes, M. G. 371, 629, 630,

654. — II, 758, 762, 764,

803, 987, 997. — III,

108.
Sylven, N. 654. — II, 767.

— III, 70.
Symmonds, R. S. II, 834.
Synder, A. H. II, 7.
Sytankay, von III, 652.
Szigethi, Gy. 220.
Szurak, J. 47.

Tabata, S. III, 653.
Tabel, J. B. II, 828, 829,

874.
Tacke, Br. II, 60.
Taft, L. R. II, 74.
Tagg, H. F. 654. — III,

215.
Takaishi, M. II, 703.
Takashi, T. II, 665.
Takeuchi, T. 363. — II,

14, 18, 81, 720.
Taliafero, W. T. L. II, 10.
Tamaro, D. II, 863.
Tammes, Tine 522. — II,

724. — III, 199.
Tancre II, 18, 61, 66.
Tanret, C. 185.
Tansley, A. G. 529. 630.

— II, 224, 752.
Taplin, W. H. II, 800.
Tappeiner, H.von 198,710.
Tarbourich, J. von II, 718.

— HI, 653.

Tarrach, Ernst 220, 850.

Tassily — Towle.

739

Tassily, E. III, 602.
Tathara, A. II, 894.
Taubenhaus, J. II, 76.
Tauret, Georges III, 653.
Tavares da Silva, J. II,

623.
Taylor, A. D. III, 70.
Taylor, A. E. II, 39, 69.

— III, 653.

Taylor, C. Somers II, 886.
Taylor. E. P. II, 625.
Taylor, F. 0. III, 654.
Taylor, N. II, 197.
Taylor. O. M. II, 75, 77, 79.
Taylor, S. III, 653, 654.
Taylor, T. H. III, 311.
Taylor, W. A. II, 74.
Tecbet, Carlo 333, 338.
Tedin. H. II, 51. — III,

95.
Teeple. J. E. III, 654.
Teleki, Andor 808.
Tellam, R. V. 399.
Teile, H. DI, 654.
Tempany, H. A. II, 909.

— III, 678.
Temple, J. C. 151.
Tenand III, 288.
Tenny, Lloyd S. II, 866.
Teodosio, F. 412.
Terracciano, A. II, 869,

870.
Terracciano, N. III, 5, 35,

161.
Terry, William A. II, 641,

788.
Tetzner, R. II, 78.
Texnier, Le III, 332.
Thackara, A. W. II, 19.
Thalheim, R. 393.
Thatcher, R. W. H, 5.
Thausing 198.
Thaussing, J. E. III, 654.
Thaxter, R. 241.
Theissen, F. 130, 131, 132,

242, 845.
Thellung, Alb. 416. — II,

139, 140, 247, 804, 806.

— in, 5, 6, 19, 184,
196, 208.

Theobald, F. V. 216. — II,

864.
Theopold, Wilhelm II,

888. — III, 654.
Theorin, P. G. E. III, 46.
Therese von Bayern,

Prinzessin II, 265, 792.
Theriot, J. 52, 61, 69. —

II, 167.
Tbevenet, Abbe 406.
Thevenot, J. de 396.
Thiebaud, M. 341.
Thiele, E. 0. II, 256, 259.
Thiele, Ottomar II, 930.

— III, 655.
Thiem, G. II, 20.
Thiermann 242.
Thiessen, R. 484. — III,

72.
Thieselton-Dyer, W. T. II,

254.
Thilo 416.

Thömsgen, W. II, 10.
Thomann, J. 340.
Thomas, E. N. 529.
Thomas, F. III, 500.
Thomas, Fr. II, 35, 69,

625. — III, 70.
Thomas, H. H. 544.
Thomas, P. 749.
Thomas, W. III, 618.
Thompson, H. II, 774.
Thompson, H. N. II, 898.
Thompson, H. Stuart 422.

— III, 100.
Thompson, R. II, 588.
Thompson, R. B. III, 70.
Thompson, Wm. Jas. II,

884.
Thoms, H. II, 950, 959.

— III, 256, 655, 656.
Thonger, C. II, 74.
Thonner, Franz II, 247.

— III, 12.
Thornber, J. J. II, 40, 56,

902.
Thorne, C. E. II, 7.
Thornewill, A. R. III, 656.
Thomson, Thomas II, 909.
Thornton, W. R. II, 838.

Tichomirow, Wladimir IIr

993. — III, 657.
Tichomirow, W. A. 185.
Tieghem, Ph. van 506,

512. — II, 127, 157,

248. — III, 135, 167,

264, 330, 342.
Tiemann, H. D. II, 64, 66.
Tilden, J. E. 351.
Timm, R. 44.
Timpe, H. III, 403, 765.
Tiraboschi, (Jarlo 177, 220,

851.
Tischler, G. 731. — II, 48,

961. — III, 404.
Tison, A. 229.
Tissier, N. 406. — II, 804.

— III, 657.

Tisza, E. III, 307, 589.
Tobiansky, d'Althoff II,

21.
Tobler, F. 10, 242, -370,

374.
Töpfer, H. II, 113. — HI,

311.
Törnblom, G. III, 172.
Tokuhisa, M. II, 641.
Toles, J. K. II, 913.
Tomei, B. 859.
Tommasini, C. III, 308.
Tompson, Robert Boyd

IQ, 70.
Tonduz, A. II, 844, 934.

— III, 657.
Tonge, J. 630.

Toni, G. B. de 416, 417,

424. — UI, 140.
Torka, V. 44, 67, 342.
Torrend, C. 105, 109.
Toth, Julius III, 657.
Toula, Franz 630.
Toulpain III, 454.
Tourlet, E. H. II, 774.
Tourret, G. 41.
Tovey, J. R. 424. — IL

141, 255, 258, 260, 846.

— III, 104, 155, 175, 193,
228, 278, 331. 341.

Tower, W. V. 220.
Towle, Phebe M. 35.
47*

740

Townsend — Van der Stok.

Townsend, 0. O. 218, 220,

748, 826.
TowDson, W. II, 264.
Tozer, Eustace 367.
Trablit 242.
Trabut 56, 220, 784,' 820.

— II, 864, 908.
Tracy, S. M. II, 43.
Tracy, W. M. II, 81.
Trail, James W. H. 842.

— II, 140, 625.
Transeau, Edgar N. 677.
Tranzschel, W. 253, 832.
Trappen, A. von der 655,

767. - III, 161.
Traube, J. 666.
Traverso, G. B. 103, 812.

— II, 775.
Travis, W. G. 43.
Trelease, W. II, 104, 191,

193, 422. III, 75,

108.
Trenkle, R. II, 79.
Trentin, L. II, 862.
Tretyakov, S. P. II, 56.
Treub, M. II, 134. — III,

657.
Tribolet, J. II, 869, 870.
Tribolet, M. de III, 95.
Tribot, J. II, 25.
Trillat, A. 198.
Trinchieri, G. 554, 655. —

II, 215. - ■ III, 36, 37,

75, 256.
Trindade, R. da II, 912.
Tripet, F. 411.
Troch, J. 784.
Troop, J. II, 81.
Tropea, C. III, 46, 93,

243, 405, 406.
Trotman, S. R. II, 894.
Trotter, A. 104, 234, 245,

265, 338, 780, 822, 828,

842. — II, 141, 178,

625, 626, 627, 634.
Trucha, M. J. 180.
Truelle II, 78.
Tryde, E. II, 768.
Trzebinski, J. 101.
Tschagowetz. W. J. 727.

Tscherrnak, Erich 845. —
II, 49, 55. — III, 406.

Tschirch.A. 485. — II, 158,
713, 892. — III, 280,
289, 659, 660, 661.

Tschirwinsky, P. 559.

Tschulok, S. III, 406.

Tsilinsky 337.

Tswett, M. 333.

Tubergen, C. G. van III,
100.

Tubeuf, C. von 220, 221,
234, 243, 265, 266, 772,
826, 837, 838, 843, 850,
859. — II, 65, 71, 588,
589. — III, 246.

Tunmann, O. 454, 485,
486, 488, 490, 492, 493,
507, 512, 527. — III,
142, 185, 216, 229, 245,
253, 307, 342, 661, 662,
663, 664, 665, 666, 667<
668, 669, 670, 671.

Turconi, M. 104, 810.

Turner, Ch. 354.

Turner, F. II, 256, 257.
258, 839, 897. — III,
95.

Turner, J. B. III, 407.

Turner, J. G. II, 864.

Turner, Joseph L. III,
671.

Turner, T. E. G II, 897.

Tutin, F. III, 265, 425,
(506. 607.

Tuzson, J. 630. — III, 298.

Tyler, P. J. II, 906. - III,
250.

Tyson, W. 349.

Ubbelohde, L. III, 671.
Uchiyama, S. II, 18, 20.
Udden, J. A. 631.
Uellenberg, E. III, 12.
Uhle II, 10.
Uhlenhuth, V. 698.
Ulbrich, E. II, 201, 266.

— III, 155, 251, 333.
Ule, E. II, 200, 201, 791,

936, 946. — III, 78, 99,

165, 166, 208, 247, 252,

344.
Ulpiani, C. II, 18.
Ulrich, P. 205.
ümberger, H. J. C. 244,

831.
Umney, J. C. III, 671.
Underwood, L. M. 274,

275, 392, 397, 398, 399,

401, 402, 407, 413. — II,

168.
Unna, P. G. II, 805.
Unwin, W. C. II, 898.
Upmeyer, Fr. II, 731.
Urban, J. II, 11, 21, 52,

196, 201, 266. — III, 58,

245.
Urech, F. 253, 833.
Ursprung, A. 675.
Usteri, A. II, 202.
D'Utra, G. II, 819, 836,

840, 842, 846, 871, 873,

881.
Utz III, 672.
Uzel, H. 120, 820.

Vageier, P. II, 18, 26.

835.
Vahl, Martin II, 98.
Vahlen, E. III, 672.
Vail, A. M. III, 386.
De Valda, Frederick W.

II, 950.
Valeton, Th. II, 208, 209.

— III, 6, 307.
Valette, Th. III, 19.
Vallier 406.
Vanatter, P. O. II, 29, 35,

38.
Van Bambeke, Ch. 150.
Van Brabant, W. II, 823;.
Vandellio, D. D. D. 405.
VanderkerkoVe, Em. II,

913.
Vanderkleed, Ch. E. III,

613.
Van der Laat, . E. II,

866, 868, 873.
Van der Stok, J. E. II,

835.

V anderstroaten — Ware .

741

Vanderstroaten, John D.

II, 923.

Vafiha, Joh. II, 26, 35, 37,

38.
Vaniot, E. in, 332.
Vaniot, V. II, 160, 164.
Varigny, Henry de 693.
Vaubef III, 672.
Vedel, L. 631.
Veiten, F. P. II, 896.
Velardi III, 672.
Yenditori, D. II, 11.
Vendrely 263.
Verbetski, K. L. II, 56.
Vercier, J. II, 81.
Verdier III, 4, 490.
Veres. Mihäly 454. — III,

97.
Verguin, L. III, 230, 407.
Verloop, J. H. 631.
Verrill, A. H. 189. — III,

131.
Verschaffelt, E. III, 672.
Vesterberg, Th. III, 673.
Vestergaard, H. A. B. II,

48.
Vestergren, T. 149, 253,

273.
Vetter, J. II, 772.
Vevej, S. A. de III, 673.
Vezia, A. II. 916.
Vibrans, 0. 810. — II, 12.
Vickers, Anna 351.
Vidal, L. II, S06. — III,

285.
Vielhaak II, 61.
Vieweg, L. 221.
Vigier, A. III, 108, 185.
Vigne, P. IU, 467.
Viguier, Rene 565, 631. —

III, 333.
Vilhelm, J. 352.
Vill II, 66.

Vilmorin, L. de III, 187.
Vilmorin, Ph. de III, 100,

408.
Vilmorin-Andrieux et Cie.

III, 12.
Vines, S. H. II, 704. —

III, 673.

Vintilesco, J. III, 265, 456,

675.
Viret, A. 339, 341.
Vivarelli, L. 780.
Viviand-Morel III, 196,

408.
Vleugel, J. 254.
Vöchting, H. 536, 753.
Voelcker U, 760.
Vogel 179.
Voges, Ernst 221.
Vogler, P. III, 142, 342,

408.
Voglino, P. 104, 266, 273,

274, 785, 786, 815, 816,

820, 822, 849, 852. — II,

18.
Voigt III, 38.
Voigt, Albert II, 97. —

III, 12.
Voitinovici II, 710.
Voley-Boucher III, 675.
Volkart, A. 221, 850, 856.

— HI, 95.
Volkens. G. 769. — II,

819.
Volut, R. III, 243.
Voorhees, J. A. II, 73.
Voorhees, J. G. II, 14,

29.
Voss, A. II, 69.
Voss, W. III, 408.
Vosseier, J. 201. — II,

849, 850, 910, 929.
Vouk, V. II, 720.
De Vries, H. II, 48, 74,

726. - III, 268, 409,

410.
Vries, J. J. Ott Le 686.
Vrieze, K. de II, 61.
Vuillemin, Paul 243, 274,

655. — III, 278, 332.

Waby, Ino F. II, 870.
Wad, C. M. II, 169.
Waddell, C. H. 61.
Wadmond, S. C. II, 179.
Wadsack, A. II, 32.
Wächter, W. 751. — II,
76, 695. — III, 675.

Wagner, 855.
Wagner, A. III, 214, 410.
Wagner, August 198.
Wagner, B. III, 676.
Wagner, C. II, 66.
Wagner, G. II. 198.
Wagner, H. III, 676.
Wagner, Harold 723, 751.
Wagner, J. Ph. II, 46.
Wagner, M. 395. — II,

26, 589. - - III, 38.
Wagner, Max II, 657, 731 .
Wagner, O. II, 78.
Wagner, P. 803. — II,

9, 10, 18, 38, 43, 7(5, 573.

— III, 581, 888.
Wagner, R. 656.
Wagner, Rudolph III, 70,

122, 131, 147, 165, 243,

285, 330, 336.
Waisbecker. A. II, 277.
Waite, P. U. 402.
Wakemann, N. III, 230.
Walbaum, L. E. III, 676.
Waldow, A. S. 394.
Waldson, L. R. II, 46.
Wall, Ch. H. III, 677.
Wall, H. III. 677.
Wallace, Darwin 390, 399.
Wallach, O. III, 677.
Wallart, J. III, 514.
Walta, V. II, 856.
Walter, II, 771.
Walther, J. 631.
Walther, O. III, 677.
Wal ton, L. B. 362.
Wang III, 678.
Wangenheim, von II. 61.
Wangerin, W. II, 160. —

III, 187, 410.
Wanner, A. 828.
Warburg, 0. II, 2, 820,

831. — III, 13.
Warburton, C. W. II, 10.
Warcollier, G. II, 78. 705.
Ward, H. M. 395, 402,

412. — II, 862. — III,

13.
Ward, J. J. III, 38.
Ware, Robert A. II, 175.

742

Warin— Whitson.

Warin, J. III, 678.
Warming, Eug. II, 98,

142, 589, 591. — 111,38,

203.
Warnstorf, C. 67, 393. —

II, 771.
Warren III, 487.
Warren, L. E. III, 648.
Warrington, R. 409.
Warwick, G. R. 175, 725.
Wason III, 13.
Waterhouse, E. T. P. II,

945.
Watermeyer, J. L. 140.
WTates, Leo A. II, 923.
Watkins, H. R. II, 5.
Watson, D. M. S. 628, 632,

633.
Watson, E. B. II, 39.
Watson, J. R. II, 183.
Watt, G. II, 826.
Watt, H. E. III, 678.
Wattles II, 894.
Watts, Francis II, 866,

873, 875, 876, 882, 909,

931. — III, 678.
Watts, G. K. II, 833, 908.
Watzl, B. 45. - II, 774.

- III, 193.

Waugh, F. A. IL, 5, 40,

55, 78.
Wauters, J. III, 678.
Wavrin, de 392.
Webb, W. H. II, 841.
Webber, H. J. II, 48.
Weber, C. II, 2.
Weber, C. A. 44, 633, 634.

— II, 01.

Weber, D. 507. — III,

678.
Weber, E. II, 129.
Weber, H. II, 40, 53.
Weber, S. 392.
Weber-Lübsdorf II, 40.
Webster, F. M. II, 627.
Webster, H. III, 678.
Webster, L. W. 350.
Webster, P. J. 11, 912.
Webster, T. A. II, 896.
Wedemeyer, K. III, 678.

Weed, 0. M. II, 68. —

III, 3.
Weehuizen, J. III, 679.
Weevers, F. III, 679.
Weevers, Th. II, 696.
Wefers-Bettuck, H. III,

679.
Wegner II, 20.
Wehrhahn, W. 44, 69.
Weibel, E. II, 70.
Weibull, M. II, 10, 38.
Weidlich, Hermann 747.

— II, 76.

Weigel, G. III, 679, 680.
Weigmann, H. 161.
Weil II, 936.
Weil, R. III, 680.
Weiland, H. K. 394.
Wein, E. II, 12.
Wein, K. 111,95, 172. 299,

410.
Weinberg, A. 422.
Weingart, W. II, 195, 198,

204. — III, 161.
Weinhauff II, 67.
Weinmann, J. 221.
Weinzierl. Th. von 673.
- II, 4, 40, 41, 43, 56.

— III, 95.
Weise, J. 394.

Weiss, F. E. 221, 634, 635,

781. — II, 595. — III,

39.
Weiss, L. HI, 260.
Weitzenböck, R. III, 639.
Weldon, F. R. 392.
Wellborn, G. III, 680.
Wellenthin, G. II, 43.
Wellesley, F. III, 122.
Wellington, Richard II, 75.
Wellmann, F. II, 2.
Wells, A. III, 680.
Welsch, A. III, 683.
Welsford, E. J. 243. — II,

968.
Welter, H. L. II, 884. —

III, 334.
Welwart III, 680.
Welz, F. II, 770.
Wenck, A. II, 26, 43.

Wendel, A. 188.
Wenner, 0. 201.
Went, F. A. F. 0. 724. —

II, 34. - IU, 96, 278,
410.

Wenzke, G. 393.
Werckle, C. II, 198.
Werner II, 40, 43.
Wernham, Fred II, 924.
Wesenberg-Lund, 0. 344,

345. — II, 632.
Wessberge III, 13.
West, G. S. 344, 346, 353,

364.
West, WT. 344, 346, 364.
Westell, W. P. III, 14.
Wester, P. J. II, 82, 871.

— III, 14, 167.
Westerdijk, J. 35.
Westerland, C. A. 392. —

III, 299.

Westgate, J. M. II, 40,

481.
Westland, James II, 939.
Westling, R. II, 596. —

III, 329.
Westmann-Greisitz II, 10,

38.
Wettstein, R. von II, 49,

203. 596, 735, 793. —

III, 14, 199, 411.
Wheldon, J. A. 11, 61. —

III, 170, 185.
Wheeler, A. S. III, 681.
Wheeler, J. H. II, 11, 12.
Wheeler, L. A. II, 113.
Wheelton 588.
Whetzel, H. H. 221, 274,

819, 849.
White, Oh. A. II, 914. —

III, 39, 412.
White, D. 635.
White, G. G. II, 81.
White, J. 524. — II, 171,

255, 258.
White, T. H. II, 73, 76,

79
Whitfield, R. P. 635.
Whitson, A. R. II, 7, 26,

32, 80.

V\ hitton — Woodbury.

743

Whitton, J. 770.
Wiancko, A. T. II, 29.
Wichdorf, H. von 635.
Wickham, H. A. II, 942.

— III. 208.
Wiechowski, S. II, 932.
Wiechowski, W. 493. —

II, 893. - III, 140, 681.
Wiegand, K. M. II, 176.
Wiegand, Ö. III, 681.
Wieland. G. R. 635, 656,

683. — IU, 70.
Wielandt 99.
Wielen, P. van der 221.
Wieler, A. U, 818. —III,

681, 682.
Wiener II, 72.
Wiesner, Julius 178, 392,

396, 397, 687, 699, 753,

792.
Wilbert. M. J. 422.
Wilbrink. G. IQ, 682.
Wilcox, E. M. II, 52.
Wildeman, E. de 140, 254,

339. — II, 218, 249, 250,

277, 796, 818, 820, 949.

— III, 16, 122.
Wildt, A. II, 772.
Wildt, Willi 755. — III,

682.
Wileman, J. P. II, 823.
Wilfarth, H. II, 26. — II,

660, 668.
Wilhelm, Karl 656. — III,

70.
Wilken, F. A. II, 74.
Wllkinson, W. P. II, 835.
Wilks, W. A. R. 702.
Will, H. 198, 199.
Will, O. 394.
Will, T. E. II, 70.
Wille, N. 360, 785.
Willem, V. II, 627.
Williams, C. G. II, 4, 40,

41.
Williams, F. N. II, 768.

— III, 83, 170, 288.
Williams, R. S. II, 196.
Willis, J. C. 136, 221, 785.

— II, 224, 596, 735, 786,

828, 870,928. - III, 16,

412.
Willis, R. A. II, 907.
Wüliston, S. III, 59.
Williston, S. W. III, 412.
Wüls, L. J. 636.
Willstätter, R. II, 721. —

III, 602, 682.
Wilson, A. 11.
Wilson, Albert 43.
Wilson, A. D. II, 46.
Wilson, A. S. II, 627.
Wilson, C. S. 844.
Wilson, E. H. II, 160.
Wilson, Guy West 234,

235, 422, 826. — II, 178.
Wilson, J. A. 43.
WUson, J. K. 125, 819. —

II, 842.
Wilson, John H. III, 412.
Wilson, M. 35. — II, 974.
Wilson, P. II, 197.
Wilson, Percy III, 308.
Wimmer, G. 788. — II,

10, 26, 660, 668.
Wimmer, J. 417. — II,

137.
Windaus, A. III, 683.
Windisch, K. II, 85.
Winge, O. 98, 126.
Wingelmüller, Carl 243.
Winkelmann II, 114.
Winkelmann, J. 725.
Winkler 136. — II, 862.
Winkler, H. 417. — II,

828, 962.
Winkler, Hans 329. — II,

747.
Winkler, Hubert II, 245.

— III, 59.
Winnicki, C. 534.
Winstedt, K. III, 243.
Winter, E. n, 800.
Winters, R. Y. II, 56.
Winterstein, E. III, 683.
Winzheimer, E. III, 684.
Wipple. O. ß. 221.
Wirtgen III, 243.
Wirtgen, F. 422.
Wirtgen, M. III, 683.

Wislouch, S. M. 373.
Wislicenus, H. 800.
Wisniewski, P. 178, 757.
Wisselingh, C. von 355,

363. — II, 718, 967,

998.
Witasek, J. II, 207. —

III, 332.
Wits, H. T. II, 916.
Witt, O. N. III, 122.
Witte, Hernfried IH, 243.
Witte, H. II, 55, 601,

797.
Wittmack, L. 424. — II,

49, 52. 103, 798. — III,

264, 333.
Wittrock, V. B. II, 601.

— III, 170.
Woeckel, O. II, 948.
Wörnle II, 61.
Wohanka II, 53.
Wohnlich, Emil III, 684.
Wolf. E. 334. — II, 142,

633.
Wolf, Egbert III, 311.
Wolf, F. A. 274.
Wolf, J. II, 711, 712.
Wolf, Theodor III, 299,

304.
Wolff III, 342.
Wolff, H. II, 265, 266.
Wolff, J. II, 695, 702. —

III, 685.
Wolff, Max 703. — IH,

660.
Woll, F. W. II, 10.
Wollemann, A. 636.
Wollenweber, Wilhelm

359. — II, 993.
Wolley-Dod, A. H. HI,

304.
Woloszczak, E. III, 288.
Woltereck, R. 335.
Wolverton, N. II, 27, 74.
Wood, A. 395.
Wood, H. C. III, 685.
Wood, J. M. II, 254, 796.

— III, 17.

Wood, L. H. II, 146, 187.
Woodbury, C. G. II, 81.

744

Woodruff e-Peaeock — Zschaoke.

Woodruffe-Peacock, E. A.

II, 140.
Woods, 0. D. II, 4.
Woodward, R. W. II, 174.
Wooton, E. 0. II, 183.
Woronin-Wisselowska,

Helene II, 977.
Woronow, G. N. II, 152,

153, 154.
Worsdell, W. C. 493, 636.

— II, 750. — III, 46,

288.
Worsley, A. III, 414.
Wortmann, J. II, 56, 85.
Woy, R. III, 685.
Woycicki, Z. 786.
Wray, L. III, 685.
Wright, A. II, 828.
Wright, C. H. II, 198, 204,

265, 268, 270, 777, 784.
Wright, F. C. II, 914.
Wright, H. II, 936, 942,

943, 944. — III, 208.
Wright, H. M. II, 829.
Wright, R. III, 492.
Wünschendorfer, K. 424.
Würffei, Ludwig III, 685-
WTüst, Ewald 636. — II,

44.
Wulff, Th. 99, 230, 274.

786, 824, 842, 852. - II,

74, 627.
Wunderlich, A. III, 166,

280, 344, 685.
Wurth, Th. 221, 254.
Wyneken, Karl 744, 805.

Yabe, H. 636.
Yamada, G. 254, 833.
Yamanouchi, 8. U, 974,

975, 976.
Yamanouchi, Sh. 656.
Yamanouchi, St. II, 745,

748, 764.

Yamanouchi, T. II, 671.
Yapp, R. H., 98, 769.
Yasuda, A. 136, 185.
Yeates, H. R. 67.
Yeld, G. III, 414.
Yokoyama, H. II, 14.
Yokoyama, M. 636.
Yoshirnura, K. II. 703,

718.
Yoshino, K. 786.
Young, R. T. II, 72.
Young, W. II, 768.
Younger, W. II, 842.
Yvon, P. III, 685.

Zabel III, 167.
Zach, F. 854.
Zach, J. II, 800.
Zacharewicz, Ed. 221, 222,

227. - II, 78, 85.
Zacharias, E. 35. — II, 78,

602.
Zahlbruckner, A. 10, 18,

20, 22, 69, 150, 325. —

II, 643.
Zahn, E. II, 82.

Zahn, Emil III, 59, 161,

166, 307, 314, 329.
Zahn, K. H. III, 185.
Zahn, M. II, 29.
Zala, A. 17.
Zaleski, E. II, 29.
Zaleski. W. II, 687. -

III, 685.

Zalessky, M. 636, 637, 638.
Zang, W. III, 70.
I Zangger, Heinrich 664.
Zatzmann, J. 860.
Zavitz, C. A. II, 29, 40.

— III, 414.
Zederbauer, C. 699. — II,

70, 72, 152, 641.
Zederbauer, Emerich III,

4, 70, 71, 196, 311, 414.

Zeeb IL, 61 .|
Zehden, G. III, 686.
Zehl, L. 690. — II, 692.
Zehntner, L. 211.
Zeiller 558.
Zeiller, R. 638, 639.
Zeiner-Lassen, A. III, 304.
Zeissig, R. III, 243.
Zeller, M. II, 703.
Zellner, Julius 185. — III,

686.
Zemann, Margarete II,

208. — III, 320.
Zemplen, Geza II, 684,

719. — III, 687.
Zernik, F. III, 687.
Zibelius, W. 394.
Ziegler, E. A. II, 67, 70.
Ziegler, H. III, 687.
Zielstorff III, 687.
Zijlstra, K. 494.
Zikes, Heinrich 199.
Zimmermann, A. 117, 179.
791, 792. — II, 65, 229,
687. - II, 836, 838,
878, 893, 894, 903, 919,
920, 930, 946, 948, 950.
— III, 71, 96, 208,
243.
Zimmermann, C. H. II,

627.
Zimmermann, K. von II,

141. — III, 19.
Zimmermann, W. III, 122.
Zinkgraf III, 687.
Zinnius, A. III, 616.
Zobeide III, 131.
Zodda, Giuseppe 39, 40.

— HI, 122.
Zollikofer, R. 201.
Zon, R. II, 72.
Zopf, W. 7. — III, 687.
Zschacke, H. 17, 44.

Sach- und Namenregister*).

Die Zahlen hinter II beziehen sich auf die zweite, hinter III auf die dritte

Abteilung.

Abelmoschus esculentus I Abies Nordmanniana II,
III, 463. 154, 171, 901. — III, 63,

— moschatus III, 463. 69. — P. 641.

Aberia caffra P. 139, 306.
Abies 556. — II, 114, 184.

— III, 63. - P. 285. —
N. A. II, 277.

— alba Mill. 593. — II,
626. — III, 63, 65. —
P. 284.

— amabilis II, 144, 901.

— balsamea L. II, 901.

— III. 62, 65.

— cephalonica Lk- II, 901.

— III, 61.

— cilicica II, 901.

— concolor II, 901.

— excelsa Poir. 686. —
II, 601.

— firma II, 901.

— grandis II, 144.

— heterophylla II, 144.

— insignis Carr. III, 61.

— lasiocarpa II, 144, 146.

— Löhri 561.

— Mariesii II, 214.

— maroccana Trab. III,
60, 63.

— Mertensiana II, 144.

— nobilis Lindl. II, 616.

— III. 62.

— Nordmanniana speciosa
III. 61.

— Nordmanniana X Fin-
sapo III, 61.

— pectinata DC- 561. —
III, 28. — P. 204.

— Pinsapo Boiss- III, 61,
63. 70.

— religiosa II, 901.

— sachalinensis Mast. III,
59.

— sibirica III, 633.

— taxifolia II, 144.

— umbellata Mayr III, 59.

— Vilmorini Mast. III, 61.

— Webbiana II, 225.
Abietineae 579, 598. —

III, 66.
Abroma angusta L. f. II,
904. — III, 463.

— fastuosa III, 463.
Abronia III, 262.

— Bigelowii Heimerl* III,
262.

— Covillei Heimerl* III,
262.

Abrus precatorius L. II,
209. — III, 463. — P. 31 9

Abrus pulchellus III, 463.
Absidia 232, 233.

— spinosa Lendner* 233.
Abutilon II. 190. — III,

58. - P. 308. — N. A.
II, 455.

— atropurpureum III,
463.

— crispum Don III, 55.

— hirtum III, 463.

— indicum Siveet II, 166,
904. — III, 463.

— Lemoinei III, 57.

— striatum 670.
Acacallis cyanea II, 199.
Acacia 687. — II, 215,

609, 851, 897, 935. —
IU, 245, 547. — N. A.
II, 440.

— abyssinica II, 250, 894.

— Adansonii II, 231.

— albida II, 232, 248.

— aneura II, 851.

— arabica II, 231, 232,
935.

— auriculiformis II, 209.

— Bertiniana III, 58.

— Oatechu II, 894, 895,
935.

— Cavenia III, 255.

— concinna III, 463.

*) N. 6. = Neue Gattung; N. A. = Angabe der Seitenzahlen, auf welchen
die neuen Arten der Gattung verzeichnet sind; subsp. = ^ubspecies; var.
= Varietät; fa. = Form; P. = Nährpflanze von Pilzen; * = Neue Art,
Varietät oder Form.

74b

Acaoia dealbata — Acer Negundo var. violaoeum.

Acacia dealbata Link II,
894, 901. — III, 432.

— decurrens Willd. II,
894. 895, 901. — P.
179.

— doratoxylon II, 856.

— — var. ovata II, 256.

— etbaica II, 894.

— excelsa II, 851.

— Farnesiana Willd. II,
115, 935. — III, 463.

— filicoides Trelease II,
440.

— fistula II, 250.

— fuliginea II, 257.

— gnidium var. latifolia
II, 256.

— harpophylla III, 851.

— hirta Null 440.

— homalophylla II, 851.

— Hooperiana III, 463.

— horrida II, 838, 843.

— Intsia III, 463.

— Jacquemontii II, 934.

— Koa A. Gray 457

— Macalusoi Mattet II,
609.

— macracantha Hwnb- et
Bonpl. II, 900.

— melanoxylon II, 901.

— mellifera II, 24S.

— modena II, 934.

— mollissima Willd- II,
894.

— nilotica II, 234, 894.

— pendula II, 851.

— pennata II, 232.

• — picrantha Beut it. III,
432.

— platyloba Bert er o II,
448. "

— podalyriaefolia III, 57,
232.

■ — retinoides Schi. III,
432.

— Richii II, 166.

— salicina II, 851.

— Senegal II, 935.

— senegalensis II, 233.

— seyal II, 233, 250.

Acacia spirocarpa II, 234,
248.

— spirocarpa Höchst. III,
231.

— Stuhlmannii II, 248.

— subulata II, 248.

— suma II. 233, 248.

— tortilis Hayne II, 609.

— tortuosa II, 899.

— usambarensis II, 248.

— verticillata Willd- III,
58, 237.

— verugera II, 233.
Acaena 519, 520.
Acalypha III, 5, 58, 207.

— P. 139, 311, 320.
N. A. II, 411.

— Beissneriana III, 207.

— elliptica Gris. II, 411.

— fruticosa Forsk- II, 890.
- Godseffiana III, 207.

— bernandifolia Gris- II,
411.

— Hessdörferiana 111,207.

— Sanderiana III, 207.

— Sandhackiana III, 207.

— Wagneriana III, 207.
Acanthaceae 506. — II,

223, 251, 266, 324. —
III, 39, 59, 134.
Acanthocladium Mitt. 51,
59.

— Merrillii Broth* 70.
Acantbolimon N. A. II, 477.

— androsaceum III, 56.

— demawendicum Bornm.
III, 273.

— venustum III, 273.
Acanthonitschkea Speg.

N. G. 130, 275.

— aigentinensis Speg*
275.

Acanthopanax III, 145.

— acerifolium Sehelle* III,
145.

— ricinil'olium III, 145.
Acanthosicyos horrida II,

253.
Acanthosphaera N. A. II
463.

Acanthostachys strobila-

cea 716.
Acanthotreculia Engl. N

G. II, 245. - N. A. II

463.
Acanthus II, 584. — III,

178. — N. A. II, 324.

— viridis III, 679.
Acarocecidium II, 621.
Acarospora 15.

— Carnegiei A. Zahlbr.*
24.

Acer 598, 685. - ■ II, 221,
598. III, 3, 136. —

P. 285, 305. — N. A. II,
326.

— Boscii Dippel II, 326.

— brachyphyllum Heer
561.

— campestre L. II, 154.

— III, 24, 28.

— — var. varbossanium
K. Maly II, 326.

— campestre X Lobelii II,
326.

— cissifolium Koch III,
136.

— creticum Tratt. II,
326.

— dasycarpum 541.

— distylum S- et Z. III,
136.

— Ginnala Max. III, 136.

— illyricum X tartaricum

II, 326.

— integerrimum V/v. 561 .

— japonicum III, 57, 136.

— micranthura S. et Z.

III, 136.

— Miyabei Max. III, 136.

— monspessulanum L. 561.

— IL 150.

— montanum häng II,
326.

— neglectum hange III,
58, 136.

— Negundo L. III, 57,
136.

var.viol&ce\imKirchn.

II, 326.

Acer Negundo X oalifornicum — Acrooomia laaiospatha.

747

Acer Negundo X cah-
fornicum II, 326.

— obtusatum Neilr. II,
326.

— palmatum III, 136.

— parviflorum Fr. et Sav-
III, 136.

— parvifolium Tausch- II,
326.

— pictum Thunbg. II, 626.

— platanoides L. II, 154.

— III, 28 — P. 118,
278.

— pleistocenicum Penh.
:.98.

— polymorphum III, 57.

— Pseudoplatanus L. 656.

— II. 154, 326, 586,
598. — III, 28, 57. 58,
137, 371. — P. 295,
296.

— — var. subobfcusum
DC II, 326.

var. vitifolium Tausch.

II. 326.

— rhombifolium EU. 561.

— rubrum 517. — II, 67.

— 111, 136.

— saccharum III, 136.

— Sieboldianuni typicum
Maxim. 111, 136.

— spicatum var. ukurun-
duense Max. III, 136.

— tataricum 575.

— torontoniensis Penhall.*
598.

■ — trilobatum Sibg. 561,
596.

— Tschonoskii Max- III,
136.

Aceraceae II, 218, 326. —

in, 136, 225.
Aoeras antropophora III,

108.
Acetabularia Oalyculus

358.

— crenulata 358.

^— mediterranea 333.

— Schenkii 358.
Acbariaceae III, 220.

Achatocarpus pubescens

Wright* II, 270.
Achillea II, 100, 626. —

III, 175. — N. A. II,

360.

— borealis II, 143.

— compacta II, 100.

— Millefolium L. II, 839.

— III, 489, 643. — P.
319.

— Ptarrnica L. III, 35.

— Schurii II, 100.
Achlya 233.

— hypogyna (Joker et
Pemberton* 230, 275.

— polyandra De Bary 233.
II, 970.

Achlys tripbylla III, 456.
Achnanthes minutissima

Kütz. II, 629.
Achnanthidium lanceola-

tum II, 720.
Achras costata Endl. III,

313.

— Sapota L. II, 822, 829,
870, 900, 954. - - III, 42.

— P. 286.
Acbyranthes linearifolia

Sw. II, 328.
Acbyrocline N. A. II, 360.
Acinetatripharetratai?nte*

367.
Acioa N. A. II, 486.
Aciotis III, 59. — N. A.

457.
Acnida N. A. II, 327.
Acokanthera 474. — III,

583.

— Deflersii Schweinf. 474.

— III, 142, 583.

— Quaboio Chatel III, 583.

— Scbimperi (A. DC-)
Benth. et Hook. III, 583.

Acomosperma K. Seh. N.

G. N. A. II, 335.
Aconitum 504, 534, 535.

— II, 100, 129, 142, 163,
164. — III. 4, 287, 680.

P. 317. — N. A. II,
483.

Aconitum Anthora X
Napellus III, 288.

— Hemsleyanum III, 57

— hetero phylloides Stapf
II, 555.

— Hostianum II, 100.

— Lycoctonum L- EU,
531.

— moldavicum II, 100.

— Napellus L. 436. — II,
720. — III, 536.

— septentrionale II, 100.

— sinense III, 57.

— spicatum Stapf II, 555.

— uncinatum L. 436.

— variegatum III, 536.

— Zenoniae Wolocz* III,
288.

Acoridium II, 309. — P.
308. — N. A. II, 310.

— tenellum Nees et Meyen
II, 310.

Acorus 532.

— Calamus L- 503. — II,
138, 162. — III, 77, 78,
567, 580, 581.

— gramineus III, 77.
Acranthera Arn. II, 505.
Aciidocarpus 434. — III,

248.

— macrocalyx Engl. III,
247.

— Smeethmannii II, 236.
Acriopsis N. A. II, 308.
Acroblaste 354.

— Reinschii Collins 354.
Acrobolus Wilsonii (Tayl)

Nees 69.
Acrobotrys K- Schum. et

K. Krause N. G. N. A. II,

503.
Acrochaetium 354.

— Dasyae 354.

— Hoytii Collins* 354,
381.

— minimum Collins* 354,
381.

Acrocladium Mitt. 58.
Acrocomia lasiospatha
Mart. II, 899.

748

Acrocordia— Adenogramma.

Acrocordia 15.
Acrolejeunea fuscescens
Gola* 82.

— pusilla Steph. 56.

— Roccatii Qola* 82.
Acrolophus paniculatus

Oass. II, 37.").
Acronychia trifoliata II,

209.
Acrophorus II, 765.
A crosanthes Eckl. et Zeyh.

IIT, 139.
Acrosorus Copel II, 767.
Acrospermum compres-

sum Tode 149.
Acrospira N. A. II, 302.
Acrostalagmus cinnabari-

nus 201.
Acrosticheae II, 766.
Acrostichum II, 765 767.

— alatum II. 767, 807.

— aureumi. II, 101, 206,
766, 785, 795, 807.

— aureum rar- attenua-
tum v. A. v. R.* II, 782.

— axillare II, 754.

— eonforme Siv. II, 797.

— cordatum (Thunbg.) II,
766.

— lomarioides Christ II,
784, 807.

— praestantissimum Borg
II, 766.

— sorbifolium L. II, 784.
807.

— tricuspe Hook. II, 766.
Acrothecieae 268.
Acrothecium Preuss 268.
Acrotriche II, 254.
Acrymia Prain N. G. II,

216. N. A. 435, 436.
Actaea 443. — N. A. II,
483.

— asplenil'olia Greene II,
144.

— californica Greene II,
188.

— caudata Greene II,
145.

— eburnea Rydb. II, 483.

Actaea neglecta Gillman
II, 483.

— nigra 521.
Actinea N. A. II, 360.
Actinidia III, 198, 221.—

N. A. II, 406.

— Kolomikta III, 198.

— lanata II, 162.

— polygama III, 198.
Actiniopsis atro-violaceae

P. Bem^ 275.

— separato-setosae
P. Renn* 126, 275.

Actinocyclus II, 639.

— Ehrenbergii Ralfs II,
637, 639.

— nebulosus Per* II,
643.

— vitreus Per." II, 643.
Actinodapkne III, 230. —

N. A II, 439.

— acuminata Meisn. III,
230.

— lancifolia Meisn. III,
230.

Actinomucor 232.
Actinomyces 200, 689,
709.

— monosporus Lehm, et
Schütze 689.

— odorifer 161.

— thermophiltis Berestnew
689, 690.

Actinomyceten 176.
Actinonema Crataegi Pers.

150.
Actinopeltis v. Höhn. N. 6.

128, 275.

— peristomalis v. Höhn*
128, 275.

Actiniopteris australis (L.
f.) Lk. II, 795.

— radiata (König) Lk. II,
756, 795.

Actinoptychus II, 637.

— Degenii Pant? II, 643.
Actinospora 501.
Actinostrobites Kayseri

Schindel* 614.
Actinostrobus 463.

Actinothecium callicola

Speg* 27 '5.
Actinothuidium (Besch.)

Broth. N. G. 58, 70.

— Hookeri (Mitt.) Broth*
70.

Actinothyrium callicola

Speg* 276.
Actinotus III, 341.

— Gibbonsii var. Baeuer-
lenii II, 256.

- Paddisoni II, 257. —
III, 337.
Adansonia II, 232, 234,
256. - - III, 154. — N. A.

II, 463.

— digitata L. II, 250,
904. — III, 154, 155.

— Grandidieri Baill. III,
154.

— Gregorii F. v. Müll. III,
154.

— madagascariensisP«^.

III, 154.

— sphaerocarpa Chev. III,
155.

— Stanburyana.HbcAr.III,
154.

Adelanthus Mitt. 66.

— brevicaulis Steph* 82.

— cubanus Steph* 82.
Adelobotrys N. A. II, 457.
Adelopbyton Jutieri (Ben.)

550, 572.
Adenanthera N. A. II, 440.

— pavonina F. Vill. II,
440.

■ — pavonina L. 457. — II,

209, 900.
Adenia N. A. II, 473.

— lobata (Jacq.) Engl. III,
270.

Adenium obesumP.ef Seh.

III, 140, 141.
Adenocarpus III, 239. —

N. A. II, 440.

— villosus Lge. II, 440.
Adenoderris II, 765, 766.
Adenogramma Rchb. III,

139.

Adenostemma fasoioulatum densifolium — Aeoidium Scutellariae-indicao. 749

Adenostemma fascicu-
latum densifolium II,
188.

Adenostoma 478.

Adenostyles II, 100. —
N. A. H, 308.

— alpina III, öu. — P.
248.

— integerrima Blume II,
HOS.

Adesmia N. A. II, 440.

— pumila Hook. fil. var.
anrantiaca Dus. III, 231.

Adhatoda vasica Nees II,

557.
Adiautites 613.

— sessilis 01 1.
Adiantopsis II, 789.

— paupercula (Kze.) Fee
II, 790.

— pedata (#ooÄ\) Moore II,
789.

— radiata (L-) Fee II,
789.

— rupicola Maxon* II,
790, 808.

Adiantum II, 783, 804.

— aculeolatum v. Aid.
v. Ros* II, 781, 808.

— Baenitzii Rosenst* II,
792, 808.

— boliviense Christ et
Rosenst.* II, 792, 808.

— Bonii Christ II, 778.

— Capillus-Veneris L. II,
231, 737, 760, 768, 798.

— caudatum L- II, 796.

— Thevalieri Christ* II,
796, 808.

— cuneatum II, 739, 792,
798, 801, 804. 807.

— dolabrüorme II, 798.

— Edgeworthii II, 798.

— elegans II, 798.

— Farleyense Moore II,
760, 801, 803, 807.

— indnratum Christ* II,
778, 809.

— lunulatum Burm. II,
794. 796.

Adiantum lunulatum var.
fissum Christ* H, 796.

— pedatum II, 801, 807.

— pubescens II, 798.

— reniforme 563.

— rubellum Moore II,
792.

— scutum II, 737.

— scutum roseum 11,801.

— suborbiculare v. Aid.
v. Ros* II, 781. 809.

— tenerum rar.farlevense
II, 798.

— tetraphvllum Willd. II,
794.

— Veitckianum Moore II,
760.

— Wagneri Mett. II, 792.
Adicea cuneifolia O. Ktze.

II, 541.
Adina N. A. II. 503.

— globiflora Sah III, 304.
Adinandra III, 335. —

N. A. II, 532.
Adonis 501. — III, 287,
558.

— vernalis L. III, 426,
489.

Adoxa III, 137, 221.
Adoxaceae III, 137.
Aechmea III, 78. — N. A.
II, 284.

— Pineliana II, 714.

— serrata II, 198.
Aecidium 253.

— abietinum 251.

— Actaeae Opiz 148.

— alascanum Trel. 253,
254.

— alliicolum Wint. 142.

— Antherici P. Henn* 139,
276.

— Berkleyae P. Henn*
139, 276.

— Blumeae P. Sem»*
276.

— Bulbines P. Hem#*
139, 276.

— Brideliae P.Henn* 139,
276.

Aecidium Cacaliae Diet*
276.

— clematidis DC 142.

— congoanum P. Henn.*
276.

— comscans Fr. 251, 253.

— Dracunculi Thuem. 253.

— elatinum 213, 641, 822.
Euphorbiae Gmel. 149.

— Evansii P. Henn.* 276.

— Eediae-olitoriae 104.

— Fraxini Schw. 142.

— Homogynes 247, 248.

— Homogynes Schroet.
832.

— houstoniatuni Schw. 142.

— Inulae-Helenii Constant.
148.

— Kurtzii Friderici p.
Magn* 129, 276.

— luculentum Syd. 148.

— magnatum Arth. 142.

— Oldenlandiae P. Henn.
276.

— Orchidearum Desm.
253, 254.

— Petasitidis Syd. 148.

— Phillyreae DC 108.

— Phrymae Halst. 311.

— Phyteumatis XJng. 253.

— Piptocarphae P. Henn.*
276.

— Pisi formosi Syd* 276.

— Plantaginis Ces. 253.

— Plucheae P. Henn.*
276.

— Posoqueriae Diet* 276.

— Psoraleae Pech 142.

— Puttemansianum
P. Henn* 276.

— Rauwolfiae P. Henn*
276.

— Rechingeri Bubäk* 140,
276.

— ranunculacearum DC
100, 143.

— roestelioides E. et E.
142.

— Scutellariae-indicae
Diet* 276.

750

Aecidium Serjaniae— Agave mexicana.

Aecidium Serjaniae P
Henn. 148.

— Sii-latifoüiTPMtf. II, 971.
Thalictri Qrev. 142.

— Tragopogonis (Pers.)
146.

— Transvaaliae P Henn*
139, 276.

— Urgineae P. Henn.*
139, 276.

— Usterianum Speg* 276.

— Uvariae-rufae P Henn*
276.

— Valerianellae 104.

— Wildemanianum 8yd*
276.

Aerobryidium lanosnlum
(G. Müll.) Fleisch. 54.

Aerobryopsis Laosiensis
Broth. et Par* 52, 70.

— subdivergens Broth- 52.
Aegagropila 349.
Aegopodmm Podagraria

L. 490. - II, 615. —

III, 342, 669. — P.

278.
Aegerita Candida Pers. 174,

304.
Aegiceras Qaertn. III, 257.

— majus III, 260.
Aegilops peregrina Hack.

II, 300.
Aeginetia III, 268.

— indica III, 268.
Aegiphila III, 59, 343. —

N. A. II, 542.
Aegle Marmelos Corr. II,

851.
Aereospermum II, 898.
Aeruginospora v. Höhn.

N. 6. 258, 276.

— singularis v. Höhn*
258, 276.

Aerva N. A. II, 327.
Aesandra III, 313.
Aeschynantbus II, 223.
Aeschynomene II, 444.

— elaphroxylon II, 232.

— sensitiva Sur. II, 837.
Aeöculinae III, 224.

Aesculus 692, 739, 759. —
P. 161.

— discolor Pursh III, 3.

— flava Ait- III, 3.

— Hippocastanum L. 561,
691. — II, 562. — III,
312, 472. — P. 278, 287.

— pallida W. III, 3.

— parviflora Walt. III, 3.

— Pavia 702, 794.
Aethalium septicum 229.
Aethionema 504.
Aextanthus N. A. II, 452.
Aframomum II, 243. —

III, 134. - N. A. II,
323.

— Laurentii K. Schum.
III, 133.

Ai'rardisia Mez III, 258.
Afrocalathea II, 244.
Afroraphidophora Engl.

IE, 76.
Afzelia africana II, 899.
Agathophyllum cupulare

Bl. II, 439.
Agaricaceae 106, 109, 123,

124, 174, 224, 257.
Agaricites Conwentzi

Platen* 599.
Agaricus adiposus 225.

— apalosarcus B. et Br.
258.

— aureus Mattusch. 318.

— blattarius Fr. 318.

— campester 174, 191,
836.

— campestris II, 706, 707.

— caperatus Pers. 318.

— duras Bolt. 318.

— euphyllus B. et Br.
258.

— (Mycena) farinellus
Feltg* 110, 277.

— Magisterium B. et Br.
258.

— melleus 163, 226, 822.

— molliscorium Cke. et
Mass. 318.

— nanus Bull. 110.

I — orabrophilus Fr. 318.

Agaricus ostreatus Jacq.
111, 836.

— praecox Pers- 318.

— (Plutens) Rajap Holt
258.

— sphaleromorphus Bolt.
318.

— terrigenus Fr. 318.

— togularis Bull. 318.

— xanthodermus Genev.
106.

— — var. lepiotoides
Maire* 106, 277.

Agarum Turneri 350.
Agathis 566.

— australis II, 262.
Agathosma ciliata Link

III, 307.
Agave II, 193, 827, 915.

— III, 74, 75.

— americanai. II, 166,914,
917.

— angustifolia III, 75,
193, 915. — III, 101.

— applanata Lern. II, 915.

— atrovirens Karw. U,
877, 915, 917.

— attenuata II, 982. —
III, 74.

— aurea II, 917.

— Oantala Roxb. II, 915.

— coccinea Boezl. II, 912.

— III, 74.

— cochlearis II, 917.

— cubensis Jacq. II, 915.

— falcata Engelm. II,
917.

— ferox III, 74.

— geminifera II, 917.

— heteracantha Zucc. U,
915, 916, 917.

— Ingbami 1 1, 9i7.

— Karwinskii U, 193.

— Keratta II, 915,

— lophantha Schiede II,
916.

— lurida II, 917.

— macroacantha II, 193.

— mexicana II, 917. —
III, 553.

Agave Potatoruni — Alchemilla arvensis var. glabra.

751

Agave Potatorum Zucc.
II, 915, 917.

— rigida Mill. 974. — II,
193, 915,917. — 111,75,
101.

— rigida sisalana Engelm.
II, 905, 914, 915, 916,
917.

— rubescens Salm II, 173,
917.

— Salmiana II, 917.

— striata Zucc. II, 917.

— tequilana Web- II, 915,
917.

— Vera Cruz Mill. II, 904,
915.

— Verschaffeltii III, 74.

— vestita II, 917.

— Victoria reginae II, 917.

— vivipara L II, 915,
917.

— Watsoni Drum. et
Wright III, 73.

— Weberi 643. — II, 917.

— Wigbtii Drum, et Prain
II, 915.

— Wislizeni II, 917.

— yuccaefolia 520.
Ageratum mexicanum II,

575.
Agialida N. A. II, 548, 549.
Agiella v. Tiegh. N. G. N. A. II,

549.
Aglaia N. A. II, 461.

— monophylla Perk. II,
461.

— odorata P. 133, 312.

— samoensis A. Gray 457.
Aglaoneraa 531, 532.

— versicolor 532. — II,
982.

Aglaozonia 371, 372.

— melanoidea 371.
Agrimonia 479.

— Eupatoria L. II, 563.
III, 293.

Agromyza tuberculata

Becker II, 624.
Agromyzina II, 624.
Agropyrum 446. — P. 253.

Agrostemma N. A. II, 354.

— Githago L. II, 720. —
III, 457, 458.

Agrostis II, 187, 258. —
III, 91. — N. A. II, 292.

— alba L. 650. — III, 40.

— canina L. II, 829. —
III, 40, 41.

— Olarkei II, 214.

— montana II, 258.

— quadriseba II, 258.
var. montana II, 258.

— stolonifera II, 839. —
III, 40, 41. - P. 247.

— suavis Stapf III, 86.

— vulgaris With. P. 247.
Agrostophyllum III, 121,

122. — N. A. II, 308.
Agrotis II, 79.
Ailanthus 473, 684. — II,

157, 896. — III, 330.

— excelsa III, 510.

— Giraldii Dode III, 58,
330.

— glandulosa Des f. III,
471, 510, 526. — P. 287.

— grandis III, 330.

— sutcbuenensis Farges
HI, 58, 330.

— Vilmoriniana Dode III,
58, 330.

Ainsliaea pteropoda DG.

II, 557.
Aira N. A. II, 292.

— antarctica II, 267.

— arctica Trinius II, 292.

— brevifolia .Lan^e II, 292.

— brevifolia Pwrs/i II, 292.

— caespitosa L. II, 292.
var. borealis Trautv.

II, 292.
var. brevifolia Gelert

II, 392.
var. brevifolia Hartm.

II, 292.

— flexuosa P. 319.

— indica L. II, 299.

— spicata L. II, 299.
Aizoaceae II, 201, 327. —

in, 137, 224.

Aizoon L. III, 139. — N.

A. II, 327.
Ajuga II, 216, 435.

— bracteosa Wall. II, 557.

— genevensis L. 521,522.

— reptans L. 521, 522. —
III, 9.

Alafia III, 142.
Alangieae III, 221.
Alangium III, 221.

— Lamarckii Thiv. II, 851.
Alaria laticosta Kjellm.

371.

— marginata R. et P. 371.

— praelonga Kjellm. 371.

— tenuifolia 371.

— valida 371.
Albertia 613.
Albizzia II, 222.

— fastigiata II, 232.

— Lebbek Benth. II, 900.
Albuca N. A. II, 302.

— Yerburgi Ridl. II, 251.
Albugo II, 745.

— Bliti ( Biv.) Kze. 141,
142.

— Candida (Pers.) 0. Ktze.
129, 142, 146.

— Froelichiae TlUsott* 235,
277.

— Ipomoeae-panduranae
(Schw.) Swingle 142.

— lepigoni (de By.) O- Ktze.
144.

— tragopogonis(DC) Gray
142.

— Trianthemae Wilson*
235, 277.

Alcbemilla 479, 504, 505.
— II, 100, 194, 252, 266,
496. — III, 283, 294,
295, 296, 384. — P. 241,
265. — N. A. II, 486, 487.

— achilleaefolia Renny II,
503.

— alpina L. II, 589, 599.

— Aphanes Pursh II, 488.

— arvensis Scop. II, 488.

— — var. glabra Greene
II, 488.

752

Alchemilla Bourgeaui — Allium obliquum.

Alchemilla Bourgeaui
(Rydb.) II, 496.

— ciliata Willd. II, 496.

— domingensis Urb. II,
496.

— faeroensis (Lge.) Buser
II, 589.

— hirsuta var. campestris
Cham, et Schi II, 496.

— Hoppeana Buser 11,487.
var. uaonticola Buser

II, 487.

— monandria Siv. II, 488.

— montana var- plicata A.
et Gr. II, 487.

— ocreata Donn. Sm. II,
496.

— orbiculata R. et P. II,
496.

— orizabensis (Rydb.) II,
496.

— pectinata R. B. K- II,
496.

— pinnata Benny II, 503.

— pinnata R. etP. III, 289.

— Pringlei (Rydb.) II, 496.

— procumbens Rose 11,
496.

— Schiedeana (Rydb.) II,
496.

— sibbaldiaefolia R. B. K.
II, 496.

— subalpestris Rose II,
496.

— tripartita R. et P. II,
496.

— velutina S. Wats. II,
496.

— venusta Cham, et Schi .II,
496.

— vulcanica Cham, et Schi.
II, 496.

— vulgaris L. 696. — II,
599. — III, 299.

Alchornea N. A. II, 411.
Aldrovandia III, 317.
Alectoria Ach. 14, 15.

— arabum Mey. et Fw. 14.

— corymbosa Hue* 24.

— divergens Nyl. 22. |

Alectoria ochroleuca Nyl.
23.

— thrausta Ach. 23.
var. sorediosula Nyl*

24.

— tortuosa Merr* 24.
Alectorolophus 746. — II,

687. — 9, III, 328, 329.
— N. A. II, 520.

— abbreviatus Stern. III.
328.

— contrinensis Semler*IlI,
328.

— Freynii Stern. III, 328.

— glandulosus III, 328.

- — var. Malyi Sehr, et
Seml* III, 328.

— Kerneri Stern- III, 328.

— minor (Ehrh.) Wimm. et
Grab. II, 589.

— Sagorskii Seml.* III,
328.

Alethopteris 613.

— brevis Weiss 618.

— Davreuxi 568.

— discreta Weiss 637.

— Goepperti 607.

— Grandini 572.

— praelongata 607.

— serrata Casp. 556.
Aletris III, 5. — N. A. II,

302.
Aleurina Eeaderi Rehm*

241, 277.
Aleurites III, 205.

— cordata Steud. II, 821,
830, 927, 928. — III, 207,
541, 612.

— Fordii Remsl. 11, 162,
927,928. — 111,207,541.

— moluccana Willd- 457.

— II, 927, 928.

— trisperma Blanco II,
211.

Aleurodiscus 113,118, 259.

— javanicus P. Henn. 259.

— Lepra (B. et Br.) v. R.
et L. 277.

— Peradeniyae (B. et Br.)
P. Renn. 259.

Aleurodiscus sparsus

(Berk.) v. R. et L. 259.
Aleyrodes III, 850.

— Citri II, 848.
Algacites caulerpoides

Engelh.* 381.
Alhagi II, 128.
Alibertia concolor P. 279.
Alisma 531.

— Plantago L. 459, 513.

— II, 240, 263, 559.

— ranunculoides 513. —
II, 559.

Alismaceae 513. — II, 279.

— III, 73.
Allamanda puberula II,

201.
Allanblackia II. 929.
Allescheria Gayoni 184.
Alliaria Adans. III, 191,

192.

— officinalis 693.
Allionia N. A. II, 467.

— Buchii Britton II, 467.

— linearis Pursh II, 467.
Allium 743, 805. — II,

138, 687, 958. — III, 4,
5. — P. 239. — N. A. II,
302.

— angulosum III, 106.

— Bonariense Griseb- LI,
307.

— canescens Beauv. II,
306.

— Cepa L. 743, 804. —

II, 687, 690, (>95, 960.

— III, 675. — P. 108,
292.

— grossibulbum Beauv. II,
307.

— insubricumBoissetReut.

III, 106.

— Lloydiflorum II, 306.

— magicum III, 26.

— Minarum 11, 307.

— narcissiflorum Vill. III,
106.

— nigrum III, 26.

— nudum Beauv. II, 307.

— obliquum III, 106.

Aliiuin oohrolencuin — Alsiae austriaca.

753

Allium ochroleucum III,
106.

— petraeum III, 106.

— scabridulum Beauv. 11,
307.

— schoenoprasum L. II,
147.

*- strictum 694. — III,
106.

— suaveolens III, 106.

— subsessile Beauv. II,
306.

— Victoriaiis L. 693, 094.
— III, 10b.

Alloiopteris 613, 625.

— quercifolia 576.
Allomorphia II, 161. —

III. 5. — N. A. II, 457.
Alloneuron Pilger N. G.

N. A. II, 457.
Allophylus III, 58. — N. A.

II, 516.

— Oobbe Kurz II, 516.

— fulvinervis Bh II, 516.

— — var. bantamensis Bl.
II, 516.

— littoralis Bl. II, 516.

— timorensis Blume 458.
Alloplectus III, 59. — N. Ä.

II, 429.
Alloschernone Schott II,

121, 122. — III, 76.
Allosoms crispus II, 766,

774.

— falcatus II, 737.

— robnstus Kze. II, 766.
Alniphyllum III. 221.
Alnobetula III, 152.

— japonica S. et Z- III,
152.

— Spaethi Gallier* III,
152.

Alnoxylon jezoense Reiss*

609.
Alnus 541. 561. - III, 34.

— P. 161, 285.

— Alnobetula Hart. III,
152.

— cordifolia 541.

— firma S. et Z. III, 152.

Alnus glutinosa Grtn- II,
618, 685. — III, 28. —
P. 280, 854.

— — var. japonica Mat-
siim. III, 152.

- glutinosa X incana II,
343.

— incana Wühl. III, 28.

P. 243. 280.

— — var. emarginata
Matsum. III, 152.

— Kefersteinii Goepp. 614.

— Lantenoisi Laurent*
584.

— oregana 19, 67.

— pubescens Tausch. II,
343.

— rostrata Ung. 608.
rubra II, 143.

— spuria Gallier II, 343.

— viridis DC. II, 42. —
III, 152.

— — var. sibirica Rgl.
III, 152.

Alobiella Spruce 66.

— Chevalieri Steph.* 82.

— Dusenii Steph.* 82.

— latiflora Steph.* 82.

— parvifolia Steph* 82.

— pulvinata Steph* 82.

— rufa Steph* 82.
Alocasia II, 820. — N. A.

II, 281.

— macrorhiza III, 57.

— Warburgii.Ew^. II, 281.
Aloe II, 119, 242, 915,

918. — III. 102, 465,
565. — N. A. II, 302.

— sect. Aloinella
Berger* II, 302.

— — sect. Leptoaloe
Berger" II, 302.

— abyssinica Lam. II,
234, 303.

— albopicta Hort Lig. II,
303.

— Beguini perfectiorßadZ.
II, 303.

— commutata Engl. II,
303.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. (Gedruckt

Aloe dichotoma L. 469. —
III, 101, 106.

— ferox Miller II, 890. —
III, 564, 565.

— gracilis Bak. II, 303.

— Hanburji Borzi LI,
304.

— haworthioidesJBaJer II,
302.

— Kraussii Bak. var. minor
Bak. II. 302.

— Lingua Thunb. II, 305.

— obscura Berger II, 303.

— rigida Jacq. II, 306.

— Salmdyckiana X arbo-
rescens II, 304.

— spicata Bak. II, 303.

— supralaevis X Sahn-
dyckiana II, 304.

- Thraskii de Wildem. II,
304.

— variegata X Gasteria
acinaciiormis II, 303.

— vera II. 1 19.
Aloina 38.

— ambigua (Br. eur.)
Limpr. 55.

Aloineae III. 105.
Alopecurus agrestis II,
45. — III, 90.

— arundinaceus P. 247.

— pratensis L. II, 601. —
P. 247.

Aloysiella Mattir. et Sacc.
N. ii. 139. 277.

— ruwenzorensis Mafti, .
139, 277.

Alphitonia exeelsRRei necke

457.
Alpinia II, 206. - III. 9,

134. — X. A. II, 323.

— Sanderae III, 57.
Alseuosmia Banksii II,

264.

— raacrophylla II, 262
Alsidium 374.

— corallinum 374.
Alsine 504. — II, 598.

— austriaca Wahlenb. II,
356.

15. 1. 12. 48

754

Alsine banatica — Amauroderma.

Alsine banatica Bluff et
Fingerh. II, 355.

— Bauhinorum Gay II,
356.

— borealis P. 143.

— Gerardi Wahlenb. II,
356.

— laricifolia Gren. II, 356.
■ var. glandulosa Koch

II, 356.
■ — Rossii II, 146.

— setacea M. K. II, 355.
■ — — var. banatica Heu ff.

II, 355.

— striata Cr. II, 356.

— verna Barth var. alpina
Koch II, 356.

— — var. hirta Womafc
II, 589.

Alsodeia III, 343. — P.
300. - - N. A. II, 546.

— ilicifolia Wol. II, 898.

— schralensis Pierre II,
546.

— Thorelianai?oissie«* III,
343.

Alsodeiopsis N. A. II, 434.
Alsopbila II, 780.

— aethiopicaTTefou. II, 794.

— antarctica Christ* 559.

— aquilina Clirist II, 791.
var. Maxoni Rosenst*

II, 791.

— australis II, 652, 653,
737, 754.

— contaminans II, 754.

— Elmeri Copel* II, 781,
809.

— excelsa II, 752, 755.

— glabra Hk. II, 783.

— incana II, 807.

— latebrosa Wall. II, 781.

— prninata II, 805.

— saparuensis v. Aid.
v. Eos.* II, 781, 809.

— ülei Christ* II, 791.
Alstonia N. A. II, 331.

— constricta II, 851.

— verticillosa II, 209.
Alstroemeria N. A. II, 279.

Alstroemeria campaniflora
Hand.-Maz. III, 73.

Alternanthera N. A. II,
327.

— caribaea Moq. II, 328.

— echinata II, 254.

— muscoides Hook. II,
328.

— muscoides Combs II,
328.

— sessilis R. Br. II, 852.
Alternaria Nees 102, 269,

272, 782.

— ßrassicae (Berk.) Sacc-
271.

— fasciculata (C- et E.)
Jones et Gr. 216.

— Solani 782.

— tenuis Nees 170, 271.
Alternarieae Lindau 269.
Althaea 496. — III, 555.

— officinalis L. II, 890.

— III, 650.

— rosea Cav. II, 822.
Althenia III, 132.
Altingia excelsa Noronh-

in, 452.
Altingieae III, 221.
Alvaradoa III, 58, 219,

223. N. A. II, 527.
Alyssum 504. — III, 190.

— N. A. II, 400, 401.

— argenteum II, 140.

— atlanticum Desf. II,
401.

— atlanticum Willk. II,
400.

var. genuinum Willk.

II, 400.

— decumbens II, 400.

— epbesium Bornm. III,
189.

— maritimum Lam. II,
255.

— — var. densiflorum
Lag. II, 619.

— montanum Batimg. II,
400.

— — var. atlanticum
Boiss. II, 400.

Alyssum montanum var.
sulphureum Winkler II,
401.

— ramosum Borb. II,
400.

— repens Boiss- II, 400.

— Rochelii Rchb. II, 400.

— rostratum II, 400.

— saxatile Clem. II, 400.

— saxitile L. III, 189.

— styriacum Jord- et Fourr.

II, 400.

— Wulfenianum Schur II,
400.

Alyxia stellata R. et S.

III, 452.
Amanita 163.

— mappa Fr. 109.

— mappa Quel. 109.

— muscaria 222.

— phalloides (Vaill-) Fr.
222, 223, 224, 225.

— pustulata Schaeff. 257.

— rubescens Pers. 257.

— virginea Massee* 277.

— virosa Fr. 109.

— virosa Quel- 109.
Arnaracarpus pubescensll,

209.
Amarantaceae II, 203, 327.

— III, 54, 139.
Amarantus 461, 762. — N.

A. II, 327.

— albus II, 846.

— cblorostachys II, 175.

— bypochondriacus L. II,
327.

— hybridus var. hypo-
chondriacus B. L. Ro-
binson II, 327.

— melancholicus 722, 723.

— II, 209.

— silvestris Desf. P. 234,
828.

Amaryllidaceae II, 242,
243, 266, 270, 279. —
III, 54, 73, 414.

Amaryllis Belladonna II,
957.

Amauroderma 124.

Ainauroderina asperulatuin — Anacardiaoeae.

755

Amauroderma asperu-
latum Murrill 277.

— avellaneum Murr* 277.

— bataanense Murr* 277.

— Cleruensiae Murr.* 277.

— Elmerianum 135.

— flaviporum Murr* 277.

— Ramosii Murr* 277.

— subcrenatum Murrill*
277.

Amblestoma III, 116.

— tridactylum III, 116.
Amblyanthopsis Mez III,

259.
Amblyanthus III, 259.
Amblystegieae 58.
Amblystegiella Loeske 49,

58.

— aduata (Hediv.J Nichols
50.

— confervoides (Brid.)
Loeske 50.

— minutissima (S. et L)
Mchols 49.

— Sprucei (Bruch) Loeske
50.

— subtilis (Hedw.) Loeske
50.

Amblystegium Br. eur. 58.

— Sprucei Br. eur. 46.

— trichopodium (Schltz.)
47.

Ambrosia arteinisiifolia

361. — II, 576.
Amelancbier N. A. II, 488.

— BotryapiumP. 301,314.

— cauadensis II, 147. —
P. 240, 301, 315.

— vulgaris Mnch. P. 247.
Amentaceae III, 225.
Amerosporium oeconorui-

cum Ml. et Tr. 122.
Amicia zygomeris 735.
Ammaimia N. A. II, 454.

— latifolia II, 583, 585.
Ammopbila arenaria 522.

— baltica P. 283.
Amomum II, 206, 323. —

III, 134. N. A. II,

323.

Amomum pavieanum III,
133.

— trilobum III, 133.
Amorpha III, 243.

— angustifolia Boynh. III,
243.

— californica Nutt. III,
243.

— i'ruticosa L. III, 243.

— stipellata Wagn* III,
243.

— TrucyiWagner* III, 243.
Amorphophallus III, 75.

— P. 281.
Ampelidaceae III, 219,

222, 223.
Ampelocissus arachnoidea

Planchon II, 548.

— Chantinii II, 233.
Ampelopsis 765, 805. —

II, 173. — III, 345.

— Graebneri Bolle II, 548.

— hederacea 805.

— heptaphylla Buckley II.
548.

— hirsuta Donn II, 548.

— indica Bl. II, 548.

— latifolia Tausch II, 548.
- Lowii III, 57.

— quinquefolia 759.

— Saint-Paulii Mottet II,
548.

— tricuspidataSieö. etZucc.
II, 548.

— Veitchii Hort. 805. —
II, 548.

AmphiblemmaWildemani-

anum II, 236.
Ampbicarpaea II, 484, 485.

— monoica II, 583, 584,
585.

Ampbicarpon amphicarpon
(Pursh) Nash H, 557.

— floridanum Chapm. II,
557.

Ampbicosmia II, 765, 780.
Ampbidinium crassum
Lohm* 333, 381.

— longuin Lohm* 333,
381.

Amphidinium rotuudatum

Lohnt.* 333, 381.
Amphidium Aloysii Sa-

baudiae Negri* 70,

— clastophyllum Card.*
70.

Ampbilopbium N. A. II,

344.
Ampbisphaeria Uitri P.

Henn.* 277.

— Fourcroyae P. Henn*
277.

Ampbistelma P. 284, 310.
Ampbiuma II, 958.
Amphora ingeniosa Pant*

II, 643.

— mougolica Oestrup* II,
638, 643.

— proteus Greg. II, 630.
Amsinckia intermedia II,

141.
Amsonia angustifolia P.

118, 294.
Amydrium Schott. II, 121.

- III, 76.

— humile II, 122.
Amygdalaceae 111, 219,

223.
Amygdalus 369.

— Andersonii Greene II,
494.

— communis L. III, 295.
Amyris N. A. II, 511.

— balsamifera L. II, 900.

— parvifolia A. Gray II,
511.

— texana (Backt.) Wils.

III, 308.

Anabaena Bergii Ostenf.*

346, 381.
■ — discoidea Ostenf* 349.

— flos-aquae 349.

— helicoidea Bernard*S8l.
Anabasis cretacealll, 171.
Anacampseros III, 280, 281.
Anacamptis pyramidalis

III, 108.
Anacardiaceae 507. — II,
116, 328. — III, 58, 139,
217, 218.

48*

756

Anacardioxylon magniporosum — Androsacens epodius.

Anacardioxylon magni-
porosum 599.
Anacardium II, 89!).

— occidentale L. 508. —
II, 822, 837, 899, 927.
— III, 42. F. 314,
323.

Anacharis Nuttallii Planch.

II, 301.
Anachoropteris Cda. 552,

553.
Anadendron medium

Schott II, 282.
Anagallis II, 137, 582.

— arvensis L. III, 472.
Anagyris foetida L. III,

432.
Anamirta III, 252.
Ananas II, 829, 866.

— sativus Schult. /'■ II,
904. — III, 78.

Ananassa sativa II, 206.
Ananthacorus Underw- et
Maxon N. G. II, 790. 809.
Anaphalis N. A. II, 360.

— cinnamomeaC.jB.CZ.il,
555.

— contorta_ffooÄ\ f. II, 555.
Anaptychia Koerb. 14.

— ciliaris P. 284.

— leucomela Trevis. var.
sorediosa Jatta* 24.

Anastatica 670. 671. — II,
141, 997. - III, 35.

— hierochuntica L. 671,
768. — II, 554, 588. —

III, 35.
Anastraphia 111,59. — N. A.

II, 360.
Anastrepta orcadensis

(Hook.) Schffn. 69.
var. attenuata Nees.

69.

— — var. elongata Schffn.
69.

— — var. granditolia
Schffn. 69.

var. paludosa Schffn.

69.
var. typica 69.

Anastrophyllum Gam-

baragarae Gola* 82.
Anatropanthus Schlchtr. N.

G. N. A. II, 335, 336.
Anaxagorea N. A. II, 329.
Anaxetum Schott II, 789,

813.
Anchomanes II, 242.
Anchusa sempervirens L.

II, 596.
Ancistrocladus III, 218.
Ancistrophyllum II, 241.

— secundiflorum II, 235,
236.

Ancylobotrys II, 332.
Andira inerrnis H. B. K.
II. 837, 899. — III, 426.
Andrachne II, 149.

— colchica II, 154.
Andreaea alpestris Tlied.

47.

— heterophylla Card* 71.

— pumila Card* 71.

— sparsifolia Zett. 47.

— vemiculosa Card* 71.
Andreaeaceae 49.
Andricus inflator Htg. II,

619.

— fecundatrix (L.) Htg II,
619.

Andrograplideae 111, 135.
Andromeda 516, 5(54. —
II, 143.

— calyculata 602.

— campanulata Miq. III,
200.

— nikoensis Max. III, 200.

— nitida Barir. II, 409.

— ovalifoliaWaW. 111,200.

— pedunculata var. fo-
liosiflora Mieter. II, 409.

— polifolia L. 516. — II,
592, 594. 595. — III, 203.

Andropogon N. A. II, 293.

— affinis II, 839.

— Buchanani,S'£i7£>/'III, 86.

— citratus II, 822.

— contortus II, 207.

— cvmbosus P. 139.

— distaehyus L. III. 86.

Andropogon erianthioides
II, 255.

— halepensis II, 207.

— laniger II. 231.

— littoralis Nash II, 299.

— Nardus II, 933.

— pertusus Willd. var.
capensis Hack. III, 86.

— refractus II, 839.

— Schimperi Höchst. III,
86.

— Schlechten Hack. III.
86.

— sericeus 11,839. -- III,
95.

— Sorghum (L-) Brot. II,
102, 858.

— transvaalensis»S7o/j/'in.
86.

Androsace II, 146. 159,
163. 183. — III, 282.
285. N. A. II, 481.

— arizonica Gray II, 183.

— aurata Petittuengin II.
157.

— diffusa Srnall II, 183.

— glandulosa II, 183.

— glohifera II, 159.

— helvetica III, 56.

— Hookeriana II, 157.

— occidentalis Pursh II.
183.

— pinetorum Greene II,
183.

— platysepala II, 183.

— puberulenta II, 183.

— rotundifolia Hardw. 11,
557.

— sarmentosa II, 157.

— saxifragifolia II, 163,
282.

var. Faurieana Beauv*

III, 282.

— septentrionalis L. II,
183.

— subulifera II, 183.

— villosa L- rar. aurata
Petitm. II. 157, 481.

Androsacens epodius
(Bres.) 106.

Androsaceus epodius — Anthcmis Cotula.

757

Androsaceus epodius
(Bres.) Maire var. mi-
crosporus Maire* 106,
277.

Androstachys Prain N. A.
\. G. II, 411.

Androstrobus Scotti 591.

— sibiricus Heer 582, 583.
Aneilema beninenselTttnM

111, 78.

— Loureirii II, 223.
Aneimia II, 767.
Aneimites fertilis 577.
Anemone 444, 504. — II,

163, 711. — P. 213. —
N. A. II, 483.

— Hepatica L. 522, 696.

— nemorosa L- 696. —

II, 597. 957. - P. 99.

— Pulsatilla L. 652. —

III, 287.

— ranunculoides L. 696.

— P. 99.

— silvestris L. 649, 650.

— III, 286.

— vesicatoria Prtl. III,
286.

— Wettsteinii P. 128,
300.

Anemonella thalictroides

(L.) Spack 444.
Anemopaegma prostratum

P. 311.
Anepsias Schott II, 121,

122. — III, 76.
Anerincleistus N. A. LI.

457.
Anethum graveolens P.

253.
Aneura Dum. <>4. — II,

739.

— Le Rati Steph.* 82.

— pinnatifida Xees 47.

— Reineckeana Steph.*
82.

Angalora II, 229.
Angelica 490.

— silvestris L- 490. — II,
589. — in, 669.

— villosa II, 606.

Angiospermae III, 14, 15,

52.
Angiopteris evecta Hoff'm.

501. — II, 101, 124, 745,

754, 757, 776, 784. 785,

807.

— d'ürvilleana De Vr. II'
757.

Angophora intermedia II,

851.
Angraecum II, 244.

— caudatum Ldl. III, 115.

— hyaloides III, 120.
Anguillicarpus Burkill N.

G. II, 156 — III, 190.

Anguillula 32.

Anguloa RickeriXLy^aste
Skinneri III, 120.

Angulocaste Bievreana
III, 120.

Aniseia syringifolia Dam-
mer II, 397.

Anisodus N. A. II, 527.

— luridus XtanguticusII,
527.

— tanguticus II, 527.
Anisomeris N. A. II, 503.
Anisotes N. A. II, 324.

• — diversifolius Balf.f. III,

134.
Anisothecium crispum 32.

— humile 32.

— rufescens 32.
Ankistrodesmus quater-

natus West* 381.
Ankyropteris Stenzel 549,
550.

— Bibractensis B- R- 549.

— insigmsWilliamtion 549.

— Williamsoni Bertr*
549.

Anneslea fragrans II, 223.
Annesorrhiza capensis

Clmm. et Schlechte!. III,

337.
Annularia maxima 639.

— pseudostellata 568.

— stellata 618, 625, 638.
Anoectangium 51.

— compactum 46.

Anoectangium flexuosum
Negri* 71.

— fnscum Negri* 71.

— rivale Card* 71.

— subclarum Broth* 71.

— Sellae Negri* 71.
Anodendron N. A. II, 331.
Anogeissus latifolius II,

849, 934.
Anomobryum filiforme 39.
Anomodon rostratus

(Hedw.) 47.

— stenoglossus Card- et
Ther* 71.

— Toccoae Süll. 56.
Anomoeoneis sphaero-

phora P fitzer II. 630.
Anomopteris Mougeoti

615.
Anona II, S29. — N. A. II,

329.

— cherimolia II, 863. —
III, 42.

— muricata II, 822.

— reticulata II, 993.

— rufa Presl II, 329.

— senegalensis fers- II,
232, 623. — III, 140.

— squamosa L- 457.
Anonaceae 494. — II, 217,

221, 246, 252, 329. —

III, '140, 220, 221, 224.
Anonymos aquatica. Walt.

II, 428.
Anoplolejeunea conferta

(Meissn.) Evans 51.
Anotites pieta Greene IL,

145.
Anplectrum II, 460.
Anredera III, 281.
Antennaria II, 168.

— Athabascensis II, 145.

— dioica Grtn. .Y A. II,
360.

Antennaria Castilloae

Zimm. P. 133 (Pilz),
Anthemis X. A. II, 360.

— arvensis L. 696.

— Cotula L. II, 137, 846.
— III, 175.

758

Anthemis dipsacea — Apera spioa-venti.

Anthemis dipsacea Bornm.
III, 173.

— tinctoria L. P. 152,
311.

Anthericum II, 2-42. — P.
139, 276. — N. A. II, 304.

— reflexum Cav. II. 194.
Anthistiria arenaria II,

839.

— ciliata Retz. II, 300.

— imberbis Retz. II, 300,
836, 839. — III, 95.

Anthobembix N. A. II, 462.
Anthocephalus Oadamba

Benth. et Hook- II, 852.
Anthocercis Odgersii II,

255, 258.
Anthoceros II, 739.

— appendiculatus Steph*
82.

— crispulus Doum 44.

— Macounii M. A. Howe
49.

— parvisporus Steph* 82.

— pinnilobus Steph.* 82.

— punctatus L. 54.

— — var. Husnoti 39.
Anthocerotaceae 62.
Anthocleista N. A. II, 451.
Antholithus L. 592.

— ZeiJleri Nath.* 592.
Antholvza aethiopica II,

553.

— arborescens II, 553.

— bicolor P. 278.

— longistyla Bak. II, 553.
Anthonomus poniorum II,

608.
Anthophysa 348.
Anthophyta II, 203. —

III, 14.
Anthostoma solanicola

P. Renn* 277.

— turgidum Nlce. 149.

— turgidum (Pers.) Nke.
oar- minus Sacc* 277.

Antbostomella Sacc. 617.

— Bonanseana Sacc* 277.

— pisana Pas*. 103.
Anthostrobilus 544, 614.

Anthoxanthum II, 651.
Anthriscus Oerefolium
Hoffm. H, 537.

— chaerophyllacea Druce
II, 537.

— silvestris Hoffm- II, 537.

— III, 342.

— vulgaris Pers. II, 537.
Antrophyum Mannianum

Book. II, 795.

— plantagineum Kaulf.
H, 206, 807.

— — var. angulatum
Luerss. II, 807.

Anthurium 468, 532. — P.
306. - N. A. II, 281.

— crystallinum. 718.

— Laucheauum III, 46.

— Sanderi III, 46, 57.

— ScberzerianumX Andre-
anum III, 57.

— Scherzerianum rotun-
dispathum III, 75.

— Veitchi III, 70.

— Waroqueanum III, 78.
Anthurus aseroeformis

262.

— australiensis 262.
Anthyllis 504. — II, 100.

— N. A. II, 440, 441.

— affinis Brut. II, 441.

— barba-Jovis L. III. 432.

— Dillenii Chevallier II,
440.

— — var. variegata Evers
II, 441.

— hispida Boiss. et Reut.
II, 440.

— pseudovulneraria X
dinarica II, 441.

— pulchella Lindb- II,
440.

— rubriflora Ser- II, 441.

— Spruneri Stribrny II,
440.

— vulgaris Koch II, 441.

— Vulneraria L. II, 601:

— III, 242, 433.
var. hispida Boiss.

II, 440.

Anthyllis Vulneraria var.
illyrica Beck II, 440.

— — var. Schiewereckii
Ser. II, 441.

var. vulgaris Boiss.

II, 441.
Antiaris 457.

— toxicaria III, 683.
Anticharis N. A. II, 520.
Antidesma N. A. II, 412.

— diandrum Roth II, 851.

— venosum II, 233.
Antirrhineae III, 50.
Antirhinum N. A. II, 520.

— bellidifolium II, 526.

— lanigerum Brot. II,
521.

— lusitanicum Brot. II,
522.

— majus L. III, 321. 356.

— polygalaefolium Brot.
II, 522.

— spurium Brot. II, 521.

— virgatulum Brot. II,
522.

Antistropbe A. DC III,

258.
Antitaxis III, 252, 253.
Antithamnion Plumula

333.
Antitrichia Breidleriana

Schffn* 53, 71.
Antrodia 124.
Antrophyum costatum v.

Aid. v. Ros.* II, 781,

807, 809.

— ovatum v. Aid. v. Ros*
II, 781, 807, 809.

— plantagineum Klf. II,
784.

-mr.angulatumLwerss.

II, 784.

— spathulatum v. Aid. v.
Ros.* II, 781, 809.

— superficiale Christ* II,
778, 809.

Anubias II, 241.
Aonidia lauri (Bouclie') II,

614.
Apera spica-venti 650.

Aphanes — Araucaria.

759

Aphanes III, 296. — N. A.

II, 488.

— alata Steud. II, 503.

— arvensis var. occiden-
talis Piper II, 488.

— orbiculata Pers. II, 496.

— pinnata Pers. II, 503.
Aphanomyces laevis 205.
Aphanostylis II, 331.
Aphelandra N. A. II, 324.
Aphelandreae III, 135.
Aphelenchus II, 619.

— olesistus II, 804.

— Ormerodis II, 804.
Aphidae Pass. II, 616.
Aphis 647. —II, 617,618,

626.

— Anthrisci Kalt. II, 615.

— cardui L. II, 617.

— Gossypii II, 910.

— Sorghi II, 858.

— Sympbyti Schrk. II,
617.

Aphlebia dissoluta 607.
Apbloia theaeformis III,

495, 196.
Aphrorhaphidophora II,

121, 242.
Aphyllorchis N. A. II, 308.
Apeiba II, 190.
Apiastrum patens Coult.

et Rose II, 539.
Apicra Wühl II, 119, 553.

III, 102. N. A. II,
304.

— pseudorigida Haw. II,
306.

— rigida Willd. II, 306.
Apinagia pusilla Tul. III,

274.
Apiocystis 361.
Apion minimum Herbst

II, 607.
Apios tuberosa II, 147.
Apiospora luzonensis P.

Henn.* 277.

— yerbae Speg* 277.
Apium II, 650.
Aplozia 43.

— Schiffneri Loitlesb. 65.

Apocynaceae II, 226, 250,
252, 331, 820. — III, 59,
140, 221, 222, 226.

Apocynophyllum 608.

— Amsonia 614.
Apocynum N. A. II, 331.

— cannabinum 493. — III,
142, 668.

Apodanthera N. A. II, 405.
Apodya lactea (Ag.) Cornu

154.
Apodytes dimidiataß.Me^/.

III, 216.
Apoglossum 328.

— violaceum 347.
Aponogeton N. A. II, 281.

— leptostacbyus E- Hey.
III, 75.

Aponogetonaceae II, 240,

281. — III, 75.
Apopetalum Pax N. G. II,

270. — III, 5. — N. A.

II, 488.
Apophyllum anomalum

II, 851.
Aporosa N. A. II, 412.
Aposeris loetida P. 289.
Aposphaeria Heveae P.

Henn. 135, 823.

— pinea Sacc 149.
Apostemidium 122.
Appendicula III, 121, 122.
Appendix laciniataifatwipA.

II, 282.
Aptichus lageniformis C.

Müll. 78.
Aptosimum Bureh. II, 129,

130.
Aquifoliaceae II, 125, 133.

— III, 219, 223.
Aquilaria III, 450.

— malaccensis Lam. 111,
451.

— Moszkowskii Gilg* II,
898, 903.

Aquilegia 501, 504. — II,
42, 100, 711. - 111,224.

— N. A. II, 483.

— vulgaris L. 522, 770.

— Ullepitschn II, 100.

Arabidopsis Heyn. III, 192.

Arabis 504. — II, 155,
168. — III, 190, 191,
192. — N. A. II, 401.

— — sect. Alliariopsis
Busch* III, 190.

— albida II, 251.

— alpina L. II, 214, 556.
- III, 39.

— Billardieri DC II, 155.

— caucasicaWt'Mrf. II, 596.

— cebennensis III, 191,
192.

Christiani Busch 11,
155.

— collina II, 614.

— petraea (L.) Lam. II,
589.

— taraxacifolia II, 214.
Araceae 435, 532. — II,

116, 121, 223, 224, 241,
250, 281, 576. — III, 28,
39, 75.
Arachis II, 100, 561.

— hypogaea 476. — II,
829, 921,925. - III, 42.

P. 137.
Arachnanthe annamensis
III, 118.

— moschifera III, 112.
Arachnophyllum confer-

vaceum 373.
Aragallus N. A. IL 441.
Aragoa III, 322.
Aralia coriacea Vel. 594.

— (Panax) dentifera 594.

— formosa Hr. 594.

— nudicaulis II, 147.

— racemosa II, 147.

— trifolia II, 147.

— Veitchii II, 571. — III,
145.

Araliaceae II, 201, 250r
266, 333. III, 59,

144.

Aralinium exceilens 599.

— Lindgreni 599.

— multiradiatum 599.
Araucaria 453, 566. — III,

25. — N. A. II. 535.

760

Araucaria ßidwellii— Arisarum.

Araucaria Bidwellii Hook.
547, 593, 685. — II, 901.

— bladenensis Berry* 547,
548.

— excelsa 559. - - II, 209.

— III, 61.
imponens Dus.' 559.

— Nathorsti Dtis. 572.
Araucarineae 598.
Araucariocaulon Ligmer

N. G. 585.
- breveradiatum Ligmer*
585.

Araucariophloios brevera-
diatum 585.

Araucariopitys Jeffrey N.
G. 578.

Araucarioxylon aegyptia-
cum Unger 585.

— breveradiatum Lignier*
585.

— Doeringii Conw. 572.

— Tranchnnti Lignier* 585
Arancarites cutchtnsis

591.

— Jeffrey i Berry* 548.

— Zeilleri Berry* 547.
Arbutus III, 3.

— Unedo L. II, 149, 150.

- III, 618. — P. 292.
Arceuthobium II, 179, 588.

— juniperorum Reyn. III,
246.

— Oxycedri II, 105.

— pusülum II, 172, 173.
Archaeolithothamnion zo-

natosporum 350.
Archaeopteris 613. — II,

762.
Archemora rigida var. am-

bigua Wood II, 538.
Archerina 361.

— Boltoni 361.
Archidium 39.
Archilejeunea incrassata

Steph* 82.

— viridissiraa (Lindenb.)
Evans. 51.

Arcbytea III, 334, 335.
ArctophyllumN. A. II, 503.

Arctopodium Unger 552.
Arctostaphylos II, 592,
594.

— alpina L. 515, 516. —
II, 592, 593, 594, 595.

— III, 203.

— Manzanita Paruy III.
49, 201

— Uva-ursi Spr. 515, 516,
577. — II, 592, 593, 594.

— III, 39, 203, 536, 671.

— P. 145, 302.
Arctotis II, 575.

— calendulacea II, 575.

— stoechadifolia II, 575.
Arcyria denudata (L.)

SMd. 125.

— incarnata Pers. 125, 143.
Ardisia Sw. III. 59, 257.

N. A. II, 465.

— javanica III, 257.

— macrocalyx III, 257.

— Sieboldi Miq. II, 166.

— III, 256.

— tenuiramis III, 257.
Ardisiandra sibthorpioi-

des Hook. III, 282.
Areca II, 241. — III, 555.

— Catechu II, 212.

— rubra III, 130.

— Weudlandiana III, 130.
Arenaria 454, 504. — II,

255. — N. A. II, 354.

— acicularis II, 153.

— austriaca Jacq. II, 356.

— capillacea All. II. 356.

— Gerardi Willd. II, 356.

— liniflora Jacq. II, 356.

— liniflora L. II, 356.

— rubra III, 575.

— sedoides Schultz II,
599.

— serpyllifolia L. III, 9.

— setacea Thuill. II, 355.

— striata Vill. II. 356.
Arenga saccharifera II,

876.
Arethusa glutinosa Blanco

II, 313.
Argemone N. A. II, 473.

Argemone grandiflora II,
193.

— mexicana L. II, 254,
842, 890. — III, 270.

— platyceras P. 235.

— pleiacantha Greene II,
183, 269.

Argentina III, 296. N.

A. II, 488.

— anserina var. grandis
Rydb. II, 488.

Argitharunia III, 58.
Argophylleae III, 221.
Argophyllum Forst- II,

208. — III, 219, 221,

320.

— cryptophlebum III, 320.

— ellipticum III, 320.

— Grunowii A. Zal/Ibr.
III, 320.

— latifolium Vieill. III,
320.

— laxum Schltr. III, 316,
320.

— Lejourdani F. v. Mucll.
III, 316, 320.

— montanum Schltr. III,
320.

— nitidum Forst. III, 320.

— nullumense Bdk. III,
320.

— Schlecbterianum Bon-
et Petitm. III, 316, 320.

Argostemma N. A. II, 504.
Argyreia N. A. II, 394.
Argyrolobium III, 238.

— Andrewsianum II, 559.
Argythamnia \. A. II, 412.
Argyrothamnia III. 208.

N. A. II, 412.
Aria Decaisneana LavalL
II, 499.

— majestica Lavall. II,
499.

Ariopsis III, 75.
Arisaeroa 531, 532. — II,
242. — III, 75.

— triphyllum 531. - II,
981. — III, 77.

Arisarum III, 21.

Arisarum simorrhinuui — Artocarpus.

761

Arisarum simorrhinum

357. - - P. SL'D.

— vulgare 643. - III, 20.

- P. 829.
Aristea II, 243.
Aristida II, 839. — P. 321.

— N. A. II, 293.

— barbicollis Trin. III,
86.

— bipartita Trin. et Bwpr.
III, 86.

— ciliata II, 836, 839.

— congesta Trin. et Rupr.
III, 86.

— dichotoma P. 244, 316.

— plumosa II, 231.

— — subsp. socotrana
Vierh. II, 293.

•— pungens Desf. II, 102.

— purpurascens P. 244,
316.

— vestita Thmiby. III. 86.
Aristogeitonia Prain N. G.

II, 412.
Aristolochia 541. — II,
582. — P. 131. - - N. A.
LI, 335.

— bracteata Retz III, 145.

— Clematitis L 541. —

II, 561, 562.

— (Gymnolobus) consi-
milis II, 198.

— cortinata Reinecke 457.

— (Gymnolobus) daemo-
nioxia II, 198.

— densivenia II, 846.

— pliocenica Kink." 561.

— Serpentaria L. 438, 474.

— III, 145.

— Nipbo L'Eer. 495, 541.

- II, 563. — IH, 145.
Aristolochiaceae II, 335.

— III, 145, 224, 221 i.
Aristotelia Maqui L'He'rit.

III, 542.

— spiralis Lour. II, 318.
Armeria 631. — III, 82.

- N. A. II. 477.

— anearensis Merino II,
477.

Armeria elongata (Hoffm.)
Koch II, 589.

— vulgaris P. 306.

— — var. sibirica Rosen-
vinge II, 477.

Armillaria albolanaripes
Atk* 277.

— eurhiza Berk. 258.

— mellea Vahl 105, 108,
110. 115, 213, 257, 785,
815.

Arnica II, 42.— N. A. II,
360.

— laevigata II, 145.

— latifolia II. 143.

— unalaschcensis Less.III,
378.

Aroideae II, 270.

Aronia atropurpurea Brit-
ton II, 499.

Arrabidaea III, 153. — N.
A. II, 344.

Arrhenatherum III, 388.

— N. A. II, 293.

— elatius M. K. II, 41.
Artabotrys 494. — N. A.

II, 329.

— odoratissima R. Br. II,
933.

Artemisia 516, 535. — II,
613. - \. A. II, 360.

— Absinthium L. II, 137,
712. — III, 39, 489, 616.

— annua L. II, 625.

— canadensis P. 312.

— caudata Michx. III,
609.

— (Jina III, 633.

— coerulescens III, 21.

— dracunciüoides P. 312.

— Dracunculus P. 253,
312.

— frigida Willd. III, 608.

— P. 312.

— kansana P. 312.

— lactiflora III, 57.

— Ludoviciana Nutt. III,
608.

— maritima 534.

— pontica III, Olli.

Artemisia salina Willd. II,

360. — III, 183.
subsp. patens Neilr.

III, 183. .

— — subsp. monogyna
(W. et K.) III, 184.

— spiciformis II, 184.

— Stelleriana Bess. III,
173.

— vulgaris L. II, 137, 576,
625. — III, 489.

Arthanthe P. 281.
Arthon ia 15.

— astroidea rar. parallela
Harm. 11.

— medusula Nyl 24.

— tenellula Nyl. 24.
Arthopyrenia 15.

— analepta Arn. 22.

— cinereopruinosa Schaer.
16.

— fraxini Mass. 16.

— punctiformis 22.
Arthothelium laricinum

Behm* 119, 277.
Arthraxon X. A. II, 293.

— ciliaris P. 319.
Arthrobotryum Ingae P.

Henn* 277.
Arthrocormus 51.
Arthrodesmus fusiformis

West* 381.
Arthrophyllum N. A. II,

333.
Arthropteris obliterata IR.

Br) J. Sm. II. 794.

— tenella II, 766.
Arthrorhaphis 10, 11,

242.

— flavovirescens Th. Fr.
10, 11, 242.

Arthrospira curta Lemm*
330, 381

— Jenneri 336.
Arthrosporium Saee. 269.
Arthrostvlis aphjdla IIlf

81.
Artocarpaceae II, 820.
Artocarpidium 560.
Artocarpus \. A. II, 463.

762

Artocarpus incisa — Aspergillaceae.

Artocarpus incisa L. 457.

— II, 206, 870, 899. —
III, 42.

— integrifolia II, 821,870,
900. — III, 42.

— nobilis II, 870.

— nueifera II, 870.
Arum hygrophilum II,

128.

— maculatum L. 357. —
II, 580. — III, 472, 536.

— P. 829.

Aruncus 478, 479. — III,
296. — N. A. II, 488.

— americanus Raf. II,
488.

— silvestris var. america-
nus Max. II, 488.

Arundinaria II, 293. — III,
91.

— alpina K. Schum. III,
86.

— auricoma III, 91.

— falcata III, 91.

— Falconeri III, 91.

— gracilis III, 91.

— Hookeriana III, 91.

— intermedia III, 91.

— japonica III, 91. F.
283.

— khasiana III, 91.

— macrospenna III, 91.

— marmorea III, 91.

— Xarihira Mak. P. 134,
250, 301, 8 IS.

— Simoni III, 91.

— variabilis Mak. P. 250.

III, 91.
Arundinella II, 211.
Arundo Donax P. 318.

— groenlandica Heer 588.
Asarum II, 161. —III, 5.

- N. A. II, 335.

— Blumei III, 419.

— canadense L. III, 630.

— europaeum L. P. 239.
Ascaris II, 958.
Aschersonia alej'rodes

Webber 142, 199, 200.

— II, 866.

Aschersonia flavo-citrina
199, 200. — III, 848.

— tephrosiicola P. Henn*
277.

Aschersoniana Brand II,
478.

— lutea D. Don II, 478.
Ascobolaceae 123.
Ascobolus 151.

— furfuraceus (Vers.) 243.
— II, 609.

Ascochyta 209.

— Aesculi Kab. et Bub*
118, 145. 278.

— Alkekengi Mass- 104.

— Atropae Bres- 104.

— carinthiaca Jaap* 119,
278.

— Chrysanthemi Stevens
141, 219.

— clematidina Timm. 141.

— Oookei Mass- 108.

— Cynarae Maffei* 103.
278.

— FerdinandiJ3M&. etMalk*
152, 278.

— grandispora Kab. et
Bub* 118, 145, 278.

— hortorum (Speg.) Smith
104.

— Lappae Kab. et Bub*
118, 145, 278.

— Lycopersici Brun. 104,
105.

— pallida Kab- et Bub*
118, 145, 278.

— pedemontana Ferr.
104»

— physalicola Oud- 105.

— Pisi 156.

— Plumeriae P. Henn*
278.

— Podagrariae Bres* 118,
145, 278.

— populicola Kab. et Bub*
118, 145, 278.

— Pruni Kab. et Bub.*
118, 278.

— Quercus Ilicis Güssow*
267, 278, 848.

Ascochyta Scrophulariae
Kab. et Bub.* 118,
278.

— Semeies Sacc* 278.

— socia Passer. 104.

— Solanicola Oud- 104.

— Spiraeae Kab. et Bub.*
118, 145, 278.

— Symphoriae Kab. et
Bub* 118, 145, 278.

— syringicola Kab. et
Bub* 118, 145, 278.

Ascocorticium anomalum
(Ell. et Harkn.) Schroet.
144.

Ascolepis capensis III, 80.

— elata III, 80.

— eriocauloides III, 80.
Ascomyceten 99, 163, 166,

167, 170, 185, 235, 815.
Ascophanus testaceus

Phill. 150.
Ascophyllum IT, 270.
Ascopolyporus polychrous

A. Moll. 146.

— Puttemansii P. Henn*
278.

Asclepiadaceae II, 226,
335, 576. - III, 59, 145,
226, 547.

Asclepias N. A. II, 336.

— Cornuti II, 614.

— semilunata II, 914.

— syriaca P. 207, 292,
315.

Aseroe rubra Labill- 135,
261.

— — var- Junghuhnii
Schlecht. 261.

Asparagopsis 328.

— Sanfordiana 347.
Asparagus 468. — II. 242.

— III, 5, 852.

— drepanophyllus II, 237.

— officinalis L. II, 80,
625.

— plumosus 687.

— Sprengen II, 759. —
III, 105.

Aspergillaceae 270.

Aspergillus — Aspleniopsis.

763

Aspergillus 160, 166, 168,
178. 200. — III, 609,
610.

— effusus Tirab* 851.

— Fischeri Wehmer 168.

— i'lavus Link 145.

— flavus Wilhelm 167.

— furnigatoides 199.

— fumigatus Pers. 103,
201, 853.

— glaucus Lk. 156, 270,
851.

— herbariorum 168, 170.

— Micheli 690.

— nidulans rar. Nicollei
Nicollt et Pinoy* 200,
278.

— niger 103, 154, 155, 171,
174. 176, 182, 183, 194.
690. - 11,692,696,711,
729. — III. 486. 609,
610, 636, 637, 638.

— ochraceus Willi. 103,
851.

— — var. microspora
Tirab* 851.

— Oryzae III, 617.
Asperula N. A. II, 504.
Asphodelus II, 1 19. — III,

4, 108. — N. A. II. 304.

— fistulosus II. 846. —
III, 108.

— madeirensis Simon III,
101. 108.

— terjuifolius Cav. II, 852.
— III, 108.

A>pbondylia 158. — II,
1517.

— autumnalis Beutenm*
II, 605.

— Coronillae 158.

— Lupini Silvestri* II,
623.

— Mayeri 158.

— patens Beutenm* II,
600.

— Salsolae Rübs. II, 620.

— Scrophulariae 158.

— tubicola 158.

— Verbasci 158.

Aspicarpa II, 585.

— hirtella II, 585.

— longipes II, 585.
Aspicilia 15.
Aspidieae II, 766.
Aspidiotus britannicus

Newst. II, 614.
Aspidistra 770. — II, 576.
— III, 27.

— elatior Bl. II, 565. —
II, 105.

— variegata 770.
Aspidistrinae III, 103.
Aspidium Siv. II, 652.

— - aculeatum Sw. II, 652,
771, 807.

— albopunctatum Bory
II, 766.

— ascendens Hedw. II,
766.

— Boottii Tuckerm- II,
786.

— capense II, 766.

— cristatum Sw. II, 738,
739, 771, 807.

— cucullatum Bl. II, 765.

— dalmaticum 564.

— davallioides Luerss. II,
784, 807.

— dilatatum III, 464.

— dryopteris II, 803. —
P. 268.

— elongatum II, 737.

— erectum Bory rar. plu-
mosa Rosenst* II, 792.

— Escalerense Christ* II,
791.

— erythrosoruni II, 797.

— falcatum II, 736, 798,
799, 807.

— Filix-mas Sw. 598. —
II, 652, 738, 739, 755,
775, 797, 803, 804. — P.
268.

— filix mas paleaceum
Moore II, 771.

— Goldieanum Hook. II,
786.

var. celsnm (Palmer)

II, 786.

Aspidium keterosorum
Bedd. II, 782.

— hispidulum Decne II,
784, 807.

— laserpitiifolium II, 797.

— latifolium J. Sm. II,
784, 807.

— lobatum Sw. II, 807. —
III, 464.

— lobatum X aculeatum
II, 771, 807.

— Lonchitis II, 738.
macrophjdlum Sw. II,

790.

— martinicense Spreng. II,
790.

— montanum III, 464.

— oligophyllum Rosenst*

II, 782, 809.

— Oreopteris II, 738. —

III, 464.

— pachyphyllum Kze. II,
784, 807.

— phegopteris II, 803. —
P. 268.

— psammivorum C. Chr.
II, 790.

— Purdiaei Jenm. III, 790.

— rigidum Siv. II, 760.

— singaporeanum Wall.
II, 782.

- spinulosum Sw- II, 652,
738, 754,771,807.-111,
464.

— spinulosum X crista-
tum II, 771, 807.

— (Sagenia) subcaudatum
v. Aid- v. Ros* II, 781,
809.

— (Tectaria) ternatense
v. Aid. v- Ros* II, 781,
809.

— Thelypteris Siv. II, 738,
739.

Aspidopterys III, 217. —

N. A. II, 455.
Aspidosperma III, 59, 142.

— N. A. II, 331.
Asplenieae II, 766.
Aspleniopsis II. 766.

764

Asplenium — Asplenium (Loxoscaphe) novo-guineense.

Asplenium II, 738, 780,
789, 792. - - III, 324.

— abyssinicum Fee II,
794.

— Adiantum nigrum L.
II, 738, 739, 760.

— adnatum Copel* II, 777,
809.

■ — anguinum Christ* II,
778, 809.

— anisophyllum Kze. II,
790.

— annamense Christ* II,
778, 809.

— anogrammoides Christ*
II, 776, 809.

— antarcticum Dus* 559.

— argutulum Heer 582.

auriculatum (Thbg)
Kuhn II, 794.

— auritum Sw. var. da-
vallioides Rosenst. II,
792.

— australasicum Hook. II,
7 HO.

— austrobrasilieose(C7/im^)
Maxon II, 789.

— (Neottopteris) batuense
<;. Aid. v. Ros* II, 781,
809.

— Belangen Kze. II. 737,
784, 800, 807.

— — var. acuminata
Rosenst* U, 784.

— biforme II, 798, 801.

— bireme C. H. Wright*
II, 777, 809.

— bisectuni Sw- II, 792.

— brasiliense Raddi II,
792.

— l.ulbit'erum II, 798.

— Oarruthersii ßak. II,
784.

— caudatum Forst. II,
794.

— chloropb3dlum Bak. U,
777.

— cladolepton Fe'e II, 792.

var. puraceensis
Hitron* II, 792.

Asplenium colubrinum
Christ II, 778.

— concinuum (Schrad.)
Kuhn II, 794.

— crinicaule Hance II,
777.

— conquisitum Underw. et
Maxon II, 790.

— daghestanicum Christ
II, 775, 776, 807.

— decussatum II, 957.

— dimidiatum Sw- II, 794.

— diversifolium II, 737.

— dolosum Müde II, 773.

— ducis Aprutii Pirotta*
II, 796, 809.

— ebenoides II, 788.

— ebeneum Ait. II, 786,
788.

— emarginatum Beauv. II,
784.

— ensiforme II, 778.

— «rectum Borg II, 784.

— falcatum II, 798.

— feejense II, 783.

— Ferrissi Clute* II, 788,
807, 809.

— filipes Copel* II, 779,
809.

— Fiuckii Bak. II, 789.

— flabellulatum Kze. II,
792.

— — var. tripinnata
Hieron:' II, 792, 807.

— formosum Mßd. II, 794.

— franconis Liebm. II,
790.

— furcatum II, 797.

— Gerassimowii Krass*
582.

— Ghiesbreghtii Fourn.
II, 789.

— glochidiatum Racib. II,
781.

— Haenkeanum (Presl)
Hieron. II, 792.

— — var. angustifolia
Hieron.* 792.

— — var. minor Hieron.*
II, 792.

Asplenium Hagenii v. Aid,
v. Ros* II, 781, 809.

— Hallii Hook. II, 792.

— — var- Stüheliana
Hieron* II, 792.

Haussknechtü (xorZe< et
Reut. II, 776.

— heterocarpum II, 766.

— integerrimum Spreng.
II, 789, 790, 807.

— Issiacense 564.

— javanicum II, 766.

— Kapplerianum Kze. II,
789.

— Kunzeanum Klotzsch
II, 792.

var. crenu lata fixerem.*

II, 792.

— Lademannianum
Rosenst* II, 796, 809.

— lanceolatum Hvds. II,
771, 807.

— Laurentii Bornm. II,
794.

— — var. denticulatum
II, 807.

— Linkii Kuhn II, 794.

— longicauda Hook. II,
794.

— loxoscaphoides Bak. II,
794.

— lucidum II, 652, 653.

— lunulatum Sw- II, 792.

— — var. arguto-dentata
Hieron.* II, 792.

— macrophyllum 564.

— marginatum L. II, 766.

— monanthemum II, 797.

— Murbeckii Dörfl. II,
773.

— neogranatense .Fee II,
789.

— nephrolepiöides Christ*
II, 778. 809.

— Nidus II, 759, 798, 807.

— nitidum Sic II, 796.

— normale Don II, 778.

— (Loxoscaphe) novo-gui-
neense Rosenst.* II, 783,
809.

Asplenium ohtusifoliuui — Asterionella.

765

Asplenium obtusifolinm
L. II, 789.

— oligophyllum Kaidf. II,
789.

— Petrarchae DC II, 773.

— platyneuron (L-) Oake,
II. 786.

— praegracile Ro.senst.* II,
796, 809.

— praemorsum Sw. II, 794,
796.

— proliferum Sw. II, 789.

— protensum Sehrad. II,
794.

— pseudolanceolatum .Fo-
m?»* II, 775, 807, 809.

— pulchellum ßadrf?' II,
794.

— radicans L. II. 790.

— radicans Sw. II, 792.

— — war. argutidentata
Hieron* II, 792.

var. partita (Klotzsch)

Hieron.* IL 792.

— rectangulare Jlfaa:on*II,

789, 809.

— resectum ./. S'm. II, 766,
794.

— rhizophorum L. II, 790.

— rhizophyllum L. II, 789,
790.

— rutaefoliumfjgen/J Kze.
II, 794. 797, 807.

— ruta-muraria L. IL 738,
755, 773. 776, 786.

— salicifolium L. II, 789,

790, 807.

— sanguinolentumÜLze. II,
790.

— sarcodesMaxon* 11,790,
807, 809.

— Schoggersii v- Aid. v.
Ros* II, 781, 809.

— septentrionale Sw. II,
738, 772, 774.

— septentrionale X ruta
muraria II, 773.

— serpentini Presl II, 760.

— serra 564.

— serratum L. II, 792.

Asplenium sessilifolium
Desv. IL 807.

— Shuttleworthianum
Kze. n, 783.

— Stübelianum Hieron*
II, 792, 807. 809.

— subemarginatum
Rosenst* II, 784, 809.

— tenellum Hope II, 778.

— theciferum (H. B. K.)
Mett. II, 794.

— Trichomanes L. II, 170,
213, 738. 739, 772.

— trichomanes X adian-
tum nigrum II, 773.

— trichomanes X ruta
muraria II, 787, 807.

— unilaterale II, 779.

— variabile Hook. II, 794.

— viride IL 738.

— viviparum II, 759, 798,
800, 807.

— Volke nsii Hieron. II,
794.

— Werneri Rosenst* II,
788. 809.

— Wichurii P. 294.

— WoronowiCAri^II,775,
776. 807.

— Wrightii Eaton II,
777.

Astelia 519, 520.

— montana Seem. II, 101,
206.

— Solaudri II, 262.

— trinervia II, 262.
Aster IL 607. — X. A. II,

362.

— abbreviatus III, 176.

— auriculatus II, 162.

— crassulus II, 608.

— cyaneus III, 176.

— diffusus rar. bifrons
Gray II, 302.

— dumosus II, 258, 605.

— Eatoni P. 143.

— ercioides rar. depaupe-
ratus Porti r II, 362.

— — var. parviceps Bur-
gess II, 362.

Aster ercioides var.
pusillus Gray II, 362.

— flaccidus IL 159.

— Fremontii P. 143.

— lateriflorus var. grandis
Porter II. 362.

— microlonchus II, 144.

— molliusculus Wall- II,
557.

— patens II, 605.

— salignus Willd. III, 184.

— trinervius Rorb. III,
379.

— — var. congestus Fr.
Savat. III, 379.

— Tripolium L. II, 611.—
III, 35. P. 152, 312.

Asteraceae III, 175.
Asterella ßalansae (Speg.)
. var. macrocarpa Speg*
278.

— Puttemansii P. Henn*
278.

— valida Speg* 278.
Asteridium paulistanum

Speg* 278.
Asterina 175. — P. 287,
288.

— Chiysophylli P. Henn*
278.

— Coccolobae Ferd. et
Wge* 279.

— consociata Wint. 146.

— Derridis P. Henn* 279.

— dispar Speg, var. para-
physata Speg* 279.

— mandaquiensisP.iferm.*
279.

— mate Speg.* 279.

— megalosperma Speg*
279.

— Phoradendri p. Henn.*
279.

— serrensis P. Henn* 279.

— tenuissima Petch 135.

— typhospora Maire* 279.

— üsterii Maire* 279.

— virescens Speg* 279.
Asterionella II, 633, 635,

636, 637, 640.

766

Asterionella formosa— Athyrium nigripes.

Asterionella, formosa Hass.
II, 630, 637.

— gracillima Reib. II,
630, 633, 634, 636, 637,
640.

— japonica Cleve II, 634.
Asteriscium III, 341. —

N. A. II, 535.
Asteriscus graveolens II,

231.
Asterocalamites scrobi-

culatus 611, 626. 637.
Asterochlaena Cda. 550.
Asterococcus Scher ffel N. G.

360.

— suiperbus Scher/fei* 360,
382.

Asterolecanium II, 609.

— algeriense (Newst) Cok.
II, 614.

— arabidis (Lichtenst) Cok.
II, 614.

— Hederae (XicMJ Cok. II,
614.

— Thesit (Dougl) Cok. II,
614.

— variolosum Destef- II,
614.

Asteroma Antholyzae
Sacc* 278.

— Bupleuri Sacc. ei Roum.
149.

— Padi DC 237, 846.

— Spiraeae Kab. et Bub*
117, 145, 278.

Asteromoea indica El- III,
379.

— — var. pinnatifida
Maxim. III, 379.

Asteronia Lauraceae P.

Henn.* 279.
Asteropeia III, 218. 219.
Asterophorum Sprague N.

G. N. A. II, 533.
Asterophyllites axillaris

Schuster* 618.

— longifolius 574.
Asterostomella 259.

— pelladensis P. Henn.*
279.

Asterostroma cellare P.

Renn.* 112, 279.
Astilbe III, 57, 319. —

N. A. II, 518.

— compacta III, 319

— japonica X chinensis
III, 319.

Astragalus 496, 504. — IT,
159. — III, 232, 234,
238. — N. A. II, 441, 442.

— alpinus P. 301.

— brevidentatus II, 265.

— campestrisi^uü.II, 448.

— conjunctus S. Wats. II,
447.

— convallarius Greene II,
448.

— decuinbens (Nutt.) A.
Gray II, 448.

— elegans Sheldon II, 441.

— falcatus L. III, 432.

— Grum-Grschimailoi
Palib. III, 231.

— hamosus L. 595.

— Hartwegi Benth. III, 56.

— kentrophyta A.Gray II,
448.

— lotoides II, 40.

— microcystis A. Gray II,
447.

— miser Dougl. II, 447.

— oroboides var. ameri-
canus Gray II, 441.

— Poterium Vahllll, 231.

— Raswendi P. 312.

— remotijugus P. 321.

— serotinus A. Gray II,
448.

— Utahensis P. 143.

— viciaeioliusi?ecÄ:II,442.

— viridis (Nutt.) Sheldon

II, 448.

Astrantia major L- III,

342, 395, 408.
Astrebla elymoides II, 839.

— triticoides II, 839. —

III, 95.

Astrocarya phyllanthoides

II, 191.
Astrocaryum P. 288.

Astrocaryum rostratum P.
298, 309.

— Tucuma Mart. II, 837.
Astrodontium Treleasii

Card. var. latifolium
Card* 55.
Astronia confertiflora A.
Gray 457.

— samoensis S. Moore
457.

Astrophytum myriostigma

III, 29.
Astrothelium conigerum

A. Zahlbr* 24.
Ataenidia III, 134.
Atalayahemiglauca 11,851 .
Athamantha 504.
Äthan asia N. A. II, 362.
Athyrium II, 716, 759, 767,

777, 780.

— alpestre II, 733.

— benguetense Christ II,
780.

— Bolsteri Copel II, 780.

— brevipinnulumC'opei.*II,
780, 810.

— Copelandi Christ II,
780.

— demissum Christ* II,
776, 810.

— Elmeri Copel" II, 780,
810.

— Fauriei Christ II, 780.

— Filix-femina Roth II,
738, 739, 747, 748, 776,

778, 804. — III, 464.

— flaccidum Christ* II,
776, 810.

— geophilum Copel* II,
780, 810.

— halconense Christ* 780,
810.

— japonicum (Thbg.) Copel.
II, 780.

— Mackinnoni Hope II,
778.

— (Diplazium) Matthewi
Copel* II, 777, 810.

— nigripes (Bl.) Moore II,
778, 780.

Athyrium nigripes var. mearnsianum— Azolla nilotica.

767

Athyrium nigripes var.
mearnsianum Copel* II,
780.

— (Dipl) nudicaule Copel."
II, 777, 810.

— opacum (Don) Copel. II,
780.

— platyphyllum Copel.* II,
780, 810.

— pusillum (Bl.) v. A.
v. R. II, 782, 807.

— rupicola Rope II, 778.

— stramineum Copel* II,
780, 810.

Atractiella Sacc. 269.
Atractina v. Höhn. 268.
Atractium Link 269.
Atractocarpus Schür, et E-

Krause N. G. N. A. II,

504.
Atractylis gummifera L.

II, 83, 951. — III, 417,

418.
Atragene 504.
Atriplex N. A. II, 359.

— Babingtonii Woods III,
171.

— calotheca Fries III,
171.

— farinosum Dum. III,
171.

— halimoides II, 838.

— halimus L. III, 171.

— hastatum L. III, 171.

— hortensis L. 740. —
1U, 171.

— litorale L. III, 21, 171.

— nitens Schkuhr III, 171.

— oblongif olium W K. III,
171.

— patulum L. II, 261, 615.
— III, 171.

— roseum L. III, 171.

— nummularius II, 829.

— Sokotranum Vierhapper
II, 359.

— tataricum L- III, 171.
Atropis II, 293. — III, 87,

ss, 91.

— convoluta II, 159.

Atropis distans X suecica

II. 293. — III, 91.

— elata Holmb. III, 91.

— suecica Holmb* III, 91.
Atropa Belladonna L. 481.

— II, 567. — III, 331,
332, 465, 536, 614, 650.

Atta sexdens II, 573.

Attheya II, 633.

— Zachariasi Brun. II,
637.

Atylosia crassa Prain II,

852.
Aucoumea III, 157.
Aucuba III, 221.

— japonica L. II, 957. —

III, 455.
Auerswaldia Derridis P.

Henn* 279.

— Hirtellae P. Henn.* 279.

— Merrillii P. Henn* 279.

— Puttemansiae P. 296.
Augea capensis II, 838.
Aulacocalyx Hook- f. II,

510.
Aulacodiscus Bonapartei
Pant* II, 643.

— miocenicus Forti* II,
642, 643.

Aulacomnium 35.
Aulacopteris 572.
Aulacoxylon Combes N. G.
558.

— sparnacense Combes*
558.

Aulax hieracii (Bouche')Htg.

II, 619.
Auliscus II, 639.

— mediterraneus Per* II,
643.

Aurantiporellus 124.
Aurantiporus 124.
Aureobasidium Vitis 836.
Auriculariaceae 109, 113,

119, 140.
Autobasidiomyceten 165.
Autoicomyces Thaxt. N. G.

279.

— acuminatus Thaxt*
279.

Autoicomyces falciferus
Thaxt* 279.

— ornithocephalus Thaxt-"'
279.

Auxopus II, 245.
Avena 446, 726, 734, 747.
II, 657, 670, 853. —
III, 89, 92, 94. — N. A.

II, 294.

— brevis P. 247.

— elatior II, 837.

— sativa L. 722, 745, 804.

— II, 33, 50, 651, 656,
657, 686, 691, 990. —

III, 89, 96. - - P. 247.

— striata Michx. II, 297.
Averrhoa Carambola II,

821.
Avicennia II, 207. — III,
9. - - N. A. II, 542.

— nitida Jacq. II, 232,
900.

— officinalis L. II, 262,
609, 895.

— tomentosa II, 895, 896.
Avrainvillea 358.

— asarifolia Borg* 358,
382.

— comosa 358.

— Mazei 358.

— nigricans 358.
Axanthes philippiuensia

Cham, et Schltd. II, 459.
Axinaea III, 251. — N. A.

II, 457, 458.
Ayenia II, 190. — III,

58.
Azalea 802. - III, 6, 200.

— P. 111.

— indica III, 57.

— mollis II, 82. — III,
203.

— sinensis Lodd. II, 82.

— III, 203.

— pontica var. sinensis
Lindl. III, 203.

Azolla 591. — II, 786.

— filiculoides Lam. II,
770, 801.

— nilotica Decne II, 795.

768

Azorella— Balanophora alutacea .

Azorella II, 537. III,

341. - - N. A. II, 535.

— subgev. Pteropleura
Wolff* II. 535.

— üockaynei Diels* II, 264.

— III, 338.

— exigua Kirk II, 539.

- Haastii Kirk II, 539.

— Hookeri Drude II, 539.

— hydrocotyleoides Kirk
II, 539.

— microdonta Colenso II,
539.

— Moelleri ße«M. II, 539.

— nitens Peine II, 539.

— pallida Kirk II, 539.

— pusilla ÄiVfc II, 539.

— radians Drvde II, 539.

— Ranunculus d' Urville
II, 539.

— reniformis /tirA II, 539.

— Roughii Ä'trA: II, 539.

— trilobata P. Dvse'n II,
539. - - III, 337.

— trifoliata II, 539.

Babiana III, 570.
ßaccaurea N. A. II, 412.
Baccharis P. 287,288,315.
— N. A. II, 362.

— bogotensis II, 612.

— dracunculifolia P. 290.
Bacidia 15.

— atrosanguinea (Schaer.)
Anzi 24.

— bacillifera('A7^.Mr«.24.

— Beckhausii Körb. 24.

— circumspecta (Nyl.)
Malme 24

— fuscorubella (Hoffm.)
Arn. 24.

— Herrei A. Zahlbr.* 24.

— milliaria 20.

— Naegelii (Hepp.) A.
Zahlbr. 24.

— rosella (Fers.) d'Notrs.
24.

Bacillaria II, 637. 641.
i— paradoxa (Gmel.) Grün.
II, 636, 637.

Bacillariaceae 330. 336, 346,

347, 549, 670.
Bacillariales II, 628.
Bacillus butyricus 370.

— coli-communis 689.

— fluorescensliquefaciens
156.

— maximus buccalis II,
964, 965.

— megatherium 370.

— mesentericus 370.

— Pasteurianus Wino-
gradsky II, 963.

— phytophtborus (Frank)
0. Appel 206.

— prodigiosus 156.

— pyocyaneus 370.

— radicicola 825.

— vSolanacearum 104.

— solanisaprus 208.

— subtilis 370.

— typhi 370, 689.
Bacopa III, 322. — N. A.

II, 520.

— amplexicaulis (Mchx.)
Wettst. III, 322.

Bacteriastrum II, 632, 637.

— delicatulum Cleve II,
632, 637.

— varians Lauder* II, 632,
637, 643.

Bacterien 690, 770. — II,

963, 964.
Bacterium Acaciae II, 935.

— anthracis 736.

— binucleatum II, 965.

— coli 709.

— Malvacearum II, 907.

— metarabinum II, 935.

— prodigiosum 709.

— Savastanoi Smith II,
924.

— solanacearum 218. —
II, 288.

— typhi 708, 709.

— Zopfii 736.
Bactridiopsis Phoradendri

P. Henn* 279.
Bactridium americanum
v. Höhn* 128, 279.

Bactris P. 293, 298. — N. A.
II, 318.

— major P. 286, 294.
Baeckea N. A. II, 465.
Baeomyces II, 12, 15.

— byssoides 10.

— placophyllus Ach. 23.

— roseus fa- hadropus
Harm* 25.

— rufus var. Prosta Harm*
25.

Bagnisia N. A. II, 2S5.

— Hillii Cheesem* II, 264.
Bagnisiella Alibertiae P.

Henn* 279.

— Pruni P. Henn* 279.

— Rübsaameni P. Henn*
279.

Baiera 582, 592, 613, 622,
636.

— angustiloba 582.

— furcata Heer 592.

— longifolia 582, 613.

- spectabilis Natlt- 592.

— Wiesneri Krass- 583.
Baikaea Eminii Taub. II.

898.
Baissea X. A. II, 331.
Balania N. A. II, 339.
Balaoiella v- Tiegh. N. G.

II. 339. — N. A. H, 339,
340.

Balanites II, 231. 233. —

III, 223. N. A. II,
549.

— aegyptiaca (L.) Delile
II, 231, 549, 921. — III,
345.

— angolensis Wehv. II,
549.

Balanobius crus Fbr. II,
607.

— salicivorus Payk. II,
607.

Balanophora 462, 463, 481,
482. — III, 39, 148. —
N. A. II, 340.

— abbreviata Blume II,
339.

— alutacea Jmigh. II, 339.

Balanophora elongata — Bauhinia inaorantha.

769

Balanophora elongata
Blume 483. — II, 339.

— Forbesii Fawcett II, 340.

— globosa Jungk. 483. —
II. 339.

— Eemyi Hemsley 11,340.

— Hildebrandtii Rchb. fil.
II, 340.

— involucrata II, 340.

— — var. Cathcartii J.
Hooker II, 340.

— — var. flava J. Hooker
II, 340.

— — var. gracilis J. Hooker
II. 340.

Bambusa vulgaris III, 91.

— P. 293, 294.
Bambuseae P. 250.
Bambusinum sepultum

Andrä 596.
Bangiales 340.
Banisteria N. A. II, 455.

— parviflora 434.
Banisterioides II, 228.
Baphia III, 59. — N. A.

II, 442.

— nitida II, 899.
Baptisia tinctoria R. Br.

444. — III, 235. — P.
287.

— — var. rubra Hook. fil. Barbacenia II, 243.

II. 340. — aequatorialis Renale

— Lowii J. Hooker II, 339. I III, 133.

— maxima Jungk. II, 339. Barbarea R. Br. III, 192.

— multibrachiata Fawcett, — N. A. II, 401.

II. 340. — stricta Andrz. III, 195.

— ramosa Fawcett II. 340.

— reflexa Beccari II, 340.
Balanophoraceae II. 250,

339. — III, 148, 224.
Balanops III, 225.
Balantium II, 767, 780.

— antarcticum II, 652,
653.

— CopelandiC7m'^II,780.
Baianus (Balanogastris)

kala II, 886.
Balata III, 469.
Ballota nigra 770.
Balsamia 169.
Balsamina hortensisP.308.
Balsaminaceae 11,250,341.

— III, 148, 218.
Balsamocitrus DaweiStapf

II. 898.

Bambusa 702. — II, 156,
165, 820, 853, 920. —

III, 39, 91. 92, 96. —
P. 128, 277, 278, 286,
287, 288, 289, 293, 295,
299, 313, 314. — X. A.

II, 294.

- ramosa P. 250.
— spinosa arundinacea

III, 91.

— vulgaris R. Br. 653. —
II, 598. — III, 195. —
P. 253.

Barbella subapiculata

Broth. et Bar* 52, 71.
Barbeya oleoides II, 894.
Barbula 34, 35, 51, 758.

— laevipila 34.

— muralis 34.

— Nicholsoni 60.

— obtusula Lindb- 70.

— oliviensis Card* 71.

— papulosa 34.

— papillosissima Coppey*
37, 58, 71.

— pycnophylla Card* 71.

— revoluta Schpr- 34, 47.

— ruralis 34.

— subulata 35, 40.

— vinealis 35.
Barclaya II, 156. — 111,

150. - - N. A. II, 4li7.

— Pierreana III, 262.
Barleria N. A. II, 324.

— longibracteata III, 108.
Barlerieae III, 135.
Baronella N. A. II, 511.
Barosma betulina III, 541.

— pulchella III, 541.

Barrington ia racemosa (L.)
Blume III, 231.

— serrata III, 443.

— speciosa Gaertn. II, 206,
220. — III, 168, 443.

— Vriesei T. et B. III,
442.

Barteria N. A. II, 422.
Bartholina pectinata III,

112.
Bartonia N. A. II, 426.

— lanceolata Small II,
426.

Bartramia crispata Schpr.
53.

— Halleriana Hedw. 52.

— leucocolea Card.* 71.
Bartramidula 51.
Bartsia III, 323.
Basanacantha N. A. II, 504.
Basella III, 281.

— alba L. II, 852.
Basellaceae II, 250. —

III, 54, 148, 280.
Basidiobolus 164, 176.

— ranarum 176, 683. —
III, 610.

Basidiomycetes 109, 1 18,
121, 128, 138, 140, 163,
165, 166, 172, 174, 180,
255.

Basilicum II, 138.

Bassia II, 921, 928.

— latifolia Roxb. II, 852.

— Motleyana II, 921.
ßassovia N. A. II, 528.
Batatas cissoides var.

integrifolia Choisy II,
396.

— edulis II, 822.

— villosa Choisy II, 396.
Bathysa N. A. II, 504.
Batis III, ^24.
Batrachium III, 53.
Batrachospermum 336.
Bauera III, 222.
Bauhinia 548. -- III, 226,

234. — N. A. II, 442.

— macrantha Oliv. III,
231.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 17. 1. 12.

49

770

Bauhinia voarylandica — Bertia Puttemansii.

Bauhinia marylandica
Berry* 548.

— racemosa II, 904.

— reticulata II, 232. —
P. 321.

— Vahlii W. et A. II, 224,
225, 852.

— variegata L. III, 852.
Bazzania acinaciformis

Steph.* 82.

— Eechingeri Steph* 82.

— Roccatii Gola* 82.

— serrifolia Steph.* 82.

— tT\Q\ena,t3i(Wahl.)Trevis-
49.

Beaucarnea Purpusi Rose

III, 107.
Beddomea luzoniensis

Vidal II, 461.

— simplicifolia F- Vill. II,
461.

Begonia 439, 649. — II}
191. — III, 39, 57, 59'
149, 412,567. — P. 273,
308. — N. A. II, 341.

— Bruneelii De Wild. III,
149.

— cathayana Hemsl. III,
149.

— Coreil P. 273.

— Credneri P. 273.

— elatior III, 57.

— erecta viridis III, 57.

— Favargeri RechingerlH,
149.

— hybrida gigantea III,
58.

— incomparabilis III, 57.

— metallica P. 273.

— pallida (Lern.) III, 58.

— phyllomanica III, 150.

— romeensis DeWild. III,
149.

— semperflorens P. 273.
tuberosa 649.

Begoniaceae II, 191, 200,
224, 250, 341. — III,
149, 220.

Beilschmiedia pendula
Hemsl. II, 900.

Beilschmiedia tarairi II,
62.

— tawa II, 262.
Belladonna III, 479, 526,

527, 555, 557, 584, 602,

613.
Bellerochea malleus

(Brightiv.) V. H. II, 634.
Bellidiastrum II, 42.
Bellis N. A. II, 362.

— perennis L. II, 152, 589,
957, 405. — III, 35.

Bellucia III, 251. — N. A.

II, 458.
Belmontia grandis Bak.

II, 427.

— Mechowiana Vatke II,
428.

Belonidium intermedium
Rehm* 280.

— pruinosum (Jerd.)Rehm
144.

Beloniella 237.

— Vossii Rehm 236.
Belonium albidoroseum

Rehm 144.
Beloperone N. A. II, 324.
Belzungia Morellet N. G.

590.

— ßorneti Morellet* 381,
590.

Bennettitaceae 587. — III,

55, 220.
Bennettiteae 619. — III,

14.
Bensonites fusiformis

Scott* 620.
Benthamiella N. A. II, 528.

— montana Dus. III, 330.
Berberidaceae II, 221, 342.

— III, 42, 54, 150, 219,
224.
Berberis 733. — II, 266,
598. — III, 152, 426. —
N. A. II, 342.

— acuminata Franch. II,
161. — III, 150.

— angulosa Wall- var.
brevipes Franch. II,
342.

Berberis Aquifolium Pursh
II, 598. — III, 426.

— aristata II, 225.

— brevipes Greene II, 172.

— canadensis Pursh III,
426.

— ceresina Schrad. III,
426.

— fascicularis Sims. III,
426.

— Hookeri II, 558.

— lucida Schrad. III, 426.

— Lycium Royle II, 556.

— Sellowiana C- K. Sehn.
II, 343.

— — var. tetanobotrys
C. K. Sehn. II, 343.

— Thunbergii DC. III,
150.

— — var. papillifera
Franch. II, 343.

— umbellata C. K. Sehn.
II, 225, 342.

— virgata DC. var. Lob-
biana C. K. Sehn. II,
343.

— vulgaris L. II, 140,
615. - III, 426. — P.
288.

— Wallichiana var. lati-
folia Hook. f. et Thotns.

II, 343.

— yunnanensis Franch.

III, 150.
Bergenia 686.

Bergia erecta Guill. II,

580.
Berkheya N. A. II, 362.

— Francisci Bolus III,
173.

— ingrata II, 254.
Berkleya P. 139, 276.
Berlinia P. 288.

— acuminata II, 8!J8.
Bersama II, 898.

— abyssinia Fres. III, 252.
Bertholletia excelsa III,

42.
Bertia Puttemansii
P. Henn* 280.

Bertiera — Blechnum divergens var. pseudopterus.

771

Bertiera N. A. II, 504.
Bertolonia Vanhouttei II,

82.
Beschorneria pubescens

II, 192.

Besleria N. A. IL 429.
Beta II. 662.

— vulgaris L. 809. — II,
3, 11, 14, 16, 17, 21,22,
23, 24, 25, 35, 36, 37,
44, 52, 651, 663, 694.—

III, 649, 650, 652. — P.
205. 208, 220.

Betonica danica Mill. II,
439.

— hirsuta L. II, 439.
Betula 692. — II, 62.

P. 161, 261, 303.

— alba L. 514, 561. —

II. 601. — P. 292.

— — var. vulgaris DC-

III, 152.

— alba X verrucosa II,
344.

— Brongniarti EU. 561.

— carpatica Willd. III,
152.

— corylifolia Rgl. III,
152.

— dryadum Brongn. 561.

— Ermanni var. nipponica
Maxim. III, 152.

— hybrida Wettst. II,
344.

— lenta Mchx. III, 152.

— nana L- 575, 577. —
III, 152.

— nigra L. 547, 620.

— pendula X tomentosa
II, 344.

— pubescens Ehrh. 518,
602, 720.

— pubescens X verrucosa
II, 344.

— Seideliana III, 153.

— tortuosa Ledeb. III,
152.

— verrucosa Ehrh. 576.
— II, 614.

— viridis Chaie III, 152.

Betulaceae 595, 596, 614.

— II, 343. — III, 152,

220, 225.
Betulinium Mac Clintockii

Cram. 609.
Biarum II, 155. — N. A.

II, 281.

— platyspathum III, 75.
Biasolettia tuberosa III,

341.
Biatorella 15.

— resinae (Fr.) Mudd. 20,
143.

Bicosoeca 327, 342.

— Entzii France* 328,
382.

— longipes Zach. II, 636.

— oculata Zach. LI, 636.
Biddulphia II, 632, 637.

— mobiliensis/jBaiüGrtm.
II, 632.

— pelagica Br. Schröder*
II, 641, 643.

— pellucida Castracane II,
641.

— regia M. Schnitze II,
632.

— sinensis Grev. II, 632,
634.

Bidens N. A. LI, 362.

— bipinnata L. III, 56.

— connata III, 175.

— hyperborea Greene III,
175.

— pilosa L- II, 254. — III,
52.

— simplicifolia Wright*

II, 270.

— tripartita L. LT, 263. —

III, 175.
Biebersteinia multifida II,

128.
Bifrenaria II, 582.

— Fürstenbergiana
Schlchtr* III, 121.

Bignonia grandiflora II,
581. — III, 153.

— radicans II, 581. — III,
153.

— staminea harn. II, 345.

Bignoniaceae II, 200, 266,
344. — III, 55, 59, 153,
222.

Bikkia N. A. II, 504.

Bilimbia 15.

Biophytum 509. — III, 23.

— sensitivum L. (DC.)T-ll,
269.

Bischoffia trifoliata Hook*

457.
Biscutella N. A. II, 401.
Bispora media Sacc* 280.
Bivolva v. Tiegh. N.6. N.A.

II, 340.
Bixa Orellana L. LI, 821,

822, 893.
Bixaceae II, 250. — III,

153, 220, 223.
Blakea III, 251. — N. A.

II, 458.
Blasia Mich- 64.

— pusilla L. 64.
Blastenia comorensis A.

Zahlbr* 25.

— leucora,ea,( Ach.)Th.Fries
24.

Blastolidium 230.

— paedophthorum Ch.
Pe'rez. 230.

Blastomyceten 201.
Blastophora Oerstedtii358.
Blastospora Diet. N. 6. 246,
280.

— Smilacis Diet* 280.
Blastus Cavaleriei Levl. II,

457.
Blechnum LT, 792.

— arborescens (Klotzsch
et Karst.) Hieron. II,
792.

var. spinuloso-serru-

lata Hieron.* II, 792.

— Buchtienii Rosenst.* II,
792, 810.

— columbienseiZe'eron.*IL
792, 807, 810.

— divergens (Kze.) Mett.
II, 792.

— — var. pseudopterus
Hieron. * II, 792.

49*

772

Blechnmn guascense — Bombax lukayensis.

Blechnum guascense
Hieron* II, 792, 807, 810.

— Lehmanni Hieron- II,
807.

— loxeose (Kunth)Salomon
II, 792.

— Moritzianum (Klotzseh)
Moore II. 792.

— penna marina II, 262.

— peruvianum.ffimm.*II,
792, 807, 310.

— polypodioides (Sw.)
Hieron. II. 792.

— — var. caudata (Siv.)
Hieron* II, 792.

— robustum (Fee) II, 792.

— rubicundum Hieron.*Il,
792, 807, 810.

— Ryani (Kaulf.) II, 792.

— Schiedeanum (Presl)
Hieron. II, 792.

■ var. spinulosa-serru-

lata Hieron* II, 792.

— Schomburgkii (Klotzsch)
C. Chr. II, 792.

— — var. quamulosa
Hieron* II, 792.

— Spicanth Roth II, 736,
776, 801.

— Stübelii Hieron* II, 792,
807, 810.

— tabulare (Mett.) II, 792.

— Treubii v. Aid. v. Ros.* II,
781, 810.

— valdiviense C- Chr. II,
192.

var. contigu&Hieron*

II, 792.
Bleekrodea II, 951, 952.

— tonkinensis Dub. et
Eberh. II, 829, 951, 952.
— III, 256, 482, 484.

Blennoria Acantholimonis

P. Henn. 145.
Blephariglottis conspicua

Small II, 313.
Blepharis N. A. II, 324.

— edulis II, 231.
Blepharocalyx spiraeoides

Otto Stapf II, 199.

Blepharostoma Cavallii

Gola* 82.
Bletia coccinea III, 120.
Bligbia N. A. II, 516.

— sapida Koen. II, 870,
899.

Blindia II, 267.

— acuta Dicks. 41.

— capillifolia Card* 71.

— consimilis Card* 71.

— inundata Card* 71.

— pseudoiygodipoda
Card* 71.

— Skottsbergii Card* 71.
Blitrydium mate Speg*

280.
Blitum ambrosioides G.
Beck III, 171.

— bonus Henricus Rchb.
III, 171.

— capitatum L. III, 171.

— carinatum C- A. M- III,
171.

— humile Moqu. III, 171.

— rubrum Reich, var. acu-
minatum Koch III, 171.

— — var. crassifolium
Moqu. III. 171.

— virgatum L III. 171.
Blumea III, 542. — N. A.

II, 362.

— balsamifera DC. II,
931, 932. — P. 376.

— laciniata DC III, 542.
Blyttia Gotische 64.

— Lyellii Lindenb. 64.
Blyxa III, 96.

— lancifolia III. 96.
Bocagea laurifolia B. et H.

II, 900.

— polyandra Presl II, 330.

— virgata B. et H. II, 900.
Bocconia II. 194.

— cordata Willd. III, 426.
Bodo compressus hemm.

342.

— ovatus Moroff 342.
Boea N. A. II, 429.
Boehmeria N. A. II, 540.

— cvlindrica II, 606.

Boehmeria nivea Gaud. II,
911.

— platypbylla 526.

— ramiflora Jacq. II, 540.

— speciosa II, 991.

— tenacissima Gaud. 687,
711. — II, 911.

Boerhaa\ia N. A. II, 467.

— plumbaginea Cavanilles
II, 467.

— verticillata II, 232.

— viscosa Lag. et Rodr.lll,
56.

Boerlagiodendron N. A. II,

333, 334.
Boisduvalia III, 266. —

N. A. Tl, 470.
Bojeria N. A. II, 362.
Bolax III, 341.
Bolbitius gloiocyaneus

Atk* 280.
Boldo III, 665.
Boldoa fragrans III, 574.
Boletinei 113.
Boletinus 124.
Boletus 124, 155, 174, 260,

651.

— applanatus Pers- 255.

— brasiliensis Rick 147.

— chrysenteron 263.

— curtipes Massee* 280.

— edulis 185, 650. — III,
636.

— lipsiensis Batsch 255.

— niveus Fr. 125.

— parasiticus Bull. 144.

— speciosus 180.

— VanderbiltianusMwn7Z*
280.

Bolinia 131.

— tubnlina (Alb. et Schiv.)
131.

Bomarea N. A. II, 279.
Bombacaceae II. 124, 190,

200, 250, 345. — III,

154.
Bombax II, 190. — III,

464. — P. 286.

— lukayensis De Willd. et
Dur. III, 154.

Bombax uialabaricum — Bracbyniemum anguste-linibatuni.

773

Bonibax malabaricum DC
H, 213, 224, 850. — III,
544.

Bornbycidendrou N. A. II,
455.

— glabrescens Warb. II,
455.

Bommeria II, 766.
Bonamia A. Rieh. II, 170,
418. — N. A. II, 395.

— cubana A. Rieh. II,
170, 418.

microphylla Urb. II,
418.

— spinosa Vierh. II, 395.
Bonati a Schür, et K. Krause

N. G. N. A. II, 504.
Boninia glabra II, 166.
Bonnaja III, 322. — N- A.

II, 520.
Bonnemaisonia 328.
Boopis patagonica Speg-

III, 161.

Boottia III, 4, 96. — N. A.

II, 301.
Borassus II, 232, 233, 234,

853.

— flabellifer L. II, 232,
241,904— III, 122,130.

Borbonia II, 328.
Borderea II, 268.
Bornetia 682.
Boronia granitica II, 256.

— heterophylla III, 58,
307.

— ledifolia rar. repanda
II, 255.

Borraginaceae II, 196,345.

111, 59, 155, 222.
Borreria N. A. II, 504. —
Boschia N. A. II, 455.

— senegalensis II, 231.
Bosqueia N. A. II, 463.
Bossiaea III, 55.
Bostrichonema alpestre

Ces. 149.
Boswellia N. A. II, 347.
Bothrocline III, 179.
Botbrodendron Kidstoni

622.

Bothrodendron Leslii 623.

— mundurn 619, 632, 635.

— punetatum Lindley et
Hutt. 610.

BothrostrobusOlryi Zeiller

610.
Botrycbioxylon 620.
Botrychium II, 747, 761,

762, 787.

— boreale Milde II, 767.

— daueifolium Wall. II,
784.

— diebronum II, 791.

— dissectum II, 761.

— lanceolatum II, 786.

— lanuginosum Wahl. II,
754, 778.

— — var. indochinense
Christ* II, 754, 778.

— Lunaria L- II, 755, 789,
793.

— rnatricariaefolium II,
761.

— obliqimm II, 761.

— ramosum Aschers. II,
771, 793.

— rutaefolium II, 754.

— simplex Hitchc. II, 773.

— ternatum II, 754.

— virginianum II, 745,
747, 752, 754, 755, 791.

Botryococcus 361.

— Braunii 361.
Botryodiplodia 119, 133.

- II, 883, 923.

— Dilleniae P. Heu». *280.

— Elasticae 135.

— Ribis (Sacc.) Nmki* 280.
Botryoglossum 328.
Botryomarasmius 131.
Botryopteris 580.

— antiqua Kidst. II, 580.
Botryospbaeria 130.
Botryosporium pulcbrurn

Cda. 108.
Botrytis 167, 238, 239, 267,
274, 837, 838, 852, 853.

— cinerea Pers. 103, l.~>4,
156, 159, 167, 217, 267,
837, 853.

Botrytis galantbina (Berk
et Br.) Sacc. 239.

— latebricola Jaap 144,
145, 280.

— narcissicola Klebahn*
239.

— parasitica Cavara 238,
239.

— vulgaris Fr. 215, 853.

— III, 621.
Boucerosia tombuetuensis

II, 231.
Bougainvillea N. A. II,

467.
Boussingaultia III, 281.
Bouteloua N. A. II, 294.

— oligustaehya II, 839.

— racemosa II, 839.

— Triathera Benth. II,
294.

Bovista brunnea 262.

— tomentosa 262.
Bovistella paludosa Lev.

107.
Bowlesia R. et P. III, 341.

— N. A. II, 535, 536.
Bowmanites 618.
Bracbioleje unea babamen-

sis Evans* 82.

— Gottscbei Schffn. 53.

— insularis Evans* 51,
83.

Bracbiomonas submarina

Bohlin 353, 767.
Brachistus Feddei 4Ü8.
Brachycladium ramosum

Bain* 26(J, 280.

— spicatum Bain* 266,
280.

— spieiferum Bain.''' 2tiii,
280.

Brachycladus Stuckerti
Speg. III, 507, 508, 543.

Brachyglottis repanda III,
176.

Brachylobus bispidusDe*t,\
II, 404.

Bracbymenium 51.

— anguste-limbatum
Broth. et Par. 56.

774

Brachymenium aureonitens — Bridelia scleroneuroides.

Brachymenium aureo-
nitens Broth. et Par*
55, 56, 71.

— Cagnii Negri* 71.

— microcarpum Broth*
54, 71.

— rigid um Broth. et Bar.
55.

— submicrocarpum Broth*
54, 71.

— turgidum Broth.* 71.
Brachynema III, 221.
Brachyotum III, 251. —

N. A. II, 458.
Brachyphyllum 578.

— boreale 582.
Brachypodium N. A. II,

294.

— flexum Nees III, 86.

— Kawakamii II, 214.

— silvaticum P. B. II,
214.

Brachysiphon II, 986.
Brachysporium Eragrosti-
dis P. Renn* 280.

— Pini insularis P. Henn*
280.

Brachystelma N. A. II,

336.
Bracbytheciaceae 59.
Brachythecium Br. eur.

59, 68.

— albicans Br. eur. 55.

— atrotheca (Dub.) 54.

— campestre (Bruch) 47.
■ — corascum Hag* 71.

— curtum (Lindb.) 47.

— macrogynum Card.* 71.

— Mildeanum Seh. 55.

— Payotianum 39.

— purum var. canariense
Dixon* 55.

— ßoecatii Negri* 71.

— salicinum Br. eur. 47.

— Skottsbergii Card* 71.

— turgidum 40.
Turqueti Card* 71.

— udum Hag.* 71.
Brachjrtrichia maculans

Crom. 338.

Bragantia macrantha Tal.

III, 145.
Brainea insignis Hook. II,

780.
Brasenia 627.

— pliocenica Kink* 561.

— purpurea 627.
Brassavola Digbyana III,

112.
Brassica 432, 686. — II,
40, 718. — III, 191, 193,
195, 412. - - P. 289.

— campestris L- III, 195,
403.

— integrifolia II, 139.

— juncea (L) Cass. II,
139. — III, 184.

— — subsp. eu-juncea
Thell. III, 184.

— — subsp- integrifolia
'West.) Thell. III, 184.

— — subsp. Urbaniana
(0. F. Schulz) III, 184.

— lanceolata II, 139.

— Napus L. 745. — II,
138. — III, 195.

— nigra Koch III, 536.

— oleracea L. 722, 723,
753. — II, 138, 565. —

111, 193, 195, 380, 403.

— Rapa L. 745. — II,
138. — III, 195, 403,
560.

■ — Sinapis Visiani II,
598.

— sinensis II, 820.

— Urbaniana II, 139.
ßrassocattleya III, 114.
Brasso-Laelia III, 108,

112, 114.

Braya II, 403. — III, 191.
N. A. II, 401.

— supina III, 40.
Bredia Bodinieri Le'vl. II,

457.
Brefeldia maxima (Fr.)

Rost 143.
Bretscbneidera III, 219,

224.
Breutelia 51.

Breutelia aureonitens
Negri* 72.

— Merrillii Broth.* 72.

— Skottsbergii Card* 72.
Brexia madagascariensis

Thouars III, 316.
Broxieae III, 221, 222,

223, 224.
Breyenia stipitata II, 209.
Bridelia II, 131, 417. —

III, 205, 207. — P. 139,

276. — N. A. II, 412,

413.

— abyssinica III, 206.

— angolensis III, 206.

— assamica III, 206.

— Balansae III, 206.

— brideliifolia (Pax) II,
413.

— burmanica III, 206.

— cathartica III, 206.

— cinerascens III, 206.

— coccolobaefoliaIII,206.

— euneata III, 206.

— dasycalyx III, 206.

— ferruginea III, 206.

— Fischeri III, 206.

— gambicola III, 200.

— Griffithii III, 206.

— Hamiltoniana III, 206.

— Kurzii III, 206.

— Lingelsheimii III, 206.

— melanthesioidesll, 132.
- III, 206.

— montana III, 206.

— Moonii III, 206.

— Neogoetzeae III, 206.

— Niedenzui III, 206.

— nigricans III, 206.

— ovata III, 206.

— Paxii III, 206.

— pubescens III, 206.

— pustulata III, 206.

— retusa II, 412. — III,
206.

— Roxburghiana III, 206.

— scandens III, 206.

— scleroneura II, 206.

— scleroneuroides III,
206.

Brldelia sikkimensis— Bryum Mildeanum.

775

Bridelia sikkimensis III,
206.

— speciosa III, 206.

— squamosa III, 206.

— stenooarpa III, 206.

— stipularis III, 206.

— subnuda III, 206.

— taitensis III, 206.

— tenuifolia III, 206.

— tomentosa III, 206.

— zanzibarensis III, 206.

— Zenkeri III, 206.
Brillantaisia N. A. II, 324.
Briquetia II, 190.

Briza minor L. III, 86.
Brochoneura N. A. II, 464.

— Dardaini Heckel* II,
921.

— usambarensis II, 896.

— Vouri Warb. 541. — II,
921.

Bromelia II, 915. — III,
78. — N. A. II, 284.

— Pinguin II, 920.

— tricolor III, 4(3.
Bromeliaceae 431. — II,

201, 284, 917. — IH, 78,
956.
BromheadiaFinlaysoniana
Rchb. f. in, 120.

— palustris II, 255.
Bromus II, 41. — III, 5,

389. — N. A. II, 264.

— fascicularis II, 140.

— inermis II, 839.

— leptocladus Nees III,
86.

— maximus Des f. III. 86.

— natalensis Stapf III,
86.

— secalinus P. 244, 245,
318.

— sterilis II, 261.

— unioloides II, 837, 839.

— unioloides H. B. K. III,
86.

Brongniartia III, 234. —
N. A. II, 442.

Brosimum Alicastrum Ste-
ll, 899.

Broussonetia papyrifera

Vent. II, 920.
Browallia Czerniakowskii

Warsc. III, 331.

— pulchella Hort. III,
331.

— viscosa H. B. K. III,
331.

Brucea antidysenterica
Lam. III, 510, 606, 618.

— sumatrana Boxb. U,
891. — III, 510, 606, 618.

Bruchia palustris (Br. eur.)
Hpe. var. DegeniGyörffy*
45, 72.

Brugiera gymnorrhiza II,
896.

— Rheedii II, 206.
Bruinsmia III, 221.
Brunella II, 589.

— vulgaris L. II, 589. —
III, 9.

Brunellieae III, 223.
Brunfelsia III, 59. — N. A

II, 528.

Bruniaceae III, 156, 224.
Brunnichia cirrhosa III,

279.
Brunonia 539, 540. — III,

212.

— australis 539.

— — var. sericea 539.
Brya Ebenus DC. II, 899.
Bryaceae 49.

Bryhnia novae - angliae
(Süll, et Besä.) Grout*
49, 72.

Bryonia II, 567.

— dioica Jacq. II, 567. —

III, 197.
Bryophyllum crenatum

J. G. Baker II, 399.

— proliferum Bow. II, 399.
Bryophyta III, 14.
Bryopsis II, 966.
Bryum 38, 51, 60.

— arduum Hag* 72.

— argentum L. 54.

— — var. lanatum (P. B.)
54, 55.

Bryum argentum var.
mucronatum Ham-
mersch* 72.

— arvernense Donin* 41,
72.

— balanocarpum Besch.
52.

— bernense Hag.* 72.

— bimoideum DNot. 40.
Bomanssoni 39.

— Bornmülleri Ruthe* 72.

— Bryhnii Hag.* 72.

— caespiticium II, 653.

— cirratum H. et H. var.
Tauriscorum Kern* 46.

— clathratum 37.

— camurum Hag* 72.

— castaneum Hag. rar.
Bomanssonii Hag* 72.

— cephalozioides Card*
72.

— chrysobasilare Broth*
72.

— Courtoisi Broth. et Bar*
52, 72.

— cuspidatum Schpr. var-
paludosum Hammersch*
72.

— delitescens Card.* 72.

— Duvalii Voit. 43.

— erectum Broth.' 72.

— erythrocaulon Schwaegr.
54.

— excurrens Lindb. var.
planatum Hammersch*
72.

— fallax Milde 43.

— gemmiparum De Not.
55.

— humectum Hag* 72.

— inflatum Phil. 41.

— islandicum Hag* 72.

— Kaalaasii Rag* 72.

— macroebaete Card* 72.

— madagasso - ramosum
Broth.* 72.

— microstegium Br. eur.
41.

— marginatum 39.

— Mildeanum 39.

776

Bryuin miserum— Butomus umbellatus.

Bryum miserum Card* 72.

— obconicum 39.

— pacbyloma Card. 55.

— pallidoviride Card* 72.

— parvulum Card.* 72.

— Pearyanum Bryhn* 36,
72.

— pedemontanum Hag*
72.

— pendulum Schpr. 70.

— perlimbatum Card* 72.

— pseudo-Kunzei 37.

— pseudotriquetrum
(Hedw) Schwgr. 40.

— rhexodon Hag* 72.

— riparium Hag* 72.

— sagittaefolium Culm*
58, 72.

— Sellae Negri* TS.

— siculum Bth.* 39, 73.
■ — spissum Hag* 73.

— subbicolor Bryhn* 55,
73.

— toelzense Hammersch*
44, 73.

— umbratum Hag* 73.

— Voeltzkowii Broth* 54,
73.

— zonatum Schpr. 60.
Buchanania 457.

— glabra II, 853.

— latifolia Boxb. II, 852.
Bucegia Badian 64, 65.

— romanica 65.
Buchenavia capitata Eichl.

II. 900.
Buchnera II, 521. — N. A
II, 520.

— gesnerioides Willd. II,
526.

— orobanchoides B. Br,
II, 526.

Buchnerodendron N. A. II,

422.
Bucida III, 173.

— Buceras L. II, 608, 622.
— III, 173.

Bucklandia 622.

— anomala 622.
Bucklandioideae III, 221.

Buddleia III, 5, 59, 245.
- P. 288. — N. A. II,
451.

— paniculata Wall. II,
557.

— polystacbya II, 251.

— variabilis III, 57.
Buellia 3, 15.

— betulina fHepp) Th.
Fries 24.

— hypopodioides (Nyl.) 11.

— triphragmia var. rosello-
tincta B. de Lesd.* 11,
25.

— ultima Lindau* 25.
Buettnera 631. — II, 190,

350. — III, 250. — N. A.

II, 529.
Buffonia 454.

Bulbine P. 139, 276. -

N. A. II, 304.
Bulbocodium neglectum

0. Ktze. II, 302.
Bulbopbyllum III, 121,

122. — N. A. II, 308.

— Binuendijkü J. J. Sm.

III, 108.

— Gopelandii II, 123.

— fascinator Rolfe III,
108.

— galbinum Ridl. III, 108.

— lasioglossum II, 123.

— lemniscatoides III, 112.

— miniatum III, 118.

— mirum J. J. Smith III,
120.

orthoglossum III, 113.

— virescens III, 112.
Bulbostylis N. A. II, 286.

— Fendleri III, 80.

— lanata III, 80.

— striatella III, 80.

— subaphylla Clarke II,
291.

— vestita III, 80.

— Warei III, 80.
Bulgaria 138.
Bulgariaceae 138.
Bulliardia aquatica L. II,

580.

Bunium III, 341.
Bupleurum 491, 504. —

II, 154. — III, 669. —
N. A. II, 536.

— aristatum Barth III,
341, 342.

— falcatum L. 490. —

III, 342, 669.

— graminifolium P. 316.

— gulczense 0. et B.
Fedtseh. III, 337.

— Odontites III. 337,
341.

— opacum (Ces.) Lge. III,
337.

Burkea africana II, 233.
Burkella III, 313.
Burkillia West N. G. 347.

— cornuta West* 382.
Burmannia II, 244. — III,

78. — N. A. II, 285.

— coelestis Don II, 558.
Burmanniaceae II, 244,

250, 285. — III, 78.
Burnatia enneandra II,

240.
Burnettia Grout 68.
Bursa III, 399. — N. A.

II, 401.

— pastoris III, 52.
Bursera angustata Griseb.

II, 329.

— glauca Griseb. II, 329.

— gummifera L. II, 900.

— iuaguensis Britton II,
329.

— simplicifolia DC- II,
329.

Burseraceae 428. — II,
116, 128, 347. — III,
156, 217.

Bustillosia III, 341.

Butea II, 892. — III, 24,
241. — N. A. II, 442.

— frondosa II, 222.
Butomaceae 513. — II,

116, 240, 285.
Butomus umbellatus L.
513. — II, 172, 559. —
— III, 73.

Butyrosperaum — Calamus corrugatus.

777

Butyrospermum II, 232,
233, 235.

— Parkii TL 232, 820, 921,
954. — OH, 571, 589, 646.

Buxaceae IL 347. — III,

58, 157, 219. 225.
Bnxus III, 58. — N. A.

II, 347.

— citrifolia Spreng, var.
brevipes Müll. Arg. II,
347.

— sempervirens L. 561,
652. — IL 154. — III,
28.

— subcolumnaris Müll.
Arg. IL 347.

Byronia II, 126.

Byrsonima P. 305.

- — coccolobifolia P. 286.

— crassifolia ZZ. B. et K.
IL 900.

— crassifolia Kth. II, 837.

— sericea DC II, 837.
Cabralea II, 115.
Cacalia P. 276.

— coccinea Sims II, 381.

— sagittata Vahl II, 381.
Cactaceae II, 124, 190,

196, 199, 348. — III,
157, 224, 414.
Cactus II, 185. — N. A. II,
348.

— grandiflorus III. ~>34,
535.

— Maxonii Rose II, 195,
349. — III, 159.

Caeoma nitens Seine II,

971.
< aesalpinia III, 234. —

N. A. II, 442.

— Bonducella II, 166, 220.
— III, 418.

— Brea GUI II, 443.

— cearensis P. 282, 285,
299, 304, 317.

— coriaria Willd. II, 896,
899.

— eebinata III, 599.

— praecox R. et P. II,
443.

Oaesalpinia resinosaTT7Mrf.

II, 443.
Oaesalpinioideae II, 194.

— III, 219, 224, 242.
Cajanus II, 888.

— indicus Spreng. IL 827,
851, 859.

Cakile californica II, 187,
188.

— maritima L. IL 553,
589. — III, 190.

Caladenia Barbarossae III,

121.
Oaladium III, 46. — P.

281.

— heteropbyllum Pres! II,
281.

Calamagrostis Adans. II,
266. — III, 94. — N. A.
IL 294.

— arundinacea Roth 650.

— P. 247.

— canadensis P. 280.

— epigeios L. II, 618. —

III, 29, 92. — P. 247.

— Huttonae Hack. III, 86.

— lanceolata III, 29.

— strigosa Hartm. III, 88.

— varia 650.
Calamintha X. A. IL 436.

— glabella var. Nuttallii
Gray II, 438.

— Nuttallii Benth. II, 438.
Calamites pettycurensis

619.

— Suckowi 618, 637.
Calamodendrostachys 618.
Calamopitys 566.
Oalamostachys 619.
Calamus 459. — II, 222,

241. • - III, 9, 125. —
P. 300, 322. - - N. A. II,
318, 319.

— acanthospathus Griff.
III. 123, 128.

— aeidus in, 130.

— adspersus Bl. III, 123,
128.

— akimensis Becc. III,
123, 126.

Calamus albus Pers. III,
123, 129.

— andamanicus Ku»z- III,
123, 129.

— aquatilis Ridley III, 123,
129.

— arborescens Griff. III,
123, 126.

— arneusis Becc. III, 123,
129.

- asperrimus Bl. III, 123,
129.

— australis Mart. III, 123,
127.

— axillaris Becc. III, 123,
129.

— bacularis Becc. III, 123,
128.

— barbatus Zipp. III, 123,
127.

— Barterii Becc. III, 123,
126.

— Blancoi Knnth III, 123,
127.

— Blumei Becc III, 123,
128.

— Bousigouii Pierre III,
123, 128.

— braehystaehys #ecc. III,
123, 130.

— Brandisii Becc. III, 123,
127.

— bubuen-sis Becc III, 1 23,
129.

— Burckianus Becc. III,
123, 126.

— caesius Bl. III, 123,
129.

— Carva III, 128.

— ■ caryotoides Allen Cmui.
III, 123, 127.

— castaueus Griff. III,
123, 126.

— ciliaris Bl.IIL, 123.128.

— coDcinnus Mart. III,
123, 127.

— coniorostris Becc. III,
123, 130.

— corrugatus Becc. III,
123. 127.

118

Calamus Cumingianus — Calainus Leprieurü.

Calamus Cumingianus
Becc. III, 123, 128.

— Cuthberstonii Becc- III,
123, 128.

— deerratus Mann et
Wendl. III, 123, 126.

— Delessertianus Becc.
III, 123, 127.

— delicatulus Thw- III,
123, 127.

— densiflorus Becc. III,
123, 129.

— didymocarpus III, 123,
129.

— Diepenhorstii Mia. III,
123, 128.

— : — var. singaporensis
Becc. III, 123.

— digitatus Becc III, 123,
126.

— dilaceratus Becc. III,
123, 126.

— dimorphacanthus Becc.
III, 123, 129.

— dioicus Low. III, 123,
127.

— discolor Marl. III, 123,
130.

— donguaiensis Pierre III,
123, 126.

— Doriaei Becc. III, 123,
129.

— equestris III, 128.

— erectus Roxb. III, 123,
126.

— erectus birraanicus III,
123.

— erectus schizospathus
(Griff.) Becc. III, 123.

— eriocanthus Becc. III,
123, 129.

— exilis Griff. III, 123,
128.

— Faberii Becc. III, 123,
127.

— falatensisBecc III, 123,
126.

— Feanus Becc. III, 123.

— ferrugineus Becc. III,
123, 130.

Calamus fertilis Becc. III,
123, 130.

— filiformis Becc III, 123,
127.

— filipendulus Becc. III,
123, 127.

— flabellatus Becc. III,
123, 127.

— Flagellum Griff. III,
123, 126.

— Flagellum karinensis
Becc. III, 123.

— floribundus GW/f. III,
123, 127.

— — var. depauperatus
III, 123.

— formosanusBecc 111,123.

— formosus Becc. III, 122.

— Gamblei Becc. III, 123,
128.

— giganteus Becc III, 123,
129.

— GodefroyiBecc.III, 123,
127.

— gogolensis Becc. III,
123, 127.

— gonospermus Becc. III,
123, 127.

— gracilis Roxb- III, 123,
128.

Griffithianus Mart. III,
123, 126.

— Guraba ffow. III, 123,
128.

— Harmandi Pierre III,
123, 130.

— Hartmanni Becc. III,
123, 130.

— Helferianus Kurz III,
123, 127.

— Henryanus Becc. III,
123, 130.

— heteracanthus Zipp. III,
123, 128.

— beteroidens BZ.III, 123,
127.

var. pallens (Bl.) III,

123.

— Heudelotii Becc III,
123, 126.

Calamus bispidulus Becc
III, 123, 128.

— Hollrungii Becc III,
123, 129.

— Hookerianus Becc- III,
123.

— borrens Bl. III, 123,
127.

— Huegelianus Mart. III,
123, 128.

— bypoleucus (Kurz) Becc.

II, 319. — III, 123,
128.

— inermis T. And. III,
123, 129.

— insignis Griff. III, 123,
128.

— interruptus Becc. III,
123, 127.

— — var. docilis Becc III,
123.

— irridispinus III, 129.

— javensis Bl. III, 123,
127.

— — var. acicularis Becc

III, 123.

— — var. intermedius
Becc III, 123.

— — var. polyphyllus
Becc III, 123.

— — var. tenuissimus
Becc. III, 123.

var. tetrasticbus

Becc. IU, 123.

— kandariensis Becc III,
123, 128.

— khasianus Becc. III, 123,
129.

— Kingianus Becc. III,
123, 127.

— Kunzeanus Becc III,

123, 130.

— latifolius Roxb. III, 124,
129.

— — var. marmoratus
Becc III, 124.

— Lauterbacbi Becc. III,

124, 130.

— Leprieurü Becc III,
124, 126.

Calaiuus leptospadix — Calamus rodentam.

779

Calamus leptospadix Griff.
III, 124, 126.

— leucotes Becc. III, 124,
128.

— Lobbianus Becc III,
124, 130.

— longisetus Griff. III,
124, 126.

— luridus Becc. III, 124,
127.

— Macgregorii Becc- III,
124. 130.

— macrochlamysJSecc III,
124, 127.

— macrosphaerion Becc
III, 124, 129.

— MananJkh'g.111,124,129.

— manillensis H- Wendl.
III, 124, 129.

— marginatus Mart. III,
124, 128.

— Martianus Becc III,
124, 129.

— matanensis Becc HI,
124, 129.

— melanacanthus Mart.
111, 124, 128.

— melanoloma Mart. III,
124, 129.

— MerriUii Becc. III, 124,
129.

— Metzianus Schlecht. III,
124, 127.

— MeyeruanusS'cÄöKerlH,
124, 127.

— microcarpus Becc. III,
124, 129.

— microsphaerion Becc.
III, 129.

— minimalis III, 127.

— minahassae Warb. III,
124, 128.

— mollis Blanco II, 212,
— III. 124, 127.

— Moseleyanus Becc III,
124, 129*!

— Moti Bailey III, 124,
127.

— mucronatus Becc III,
124, 129.

Calamus Muelleri H.
Wendl. III, 124, 127.

— muricatusBecc III, 124,
127.

— myriacanthes Becc III,
124.

— myrianthus Becc III,
124, 127, 128.

— nambariensis Becc. III
124, 129.

— neglectus Becc. III, 124,
129.

— nematospadix Becc. III,
124, 127.

— nicobaricus Becc III,
124, 127.

— nitensis III, 128.

— nitidus Mart. III, 124,
128.

— opacus Bl. III, 124, 127.

— optimus Becc. III, 124,
129.

— ornatus Bl III, 124,
129.

var. sumatranus Becc

III, 124.

— ovoideus Thw. HI, 124,
129.

— Orleyanus Teysm. et
Binn. III, 124, 129.

— pachystachys Warb. HI,
124, 129.

— pachystemonusTVw. III,
124, 126.

— pallens Bl. II, 319.

— pallidulus Becc. HI,
124.

— pallidus III, 129.

— palustris Griff. III, 124,
129.

— — var. amplissimus
Becc. IH, 124.

— — var. cochinchinensis
Becc. HI, 124.

— papuanus Becc III, 124,
127.

— paspalanthus Becc. III,
124, 128.

— paspalanthus peninsu-
laris Becc. III, 128.

Calamus perakensis Becc.
III, 124, 128.

— Perrottetii Becc III,
124, 126.

— pilosellus Becc IH, 124.
128.

— pisicarpus III, 129.

— platyacanthus Warb-
III, 124, 129.

— platyspathus Mart. HI,
124, 128.

— plicatus Bl. III, 124,
128.

— polydesmus Becc. IH,
124, 229.

— polystachys Becc III.
124, 129.

— pseudorivalis Becc. III,
124, 127.

— pseudotenuis Becc. III.
124, 127.

— pygmaeusi?ecc Hl, 124,
127.

— radiatus Thw- HI, 124,
126.

— radicalis III, 127.

— radulosus Becc III, 124,
127.

— ralumensis Warb. III,
124, 127.

— ramosissimus Griff. HI,
124, 128.

— ramulosus Becc IH, 1 24,
129.

— Reinwardtii Mart. III,
124, 127.

— — var. pallens Becc
II, 319.

— Rheedei Griff. III. 124,
128.

— rhomboideus Bl. III,
124, 128.

— Ridleyanus Becc. III,
124, 129.

— rivalis Thw. III, 124,
127.

— rotang L. III, 124,
127.

— rodentum Low. III,
124, 126.

780

Calamus rugosus — Callipteris bibractensis.

Calamus rugosus Becc. III,
124. 127.

— Rumphii III, 129.

— ruvidiisBcccIII, 124,127.

— Sabensis Becc. III, 124,
127.

— salicifolius Becc. III,
124, 127.

— sarawakensis Becc III,
124, 128.

— scabridulus Becc III,
124, 127.

— schistoacanthus Bl. III,
124, 127.

— Schweinfurthii Becc.
III, 124, 126.

— Scipionuia Lour. III,
124, 129.

— serrulatus Becc. III,
124, 127.

— siamensis Becc. III, 124,
127.

— simplex Becc. III, 124,
129.

— singaporensis Becc. II,
319.

— siphonospathus Marl.
III, 124, 129.

— spathulatus Becc. III,
124, 129.

— — var. oligolepis Becc
III, 124.

— — var. robustus Becc.
III, 124, 129.

— spectabilis J3J. III, 124,
128.

— — var. sumatranus
Becc. III, 124.

— spinifoliusBecc.III, 124,
129.

— subinervis H. Wendl.
III, 124, 129.

— symphysipus Becc III,
124, 128.

— tenuis Roxb. II, 852. —
III, 124, 127.

— tetradactylusBmieeüI,
124, 127.

— Thwaitesii Becc. III,
124, 126.

Calamus Thwaitesii
canaranus Becc. III, 124.

— thysanolepis Hance III,
124, 130.

— tomentosus Becc. IU,
124, 128.

— — var. korthalsiaefolius
Becc. III, 124.

■ — tonkinensis Becc III,

124, 127.

— travancoricusBedd.III,

125, 128.

— trispermus Becc III, 125,
129.

— unifarius H. Wendl. III,
125, 129.

var. pentong Becc.

in, 125.

— vestitus Becc. III, 125,
127.

— Vidalianus Becc III,
125, 129.

— viminalis TföTW. IU, 125.

— — var- andamanicus
Becc III, 125.

var. fasciculatus Becc

III, 125.

— viridispinus Becc III,
125.

— Vitiensis Warb. III,
125.

— Walkerii Hance III,
125, 127.

— Warburgii K. Schum.
III, 125, 129.

— zebrinus Becc. III, 125,
127.

— zeylanicus Becc. III, 125,
129.

— Zolim gerii Becc. 111.
125, 129.

— zonatus Becc. III, 125,
127.

Oalandrinia III, 280, 281.
Calandriniopsis III, 281.
Calanthe N. A. II, 308.

— australis II, 318.

— Hattorii II, 166.
Calathea II, 820. — III,

134.

Calceolaria II, 265. — III,
50, 324. — N. A. II
521.

— hyssopifolia II, 265.

— lavandulaefolia II, 265.

— stricta 0. Ktze. II. 546.
Calceolariaceae III, 50.
Caldcluvia mirabilis Dus*

559.
Oaldesia parnassifolia II,

240.
Calea N. A. II, 362.
Calendula III, 603.

— officinalis L- III, 603.
Calepina L. III, 193.
Calicium 15.

— chrysocephalum Ach.
23.

— hyperellum Ach. 23.

— parietinum Ach. 23.

— pusillum Floerke 20. 22.
Calisaya III, 635.

Calla II, 123.

— palustris L. II, 580. —
III, 35, 76.

Calliandra III, 234. — N. A.
II, 443.

— portoricensis Bentli. II,
195.

Callianthemum 501. 504.

— III, 287.
CaUicarpa N. A. II, 542,

543.

— japonica Thbg. 111,342.

— mollis 8. et Z. III, 342.
Callicostella 51.

— caledonica The'r* 73.

— Eberhardtiana Broth- et

Par.

73.

— lacevansfC. Müll.JJaeg.
54.

Calliergon (Süll.) Kindb.
58.

— giganteum (Scop.)Kiudb.
39.

Callipteridium 613, 622.

— regina 639.
Callipteris 569, 607.

— Bergeroni 569.

— bibractensis 607.

Callipteris couferta — Calypogeia Hartlessiana.

781

Callipteris conferta
Sternbg. 569, 607, 613,
625.

— curretiensis 509, 607.

— flabellif era ( Weiss) Zeil-
h r r.69, 607.

— Jutieri Zeiller 6<>7.

— hymenophylloides Weiss
607.

— lyratifolia 569, 607.

— Martini 607.

— Xaumanni 607.

— oxydata 569, 607.

— polymorph a 569.

— Scheibei Goth.* 607.

— strigosa 607.

— subauriculata 607.
Callirrlme involucrata P.

309.
Callisia 512, 721.

— repens Till, 512, 719,
721.

Collithamnion 333, 682.
Callitriche 111, 219. — N.
A. II. 349.

— venia L. II, 349.
Callitrichaceae II, 349. —

III. 222.
Callitris 463, 464. - II,
240.

— articulata II, 125.

— Brongniarti Endl. 560.

— cupressioides Schrad.
111, 59.

— glauca III, 60.

— Morrisoni II, 257.
Calloideae III, 75, 76.
Oallopisma ferrugineum

16.

— teicholytum Nyl. 16.
Callopsis U, 242.
Calluna II. 595. III,

202, 385, 386. — P. 178.

— vulgaris Salisb. II, 42,
63, 593, 594, 595, 596.

— III, 28,201,202,385.

— P. 98, 99.
Callymenia Larteriae 344.
Calocarpum mammosum

Pierre II, 900.

Calodendron capense II,

921.
Calodiplosis Tav. N. G. II,

624.

— Parinarii Tav.* II, 624.
Calodon Ridleyi Massee*

280.
Caloglossa 328.
Oaloncoba \. A. II. 422.
Calonectria Copelandii P.

Henn* 280.

— hibiscicola P. Henn*
280.

— flavida Mass- 130.
Oaloneis amphisbaena

Cleve II, 630.
Calonyction II, 397. — N.

A. II, 395.
Calophylleae III. 213.
Ualophyüum P. 305. — N.

A. II, 431.

— Oalaba Jacq. II, 900.

— inophyllum II, 101, 166,
206, 220. — III, 9. —
P. 293.

— parviflorum Boj. 541.
— II, 921.

— spectabile Willd. 457.

— venustum II, 216.
Caloplaca 5, 15.

— amabilis A. Zahlbr* 25.

— aurantiaca var. deal-
bata B. de Lesd.'' 25.

— citrinella Jatta* 25.

— coralloides A- Zahlbr.
22.

— elegans III, 643.
var. brachyloba A.

Zahlbr* 25.

— Pollinii Jatta 22.
Oalopogon N. A. II, 308.

— parviflorus Lindl. II,
308.

— pulchellus ir, 12S. —
III, 115.

— — var. graminifolius
Elliott II, 308.

Calosphaeria 258.
Calothrix parietina 335.
Oalotropis P. 139.

Calotropis procera R. Br.

II, 231, 557.

Caltha 501. — II, 598, 711.

— palustris L. II, 176, 589,
598.

Calvatia gigantea 262.

— rubro-flava Cragin 147.
Calycanthaceae 493, 494.

- II, 168, 350. — III,
161.

Oalycanthus III, 161, 168.

— N. A. II, 350.

— praecox L. III, 49.
Oalyceraceae II, 350. —

III, 161.
Oalycobolus II, 170.
Calycotome III, 239.

— spinosa Lk- II, 626.
Oalymperes 51.

— bolomboense Card* 73.

— boreale Par- et Broth.*
52, 73.

— Borgeni var. congo-
lense Ren. et Card- 73.

— brevifolium Card* 73.

— Oasamancae Card* 73.

— congolense (Ren. et
Card.) Card* 37.

— Heribaudi Par. et Broth.*
73.

— kanakense Par* 52, 73.

— Konkourae Par* 56, 73.

— Mariei Besch. 54.

— Sanctae Mariae Besch.
54.

— subdecolorans Card*
73.

Calypogeia Raddi 63, 66.

— acuta Steph.* 83.

— angusta Steph* 83.

— arguta 63.

— cordifolia Stejrfi* 83.

— cuspidata Steph* 83.

— Dussiana Steph* 83.

— Elliottii Steph.* 83.

— ericetorum Raddi 47.

— fissa 64.

— furcata Steph* 83.

— gigantea Steph.* 83.

— Hartlessiana Steph* 83.

782

Calypogeia hawaica — Campylopus Pobeguini.

Calypogeia hawaicaSteph*
83.

— integristipula£tep/t.* 83.

— latifolia Steph* 83.

— lophocoleoides Steph*
83.

— Neesiana 63, 64.

— Puiggarii Steph* 83.

— renistipula Steph* 83.

— spkagnicola (Arn- et
Pers.) 44.

— suberectifolia Steph.*
83.

— suecica (Arn. et Pers.)
63, 64.

var. repaDda K- Müll.

44.

— Trichornanis Cda. 63,
64.

— Yoskinagana Steph* 83.
Calypso borealis III, 109.
Calyptospora Goepperti-

ana J. Kuehn 148.
Calyptothecium tumidum

Fleisch. 69.
Calyptranthes III, 59. —

N. A. II, 465.
Calyptrella III, 251. — N.

A. II, 458.
Calyptridium III» 281.
Calyptrocarya fragifera

III, 81.
(Jalystegia Soldanella II,

261.
Calyxkyrnenia II, 467.
Caraarophyllus 258.
üamarops hypoxyloides

Karst. 131, 147.
CarnarosporiumCaraganae

Karst. 145.
Camassia N. A. II, 304.

— Fraseri Torr. II, 304.
Camellia P. 218.

drupifera II, 613.
Camillea Sagraeana( Moni.)

Berk. 131.
(Jamoensia maximall, 236.
Oampanula 770. — II, 100.

— N. A. II, 350.

— Beauverdiana II, 152.

Oampanula carpatica var.
pelviformis III, 163.

— cervicaria III, 164.

— finitima 11, 152.

— fragilis Cyr. II, 626. —

in, 162.

— Gieseekeana III, 165.

— glomerata III, 164.

— macrorhiza var. rotun-
data III, 162.

— mirabilis III, 56.

— patula 522.

— persicifolia L- II, 567.

— pusilla var. tubulosa
Chab. III, 162.

— Raddeana III, 163.

— rapunculoides II, 720.

— rhomboidalis var. caly-
cina III, 162.

var. Songeoni (Chab.)

Rouy III, 162.

— — rar. tuberosa III,
162.

— rotundifolia L. 653. —
II, 350, 614.

— Speeulum II, 351.

— Trachelium L. 521.

— turbinata III, 56.

— Waldsteiniana III, 56.
Campanulaceae II, 120,

250, 350. — HI, 59, 161.
Campboru japonica Oar-

sault II, 439.
Oamphorosma monspelia-

ca L. III, 171.

— ovata W. K. III, 171.

— rutkenicuni HI, 171.
Camptocarpus N. A. II, 336.

— Bojeri III, 146.

— mauritianus III, 146.
Camptopteris 622.
Camptoseina III, 234. —

N. A. II, 443.
Oamptosorus rkizophyllus
II, 789.

— sibiricus II, 789.
Camptotkeca III, 53. —

N. A. II, 398.
Camptotkecium Br. eur.
59.

Camptotbecium nitens 48.
Camptouratea agrophylla
v. Tiegh. II, 469.

— cinerea v. Tiegh. II,
469.

— striata v. Tiegh. II, 469.
Campylium (Süll.) Bryhn

58.

— ckrysopkyllum var.
carolinianum Grout* 49,
73.

Campylodiscus affinis
Lander* II, 643.

— Degenii Pant* II, 643.

— litoralis Lemm* II, 637,
643.

— Magocsyanus Pant* II,
643.

— RockefellerianusPantf.*
II, 643.

— Zahnii Pant* II, 643.
Campylodontium 51.

— Dusenii C. Müll. 56.
Campylopodiella Card. N.

G. 57, 73.

— tenella Card.* 57, 73.
Campylopodium eupkoro-

cladum Besch. 69.
Campylopus 51.

— Birgeri Card* 73.

— Boivini Besch. 53.

— Boryanus Besch. 53.

— Cagnii Negri* 73.

— compactusPar. e^ Broth.
55.

— curvatifolius Card* 73.

— Eberkardti Par* 52,
73.

— filescens Ren. et Card.
54.

— Flageyi Ben. et Card.
54.

— flexuosus Brid. 70.

— Hensii Ben. et Card,
var- speciosus Card* 73.

— modestus Card* 73.

— pallescens Besch. 54.

— Pobeguini Par. et Broth.
var- minor Par.* 55,
73.

Campjlopus polytrichoides — Caragana laeta.

783

Campjlopus poljtricho-
ides De Not. 54.

— Robillardi Besch. 54.

— Samoanus Broth* 73.

— sericeus Negri* 73.

— subcoma.tusRen.etCa.rd-
54.

— Yoeltzkowii Broth* 54,
73.

Campjlostomum War-

neckeaiium II, 235.
Cananga III. 226.

— odorata Book. f. et Th.
457. — II, 206, 933. —
III, 655.

Canarium III, 59, 156, 157,
451. — X. A. II, 347.

— commune III, 678.

— luzonicum P. 307.

— Schweinfurthii II, 930.
Canavalia III, 58. — P.

319. — N. A. II, 443.

— ohtusifolia II, 166.
CandoUea Mirbel II, 806.

— sobolifera II, 259, 260.
Canellaceae II, 351, 224.
Canbamo brasiliensis

Perini IL 912.
Canna 686. 370. — II,
244, 576, 820. — III,
27. — P. 289.

— coccinea 459.

— edulis II, 862.

— indica L. 459, 770. —

II, 244.

— Warscewiczi A. Dietr.
459.

Cannaceae 460. — III, 54,

78.
Cannabis II, 573. — III,

383.

— americana III, 544.

— gigantea III, 255.

— indica III, 543, 544.

— sativa L 732. — in,
255, 389. — P. 307.

Cannophyllites Virletii554.
Canscora N. A. II, 426.
Cansjera Rheedii 517. —

III. 268.

Cantharellus 258.
Canthium oleifolium II,

851.
Cantua II, 478.
Caperonia N. A. II, 413.
Capnodiastrum atrum

v. Höhn* 128, 280.
Capnodium 133, 817. —

II, 848.

— brasiliense II, 847.

— Coffeae II, 847.

— Footii Berk. et Desm-
218. — II, 848.

— Guajavae Bernard* 132,
280.

— hirtum Speg* 280.

— indicum Bernard 823.

— javanicum Zimm. 133.

— lanosum Cke. 149.

— salicinum Moni. 815.

— stellatum Bernard* 132,
280, 818.

Capparidaceae 507. — II,
166, 201, 221, 250, 351.

— III, 165, 220, 222,
224.

Capparis II, 123, 165, 205.

— N. A. II, 351.

— apbylla Roth II, 852.

— galeata II, 231.

— Mitchell! i II, 851.

— paranensis Pierre II,
351.

— Radula III, 165.

— spinosa 158. — III,
166.

— tonkinensis III, 165.

— viminea II, 613.

— Yco Mart. II, 102.
Capraria montevidensis

(Spr.) O. Ktze. II, 524.
Caprifoliaceae II, 203, 353.

— III, 53, 166, 220, 221,
475.

Capsella 742. — III, 385.

— N. A. II, 401.

— Bursa-pastoris L. II,
556, 598. — III, 196,
393. 400, 414. — P.
253.

Capsella Heegeri III, 393.

— procunibens II, 261.
Capsicum II, 889.

— annuum L. III, 518.
Caragana III, 235.

— acanthophyllaZTom. III,
231, 236.

— ambigua Stocks III,
231, 236.

— arborescens Lam. III,
237.

— aurantiaca Koehne III,
236.

— bicolor Korn. III, 231,
236.

— ßoisi C. K. Sehn. III,
231, 237.

— brevifolia Korn- III,
231, 235.

— brevispina Royle III,
236.

— Bungei Ledeb. III, 236.

— CamilliSchneideriÜLom.
III, 235.

— catenata Kom. III, 236.

— Chamlagu Lam. III,
235.

— conferta Benth. III,
235.

— decorticans Hemsl. III,
236.

— densa Kom- III, 236.

— erinacea Kom. III, 236.

— Francbetiana Kom. III,
236.

— frutex K. Koch III,
235.

— fruticosa Besser III,
237.

— Gerardiana Benth. III,
231, 236.

— grandiflora DC. III,
235.

— hololeuca Bvmge III,
236.

— jubata Poir. III, 236.

— Korshinskii Kom- III,
237.

— Kozlowi Kom. III, 236.

— laeta Kom. III, 235.

784

Caragana Leveillei — Carex brevisquama.

Oaragana Leveillei Korn-
III, 235.

— leucospina Koni. III,
236.

— Litwinowi Koni. III,
231, 237.

— manshurica Korn. III,
231, 237.

— Maximowiczi III, 235,
236.

— mollis M. B. III, 235

— opulens Kom. III, 235.

— pekinensis Kom. III,
231, 237.

— polourensis Franch. II,
159. - III, 235.

— polyacantha Royle III,
236.

— Potanini A'om. III, 237.

— Praini C K. Sehn. III,
236.

— pruinosa Jiom. III,
236.

— pygmaea Poir. III, 236.

— Roborowski Äom. III,
231, 236.

— rosea Turcz. III, 231,
235.

— sericea Pamp III, 231,
237.

— spinifera iio»w. III, 236.

— spinosa Poir. III, 236.

— stipitata Eiom. III, 231,
237.

— sukiensis C. K. Sehn.
III, 236.

— tangutica Maxim. III,
231, 236.

— tibetica üTom. III, 231,
236.

— turfanensis Koni. III,
235.

— tragacanthoides Kom.
III, 236.

— turkestanica Kom. III,
231, 236.

— ulicina Stocks III, 231,
236.

— versicolor JSewM. III,
236.

Caragana Zahlbruckneri
C K. Sehn. III, 237.

Caraipa 455. — III, 213.

Carallia II, 486.

Carapa grandiflora Spr*
II, 898, 921.

— guianensis Aubl. II, 927.

— procera DC 495. —
II, 252, 899, 921, 927.

Cardamine 504. — III,
191, 192. — N. A. II,
401.

— amara L III, 560.

— bellidifolia III, 191.

— cbenopodiifolia II, 584^
585.

— Degeniana Janch. et
Watzl* Hl, 193.

— enneapnylla X poly-
pbylla II, 401. — III,
193.

— hirsuta L. II, 589.

— laciniata (Muhl.) Wood-
var. integra Schulz II,
403.

— pratensis L- II, 589,
596. — III, 40.

— silvatica Link II, 224,
556.

— trifolia 521.
Cardiocarpus 549.

— angusto-dunensis
Brongn- 548.

— bigibbosus Bertr* 548,
549.

— carinatus Bertr.'* 549.

— cristallipherus Bertr*
549.

— debaltzewensis 638.

— osteoplastis Bertr* 549.

— tetralobus Bertr* 549.
Cardiopteris 613, 618.

— frondosa 626.
Cardiospermum Schmide-

lia Dalz. et Gibs. II, 516.
Oardotia Boiviana (Besch.)

Card- 54.
Carduus III, 175, 369. —

N. A. II, 362.

— acaulescens P. 143.

Carduus americanus Rydb.

II, 186.

— arvensis (L-) Bobs. II,
44.

-- crispus II, 575.

— defloratus L. III, 176.
var. alpestris (W. K.)

DC III, 177.
var. carduelis (L.)

Mh. III, 177.
var. cirsioides (Vill)

DC. III, 177.
var. g\imcTis(Baumg.)

Beck III, 177.

— — var. Kerneri (Simk.)
Mh. III, 177.

var. medius (Gouan)

Mh. III, 177.
var. rbaeticusDCMH,

177.
var. summanus (Poll)

DC. III, 177.

— longissimus II, 186.

— Macounii II, 145.

— nutans X hamulosus II,
362.

— simplieifoliis X nutans

III, 175, 369.

— undulatus var. mega-
cepbalus Porter II, 380.

Carex 577. - II, 143, 146,
161, 164, 176, 241, 286.
— III, 4, 5, 9, 81, 82,
83. — P. 143, 282.
N. A. II, 286.

— acuminata Willd. II»
286.

— acuta X paludosa II,
288.

— amplifolia III, 82.

— Appeliana Zahn II, 287.

— argyrogloehin Hörnern.
II, 286.

— aterrima Hoppe II, 286.

— atrata III, 81.

— austrina II, 169.

— Barbarae III, 82.

— Bastardiana DC II, 287.

— Boottiana II, 166.

— brevisquama II, 169.

Carex capitata— Carpenteria oalifornica.

785

Carex capitata II, 267.

— capitellata II, 154.

— canescens II, 289. —
III, 83.

— — var- disjuncta Fer-
nald II, 289.

vur. subloliacea Laest.

II, 289.

— clavaeformis Reich. II,
286.

— crinita III. 81.

— cristata Schivein. II, 288.

— dioica L. II, 601.

— dioica X bmnnescens
II, 286.

— dioica X echinata II,
2S6.

— dives III, 82.

— echinata Murray II, 289.
var. cephalanthaPr//-

ley II, 289.

— exsiccata Bailey III, 82.

— l'estiva III, 82.

— flavo-Hornschuchiana
.4. Br. II, 287.

— formosensis Le'vl. etYan.
II, 215.

— fulva Good. II, 287.

— Gaudiniana Guth. II,
286.

— GebhardiWüld. 11,286

— glareosa II, 172.

— glauca Murr. II, 601.

— Grypus Schi: II, 286.

— hirta III, 82.

— hirtiformis Pers. II, 287.

— Hornschuchiana
X Oederi II, 287.

— inconspicua Saut. II,
286.

— incurva II, 267. — III.
34.

— ischnostachya II, 162.

— interior Bailey II. 289.

— intermedia Mieg. 11,287.

— intricata Tin. II. 287.

— japonica II, 165. — III,
83.

— Kochiana DC II, 287.

— laciniata III, 82, 83.
Botanischer Jahresbericht

Carex lagopina III, 82.

— lagopodioides II, 288.
var. moniliformis 01-

ney II, 288.

— lasiocarpa Ehrh. III, 29.

— lepidocarpa Tausch- II,
287.

— lepidocarpa X Horn-
schuchiana II, 287.

— leporina 1IJ, 82.

— Liddoni III, 82.

— longirostris P. 311.

— magnifica Dew. 82.

— membranaceafio^pell,
287.

— membranopacta II, 146.

— microglochin II, 267.

— — var. fuegina II, 267.

— modesta Gay II, 286.

— Morowii II, 165. — III,
83.

— Muhlenbergii II, 169.

— nebraskensis III, 82.

— nemorosa Lumn. II,
286.

— nemorosa Willd. 11,286.

— neomexicana II, 169.

Carex scirpoidea Mchx. II,
288, 289. — III, 83.

— — var. stenochlaena
Holm II, 288.

— serralata Biv. II, 287.

— sitchensis III, 81.

— Soleirolii Dub. II, 287.

— Spachiana II, 162.

— stell ulata II, 288.
var. cephalanthajFW-

nald n, 288.

var. excelsior (Beiley)

Fernald II, 288.

— stenophylla P. 253, 312.

— teretiuscula Good. II,
288.

var. prairea Brut. II,

288.
■ var. ramosa Boott. II,

288.

— transsilvanica Schur II,
287.

— transversa II. 162.

— tribuloides II, 288.

— trichocarpa III, 82.

— tricostata Fr. II, 287.

— trifida 520.
- tumulicola II, 169.

- P.

— norvegica II, 172.

— obrupta Bailey III, 82. — vesicaria III, 82.

— ontakensisLeW.il, 215. III, 314.

— pallescens III, 82.

— paludosa II, 288.

— — var. depauperata
Lange II, 288.

— paniculata X diandra
III, 81.

— petasata Dewey III, 82.

— petricosa Dewey III, 82.

— phaeocephala Piper III,
83.

— picta III, 81.

— polyarrhena Gray II, 286.

— praetutiana Par?. 11,286.

— prairea Dewey II, 288.

— prolixa Fr. II, 287.

— pseudo-Mairii Gr. Ca-mtts
II, 587.

— retusa Degl II, 287.

— riparia 629. — III, 82.

— Schottii Dewey LH, 82.

virens Lmk. II, 286.

— xanthocacarpa Degl. II,
287.

Carica Papaya L. 642. —
II, 206, 220, 822. — HI,
42, 167. - P. 283, 304,
305.

Caricaceae III, 167.

Carissa Carandas L. II.
851.

— spinarum A. DC- II,
557, 851.

Carlea oblongifoliall, 210.
Carlemannia III, 221.
Carlina N. A. II, 362.
Carludovica palmata II.

919.
Caroxylon aphylla II, 838.
Carpenteria californica III,

316.

XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 19. 1. 12.1

50

786

Carpha alpina— Castanopsis inclioa.

Oarpha alpina III, 80.

— Aubertii III, 80.

— capitellata III, 80.

— deusta III, 80.

— glomerata III, 80.
Carpinoxylon 600.

— Vateri 599.
Oarpinus 576, 580, 600. —

III, 3, 44, 45, 220. — P.
259, 285, 310.

— Betulus L. 561, 575,
627, 629, 686. — II, 155.

— III, 28. — P. 282,
306. 323.

— caroliniana Walt. 547.

— grandis 580.

— ostryoides Goepp. 608.

— yedoensis Maxim- III,
152.

Carpodinus II, 331, 332.

— N. A. II, 331.

— chylorrhizus Schum. II,
332.

— lanceolata III, 141.

— landolphioides (Hall, f.)
Stapf HI, 141.

— landolphioides (L.)Stapf
II, 252.

Carpodiptera III, 58. —

N. A. II, 533.
Carpolithus 378.

— Nathorsti Arber* 543.
Carrichtera Adans- III, 193.
Oarteria 366.
Carthamus II, 575.

— tinctorius L. II, 575,
926. — III, 603.

Carum N. A. II, 536.
Oarya 582. — III, 3. —
N. A. II, 435.

— alba Müh 561. — II,
902. — 111, 216.

— amara 582.

— arborea Koxb. II, 852.

— costata Unger 582.

— Diguetii Dode* III, 216.

— Laubei Kowarzik* 582.

— olivaeformis Nutt. 561.

— ovata MM. 561.

— Sattleri Kinh* 561.

Oaryocar nuciferum II, 928.

- III, 42.
Caryophyllaceae 454, 504,

505, 595. — II, 203, 354.

— III, 54, 167, 221,
224.

Oaryophyllus III, 555, 578.

— aromaticus L. II, 102.
Caryopteris Wallichiana

Schou. II, 557.
Oaryota P. 133.

— sobolifera III, 130.
Oasasia III, 59. — N. A.

II, 504.
Cascara amara III, 510.

— sagrada III, 554, 595.
Cascarilla III, 644.
Oasearia II, 424. - P. 287.

- N. A. II, 423.

— graveolens Dalz. II,
556.

Oasparya greviaefolia var.

Jamesoniana A- DC. II,

342.
Cassandra II, 594.

— hypnoides II, 594, 595.
Cassava II, 860, 861.
Cassebeera pinnata Kaulf.

II, 777.

— Woodfordii C. H.
Wright* II, 777, 784,
810.

Oassia 560. — III, 58, 234.

— P. 279, 281, 313.
N. A. II, 443.

— acutifolia Del. II, 443.

— bauhinioides A. Gr. III,
56.

— emarginata L- II, 900.

— fistula II, 223. — III,
432.

— Hoffmannseggiana P.
302, 307.

— lanceolata Forsk. II,
443.

— leptadenia Greenm. II,
443.

— mimusoides II, 232.

— multijuga P. 288.

— nictitans Gray II, 443.

Cassia occidentalis L. IL
821, 832.

— Sieberiana II, 232.

— toinentosa Lamb. 533.

— III, 242.
Cassinia arcuata II, 260.
Cassiope 515. — II, 594.

— hypnoides (L.) Don
516. — II, 592, 594. -
III, 203.

— tetragona (L.) Don
516. — II, 592, 594, 595.

— III, 203.
Cassipourea III, 52. — N. A.

II, 486.

— elliptica Poir. II, 622.
Oassupa N. A II, 505.
Cassytha III, 39.
Castalia U, 168, 188. —

LLI, 263, 264. N. A.

II, 468.

— alba III, 263.

— Candida Pred III, 263.

— capensis III, 263.

— coerulea III, 263, 264.

— fennica III, 363.

— gracilis (Zv.cc-) Rose II.
194.

— Leibergii Mor. III, 263.

— Lotus (L.) Woodwille
II, 468. — III, 263, 264.

— odorata 533.

— Pringlei Rose II, 194.

— stellata III, 263, 264.

— sulphurea III, 363.

— tetragona III, 263.
Oastanea 541, 556, 563. —

II, 68, 125. — III, 44,
208, 558. — P. 266, 285.

— crenata P. 215.

— pumila II, 605. — P.
215.

— vesca Grtn. 541, 545.

III, 9. — P. 236, 286,
293, 302, 319.

— vulgaris II, 154. — IIIr
44, 45. — P. 263, 319.

Castanopsis III, 217.

— hystrix II, 162.

— indica II, 214.

Castanopsis philippinensis — Cecidomyia chinqiiapin.

787

Castanopsis philippinensis

II, 212.
Castela III, 58. N. A.

II, 527.
Uastilloa II, 822, 823, 824,

828, 936, 937, 938, 945,

946. - - III, 623. — P.

132.

— elastica II. 820, 828,
938, 946. — P. 132.

Casuarina 536. — III, 226,
245. - X. A. II, 357.

— distyla var. prostrata
II. 256.

— equisetifolia Forsk. 457,
:>36. — II, 166, 826.

— glanca II, 851.

— mucronata 536
Casuarinaceae II, 116,218,

357. — III, 170, 225.
Catabrosa aquatica II, 172.

— vilfoidea Andersson II,
296.

Catagonium C. Müll. 59.
Catalpa II, 157. — III,
153. — N. A. II, 344.

— bignonioides III, 153.

— cordif oli a X Kaempferi

II, 344.

— Kaempferi S. et Z. 748.

IL 344. — III, 153.

— longissima Sims. II,
900.

— speciosa Warder III,
153.

— syringaefolia 748.
Catasetum 497, 735. — II,

560, 561, 583. — III,
117.

— barbatum Lindl. 497,
736. - - II, 560, 561.

— callosuni Lindl- 497.
736. — II, 560, 561.

— cernuum Rchb. fil. 497,
736. — II, 560, 561.

— Claesianum III, 112.

— discolor III, 113.

— fimbriatum Lindl. 497,
736. — II, 560, 561. —

III. 112. 119 — P. 322.

Catasetum Darwinianuni
497. — II, 561.

— macrocarpum 497.

— monodon Krzl. III, 109.

— ornithorynchos Porsch
497, 736. — II, 560, 561.

— spinosum III, 120.

— splendens Cogn. 497.
736. — II, 561.

— tridentatum Hook. 497,
736. — II, 561.

— Trulla 497, 736. — II,
560, 561.

Catesbaea III, 59. — N. A.

II, 505.

Catha III, 439, 441.
Catharinaea Cavallii Negri*

73.
Catharinea 35, 51, 60.

— angustata Brid. 69.

— undulata 60.
Catillaria 15.

Cattleya III, ~u, 109, 112,
114.^

— Dowiana aurea X
labiata flamraea III,
113.

— bahiensis II, 199.

— Bowringiana III, 114.

— Claesiana III, 119.

— dolosa X Loddigesii

III, 120.

— Dowiana aurea III,
112.

— Fabia III, 113.

— Frankeana II, 199.

— Gaskelliana III, 115.

— Grossii X Brassavola
Digbyana III, 114.

— Hardyana III, 115.

— Harrisonia X Epiden-
drum ciliare III, 1 14.

— intermedia III, 114,
121.

— intermedia X Harri-
soniana III, 119.

— labiata II, 81, 199. —

in, ii5, ii6.

— labiata Warscewiczii
III, 109.

Cattleya Leopoldii P. 292.

— Loddigesii III, 58.

— Loddigesii X Harri-
soniana III, 119.

— Lueddemanniana alba
III, 114.

— Mantini X Downiana
aurea III, 114.

— Mendelii III, 113.

— O'Brieniana III, 120.

— Schroederae III, 58.

— Skinneri III, 115.

— Trianae III, 57, 113.

— Trianae X Laelia pur-
purata II, 109.

Caucalis 631.

— Scandix Scop. II, 537.
Caudalejennea samoana

Steph* 83.
Caulerpa prolifera 381.
Caulerpites tertiaria

Engeln* 381.
Caulopbyllum 438.

— thalictroidesfL .)Michx.
437. — III, 187, 426,
464.

Caulopteris 597. — II,
756.

— Sterzeli 638.

— varians 597.
Caustis dioica III, 81.

— flexuosa III, 81.

— peiitandra III, 81.
■ — recurvata III. 81.
Cavanillesia arborea II,

201.
Cavendishia N. A. II, 409.
Ceanotbus americanus II,

608. — P. 289.

— cubensis DC II, 485.
! Ceara II, 936.

Cecidomyia Meigen II, 606,
608, 609, 610, 612, 615,
621, 622, 623, 624, 625.

— Angelicae Beutenm*
II, 606.

I — Boebmeriae Beutenm.*
II, 606.

— chinqiiapin Beutenm.*
II. 605.

50 *

788

Cecidomyia Collinsoniae— Centaurea aterriina.

Cecidomyia Collinsoniae
Benimm* II, 605.

— crassulina Cock* II,
608.

— eupatorifloraeiJewtfewTO.*
II, 605.

— fulva Beutenm* II, 606.
■ — Meibomiae Beutenm*

II, 605.

— nyssaecola Beutenm*
II, 605.

— oenophila II, 608.

— piricola II, 619.

— pustuloides Beutenm*
II, 605.

— ramusculaBe«<enm:|; II,
605.

— rudbeckiae Beutenm*
II, 605.

— seminivora Beutenm*
II, 605.

— Triadenii Beutenm* II,
605.

— ulmi Beutenm* II, 605.

— unguicola Beutenm* II,
605.

— Verbesinae Beutenm*
II, 605.

— V ernomaeBeutenm* II,
605.

Cecidothrips ifte/f. N. G.
II, 613.

— bursaram Kieff* II,
613.

Cecidotrioza baccarum

ifteyf* II, 613.
Cecropia II, 201. — N. A.

II, 463.

— leucocoma Miqu. II,
837.

— palniata II, 822.

— peltata II, 822. — III,
255

— Woodii Schlechter 766.
Cedrela II, 115. — III,

252, — P. 131, 308.

— cbinensis Juss. III,
252.

— odorata Blanco II, -162,
899. — P. 312.

Cedrela Toona Roxb. II,

462, 892.
Cedrelopsis II, 226.
Cedroxylon 609.

— blevillense Lignier*
585.

— cedroides Goth* 567.

— inaequale Beiss* 609.

— transiens Goth* 567.
Cedrus III, 3.

— atlantica 584. — II,
901.

— Deodara II, 849, 901.

— Libani II, 150. 901.
Ceiba II, 190. - - III, 464.

— pentandra III, 464.
Celastraceae 596. — II,

246, 357. — III, 16, 58,
170, 219, 222, 223.
Celastrus articulatus III,
170.

— dispermus III, 168.

— paniculatus Willd- II,
852.

— scandens II, 68. — III,
680.

Celosia argentea L. II,
852.

— cristata II, 209.
Celsia coromandeliana

Vahl II, 557.
Celtis II, 125, 898. — N. A.

II, 535.

— australis L- II, 901. —

III, 336.

— cordata Desf. III, 336.

— glycicarpa P. 287.

— occidentalis L. 527. —
II, 605, 901, 984. — III,
336, 337.

— orientalis L. III, 336.

— reticulata Miq. III, 452.

— Soyauxii Eng. II, 236,
898.

— tracbytica EU. 561.

— Warneckei II, 235.
Cenangiuui paraense

P. Henn* 280.

— populneum Behm 149.
Oenchrus P. 319.

Cenchrus echinatus 11,207.

— linearis Lam. III, 94.
Cenococcum geophilum

Fr. 577.

Cenomyce Ach. 7, 9, 12.

Centaurea II, 100, 129. —
III, 176, 412. — P. 833.
N. A. II, 362, 363, 364,
365, 366, 367, 368, 369,
370, 371, 372, 373, ö74,
375, 376, 377. 378, 379.

— Adami X solstitialis
II, 377.

— affinis X Grisebachii
II, 374.

— alba Fleischm. II, 365.

— alba Lois. II, 366.

— alba Suter II, 365.

— alba P. 248, 249, 311.

— albiilora Strobl II, 377.

— alpestris Heg. et Heer
II. 372, 373.

— amara II, 365.

var- calabra N. Terr.

II, 366.

— — var. glabrata DC
II, 366.

— — var. nana Duby II,

365, 367.

— — var. saxicola Rouy
II, 367.

— — var. virens Paolucci
II. 366.

var.vivescensCaldesi

II, 366.

— amara DC. II, 366.

— amara Wk- et Lange II,
366.

— angustifolia Schrk. II,

366, 367.

— approximata Gren. II,
366.

— arenaria II, 378.

— arenaria X maculosa
II, 378.

— argentea Friv. II, 377.

— argyrolepis Hayek II,
366.'

— aspera III, 501.

— aterrima Hayek II, 369.

Centaurea aurantiaca— Centaurea Jacea X nigrescens.

7.89

Centaurea aurantiaca Centaurea decipiens I Centaurea Jacea var.

Panc. II, 377

— australis Panc. II, 376.

— austriaca Willd. II, 370.
— P. 248, 249.

— axillaris var. angusti-
folia Form. II, 371.

— var. nana Ten. II,
371.

— Bellardi Colla II, 367.

— Berheri F. Gerard II,
366.

— Biebersteinii DC- II,
375, 376.

canescens Wierzb. II,
365.

— decumbens Pers- II,
367.

— dissecta Ten II, 373,
374.

— dissecta Ten. X Teno-
reana III, 173.

— dubia Hayek II, 368.

— Endressi II, 369.

— eupaniculata Briqu. II,
375.

— Filarszkyi Gugl." III,

— Biebersteinii Form. II, 173

374.
— Bordzilowskii Lonacz*
III, 178.

Fleischen Hayek II,
365.
— fuliginosa Dollin II,

— bracteata Scop- II, 366. 3(2.

brevis Gdgr. II, 372. — fuscescens Panc. II,

— calcitrapa X micropti-
lon II, 364.

— calocephalall, 373,376.

— calvescens Pawc. II,
375.

— cana S. et S. II, 371.

— Candida II, 374.

— candidissima P. 104,
274, 312, 315.

— carniolica Host II, 368.

— ciliata II. 374.

— cinerea II, 373.

— coerulescens Willd. II,
375.

— collicola Gdgr. II, 372.

— collina L. II, 377.

— confusa üaZ. II, 374.

— conglomerata C- A.
Meyer II, 369.

— Corbariensis Sennen II,
378.

— coriacea TT. ÜC. II, 372.

— coronata Lamy II, 369.

— corsica Gdgr. II, 378.

— Cyanus L. 693, 722. —
II, 100, 618. — P. 248.

— Debeauxii II, 369.

— decipiens Fleischm. II,
366.

— decipiens flaZ. II, 366.

376.

— Gaudini Boiss. et Beut.
II, 366.

— Gaudini Müllner II,
366.

— Genersichii II, 370.

— glastifolia II. 575.

— graeca II, 374.

— gracilior Beuter II, 366,
367.

— granitica Mart. II,
371.

— Grisebachii Nym. II,
374.

— Hanryi II, 375.

— Haynaldii Hayek II,
365.

— hellenica Boiss. et Spr.
II, 377.

— incana .Bc/<&. II, 369.

— integrifolia Tausch. II,
368.

— inuloidesWiKfc. et Lange
II, 369.

— Jacea i. 750. — III,
8, 40. — P. 248.

— — subsp. amara Rouy
II, 366.

angustif olia Rchb- II, 366.
— var. argyrocoma
WaKr. II, 366.

— — var. banatica Wierzb.
II, 365.

— — var. canescens De
Not. II, 366.

— — vor. canescens Rouy
II, 365.

var. candicans Wimm.

II, 365.
vor. decipiens Thuill.

II, 365.
var. fimbrillata Ca-

motte II, 366.

— — var. Godoti Bouy
II, 365.

iw.grandifloraGröHa'.

II, 36-").

— — var. heterolepis
Vukot II, 365.

var. intricans Vukot.

II, 365.

— — rar. lacera Koch II,
365.

— — var. leiostemon
Peterm- II, 365.

— — var. longifolia Sc/t.
Bip. II, 366.

var. mollis DC II,

365.

— — rar. nigrescens
Godr. II, 366.

— — var. pectinata Neilr.
II, 365, 366.

— — var. pratensis Koch
II, 366.

— — var. Rocheliana
Heuff. II, 365.

— — var. serotina Coss- et
Germ. II. 366.

var. sublacera Schur

n, 366.
var. tomentosa Bouy

II, 366.

— Jacea X macroptilon
II, 365.

var. amara Briqu. — Jacea X nigrescens II,

II. 366. 365.

790

Centaurea Jacea— Oentaurion.

Oentaurea Jacea X oxy-
lepis II, 365.

— Jacea X phrygia II,
364, 366.

— Jacea X serotina II,
366.

— Jacea X subjacea II,
365.

— Kochii«/. Kerner II, 367.

— Kochii F. Schultz II,
368.

— Kotschyana Seidl. II,
100, 371, 372.

— lanceolata Hayek II,
377.

— Langii Friv. II, 371.

— latisquama II, 377.

— leptoloma Panc. II,
376.

— limbata Hffg. et Lk. II,
375.

— lingulata Lag. II, 371.

— Lugdunensis II, 371.

— macroptilon Hayek II,
366.

— maculosa Lam. II, 373,
375, 376.

— Magyarii Wagner II,
373.

— margaritacea P. 104.

— Mariolensis Rouy II,
376.

— matthiolaefolia Boiss. II,
371.

— Menteyerica Chaix II,
372.

— micrantha Hayek II,
376.

— microptilon Rchb.fil. II,
366.

— — war. Berheri Bow«/
II, 366.

— mixta Lindberg II, 364.

— montana II, 371.

— — vor. axillarioides
iorei II, 371.

yor. intermedia jRow«/

II, 371.

— mutata Menyharth II,
367.

Centaurea myriotoma F?'s.
d Pawc. II, 375.

— nemophila Jord. II, 367.

— nemoralis Jord II, 369.

— nervosa P. 249.

— Nicolai Baldacci II, 377.

— nigra All. II, 363.

— nigra Brandza II, 368.

— nigra Lam. II, 365.

— nigra Schur II, 367,
369.

— nigra P. 249.

- nigrescens Gren- et Godr.
II, 366.

— nigrescens Koch II, 367,
368.

— nigrescens P. 249.

— — var. Kochii Rouy
II, 367.

var. transalpina Koch

II, 367.

— oxylepis Hayek II, 366.

— pallidior II, 374.

— paniculata L. II, 374,
375, 376.

— pannonica Hayek II,
366.

— Pariatoris II, 373, 374.

— paucijuga II, 374.

— pedemontana Jord. II,
375.

— Phrygia Lap. II, 369.
— P. 248, 249.

— Pinae II, 376.

— pratensis Fleischm- II,
366.

— pratensis Rchb. II, 365.
- pratensis Thuül 11,367,
369.

— Preissmanni Hayek II,
365.

— pseudophrygia II, 370.

— pseudouniflora II, 370.

— pyrenaica Col. II, 369.

— pygmaea Chesn. II, 365,
367.

— ramosissima Tausch. II,
367.

— Peichenbachii Schur II,
375.

Oentaurea rhenana P. 248,
311.

— ruthenica IL 100.

— Scabiosa II, 575. — P.
249.

— Schmidtiana Tausch. II,
366.

— semi-Adami II, 377.
- seridis II, 378.

— serotina Bor. II, 367.

— serotina Garcke II, 366.

— sonchiiolia L. II, 378.

— sphaerocephala II, 378.

— spinabadia Bub. II, 375.

— stereophylla Gris-etSch.
II, 372.

— sterilis II. 364.

— stiriaca Hayek II, 365.

— Stoebe L. II, 375.

— subjacea Hayek II, 367.

— sempervirensXintyba-
cea II, 378.

— Tartarea Veten. II, 374.

— Tenoreana X dissecta
II, 378.

— Timbali Martr. II, 366,
367.

— tomentosa Fleischm.. II,
368.

— tomentosa Gilib. II,
365.

— transalpina Borb. 11,368.
— P. 248, 249.

— triniaefolia II, 100.

— uniflora II, 370.

— ustulata Hai. II, 364.

— vallesiaca P. 248, 311.

— variabilis II, 367, 368,
369, 370.

— variegata Lam. II, 371.

— Villarsii Mutet II, 372.

— viretorum Jord. II, 366.

— vochmensisHal.etBraun
II, 368.

— Weldeniana II, 867.
Centaurella Moseri Steud.

II, 426.

— paniculata Michx. II,
426.

Centaurion N. A. II, 426.

Centaurium — Ceramium vertebrale.

791

Centaurium Hill 111,211.

— N. A. II, 426.
Centella II, 538. — III,

340, 341.— N.A. II, 536.

— Ohamissonis II, 536.

— glabrata L. II, 536.

— glochidiata Drude II,
538.

— homalocarpa Drude II,
538.

— Solandra Drude II, 536.
Centradeniastrum Coqn. N.

G. III, 251. - N. A. II,
458.
Centranthus Calcitrapa
II, 611.

— longiflorus II, 128.
Centroglossa N. A. II, 308.
Centrolepidaceae III, 23.
Centrolepis II, 256.
Centroinadia 11, 187. —

N. A. II, 37!).

— Congdoni Smith II, 187.
Centrospermeae III, 221.
Cephalanthera II, 154.

— Austinae Heller II. 317.

— Ohloidophylla Rchb. f.
II, 317.

— cucullata Boiss-etHeldr.
II, 317.

— ensifolia III, 109.

— kurdica.Bornm.etKränzl.
II. 317.

— longibracteata Blume
II, 317.

— pallens III, 109.

— rubra III, 109.
Cephalaria rigida (Spreng.)

Sehrad. HI, 199.
Cephaleurus virescens II,

S47.
Cephalidaceae 233.
Cephaliophora 230.

— irregularis (Thaxter)
230.

— nigricans (Bainier) 230
280.

— tropica (Thaxter) 230.
Cephalocereus N.A. II, 348,

— \J\ei Gurke II, 102,201.

Cephalomyces nigricans

Bainier 230, 280.
Cephalopactis speciosalll,

109.
Oephalosporium acremo-

nium Cda. 150.

— repens 271.
Cephalothecium 155.

— roseum Cda. 155.
Cephalotaxus 463, 464,

611.

— francofurtana Kink*
561.

— Loossi Kink* 561.

— rotundata Kink.* 561.
Cephalotus III, 218.
Cephalozia Dum. 39, 63,

66, 67.

— ambigua C. Massal* 83.

— amplexicaulis Steph*
83.

— arenaria Steph* 83.

— asperrima Steph* 83.

— asprella Steph-:i: 83.

— aterriraa Steph* 83.

— Austini Steph* 83.

— Baumgartneri Schffn*
63, 83.

— bicuspidata (L) Dum.
47, 63.

— bifida Schreb. 54.

— borealis Lindb. 62, 64.

— Bryhnii 39.

— capillaris Steph* 83.

— connivens 64.

— crassicaulis Steph* 83.

— curvifolia Dicks- 47, 64.

— fissifolia Steph* 83.

— Francisci 62.

— furcifolia Steph.* 83.

— Gollani Steph* 83.

— granatensis Jack* 83.

— grossitexta Steph* 83.

— hakkodensis Steph* 83.

— hamatiloba Steph* 83.

— hypogyna Steph* 83.

— Kirkii Steph.* 83.

— lacinulata (Jack) Spruce
62, 64.

— Lammersiana 63.

Cephalozia Levieri Steph*
83.

— microphylla Steph* 83.

— Neesiana Steph* 83.

— ochiajana Steph." 83.

— ovalifolia Steph.* 83.

— patulifolia Steph." 84.

— (Prion olobus) Perssonii
C Jensen* 62, 64, 84.

— pleniceps 63.

— ßaddiana 64.

— recurvifolia Steph* 84.

— robusta Steph.* 84.

— serriflora 64.

— sphagnicola 64.

— spinigera Lindb. 62, 64.

— Sprengelii 64.

— striatula Jensen 62.

— subsimplex Lindb. 62,
64.

— submersa 64.

— symbolica 63, 64.

— Tnrneri 39.

— Welwitschii Steph.* 84.

— Willisia Steph* 84.
Cephaloziella Sp>-uee 63,

66.

— Sulliv&ntü (Amt.) Evans
49.

— trivialis Schffn. 65.
Ceramium 374.

— arborescens Ag. 376.

- Areschougii Kylin 376.

— circinnatum 344.

— decurrens 376.

— Delongchampii Chauv.
375.

— diaphanum Harv. et Ag.
375.

— fruticulosum Kütz. 376.

— radiculosum Grün. 376.

— Rosenvingii Petersen
376.

— rubrum (H.uds) Ag.
376.

— strictum Grev. et Harv.
375.

— tenuissimum (Lgb.) Ag.
375.

— vertebrale Petersen 375.

792

Gerastimn — Cercospora effusa.

Cerastium 504. — II, 100,
598. — N. A. II, 354.

— alpinum L. II, 598. —
III, 168.

— alsophilum Greene II,
145.

— arvense L. II, 175, 626.

— Edmondstonii (Wats.)
Murb. et Ostenf. II, 589.

— lanuginosum Willd. III,
168.

— — var. subtriflorum
Rchb. III, 168.

— latifolium Stein II, 354.

— lithopbilurn Greenm.
III, 167.

— nitidum Greene II, 145.

— pilosum II, 214.

— sonticum Beck v. Man-
nag* 11, 354. — III,
168.

— subtriflorum Reich. II,
354. - III, 168.

— subulatum Greene II,
145.

— triviale Link II, 556,
598.

— vulgare Eartm- II, 589.

— vulgatum fa- gracile
Hayek II, 354.

Oerasus avium III, 6.

— padus Del. III, 539.
Cerataulina II, 637.
Ceratiomyxa 227, 228, 825.

— II, 962, 964.
Oeratitis capitata Wied. II,

864.
Ceratium 365.

— biceps Clap. et Lachm.
365.

— eugrammum 365.

— furca 343, 365.'

- hirundinella 330, 345,
346.

— lamellicorne Kofoid
365.

— lineatum 365.

— seta (Ehrbg.) 365.

— trichoceros (Ehrbg. )'SQb.

— tripos 343, 365.

Ceratodon 35, 51. — II,
267.

— chloropus 39.

— conicus (Hpe.) Lindb.
55.

— grossiretis Card* 73.
Ceratolej eunea renistipul a

Steph* 84.
Ceratolobus concolor Bl.

III, 57.
Oeratomyces acuminatus

Thaxt. 279.

— ansatus Thaxt.* 280.

— denticulatus Thaxt- 313.

— elephantinus Thaxt. 313.

— falciferus Thaxt. 279.

— ornithocephalus Thaxt.
279.

— reflexus Thaxt. 294.

— rhynchophorus Thaxt.
294.

Ceratoneis arcus Ehrbg.

II, 640.
Ceratonia II, 993. P.

305.

— Siliqua L. II, 876, 993.
— 111, 432.

Ceratophorum setosum 0.

Kirchn. 145.
Ceratopkyllaceae 111, 15.
Ceratophyllum 575. — III,

395.

— demersum L- II, 580,
680.

— submersum L. II, 580.
(Jeratopteris thalictroides

(L.) Brongn. II, 795.
Ceratopycnidium Maubl.
848.

— citricolum 848.
Ceratosphaeria caespitosa

Lind et Vieiigel* 280.
Ceratosporium Schw- 269.
Oeratostoma üsterianum

Speg* 280.
Ceratostomella 157, 158,

258.

— coerulea 845.

— fuscolutea Rehm* 280.

— Pini 845.

Ceratostylis III, 121, 122.

- N. A. II, 309.
Ceratotheca sesamoides

II, 233.
Ceratozamia 458, 473. —

III, 71, 72.

-- mexicana 472.
Cerbera Manghas Uamilt.

457.
Oercestis II, 242.
Cercidiphyllum III, 225.
Cercidium N. A. II, 443.

— spinosum Tul. II, 443.

— viride Taub. LI, 443.
Cercidoxylon Zirkeli 600.
Cercis 598, 600. — N. A.

II, 443.

— Siliquastrum L. 517,
720. — III, 432, 601.

Cercopetalum N. A. II, 352.
Cercospora Fres. 127, 152,

268, 273, 817. — II,

910.

— aeruginosa Cooke 141.

— agnostoica Speg* 281.

— amoena Syd.* 127, 281.

— Amorphophalli Rat.*
139, 281.

— Anouaceae P. Henn*
281.

— Artbanthes P. Henn."
281.

- beticola 118, 120, 273,
780.

— Caladii Che. 127.

- Caladii P. Henn.* 127,
281.

— Cheaopodii Fr. 149,
152.

— coffeicola Berk. et Curt.
207, 817. — II, 879.

— Cordylines Speg* 281.

— Cybistacis P Henn.*
281.

— depazeoides (Desm.)
146.

— dubia (Ries) Bub. 145,
152.

— effusa (B. et C.) Ell.
141.

Cercospora i'rangulina — Cetraria nivalis.

793

Cercospora frangulina P.
Henn* 281.

— Gay-Lussaci Speg.1 281.

— gossypina 212.

— Helminthostachydis P.
Senn* 281.

— Hibisci Tr. et Earle
142.

— incarnata Ell. et Er.
127.

— incarnata P. Henn* 127,
281.

— inconspicuaPai. etHar*
139, 281.

— iponemensis P. Henn*
281.

— Kansensis Syd. 141.

— Lythri (West) Niessl
145.

— Malkoffii Bubäk 814.

— Melonis Cooke 145.

— MontrichardiaeP. Henn.11
281.

— nigritula Syd* 127,281.

— paulensis P Henn*
281.

— peronosporoidea Pat*
139, 281.

— smilacina Speg* 281.

— Raciborskii 819.

— sordida Sacc. 122.

— Stachytarphetae Ell. et
Er. 127.

— Stachytarphetae
P. Henn.* 127, 281.

— Theae Breda de Haan
218. — II, 848.

— Tiglii P. Henn* 281.

— Usteriana Speg* 281.

— Vataireae P Henn*
281.

— Volkameriae Speg* 281.

— yerbae Speg* 281.

— Zeyrae P fferm.* 281.
Cercosporella nivea Ell.

et Barth. 141.

— Sidae P flenn.* 281.
Cerefolium sativum Besser

II, 537.

— silvestre Besser II, 537.

Cereolus Koerb. 13.
Cereus II, 191. — III,
158, 159, 160. — P. 287.
- N. A. II, 348.

— anguinejis Gurke II,
124, 204.

— Anisitsii K. Sehn»/. III,
157, 159.

— Baumanni Lam- III,
161.

— Beneckii Ehrenb. III,
157.

— Catingae II, 201.

— chilensis II, 105.

— cubensis Zucc. II, 348.

— cutingicola Gurke II,
102.

— eriophorus Pfeift. II,
348.

— flagelliformis var. minor
Salm-Dyck III, 161.

— geonietrizans P. 277,
290, 306.

— giganteus III, 158.

— Gonzalezii III, 161.

— gracilis Mill. II, 348.
— Kalbreyerianus Werckle*

II, 198.

— paucispinus III, 158.

— peruvianus Fab. III,
158.

— Plumieri Roh Goss* III,
159.

— Pringlei Wats. HI,
159.

— repandus Haw. II, 348.

— serpentinus III, 161.

— Spegazzinii Web. HI,
159.

— splendens Salm-Dyck

III, 161.

— squamosus II, 201.

— subrepandus Haiv. II,
348.

— Thurberi Engelm. II,
192.

— triangularis Haw. III,
161.

— tricostatus Bot- Goss*
III, 159.

Cereus trigonodendron II,
200.

— Urbanianus G. et W.
III, 158.

— xanthocarpusX.Sc7tnm.
II, 204.

Ceriops Candolleana II,

884, 896.
Ceriomyces pusillus Sacc*

281.
Ceriospora bicalcarata

(Cer.) Sacc. 103.
Cerinthe N. A. II, 345.
Ceropegia N. A. II, 336.

— breviloba III, 147.

— contorta III, 146, 147.

— dichotoma III, 29.

— petiolata III, 146, 147.

— saxatilis III, 147.

— scabra III, 146, 147.

— Woodii Schlechter 514.
— III, 146.

Ceropteris II, 766.
Ceroxylon andicolall, 929.
Cerrena 124.
Cerrenella 124.

— farinacea (Fries) Murr.
282.

— Ha.verie\n(Berk) Murr.
282.

— subcoriacea .Mnrr.7: 282.
Cervantesia glabratatfta^*

II, 270.
Cestichis N. A. II, 309.
Cestrum III, 655. — P.

308. — N. A. II, 528.

— diurnum L- 458.
Ceterach II, 766.

— officinarum II, 737, 760.
Cetraria 8, 15.

— aculeata Fr. 23.

— cucullata Ach. 23.

— fahlunensis (L.) Schaer.
24.

— islandica Ach- 23.

— islandica L. 2, 3.

— lacunosa var. steno-
phylla Tuck. 22.

— microphylla Elenk* 25.

— nivalis Ach. 23.

794

Cetraria pinastri— Cheilantbes miorophylla.

Cetraria pinastri III, 688.
Ceuthocarpon sphaerelloi-

des Behm* 282.
Chadsia Jullyana D- et D.

435, 459. — III, 231.

— Perrieri 459. — III,

231.
Chaenocephalus III, 59.

— N. A. II, 379.
Chaenorrhinum Lge- HI,

328.
Chaenostoma Burkeanum

(Benth.) Wettst. III, 320.
Chaerefolium N. A. II, 537.
Chaeropbyllum 504. —

N. A. II, 537.

— AntbriscusCrfe.il, 537.

— bulbosum III, 341.

— CerefoliumCrfe.il, 537.

— macropodum P. 311.

— sativum Lam. II, 537.
Chaetacme aristata II, 237.
Chaetoceras II, 629, 631,

632, 637, 639, 994.

— decipiens II, 629, 994.

— didymum Ehrbg. II,
632.

— littorale Lemm. II, 637.

— sociale Länder II, 632,
997.

— subtile Cleve II, 639.

— teres Cleve II, 632.

— Wigbamii Brightw- II,
639.

Cbaetocbloa italica II, 41.
Chaetocladiaceae 233.
Chaetocladium 233.

— Brefeldii v. Tiegh. 234.
Cbaetodiplodia Caesal-

piniae P. Renn* 282.

— velata Rota-Uossi* 282.
Chaetomella Cavalli

Matür* 139, 282.
Chaetomium cbartarum

Ehrb. 147.
Cbaetopboma Biscutellae

0. Massal 145.

— incrustans Speg* 282.

— meliolicola Speg* 282.

— microspora Speg* 282.

Chaetophoma paulistana
Speg * 282.

— Penzigi Sacc. 219.
Cbaetopbora 335.
Chaetostoma III, 252. —

N. A. II, 458.
Chaetostylum 232, 233.
Cbalepoa III, 222.
Cbamaaloe II, 119.
Cbamaebatia 478.
Cbamaebatiaria 478, 479.

— III, 296. — N. A. II,
849.

Cbamaecrista III, 233. —
N. A. II, 443.

Cbamaecyparis 556, 642.
-- II, 214. — III, 60,
63. — N. A. II, 277.

— formosana Mats. III,
60.

— formosensis II, 214.

— Lawsoniana III, 61.

— pisifera S. et Z- 663.

— III, 61. P. 255,
293, 833.

— spbaeroidea Spach III,
62.

— tbyoides Brut II, 177.

— III, 62.
Chamaedorea 468.

— Ernesti Augusti III,
130, 131.

Chamaemelum X. A. II,
379.

— hygrophilum Bomm.
III, 173.

Cbamaemespilus 504.
Chamaenerion NA. II, 470.
Cbamaeorchis alpina III,

109.
Chamaephyton 479.
Chamaerbodos 479. — III,

296, 299. - N. A. II,

489.

— erecta Hook. II, 489.

— var. Nuttallii T. et Gr.
II, 489.

Chamaerops 596.

— humilis L- 563. — III.
122. — P. 103.

Chamaesipbon spbagni-

cola 68.
Champereia III, 221.
Champia 328.
Chaomantbera dependens

Höchst, in, 426.
Chara 329, 338, 352, 353,

380, 575, 613, 669, 670.
II, 97, 660, 966.

— aculeolata Ktz. 353.

— Braunii Gmel. 353.

— canescens Lois. 353.

— ceratophylla 352.

— coronata 352, 353.

— crinita Wallr. 352, 353.

— denudata A Br. 353.

— delicatula Agrdh. 353.

— papulosa Ktz. 353.

— polyacantha A- Br. 353.

— foetida 352.

— fragilis 352. — II, 966.

— furcata 352.

— gracilis 352.

— gymnopbylla 352.

— hispida 352, 353.

— intermedia 352.

— pygmaea Hartm* 576.

— quinqueradiataffarfo».*
576.

— stelligera 341.

— truncata Hartm* 576.

— Werneri Hartm* 576.

— vulgaris 353.
Characeae 328, 329, 339,

340, 343, 351, 380. —

III, 397.
Cbariessa Samoensis 457.
Charonectria succinea

(Bob. et Desm.) Sacc. 282.
Chartolepis Tournefortii

Jaub. et Spach II. 378.
Cbaulomoogra odorata

Roxb. III, 514.
Cheilantbes II, 766, 767.

— aemula Maxon* II, 790,
810.

— capensis II, 797.

— fragrans Book- II, 760.

— hirta II, 797.

— microphylla II, 790.

Cheilanthes niultifida — Chloris virgata.

795

Cheilanthes multii'ida II,
797.

— Parishii II, 789.

— peninsularis Maxon* II,
790, 810.

— Pringle! II, 790.
Cheiranthera III, 222.
Cheiranthus III, 190, 191,

192. - N. A. II, 401.

— Cheiri L. II, 596. —
III, 636.

Cheirolepis 628.
Cheiropleuria II, 7(>ö. 766,

778.
■ — bicuspis II, 766.

— cantoniensis II. 766.
Cheirostylis N. A. II, 309.
Chelepteris gracilis Eichw.

581.
Chelidonium majus L. 693.
II, 57«, 587. 720. -

III, 42(i. 527.
Chelone l»arbata III, 50.
Oheloneae III, 50, 222.
Chenopodiaceae II. 203,

359. — III, 22, 23, 24,

54, 171.
L'henopodium III, 567. —

- N. A. II, 359.

— album L. II, 261, 852.

— III, 9.

— — subsp. pseudo-Bor-
basii Murr II, 359.

— aristum L. III, 171.

— Borbasii J. Murr II,
359.

— botiys L. III, 171.

— foetidum Schrad. III,
171.

— glaucum L. III, 171.

— hybridum 521.

— pseudo-Borbusii Murr
II, 359.

— urbicum L- III, 171.

— Wolffii Slmk. III, 171.
Cherleria 454. — III, 669.

— sedoides var. ciliata
Hut. II. 355.

Chermes II, 606, 618.

— abietis II, 608.

Chermes Piceae Ratzbg. II,

618, 619.
Chesneya elegans II, 152.
Chilomonas 367.
Ohiloscyphns 39, 65, ü6.

— aculeatus Mitt. 66.

— amphibolus var. major
Gottsche 86.

— Beckettianus Steph*84;.

— cambewarranus Steph*
84.

— canariensis Bryhn* 54,
84.

Elliothii Steph* 84.

— filicicolns Steph* 84.

— floribundus Steph* 84.

— glaucescens Steph* 84.

— granditextus Steph* 84.

— hamatistipulus Steph.*
84.

— Jackii Schiffn- 57.

— Knightii Steph* 84.

— Liebmannii Steph* 84.

— Levieri Steph* 84.

— lobatus Steph* 84.

— lucidus Mitt. 86.

— magellanicus Steph. 84.

— Montagnei Steph.* 84.

— miradorensis Steph .*84.

— multifidus Steph* 84.

— Rabenhorstii Steph.*84:.

— similis Stejih* 84.

— tasmanicus Steph* 84.

— WebberianusStfe2?/i-*84.

— WeymouthianusS^ep/?.*
84.

Chimaphila umbellata 516.

— II, 170. — III, 644.
Ühimarrhis N. A. II, 505.
Chimonanthus chinensisll,

158.

— fragrans III, 161.
Cbiococca N. A. II, 505.
Ohiogenes hispidula II,

147.
Chionostomum C. Müll.

59.
Chirita N. A. II, 429.

— barbata Sprague III,
212.

Chironia III, 211. — N. A.
II, 427.

— transvaalensis Gilg III,
210.

Ühiropteris 622.
Chisocheton II, 461. —

N. A. II, 461.
Chitonia pedilia (B- et Br.)

Sacc. 261.

— poderes (B. et Br.) Sacc.
261.

Chitoniella 261.

— poderes (B. et Br.) P.
Herrn. 261.

Chlaenaceae II, 359. — III,

172, 219.
Chianas tettensis Klotzsch

II. 426.
Chlamydomonas 329. —

III, 592.

— nivalis 360.
Chlamydomucor Oryzae

195."
Chloidia N. A. II, 309.

— vernalis Lindl. II. 318.
Chloraea Austinae.4. Gray

II, 317.
Chlorangium 328.
Ühloranthaceae III. 224.
Chloranthus Oldhami II,

162.
Chlorella 327.
Chloridion Stapf II, 300.

— Cameronii Stapf II,
300.

Chloris N. A. II, 295.

— acicularis II, 839.

— divaricata R. Br. II,

838. — III, 93.

— Gayana Kunth II, 836,

839, 841. — III, 86.

— nigra II, 149

— petraea Thbg. III, 86.

— pycnothrix Tritt. III.
86.

— truncata II, 839. — III,
95.

— ventricosa II, 839.

— virgata Swartz II, 839.
— III. 86.

796

Chlorocodon Whitei— Chytroglossa Marileoniae.

Chlorocodon Whitei Hook.

fil. 474. — III, 582.
Chlorocyperus N. A. II,

289.

— mexicanus III, 83.

— Schweinitzii Torr. II,
289.

Chlorogalum pomeridi-

anum III, 104.
Chlorogonium 328.
Chlorophora excelsa Bth.

II, 898, 899.

— excelsa (Welw.) IL 103.

— tinctoria Gand. II, 899.
Chlorophyceae 327, 330,

336, 337, 338, 340, 345,

346, 347, 349, 350, 353.

— II, 270.
Chlorophycon II, 186.
Chlorophyllum II, 223.
Chlorophytum N. A. II,

304.

— tuberosum Baker II,
852.

Choananthus Renale N. G.
\. A. II, 280.

Choanephora 233.

Choanoflagellatae 366.

Chodatella javanica Ber-
nard* 382.

— quadriseta Lemmerm.
353.

— subsalsa 330.
Choiromyces 169, 235.
Choraelia II, 504.
Chomiocarpon quadratus

65.
Ohondrilla dentata Poir.

II, 387.
GhondYioderm&Lyallü\20.

— niveum Rost. 120.

— Trevelyani Rost. 120.
Chondrites 380.
Chondropetalum Fletcheri

III, 115.
Chondrorhyncha Chester-

soni III, 115.

Chondrus crispus 370.'
Chonemorpha N. A. II,
' 331.

Chonemorpha macro-
phylla Merr. II, 331.

Chorda II, 270.

Chordariaceae 370.

Choriophyllum N. A. II,
413.

Chorisandra Cymbaria III,
81.

— enodis III, 81.

— multiarticulata III, 81.

— sphaerocephala III, 81.
Chorisia N. A. II, 345.
Chorostate >Sydowiana

Sacc* 149, 282.
Chortolirion Berger N. 6.
II, 119, 553. -- III, 102.

— N. A. II, 304, 305.
Choysia ternata II, 193.
Christiana II, 533.
Christopteris II, 766, 778.

— cantoniensis (Bah) II,
778.

— Eberhardtii Christ* II,
778, 810.

— sagitta Christ II, 778.

— tricuspis (Hook.) II, 778.
Chromosporium formi-

carum Ferd. et Wge*
282.

— pachyderma Ferd- et
Wge* 282.

Chromulina 332, 703.

— ßosanoffii 366.
Chroococcaceae 345, 349.
Chroococcus anrantiacus

Bernard* 382.

— indicus Bernard* 382.
Chrysanthemum III, 176,

183, 409. P. 173, 219.

— alpinum Asso II, 389.

— aragonenseJLsso 11,389.

— Decaisneanum P. 173.

— frutescens 678.

— indicum P. 847.

— Leucanthemum L. 696.

— II, 617. — P. 847.

— macrophyllum III, 56.

— pallidum Mül. II, 389.

— rotundifolium P. 315.

— Robinsoni III, 57.

Chrysithrix capensis III,
81.

— junciformis III, 81.
Chrysobalaneae III, 223.
Chrysobalanoideae 478,

480.
Chrysobalanus Icaco P.

298.
Chrysochlamys III, 58. —

N. A. II, 431.
Chrysocoma tenuifolia II,

838.
Chrysodium subhaidin-

gerianum Fliehe* 564.
Chrysomonas flavicans

366.
Chrysomyxa 251.

— himalensis Barcl. 148.

— Ledi (Alb. et Schw.)
DeBy. 251.

— ledicola (Beck) larl.
251.

— Woronini Tranzschel
251, 253.

Chrysophlyctis endobio-
tica Schub. 113, 116,
828.

Chrysophyllum II, 898. —
P. 278.

— albidum Dun. II, 236,
898.

- Cainito II, 900.
Chrysopyxis bipes 330.
Chrysosplenium II, 146.

— III, 137.
Chrysothamnus pulcher-

rimus P. 143.
Chusquea II, 103. — P.

128, 300. — N. A. II.

295.
Chydenanthus III, 443

447.

— excelsus Miers III, 168,
442, 443, 445, 447.

Chylisma N. A. II, 470.
Chylocladia 328.
Chytridiaceae 1 13, 1 16, 119.

230.
Chytroglossa Marileoniae

III, 120.

Cibotiura Barometz — Cistaceae.

797

Cibotium Barometz J. Sm.

II, 781.

— — var. lampongense
v. A. v. R* II, 781.

— — var. setosum v. A.
v. R* II, 7S1.

— princeps II, 755.

— regale II, 754.
Cicendia exaltata II, 426.
Cicer arietinum II, 128.

— inflatum Eink* 561.
Cichorium II, 575.

— Endivia II, 138.

— Intybus II, 137.
Cicinnobolus Puttemansii

P. Herrn* 282.

— Ulicis Adams 108.
Cicuta liulbifera P. II,

971.

— virosa L. III, 536.
Cienfuegosia II, 190.
Cienkowskia reticulata

(Alb. et Schw.) Rost. 125.
Cilicipodium Cda. 269.
Cimicifuga 501.

— americanu Nutt. 443.
— III, 286.

Cinchona II, 826, 942.

III, 601. — P- 136. —
N. A. II, 505.

— Ledgeriana P. 136.

— regia P. 301.

— robusta III, 616.

— succirubraXLedgeriana
III, 610.

Cinchoneae III, 221.
Cincinnobotrys N. A. II,
458.

— Sereti De Wild. HL
251.

Cinclidotus i'ontinaloides
P. B. var. madeirensis
Card." 55.

— riparius (Host) Arn. 39.
Cineraria III. 180. — P.
. 306. - X. A. II, 379.

— longifolia Jacq. II, 390.
Cingularia typica 568.
Cinnamomum 560, 564,

596, 608. — III, 555.

Cinnamomum Camphora
Nees. et Eberm. II, 166,
931. — III, 230.

— Cecidodaphne II, 931.
■ — — var. caniflora II,

931.

— lanceolatum 614.

— peduneulatum Nees II,
166. — III, 626.

— polymorphum 564, 614.

— Scheuchzeri 589.

— sericeum Sieb. III, 230.
transitorium 564.

— transversum 564.

— zeylanicum Breijn. II,
610.

Cinnamosma N. A. II, 351.
Cintractia caricis (Pers.)
Magn. 142, 147.

— Cyperi-polystachyi
P. Herrn* 282.

Junci (Schio.) Trel 142.

— Merrillii P Henn* 282.
Cionandra glomerata P.

298.

— racemosa P. 159.
Cipuropsis N. A. II, 284.
Circaea alpina II, 213.

— Lutetiana L. III, 266.
Circinella 232, 233.

— minor Lendner* 233.
Cirrbaea II, 583.
Cirrhopetalum N. A. II,

309.

— boninense II, 166.

— Macraei III, 112.
Cirriphyllum Grout 59.
Cirsium II, 100. — III, 9,

394. — N. A. II, 379.

— acaule All. H, 380.

— acaule X pannonicum
II, 380.

— appendiculatum P. 152,
315.

— arvense L. 653. — II,
575. — III, 283. - P.
299.

— canum II, 575.

— canum X oleraceumll,
380.

Cirsium Erisitbales X Pan"
nonicum II, 380.

— erisithales X pauci-
florum III, 178.

— ferox DC II, 379.

— filipendulumXpalustre
II, 379.

— flavispinum X arvense
II, 379.

— longispinum Kerner II,
379.

— oleraceum X pannoni-
cum II. 380.

— palustre (L.) Sco}). II,
589.

— palustre X pannonicum
II, 380.

— pannonicum X acaule
II, 380.

— pannonicum X bellu-
nense II, 380.

— pannonicum X rivulare
X palustre II. 380.

— pauciflorum II, 100.

— pauciflorum Spr. var.
ramosum Ehek:-' III,
178.

— rivulare X canum II,
380.

— rivulare X palustre II,
380.

— rivulare X pannonicum
II, 380.

— Scopolii Ehek* HL 178.

— tataricum X palustre
II, 380.

Oissampelos III, 252.
Cissus IL 233. — N. A. II,
547, 548.

— arachnoides Hassk. II,
548.

— cymosa IL 281.

— flexuosa Turcz. II, 435.

— hederacea var. hirsuta
Purth IL 54s.

— populnea II, 285.

— quadrangularis III, 36.

— rotuudifolia III, 36.
Cistaceae II, 359. — III,

172, 219, 220, 223.

798

Cistanche lutea— Cladonia Monguillonii.

Cistanche lutea Link et

Hffsg. III, 268.
Oistus 38, 496. — III, 172.

285. — N. A. II, 359.

— albidus 496.

— Bourgaeanus 496.

— heterophyllus Des f. 496,

— III, 172.

— ladaniferus X lauri-
folius II, 359. — III,
172.

— ladaniferus X salviae-
folius II, 359. III,
172.

— monspeliensis 496.

— nummulariusL.III, 172.
- — parviflorus 496.

— salviaefolius II, 154.

— Souliei Coste* III, 172.

— Verguini Coste* III, 172.

— villosus II, 129.
Citharexylum II, 198. —

III, 343. — P. 288. -
N. A. II, 543.

— Urbanii 0. F. Schuh*

II, 198. — III, 343.
Citromyces tuberifer C.

Rostr* 159, 282.
Citrullus vulgaris II, 921.
Citrus II, 825, 864. — III,

402. - P. 132, 133, 137,

284, 312, 817.

— Aurantium L. 457, 655.

— II, 623. — III, 37.
- P. 302, 304.

Bergamia communis

III, 308.

— bigaradia Loisl. 655.

— III, 37.

— decumana L. III, 42.

— deliciosa Ten. var.
Mandei Riccob* III, 308.

— japonica Thbg. III, 308.

— Limetta Risso III, 37.

— Limonum L. 655. — P.
277, 288.

— Margarita Lour. III,
308.

— medica Risso II, 623,
865. - III, 37.

Citrus nobilis P. 302.

— trifoliata II, 165.
Cladina 15.

— alpestris Harm. 23.

— alpicola Wainio 23.

— amaurocraea Schaer. 23.

— coccifera Willd. 23.

— digitata Schaer. 23.

— flabelliformis Wainio
23.

— Floerkeana Sommf. 23.
■ — glauca 23.

— implexa Harm. 23.

— furcata Schrad. 23.

— macüenta Hoffm. 23.

— pityrea Fr. 23.

— squamosa Hoffm. 23.

— verticillata Th. Fr. 23.
Oladium III, 80.

— ensifolium III, 80.

— jamaieense III, 80.

— Maingayi III, 80.

— Mariscus R. Br. 627.

— restioi'des III, 80.

— Sinclairii III, 80.

— triglomeratum III, 80.

— undulatum III, 80.
Cladoderris Roccati

Mattir* 139, 282.
Cladocephalus 358.

— luteofuscus (Gm.) Borg.
358.

Cladonia Mill. 2, 8, 9, 12,
15, 17. — P. 128, 295.

— alpicola 9.

— ■ — var. foliosa fa. macro-
phylla Schaer 8.

— amaurocraea Flk. 7, 9.

— bacillaris fa. clavata
(Ach.) 7.

— bellidiflora 19.

— — var. coccocephala
Ach. 7.

— caespiticia Pers. 7.

— cariosa var. squamu-
losa Müll-Arg. 8.

— cenotea Ach. 7.

— cervicornis Schaer. 16.

— chlorophaea Flk. 8.

— coccifera 9.

Cladonia coccifera var-
stemmatina Ach. 7.

— cornuta (L.) 8.

— crispata var. graciles-
cens (Rabh.) 7.

var. virgata Ach. 7.

— cyanipes Sommrft- 8.

— deformis Hoffm. 7, 19.

— degenerans Flk. 16.
var. haplotea Ach. 8.

— delicata Ehrh. 7.

— destricta Nyl. 7, 9.

— digitata Schaer. 7, 19.

— fimbriata Hoffm. 9, 16.
var. apolepta 8.

— — var. cornuto-radiata
Coem. 8.

— — var. prolil'era Retz.
8, 10.

— — var. simplex fa. ma-
jor Hag. 8, 9.

var. simplex /«.minor

Hag. 7, 9.

— Floerkeana fa inter-
media Hepp 7, 10.

— foliacea var. alcicornis
(Lghtf.) 8.

— — var. convoluta
(Lam.) 8.

— furcata 19.

— — var. crispata 19.

— — var. Finkii 19.

— — var. infundibulifera
19.

— — var. pinnata Flk. 7.
var. racemosa Hoffm.

7.

— glauca Flk. 7, 22.

— gracilis var. chordalis
Flk. 8.

— — var. elongata
Jacqu. 8.

— implexa Harm.'1 25.

— incrassata Flk. 7.

— leptophylloides Harm*
25.

— macilenta var. styra-
cella (Ach.) 7, 10.

— Monguillonii Harm*
25.

Cladonia multiforiais — Claytonia perfoliata.

799

Cladonia multiformis
Merr* 19, 25.

— nemoxyna (Ach.) Zopf 2.

— pityrea 2'1.

— — var. cladomorpha
Flk. 8.

var. Zxv&ckhiiWainio

8.

— pleurota Flk. 7, 9.

— pyxidata var. cerina
Arn- 8.

var. neglecta Flk. 8.

— rangiferina L. 2, 3.

— rangiforrais Hoffm. 7.

— — var. pungens Ach. 7.

— squamosa rar. denti-
collis Floerke 22.

var. frondosa Nyl. 7.

— — var macra Jatta*
25.

— — var. multibrachiata
22.

— — var- phyllocoma
Wainio 22.

var- turfacea Eehm 7.

var. ventricosa Schaer.

7.

— strepsilis Ach. 8.

— subcorallifera Wainio*
26.

— tenuis {Flk.) Harm* 26.

— uncialis (L.) 2, 7.

— verticillata var. cervi-
cornis (Wainio) 8.

var. evoluta Th.Fr.8.

— — var. subcervicornis
(Wainio) 8.

Cladoniaceae 18.
Cladophlebis 591, 598, 622,
628, 639.

— Browniana 622.

— denticulata 622.

— Fontainei Setcard* 622.
Cladophora 355, 356, 682.

— II, 270, 994.

— aegagropila 356.

— alpina 356.

— basiramosa 356.

— crispula A. Vickers* 351,
382.

Cladophora l'racta 356.

— glomerata 335.

— pachyderma (Kjellm.)
356.

— petraea (Hansg.) 356.
Rechingeri Reinb.* 349,

382.
Cladosporium 159. — III,

621.
Cladosporium fulvum

Cooke 145.

— herbarum Lk. 118, 156,
170, 171, 174, 271.

Cladostephus 369.

— verticillatus 369.
Cladosterigina fusispori-

um Fat 822.
Cladothamnus II, 143.
Cladothrix lanuginosa P.

235, 277.
Cladoxylon Unger 552.

— mirabile 552.
Cladrastis tinctoria II, 171.
Claopodium aculeatum

Broth. et Par* 52, 73.

— crispulum (Br. jav-)
Broth. 52.

Claoxylon X. A. II, 413,

414.
Clarkia III, 266.
Clasterosporium carpo-

philum (Le.v-) Aderh. 217,

852.

— javanicum 824.

— putrefaciens 118, 120.
Clastobryam tonkinense

Broth. et Par* 52, 73.
ClastodermaDe Baryanum

Blytt 227.
Clathrella delicata (B. et

Br.) 135.
Clathrocystis aeruginosa

345.

— robusta Clark* 382.
Clatbropteris 613, 622.

— egyptiaca Seward* 622.
-- meniscioides 612.

— platyphylla 639.
Clathrospermum Vogelii

II, 233.

Clathrospora permunda

(Che.) Berl. 142.
Clathrosphaera Zalewski

269.
Clathrus crispatus Thwait.

135.

— crispus 261.

— Treubii Bernard 262.
Claudea 328.

Ciavaria 107, 121, 166.

— arborea Atk* 282.

— asperula Atk* 282.

— asperulans Atk.* 282.

— asperulospora.4<A,'.*282.

— asterella Atk* 282.

— biformis Atk* 282.

— Bourdotii Bres? 282.

— citriceps Atk* 282.

— condensata Fr. 144.

— flavula Atk.* 282.

— foetida Atk* 282,

— fragrantissimaj.^.*282.

- holorubella Atk* 283.

— lentofragilis Atk* 283.

— ornatipes Peck* 125,283.

— rosacea P. Renn* 138,
283.

- rufipes Atk* 283.

— subfalcata Atk* 283.

— testaceoflava Bres. var.
testaceoviridis Ath.*283.

Clavariaceae 101, 123.
Claviceps 177.

— Junci Adams 108.

— microcephala (Wallr.)
Tul U9.

— purpurea (Fr.) Tul. 1 1 5,
117, 142, 177, 845.

— Sesleriae Stäger 177.
Clavija614. — N.A.II,533.
Clavijopsis Staubi Schin-

deh* 614.
Clavularia Karst. 269.

— hippotnchoide* Lindau*
283.

Claytonia II, 143. — III,
281.

— filicaulis Dougl II, 480.

— flagellaris Bong. II, 480.

— perfoliata II, 186.

800

Cleidion— Coccocarpia Guyanae.

Cleidion N. A. II, 414.
Cleistanthus N. A. II, 414.

— Blancoi Vidal II, 414.

— pallidus F. Vitt. II, 414.
Cleistostoma ambiguum

II, 223.
Olematis II, 163, 711. —
N. A. II, 483.

— acapulcensis II, 822.

— americana II, 822.

— cirrosa P. 315.

— lasiandra II, 214.

— montana III, 57.

— orientalis II, 159.

— rhodocarpaEose II, 194.

— rufa Rose II, 194.

— Vitalba L. II, 155.

— Viticella L- II, 154.
Clemathoclethra Max. III,

198, 221.

— actinoidesüfaa.IH, 198.

— basioclada Max. III,
198.

— cordifolia Franch. III,
199.

— Faberi Franch. III, 198.

— Francheti Kom. III, 199.

— grandis Hemsl. II, 161.

— integrifolia Franch. III,
198.

Prattii Kom. III, 198.

— strigillosa Franch. III,
198.

— tiliacea Kom. III, 198.

— tomenteil a Franch. III,
198.

— Wilsoni Hemsl. II, 161.
Olemensia Merrill N. G. N. A.

II, 461.
Oleome III, 165. — N. A.
II, 352.

— procumbens Gris. II,
352.

— procumbens Sw. II,

352.

— pruinosa T. Anders. II,
251.

Clepsydropsis JJnger 550,
552, 553.

— kirgisica 553.

Olerodendron II. 157. —
III, 343. — N. A. II,
543.

— fallax Lindl. 458.

— formicarum Gurke III,
342.

— inerme II, 220.

— trichotomum Thbg. III,
343.

Clethra N. A. II, 359.

— tinifolia Sw. II, 900.
Clethraceae II, 359. -- III,

221.
Olianthus puniceus II, 263.

— puniceus albus III, 233.
Clidemia N. A. II, 458.
Cliffortia 478.
Climacium americanum

Brid. 69.
Olinodiplosis artemisiarum
Kieff* II, 613.

— ceüulüris Kie ff.* 11,613.
Clinogyne II, 244. — N. A.

II, 307.

— arillata K. Schum. III,
108.

Clitandra II, 331, 332, 937.

— N. A. II, 331.

— Arnoldiana£)eW?7(i III,
140.

Clitocybe 177, 258.

— cyathiformis('.BiiW./)149.

— infundibuliformis
(Schaeff.) QueT 106.

— nebularis 177.

— pulcherrima Pech* 283.

— subcyathiformis Peck*
125, 283.

Clitopilus curtipes Massee*
283.

— flavidus Massee* 283.

— subplanus Peck* 12Ö,
283.

Clivia 743. — III, 547.

— Gardneri 743, 804, 805.

- II, 690.

— nobilis Lindl- II, 564.
Clonostachys Simmonsii

Mass. 108.
Olosterium 364.

Closterium bogoriense
Bernard* 382.

— Calamus 364.

— garoetianum Bernard*
382.

— giganteum Bernard*
382.

— Koernickei Bernard*
382.

— Novrae-Angliae Cwhm*
364, 382.

— Ralfsii 364.

— substrigosumWes£*382.
Clusia III, 30, 58. — N. A.

11,431.

— insignis Mart. II, 847.

— parviflora II, 953.
Clusiaceae III, 213.
Cluytiandra N. A. II, 414.
Clytostoma callisteiüoides

P. 131.
Cneorum III, 219.
Cnestidium II, 168. — 111,

185.
Gnicus argyracanthus C

B. Gl. II, 557.

— Benedictus 451. — II,
575. — III, 489.

— involucratus DG II,
555.

— pungens Willd. II, 379.

— undulatus var. mega-
cephalus Gray II, 380.

Oobaea Cav. HI, 278.

— Neck. HI, 278.

— acuminata DG II, 478.

— campanulata Hemsl. II,
478.

— macrostoma Benth. II,
478.

— macrostoma Pav. II,
478.

— minor Mart. II, 478.

— scandens Cav. II, 478,
581. — III, 153.

— stipularis Benth. 11,478.

— Trianaei Hemsl. II, 478.
Coccinia N. A. II, 405.
Coccocarpia Guyanae P.

297.

Coccoeypselum — Coelogyne sulplmrea.

801

Coccoeypselum X. A. II.

505.
Coccoloba X. A. II, 479.

— uvifera L. II, 822, 900.
— P. 279.

<Joccomyces Boydii A. L.
Sw.* 108, 283.

— yerbae Speg* 283.
Cocconeis communis Heib-

II, 630.

— placentula Ehrbg. II,
629, 634.

— praecellens Pant. II,
643.

— — var. paucistriata
Forti* II, 643.

Oocconema alpha Heinzer-
ling* II, 630, 643.

— cistula Ehrbg. II, 630.
helvetica Grün- II, 630.

— lanceolata Ehrbg. II,
630.

— stomatophora Grün II>
630.

Coccosporium Cda. 269.
Coccothrinax II. 196. —

III, 130. — \. A. II,
319.

— subgen.Oothrinax.Becc.*

II, 319.

Cocculus III, 252, 253.

— Leaeba DO. II, 231.—

III. 252.
Coccus II, 608.
Cochlearia 504. — N. A. II,

402.

— aquatica Eaton II, 404.

— Arraoracia L. II, 80,
138, 404.

— officinalis L. II, 590,
59S.

Cochlioda Noetzliana X
Odoutoglossum cirrho-
sum III, 116.

— Noetzliana X Odonto-
glossum luteopurpu-
reum III, 113.

— Noetzliana X Odonto-

Cochlioda vulcanica X

Odontoglossum Harry-

anum III, 114.
Cochliostema Jacobinia-

num C. Koch et Lind-

III, 79.
Cochlodinium longum

Lohm* 333, 382.

— pellucidum Lohm* 333,
382.

Cocblospermaceae 111,220,

223.
Cochlospermum gossy-

pium II, 233.
Cocos II, 830, 853. — III,

496, 560. - P. 103, 133,

291.

— coronata II, 201.

— nueifera L. 458, 502.
— 11,206,829, 899, 921,
923. — III, 46, 130, 436,
581. — P. 136, 203,313,
823.

Codiaeum II, 209. - ■ III,
46.

— interruptum II, 209.

— variegatum Blume 457.
Codium isthmocladum A.

Vickers* 351, 382.
Codonacanthus pauci-

florus II, 214.
Codonanthe III, 212.

N. A. II, 429.

— i'lorida Pampanini* III,
212.

Codonopsis Wall. II, 129,
156. 158. — III, 162,
163.

- affinis //. /. et Th. III,
163. 164.

— Benthamiana Hook, f.
et Th. III, 162, 164.

— cardvophylla Diels III,
162. 164.

— clematidea Clarke III,
161.

— convolvulacea KurzlH,
161, 163.

glossum Pescatorei III, i — cordifoliaüTom. III, 164.
109. I — deltoidea III, 163.

Botanischer Jahesbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 26

Codonopsis foetens Hook-
f. et Th. III, 162, 164.

— GriffithiiCTorÄ-eIII,l64.

— Henryi Oliver III, 163,
164.

— lanceolata Benth. III,
162, 163.

— micrantha III, 162.

— mollis III, 162.

— ovata Benth. III, 162,
164.

— pilosa III, 163.

— purpurea Wall. III, 163,
164.

— rotundifolia Benth. III,
162, 164.

— silvestris üTo>w. III, 164.

— subscaposa Korn. III,

161, 163, 164.

— subsimulex Hook. f. et Th.
III, 163, 164.

— Tangshen Oliver III,

162, 164.

- thalictrifolia Wall. III,
162, 164.

— tubulosa Korn. III, 163.

— ussuriensis Hemsl. III,
162, 163.

— vinciflora Korn. III,

161, 162, 163.

— viridiflora Maxim. III,

162, 164.

— viridis Wall. III, 163,
164.

Codosiga 366.
Coelanthum E- Meg. III,

139.
Coelia Baueriana Ldl- III.

118.
Coelococcus III, 546.
Coeloglossum ' viride III,

109.
Coelogyne III, 122.— N.A.

II, 309.

— barbata Ldl III, U7.

— Mooreana III, 114.

— perakensis Rolfe III,
109.

— sulpburea Hook. fil. II.
309.

.1.12.1 51

802

Coelosphaerium— Collinsieae.

Coelosphaerium 380.

— pallidum 330.
Coffea 472. — II, 249,

251, 610, 820, 826, 828,
829, 877, 879. — III,
306, 514, 515, 535. —
P. 139, 207, 288, 292,
293, 300, 304, 314, 315,
316. - II, 847.

— arabica L- II, 878. —
P. 221, 284, 302, 309,
323.

— bengalensis II, 224.

— Bonnieri Dub. II, 879.

— bukobensis II, 878, 879.
■ — canephora II, 878.

— congensis II, 878, 879.

- P. 202.

— Gallienii Dub. II, 879.

— Humboldtiana Baill. II,
879.

— humilis A. Chev. II, 248,
879.

— jasminoides 472.

— liberica Hiern II, 826,
879. - Ell, 307. P.
221.

— — var. piriformis
Fauch. II, 879.

— Mongeneti Dub. II,
879.

— robusta II, 878, 879. —
P. 221.

— Wightiana 472.
Coix II, 920.

— lacryma L. II, 209.
Cola II, 820, 885, 949. —

III, 431, 464, 467. —
N. A. 11, 529, 530.

— acuminata R. Br. II,
886. — III, 429, 430,
431, 463.

— astrophora III, 431.

— Ballayi II, 886. — III,
430.

- cordifolia Schum. II,
898.

— sublobata Warbg. III,
431, 463.

- Supfiana Busse III, 431.

Cola vera K. Schum,. III,
429, 430, 431, 463.

Colchicum II, 42. - HI,
547. - N. A. II, 305.

— autumnale R. II, 45,
565. — III, 105, 106.

— byzantinum Ker-Gawl-
III, 106.

— Freynii Bomm. II, 305.
Coleanthus subtilis P. 106,

320.
Coleochaetium Henauldii
Broth.* 73.

— subappendiculatum
Broth* 73.

Coleochila 43.
Coleogyne 478.
Coleopterocecidium 11.615.
Coleosporium Cacaliae
(DC) 148.

— Campanulae (Pers-^Pet'.
141, 146.

— Euphrasiae (Schum )
Wint. 146.

— Melampyri (Rebent)
Kleb. 146.

— Merrillii P. Renn* 283.

— Nambuaoum P. Renn.
303.

— Petasitis (DC)Le'v. 148.

— Senecionis (Pers.) Fr.
148.

— solidaginis^'c/tH;.^ Thiim.
141.

- Telekiae (Thuem.)Bubäk
148.

— Tussilaginis (Pens.) Per.
148.

— Verooniae B. et C 141.
Coleostephus N. A. II, 380.
Coleroa atramentaria(CÄ;e.)

Schroet. 146.

— ventnrioidesSpesclmew*
219. — II. «48.

Coleus III, 228. — X. A.
II, 436.

— barbatus Benth. HI,
412.

— elongatvis Trimen III,
412.

Colignonia III, 262. — N.

A. II, 467.
Collema Hill. 10, 15.

— cyathodes Nyl. 23.

— glaucocarpum Hue* 10.
26.

- melanochlorum Hue*
10, 26.

— nigrescens Ach. 23.

— occultatum Bagl. 22.

— omphalarioides Harm*
23.

— rupestre Wainio 10.

— thysanaeum Nyl. 23.

— verruculosum Arn. 23-.
Colletonema vulgare

Thwaites II, 630.
Colletotrichum 823, 849.

— ampelinum Cav- fa*
ramicola Yogi* 104,283.

— Camelliae Mass. 218,
219. — IL 848.

— coffeaüum Noack 207.

— Elasticae Tassi 824.

— Elasticae Zimm. 211,
«24.

— falcatum Went 849. —
IT, 875.

- Fici Koorders 211, 824.

— Gossypii II, 901).

- hedericola Laubert «-IS»,
850.

— Heveae Petch 135.

— Lindemuthianum 108
142, 274, 849.

— luxificum Hall et Drost*
267, 283.

— Lycopersici ehester 2 1 6.

— Malvarum (A. Br. et
Casp.) Southw. 108.

— Metake Sacc* 283.

— Papaj'ae P. Henn': 283.

— Stanhopeae P Renn.*
283.

— Tril'olii Bain. et Essary
849.

— Vitis Istv. 267.

— yerbae Speg* 2s.",.
Collinsia III, 50.
Collinsieae III, .10

Collinsonia canadensis— Coniosporium.

803

Collinsonia canadensis L.
II, 605. III, 467,

575.
Collodictyon 327.
( ollomia II, 585. N. A.

II, 178.

— gracilis humilior Hook.

II, 478.

— grandiflora II, 584.
Collybia acuminata Mas-
see* 283.

- cirrhata(Pers.yl49, 175,
698.

— cirrata (Schum-) Quel.
106.

— dryophila (Bull.) Fr.
025.

— eurhiza (Berk-) v. Hohn.
258.

— sparsibarbis B. et Br.
258.

— subsulphu rea Beck 1 42.

— tuberosa (Bull.) var.
etuberosa Jaap* 145,
283.

Colobachne 520.
Colobanthus 520.

— crassifolius II, 267.

— subulatus 519.
Colocasia II, 217.

— antiquoruni Schott II,
102, 20(i.

— esculenta Schott <>47.

III, 77.
Colorabo III, 492.
Colpomenia sinnosa 369,

370.
Coltricia 124.
■ — benguetensis Mwrrill*

283.

— cinnamomea 135.
Coltriciella 124.
Colubrina N. A. II, 485.

— asiatica II, 220.
Columellia III, 222.
Columnea N. A. II, 429.

— raagnifica Klotzsch HI,
212.

Coluraniferae III, 15.
Coluria 479.

Colurolejeunea Le Rati

Steph* 84.
Colus Gardneii (Berk.)

Ed. Fisch. 135.

— hirudinosus (Tut) Cav.
et Seh. 105, 262.

Colutea 714.

— arborescens L. 714. —
III, 432.

Coluteocarpus Vesicaria

II, 155.
Comarella III, 296, 299.
Comarum III, 296.

— palustre L. 629. — P.
306.

Comatricba nigra (Pers.)

143.
Combretaceae II, 250, 252,

359. — III, 173.
Combretum N. A. II, 359.

— argenteum III, 575.

— erianthum III, 575.
— ■ extensum III, 575.

— Galpinii Engl, et Biels
II, 623.

— Hartmannianum II,
234.

— latifolium III, 575.

— micranthum II, 232.

- oblongum F. Hoffm. II,
624.

— olivaceum Engl. II.
624.

— paniculatum II, 235.

— racemosum Beauv. III,
173.

— Raimhanltii III, 575.

— sexalatum Merr. II,
455.

— sundaicum Miq. II, 892.
— III. 173. 533, 542,
575.

— trichantbum II, 250.
Commelina X. A. II, 285-
Commelinaceae II, 200,

242, 285. - - III, 54, 78.
Uommersonia echinata
Forst 4Ö7.

— odorata Aubl. HI. 132.
Commiphora X. A. II. :147.

Commiphora africana II,
232, 233.

— opabalsamum II, 234.
Comocladia III, 58. N.

A. II, 328.

— integrifolia Jacq. II,
900.

— velutina Brut. II, 900.
Compositae 510. — II,

166, 169, 189, 196, 200,
204, 223, 250, 252, 266,
360, 995. — III, 59,
173, 547.

Conandrium Mez III, 258.

Conandron ramondioides
II, 214.

Condurango III, 555, 559.

Conferva 354. — II, 115.

— gyrans Clark* 382.
Confervaceae 336, 343.
Confervoideae 354.
Congea N. A. II, 543.

— tomentosa II, 223.
Conida clemens (Tut.)

Mass. 144.

Conidiobolus 164.

Coniferae 455, 524, 565,
596, 598, 614. — II,
68, 116, 179, 215, 221,
251, 277. - III, 14, 60,
220.

Coniocybe 15.

— furfuracea (L.) 149.

— pallida Fr. 23.
Coniogramme fraxinea

(Don) Diels II, 794.
Coniolopsis semilaccata

135.
Coniophora 118, 226.
- Bourdotii Bres. * 283.

— cerebella 224, 226, 835.

— fumosa Karst. 259.

— Petersii (B. et C.) v. H.
et L. 283.

Coniopborella 1 IS.

— olivacea (Fr.) Karst.
259.

(Joniopteris 591.

— bymenoph3'lloides 628.
Coniosporium 212.

51*

804

Coniosporiuni Ammophilae — Coptis trifolia.

Coniosporium Ammo-
philae Jaap* 283.

— limoniiforme Syd* 283.
Coniothecieae Lindau2Q8,

269.
Coniothecium Cda. 269.

— Abietis Lindau* 284.

— ampelophloeum Sacc.
27!.

— Anaptychiae Lindau*
284.

— radians Sacc* 284.
Coniotbyrium 203, 267,

843.

— Amphistelmae PHenn*
284.

— Ooi'feae P. fle»m.*284.

— concentricum (Desm.)
Sacc. 141, 142.

— Connari P. Henn* 284.

— (Joptospermae P. Henn*
138, 284.

— diplodiella 267, 821,
848.

— Gmelin ae P. Henn* 284.

— Hariotianum iSpe^.*284.

— Herraniae P. Henn*
284.

— mate Speg.* 284.

— maticola Speg* 284.

— Obionis Jaap* 2X4.

— Oroxyli P. Hm«.* 284.

— paulense P. Henn.* 284.

— pirinum Sacc 209, 272.

— rhamnigenum (Sacc.)
Bubäk* 118, 284.

— Stanhopeae P. Renn*
284.

— tumefaciens Güssow*
208, 284.

— yerbae Speg* 2X4.
Conjugatae 327, 328, 329,

336, 337, 338, 343, 346.
347, 34S, 350, 362.
Conium III, 432.

— maculatum L. 11, 137,
846. III, 341, 416'
489.

Conocepkalns N. A. II,
L63.

Connaraceae II, 168, 394.

— III, 23, 58, 185, 219.
Connarus II, 168. — III,

180. — P. 284. — N. A.
II, 394.

— guianensis Lamb. II,
394.

— Pottsii S. Wats. II,
394.

— Smeathmannii DC III,
185.

— tonkinensis Lecomte'lll,
185.

Conocarpus 47X, 480. 481.

— ereetus L. 519. — II,
899.

Conomorpha A. DC III,

259.
üonostomum peranguhi-

tum Card* 74.
Conringia Heist. III, 192.
Contarinia II, 615.

— cocciferae II, 615.

— pulckerrima Rieft'. II,
613.

— torquens II, 619.

— viticola II, 616.
Contortae III, 16.
Convallaria 692. — II, 168.

— III, 4. N. A. II,
205.

— majalis L. II, 168, 558.

— III, 103. — P. 539.
Convallarieae III, 102, 103.
Convolvulaceae II, 234,

246, 394. - - III, 16, 23,
59, 185, 222.
Convoluta 362.

— paradoxa 362.
Oonvolvulus II, 188, 582.

- III, 5, 186. — P. 276.

- N. A. II, 395.

— acuminatusFoi. II, 396.

— angustissimus R. Br.
II, 395.

— arvensis L. II, 255.

— batatas II, 822.

— bufalinus Lour. II, 398.

— luteolus var. solanensis
Jepson II, 395.

Oonvolvulus mammosus
Lour. 541.

— Nuttallii Greene II, 395.

— nyctagineus Greene II,
395.

— occidentalis II, 395.

— — var. angustissima
A. Gray II, 395.

— — var. tenuissima A.
Gray II, 395.

- phyllomegos Vell. II,
397.

— pilosus Wikstr. II, 396.

— repens L. II, 395.

— sepium var. repens
Gray II, 395.

Conyza X. A. II, 380.

— Nandini X Erigeron ca-
nadense II, 380.

Cookella paulistana Speg*

284.
Copaiba Mopane (Kirk) O.

Ktze. II, 624.
Copail'era P. 320.
Copaiva III, 631.
Copaivabalsam III, 487.
Copernicia cerifera Mart.

II, 102, 929. - III, 687.
Coprlnus 15], 171, 174. —

II, 859.

— cordisporus Gibbs*2bl,
284.

— tigrinellus Boud. 107.
Copromonas Dobell N. G.

367.

— subtilis Dobell* 367,
382.

Coprosma 519, 520, 697.

— II, 264. — III, 3. —
N. A. II, 505.

— Baueri III, 305.

— foetidissima II, 262.

— propinqua A. Cunn. II,
263.

— repens 520.

— tenuifolia II, 262.
Coptis 436, 501. — III,

287.

— trifolia Salisb. II, 142.

— III, 426.

( 'optosapelta— Coronopus integrifolius.

805

Coptosapelta III, 30 t.

— flavescens Korth. III,
307.

— Griffithii Hook. III, 307.

— Hamrnii Yal. III, 304,
307.

Coptosperma nigrescens

P. 284, 305.
Corallina II, 270.

— mediterranea 334. —
II, 730.

Corallitiaceae 337, 339,
349. 350, 378, 379, 380.
Corallorrhiza II, 143.

— innata III, 109.
Corchorus II, 1 90. — N. A.

II, 533, 534.

— acutangulus II, 231.

— antichorus II, 232.

— capsularis II, 905.
Cordaitaceae 593.
Cordaites 622.

— borassifolius P. 617.

— Hislopi 622.
Cordaitinae III, 14.
Cordeauxia edulis Hemsl.

II, 252, 870. — III, 232.
Cordia II, 194. — III, 59.

— P. 288. \. A II,
345.

— ab3Tssinica R. Br. II,
898.

— Collococca L II, 899.

— gerascanthoides H. B.
K. II, 900.

— gerascanthus II, 899.

— microphylla Gri's. II,
345.

- Myxa L- II, 852.

— senegalensis Jus§. III,
155.

— umbraculifera P. 293,
316.

— UDyorensis Stapf II,
898.

Corditubera microspora
v. Höhn.* 258, 284.

Cordyceps Huberiana P.
Henri* 284.

— Klenei Pat.:: 159, 284.

Cordyceps ophioglos-

soides 109, 177.
— Voeltzkowii P. Henri*

138, 284.
Cordyline 468. — II, 209.

— III, 107.

— Bruanti III, 107.

— cannaefolia III, 107.

— Dallieri III, 107.

— dracaenoidis P. 281.

— elegantissima III, 107.

— indivisa Doucetti III,
107.

— terminalis Kunth 458.

— II, 206. 209.
Coreraium Link 269.
Coreopsis N. A. II, 381.

— major rar. Oemleri
Britton II, 381.

Semleri Ell. Sk. II,
381.

— senifolia rar. stellata
T. et G. II, 381.

- stellata Nutt. II, 381.

- tinctoria 653.

— rar. prolifica III,

183.
(Jorethromyces Latonae

Theiss. 317.
Coriaria rrn-rtifolia L. II,

S96. — III. 471.
Coriolellus 124.
Coriolopsis 124.

— aneba 135.

— bataanenis Murr HP 284.

— Copelandi Murrill* 284.

— dermatodes 135.

— fulvocinerea Man-*
285.

— nigrocinerea Mun*.*285.

— melleoflava Murrill*
285.

— subcrocata Mttr rill* 281.

— suglabrescens Murr*
285.

— Taylori Murr.* 285.
Coriolus 124.

— atypus 135.

— Clemensiae Murrill*
285.

Coriolus Currani Murrill*
285.

— maxiraus 135.

— murinus 135.

— pargamenus (Fr.) Rat.
141.

— perpusillus Murrill*
285.

— rubritinctns Murrill*
285.

— subvernicipes Murrill*
285.

— vernicipes 135.
Cormacaurioxylon cras-

seradiatum Lignier* öSi,
585, 586.

— divesence Lignier* 585.
Cormopbyta III, 14, 15.
Cornaceae II, 160, 398. —

III, 186, 220, 221.
Cornicularia 15.

— aculeata 2.
CornulariaPersicaef.S'c/i*'-.^

Sacc. 142.
Oornus 759. — II, 160,
898. — III, 187, 221. —
N. A. II, 398, 399.

— alba 691.

— canadensis II, 147.

— circinata P. 240, 301,
315.

— mas L. III, 9, 633.

— sanguinea L. III. 28.

— sericea III, 187. 4(54.

— stolonifera L- II, 605.
Cornutia III, 343. - X A.

II, 543.

Corokia III, 219. 221.
Coronilla X. A. II, 443. —

— montana P. 158, 299.

— varia L. III, 432
Coronopus (L.) Gacrtn. II,

103, 130, 131, 402. —
-III. 193, 194. 195.583.

— didymus (L.) Sm. III,
131, 194.

— Englerianus Muschler

III, 194, 195.

— integrifolius DC. II,
131. — III, 194, 584.

806

Coronopus lepidioides — Corylus.

Coronopus lepidioides
0. Ktze. II, 181, - III,
195.

— linoides (0. Ktze.) III,
194.

— niloticus Desv. II, 131.
— III, 195.

— patagonicus Muschler
III, 195.

— phytidocarpus Maclow-
sky III, 195.

— serratus Desv- III, 195.

— verrucarius Muschler et
Thell. II, 131. — III,
194, 583.

— violacens O. Ktze. II,
131. — III, 194.

Corrigiola N. A. II, 354.

— littoralis 454.
Corticium 107, 112. 118,

165, 259.

— albo-cremeum r. Höhn,
et Litsch* 118, 285.

— Allesche ri Eres- 291,
259.

— atrovirens Fr. 144.

— — var. caerulescens
(Karst.) Bres. 144.

— botryosum Bres. 1 1 3.

— Oaesalpiniae P. Renn*
285.

— caesio-cinereum v. JET.
et L* 112, 260, 285.

— calceum Fr. 132.

— centrifugum (Lev.)Bres.
144.

— coronatum (Schroet) v.
H. et L. 113.

— Coronilla v. H- et L.
113.

— cremeo-album v. Höhn.
et Litsch* 118, 285.

— deeipiens v. Höh», et
Litsch.* 260.

— Eichlerianum Bres. 259.

— euphrasiae (Lagerh.) v
Höhn. 144.

— expallens Bres.* 285.

— filium Bres.* 285.

— l'lavescens Bon. 259.

(Jorticium frustulosum
Bres. 259.

— giganteum Bert;. 174.

— giganteum Fr. 142.

— griseo-canum Bres. 113.

— helveticum (Pers) v. H.
et L. 259.

— ■ javanicum Zhnm. 132,
133, 219, 823. — II, 848,
879, 944.

— lacunosum B- et Br.
259.

— lilaceo-fuscum 130.

— luteum Bres. 259, 291.

— macrosporum Bres*
285.

— maculaeforme Fr. 113.

— minutissimum v. Höhn-
et Litsch* 118, 285.

— molle Fr. 259.

— muscicola Bres. 113.

— mutabile Bres. 1 14,
259.

— niveo-cremeum v. Höhn,
et Litsch.* 118, 260, 285.

— niveum Bres. 259.

— ochroleucum Bres. 113.

- Petersii B. et O. 259,
283.

- polygonium Pers. 113.

— praetermissum Karst,
var. Bourdotii Bres* 259,
285.

— serum Pens-. 259.

— sordidum Karst. 259.
-- sphaerosporum (Maire)

v. H et L. 113, 259.

— suboronatum v. H. et L.
113.

— snblaeve Bres. 259, 305.

— submutabile v- H. et L.
113.

— sulphurellum c. Höhn,
et Litsch." 113, 118, 285.

— trigonospermum Bres.
259, 318.

— tomentelloides v. H.
et L. 259.

— tulasnelloideum v. H.
et L[ 112, 260, 285.

Corticium vagum B. et C-

216.
Cortinarius 174, 651.

— callisteus 180.

— coerulescens 180.

— fulmineus 180.

— rubipes 180.
Cortinellus mc estus Feit;/:1-

110, 285.
Coryanthes II, 583.

— maculata Hook. III, 1 18,
122.

— leueorys Rolfe III, 122.

— splendens III, 119.
Corybas N. A. II, 309.
Corydalis 696. - - II, 717.

— III. 4, 569. - N. A.
II, 473.

— Alleni III, 270.

— ambigua II, 717.

— cava 696. — II, 718.
- III, 270, 634.

— chaerophylla DC. II,
555.

- fabacea 696.

— densiflora X intermedia

II, 473.

— Hausmann i Klebelsberg*

111, 271).

— intermedia X densiflora

III, 270.

— pumila 696.

— rutaefolia Sibth. II, 556.

— solida 8m. 696.

— Vernyi II, 717. 718. —
III, 270.

Corylopsis glandulifera
Hemsl II, 161.

— Henryi Hemsl- II, 161.

— himalayana II, 224.

— — var. manipurensis
Watt II, 224.

— manipurensis Hemsl. II,
224.

— pauciflora & et Z- III,
214.

— spicata S. et Z. III,
214.

— Wilsoni Hemsl. II, 161.
Corylus III, 3, 44, 45.

Corylus Avellana — Cracca villosa.

807

Corylus Avellana L. 561,
575, (336, 691. — II, 62,
573. — III, 9. 28, 640.
— P. 145. 296.

— Üolurna P.. 292.
Corymbis subdensa II, 166.
CorynantheWehc. II, 248.
üorynebacterium diph-

theriae 708, 709.
< Virynephorus 733.
Corynespora Mazei Güss.

110. 852.
Corynetes 122.

— robustus Durand'' 122.
285.

Coryneum 272.

— Beijerinckii Gurt 103,
217.

— folücolum 209.

— perniciosum Briosi et
Farn* 105, 266, 286.

Corynocarpaceae III, 187.
Corynocarpus III, 222.
Corypha II, 189. — P. 133.

— umbraculifera II, 904,
919.

Corysanthes III, 121, 122.

- Merrillii Arnes II, 309.

Corytholoma N. A. II, 429.

— macropodum Spragne

111. 212.
Coscinium III, 252.
Coscinodiscus II, 631, 637,

639.

— aralensis Ostenf* 639,
643.

— asteromphalus Ehbrg.
II, 637.

— biconicus Tan Breemen
II. 639.

— Budayanus Fant.* II.
643.

— excentricus Ehrenb. II,
643.

— Levvisianus Grev- var.
minor Temp* II, 644.

— lineatus Ehrenb. II,
644.

— marginatus Ehrenb. II,
644.

Coscinodiscus subtilis

Ehrenb. II. 637.
var. excentrica Per*

II, 644.
Coscinoclon cribrosus

(Hedw.) Sprnce 45.
Cosmarium 353, 364.

— bantamianum Bernard*
382.

— Burckillii West* 382.

— crassidentatum Ber-
nard* 382.

— didymoprotusum West*
364, 382.

— difficillimum Playfair*
364, 382.

— dubium Bernard' 382.

— entochondrum West*
364, 382.

— glaphyronotum West*
382.

— javense Bernard* 382.

— mansangense West*
382.

— platyisthmum Archer
353, 385.

— Prainii West? 382.

— Cjuadriverrucosum West*
382.

— spinulosum Bernard*
383.

— tjibodense Bernard*
383.

— triverrucosum West*
382.

— uliginosum Playfair*
364, 382.

— Westii Bernard* 383.

— Wildemani Bernard*
383.

Oosmos caudatus H. B. K-

III, 56.
Cossus ligniperda II, 30.
Costularia paludosa III,

80.

— recurva III, 80.
Costus II, 243, 323. — III,

59. 134.
Cotinus Coggyria Scop.
595.

Cotoneaster II, 269. —
HI, 5, 523. — P. 247.
N. A. II, 489.

— acutifolia Lindl. III,

522, 523.

— affinis Lindl. III, 522,
523.

— bacillaris Wall III, 522,
523.

— frigida Wall. III, 522.

523, 524.

— microphylla Wall.
556, 596. — III, 522,

524, 539.

— nummuiaria II, 154. —
III, 485.

— vulgaris P. 247.
Cottonia macrostachya

Wight III, 109.
Cottsia II, 228.
Cotula cryptocephala II,

251.
Cotyledon Brnn. II, 644

(Bacillariaceae).

— Andrussowii Pant* II,
644.

Cotyledon L. II, 644. —
X. A. II, 399.

— coruscans III, 29.

— Eckloniana III, 29.

— reticulata III, 29.
Cotylonychia Stapf N. G.

N. A. II, 530.
Couma guianensis II, 953.
Couroupia guianensis

Aubl HI, 231.
Coursetia III, 234.
Courtoisia III, 81.

— assimilis III, 80.
Cousinia N. A. II, 381.
Coussarea N. A. II, 505.
Covellia Zollingeriana

(Miq.) Hassk. II, 46:'».
Cowania 478, 480, 481.
Crabbea II, 326. — N. A.

II, 324.
Cracca Bertolonii Gr. et

Godr. III, 233.

— villosa Gr. et Godr. III,
233.

8U8

Crainbe — Crepis alpina.

Crambe L. III, 193.
Craspedaria IL 766.
Crassula III, 189. — N. A.
II, 399.

— Bolusii Hk. f. III, 189.

— Mariae Harnet* III, 187.

— Schmidtii Rgl. III, 187,
189.

Crassulaceae 504, 505. —
II, 250, 252, 399. - III,
4, 187, 224.

Crataegus 479, 547, 765.

— II, 173, 176, 177,
179, 180, 184. — III,
293, 294, 295, 296. —
P. 247. — N. A. II, 489,
490, 491, 492, 493, 494.

— acutiloba Sargent II,
493.

— apiifolia Mich*. II, 493.

— aspera Sargent III,
290.

— asperifolia Sargent II,
493.

— Beckwithae Sargenf II,
493.

— Bisseüii Sargent l 1,492.

— Brunetiana Sargent II,
492,

— chrysocarpa Ashe II,
493.

— coccinea II, 147.

— coloradensis Nelson II,
493. - - III, 295.

— Colorado Ashe II, 493.

— coloradoides III, 295.

- compta Sargent II, 493.

— conjuncta Sargent II,
493.

Crus-galli L. II, 492.

— — var. exigua (Sarg.)
Eggleston II, 492.

— demissa Sargent II,
493.

dilatata Sargent II,
493.

— dissona Sargent II, 493.
Doddsii III, 295.

— Egglestoni Sargent II,
493.

Crataegus Ellwangeriana
Sargent II, 493.

— Engelmanni Sargent II,
492.

— escalloniifoiia Schhli
II, 495.

— exclusa Sargent II, 493.

— exigua Sargent II, 492.

— Faxoni Sargent II, 493.

— insolens Sargenf II,
493.

— Kennedyi Sargent III,
290.

— lanceolata Sargent III,
290.

— Lettermani Sargent II,
482.

— Livoniana Sargent III,
290.

— lobulata Sargent II,
493.

— rnagnifolia Sargent III,
290.

— Maineana Sargent II,
493.

— matura Sargent II, 493.

— mollita Sargent III, 290.

— monogjma Jacq. III,
402.

— neo-fluvialis Ashe II,
493.

— occidentalis Britton II,
493. — III, 295.

— Oxyacantha L. II, 599.
— III, 28, 522.

— padifolia Sargent III,
290.

— pastorum Sargent II,
493.

— pentandra Sargen t II,
493.

— persimilis Sargenf II,
492.

— philadelphica Sargent
II, 493.

— Piperi Britton II, 492.

— Porteri Britton II, 493.

— procera Sargent III,
290.

— prunifolia II, 492.

Crataegus punctata P. 240.

— rhoinbifolia Sargent II,
493.

— sanguinea P. 313.

— scabridd Sargent 1 1,493.

— sera Sargent II, 493.

— severa Sargent III. 290.

— Smithii Sargent II, 492.

— sordida Sargent II, 492.

— spathulata P. 292.

— succulenta Schrad- II,
493.

— Tatnalliana Sargent II,
493.

— tomentosa II, 147.

— villiflora Sargent III.
290.

Crataeva II, 352. — III,
165, 166. — N. A. II.
352.

— erythrocarpa Gagn*
III,' 165.

— mucronulata OKtze. II,
352.

— religiosa II, 232.
Craterellus 261.

— cornticopioides (Li
Pers. 148.

— lutescens Fr. 149.

— pusillus Fr. 108.
Craterium flavum Fr. 143.

— leucocephalum (Pers.)
Ditm. 143.

Cratoneuron (Süll.) Roth
58.

— filicinum (L.) Rtli. 40.

— filicinum var. elatum
40.

Orawfurdia speciosa C. B.
Gl. II, 555.

Cremololms II, 404. — X.
A. II, 402, 403.

Crepidium flavescens Bi-
ll, 314.

Crepidotus malachius B-
et C. 125.

Crepis III, 184. — P. 833.
- N. A. II, 381.

— alpestris P. 248, 311.

— alpina P. 248.

Crepis aurea — Cryptomeria.

8U9

Crepis aurea P. 248.

bellidifolia P. 248, 311.

— biennis P. 248.

— blattarioides P. 248,
311.

— Blavii Aschers. 111,173,
184.

— bulbosa P. 24."), 2S9.

— chondrilloidesjaiv/. III,
173.

— : cbondrilloides X Blavii

II, 381.

— cbondrilloides X Malyi
III* 184.

- foetida II, 255. — P.
248.

— grandiflora P. 248, 311.

— incarnata P. 310.

— japonica P. 311.

— Malyi Stadlm. III, 173.

— neglecta P. 248.

— nicaeensis P. 248, 311.

— occidentalis P. 143.

— praemorsa P. 248.

— rubra P. 248.

— setosa P. 248.

— succisaefolia P. 248.
taraxacifolia P. 248.

— tectorum P. 248, 311.

— virens P. 248, 311.
Orescentia cucurbitina P.

322.

— cujete L. II, 822. 899.
Cribraria aurantiaca

Schrad. 143.

— minutissima Schw- 227.

— violacea Jtex 227.
Crinipellis Bambusae Pat*

159, 286.

— elatus Pat. * 140. 286.
Crinum II, 243. — P. 292,

318. — X. A. II, 280.

— abyssinicum Höchst. III,
73.

— Cooperi Herb- 655. —

III, 75.

— Kirkii Bak. III, 74.

— Macowani Bah. III, 74.

— Makoyanum Carr. III,
74.

Grinum Moorei Hook, f-
III, 74.

— Powellii P. 118, 317.

— Vassei D. Bois II, 252.
- III, 73, 74.

Orocus III, 283, 555. —
P. 238, 239.

— sativus L. II, 829.

— vernus L. III. 395. —
P. 238.

Cronartium Byrsonimatis
P. Renn." 286.

— flaccidum 252.

— gentianeum27me»».148.

— Pedicularis Lindr. 252.

— Pendermü-Pmif Wüld.)
Liro 252.

— quercus (Brond JSchroet-
141.

- ribicola Dietr. 145, 148,

252.
Urossandra Greenstockii

8p. Moore III, 134.
Oossidium 38, 39.

— griseum Jur. 69.

— squamigerum Viv. 47.
Crossosoma II, 169. — III,

189. — N. A. II, 400.
Crossosomataceae II, 169,

400. - III, 189.
Crossotbeca 555, 557.
Crossotropis grandiglumis

Rendle III, 86.
Crotalaria II, 223, 827,

829, 836, 915. N. A.

II, 443.

— Abdal-Kuriensis Vierh.
II, 443.

— juncea II, 827, 913, 914.
— III, 229.

— laburnifolia II, 836.

— lupulina Raf- III, 56.

— paulina II, 840.

— sagittalis III, 56.

— Saharae II, 231.

— Schweinfurthii De//, II,
251.

— striata II, 836.

— vitellina II, 840.
Crotonogyne N. A. II, 414.

(Jrotonogyne Laurentii De

Wild. III, 204.
Croton II, 890, 898. — III,

58, 641. — N.A. 11,414.
Elliottianus II, 904.

— Pennincki III, 57.

— setigerus Hook. II, 420.

— Tiglium P. 281, 309.

— zambesicus MuelL II,
89S.

Crotonopsis linearis II, 173.
Crozopbora obliqua 11,231.

— verbascifolia Willd. III,
544.

Crucianella N. A. II. 505.
(Jruciierae 504. — II, 266,

400. - III, 54, 189. 500.
Crupina III, 5. N. A. II,

381.

- vulgaris II, 140.
Cryptandra amara var.

floribunda II, 255.
CryptangiumClausseni III,

81.

— leptocladum III. 81.
Cryptanthopsis Ule N. Gr.

III, 78. - N. A. II, 284.
Cryptanthus II, 284.
Cryptocarapus amerinae

(L.) Hart. II, 619.

— pentandrae Fall- II,
619.

— venustus Zadd. II, 607.
Cryptocarya N.A. II, 439.

— foetida R. F. Baker II,
251.

Cryptococcus linguae-

pilosae 200.
Cryptocoryne III. 75.
Cryptocoryneum Bom-

bacis P. Henn* 286.
Oryptodiscus volvatus v.

Höhn* 128, 281.
Gryptogramma II, 760.

— Stellen Prantl II. 173,
766. 787.

Cryptolepis N. A. II, 330.

— albicans III, 146.
Cryptomeria 533, 641. —

III, 60.

810

Cryptomeria japonica — Cuttsia.

Cryptomeria japonica 463,
641. — II, 903. - - III,
60.

Cryptornerites hungaricus
Tuzsm* 630.

Cryptomonas 327.

Cryptoporus 124.

Oryptorhynchus lapathi L.

II, 618.
Cryptosphaerella mate

Speg.* 286.
Cryptosphaeria populina

(Pers.) Sacc. 148.
Cryptosporium ipirangae

Speg* 286.
Ciyptostegia N. A. II, 336.

— alhicans Juni, et Perr.

III, 145.

— grandiflora II, 229, 829.

- III, 147, 954.

— madagascariensis Boj.

II, 336, 829, 914.

III. 14:», 146, 147.
Ctenidium (Schpr.) Mut.

51. 58.

— aurifolium Mitt. 79.

— mauritianum Broth*
54, 74.

— molluscum var. conden-
satum 40.

Ctenium concinnum Nees

111, 86.
Ctenolophon III, 221.
Cteaopteris cycadea 612.
Ctenozamites Leckenbyi

Bean 592.
Cubonia Niepolomicensis

Roappert* 241, 286.
Oucubalus bacciter L. II,

606.
Cucumis colocynthis 111,

584.

— Melo L. II, 138.

— prophetarum II, 231.

— trigonus Roxb. III, 584.
Cucurbita 454, 509, 669.

LI, 138, 988, 996.

— maxima Duch. 670.

— PepoZ. 510.— III, 46Ü.
536, 639, 64(1.

Cucurbitaceae II, 120, 207,
234. 266, 405, 820.
III, 196, 220, 222.

üucurbitaria elongata(Fr)
Grev. 149.

— pithyophila De Not.
108.

Cudonia 122.

Cudouiella Allenii A. L.

Sm* 108, 286.
Culcasia II, 241.

— scandens Beauv. 11,233.

- III, 141.
Cuneatopteris Pot- 545,

607.

— adiantoidesSf/;io//i. 545,
607.

— divaricata 545.

— elegantiformis 545.

- Völkeli Behrend* 545.

— westfalensis Behrend*
545.

Cunila Mariana L. 438.
Cunninghamella 233.

— elegans Lendner1' 233.
Cunninghamia 533, 578,

983. - III, 3, 63. 67. —
X. A. II, 277.

- elegans (Cor da) Endl.
594.

— Konishii Äzy«toll,214.

— III, 59, 60.

— sinensis 536, 578, 744.

— III, 66.
Cunoniaceae II, 405. —

III, 197, 219, 222, 223,
224.
Cupania III, 55.

— rhoifolia A. Gray 458.
Cuphea II, 124. — X. A.

II, 454.

— Urbaniana II, 124.
Cupressineao 579.
Cupressinoxylon 566, 567,

585, 609. *

— latiporosum Coniv. 572.

— Lennieri Lignier* 585.

— pannonicum Ung. 609.

— podocarpoides Reis**
609.

Cupressinoxylon salis-
burioides Gbpp. 609,

— subaequale Goepp 609.

— sylvestre Merckl. 609.

— taxodioides Coniv. 599.
Cupressus 463. — X. A.

II, 277.

— arizonica GreeneHI, 61.

— Lawsoniana 463.

— macrocarpa 463, 464.

— Nootkaensis II, 144.

— obtusa 463, 464.

— pisifera 463, 464..

— sempervirens L. III,
264.

— torulosa 463, 464.
Cupuliferae 449. — III,

225.
Curatella N. A. II, 406.
Curculigo recurvata III,

57.
Curcuma II, 897. — III,

134, 627.

— Pierreana III, 133.
Curreya Sacc. 115.
Curreyella Aucupariae A.

L. Sm* 108. 286.
Curtisia III, 221.
Cuscuta II, 183, 582.

III, 39, 186, 562. — X. A.
II, 395.

- californica squamigera
Engelm. II, 395.

— epithymurn L- II, 616.

— europaea L. III, 27.

— Gronovii Willd. III, 1 85.

— lupuliformis 811. — III,
26.

— salina Engelm- II, 395.

— subinclusa abbreviata
Engelm. II, 395.

— suaveolens Ser. III, 185.

— Tinei Inzenga III, 185.

- Trifolii Bab. 811.
Cussonia N. A. II, 334.

— spicata Thunb. III. 144.
Cutleria 370, 371, 372.

— adspersa 371, 372.
Cutleriaceae 371.
Cuttsia III, 219.

Cyanastruin — Cyclotella caspia.

811

€yanastrum II, 242.
Cvanophyceae 327, 337,

343, 348, 379.
Cyanophyllum magnifi-

cum Denis III, 251.
I 'vanothvrsus II, 930.

— Ogea^II, 930.
<>yanus jaceus var. ciliatus

Opiz II, 366.
Cyathea II, 739, 740, 747.
765, 780.

— (Alsophila) atropur-
pureaCop^.*II, 780, 810.

— camerooniana Hook. f.
II. 794.

— celebica v. Aid. v. Ros,*
II, 781, 810.

— chinensis Copel.* II, 477,
810.

— Confucii Christ II, 777.

— Cunuingbamii IL 739.

— (Alsopbila) Curranii
Copel-" II, 780, 810.

— cyclodonta (Christ) v.A.
v. R. II, 781.

— dealbata II, 739.

— Deckenii Kuhn IL 794.

— (Als.) Fenicis Copel*
IL 780, 810.

— Foxworthyi Copel' II,
7*0. 810.

— fructuosaCo/>e/.*II, 781,
810.

— geluensis Rosensf.* II,
78L 810.

— halconensis Christ* II,
780, 810.

— heterocblamydeaCopeZ.-
II, 781, 810."

— insignis II, 755.

- lanaensis Christ" IL
780, 810.

— Loheri Christ IL 781.

— Mearnsü Copel* II, 780,
810.

— medullaris II, 739, 754.

— microlepis II, 755.

- mitrata Copel' IL 780,
810.

— negrosiana II, 781.

Cyathea philippinensis
Copel II, 7S4.

— runensis v. Aid. v. Ros.*
IL 781. 810.

- Sellae Pirotta* II, 796,
810.

— spinulosa Wall II, 784.

— tomentosa II, 783.

- var. novo-guineensis
Rosenst* II, 783.

— usambarensis Hieron.

II, 794.

— Werneri Rosenst* IL
783, 810.

Cyathocalyx N. A. II, 329.
Cyathochaete avenacea

III. 80.
Cyatbophorum tonkinense

Broth. et Par* 52. 74.
Oyatbus striatus (Huds.)

Hoffm. 147.
Cybiantbus Marl III. 259.
Cycadaceae 464, 472, 506,

557,. 577, 582, 587, 674.
II, 277. III, 14,

71. 220.
Cycadeoidea 575. 584. —

in, 228.

— aridagamaniensis 584.
etrusca 635, 636.

— ingens III, 220.

— üeichenbacbiana 635.
Cycadinocarpus angusto-

dunensis Ren. 548.
Cvcadofilices 566, 61 1, 620.

- III, 362.
Uycadophyta 619.
Cycas 453, 575, 591. -- II,

253, 820. — III, 48.

— circinalis II, 240.

— revoluta L. 500. - P.
291.

— Rumpf ii 506.

— Steeustrupi Heer 590.

— Thouarsii II, 240.
Cyclamen II, 81, 151, 582.

— III, 284, 370, 022. —
X. A.-II, 4SI.

— aegineticum Hildebr*
III, 284.

< 'yclamen europaeum L.
III, 622.

- Jovis#iMe&r.*IIl,284.

— maritimum Hildebr:'
III, 284.

— neapolitanum III, 390.

— persicum MM. 642, 650.

— pseudo - maritimum
Hildebr.* III, 284.

Cyclanthera N. A. IL 405.
Cyclea III, 252, 253.
Cyclocotyla Stapf 'N. 6. N. A.

II, 331.
Cycloloma platyphvllum

II, 140.
Cyclopeltis mirabilis

Copel* II. 782. 807. 810.

- PreslianafJ. SmJBercl.
II, 781.

— — var. biauriculata v.
A. v. B.:;: IL 781.

Cyclophorus Desv. IL 800.

— acrostichoides II. 778.

— alcicornu Christ* II.
778, 811.

— Eberhardtii Christ' IL
778, 811.

— induratus Christ' II,
778, 811.

— lingua II, 778.

— nummularii'olius (Sic.)
C. Chr. II, 782.

var. rufus v.A. v- R*

II, 782.

— rasamalae i Uac ) C- Chr.
II, 778, 782.

— sticticus Kze. IL 778.
Cyclopitys Nordenskiöldi

582.
Cycloporelhis 124.

— barbatus Murritt* 286.

— microcyclus 135.
Cycloporus 124.
Cyclopteris cordata 618.

— pinna Schuster* 618.
Cyclostemon N. A. IL 414.
Cyclotella II, 633, 638. 639.

— bodanica Etilen*/. II.
635. 640.

— caspia Grün. II, 639.

812

Cyclotella catenata — Cyperus flavoinariscus.

Cyclotella catenata Brun.
IL 640.

— comta Kütz. II, 634,
635, 640.

— Kützingiana Thic. II,
630.

— melosiroides Kirchn.
II, 640.

— ocellata II, 638.

— planctonica Brth. II,
635.

— Rheinholdii Reichelt*
II, 642, 644.

Cycnochis chlorochilon
Klotzach III, 109.

— Edgertonianumlll, 119,
195.

— Loddigesii II, 198.

— maculatum III, 119
Cydista aequinoctialis Mic

II, 837.
Cydonia 743, 805. II,

690. — III, 522. — P.
247.

— japonica 743, 804. —
II, 690, 720.

— vulgaris Pers. 517, 720.
— III. 522.

Cylindropsis II, 331, 332.

Oylindrosporium ariae-

folium E. et E. 118.

— clematidis E. et E. 141.

— Eleonorae reginae Bub.
et Malk. 145.

— Fairmanianum Sacc*
286.

— Olivae Petri 852.

— Padi Karst. 141.

— Pomi Brooks* 204, 286.

— septatum Ron teil fa.
Helosciadii Sacc* 286.

- Smilacinae E.et E. 141.
Cylindrotrichum III, (>09.
Cylista N. A. II, 444.
Cymaria II, 216, 435.
Cymatopleura biseriata
Breb. II, 640.

— elliptica W. Sm. II,
640.

— Semsey Pant* II, 644.

Cymatopleura soleaf Breb.)

W. Sm. IL 630, 641.
Cyrnliella II, 638.

- alpha Heinzerling* II,
630, 644.

— alpina Grün. II, 638,
640.

— austriaca II, 638.

— caespitosa (Kütz.)
Schutt II, 641.

— Uesatii II, 638.

— cistula Henvpr. II, 636,
643.

— cymbiformis Breb- II,
634, 640.

— Ehrenbergii Kütz. II,
643.

— fasciculata B. et C. 118.

gastroides Kütz. II,
630.

— lanceolata Ehrbg. II,
64U.

- mongolica Oestrup* II,
638, 644.

— naviculiformis Awd. II,
630.

— parva II, 634.
producta M. P- II, 641.

— truncata Rabh. II, 630.
Cymbidium bicolor Läl-

III, 109.

— grandiflorum III, 118.

— insigne Rolfe III, 57.

— Lovvii III, 122.
Cymbopetalum N. A. II,

329.
Cymbopogon II, 933. —
N. A. IE 29.1.

— confertiflorus Stapf 'III,
92.

— Nardus Renale III, 92.
Cymodocea II, 240.
Cymopolia 381.
Cynancbum II, 227. —

N. A. IE 336.

— arenarium IM, 14(i, 147.

— carnosum Schltr. II,
337.

— Vincetoxicum R. Br.
III, 40.

Cynara Scolymus P. 103,
278.

— sinuata II, 223.
Cynipiden II, (508, 609, 612,

614.
Cynodon N. A. II, 295.

— Dactylon L. II, 166,
836, 838, 840. — III, 86.

Cynodontium f&U&x Limpr.
47.

— laxirete 37.
CynoglossLim furcatum

Benth. II, 555.
Cynometra N. A. II, 444.

— Alexandri C. H. Wright

II, 898.
Cynomoriaceae III, 197.
Cynomorium coccineum L.

III, 197.
Cynosorchis N. A. II, 309.

— purpurascens TJiou. III,
118.

Cynosurus N. A. II, 295.

— cristatus II, 651, 839.
Cypellomyces Speg. 262.
Cyperaceae 595. — II, 196,

241, 286. — III, 55, 79.
Cyperocarpus uncinatus

Paafi; 595.
Cyperus II, 241, 846. —

III. 81. — X. A. II. 289.

— articulatus Vai/l II, 837.

— Atbiusoni III, 79.

— Babakensis III, 79.

— badius II, 290.

— Berlandieri III, 79.

— Buckleyi III, 79.

— canus III, 79.

— cephalotes III, 79.

— comosus Sibth. et Sm.
II, 290.

— disjunctns III, 79.

— Ehrenbergianus Boeckl.
II, 290.

— elephantinus III, 79.

— esculentus L. II, 852.

— exaltatus P. 290.

— fertilis III, 79.

— flavomariscus Griseb.
II, 289.

Cyperus fuligineus— Cytisus kewensis.

813

Cyperus fuligineus CJiapm

II, 290.

— Gardneri III, 79.

— giganteus Yahl II. 837.
— III, 79.

— gracilis R. Br. II, 290.

— Luzulae Rottb. II, 837.

— multispicatus III, 79.

— Mundtii II, 125.

— nanus Boeckl. II, 289.

— niveus III, 79.

— nodosus Willd. II, 837.

— nudicaulis III, 79.

— ochrocephalus III, 79.

— ochraceus II. 191. —

III, 79.

— Papyrus 11,251. — III,
86.

— pennatus Lam. II. 290.

— plat3^phyllus III, 79.

— podocarpus III, 79.

— polystacbyus P. 282.

— Preslii Pari II, 290.

— pulcherrimus III, 79.

— Randuzii Boeckl II,
290.

— reduncus III, 79.

— rotundus II, 166.

— sabaudus Perret II. 290

— scariosus III, 79.

— setigerus III, 79.

— stoloniferus III, 79.

— stuppeus Forst, f. II,
290.

— subulatus III, 79.

— surinamensis Rottb- II,
837.

— tegetum III, 79.

— tenuiflorus Rottb. II,
290.

— Thomsoni III, 79.

— Tonkinensis III, 79.

— trinervis III, 79.

■ — turgidulus III, 79.

— typhinus Gerard III,
82.

— usitatus III, 79.

— virescens JTo/fim.11,290.

— Zollingeri III, 79.
Cvphelium 11.

Cyphelium caroliDianum
(Tuch.) 20.

— Mareianum B. de Lesd*
26.

— microsponim.B.rteLes'd.
11.

Cyphella ßakeriana P.
Herrn* 286.

— paraensis P.Henn. 286.
Cyphia N. A. II, 350.
Cyphokentia samoensis

Warb. 458.
Cyphomandra betacea III,

"•12.
Cypripedium II, 979. —

III. 118, 122, 324.

— actaeus III, 112.

— Calceolus L. II. 582.
— III, 109.

— debile Rchb. f. III, 109,
161.

— eustacianum III, 113.

— Fairrieanum X insigne
III, 113.

— fasciculatum II, 186.

— insigne III. 118.

— macranthos III, 10y.

— Mimos III, 113.

— parviflorum Salisb. II,
717.

— pubescens Wüld. 440,
474. — II, 717. — III,
117, 541.

— sanactaeus etoniense
III, 112.

— Sedenii 649.

— spectabile Sw. II, 716,
717. — III, 586.

— Spicerianum X Arthuri-
anum III, 113.

— stanis III, 113.

— superbiens X arguslll,
113.

— Thunbergii III, 119.

— ventiicoMiin album III,
113.

— Williamsiamim X m-
signe III, 113.

Cypselea Turp. III, 139.
Cyrillaceae III, 219, 223.

Cyrtandra III, 5, 212. —
N. A. 11, 429, 430.

— Beckmannii Reinecke
457.

— campanulata Reinecke
457.

— compressa Reinecke i'ü-

— Godefroyii?ei«. II, 101.

— Kraemerii Beinecke 457.

— Pritschardii Seen/. 457.
Cyrtanthus carneus II,

280.
( 'vrtomiuiu II, 766, 799.

— falcatum II, 737.

rar. Mayi II. 799.

Cyrtopodieae II, 245.
Uyrtosperma II, 241.

— senegalense II, 232,
235.

Cystopteris II, 765.

— fragilis Bernlt. II, 170,
738, 739, 760, 768, 787,
793, 806.

— montan a II, 803. — P.
268.

— tristis (BD Mett. II,
781.

Oystopus ßlyti De By.

828, 234.
Cystorchis nebularuin

Hance II, 311.
Cytidiä 118.

— Wettsteinii Bres.* 128,
286.

Cytinus III, 285.

— hypocistis L. III, 285.
Oytisus 504. — II, 100. —

III, 238, 547. — N. A.
II, 444.

— Adami 744. — III, 232,
235, 238, 357, 376, 379,
386, 392, 393, 402, 408,
413.

— albus II, 100.

— ArdoiniX albus III, 232.

— candicans II, 150.

— decumbens Spach III,
231.

— hirsutus III, 356.

- kewensis III, 49, 232.

814

Cytisus Laburuum — üasyphora.

Cvtisus Laburuum L. 686.
III, 235, 376, 408,
432.

— linifolius II, 150.

— proliferus II, 842.

— purpureus R. Br. 744.

III, 232, 234, 235,
356, 357, 392, 393, 402,
408.

— sessilifolius III, 58.

— vulgaris III, 402.
Cytodiplospora Rhois Sacc.

149.
CytosporaAchraeP.ifew«.*
286.

— ampelina 267.

— Curreyi Sacc. '145.

— leucostoma 217.

— Myricaegales Bres.* 145,
286.

— querna Sacc* 149, 286.

— rubescens 116, 813.

— sororia Bres* 144, 145,
286.

OystosporinayerbaeSpe^.*

'286.
Czekanowskia 613, 636.

— Murrayana Seiv- 582.

— setacea Heer 582.

Dacrydium 453, 572, 593.
- III, 70.

— Bidwülii II, 262.

— cupressinum II, 262.

— Kirkii 518.
Dacryomyces 165.

— eonigenus Niessl 259,
310.

Dacryomycetineae 113.
Dacryopsis typhaer. Höhn.

144.
D actylaena II, 352. — JII

166.
Dactylis glomerataZ. 696.

— II, 41, 837.
Dactyloctaenium aegypti-

acum Willd. II, 837. —
■ III, 86. - P. 311.
Dactylopetalum ugan-

dense II, 236, 898.

Dactylosporieae 268, 269.
Dactylosporium Harz 269.
Dacus Oleae (Rossi) II, 618.
Dadoxylon 571, 617.

— Brandiiugi Withamöll.
- pseudoparencbyma-

tosum Croth* 572.

— SchrollianumGrö^p. 617,
618.

Daedalea 107, 124, 155,
224, 836.

— amanitoides 135.

— ambigua Berk. 141.

— Burserae Pat. 282.

— confragosa (Bolt.) Pers.
141.

— Gollanii Massee" 286.

— isabellina Murrill* 286.

— quercina 226.

— Ravenelü Berk. 282.

— subconfragosa Murrill*
286.

— unicolor (Bull.) Fr. 147.
Daemonorops III, 125.

— Gaudichaudii II, 212.

— hypoleucus/tw»" 11,319.

— intumescens Becc II,
319.

— periacanthus III, 130.
Dablia II, 687. — III, 57,

58, 176, 185.

— Chisholmi Rose II, 195.
Dalbergia 111, 234. P.

314. — N. A. II, 444.

— Cumingiana Benth. III,
451.

— melanoxylon Guill- et
Pers. II, 624, 898.

Daldinia argentine>nsis
Speg, 131.

— clavata P. Henn* 131.

— cuprea Starb. 131.
Dalecbampia N. A. II, 414.
Dammara australis 685.

— robusta G- Moore 593.
— III, 68.

Damnacanthus angusti-

folia II, 214.
Dampiera 540.

— Brownii 540.

Dampiera fasciculata 540-
Danaoa All. II, 765.
Danaea Smith II, 765.
Danaea N. A. II, 537.

— alata Sm. II, 757.

— elliptica Sm. II, 757.
Danaeopsis 629.
Daniella P. 289.

— thurifera II, 930.
DanÜionia bipartita IL

839.

— breviaristata Beck II,
578. — III, 93.

— bromoides II, 263.

— Forskahlei II, 231.

— penicillata II, 839.

— semiannularis II, 839.

— III, 95.

Daphne 769. — III, 335.
N. A. II, 533.

— carmabina II, 920.

— involucrata II, 920.

— laureola var. arbuscula
Christ* III, 335.

- Mezereum L- 1 i , 509.

— III, 27, 28.
Dapbnephila glandulae

Kieff. II 613.
Dapbniphyllum III, 225,

— N. A. II, 414.

— glaucescens Bl. III,
204.

Darlingtonia Torr. III, 313,
314.

— californica 715. — II,
649.

Darluca 129.

— hypocreoides Fuck. 149,
Darwinia III, 261.

— Hookeriana III, 201.
Dasyanthus III, 312.

— malaccensis III, 312.
Dasyaulus III, 312, 313.
Dasycladus 381.

— claviformis 333.
Dasylepis N. A. II, 423.
Dasylirion 520. — II, 194.

— III, 107.

— Wheeleri II, 843.
Dasyphora III, 290.

Dasyscypha inconspicua— Dendrobhun Schroederiauuin.

815

Dasyscypha inconspicua
P Herrn. * 287.

— Rosae Jaap* 143, 145,
287.

— Willkommii (H artig)
115. 236, 243, 813.

Dasystachys N. A. II, 305.
Dasystoma Drummondi

vor. serrata Benth. II,

521.

— serrata Small II, 521.
Datisca III. 226.
Datiscaceae III, 220.
Datura 501. — III, 371,

390, 602.

— chlorantha III, 330.

— fastuosa II, 890.

— inermis 501.

— Metel P. 104, 315.

— meteloides III, 536,
608.

— Stramonium L- 500,
501. — II, 254, 822,846.
III, 331, 371, 432, 555.

Daucus N. A. II, 537.

— Carota L. 490, 642. —
II. 44, 138, 721. — III,
9, 341, 342, 567, 60(1,
669.

Davallia II, 766.

— Beddomei Hope II, 778.

— brasiliensis II, 799, 807.

— bullata II, 754, 798,
800.

— canariensis II, 798.

— denticulata (Burm.)
Mett. II, 794.

— dissecta II, 800.

— Griffithiana II, 755.

— Hookeri Moore II, 778.

— inaequalis Kze. II, 784

— Mariesii II, 798.

— Novae GuineaeJ?o«ewsi.*
II, 783, 811.

— pyxidata Cav. II, 784.

— recurva II, 754.

— retusa II, 807.

— stricta II, 737.

— tenuifolia II, 798.
Davalliaceae II, 766.

Davallodes Copel. N. 6. II,
779, 81.1.

— grammatosorum Copel*
II, 779, 807, 811.

— gymnocarpura Copel."

II, 779, 807, 811.
Davidia III, 186,187,221.

— involucrata Baill. II,
160. — III, 58, 187.

— laeta Dode* II, 160. —

III, 187.

— Vilmoriniana Dode* II,
160. — III. 187.

Dawea ugandensis Spr.

II, 898.
Dawsonia 51.
Decanema X. A. II. 336.

— Bojerarium III, 146.

— grandiflorum III, 146.
Decaptera II, 405.
Dedea III, 222.
Dehaasia N. A. II, 439.
Deinbollia II, 624.

— pycnophylla Gilg III,
312.

Delastreopsis 169.
Delastria 169.

— rosea Tul. 105.
Delesseria 328. — II, 270.

— denticulata 350.

— sinuosa 373.
Delesseriaceae 373.
Delisea 328.

— pulchra 347.

— japonica Okamura* 347,
383.

Delphi nium 504. — II,
163, 189, 711. - III,
286. - N. A. II, 483.

— Andersonii II, 189.

— Candida in Hemsl- II,
252.

— cardinale 11, 189.

— Chilliwacense Creene
II, 145.

— Cuyamacae Abrams II,
189.

— decorum II, 189.

— denudatum Wall- II,
556.

Delphin i um deserti 11,231.

— glaucum II, 189.

— Hanseni II, 189.

— hesperium II, 189.

— Parryi II, 189.

— patens II, 189.

— recurvatum Greene II,
189.

Dematiaceae 138.
Dematium pullulans 159,

271.
Dematophora 204.

— necatrix R. Hart. 271.
Dendrobium III, 121, 122.

— N. A. II, 309.

— acurainatum II, 123.

— aduncum II, 162.

— aemulum R. Br. III,
117.

— aggregatum II, 223.

— amoenum III, 112.

— atroviolaceum III, 115.

— Bensonae III, 115.

— bicaudatum III, 112.

— Bronckarti (De Wild.)
III, 57.

— Brymerianum III, 109r
115.

— criniferum III, 113, 119.

— cymbidioides Ldl. Illr
117, 118.

— delicatum III, 120.

— Fellowsii II, 255.

— Fytochianum Bat. III.
117.

— Haenkeanum Steudel
II, 313.

■ — Harveyanum III, 115.

— hercoglossum III, 1 1 2.

— Hildebrandü III, 115.

— lingoiforme III, 1 15, 1 18.

— Madonnae III, 113.

— Myosurus Sio. II, 316.

— nobile III. 57, 115.

— nutans Presl II, 313.

— Phalaenopsis III, 114,
11»;.

— regium (Prain) III, 57.

— Schroederianum III,
109.

$16 Dendrobiutn speciosum X Kingianum — Deutzia disoolor var. major.

Dendrobium speciosum X
Kingianum III, 120.

— thyrsiflonim III, 115.

— triflorum III, 118.
Dendrocalamus N. A. II,

295.

— giganteus II, 579. —
III, 130.

— macroculmis III, 91.

— strictus II, 904.
Dendroceros tahitensis

Aongstr- 57.
Dendrochilum II, 128, 309.
— III, 112.

— anf'ractum II, 310.

— Oopelandii II, 310.

— cucullatum II, 310.

— glumaceum II, 310.

— graciliscapum II, 310.

— graminifolium II. 310.

— junceum Rchb- fil- II,
310.

— longilabre II, 310.

— Merrillii II, 310.

— ocellatum II, 310.

— oh'ganthum II, 310.

— parvulum II, 310.

— philippinense II, 310.

— recurvum II, 310.

— strictiforme II, 310.

— tenue II, 310.

— tenuil'oluim II, 310.

— turpe II, 310.

— venustulum II, 310.

— Whitfordii (Rolfe) II,
310.

— Williamsii II, 310.
Dendrodochinm epistroma

v. Höhn. 144.

— verticillioides Sacc* II,
287.

Dendroglossa normalis (J.

8m.) Presl II, 779.
Dendrographa minor Darb.

22.
Dendropemon N. A. II,

452.
Dendropboma Myrtaceae

P. Herrn* 287.

— oligoclada Sacc* 287.

Dendrophthora N. A. II,

452.
Dendroseris II, 265.
Dendrostilbella v. Höhn.

269.
Dendrothele 118.
Dendryphieae 268.
Dendryphium Wallr. 208.
subgen. Dendiyphiop-

sis Bain* 266, 287.

— fumosum Cda. 266.

— nodulosum Sacc 266.

— penicillatum (Cda.) Fr.
149.

— toruloides Fres. 266.
Dennstaedtia 11, 792.

— articulata Copel* II,
780, 811.

— dennstaedtioides Copel.
II, 779.

— — var- arthotricha
Copel* II, 779.

— erythrorachis Christ II,
780.

— javanica (BD Christ II,
781.

— punctilobula (Michx.)
Moore 699. — II, 740,
755, 764, 807.

— sumatrana?;. Aid. v. Ros'r
II, 781, 811.

Dentaria III, 191, 192. —
N. A. II, 403.

— diphylla II, 147.

— glandulosu II, 99.
Derbesia II, 965.

— Lamourouxii II, 965.
Dermatea 15.").

— Chionanthi E. et E-
142.

— eucrita (Karst.) Rehm
143.

— fusispora EU. et Ev.
143.

— mycophaga Massee* 287.

— Rickiana Rehm" 287.
Dermatocarpon andinum

Lindau* 26.
Deroemeria praecox II,
251.

Deroemeria squamata II,

251.
Derris N. A. II, 444. — P.

279, 309.

— elliptica III, 532.

— Stuhlmannii (Taub.)
Harms II, 624.

— uliginosa P. 279.

— violacea Harms II, 624.
Deschampsia 446. — N. A.

II, 295.

— brevifolia R. Br. II.
292.

— caespitosa R. Br. II,
213, 292.

— f'lexuosa II, 214.
Descurainia N. A. II, 403.
Desfontainea III, 222. —

N. A. II, 451.
Desmaz-estia 329.

— viridis 354.
Desmidiaceae 341. 346,

347, 348, 349, 363.
Desmidium III, 592.
Desmodium N. A. II, 444.
■ — canadense var. hirsuta

Hook. II, 444.
var. longifolium Torr.

et Gray II, 444.

— canescens rar. villosis-
simum Torr. II, 444.

— filiforme II, 209.

— gyrans 719.

— leiocarpum P. 313, 320.

— paniculatum (L.) DC-

III, 56.

— Scalpe II, 836.

— sinuatum II, 214.

— tortuosum II, 836, 838.

— vtmbellatum DC. 457.
Desmoncus P. 317.

— horridus Mart. II, 837.
Desmopteris unita 618.
Detarium senegalense II,

899.

— Heudelotianum II, 232.
Deuteromyceten 263.
Deutzia III, 222, 318.

— discolor var. major III,
57.

üeutzia gracilis candelabruui — Dicksonia grandis.

817

Deutzia gracilis candela-
brura III, 57, 316.

— scabra Thbg. III, 316.

— staminea R.Br. II, 556.
Dewalquea grönlandica

Hr. 594.

— haldemiana Sap. et Mar.
594.

- pentaphylla Vel. 594.
Deyeuxia montana II, 255.
Diacalpe II, 765.
Diacattleya Colmaniaelll,

121.
Diachea leucopoda (Bull.)

Rost. 143.
Diacrium III, 121.

— bicornutum III, 121.

— bicornutum X Cattleja
intermedia nivea II, 1 13.

Diacro-Cattleya Colma-

niae III, 113.
Dialium guineense II, 898,

899.

— nitidum II, 232.
Dialytrichia canariensis

Bryhn* 55, 74.
Diatithus 454, 504. — II,
100, 154. — P. 272. —
N. A. II, 355.

Armeria X deltoides
II, 355.

— Carthusianorum L. II,
566. — III, 169.

— Caryophyllus L. 653.

— crinitus P. 320.

— Hellwigii II, 355.

— Libanotis II, 128. — P.
320.

— macranthoides P. 320.

— nitidus II, 100.

— orientalis P. 310.

— plumarius II, 355.

— Hequienii III, 56.

— scoparius P. 303.

— speciosus Rchb. II, 355.

— superbus L- II, 355.

— — rar. speciosus Rchb.
II, :i55

— Wimmeri Wichwra II,
355.

Botanischer Jahresbericht

Diapensia lapponica II,

582. — P. 309.
Diapensiaceae II, 1 42, 405.
Diaphanodon gracillimus

Card, et Ther* 74.
Diaporthe (Euporthe )Bap-

tisiae Rehm* 287.

- (Euporthe) glandulosa

Rehm* 287.

— Heveae Petch 135.

— (Euporthe) Kriegeriana
Rehm* 287.

— mate Speg* 287.

— parasitica Murr. 122,
215, 845.

— (Tetrastaga) Polygoni
Rehm* 287.

— striaeformis (Fr.) Nke.
241.

— — var. Molleri Sacc.
241.

— yerbae Speg* 287.
Diaspis 815.

Diastrophus rubi II, 613.
Diatoma II. 635, 640. —

III, 592.

— anceps var. capitata M.
P. II, 641.

var. linearis M. P.

II, 641.

— elongatuin II, 630.

— tenue II, 633.

— vulgare Bory II, 629,
630, 637.

Diatomeae 327, 328, 333,
340, 341, 342, 344, 345,
346, 348, 349, 366, 380,
596.

Diatrype Baccharidis P.
Renn* 287.

— enteroxantha (Berti.)
Berl 146.

— mindanaoensisP.ffenn.*
287.

— tumida E. et E. 141.

— virescens (Schw.) Cke.
146.

Diatrypella missionum

Speg* 2^7.
Diatrypeopsis Speg. 242.
XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt

Diatrypeopsis la.cca.ba Speg.

242.
Dicellandra N. A. II, 458.
Dicentra III, 269.

— torulosa III, 269.
Dichaena quercina Fr. 146.
Dichapetalaceae II, 406.

— III, 198, 219.
Dichapetalum Thouars II,

537. — III, 222. — X. A.
II, 406.

— leucosepalum Buhl. III,
198.

— mossambicense Engl
II, 846.

— Stuhlmanni Engl. II,
846.

Dichilus X. A. II. 444.
Dichiton 39.

— calyculatus 39.
Dichodontium pellucidum

Schpr. 70.
Dichopetalum F. Muell.
II, 247, 537. - in, 340.

— floribundum II, 247.

— ramusculaceum F. v.
Müll. II, 260, 537.

Dichosciadium Domin X.
G. II, 261. — III, 340.

— X. A. II, 537.

— ranunculaceum (F. v.
M.) Domin II, 261.

Dichotomantb.es III, 222.
Dichromena ciliata III, 80.
- Minarum III, 80.

— pubera III, 80.

— repens III, 80.
Dichrostachys II, 233, 234.

— nutans Benth. II, 232,
233, 624.

Dichrotrichum X. A. II,

430.
Dickinsia III, 341.
Dicksonia II, 739.

— antarctica II, 755.

— Blumei Moore II, 783.

— Copelandi Christ II.
780.

— grandis Rosenst.* II,
783, 811.

•_!'.'. 1. 12.1 •"'-

818

Dicksonia Obrutschewi— Didisous saniculifolius.

Dicksonia Obrutschewi
Krass* 582.

— pilosiuscula 699.

— squarrosa II, 739.

— Suessi Krass.* 582.
Diclidanthera III, 221.
Dicilptera X. A. II, 324.

— bupleuroides Nees II,
557.

Diclytra spectabilis DC.

737.-11,566.-111,270.
Dicoria II, 186. — III, 178-

— N. A. II, 381.
Dicraea algaeformis Bedd.

III, 275^

— apicata 448.

— elongata Tid. III, 275.

— fucoides 448.

— laciniata 448.

— stylosa 44S.

— — rar. fucoides lYillis
III. 275.

Dicranella 35.

— breviseta Par* 52, 74.

— canariensis Bryhn* 54,
74.

— limosa (Besch) Broth.
53.

— Pervilleana Besch. 53.

— Schreberi Schpr. vor.
nivalis Kern* 46.

— secunda Lindb. 41.

— subulata Schpr. 70.

— varia Seh. var. madei-
rensis Card* 55.

Dicranodontium longi-

rostre Schpr. 70.
Dicranoglossum Sm- II,

806.
Dicranoloma 51.

— scopareolum (C. Müll )
Ren. 53.

Dicranophora 232.
Dicranophyllum Benecke-
anum Sterz.* 618, 620.

— gallicum 618.

— latifolium Sterzel* 625.

— Richeri 610.
Dicranoweisia breviseta

Card* 74.

Dicranoweisia cirrata (L.)

Lindb. 54.
Dicranum II, 267.

— euschistodon Card* 74.

— falklandicura Card* 74.

— japonicum Mitt. 52.

— majus Sm. 70.

— Muehlenbeckii Br. eur.
70.

— Nordenskiöldii Card*
74.

— Novae-Hollandiae Hsch.
57.

— perlongifolium Card*
74.

— petropbylum Negri* 74.

— rnfescens Schpr. 52.

— — var. orthophyllum
Par* 52.

— scoparium Hedw. 70.

— — fa- alpestre 40.

— — var. nigrescens
Györffy* 45, 74.

— Scot.tii 42.

— Sendtneri Limpr. 45.
— spadiceum Zett. var.

obtusum Bryhn* 36, 74.

— Skottsbergii Card* 74.

— subimponens Card* 74.

— undulatum 34, 672.
Dictamnns albus L. P. 299.
Dictydiaethalium phimbe-

um (Schum.) Rost. 125.
Dictydium cancellatum

(Batsch) Macbr. 125, 143.
Dictyolomeae III, 223.
Dictyoneis Kinkerii Pant*

II, 644.

— Quintii Pant.* II, 644.

— subreeta Pant* II, 644.
Dictyonema Websteri 612.
Dictyophleba II, 332.
Dictyophora irpicina Pat.

135.

— phalloidea Besv. 135.
Dictyophyllum 590, 613,

622, 628, 639.

— acutilobum 612.
Dictyopteridae 613.
Dictyopteris 613.

Dictyopteris labrusca("i/Ä".|
v. A. v. R. II, 781.

— — var. ternata v. A.
v. R* II, 781, 807.

— (Arcjpteris) penta-
phylla v. Aid. v. Ros*

II, 781, 811.
Dictyosiphonaceae 370.
Dictyosphaerium 348.
Dictyosporium Cda. 269.

— opacum Cke. et Harkn.
212.

— yerbae Speg* 287.
Dictyota 329, 372. II.

735. — III, 360, 397.
Dictyotaceae 372.
Dictyozamites 613.

— Johnstrupi Nath. 591.
Diderma crustaceum Peck

125.

— testaceum (Sehrad.)
Pers. 143.

Didiereaceae III, 224.
Didiscus (DC.) II, 538.-

III, 338, 340, 341.

— Bentharni III, 338.

— bialatus III, 338.

— celebicus III, 339.

— clachocarpus III, 338,

— coeruleus III, 338.

— compositus III, 338.

— Croninianus III, 338.

— cyanopetalus III, 338,.

— Dusenii III, 338.

— geraniifolius III. 339.

— Gillenae III, 338.

— glandulosus III, 338.

— glaueifolius III, 238.

— hemicarpus III, 338.

— Homei III, 338.

— humilis III, 338.

— incisus III, 338.

— junceus III, 338.

- macrophyllus III, 338.

— microeephalus III, 338.

— ornatus III, 338.

— pilosus III, 338.

— pimpinellifoliusIII, 338.

— procumbens III. 338.

— sauiculifolius III, 339.

Üidiscns scapiger -Diospyros uiespilif'oriiiis.

819

Didiscas scapiger III, 338.

— tenuifolius III, 338.

— villosus III. 338.
Didymaria didyma Schroet.

150.

— ranunculi montani
(Mass) Magn. 144.

Didymella coffeicola II,
880.

— Dryadis Speg. 146.

— glumicola Speg* 287.

— sachalinensis»S'öcc.:i:287.
Did}Tmium 228.

— difforme (Pers) 143.

— nigripes Fries 229.

— SLjuaniulosum (Alb- et
Schw.) Fr. 125.

Didymocarpns N. A. II,
430.

— cyanea Ridl. III, 212.
Didymochlaena II, 766.

— lunulata Desv. II, 794.
Didymodon 38.

— austriacus Schffn. et
Buumg. 69.

— ligulifolius Rth* 39,
74.

— luridus Homsch. 38.

— rigidulus Hedw- 69.

— subalpinus Card. 48.

— validus Limpr. 47, 69.
Didymopanax III, 145. —

Y A. II, 334.
Didymosperrna porphyro-

carpon III, 130.
Didymosphaeria bambusi-

cola v. Höhn* 128, 287.

— smaragdina (Ces.) Sacc.
103.

— yerbae Speg* 287.
Didymostübe P Herrn. 269.
Dieffenbachia 532. — III,

658.

— daraquiniana 532. —
II, 982.

Diervilla III. 167, 221.

— grandiflora N. et Z. Hl,
166.

— japonica DC III, 166.
Diyitaleae III, 50.

Digitalis LH, 50, 412, 424,
492, 495, 496, 499, 527,
533, .">45, 5.").'), 643. —
N. A II, 521.

— purpurea L. II, 720. —
111, 472, 492, 536.

Digitaria debilis Willd. III,
86.

— flaccida Stapf III, 86.
Digonospermum Grilleti

Ren. 548.
Dilatris II, 242.
Dillenia III. 55. — N. A.

II, 406.

— indica III, 42.

— pentagyna Roxb. II,
852.

— speciosa P. 280.
Dilleniaceae II, 221, 250,

406. — III, 55, 198,

224, 225.
Dirnelaena 15.
Dimeriella Speg. N. G- 129,

287.

— hirtula Speg* 287.
Dimerium Celtidis P.

Renn* 287.

— Guineri Maire* 287.

— incnxstans Speg* 287.

- P. 282.

— leptosporum Speg* 288.

— Solani P Heyin.* 288.
Dimerosporiella Speg. N. G.

129, 288.

— paulistana Speg* 288.
Dimerosporium 129. — P.

282.

— baccharidiphilum Speg*
288.

— Berliniae Rat. et Har*
139, 288.

— Cordiae P Renn* 288.

- Ingae P Renn* 288.

— mindanaense P. Herrn*
288.

— pelladense P Renn*
288.

- Strychni P Herrn. * 288.
Dimorphella (C- Müll.) Ren.

et Card. 59.

Dimorphococcus 348.
Dimorphotheca Ecklonis

III, 57.
Dinemasporium hispidu-

lum herbarum Cke- 142.
Dineuron Ren. 550, 580.

— ellipticum Kidst* 580.
Dinobryon 330, 348.

— cylindricuüQ 339.

— marchicum Lemm- 342.

— utriculus Lemm. 342.

— — var. tabellariae
Lemm. II, 636.

Dionaea III, 23.

— muscipula L- 750. —
III, 8.

Dioon edule Ldl. 453, 484.

— III, 72.
Dioonites acutifolium 612.
Dioscorea II, 243, 268,

821, 890. - III, 852. —

N. A. II, 291.

— alata 541. — II, 822.

— dumetorumPax III, 84.

— elephantipes II, 243.

— glabra Roxb. II, 851.

— Macabiha Juni- et Perr.
III, 455.

— rhizogonioides II, 162.

— sativa II, 822.

— tuberculifera II, 822.

— villosa II. 172.

— zingiberensis II, 162.
Dioscoreaceae II, 205, 243,

291. — III, 84.
Diospyrales III, 16.
Diospyrinae III, 221.
Diospyros 524, 600. - II,

899, 993. — III, 59. -
N. A. II, 407.

— atropurpurea II, 899.

— discolor Willd. 524,
ä25. — II, 993.

— Kaki II, 871. 993. —
III, 42, 199.

— Lotus II, 993.

— melanoxylon Poxb. 11,
851.

— mespiliformis Höchst.
II, 624.

52*

820

Diospyros inontana — Diplodina Oudemansii.

Diospyros montana Roxb.

II. 557.

— rotundifolia Lesq. 594.

— samoensis A. Gray 457.

— tetrasperma Sic. II,
900.

— toposioides King et
Gamble II, 890.

— virginiana II, 993.
Dipcadi N. A. IT, 305.
Dipelta III, 167.

-- ventricosa Hemsl* III,
41), 167.

— montana Gr. II, 899.
Dipbolis nigra Griseb. II,

900.
Diphyscium sessüe

(Schmid) Lindbg. var.

rostratum Zda* 39.
Diplachne biflora Hack.

III, 86.

— Eleusine Nees III, 86.

— fusca Beaur. II, 839.
— III, 86.

— nana II, 232.
Diplacrum africanum III,

81.

— caricinum III, 81.

— longifolium var- ro-
bustior III, 81.

— ■ pygmaeum III, 81.
Diplanthera II, 240.
Diplasia karataefolia III,

81.
Diplazites longifolius

Brongn. 618.
Diplazium II, 780, 789,

792.

— arborescens Mett, II,
784.

— aridum Christ * II, 778,
811.

— a-vitaguense Hieron.*
II, 792, 807, 811.

— consacense Hieron* II,
791, 807. 811.

— delitescens Maxon* II,
790, 808, 811.

— escnlentum (Retz) II,
784

Diplazium expansum
Willd. II, 792.

— franconis Liebm. II,
790.

— gachetense Hieron.* II,
791, 808, 811.

— grammitoides Pr. II,
808.

— hians Kze. II, 792.

— Klotzschii (Mett) Moore
II, 791.

— — var. Stübeliana
Hieron* II, 792.

— LindbergiifJUe^ Christ
II, 791.

— — var. bogotensis
Hieron* II, 791.

— maximum II, 777.

— mutilum Kze. II, 791.

— nicotianaefolium (Mett.)
C. Chr. II, 791.

— — var. angusti-pinnata
Hieron* II, 791.

— nitens Rosenst* II, 784,
811.

— obtusum Desv. H. 791,
792.

— oreophilum Maxon et
Underw* II. 790, 811.

— Ottonis Kltzsch. 11,791.

— pastazense Hieron* II,

791, 808, 811.

— peladense Hieron.* II,

792, 808, 811.

— proliferum(XamJ77;ow.
II, 794.

— ])uUcosum( Hook) Moore
II, 792.

— Roemerianum (Kze-)
Hieron* II, 791.

— — var. mindensis
Hieron* II, 791.

— Shepherdii (Spr.) Presl
II, 791.

— — var. Stübeliana
Hieron.* II, 791.

— siWa.ticuin( Borg) Sw. II,
794.

— Sprucei (Bak.) C. Chr.
II, 791.

Diplazium Stübelii/imo».*

II, 792, 808, 811.
-- tabalosense Hieron* II,

791, 808, 811.

— tenue Desv. II, 791.

- v&stum. (Mett.) Dielsll,
792.

Wolfii Hieron* II, 792.
808, 811.

— yungense Rosenst* II,

792, 811.
Diploclisia III, 252.
Diploconchium inocepha-

lum Schauer II, 308.
Diplodia 213. II, 910.

— Astrocaryi P. Henn*
288.

— Berberidis Rota-Rossi*
288.

— Berberidis Sacc* 288.

— cacaoicola P. Henn*
130.

— Cassiae-multijngae P.
Renn* 288.

— Castaneae 105.

— cercidis E- et E. 142.

— Citri P. Henn* 288.

— Ooffeae P. Henn* 139,
288.

— (Jytharexyli P. Heiin.*
288.

— Dracaenae P. Henn*
288.

— Euonymi West. 142.

— fructus-Pandani P.
Henn* 288.

— Gmelinae P.Henn* 288.

— Hibisci P. #enn.* 288

- M ay dis ( Berk.) Sacc. 85 1 .

— OenocarpiP.fl'ewn.*288.

— pinea 203, 848.

— platanicola Sacc* 149,
288.

— vasinfecta II, 848.

— Weigeliae Sacc* 288.

— yerbae Speg* 288.
Diplodina Castaneae Prill.

et Del 105.

— Oudemansii Allescher
144.

Diplokuema— Dolichanthera.

821

Diplokuema III, 312, 313.
Diplolabis Ren. 550, 552,

553, 597.
Diplomita socialis üTe??^. H>

636.
Diploneis borostelekiana

Fant." II, 644.

— elliptica Cleve II, 630.
Diplopappus filifolius II,

838.
Diplophvllum gymnosto-

mophilum 65.
Diplopora 380, 543, 613,

624. - - II, 766.

— Mühlbergi 543*
Diplopsalis pillula Ostenf '

346. 383.
Diplorrhvnckus rnossam-

bicensis Benth. II, 624.
Diplosigopsis EntziiFrance

342.

— Francei hemm. 342.

— frequentissima (Zach.)
Lemm. II, 636.

Diplotaenia cachrydifolia
Boiss. 111.337. - P. 310
Diplotaxis 439. — III, 193.
Diplotesta Brongn. 548.

— Grand'Euryana 548.
Diplusodon II, 124. — N.

A. II, 454.
Diplycosia II, 212.
Dipodium III, 121.
Dipsacaceae II, 406, 724.

— III, 199, 222.
Dipsacus .">17. — II, 725.

— fullonum II, 137, 269.

— silvestris MM. 646, 713.
- III, 199, 356, 357. —

P. 119, 309.
Dipteris II, 765.

— conjugata II, 762.
Dipterocarpaceae 427. —

11, 223, 407. -- III, 199,
266, 411.
Dipterocarpus II, 902.

— grandiflorus P. 298.

— pilosus II, 223.

— tubereulatus II. 222,
223.

Dipteroceeidium II, 606.
Dipterygium glaucum II,

232.
Dirichletia Princei Dop*

433. — II, 226.

— tricbophlebia Baker II,
226.

Dirina repanda Xyl. 24.
Disa longif ornu III, 120.
Discella populina Sacc*

149, 288.
Dischidia III, 337. — N. A.

II, 336. 337.
Discina reticulata (Grev.)

121.

— venosa (Pers.) 121.
Discocactus III, 158.-
Discocalyx Mez III, 257,

258. — N. A. II, 465.
Discocyphella bambusi-

cola v. Höhn.* 128, 288.
Discomycetes 106, 126,

128, 166, 167, 837.
Discopodium penniner-

vium Höchst. III, 330.
Discosia artocreas (Tode)

Fr. 150, 273.

— Theae Cav. 218, 219.
— II, 848.

Discostrobus Krass. N. G-
582, 583.

— arguuensis Krass* 582.
Discula Ceanothi Bub- et

Kab* 118, 289.
Disoxylum II, 461. — N. A.

II, 461.
Disperma dentatum C- B-

Cl. II, 624.
Dispira 233.
Disporum III, 4.
Dissochaeta II, 216, 460.
Dissodon Froelichianus

64S.
Dissorhyuchium muri-

catum Schauer II, 313.
Dissotis P. 311. — N. A.

II, 458.

— capitata (Vahl) Hook- f.

III, 251.
Disticbiuin 39.

Distichopbyllum cavii'oli-

um Card* 74.
Distictis N. A. II, 344.
Distylium racemosum.SVeo.

et Zucc. II, 626. - - III,

214.
Ditassa N. A. II, 337.
Ditricbum 51.

— canariense Bryhn* 55,
74.

— divaricatum Mitt. var.
exaltatum Card* 74.

— hyalino-cuspidatum
Card* 74.

— stenostomumC«rrf.*74.

— zonatam Brid. 47.
Ditylium II, 637.

— Brigbtvvellii (West)
Grün. II, 632.

Doassansia Martianoffiana
(Thüm.) Schroet. 100.

Docidium fenestratum
Bernard* 383.

Dodecatheon N. A. II, 481.

— Cusickii Greene 11, 481.

— Hendersoni A. Gray II,
481.

— integrifolium Michx. II,
481.

— integrifolium vulgare
Hook. IL 481.

— mtegrifolium latifolium
II, 481.

— meadia II, 481.

— meadia puberula Nutt.
II, 481.

— pauciflorum Durand II,
481.

— pauciflorum Greene II.
481.

— puberulenturu Heller II,
481.

Dodonaeo truncatialesrar.
heteropbylla II, 255.

— viscosa II, 115, 166.
Doleropbyllum 625.
Doleropteris pseudopel-

tata Gr.'Enry 618, 625.

Dolichantbera Schltr. et K-

Krause N. G. X. A. II, 505.

822

Doliohodelphys — Drepanocladus procerus.

Dolichodelphys K.Sch. N.G.

II, 344.

— chlorocrater K- Seh. et
Krause III, 306.

Dolichos II, 248, 820, 829.
— III, 432. — N. A. II,
444.

— biflorus II, 829.

— bulbosus II, 822.

— Lablab L III, 534.

— tetragonolobus II, 830.
Dombeya II, 898. — III,

250. - - N. A. II, 530.

Bruceana A. Rieh. III,
333.

Buettneri II, 905.

— runsoroensis Schum. II,
898.

Donatia II, 120, 580.

III, 222.

- — fascicularis II, 120.

Donax III, 108.

Dorema ammoniacum III,

647.
Doritis N. A. II, 310.
Doronicum N. A. II, 381.

— cordifolium P. 119, 315.
Dorstenia 527. - - II, 243,

540. - - III, 52. --N. A.
II, 463.

— contranerva 526. — II,
984.

— Drakeana 526. — II,
984.

- elliptica _BweattIII,253.
Doryalis N. A. II, 423.
Doryanthes Palmeri III,

74.
Doryopteris II, 766.

— concolor (Langsd. et
Fisch.) Huhn II. 794.

- pedata \L.) ./. Sm. II,
808.

Dotbichiza exigua Sacc*
149, 289.

- populea 274, 849.
Dothidea Fr. 115.

— Macbaerii P. 304.

— Striphnodendri P.Henn*
289.

Dothideaceae 113, 115,

119, 126, 127, 138.
Dotbidella Speg. 115.

— Berkeleyana (Che.) Berl.
et Vogl. 147.

— betulina (Fr.) Sacc. 149.

- Mabae P. Henn* 289.

— placentiformis Rehm
146.

— Ulei P. Henn. 135, 823.
Dothiora Fries 115.

— Salicis Lind et VleugeV
289.

Dotbiorella advena Sacc.

149.
Daniellae Pat- et Har.*

139, 289.
Draba 504. — II, 146.

III, 191. - N. A. II,

403.

— alpin a L- II, 146.

— altaica Bunge II, 403.

— altaica Fries IT, 403.

— fladnizensis II, 403.

— Martinsiana Fries II,
403.

— micropetala 11, 146,403.

— Pringlei Rose III, 190.

— rupestris var. altaica
Ledeb. II, 403.

— subcapitata II, 146.

— venosa Ludw. 561.

— verna III, 52, 190.
Dracaena 468. — II, 242.

III, 57, 107. — P.
299, 308, 316.

— arborea III, 107.

— Draco L. III, 107.

— fragrans III, 107.

- Goldieana III, 107.

— marginata III, 107.

- ombet II, 234.

— PerrottetiBaÄ.IIl, 101.

— Rothiana III, 107.

— Rumphii III, 107.
Dracocephalum N. A. II,

436.

— Royleanum Benth. 509.
Dracontium N. A. II, 281.

— pertusum Forst. II, 282.

Dracontomelum N. A. II,
323.

— celebicum Koord. II,
328.

— mangiferuni F. Yill. II,
328.

Dracophyllum latifolium

II, 262.
Draparnaldia plumosa 335.
Drepanantbus N. A. II,

329.
Drepanium cupressiforme

39.
Drepanocarpus lunatus

Mey. II, 837.
Drepanocladus Loeske 58.
Drepanocladus (C. Müll.)

Roth 58.
Drepanocladus 61.

— aduneus Hedw. 61, 62.

— aquaticus (Santo) Roth*
61, 74.

— Arnelli (Sanio) 61.

— badius (Hartm.) 61.

— Berggrenii C. Jens- 61.

— brevifolius Lindb. 61.

— Brotheri (Santo) 61.

— capillifolins Warnst. 61.

— contiguus (Nees) 61.

— Cossoni (Schpr.) 61.

— ■ exannulatus Gümb. 61.

— fluitans (Hedw.) 61.

— furcatus Roth et v.
Bock* 61, 74.

— bam'ifolius Schpr. 61.

— hereynicus Warnst- 61 .

— mtermedius (Lindb. )Ql.

— Kneiffii (Sclq)r.) 61.

— latifolius (Lindb.) 61.

— longicuspis Lindb. et
Arn. 61.

— lycopodioides Brid- 61.

— orthophyllus (Milde)
61.

— orthotbecioides Lindb.
61.

— perplicatus Dus. 61.

— polycarpus (Limpr.) 61.
— procerus Ren. et Arn.

61.

Drtpanocladus pseudofluitans— Dryopteris Goldieana X marginalis. 823

Drepanocladus pseudo-
fluitans (Sanio) 61.

— pseudorufescens
Warnst. 61.

— p.seudostramineus C.
Müll. 61.

— purpurascens (Schpr.)
61.

— revolvens (Sw.) 61.

— Rotae (De Not) 61.

— Sendtneri (Schpr.) 61.

— serratus (Lindb) Roth.
61, 74.

— simplicissimus UVirwsf.
61.

— tenuis (Schpr.) Roth 61,
74.

— uncinatus Medw- 61.

— uncinatus (Medw.)
Warnst. 55.

— — rar. contiguus (Tees)
TFftrnsf. 55.

— uncinatus war. sub-
simplex 40.

— vernicosus (Lindb.) 61.

— AVilsoni (Schpr-) 61.
Drepanoconis larviformis

Speg. 145.
Drepanolejeunea samoana

Steph* 84.
Drimia ensifolia jBcW. II,

307.

— Ludwigii Miqu. II. 307.
Drimiopsis X. A. II, 305.
Drimys X. A. II, 455. —

P. 315.

— antarctica Dus* 559.
Drosera III, 199, 396.

— bulbigena A. Morr. II,
256. — III, 199.

— Burkeana Planch. III,
199.

— pygmaea II, 263, 560.
Droseraceae III, 199, 218,

226, 317.
Drummondia Cavaleriei

The'r* 74.
Drusa DC III, 341.
Dryandroides banksiae-

folia 614.

Dryas 478, 480, 481, 504.
- III, 34. - X. A. TI,
4'. 14.

— octopetala L. 575, 577.
Drymispermum Burnettia-

num III, 655.
Drymocallis III, 296. —
X. A. II, 494.

— convallaria Rijdb. II,
494.

— glutinosa Rydb- II, 494.

— reflexa Rydb. LI, 494.

— rbomboidea Rydb. II,
494.

Dryraophloeos Reineckei
Warb. 458. — II. 101,
206.

Dr}*naria II, 766.

— descensa CopeZ.* 11,779,
811.

— fascia Bayer 592.

— involufca v. Aid. v- Ros*
II, 782, 808, 811.

— mutilata Christ* II,
778, 811.

— pleuridioides Presl II,
778.

— quercifolia II, 779.
Drynariopsis Copel. II, 766.
Dryobalanops aromatica

Gaertn. II, 898.
Dryophanta disticha Har-
tig II, 605.

— divisa JJtg. II, 618.
Dryopbyllum aijuamaram

Ward 594.

— curticellense 564.

— levalense Marty* 588.
Dryopteris Adans. II, 765,

806.

— afra Christ' II, 796,
sil.

- antarctica Dus* 559.

— arbuscula II, 782.

— arida (Don) O- Ktze.
II, 780.

— — rar. ebeneorhachis
Copel* 780.

— atbyriocarpa Copel* II,
782, 811.

Dryopteris (Lastrea )
Backeri v- Aid. v. Ros*
II. 781, 7S2. Sil.

— brachyodes Kze. II,
778.

— Brooksii Co},el* II, 782.
811.

— canescens var. acrosti-
choides II, 783.

— Clintoniana X Goldie-
ana II, 786.

— Clintoniana X inter-
media II, 786.

— Clintoniana X margi-
nalis II, 786.

— ■ cristata X intermedia
II. 786.

— cristata X spinulosa II,
786.

— cuspidata (Bl) Christ
II, 777.

— — var. epigaea Copel*
II, 777.

— dilatata (Hoffm.) Gray
II, 788.

— dissecta Forst. II, 778.

— — var. sepidota Christ*
778.

— diversifolia v. Aid- v.
Ros* II, 781, 811.

— Eberhardtii Christ* II,
778, SU.

— (Nephrodium) eriochla-
mys Christ* II, 777,
811.

— en'throsora II, 776.

— falciculata (Raddi) Kze.
II, 790.

— i'ilix-mas (L ) Schott. II,
773.

— filix-mas var. elongata
II, 793.

— filix-mas X spinulosa II,
773.

— Goldieana celsa Palmer
II, 786.

— Goldieana X intermedia
II, 786.

— Goldieana X margina-
lis II, 786, 788.

824

Dryopteris goagylodes — Echinocactus Maassii.

Dryopteris goagylodes
(Schkuhr) II, 765.

— gracilescens (BD 0.
Ktze. II, 780.

— Hewittii Copel* II, 782,
812.

— indochinensis Christ*
II. 778, 812.

— Johnstoni Maxon* II,
790, 812.

— latiuscula Maxon* II,
790, 812.

— mollicula II, 778.

— oligophylla Maxon* II,
790, 812.

— opposita Vahl II, 778,
793.

— oreo])teTis(Ehrh.) Maxon
II, 806.

— orientalis (Gmel.) II
766.

— parasitica (L.) II, 777.

— Peekeli v. Aid. v. Ros.*
II, 781, 812.

— pedata II, 790.

— (Nephr.) piloso-squa-
mata /;. Aid. ?; Ros.* II,
7S2, 812.

— pilosnla (Kze.) II, 778.

— pulchella (Salisb.) Hayek
II, 773.

— pyramidata (Fee) Maxon
II, 790.

— radicans (L.) Maxon
II, 790.

— remota (A. Br.) Hayek
II, 773.

— serrulata (Sir.) C. Chr.
II, 790.

— ^eymourensis 559.

— simulata Davenport II,
788.

— spinulosa (Müller) 0-
Ktze. II, 806.

— senophylla Rosenst: II,
793, 812.

— Taquetü Christ* II, 776,
812.

— Teuscheri v. Aid- r.
Ros* II, 781, 812.

Dryopteris trifurcata II,
773.

— unita (L.) II, 765.

— valida Christ* II, 777,
812.

— vilis (0. Kze.) II, 780.

— viscosa (7. Sm.) C Chr.
II, 782.

— (Phegopteris)yungensis
Rosenst. II, 793, 812.

Drypetes ilicifolia Kr. et

Urb. II, 900.
Duchesnea III, 296.
Ducroisiaanethifolia Boiss.

II, 156.
Dudresnaya japonica Oka-

mura* 347. 383.
Dufourea Ach. 14.
Dulichium spathaceumlll,

80.

— vespiforme Reid* 609.
Durandea N. A. II, 450.

— Deplanchei Stapf II,
208.

— Jenkinsii (F. v. Müll.)
Stapf II, 256.

— latifolia (Vieill.) Stapf
IT, 208.

— Lenormandi Stapf II,
208.

— magnifolia 0. Stapf II,
216.

— parviflora Stapf II, 209.

— racemosa (Vieill.) Stapf
II, 207.

— viscosa Stapf 11, 208.
Duranta III, 343. — N. A.

II, 544.

— Plumieri Jacq. II, 557.

— vitiensis Stapf II, 206.
Durio zibethinus III, 42.
Duvernoya N. A. II, 324.
Durvillea 336.
Dussiella violacea v. Höhn*

128, 289.
Duthiella C. Müll. 58.
Dyckia III, 78. — N. A. II,

284.
Dyerophyton africanum

(Lam.) 0. Ktze. III, 273.

Dysoxylon alliaceum
Blume 457.

Earliella corrugata 135
Eatonia glabra Nash llr
300.

— pubescens Scribn. II,
300.

Ebenaceae II, 250, 407. —
III, 199, 221.

Ebenales III, 219.

Ebenoxylon boreale diä-
ten* 600.

— speciosum 599.
Echeandia paniculata Rose

II, 194.

— reflexa Rose II, 194.
Echeveria turgida Rose II,

124.
Echinocactus 767. — II,
348, 574.

— aciculatus S-.D. III,
157.

— Arechavaletae K. Seh.

III, 159.

— braehyanthus Guerke*

II, 268.

— coquimbanus Rwmpl.

III, 158.

— corynodes Otto III, 1.")!).
- Oourantii Lern. II, 348.

— erinaceus Leu/. III,
159.

— Fabeanus Mieckley II,
124.

— Fiebrigii Gurke III,
157.

— Fricii Arech. IL 268. —
III, 157, 158.

— gladiatus Pfeiff. II,
192.

— hastatus Hopf. II, 192.

— Jenischianus Pfeiff. III,
159.

— Kurtzianus Gurke II,
269.

— leueocarpus Arech. III,
157.

— Maassii E. Heexe* II,
270.

Echinoeactus Mihanovichii — Elaeodendron.

825

EchinocactusMihauovichii
Fric et Gurke III, 157.

— myriostigma 655, 7H7.

— myriostigma S.-D. HI,
157, 161.

— pauciareolatus Areclt.
III, 157.

— platensis Spegazz. II,
268.

— Quehlianus F. Haage
III, 157.

— Sellowii T.k. et Otto III,
157.

— tephracanthus Link et
Otto H, 348.

Echinocereus II, 183. —
III, 160. — N. A. II,
348.

— acifer Lehm. III, 157.

— conoideus III, 160.

— Kunzei Gurke II, 185.

— neomexicanus III, 160.

— polyacanthus Engelm.
II, 191. — III, 160.

— pensilis (Brandegee)
Purp. III, 160.

Echinopsis cereiformis III,

29.
Echinodorus humilis II,

240.
Echinopanax horridum II,

146.
Echinophora spinosa II,

718. — III, 341.
Echinops II, 251. — NA.

II, 381.

— multiplex III, 29, 158.

— Ritro L. II, 575.

— Tournefortii Ledeb. III.
173.

— viscosus II, 128.
Echinopsis lateritia Gurke*

II, 124, 269.

— mamillosa Gurke* II,
124, 269.

— Meyeri E. Reese 11,
204.

Echinopteris lappiüa II,

228.
Echinostrobus 513.

Echiochilon fruticosum II,

607.
Echites III, 59. — P.

292. - N. A. II, 331.
Echium N. A. II, 345.
— plantagineum L. III,

156.

— violaceum L. II, 258,
846. — III, 155.

Ecklonia capensis III, 80.

— radiata 371 .
Ectocarpus 333.

— moniliformis A.Vickers*
351, 383.

— Rallsiae A. Vickers* 351,
383.

— variabilis ,4. Vickers* 351 ,
383.

Ectozoma X. A. II, 528.
Ectropothecium Mitt. 51,
59.

— arcuatum R. et 0. 54.

— Boutani Par. et Broth*
74.

— campylothecium Broth.
74.

— Dafilae Par- et Broth.
56.

— cyathothecioidesBro£/j.if
75.

— excavatum Broth* 75.
- Ferriei Card, et Ther*

75.
galerulatum (Dub)
Besch. 54.

— isopterygiforme Card-
et Ther:- 75.

— oshimense Card et
Ther* 75.

— Rechingeri Broth.' 75.

— reguläre (Brid.) Besch.
54.

— rupicolum Broth* 75.

— rizalense Broth* 75.

— spirifolium Dus. 82.

— stigmophyllum Broth*
75.

— strictifolium Broth. 75.

— subintorquatumBroi/j.*
75.

Ectropothecium tamata-
vense Broth* 54, 75.

— verrucosum Jaeg. 69.
Edgeworthia papyrifera II,

920.
Edraianthus Pumilio III,

56.
Egassea N. A. II, 527.
Ehretia II, 194.

- acuminata R. Br- II,
557. — III, 15o.

— macrophylla Wall. III-
155.

Ehrharta calycina Sm. III,
86.

— erecta Lam. var. nata-
lensis Stapf III. 86.

Eisenia arborea 371.
Elachista stellaris 345.
Elaeagnaceae II, 407.
Elaeagnus II, 146. — N. A.
II, 407, 408.

— angustifolia II, 993. -
P. 854.

— edulis Sieb. III, 199.

- glabra Thbg. III, 199.

— glabra X pungens II.
408.

— macrophylla Wall. II,.
408.

— pungens X macrophylla
II, 408.

— reflexa P. 323.

— umbellata Thunbg. II,
557. - III, 199.

Elaeis II, 235, 236, 241,
949.

- guineensis Willd. 232,
236. — II, 924.

Elaeocarpaceae II, 166,

408. — III, 200.
Elaeocarpus N. A. II, 408.

— dentatus II, 264.

— — var. obovatu-;
Clieesem. II, 264.

— photiniaefolia II, 166.

— samoensis Lauterb.
158.

Elaeodendron III, 171. —
\. A. II, 357.

826

Elaedodendron croceum — Enantiohlastae.

Elaedodendron croceum
(Thbg.) DC III, 170.

— glaucum Pers. II, 935.
— III, 168.

Elaeodendroxylon Finten
N. G. 600.

— polymorphum Platen*
600.

Elaeophorbia Stapf N. G.
II, 248.

— drupifera Step/"* H, 249.
Elaeoselinnm Asclepium

Bert. III, 46.
-- meoides III, 46.
Elaphoglosbum 11, 766.
- conforme (Sir.) Schott

II, 780, 795.

— marginatum (Moore)
Wall. II, 785.

— Merrillii Christ" II, 780,
812.

— microplryllum r. Aid.
v. Kos* II, 781, 812.

— pachycraspedon Christ*

II, 791.

— Palmeri Maxon* II,
790, 812.

— petiolatum (Sw.) Urban
IL 790.

— plumosum (Fee) 11,796.

— Reineckii Hieron- et
Lauterb* II. 785, 812.

— Ruwenzorii Pirotta* II,
796, 812.

Elaphomyces Kees 169.
— - anthracis Vitt. 169.

— cervinus 177.
Elaphomycetaceae 1 23, 1 68.
Elateriospermum N. A. II,

415.
Elatinaceae II, 409. —

III, 200.

Elatine N. A. 11, 409.

— Alsinastrum L. II, 580.

— campylosperma Borb.
II, 409.

— hexandra L. II, 580.

— hydropiper L. II, 409,
580.

— triandra Schknhr II, 58( I.

Elatinoides N. A. II, 521.
Elatostema III, 3, 59. —
N. A. II, 540.

— sessile 526, 527. — II,
984.

Eleocharis 111, 81. — N. A.
II, 290.

— acuminata III, 80.

— arenaria III, 80.

— articulata Kth. II, 837.

— atropurpurea III, 80.

— Berlandieri III, 80.

— debilis III, 80.

— elata III, 80.

— fistulosa III, 80.

— geniculata III, 80.

— grandis III, 80.

— interstincta R. Br. II,
837. — III, 80.

— melanocarpa III, 80.

— minima III, 80.

— mitrata III, 80.

— Neo-Zelandica III, 80.

— nigrescens III, 80.

— nuda III, 80.

- pachystyla III, 80.

— plantaginea III, 80.

— — rar. gigantea III,
80.

— Savatieri III, 80.

— Sellowiana III, 80.

— simulans III, 80.

— sphacelata III, 80.

— spiralis III, 80.

— subvivipara III, SO.

— tenuis III, 80.

— tetraquetra III, 80.

— Wolfii III, 80.
Elephantopus scaber L.

II, 837.

— — var. tomentosus
Schltz. III, 837.

Elettaria Cardamomumlll,

462.
Eleusine coracana Gaertn.

II, 255, 852. — III, 8«.

- indica Gaertn. II, 839.
— III, SO.

Hleutberomycella v. Holm-
N. G. 259, 289.

Eleutheromycella myco-
phila v. Höhn.* 259, 289.
Eleutheromyces 259.
Elfvingia 124.

— applanata Karst. 255.

— Elmeri 135.

— megaloma (Lev.) Murr.
141.

— tornata 135.
Eliomirus N. A. II, 295.

— argenteus P. 139, 321.
Elleantbus N. A. II, 310.
Ellipanthus Hook. fil. II,

394.
Elodea 670. — II, 660,
665, 669, 671. — III,
96.

— canadensis Rieh. 11,259,
665, 669, 680.

— Plancbonii Casp. II,
301.

Elodes Adans. III, 96.
Elsholtzia strobilifera

Benth. II, 555.
Elymus N. A. II, 295.

— arenarius L. III, 35.

— glaueus P. 143.

— hirsutiglumis Scribn. II,
295.

ElytropappnsRhinocerotis

II, 838.

Embelia Burm. III, 179,
180, 260. — N. A. II,
465.

— Ribes Burnm. 509.

- robusta Roxb. II, 851.
Emilia N. A. II, 381.

— flammea Cass. II, 381.

- sagittata DC II, 381.

— sonchifolia II, 222.
Empetraceae II, 409. —

III, 219.

Empetrum II, 42. — N. A.
II, 409.

- nigrum L. II, 147, 590.
Emplectocladus N. A. II,

494.
Empusa 164. — II, 849.

— Grylli Fres. 199.
Enantioblastae III, 16.

Encalypta ciliata— Epidendruni Myosurus.

827

Encalypta ciliata Hoffm.
70. '

— vulgaris Hedw. 46.
Encelia adenophora Green

III, 56.
Encephalartos II, 240. —
P. 304.

— Altensteini 453.

— Lemarinelianus De
Wild, et Dur. IU, 71.

— Woodü III, 46, 57.
Enchnoa yerbae Speg*

289.
Encholirion III, 78. — N. A.
II, 284, 285.

— rupestre Ule II, 102.

— spectabile II, 201.
Enchylium 15.
Encyonema II, 630.

— alpha Hemzerling* II,
630, 644.

— beta HeinzerUng* II,
630, 644.

— caespitosum Kütz. II,
643.

— gracile Babh. U, 635.

— lunula (Ehrbg.) Grün.
II, 630.

— paradoxum Kiitz- II,
630.

— prostratum ( Berit.) Ralfs
II, 630.

— ventricosum Heib. II,
630. 635.

Endiandra III. 230. — N.

A. II, 439.
Endoblastoderma salmoni-

color Fisch, et Breit.

154.
Endocalyx Berh et Br.

270.

— cinctus Peteh* 270, 289.

— melanoxanthus (B. et
Br.) Petch 270, 289.

— psilostoma B. et Br. 270.

— Thwaitesii B. et Br. 270.
Endocarpon 15.

— pallidum Ach- 22.

- — psoromia Oliv. 24.

— .^chaereri Oliv. 24.

Endocladia complanata

347.
Endococcus wandelensis

Hue* 26.
Endodesmia 455. — III,

213.
Endomyces 166, 171.

— albicans 176.

— decipiens II, 969.

— fibiüiger Lindner 171.
192. — II, 969.

— Magnusii II. 969.
Endothia Parryi (Farl.) Che

241.
En clotri chella 51.

— JBoutaniana Bar. et
Broth.* 52, 75.

— Fauriei Broth. var.
turgida Card, et Ther*
75.

— fragarioides Par* 52,
75.

— serricuspes Broth.* 75.
Endoxyla Mangiferae P.

Renn* 289.

— yerbae Speg.:: 289.
Engelhardtia 582.
Englerocharis Muschler N.

G. N. A. II, 403.
Engleruleae 129
Enhydrias III, 96.

— angustipetala III, 96.
Enkianthus N. A. II, 409.

— japonicus Hook- III,
200.

Enneapogon N. A. II, 295.
Entada N. A- II, 444.

— scandens Benth. 457. —
II, 224. — III, 231.

— sudanica II, 233.
Entandrophragma C- Du.

II, 461. 898.

— Candollei II, 898.
Enteromorpha 333, 354 —

II, 270.
Entodon 51.

— Henryi Pur. et Broth*
52, 75.

Entoloma lividum 222.

— suave PecW 289

Entouiophthora 641.

— radicans 164.
Entomophthoreae 164.
Entosthodon obtusus

(Dicks.) 55.
Entyloma 245.

— Aposeridis Jaap* 119.
2S9.

- crepidicola Trott: L'45,
289,

— Eryngii (Cda.) De Bg.
147.

— Henningsianum Syd.
108.

— Matricariae Bostr. 147.

— Schinzianum (Magn.)
Bubäk 143.

Eoterfezia 16s.

Epacris impressa II, 259.

Ephebe 15.

Ephedra II. 240. — III.

73.
Epheliopsis P. Herrn. N. (i.

289.

— Turnerae P. Henn* 289.
Ephemerum 39.
Epiblastus III. 121.
Epicattleya III, 114.
Epichloe typbina (Pers.)

Tut. 142/l45.
Episcia N. A. II, 430.
Epideudrum III, 119. —

N. A. II. 310.

— Aristotella Raenschel
11, 318.

— atrorubens II, 193.

— belizense II, 192.

— confusum III, 12o.

— costatum III, 112, 120.

— densiflorum II, 198.

— dichromum Lindl. II,
102.

— falcatum III, 109

— fragrans Sw. III. 11'.',
120.

— glumaceum Ldl III.
119.

— Lambeauanum III. 1 12.

— Myosurus Forst. II,
316.

828

Epidendrum paniculatutu — Ephheinia turgida.

Epidendrum paoiculatum
R. et P III, 11.1.

— Pentotis III, 120.

— radiatum Ldl. III, 119.

— trachychilum II, 194.

— vesicatum III, 118.
Epigaea repens II, 147. —

III, 201.
Epilobium 504, 520. — II,
143, 161, 165, 264, 576.
-111,4, 5,266. -- N. A.
II, 470, 471.

— affine fastigiatumiVWtf.
II. 471.

— alpinum II, 214. — P.
143.

— alsinefolium Vill. II.
596.

— alsinefolium X parvi-
florum II, 471.

— angustifolinm L. II, 554,
580, 596.

— collinum X anagallidi-
folium II. 471.

— collinum X roseum II,
471.

— Gilloti X Duriaei II,
471.

— glaberriinum Barbey II,
471.

— glaberrimum fastigia-
tum Trel. II, 471.

— glaberrimum latifolium
Barbey II, 471.

— hirsutum L. 517.

— hirsutum X Duclouxii
II, 470.

— lactiflorum Hausskn.
II, 590.

— montanum L. II, 590,
596.

— montanum XLamyi II,
471.

— montanum X obscurum
II, 470.

— obscurum X roseum III,
267.

— palustre L. II, 5S0, 590.

— persicinum Rchb. III,
266.

Epilobium roseum X alpi-
num IL 470.

— roseum X Gillotii II,
471.

— roseum X montanum

II, 471.

— roseum X parviflorum

III, 266.

— Sita Cruzense Dus. III,
266.

Epimedium L. III, 150.

— acuminatum Iranchet
III, 151.

— alpinum L. III, 151,
426.

— brevicorum Maxim. lll,
151.

— chrysanthum Maxim.
III, 150.

— Colchicum Boiss. III,
151.

— Davidi Francixet III,
151.

— diphyllum Lodd. III,
151.

— elatum M. D. III. 151.

— elongatum Koni. III,
150, 152.

— Fargesii Franchet III,
151.

— hexandrum M. D. III,
150.

— macranthum M. D- III,
150.

— parviflorum Maxim. III,
150.

— Perralderianum Coss.
III, 150.

— pinnatum Fisch. III,
151.

— pul.escens Maxim. III,
151.

— pubigen um M. D- lll,
151.

— sinense Sieb. III, 151.

— sutchuenense Franchet
III, 151.

Epipactis Adans. III, 117.
N. A. II, 310.
- africana Renale II, 317.

Epipactis atropurpurea
Rafin. II, 314.

— atrorubens Schuttes II,.
314. — III, 109.

— consimilis Don. II, 317.

— gigantea Douglas II,
317.

— latifolia All III, 109.

— microphylla Sw. II, 314.

— III, 109.

— palustris GHz. III, 109.

— rubiginosa Koch II, 314.

— sessilifolia Peterm. II,
317. - III, 109.

— somaliensis Rolfe III,
317.

— viridiflora III, 109.
Epipetrum Phil. II, 268.

- III, 84.

— bilobum II, 268. -- 111,
84.

— humile III, 84.

— polyanthes II, 26S. —
III, 84.

Epiphyllumll, 690. — 111.

390. — N. A. II, 348.
Epipogon II, 245.

— aphyllum III, 109.
Epipremnum Schott 1 1,

121, 122, 281. 282.
III, 76.

— loraminiferum Engl. II,
283.

— giganteum II, 122.

— medium Engl. II, 282.

— mirabile Schott II, 282.

— pinnatum II, 122.
Epipremnopsis Engl. X. Ol.

III, 75. — X. A. II,
281.

— media (Zoll, et Mor.)
Engl II, 121, 282. —
III, 75.

Epischoenus (j uadra n gu-

laris III, 80.
Epistephium X. A. II. 313.
Epithemia argus r.ar. al-

pestris Brun. II, 640.

— sorex II, 634.
turgida II, 634.

Equisetaceae — Erigeron canadensis X Conyza canadensis.

829

Eqiiisetaceae 574, 579. —

III. 14.
Equisetites 574.

— beani 628.

— broraensis Stopes* 628.

— columnaris 591. 628.

— ferganensis Seivard*
622.

— laevis 574.

— Lehmannianus 612.

— Lyelli 593.

— mirabilis 569.

— Mobergii Möller* 574.

— Münsteri 574, 612.

— Nathorstii Halle* 574.

— Peruanus Neumann
593.

— platyodon 574.

— praelongus 574.

— priscus Gein. 636.

— suecicus Nath. 574.
Equisetum 574. — ■ II, 143,

747, 754, 759, 762, 786,
787. — III, 591, 592. —
P. 104.

— arvense L. II, 761. —
III, 458.

var. riparia (Fr.) II,

767.

— arvense X heleocharis
II. 770.

— arvense X variegatum
II, 773.

— fluviatile L. var. linio-
sum (L.) II, 767.

— hiemale L- II, 759, 760,
974.

— hybridum Hüter* II,
773.

— Kidstoni 636.

— litorale Kühlew.ll, 770.

— majus Garsav.lt II, 806.

— maximum Lk. 654. —
II. 773, 802.

— — rar. flagelliforme
Haijek II, 773.

— noviodunense Fritel*
565.

— ramosissimum Des f. II,
776.

Equisetum silvaticum L.

II, 217.

— Telmateja II, 759.

— variegatum Schleich. II,
773.

Eragrostis P. 293. — N.
A. II, 295.

— abyssinica II, 837.

— amabilis II, 207.

— aspera Nees III, 86.

— Atherstonei Stapf III,
86.

— brizoides Nees III, 86.

— Brownei II, 839.

— caesia Stapf III, 86.

— chalcantha Trin. III»
86.

— Chapellieri Nees III,
86. - P. 280.

— chloromelas Steud. III,
86.

— ciliaris Link III, 86.

— costata F. Turner II,
257.

— curvula Nees II, 836.

— — var. valida Stapf

III, 86.

— eriopoda II, 832.

— gangetica Steud. III,
86.

— gummiflua Nees III, 86.

— heteromera Stapf III,
86.

— lacunaris II, 255, 839.

— laniflora II, 839.

— Lappula Nees III. 86.

— leptostachya II, 839.

— major Host 111, 86.

— namaquensis Nees var.
robusta Stapf III, 86.

— nebulosa Stapf III, 86.

— patentissima Hack. III.
87.

— pilosa II, 839.

— plana Nees III, 87.

— reptans Nees II, 837.
Miperba Pe^/r. III, 87.

Eranthis hiemalis III, 536.
Eremanthus Maitii II, 201.
Eremascus fertilis II. 969.

Eremocarpus setigerus

Benth. II, 420.
Eremocharis III, 341.
Eremorjotus myriocarpus

(Carr.) 48.
Eremophila longifolia II,

851.

— polyclada II, 851.

- subfloccosa II, 258.
Eremospatha II, 241.
Eremosphaera 332, 360.
Eremostachys laciniata

656. — III, 230
Eremurus II, 130. — III,

104.
Eria III, 121. 122. — X. A.

II, 313.

— hyacinthina Ldl. III,
109.

— Myosurus Bchb. fii II,
316.

Eriachne obtusa R. Br.

II, 838. — III, 93,

var. glabrata II, 838

Eriander H. Winkler N. G.

III, 59. — X. A. II, 511.
Erianthus maximus 11,207.
Erica 694, 779. 793. — X. A.

II, 409.

— arborea L. 793. — II,
149 — P. 139. 277.

— carnea L. — III. 28.

— cinerea L. II, 590, 593,
594.

— gracilis P. 216, 843.

— hiemalis 6S7.

— nervata Guthrie et Bolus

III, 200.

— Tetralix L- 627. — II,
593. 594.

Ericaceae 503, 515. — IT,
142, 200, 212, 409, 591.
- III, 59, 200, 219.

Erigeron II, 100. - X. A.
II, 381.

— acutatus Greene II. 145.

— alpinus L. II, 626.

— annuus Pens. II, 140.

— canadensis X Conyza
ambigna II, 380.

830

Erigeron frigidus — Erythrina crista-galli.

Erigeron frigidus Gant.

II, 381.

— multicaulis Wall. II,
557.

— obtusatus Greenell, 145.

— uniflorus II, 381.
Ericinella Mannii Hook. II,

898.
Erinacea III, 239.
Erinella miniopsis (Ell.)

Sacc. 142.
Erineum II, 622.
Eriobotrja N. A. II, 494.

— japonica Ldl. II, 821.

- III, 539. — P. 315.
Eriocaulaceae II, 221, 228,

213, 291. - III. 84.
Eriocaulon 588. — II, 158,

221, 228. — III, 84. —

N. A. II, 291.
Eriocephalus petrophiloi-

des DC II, 387.

— spinescens II, 838.
Eriochilus autumnalis II,

— 259.

Eriochloa punctata II, 839.
Eriocoelum X. A. II, 517.
Eriodendron II, 911.

— anfractuosurn DC- II,
900,905, 911. — 111,155.

Eriodictyon californicurn
486. - - III, 216, 663.

— glutinosum III, 580.
Eriodon Moni. 59.
Eriogonum II, 170, 186. —

III, 279.

— heracleoides P. 14:i.
Eriogynia 478.

— Hendersonii Canby II,
497.

Eriophorum III. 81. —
N. A. II, 290.

— alpinum L. II, 175. —
III, 80.

— coraosum III, 80.

— microstachyum III, 80.
Eriosema X. A. II, 444.
Eriophyes II, 608, 609, 615.

- altus Nah" II, 616, 624,
(i2H, 620.

Eriophyes Beutenmülleri
Cook* II, 608.

— cingulatus Nah* 11,616.

— coecus Nah* II, 616.
— ■ Doctersi v. Leeuiven* II,

610.

— Drabae II, 619.

— Giraldii Trott. II, 626.

— Gossypii II, 910.

— Hibisci Nal II, 616.

— hibiscitilens Nal* II,
616.

— Kerneri II, 625.

— pauropus Nah* II, 616,
S03.

— phloeocoptes Nal. II,
625.

— Pyri II, 614, 618.

— Ribis Nalepa II, 608.

— rudis II, 608.

— samoensis Nah* II, 616.

— sinensis Trott. II, 626.
Eriopus japonicus Card.

et Ther* 75.

— subremotifolius Broth*
75.

Eriospora pilosa III, 81.

— Rehmanniana III, 81.
Erithalis III, 59. — N. A.

II, 505.
Erlangea III, 179. — N. A.

II, 381.
Ernodea Swartz III, 305.

- X. A. II. 505.

— angusta III, 305.

— Cokeri III, 305.

— littoralis III, 305.

— Millspaughii III, 305.

— Nashii III. 305.

— Taylori III, 305.
Erodium 467, 769. — N. A.

II, 429.

— Cicutarium L. II, 40.

— III, 35.
Erpodium Pobeguini Par.

et Broth. 56.
Eruca Adam. III, 193.

— sativa MM. II, 138.
Ervtcastrum Schimp. HI.

191, 193.

Ervum III, 432.
Eryngium 504, 517, 71S„

— II. 153. — III, 341.

— X. A. II, 537, 538.

— alpinumXBourgati III,
337.

— Buchtienii Wolff* II.
265. - III, 342.

— campestre C- 517.

— foetidum II, 265.

— Zabeli Hort III, 337.
Erysimum 504. — III,

191,192. — X.A. 11,403.

— cheiranthoides L. II,.
175. — P. 253.

— repandum L. II, 141,
846.

Erysiphe cichoracearum
DC 121, 141, 142, 149,
240.

— graminis DC. 117, 843.

— Quercus Merat 263,
264, 842.

— taurica Lev- 149.
Erysiphaceae 106, 121,

134, 140, 839.
Erythraea Neck. II, •">.""> ±.

— III, 211. — N. A. II,
427.

— arizonica Bydb. II, 426.

— calycosa Buckl. II, 426.

— Centaurium L. II, 426,
554. — III, 489, 540.

— curvistaminea Witt rock
II, 426.

— Douglasii Ä. Gray II,
426.

— exaltata Coville II. 12(i.
- insignis Tod. III, 210.

— linariaefolia III, 35.

— Muehlenbergii Griseb-
II. 426.

— Nuttallia Wats. II, 426.

— spicata Pers. II, 426.

— texensis Griseb. II, 426.
Erytbrina 562. — II, 843.

— III, 58, 547. P.
210, 320. — X. A. 11,
444.

— crista-galli L. 562.

Erythrina indica — Eucalyptus Stuartiana.

83t

Erythrina indica Lam.
457. — II, 166, 224, 892.

— ramosissima P. 318.
Erythrobalanus Engelm.

617.
Erythrochiton N. A.II, 512.
Erythrodontium 51.

— julaceum (Hook.) Pur.
52.

— subjulaceum (C- Müll.)
Par. 56.

Erythromonas 366.

— haltericola Lohm* 334.
383.

Erythronium III, 106. —
X. A. II, 305.

— americanum Ker. 338.

— III, 106.

— giganteum III, 106.

— grandiflorumvö»\multi-
florum Ton: TI, 305.

— Hartwegi III, 106.

— Hendersoni III, 106.

— purpurascens Wats. II,
305.

Erythronoxjdon 562.

— latiporosum Falqui*
562.

Erythrophloeum 450.

— chlorostachys 450, 451 .

— Couniinga 450, 451.

— Fordii 450.

— guineense Don. 450,
451. — II, 898.

Erythrospermum Wich-

mannii Val. III, 209.
Erythroxylaceae II, 411.

— LQ, 204, 218.
Erythroxylon III, 218. —

X. A. II, 411.

— affine A. Rieh. II,
411.

— alaternifolium A. Rieh.
IL 411.

— — vor. pedicellare Gris.

II, 411.

— Coca Lam- II, 891. —

III, 465.

— pictum E. Mey. III,
204.

Erythroxylon squamatuui
var. orinocense O. Ktze.
II, 411.

— suberosurn P. 307.
Escalloniaceae III, 222.
Eschatogramme Trevis. II,

806.
Eschscholtzia III, 269.
Eschweilera II, 440.

— calyculata Pittier III,
231.

— Collinsii Pitt. III, 231.
Esenbeckia pentaphylia

Griseb. II, 900.
Escobita dulce Port. II,

457.
Etapteris Bertr. X. G. 550.
Euastridium West X. G.

346.

— Prainii West* 383.
Euastrum ChamenseTFesi*

383.

— Gutwinskii Bernard*
383.

— subansatum Bernard*
383.

— tropienm Bernard* 383.
Eucalyptus 560, 561. —

II, 188, 215, 256, 826,
902. — III, 261, 558,
681.

— alpina II, 259.

— amygdalina II, 901.

— Behriana F. v. M, III,
260, 261.

— bicolor A. Cunn. III,
261.

— Boormani D. et M. III,
260, 261.

— Bowmani F. ü. M. III,
260.

— Caleyi Maid. II, 257.
— III, 260.

— capitellata P. 313.

— carnea R. T. Baker II,
257.

— coeeifera III, 261.

— ConsidenianaMairf.IIl,
260, 261.

— Crebra III, 260.

Eucalyptus diversicolor
F. v. M. II, 902.

— drepanophylla F. v. M.
III, 261.

— Dunnii II, 257.

— fibrosa F. v. M. III,.
261.

— Globulus Lab. III, 261.

— Gunnii Hook- III, 485.

— haemastoma Sm. III,
260, 261.

— haldemiana Deb. 594.

— largiflorens F- v. Müll.
III, 261.

— Leichhardtii II, 255.

— leptophleba F. v. M.
III, 260, 261.

— manna III, 539.

— melliodora A. Cunn. II,
623.

— micrantha A. Cunn. HL
261.

— micrantha DC III, 261.

— Moorei II, 257.

— Naudiniana F. v. Müll.
II, 102, 206. — III, 9.

— occidentalis II, 896.

— ornata Sieb. III, 261.

— pilularis Sm. II, 623.

— piperita Sm. III, 260,
261.

— polyanthemos ScJiauer
IL 902. — III, 261.

— populifolia Hook. III,
260, 261.

— po])ulnea, F.v.Müll. IIL
261.

— pruinosa Belir III,
261.

— pulverulenta III, 485.

— rostrata II, 901, 902.

— rubida II, 258.

— rudis II, 902.

— sign ata F. v. M. III,
261.

— siderophloia Benth. III,
260, 261.

— Sieberiana F. v. M- IIL
260, 261.

— Stuartiana II, 259.

$32

Eucalyptus tereticornis — Euphorbia verrucosa.

Eucalyptus tereticornis
8m. II, 623, 902.

— Thozetiana (F. v. Müll)
R. T. Baker II, 257

Eucampia II, 635, 637.
Eucamptodon inflatus

(Hook. f. et Wils.) Mut.

75.
Eucephalozia Spruce 63,

66.
Euchlaena mexicanall,41.
Euchresta Horsfieldii III,

463.
Euclea lanceolata II, 838.

— Warneckei II, 235.
Euclidium syriacum II,

175.
Eucommia III, 225.
Eucryphia III, 222.

— cordifolia Cav. III, 204.
Eucryphiaceae III, 204.
Eudarluca Speg. N. G. 129,

289.

— australis Speg* 289.
Eudema N. A. II, 403.
Eugenia 276, 288, 298,

300, 302, 304, 307, 315.
- III. 59. — P. 275. —
N. A. II, 405, 466.

— anconitana Pari. 608.

— aquar II, 863.

— brevifolia ,4. Gray 457.

— caryophyllata II, 889.

— cordata P. 139, 305.

— corynocarpa A. Gray
457.

— dalbergioides Beruh. II,
852,

— fragrans Willd. II, 900.

— Glazioviana III, 57.

— Jambolaua Lamk. II,
852.

— Jambos II, 863.

— maire II, 262.

— Michelii Lam. 457.

— Millettiana II, 166.

— natalitia Sond. III, 260.

— sinensis II, 166.

— uniflora P. 279.

— Wightianair/9/t/II,616.

Euglena 327, 720.

— angusta Bernard'' 383.

— geniculata 342.

— sanguinea Ehrenb- 367.

— terricola Lemm. 342.

— viridis 332, 326.

— — var. lacustris 332.

— — rar. stagnalis 332.
Euglenaceae 348.
EulejeuneaNietnerLS'£ep/i.*

84.

— subigiensis Steph.* 84.
Eulophia II, 245. — III,

121. - N. A. II, 313.

— Petersii II, 251.
Eulophiella Peetersiana

III, 118.
Eumorphia N. A. II, 381.
Eunotia arcus Ehrbg. II,

629.

— gracilis Rabh- II, 629,
634.

— gracilis var. nodosa II,
641.

Euosmolejeunea clausa
(Nees et Moni.) Evans
63.

Eupatorium 11, 575, 612.

— III, 59. - N. A. II,
381, 382.

— ageratoides IL 605.

— perfoliatum L 444. —
III, 177.

— purpureum II, 575.

— Eaffillii Remsl. III, 173.

— Rebaudianum Bert. III,
179, 612, 660.

- triplinerve Vahlll, 891.

— III, 627.
Euphorbia II, 250, 838,

852. III, 4, 5, 58,

207, 208. — X. A. II,
415, 416, 417.

— angulata Jacq. ii, 415.

— candelabrum II, 234,
953. — III, 207.

— chamaesyce II, 138. —
III, 208. *

— Cyparissias L. 693.

— dentata Mich. III, 56.

Euphorbia drupifera
Thonn. II, 249.

— elastica Altam. et Rose
II, 953.

— enneagona Berger II,
417.

— Esula L. 696.

— fallax Deyss. II, 415.

— fulva Stapf II, 953.

— helioscopia L. III, 35.

— illyrica Lam. II, 415.

— Intisy II, 820.

— Lathyris L. II, 173,
626.

— ligulata Chaub- II, 416.

— ma miliaris III, 29.

— microphylla Schwfth. II,
415.

— montana Engelm. II,
421.

— natalensis Bernh. II,
417.

— nivulia II, 225.

— palustris III, 536.

— peploides Gou. II, 415.

— peplus III, 673.

— pilosa L. II, 415.

— plumerioides II, 209.

— polygona II, 105.

— Preslii II, 173.

— punicea Gris. II, 416.

— purpurascens Deyss- II,
415.

— purpurata Tlmill. II,
415.

— regis Juben III, 36.

— rotuadifolia Lois. II,
415.

— Royleana Boiss- II,
557.

— Sapini De Wild. III,
204.

— segetalis L. II, 415.

— serpjdlifolia P. 143.

— StuhlmanniiiScÄH'/tt.II
417.

— tetragona Bak. II, 417.

— Tirucalli L. III, 204.

— verrucosa Lam. II,
415.

Euphorbiaceae — Exoohorda.

833

Euphorbiaceae 614. — II,
162, 196, 200, 201, 223,
224, 411, 820. — III, 23,
58, 204, 218.

Euphoria N. A. II, 517.

Euphrasia II, 42, 100. —
H. A. II, 521.
borealis (Towns.)Wettst.

II, 590.

— scotica Wettst. II, 590.
Eupolypodium II, 767.
Eupomatia 494. — III,

■22(1
Euptelea III, 225.
Eurhynchium 560.

— circinnatum Schmp. 40.

— fuegianum Card* 75.

— germanicum Grebe 41.

— praelongum Br. eur. 55.

— — var. laxirete Ren. et
Card. 55.

— - pumilum (Wils.) Schpr
55.

— Schleichen 39.

— Stokesii (Thurn.) 39.

— — var. abbreviatum
Rth. 39.

Eurotia ceratoides C. A.M.

III, 171.

Eurotium candidum 823.
Eurya N. A. II, 532, 533.

— japonica Thbg. 458 —
II, 166, 223, 613. — III,
334, 335.

— ochracea Szysz III, 334.
Euryachora Fuck. 115.
Euryale europaea Reid*

609.

— europaea Sukatscheff*
629, 633.

— europaea C. A. Weber
553.

— ferox Salisb. 553, 629,
633. — III, 262.

— limburgensis Reid*Ü09.
Eurycoma N. A. II, 527.
Euryops II, 387. — N. A.

II, 382.
Eusenecio III, 179. 180.
Euterpe Jenmanii II, 198.

Euterpe oleracea P. 289.

— ventricosa II, 198.
Euthallophyfca III, 14.
Euthamia floribunda

Greene II, 391.

— gymnospermoides
Greene II, 391.

— Nuttallii Greene II, 391.
Eutreptia 366.
Eutuberaceae 123.
Eutuberineae 169. 235.
Eutypa bacteriospora

Rehm* 146, 289.

— EuterpesP. Renn.* 289.

— Gaduae P Renn* 289.

— linearis Rehm 147.

— sparsa Rom. 148.
Eutypella paraensis P.

Renn* 289.

— stellulata (Fr.) Sacc.
141.

Euxena Cal. III, 192.
Euzoniella flaccida 347.
Evandra aristata III, 81.

— pauciflora III, 81.
Everardia montana III, 81.
Evernia 15.

— furfuracea 6.

— prunastri L. 3, 4.

— thamnodes (Flot.) 18.

— vulpina III, 688.
Evodia III, 307. — N. A.

II, 512.

— — sect. Evodioceras
Dode* III, 307.

— — sect. Tetradium III,
907

— elegans Rort. III, 426.

— hortensis Forst. 458. —
II, 209, 616.

— meliaefolia Bnth. III,

307.

— triphylla II, 166.

Evolvulus II, 197. — III,
186. — N. A. II, 395.

— alsinoides Wall- II,
557.

Evonymus 561, 631. —
II, 160. - III, 170, 357.
— N. A. II. 357, 358.

Evonymus europaea L-
III, 28, 170, 567.

— japonica Bl. III, 168.

— japonica Thbg. 799. —
III, 170, 357.

— nana 719.

— sempervirens II, 154.

— verrucosa Scoj). II, 99.
Excipulaceae 136.
Excoecaria II, 418.

— Agallocha L. III, 451.

— eglandulosa Müll-Arg.
II, 418.

— japonica Müll-Arg. III,
204.

— Sagraei Müll-Arg. II,
418.

— scleroi'des III, 81.
Excoecarpus cupressi-

formis III, 240.
Exidia 107.

— olivacea Pat* 159, 290.
Exoascus 166, 837.

— Bussei 817.

— deformans Fuck. 103,
126, 207.

— epiphyllus 243.

— flavus 243.

— minor Sadeb. 241, 837.

— Theobromae Ritz. Bos.
130.

— Tosquinetii (Westend.)
Sadeb. 144, 145.

Exobasidiaceae 113, 119.
Exobasidium 134, 155.

— Brevieri Bond. 268, 294.

— II, 803.

— discoideum Ell. 837.

— Fawcettii Massee* 290.

— Symploci - japonicae
Kits, et Tokola* 134. 290.

— vexans Massee 218, 257.

— II, 848.
Exochaenium III, 211. —

N. A. II, 427.

— grande Bchinz II, 427.

— Mechowianum Schinz
II, 428.

Exochorda III, 49, 478,
481.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 29. 1. 12.]

53

834

Exodycton Rechingeri — Festuoa excarata.

Exodyctyon Rechingeri

Broth* 75.
Exodothidium Card. N. G.

51. 75.

— subsymmetricum Card.*
75.

Exogene P. Henn. N. G.
112, 289.

— Kaiseriana P. Henn.*
112, 289.

Exogonium II, 170. -■ III,
186. N. A. II, 395,

396.

— arenarium Choisy III,
185.

— cubense House III, 185.

— Eggersii House III, 185.

— luteum House III, 185.

— Rudolphii (ß. et Seh.)
House III, 185.

— racemosura (Poir.)Choisy
III, 185.

— velutifolium House III,
185.

— Wrightii ff<wseIII,185.
Exosporium laricinum

Mass. 108.

— Murrayae P. Henn*
290.

— Tiliae LmJfc 145.
Exostemma floribundum

II, 822.
Exuviaella baltica Loh m *

333, 383.
Eylesia Moore N. G. N. A.

II, 521.

— buchneroides III, 320.

Faba vulgaris L. III, 432.
Fabiana N. A. II, 528.

— glandulosa Dus. III, 330.

— imbricata III, 330.
Fabronia Pobcguini Par.

et Broth. 56, 75.
Fadyenia Hookeri (Sweet)
Maxon II, 789.

— prolifera Hook. II, 789.
Fagaceae 614. — II, 421.

- III, 15, 217, 225.
Fagara N. A. II, 512.

Fagara flava Kr. et Urb.
II, 900.

— senegalensis II, 232.
Fagonia 670. — II, 141,

997. — III, 35. — N. A.
II, 550.

— cretica 671. — II, 588.

— glabra Krause II, 251.
Fagopyrum II, 163. — III,

280. — N. A. II, 479.

— esculentum Mnch. 711.
— II, 163.

Fagraea III, 245.

— Berteriana A. Gray 457.
Fagus 541. — II, 127, 153,

613. — III, 44, 45, 208,
226. — P. 180, 280, 285.

— americana Sweet 547.

— asiatica H. Winkler II,
153, 154.

— Dicksoni Dus. 559.

— ferruginea II, 147.

— Hohenackeriana Pali-
bin* II, 153. — III, 208.

— lanceolata Principi*
608.

— obscura Dus* 559.

— orientalis Lipsky II, 154,
421.

— pliocenica Geyl. et Kink.
561.

— prisca Ettingsh. 594.

— pristina Sap. 608.

— silvatica L. 495, 517,
541, 545. 561, 576, 629,
636, 653, 720. - - II, 62,
625. — III, 28, 44, 45,
49, 381. — P. 180, 263,
264, 298, 304.

var. macrophylla A.

DC II, 421.
Fairmania singularis Saec.

103.
Falcaria N. A. II, 421.
Fallugia 478, 479, 480,

481.
Faramea N. A. II, 505.
Faroa N. A. II, 427.
Farsetia incana III, 191.
Fascicularia N. A. II, 285.

Fatsia II, 214.

— japonica III, 268.

— multicarpa II, 214.

— papyrifera Benth. et
Hook. III, 144.

Faurea II, 898. — X. A.
II, 482.

- saligna Oliv. II. 898.
FavolaschiaOagniU/aWM-.*

139, 290.
Favolus 124.

— Leontodium 174.

— resinosus Murrill* 290.

— subrigidus Murrill*
290.

— tenuis 135.

— Wrightii 135.
Fegatella 32. — II, 973.
Felicia 599. — N. A. II,

382.

— latiradiata 599.
Feronia Elephantum Corr.

II, 852.

Ferula communis L. III,
542.

— — var. brevifolia Stapf

III, 542.

— var. brevifolia Mariz

III, 646, 647.

— cyrenaica Asciiers. et
Taub. III, 647.

Festuca II, 837, 839. —
N. A. II, 295.

— amethystina III, 95.

— arundinacea P. 177.

— Borderii Rieht III, 94,.
95.

— Borreri Bab. II, 299.

— capillaris Liljeblad II,
293.

— convoluta Kunth II,.
296. — III, 88.

— costata Nees II, 836.
- III, 87.

— divesa II, 839.

— elatior II, 839. - P.
247.

— elatior X Collum multi-
florum II, 296.

— excarata III, 95.

Festuca Fauriei— Fiinbristylis acuminata.

835

Festuca Fauriei Hack* III,
90.

— gigantea P. 247, 241).

— ovina L. 440. — II,
214. — III, 94.

— pseudodistans Asch, et
Grbn. II, 296. — III, 88.

— rubra L. II, 163.

— — var. simpliciuscula
Hack. III, 87.

— scaberrima III, 95.

— scabra Vahl III, 87.
Fibraurea III, 252.
Ficaria II, 711.

Ficinia Compasbergensis
III, 80.

— Ecklonea III, 80.

— ixioi'des III, 80.

— lateralis III, 80.

— longifolia III, 80.

— pinguior III, 80.

— radiata III, 80.

— ramosissima III, 80.

— sylvatica III, 80.

— tribracteata III, 80.

— Zeyheri III, 80.
Ficoxylon helictoxyloi'des

599.
Ficus 557, 560, 655. — II,
206, 826, 828, 898, 939,
950. — IQ, 4,5,9,59,253,
255, 256, 452, 623. — P.
132,307. - N. A.II, 463.

— — sect. Pseudopalma
Eimer* II, 464.

— acuminatissima Zippel

II, 463.

— aurea Xutf. II, 181. —

III, 253, 452.

— bengalensis L. 457. —
II, 852, 901. - 111,256.

— Benjamina II, 901.

— Bennettii II, 901.

— brasiliensis II, 901.

— capensis Thnnbg. 11,901.

— III, 37.

— «Jarica L. 545, 655. —
II, 577, 607, 614, 871.

— III. 253, 254, 459. —
P. 292.

Ficus Chanvieri II, 901.

— chrysolaena K. Schnm.

II, 102. — III, 9.

— columnaris II, 901.

— cordifolia Bl. II. 901.

— III, 253.

— coronata Reinw. III,
36.

— ■ Cunia Harn. II, 852.

— Cunninghamii II, 901.

— cydoniaefolia II, 901.

— Dahro II, 250.

— Dryepondtiana Hort.

III, 57.

— elastica 648. — II, 82,
166, S29, 901, 935, 937,
938, 950. — III, 41. —
P. 134, 365, 824.

— erecta Thbg. III, 253.

— fistulosa II, 220.

— fulva II, 220.

— gibbosa II, 901.

— glabella II, 901.

— glomerata Roxi. 11,
851, 852, 901.

— habropbylla II, 901.

— Harlandi II, 901.

— heteromorpha II, 162.

— hirta II. 220.

— infectoria Willd.U, 852.

— lanceolata II, 901.

— laurifolia II, 901.

— longecuspidata Warb.
457.

— macrophylla II, 901.

— minabassae P. 307.

— Moorei II, 901.

— natalensis II, 901.

— nymphaeifolia II, 901.

— obscura var. acumina-
tissima Käs. II, 463.

— panduriformis II, 901.

— Parcelli II, 901.

— parietalis II, 901.

— populnea Willd. II, 181.

— III, 253, 453.

— pseudopalma Blanco
II, 404.

— pseudosycomorus II,
231.

Ficus quercifolia II, 901.

— Rehmanni var. ovali-
folia Warb. II, 464.

— — var. villosa Warb.
II, 464.

— religiosa L. II, 852,
901.

— retusa II, 166.

— rhododendrifoliall,901.

— rocco Seh wein f. etWarb.

II, 232. 248. — III, 253,
256.

— Roxburghii II, 901.

— rubra II, 935.

— ruficaulis paloensis
Eimer II, 463.

— sagittifolia II, 235.

— Schlechten II, 901, 950.

— Sycomorus L. II, 250,
609.

— Tanensis II, 901.

— tiliaefolia 614.

— tinetoria iorst. 457.

— trachyphylla II, 232,
233.

— triangularis Warb. II,
248. - - III, 253, 256.

— Vogelii Miq. II, 248,
901, 937, 949, 950, 951.

III, 253, 255, 256,
(145, 646.

— Wightiana var. japoni-
ca Miq. III, 253.

Fiebrigiella Harms N. G.

III, 234. — N. A. II,
444.

Filicinae III, 14.
Filipendula 479. — III,

296. — N. A. II, 494.
Filoboletus mycenoides

P. Henn. 258.
FimbriariaLindenbergiana

Cda. 70.

— pilosa (Whlbg.) Tayl.
44.

— Silachorensis Schffn.*
53, 84.

Fimbristylis III, 81. — N.
A. II, 290.

— acuminata III, 80.

53 *

836

Fimbristylis Actinosohoenus — Fockea.

Fimbristylis Actinoschoe-
nus var- Thouarsii III,
80.

— aestivalis III, 80.

— anomala III, 80.

- cardiocarpa III, 80.

— clavinux III, 80.

— Cubensis III, 80.

— cymosa III, 80.

— cyperoides III. SO.

— diphylla III, SO.

— dipsacea III, 80.

— exilis III, 80.

— ferruginea III, 80.

— Fordii III, 80.

— Hookeriana III, 80.

— Kingii III, 80.

— mexicana III, 83.
podocarpa III, 80.

— polystachya III, 80.

— polytrichoides III, 80.

— pterygosperma III, 80.

— quinquangidaris III, 80.

— rigidula III, 80.

— squarrosa III, 80.

— tenera II, 255.

— tetragona III, 80.

— Vahlii III, 80.
Fingerhuthia sesleriaefor-

mis Nees III, 87.
Fischera linearis Sm- II,

539, 540.
Fissidens 35, 51.

— algarvicus Solms- Lau-
bach 58.

— Arbogasti Ben. et Card.
54.

— attenuatus Bryhn* 54,
75.

— canariensis Bryhn* ~>4,
75.

— Casamancae Card* 75.

— circinatulus Par.' 55,
75.

— circinicaulis Card* 75.

— decipiens De Not. 46.
dendeliensis Par. et

Broth. 55.

— durus Par. et Broth.*
56, 7.'».

Fissidens Esquirolii The'r-
75.

— Fouta-Djalloni Par:'
55, 75.

— foveolatus Card* 7ä.

— fuscolutescens Card*
75.

— Laurentiorum Card*
75.

— Mariei (Besch.j Broth.
54.

— Marthae Card.* 75.

— Mathieui Card * 76.

— micro-japonicus Par*
53, 76.

— minutalus Süll. 47.

— rnobukensis Negri 76.

— ovatus Brid- 54.

— platybryoides C. Müll.
56.

— pseudolateralis Card*
76.

— pusillus 58.

— rivularis (Spr.) Br. eur.
54.

— rufolimbatus Card* 76.

— serrulatus Brid. var.
Henri quesii Luisier* 40.

— subacutissimus The'r*
76.

— tamarindifolius 39.

— tenuisetus Card* 76.

— Vanderystü Card. 76.
Fistulina 124.

— hepatica 260.
Fittonia Veschaffeltii 721.
Flabellaria luteofusca Cm-

358.

— longirhachis Ung. 630.
Flacourtia III, 153. 209.

— N. A. II, 423.

— ßalansae Gagnep. III,
210.

— Cataphracta Roxb- III,
210.

— inermis Roxb. III, 209.
- mollis Hook, et Th. HI,

209.

— rnontana Grah. HI.
210.

Flacourtia Ramontchi
L'Her. III, 209.

— Rukam Zoll et M. 457.
— III, 210.

— sapida Roxb- III, 210.

— sumatrana Planch. HI.
210.

— Thorelii Gagnep. III,
210.

Flacourtiaceae II, 245, 250,
422. — III, 59, 209, 220,
222.

Flagellaria indica II, 166,
242.

— — var. guineensis II,
242.

Flagellariaceae II, 242,

250, 292.
Flagellatae 327, 328, 329,

330, 336, 338, 340, 346.

347, 364, 366, 380.
Flammula filipendula P.

Renn- et E. Nym. 258.

— Janseana P. Henn. et
E- Nym. 258.

— pulchrifolia Peck* 125,
290.

Flaviporus 124.
Fleischeria paulensis r.

Höhn* 128, 290.
Flemingia P. 320. - N. A.

II, 445.
Fleurya aestuans Gaudich.

II, 984. — III, 342.
Flicheia Pelourde N. G. 598.
Flindersieae III, 223.
Flindersia maculosall, 851 .
Floccomutinus Nymania-

nus 262.
Floribundaria floribunda

(D- et M) Fleisch* 76.

— patentissima (C. Müll.)
Fleisch. 54.

— Robillardi (C Müll)54:.
Florideae 331. 336, 340.

372.
Flueggea N. A. II, 417.

— obovata (L.) Baill. II,
624.

Fockea II, 335.

Foeniculuin ofricinale — Frullania Besoherellei.

837

FoenicLilum officinale III,

632.
Folotsia II, 226.
- — sarcostemnioides III,

472.
Fomes 107, 12-4.

— amboinensis Fr. 147.

— applanatus GM. 255.

— comorensis P Hetm*
138, 290.

— fomentarius 262.

— fraxinophilus 262.

— hornodermus Mont. 147.

— igniarius 110, 261.

— leucophaeus Che- 255.

— megaloma Cke. 255.

— nigricans Fr. 261, 262.

— pinicola Fr. 261.

— pseudo - conchatus P
Henn.* 138, 290.

— semitostus Berk. 135,
823. — II, 944.

— subferreus Murr* 290.

— subresinosus MurrilV*
290.

— subungnlatus Murrill*
290.

— volvatus 262.

— Warburgianus P. Renn.
134, 322.

Fomitella 124.
Fontinalis 68.

— Bryhnii Hag." 76.
Forestiera ligustrina Poir.

III, 426.
Forl'icaria II, 244.
Forstera II, 120. — N. A.

II, 530.
Forsteronia II, 938. — N.

A. II, 332.

— floribunda II, 953.
Forsythia III, 265. N.

A. H, 469.

— europaea III, 265.

— Giraldiana Lingelsheim*
in, 265.

— suspensa 691.

— viridissima 656.
Fossombronia 64.

— angulosa Rdi. 40.

Fossombronia Husnoti
Corb. 47.

— Loitlesbergeri Schffn.*
47, 84.

— pnsilla 39.
Fouquieria splendens 674.
Fouquieriaceae III, 224.
Fourcraea II, 192, 918.

— gigantea Vent. II, 918.

— longaewa Karw. II,
918.

— rigida II, 193.

— Selloa Koch II, 918.

— undulata Jac II, 918.
Fourcroya II, 915, 920. —

III, 75.

— gigantea II, 905. — P.
277.

— rigida III, 75.
Foveolaria III, 221.
Fragaria 645. — III, 296,

299. — P. 323. — N. A.
II, 495.

— indica Anders. II, 217,
556.

— monopbylla 645.

— vesca L. II, 79, 556,
590, 598. - - P. 268, 313.

— virginiana II, 147.
Fragilaria II, 636, 638.

— capucina Desm. II, 629,
640.

— construens (Ehrenb.)
Grün. II, 640, 642,
644.

— — var. ventor Grün.
II, 640.

— croton en sis(Edic) Kitton
II, 630, 633, 6:!4. 635,
636, 640.

— exigna (W.Sm.)Lemm*
II, 636, 644.

— — var. concava Lemm*
II, 636, 644.

— Harrisonii Grün. var.
fossilis Fant* II, 644.

— mutabilis (W.Sm.)Grun.
II, 640.

— — var. lanceolata
Oestrup* LI, 638, 644.

Fragilaria parasitica (W.
Sm.) Grün. II 640.

— Rockefelleri Pant* II,
644.

— tertiana Pant.1' II, 644.

— virescens Ralfs II. 629,
635.

Frangula P. 281.
Frankeniaceae III, 224.
Fraxinus 541, 692, 759,

799. - III, 356. — P.

161, 243, 285, 314.

— americana L. III, 266.

— Bungeana var. pubiner-
vis Wg. III, 264.

— excelsior L. 692. — II,
62, 150, 154, 587, 626.

— III, 28, 19, 266.

— Ornus L. 541. II,
626.

— pubescens Lam. 799.

— III, 265, 266, 356.

— Sieboldiana Bl. III,
264.

Frenelites europaeus

Ludw. 560.
Freycinetia II, 212. — III,

131. — P. 279. — N. A.

II. 320.

— Banksii II, 262.

— formosana II, 166, 167.

— Reineckei Warb. II, 161,
206.

— samoensis Warb. II, 101.
Fritülaria 355. — P. 238. —

N. A. II, 305.

— Hermonis II, 128.

— imperialis L. II. 554.

— P. 238.

— Michailovskyi IL 152.
Fritzschia III, 252. — X. A.

II, 458.
Froelichia P. 235.

— campestris P. 277.

— gracilis P. 277.
Frullania 555.

— anamensis Steph. 52.

— angustistipa Steph* 84.

— baladica Gottsehe 57.

— Bescherellei Steph. 57.

838

Frullania caroliniana — Gahnia Gaudiohaudii.

Frullania caroliniana Süll-

63.

— Oavallii Gola* 84.

— Cesatiana De Not. 69.

— germana Tayl. 54.
- Jackii Gottsche 44.

— ligularis Steph. 57.

— Ludoviciae Steph* 84.

— Martiana Gottsche 63.

— microphylla (Gott.)
Pears. 54.

— obcordata Lehm, et
Lindb. 63.

— Pancheri Steph. 57.

— Parisii Steph* 56, 85.

— Bedungen Steph* 85.

— Selwyniana Pears. 49.

— silvestris Steph* 85.

— symmetrica Steph* 85.

— tamsuina Steph. 53.
Fucaceae 368.
Fuchsia hybrida II, 720.

— speciosa 678.
Fucus 366. — II, 270.

— Areschougü 368.

— bertheletensis Penhall.*
599.

— Iutarius 368, 369.

— platycarpus Thur. 368.

— Sherardi 368.

— spiralis L. 368.

— vesiculosus 368, 607.

— virsoides 368.

— volubilis 368.
Fuirena 513. — III, 31

— ciliata Bush II, 182.

— cylindrica Bush II, 183.

— incompleta III, 80.

— pubescens III, 80.

— scirpoi'des III, 80.

— Wallichiana III, 80.
Fuligo ovata (Schaeff.)

Macbr. 125.

— varians III, 638.
Fumago Pers- 269.

— Lauri Boy. et Jacz-
149.

— oosperma Speg* 290.

— vagans Pers. 145.
Fumana N. A. II, 359.

Fumaria III, 53. — N. A.

II, 473.

— agraria Duf. II, 473.

— media Ball. II, 473.

— ofticinalis L- II, 152.
Fumariaceae II, 221. —

III, 54, 547.
Funalia 124.
Funaria 35, 38, 51.

— Bonatii The'r.* 76.

— calvescens Schwaegr.
54.

— dentata Crome 55.

— hygrometrica Sibth. 38,
52. - II, 653.

— luzonensis Broth* 76.

— Maireana Coppey*31,lQ.
Fungi imperfecta 126, 166,

263.
Funkiall, 987.- III, 108.

— ovata II, 175, 987.

— Sieboldiana II, 987.
Funtumia II, 938, 939, 949,

950.

— africana II, 949.

— elastica (Preuss) Stapf
II, 236, 937, 938, 949,
950 — III, 141.

— latifolia II, 236.
Fusanus acuminatus II,

851.
Fusarium 108, 115, 117,
120, 154, 209, 210, 212,
216, 221, 271, 730, 813,
818, 819, 850.

— baccharidicola P. Renn*
290.

— candidulum Sacc* 290.

— Oeltidis III, 337.

— cypericola P. Henn*
290.

— heterosporum 115.

— lichenicolum C. Massal.
145.

— lolii (W. G. Smith) Sacc
144.

— Lucumae P. Henn* 290.

— niveum E. Sm. 105.

— oxysporurn 221, 850.
pallens Nees 271.

Fusarium Phyllachorae
P. Henn* 290.

— rimicolum Sacc 271.

— roseum 103, 156.

— Solani Mart. 216, 271.

— vasinfectum 105, 156.
Fusicladium 115, 132, 204,

219, 813. — II, 944.

— dendriticum (Wallr)
Fehl. 141, 216, 812, 815,
820. — II, 864.

— depressum (B et Br)
Sacc. 149.

destruens Peck 142.

— Elasticae 824.

— Hariotianum Sacc* 290.

- pirinum Fuck. 150, 812,
815.

— radiosum (Lib.) 146.
Fusicoccumabietinum851.

— Kesslerianum Rick 147,
290.

Fusidium Asteris Plowr. et
Phill. 152.

Gabunia odoratissima II,

236.
Gadua P. 303.

— angustifolia Kth. II,
837.

- pallida P. 289.

- Taquara P. 287.
Gaertnera III, 245. —

N. A. II, 505.
Gagea 652. — III, 107.
- N. A. II, 305.

— AlexeenkoanaMisc. III,
101.

— arvensis 652.

— Liottardi 652.

— lutea L. II, 557.

— reticulata R. et Seh.
III, 101.

— sulfurea Mise. III. 101.

— uliginosavar. Soleimani
Pascher II, 305.

Gagnepainia III, 134.

— Godefroyi III, 133.
Gahnia aspera III, 81.

— Gaudichaudii III, 81.

Galuiia javaniea — Gardenia elusiaefolia.

839

<Sahnia javanica III, 81.

— rnelanocarpa III, 81.

— pauciflora III, 81.

— psittacorum III, 81.

— Radula III, 81.

— setifolia III, 81.

— tetragonocarpa III, 81.

— tristis II, 166.
Gaillardia II, 575.

— aristata II, 575.
Gaimardia II, 269. —

[II, 5.
Galactia III, 234. - - N. A.

II, 44.').
Galactites N. A. II, 382.
Galanthus nivalis L. II,

554, 957. — P. 238.
Galega officio alis L. II,

S42. — in, 432.
Galenia L. III, 139
Galeobdolon 697.— P. 308.
Galeopsis N. A. II, 436.

— grandiflora III, 509,
510.

— ochroleuca III, 509.

— Tetrahit L. II, 576,
590. 615. — P. 253.

Galera pygmaeo - affinis

(Fr.) Quel. 106.
Galinsoga parviflora Cass.

II, 557.

Galium II, 100. - 111,51.

— N. A. II, 506.

— Aparine L. II, 576, 599.

— III, 9. — P. 317.

— boreale L. II, 599. —

III. 40.

— brachypodum II, 214.

— brevifolium Phil. II,
506.

— erectum X verum III,
305.

— hercynicum Weig. II.
626.

— hypnoides Glos II, 506.

— intercedens Lindb. II,
506.

— intricatumLowe II, 506.

— Mollugo L. 690. —
III, 9.

Galium Mollugo X ruthe-
nicum II, 506.

— ochroleucum Wolf III,
305.

— palustre L. II, 599. —
III, 40, 41. — P. 311.

— saxatile L. II, 590, 599.
— II, 626.

— silvestre Poll. 11,599. —
P. 253.

— tenollum Clos II, 506.

— uliginosum P. 311.

— vernum L. 522. — II,
599.

Gallitrichium anglicum
Jord. et Fourr. III, 229.

— pallidiflorum Jord. et
Foitrr. III, 229.

Galphimia linifolia II, 228.
Galtonia II, 985.
Gambleola cornuta Massee

148.
Gatnmiella Broth- N. G. 59,

7(1.

— pterogonioides (Griff.)
Broth." 70.

Gamocarpha Selloana

Reiche III, 161.
Gamolepis N. A. II, 383.

— intermedia Bolus III,
173.

Gangamopteris 623, 635.

— Kaschmirensis Seward*
622.

Ganna III, 312, 313.
Ganoderma 124.

— argillaceum Murr.*2Q0.

— balabacense Murrill*
290.

— Currani Murrill* 290.

— Curtisii (Berk.) Murr.
255.

— lipsiensis (Batsch) Atk.
255.

— lobatum (Sehr.) Atk.
255.

— nevadense Murr* 290.

— nitidum Murr* 290.

— oregonense Murr.* 255,
290.

Ganoderma personatum
Murr* 291.

— praelongumitfMrr.*291.

— pseudoboletum 255.

— pulverulentum Murr*
291.

— Sequoiae Murr.' 291.

— subfornicatum Murr.*
291.

— subincrustatum Murr*
291.

— subperforatum Atk*
255, 291.

— subtornatum 135.

— Tsugae Murr. 255.

— tuberculosum Murr.
291.

Garcinia II, 212, 245, 871,
929. - N. A. II, 431,
432.

— Buchanani Bak. II,
898.

— Cambogia II, 871.

— Coroa Roxb. III, 543.

— ferrea Pierre 541. — II,
921.

— indica Choisy 541.

— Loureiri Pierre 541. —
II, 921.

— Mangostana L. II, 871,
921. — III, 42.

— merguensis Wright II,
930.

— Morella III, 543.

— nutans III, 205, 465,
466.

— peduneulata Roxb. III,
544.

— sizygiifolia 455.

— tonkinensis II, 821.

— xanthoehymus Hook. f.

II, 871, 921.
Garcinieae III, 213.
Gardenia II, 222, 504. —

III, 655. — N. A. II,
506.

— Aqualla III, 307.

— asperula III, 306.

— elusiaefolia Jacq. II,
504.

840

Gardenia oornuta — Geoglossuin fallax.

Gardenia cornuta Hemsl.

II, 254. - III, 306.

— erubescens III, 307.

— florida L. II, 626. —

III. 305.

— fragilis II, 140.

— Goetzei III, 307.

— Jovis-tonantis III, 306.

— Lanutoo Beinecke 457.

— lutea III, 306.

— Meriani 565.

— Saundersiae III, 306.

— spathulifolia III, 306.

— subacaulis Stapf- et
Hutch. III, 305, 306.

— tabitensis DC. 458.

— ternifolia III, 306.

— Thunbergia II. 233,
250. — III, 306.

— Tinneae III. 306.

— triacantha III, 306.

— turgida Roxb. II, 851.

— Volkensii III, 306.
Garovaglia lafcifolia Broth.

et Bar* 52.
Garrya III, 221.
Garryeae III, 221.
Gasteria Duv. II, 119. —

III, 102. — N. A. IL 305,

306.

— denticulata Haw. II,
305.

— disticha Haiv- II, 305.

— nitida X subnigricans
II, 305.

— verrucosa X pulchra II,
305.

— — var. intermedia X
Ha\vorthiaradulaII,305.

var. latifolia X brevi-

folia II, 305.
Gasteromycetes 123, 169,

261.
Gastrochilus III, 134.

— Thorelii III, 133.
Gastroclonium 328.
Gastrodia II, 245.
Gaultheria II, 212.

— procumbens L. 439. —
II, 147. — III, 201.

Gautiera 439.

Gaya II, 190. — III, 250.

— Lyalli II, 263.

— ribifolia II, 263.
Gaylussacia P. 281. — N.

A. II, 409.

— resinosa (AU.) Torr, et
Gray II, 147,409.-111,
201.

var. leucocarpa Borter

II, 409.
Gazania N. A. II, 383.
Geaya Const. et Boiss. N. Gr.

II, 226. — III, 472.

— purpurea Const- et Boiss.

III, 472.

Geigeria 670. — II, 141,
997. - - III, 35. — N. A.
II, 383.

— acaulis II, 231.

— ■ africana 671. — II, 588.

— ornativa 671. — II, 588.

— passerinoides 671. —

II, 588.

Geijera parviflora II, 851.
Geinitzia cretacea Ung.
594.

— formosa Hr. 594.
Geissantbera III, 121.
Geissanthus Hook. f. III,

259.
Geissaspis III, 232. — N.
A. II, 445.

— cristata W- et A. III,
232.

— psittacorrhyncha Taub.

III, 232.

— tenella Benth. III, 232.
Gelidium pannosum 349.

— Samoense Reinb* 349.
383.

Gelsemium III, (366.

— sempervirens AU. 441,
492. — III, 245.

Genabea 169, 235.

Genea 169.

Geniostoma N. A II, 451.

— ligustrifolium II, 262.

— rupestre Forst. 457.
Genipa N. A. U, 506.

Genipa americana L. II,
822, 837.

— clusiifolia Griseb. II,
504.

Genista III, 239. — X. A.

II, 445.

— aurantiaca Ten. III, 232.

— canariensis III, 547.

— ferox II, 150.

— glabrescens Brig. III,
231.

— pilosa L. III, 231.

— tinctoria L. III, 232,
432.

var. aurantiaca Rclib.

III, 232.

Gentiana II, 42, 100, 159. —
III, 210, 211, 555. — P.
129,276. — N. A.II. 427.

— asclepiadea L. 521.

— argentea Royle II, 557.

— campestris L. 651. —
II, 625.

— campestris L. subsp.
suecicaX solstitialis III,
211.

— Centaurium L- II, 426.

— ciliata L. III, 211, 571.

— Denneri Goläschm.* III,
211.

— bumilis II, 214.

— pedicellata Wall. IL 557.

— pseudo-aquatica P. 100.

— spicata L. II, 426.
Gentianaceae II, 250, 426.

— III. 210, 221, 222,

226.
Gentilia^7Ze N.G.N.A. II,

447.
Geocalyx Nees 66.

— caledonicus Steplt* 85.
Geodorum N. A. II, 313.

— pallidum Llanos II, 313.

— semicristatum Lindl. II,
313.

Geoglossaceae 122.
Geoglossum cohaerens
Durand' 122, 291.
- dif forme Fr. 291.

— fallaxDtmmd* 122,291.

Geoglossum glutinosuni— Gleicbenia flabellata.

841

Geoglossum glutinosum
Pers. 291.

— intermedium Durand*
122, 291.

— Peckianum Che. 291.

— pygmaeum Gerard* 122,
291.

— spathulatum Massee*
291.

Geonoma N. A. 11,319.
Geopana x W. B.Hemsh N. G •
IT, 229.

— procumbens W. B-
Bemsl. II, 229.

Geopora 169.
Geopyxis granulosa P.

Herrn* 138, 291.
Georchis cordata Lindl. II.

310.

— foliosa Lindl II, 311.

— subregularis Reichb. f.
II, 312.

— vittata Lindley II, 312.

— vittata JSewta. II, 312.
Geostachys III, 134.
Geotrichum coccophilum

Speg.* 291.
Gepbyria media Arnott II,

639.
Geraniaceae 428, 460. —

II. 203.211, 428. — III,
51, 55, 211, 218, 222.

Geranium 467, 770. — III,
51, 57, 432. — N. A. II,
428, 429.

— maculatum L. 442. —

III, 211.

— nepalense Wall.^I, 556.

— polyanthes.Ed<7 etHook.
II, 555.

— pratense X Robertia-
num III. 211.

— pyrenaicum II, 140.

— Robertianum L.II, 176,
587.

— sericeum var. micro-
pbyUum Wcdd. II, 429.

— silvaticum L. II, 590,
596.

Gerardia N. A. II, 521.

Gerardia grandiflora var.
integriuscula Gray II,
521.

— serrata Torr. II, 521.
Gerardieae III, ölt.
Germaria diphylla III, 109.

— latifolia Presl II, 498.
Gesneraceae II, 160, 203,

216, 429. - III, 53, 59,

212, 221, 414.
Gesneria III, 59. — N. A.

II, 430.
Getonia floribunda Roxb.

II, 622.
Geum 479, 504. — II, 42.

— agrimonioidesPurs/tll,
494.

— ciliatum Pursh II, 503.

— coccineum II, 154. 720.

— rivale L. 653. — II,
142.

— triflorum Pursh II, 503.
Geunsia N. A. II, 544.
GibberideaNipaeP.fie n.*

291.

— turfosa Syd.* 149, 291
Gibellinia eximia v. Höhn*

128, 291.
Gibellula Cav- 269.
Gigantochloa N. A. II, 296.
Gigantopteris 636.

— nicot,anaefolia 639.
Gigartina intermedia 347.

— pacifica 347.

— tenella 347.
Gilia N. A. II, 478.

— grandiflora diffusa
Mulford II, 478.

— gracilis glabella Suks-
dorf II. 478.

— microsteris Piper II,
478.

— squarrosa Hook, et Am.
III, 278.

Gilibertia III, 59, 145. -

N. A. II, 334.
Gillenia Moerch 478. —

in, 296.

— trifoliata Mnch. 443,
474. — III, 294.

Ginkgo 505, 506, 512, 591,
600, 609, 611, 613, 623,
636. - III, 72, 642.

— ■ adiantoides TJng. 561.

— biloba L. 505, 512, 608,
613, 623, 624, 628, 700,
762. — III, 72.

— digitata 582, 613, 628.

— Huttoni 591.
- lepida 582.

— Scbmidtiana 582.
Ginkgoaceae 591, 598. —

III, 14, 72.
Ginseng III, 546.
Girardinia II, 991.

— palmata Gaudieh. II,
991.

Gironniera celtidifolia

Gaud. 458.
Girvanella 381, 612.

— problematica Nich. 380,
612.

Gisekia L. HI, 138.

— pharnaceoides II, 232.
Gladiolus L. II, 81, 243.

— III, 99.

— communis II, 567.

— palustris II, 567.

— primulinus III, 99.
Glaucium leiocarpum II,

154.

— luteum L. II, 720.
Glecboma hederacea L.

693, 770.
Gleditschia 598.

— alemanica 589.

— triacanthos L- HI, 3,
234, 432.

Gleicbenia Neck. II, 740,
797, 806, 974.

— amboinensis v. Aid. y.
Ros* II, 781, 812.

— bifida II, 792.

— Bucbtienii Rosenst.-: II,
792, 812.

— Candida Rosenst* II»
783, 812,

— dichotoma Willd. II,
217. 740, 741, 745.

— flabellata Br. II, 783.

842

Gleiehenia glauca — Gloeosporiuin Veronicarutn.

Gleichenia glauca II, 799.

— laevigata Hook. II, 740,
741, 745.

— longipennis Hr. 594.

— pectinata Prsl. II, 741,
745.

polypodioides Sw. II,
741, 745, 795, 797.

— rupestris II, 799.

— jtingensis Rosenst* II,
792, 812.

- Zippei Hr. 594.
•Gleicheniaceae II, 755.
Gleichendes 579.
Glinus L. II, 201, 327. —

111, 139.
Glischrothamnus Pilger N.

0. N. A. II, 327.
Globba III. 134. — N. A.

II, 323.
Globifomes 124.
Globularia N. A. II, 431.

— Alypum III, 166, 685.
Globulariaceae II, 431.
Glochidion N. A. II, 417,

418.

— obovatnm S. et Z. III,
204.

— umbratile II, 256.
Gloeocapsa 340.
Gloeocystidiuro 118. 259.

— argillaceum (Bres.) v.
H. et L. 259.

— albo-stramineum (Pres, j
v. H. et L. 291.

— clavuligerum r. H. et
L. 113.

— inaequale v. H. et L.
113, 144, 259.

— luteum (Bres.) v. H. et
L. 291.

— oleosum v. H. et L.

112, 113, 259.

— pallidulum (Bres.) v. H.
et L. 113, 259, 291.

— stramineum Bres. 1 1 3.

— tenue (Pat.) v. H et L.
113.

Gloeocystis ampla Kütz.
360.

Gloeocystis scopulorum

Hansg. 330.
Gloeoglossum Durand. N.

G. 122, 291.

— affine Durand" 122,
291.

— difforme (Fr) Durand*
291.

— glutinosum (Pers.) Du-
rand* 291.

Gloeopeniophora 113, 259.

— Allescheri (Bres.) v. H.
et L. 291.

— aurantiaca (Bres.) v. H
et L. 291.

Gloeopbyllum 124.

— abietinellum Murr*
291.

— nigrozonatum Mnrrill*
291.

Gloeosporium 129, 155,
171, 173, 238, 268, 817,
823, 850.

— acericolum Allesch. 145.

— alborubrum Petch* 135,
291.

— ämpelopbagum Sacc.
173, 207.

— anceps Sacc* 292.

— apiosporum Speg.* 292.

— arvense Sacc. et Penz.
100.

— bignoniacearum Speg*
292^

— bokensis P. Henn* 292.

— Cattleyae 173, 850.

- Cattleyae P.Henn* 127,
292.

— Cattleyae Sacc. et D-
Sacc. 127.

— caulivorum Kirchn.
146.

— cinerescens Bubak 149.

— coffeanum Delacr. 207.

— Crini Sacc* 292.

— curvatum 206.

— Dracaenae Sheldon 850.

- Echitidis P. Henn* 292.

— Elasticae Cke. et Mass.
135, 211.

Gloeosporium filicinum

Rostr. 268, 294. — II,

803.
— fructigenum Berk. 817.

fructus Caricae P.Henn.*

292.

— fructus Psidii P. Henn*
292.

— Heveae Petch 135.

— Lindemuthianum Sacc.
et Magn. 150.

— Loranthaceae P. Henn.*
292.

— maculaeformis (Fr) v.
H. et L. 260.

— Musarum 173, 850.

— Myrtilli Allesch. 149.

— nervisequum 124, 171,
173, 237, 238.

Oleandri Sacc* 292.

— pachybasium Sacc 150.

— paulense Syd.* 127,
292.

— paulistanum Speg* 292.

— pestis Massee* 292.

— Phegopteridis Frank
268.

— Phegopteridis Pass. 268.

— phyllachoricolum Speg*
292.

— pirinum Pegl. 815.

— pruinosum Bamml. 100.

— Ribis 812, 821, 859.

— rubrum 823.

— rufo-maculans (Rerk)
Thtiem. 122.

— sordidum Speg* 292.

— struthiopteridis Rostr-
268. — II, 803.

— Theae Zimmerm. II,
848.

— Theae-sinensis Miyake
II, 848.

— Tiliae Oudem. 150.

— Tremulae (Lib.) Pass.
149.

— triviale Speg* 292.
- Usterii Speg* 292.

— Veronicarum Ces. 100,
145.

Gloeosporium Vogelianuui — Goniphonema.

843

<Jloeosporium Yogelianum

Sacc* 149, 292.
Gloeotulasnella 118.
Gloraera III, 121. — N.

A. II, 313.
Glomerella fusarioides Ed-

qertorV' 207. 292.

— rufo-maculans 20(5.
Glonium lineare (Fr.) De

Not. 147.
•Gloriosa III, 360.

— Kothschildiana III, 58.
Glossifungites 558.
•Glossocalyx longicuspis

Benth. III, 253.
Glossocornia Don III, 162.
Glossonema Boveanum IL

232.
Glossopteris 582, 613, 622,

623.

— Browniana 622.

— indica Schimp. 553, 622.
Glossozamites oblongi-

folium 612.
Gloxinia III, 58. — N. A.
II, 430.

— speciosa 670.
Glumiflorae III, 16.
Glyceria II. 146. — III,

87, 88. — N. A. IL 296.

— aquatica Presl P. 247.

— Borreri Bab. II, 296.

— III, 88. - - P. 290.

— capillaris C- J. Lindeb.
IL 293.

— conferta Fries IL 296.

— convoluta Fries II, 296.

— III, 88.

— distans (L-) Wahlbg. II.
296. — III. 88.

— — var- reptans Hartnt.
II, 296.

— festucaeformis Sommier
IL 296. — III, 88.

— fluitans R. Br. IL 261.

— Gussonei Nym- III, 88.

— maritima Somm. IL 296

— III, 88.

— Parlatorei Beg- III,
88.

Glyceria permixta Guss-

II, 296. — III, 88.

- pseudodistans Cre'p. III,
88.

— reptans Krok. II, 296.

— vilfoidea Th. Fries II,
296.

Glycine II, 829. — III, 235.
— N. A. II, 445.

— hispida Maxim. II, 843,
927.

— sinensis 748.
Glycosmis N. A. II, 512.
Glycyrrhiza glabra L- III,

432, 650.
Glyphomitrium Brut, et
Hollick N. G. 556.

— Cockerellae Brut et
Hollick* 556.

— platypbyllum Card- et
The'r.* 76.

Glyptostroboxylon Goep-

perti 572.
Glyptostrobus 558, 572,

584, 596. 613.

— europaeus 556, 596.
Gmelina villosa P. 284, 288.
Gnaphalium N. A. II, 383.

— indicum II, 222.

— Leontopodium L. II,
557.

— Macounii II, 145.

— proximum Greene II,
183.

Gnetaceae II, 240, 245. —

III, 72, 220.

Gnetum 531. — N. A. IL
279.

— africanum II, 240.

— GnemonL. 531,744,807.
979. — III, 72, 73.

Gnidia N. A. II, 533.
Gnomonia 237, 843.

— Arnstadtiensis Aicd.
149.

— erythrostoma 243, 843.

— euphorbiacea Sacc- et
Br. 148.

— intermedia Rehm* 146.
292.

Gnomonia padicola (Lib.)
846

— Rosae Fxick. 146.

— tnbiformis (Tode) 237,
846.

— \ eneta 171.
Godetia II, 169. — III,

266. - N. A. II, 471.
Godoya N. A. II, 469.
Goeppertia birsuta P. 307.
Goldmanella Greenm. N.

G. III, 234.

— sarmentosa Greenm*
III, 234.

Goldmania Greenm. III,

234.
Golenkinia 361.

— radiata Chodat 361.
Gollania Broth. N. 0. 59,

76.

— Berthelotiana (Mont.)
Broth. 76.

— clareacena (Mitt.) Broth.
76.

— cylindricarpa (Mut.)
Broth. 76.

— exaltata (Mitt.) Broth-
76.

— isopterygioides (Broth.
et Geh.) Broth. 76.

— Mayrii (Broth.) Broth.
76.

— Neckerella (C. Müll)
Broth. 76.

— ruginosa (Mitt.) Broth.
76.

— varians (Mitt.) Broth.
76.

Gomeza scandens II, 199.
Gomphandra laxiflora

Vidal II, 435.
Gomphia alaternifolia

II, Gris- 469.

— ilicifolia .4. Rieh. 11,469.
G ompbidius roseus Masse ei:

292.
Gomphocarpus fruticosus

III, 146.
Gornpbonema II, 630, 633,

640.

844

Goinphoneina acutninatum — Goodyera Schleehtendahliana.

Gomphonema acumina-
tum Ehrbg. II, 630.

— angustatum Kütz. II,
630.

— — var. elongatum M.
P. II, 641.

— attenuatum Pant* II,
644.

— augur Ehrbg. LI. 635.

— Bonapartii Pant* II,
644.

— constrictum Ehrbg. II,
630.

— geminatum var. sibirica
II, 638.

— olivaceum Lgngby II,
640.

— — var. quadripunctata
Oestrnp* Ii, 644.

— subcapitatum II, 634.
Gomphostemma II, 435.

- N. A. II, 436.

— Mastersii ßenth. II, 435.

— ovatum Wall. II, 435.
Gomphostrobus Reisi

Schuster* 618.
Gomphrena globosa II,

254.
Gomphyllus 12.
Gonatobotrys pallidula

Bres. 113, 259, 291.
Gonatopus II, 242.
GonatorrhodieJla Highlei

A. L. Sm.* 108, 292.
Gonatozygon bogoriense

Bernard* 383.
Goagora II, 583.

— similis III, 118.
Gongrosira 343.
Goniocotes abdominalis

P. 235, 318.
Goniolithon Borgeseni 348.

— dispalatum Fosl. et
Howe* 377, 383.

— iinitimum 377.

— mamillosum (Hauck)
Foslie 378.

— Notarisii 377.

— pacificum 377.

— propinquum 377.

Goniolithon Setchelli 377.

— solubile Foslie et Howe
377.

Goniophlebium ampliatum
Maxon* II, 790, 812.

— glaucophyllum II, 754.

— Pringlei Maxon II, 194,
791.

Goniopteris pyramidata

Fee II, 790.
Gonioscypha eucomioides

III, 107.
Goniothalamus N. A. II, 329.
Gonocaryum N. A. II, 435.
Gonolobus N. A. II, 337.
Gonystilaceae III, 221.
Gonostylus III, 450.

— Miquelianus T. ei B-
III, 450.

Goodenia 540.

— arthrotricha 540.

— bellidil'olia 539.

— heteromera 539.

— hispida 539, 540.

— humilis 539.

— incana 539.

— ovata 540.

— Lumilio 540.

— scapigera 540.

— viscida 540.
Goodeniaceae 432, 539. —

II, 431. - - III, 212.
Goodyera 11, 310, 311.

— bifida Blume II, 310.

— biflora Hook. fil. II, 310.

— brachyori'hynchos
Schicht. II 310.

— colorata Blume IL 310.

— cordata Nicholson II,
310.

— discoidea Schlchtr. EI,
310.

— Erimae Schlchtr. II, 31 1 .

— foliosa Benth. II, 311.

— formosana Rolfe II,
311.

— f umata Thivaites II, 31 1 .

— fusca LindL II, 311.
-- glauca J. J. Smith II,

311.

Goodyera gracilis Hook. f.
II, 311.

— grandiflora Schlchtr. II,
311.

— grandis King II, 311.

— hacijoensis Yatabe II,
166, 311.

— Hemsleyana King II,
311.

— Henryi Rolfe II, 311.

— hispida Lindl. II, 311.

— lanceolata Ridl. II, 31 1 .

— Lehman niana Kränzt.
IL 311.

— macrantha Maxim. II,
311.

— rnacrophylla Lowe IL
311.

— Matsumurana Schlchtr.
II, 311.

— Maure vertu Blume IL
3.11.

— Menziesii Lindl. 11,313.

— nebularis Rolfe II, 311.

— ochroleuca Bailey IL
311.

— papuana Ridley II, 311.

— parviflora Blume IL
311.

— pendula Maxim. 11,312.

— polygonoides Mueller
II, 312.

— Prainii Hooker f. II,
312.

— procera Hooker 11,312.

— pubescens R. Br. II,
312.

— pusilla Blume II, 312.

— recurva Lindley II, 312

— repens L. III, 109.

— — var- ophioides
Fernald II, 312.

— reticulata Blume II,
312.

— robusta Hooker f. II,
312.

— rubicunda Lindley IL
312.

— Schleehtendahliana
Rchb. fil. II, 312.

Goodyera scripta — Griinniia atroviridis.

845

Goodyera scriipt&Schlechter
IL '312.

— striata Reichb. f. II,
312.

— subregularis Schlechter
II, 312.

— tessellata Loddiges II,
312.

— triandra Schlechter II,
312.

— velutinaMaxm.il, 31 2.

— viridiflora Blume II,
313.

— viscosa Reichb. f. IL
312.

— Waitziana Blume IL
312.

Gordonia X. A. IL 533.

— imbricata IL 216.
Gordonieae III, 219.
Gossweilera Moore N. 6.

N. A. IL 383.
Gossypium II, 197, 827,
829, 905. — III, 40, 155,
249, 250, 412, 472, 676.

— P. 212. — II, 907,
908, 910.

— arboreum L. III, 251.

— barbadense L. III, 251.

— brasiliense Mac f. III,
251.

— darwinii Watt. III, 250.

— davidsonii Kellegg. III,
251.

— berbaceuni _L. III, 251.

— P. 152, 308.

— hirsutum L. III, 250.

— mexicanum Torf. III,
250.

— microcarpum Tod. III,
250.

— nanking Meyen III,
251.

— obtusifolium Roxb- IL
907. — III, 251.

— palmeri Watt. III, 250.

— peruvianum Cav. III,
251.

— purpurascens Poir. III.
250.

Gossypium stocksii Mast
III, 250.

— tomentosum Nutt. HL
251.

— vitifolium Lam. III,
251.

Gouania X. A. II, 486.

— pyrifolia P. 311.
Gowenia lagenophora III,

119
Grabowskia N. A. IL 528.

— Spegazzinii Dus- III,
330.

Gracilaria corticata 348.

— Henriquesiana Hariot*
348, 383.

G raffen rieda III, 251. —

N. A. IL 458.
Grabami a III, 281.
Gramen Gerard III, 82.

— cyperinum Gerard III,
82.

— exile Gerard III, 82.

— sylvaticum Gerard III,
82.

Gramineae 446. — II, 128,
159, 166, 169, 184, 202,
211, 218. 224, 234, 240,
250. 252, 258, 270, 292,
651, 989. — III, 23, 24,
28, 34, 86.

Grammadenia Benth. III,
259. — N. A. II, 465.

Grammatophyllum III, 9.

Grammitis Delavayi Bak.
II, 766.

— Moelleri Book. II, 766.

— vestita Wall. IL 766.
Grandinia helvetica (Pers.)

Fr. 259.
Graphephorum melicoides

var major Gray II, 300.
Graphiola Borassi Syd. et

Butl. 147.
Graphis 15.

— elegans iSm.) 15.
Graphhim Cda- 155, 158,

270.

— albonigrescens Lindau*
292.

Graphium anomalum
Massee* 292.

— Geranii Vogl.* 104.

— pusillum Sacc* 292.
Grateloupia lancifolia 347.
Gratiola acuminata Walt-

II, 520.
Gratioleae III, 50.
Grayia Sutherlandi III,

252.
Greggia N. A. II, 403.
Grenacberia Mey. III, 260.
Grevillea X. A. IL 482.

— robusta II, 935.

— striata II, 851.
Grewia II, 852. N. A.

II, 534.

— bicolor Jus*. II, 624.

— carpinifolia II, 250, 905.

— flava III, 570.

— occidentalis L. III, 335.

— polygama Roxb. 11,851.

— populifolia Vahl II, 609.

— scabrophylla Roxb- IL
851.

Griffitbsia acuta Zanard.
377. — III, 140.

— Duriaei 377.

— furcellata 377.
Grifola Berkeleyi (Fr.)

Murrill 142.
Grimaldia 35.

- dichotoma Rdi. 40.
Grimmeodendron Urb. X.

6. III, 58. — X. A. II,

418.
Grimmia absconditaC'arrf.*

76.

— andreaeoides 41.

— antarctica Card* 76.

— apiculata Hornsch. 46.

— apocarpa Hediv. var.
aomoriensis Card* 70.

— — var. mamillataCard."
76.

— — var. microphylla
Card* 76.

— — var. microtheca
Card* 76.

— atroviridis Card* 76.

846

Grinimia brachyphylla — Gymnosporangium Davisii.

Grimmia brachyphylla
Card* 76.

— caespiticia (Brid) var.
Bornmülleriorum
Schiffn.* 53, 77.

— celata Card* 77.

— commutata Hüb. 43.

— decalvata Card* 77.

— elatior 39.

- fastigiata Card* 77.

— grisea Card* 77.

— Holleri 40.

— incurva Schwgr. 70.

— Lisae De JSfot. 35.

— Nordenskiöldii Card-'
77.

— poikilostoma Card, et
Sebille 45.

— Schultzii Brid. 40.

— subsulcata 37.

— tenuis Bark. 60.

— torquata 41.

— trichophylla 39.
Grimmiaceae 39.
Grindelia robusta 488. —

III, 185, 661.
Grinnellia 328.
Griselinia III, 221.

— litoralis II, 262.
Grossularia II, 168. —

X. A. II, 518.
Grossulariaceae II, 168.
Grubbia III, 221.
Gruinales III, 15.
Grumilea X. A. II, 506.
Guadua P. 313.

— pallesceus Doell. II,
294.

— Taquara P. 313.
Guaiacum officinale L. II,

900.
Guarea II, 898. — N. A.

II, 461.
Guaripa Alibi. III, 224.
Guatteria X. A. II, 329.
Uuazurna II, 190.

- tomentosa H. B. K. II,
822, 899.

- ulmifolia II, 822. — P.
307.

Guepinia capitata Feltg*

110, 292.
Guettarda III, 59. — X. A.

II, 506.
Guignardia Tlieae (Rac)

Bernard 823.
Guilandina Moringa L. II,

464.
Guilelmia vitilis II, 822.
Guillainia X. A. II, 323.
Guillania III, 134.
GuiDardia II, 637.
Guizotia X. A. II, 383.
Gundelia Tournefortii II,

128.
Gunnera III, 39.

— chilensis II, 103, 984.
- III, 214.

— Hamiltoni II, 980.

— macrophylla II, 979,
984.

— manicata 380.

— scabra III, 56.
Gurania Eggersii Sprague

et Hutchins.* II, 270.

— phanerosiphon Sprague
et Hutchins* II 270.

Guraniopsis Cogn. X. G- X. A.

II, 405.
Guttiferae 454. — II, 245,

250, 431. — III, 15, 58,

212, 219, 220, 223.
Gutwinskiella De Toni IL

644.
Guzmania X. A. II, 285.

— Zahnii II, 713.
Gyalecta 15.

— piceicola Arn- 22.
Gymnadenia III, 109.

— conopea (L.) R. Br. II,
164. — III, 109.

— cucullata III, 109.

— cylindrostachya Lindl.
II, 315.

— densiflora III, 109.

— Frivaldii III, 109.

— intermedia III, 109.

— odoratissima III. 109.
Gymnadeniopsis nivea II,

176.

Gymnema X. A. II, 337.

— rufescens III, 146.
Gymnocladus dioicusüToc/i

III, 234.
Gymnoconia 251.

— interstitialis (Schlecld.)
Lagh. 252. — III, 979.

Gymnoderma Nyl. 10.

— coccocarpum Nyl. 10.
Gymnodinium f'ucorum

Küster* 366, 383.

— roseum Lo/wt.:f:333,383.
Gymnogramme II, 766,

801.

— argentea (Bory)Mett. II,.
794.

— aurea II, 716, 759.

— cordata II, 759.

— decurrenti-alata Hook.
II, 777.

— distans II, 778.

— grandis Racib. 11, 779.

— lanceolata II, 206.

— longipes Bak. II, 766.

— ochracea II, 755.

— schizophylla gloriosa
II, 808

— sulphurea II. 737.
Gymnomitrium adustum

Nees 65.

— concinnatum (Lightf.)
Cda- 65.

— varians Lindb. 65.
Gymnophyton III. 341.
Gymnopteris Bernh. II,.

766, 806.

— auricu]ata(Xa»Jv)II,794.

— gabunensisf Hook)J.Sm.

II, 794.
Gymnoschoenus adustus

III, 80.
Gymnosiphon X. A. II, 285.
Gymnospermae III, 14.
Gymnosporangium 247,

833.

— Betheli Kern. 141.

— clavariaeforme (Jacq.)
Rees. 247, 248.

— confusum Plowr. 247.

— Davisii Kern* 249, 292.

Gymnosporangium exiguuin — Halacsya aurea.

847

Gymnosporangiuni exigu-
um Kern* 249, 292.

— flaviforme (Atk) Earle
249.

— floriforme Thaxt* 249,
292.

— juniperinum (L.) Fr-
247, 250, 815.

— macropus 834.

— Miyabei Yamada et
Miyake* 254, 293, 833.

— Nelsoni Arth. 141.

— penicillatum( Müll.) Liro
251.

— Sabinae (Dicks) Wint.
148, 247, 815.

— tremelloides R. Hart.
247, 249, 251.

Gymnosporia II, 953. —
111,171.— X. A. II, 358.

— acurainata Szysz. III,
170.

— — rar. lepidota Loes.
III, 170.

— amaniensis Loes. II, 954.

— III, 170.

— bukobina Loes. II, 954.

— III, 170.

— buxifolia II, 246.

— filamentosa II, 246.

— Engleriana II, 246.

— lepidota Loes- II, 954.

— montanaJP. Vill. 11,358.

— philippinensis Yidal II,
358.

— senegalensis II, 246.

— — var. maranguensis
Loes. II, 358.

— WullichianaM.111,168.
Gymnostomum involutum

Rth* 39, 77.
Gymnothrix elegans II,

220.
Gymnozyga cylindracea

Bernard* 383.
GyDandrae III. 16.
Gynandropsis III, 165.
Gynerium argenteum II,

716.
Gynocardia II, 716.

( -\ nocardia odorata R. Br.

II, 221, 716. — III, 514,

551.
Gynopogon bracteolosus

K- Schum. 457.
Gynostemma X. A. II, 405.
Gynura X. A. II, 383.

— cernua II, 236.
Gynurop.ns III, 179.
Gypsophila 454, 504. —

X. A. II, 355.

— cerastioides D. Don. II,
556.

— cretica S. et 8m. II, 357.

— paniculata III, 472.

— perfoliata 682.

— Visiani Be'g* III. 168.
Gyroceras üeltidisIII, 337.
Gyromitra curtipesi^V. 121.

— gigas (Krombh.) 121.
Gyropbora 15.

— cirrhosa (Hoffm) 24.

— deusta (L.) Ach. 24.

— Dillenii Müll-Arg. 22.

— erosa (Web.) Ach. 24.

— haplocarpa var. afri-
cana Jatta* 26.

— hirsuta Ach. 24.

— hyperborea Ach. 24.

— murina Ach. 23.

— phaea (Tuck.) 20.

— proboscidea(L.^4c/i24.

— rugifera 20.
Gyroporella 380, 613, 624.
Gyropteris Cda. 552.
Gyropteris Goeppert 552,

553.

— sinuosa Goepp. 552.
GyrosigmaKützingii Grün.

II, 630.
Gyrostachys amoena Bi-
ll. 318.

— australis Blume II, 318.

— — var- amoena II, 318.

— crispata Bl. II, 318.

— flexuosa Bl II, 318.

— parvifiora Bl II, 318.

— Wightiana Bl II, 318.
Gyroweisia tenuis Schimp.

var. schisticola Rth.* 39.

Habenaria II, 173. — III,
112, 121. — X. A. II.
313.

— bracteata P. 254.

— carnea III, 1 14.

- conspicua Nash II, 313,
314.

— cristata X blephari-
.qlottis II, 313.

— dilatata P. 254.

— gracilis P. 254.

— hyperborea P. 254.

— muricata Vidal II, 313.

— Orchidis Hook. ß. II.
315.

— viridis (LJ R. Br. II.
590, 596.

Hablitzia tamnoides III,

24.
Hadrotrichum Phragmitis

Fuck. 149.

— virescens Sacc. etRoum.
149.

Haemanthus II, 243, 280,.
956.

— coccineus II, 957.

— cyrtantiflorusWn^Äillv
280.

— Katharinae III, 73.
Haematococcus 359, 360.

— II, 993.

— Bütschlii 360.

— Droebakensis Wollen-
iceber- 359.

— pluvialis 331, 360.
Haematomma 15.

— cismonicum Beltr. 22.
Haematoxvlon Uampechi-

anum L. 893, 900. —

II, 600.
Haemodoraceae 766. — II,

252.
Hagenia abyssinicall, 250,

251.
Hakea exulata 614.

— leucoptera II, 851.
Hakosmanthus III, 3l2r

313.
Halacsya aurea Dörfler

III, 346.

848

Halaosya Sendtneri — Hedeoma pulegioides.

HalacsyaSendtneri Z)ör/7er

II, 346.
Halconia N. A. II, 534.
Halesia III, 221. - - N. A.

II, 532.

— corymbosa ß. et H. III,
334.

- hispida B. et H. III,
334.

Halidrys II, 270.
Halimeda Tuna 333.
Haliruium IT, 584, 585.

- glomeratum II, 583,
584. 585.

— rosmarinifolium 11,583.
Halimocnemis' occulta P.

100.
Halleria III, 37.

— lucida L. III, 36, 37.
Halochlamys N. A. II, 282.
Halopegia Ii, 244. — III,

108.
Halophila III, 96.
Halopteris 369.

— scoparia 369.
Halorrhagidaceae II, 434.

- III, 214, 219, 224.
Halorrhagis verrucosa

Maid- et Beteine II, 257.

Halteria 334.

Halymenia acuminata 347.

Hamamelidaceae II, 162.

III, 15, 214, 219, 221,

222, 224, 225.
Hamamelidoxylon Lignier

N. G. 585, 586.

— Eenaulti Lignier* 585.
Hamamelis 586. — III,

558.

— japonica S. et Z. III,
214.

— virginiana III, 629, 641.
Hamelia III, 59 — N. A.

II, 506.
Hammatolobium lotoides

II, 129.
Hancornia speciosall, 936.
Hannoa undulata 11, 232.
Hantzschia amphioxys

( Ehrbg.) Grün. II, 630.

Hantzschia Heufleriana
(Grün.) Heinzerling II,
630, 644.

— vivax var- granulata
M. P. II, 641.

Hapalopilus 124,

— gilvus 135.

— Ramosii Murrill* 293.

— subrubidus 135.
Hapalosphaeria Syd. N. G.

266.
Haplariella Cordiae (P.

Henn.) Syd* 126, 293.
Haplariopsis P. Henn. N. G.

126, 293.

— Cordiae P. Henn* 126,
293.

Haploclathra 4.V>.
Haplographium 230.

— finitimum (Preuss) Sacc
108.

— fusipes Preuss 230.

— yerbae Speg.* 293.
Haplohymenium micro-

phyllum (Par. et Broth.)
Broth. 53.

— triste (Ces.) Broth. 53.
Haplophyllum N. A. II,

512.

— megalanthum Bornm.
III, 307.

Haplorhus III, 218.
Haplospoiella Machaerii
P Henn* 293.

— Missouriensis Bub. 145.

— Ribis Sacc. 119, 280.
Haptocarpum Ule N. G.

III, 165, 166. — N. A.

II, 352.

— bahiense Ule* III, 165.
Hardwickia III, 242.

— pinnata III, 543.
Harpagophytum X. A II,

473.

— Peglerae Stapf III,
271.

Harpalejeunea reflexula

Evans* 85.
Harpechloa capensis Kth.

III, 87.

Harpidium Süll. 60, 62.

— aduncum Santo 60, 61,
62.

— fluitans 60.

— lycopodioides 60.
Harpographium Sacc. 270.

— yerbae Speg* 293.
Harpullia N. A. II, 517.
Harrisia Britton N. G. III,

52. — N. A. II, 348.
Harziella Oastaneae Bain*

266, 293.
Hasseltia N. A. II, 423.
Hasslerella CJwdat III, 322.

— N. A. II, 521.
Rojasii III, 322.

Haworthia Duval II, 119,
304, 553. — III, 102. -
N. A. II, 306.

— angolensis Baker II,
305.

— subfasciata var. argy-
rostigma Bak. II, 306.

— subrigida Baker II. 306.

— subspicata Baker II,
305.

— stenophylla Baker II,
305.

— tenuifolia Engl. II, 305.
Hebeclinium janthinum II,

382.
Hebeloma anthracophilum
Maire* 106, 293.

— radicatum (Cke.) Maire
106.

Hebenstreitia elongata

Bolus III, 321.
Heberdenia Banks III,

258.
Hechtia N. A. II, 285.

— Schottii II, 191.
Heckelodora II, 898.
Heckeria peltata P. 304,

306.
Hedeoma arkansana Nutt.
II, 438.

— glabra Nutt. II, 438.

— pulegioides L. III, 425.

— pulegioides Pers. 441.

— III, 228.

Hedera — Helminthosporium yerbae.

849

Hedera 580.

— Helix L. 545, 563, 686.
— II, 571, 614.

Hedraeanthus N. A. II,
350.

— hercegovinus Maly II,
350.

Hedycarya 614.
Hedychium III, 134.

— coccineum III, 134.

— coronarium HI, 134.

— Gardnenanum III, 134.
Hedyotis trachymenoides

II, 255.
Hedysarum 504.

— coronarium L. 481. —

Helianthemum oelandi-
cum (L) Wald III, 172.

— paphlagonica Janch. et
Bornm* III, 172.

— vulgare Gaertn. II, 103.

— LH, 56, 172, 183.
Helianthus 684, 734. —

111, 175.

— annuus L. 537, 678,
681, 682, 683, 722, 745.

— II, 575, 717, 926. —
III, 175, 176, 400.

— lenticularis Dougl. III,
175.

— tuberosus L. 681, 682.

— II, 822.

III, 242, 433. — P. 181. Helichrysum II, 227, 251.

Heerabolmyrrhe III, 497.
Heeria N. A. II, 328.

— elegans II, 193.
Helenium autumnale II,

605.
Heleocharis N. A. II, 290.

— tetraquetra Boeckl. II,
290.

— Usterii III, 83.

— Wichurai Boeckl II,
290.

Heleopbylax N. A. II, 290.

- N. A. II, 383

— Boormanii II, 256.

— gracilipes Oliv, et Eiern
II, 383.

— — var. profusum Balf.
f. II, 383.

— — var. stoloniferum
Balf. f. H, 383.

— stoloniferum D. Don
II, 383.

Helicia N. A. II, 482.

— formosana II, 214.

Heliamphora Btnth. HI, Helicobasidium inconspi

262, 313, 314.

— nutans Benth. III,
313.

Helianthella Oannonae II,

186.
Helianthemum H, 42. —

N. A. II, 359.

— cairicum II, 583, 584.

— chamaecistus MM. III,
172.

— canum (L.) Baumg. III,
172.

— ericoides (Cav.) Pan.
III, 172.

— Fumana III, 172.

— glaucum X viscidulum

II, 359.

— hirsutum (Thuill.) Me'rat.

III, 172.

— Lippii II, 584.

cuum v. Höhn* 258, 293.
Heliconia 459, 460, 757. —
III, 133.

— Bihai L. 459. — II,
123.

— brasilieusis Hook. 459.

— cannoidea K. Schum.
II, 268.

— birsuta II, 268.

— metallica Lind. 459.

— nitens Hort. 459.

— speciosa Hort. 459.
Helicoon Morgan 269.
Helicosporium Nees 269.
Helicostylum 232.
Helicteres II, 190.
Heliophila N. A. II, 403.

— amplexicaulis L- HI,
190.

Heliosperma 504.

Heliotropium II, 609. —
III, 59. — N. A. II,
345.

— adenense Guerke 11,
251.

— curassavicum HT, 56.

— microphyllum Gm. II,
346.

Helleboreae III, 224.
Helleborine Hill. III, 117.

— NA. II, 314.

— atrorubens Bruce II,
314.

— longipetala Tenore II,
317.

Helleborus 504. — II, 42,
711. -III, 5. — P. 270.

— N. A. II, 483

— foetidus L. II, 140, 577.

— III, 287, 288. — P.
147, 270.

— hybridus 682.
Helminthosporium 117,

818, 823.

— arbuscula B. et C 142.

— Bactridis P. Henn* 293.

— Bornmülleri P. Magnus
144.

— cantareirense P. Henn.*
293.

— Eragrostidis P. Henn*
293.

— gramineum Rebh 115,
120, 146, 209, 778, 851.

— Heveae Petch 135.

— kwangense P. Henn*
293.

— microsorum P. Henn*
126, 293.

— paulense P. Henn* 293.

— Ravenelii Gurt, et Berk.
145.

— teres 115, 120.

— Theae Bernard* 133,
293.

— Tiliae Fr. 150.

— ubangiensis P. Henn*
139, 293.

— variabile Cke. 150.

— yerbae Speg* 293.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 1. 2. 12.1

54

850

Helininthostachys — Herpotrichia bambusana.

Helminthostachys II, 755.

— zeylanica II, 754. — P.
281.

Helobiae 111, 16.
Helodium (Süll) Warnst.

58.
Helogyne N. A. II, 383,

384.
Helosciadium nodiflorum

P 286.
Heloscias scoticum (L.)

Fr. II, 590.
Helosidopsis sibiricum

Heer 583.
Helosis II, 847.
Helotiaceae 123.
Helotium Bambusae

v. Höhn* 128, 293.

— epiphyllum (Pers ) Fr.
149.

— lenticulare (Bull.) 121.
Helvella lacunosa Afz.

var. cinerea Eres. 118.

— phlebophora Pat. et
Doass. 118.

Helvellaceae 123.
Helvellitieae 169.
Helwingia III, 221.

— bimalaica II, 225.
Helwingieae III, 221.
Hemandradenia Stapf N-

0. N. A. [1, 394.
Hemerocallis III, 414.

— flava L. III, 371.
Hemiasci 166.
Hemiascineae 113. 119.
Hemibasidiomyceten 165.
Hemicarpha III, 83.
Hemidictyon II, 766.
Hemigenia Macpbersoni

II, 255.
Hemigramma II, 766.

— latifolia (Meyen) Copel.
II, 808.

— ■ latifolia X Tectaria cre-

nata Cav. II, 808.
Hemigrapbis N A. II, 324.

— repanda II, 209.
Hemileia 202, 246, 254. —

II, 879.

Hemileia vastatrix B. etBr.

139, 207, 246, 247. —

II, 879.
Hemimerideae III, 50.
Hemineura 328.
Hemiomtis II, 780.

— opaca Don II, 777.

— Zollingeri II, 766.
Hemipteris Rosenst. N. G.

II, 783. 812.

— Werneri Rosenst* II,
783, 812.

Hemitelia II, 755, 765,
780.

— capensis (L ) R. Br II,
794, 797, 808.

— (Amphicosmia) suma-
trana v. Aid* II, 781,
812.

Hemitrichia clavata (Pers )
Rost. 125.

— vespa,ria(Batsch.)Macbr.
125.

Hemizonia Congdoni

Rob. et Greenm. II, 187.
Hendersonia 272.

— Bignoniacearum
v. Böhn* 128, 293.

— herpotricba Sacc. 212

— mate S/jeg* 293.

— solanicola P. Henn*
293.

— theicola Cke. 218, 219.
— II, 848.

- yerbae Speg* 293.
flenschelia luzonensis

Presl H, 434.
Hepaticae 32, 33, 36, 41,

42, 43, 44, 48, 50, 53,

57. — II, 267. — III,

14.
Heppia 15.

— collemacea Botst. 23.

— de^erticola A- Zahlbr*
26.

— Guepini Nyl. 23.

— Monguillonii Harm.
23.

— placodizans.A. Zahlbr.*
26.

Heptapleurum Barteri P.
297, 305.

— czudutumVidal II, 334.

— Cumingii Seem. II, 334,

— venulosum F. Vül. II,
334.

H eptasporium gracile Bref.

165.
Heracleum 491, 504. —

II, 100. — 111, 670.

— candicans Wall. II, 556.

— carpathieum II, 100.

— giganteum III, 630.

— Mantegazzianum III,
56.

— Sphondylium L. 490r
669. — III, 312.

Ht-rbertia amatorum C. B-
Wright III, 97, 204.

Herderia N. A. II, 384.

Hermannia III, 250. —
N. A. II, 530.

— trifurcata HarvetSond.
II, 530.

Hermas III, 341.
Herminium N. A. II, 314.

— Monorchis III. 109.
Hermodactylis II, 301.
Hernandia III, 52. — N. A.

II. 434.

— peltata II, 166.
Hernandiaceae H, 434. —

III, 214.

Herniaria 454. — III, 576.

— glabra L. III, 40, 321,
575, 576.

— birsuta II, 140.
Herpestis amplexicaulis

Pursh II, 520. .
- Monnieria H. B. K. II,
557.

— nigrescens Benth. II,
520.

Herpobasidium Lind N. 6-
268, 293.

— filicinum (Rostr) Lind*
144, 268, 294. - II, 803.

Herpocladielia 233.
Herpotrichia bambusana
P. Henn* 294.

Herpyza— Hieraeium cochleare.

851

Herpyza III, 58.
Herrania paraensis P. 284.
Hesperaloe 520.

— funifera Trel. II, 917.
Hesperantha 513.
Hesperis L. II, 100. —

III. 191, 192.
Hesperomeles II, 266. —

III, 296. - N. A. II,

495.
Hetaeria II, 121. — N. A.

II, 314.
Heterangium 566, 583.
Heteranthera II, 584.

— Kotschyana Fmzl. II,
584.

Heterina Nyl. 10.

— boletiformis Hue: 10,
26.

— clavata Krhbr. 10.

— Sprucei Hue* 10, 26.

— tortuosa Nyl. 10.
Heterochaete sublivida

Pat* lf.9, 294.
Heterocladium 560.
Heterocoma II, 383.
Heterodera II, 619, 880.

— radicicola 785. — II,
610, 626, 848.

— Schachtii94. —11,618.
— III, 94.

Heteromorpha N. A. II,

538.
Heteropanax N. A. II, 334.
Heteropogon Pers. II. 296.

— insignis II, 839.
Heteropsis N. A. II, 384.
Heteropterys N. A. II,

455.

— africana II, 236.

— syringaefolia Griseb. II.
891.

Heterosporium Amsoniae
Eab. et Bub* 118, 145.

— ierox Bubäk* 294.

— repandum Ferd.etWge.*
294.

Heuchera acutifolia Rose
II, 195.

— rubescens P. 143.

Hevea II, 824, 826, 828,
829, 898, 928, 936. 937,
938, 939, 942, 943, 944,
945. — III, 487, 550. —
P. 135, 246, 823. — N. A.
II, 418.

— Benthamiana II, 945.

— brasiliensis Müll- Arg.

II, 830, 937, 938, 941,
942, 943, 944, 945. —

III, 20"), 208. — P. 132,
135, 136. 208, 221, 291,
309, 822, 823. - II, 848,
944.

— discolor II, 945.

— guineensis III, 568.

— similis II, 945.

— Spruceana II, 945.
Hexacentris III, 135.

— acuminata III, 136.

— bicolor III, 136.

— coccinea III, 136.

— cordifolia III, 136.

— dentata III, 136.

— grandiflora III, 136.

— Harrisii III, 136.

— laurifolia III, 136.

— mysorensis III, 136.

- smilacifolia (Kurz) III,

136.
Hexagonia 155.

— Bartlettii Massee* 294

— luzonensis MwmVi* 294.

— pertenuis Murrilc* 294.

— polygramma Mont. 135.
Hexaptera II, 405.
Hibbertia III, 53.
Hibiscus 496. — II, 190,

899, 905, 915. — III.
58, 250. — N. A. II, 456.

— Abtlmoschus L- 508.

— cannabirms II, 829, 904.

— elatus Sw II, 900.

— esculentus II, 820. —
III, 850, 910, 912.

— furcatus II, 904.

— grewiaefolius F. Vill-
II, 455.

— lunariifolius II, 912.

— quinquelobus II, 912.

Hibiscus rosa-sinensis L.
II, 616, 295. — P. 288.

— rostellatus P. 311.

— schizopetalus P. 280.
302.

- Sabdariffa L. II, 852,
871, 893, 912.

— sinensis L. 457.

— tiliaceus L. 457. —

II, 166, 616, 900, 904. -

III, 249.

— Trionum L- II, 225.

— venustus III, 250.

— "Vidalianus Naves II.
455.

— Welshii T. Anders. IL
251.

Hicoria glabra var. villosa
Sarg. II, 435.

— minima Brut III, 216.

— villosa Ashe II, 435.
Hieraeium II, 100. — III,

174, 177, 185, 384, 394,
396. — N. A. II, 384,
385, 386, 387.

— adenophytumZa/mlll,
173.

— alpinum L. III, 173.

— anastruna X villosum

II, 384.

— argenteum Fr. III, 183.

— arolae Murr III, 173.

— aroliflorum M. et Z.

III, 174.

— atratum Fries III, 173.

— austro-americanuin
Dahlst III, 173.

— bilidellum Zahn III,
174.

— bifidifolium Zahn III,
174.

— bifidum II, 100.

— brueterum FriesllI, 173.

— bupleuroides II, 100.

— bupleuroides Xprenan-
thoiaes II, 385.

— cleistogamum Norrli«
II, 386.

— cochleare Hüter II f.
173.

54*

852

Hieraoiuin cochleariforine— Hiptage.

Hieracium cochleariforme
Zahn III, 173.

— crinigerum Fries III,
183.

— decipiens Tsch. III, 173.

— decipiens Zahn III, 173.

— dolichaetoides Zahn
III, 173.

— dolichaetum A.-T. III,
173.

— farinosum ( Lö^ M, 1 83.

— farreilimbatum Dahlst.

II, 387.

— fraudansiVorrZmII,386.

— glastif olium^l. T- II, 384.

— gyratifrons II, 386.

— javanicum Burm. II,
381.

— korongyense Za/tw III,
174.

— Krasani Wo\. III, 173.

— leontodontioides A-T.

III, 173.

— Lindenbergii Nym. III,
183.

— macrocalathium Zr//m
III, 173.

— macrosciadiumDaM.il,
386.

— megalocladumZa/mlll,

174.

- nigrescens Willd-

III,

173.

— nigrescens transsil-
vanicum II, 385.

— nigrescens X leptoce-
phalum II, 385.

— nigrescentiforme Zahn
III, 173.

— nivimontis Ob- et Zahn
III, 173.

— norvegicum Fr- III,
183.

— oreades Fr. III, 183.

— pietroszenseZ).e£Z. 111,
174.

— prasinicolor Besse et
Zahn III, 174.

— pseudoalpinum Zahn
III, 173.

Hieracium pseudarolae
Murr III, 174.

— pseudofritzei Benz et
Zahn III, 173.

— pseudoglanduliferum

Zahn III, 173.

— pseudohalleri Zahn III,
173.

— pseudorhaeticum Zahn
III, 173.

— ranzense Murr III, 174.

— rhaeticum Fries III,
173.

— rhaeticum Zahn III, 173.

— reichartense Zahn III,
173.

— rhodopeum II, 100.

— Rostani N. P. III, 174.

— rosulatum Lfy7.HI, 183.

— rotundiceps Zahn III,
173.

— rufescens Fr. III, 183.

— samnaunicum Za/m III,
173.

— saxifragum Fr. 111,183.

— Schmidtii Tausch. III,
183.

— Schroeterianum Zahn
III, 173.

— semiatratum Za/m III,
174.

— sericotrichum Dahlst. II,
386.

— sparsiflorum II, 100.

— sphaerocalathiurn Za/m
III, 173.

— squalidiforme M- et Z.
III, 174.

— stellulatum Zahn III,
173.

— stiricolumZa7mIII,173.

— subcaesium II, 100.

— subcochleare Zahn III,
173.

— subeximium Zahn III,
173.

— subneglectum Zahn III,
173.

— subpumilum Z«Än III,
173.

Hieracium subrhaeticum
ZoAn HI, 173.

— subzinkense Zahn III,
173.

— ThomasianumiJa/mlll,
174.

— transsilvanicum II, 100.

— transsilvanicum X bi-
fidum ZaÄw H, 384.

— umbellatum L. II, 619.

— virosumX umbellatum
H, 385.

— vulgatumi^r.H, 386. -
III, 177.

— zinkenense Pernh. III,
173.

Hierochloa N. A. II, 296.

— pusilla Hack. III, 87.
Hierogramma TJnger 552.
Hildenbrandtia rivularis

336.
Hildebrandtiella mada-

gassa C. Müll. 54.
Hillebrandia sandwicensis

III, 149.
Hillia N. A. II, 506.
Himanthidium pectinale

var. curta II, 720.
Himantia Candida Pers. 145.
Himantoglossum N. A. II,

314.
Hindsia N. A. II, 507.
Hippeastrum III, 360. —

N. A. II, 280, 281.

— procerum II, 203.
Hippocratea N. A. II, 434.

— cymosa II, 235.

— pauciflora II, 209.
Hippocrateaceae II, 434. —

III, 215, 219, 220, 223.
Hippomane Manzanilla II,

953.
Hippophae rhamnoides L.

II, 135. — III, 20.
Hippotis N. A. II, 507.
Hippuridaceae III, 215.
Hippuris 654. — III, 215.

— vulgaris L. 732.
Hiptage III, 247. — N. A.

II, 455.

Hiraea— Houttuynia oordata.

853

Hiraea II, 191. — 111,249.
Hirneola Auricula-.Tudae

Berk. 149.
Hirschfeldia Mnch. III, 191,

193.
Hirtella III, 58. — P. 279.

- N. A. II, 495.

— amazonica P. 300.

— americana P. 275, 298.
Hirudinaria Ces. 269.
Histiopteris incisa (Thbg )

J. 8m. II, 795.
Hoeckia II, 214.

— Aschersoniana II, 214.
Hoffmannseggia III, 233.

- N. A. II, 445.
falcaria II, 574.

Hohenbergia II, 78. —
N. A. II, 285.

— leucostele II, 201.
Hoheria populnea II, 262.
Holalafia III, 142.
Holcus lanatus L. II, 254,

261,836.-111,87. — P.

247.
Holmesia 328.
Holochlamys Engl. TI, 123.

— III, 76.
Holodictyum Maxon N. G.

II, 789, 812.

— Finckii (Bah) Maxon
II, 790, 808.

Holodiscus 478, 479, 481.

— III, 296.

— dumosusC.^:.S.II,502.

— saxicola Meiler II, 502.
Holoruitrium 51.

— Ferriei Card, et Ther.*
77.

— papillosulum Card, et
Ther* 77.

— vaginatum Brid. 53.
Holoptelea integrifolia II,

901.
Holosaccion 328.
Holosteum 697.

— umbellatum L- 696.
Holothrix villosa III, 112.
Holstiella babiensis Speg.

817.

Homalanthus N. A. II, 418.

— nutans Guill. 457.
Homalia Yalentini Besch.

64.
Homalium NA. II, 423,424.
Homalobus decumbens

Nutt. II, 448.
Homalocenchrus hexan-

drus II, 840.
Homaloltjeunea acutiloba

(Tayl.) St. 56.
Homalosciadium Domin

N. G. III, 340, 341. —

N. A. II, 538.

— verticillatum Domin*
III, 340.

Homalotheciella (Card)

Broth. 59, 68.
Homa]otheciurnI?r.e?«*.59.

— sericeum 39.

vor. orthocladum 46.

— sinense Par. et Broth*
53, 77.

Homogyne alpina P. 248.
Homoio-piraea 478.
Homomallium (Schpr)

Loeske 58.
Homopogon Stapf G-N. NA.

IL 296.
Homostegia Fuck. 115.
Honckenya ficifolia II,

912.

— peploides (L.) Ehrh. II,
590.

Hookeria 35, 57.

— crenata 61.

— papillata Süll. 61.
Hoploclathra III, 213.
Hoppia irrigua HI, 81.

— microcephala III, 81.
Hordeum 733. — II, 51,

656. 658, 659, 666, 670,
671, 674, 691, 718, 853.

— III. 9, 88, 359, 391.

— P. 203.

— bulbosum II. 128.

— distichum L 11,51,656.

— P. 831.

— erectum P. 831.

— fragile II, 154.

Hordeum murinum 687.

— spontaneum II, 128,
129.

— tetrastichum P. 831.

— vulgare L. 745. — II,
33, 34, 51, 656, 990. —
P. 857.

Horkelia 479. — III, 29ö,
299. — N. A. II, 495.

— argyrocoma Rydb. II,
495.

— campestris M. E. Jones
H, 495.

— chaetophora Rydb- II,
495.

— Chandleri Rydb. II, 495.

— megalopetala Brandeg.

II, 495.

— mollis Eastwood II, 495.

— nuctabilis Brandeg. II,
495.

— purpurascens Wats. II,
495.

— scandularis Rydb. II,
495.

— sericoleuca Rydb. II,
495.

— setosa S.Wats. 11,495.
Horkeliella Rydb. N. G. III,

296. — N. A. II, 495.
Hormodendron 170, 171.

— cladosporioides (Fres )
Sacc. 159, 170, 171, 851.

— Hordei Bruhne 108.

— — var. parvispora A.L-
Sm* 108, 294.

Hormomyia coloradensis

Cock* II, 608.
Horsfieldia glabra 509.
Hoteia III, 319.
Hotuima A. Chev. N. 6.

III, 59.

— Teissonnieri A. Chev*

II, 946. — III, 59, 687.
Hottonia palustris L. 629

— III, 35.
Houstonia minor II, 584,

585.
Houttuynia cordata Thbg.

III, 314, 315.

854

Hovenia dulcis — Hydroootyle filicaulis.

Hovenia dulcis Thbg. III,

289. - - P. 300.
Hoya II, 223, 335. — III,

5. — P. 296. — N. A.

II, 337.

- carnosa III, 145.

— densifolia Val. III, 145.

— pubescens Reinccke 457.
Huanaca Cav. III, 341.
Huernia brevirostris III,

146.
Hugonia acuminata Engl.

III, 245.

— Jenkinsü F. v. Müll. II,
256.

— platysepala II, 236.
Hugonieae III, 219.
Hugueninia 504-
Humaria chrysopela Cke.

121.

— globoso- pulvinata
Crossl* 107, 294.

— glumarum (Desm ) 121.

— granulosella Rehm*
149.

— rutilans (Fr.) Sacc 149,
169. — II, 968.

— salmonicolor B. et Br.
121.

— subhirsuta (Schum.)
Karst. 149.

Humata repens (L.) Diels

II, 780, 794.
var. minuscula

Christ* II, 780.
Humea elegans Sm. 498.

- III, 177.
Humiriaceae III, 218.
Humulus II, 43.

— japonicus II, 984.

— Lupulus L- II, 18.
Hunteria III, 142.
Hura crepitans L. III,

207.
Hutchinsia 504.
Huthia Brand N. G. III,

278. - N. A. II, 478.
Hyacinthus III. 107.

— orientalis L. II, 957,
974.

Hyalinia nostra Rehm*

146, 294.
Hyalobryon Lauterbornii

Lemm. II, 636.
Hyalocalyx N. A. 11, 535.

— Dalleizetti Capitaine*
II, 229. — III, 336.

Hyaloderma Bakeriana P.

Eenn* 294.
Hyalodothis incrustans

Rac. 211.
Hyalopsora Asplenii-

Wichuriae Diel* 294.

— Polypodii (Pers.) P.
Magn. 148.

Hyalostilbeae 128.
Hyalotheca burmeusis

West* 383.
Hyalotheles%#. NO. 129,

294.

— dimerosperma Speg*
294.

Hybanthus III, 59, 344.
- N. A. II, 546.

— lineatus G. Maza II, 546.

— strictus Spreng. II, 546.
Hybophrynium II, 244.
Hydatella inconspicuum

Cheesem* 11, 264.
Hydnaceae 101. 109, 123,

174, 224.
Hydnangium javanicum

P. Renn. 258.
Hydnobolites 169.

— javanicus v. Hö7m.*258,
294.

Hydnocarpus III, 153. —
N. A. II, 424.

— anthelmintica Pierre II,
221, 820. — III, 154.

— serrata Warb. II, 425.
Hydnocystis 169.
Hydnopbytum 458. — N. A

II, 507.
Hydnoraceae III, 215, 224.
Hydnum 163.

— auriscalpium 107.

— crocidens Cke. var. sub-
excentricum Pat.:' 159,
294.

Hydnum cyatbiforme
Sdiaeff. 148.

— fenorivense P. Henn*
138, 294.

— repandum 174, 651.

— Schiedermayri Heufl-
145.

— trachyodon Le'v. 282.
Hydrangea II, 224. — N.

A. II, 519.

— arborescens III, 58.

— arborescens grandiflora
III, 57.

— cinerea Small III, 56.

— hortensis DC. II, 720.

— involucrata Sieb. III,
316.

— paniculataSi'e&. 111,316.
Hydrangeae III, 222.
Hydrastis III, 287, 566.

— canadensis L- II, 891.

— III, 287, 426, 465.
Hydrilla 670. — II, 663.

— III, 96.

— verticillata 753.
Hydrobryum olivaceum

448.
Hydrocharis 669. — III,
4, 96. — N. A. II, 301.

— Morsus-ranae L. II, 666.

— III, 35.
Hydrocharitaceae II, 240,

301. — III, 96.
Hydrocleis N. A. II, 285.
Hydrocotyle II, 538.

III, 340, 341. — P. 315.

— N. A. 11, 538.

— arbuscula Schltr- II,
536.

— asiatica II, 166.

— Candollei II, 255.

— capensis O. Ktze- H,
536.

— Centella II, 536, 537.

— difformis Eckl. et Zegh-
II, 536.

— Dregeana Sonder II,
536.

— elongata II, 116.

— filicaulis Baker II, 536.

Bydrocotyle glabrata — Hyinenophyllum (Leptocyonium) geluense. 855

Hydrocotyle glabrata L.
II, 537.

— glochidiata Benth. II,
538.

— hermanniifolia Eckl et
Zetjh IL 536.

— — var- litoralis Sonder
II, 536.

— homalocarpa F. Muell.
II, 538.

— linearis E- Mey II,
537.

— linifolia Thunhg. II, 537.

— litoralis Eckl. et Zeyh.
II, 536.

— montana Cham, et Schi.
II, 536.

— montana Sonder II, 537.

— moschata II, 116.

— novae - zealandiae II,
116.

— plantaginea Spr. II,
536.

— rigescens II, 537.

— rubescens Franch. II,
536.

— rupestris Sonder II, 537.

— Solandra L- fil II,
536.

— tomentosa Thunhg. II,
536.

— tussilaginifoliaBafterll,
536.

— ulugurensis Engl. II,
536.

— verticillata Turcz. II,
538.

— virgata var. graciles-
cens Domin II, 536.

— vulgaris L- III, 40, 41.
Hydrodictyon 361.

— reticulatum Lagh. 362.

— utriculatum 341.
Hydrophilomyces Thaxt.

N. G. 294. '

— reflexus Thaxt* 294.

— rhynchophorus Thaxt*
294.

Hydrophyllaceae II, 434.
— III, 216, 222.

Hydropbyllum N. A. II,
434.

— capitatum var. alpinum
Wats. II, 434.

Hydrosera triquetra Wall.

II, 637.

Hydrosme grata Schott

III, 75.
Hydrostachys multifida

A. Juss. III, 216.
Hydrurus 340.
Hygroamblystegium

Loeske 58.
Hygrobiella Spruce 66.

— australis Steph* 85.
Hygrohypnum Lindb. 58.
Bygrolejeunea II, 784.

— Rechingeri Steph* 85.
Hygrophila N. A. II, 324.
Hygrophorus agathosmus

182.

— cerasinus 182.

— coloratus Peck* 125,
294.

— discoxanthus (Fr.) Rea
108.

— gomphidioides P. Senn*
138, 294.

— isabellinus P. Kenn*
138, 294.

— pseudericeus P. Kenn*
138, 294.

Hygrorhiza aristata II,

852.
Hylocomieae 58.
Hylocomium Br. cur. 59.

— isopterygioides Broth.
et Geh. 76.

— Neckerella C- Müll
76.

— splendens B. et S. 43.

— — var. lambayensis
MArdle* 43.

— varians Mitt. 76.
Hylophila N. A. II, 314.
Hymenachne N. A. II, 297.

— fluviatilis Nees II, 299.

— indica Buese II, 299.
Hymenaea Courbarili. II,

900. - P. 313.

Hymenandra A. DC. III,

258.
Hymenanthera N. A. II,

546.

— Banksii III, 245.

— chathamica Kirk II,
546.

— crassifolia Hook. f. II,
546.

— latifolia Endl. II, 264,
546.

— novae-zelandiae Hemsl
II, 264.

Hymenelia lithofraga

Mass. 16.
Hymenocardia N. A. 11,418.
Hymenochaete 118. — II,

944.

— cinnamomea (Per».)
Bres. 144.

Hymenocrater N. A. II,

436.
Hymen ogaster javanicus

v. Höhn* 258, 294.
Hymenogastraceae 123.
Hymenolepis spicata(X./V

Presl II, 791. - P. 304.
Hymenomycetes 101, 105,

109, 113, 119, 125, 174,

224, 266, 834.
Hymenophyllum II, 755,

71)9.

— angulosum Christ* II,
779, 812.

— Blumeanum Spr. II, 784.

— — var. novo-guineense
Rosenst* II, 784.

— Buchtienii Rosenst.'-' IL
792, 812.

— capülaceum Roxb. II,
779.

— ciliatum Sw. II, 793.

— cristulatum Rosenst*
II, 785, 812.

. — dilatatum (Forst.) Sw.
II, 784.

— fuscum Bl. II, 784.

— (Leptocyonium) gelu-
ense Rosenst.* II, 784,
812.

856

Hymenophyllum hirsutum— Hypnuin nitens.

Hymenophyllum hirsutum
Sw. II, 792.

— inaequale Poir. II, 779.

— Kurzii Prantl H, 781.

— latifrons v. d. B. II,
792.

— Meyeri Kuhn II, 794.

— multifidum II, 262.

— obtusum Hk- et Arn-
II, 797.

— polyanthos Sw. II, 785,
794.

— serrulatum (Pr.) C Chr.

II, 781.

— sibthorpioides (Bory)
Mett. II, 794.

— tunbridgense Sm. II,
797.

— Zollingerianum J£ze. II,
784.

Hymenostomum guine-
ense Broih. et Par.* 56,
77.

— squarrosum iV. et H-
47.

Hymenostylium curvi-
rostre Lindb. 70.

— sordidum Card* 77.
Hymen ula rhodella Jaap*

145, 294.
Hyocomium Br. eur. 58.

— cylindricarpum Mut.
76.

— exaltatum Mitt- 76.

— ruginosum Mitt. 76.
Hyophila 51.

— flavipes Broth* 77.

— Fouta-Djalloni Par. et
Broth* 56, 77.

— Poterii Besah. 54.
Hyophorbe Verschaffelti

III, 130.
Hyoscyamus III, 405, 432,

602, 613.

— muticus L. 453. — III,
331, 332, 481, 569, 647.

— niger L. II, 137. — III,
465, 569, 647.

Hypecoum procumbens
609.

Hypericaceae 454, 455. —

III, 213.
Hypericum II, 100, 176,

245, 266. — III, 4, 5,

213, 214. N. A. II,

432, 433.

— elodes L. II, 580.

— humifusum L. II, 580.

— III, 35.

— perforatum L. II, 580.

— III, 9.

— pulchrum L. II, 590.

— pusillum Choisy II, 433.

— quadrangulum P. 304.

— transsylvanicum II,
100.

Hypertelis E. Mey. III,

139.
Hypbaene II, 241, 903.

— benadirensis Becc* II,
903.

— Bussei Damm. III, 122.

— coriacea G-aertn. II,
896, 903. — III, 122.

— crinita Gärtn. II, 903.

— dankalensis Becc. II,
903.

— indica Becc* II, 903.

— III, 130.

— mangoides Becc* II,
903.

— nodularia Becc* II,
903.

— oblonga Becc* II, 903.

— parvula j&<cc.* II, 903.

— pleuropoda Becc* II,
903.

— pyrifera Becc* II, 903.

— sphaerulifera Becc" II,
903.

— thebaica Miar£. 11,231,
234, 903. — III, 130.

Hypheothrix calcicola 326.
Hypholoma Fries 124.

— elatum Massee* 295.

— fasciculare 161.

— peregrinum Mass. 108.
Hyphomycetes 113, 119,

126, 128, 133, 140, 170,
173, 178, 266, 268, 846.

Hypnellaguineensis Broth.

et Par* 56, 77.
Hypnum Dill. 59, 575. —

II, 267.

— aduncum Hediv. 62.

— Barbeyi Ben. 62.

— Berthelotianum Mont.
76.

— brevifolium Lindb. 62.

— capillifolium Warnst.
62.

var. angustifolium

Wamst. 62.
var. f&lcditumWarnst.

62.

— — var. gracilescens
Warnst. 62.

— var. laxifolium
Warnst. 62.

— — var. squarrosum
Warnst- 62.

— crista-castrense L- 59.

— decipiens (De Not.) var.
napaeiforme Schffh.* 53,
77.

— exannulatum 60, 634.

— exannulatum brachy-
dictyon Ren. 60.

— exannulatum pinnatum
Boul. 60.

— Kneiffii Schpr. 62.

— — var. attenuatum
Boul. 62.

— — var. asturicum Ben.
62.

— — var. intermedium
Schpr. 62.

var. Roellii Ren. 62.

— latifolium Lindb. et Arn.
62.

— latinerve Arnell 62.

— leptothallum C Müll.
52.

— J^mdbergii (Lindb)Mitt.
44.

— lycopodioides Schwgr.
62.

— — var. brevifolium 62.

— — var- latifolium 62.

— nitens 634.

Hypnum palnstre — Hypoxylon apiahynum.

857

Hypnum p alustr e Huäs. 69.

— polycarpon Bland. 62.

— pseudofluitans (Santo)
Klinggr. 62.

— robustum Hook- 80.

— Schreberi Willd. 59.

— scorpioides 48.

— Sendtneri Schpr. 62.

— — var. giganteum
Schpr. 62.

— — var. gracilescens
Schpr. 62.

var. iirivialis (Sanio)

62.
var. vulgaris (Sanio)

62.

— Sendtneri X lycopo-
dioides 62.

— simplicissimumTTantstf.
62.

— — var. diversifolium
Warnst. 62.

— — var. imrnersum I
Warnst. 62.

— — var. tenuis Warnst-
62.

— stellatum 48.

— subaduncum (Warnst.)
62.

— — var. aquaticum
(Sanio) 62.

— — var. ochraceum
(Ren.) 62.

var. pseudo-Sendt-

neri (R. et L.) 62.

— trifarium 48.

— Tundrae (Arn.) 60.

— turgescens Schimp. 44,
634.

— vacillans 37.

— Wilsoni Schpr. 62.

— — var. americanum
Ren. 62.

— — var. haraatum Schpr.
62.

flypocalyptus III, 238.
Hypochnaceae 101.
Bypochnus 107. 820.

— albostramineus Bres.
259, 291.

Hypochnus flavo-auran-
tius Trav* 295.

— Langloisii Pat* 159,
295.

— puniceus (A et S.) Fr.
sub-spec geophilus Sacc*
295.

— Solani Prill. et Del 108.

— sphaerosporus Maire
259.

— subfuscus Karst. 260.

— Theae Bernard 822. —

II, 848.
Hypochaeris N. A. II, 387.

— lanata Dus. III, 174.

— radicata L. II, 261.

— stenophylla Dus. III,
174.

Hypocrea Agaves Mau-
blanc 241.

— bambusella v. Höhn*
128, 295.

— chlorospora B. et C
177.

— gelatinosa (Tode) Fr.
149, 177.

— riccioides (Bolt.) Berk.
107.

Hypocreaceae 113, 123,
125, 138, 176, 240.

Hypocrella coronata v.
Höhn* 128, 295.

— palmicola P. Henn*
138, 295.

— Schizostachyi P. Henn*
295.

Hypocyrta nervosa Fritsch

III, 53.

Hy poderma brachy sporum

243, 838.
flypoderris III, 765.

— Brownii J. Sm- II,
760.

Hypoestes N. A. II, 324.
Hypogaeae 99, 100, 168.
Hypoglossum 328, 373.

— barbatum 347.

— geminatum Okam* 347,
383.

— tenuifolium 351.

Hypogyrania farinacea

(Bitter) 6.
Hypolepis II, 766.

— californica Nutt. II, 766.

— distans II, 262.

— incisa Kze. II, 766.

— meifolia Eat. II, 766.

— repens 11, 789.

— Scbimperi Kze. II, 766.

— Scbimperi (Kze.) Hook.
II, 794.

— tenerifrons Christ* II,
780, 812.

Hypolytrum III. 81.

— africanum III, 81.

— condensatum III, 81.

— Jenmani III, 81.

— micranthum III, 81.

— latifolium III, 81.

— nudum III, 81.

— proliferum III, 81.

— pungens III, 81.

— spbaerostaehyum III,
81.

— strictum III, 81.

— supervacuum III, 81.

— turgidum III, 81.

— vitiense III, 81.

— Wrightianum III, 81.
Hypomyces aurantius

(Pers.) Tul. 144.

— lactifluorum 177.

— niveus P. Henn* 138.
295.

— polyporinus Peck 146

— purpureus Peck 177.

— Triebode rma (Hoffm)
Sacc. var. Scborsteini
Bres.* 29").

Hyponomeuta malinella

815.
Hypopterygium laricinum

(Hook) Brid. 54.
Hypospila bavarica Rehm*

295.
Hypoxis II, 243.
Hypoxylon 131.

— annu\3itum(Schiv.)Mont.
242.

— apiahynum Speg. 242.

858

Hypoxylon apoense — Illigera trifoliata.

Hypoxylon apoense P
Henri * 295.

— Arche ri Berk. 242.

— Berterii Moni. 131.

— — fa. microstroma
Theiss* 295.

— chalybaeum B. et Br-
242.

— collabens Theiss* 295.

— colliculosum (Schw.)
Nke. 147.

— crassum Mattir. et Sacc*
139, 295.

— Dieckmannii Theiss*
295.

— discophorum Penz. et
Sacc. 242.

— effusum Nke. 242.

— enteroleucum Spp<?. 131.

— glomerulatum Theiss*
295.

— haematites Le'v. var.
macrospora Theiss* 295.

— Hibisci P. Herrn.* 295.

— St. Janianum Ferd. et
Wge* 295.

— Kellermani Behm* 295.

— lichenicolum v. Höhn*
128, 295.

— marginatum (Schw.)
Berk. 242.

■ — microcarpum Penz. et
Sacc. 242.

— nucigenum P. Henn*
295.

— paulistanum Speg* 295.

— Piptadeniae P. Henn*
295.

— polyspermumMbwi.242.

— pseudo-tubulinaCcs. var.
macrosperma Theiss-*
295.

— — fa. macrostroma
Theiss* 295.

— Puiggarii Speg. 242.

— rubigineo - areolatum
Rehm* 295.

— rubigineo - areolatum
var. microspora Theiss*
295.

Hypoxylon stjgium(Le'v )
Sacc. 242.

— subeffusum Speg. 242.

— sulcatum Starb. 131.
Hypseocharis III, 269. —

N. A. II, 429, 472.
Hypsipodes subcordatus

II, 209.
Hyssopus officinalis 441.

— III, 616, 669.
Hysterangiaceae 123.
Hysterangium 169.

— Gardneri Ed. Fisch* 295.
Hysteriaceae 113, 119, 123,

133, 140, 166.
HysteriumHoyaeP.jffen«.*
296.

— pulicare Pers. subspec
Totarae Sacc* 296.

- VelloziaeP.#e?m*296.
Hysterographium Rehmi-

anum Sacc. 149.
Hysteropsis cinerea Speg.
817.

IberisIII, 195. -- N. A. II,
403.

— amara L. 722, 723. —
II, 598.

— carica Bornm. II, 598.

- III, 190.
Ibidium II, 177.
Icacinaceae II, 434. — III,

58, 216, 219 221.
Ichnanthus P. 314.

— candicans Nees II, 840. !
Icmadopbila Mass. 12.
Idothea Ludwigii Kunth

II, 307.
Hex L. 697. — II. 126,
127. — III, 142, 143. — |
N. A. II, 333.

— amara P. 281.

— apicidens N. E- Brown
II, 333.

— Aquifolium L. 561, 645. !

- II, 126, 127,132, 154,
156. — III, 28.

— crenata Thbg. III. 56,
142.

Hex dipyrena Wall.ll, 556.

— Mertensii Maxim. III,
546.

— opaca AU. 547.

— paraguayensis II, 886.
— P. 130, 275, 277, 279.
280, 283, 284, 286, 287,
288, 289, 293, 298, 299,
300, 301, 303, 305, 306,
308, 309, 316, 317, 318.
321, 322, 323.

— perado II, 127.

— Sieboldi Miq. III, 49.
Iliamna remota Qreene II,

457.
Iliciphyllum 559.
Illecebrum lineare Thunbg.

II, 328.
Illicieae III, 224.
Illicium anisatum L. III,

247, 484.

— religiosum III, 532.

— verum III, 532.
Illigera Blume N. A. II,

434

— appendiculata Blume

III, 215.

— appendiculata Vidal II,
434.

— celebica Miq. III, 215.

— cordata Dünn- III, 215.
Coryzadenia Meissn. II,

434.

— dasyphylla Miq. 111,21 5.

— khasianaC.P.CVar/celll,
215.

— luzonensis Merrill II.
434.

— Meyenianaß^wM 11,434.

— parvifloraDunn .111,215.

— pentaphylla Welw. III,
215.

— platyandra Dünn. III.
215.

— pulchra Blume III, 215.

— rodantha Hance III,
215.

— ternata Dünn. III, 215.

— trifoliata Dünn. III,
215.

Illigera villosa — Ipoinoea aculeata.

859

Illigera villosa C'. B. Clarke

III, 215.
Illipe III, 226, 312, 313.
Illosporium Diedickeanum

Sacc* 296.

— malifoliorum Sheldon*
, 125, 296.

llysanthes III, 322. — N.
A. II, 522.

— dubia B. L Robinson II,
522.

Impatiens II, 227, 583,
584. — III, 1 49, 622. -
N. A. II, 341.

— Abbaus Hk. f. III, 148.

— anaicomaX comorensis
in, 149.

— argiita var. Bulleyana
Hk. f. III, 148.

— asymmetricaiTooÄ;./'. II,
555.

— atherosepala Hk. f. III,
148.

— attopenensis Hk. f. III,
148.

— AurelianaBfc./.III,148.

— Balansae Hk.f. III, 148.

— Balsamina L. 674, 722. j
— III, 622.

— bicornuta Wall II, 555.

— ßoni Hk. f. III, 148.

— capensis Thbg. III, 148.

— Capusii Hk. f. III, 148.

— claviger Hk.f. 111,148.

— comorensis III, 149.

— comoricana III, 149.

— eyananthaBÄ:./'.lII,148.

— Delavayi Franch- III,
148.

— dicentra. Franch. 111,148.

— fulva II, 606.

— Gagei Hook- f. II, 555.

— GaupinanaflÄ-./". III, 148.

— glanduligera Royle 769.

— Harmandi Hk. f. III,
148.

— indo-chinensis Hk. III,
148.

— Lanessoni Hk. f. III, i
148.

Impatiens lasiophyton Hk.
f. III, 148.

— Lecomtei/7/k/an>148-

— lepida Hk. f. III, 149.

— leptocaulon Hk. f. III,
149.

- Leveillei Hk.f. III, 149.

— longifolia II, 217.

— margaritifera Hk. fl. III,
149.

— Martina Hk. f. III, 149.

— Morsei Hk. f. III. 149.

— Noli-tangere L. 522. —
II, 584.

— Oliveri III, 149.

— parviflora L. 521, 674.

— piufanensis Hk. f. III,
149.

— procumbensFrawc/i.Hl,
149.

— semonnensis Hk. f. III,
149.

— Spireana Hk. f. III, 149.

— Sultani II, 680.

— verruciferH/c./.III,149.

— zygosepala Hk. f. III,
149.

Imperata arundinacea II,
207, 847, 930.

— exaltata II, 207.
Incarvillea III, 153.
Indigofera N. A. II, 445.

— Anil L. 457.

— arenaria A. Richard II,
445.

— arrecta II, 731. — III,
500.

— Dosua Buch-Ham. II,
556.

— galegoides III, 657.

— hebepetala Benth- III,
231.

— sumatrana III, 500.

— tinctoria II, 836. — III,
432.

Indokingia W. B. Hemsl.
N. G. II, 229.

— crassa W. B- Hemsl*
II, 229.

Ineffigiata West 361.

Inga III, 234. — P. 277,
288, 307, 320. — N. A. II,
445.

— holzhausensisSc/jmde/i.*
614.

Ingenhousia III, 251.

— Harknessii (Brandegee)
Rose HI, 251.

— triloba Moc. u. Sesse III,
251.

Inocarpus edulis Forst.

457.
Inocybe duriuscula Rea*

108, 295.

— longipes Massee* 296.

— proximella Karst 108.
Inonotus 124.

— Clemensiae Murrill*
296.

I — Elmerianus 135.

— fulvomelleusüfurr.*296.

— juniperinus Murr* 296.

— pertenuis Murr.* 296.
Inula II, 100.

— britannica L. III, 40.

— grandis P. 253.

— Helenium L. 681. —
III, 567.

lodes N. A. II, 435.

— ovalis Blume II, 435.
Ionaspis phaeocarpa A.

Zahlbr* 26.
IoDe N. A. II, 314.
Ionidium II, 583, 584,

585.

— glutinosumFeni. 11,546.

— lineatum Ging. II, 546.

— linearifolium Ging. II,
546.

— portoricense Kr. et Urb.
II, 546.

— suffruticosum Wickstr.
II, 546.

— strictum Vent. II. 546.
Ipecacuanha II, 823, 891.

— III, 465, 525.
Ipomoea II, 194. — III,
39, 59, 185, 186. — N. A.
396, 397.

— aculeata L. II. 395

860

Ipomoea acurninata — Isachne Clarkei.

Ipomoea acuminata R. et
Seh. II, 396.

— aegyptia L. II, 398.

— alatipes Hook- II, 398.

— alba L. II, 395.

— ampliata Choisy II, 398.

— argentifolia A. Rieh- II,
396.

— braehypoda Benth. II,
396.

— bracteata Üw4. II, 396.

— — rar. pubescens Po&.
ei Greenm. II, 396.

— bufalina Choisy II, 398.
-— calophylla Wright II,

397.

— capillacea rar. patens
4. Gray II, 397.

— eapparoides Choisy II,
397.

— Carolina Gm. II, 396.

— Conzattii Greenm. II,
396.

— denticulata C/t. II, 616.

— disseeta Pursh II, 398.

— fistulosa Mar*. II, 837.
- glaberrima Boj. II, 395.

— grandiflora 714. — II,
573. — III, 26.

— grandiflora Hallier II,
395.

— grandiflora R. et S. II,
395.

— hederacea II, 847.

— latiflora Lindl. II. 395.

— leueoneura Urb 11,396.

— longiflora Eumb. et
Bonpl II, 395.

— macrantha Pf t er 11,397.

— mammosa 111, 476.

— megacarpa Brandeg. II,
398.

— microdaetyla Gris. II,
396.

— muricata Roth II, 397.

— nil ßoi/t II, 396.

— ornithopoda Rob. II,
398.

— Palmeri S. Wats. II,
398.

Ipomoea pandurata Mey.
II, 397.

— paraensis Peier II, 397.

— pentaphylla (L) Jacq.
II, 398.

— pes caprae II, 166.

— praecox Wright II, 396.

— pterodes Seemann II,
398.

— punctata Macf. II, 396.

— quinquefolia Kochst. II,
397.

— repanda Gm. II, 395.

— rhodocalyx .4. Grra«/ II,
398.

— ßiedeliana Oliver II,
398.

— rubieunda Pose II, 398.

— Rudolphii P. ei ScÄ. II,
396.

— setosa GW*. II, 397.

— sinuata Ort. II, 398.

— tastensis Brandegee II,
395.

— tenuifolia ( 7«/$ fftee.
II, 397.

— tuba Schlecht. II, 390.

— turpethum III, 553.

— villosa Meissn. II, 396.

— viridiflora [/W>. II, 396.
Ipomopsis elegans III, 278.
Iresine N. A. II, 327.

— linearis Moq. II, 328.

— museoides 0. Ktze. II,
328.

Iridaceae II, 200, 242, 243,
266, 301. — III, 54, 97.

Iris II, 170, 225. — III,
4, 100, 294, 394. — N. A.
II, 301.

— arenaria III, 97.

— bohemica Schmidt II,
580.

— Chamaeiris Gr. et Godr.
II, 301.

— ensata Thunbg. II, 580.

— Gatesii III, 100. — P.
239.

— germanica III, 97, 100,
650.

Iris germanica macrantha
III, 100.

— gracilipes III, 9!).

— hispanica P. 238.

— iberica III, 100.

— illyrica Tomm. III, 99,
394.

— laevigata III, 99.

— Lortetii III, 57.

— lutescens Gr. et Godr.

II, 301.

— melanosticta Bomm. II,
151.

— olbiensis Hen. II, 301.

— olbiensis X Korolkowi

III, 99.

— pallida Lam. III, 394.
— III, 99, 294, 580.

— pallida X illyrica II,
301.

— prismatica II, 175.

— pseudacoris L. 445. —
II, 138, 580.

— sibirica L. II, 580. —
P. 238.

— sindjarensis X persica
purpurea III, 97.

— tectorum Maxim, var-
alba III, 97, 99, 100.

— vaga III, 99.

— Warleyensis III, 97.
Irpex 107.

— cinnamomeus Fr. 141.

— coriaceus B. et R. 282.

— farinaceus Fr. 282.

— flavus II, 944.

— Galzini Pres.* 296.

— griseofuscus Mont. 282.

- tabacinus B. et C. 282.
Irvingia Barteri Hook. f.

II, 921, 928. - III, 330.

— gabonensis Aubry-Lec
495. — II, 928. - III,
330.

- Oliveri II, 820.
Irvingiaceae II, 248.
Irvingieae III, 223.
Iryanthera Sagotiana 509.
Isachne N. A. II, 297.

— Clarkei II, 214.

Isaria— Jubula tonkinensia.

861

Isaria Pers. 269.

- — lecaniicola Jaap* 119,

144, 145, 296.
Isariella P. Herrn. N. G.

296.

— Auerswaldiae P.Henn*
296.

lsariopsis griseola Sacc.

142.
Isatis 504.
Ischaemum N. A. II, 297.

— Franksae J. M. Wood
III, 87.

Ischnoderma 124.
Ischnosiphon P. 318.

— aruma P. 308.
Ischnostemma N. A. II,

337.

— selangorica King et
Gamble II, 337.

Isertia N. A II, 507.
Isnardia palustris L- II,

580.
Isoetaceae II, 749.
Isoetes 591, 629 — II, 747,

754, 786, 787, 956.
- — canadensis A. A- Eaton

II, 787.

— — vor. Robbinsii II,
787.

— Dodgei A. A. Eaton II,
787.

— — var. Robbinsii II,
787.

— heterospora A. A- Eaton
II, 787.

— lacustris L. II, 769.

— macrospora Dur. II,
787.

— riparia var. canadensis
Engelm. II, 787.

Isoglossa N. A. II, 325.
Isoloma in, 140. — N. A.

II, 329.
Isonandra II, 828.
Isopyrum 436, 444. — II,

224. — III, 163.

— biternatum Torr, et Gr.
436. — III, 286.

— nipponicum 436.

Isopyrum thalictroides436.
Isoptera borneensis II, 92 1 ,

928.
Isopterygium Mitt. 39, 59.

— aptychopsis (C- Müll.)
Broth. 56.

— Boutani Par. et Broth*
52.

— delicatulum Par. et
Broth* 56, 77.

— densifolium Lindb. 47.

— euryphyllum Card- et
Ther.* 77.

— minutifolium Card, et
Ther* 77.

— planifrons Broth.et Par *
52, 77.

— rhynchostegiocarpum
Broth.* 52, 77.

— scabrifolium Broth. et
Par* 52, 77.

— Textori S. Lac. 52.
Isosoma calamagrostidis

Schlechd. II, 618.

— graminicolaGzV.II, 618.
Isothecium coelophyllum

Card, et Ther* 77.

— tenuinerve Kindb. 47.
Isotypus onoserioides III,

178.
Isthmia II, 642.
Itatiaia JJle N. G. III, 252.

- N. A. II, 458.

Itea III, 317. — N. A. II,
519.

— japonica Oliv. III, 316.
Iihyphallus coralloides

Cobb* 140, 296.

— tenuis Fischer 135.
Itonida Meigen II, 606.
Ivesia T. et Gr. 479. -

III, 296. — N. A. II,
495.

— santalinoides 479.
Ixerba brexioides II, 262.
Ixianthes III, 222.
Ixora II, 222. — III, 55.

— N. A. II, 507.

— amplifolia A. Gray 458.

— timorensis II, 209.

Jacaranda P. 276.

— mimosaefolia II, 851.
Jacea graminifolia Lam.

II, 371.

— paniculata Lam. II,
375.

— supina Lamk- II, 366.
Jackiella Schffn. 66.

— ceylanica Schffn* 85.
Jacobinia N. A. II, 324.
Jacquemontia capitata

Don III, 185.
Jacquinia III, 59. — ■ N. A.
II, 5:'3.

— armillaris P. 307.

— aurantiaca P. 307.
Jaegerina formosa Besch.

54.

— stolonifera C. Müll. 54.
Jalapa III, 555.

— alba III, 473.

— fusca III, 473.
Jamesoniella ovalis Schffn.

57.
Jansia rugosa 262.
Jasione N. A. II, 351.
Jasminum N. A. II. 469.

— fruticans L. III, 675.

— nitidum III, 57.

— nudiflorum Lindl. III,
675.

— officinale L. 718. —

II, 557. — III, 675.

— Sambac Ait. III, 37.

— stans II, 251.
Jatropha III, 208. — P.

320. — N. A. II, 418.

— Curcas L. 457. — III,
544.

— tepiquensis II, 192. —

III, 205.

Jaumea N. A. II, 387.
Jeffersonia 438.

— diphylla (L) Pers. 437.

— pinnata Benth. III, 426.
Juania spectabilis II, 265.
Jubaea spectabilis II, 103.

— pennsylvanica 63.
Jubula tonkinensis Steph*

85.

862

Juglandaceae— Kabatia latemarensis.

Juglandaceae 596, 614. —
II, 435. — III, 15, 216,
217, 219, 220, 225.

Juglandoxylon acuminata
A- Br. 562.

— minor Sap. et Mar 562.

— tephrodes Ung. 562.

— zuriennis Falqui* 562.
Juglans 439, 560, 582. —

II, 156, 224. — III, 9.

— N. A. II, 435.

— californica Wats. II,
188. — III, 216.

— cinerea L. 561. — III,
216.

— globosa Ludw. 561.

— japonica Sieb. II, 435.

— nigra L. 561, 650. —

— II, 69, 902. - III,
216.

— parschlugiana 580.

— regia L. 562, 686. —

— II, 69. — III, 58,
536.

var. kamaonia C. DC.

II, 435.

— — var. sinensis C. DC.

II, 435. — III, 216.

— Sie'ooldiana Maxim- III,
216. — P. 300.

JuJella leopoldina Rehm*
296.

— luzonensis P. Henri*
296.

Juliania Schld. 435. — III,
5:>, 217, 218, 219.

— adstringens III, 227.
Julianiaceae 435. — III,

54, 56, 216.
Juncaceae 595. — II, 242,

302.
Juncellus pustulatus III,

79.
Juncus II, 115, 143, 242,

554. — III, 41, 385. —

N. A. II, 302.

— anceps X acutiflorus

III, 385.

— bicephalus Viviani III,
100.

Junous bufoniusL. 11,584.

var. ambiguusfCrwss.,)

III, 100.

— — var. fasciculatus
Koch III, 100.

— — var. foliosus (Desf)
III, 100.

— — var. hybridus III,
100.

— — var. major Pari.
III, 100.

— — var. Sorrentinii
(Pari) III, 100.

— el'fusus var. spiralis III,
100.

— fasciculatus Schousb.HI,
100.

— filiformis P. 300.

— lamprocarpus_E/tr/t. 650.

— II, 590. — III, 40.

— Maximoczii II, 214.

— saximontanus P. 143.

— Sorrentinii III, 100.

— sphaerocarpus Nees III,
100.

— squarrosus L- II, 590.

— supinus III, 40.

— Valbrayi Le'veille'* III,
385.

Jungermannia 49.

— cordifolia Hook. 49.

— Hasskarliana (Nees)
Steph. 57.

— lanceolata L. 49.

— polyrrhiza Hook. 52.

— pumila With. 49.

— riparia Tayl. 70.

— spbaerocarpa Hook. 49.
Jungermanniaceae 33, 43,

49.
Juniperus 463. 464, 465,
642. — II, 42, 167, 214,
241. — ILI, 60, 63, 452,
597, 601. — P. 296, 312.

— N. A. II, 277.

— bermudiana L. II, 899.

— Cedrus 464.

— communis L. 685. — ■
II, 144, 214. — III, 28,
454. - - P. 247, 317.

Juniperus communis var-
montana Ait. II, 278.

— — var. prostrata Willk.

II, 278.

— communis X nana
Wettst, II, 278.

— formosana II, 214.

— fragrans Knight 111.61.

— intermedia -SY7i«r 11,278.

— maderensis Menezes III,
67.

— megalocarpa Sudw- II,
183.

— morrisonicola Hayata

III, 60.

— occidentalis Hook. III.
61.

— — var. Burkei III, 61.

— Orycedrus L. II, 148,
934. — III, 67, 597.

— phoenicea III, 615.

— procera Höchst. II, 251.
— III, 59.

— rigida 685.

— saLinoides P. 292.

— scopulorum II, 144.

— sibirica P. 249, 292.

— — var. montana Beck
II, 272.

■ — taxifolia II, 166.

— tburif jra III, 61.

— virginiana L. 464. — P.
292.

Juranyia Tuzson N. 0.
630.

— flabelliformis Tuzson*
630.

Jurinea kirghisorum Ja-
nisch III, 174.

Jussieua linifolia Vahl III,
266.

Justicia 513. — P. 314. —
N. A. II, 325.

— matammensis
(Schiveinf.) Lindau III.
134.

Justicieae III, 135.

Kabatia latemarensis
Bubäk 144.

Kabatia mirabilis— Kleinia.

863

Kabatia mirabilis Bubäk

144.
Kadsura N. A. II, 455.
Kaempferia II. 243. — III,

134. - N. A. II, 324.

— cochinrhinensis 111,133.

— fissa III, 133.

— Kirkii var. elatior Stapf
III, 133.

Kaidacarpum 5, 83.

— snecicum 574.
Kalanchoe III, 188. — N. A.

II, 399.

— abrupta III, 189.

— Adelae III, 188.

— amplexicaulis III, 188.

— antanosiana III, 189.

— Baumii III, 189.

— Beauverdi III, 189.

— behaarensis III, 188.

— brachjloba III, 189.

— bracteata III, 189.

— campanulata III, 188.

— citrini III, 189.

— Costantini III, 189.

— eriophylla III, 188.

— farinacea III, 189.

— floribunda III, 189.

— gracilipes III, 188.

— Grandidieri III, 189.

— grandillora III, 189.

— Hildebrandii III, 189.

— hirta III, 189.

— integrifolia III, 188.

— laciniata DC III, 187,
189.

— lanceolata III, 149.

— linearifolia 111, 189.

— longiflora III, 189.

— Luciae Harnet* II, 253.
— III, 187.

— marmorata III, 189.

— miniata III, 189.

— Nadyae III, 189.

— oblongifolia III, 189.

— orgyalis III, 189.

— panduriformis III, 188.

— parviflora III, 188.

— peltata III, 188.

— Pentheri III, 189.

Kalanchoe phorphyroca-
lyx III, 1SS.

— pinnata III, 189.

— platysepala III, 189.

— prolifera III, 189.

— pubescens III, 188.

— pumila III, 188.

— Quartiniana III, 189.

— rotundifolia III, 189.

— Schimperiana III, 189.

— scbizophylla III, 188.

— spa*„hulata.ß Br. 11,556.

— streptantha III, 189.

— sulphurea III, 188.

— synsepala III, 188.

— teretdolia III, 189.

— thyrsiflora III, 189.

— Tieghemi III, 189.

— tomentosa III, 188.
- trichantha III, 188.

— velutina III, 189.

— verticillata III, 189.
Kaliphora 111, 221.
Kalmia latifolia II, 847. —

III 201.
Kamala III, 639.
Kapok II, 911.
Karschia Elasticae 824.
Katafa Const. et Poiss. N.

(i. II. 226. — III, 472.

— crassisepalum Const. et
Poiss* III, 472.

Kaulfussia 592. — II, 740,
974.

— aesculifolia Bl. II, 740,
745, 755.

Kedrostis II, 247. — N. A.

II, 405.
Kekomba III, 472.
Kelseya III, 296.
Kennedya retrorsa Hemsl.

II, 257.
Kentia Canterburyana III,

130.

— Forsteriana III, 58.
Kentrophyta montana

Nutt II, 448.

— viridis Nutt. II, 448.
Kerandrenia lanceolata II,

209.

Kernera 504.
Kerria 478. 480, 481.
Kerstingiella Harms N. 6.

11, 561. — III, 234. —

N. A. II, 445.

— geocarpa Harms* 736.
II, 561, 858. — ULI, 234.

Keteleeria II, 214. — III,
63.

— Davidiana II, 214.

— formosana Hayata III,
60.

— Fortunei II, 901.

— Löbri Geyl.etKink. 561.
Khaya II, 228. — N. A. II,

461.

— antbotheca DC II, 624,
898.

— madagascariensis II,
898.

— senegalensis II, 898.
Kibara Adans. III, 192. —

N. A. II, 462.
Kidroa III, 472.
Kielmeyera 455. — III,

213. '
Kielmeyereae III, 219,220.
Kigelia aethiopica Decne

II, 233, 234. — III, 153.

— pinnata DC II, 890.
Kiggelaiia N. A. II, 424.
Kingiodendron pinnatum

Harms III, 242, 934.
Kirchneriella major
Bernard* 383.

— subsolitaria G. West*
353, 383.

Kirkia III, 223.
Kitchingia N. A II, 399.
Kickxia II, 937, 939, 940,

950. III, 487. - - P.

132.

— elastica Preuss II, 617.
— P. 817, 823. II,
848.

Kleidiomyces Thaxt. N. H.
296.

— furcillatus Thaxt* 29b.
Kleinhofia Ho^-pita L. 458.
Kleinia III, 179.

864

Kleinia ficoides— Lachnum nidulus.

Kleinia ficoides III, 29.

— Galpinii Hook. f. III,
17ü.

Klugia ceylanica 509. —

11, 988.
Knautia 517. — II, 100.

— N. A. II, 406.

— aiviLs-ib ttvlt- 111,
380.

— Drymeia II, 100. — III,
280.

— lancifolia II, 100,

— longifolia II, 100.
Kneif fia 259 (Pilz).

— aurantiaca Bres. 259,
291.

— avellanea Bres- 259.

— carneola Bres- 259.

— clavigera Bres. 259.

— farinosa Bres. 259. —
P. 304.

Kneiffia II, 177.

— longipedicellata Small
II, 472.

— pratensis Small II, 472.
Knema intermedia 509.
Knightia 559.

— Andreae Dus* 559.
Kniphofia Moench II, 119.

- III, 102. N. A. II,
306.

— breviflora Baker II, 306.

— natalensis Bak. var.
condensata Bak. II, 306.

Knöllchenbakteiien 178.
Knorria 555.

Knorripteris Mariana 551.
Knoxia corymbosa P. 320.
Kobresia Duthiei III, 81

— Hookeri III, 81.

— laxa III, 81.

— macrantha III, 81.

— Royleana III, 81.

- scboeno'ides III, 81.

— seticulmis III, 81.
Koeberlinia III, 223, 224.
Koeleria truncata var.

major Torr. II, 300.
Koellia pycnanthemoides
Ktze. II, 437.

Koerberia biformis Mass.
23.

— orthospora Coud. 23.
Kolobopetalum III, 59. —

N. A. II, 462.
Kompitso II, 229.
Koniga N A II, 403.
Kordyana 128.
Kordyanella 128.
Krameria III, 219. -NA.

II, 446.

— canescens Gray II, 446.
Kraunhia floribunda Taub.

III, 231.
Kretzschmaria Clavus Fr

132.

— divergens Starb. 132.

— lichenoides Rick 147.

— Puiggaxii Speg. 132.
Kühneola albida (Kühn)

Magn. 144.
Kunzea bracteolata II,

256.
Kurrimia gracilis Vidal II,

486.
Kydia III, 226.
Kyllingia III, 81, 83.

— alba Nees III, 79.

— brevifolia III, 79.

— bulbosa König II, 289.

— cayennensis Lam. II,
289.

— filiformis II, 290.

— eximia III, 79.

— granularis Desf 11,289.

— macrocephnla III, 79.

— monocephala III, 79.

— odorata III, 79.

— squamulata III, 79.

Labiatae 473, 507. — II,
223, 246, 250, 251, 435.
— III, 55, 227, 547.

Labisia Lindl- III, 258.

Laboulbeuia atlantica
Thaxt* 296.

— bicolor Thaxt* 296.

— Lebiae Thaxt* 296.

— marina Picard* 240,
296.

Laboulbenia Ozaenae
Thaxt* 296.

— proliferans Thaxt. var.
interposita Thaxt.* 296.

— subpunctata Thaxt*
296.

— Texana Thaxt. var
oaxana Thaxt* 296.

— — var. retusa Thaxt*
297.

Laboulbeniaceae 235, 240,

241.
Laburnum 799. — III,

239, 356, 392.

— Adami Poit III. 392.

— alpinum III, 6, 356.

— vulgare 799. — III,
356, 392, 547.

Lacaena bicolor II, 192.
Laccaria laccata (Scop) B.

et Br. 106.
Laccopteris polypodioides

582.
Lachemiila (Focke) Rydb.

III, 296.
Lacbemilla Bydb. N. ö.

N. A. II, 496.
Lachnaea filamentosa (L.)

Gilg HI, 335.
Lachnea Chelchowskiana

Rouppert* 241, 297.

— pseudogregaria Rick
150.

— rufobrunnea P. Henn*
138, 297.

— scutellata (L) Grill.
146.

Lachnella flammea Fr.

149.
Lachnocladium odoratum

Atk* 297.

— tubulosum (Fr.) Lev.
147.

Lachnostachys verruci-

folia II, 255.
Lacbnum clandestinum

Karst. 150

— Morthieri Cke. 150.

— Nardi Rehm 149.

— nidulus Karst. 150.

Laohnuiu niveum— Landolphia chylorrhiza.

865

Lachnum niveum (Eecliv.) Lactuca Thunbergiana

var. F airmani Rehm* 297. '
— spiraeaecolum (Karst.)

Rehm 143.
Lacistema III, 220.
Lacistemaceae III, 23.

Lactaria 256, 257.

— agglutinata Burling-
ham* 250, 297.

— camphorata fragilis
Burlingham* 256, 297.

— chrysorhea 256.

— circellata 256.

— crocea Bur lingham* 256,
297.

— delicata Burlingham*
256, 297.

— hysgina 256.

— lanuginosa Burlingham*
256, 297.

— mucida Burlingham*
256, 297.

— Peckii Burlingham* 256.
297.

— rufa 256.

— speciosa Burlingham*
256, 297.

— trivialis 256.
Lactariella Schroet- 256.
Lactariopsis 256.
Lactarius 161, 251.

— Hibbardae Peck* 297.

— piperatus 180.

— spinulosus Quel. 118.

— tricolor Mauset- 297.

— vellereus 180.

— volemus 160. 174, 651.
Lactobacillus 187.
Lactococcus 187.

— agglutinans 187.
Lactoris III, 224.
Lactuca P. 219. — N. A.

II, 387.

— debilis P. 311.

— Heyneana DC II, 557.

— luzonica Vidal II, 387.

— pulchella P. 143.

— sativa L. II, 138. — P.
167.

— scariola L- III, 178.

Hemd. II, 387.

— Thunbergü Maxim. II,
387.

Ladenbergia X. A. II, 507.
Laelia III, 112, 120.

— anceps III, 116.

— anceps Sanderiana III,
109.

— anceps Williamsi III,
109.

— Boothiana X Cattleya
Harrisoniana III, 120.

— Cowanii X Dayana III,
114.

— flava III, 113.

— flava X crispa III, 113.

— grandis tenebrosa X
praestans III, 109.

— Groganii III, 113.

— pumila X Jongheana
III, 120.

— pumila X -Brassavola
Digbyana III, 114.

— Rogersii III, 114.
Laelio-Cattleya III, 109.

- Cappei III, 113.

- Isaacsii III, 120.

— Oliveri III. 114.
Wellsiana III, 109.

— Wawrinii II. 203.
Laestadia Bidwellii 821.

— Coccocarpiae Bat* 159,
297.

Laetiporus 124.
Lagarosiphon III, 96.
Lagenandra III, 75.
Lagenaria III, 196.

— verrucosa Sprg. III, 196.

— — var. Giordaniana
Borzi* HI, 196.

— vulgaris Ser. II, 903.
Lagenocarpus albo-niger

III, 81.

— guianensis III, 81.-

— rigidus var. Burchelli
III, 81.

— tremulus III, 81.
Lagenoeca globulosa

France' 342.

Lagenoeca ovata 342.
Lagenophora petiolata II,

262.
Lagenostoma Loiuaxi .">77,

623.

— ovoides 54i>. 557, 594.

— physoides 594.
Lagerheimia 348.

— Chodati Bernard* 384.
Lagerstroemia II. 1 24. 22 1 .

— X. A. II, 454.

— paniculata II, 124.

— undulata II, 124.
Laggera alata II, 214.
Laguncularia racemosa

Gaertn. 459. — II, 895,
896, 900.
Laminaria 240. 371. — II,
270. — III, 666.

— bullata 371.

— dermatodea 371.

— Porra Leman 371.

— Ruprechti 371.

— saccharina 371. — II,
997.

— soliduugula 371.
Laminariaceae 370, 37].
Lamium II, 137. — A \.

II. 436.

— album L. 641, 693. —
II, 576. — III. 395, 558.

— amplexicaule L. 693.

— II, 577. 584.

— maculaturn L. — II,
576.

— purpureum L. 693. 696.

— P. 253.
Lamprocarpa Lycopodii

Raunh. 120.
Lamprophyllae Barth III.

223.
Lampsana communis 77U
Lanaria II. 242.
Landolphia II. 227. 235.

25(1, 331, 332. 824, 937.

938, D4!). A. X. II,

332.

— Buchanani II. 937.

— chylorrhiza Stapf. III,
14 l.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (190S} 3. Abt. [Gedruckt 5. 2. 12.]

.i.i

B66

Landolphia Dawei — Laurelia Novae Zeelandiae.

Landolphia Dawei Stapf

II, 252. - III, 141.

— florida II, 937, 494.

— Heudelotiana II, 232.

— Kirkii II, 937, 938, 949.

— mamar III, 472.

— mamolava II, 472.

— owariensis II, 937.

— senegalensis II, 232.

— Stolzii Busse II, 949.

— in, 624.

— Tholloni II, 941. —

III, 141.

Lannea Schimperi Engl.
III, 139.

— sessifoliolata II, 233.
Lantana III, 343. — N. A.

II, 544.

— Oamara L- II, 557.

— radula Swartz II, 202.
Lapageria 468.
Lapeyrousia II, 243.

— Fabricii Ker. III, 97.
Laplacea haematoxylon

G. Don II, 899.
Laportea moroides II, 984.

— photiniphylla Willd.
458.

Lappa II, 575.

— minor P. 278.

— tomentosa II, 575.
Lappago racemosa ScJtreb.

III, 94.
Lappula anoplocarpa

G-reene II, 145.
Lardizabalaceae II, 156,

205, 221. - - III, 54, 222,

224, 230.
Laretia III, 341.
Larix 558. — II, 901. —

P. 251. — N. A. II, 278

— americana Michx. II,
141. — III, 62, 423.

— decidua MM. 525, 691.

- III, 65. - P. 277.

— europaea L. 561. —

in, 28.

- — var. alba Carr. II,
278.

— Griffithi Hk. f. III, 59.

Larix japonica P. 294.

— kurilensis Mayr III, 60.

— laricina Koch III, 62.

— occidentalis Nutt. III,
69.

— sibirica584. — 111,633.
Larvaria craniphora Mo-

rellet* 381, 589.
Laschia gemma v. Höhn*

128, 297.
Laserpitium 504.

— gallicum var. angusti-
folium III, 46.

— Siler L. III, 46.

— thapsioidesDes/M, 46.
Lasianthus II. 224. — N.

A. II, 507.

— tomentosus II, 209.
Lasiobelonium aquilinel-

lum v. Höhn* 128, 297.
Lasiocoma Bolus N. 6. N. A.

II, 387.
Lasiodiplodia 130. — II,

883.
Lasiodiscus II, 245. — N.

A. II, 486.
Lasiopetalum 631.

— longistamineum 11,256.
Lasioptera Anonae Tav*

II, 623.

— asterifoliae Beutenm*
II, 605.

— cornicola Beutenm.'* II,
605.

— Linderae Beutenm* II,
605.

— longispatba Kieff.* II,
613.

— Lycopi Feit. II, 606.

— nodulosa Beutemm*
II, 605.

— trilobata Kieff* II, 613.

— tumifica Beutenm* II,
605.

— viburnicola Beutenm*
II, 605.

Lasiopterina II, 620.
Lasiosphaera Fenzlii 262.
Lasiosphaeria subambigua
v. Höhn* 128, 297.

Lastrea II, 716, 759, 765.

— atrata Wall. II, 778.

— cana Bah II, 778.

— ßlanfordi Hope II, 778.

— filix mas II, 778, 801.

— Gamblei Hope II, 778.

— Kingi Hope II, 778.

— pseudomas var. cristata
apospora II, 648.

— — var. polydactyla
Wills. II, 747.

— ramosa Hope II, 778.

— serrato-dentata II, 778.
Laternea bicolumnata 262.
Lathraea III, 268.

— gesnerioides König II,
526.

— squamaria L. III, 39,
268.

Lathyrus 504, 714. — N. A.

II, 446.

— aphaca 111, 395, 396.

— Cicer L. III, 432.

— ciliatus Guss. III, 243.

— communis var. ameri-
canus III, 395.

— latifolius 714.

— maritimus Big. 476.

— odoratus L. II, 556, 985.
— III, 396.

j — sativus L. III, 432.

— saxatilis Vis. III, 243.

— saxatilis (Vent.) Tropea

III, 243.

— silvestris L. III, 432.

— tingitanus L. II, 838.

— vernus 476.
Lauderia II, 637.

— borealis II, 635,
Launea fulva Engl. II,

624.

— nudicaulis Hook- fil. II,
557.

Lauraceae 596, 614. — IL.
166, 213, 223, 224, 225,
439. — III, 224, 230.

Laurelia insularis Dus*
559.

— Novae Zeelandiae II,
830.

I .aureinbergia repens — Legousia.

867

Laurembergia repens Berg.

III, 214.
Laurinoxylon 572, 600.

— uniseriatum Qoth.* 572.
Lauriphyllum 614.

— Nordenskjöldii Dus*
559.

Laurocerasus III, 558.
Lauras 564. — III, 555.

— biseriata Casp. 617.

— camphora II, 931.

— cupularis Lam. II, 439.

— Gnidii Principii* 608.

— nobilis L. 545, 580. —
II. 154.

— primigenia 596.

— Sassafras II, S22.
Lavandula II, 83. — III,

560. — N. A. II, 436.

— Delpbinense Jord. III,
561.

— fragrans III, 561.

— fragrans X latifolia III,
561.

— latifolia Vill III, 561.

— officinalis Chaix III,
561.

— Spica L. III, 561.

— Stoechas L- 693. — II,
150.

— vera DC. III, 561.
Lavatera Ülbia II, 150.
Lawia III, 277.
Lawsonia alba III, 544.
Layia carnosa II, 186.
Leachia festiva Kieff* II,

613.
Leaia Leydii Jones 610.
Leandra III, 251. — N. A.

II, 458.

— furfurella Rech. 111,251.

— Wettsteinii_Rec7t.III,25 1 .
Leatbesia crispa Harv. 370.
Lecanactis 15.

— abietina (Ach.) Körb. 24.
Lecania 15.

— cyrtella. (Ach.) Th. Fries.
24.

— dimera (Nyl.) Th. Fries.
22, 24.

Lecania fuscella Mass. 24.
Lecanidium paulistanum

Speg* 297.
Lecanium 823. — II, 879.

— hemisphaericum 187.

— hesperidum L. 188, 199.

— oleae 187.

— persicae P. 145, 296.
Lecanora 3, 15.

— albescens (Hoffm.) 11.

— angulosa (Schreb.) Ach.
24.

f. leptyrodes Nyl. 24.

— aspidophora Wainio 21.

— ceracea Stzbg. 23.

— chlarona (Ach.) Nyl. 24.

— circinata 16.

— cupreogrisea Th- Fries.
24.

— distans (Pers.) Ach. 24

— epixantha Nyl. 23.

— expallens Ach. 23.

— gangaleoides Nyl. 23.

— gibbosa 20.

— Hageni 11.

— — f. minuta Deichm*
27.

— Lamarckii Schaer. 22.

— obscurella (Sommerft.)
24.

— rugosa (Pers.) Nyl. 24.

— subfusca (L-) Ach. 16,
24.

— — /. glabrata Ach. 24.

— Stuckerti A. Zahlbr.*
27.

Lecanoraceae 18.
Lecanorchis III, 121.
Lecantbus Wigbtii II, 214.
Lecbea X. A. II, 359.

— juniperina Bicknell II,
359.

Lecidea 3, 15.

— acclinis Fw. 24.

— albescens Malbr. 23.

— albocoerulescens Ach-
23.

— asserculorum Sehrad.
22, 23.

— brabantica Wainio 21.

Lecidea emarginata Nyl.
24.

— Gagnii Jatta* 27.

— granulosa 20.

— hypopta Ach. 24.

— inserena Am- 17.

— (Gyalecta)inserta(A7?/?.)
15.

— ocelliformis Nyl. 24.

— ostreata 22.

— parapetraea Nyl- 21.

— parasema var. prasinula
Wedd. 11.

— platycarpa Ach. 16.

— prasinula B. de Lesd.
11.

— rubiformis 20.

— Standaerti B. de Lesd*
11, 27.

— subcavatula_B.de .Lesd.*
27.

— subalpina A. Zahlbr.*
27.

— symmictella Nyl. 24.
Lecideaceae 18.
Lecontea Boj erana A.. Rieh.

II, 508.
Lecytbidaceae II, 196, 250,

400. — III, 231.
Lecythis II, 440.

— costaricensis Pitt. III.
231.

Lecytbodytes paradoxus
366.

Ledum 516. — II, 581,
592, 593, 594, 595. —
P. 251. - N. A. II, 409.

— palustre L. 515, 516,
602. — II, 580, 592, 594.

— III, 203.

— — var. dilatatum
Wahlb. in, 200.

Leea N. A. II, 548.

— macropus K- Seh. III,
344.

Leersia brasiliensis Spreng.
II, 837.

— hexandra Sw. II, 837.

— IH, 87.
Legousia N. A. II, 351.

55 ;

868

Leguminosae — Lepidosperina lineare.

Leguminosae 449, 477. —

II, lfi6, 196, 201. 223,
250, 251, 266, 40"0.

III, 23, 30, 55, 58, 219,
222, 223, 224, 230, 432,
547, 673.

Leguminosites 559.
Leiolejeunea Evans N. ö.
51, 85.

— grandiflora Evans*' 85.
Leioptyx DeWüdem- N. G.

N. A^ II, 461, 462.

— congoensis Pierre III,
252.

Leiothrix III, 84, 85. -

N. A. II, 292.
Leitneraceae III, 225.
Lejeunea comrautata

Gotische 63.

— domingensis (Tayl.) 51.

— glaucopbylla Gotische
63.

— herpestica Spruce 51.

— involutiloba Mont. 51.

— laxiuscula Spruce 63.

— lucens Tayl 63.

— lutea Mont. 63.

— Miquelii Lehm, et
Lindenb. 51.

— Mohrii .4?<sf. 63.

— opaca Gotische 63.

— opaca Spruce 63.

— proteoides L. e£ L. 51.

— Rossettiana C. Massal.
41.

— subaurita Aree* ei ilfon/.
51.

Lemanea 336. — P. 159,

3(10.
Lembidium Mitt. 66.
Lembosia Byrsonimae P.

Henn- 146.

— Dipterocarpi P. Henn.*
297.

— graphioides Sacc. et
berl. 146.

— Melastomatum Moni.
147.

Lemna II. 115, 242, 665,
669.

Lemna minor L. IL 172.

— III, 35.

— polyrrhiza L- III, 35.

— trisulca L. 736. — II,
665.

Lemnaceae III, 101.
Lennoaceae III, 221, 222.
Lentibulariaceae III, 243.
Lentinus baguirmiensis
Pat. et Bar* 139, 297.

— cartilagineus Berk. 258.

— tigrinus 174.
Lentodium squamulosum

174, 260.
Lentomita 259.

— brasiliensis v. Höhn.*
128, 297.

Lentomiteae 164.
Lenzites 124, 223, 224.

— abietina 226.

— betulina (L-) Fr. 141.

— Clemensiae Mtirrill*
297.

— Earlei Murr* 297.

— sepiaria 226.

— submurinaM«tmM*298.
Leonotis Leonurus III,

229.
Leontodon II, 44, 46. —
N. A. II, 387.

— autumnalis L. II, 590.

— III, 40.
Leontopodium II, 213.

— microphjdlum II, 214.
Leotia 122.

— Batailleana Bres* 298.
Lepicvstis II, 766.

— polypodioidesfX. )Hitch.
II, 795.

rar. Eckloni (Kze.)

II, 795.
Lepidagathis N. A. II, 325.
Lepidium 722. — II, 123,

130. 131, 247. - III,

196. — N. A. II, 403,

404.

— apetalum II, 140, 175.

— campestre P. 253.

— Draba L. III, 193. —
P. 253.

Lepidium Menziesii DC-
652. — III, 55.

— perfoliatum P. 253.

— rotundum var. phlebo-
petalum II, 255.

— sativum L. 722, 723,
724, 742. — K, 138. —
P. 178.

Lepidocarpon 619.
Lepidodendraceae 634.
Lepidodendron 622, 625.
630, 637, 638.

— aculeatum Zal* 637,
638.

— Brownii 638.

■ — Dabadianum 638.

— dichotomum Zal.: 637.

— Harcourtii Witham 632,
633.

— Hickii Watson* 632, 633.

— mundum 635.

— obovatum Zal* 633,
637, 638.

— oculis felis 636, 638.

— Pedroanum 623.

— Pettycurense 580.

— Tonderae Zal* 637.

— Veltheimi 626, 637.

— vereenigingense
Seward* 623.

Lepidoderma Carestianum
(Rabh.) Rost. 120.

— Ohailletii Rost. 120.

— granuliferum R. E. Fr.
120.

Lepidopbloios 565, 610,
625, 633, 635.

— laricinus 618.

— Scottii 565.
Lepidophyllum dubium

Sterzel* 625.
Lepidopilum 57.

— fontanum Mitt. 57.

— virens Card. 57.
Lepidopterocecidium II,

612, 615, 622, 625.
Lepidosperma concavum
III, 80.

— laterale III, 80.

— lineare III, 80.

Lepidosperma striatum— Lescheuaultia biloba major.

869

Lepidosperma striatum

III, 80.
Lepidostrobus 637, 638.

— Laurenti ZeüU 638.

— Oldhamius Williamson
637.

Lepidozia caledonica
Steph.* 85.

— silvatica Evans 69.
Lepiota bonariensis Speg.

147.

— Boudieri Gue'guen* 257,
298.

— cepaestipes Soiv. 147.

— clypeolaria Fr- 147.

— Georgioae W. G. Sm.
106.

— granulosa Batsch 106.

— lutea Bolt. 257.

— mauritiana P. Kenn*
138, 298.

— Menieri Sacc. 106.

— naucina Fr. 118.

— sordesceus Berk. 147.
Lepipogon Bertol. III,

222.
Lepironia mucronata III,

81.
Lepisauthes X. A. II, 517.
Lepistemon owariensis P.

311.

— pedunculosus II, 159.
Lepra antiquitatis Ach.

16.
Lepraria chlorina III, 688.
Leprocaulon Xyl. 13, 15.
Leptactinia X. A. II, 507.
Leptadeuia heterophylla

II, 231.

— madagascariensis III,
147.

— pyrotechnica II, 231.
Leptandra virginica III,

465.
Leptoaloe II, 119.
Leptocaulis patens Koch

II, 539.
Leptocarydion vulpi-

astrurn Stapf III, 87.
Leptochilus II, 765.

Leptochilus normalis (J.
Sm.) Copel. II, 779.

— (Chrysodium) Raapii
v. Aid. v. Ros* II, 781,
808, 812.

— rizalianus Christ II,
779.

— (Poecilopteris) trifidus
v. Aid. v. Eos* II, 781,
812.

Leptochlaena multiflora

Thouars. III, 172.
Leptocylindrus II, 637.

— adriaticusPr. Schröder*
II, 641, 644.

— danicus Cleve II, 632.
Leptodontium excelsum

(Süll.) Britton 48.

— Gambaragarae Negri*
77.

— gemmascens 42.
Leptogium 15.

— arizonicum A. Zahlbr*
27.

— atrocoeruleum Hall. 22.

— OrozalsiauumP/arm. 23.

— microphyllum 22.

— Schraderi Nyl. 23.
Leptohymenium Schwaegr.

59.

— pin natum Broth. et Par.
56.

Leptonia abuormis Peck*

298.
Leptonychia II, 530.
Leptopezia mindanaoensis

P. Henn.* 298.
Leptorchis caespitosa II,

309.

— Duthiei II, 309.

— Forbesii 0- Ktze- II,
309.

— minima II, 309.

— obscura II, 309.

— Praioii II, 309.

— pusilla 0. Ktze. II, 309.
Leptoscyphus auomalus

(Hook.) Liadbg. 69.

— euueifolius (Hook.)Mitt.
69.

Leptosiphou bicolor Nutt.

II, 478.
Leptospermum N. A. II,

466.

— scoparium III, 261,
362.

Leptosphaeria 212.

— circinaos (Fehl.) Sacc.
108.

— Matiaiae P. Henn.* 298.

— modesta (Desm.) 822.

— Thorae Jaap* 119,298.

— typharum(Desm.)Karst.
subsp. papyrogena Sacc*
298.

— vagabunda Sacc. 108.

— yerbae Speg* 298.
Leptostachya X. A. II,

325.
Leptostromaceae 209.
Leptostromella Hirtellae

P Henn* 298.
Leptotheca Wattsü Card*

77.
Leptothyrella (Jhryso-

balani P. Henn* 298.

— Oeoocarpi P. Henn*
298.

Leptothyrium 238.

— alneum (Lc'r.) Sacc.
237, 846.

— Astrocaryi P. Henn.
298.

— Bactridis P. Henn*
298.

— cantareireose P.Henn*
298.

— glomeratum Pat* 159,
298.

— macrothecium Fuck.
268.

— microstomum Speg.

Lepturus repens II. 207.
Lepyrodia scabiosa 11,255.
Leschenaultia R. Br. 540.

— III, 212. — X. A. II,

431.

— biloba major III, 58,
212.

870

Lesohenaultia Druinniondiana — Ligustrum.

Leschenaultia Drummon-
diana Col* III, 212.

— expansa R. Br. III,
212.

— l'ioribunda Benth. III,
212.

linarioides 540.
Leskea 560.

— (Anomocladus) guine-
ensis Par. et Broth* 56,
77.

— Hookeri Mut 70.

— laxiramea Schffn* 53,
77.

Lespedeza III, 388. — N.
A. II, 446.

— ßicknellii House II,
446.

— hirta X repens III,
388.

— striata II, 836.
Lestes viridis II, 613.
Letendraea bahiensis&'pe^.

817.
Letharia 13.

— cladonioides (Nyl) Hue
21.

— illyrica A. Zahlbr. 23.
f. sorediifera Harm*

27.

— vulpina Hue 23.

— wandelensis Hue* 27.
Leucanthemum III, 380.

381. - - N. A. II, 387.

— uliginosum III, 176.
Leucas N. A. II, 436.

— martinicensis II, 254.
Leuchtenbergia principis

III, 29.
Leucobryum 51.

— albidum Brid. 47.

— angustifolium Wils. 52.

— galeatum Besch. 52.

— glaucum 57.

— Hildebrandtii C. Müll.
54.

— Isleanum Besch. 54.

— madagassum Besch. 54.

— subscalare Broth. 52.

— Textori Besch. 52.

Leucodon sinensis The'r*

77.
Leucojum 355.

— luteum II, 352.
Leucolejeunea Baueriana

Schffn. 49.

— clypeata (Schivein.)
Evans 49.

— longiflora (Nees) Schffn.
49.

— unciloba (Lindenb.)
Evans 49.

— xanthocarpa 51.
Leucoloma candidum

Broth* 53, 77.

— bifidum Brid. 53.

— chrj^sobasilare C- Müll.
53.

— Crepini Ben et Card.
53.

— — var. orthothecioides
(Besch.) Ben. 53.

■ — dichelymoides (C. Müll.)
Jaeg. 53.

— Isleanum Besch. 53.

— Normandi Par. et Broth.
55.

— Sanctae Mariae Besch.
53.

— sinuosulum C Müll.
53.

— sinuosum Brid. 53.

— tonkinense Broth. et
Par* 52, 77.

Leucomiaceae 59.
Leucomium Mitt- 59.
Leueonymphaea alba var.
minoriflora Borb. II, 468.

— Lotus Borb. II, 468.
Leucophanes 51.

— calymperaceum C. Müll.
56.

— Hildebrandtii C. Müll.
54.

— ßodriguezii C- Müll.
54.

Leucoporus dictyoporus

Pat* 159, 298.
Leucospermum conocar-

pum B. Br. III. 285.

Leucosyke corymbulosa

Wedd. 458.
Leucothoe 564.
Leurocline II, 248.
Levenhookia III, 120. —

N. A. IL 531.
Lewisia III, 280, 281.

— Cotyledon Bob. 111,280,
318.

— Leana II, 187.

— rediviva II, 187.
Leycesteria III, 221.
Liabum N. A. II, 387.
Libertella prunicola Atk*

298.
Libertia gTandiflora III,

100.
Libidibia coriaria II, 822.
Libocedrus 464. 558. —

III, 3.

— chinensis II, 103.

— decurrens Torr. 463,
560.

— macrolepis II, 214.

— pliocenica Kink* 560.

— salicornoides 589.
Licania III, 58. — N. A.

II, 496.

— crassifolia Griseb- II,
496.

Liehen flavovirescens

Dicks. 242.
Lichina confinis 3.
Licmophora II, 637.
Licuala III, 9.

— paludosa II, 892.

— polyschista Lauterb. et
Schum. II, 102.

Ligea Richardiana 448.
Lightfootia subulata

VHer. III. 162.
Liginodendron 556, 562,

573, 583, 608.

— Oldhamianum 620.

— Veltheimianum 565.
Ligusticum 504, 519, 520.

— antipodum 519.
Ligustrales III, 16.
Ligustrum 369, 799. — II,

135. — III, 356.

Ligustrum Ibota— Lindsaya Hewittii.

871

Ligustrum Ibota P. 306.

— japonicum II, 166.

— lucidum 718.

— medium II, 166.

— senogalliense Frindpi*
608.

— vulgare L. 686. 799. —
III, 265, 356, 375.

Lilaea subulata II, 267.
Liliaceae 766. — II, 118,
179, 242, 250, 302, 553.

— III, 16, 101.
Lilium II, 138, 180, 979,

987. — III, 4. 5. — N. A.
II, 306.

— auratum 648. — III,
41, 107.

— bulbiferum L. II, 572.

— III, 105, 106.

— canadense P. II, 971.

— candidum L. II, 957,
985.

— croceum Chaix II, 572.

— III, 105, 375.

— japonicum III, 101.

— Krameri III, 101.

— lanceolatum II, 180.

— Martagon L. II, 961,
985. — III, 106.

— ponticum II. 154.
Limacinia coffeicola II,

848.

— javanica II, 84s.

— melioloides (Fat.) Sacc
rar. eugeoücola Speg*
298.

— setosa II, 848.
Limacium corticola Feltg*

110, 298.

— discolor Feltg* HO,
298.

Limeum L. III, 139.

— viscosum Fenzl III,
271.

Limnanthaceae III, 218.
Limnanthemum II, 225.

— aquaticum Britton II,
423.

— lacunosum Griseb- II,
428.

Limnanthemum rjymphae-
oides Lk. P. 315.

— trachyspermum Gray

II, 428*
Limnobium palustre var.

julaceum 40.
Limnocharis X. A. II, 308.

— Haenkei Freal II, 268.
Limnophila III, 322.

— heterophylla Benth.

III, 328.
Limnophyton II, 240. —

III. 59. - X. A. II
279.

— obtusifolinm Miq. III.
73.

Limodorum abortivuiu III,
109.

— graminifolium Small

II, 308.

— parviflorum Nash II,
308.

— tabularis Rolfe III, 109.
Limoniastrum Feei (Gir.)

Batt. II, 102.

— Guyonanum II. 607.
Limonium III. 274.

— Dubyi 0. Ktze. III, 273,
274.

Limosella aquatica L. II,

170, 580.
Limprichtia Loeske 58.
Linaceae 504, 505. — II,

216, 250, 266, 450. —

III, 218, 245
Linanthus bicolor Greene

II, 478.
Linaria II. 100. — X. A.
II, 522.

— Broteri Rouy II, 522.

— caesia var. decumbens
Lge. IL 522.

— — var. maritima Samp.
II, 522.

— dealbata Hoffgg- et Lk.
II, 521.

— filifolia var. glutinosa
Ficalho IL 522.

— lanigera Hoffgg- et Lk.
II. 521.

Linaria lusitanica II, 522.

— meonantha Hoffgg. et
Lk. II, 522.

— origanifolia L. III, 32b.

— paradoxa 696.

— polygalaefolia Hoffgg-
et Lk. II, 522.

— Ricardoi P. Cont* III,
229, 328.

— spartearar. ramosissima
Lge. II, 522.

— spuria var. racemigera
Lange II, 521.

— supina var. maritima
Ficalho II, 522.

— vulgaris Mill. 645, 757.

— III, 35, 323, 407.

— Welwitschiana Rouy

II. 522.
Linarieae III, 50.
Lindackeria N. A. II. 424.
Lindeniopsis Tal- III, 307.
Lindera benzoin II, 605.

— membranacea Maxim-

III, 230.

praecox Bl. HL 230.

— triloba Bl. HL 230.

— umbellata Thbg. III.
230.

Lindernia dilatata anagal-
lidea Muhl. IL 522.

— pyxidaria Fursh IL 522.

— riparia Raf. IL 522.
Lindleya H.E.K. IL 496.

— III, 296.

— mespiloides H- B.K. II,
496.

Lindleyella Rydb. X. G.

III, 296. — X. A. II,

496.
Lindsaj-a II, 752.

— concinna J. 8m. 11,783.

— crassipes Rose»st* II,
783, 813.

— cultrata II, 783.

— decomposita Willd. II,
783.

— davallioides Bl- IL 784.

— Hewittii Copel* II, "82,
808, 813.

872

Lindsaya raonosora — Loasa.

Lindsaya monosora Copel.
II, 780, 813.

— nitens Bl II, 784.

— orbiculata (Lam) Mett.

II, 782.

— rigida II, 780.

— Werneri Rosenst* II,
783, 713.

Linnaea LH, 16(3, 383. —
N. A. II, 353.

— borealis L. II, 596. —

III, 39.
Linnaeeae III, 222.
Linociera II, «98. - N. A.

II. 470.
Linopteris 568, 013, 625.

— Brongniarti 572.

— Mayeri Sterzel* 625.

— Muensteri 625.

— neuropteroides Gutb.
610,

Linum III, 4, 555. — N.
A. II, 450.

— alpinum 504.

— angustil'olium 522.

— austriacum 522.

— catharticum L. II, 590.
598. - - III, 9.

— extraaxillare II, 99.

— narbonense 522.

— perenne 522.

— tenuifolium L. LI, 626.

— toxicum II, 138.

— usitatissimum L. 522,
696. - II, 663, 852.

Liochlaena 43.
Liparis III, 117, 121.

- angustifolia Lindl. II,
309.

— atrosanguinea III, 119.

— auriculata Rchb. f. II,
309.

— caespitosaLmcM. II, 309.

— Duthiei Hook. f. II, 309.

— Forbesii Ridl. II, 309.

— minima Lindl. II, 309.
obscura Hook. f. 11,309.

— Prainii Hook. f. II, 309.

- pusilla Ridl II, 3(19.

— vestita Rchb. /. 11,309.

Lipocarpba III, 83.

— albiceps III, 80.

— argentea III, 80.

— pulcherrima III, 80.
Lippia III, 343. — N. A.

IL 544.

— adoensis P. 311.

— asperifolia P. 139, 276.

— scaberrima Sond. HI,
606, 630.

— sidioides Cham. II, 202.
Liquidambar 586. — III, 3.

— europaeum 614.

— pliocenicum Geyl. et
Kink. 561.

— styraciflna L. 440, 934.
— III, 214.

Liquiritia III, 555.
Liriodendron 547.

— chinense III, 247.

— tulipifera L- 547. — P.
302, 319, 851.

Liriosma ovata Miers III,

668, 679.
Lissocarpa III, 221.
Lissochilus II, 245. —

N. A. II, 314.

— giganteus II, 236.
Listera II, 598.

- cordatai^.Br.II,598. —
III, 109.

— ovata III, 109.
Listrostachys vesicata

Rchb. f. III, 109.
Lithodesmium intricatum

(West) Per.* II, 644.
Litholepis indica Foslie

377.
Lithopbila N. A. II, 328.

— muscoides Sw. II, 328.
var. brevifolia Griseb.

II, 328.
var. longifolia Griseb.

II, 32«.
Lithophragma parviflora P.

143.
Lithophyllum 377, 378.

— amplexifrons Heydr.
377.

— Aninae Foslie 378.

Lithophyllum Chamaedo-
ris Foslie et Hoioe 378.

— consociatum 378.

— explanatum Foslie 378.

— gracile Foslie 378.

— mauritianum Foslie 378.

— mediocre Foslie 379.

— paradoxum Foslie 377.

— Philippii 378.

— polycephalum Foslie
378.

— samoense 350.

— Sargassi Foslie 378.
Lithosiphon 369.
Lithospermum officinale

L. II, 137, 617.
Lithothamnion 377, 378,
379,380, 612. — II, 270.

— annulatum Foslie 378.

— breviore 378.

— - ectocarpon Foslie 378.

— irut\culosum(Kütz)3n,
378, 379.

— murmanicum 377, 378.

— neglectum Foslie 378.

— obtectulum Foslie 378.

— occidentale Foslie* 377.

— racemosum II, 730.

— racemus 334.

— Rosanoffi Foslie* 377.

— solutum Foslie 378.

— tophiforme 377.

— vardöense 378.
Litorella lacustris III, 40.
Litsaea 560. — II, 921. —

III, 230. N. A. II,

439.

— aciculata Bl. III, 230.

— glauca II, 166.

— japonica Juss. III, 230.
Livistona P. 304.

— chinensis II, 166, 167.

— Jenkinsiana III, 130.

— Mariae III, 130.
Lizonia stromatica Rehm*

298.
Llavea III, 220.
Lloydella 118.
Loasa III, 245. — N. A. II,

451.

Loasace.ie — Lophozia attenaata.

873

Loasaceae II, 201, 451. —

III, 226, 245.
Lobaria l(i.

— glaberrinia (De Not) A-
Zahlbr. 20.

— laetevirens (Lightf.) 15.
Lobelia III, 57, 59.

— Dortmanna L. II, 580
590.

— Erinus L. 670. — II,
580.

- inflata L. 439. — II,
580. — III, 489.

— rhynchopetala II, 251.

— Toppii II, 255.
Loddigesia III, 238.
Loganiaceae II, 266, 451.

— III, 59, 221,245, 547.
Loiseleuria II, 593, 594,

595, 598. — III, 34.

— procumbens (L.) Desv.
516. - II, 592, 598. -
III, 203.

Lolium II, 657. — III, 389,
531. - N. A. II, 297.

— italicum AI. Br. II, 836,
839.

— multiflorum Lam- III,
87.

— perenne L. II, <S39. —
P. 247.

— temulentum L. II. 684.

— III, 87, 531. — P.
153. 154, 818.

Lomagramma II, 779.

— Brooksii Copel* II, 782,
813.

— perakensis Bedd. II.
782.

— pteroides J. Sm. II, 779,
780, 782.

— — var. negrosensis
Copel* II, 780.

— — var. subcoriacea
Copel* II, 779.

Lomandra N. A. II, 306.
Lomaria II, 797.

— chilensis II, 103.

— ciliata II, 798.

— gibba II, 755, 798.

Lomaria spicant II, 737,

752.
Lomatia angustiloba 559.

— brevipinna 559.

— serrulenta 559.

— seymourensis Dies.*
559.

Lomatium N. A. II, 538.

— macrocarpum II. 538.
Lomatopbyllum Willd- HI,

102, 119.
Lomatopteris jurensis (il3.
Lomentaria 328.
Lonchitis Currori (Hook.)

Mett. II, 795.
Lonchocarpus II, 446, 899.

— III, 58. — P. 313. —
N. A. II, 279.

— cyanescens II, 235,
893. — III, 599.

Lonchopteris 568. 5(19.

— Bricei 568.

— conjugata 569.

— Defrancei 568.

— rugosa 568.
Lonchospermella Speg. N.

G. 129.

— tetraspora Speg* 129,
298.

Lonicera II, 146, 161, 178.

— III, 5, 167. — N. A.

II, 353.

— alpigena L. 595.

— altissimaO. Jennings II,
174.

— amoena Zabel HI, 56.

— — var. Arnoldiana
Rehder* III, 56.

— angustifolia Wall II,
556.

— coerulea P. 253.

— Ferdinandii III, 167.

— gracilipes Miq. III, 166.

— involucrata II, 170.

— Korolkowi Stapf III,
56.

var. floribunda Nich.

III. 56.

— leycesterioides Grab.
III, 167.

Lonicera leycesterioides
var. Beissneriana Zabel*
III, 167.

— Morrowii .4. Gr. III,
166.

— Periclymenum L. III,
28.

— tragophylla III, 57.

— vesicaria Kom. III, 1<>7.

— Xylostenm L. III, 28,
458.

Lopadium 15.

Lopesia Tav. N. 6. II,

624.
-- Parinarii Tav.* II, 624.
Lopesiella Tav. N. (i. II,

623.

— Combreti Tav.* II,
1523.

Lopezia lineata Zucc- III,

266.
Lophira 11, 899.

— alata Banks 496. — II,
232, 921, 927.

Lophocolea Cagnii Gola*
85.

— cuspidata Limpr. 44.

— cuspidata Lindb. 54.

— filicicola Steph. 86.

— Kurzii Steph. 57.

— leucophylla 66.
Lophodermium hysterioi-

des (Fers.) Sacc 143.

— — fa- aroniae Rehm
143.

— laricinum Dvbg 146.

— macrosporum 2 1 0.

— Oxycocci Karst. 108.

— Pinastri 838.
Lopholejeunea Muelleri-

ana 48.

— parva Steph* s">.
Lophopetalum III, 223.
Lophotocarpus guyanen-

sis II, 240.
Lophozia 39, 63.

— acutiloba (Kaal.)Schffn*
65, 85.

— attenuata (Marl) Dum.
49.

874

Lophozia badensis— Lycopodinae.

Lophozia badensis (Goti-
sche) Schiffn. 43, 70.

— barbata (Schmid.) Dum.
47. 69.

— bicrenaha (Lndbg.)Dum.
47.

— canariensis Bryhn* 54,
85.

— Floerkei 70.

— guttulata (Lindbg.) 44.

- heterocolpa (Thed.)
Howe 44.

— Hornsclmchiana Seil.
70.

— lycopodioides (Wallr.)
65.

— ventricosa (Dicks.) var.
uliginosa 44.

— Wenzelii (Nees) Steph.
44.

Loranthaceae II, 201, 245,
452. — III, 23, 24, 223,
245 .

Loranthus 464. 465, 811.

— II, 223. 245, 848. —
N. A. II, 452.

— acicularis Marl- II, 847.

- capitatus Engl. III,
245.

— europaeus Jcq. II. 588.

— III, 246.

— Exocarpi Behr. II, 258,
554. - - III, 245.

— insularum A- Gray 457.

— ligustrinus Wall. II,
557.

— orinocensis Spr. 11,847.

— parviflorus Siv. II, 847.

— pendulus III, 245.

— pentandrus II, 847.
Loroglossum hircinum III,

109.
Lotononis swaziensis

Bolus III, 231.
Lotos II, 246.
Lotoxalis pinetorum IS mall

II, 472.
Lotus III, 432.

— cornicnlatus L. II, 556,
601.

Lovoa N. A. II, 462.
Loxocarpus N. A. II, 430.
Loxogramme II, 766, 779.

- dimorpha Copel* II,
813.

— involuta Presl II, 779.

— — var. gigas Copel* II,
779.

Loxsoma II, 755, 765.
Loxsomopsis II, 765.
Lucinaea billitonensis Val.

111, 305.
Lucuma P. 320.

— Oainito P. 302.

— Eivicoa P. 290, 308.
Lühea II. 190.
Luetkea III, 296.

— cinerascens Heller II,
497.

— Hendersonii Greene II,
497.

— sibbaldioides II, 143.
Luffa II, 920.

— cylindrica (L-)Roem. II,
914.

Luisacia III, 252.
Luisia N. A. II, 314.

— boninensis II, 166.
Lunaria biennis L. 722,

723.
Lunasia N. A. II, 512.
Lunularia 111, 59.1, 592.

— cruciata 42.
Lupinus 653, 726. — II,

836, 960. III, 235,

239, 242, 462, 547, 639.

— P. 312. N. A. II.
446.

— albus L. 726, 734, 738
740, 741. — II, 623. —
III, 432, 639.

— • angustifolius II, 960.

— III, 640.

— hirsutus III, 622.

- luteus L. III, 432.

- polyphyllus II, 140.
-- ramosissimus P. 320.
Luvunga N. A. II, 512.
Luxemburgieae III, 218,

221, 222, 223

Luzula 519, 520. — IL
242, 554. — III, 82. —
N. A. II, 302.

— Bommüllerianalll. 100.

— effusa II, 214.

— lactea Mey. III, 100.

— lutea X spadicea II,
302. — III, 100.

— maxima II, 217.

— spicata II, 213, 214.
Lycaste Skinneri alba III,

113.

— Hennisiana III, 117.
Lychnis 454, 504.

— chalcedonica III, 536.
- dioica III, 400.

— — var. alba II, 255.

— flos-cuculi L. II, 564,
590. - - III, 169.

Lycbnothamnus 353.

— barbatus (Mey.) Leonh.
353.

Lycium N. A. II, 528.

— arabicum II, 231.

— barbarum III, 28.
Lycogala epidendrum

(Buocb.) Fr. 125, 141.
Lycoperdaceae 119, 123.
Lycoperdon 155, 160, 163.

— Bubäkii Bres.* 298.

— fragile Vitt. 105.

— gemmatum Batsch 125,
144.

— lignic.olum Ma*see* 299.

— nigrescensf Pers. ) Lloyd
144.

— pulcherrimum 21 >2.

— pyri forme 263.

— sculptum Harkn. 263.

— subincarnatum Peck
125.

Lycopersicum II, 167. —
III, 40.

— cerasiforme X piriforme
III, 332.

— esculentum 670, 678.
— III, 415. - - P. 315.

Lycopodiaceae II, 749,

762.
Lycopodinae III. 14.

Lycopodioides — Macaranga Barteri.

875

Lycopodioides Boehmerll,

806.
Lycopodites primaevus

Gold. 574.

— scanicus Nath* 574.

— Suissei Zeüler 573.

— Zeilleri Halle* 574.
Lycopodium 573, 629, 630,

654. — II, 176, 746, 749,
763, 765, 767. 782, 783,
786, 787. 804, 805. —

m, 612.

— alpinum L- II, 741.

— andinum Rosenst* II,
793, 813.

— carolinianum L. 11,762,
795.

— cernuuni L. 583. — II.
167, 747, 762, 763, 795,
796. 797.

var. EichleriGlaz.il,

795.

— Chamaecvparissus AI.
Br. II, 741.

— clavatum L. II, 217,
742. 765.

— — vor. Wallichianum
II, 22=1

— complanatum L. II,
741, 768, 808.

— — var. moniliforme
Lindm* II, 768.

— crassum Willd. II, 793.

— dichotomum Jacq. II,
801, 808.

— epiceaefolium Desv. II,
783.

— funiforme Cham. II,
785.

— Haeckelii Herter* II,
785, 813.

— Hamiltoni var. petio-
latum II, 223.

— hippuris IL 223.

— inundatum L- II, 762,
763, 770, 808. — III, 35.

— linifolium L. II, 749,
801.

— lucidulum porophilum
II, 7S8.

Lycopodium mandioca-
num Raddi II, 801, 808.

— obscurum II, 214.

— passerinoides H. B. K.

II, 801, 808.

-- phlegmaria L- II. 747,
795.

— pseudo - squarrosum
Pampanini* II, 783, 808,
813.

— saururus Lam. II, 750,
795.

— Selago L. IL 747, 750,
757, 762.

— serratum II, 749, 763.

— squarrosum Forst. II,
783.

— strictum Bah. II, 795.

— taxifolium Sic. II, 801,
808.

— ulicifolium Vent- IL
783.

— volubile II, 763.
Lycopus europaeus L.

629. — II, 225, 559.

III, 25.

— virginicus II, 606.
Lycostrobus Scotti 591.
Lyella crispa Hook. 34.
Lyginopteris 556. 557,

566, 608.

— Oldhamia 577, 620.
Lygodesmia X. A. II, 387.
Lygodium IL 755.

— circinatum Sw. II, 781.

— — var. cristatum v. A-
v. R.* IL 781.

— — var- monstruosum
v. A. v. «.* IL 781.

— japonicum II, 779.

— Matthew! Copel." II,
779, 813.

— Mearnsii Copel* II, 779,
813.

— Merrillii Copel. II, 779.

— scandens II, 798.

— Smithianum Presl II,
795.

— Teysmannii v. Aid.
v. Ros* IL 781, 813.

Lygodium trifurcatum

Bak. II, 781.
Lyngbya 346, 379.

— sordida 379.

Lyonia II, 593, 594. —
III, 59. - X. A. II, 409.

— calyculata (L.) Don
516. — II, 592. — III,
204.

— jamaicensis D. Don
II, 900. - P. 290.

— octandra Griseb. II, 900.
Lyonsia eucalyptifolia II,

851.
Lysichituro Schott 532. —

II, 123. — III, 76.

— catscbateense II, 123.
Lysiogonium varians (AgJ

De Toni 338. — II, 629.
Lysimachia IL 157. —

III, 567. — X. A. IL
481.

— deltoidea Wight var.
cinerascens Fr. II, 157.

— Lex eiUei Petitmenginll,
157.

— nummularia 521. — IL
81. — III, 39.

— shikokiana II, 214.

— vulgaris L II, 225,
559. — III. 25, 35.

Lysurus borealis 262.

- Gardneri 261, 262.

— Mokusin 262.
Lythraceae 582. — II,

124, 203, 454. — III,
55. 247.
LythrumX.A. IL 454.

— Salicaria L. II, 580. —
III. :::>.

Maba II, 898.

— buxifolia tRottb.t Per*.
III. 199.

— inconstans P. 289.
Macairea X. A. II. 458.
Macaranga III. 205, 210.

— III, 24. - - P. 307. —
\. A. LI, 418, 419.

— Barteri II, 235.

876

Macaranga Reineokii — Magnoliaceae.

Macaranga Reineckii Pax
457.

— stipulosa Müll. 457.
Macarthuria Hueg. III, 139.
Machaerium II, 201. —

III. 234. — P. 293. —
N. A. IL. 44(i.

— lanatum P. 309.

— Tipu III, 243.
Machaonia III, 59. — N. A.

II, 507.

— cymosa Griseb. II, 507.
Machilus gamblei II, 613.

— japonica S. et Z. III,
230.

— Kobu Maxim. II, 1G6.
— III, 230.

— Sheareri II, 162.

— Thunbergi II, 166.
Macleania punctata Hk. f.

III, 202.

Maclura am-antiaca II,

901.
Maci'airea III, 251.
Macrocalyx Court, et Poiss-

X. G. II, 226. — III,

472.

— tomentosa Court, et
Poiss* III, 472.

Macrocentrum III, 251. —

N. A. II, 458.
^lacrochaetium Dregei III,

80.
Macrochloa tenacissima

Kth. III, 87.
Macrocystis 336.

pyrifera 371. — II,

997.
Macrodiplosis volvens

Kieff. II, 623.
Macrodiscus II, 34-").
Macroglossum Copel N. G.

II. 782, 813.
- Alidae Copel."' II, 782,

808, 813.
Macrohymenium C. Müll

59.
Macromitrium 51.

— Blumei Nees 69.

— brevipilosum The'r.* 78.

Macromitrium calomicron
Broth* 54, 78.

— contractum The'r* 78.

— Copelandii Broth* 78.

— densifolium Ther.* 78.

— Ferriei Card, et Thtr*
78.

— Foxworthii Broth* 78.

— fragile Negri* 78.

— gracilipes Card* 78.

— Laosianum Par- et
Broth." 52, 78.

— lanceolatum Brotli* 54,
78.

— mauritianum Schwgr.
var. viride Broth* 78.

— melanostoma Par. et
Broth* 53, 78.

— mindanaense Broth*
78.

— ruf'ipilum Bard* 78.

— subgoniorbynchum
Broth* 78.

— sulcatum Brid. 69.

— Voeltzkowii Broth * 54,
TS.

Macrophoma 158. — II,
617.

— abietina 822.

— Coronillae-Emeri JVer/er*
299.

— malorum Berl. et Yogi.
267.

— paulistana Speg* 299.

— Theae Speschn.* 219.
II, 848.

Macropiper excelsum II,

262.
Macroplodiella Speg. N. G.

130, 299.

— maticola Speg* 299.
Macroscepis obovata II,

191.
Macrosporieae Lindau 268,

269.
Macrosporium Fries 102,

209. 269.

— antennaeforme B. et C-
141.

— Cirsii Lindau* 299.

Macrosporium commune
Rabh. 170, 219.

— Dictamni Lindau* 299

— leguminis Phase oli P.
Henn* 299.

— nobile 206.

— Sparganii Lindau* 299.

— yerbae Speg* 299.
Macrothamnium Fleisch.

51, 59.
Madia sativa II, 846.
Madotheca ßaueri Schff'n.

41.

— capensis Gott. 56.

— ciliaris Nees 52.

— laevigata Dum. 69.

— platj-phylla Dum. 69.

— Porella Nees 69.

— subdentata Steph. 56.

— ulophylla Steph. 53.
Maerua mucronata Willi-
ams II, 352.

— rigida II. 231.

— Thomsoni T. Anders. II,
251.

Maesa 560. — III, 257.

— indica L. II, 613.

- lanceolata Forsk. III,
256.

— latifolia III, 257.
Maesobotrya N. A. II, 419.
Maesopsis berchemioides

Engl. II, 898.

— Eminii II, 236.
Magnistipula X. A. II, 496.
Magnolia 609. — P. 218.

X. A. II, 455.

— alternans Hr. 594.

— Campbellii II, 225.

— cor Ludw. 561.

— grandiflora III, 247.

— Kobus DC. III, 247, 466.

— hypoleuca 111, 247.

— Lennei III, 6.

- parviflora&eJZ. 111,247.

— virginiana 620.
Magnoliaceae 493,494,587,

614. 619. — II, 221, 455.
— 111. 23. 24, 222, 224,
247.

Mahernia ciliaris— Manissa dijani.

877

Mahernia ciliaris L. II, 530.

— hilaris Eckl et Zeijh. II,
530.

— humifnsaJve/Z. 11.530.

— humilisJS. Meyer H, 530.

— lacera E Meyer II, 530.

— linearis Harr. II, 530.

— myrrhifolia E. et Z. II,
5:50.

— nana E et Z. II. 530.

— oblongil'olia Hnrv. II,
530.

— pilosula Harr. II, 530.

— procumbensE'.Afeyerll,
530.

— scabra E. et Z. II, 530.

— sisymbrifolia Tvrc.z. II,
530.

— veronicifolia E et Z. II,
530.

— verticillata L II, 530.
Mahonia II, 156. — III,

150.

— aquifolium Xvft. 644.
— III, 58.

— arguta Hutch: III. 150.

— japonica II, 558.

— nepalensis II, 558.
Mahurea 455. — III, 218.
Maireella Syd. X. 6. 129.

299.

— maculans Syd* 299.
Majorana hortensis 111,489.
Malabaila porphyrodiscum

P. 315.
Malacantha N. A. II, 517.
Malache B. Vogel III. 52. —

X. A. IL 456.
Malachium III, 169.

— coeruleum Jaubert et
Spach II, 356.

Malacocarpus Courantii
Salm-Dyck II, 348.

— tephracanthus K.Schm.
II, 34s.

Malaxis X. A. II, 314. 317.

— angustifolia Blume II,
309.

— caespitosa Tliouars II,
309.

Malaxis gibbosa Blume II.
31 \.

— minima Blume II, 309.

— paludosa Sic II, 598. —
III, 109, 119.

Maicolmia K. Br. III, 191,

192.
Malesherbiaceae III, 220.
Mallomonas caudata 330.
Mallotus X. A. II, 419.
Malope 496.
Malortiea Tuerckheimi

Dammer III, 130.
Malpighia glabra II. 863.

— latifolia II. 822.

— spicata II. 822.
Malus 479. — II, 598.
Malva 496. - II, 137.
Malvaceae 427, 507. — II,

124. 190, 200, 201. 234,
250, 266, 455. — III,
58, 249.
Malvastrum II, 190. —III,
222, 251. — N. A. II, 456.

— hypomadarum III, 249,
250.

— tenellum P. 129.

— tricuspidatum II. 166.
Malvaviscus 496.

— integrifolius III. 251.

— palmatus III. 251.
Mamillaria 767. — II, 191.

- X. A. II, 349.

— Delaetiana QtieJd* III,
160.

— difficilis QueM II, 192.

— Eichlamii Quehl* II,
196. — 111, 160.

— elegans P. DC. III,
160.

— elongata var. anguinea
K. Schum. III, 160.

— gracilis Pfeif. III, 29,
161.

— Haageana Pfeif. III,
160.

— hamuligera III, 158.

— Haynii Ehrbg. II, 193.

— Joosensiana Quehl* II,
192. - III. 160.

Mamillaria perbella Hildm.
III, 160.

— phellosperma Evgelm.

II, 185.

— polyedra Mart. LH.
157.

— radians P. DC HI,
157.

— Schmidtii III, 29.

— Strobiliformis Schur II,
192.

— trichacantha K. Schum.

III, 158.

— Wriglvtii III, 157.
Mammea americana L. II,

900.
Mandevilla X. A. II. 332.
Mangifera indica L- 457.

— II, 822, 852, 893, 900.

— III, 42. 140. 170,438,
447. 449, 543, 681. — P.
289.

Manihot II. 201, 829, 830.

— III, 208, 623. 624.
936. 937, 938, 940, 946.

— X. A. II, 419. — P.
132. 303.

— catinga P. 320.

— dichotoma Ule* II, 201,
202. - 936, 946, 947. —
III. 204, 205, 687.

— Glaziovii Müll 457. —

II, 820, 930, 947. 948. —

III, 208, 487.

— heptaphylla Ule II, 201,
936, 946, 947. — III.
204.

— heterophylla III, 687.

— piauhyensis Ule II, 204.
936, 946. 947. — III, 59,
687.

— Teissonnieri Chev. II.
947. - - III. 59, 687.

— utilissima Pohl 11,828.

— III, 659.

— violacea II, 946. — III,
687.

Manioc II, S.V.). 860.
Manilloa P. 818.
Manissa dijani III. 101.

*7*

Manniophy ton — Mariscus Tabina.

Manniophyton \. A. II,

419.
Manotes sanguineolenta

II, 237.

Manulea N. A. II, 523.
Maoutia N. A. II, 540.
Mapania africana III, 81.

— baccifera III, 81.

— longa III. 81.

— longiflora III, 81.

— longifolia III, 81.

— Mannii III, 81.

— oblonga III, 81.

— palustris III, 81.

— pycnocepbala III, 81.

— Schornburgkii III, 81.

— superba III, 81.

— sylvatica III, 81.

— Wallichii III, 81.
Mapaniopsis effusa III, 81.
Malpighiaceae 434. — II,

116, 221, 455, 583. —

III, 219, 226, 247.
Maranta II, 244. — III,

108.

— arundinacea 541. — II,
217, 829, 862.

— indica II, 822.

— insignis III, 57.
Marantaceae II, 244, 307.

— III, 23, 108.
Marasmius 131.

— ßaumanni 131.

— Ulementsianus Sacc. et
Syd. 131.

— ( Botryomarasmius) Ed-
wallianus P. Henn. 131.

— equicrinis Müll. 130,
131.

— fulviceps dem. 131.

— longisporus Pect 131.

— oreades 182.

— plicatus 123.

— polycladus Moni. 131.

— purpureo-brunneolus
P. Henn. 131.

— repeus P. Henn. 131.

— rbodoeephalus Fr- 131.

— robalis Berk. et Br. 135.

— II, 848.

Marasmius Sacchari Wakk.
130, 212.

— Schiflneri Bres* 128,
299.

— sarmentosus Berk. II,
848.

— subrhodoeephalus
P. Henn. 131.

— trieborrhizus Speg. 131.
Marathrum Schinzianum

448.

— utile 448. — II, 275.
Marattia II, 740.

— alata II, 754.

— cicutaefolia Kaulf. II,
747. 754.

— Douglasii Bak. II, 745.

— fraxinea Sm- II, 757,
795.

— Kaulfussii J. Sm- II,
757.

— laxa II, 755.

— melanesica Kuhn II,
784.

— (Mesocarpus) Werneri
Rosenst* II, 783, 813.

Marattiaceae 619. — II,

747. - III, 226.
Marcetia III, 252. — N. A.

II, 458.
Marchantia 32, 652. — III,

26.

— Cagnii Gola* 85.

— euneiloba Steph. 652.

— geminata Nees 652.

— Munieri Viguier* 631.

— papyracea Golä'' 85.

— Pealei Knowlt* 582.

— polymorpha L- 33, 35,
46, 69. — II, 972, 974.

— Sellae Gola* 85.

— sezannensis Viguier*
582, 631.

Marchantiaceae 33, 49.
Marcbesinia Mackayi

(Hook.) Gray 47.
Marcgravia III, 251. —

N. A. II, 457.
Marcgraviaceae 718. — II,

266, 457.-111,219,251.

Marckea N. A. II, 528.
Mareya N. A. II, 419.
Marginaria II, 766.
Margyricarpus 478.
Marila III, 213.
Mariopteris acuta 638.

— muricata 576.
Mariscus N. A. II, 290.

— albescens Gaudich. II,
290.

— brunneus III, 79.

— cayennensis Urban II,
289.

— coloratus III, 79.

— Cooperi III, 79.

— cyperoides Urban II,
289.

— cyperinus III, 79.

— decompositus III, 79.

— Dregeanus III, 79.

— flabelliformis III, 79.

— flavus Vahl II, 289.

— fulvus III, 79.

— gracilis Vahl II, 289.

— isebnos III, 79.

— Jacquinii III, 79.

— Lancastriensis III, 79.

— longus III, 79.

— Manimae III, 79.

— Mutisii III, 79.

— ovularis var. robusta

in, 79.

— Panamensis III, 79.

— paniceus III, 79.

— pictus III, 79.

— pseudo-flavus III, 79.

— radicatus III, 79.

— Rebmannianus III, 79.

— riparius III, 79.

— rufus III, 79.

— setiglumis III, 79.

— Sieberianus Nees II,
289.

— Sieberianus Woodr. II,
289.

— Sieberianus var. evo-
lutior III, 79.

— squarrosus III, 79.

— Swartzii III, 79.

— Tabina III, 79.

Mariscus tetragonus — Mastigobryuni Bayleyanuiu.

879

Mariscus tetragouus III,
79.

— unibellatusZ)«te.e£ Gibs.
II, 289.

— unii'lorus III. 79.

— ürbani III, 79.
Marita 455.
Marquesia Gilg N. G. N. A.

II, 424.
Marraya exotica P. 306.
Marrubium N. A. II, 436.

— vulgare L. II, 258. 846.

— III, 228, 511, 512.
Marsdenia II, 335. — N. A.

II, 337.

— Leichhardtiana II, 914.

— truncata III, 147.

— verrucosa III, 146.
Marsilia II, 745, 748, 755,

758, 786, 787, 956. —

III, 401.

— Drummondii R. Br. II,
748.

— Fischeri Hieron. II, 795.

— Mearnsii Christ* II, 780,
813.

— muscoides Lepr. II, 795.

— quadrifolia L- II, 755,
764. 773, 974.

— trichopoda Lepr. II, 795.
Marssonia 130.

— Daphnes Sacc. 150.

— Delastrei Sacc. 108.

— Matteiana Sacc* 299.

— Panottoniana Berl. 110.

- III, 775, 849.

— Populi (Lib) Sacc. 142.

— Potentillae (Desm.)
Fisch. 268.

— truncatula Sacc 145.
Marsupella 39, 43.

— aquatica Schffn- 70.

— badensis Schffn. 65.

— commutata (Limpr.) 48.

— emarginataf" Ehrh.)Dum.
47.

— erythrorrhiza (Limpr.)
Schffn. 65.

— Funckü (W. etil.) Dum.
65.

Marsupella robusta (De
Not) Evans 49.

— sparsifolia Ldbg. 44.

— sphacelata (Gies.) Dum.
49.

— Sprue ei (Limpr.) Bern et
65.

— Sprucei (Limpr.) Steph.
41.

— Sullivantii (De Not.)
Evans 49.

— ustulata Spruce 48.
Marsupidium Mitt. 66.

— brevifolium Steph* 85.

— piliferum Steph* 85.

— tahitense Steph* 85.
Martensia 328, 374.

— fragilis 374.

— pavonia 374.
Martinezia X. A. II, 320.
Martretia Beule N. G. N. A.

II, 419.
Mascagnia III, 248.

— ambigua Gris. HI, 249.

— anisosepala Gris. III,
248.

— Barclay an&Ndz. III, 249.

— brevifolia Gris. III, 248.

— Buchii Urb. et Ndz. III,
248.

— chlorocarpa Gris. III,
248.

— complicata Ndz. 111,248.

— cordifolia Gris. III, 248.

— cynanchifolia Gris. III,
248.

— Doniana Gris- III, 248.

— hippoerateoides Ndz-

III, 249.

— jamaicensis Urb- et Ndz.
III, 249.

— leucanthele Gris. III,
248.

— lÜaccina Ndz. III, 248.

— macrandena Ndz. III,
248.

— macrodiscajVd^.111,248.

— macroptera iVdz. 111,249.

— metallicolor Ndz. III,
248.

Mascagnia mexicana Ndz.
III, 249.

— multiglaudulosa Ndz.
III, 248.

— nervosa Ndz. III, 248.

— nitida Ndz. III, 248.

— ovatifolia Gris. 111,248.

— polybotryaiVtf*. 111,248.

— Pringlei Ndz. III, 248.

— psilophylla Gris. III,
249.

— pubiflora Gris. HI, 249.

— salicifolia Gris. III, 249.

— sepium Gris. III, 249.

— septentrionalisJWZz.III,
249.

— sericans Ndz. III, 248.

— Spruceana Ndz. III, 248.

— tenuii'olia Ndz. III, 248.

— vacciniifolia Ndz. III,
248.

— violacea Ndz. III, 248.

— volubilis Ndz. III, 249.
Mascarenhasia II, 937, 951.

— elastica II, 904, 951,
953.

Maschalocephalus Dink-

lagei II, 242.
Masdevallia III, 116. —

N. A. II, 315.

— macrura Rchb. f. III, 117.

— muscosa Llchb. /". 111,1 17.

— simula Rchb. f. III, 117.

— velifera III, 118.
Massaria theicola Petch

822. — II, 848.
Massariella palmarum
Maffei* 103, 299.

— yerbae Speg.* 299.
Massovia lanceolata C.

Koch II, 284.
Mastigobrvum Nees 66.

— aeinaeiforme Steph* 85.

— angustisedens Steph*
85.

— apiculatum Steph* 85.

— armatistipulum Steph*
85.

— asperrimum Steph.* 85.

— Bayleyanum Steph* 85.

880

Mastigobryum Beecheyanuin— Mastigobryum Whitfordii.

Mastigobryu.nl Beeeheya-
mira Steph* 85.

— Bernieri Step]/.* 57, 85.

— Bescherellei Steph.'* 85.

— borneense Steph* 85.

— Braunianum Steph* 85.

— Burchellii Steph.* 85.

— canelense Steph* 85.

— Oardoti Steph* 85.

— caudatum Steph.* 85.

— caudistispulum Steph*
86.

— cerinum Steph* 86.

— confertii'olium Steph*
86.

— constrictum Steph* 86.

— cornutistipulum Steph*
86.

— corticolum Steph* 86.

— crassitextum Steph* 86.

— cristipulum Steph* 86.

— cucullistipulum Steph*
86.

— cuspidatum Steph* 86.

— Deplanchei Gottsehe 57,
86.

— descissens Steph* 86.

— Didericianum Gotische
86.

— Didricbsenii Steph* 86.

— Eggersianum Steph*
86.

— elegans Colenso* 86.

— Everettii Step7t.* 86.

— fasciculatum Steph* 86.

— Faurianum Steph* 86.

— Fendleri StepTi.* 86.

— fissifolium Steph* 86.

— flavo-virens Steph* 86.

— Fleische ri Stfep7t.* 86.

— Formosae Steph.* 86.

— Fruhstorferi Steph.* 86.

— Gammianum Steph* 86.

— Geheebii Steph* 86.

— Graeffei Steph* 86.

— grandirete Steph* 86.

— grandistipulum Steph*
86.

— Grifft thianumS%>/j.*86.

— guadalupenseS^/i.*86.

Mastigobryum halconien-

sis Steph* 86.

— hamatifolium Stfep7i.*86.

— hamatum Steph* 86.

— Hansenii Steph* 86.

— hawaicum Steph* N6.

— inaequale Steph* 86.

— inaequitextum Steph."
86

— Karstenii Steph* 86.
- Kernii SfepÄ.* 86.

— Kirkianum Steph* 86.

— Kowaldii SfapÄ * 86.

— laceratum Steph.* 87.

— lacerostipulum Steph*
87.

— lancifolium Steph* 87.

— latifolium StepÄ.* 87.

— Lenormandii Steph* 87.

— Levieri Steph* 87.

— lobulistipum Steph* 87.

— longicuspe Steph* 87.

— Lnerssenii Steph* 87.

— Macgregorii Steph* 87.

— malaccense Steph* 87.

— marginatum Steph* 87.

— Merrillanum Steph* 87.

— mindorense Steph* 87.

— Modiglianii Steph* 87.

— marokense Steplt* 87.

— Motelayi Ste/i/j.* 87.

— nagasakiense S(eph.*87.

— natunense Steph* 87.

— obcuneatum Steph* 87.

— olivaceum Steph* 87.

— oshimense Steph* 87.

— ovifolium Steph* 87.

— pallide-virens Steph*
87.

— palmatifiduru »S'^7; *87.

— Parisii Sfejs/t.* 87.

— parvitextum Steph* 87.

— parvum Steph* 87.

— paucidens Steph* 87.

— Pearsoni Steph* 87.

— peliucidum Steph* 87.

— Perrotanum Steph* 87.

— Perrottetii Steph.* 87.

— pinniforme Steph* 52,
87.

Mastigobryum platycne-
mum Schwgr* 87.

— Puiggarii Steph-* 87.

— pulchellutn Steph* 87.

— pulvinatum Steph* 87.

— Quelchii Steph* 87.

— Rabenhorstii Steph* 87.

— Rechingeri Steph* 87.
- recurvolimbatumSiep/i.*

87.

— recistipulum Steph* 87.

— revolutum Steph* 87.

— rigidum Steph* 88.

— Robertii Steph* 88.

— roraimense Steph* 88.
rotundistipulum Steph*

88.

— samoanum SfepA * 88.

— sandvicense Gottsche*
88.

— Schadenbergii Steph*
88.

— Sem per i Steph* 88.

— serrifolium Steph* 88.

— Seychellarum Steplt.*
88.

— shusensicum Steph* 88.

— siamense Steph* 88.

— sikkimense Steph* 88.

— spectabile Steph.* 88.

— Spruceanum Steph* 88.

— squarrosum Steph* 88.

— Staudtianum.jStfepft.*88.

— subaequitextum Steph*
88.

— subintegrum Steph* 88.

— takeanum Steph* 88.

— tenue Steph* 88.

— tenuistipulum Steph*
88.

— tricuspidatum Steph*
88.

— trifidum StfepA.* 88.

— vastifolium Steph* 88.

— verticale Steph* 88.

— vitiense MM.* 88.

— vittatum Steph. 57.

— Wattsianum Steph* 88.

— Wichurae StepÄ.* 88.

— Whitfordii S/ep7/.* 88.

Mastigobryuni Yoshinaganuin — Medicago scutellata.

881

Mastigobryum Yoshinaga- Maxillaria Ferdinandiaaa

num Steph.* 88.
Mastigolejeunea humilis
Gottsche 52.

— nigra Steph. 56.

— taitica Steph." 88.
Mastigophora 350, 367.

— caledonica Steph.* 88.

— diclados (Enal.) 57.
Masfcigosporium album

Riess 146.
Mastixia III, 221.
Mastixieae III, 221.
Mastogloia deliciosaPoni*

II, 645.

— Hornigii Pant II, 645.
Mastophora 377.

— conjuncta Foslie 378.

— melobesioides 377.
Mastopoma Card- 59.
Matayba apetala Radlk.

II, 899.
Matiaia paraensis P. 298.
Matonia FoxvvorthyiCo/?eZ.*

II, 782, 808, 813.

— pectinata II, 752.

— sarmentosa Bak- II,
782.

Matricaria N. A. II, 387.

— ambigua Ledeb. III,
174.

— Ohamomilla L- II, 137.
— III, 9.

— nygrophila Bornm. II,
379.

— inodora L. II, 590. —

III, 35.
Matteuccia II, 765.
Mattbiola R.Br. III, 191,

192.

— incana L. 768. — II,
554.

— oyensis III, 193.
Matula 262.

Maturea nigrescens Benth.

II, 520.
Maxillaria II, 582. — N. A.

II, 315.

— Binoti De Wild.* III,
122.

III, 122.

— nana Hook. II, 583.

— Lehmanni Rchb. f. II,
582.

— Sanderiana Rchb. II,
121. — III, 118.

— venusta Linden et Rchb.
II, 582.

Mayaca Baumii II, 242.
Mayacaceae II, 242.
Mayna ovata Bth. II, 424.
Maytenus III, 58. — X. A.

II, 358.

Mazosia strigulina var.

radians (Müll. Arg.) A.

Zahlbr. 20.
Mazus Lour. II, 157. —

III, 321. — N. A. II,
523.

— Bodinieri Bonati* III,
321.

— caducifer Hance III,
321.

— Cavaleriei Bonati* III,
321.

— Delavayi Bonati* III,
321.

— dentatus Wall III, 321,

— divaricatus Bonati* III-
321.

— elongatus Bonati* III,
321.

— EnglerianusJB<mafa'*III,
321.

— Fargesii Bonati* III,
321.

— Fauriei Bonati" III,
322.

— gracilis Hemsl. III, 322.

— Harmandi Bonati* III,
321.

— japonicus Bonati* III,
321, 322.

— lancifolius Hemsl. III,
322.

— Lecomtei Bonati* III.
322.

— longipes Bonati* III,
321.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 6.

Mazus macranthus 7>f'eZs
III, 321.

— macrocalyx Bonati* III
321.

— procumbens Sems?. III,
321.

— pulchellus Hemsl. I II,
321.

— pumilio Brown III,
321.

— rugosus L. III, 321.

— stacbydifolius Maa;. III,
321.

— surculosus Don III,
321.

— Wilsoni Bonati* III.
321.

Mazzantia Moni. 115.
Meconopsis II, 163.

— sinuata III. 270.

— — var. latifolia Prain
III, 269.

— speciosa Prain* III,
270.

Mecranium III, 59. — X- A.

II, 459.
Medemia II, 241.

— Argun P. G. II, 232.
234, 903.

Medeola virginiana L. 442.

— IL 147. — III, 106.
Medicago 498. — II, 160,

847. — X. A. II, 446.

— denticulata 499. — II,
152, 261, 663.

- falcata L. III, 242.

— litoralis Rohde II, 626.

— lupuliaa L. III, 234.

— maculata 499. — II.
255.

— minima Lmk. II, 619.

— III, 242.

— ononidea De Coincy II,
619. — III, 242.

— orbicularis II, 25.">.

— radiata L. III, 242.

— sativa L. 499. — II,
39, 40, 151. 160, 224,
556, 618, 842.

— scutellata II, 255.
2. 12.1 56

882

Medinilla — Melicytus mioranthus.

Medinilla N. A. II, 459.

— bracteata Cogn. II, 459.
Mediocalcar III, 121.
Medullosa 552, 556, 557.

— Ludwigi i 552.
Medusagyne III, 222.
Megabaria N. A. II, 419.
Megalonectria madagas-

cariensis P. Henri* 138,
299.

— pseudotricha Speg. 135.

— yerbae Speg* 299.
Megalopteris 613.
Megaphyton 607.

— didymogramma Gr.
Enry 626.

— insigne Lesqu. 626.
Meibomia II, 605.

— canescens var. hirsuta
Vau II, 444.

— longifolia Vau II, 444.
Meiocarpidium N. A. II,

329.
Meiotheciopsis Broth. N. G.
59, 78.

— lageniformis (C. Müll.)
Broth* 78.

Meiothecium Mut. 59.

— Rechingeri Broth* 78.
Melachroia xanthomela

Boud. 150.
Melaleuca III, 2150. 423.

— linearifolia var- alterni-
folia II, 255.

— nodosa Sm. III, 423,
424.

— uncinataß.ßr. 111,423.
Melampsora 251, 252, 833.

— Amygdalinae 252.

- betulina (Pers.) Desm.
251.

— Bigelowii Thüm. 141.

— Hypericorum (DC)

kroet. 148.

— Larici-Oaprearum 252.

— Larici-Tremulae Kleb.
252.

— laricis-daphnoidis Kleb.
144.

— RostrupiiGr. Wagner\±%.

Melampsora Tremulae Tul.

148.
Melampsorella cerastii

(Pers.) Schroet. 143.
Melampsoridium Betulae

(Schum.) Arth. 141.
- betulinum (Pers.) Kleb.

148.
Melampyrum 526. — II,

158, 164, 576, 577. —

III, 323, 324. — N. A. II,

523.

— arvense 525, 746. — II,
576. - III, 329.

— barbatum 526. — II,
576.

— cristatum III, 386.

— nemorosum 526. — II,
576.

— pratense L. 526, 811.

— II, 143, 576. — III,
323, 324.

— silvaticum h- 526, 746.

— III, 329.
Melanconiaceae 113, 119,

128, 138, 140, 846.
Melanconis stilbostoma

(Fr.) Tul. 149.
Melanconium Hederae

Preuss 108.

— bysterioides P. Kenn*
299.

— juglandinum Kze. 150.

— melanoxanthumJ3.e2.Br.
270, 289.

— Sacchari II, 875.
Melandryum 733. — N. A.

II, 355.

— album Grcke- II, 554.

— alpestre Dus. III, 168.

— densifolium Dus. III,
168.

— filifolium Dus. III, 168.

— KoslowskiiDtts. III, 1 68

— rubrum Grcke- II, 590. —

III, 383.
Melanomma Oaesalpiniae

P. Kenn* 299.

— Gibellianum Sacc. 105.

— mate Speg* 299.

Melanomma Xylariae

v. Höhn.* 128, 299.
Melanophylla III, 221.
Melanopsamma 139.

— yerbae Speg* 299.
Melanopsichium austro-

americanum (Speg.) G.

Beck 141, 147.
Melanosinapis Schimp. III,

193.
Melanospora macrospora

Karst. 144.

— vervecinaf Desm.) Fuckel
144.

Melanotheca 15.
Melasmia acerin a Leu- 145.
Melaspilea 15.
Melastoma N. A. II, 459.

— denticulatum Labill-
457.

— normale II, 223.
Melastomataceae II, 201,

209, 250, 457. — III, 59.

251.
Melastomites 560.
Melia Azadirachta II, 827.

— Azedarach L. 457. —
II, 166. — III, 252.

— japonica Don. III, 252.
Meliaceae 428. — II, 206,

461. — III, 219, 223,

252.
Melianthaceae III, 223,

224, 252.
Melica altissima II, 716.

— ciliata II, 716.

— nutans 11,716. — P.177.

— primaeva Brues et
Beirne* 554.

— racemosa Thbg. III, 87.

— uniflora Retz II, 716.
Melicocca bijuga L. II,

899. — P. 277.
Melicope N. A. II, 512.

— novoguineensisFaMII,
307.

— simplex II, 264.
Melicytus macrophyllus

II, 263.

— micranthus II, 264.

Melilotus — Merulius subambiguus.

883

Melilotus II, 842.

— albus III, 432. — P. 118,
320.

— indicus All. II, 615.

— officinalis II, 842.

— segetalis II, 836.
Melinis minutiflora Beauv.

II, 838.
Meliola 175, 817. — II,
880.

— acamptinga Speg* 299.

— ampbitricha.Fr. 131,146.

— aracbnoidea Speg. 147.

— atricapilla Starb- 131.

— dracaenicola Pat- et
Har* 139, 299.

— glabriuscula Speg* 299.

— Niessieana Wint. 108.

— polytricha K. et C var.
flexuosiseta Speg.* 299.

— Psidii Fr. 147.

— yerbae Speg* 300.
Meliosma 467. — HI, 308.

— A. N. II, 514.

— myriantha S. et Z- III,
308.

— rigida II, 162.

— tenuis Max. III, 308.
Melissa officinalis L. III,

536, 616.
Melittis Melissophyllumi.

521.
Melosira 349, 378.
Melobesia amplexifrons

Mos. 377.

— confervicola 374.

— myriocarpa Cm. 378.

— zonalis Cm. 378.
Melocactus II, 102, 191,

195. — N. A. II, 349.

— guatemalensis Gurke et
Eichlam II, 349. — in,
158, 159, 195.

— Maxonii Gurke HI, 159,
195.

— tephracanthus Link et
Otto II, 348.

Melocbia II, 190.

— odorata L. fil. 458. —
III, 655.

Melodorum X. A. II, 329.
Melolobium N. A. II, 446.

— Wilmsii Harms III, 231.
Melophia Eugeniae Ferd

et Wge* 300.
Melosira II, 630, 633, 634,
635, 636, 637, 638.

— ambigua (Grün.) O.
Müller II, 636, 640.

— arenaria Moore II, 638,
645.

— crenulata II, 633, 634.

— distans Ehr. 583.

— granulataf Ehr bg.) Ralfs
II, 630, 633, 636, 637.

— ikapoensis O- Müll,
var. procera 0. Müll. II,
638.

— islandica subsp. helve-
tica 0. Müller II, 634.

— nyassensis O. Müller II,
638, 645.

— scabrosa Oestrup* II,
638, 645.

— varians Ag. II, 629,
630, 634, 635, 637, 639.

Melotbria II, 207. — A. N.

II, 405.
Memecylon N. A. II, 459.
Menabea venenata III, 146,

147.
Meniscium Sehreb. II, 806.
Menispermaceae II, 200,

221, 462. — HI, 224,

252.
Menispermum III, 253.

— canadense L. — III,
426.

Menopon pallidum P. 235.
Mentha III, 390. — N. A.
II, 436.

— aquatica L. U, 559. —
1U, 25, 390.

— arvensis III, 390.
var. Penardi Briq.

II, 436.

— austriaca III, 40.

— canadensis var. glabrata
Benth. II, 436.

— piperita III, 536.

Mentha rotundifolia L. II»
596. — III, 390.

— sativa III, 390.

— silvestris III, 390.

— viridis III, 390, 536.
Menyanthes III, 39.

— trifoliata L. 646. - 11,
176, 596. — III, 35, 41,
210.

Mercurialis N. A. II, 419.

— annua L. III, 27, 29,
383.

Merendera II, 151. — III,
101.

— caucasica II, 151.

— Raddeana II, 151.
Meridion circulare (Grev.)

Ag. II, 629, 630, 640,
643.

— constrictum Ralfs II,
640.

Meringosphaera 366.

— radians Lohm* 333,
384.

— serrata Lohm* 333, 384.
Merremia III, 186. — N. A.

II, 398.

— Riedeliana Hallier IL
398.

Merrilliobryum Broth. N. ö.
51, 78.

— fabronioides Broth.*78.
Merrilliopeltis P. Kenn. N.

G. 133, 300.

— Calami P. Renn* 300.
Mertensia N. A. II, 346.

— racemosa Benth. II, 557.

— Sendtneri Janka II,
346.

— serbica Janka II, 346.
Merulius 107, 224, 836.

— chlorinus Pat* 159,
300.

— lacrymans (Wulf.)
Schum. 222, 223, 225,
226, 834, 835.

— serpens Tode 144.

— silvrester 835.

— subambiguus P. Kenn.
147.

56*

884

Meryta macrophylla — Microlejeunea magnilobula.

Meryta macrophylla Seem-

457.
Mesanthernum II, 228. —

IU, 85. — N. A. II,

292.

— alpestre III, 85.

— austräte III, 85.

— Boni III, 86.

— Brownianum III, 85.

— Burguerianum III, 85.

— Collettii III, 85.

— Duthiei III, 86.

— echinulatum III, 86.

— fluviatile III, 85.

— gracile III, 85.

— Henryannm III, 85.

— Hookerianum III, 85.

— intermedium III, 85.

— longifolium III, 85.

— miseum III, H5.

— naufciliforme III, 85.

— nigrum III, 85.

— nipponicum III, 85.

— odoratum III, 86.

— oryzetorum III, 85.

— quinquangulare III, 85.

— radicans Koern. III, 84.

— setaceum III, 85.

— sexangulare III, 86.

— Sieboldianum III, 86.

— truncatum III, 86.

— ubonense III. 81.
Mesembryanthemum II,

81, 838. — III, 137, 139,
280. - - N. A. II, 327.

— Hookeri III, 137.

— Pillansii III, 187.

— pseudotruncatellum III,
137.

— pyropeum III, 139.

— truncatellum Raw- III,
137.

— tuberosum II, 838.

— Wettsteini III, 137.
Mesocarpus 332.
Mesochlaena larutensis

(Bedd.) v. A. v. R. II,
781.

— — var. borneensis v- A.
v. R:> II, 781.

Mesomelaena stygia III,

80.
Mesophylla gracillima 39.
Mespilus 479. — P. 247.

— apiifolia Marsh. II, 493.

— germanica L. HI, 402,
576.

Mesua ferrea L. II, 851.

- III, 544.
Metaclepsydropsis Bertr.

N. G. 550.
Metalasia N. A. II, 387,
388.

— pallida Rolus III, 174.

— strictifolia Rolus III,
174.

Metanarthecium foliatum

II, 214.
Metasphaeria 209.

— aquatica Rat* 159, 300.

— gaurina E. et E. 141.

— mate Speg.* 300.

— paulistana Speg.* 300.

— sepalorum Lind et
Vleugel* 300.

— Usteri Speg* 300.
Metastelma III, 59. — N. A.

II, 337.

— bahamense Northrop II,
337.

Meteorium Miquelianum

(C M.) Rroth. 52.
Metopium N. A. II, 328.

— III, 58.

— Linnaei Engl. II, 328.
Metrosideros II, 262.

— aromatica Salisb. III,
261.

— florida II, 262.

— lucida III, 260.

— robusta II, 262.

— scandens II, 262.

— tomentosa II, 262, 263.
Metroxylon laeve II, 862.

— Rumphii II, 862.
Metzgeria Raddi 64.

— conjugata Lindb. 54.

— bamata Lindb- 64.

— pubescens (Schrank)
Raddi 49.

Metzgeria Ruwenzorensis

Gola* 88.
Meum 504.

— athamanticumJrtc5.HI.
337.

Meyenia III, 135.
Mezoneurum N. A. 11, 446.
Miadesmia 619.

— membranacea Rertrand
546.

Miarus (Jampanulae II,

614, 626.
Michelia I. A. II, 455.
Michenera Artocreas R. et

C. 174.
Miconia III, 59, 251. —

N.A. II, 459, 460.

— minutiflora DG II, 622.
Miconiiphyllum australe

Dus* 559.
Micraira subulifolia II,

839.
Micrasterias 330, 364.

— foliacea 364.

— inflata Remard* 384.
Microcachrys III, 70.
Microchloa altera Stapf III,

87.

— cal'fra Nees III, 87.
Micrococcus candicans 698.

— rosaceus 709, 710.

— sulphureus 709.
Microcyclus 127.
Microcystis 345.

— maxima Remard* 384.

— minima Remard* 384.
Microdesmis N. A. 11,419.
Microdiplodia Thalictri

Sacc* 300.
Microdiplosis Tav. N. G.
II, 625.

— zambezensis Tav*' II,
625.

Microglossum 122.

— longisporum Durand*
122, 300.

Microlejeunea laete-virens
(Nees et Moni.) Evans
63.

— magnilobula Gola* 88.

Microlejeunea sauioaoa — Mimusops excisa.

885

Microlejeunea samoana

Steph.* 88.
Microlepia II, 765.

— platyphylla II, 755.

— speluncae (L.) Moore
II, 780, 794.

— todayensis Christ* II,
780, 813.

Microlicia III, 252. — N. A.

II, 460.
Micromelum N. A. II, 512.

— pubescens Blume 458.
Micromeria II, 148. —

IU, 228. — N. A. II,
437.

— biflora Benth. II, 557.

— microphylla Benth. II,
438.

— Pitardii Bornm* III,
228.

— terebinthacea II, 148.
Micropeltis 128.

— albo-ostiolata P. Kenn.*
300.

— bambusicola P. Kenn.
819.

— HirtellaeP.Ämw.*300.

— Wettsteinii v. Höhn*
128, 300.

Micropera Abietis Rostnq)

105.
Mierophiale lutea 22.
Microphyma graminicola

v. Höhn.* 128, 300.
Micropleura 111, 341.
Microporus flabelliformis

( KDvar. crenato-lobatus

Fat* 159, 300.
Microrhamnus franguloi-

des Max. III, 289.
MicroschoenusDuthieiM,

80.
Microsiphoneae Vuill. 267,

274.
Microsphaera 265, 843.

— Alni f Wallr.) Salm. 141,
264, 265, 843. — II, 972.

— Alni (Wallr.) var.
pseudo-LoniceraeSaZm.*
136, 300.

Microsphaera Alni uar.
Yamadei Salm.* 136,
300.

— diffusa C. et P. 141.

— extensa 264.

— Grossulariae 119.
Microspora 346.
Microsporon Audouini 199.
Microsporum lanosum 201.
Microstachys 453.
Microsteira 434. — III,

248.
Microstephanus cernuus

III, 147.
Microsteris glabella Greene

II, 478.

— humilis Greene II, 478.
Microstroma Juglandis

(Ber.) Sacc. 142.
Microstylis III, 117, 121.
- N. A. II, 315.

— alagensis Arnes II, 314.

— binabayensis Arnes II,
314.

— carinata Rchb. fil. II,
314.

— dentata Arnes II, 314.

— flavescens Lindl. II,
314.

— Hutchinsoniana Arnes
II, 314.

— Merrillii Arnes II, 314.

— mindorensis Renale II,
314.

— monophyllos III, 109.

— quadridentata Arnes II,
314.

Microtaenia cymosa III,

543.
Microthamnium Mut. 58,

59.

— curvatum West* 384.

— Naegelii 59.
Microthelia anthracina

(Ami) 11.
Microthyriaceae 128, 138.
Microthyrium Alsodeiae

P Renn* 300.

— applanatum Rehm* 146,
300.

Microthyrium disjunctum
Rehm* 146, 300.

— Lauraceae P. Renn.*
300.

— LaurentiiP. Kenn* 139,
300.

— leopoldvilleanum
P. Kenn* 139, 300.

— mbelenseP.ifenw.*300.
Microtropis N. A. II, 358.
Mikania II, 620. - P. 298.

- N. A. II, 388.

— scandens II, 233.
Mikiola orientalis Kieff.*

II, 613.

Milium multiflorum II,

839.
Milleria quinquefolia L.

III, 56.

Millettia P. 308, 309. —
N. A. II, 447.

— xMerrillii P. 307.

— pachycarpa II, 162.
Milowia amethystinaMass.

108.
Miltonia Koezlii III, 120.

— vexillaria III, 114, 115.

— Warscewiczii III, 109.
Mimosa 509, 733. — III,

234. — N. A. II, 447.

— asperata L. II, 232,
837.

— pudica L. 668, 689,
734, 735. — II, 222. —
III, 23.

— punctata Blanco II,
440.

— ramansoana P. 313.

— sensitiva 668.

— Spegazzinii 735.

— virgata Blanco II, 440.
Mimuleae III, 50.
Mimulus 735, 762.
Mimusops II, 227. 921,

954. — III, 59. — N. A.
II, 517.

— cuneifolia Bäk. II, 898.

— djak III, 497.

— djave III, 678.

— excisa JJrb. II, 900.

886

Mimusops globosa— Monogramma.

Mimusops globosa Gaertn.
II, 938.

— Kümmel Bruce III,
312.

— lacera II, 235.

— Menyhartii Engl. II,
624.

— multinervis Bak. II,
898.

— Sideroxylon Pierre II,
900.

Minuartia N. A. II, 355.
Miquelia cordata King II,

890.
Mirabilis II, 962. — III

262, 404. — N. A. II,

467.

— Jalapa X tubiflora II,
960.

Mirtana 111, 252.
Mitchella repens II, 147.
Mitella II, 214.

— japonica II, 214.
Mitracarpus III, 59. —

N. A. II, 507.
Mitragyna III, 543.

— parvifolia Korth. III,
543.

— speciosa Korth. II, 892.
— III, 575.

Mitrasacme III, 245.
Mitreola III, 245.
Mitrephora N. A. II, 330.
Mitrula 122.

Miyoshia Kaw. N. G. 134,
301.

— fusispora Kaw* 134,
301, 819.

Mixoneura neuropteroides
Göpp. 638.

— obliqua Brongn. 637.
Mizzia Schuster N. G. 616.
Mniobryum 39.

— atropurpureum 39.
Mniodendron 51.
Mnium 33, 35, 641. — II,

973.

— excurrensPar.et Broth*
53, 78.

— hornum 35. — II, 973.

Mnium inclinatum 40.

— javense Fleisch. 69.

— punctatum Hedw- 70.

— riparium Mut. 61.

— Seligeri 39.

— serratum 61.

— subvesicatum Par* 52,
78.

Modecca abyssinica Hchst.
538. — III, 270.

— Wightiana Wall. II, 715.
Modiola II, 190.
Moehringia 504. — N. A. II,

356.

— Ponae Fenzl II, 626.
i — trinervia L. II, 576.

Moenchia N. A. II, 356.
Moerkia Gotische 64.
Mohria II, 767.

— caf fromm (L.) Desv. II,
795, 797.

Molinia N. A. II, 297.

— capillaris Hartm. II,
293.

— coerulea Mnch. III,
622.

— distans II, 296.
Mollinedia 614.

— seymourensis Dus* 559.
Mollisia allantoidea Syd*

301.

— atrata (Pers.) Karst.
149.

— citrinuloides Rehm 149.

— lignicola Phill. var-
viticola P. Henn.* 301.

— minutella (Sacc.) Rehm
143.

/b.spiraeaecola Rehm

143.
Mollisiopsis Rehm N. G.

241, 301.

— subcinerea Rehm* 301.
Mollugo L. II. 201, 327.

— III, 139.
Molopospermum cicuta-

rium III, 56.
Moltkia aurea Sendtn. II,

346.

— Sendtneri ftows. II, 346.

Momordica Oharantia L.

III, 196.
Monadaceae 348.
Monadenia II, 244.
Monarda didyma L. III,

632.

— fistulosa III, 230.
Monas Dünalii 346.
Monascus purpureus Went

195.
Monechma N. A. II, 325.
Monilia 181, 240, 267, 270,

820.

— Amelanchieris Reade*
240, 301.

— Arnoldi Mangin etPat*

270, 301.

— Candida 157, 176.

— cinerea 217, 274.

— Corni Reade* 240, 301.

— fructigena 217, 235.

— laxa 217.

— Polycodii Reade* 240,
301.

— Seaveri Reade* 240,
301.

— Vaccinii-corymbosi
Reade* 240, 301.

Moniliopsis Ruhl N. G.

271, 301.

— Aderholdii Ruhl* 271,
301.

Monimiaceae II, 462. —
III, 222, 223, 224, 253.

Monniera acuminata Ktze-
II, 520.

— amplexicaulis Michx.
II, 520.

— carolinianaiTfee.il, 520.
Monnina 437. - - III, 278.

N. A. II, 478, 479.
MoDoblepharideae 164.
Monochoria vaginalis II,

584.
Monocosmia III, 281.
Monodora 494.

— brevipes II, 905.

— myristica Dun. II, 236,
898.

Monogramma II, 766.

Monographus— Mucuna acuminata.

887

Monographus Fuck. 115.
Monoicomyces furcillatus

Thaxt. 296.
Mononvillea II, 404.
Monophrynium N. A. II,

307.
Monophyllaea Horsfieldii

R. Br. II, 989.
Monoporus A. DG III, 258.
Monosporium agaricinum

Bon. 149.
Monotes II, 246. 407.

III, 199.

— Engleri II, 246.

— Kerstin gii II, 246.
Monotropa Hypopitys L-

III, 35.
Monsonia 467. — III, 226.

biflora DC. III, 211.
Monstera Adans- II, 121.

— III, 76. — P. 303. —

N. A. II, 282.

— deliciosa Liebm. II, 871 ,
872. — III, 42.

— dilacerata II, 122.

— Friedrichsthalii II, 122.

— pertusa II, 122.

— pinnatifida Schott II,
282.

Monsteroideae III, 75, 76.
Montagnella heliopsidis

(Schw.) E. et E. 142.
Montagnites radiosus

Hollös 102.
Montanoa bipinnata III,

174.

— mollissima III, 174.

— tomentosa III, 174.
Montia III, 281.

— minor Gmel. II, 580.

— obtusata Beller II, 480.

— rivularis Gmel. II, 580,
590.

Montrichardia arborescens
Schott II, 837. — P. 281.

Moraceae 614. — II, 245,
250, 463. — III, 253.

Moraea II, 243.

— bicolor III, 57.

— iridioides III, 97.

Morchella 243.

— esculenba(L-) Pers. 149.
var. rotunda Pers.

149.

— semilibera DC 239.
Moricandia DG III, 193.
Moriera stenoptera P. 301.
Morina persiea L. II, 154,

556.
Morinda bracteata Roxb.
var. celebica Miq. III,
305.

— citrifolia L. 458, 488.

II, 166, 220. — III,
307, 589, 599, 666.
- longiflora II, 237. —
III, 425.
Moringa 799. — III, 219,
224, 256, 547. N. A.

II, 464.

— aptera Grtn. II, 464.

— arabica II, 231.

— pterygosperma Gaertn.

II, 822, 852. — III, 546,
547.

Moringaceae II, 464. —

III, 256.

Morisia Gay III, 193.
Morisonia II, 352.
Morkillia Böse et Painter

N. G. N. A. II, 550.
Mormodica balsamina II,

231.
Moronobeae III, 213.
Mortierella 233.
Mortierellaceae 230, 233.
Morus II, 14, 984. — P.

216.

— alba L. 719. — II, 685,
872. 901. — P. 282.

— — var. stylosa Bur. III,
253.

— altissima Miq- II, 463.

— indica II, 166.

— nigra L. II, 872, 901.

— rubra II, 901.
Moschopsis N. A. II, 350.

— spathulata Dus- III,
161.

— trilobata Dus- III, 161.

Mosla japonica III, 526.
Mosquitoxylum jamai-

cense Kr. et Urb. II,

900.
Motandra guineensis II,

237.
Mougeotia 348. 363, 786.

— producta WesF: 347,384.
Mourera aspera III, 275,

276.

— fluviatilis Aubl. 447,
448, 534. — III, 274,
275, 276.

Mourinia Ulei Pilger II,

620.
Mucedinaceae 138.
Mucor 151, 153, 154, 184,

231, 232, 233, 271. —

II, 849.

— dimorphosporus
Lendner* 231, 233, 301.

— flavus 201.

— genevensis Lendner*
231, 233, 301.

— globosus III, 621.

— Jansseni Lendner* 233.

— lamprosporus Lendner*
231, 233, 301.

— lausannensis Lendner*
231, 233, 301.

— neglectus III, 621, 622.

— pirelloides Lendner*
233.

— Mucedo 103, 153, 154,
184, 201.

— piriformis A. Fischer
156. — III, 621, 622.

— racemosus 175, 184,
194. — III, 621, 622.

— spinescens Lendner*
231, 233, 301.

— spinosus 194.

— stolonifer 712.

— Syzygites De By. 750.
Mucoraceae 232.
Mucorineae 165.
Mucuna III, 9, 58, 237. —

N. A. II, 447.

— acuminata Merrill II,
447.

888

Mucuna Bodinieri— Myrica Wolti.

Mucuna Bodinieri III, 237.

— Championi DI, 237.

— gigantea DC- 457.

— macrobotrys III, 237.

— Martini III, 237.

— pruriens II, 220.

— sempervirens III, 237.

— urens Medic. 457. —
II, 115. — III, 206.

— utilis II, 829, 860.
Muhlenbergia N. A. II,

297.

— calamagrostidea R. B.
K. III, 56.

— Schreberi subsp. pa-
lustris Scribn. II, 297.

Mukia scabrella Arn. II,

852.
Mulinum III, 341.

— spinosum II, 103.
Mundulea striata D. et D.

435, 459. — III, 231.
Muraltia N. A. II, 479.
Murraya exotica P. 290.

— Koenigii Spreng. II, 556.
Musa 370, 460. — II, 243,

576, 820. — III, 27. —
P. 302. — N. A. II, 308.

— Arnoldiana 459.

— Buchananii II, 867.

— Oavendishii II, 867.

— chinensis II, 867.

— coccinea 459.

— discolor II, 867.

— Ensete 459, 720. — II,
250, 867.

— Fehi II, 867.

— Gillettii II, 867.

— japonica II, 867.

— Livingstoniana II, 867.

— oleracea II, 867.

— paradisiaca L. II, 250,
822, 867, 868.

— Pierrei II, 867.

— proboscidea II, 867.

— religiosa 459.

— sapientum L. II, 206,
822, 829, 852, 867, 868,
904.

— saribol II, 867.

Musa textilis Nee 'II, 867,

918.
Musaceae 460. — II, 243,

308. — III, 108.
Musanga Smitbii II, 236.
Muscari II, 153. — III,

107.

— botryoides P. 238.

— comosum MiU- II, 580.
Musophyllum Kinkelini

Engeln* 560.
Mussaenda N. A. II, 507.

— erythrophylla Schum.
et Thonner III, 305.

— frondosa L. 438.
Mutisia P. 316.
Mutinus boninensis 262.

— caninus 261 .
- elegans 262.

— (Jansia) proximus (B.
et Br.) Petch 135.

— Ravenelii 261.
Myandra III, 313.
Mycena chlorocepbala

Bat* 159, 301.

— cuspidata Massee* 301.

— epipterygia (Scop.) 106.
Mycetia javanica Korth.

III, 305.
Mycetozoae 167, 227, 229.
Mycobacidia 10, 11, 242.
Mycoderma 195, 837.
Mycorhiza 178, 179, 275.
Mycosphaerella carin-

tbiaca Jaap* 119, 301.

— Columbi Rehm* 146,
301.

— hieracii (Sacc. et Briard)
Jaap 143.

— Iridis (Awd.) Schroet.
146.

— maculiformis (Pers.)
Schrot. 146.

— Magnusiana Jaap* 1 19,
301.

— raillegrana (Cooke)
Schroet. 144.

— persica Syd* 301.

— sentina (Fckl.) Schroet.
145, 237, 846.

Mycospbaeralla striati-
formans Cobb* 140, 301.

Myiocopron Stigmatosta-
lycis P Renn* 301.

— yerbae Speg* 301.
Myoporaceae III, 222.
Myoporum tenuifolium II,

209.
Myosotis 519 — N. A. II,
346.

— alpestris Schmidt II,
346.

— arvensis Hoffm. 696. —
II, 596.

— intermedia P. 253.

— macrosperma Engelm.
II, 346.

— palustris L. II, 143.

— repens D. Don II, 590,
596.

— sylvatica var. alpestris
Koch II, 346.

— verna Nutt. var. macro-
sperma Chapm. II, 346.

— versicolor Rchb II,
596.

Myosurus minimus II, 618,

987. — III, 288.
Myrceugenia fernandezi-

ana II, 265.

— Schultzii II, 265.
Myriangium Cinchonae

Rehm* 241, 301.

— Citri P. Herrn* 302.

— Duriaei Moni. 200. —

II, 848.
Myriantbus arboreus II,

236.
Myrica 547, 564, 598.

— acuminata Ung. 594.

— conifera Burm. III,
256.

- Gale L. 602, 627. —

III, 256. — P. 108, 145,
283, 286.

— lignitum 589, 614.

— Nordenskjöldii Dus*
559.

— rubra S. et Z. III, 256.

— Wolfi Kink* 561.

Myricaceae— Narcissus angustifolia.

889

Myricaceae 614. — II,
218. - III, 15, 225,
256.

Myriocarpa N. A. II, 541.

— judaica var. brevipetio-
lata Boiss. II, 541.

— persica Stapf II, 541.

— thymifolia Stapf II,
541.

Myrionema 370.
Myriophyllum N. A. II,
434.

— ambiguum Nutt. II,
434.

— — var. capillaceum
Torr, et Gray II, 434.

— — var. natans DC II,
434.

— capillaceum Torr. II,
434.

- Nitschei II, 669.

— robustum II, 1 1 6.

— scabratum II, 669.

— variaefolium II, 116.

— verticillatum L. III,
214.

Myristica II, 929.

— angolensis 434.

— canarica II, 929.

— fragrans Houtt. II, 928,
929.

— hypargyraceae A. Gray
457.

— malabarica 509. — II,
929.

— succedanea Ö09.
Mvristicaceae II, 464. —

III, 23, 24, 224, 256.
Myrmechis N. A. II, 315.
Myrmecocystis Har&n. 169.

— Candida Harkn- 169.

— cerebriformis Harkn.
169.

Myrmecodia II, 206.

— echinata 716. — II,
649.

Myrmidone II, 206. — N.

A. II, 460.
Myrothamneae III, 224.
Hyrothamnus III, 224,226.

Myrotbecium advenaSacc*

302.
Myroxylon L. f. 534, 535.

— IL 934. — III, 234.

— balsamum (L.) Harms
II, 934. — III, 234.

— Pereirae III, 657.

— peruiferum L. /'. II,
934. - III, 234.

— sonsonatense II, 934.

— III, 657.
Myrrhis N. A. II, 538.

— chaerophyllacea Lam.
II, 537.

Myrsine L. II, 620. — III,
260.

— ufricana II, 251.

— capitellata Wall. III,
256.

— divaricata II, 264.

— Moquerysii III, 260.
Myrsinaceae 436, 507. —

II, 210, 250, 465. — III,

59, 256.
Myrtaceae II, 196, 250,

465. — III, 16, 59, 223,

260.
Myrtus 697. — N. A. II,

466.

— communis L. 687. —
II, 149. — III, 642.

Mystacidium N. A. II, 315.
Mystrosporium Cda. 269.
Mystroxylum III, 171. —
N. A. II, 358.

— aetbiopicum II, 246.
Mytilaspis II, 848.

— fulva Tary. II, 608.
Myuroclada Besch. 59.

— concinna (Wils.) Besch.
52.

Myxobacteriaceae 227.
Myxococcus javanensis

Kruyff* 229, 302.
Myxomonas Betae Brze-

zinski 227, 825.
Myxomyceten 100, 121,

127, 134, 161, 164, 165,

227, 815, 824. — II, 962.
Myxonema nanum 335.

Myxonema tenue 354.
Myxoneura Weiss 607.
Myxopbyceae 338, 346.
Myxopbyta III, 14.
Myxosporella Populi Jaap*

302.
Myxosporium 851.

— coloratum 851.

— corticolum Edger.* 266.
302.

— depressum Sacc* 302.

— hyalinum II, 30.

— longisporum Edger*
267, 302, 851.

— necans Peck* 125, 302.

— Tulipiferae 851.

Naemacyclus penegalensis
Behm* 119, 143, 145,
302.

— Styracis P. Henri* 127,
302.

Naematospora crocea

Sacc. 270.
Naemospora Oastaneae

Bres.* 302.
Nageiopsis 613.
Najas II, 240, 581.

— major 513, 627. — II,
559, 580.

— marina L- 575, 629.

— minor 609.
Naiocrene II, 188. — N. A.

II, 480.

Nandina domestica Thbg.

III, 426.

Nanocnide lobata II, 162.
Nanophyes pallidus Oliv.

II, 626.
Nanophyton caspicum III,

171.
Napicladium rufesceus

Speg* 302.

— testaceum Speg* 302.

— Tremulae Sacc. 150.
Naravelia N. A. II, 483.
Narcissus II, 81, 138. —

111,74,360, 547.- P. 239.

— angustifolius Curt- III,
75.

890

Nareissus calathinus — Nectria cinnabarina.

Narcissus calathinus Loi*.
III, 75.

— capax (R. et Seh-) Rouy
III, 75.

— Broteroi Rouy III, 75.

— Loiseleurii Bow?/ III, 75.

— poeticus II, 957. — P.
238, 312.

— pseudonarcissus L- II,
975. — III, 73.

— pulchellus (Salisb.) III,
75.

— reflexus Brot- IU, 75.

— reflexus Lois. III, 75
Nardia Breidleri 62.

— crenuliformis (Aust.)
Lindb. 49.

— subelliptica Lindb. 65.
Nardostachys Jatamansi

III, 419.
Narthecium II, 581.

— ossihagum Hnds. 11,580.
590.

Nashia Millsp. N. G. N. A.

II, 544.
Nassella N. A. II. 297.
Nasturtium aneeps II, 404.

— ArmoraciaPWes II, 404.

— asperum III, 191.

— lacustre Gray II. 404.
- officinaleB.Br.il, 261.

— palustre DC II, 404.
— P. 253.

var. hispidum Gray

II, 404.

— riparium Gremlili, 404.

— sphaerocarpumATM/^.II,
404.

— terrestre R. Br. II, 404.
Nathorstia Heer 592.

— latifolia Nath* 592.
Nauclea Gambir Roxb. III,

418.
Naucoria autumnalis Peck
271.

— striipes Che. 106.
Navicula 366. — II, 629,

630, 633, 635.

— acrosphaeria tat: dila-
tata M. P. II, 641.

Navicula alpha Heinzer-
img* II, 630, 645.

— anglica Cleve var. mi-
nuta Cleve II, 638.

— atomus Naeg. var. circu-
laris Oestrup* II, 638.

— bacilliformis Grün. II,
630.

— bisulcata II, 638.

— bogotensis II, 641.

— crabro II, 638.

— cryptoeephala Kütz. II,
629, 635.

— Degenii Pant* II, 645.

— dieephala var. latalf.P.
II, 641.

— divergensmr. bacillaris
M. P. II, 641.

— divergensrar.constricta
M. P. II. 641.

— Dorostaisky Oesfrwp* II,
638, 645.

— elegantissima M. P. II,
641.

— Elisabethae Pant* II,
645.

— elliptica Kütz* II, 635,
640.

— Elpatiewskyi Oestrup*
II, 638, 645.

— exilissima Grün. II,
630.

— gentilis Donk. II, 635.

— globiceps Ralfs II,
630.

— gracilis Kütz. II, 629.

— Hajosi Pant* II, 645.

— Hyrtlii Pant. II, 638,
645.

— iridis Ehrbg. II, 630.

— Kefvingensis Ehrbg. II,
629.

— limosa Kütz. II, 630.

— major Grün, et Schmidt
II, 630.

— major Kütz. II, 635.

— molaris Grün. II, 635.

— oblonga Kütz. var. sub-
parallela Ratt. II, 638.

— obscura Pant* II, 645.

Navicula ostreata Bory
II, 632.

— problematica Oestrup*
II, 638, 645.

— pupula var. lineare
Terry* II, 641.

— radiosa Kütz. II, 629,
635, 636, 640, 643.

— Reinhardtii Grün. II,
638, 645.

— rhynchoeephala Kütz.
II, 635.

— Smithii II, 638, 641.

— sphaerophora Kütz. II,
635.

— tabellaria II, 635.

— Theresiae Pant* II,
645.

— viridis Kütz. II, 635.

— viridula Kütz. II, 635,
645.

— Zahlbruckneri Pant*
II, 645.

Nazia racemosa L- III,

94.
Necator decretus Massee

219. — II, 848.
Neckera 51, 560.

— Comorae C. Müll. 54.
Nectandra II, 620, 622.

— Antillana Meissn. II,
900.

— exaltata Griseb- II,
900.

— oppositifolia Nees II,
620.

Nectria 135, 138, 155, 271.

— Anacardii P. Henn.
146.

— aureola Wint. 108.

— Bainii Mass. 130.

— Bakeri Rehm* 302.

— bogoriensis Bernard*
133, 302.

— Cainitonis P. Henn.*
302.

— calonectricolaPflen«.*
302.

— cinnabarina 177, 844.
- III, 621.

Nectria cinnabarina vor- jaraguensis— Nepenthes madagascariensis. g9J

Nectria cinnabarina var.
jaraguensis v. Höhn.*
128, 302.

— Citri P. Henn.* 302.

— coccinea Fr. 149.

■ — coffeicola Zwirn. 135.

— coryli Fuckel fa. Salicis
Rehm 144.

— ditissima 843, 844. —
II, 848.

— effuscata B. et C 177.

— episphaeria (Tode) Fr.
144.

— gigantospora Zimm-
211.

— grammicospora Ferd- et
Wge* 302.

— Huberiana P. Henn*
302.

— imperspicua v. Höhn*
128, 302.

— lunulata v. Höhn* 128,
302.

— Meliae Earle 177.

— nigrescens Cke- 177.

— Placenta v. Höhn* 128,
302.

— punicea (Schmidt) Fr.
143.

— purpurea 177.

— Russellii B. et C 177.

— sakanensis P. Henn*
138, 302.

— sanguinea (Sibth.) Fr.
146, 149.

— setosa Ferd. et Wge*
302.

— Solani Pers. 108, 137,
202.

— sphaeriicola Speg* 303.

— subbotryosa v. Höhn*
128, 303."

— Theobromae Massee*
130, 303.

— tuberculariformis
(Rehm) Wint. 125.

Nectrioidaceae 138.
Neea II, 620. — N. A. II,

467.
Neesiella 35.

Nelumbium luteum 564.

— paleocenicum Fritel*
564.

— protospeciosum 564.

— provinciale 564.

— speciosum Wühl- II,
852. — III, 263.

Nematophycus Milwauke-
ensis Penhall.* 599.

Nematus humeralis Lep.
II, 607.

Nemoderma Schousboe 370.

Nemopantbus Raf. II, 126.
— III, 143.

Nenuphar II, 627.

Neoboutonia N. A. II, 419.

Neocalamites 574, 619.

— hoerensis Schimp. 574,
Neocheiropteris II, 765.
Neocbevaliera N. 6. N. A.

II, 419. 42(1.
Neocosmospora vasinfecta

II. 909.
Neogoetzea brideliifolia

Pax II, 413.
Neohenningsia brasiliensis

P. Henn* 146, 303.
Neolitsea III, 230. — N. A.

II, 439.
Neomeris annulata 358.
Neopatella Sacc* N. 6.

136, 303.

— Straussiana Sacc* 303.
Neopringlea III, 220.
Neoravenelia Holwayi

(Biet.) Long 141.
Neoschimpera W. B.Hemsl.
N. G. II, 22:i.

— heteropbylla W. B.
Hemsl* II, 229.

Neosciadium Domin N. 6.

II, 538. — III, 340, 341.

— glocbidiaturn Domin*
IL 538. — III, 340.

Neoskofitzia termitum r.

Höhn* 258, 303.
Neotborelia Gagnep. X. G.

III, 165. — N. A. n,
352.

— laotica III, 165.

Neotiella sericeo- villosa

Rehm* 303.
Neottia 703.

— amoena Bieberstein II,
318.

— australis R. Broten II,
318.

— bifida Blume II, 310.

— colorata Blume II, 310.

— crispata Blume II, 318.

— flexuosa Sm. II, 318.

— Nidus-avis L. III, 109.

— parviflora Blume II,
311.

parviflora Sm. II, 318.

— polystaehya Siv. II,
318.

— procera Ker-Gawl II,
312.

— pubescens Willd.11,312.

— pudica Sweet II, 318.

— rubieunda Blume II,
312.

— spiralis Willd. II, 318.

— strateumatica R. Brown

II. 308.

— viridiflora Bl. II, 313.
Nepenthaceae 447. — II,

116, 120, 466, 579. —

III, 226.

Nepenthes III, 218, 262.
- N. A. II, 466, 467.

— albolineata II, 120.

— Allardi III, 314.

— ampullaria II, 120.

— anamensis II, 120.

— bicalcarata II, 120.

— Boschiana II, 120.

— Chelsoni excellens III,
57.

— distillatoria II, 120.

— echinostoma II, 120.

— Edwardsiana II. 120.
— ■ gracilis II, 120.

— hirsuta II. 120.

— Kennedyana II, 120.

— Khasiana II, 120.

— Lowii II, 120.

— madagascariensis Poiret
II, 120, 227.

8U2 Nepenthes madagascariensis var. cylindrica— Neurachne Mitchelliana.

Nepenthes madagas-
cariensis var. cylindrica
Dubard II, 227.

— maxima II, 120.

- neglecta II, 120.

— Pervillei II, 120.

— phyllamphora II, 120.

— Rafflesiana II, 121.

— Rafflesiana X Chelsoni
III, 57.

— rajah II, 120.

— Smilesii II, 120.

— Veitchii II, 120.

— Veitchii X Courtii III,
314.

— Vieillardii Hook. II,
120, 208.

— villosa II, 120.
Nepeta N. A. II, 437.

— Cataria II, 137.

— eriostachys II, 159.

— grandiflora 740.

- ruderalis Buch-Harn-
II, 557.

— teucriifolia P. 315.
Nephelium lappaceum III,

42, 476.

— Litchi III, 42, 872.
Nephrodium Rieh. 656. —

II, 745, 748, 806, 974,
975, 976.

— cristatum Clintonianum
H, 787, 808.

— decompositum R. Br.
II, 785, 798.

■*- filix mas II, 753.

— filix mas Xspinulosum

II, 771.

— gracillirnum II, 798. —

III, 46.

— molle Desv. 657. — II,
745, 748, 764, 78l>, 787,
'.)75, <)76.

var. major II, 778.

- occultum Hope II, 778.

— pallidivenium (Book.)
Bak. II, 796.

var. tv&nsiens Christ*

II, 796.

— papilio Hope II, 778.

Nephrodium papyraceum
Bedd. II, 778.

— patens II, 786, 787.

— pennigerum BL II, 796.

— proliferum (Retz.)Keys.
II, 794.

— piopinquum R. Br. II,
794.

— Raddeanum Fomin* II,
775, 808, 813.

— reptans Diels II, 790.

— Sherringii Jenm. II,
790.

- — simulatum II, 788.

— Sloanei Bak. II, 790.

— subquinquefidum (P. B.)
Hook. II, 794.

— totta (Willd.) Diels II,
794.

— unitum R. Br. II, 765,
796.

Nephrolepis 737. — II,
750, 755, 798, 800.

— acuta (Schk.) Presl II,
794.

— Amerpohlii II, 800.

— biserrata (Sic.) Schott,.
II, 794.

— bostoniensis II, 798,
800, 808.

— Clementis Christ* 780,
813.

— cordata II, 798.

— cordifolia (L.) Presl II,
759, 780, 794.

— cordifolia etuberosa II,
750, 808.

— davalliae v.Ald. v.Ros*
II, 781, 813.

— davallioides Kze. II,
759.

— Edmontonensis III, 57.

— elegantissima II, 800.

— exaltata II, 737, 782,
798, 799, 800, 808.

— — var. Whitmani III,
57.

— Genyi II, 800.

— hirsutula Presl II, 616,
803.

Nephrolepis magnifica II,
800, 808.

— pectinata Schott II,
784, 808.

— Piersoni II, 798, 808.

— ramosa Moore II, 766.

— rufescens II, 799.

— rufescens amabilis II,
808.

— Scholzelii II, 800, 808.

— Scottii II, 800.

— superbissima II, 800,
808.

— todaeoides II, 800, 808.

— tuberosa II, 754.

— verdissima II, 800.

— volubilis J. Sm. II,
780.

— Whitmani II, 798, 800,
808.

Nephroma 16.

— areticum E. Fries 22.

— lusitanicum (Schaer.)
15.

Nephro mium 15.
Nephthytis 531, 532.

— Gravenreuthii 532. —
II, 982.

- — liberica 532.
Neptunia oleracea Lour.

II, 837.
Nereocystis 371.

— gigantea Aresch. 371.

— Lütkeana 371.
Nerine II, 243.
Nerium 697.

— Oleander L. II, 102,
926. — III, 141, 464. —
P. 292.

Nertera II, 214.
Nesaea II, 124. — N. A.
II, 454.

— floribunda Sond- III,
247.

Nesolechia punctum Mass.

144.
Neumayera austriaca.Bc/tfr.

II, 356.
Neurachne Mitchelliana II,

839.

Neuradeae — Nitzsehiella biplacata.

893

Neuradeae III, 222.
Neurocallipteris gleicheni-

oides (Stur) Sterzel 625.
Neurocallis Fee II, 766.
Neurodontopteris Pot. 607,

625, 637.

— obliqua 568.
Neurogramma Link II,

806.
Neuropteridae 613.
Neuropteris 572, 613, 618,

<i20.

— bergensis Blande. 639.

— Cistii 618.

— decipiens 620.

— flexuosa 618, 631.

— gigantea 554.

— Grangeri 618.

— heterophylla 577, 618.

— Kosmanni Pot. 568.

— rarinervis Bunb. 638.

— rectinervis 637.

— subcrenulata Rost- 625.

— ScheuchzeriHoffm.638.

— Scblehani 564, 607.
638.

— tenuifolia 568, 618.

— Voltzi Brongn. 639.
Neurotheca N. A. II, 428.
Neviusia 478, 480, 481.
Newcastlia Dixonii II,

255.
Nicandra 500.
Nicotiana 644. — II, 4,

9, 43, 886. — N. A. II,

528.

— affinis Moore II, 568.
— III, 331, 516.

— gigantea II, 664.

— rustica L. II, 887.

— Sanderae III, 57.

— Tabacum L. II, 166,
664, 887. — III, 331,
362, 510.

Nidulariaceae 119, 123,

262.
Nidularium II, 915. — III,

78. — N. A. II, 285.
Niebuhria III. 165. — N.

A. II, 352.

Niebuhria decandra&a^n.*
III, 165

— mucronulata 0. Ktze.

II, 352.

Niesslia pusilla (Fr-)

Schroet- 146.
Nigella II, 650, 891. —

III, 286.

— integrilolia Regel III,
286.

— diversifolia Franchet
III. 286.

— sativa L- II. 650.
Nigritella angustifolia III,

109.

— brachystachya III, 109.

— Heufleri III, 109.
-- micrantha III, 109.

— rubra III, 109.

— suaveolens III, 109.
Nigrofomes 124.

— melanoporus 135.
Nigroporus 124.

— vinosus 135.
Nilssonia 613.

— gracilis 612.

— polymorpha 612.

— propinqua 612.

Nipa fruticans 558. — II,
877, 919. — P. 291, 304.

— Heberti Wat. 558.
Niphobolus Kaulf. II, 806.

— lingua II, 754.

— spissus (Borg) Desv. II,
795.

— — var. continentalis
Hieron. II, 795.

Niptera Gaduae P. Henn*
303.

— Muelleri-Argo viani
Rehm* 303.

— Vossii Sacc 237.
Nitella 670, 73:i. — II,

660.

— gracilis 352.

— byalina 341.

— syncarpa II, 967.
Nitophyllum 328, 373.

— erosum 373.

— laceratum 373.

Nitophyllum punctatum
373. "

— uncinatum 347.
Nitraria III, 219, 226. 34.').

— physocarpa Maxim. III.
346.'

— retusa Forsk. III, 346.

— Roborowskii Kom. III.
345.

— Schoben (Gmel.) L. 111.
34H.

— Schoben caspi Pau-
li!. 346.

— Schoberi sibirica Pall-
III, 346.

Nitzschia II, 637.

— alpha Heinzerling* II,
630.

— amphioxys (Ehrbg)
Kütz. II, 630.

— apiculata (Greg.) Grün.
II, 630.

— commutata Grün. II,
630.

— fasciculata Grün. II,
636.

— linearis W. Sm. II, 630,
641.

— microcephala var. ele-
gantula Grün. II. 641.

— palea (Kütz.) W. Sm.
II, 636.

— — var. fonticola Gnu/.
II, 641.

— pungens Grün- II, 636.

— seriata II, 635.

— sigma var. sigmatella
(Greg) Grün. II, 636,
637, 641.

— subtilisG/ -un. rar.palea-
cea Grün. II, 630.

— thermalis var. stagno-
rura Babh. II, 630.

— vermicularis Grün. II,
630.

Nitzsehiella II, 639.

— acicularis (W. Sm.)
Mereschk. II, 630.

— biplacata Mereschk. II,
630.

894

Nitschiella tenuirostris— Nymphaea Lotus.

Nitzschiella tenuirostris
Mereschk. II, 639.

Noctiluca militaris 343.

Noea Tournefortü II, 154.

Nolanea coelestina Fr. var.
violacea Kauff* 123,
303.

— suaveolens Peck* 125,
303.

N olina Altamiranoana Rose
II, 195.

— recurvata Hemsley 461.
— III, 105.

Nopalea II, 170. — III,

158.
Norantea III, 251.
Normandina 15.
Norrisia III, 245.
Northea seychellana II,

935.
Nostoc insulare Borzi*

338, 384.

— verrucosum 335.
Nothochlaena Buchtienii

Bosenst* II, 793, 813.

— Eckloniana II, 977.

— Herzogii Rosenst* II,
793, 813.

— Marantae (L.) II, 793.

— mollis Kze. II, 793.

— sinuata II, 752, 977.
Nothofagoxylon scalari-

forme Goth.* 572.
Nothofagus 572. — II,
262. — III, .3.

— bebuloides 272.

— cliflortioides II, 262.

— fusca II, 262.

— magellanica Engelh.
559.'

— Menziesii II, 262.

— pulchra Dus* 559.
Nothopanax Colensoi II,

262.

— simplex II, 262.
Nothoscordum Kunth III,

101. - N. A. II, 306,
307.

— andicola III, 101.

— bivalve III, 101.

Nothoscordum bonariense
III, 101.

— canescens III, 101.

- Gaudichaudianum III,
101.

— gramineum III, 101.

— grossibulbum III, 101.

— inodorum III, 101.

— Lloydiflorurn III, 101.

— macrantherum III, 101 .

— Minarum III, 101.

— Montevidense Beauv.
II, 307.

— nudum III, 101.

— Ostenii III, 101.

— scabridulum III, 101.

— Sellowianum III, 101.

— sessile III, 101.

— subsessile III, 101.

— uniflorum III, 101.
Notobasis syriaca II, 575.
Notonia III, 179.
Notosceptrum Benth. II,

119. - III, 102.
Notothixos N. A. II, 453.
Notothylas orbicularis 50.
Nototriche III, 251. A. N.

— II, 456.
Nowellia Mut. 63, 66.

— curvifolia Mut. 69.
Nummularia 131.

— asarcodes Theiss* 303.

— anthracina (Kze- et Seh.)
Trav. 146.

— Bulliardi Tut var. steno-
sperma Theiss* 303.

— cineta Ferd- et Wge*
303.

— Clypeus (Schw.) Cke.
var. macrospora Theiss*
303.

— commixta Rehm var.
applanata Theiss* 303.

— diatrypeoides.ßeÄml31.

— divergens Theiss* 303.

— dura Ferd. et Wge.*
303.

— flosculosa Starb. 131.

— Fuckelia Theiss.* 303.

— guaranitica Speg. 147.

Nummularia heteroStoma
(Mont) 131.

— macrosperma Pat. 131.

— maculata Theiss* 303.

— punetato-brunnea
Theiss* 303.

— punetulata ( B. et Rav.J
Sacc. 242.

— sinuosa Theiss* 303.

— viridis Theiss.* 303.
Nuphar 564. — III, 264.

— advenum Axt. II, 468.

— affine Harz III, 264.

— confusum Gaud. II,
468.

— luteum Sm. III, 35,
264.

— Marui 564.
Nuttallia cerasiformis III,

292.
Nuxia III, 55. — N. A. II,
451.

— Autunesii Gilg III, 245.
Nuytsia III, 285.

— floribunda III, 285.
Nyctaginaceae II, 203,250,

266, 467. —111,54,221,
224, 262.
Nyctalis 163, 166.

— parasitica (Bull.) Fr.
144.

Nyctanthes arbor tristis

II, 892.

Nymphaea 564. — III, 5,
263, 264. — N. A. II,
468, 469.

— advena 533. — II, 617,
985. - III, 263.

— aegyptiaca Opiz II, 468.

— alba L. II, 225, 554. —

III, 35.

— alba minor Jll, 263.

— alba var. Candida Borb.
II, 468.

— — var. oligostigma
Casp. II, 468.

— Candida Presl II, 468.

— coerulea II, 246.

— gracilis Zucc- II, 194.

— Lotus L. II, 468, 852.

Nymphaea Lotus var. aegyptioa— Odontoglossuni Laireaseae.

895

Nymphaea Lotus var.
aegyptiaca II, 468.

— lutea III, 264.

— microphylla Pers. III,
264.

— odorata Ait. var. gi-
gantea Tricker II, 468.

— — var. minor Sims II,
468.

— pumila III, 264.

— reniformis Walt. II,
468.

— scutifolia III, 264.

— spiralis Baf. II, 468.

— stellata Willd. II, 852.

— thermalis DC II, 468.

— variegata G. S. Miller

II, 468.

— Zenkeri Gilg III, 264.
Nymphaeaceae 534, 575.

— II, 116,221,246, 250,

467, 986. — III, 54, 218,

224, 262.
Nymphaeites nupharoides

564.
Nymphoides X. A. II, 428.
Nyssa 439. — III, 3.

— aquatica L. III, 3.

— multiflora Wanqh. III, 3.

— silvatica II, 605.

— uniflora Wangh. III, 3.
Nyssites ornithobromus

Ung. 561.

Oberonia III, 117, 161. —
X. A. II, 315.

— Alyosurus Lindl. IL
316.

Obione pedunculata Moqu.

III, 172.

— portulacoides Moqu- III,
171. — P. 284.

Obolaria caroliniana Walt-

II, 520.
Ocblandra X. A. II, 297.

— Rbeedii var. sivagivi-
ana Talbot II, 297.

Ocblochaeta ferox 330.
Ochna Hoepfneri Engl, et
Gilg III, 264.

Ochnaceae II, 127, 229,
250, 469. — III, 58, 219,
222, 225, 226, 2Ü4.

Ochrocarpus X. A. II, 434.

Ochroma lagopus Siv. II,
620. 899.

Ochropsora Nambuana (P.
Renn.) Diet* 303.

— sorbi (Oudem.) Bietet
144.

Ocinum III, 228. — X. A.

II, 437.

— basilicum II, 209.

— sanctum II, 209.

— Stirbei II, 246.

— viride III, 596.
Ocotea II, 620, 622. — X.

A. II, 439.

— bullata Benth. II, 896.
— III, 230.

— cupularis Cord. II, 439.

— Leucoxylon Mez II,
900.

— staminea Mez. II, 900.

— tristris Mart. II, 620.
Ocoteoxylon Schuster X. G.

617.

— tigurinum Schuster*
617.

Octoblepharum 51.

— albidum (L.) Hedw. 54.

— leptoneuron Card* 78.
Odina discolor P. 139.

— Wodier II, 935.
Odontadenia X. A. II, 332.
Odontia 107.

— alutacea Fr. 148.

— bicolor (Alb. et Schw.)
Bres. 144.

— conspersa Bres. 259.

— fimbriata Pers- 144.

— flavo-argillacea Bres.
147.

— palumbina v. Höhn*
128, 303.

Odontioda Oharlesworthii

III, 112, 113.

— Devosiana III, 115.

— Keighlegense III, 116.

— Lutetia III, 113.

Odontioda Thwaitesii III,
114.

— Vuylstekeae III, 57.
Odontites II, 100.
Odontoglossuni III, 112,

113, 367.

— amabile Fowlerianum
III, 112.

— Andersonianum X Hun-
newellianum III, 113.

— ardentissimum III, 1 10,

113, 116.

— astranthum Rchb. fil.
III, 117.

— üarmania III, 116.

— eirrhosum X Uroskin-
neri III, 113.

— Crawshayanum III,
119.

— crispo-Harryanum III,
112.

— crispum III, 112, 113,

114, 115.

— crocidipterum III, 119.

— Edwardii X nobile III,
113.

— egregium III, 113, 114.

— elegans X Harryanum
III, 113.

— eximium III, 109, 113.

— fascinator III, 113.

— fascinatorXtriumphans
III, 113.

— gemmatum III, 113.

— grande Ldl. III, 122.

— Hallii crispum III, 119.

— Hallii X bastilabium
III, 114.

— Hallio-crispum X tri-
umphans III, 112.

— HarryanumXOochlioda
Noetzliana III, 113.

— Harryanum X Lucasia-
num III, 1 16.

— Harry o - crispum III,
110.

— hibernacum III, 114.

— HunnewellianumXn0-
bile III, 113.

— Lairesseae III, 113.

896

Odontoglossum maeulatissimum — Oidiuin lactis.

Odontoglossum maeula-
tissimum III, 113, 114.

— raaculatum X arden-
tissimum III, 114.

— naevium X crispum III,
113.

— nethernense III, 113.

— nobile II, 189.

— percultum III, 113.

— Pescatorei II, 189. —
III, 110, 115.

— Pescatorei X crispum
III, 110.

— Pescatorei X Harrya-
num III, 110.

— Rolfeae III, 110.

— Schlieperianum Rchb.
III, 122.

— triumphans III, 113.

— triumphans X Harrya-
num III, 112.

— triumphans X Wilcke-
anum III, 112.

— Vuylstekeae III, 109.

— Vuylstekei X crispum
III, 116.

— Wattianum Crawshay-
anum X triumphans III,
112.

— Williamsianum Rchb.
III, 122.

Odontolejeunea longispica

Evans* 88.
Odontonema N. A. II, 325.
Odontoneuropteris 625.
Odontopteris 572, 607, 613,

618, 622.

— Coemansi 638.

— thinnfeldioidesSc/msier*
618.

Odontoschisma Dum. 66.

— atropurpurascensS^ep/t.*
88.

— brasiliense Stejih* 88.

— caracanum Steph* 88.

— cubanum Steph* 88.

— excipulatum Steph*
88.

— falcifolium Steph."1 88.

— Glaziovii Steph* 89.

Odontoschisma grosse-
verrueosum Steph* 89.

— guadalupense Steph*
89.

— planifolium Steph* 89.
- splendens Steph* 89.

— subrotundifoliumStep/i.*
89.

Odontosoria bifida (Kl f.)
J. Sm. II, 778.

— divaricata (Schlecht.) J.
Sm. II, 791.

— — rar. breviseeta
Hieron* II, 791.

— Eberhardtii Christ* II,
778, 813.

— lindsayae v.Ald.v-Ros*
II, 782, 813.

— scoparia (Mett.) Diels
II, 778.

Odontospermum 670, 671.

— II, 141, 997. — III,
35.

— pygmaeum Asch, et
Schivfth. 671. — II, 588.

— III, 35.
Odyendea longipes II, 236.
Oedicladium 17.

— Foxworthii Broth.* 78.
Oedogonium 354, 355. —

II, 97, 967, 998. — III,
592.

— cardiacum 330.

— cyathigerum 355.

— Huntii 354.

— pluviale 331.

— undulatum 355. — II,
576.

Oenanthe III, 341.

— ambigua Nutt. II, 538.
Oenocarpum P. 288, 298.
Oenone III, 275, 277, 448,

449.

— Imthurni Goeb. 534. —

III, 274.

— latifolia Goeb. 458. —
III, 274, 275, 277.

— multibrachiata 448,449.

— multibranchiata Matth*
III, 274, 275, 276.

Oenone Othmeri Matth.*

III, 274, 276.
Oenothera II, 981. — III,

266, 373, 386. — X. A.

II, 471, 472.

- biennis L. III, 52, 267,

387, 411.

— biennis var. canescens
Torr, et Gray II, 471.

— cruciata III, 386.

— gigas III, 266, 268, 386.

— grandiflora III, 387.

— laciniata var. grandis
Brut. II, 472.

— laeta III, 410.

— Lamarckiana II, 981.

— III, 266, 267, 371,
373, 386, 387, 410.

— lata III, 267.

— lata X Lamarckiana III,
373.

— muricata L. II, 617,
618. — III, 267, 387,
410.

— nanella III, 268.

— Nuttallii Torr, et Gr.

II, 472.

— Oakesiana III, 387.

— odorata II, 261.

— parviflora III, 387.

— rosea Soh II, 556.

— rubrinervis II, 980. —

III, 266, 973.

— Simsiana III, 387.

— sinuata var. grandiflora
Wats. II, 472.

— tanacetifoliaTorr.e^Grr.
II, 472.

— velutina III, 410.
Oenotheraceae 504, 505.

— II, 203. — III, 55.
Oidium 160, 204, 208, 213,

215, 233, 263, 778, 821,
839, 842, 843, 860. —
II, 964.

— Ceratoniae 843.

— Epilobii Lindau 150.

— erysiphoides Fr. 146,
779, 843.

— lactis 153, 174, 184.

Oidium macrospermum — Oncoba Welwitsohii.

897

Oidium macrospermum
P. Henn* 303.

— ÄIanihotisP#enn.*303.

— monilioides Link 150.

— quercinum Thuem- 105,
107, 263, 264, 265, 266,
842, 843.

— Tuckeri 214, 267.
Oistonema Schltr. N. G. N. A.

II, 337.
Okamuraea Broth. 59, 61.

— cristata Broth. 61.
Olacaceae II, 469. — III,

221, 264.
Olax Durandii Engl. III,
264.

— scandens 516, 811.

— viridis II, 235.
Oldenlandia N. A. II, 507.

— gracilis Hook- f. II, 556.

— herbacea P. 311.
■Olea II, 898. — N. A. II,

470.

— chrysophylla II, 250.

— europaea L. III, 456.
Oleaceae II, 469, 222, 264,

675. — III, 221.
Oleandra articulata II, 754.

— cuspidata Bak. II, 781.

— neriiformis Cav. II, 783,
794.

— Werneri Rosenst* II,
783, 813.

Olearia 519, 520.

— ciliata F. Muell. III,
174.

— ramulosa var. commu-
nis Benth. III, 174.

— stellulata III, 54, 184.
Oligolobos III, 96.

— Balansae III, 96.

— triflorus Gagn* III, 96.
Oligomeris N. A. II, 485.

— glaucescens Cambess-

III, 289.
Oligonema flavidum (Peck)

Massee 125.
Oligotrichum hercynicum
var. globicarpa Krieger*
60.
Botanischer Jahresbericht

Oligotrophus Bergen-
stammi II, 608.

— capreae Winn. II, 626.

— indianus Kieff* II, 613.
-- mangiferae Kieff* II,

613.

— quadrilobatusiT?e/f.* II,
613.

— tenuispatha Kieff* II,
613.

Oliveranthus elegans III,

187.
Olostyla N. A. II, 507.
Olpidium 230.
Olyra II, 620.

— brevifolia II, 236.

— latifolia L. III, 87.
Ombrophilahirtella Behm*

303.

— tamseliana P. Henn*
303.

Omphalaria 15.

— nodulosa Harm. 23.

— nummularia DR. et
Mont. 23.

Omphalea N. A. II, 420.
- atropuncta 118.

— diandra III, 205.

— megacarpa II, 890. —
III, 205, 465.

— triandra III, 465, 466.
Omphalia fibula (Bull.)

Que'l 106.

— gracilis Quel. 108.

— pseudodirecta W. G-
Sm* 304.

— velutina Que'l. 108.
Ompbalobium Lambertii

DC. II, 394.
Omphalodes Moench III,
155.

— cappadocica DC- III,
156.

— — var. Wittmanniana
Stev. Hl, 156.

— Lojkae S. et L. III, 156.

— Luciliae III, 155.

— rupestris Rupr. III, 156.

— scorpioides Schrank III,
155.

XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 9

Onagra sfcrigosa Rydb. II,

471.
Onagraceae II, 250, 470. —

111, 266.
Oncidium II, 582. - HI,

112. — P. 284, 321.

— iridiflorum III, 1 10.

— Stanleyi II, 199.

— tigrinum splendidum
III, 110.

— Waleuwa II, 203.
Oncinotis N. A. II, 332.
Oncoba aristala Oliver II,

423.

— brevipes Stapf II, 422.

— capreaefolia Baker II,
426.

— Crepiniana De Wild- et
Th. Dur. II, 422.

— Demeusii De Wild, et
Th. Dur. II, 424.

— dentata Oliver II, 424.
var. cuneato-acumi-

nata De Wild- II, 424.

— echinata Oliver II, 423.

— eximia Gilg II, 422.

— fissistyla Warb. II, 426.

— fragrans Gilg II, 424.

— Gilgiaua Sprague II,
422.

— glauca Hook- II, 422.

— Kirkii Oliv. II, 426.

— Klainii Pierre II, 422.

— lasiocalyx Oliver II,
422.

— Laurentii De Wild, et
Th. Dur. II, 423.

— longipes Gilg- II, 426.

— lophocarpa Oliver II,
422.

— Mannii Oliver II, 423.

— ovata Eichl. II, 424.

— Poggei Gurke II, 424.

— spinidens Hiern II, 424.

— Spireana Pierre II, 433.

— Stuhlmannii Gurke II,
426.

— tettensis Oliver II, 426.

— Welwitschii Oliver II,
423.

2. 12.1 57

898

Oncocalamus— Oplisnienus loliaceus.

Oncocalamus II, 241.
Oncophorus 60.

— virens 60.

— — var. condensatus
Meylan* 47, 60.

— Wahlenbergii 60.

— var. crassiretis

Meylan* 60.
Oncopodium Sacc. 269.
Oncosperma fasciculatum

P. 289.
Oncosteraon Juss- III, 259.
Onobrycliis 504.

— sativa Lmk. III, 562.
Ouoclea II, 765.

— sensibilis II, 754.

— struthiopteris II, 776.
Ononis 504. — II, 100. —

N. A. II, 447.

— antiquorum II, 128.

— Columnae II, 584, 585.

— fruticosa III, 58.

— repens L. III, 35.
Onopordon N. A. II, 388.

— acanthium X illyricum
II, 388.

Onygenaceae 123.
Oocystis 360.

— mucosa Lemm* 330,
384.

— submarina 360.
Oospora aegeritoides

Karst. 851.

— Dotbideae P. Henn*
304.

— lingualis Oue'guen* 200,
267, 274, 304.

— mycetomi Nie. et Pinoy*
200, 304.

Opegrapha 15.

— atra Fers. 22.

— Chevallieri Leight. 23.

— dilatata Harm? 24.

— grumulosa Duf. var.
cryptarum Harm* 27.

— varia Pers. 1(>.

— — var. notba Ach-
16.

Operculina N. A. II, 398.
Opbiobolus '2 iL'.

Ophiobolus cantareirensis
P. Renn* 304.

— fulgidus (C. et P.) Sacc.
141.

— herpotrichus 115, 117,
212, 818.

— bypopbyllusPe//m*304.

— Livistonae P. Henn*
304.

— Nipae P. Henn.* 304.

— paraensisP. Henn* 301.
Opbiobotrys Güg N. G.

N. A. II, 424.
Opbiocaulon gummifer

Harv. II, 715.
Ophiocbaeta lignicola P.

Henn* 304.
Opbioderma II, 752.
Ophioglossaceae II, 747,

762.
Ophioglossum II, 740, 744,

745, 747, 755, 782, 786

— P. 152.

— Bergianum Schlecht. II,
795.

— capense Sic. II, 795.

— Gomezianum Welio. II,
795.

— gramineum Wüld. II,
795.

— inconspieuum (Rac.) r.
A. v. B. II, 782.

— — var. majus v. A. v.
B* II, 782.

— pendulum P. 152.

-- simplex Bidleg II, 751,
752, 782.

— vulgatum L. II, 774.
Opbiognomonia Padi 237.
Opbiomeliola Usteri Speg*

304.
Ophionectria cerea (B- et
C.) Ell. et Ev. 146.

— coccicola II, 848.
Opbiopogon III, 4, 5. —

N. A. II, 307.
Ophiopogonoideae III, 102,

103.
Ophiorrbiza N. A. II, 507,

508.

Opbrydeae II, 245.
Opbrys N. A. II, 315.

— Albertiana III, 110.

— apifera III, 110.

— — var. aurita III, 110.

— araebnites III, 110.

— araebnitiformis III, 110.

— aranifera III, 110.

— — var. specularia III,
HO.

— aranifera X araebnites
III, 110.

— aranifera X museifera
III, 110.

— atrata III, 110.

— Barlae III, 110.

— Battandieri III, 110.

— Bertoloni III, 110.

— bombyliflora III, 110.

— ferrum - equinum III,
110.

— fusca III, 110.

— funerea III, 110.

— Grampinii III, 110.

— integra III, HO.

— iricola III, 110.

- litigiosa III, 110.

— — var. virescens III,.
110.

— Luizetii III, 110.

— lutea Cav. III, 110, 122.

— rninuticana III, 110.

— museifera III, 110.

— Nouletii III, 110.

— Saratoi III, 110.

— scolopax III, 110.

— semibombyliflora III,
110.

— speculum III, 110.

— spiralis Georgi II, 318.

— subfusca III, 110.

— tenthredinifera III, 1 10.
.— Tommasinii III, 110.
Opilia amentacea Boxb.

III, 268.
Opiliaceae II, 472. — IU\

268.
Opilieae III, 221.
Oplismenus loliaceus II,

207.

Oplisiuenus setarius— Orchis papilionacea.

899

Oplismenus setarius II,

207.
Opulaster III, 295. — X.

A. II, 496.

— capitatus Holz. II, 496.

— intermedius Small II,
496.

— intermedius Rydb. II,
197.

Opuntia II, 102, 170, 574,
843, 844. — III, 36, 158,
160. — N. A. II, 349.

■ — arbuscula III, 157.

— articulata III, 36.

— camanchica III, 158.

— cantabrigiensis III, 29.

— Cardenche III, 157.

— Castillae III, 157.

— Chavefia III, 157.

— chlorotic a santa vita
III, 160.

— cladodica III, 36.

— cochinera III, 157.

— columnans III, 36.

— discata III, 157.

— fruticosa III. 36.

— fulgida Engelm. II, 185.

— III, 159.

— fuliginosa III, 157.

— fusicaulis III, 157.

— Gosseliniana Web. II,
185.

— guanicana (K- Schum.)
Gurke* III, 159.

— inermis P. DC III,
157.

— leptocaulis III. 157.

— Lindheimeri II, 40.

— linguiformis III, 157.
- macrocalyx III, 157.

— microdasys III, 157.

— Miquelii Monr. II, 114-

— III, 157.

— moDacantha How. II,
258, 846.

— myriacantha Web. III,
160.

— neoarbnscula III, 157.

— pusilla II, 847.

— robusta III, 29.

Opuntia Santa- Rita II,
185. — III, 160.

— Spegazzinii Web. III,
157.

— vivipara III, 160.
Orbilia breviasca P. Kenn*

304.

— crenulato-lobata
v. Höhn:" 128, 304.

Orchi-Aceras Bergoni III,
110.

— spuria III, 110.

— Weddellii III, 110.

— Welwitschii III, 110.
Orchi - Coeloglossum Er-

dingeri III, 110.
Orchi-Gymnadenia Klin-
geana III, 110.

— Lebrunii III, 110.

— Legrandiana III, 110.
Orchi-Platanthera Cheva-

lieriana III, 110.
Orchi-Serapias Barlae III,
111.
- Nouletii III, 111.

— purpurea III, 111.

— Tommasii III, 111.
Orchidaceae 464, 465. —

II, 81, 123, 128, 147,
159, 164, 166, 193, 196,
199, 209, 210, 217, 218,
225, 244, 250, 265, 308,
— III, 108, 597.
Orchis III, 5. — A. N. II,
315.

— acuminata III, 1 10.

— alata III, 110.

— alatoides III, HO.

— ambigua III, 110.

— anatolica III, 110.

■ — angustifolia II, 957.

— Arbostii III, 110.

— aristata P. 254.

— Barlae III, 110.

— Beyrichi 111, 110.

— Bonnieriana III, 110.

— Bornemanni I1T, 110.

— Bornemanniae III, 110.

— Boudieri III, 110.

— Caccabaria III, 11<>.

Orchis Carausi III, 110.

— Oanuti III, 110.

— carnea III, 110.

— Champagneuxii III, 110.

— Chatani III, 110.

— Comperiana Stev. III,
118.

— cordigera III, 110.

— coriophora III, 110.

— coriophora X Morio III,
122.

— Dietrichiana III, 110.

— dubia III, 110.

— elodes III, 110.

— fallax III, 111.

— fragrans III, 111.

— Franchetii III, 111.

— Gennaii III, 111.

— Grenieri III, 111.

— habenarioides King et
Pantl. II, 315.

— Heraclea III, 111.

— iberica III, 111.

— incarnata L. III, 111.

— integrata III, 111.

— intermedia III, 111.

— italica III, 111.

— Jacquini III, 111.

- latifolia L. III. 35, 111,
117.

— laxiflora III, 111.

— Loguei III, 111.

— longicornu III, 111.

— Lucia Roger III, 121.

— maculata L. III. 111,
114, 117,

var. ochrantha Pai>(-.

II, 315.

— maculata X Coelo-
glossum viride III, 117.

— mascula L. III, 111.

— militaris L. III, 111.

— Morio L. II r, 111.

— Morio X sambucina

III, 121.

— ^olbiensis 111, 111.

— olida III, 111.

— pallens 111, 111.

— palustris III, 111.

— papilionacea III. 111.

57-:

ft

900

Orchis patens III, 111.

— pauciflora II, 159. —
III, 111.

— Pauliana III, 111.

— picta III, 111.

— provincialis III, 111.

— purpurea 653. — III,
111, 121.

— quadripunctatalll, 1 1 1.

— romana III, 111.

— Rouyana III, 111.

— rubra III, 111.

— saccata III, 111-

— salina III, 111.

— sambucina III, 111.

— sancta III, 111.

— Simia III. 111.

— Spitzelii III, 111.

— strateumaticaL.il, 308.

— subulata III, 111.
■ — taurica III, 111.

— Timbali III, 111.

— Traunsteineri III, 111.

— tridentata III, 111.

— Uechtritziana III, 111.

— ustuläta III, 111.

— Weddellii III, 111.

— Yvesii III, 111.
Oreades 61.

Oreas Martiana (H. et H.)

Brid. var. flagellaris

Gloiv. *45, TS.
Oreiostachys Gamble N. G.

II, 218. — III, 92. -

N. A. II, 297.

— Pullei Gamble III, 92.
Oreocarya N. A. II, 346.
Oreocharis N. A. II, 430.
Oreochloa N. A. II, 298.
Oreodoxa regia P. 132.
Oreolobus furcatus III, 81.

— Pumilia III, 81.
Oreomyrrhis II, 540.
Oreopanax III, 145. — N.

A. II, 334.

— formosana II, 214.
Oreorchis III, 117. — N.

A. II, 315.
Oreosciadium N. A. II, 538.
Oreostylidium II, 120.

Orchis patens — Oscillatom.

Oreoweisia Bruntoni (Sm )

47.
Origanum II, 830. — III,

542.

— birtum III, 429.

— major III, 542.

— majoranoides III, 429.

— smyrnaceum III, 429.

— vulgare L- II, 214. —
III, 536.

Oritrepbes E. N. Ridley N.

G. II, 216. — N. A. II,

460.
Orixa japonica Tlibg. III,

307.
Orizaba Jalapae III, 483
Ormenis N. A. II, 388.
Ormosia III, 58. - N. A.

II, 447.

— jamaicensisfVi. II, 900
Ornithidium ceriferum

Barb. Rodr. II, 582.

— divaricatum Barb.Rodr.
II, 558, 582.

— flavoviride Barb. Rodr.

II, 582.
Ornithogalum II, 156. —

III, 26, 104. - N. A. II,
307.

— Bonariense Pers- II,
307.

— caudatum Alt. 469. —
III, 26.

— kurdicum Bornm* III,
104.

— lacteum III, 58.

— pyrenaicum 693.

— umbellatum 718.
Ornitbopus perpusillus L.

II, 263.

— sativus L. III, 433.

— scorpioides L. II, 615.
Orobanche 703, 767. —

II, 100. — N. A. 11,472.

— caesia Rchb. II, 472.

— Hederae Duby III, 268.

— speciosa 767.

— spissa Beck II, 472.
Orobanchaceae II, 166,

472. — III, 39, 268.

Orobancheae III, 50.
Orobus saxatilis Vent. III,

243.
Orontium 532. — II, 123.

— III, 76, 77.

— aquaticum II, 123.
Oroxylum indicum Vent.

II, 852. - P. 284.
Orophea N. A. II, 330.

— maculata Merr. II, 330.
Orphium III, 211.
Orthomniopsis japonica

Broth. 61.
Ortbomnium 51.

— stolonaceumf?ro£/i.*78.
Ortbopterygium 435.
Ortbosiphon III, 228. —

N. A. II, 437.

— stamineus 485. — III.
229, 664.

— tenuiflorus II, 246.
Orthosticbidiumperseriata

Broth. et Par. 56.
Orthothecium consobri-
num Card* 78.

— erectidens Card* 78.

— intricatum (i/ar<m ) Br.
eur. var. subsulcatum
Glow* 45, 78.

— vittatum Card* 78.
Orthotrichaceae 39.
Orthotrichum 62.

— cupulatumi/o/fm.43,70.

— diaphanum Schrad. 61.
var. aquaticumDavzes

61.
Oryctanthus N. A. II, 453.
Orygia Forsk. III, 139.
Oryaa II, 820, 827. — N.

A. II, 298.

— australis II, 125.

— sativa L. II, 822, 852,
853, 855. — P. 287, 306,
315, 316.

Osbeckia II, 224.

— chinensis II, 222.
Oscillaria 327.

— ampbibia Äg. 331, 712.
Oscillatoria 379, 380. —

III, 592.

Osoillatoria Agardhii — Oxstyelma carnosum.

9U1

Oscillatoria Agardhii
Gomont. 330.

— Cortiana 379.

— formosa 330.

— Lauterbornii 330.
Osmaronia 478, 480.
Osmorhiza N. A. II, 538.
Osmünda 547, 556, 557.

- II, 653, 739, 755, 762.

— cinnamomea II, 147,
745, 776, 787, 805, 808.

— Claytoniana II, 737, 745.

— lignitum 596.

— regalis L. II, 652, 739,
754, 761, 764, 797, 801,
808.

mr. sublancea Christ*

II, 776.
Osmundaceae 580, 581. —

IT, 753.
Osmundites 580.

— Dunlopi Rietst* 580.

— Gibbiana Kielst* 580,
581.

Ossaea II, 620.
Osteomeles escalloniifolia

Decne II, 495.
Osteospermum N. A. II,

388.
Ostrya 580, 598. — III, 3.

— carpinii'olia II, 154.

— virginica P. 323.
Osyricera N. A. II, 315.
Osyris abyssinica II, 894.

— alba 812. — III, 324.

— compressa L. III, 471.

— tenuifolia Engl. III,
245.

Otidea II, 969.

— aurantia II, 968, 969.
Otopappus villosus II, 191.
Otophora N. A. II, 517.
Otozamites 591.

— Goeppertianus 593.

— gracilis 612.

— Mandel slohi 612.
Othonna Helenitis L. II,

390.
Ottelia III, 96.

— alismoides Pers. III, 96.

Ottelia condorensis III,

96.
Otthia gemmicola Rick

147.

— hypoxylon (E. et E)
Shear 142.

Otthiella Schiffneri v.

Höhn* 128, 304.
Oudemansiella 258.

— platensis Speg. 258.
Ouratea III, 58, 59. — N. A.

II, 469.

— affinis II, 236.

— alternifolia Engl II,
469.

— ilicifolia Engl II, 469.

— reticulata II, 236.
Ouratella Finlayi v. Tiegh.

II, 469.

— L'Herminieri v. Tiegh.
II, 469.

Ouvirandra II, 820.

— Bernierana Hook. II,
281.

Ovopteridium Behrend N. Gr.

546.
Ovopteris Peit. 546, 613.

— Goldenbergi 568.

— Gutbierianum 546.

— Schatzlarense 546.

— Schumanni 546, 569.

— Zeilleri Stur. 546.
Ovularia Asperifolii Sacc.

150.

— minutissima Syd* 149,
304.

— necans Pass. 146, 150.

— rigidula Delacr. 144.

— Vitis Richon 152.
Ovulites 590.
Oxalidaceae II, 203, 472.

— III, 55. 58, 218, 269.
Oxalis III, 58. — N. A. II,
472.

— Acetosella L. 735. —
II, 147, 584, 585, 587,
598.

— Brittoniae II, 174.

— cernua II, 255. — III,
390.

Oxalis_ corniculata L. II,
556," 982. — P. 253.

— crassicaulis III, 269,
376.

— Deppei 735.

— frutescens Gris- II, 472.

— Griffithii II. 214.

— strieta L. 769. — III,
358.

— violacea Gris- II, 472.
Oxera N. A. IT, 544.
Oxyanthus N. A. II, 508.
Oxybaphus N. A. II, 467.

— angustifolius Sweet II,
467.

Oxycoccus II, 598. — N. A.
II, 410.

— macrocarpus II, 171.
Oxydothis insignis Speg*

304.
Oxygonum sinuatum

Benth. et Hook. III, 279.
Oxygraphis 501. — III,

287.

— palmata (F. et M.) III,
287.

Oxygyne II, 244.
Oxymitra N. A. II, 330.
Oxypetalum R. Br. II,

204. — III, 147. — P.

311. — N. A. II, 337,

338.

— subgen. Tweediopsis
Malme* II, 337.

— Arnottiarvum var. bra-
chystephanum Malme II,
338.

— lineare Deeaisne III,
147.

— paraguayense Chod. II,
338.

Oxypolis N. A. II, 538.

— rigidus var- longifolius
Britton II, 538.

Oxyria digyna (L.) Campd.

II, 590.
Oxyrrhis marina Duj.

367.
Oxystelma carnosum R.

Br. II, 337.

902

Oxytenanthera abyssinica — Panicum eehinolaeua.

Oxytenanthera abyssinica

Munro II, 232, 249. —

[II, 87.
Oxytropis 504. — II, 159.

— III, 238. — X. A. IL

447.

— Grum-Grischimailoi
Palib. III, 231.

— falcata II, 159.

— leucocyanea II, 159.

- Potanini Paft&. III, 231.

— schizantha Palib III,
231.

— tenuis Palib. III, 231.
Ozonium omnivorum II,

U09.
( )zothamnus rosmarini-
folius III, 177.

Pachyanthns III, 59. —

N. A. II. 460.
Pachygone III, 252, 253.
Pachylobus III, 157. —

X. A. II, 347.

— edulis Don III, 156
Pachylophus III, 235. —

X. A. II, 472.

— caespitosus P. 143.
Pachypodium II, 226. —

III, 141.
Pachyrhizus X. A. II, 447.

— angulatus II, 822. —
III, 532.

Pachites II, 244.
Pacouria II, 332.
Padina 351.

Paecilomyces Varioti 267.
Paederia II, 332. — X. A.

II, 508.
Paeonia494. — 11,82, 711.

— III, 224, 288.

— albiflora Pall III, 590.

- anomala L. III, 290.
arborea III, 49.

— Delavayi III, 286.

— Delavayi X Moutan

III, 286.

- lutea superba III, 286.

— MlokosewitschüLoHmÄ:.
II, 153. — III, 281).

Paeonia Moutan III, 54.

— officinalis L. II, 711.
Paeoniaceae 493, 494.
Paepalantbus III, 84. —

X. A. II, 292.
Paepalopsis deformans

Syd. 266.
Paesia luzonica Christ*

II, 780, 813.

— rugulosa (Lab.) II, 780.
Pagiophyllum 612, 613,

630.
Palaeopteridae 613.
Palaeastachya 619.

— Domherri 636.

— vera 577.
Palaeotaxus Nath. X. G.

592.

— rediviva Nath* 593.
Palaeoweicbselia De-

francei 568.
PalaeoxyrisMuensteri 612.
Palafoxia Hookeriana II,

575.
Palaquium II, 898, 921. —

P. 818. — X. A. II, 518.
Palaua III, 251. — X. A.

II, 456.
Palicourea X. A. II, 508.
Palissya 592.

— ßraunii 592.

— pugio Krass.* 583.

— spbenolepis (F- Br)
Nath. 592.

Paliurus aculeatus II, 154.
Pallavicinia hibernica 42.
Palmae 596. — IL 217,

241, 318. — III, 54.
Palmatopteris 613.
Palmellaceae 348.
Palmoxylon Hillebrandtii

Pax et Lingelsh* 596.
Pamphilia III, 221.
Panaeolus campanulatus

(L.) 149.
Panax anomalum II, 264.

— Ginsing III, 498.

— quinquefolius L. 474.

— repens Maxim. III,
646.

Pancheria X. A. II, 405.
Pancratium X. A. II, 281.
Pandanaceae 583. — II,

166, 217, 240, 320. —

III, 47, 131.
Pandanus 468. — II, 211,

212, 224, 225, 240, 978.

— III, 9, 39, 131. —
X. A. II, 320.

— ■ Artocarpus II, 978.

— boninensis II, 166, 167.

— Candelabrum Beanv. II,
235, 905. — III, 131.

— furcatus II, 224.

— Heudelotianus II, 235.

— Houlleti Carr. III. 131.

— lae\is P. 316.

— luzonensis P. 288.

— ■ odoratissimus II, 978.

— spiralis Blanco II, 320.

— tectorius Sol. II, 215.
Pangium III, 658.

— edule II, 921. — III,
550, 551, 552, 659.

Paniceae III, 89.
Panicum II, 189, 620, 659,
670, 718, 852. — P. 307.

— X. A. II, 298.

— ambiguum II, 207.

— amplexicaule Bridge II,
837.

— arrectum Hack. III, 87.

— auriculatum Willd. II,
297.

— bulbosum II, 838, 839.

— capillare L. II, 254. -
III, 87.

— caryophorum Kunth II,
299.

— chusqueoideslfac/c. III,
87.

— colonum II, 207.

— Crus-galli L. II, 41,
207, 839, 852. — III,
87.

— curvatum L. II, 299.

— III. 87.

— decompositum II, 839.

— echinolaena Nees II»
810.

Panioum effusuui— Parmelia brachyeonidia.

ijo:;

Panicum effusum II, 839.

— flavidum II, 839.

— gracile II. 839.

— Grisebachii Nash* II,
197. — III, 94.

— hymeniochilum Nees
III, 87.

— indicum L. II, 299.

— italicum II, 138, 822.

— laevifolium II, 839.

— leucophloeum II, 839.

— maximum II, 837. 838,
840. — P. 290, 307.

— miliaceum L. II, 41,
138, 820, 822.

— miliare Lam. III, 87.

— molle II, 840, 920.

— muticum II, 841. — III,
89.

— myuros Lam. II, 299.

— myosurus Rieh- II, 299.

— nepalense Sprengel II,
299.

— numidianum II, 207.

— paludicola Nees II, 297.

— perlaxum Stapf III,
87.

— phleiforme PresZ II, 299.

— pilipes II, 207.

— pilosum P. 128, 302.

— plicatum Lam. II, 299.
■ — polystaehyum Presl II,

297/

— pruriens II, 207.

— pyramidale Lam- III,
87.

— rhachitrichum Höchst.
II, 299.

— speetabile Nees II, 837,
840.

— stagninum Koen. III,
87.

— sulcatum P. 317.

— titmorense II, 207.

— turgidum II, 231.

— verticillatum L. II, 299.
Pannaria nebulosa Xgl.

22.
Pannularia 15.
Panus rudis Fr. 149.

Papaver 504, 762. — II,
55, 137. — N. A. II, 473.

— album Mill. II, 473.

— paeoniflorum 722.

— radicatum Rottb. II,
590.

— Rhoeas L. 740. — II,
720. — III, 358.

— somniferum L. II, 473,
556. — [II, 270, 381.

Papaveraceae 504, 505. —
— II. 473. — III, 269,
547.

Papayaceae III, 220.

Paphiopedilum callosum
III, 115.

— Curtisii X tonsum III,
120.

— Frankenianum III, 120.

— glaucophyllum III, 1 1 1 .

— Harrisianum III, 113.

— oenantbum III, 118.

— villosum P fitzer II,
223.

■ — — var- annamense
Rolfe II, 223.

— villosum X Rothschil-
dianum III, 113.

— Thalia III, 115.
Papilionaceae 475, 504.
PapillariaP>oivinianaI?esc/i.

54.

— Francana Ther* 78.

— fuscescens Hook. 52.

— helminthocladula Card.
52.

— neo-caledonica Ther.*
78.

— pendula (Süll) 52.
Pappea II, 247. III,

312. — N. A. II, 517.

— Radlkoferi Schwfth. II,
517.

— Schumapniana Schinz
II, 517.

— ugandensis Baker II,
517.

Pappophorum II, 839.

— braehystaehyum II,
232.

Pappophorum elegans

Nees II, 295.
Parabaeua III, 252.
Paraboea N. A. II, 430.
Paramaecium 710.
Parameria II, 830.
ParanectriaWildemaniana

P. Herrn* 139, 304.
Paraqueiba N. A. II, 435.
Paraspora 379.
Parathesis Hook. f. III,

258.
Paratrophis III, 5. — N. A.

II, 464.
Paratropia crassa Blanco

II, 334.

— rotundifolia P. 308.
Parietales III, 15.
Parietaria N. A. II, 541.

— officinalis L. II, 984.
Parinarium II, 898. — P.

305.

— congoen-je Engl. III,
290.

— curatellaefoliumP^ancÄ.
II, 898.

— excelsum Sab. II, 898.

— laurinum A. Gray 457.

— macrophyllum II, 232.

— Mobola Oliv. II, 624.
Paris HI, 4.

— quadrifolia L. 521.
Parkia P. 277. — N. A. II,

447.

— africana II, 232, 876.
— III, 232.

— biglobosa Bth. II, 233,
876. — III, 234.

— insignis III, 544.

— Roxburghü P. 307.
Parlatoria zizyphi II, 848.
Parmelia 7, 15, 18. — III,

688.

— (Parmeliopsis) ambigua
Ach. 24.

— amoena A. Zahlbr* 27.

— ansterodes (Nyl.)Elenk.*
27.

— brachyconidia^l. ZaM&r.*
27.

904

Parmelia brachyconidia var. chlorocarpa — Pavonia.

Parmelia brachyconidia
var. chlorocarpa A.
Zahlbr* 27.

— caperata (L.) 19, 20.

— carporhizans Tayl. 23.

centrifuga (L) Ach.
24.

— coralloides III, 688.

— cylisphoraf.icÄ.jTFflmio
18.

— Ducalis Jatta* 27.

— Duseni A. Zahlbr* 27.

— erythrocardia.4. Zahlbr .*
27.

— fuliginosa Nyl. 23.

— furfuracea (L.) Ach. 24.

— olivacea (L-) Ach. 24.

— omphalodes var. panni-
formis Ach. 22.

— perrugata Nyl 16.

— physodes (L.) Ach. 24.
— ■ — var. labrosa Ach. 12.

- prolixa Ach. 16.

— saxatilis Ach. 16.

— scortea Ach. 24.

— stygia (L.) Ach. 24.

— Weberbaueri Lindau*
27.

Parmeliaceae 18.
Parmeliopsis 15.
Parmulariadimorphospora

Maire* 304.
— HymenolepidisPffenn.*

304.
Parnassia II, 598. — III,

218, 226, 317.

— mexicana Rose II, 195.

— palustris L. II, 598. —
III, 35.

Parnassiaceae III, 224.
Parodiella kwangensis P.

Renn* 304.
Paronychia 454. — N. A.

II, 356.
Paronychiaceae 454.
Paropsia X. A. II, 424,

425.
Paropsiopsis N. A. II, 425.
Parrotia 585.

— pristina 589.

Parsonsia rotata II, 255.
Partheniurn II, 951.

— argentatum A. Gray
451.— II, 83, 191, 195. —
III, 183.

Parthenocissus II, 156,
173. - - III, 345.

— hirsuta Graebner II,
548.

— hirsuta Small II, 548.

— quinquefolia III, 344,
345.

var. laciniata Plan-

chon II, 548.

— radicantissima var. mi-
nor Graebn. II, 548.

— Saint-Paulii Graebner
II, 548.

— tricuspidata Planchon
II, 548. — III, 58.

— vitacea III, 344.

Paspalum II, 832, 845. —
P. 307. — N. A. II, 298.

— conjugatum Berg II,
837.

— dilatatum II, 207, 829,
836, 838, 839, 840, 841.

— paniculatum II, 207,
839.

— proliferum II, 839.

— repens Berg. II, 837.

— scrobiculatum L. II,
852.

— stoloniferum II, 838.

— Usterii Hack." III, 90.

— virgatum II, 829, 839.

Passalora bacilligera Mt.

et Fries 145.
Passerina X. A. II, 533.

Passiflora II, 715. — III,
412. — X. A. II, 473.

— adenopoda DC- II,
715.

— aetinia Hook. II, 715.

— alata Dryand. II, 715.
— III, 271.

— ciliata AU. III, 52.

— coccinea Aubl. II, 620.

Passiflora coerulea L. 736.

— H, 715. — III, 27K

— edulis Sims II, 715. —
III, 42.

— foetida L- IL 715.

— laurifolia L. II, 715. —
III, 42.

— macrochlamys Hanns*
III, 271.

— maculata ticanag. IIr
715.

— quadrangularis L. 457.

— II, 715. — III, 42.

— racemosa Brot. II, 715.

— suberosa L. II, 715.

— vitifolia III, 271.
Passifloraceae II, 266. 473.

— 111,197,220,222,270.
Pastinaca 491. — III, 670.

— sativa L. 490, 642. —
II, 138. —111,342,669.

Patagonula americana P.

131.
Patellina Citri P. Henn.*

304.
Paullinia II, 620. — X. A.

II, 517.

— Cupana Kunth 508.

— pinnata III, 532.
Paulowilhelmia X. A. II,

325.
Paulownia II, 125. — III,
222, 323.

— Duclouxii III, 323.

— Fargesii III, 323.

— Fortunei III, 323.

— imperialis III, 323.

— meridionalis III, 323.
Pausinystalia Pierre III,

306. — N. G. II, 248.
Pavetta P. 139, 276. — X.
A. II, 508.

— baconia II, 235.

— lasiorrhachis K- Schum.

III, 305.

Pavia macrostachya III,

312.
Pavonia II, 190, 585, 620.

— III, 58, 251. — X. A.
II, 456.

Pavonia hastata — Peinphis acidula.

905

Pavonia hastata II, 584.

— praemorsa Willd. III,
249.

Payena II, 898, 921. —

III, 312, 418.
Paxillus involutus 174,

651.
Peccania 15.
Peckiella lateritia (Fr.)

Maire 146.
Pecopteridae 613.
Pecopteris 559, 597, 613.

— angusta 639.

— aspera 625.

— attenuata Schuster* 618.

— Candolleana 618.

— Hainichensis 625.

— dentata 576.

— Miltoni 638.

— pennaeformis 618.

— Piatoni Gr. Eury 618.

— Pluckeneti 577.

— plumosa 618, 638.

— — var. acuta (Brongn.)
618.

— — var. approximata
Schuster1" 618.

— — var. caudata Kidst-
618.

— — var. crenata Kidst.
618.

— — var. delicatula Zeill.
618.

— — var. Gruneri (Zeill.)
618.

— — var. suberenata
Schuster* 618.

— polymorpha 618, 625.

— pseuderosa Sterzel*
625.

— Schwedesiana 607.

— Sturi 625.

— vestita Lesq. 637.

— Whitbyensis Brgt. 582.
Pectis N. A. II, 388.
Pedaliaceae II, 245, 473.

— III, 271.
Pedalium 439.
Pedalophyllum Ralf'sii 42.
Pediastrum 346.

Pedicellaria II, 621. — X.

A. II, 352.
Pedicularineae III, 50.
Pedicularis II, 146. — III,

322, 323. — N. A. II,

523, 524.

— Davidii var. flaccida
Diels II, 523.

— palustris L. II, 591. —
III, 9. — P. 252.

— rhaetica A. Kerner III,
328.

■ — Sceptrum-Caroliniaum

P. 252.
Pedinophyllum interrup-

tum (Nees) 69.
Peganum III, 226.

— Harmala 643. - III,
345.

Pegolettia X. A. II, 388.
Peireskia II, 690. — III,
390. — N. A. II, 349.

— aculeata II, 690. — III,
390.

— Godseffiana III, 46.
Peireskiopsis II, 170. —

III, 158, 159.
Pelagophycus giganteus
Aresch. 371.

— Porra (Leman) 371.
Pelargonium 467. — III,

412.

— capitatum II, 933.

— Endlicherianum II, 154.

— grandiflorum nanum
III, 362.

— odoratissimum II, 933.

— roseum II, 933.

— zonale 541, 678. — III,
356.

Pelekium Mitt. 51, 58.
Peliosanthes courtallensis

II, 214.
Peliostomum E. Mey. II,

129, 130.
Pellaea adiantoides(7)esi'v'

Prantl II, 794.

— andromedifolia II, 797,
808.

— atropurpurea II, 787.

Pellaea auriculata II, 797.

— deltoidea II, 797.

— flavens II, 977.

— gracilis Hook. II, 173,
766.

— hastata (Thbg.) Prantl
II, 794.

— lancifolia II, 797.

— Lozani Maseon* II, 790,
813.

— namaquensis II, 797.

— nivea II, 977.

— notabilis Maxon* II,
790, 813.

— robusta II, 797.

— Seemanni II, 790.

— tenera II, 977.

— (Pteridella) timorensis
v. Aid. v. Ros* II, 781,
813.

— viridis (Forsk.) Prantl
II, 794.

Pellia Raddi 64. — II, 739.

— calycina Tayl- 40.
Pellicularia Koleroga Cke.

139, 140, 207.
Pellionia II. 991.

— Daveauana II, 991.
Peltaria Jacq. III, 191.

— alliacea III, 193.
Peltidea 15.
Peltideaceae 18.
Peltigera 15, 16. — P. 322.

— americana Wainio 22.

— horizontalis Hoffm. 22.

— spuria DC. 16.
Peltistroma 128.
Peltistromella v. Höhn. \.

G. 128, 304.

— brasiliensis v. Höhn*
128, 304.

Peltogyne II, 621.
Peltolepis grandis 65.
Peltophorum III, 58. —
N. A. II, 447.

— Linnaei Benth. II, 899.
Pemphigus indicus Kieff*

II, 613.

— tessellata II, 618.
Pemphis acidula II, 220.

906

Penaea— Peperomia Ottoniana.

Penaea II, 986.
Penicillanthemum
Vieillard II, 207.

— latifolium Vieillard II,
208.

Penicillium 153, 160, 163,
166, 174, 182, 183, 184.
730. — III, 621.
- brevicaule 161, 182.

— digitatum (Fr.) Sacc.
137.

— glaucum Lk. 103, 142,
1.13, 156, 159, 161, 171,
177, 182, 183, 201, 206,
271, 690. — II, 692,
696, 729. — III, 486,
622.

— humicolum Oud. 271.

— italicum WeJimer 271,
272.

— luteum Zuk. 271.

— olivaceum 272.

— roseum Lk. 271.
Peniophora 107, 118, 128,

174, 259.

— aurantiaca (Bres.) v.
Höhn, et Litsch. 14 1.

— byssoidea (Pers.) v. H.
et L. 259.

— Caesalpiniae P. Herrn*
304.

— Candida (Pers.) Lyman*
174, 304.

— coccinea v. Höhn, et
Litsch* 118, 304.

— convolvens (Karst.) v.
H. et L. 113.

— crystallina v. H. et L.
113, 259.

— farinosa (Eres) v. H.
et L. 304.

— Molleriana (Bres.) Sacc.
259.

— mutata (Peck) v. H. et L.
113.

— ochroleuca (Bres.) v. H
et L. 260.

— radicata (P. Herrn.) v. H.
et L. 112, 113, 259.

— Roumeguerii Bres. 259.

Peniophora serialis (Fr.)
v. H. et L. 259.

— sordida (Schroet.) 113.

— sparsa (B. et Br) Che.
259.

— subabscondita (Bres.)
v. H. et L. 113.

— subavellana P. Henn*
138. 305.

— sublaevis (Bres.) v- H.
et L. 113, 305.

— subsulphurea (Karst.)
v. Höhn, et Litsch. 113,
144, 259.

— tomentella Bres. 144.

— velutina (DC) v. H.
et L. 259.

Penium Chodati Bernard-
SSL

— elegans Bernard* 384.
Pennisetum II, 118, 246.

— III, 92.

— americanum (L.) K.
Schum. II, 246. - III,
93.

— dichotomum II, 231.

— longistylum II, 255.

— spicatum II, 41.

— typhoideum Rieh. III,
87.

Pentacme N. A. II, 407.

— paucinervis Brandis II,
407.

— siamensis II, 223. 820.
Pentadesma butyracea II,

921.
Pentagonia N. A. II, 508.
Pentanisia N. A. II, 508.
Pentapanax N. A. II, 334.

— Ulei Harms* III, 145.
Pentaphragma N. A. II,

351.
Pentaphylax II, 216.

N. A. II, 533.
Pentapeltis III, 341.
Pentaptera glabra Roxb.

II, 622.
Pentapterygium serpens

III, 202.

Pentas N. A. II, 508.

Pentaspadon Motleyi II,

921.
Pentatropis madagasca-

riensis III, 147.
Penteria suavis II, 204.
Pentopetia III, 146. — N.

A. II, 338.

— brinensis Jum. et Perr.
III, 145.

— elastica Jum. et Perr.
III, 145, 146, 147.

— madagascariensis III,
146.

Pentstemon II, 129. — III,
50, 57, 324, — N. A. II,
524.

— azureus tw.Jeffrayanus
A. Gray II, 524. "

var. parvnlus A. Gray

II, 524.

— baccharifolius Hook. III,
325.

— calycosus Small II, 524.

— crassifolius Lindl. II,
524.

— Douglasii Hook. II, 524.

— Gorraani Greene II, 144.

— heterophyllus var. lati-
folius Wats. II. 524.

— linearifolius Coult. et
Fisch. II, 524.

— Menziesii v«r.Douglasii
A. Gray II, 524.

— Wardi A. Gray II, 524.
Pentzia virgata II, 838.
Penzigia 131.

— Arntzenii Theiss.'1' 305.

— fus-co - areolata Rehm
V.M.

— seriata Theiss* 305,

— sessilis Theiss* 305.
Peperomia 721. — LI, 189,

190, 208, 977, 979. —

III, 59, 271. — N. A. II,
474.

— arifolia 721. — 11,977.

— contro versa DC II, 621 .

— cordifolia 721.

— metallica 721, 722.

— Ottoniana II, 977.

L'eperomia pellucida— Petrophytum.

907

Peperomia pellucida II,
977, 980.

— resedeflorae 721.

— rubella 721.

— Saundersii 721, 722.

— .Sintenisii II, 977.
Peplis II, 581.

— portula L. II, 580. —
III, 40, 41.

Pera III, 208. - N. A II,

420.
Peracarpa carnosa II, 214.
Peramiura decipiens Piper

II, 313.

— Menziesii Morong II,
313.

Peranema 327. — II. 701.

— trichophorum 367.
Perezia II, 995. — N. A. IT,

388.

— flavescens Dus. III,
176.

— recurvata Less. rar.
sessilis Ihis. III, 174.

Pergularia africana III,

146.
Pericampylus III, 252.
Perichaena corticalis

(Pers.) Rost. 143.
PericoniapvcnosporaPVes. '

266.
Periderrnium 246, 252, 822.

— complanatum Barcl.
148.

— montanum Arth. et Kern
141.

— Pini (Wühl) Kteb. 250,
252.

— puriforme 834.
Peridineae 327, 328, 329,

330, 338, 340, 344, 346,
347, 348, 349, 364, 365.
Peridinium javanicum
Bernard;' 384.

— pallidum 343.

— subsalsum Ostenf.* 346,
384.

— tabulatum II, 996.

— Willei 330.
Peridiscus III, 220, 224.

Perisporiaceae 113. 119,

126, 129, 136. 138, 166.
Perisporium Lantanae P.

Renn."' 305.
PeristylusOrchidis Kränzt-

II, 315.
Peroneutypella corynosto-

moides Rehm* 146. 305.
Peronospora 114, 117,

202, 208, 215, 217, 230,

231, 233, 234, 778, 821,

859, 860.

— arborescens (Berk) De
By 235.

— Corydalis De By. 144,
- cubensis II, 30.

— Cyparissiae DeBy. 235.

— effusa (Grev.) Rabh. 826.
— III, 563.

— Floerckeae7feWer»j.235.

— Nicotianae Speg. 235.

— Oerteliana Kuehn 148.

— parasitica (Pers.) DeBy.
142, 148, 826,

— Rumicis Cda. 235.

— SchleideniZT^. 108, 146.

— Spinaciae Laub. 826.

— viticola DeBy. 115, 230,

234, 813. 815, 820, 828,
S60.

Peronosporaeeae 113, 119,

235, 826.

Perotis latifolia^Y. III, 87.
Perrisia filicina II, 803.

— ignorata (Wachtl) II,
626.

— populeti Rilbs. II, 615.
Perrottetia III, 222.
Persea 608. — III, 230. —

N. A. II, 440.

— bracbyphylla Princijn*
608.

— gratissima Gaerfn. II,
872. — III, 42.

Perseoxylon Californicum
599.

— Eberi 599.

Persica 313, 320. — P.
306, 310.

— vulgaris MM- 652.

Persoonia 645. — III, 285.

— ferruginea 646.
Pertusaria 15.

— nolens Nyl. 24.

— pustulata (Ach.) 15.

— Poccatii Jatta* 27.
Pertusariaceae 18.
Perubalsam III, 477, 498.
Pessopteris Undeno. et

MaxonN. G. II, 789,813.
Pestalozzi a 272, 851.

— breviseta 209.

— Eyrsonimae r. Höhn*
128, 304.

— Callophylli P. Henn.*
305.

— congensis P.Henn.* 305.

— CoptospermaeP.iTemi.*
138, 305.

- elasticolaP. He««.*305.

— Evansii P Henn* 139,
305.

— inneres Desm.subsp. eu-
sora Sacc* 305.

— Guepini Desm. 142, 218,
219. — II, 848, 944.

— Palmarum 133, 135,
818, 822. — II, 883, 944.

— Sapotae P Henn* 305.

— sonsensisP Henn.*30^>.

— uvicola Speg. 267, 274.

— versicolorSpeY/. rar. va-
gans Speg* 305.

Petalopbyllum Ralt'sii
(Wils.) Gotische 64.

Petasites albus Grtn. II.
217.

— japonicus Miq. III, 174.

— officinalis Mnch. III,
536.

— tricholobus II, 214.
Pttitia domingensis Jacq.

II, 899.
Petraeovitex N. A. II, 544.
Petrocelis II, 270.

— cruenta 330.

— Middendorfi'ii KJellm.
330.

Petrophytum 478. — III,
296. - X. A. II, 497.

908

Petteria — Phaseolns umltitiorus.

Petteria III, 239.
Petunia 666, 713. — III,
332.

— nyctaginiflora III, 332.

— violacea 655, 656.
Peucedanum 594. — III,

337. — N. A. II, 538.
Peumus Boldus Mol. 490.

— III, 574.
Peziza vesiculosa Bull.

121. — II, 968, 969.
Pezizeae 112,113, 119,123,

169.
Pezizella aspidiicola Rehm

149.

— chrysostigma Sacc. 149.

— dilutella (Schrot.) Rehm
146.

— lanceolato-paraphysata
Rehm* 305.

- microspis Sacc. 149.

— sclerotinioides Rehm
144.

Phaca 504. — N. A. II, 447.

— elegans Hook. II, 441.

— parviflora iYm^. II, 441.
Phacelia N. A. II, 434.

— tanacetifolia 717. — II,
650.

Phacidiaceae 113, 119.
Phacidium multivalve
(DC.) Kze. et Schm. 143.

— Parinarii P. Renn* 305.
Phacus acutissimus Ber-
nard* 384.

— helicoidem Bernard*
384.

Phaeanthus N. A. II, 330.

— Cumingii Miq. II, 330.

— malabaricusFir/. 11,330.

— nutans ./. Till. II, 330.
Phaeangium 169.

— Vogelii P. Henn.* 305.
Phaeobotryosphaeria

Speg* N. G. 130, 305.

— yerbae Speg* 305.
Phaeocephalus gnidioides

Sp. Moore III, 174.
Phaeodimeriella Speg. N. G.
129.

Phaeographis dentritica
(Ach.) 15.

— Lyellii (Sm.) Hue 15.

— patagonica A- Zahlbr*
27.

Phaeobelicosporae 2G9.
Phaeolimacium bulbosum

P. Renn, 258.
Pbaeolopsis 124.
Phaeolus 124.
Phaeomarssonia Speg. N. G.

130, 305.

— yerbae Speg* 305.
Phaeopappus N. A. II,

388.

— declinatus II, 151.
Phaeophyceae 337, 339,

340, 349, 368.
Phaeophyta III, 14.
Phaeoporus applanatus

Schroet. 255.
Pbaeoseptoi-ia Speg. N. G.

129.

— Papayae Speg* 129,
305.

Pbaeostilbaceae Sacc. 270.
Phaeozoosporeae 369.
Phagnalon II, 614.
Phajus N. A. II, 316.

— maculatus II, 162.
Phalaenopsis N. A. II, 316.

— amabilis Lindl. II, 316.

— III, 111.

— — var. ambigua Bur-
bidge II, 316.

— — var. erubescens
Burbidge II, 316.

— ambigua Rchb. f. II,
316.

— Aphrodite var. gloriosa
Veitch II, 316.

— Lindeni III, 117.
Phalaris 733. — II, 128.

— N. A. II, 298.

— arundinacea L. III, 87.

— P. 247.

— bulbosa II, 841.

— canariensis L. 722.

— canariensis X arenaria
II, 841.

Phalaris commutata II,
128, 259, 841.

— minor Retz. II, 211. —
III, 87.

— muricata Forsk. III, 94.

— stenoptera Hack* II,
841. — III, 90.

Phaleria acuminata Gilg

458.
Phallaceae 119, 123.
Phallogaster saccatus 263.
Phallus dirplicatus 261,

262.

— gracilis 261.

— impudicus 261, 262.

— indusiatus 261, 262.

— irpicinus 262.

— merulinus 262.

— Ravenelii 261-

— rugulosus 262.

— tenuis 262.
Phanerophlebia II, 766.
Phanerosorus Copel. N. G.

II, 782, 814.

— sannen tosus( Bak.)Copel.
II, 782, 808, 814.

Pharbitis acuminata Choi sy
II, 396.

— bracteata Choisy II,
396.

— purpurea II, 140.
Pharnaceum L. III, 139.
Pharus parvifolius Nash*

II, 197. — III, 94.
Phascum 38.

— rectum With. 38.
Phaseolus 476, 726, 733.

— II, 708, 996. — III,
234, 235. — N. A. II,
448.

— Chaneti Levl. II, 448.

— lunatus L. II, 54. —

III, 233, 462, 521, 522,
523, 524, 525, 534, 537,
538, 553, 563, 643, 659.

— P. 294.

— multiflorus Lam- 668,
738, 740, 741, 745. —
II, 722. - III, 521.
534.

Phaseolus vulgaris — Pholiota duroides.

909

Phaseolus vulgaris L- 668,
790. — II, 671. — III,
235, 516, 521, 522.

Phebalium nudum II, 262.

Phegopteris II, 738.

— alpestris (Hopste) Mett.
II, 808.

— (Goniopteris) ceramica
v. Aid. v. Ros* II. 781,
814.

— dryopteris II, 738. 773,
787.

— Hosei (Bak.) v.A. v.R.
II, 782.

— — var. sumbensis v. A.
v. R* II, 782.

— late repens Hope II,
778.

— polypodioides II, 738.

— Robertiana II, 738.

— Smithii v- Aid. v. Ros*
II, 781, 814.

Phelipaea N. A. II, 472.

— caesia Gris. II, 472.

— Reuteriana Rchb. fil. II,
472.

Pbelline Labill. II, 126.

— III, 144. - N. A. II,
333.

Phellodendron III, 53. —
N. A. II, 512.

— amurense.Rwpr.111,307.
Phellomyces 852.

— sclerotiophorus Frank
852.

Phellorina 262.
Phenanthera petalifera

Eollick- 577.
Pbenax X. A. II, 541.
Phialanthus III, 59. —

N. A. II, 508.
Pbialea acuum Rehm 149.

— grisella Rehm 149.
Phialodiscus N. A. II, 517.
Philadelpheae III. 221,

222, 223.
Philadelphus II, 598. —
N. A. II, 519.

— coronarius L. II, 59^.

— III, 316.

Philadelphus Gordonianus
III, 6.

— purpureo-maculatus
Lemoine III, 31(i.

Philgamia II, 228.
Philippia N. A. II, 410.

— Chamissonis Elotzsch
III, 200.

Phillyrea 563. — III,
265.

— angustifolia L. 563. —

— III, 265.

— latifolia L. III, 265.

— media 545, 563. — III,
265.

— Vilmoriniana II, 154.
Philodendron II, 115, 621.

— N. A. II, 282.

— Corsinianum III. 7-~>.

— giganteum Schott 739.

— Ilsemani III, 46.

— pertusum Knth. et Bch.
739.

Philonotis 51.

— alpicola Jur. 46.

— calcarea Schpr. var.
Loeskeana Hammersch*
78.

— cornorensis (C. Müll.)
Besch- 54.

— fugacissima Rar. 56.

— mauritiana Aongstr. 54.

— obtusata C. Müll. 54.

— seriata 60.

— seriata Mitt- var. persica
Schffn* 53, 79.

— varians Card* 79.
Philotria Raf. III, 96. —

N. A. II, 301.

— angustifolia III, 96.

— canadensis III, 96.

— linearis III, 96.

— minor III, 96.

— Nuttallii III, 96.

— Planchonii III, 96.
Philyrophyllum Schinzii

0. Hoffm. HI, 174.
Phitymorpha 328.
Phlebia aurantiaca (Soiv)

Schroet. 144.

Phlebophora rugulosa Leu.
258.

— Solmsiana P. Herrn. 258.
Phlebotaenia III, 58. —

N. A. II, 479.
Phleospora borealis Lind
et Vleugel* 305.

— Oxyacanthae Wallr.
150.

— Plan taginis .£>/&. e£2?«6.
145.

Phleuin 726. — X. A. II,
298.

— arenarium II, 225.

— asperum II, 225.

— pratense 653, 726.
Phlogacanthus II, 224.
Phlox N. A. II, 478.

— Drummondii P. 104,
315.

— ovata L. III, 541.

— subulata L. III, 278.
Phlyctaena Magnusiana

(Allesch) Bres. 149.
Phlyctis 15.

— agelaea (Ach.) Körb.
24.

— Ruwenzori Jatta* 27.
Phoebe Hainesiana

D. Brandts II, 225.
Phoenicopsis 582, 591,

613.
Phoenix II, 241. — P.

103, 299. — N. A. II,

320.

— acaulis Buch. II, 851.

— angustifolia Beer 582,
591.

— dactylifera L. II, 102,
993. — III, 580, 622.

— latior 582.

— Potoniei Krass* 582.

— reclinata Jacq. II, 250.
— III, 123.

— speciosa Heer ">82. —
11, 236.

Pholidota X. A. II, 316.

— chinensis II, 162.
Pholiota 109.

— duroides Pech* 305.

910

Pholiota paulensis— Phyllachora Dawei.

Pboliota paulensis P.
Henn* 305.

— radicosa 182.
Phoma 101, 820.

— abietina Hartig. 213,
214, 822, 847, 851.

— ambiens Syd* 305.

— Anthurii P. Henn* 300.

— Armeriae ./aap* 306.

— Betae Frank 115, 118,
156, 205, 211, 213, 214,
S47.

— Bonanseana Sacc* 306.

— Ceanothi P. Henn. 145.

— conigena Karst. 145.

— Oomari Jaap* 306.
frigida Sacc* 149, 306.

— glumicola Speg.* 306.

— Heckeriae P. Henn*
306.

— Heveae Petch 135.

— Kuebniana 847.

— ligustrina Sacc.* 306.

— Lopbantbi (Ellis) Bub-
145.

— Mali 209.

— malorurn Sacc 267.

— matecola Sjjeg* 306.

— Murrayae P. Henn.*
306.

— persicifila Speg* 129,
306.

— picea (Pers-J Sacc 144.

— protracta Sacc. 150.

— Psidii P. Henn* 306.

- roseo -nigra Nads.* 100,
306.

— Siliquae 104.

— Solani 104.

— Suaedae Jaap* 306.

— Terminaliae P. Henn.*
306.

— Tsteriana Speg.* 306.

— yerbae Speg* 306.
Pbomopsis protracta Sacc.

149.
Pboradondron III, 247. —
I'. 279. — N. A. II, 453.

- crassifolium II, 847.

— flavescens III, 39.

Phoradondron lanceolato-
ellipticum P. 279.

— mucronatum II, 191.
Phormidium dimorphum

Lemm* 330, 384.

— laminosum Gom- 331,
712.

— truncatum Lemm* 330,
384.

Pbormium III, 107.

— tenax II, 919.
Pbotinia III, 522, 523, 524.

— P. 299.

— japonica III, 42.

— serrulata Lindl. III,
522.

— Wrigbtiana II, 166.
Pbotobacterium 698.

— tuberosum 698.
Phragmidium 254.

— albidum 254.

— americanum (Peck) Biet.
142.

— Andersoni Shear 141.

— arcticum 254.

— carbonarium (Schicht.)
Wint. 145, 147.

— Fragariastri (DG.)
Schroet. 148.

— Nambuanum Diet*
306.

— occidentale Arth- 142.

— perforans (Dietr.) Piro*
306.

— Potentillae (Per,s\/Jiar^.
141.

- Potentillae Wint. 142.

— Potentillae -canadensis
Diet. II, 972.

— Rosae-acicularis Liro*
250, 306.

— Rosae-moschatae Diet.
147.

— Rubi (Pers.) Wint. 148,
254.

— — vor. candicantium
Vleugel* 254, 306.

— Rubi-Idaei 254.

— Rubi - saxatilis Liro*
250, 306.

Pbragmidium saxatile
Vleugel* 254, 306.

— speciosuni Fr. 141.

— subcorticum (Schk.)
Wint. 141.

— violaceum 254.
Phragmites 547. — P. 253.

— Arundo L. II, 300.

— communis Trin. II,
300. — III, 371. — P.
318.

— Roxburghii II, 220.
Phragmonaevia latissima

104.
Phragmopeltis 128.
Phragmotrichum Flageo-

letianum Sacc* 306.
Phreatia III 121. — N. A.

TI, 316.
Phrygilanthus II, 268.

— aphyllixs II, 105.
Phrynium II, 244. - III,

108.
Phycocbromopbyceae 349.
Phycodes circinnatum 583.
Phycomyces 151, 232, 233,

670. — II, 660.

— nitens 745.
Pbycomycetes 115, 120,

126, 164, 230, 826.
Phyllacbne 519, 520. —
II, 120.

— clavigera 519.
uliginosa II, 120.

Phyllachora Nke. 115, 155.

— Aberiae P. Henn* 139,
306.

— ampbigena Speg. 131.

— Ardisiae P. Henn.* 307.

— BakerianaP. Henn* 146,
307.

— Balansae Speg. 131.

— bokensis P Henn* 307.

— Cannabis P. Henn* 307.

— Canarii P. Henn* 307.

— conspicua Ferd. et Wge*
307.

— curvulispora P. Henn*
307.

— Dawei Massee* 307.

Pbyllachora dendroidea — Phyllosticta ilioiperda.

911

Pbyllachora dendroidea
P. Henn. 146.

— Ery throxyli Rehm* 307.

— Fici-rninahassae
P. Henn* 307.

— flavo-cincta Rehm 146.

— Goeppertiae Theiss*
132, 307.

— graminis (Pers ) Fehl.
142.

— Guavira Speg. 131.

— Guazumae P. Henn*
307.

— heterospora P. Henn*
307.

— Huberi P. Henn. 135,
146.

— Ingae P. Henn* 307.

— ipirangae Speg* 307.

— Jacquiniae Rehm* 307.

— luzonensis P. Henn*
307.

— Macarangae P. Henn*
307.

— paraguayra 131.

— Parkiae P. flewn.* 307.

— paspalicola P. Henn-
146, 307.

— par vula Speg* 307.

— peribebuyensis Spey.
var. bracbycarpa Speg*
307.

— Petitmenginii itfaire*
307.

— Podagrariae (Roth.)
Wint. 146.

— pomigena 782.

— Pongamiae P. Henn*
307.

— Rhopalae P. Henn*
307.

— Tracyi .EM. ei Et'. 142.

— Trifolii (Pers.) Wint.
146.

— Usteriana Speg* 307.

— verrucosa Speg. 307.

— — var. papulosa Speg*
307.

PhyUactinia 264, 265. —
II, 956.

PhyUactinia corylea (Pers.)

Karst. 141, 265.
Phyllagathis N. A. II, 460.
Phyllanthus II, 412.

III, 58. — N. A. II, 420.

— distichus II, 863. —
III, 476.

— Emblica L. II, 851.

— flexuosus Müll.- Arg.
III, 204.

— floribundus Müll.- Arg.
III, 204.

— pulcher II, 162.

— tenuirhachis J. J. Sm ith
III, 204.

Phyllitis Hill. 559. — II,
806.

— (Scolopendrium) inter-
media v. Aid. v. Ros.* II,
782, 814.

Phyllobium sphagnicola
G. West* 353, 384.

Phyllobotryum N. A. II,
425.

Pbyllocactus phyllanthoi-
des II, 720.

— Purpusii Weing. II,
195.

Phyllocladoxylon 567, 572.

— antareticum Goth* 571.
Pbyllocladus III, 66.

— alpinus 532. — II, 262,
982. — III, 66.

— glaueus II, 262.
Phyllocoptes azaleae II,

619.
Phyllodoce II, 592, 593,
594.

— coerulea (L.) Gren. et
Godr. 516. — II, 592.
— III, 204.

— taxifolia Salisb. II, 592.
Phylloglossum 578. — II,

763.
Phyllonoma III, 221.
Phyllopbora II, 270.
Phyllopodium N. A. II,

524.
Phylloporina epiphyha

Müll-Arg. 22.

Phylloscirpus andesinus

III, 80.
Phyllosiphon Arisari Kühn

357, 829.
Phyllostachys III, 91.
bambusoidisP.250,311.

— nidularia MwnroII, 160.

— in, 91.

— nigra II 162.
Pbyllosticta 129, 820, 846.

— Abutilonis P. Henn*
308.

— Acoridii P. Henn* 308.

— adeloica Speg* 308.

— agnostoica Speg* 308.

— albomaculans Kab. et
Bub* 117, 308.

— Alismatis Sacc et Speg.
149.

— aporoica Speg* 308.

— Atriplicis Desm. 150.

— Balsaminae Voglino*
104, 308.

— Begoniae Brun. 105,
273, 780.

— Begoniae (P. Brun.)
Voglino* 104, 308.

— bellucensis Mart. 108.

— Berberidis Rbh. 150.

— Betae 120.

— capitalensis P. Henn*
308.

— corcontica Kabät et
Bubäk 149.

— Crini Sacc* 308.

— Derridis P. Henn* 308.

— destruens III, 337.

— doinestica Vogl* 104,
308.

— Dracaenae P. Hen,*-
308.

— fragaricola Desm. II,
7'.).

— Galeobdoli Syd* 308.

— Garrettii Syd.* 308.

— heterospora Speg* 308.

— Heveae Zimm. 135.

— hortorum Speg. 1 04, 1 < 15

— humerisporaSpe^.* 308,

- iliciperda Oud. 103.

912

Phyllosticta llicis— Phyteuma orbiculare.

Phyllosticta llicis Oud-
103.

— insulana Moni. 846.

— IschnosiphonisP.ifewn*
308.

— iserana Kab. et Bub*
117, 145, 308.

— leptosperma Speg* 308.

— limitata 209.

— LucumaeP. Henn* 126,
308.

— Malkoffii Bubäl* 152,
308, 814.

— mate Speg* 308.

— Millettiae P. Henn.*
308.

— montana Yogi* 104,
308.

— nuptialis Thiim. 150.

— Odinae P. Renn* 139,
308.

<— paraensisP. Henn* 308.

— Paratropiae Sacc* 308.
- paulensis P. Henn* 309.

— pirina Sacc. 272.

— piriseda 209.

■ — Pruni-domesticae Vogl.
308.

— Psychotriae P. Henn*
309.

— ramicola Petch* 135,
309.

— rhamnigena Sacc. 118,
284.

— Ribis-rubri Vogl. 308.

— Rutaceae P.Henn* 309.

— smilacis E. et M. 141.

— Theae Speschn* 218. -
II, 848.

— Trigoniae P. Henn.*
309.

— Usteri %#.* 309.

— viridis E. et K. 141.

— Wandae Nmki* 119,
309.

— yerbae Speg* 309.
Phyllotbeca equisetoides

Zigno 582.

— deliquescens Schm. 582.

— sibirica Heer 582.

Pbyllotheca Whaitsii

Seward* 622.
Phyllotenia 613.

— longifolia 613.

— Pfaffi Salfeld* 613.
Phylloxera II, 607, 609,

610, 611, 618.

— quercus Boy- II, 611.

— vastatrix815.— II, 608.
Phymaspermum parvi-

folium II, 838.
Phymatodes nematorhizon
(A. A. Eaton) Underw. II,
790.

— prominula Maxon* II,
790, 814.

Phymatbolithon poly-

morphum 377.
Phymatospbaeriaceae 128.
Pbysalacria inflata 260.
Pbysalis II, 161. — III,

332. — N. A. II, 528.

— Fauriei Le'v- et Van*
II, 163. - III, 332.

Pbysalospora ampbigena
(Speg.) 131.

— Astrocaryi P. Henn.*
309.

— atroinquinans Rehm*
309.

— aurantia Ell. et Ev. 142.

— Balansae (Speg.) 131.

— bifrons Starb. 131.

— congensis P. Henn*
309.

— Crepiniana Sacc et
Mar eh. 24 1.

— Diapensiae Rehm* 309.

— Empetri Rostr. 241.

— Kellermanii Rehm* 309.

— Macbaerii P. Henn*
309.

— melastomicola Speg*
309.

— pelladensis P. Henn.*
309.

— perversa Rehm 146.

— Phaseoli P. Henn. var.
guatemalense Rehm*
309.

Physalospora Ramosii
P. Henn* 309.

— solanicola P. Henn*
309.

— Tibouchinae P. Henn*
309.

— varians Starb. 131, 146.
Physarum auriscalpium

Che. 143.

— contextum Pers. 125.

— psittaciaum Dum. 143.

— vernum Somm. 120.

— virescens Dum. var.
alpinum Lister* 120, 309.

— viride (Gmel.) Pers. 143.
Pbyscia 15.

— tribacoidesrar.caesiella
B. de Lesd. 11.

— virella III, 688.
Physcidia Tuch. 10.

— callopis Müll.- Arg. 10.

— cylindrophora (Tayl.)
Hue 10.

— squamulosa Tuch. 10.
Physena III, 220, 224.
Physmatricolor A- Zahlbr*

27.
Physocarpus 477, 478, 479,

480. - N.A. II, 497.
Pbysoderma Gerhardt!

Schroet. 148.
forma minor Krieg.

148.
Physomatopitys Goepperti

600.
Pbysoporella 624.
Physostegia N. A. II, 437.
Physostelma N. A. II, 338.
Physostigma venenosum

Balf. III, 432.
Pbysostoma elegans

( Wüliamson) 594.
Physurus N. A. II, 316.

— viridiflorus Lindl. II,
313.

Phytelephas III, 546.

— macrocarpa II, 903.
Phyteuma II, 100. — N. A.

II, 351.

— orbiculare L. II, 351.

Phyteunia Sieben Brandisiannni— Pirnelea delicatula.

913

Phyteuma Sieberi var.
Brandisianum Maly II,
351.

— spicatum L. 656. — III,
165.

— Vagneri II, 100.
Pbytolacca N. A. II, 474.

— decandra L. 438. —
III, 271, 526.

Phytolaccaceae II, 203,
250, 474. —111,54, 271.

Pbytophthora 151, 163,
213, 782, 823, 825.

- — infestans De By. 115,
120, 164, 230, 234, 813,
815, 819, 826. — III,
418.

— omnivora De Bary 130.

— Tbalictri Wils. et Davis
141, 235.

Phytoptus calacladophora
Rübs* II, 620.

— Piri II, 608, 619.

— pullulans II, 607.

— vitis II, 607.
Picea 556, 558, 567, 739.

— II, 184. —111,31. —
N. A. II, 278.

— ajanensis Fisch. III, 60.

— alba P. 251.

— albertensis Penh* 599.

— canadensis Müh II, 145.

— III, 62, 422.

— Engelmanni II, 146. —
P. 251.

— excelsa Lk. 561, 595,
609. 643, 654, 785. —

II, 69. — III, 28, 61,
64, 70, 454, 640. — P.
243, 251.

— Glehnii Mast. III, 60.

— latisquama Ludw. 561.

— Mariana III, 422.

— Morinda II, 225, 849.

— III, 67.

— morindoides III, 67.

— omorica Panc. III, 69.

— orientalis II, 154, 901.

— polita Carr. II, 901.—

III, 60.

Picea pungens P. 120, 204.

— pungens glauca Koster.
III, 57.

— rubens III, 422.

— rubra Link 561.

— Schrenkiana globosa
III, 61.

— sitchensis II, 144. —
P. 290.

— Smitbiana II, 901.

— spinulosa Griff'. III, 61.
Pichia 195.

— californica 195.
Picoa 169.

Picraena excelsa III, 510.
Picramnia III, 219. — N. A.

II, 527.

— camboita III, 510.

— ciliata III, 510.
Picrasma III, 58. — N. A.

II, 527.

— excelsa Gris. II, 527.

— javanica III, 510.

— quastioides III, 510.
Picris N. A. II, 388.
Picrodendrum II, 219, 223.
Pieris III, 5. — N. A. II,

410.

— formosa III, 201.

— nitida Benth. et Hook-
II, 409.

— ovalifolia D. Don II,
223, 557.

Piersonia 169, 235.

— alveolata Harkn. 169.

— scabrosa Harkn. 169.
Pigafettoa Mass. 66.
Piggotia Fraxini B- et C.

150.
Pilacre faginea (Ir.) Berk.
et Br. 143.

— Petersii 165.
Pilaira 233.
Pilayella 369.
Pilea N. A. II, 541, 542.

— corymbosa Griseb. II,
541.

— cuneifolia Wedel. II,
541.

— grandis 526.

Pilea heteronema Griseb.
LI, 541.

— microphylla Liebm. II,
541.

— nummulariaefolia 526.

— rotundata Griseb. II,
541.

— Wrightiana Wedd. II,
541.

Pileolaria Toxicodendri
(B. et R.) Arth. 141,
143.

Pileus Ramirez III, 220.

Pilinia 343, 354.

— endophytica Collins* 330,
384.

— Lunatiae Collins* 354,
384.

— Morsei Collins* 354, 384.

— minor 330.

— Reinscbii Wille 354.
Pilobolaceae 232.
Pilobolus 173, 233.
Pilocarpon lecanorinum.,4.

Zahlbr. 22.
Pilocarpus Jaborandi III,
465, 601.

— microphyllus III, 465,
601.

— pinnatifolius III, 465,
601.

— racemosus III, 308.
Pilocereus II, 191. — N. A.

II, 349.

— Scbottii (Englm.) Lern.

III, 159.

— setosus Gurke II, 102.

— Straussii E. Reese* II,
270.

Piloecium C. Müll. 59.
Pilopogon 51.
Pilotrichella ampullacea C-
Müll. 54.

— communis C. Müll. 56.
Pilotrichum disciflorum

Geh. et Hpe. 79.
Pilularia II, 747.
Pimelea decussata III, 58,

335.

— delicatula Lesqx. 594.

Botaniseher Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 12. 2. 12 ]

58

914

Pimeleodendron— Pinus morrisonioola.

Pimeleodendron N. A. II,

420.
Pimenta ofi'icinalis Lindl.

II, 889, 900.
Pimpinella magna P. 312,

370.

— Saxifraga 490. — II,
615. — III, 342, 567, 669.

Pinanga 459. — N. A. II,
320.

— Barnesii II, 212.

— decora III, 130.
Elmeri II, 212.

— Kuhlii III, 130.

— Micholitzii III, 46.
Pinakodendron 555.
Pinellia N. A. II, 282.

— cordata II, 162.
Pinguicula III, 244, 567.

— N. A. II, 450.

— albanica III, 244.

— alpina II. 582.

— caudafca Schltdl. III,
243.

— corsica III, 244.

— crystallina III, 244.

— grandiflora Ten. 11,450.

— III, 244.

— Hellwegeri Murr III,
244.

- hirtiflora III, 214.

— laeta III, 244.

— ■ leptoceras III, 244.
var. longifolia llchb.

II, 450.

— longifolia Gaud. II,
450. — III, 244.

— megaspilaea Boiss. et
Heldr. III, 244.

— Reichenbachiana
Schindler* III, 244.

— Reuten III, 244.

— vallisneriaefolia III,
244.

— variegata Arv.-Touv.

III, 244.

— vulgaris L. II, 591. —
111, 244, 567.

— var. grandiflora
Fiori et Paol. II, 450.

Pinguicula vulgaris var.

longifolia Are- II, 450.
Pinillosia N. A. II, 388.

— tetranthoidesP.DC.il,
388.

Pinites Lindstroemi Nath.
582.

— Protolarix Göpp. 588.

— Solmsi Sew. 582.

— thiohoensis Krass*
582.

Pinnatella Laosiana Broth.

et Par* 52, 79.
Pinnularia bieeps Gregory

II, 630.

— gibba Ehrbg. II, 630.

— interrupta W- Sm- II,
630.

— major II, 630.

— mesolepta W. Sm. II,
630.

— — var. stauroneiformis
Grün. II, 630.

— viridis Ehrenb. II, 640,
645.

Pinus 38, 556, 558, 561,
570, 578, 588, 592, 598,
608, 651, 656, 683, 685.

— II, 143, 184,826, 983.

— III, 61, 63, 67, 633.

— P. 180, 316.

— abies L. III, 554, 633.

— Armandi II, 214.

— Askenasi Geyl. et Kink.
561.

— australis III, 428.

— austriaca II, 901, 983.

— Ayacahuite II, 901.

— Banksiana II, 70.

— brevifolia 556.

— canariensis II, 901.

— Cembra L. 556. — II,
901. - III, 633, 640,
641.

— cembroides II, 901.

— contorta II, 144, 901.
- Oortesii Brongn. 561.

— Coulteri II, 901.

— Crameri 591.

— Defrancei 558.

Pinus densiflora II, 901. —
P. 136.

— divaricata P. 851.

— echinata MM. III, 62.

— excelsa II, 225, 901.

— formosana Hayata II,
214. — III, 60.

— Frieseana Wich. II,
278.

— genevensis II, 278.

— Gerardiana Wall. 561.

— II, 849.

— halepensis MM. 38,
589. — II, 152, 901. —
III, 660.

— Hartwegii II, 901.

— heterophylla II, 901.

- III, 540.

— horizontalis Don II,
278.

— Jeffreyi Murr. II, 901.

— III, 566.

— insignis Dougl. 599.

— insularis P. 280, 283,
290, 318.

— khasia IL 222, 223.

— koraiensis II, 901.

— Lambertiana II, 901.

— lapponica II, 278.

— Laricio Poir. 561. —

II, 801, 983. — 111,
633.

- longifolia II, 225, 901.

— longissima 589.

— Ludwigii Schimp. 561.

— macrostrobilina Menzel*
589.

— maritima 785.

— Massoniana II, 901. —

III, 428, 633.

— MastersianaiZaya/a III,
60.

— mitis Mchx. II, 901. ■ —
III, 61.

— montana Müh 561, 811.

- P. 310.

— Montezumae II, 901.

— monticola II, 144.

— morrisonicola Hayata
III, 60.

Pinus Murrayana — Pirus Miyabei.

915

Pinus Murrayana II, 14b\

— nigra Arnold III, 65.

— omorica II, 130.

— ornata 589.

— palaeostrobus 584.
palustris II, 901. —

III, 654.

— parvifiora S- et Z. II,
214. — III, 60.

— patula II, 901.

— Peuce Gris. II, 69,
130.

— Pinaster 570. — II,
901.

— pinastroides JJng. 561.

— pinea II, 901.

— ponderosa II, 901. —
P. 851.

— pumila Fall. III, 60.

— pumila Reg. III, 60.

- Pumilio III, 428.

— pungens Michx. 561.

— pyrenaica II, 901.

— Quenstedti 589.

— radiata II, 901.

— resinosa II, 901. — III,
423.

— rigida II, 176, 901. —
III, 70, 423.

— rubra Müll. II, 278.

— Sabiniana Dougl. 561.

— II, 901.

— septentrionalis II, 278.

— sequanensis 558.

— serotina III, 64, 540.

— silvestris L 511, 561,
576, 577, 602, 629, 634,
685, 808. — II, 63, 155,
176, 901. — III, 3. 28,
64, 65, 67, 70, 454, 633.

- P. 145, 203,215, 277,
279, 285, 289, 322, 856.

— — var. engadinensis
Heer II, 278.

— — var. Haguenensis
Loud. II, 278.

— — var. horizontalis Ant.
II, 278.

— — var- intermedia Aut.
II, 278.

Pinus silvestris var. vul-
garis genevensis Bauh.

II, 278.

— Simleri Kirik.* 561.

— sinensis II, 901.

— Stellwagi Rink* 561.

— Sternbergii 556.

— Strobus L. 561, 578.

— II, 147, 901, 983. —

III, 633. — P. 203, 243,
289, 838.

— succinifera Comv. 595.

— taeda II, 901.

— tenuifolia II, 901.

— transsylvanica Pax*
595.

— tuberculata II, 901.

— uncinoides 589.

— virginiana II, 176.
Piper 512. — II, 621. —

III, 493. — N. A. II,
475, 476.

— elongatum II, 822.

— fasciculare Rech. 457.

— II, 101.

— futokadsura II, 162.

— Graeffei Warb. 457.

— guineense Schum. II,
237. — III, 271.

— Macgillivrayi DC. 457.

— methysticum Forst Aö7.

— nigrum II, 829, 889. —
III, 518.

— peltatum L. III, 52.

— subpeltatum Willd. II,
102. — III, 9.

— Usterii C. DC. II, 213.
Piperaceae 512. — II, 166,

250, 266, 474. - III, 15,

39, 47, 226, 271.
Piperinae Barth III, 224.
Piptadenia II, 621, 898,

899.

— africana II, 236, 898.

— communis ßenth. II,
621. — P. 2!).").

Piptanthus nepalensis III,

237.
Piptocarpha II, 621.

— axillaris P. 276.

Piptoeephalis 233.

— repens v. Tiegh. 234.
Piratinera giüanensis

Aubl. 536. — III, 25:..
Pirella 232.
Piricularia Oryzae Br. et

Cav. II, 857.*
Piriqueta carnea II, 201.

— Duarteana P. 289.
Pirola II, 592, 593, 595.

— N. A. II, 476.

— chlorantha II, 176.

— grandiflora 515, 516.

— media Sw. II, 597.

— minor L. 515, 516. —

— II, 592, 957. — III,
204.

— rotundifolia L. 515. —

II, 592, 593, 597. — III,
204.

— secunda L. 516. — II,
170, 176, 592. — III,
204.

— uniflora L. 516. — II,
592. — III, 204.

Pirolaceae 515. — II, 476.
Pirostoma circinans Fr.

149.
Pirottaea Bongardii

(Weinm.) Rehm 143.
Pirus 743, 805. — IQ,

293.
: — americana II, 147.

— arbutifolia II, 147.

— Aria rar. kamaonensis
Wall. P. 255, 293, 833.

— Ancuparia L. II, 576,
599. — P. 108, 286.

var. japonica Max.

III, 290.

— communis L. 686. —
III, 28. - P. 247, 302.

— diversii'olia II, 143.
i — Malus L. 743, 804, 808.

— II, 598, 690. — III,
28. — P. 125, 210, 221»,
239, 247, 286, 296, 302,
321.

— Miyabei Sarg. P. 2~>'>.
293, 833.

58 '

916

Pirus — Plantago Coronopus.

Pirus pirus L- 561.

— Toringo Sieb. III. 290.

— Tschonoski Max. III,
290.

Piscaria N. A. II, 420.
Piscidia Erythrina L- II,

899.
Pisonia III, 224, 262. —

N. A. II, 4G7.

— aculeata L. III, 262.
Pistacia 38, 769. — II,

609. — III, 218, 219,
220. — N. A. II, 328.

— Lentiscus L. II, 150,
896. — III, 471.

— Terebinthus L. II, 102,
150. — P. 213.

Pistia II, 241. — III, 75.

— stratiotes L. II, 669,
837.

Pistiaceae II, 116.
PistillariaBatesii Peck* 309.
Pisum 714. — III, 237,
401.

— forraosum P. 276.

— sativum L. 644, 714,
738, 740, 745. - III,
233. — P. 220, 850.

Pitcairnia N. A. II, 285.

— Roezlii II, 713.
Pithecolobium III, 58. —

N. A. II, 448.

- Alexandri JJrb. II, 900.

— arboreum TJrb. II, 900.

— glomerulum Benth. II,
621.

— grandiflorum II, 209.

— Jupunba (W.) TJrb. var.
Alexandri Urb. II, 448,
900.

— latifolium.Bentfi. 11,900.

— micradenum Griseb. II,
448.

— revolutum Rose II, 194.

- Saman Benth. II, 873,
899. — III, 547.

— sericiflorum Benth. II,
448.

Pitopbora 356.

— sumatrana 356

Pittosporaceae II, 476. —
III, 222, 223, 271.

Pittosporum II, 156, 205,
264. —III, 153, 271. —
N. A. U, 476.

— bicrurium Schinz et Du-
rand II, 247. — III, 222.

— crassifolium II, 262.

— obcordatum II, 263.

— pauciflorum var. brevi-
calyx Oliv. II, 476.

— tenuifolium III, 54.

— Tobira II, 166, 609, 614.

— viridiflorum Sims III,
271.

Piuttia II, 225.
Pityolepis Tolli Nalh.* 591.
Pityophyllum alpinum
Krass.* 583.

— Staratschini Heer 591.
Pityoxylon 600, 609.

— annulatum 599, 600.

— fallax Fei. 609.

— Jimboi Reiss* 609.

— Macülusii Gram. 600.

— silesiacum Goepp. 609.
- Vateri 599.

Pitys 566.
Placoclium 3, 15.

— murorum (Hoffm.) 11.
Placoneis bicapitata Rein-

zerling* II, 630, 645.

— dicephala ( W. Sm.) Me-
reschk. II, 630.

— placentula (Cleve) Hein-
zerling* II, 630, 645.

Placosperma III, 222.
Placosphaeria Merrillii P.
Renn:' 309.

— Onobrychidis Sacc 150.

— punctiformis Saec. 150.

— pustuliformis Maire*
309.

— Tiglii P. Renn* 309.
Placyntbium 15.

— majus Rarm- 23.
Plagiobryum demissum

Lindb. 69, 648.
Plagiocbila Aloysii Sa-
baudiae Gola* 89.

Plagiochila angolensis
Steph. 56.

— asplenioides (L) Dum.
65, 69, 70.

— — var. minor 39.

— brunneola Steph. 56.

— caledonica Steph* 89.

— interrupta Dum. 44.

— koghiensis Steph* 89.

— laevifolia Gola* 89.

— linearis Stepli* 89.

— nutans Steph. 57.

— punctata Tayl. 69.

— Rechingeri Steph* 89.

— spinulosa (Dicks.) 69.

— tonkinensis Steph.* 89.

— tridenticulata Tayl. 69.

— trigona Steph* 89.
Plagiopterum III, 220, 223.
Plagiogyria adnata II, 777.

— Dunnii Copel* II, 777,
814.

— Matsumarum II, 214.

— tenuifolia Copel* 11,777,
814.

— tuberculata Copel. II,
780.

rar.gracilisCopeZ.*II,

780.
Plagiospermum III, 222.
Plagiothecieae 59.
Plagiothecium Br. eur- 59.

— ovalifolium Card* 79.
Plagiozamites 613.
Planchonia sundaica Mig.

III, 168, 447.
Planera 547.

— aquatica II, 901.

— Ungeri Köv- 561, 580,
614.

Plantaginaceae II, 477. —

III, 272.
Plantago 646. — III. 272,

273, 455. — P. 316. —

N. A. II, 477.

— arenaria L. HI, 455.

— Boissieri III, 272.

— carinata III, 272.

— commutata III, 272.

— Coronopus L. III, 272.

Plantago Cupani— Pleurocoeoaceae.

917

Plantago Cupani III, 272.

— Cynops L II, 477. -
III, 455.

— Decaisnei III, 272.

— fuscescens III, 272.

— genevensis Poir. II, 477.
— lanceolata L. 646. —

II, 257, 601, 846. — III,
9, 366, 367.

major L. 646. — III,
40, 41, 273.

— maritima L. II, 591. —

III, 40.

— media 696.

— palmata Hook. f. 111,272.
Psyllium L. II, 477. —

III, 455.

— sarda III, 272.

— sempervivoides Dus.
III, 272.

— suffruticosa Lam. II,
477.

Plasmodiophora 825.

— Brassicae 120, 228, 229,
824.

Plasmopara 828.

— cubensis 231, 778, 813,
827.

— pusilla (De By.) Schroet.
148.

— pygmaea Schroet. 146.

— viticola 139, 231, 234,
827, 828.

Platanaceae II, 168. —

III, 273.
Plataninium 600.

— crystallophilum 600.

— Knowltoni Pleiten* 600.

— paeificum 599.
Platanocarpus III, 575.
Platanus 541. — II, 68,

124, 225. — III, 3, 273.
— P. 283.

— acerifolia Willd. 111,273.

— aceroides 596, 614.

— affin is Lescjx- 594.

— cretica Doch* III, 273.

— euneata Willd. III, 273.

— densicoma Dode* III,
273.

Platanus digitata Gordon
III, 273.

- mexicana Moric. III,
273.

— occidentalis L- 547. —
III, 273. — P. 124.

— orientalior Dode* III,
273.

— orientalis 541. — III,
273. — P. 124, 288.

— racemosa Nutt. 111,273.
— P. 124.

— Wrightii S. Wats. III,
273.

Piatanthera 653. — N. A.

II, 316.

— algeriensis III, 111.

— bifolia Rieh. 653. —

III, 111, 122.

— chlorantha Gurt. 648,
653. — III, 117.

— hybridalll. 111.

— montana III, 111.

— obtusata III, 111.

— tipuloides III, 111.

— tricalcarata 654.
Platea laxiflora Miers II,

435.
Platycerium II, 765, 766,
767, 808.

— aethiopicum II, 801.

— alcicorne II, 801.

— angolenseWefoü. II, 795.

— biforme II, 801.

— grande II, 801.

— coronarium (König)
Desv. II, 781.

var. cucullatum v. A.

v. R* II, 781.

— stemmaria (Beauv.)
Desm. II, 795.

— Veitchii II, 801.

— Wilhelminae reginae
v. Aid, v. Ros* II, 781,
808, 814.

— Willinckii II, 801.
Platygrapha hypothallina

A. Zahlbr. 22.
Platylejeunea samoana
Steph.* 89.

Platylepis III, 83.
Platimiscium III, 234. —

N. A. II, 448.
i Platysma 15.

— commixtum Nyl. 23.
Platytheca galioides III,

336.
Plecoglossus altivelis T.

et S. II, 641.
Plectaneia II, 228. — III,

141. — N. A. II, 332.

— elastica Jum. et Perr.

II, 953, 954. - III, 141.

— Hildebrandtii K. Seh.

III, 142.

— rhomboidalis Jum. et
Perr. III, 141.

— Thouarsii R. et Seh. II,
226. — 111, 142.

Plectascineae 168, 235.
Plectranthus III, 228. -

— N. A. II, 437.

— fruticosus VHe'rit. II
571. - III, 228.

— madagascariensisl?e«//i.
III, 227.

Plectronia N. A. II, 508.
Pleiomeris A. DC. III, 260.
Pleiopatella Rehm N. G.
241, 309.

— Harperi Rehm* 309.
Plemeliella abietina II,

623.
Pleocarpa III, 142.
Pleocnemia Trimeni Bedd.

II, 781.
Pleodorina 358.

— illinoensis Kofoid 358.
Pleopeltis II, 766.
Pleospora herbarum fPe?-s.)

Roh. 844.

— persica Syd* 310.

— Theae Speschn* 219. —

— II, 848.
Pleuridium Presl II, 789,

813.
Pleuroschismatricrenatum

Dum. 44.
Pleuroclada Spruce 63, 66.
Pleurococcaceae 348.

'918

Pleurocoecus superbus — Podococous.

Pleurococcus superbus

360, 382.
Pleurogonium II, 766.
Pleurogramma II, 766.
Pleurogyne N. A. II, 428.
Pleuromeia 562, 563, (>36.
Pleuropus Griff'. 59.

— pterogonioides Griff.
76.

PJeurosigma II, 637.

- acuminatum Grün. II,
640.

— attenuatum W. Sm. II,
640, 641.

PJeurosoras II, 766.

— papaverifolius (Kze.)
Fee II, 793.

Pleurostachys stricta III,
80.

— tenuiflora III, 80.

— Urvillei III, 80.
Pleurostauron acutum

Rabh. II, 630.
Pleurostylia III, 171. -

N. A. II, 358.
Wightii W. et A. III,

68, 440.
Pleurotaenium Treubii

Bernard* 384.
Pleurothallis II, 582.

N. A. II, 316.

— Cogniauxiana Kränzt
II, 316.

- leptotifolia III, 119.
Pleurotus 174.

— angustatus Berk. et Br.
135, 823.

— elongatipes Peck* 310.

— olearius 260.

— Puttemansii P. Renn-'*'
310.

— subpalmatus 260.

— subsepticus P. Henn*
138, 310.

Pleurozia gigantea Steph.

57.
Plinthus Fenzl III, 139.
Pliostroma Foslie N. G.

378.
Plocamium 328. — II, 270.

Plocoglottis III, 121.
Plowrightia Sacc 115.

— Parryi (FarL) Rehm
241.

— ribesia Sacc. 202, 844.
— Williamsoniana Kellerm-

241.
Pluchea N. A. II, 388.

— indica P. 276.
Plukenetia III, 208. — N.

A. II, 420.
Plumbaginaceae II, 250,

477. — III, 16, 23, 221,

224, 273.
Plunibago capensis III,

273.
Plumeria N. A. II, 332.

— acuniinata Ait. II, 206.

- III, 9.

— Warmingii P. 278.
Pluteus bogoriensis P.

Henn. et E. Nym. 258.

— macrosporus P. Henn.
258.

— termiturn P. Henn. 258.

— Treubianus P. Henn.
et E. Nym. 258.

Poa II, 146, 259, 650. —
N. A. II, 298.

— annua L. P. 177, 249.

— III, 87.

- arachnifera II, 829, 839.

— Astoni Petrie* III, 94.

— binata Nees III, 87.

— Chaixii III, 95.
var. glabraTFem III,

95.

— — var. straminea Wein
III, 95.

— Chaixii X pratensis III,
95.

— convoluta Horyim- HI,
88.

— distans II, 296.

— Dusenii Hack. III, 87.

— eminens II, 172.

— evagans II, 146.

— fasciculata Torr. II,
299.

— foliosa 519.

Poa gracillima Renale III,
94.

— gracillima Vasey III,
94.

— heterogama E. Hacket*
II, 253.

— ligulata X bulbosa II,
299.

— litorosa III, 87.

— nemoralis L. P. 249.

— pratensis L. II, 650,
651, 837, 839. — P. 249.

— sempervirens II, 839.

— subenervis Hack. III,
87.

— szechuensis Renale* 111,
94.

— trivialis L. III, 87. —
P. 249.

— wippraensis Wein* 111,
95.

Poaceae II, 252. — III,

89.
Poacordaites gracilifolius

Schmalh* 637.
Podanthum II, 153.
Podocarpoxylon aparen-

chymatosum Goth* 571.
Podocarpus 453, 463, 464,

530, 572, 609. — II, 240,

898, 978. — III, 61, 70.

— andina 571, 685.

— dacrydioides 518.

— eocenica 564, 614.

— (Jampbelli Garet 614.

— gracilior II, 251.

— Hallii II, 262.

— Matai 518.

— milanjianus Renale II,
898.

— miro 518.

— nereifolia 685. — II,
225.

— Purdieana Hook. II,
900.

— totara 518, 519. — P.
296.

— Urbanii Pilger II, 900.
Podochilus III, 121.
Podococcus II, 241.

Podooytisus— Polygala.

919

Podocytisus III, 239.
Podophyllum EmodiiWaK.
III, 426.

— peltatum L. 438. — II,
9S5. — III, 426, 465.

Podosphaera leucotricha
(Ell et Ev.) Sacc 239.

— Oxycanthae (DO De
By. 141.

— tridactyla (Wallr.) 145.
Podosporium II, 880.
Podostemaceae 447, 534.

— II, 116. — III, 274.
Podostemon II, 227.

— subiüatus 448.
Podozamites 582, 591, 613,

636.

— angustifolius 582.

— gramineus 582.

— lanceolatus 582.
Poecilomyces Bainier 690.
Poga oleosa Pierre 434.

— II, 921, 927.
Poggea N. A. II, 425.
Pogonartbria falcata

Renale III, 87.
Pogonatberum saccba-

roideuni II, 223.
Pogonatum 51. — II, 267.

— aloides (Hedw.) P. B.
52.

— aloides Brid. rar. po-
lysetum Krieger1' 60

Pogosteraon Patchouli
Pellet. III, 543.

— — var. suavis Hk. f.
II, 891. 933. — III, 227.

Pohlia 51.

— Aloysii Sabaudii Negri*
79.

— annotina (Hedw.) Loeske
58.

— bavarica Warnst* 44,
79.

— bulbifera Warnst. 41,
58.

— elongata Hedw. 55.

— grandiflora Warnst. 58.

— proligera S. 0. Lindb.
58.

— Rothii (Corr.) Broth. 58.
Poicilla III, 59. — N. A.

II, 338.
Poinciana regia Bij. 457.
Polanisia II, 352. — III,

166. — N. A. II, 352,

353.

— hirta Sond. III, 165.

— icosandra W. et A. 507.
Polemoniaceae II, 266,

478. — III, 222, 278.
Polemonium coeruleum L.

II, 680.
Poliantbes elongata Rose

II, 195.
Pollia X. A. II, 285.

— Belangen (C. Müll.) I — condensata Clarke III,
Besch. 54. 58-

— gracilifolium Besch. 54. Pollinia N. A. II, 299.

— inflexum Lindb. 53.

— fulva II, 839. — III,

Junghuhnianum (Dz. et "°-
Mlk.) Br. jav. 52. ; Polpoda Presl III, 139.

- yakurimense Card, et ! Polyadoa III, 142.

The'r.* 79.
Pogonia III, 121. — X. A.
II, 316.

Pogonomyces 124.
Pogostemon X. A. II, 437.

— Cablin Benth. II, 891,
933.

— carnosus Miq. III. 543

umbellata III, 142.
Polyaltbia 494. — X. A.

II, 330.
Polyanthes aemospora

853.

— Pistiae Baccar. 853.

— tuberosa L. P. 853.
Polyblastia 15.

— Heyneanus Benth. II, — fuscoargillacea.4nzz 17
933. — III, 543. Polybotrya II, 792.

Polybotrya articulata ./.
Sm. II, 779.

— quercifolia II, 754.
PolycarpaeaLaw. III, 168.

— arenaria III, 169.

— brasiliensis III, 168.

— corymbosa III, 168.

— eriantha III, 168.

— Gaudi chaudi III, 169.

— linearifoliaDC. III, 168.

— longiflora III, 169.

— spicata III, 169.

— stellata III, 168.

— stylosa III, 168.

— synandra III, 169.
Polycarpicae III, 15.
Polycarpon 454.
Polycauliona Bolanderi

(Tuck.) Hue 10.

— cladodes (Tuch) Hue
10.

— coralloides (Tuck.) Hie
10.

— fruticulosa (Darb.) Hue
10.

— pbryganitis (Tuck.) Hue
10.

— subfruticulosa (Elenk.)
Hue 10.

— thamnitis (Tuck.) Hue
10.

Polycaulonia Hue X. G. 10,
72.

— Charcotii Hue" 10, 27.

— coralligera Hue* 10, 27.

— cribrosa Hue* 10, 27.

— regalis (Wainio) Hue*
21, 27.

— rhopaloides Hue* 10,
27.

Polychaetophora simplex
G. West* 353, 384.

Polychidium 15.

Polycodium neglectum
Small II, 410.

Polycystis flos-aquae 603.

Polydesmus 852.

Polydora 558.

Polygala II, 584, 585. —
III, 278. — X. A. II, 479.

920

Polygala abyssinica — Polypodiuua Jagorianuui.

Polygala abyssinica
Fresen. II, 556.

— amara L- II, 479.

— amarella III, 386.

— butyracea II, 829.

— crotalarioides Buch.-
Ham. II, 556.

— glomerata Low. III,
168, 438.

— pauciflora II, 583.

— polygama II, 583, 584,
585.

— Senega L. 437, 474. —
III, 667.

— serpyllacea Weihe II,
591. '

— Thurmanniana Chod. II,
251.

— vulgaris L. 693.

— Wettsteinii Chod. III,
278.

Polygalaceae II, 266, 478.

— III, 58, 219, 278.
Polygonaceae 595. — II,

163, 203, 250, 479. —

III, 42, 54, 221, 224,

279.
Polygonatum III, 5. —

N. A. II, 307.
Polygon um II, 163, 659,

670. — III, 4, 280. —

N. A. II, 479, 480.

— alpinum L. P. 246, 312,
316.

— amphibium L. III, 279.

— — var. terrestre II,
618.

— amplexicaule D. Don
II, 555.

— aviculare L. II, 137,
617. — III, 40. — P.
287.

— Baldschuanicumlll, 58.

— Bistorta L. III, 536.

— campanulatum Hook, f.

II, 550.

— cbinense P. 831.

— convolvulus II, 147.

— cuspidatum Sieb- et Zucc.

III, 513, 576.

Polygonum dumetorum
III, 576, 611.

— Fagopyram II, 656.

— foliosum Lindb. fil. III,
280.

— bydropiper L. II, 137,
615.

— hystriculum Schuster*
III, 280.

— japonicum II, 164. —
III, 279.

— lapathifolium L. III,
279, 280.

— minimum Kitik* 561.

— parniricum II, 159.

— pedunculare Wall- HI,
280.

— persicaria III, 40, 279.

— TU.nGmatumBucJi.-Ham.

II, 555.

— sachalinense III, 43. —
P. 287.

— sagittatum II, 163.

— sambesicum Schuster*

III, 280.

— Tanganikae Schuster*
III, 280.

— tinctorium II, 40. —
III, 677.

— tomentosumW^M. III,
280.

— viviparum L. II, 596.
— III, 34, 283.

— Weyricbii III, 56.
Polylophospermum 594.
Polyosma III, 221.
Polypletbia N. A. II, 340.
Polypodiaceae 758.
Polypodium II, 738, 766.

— accedens Bl. II, 783.

— adnascens Sw. II, 206.
784, 808.

— aemulans 559.

— alpestre III, 464.

— (Phymatodes) amplexi-
folium Christ* II, 778,
814.

— (Pleopeltis) antrophy-
oides v. Aid. v. Eos.* II,
781, 814.

Polypodium Beccarii v~
Aid. v. Ros* II, 781, 814.

— bolivianum Rosenst* II,
793, 814.

— boninense II, 166.

— aureum II, 652, 653,
752, 754, 798, 801, 808.

— (Lepicystis) Buchtienii
Rosenst* II, 793, 814.

— ceratopbyllum Copel*
II, 782, 808, 814.

— (Goniopblebium) colo-
ratum Copel* II, 782,
808, 814.

— coraiense Christ* II,
776, 814.

— crassifolium L. II, 621,.

789, 803.

— Damunense Rosenst*
II, 783, 814.

— difforme II, 754.

— dissimulans Maxori* II,

790, 814.

— dolichosorum Copel. II,
783.

— Dryopteris II, 652.

— ensiforme Thunbg. II,
808.

— excavatum Bory II, 795.

— fasciatum Mett. II, 783.

— Forbesii v. Aid. v. Ros*
II, 781, 814.

— (Cryptosorus") geluense
Bosenst* II, 784, 814.

— gladiatum Kze. II, 790.

— glaucum II, 801, 808.

— gramineum II, 790, 808.

— heracleum Kze. II, 754,
766.

— Herzogii Rosenst* II,
793, 814.

— holosericeum Rosenst*
II, 784, 814.

— incurvatum Bl. II, 778.

— — var. subtrilobum
Christ* H, 778.

— invisum Sw. II, 790.

— ireoides II, 803.

— Jagorianum Mett II»
783.

Polypodiuin Kalbreyerei — Polyporus applanatus.

921

Polypodium Kalbreyeri
Bak. II, 790.

— Knighti III, 57.

— (Goniophl.) Konings-
bergeri v. Aid. v. Ron*
II. 781, 814.

— lanceolatum Thbg. II,
797, 808.

— lancifolium v. Aid. v.
Ros* II, 781, 814.

— leiorhizon II, 754, 759.

— lineare Thbg. II, 776,
777.

— — var. coraiense Christ*
II, 776.

— longipes Fee II, 790.

— longipes Lk- II, 784.

— loxogramme Mett. II,
795.

— lycopodioides II, 790.

— macrophyllum (Bl.)
Reiniv. II, 777.

var. fokienense Copel*

177.

— melanotrichum Bak. II,
790.

— Molleri Bak. II, 795.

— Nathorstii Dus* 559.

— negrosense Copel* II,
782, 814.

— nematorhizon D. C.
Eaton II, 790.

— nervifolium II, 759.

— obliquatum Bl. II, 784.

— — ^ar. novo-guineensis
Rosenst* II, 784.

— obliquum _BJ. II, 767.

■ — ornatissimnm Rosenst.*
II, 783, 814.

— paucijugum v. Aid. v.
Ros* II, 781, 814.

— pectinatum II, 793.

— phymatodes L- II,
795.

— pilosissimum Marl. e<
Gal. II, 792.

— plantagineum Jacg. II,
790.

— plebejum Schlecht. II,
793.

Polypodium (Grammitis)

pleurogrammoides
Rosenst* II, 783, 814.

— (Goniophl.) pruavitum
Co^eZ.* II, 782, 814.

— pseudonutans Christ et
Rosenst* II, 792, 814.

— pteropus Bl. II, 751,
808.

— punctatum Thbg. II,
706.

— pustulatum II, 754.

— quercifolium L. II, 101,
754, 784, 808.

— Raapii v.Ald. v.Ros* II,
781, 808, 814.

— Rein wardtii 11,737,798.

— repens Sw. II, 790.

— reptans G-mel. II, 790.

— rigescens Bor?/ II, 795.

— rigidulum II, 754.

— rubrum II, 737.

— rupestre Z?t\ II, 778,
783.

— — var. leucolepis
Rosenst* II, 783.

— salicifolium Willd. II,
790.

— saxatile Jfe«. II, 7 78.

— Schefferi v. Aid- v. Ros.*
II, 781, 814.

— Scouleri II, 789.

— serrato-dentatum v.^lid.
v. Ros* II, 781, 815.

— serrulatum (Sw.) Mett.
II, 795.

— setigerum Bl. II, 783.

— sinuosum II, 754.

— Sodiroi Christ etRosenst*
II, 792, 815.

— stamineum P. 240, 301,
315.

— subauriculatum Bl. II,
101, 785, 808.

— subdichotomum Rac.
II, 781, 808.

— subfalcatum Bl. II, 792.

— (Grammitis) subfascia-
tum Rosenst* II, 783,
815.

Polypodium subtriangu-
lare v. Aid. r. Ros.' II,
781, 815.

— subtriquetrum Christ*
II, 778, 815.

— sumatranum Z?fl/V. II,
781.

— suprasculptum Christ
II, 790.

— taxifolium i. II, 793.

— tenellum Forst. II, 766.

— tenuisectum .BZ. 11,783.

— — var. paucisetosa
Rosenst* II, 783.

— trabeculatum Copel* II,
777, 815.

— transiens Lindm. II,
790.

— trichomanoides Sic;. II,
795.

— triquetrum J3Z. II, 783.

— Valetonianum v. Aid.
v. Ros.* II, 781, 808,
515.

— vittariiforme Rosenst*
II, 793, 815.

— vulcanicum Bl. II, 784.

— vulgare II, 587, 736,
738, 801, 808.

— vulgare auri tum II, 787.

— vulgare subsp. serratum
II, 771.

— Wallichianum Spreng.
II, 778.

— Weinlandii Christ II,
784.

— Werneri Rosenst* II,
783, 815.

— yungense Rosenst.* II,
793, 815.

Polyporaceae 99, 101, 123,
134, 171. 174, 261.

Polyporus 107, 224, 255,
822, 836, 651. — P. 295,
300.

— admirabilis 262.

— albellus 262.

— albiceps 262.

— annosns 226, 256, 792.

— applanatus Wallr. 255.

922

Polyporus betulinus— Polytriehum pungens.

Polyporus betulinus 226.

— caeruleoporus 262.

— coracinus 135.

— crispellus 262.

— croceus 104.

— delectans 262.

— fissus 262.

— fomentarins 226.

— frondosus 174.

— fulvus (Seop.) Fr. 145,
226, 260.

— hispidellus 262.

— hispidus Fr. 260.

— kumilis 262.

— igniarius 226.

— lucidus Leys- 255.

— megaloma Lev. 255.

— palensis 135.

— perula 135.

— picipes Fr. 141, 262.

— pinicola 226.

— radiatus Soiv. 111,836.

— radiciperda 99.

— Ribis (Schum.) 145.

— Rostkovii Fr. 173, 650.

— Schweinitzii 260.

— squamosus (Huds.) 145,
161.

— sulfureus 175, 698.

— umbellatus 174,

— Vaillantii 224.

- vaporarius222,224,226,
835.

— volvatus Beck 136, 262.

— vulgaris 224.
Polysaccum 262.

— album 262.
Polyscias nodosa III., 526.

— obtusa Blanco II, 334.

— odorata Blanco II, 334.

— Reineckii Harms 457.
Polysiphonia 333.

— fastigiata 374.
Polysporidium Syd. N. G.

136, 310.

— Bornmülleri 8yd.* 310
Polystachya II, 582. —

N. A. II, 316.

— Lawrenceana Krzl III,
111.

Polystacbya membrana-

cea Rieh. II, 318.
Polystichum II, 766.

— acrostichoides II, 800,
802.

— acrostichoides X angu-
lare II, 799.

— aculeatum Ser. II, 778.
var. coraiense Christ*

II, 776.

— aculeatum gracillimum
II, 799.

— angulare II, 800, 801,
802, 808.

— angustifolium II, 798,
808.

— auriculatum II, 778.

— (Cyrtomium) Balansae
Christ* II, 777, 815.

— capense Willd. II, 793.

— Dutbiei Hope II, 778.

— falcatum II, 777.
var. Mayi II, 799,

808.

— filix mas 725.

— flexum Kze. II, 793.

— horizontale Bresl II,
780.

var. sordidum Copel*

II. 780.

— illyricum (Borb.) Hayek
II, 773.

— lachenense Hook. II,
778.

— lobatum X Lonchitis
II, 773.

— munitum 652. — II,
802.

— Oreopteris II, 736.

— setosum II, 797, 808.

— solitarium (Maxon)
Underiv. II, 790.

— thelypteris Roth II, 618,
770, 808. — III, 35.

— vestitum II, 262.
Polystigma ochraceum

( Wahl) Sacc. 104, 149.
Polystictus 172.

— abietinus Fr. 148.

— affinis Sacc. 149.

Polystictus cinnabarinus
171.

— cinnamomeus 260.

— circinatus 260.

— cuticularis Lloyd* 260,
310.

— decurrens 260.

— dependens 260.

— dualis 260, 262.

— focicola 260.

— heterospora B. et C.
147.

— luteo-nitidus Berk. 147.

— obesus 260.

— occidenbalis Kl. 147.

— orientalis Klotzsch II,
903.

— perennis 260.

— planus 262.

— proliferus 260.

— simillimus 260.

— tomentosus 260.

— Turbo F. Renn* 138,
310.

— versicolor Fr. 161. —
P. 259, 289.

Polytoma 328, 720.

— uvella 332, 336.
Polytrichaceae 34.
Polytrichadelphus mini-

mus Card* 79.

— semiangulatusjlf^. 34.
Polytriehum 33, 35, 577,

641. — II, 267,972,973.

— alpinum L. 648.

— attenuatum 42.

— calopogon Besch. 54.

— commune L. 34, 35, 52,
54, 522, 671. — II, 654.
— III, 41.

— comorense C. Müll. 54.

— cupreum Negri* 79.

— formosum Hedw. 34.

— gracile Menz. 34.

— — var. immergens
Loeske* 79.

— longissimum C. Müll.
54.

— piliferum Schreb. 54.

— pungens C. Müll. 34.

Polytriohum septentrionale— Potamiuin.

923

Polytrichum septentrio-
nale 37.

— strictum 603.

— subformosum Beuch. 54.
Pomaceae 504.
Pomeae III, 223.
Pomaderris N. A. II, 4S6.

— phylicifolia var. ericoü-
des II, 255.

Poraetia pinnata Forst.

458.
Pongamia glabra P. 307.
Pongelion IL 157. — III,

330.
Pontania Carpentieri

Konov- II, 607.

— gallicola Steph. II, 607.

— proxirna Lep. II, 607.

— Salicis Christ II, 607.

— vallisnerii Biartig II.
607.

— vesicator Br. II, 626.
Pontederia L. 564.

— montensis 565.
Pontederiaceae II, 1 1 6,

242, 250, 986. — III,
131.
Ponteria II, 621.

— laurifoliaBarW/:. II, 621.
Popowia III. 140. — N. A.

II, 330.
Populus II, 67, 68. — III,
309. — N. A. II, 514.

— alba L. III, 28. - P
118, 278, 288, 302.

var.B&chofennHartig

II, 515.

— — var. croatica Wesm.

II, 515.

— — var. nivea Willd.

III, 310.

var. pyramidalis Bge-

II, 515.

— alba X nigra II, 515.

— alba X tremula II, 125,
515.

— Ariana II, 125.

— attenuata A. Br. 608.

— Bachofen i W/'erzb. III,
310.

Populus balsamifera L. III,
309.

— Bonnetiana II, 125.

— canadensis 763. — III,
54.

— canescens Sm. 111, 310.

— Comesiana Dode III,
58.

— croatica TP. et K. II,
515. — III, 310.

— deltoidea MarsA. II, 514.

— Denhardtiorum 11, 125.

— diversifolia II, 125.

■ — euphratica II, 125, 147.

— III, 309.

— globosa Dode IL 515.

— heteroloba Dorfe II, 515.

— hispidai/awssÄn. 11,514.

— HobartianaZ)odeII,515.

— hyperborea Hr. 594.

— illicitana II, 125. —
III, 309.

— latior 580.

— Litwinowiana Dode II,
125, 514.

— mauritanica II, 125

— mutabilis II, 125.

— nigra L. 763. — II, 686.

— III, 28, 310, 311.
var. pnbescens Pari-

II, 514.

— nigra X pyramidalis III,
310.

— pyramidalis II, 70. —

III, 28, 309, 310, 311.

— serbica Petrov. II, 515.

— Steiniana Bonwi. 11,515.

— III, 310.

— subintegerrima Lge. III,
58.

— Tremula L. 561. — II,
614, 615. — III, 28, 293.

— P. 252, 284, 306.

— valida Dode II, 515.
Poraqueiba III, 58.
Porella platyphylla32,641.
Poria 107.

— attenuata Pech 262.

— avellanea Bres* 128,
310.

Poria calcea (Fr.) Schwei-

nitz 144.
1 — cinereo-umbrina P.

Herrn.* 138, 310.
; — eupora 262.

— mucida Pers. var. irpi-
coides Jaap* 145, 310.

— Placenta Fr. 147.

— portoricensis Fr. 282.

— pseudo-sinuosa P.
Herrn* 138, 310.

; — vincta Berk. et Br. 135.
— II, 944.

— vitrea Fr. 147.

— Voeltzkowii P. Herrn*
138, 310.

Porocyphus 15.
Porodaedalea 124.
Poronia Oedipus Mont.

147.
Porotrichum alopecurum

Mut. 32.

— comorense C- Müll. 54.

— punctulatum C. Müll.
56.

— Robillardi C. Müll. 54.
Porpa repens Blume IT

534.
Porpax III, 120.
Porphyra 373.
Porphyranthus III, 156.
Porphyridium 373.

— cruentum 372, 373. —
II, 988.

I Porphyroscias III, 337.
Porphyrostemma N. A. IL

388.
Porteranthus Brut- III,

296.
Portulaca III, 280, 281,

282. — N. A. II, 480.

— oleracea L- II, 582.

— pilosa Griseb. II, 481.
Portulacaceae II, 81, 203,

250, 480. - III, 54, 224,
280.
| Portulacaria III, 280, 281.

— afra II, 838.
Posoqueria latifolia P. 276.
Potamium Mitt. 59.

924

Potaniogeton— Potentilla Opizii X verna.

Potamogeton 561, 575,
594. — II, 115, 173,
229, 240, 584, 627. —
III, 40, 131, 132. — N.
A. II, 321.

— alpinus II, 229.

var. obscurus II, 322.

— alpinus X perfoliatus
II, 322.

— angustifolius X lucens
II, 323.

— asiaticus P. 1(10.
-- crispus 696.

— crispus X pusillus II, j
323.

— crispus Xpei'f°liatus II,
321.

— densus II, 669.

— fluitans X uatans II,
321.

— gramineus L. 577.

— gramineus X nodosus
II, 322.

— javanicus Hassk. II,
131.

— lucens 530. — II, 978.
- III, 131.

— lucens X natans II, 321 .

— Macvicarii Bennett III,
358.

— natans L. 513, 768. —
II, 580.

— natans X polygoni-
folius II, 321.

— obtusifolius M. K. 577.

— obtusifolius X Friesii
II, 323.

— parmatus Hagstr* II,
229.

— pennsylvanicus Cham-
et Schicht. II, 140. — III,
131.

— perfoliatus L- 513. — II,
559.

— pliocenicum Fngelh*
561.

— polygonifoliusPoMrr.il,
229, 591.

— praelongus X polygoni-
folius II, 322. — III, 358.

Potamogeton pusillus X
trichoides II, 322.

— stylatus II, 229.
Potamogetonaceae II, 240,

321. — III, 131.

Potamopbila preheDsilis
Benth. III, 87.

Potaninia 478, 479.

Potentilla 478, 479, 504,
505. — II, 146, 148, 194,
598. — III, 293, 296,
299, 304, 404. — N. A.
II, 497, 498.

— albida (Rydb.) II, 494.

— Alexenkoi III, 290.

— alpestris var. Brotheri-
ana III, 290.

— amplifolia (Rydb.) II,
494.

— anserina L. II, 488,
591. — III, 40.

— — var. grandis T. et G.

II, 488.

— arachnoidea Dougl- II,
498.

— arizonica ^2/^0.^)11,494.

— aurea L. III, 293, 294,
375.

— Aucheriana III, 290.

— ßabcockiana (Rydb.) II,
488.

— Benitzkyi Friv. II, 499.

— bifurca III, 300.

— callida Hall. II, 495.

— canadensis P. II, 971.

— Clarkei III, 290.

— Colletiana III, 290.

— Comarum Nestl. II, 598.

— concinna III, 302.

— concolor Rolfe III, 290.

— corymbosa (Rydb.) TI,
494.

— cryptophila III, 290.

— decurrens Rydb. II, 498.

— desertorum var. arnava-
tensis III, 290.

— dissecta var. decurrens
Wats. II, 498.

— effusa var. rupincola

III, 290.

Potentilla erecta L. II,
591.

— eremica Coville II, 495.

— fissa major T. et Gr. II,
494.

— flabellata III, 290.

— flaccida III, 290.

— foliosa (Rydb.) II, 494.

— fragariastrum Ehrh. II,
598.

— fragarioides L- II, 556.

— gelida II, 214.

— Gerardiana III, 290.

— gilanica III, 290.

— glandulosa II, 494.

— glutinosa Nutt. II, 494.

— Griff ithii III, 290.

— — var- concolor
Franchet II, 498.

— Hickmanii III, 290.

— bololeuca III, 290.

— horrida III, 290.

— incisa (Rydb.) II, 494.

— Komaroviana III, 290.

— Kryloviana III, 290.

— kuramensis III, 290.

— labradorica Lehm. II,
498.

— lactea Greene II, 494.

— laxiflorafitydW II, 494.

— leuconota II, 214.

— Lipskyana III, 290.

— litoralis (Rydb.) II, 488.

— maculata Poir. II, 598.

— micropetala (Rydb.) II,
494.

— monantbes III, 290.

— monticola (Rydb.) II,
494.

— niponica III, 290.

— nivea var. dissecta Wats.
II, 498.

— nurensis III, 290.

— Nuttallii var. glabrata
Lehm. II, 497.

— occidentalis (Rydb.) II,
488.

— opaciformis Wolff II,
154. — III, 290.

— Opizii X verna II, 497.

Potentilla orbiculata— Primula Lecomtei.

925

Potentilla orbiculata III,
290.

— oregana Nutt. II, 494.

— pacifica Hoivell II, 488.

— pennsylvanica II, 498.

— pentandra III, 299.

— pinnatisecta Nelson II,
498.

— pulchella var. elatior
Lange II, 498.

— pumila (Rydb.) II, 494.

— purpurascens II, 495.

— reflexa Rydb. II, 494.

— Regeliana III, 290.

— reptans III, 40.

— rigidula III, 290.

— Rigoana III, 290.

— Römeri Friv. II, 499.
- rupestris III, 298.

— sericata III, 290.
sikkimensis III, 290.

— sterilis III, 9.

— subarctica (Rydb.) II,
488.

— subquinata Rydb- var.

Potbos III, 75.

— aureus Lind, et Andre

II, 282.

— caudatus Roxb. II, 282.

— decurrens Wall. II, 282.

— decursivus Wall. II,
282,

— pinnatifidus Roxb. II,
282.

— pinnatus L. II, 282.
Potomorphe peltata Miq.

III, 52.
Pottia 38.

— austrogeorgica Card.*
79.

— commutata 39.

— cuneifolia 39.

— lanceolata (Hedw ) C.
Müll. 55.

— pallida Lindb. 39, 55.

— recta (With.) Mut. 55. |
Poucbetia parva Lohm*

333, 384.
Pouruma cuspidata Warb.
II, 621.

Premna N. A. II, 544. 545.

— japonica Miq. III, 343.
Prenanthes N. A. II, 388,

389.

— dentata Thunb. II, 387.

— javanica Willd. II, 381.
Prepinus Jeffrey N. G. 578.

— statenensis Jeffrey* 578.
Prestonia III, 59. — N. A.

II, 332.
Prevostea III, 18G. — N.

A. II, 398.
Primula II, 100, 157, 159,

162, 163. — III, 285,

369, 558. N. A. II,

482.

— acaulis Jcq. II, 152.

— Arendsii Pax II, 717.
— III, 284, 585, 586.

— auricula L. 495. — III,

Pedersenii Rydb. II, 498. Pozoa III, 341.

— supina 479.

— Szovitsii III, 290.

— Tabernaeroontani X
rubens II, 962.

— tianschanica III, 290.

— Tollii III, 290.

— Tormentilla Neck. II,
148, 598.

— valida Greene II, 494.

— verna 645, 693-
494.

— villosa Th. Wolf II,
499.

— viscosa (Rydb.) II, 494.

— Wbeeleri var. viscidula
Rydb. II, 498.

Poteridium III, 296. —

N. A. II, 498.
Poterium II, 129.

— exigua Hook. f. II, 539.

— fragosea F. v. Müll. II,
539.

— Haastii Hook. f. II, 539.

— hydrocotyleoides Hook,
f. II, 539.

— microdonta Colenso II,
539.

— Muelleri Drude II, 539.
II, ] — pallida Kirk II, 539.

— Ranunculus Hooker II,
539.

— reniformis Hooker f.
II, 539.

— Rougbii Hooker f. II,
539.

— trifoliata Hooker II, 539.
var. tripartita Hook.

f. II, 538.

— annuum Hook. II, 498. Piangos uloptera P. 305.

— microphylluna Gay II, ; Prasinocladus 361.

498. ; Prasopbyllum Dixoni II,

— Sanguisorba II, 839. 259.
Potboideae III, 75, 76. — Frencbii II, 259.

Oavaleriei Petitm.* II,
162. — III, 285.

— delicata Petitm.* II,
162. — III, 284.

— denticnlata Smith II,
557.

— Dielsii Petitmengin II,
157.

— Duclouxii Petitm* II,
162. — III, 284.

— elatior var. Lingels-
beimii Pax III, 284.

— Paberi Oliv. II, 157,
782.

— flageUicaulis Pax II,
560. — III, 283, 373.

— floribunda X verticil-
lata III, 284.

— Gagnepainii Petitmengin
II, 157.

— grandiflora Lam- II,
560. — III, 284, 373.

— Hayaschinei Petitmen-
gin II, 157.

— heucherifolia Franchet
II, 157, 482.

— kewensis III, 282, 284.

— Lecomtei Petitmengin
II, 157.

926

Primula macrocaipa— Prunus Myrobalana.

Primula macroearpa
Maxim. II, 157, 482.

— malacoides III, 282.

— megaseaefolia Boiss.
II, 717.

— mollis Hook. II, 717.

— III, 585, 58G.

— neurocalyx Franchet
II, 157, 482.

— obconica Hancc II, 717.

— III, 586.

— officinalis Jcq. II, 100,
560. — III, 284, 285,
373.

— pellucida Franchet II,
157.

— penduliflora (Franch.)
Petitm. II, 161.

— polyphylla (Franch.)
Petitm. II, 161.

■ — Rosthornü Petitmengin
II, 157.

— simensis II, 251.

— spelunciola Petitmengin*
11, 157, 162. — III,
2S4.

— tongolensis Franchet

II, 157, 482.

— veronicoides Petitm-*

III, 284, 285.

— vulgaris Huds. II, 581.

— III, 284.

— "Wulfeniana P. 145.
321.

Primulaceae 655. — II,
157, 481. — III, 16,
282.

Pringsheimia scutata 330.

Prinsepia 479. — III, 222. |

— utilis Rogle II, 556.
Prionium II, 242.

— serratum Drege III,
100.

Prionolobus Spruce 63.

— dentatus (Baddi) Schffn-
47.

Pritchardia 587.

— pacifica Seem. 458.
Proaetica Echiochilonella

ChrMen* II, 607.

Procopoblatta Handlirsch
N. A. 618.

— Schusteri Handlirsch*
618.

Procris N. A. II, 542.
Propalmophyllum liasi-

num Lignier 587.
Prorocentrum obtusum

Osten f.* 346, 384.
Prosaptia II, 767.

— contigua II, 767.

— Emersoni II, 767.
Prosopanche Burmeisteri

De By. III, 215.
Prosopis juliflora Dil. II,
843, 896, 899.

— Stephaniana II, 128,
231.

Prostanthera III, 55.

— granitica II, 256.
Protea N. A. II, 483.
Proteaceae 596. — II, 116,

482. — III, 15, 219,

285.
Proteus vulgaris 370.
Protobasidiomyceten 165.
Protocephalozia Spruce 66.
Protococcaceae 336, 343,

347, 348, 349.
Protococcoideae 358.
Protococcus 350.

— ovalis Hansg. 330.
Protocoronospora nigri-
cans 828.

Protodaphne 564.
Protodiniura simplex

Lohnt* 333, 384.
Protodiscineae 113, 119.
Protomyces 837.

— gravidus Davis 141,
837.

— persicifilus Speg.'* 129,
310.

— Theae Zimm. 219. —
II, 848.

Protomycopsis Crepidis

Jaap* 119, 310.
Protopbyllocladus sub-

integrifolius (Lesq.)

Berry 547.

Protopiceoxylon extinc-

tum Goth* 567.
Protorhipis 581.
Protorhus 432.

— Heckelii D. et D. 432,
435, 459. — III, 139.

— Perrieri Courchei* 432.
— II, 227.

Protozoae 366.
Pruninium Platen N. (i.
600.

— gummosum Platen* 600.
Prunus III, 294. — P. 260,

298. — N. A. II, 498.

— Andersonii Gray II,
494.

— armeniaca L. II, 626.

— Askenasyi Kink* 561.

— avium L. 561. — III,
28.

— cerasifera III, 57.

— cerasoides Maxim. III,
290.

— Cerasus L- 715. — III,
9, 28, 245, 295. — P.
203.

— communis III, 295.

— Decaisneana NicholsII,
499.

— domestica L. 650. —

II, 625. — III, 9, 245,
295. — P. 104.

— eburnea II, 935.

— espinulosa 8. et Z. III,
290.

— Hosseusü 11, 223.

— incisa Thbg. III, 290.

— lanata II, 499.

— Laurocerasus L. II,
154. — III. 54, 536,
540.

— lusitanica III, 54.

— ■ macrophylla S. et Z.

III, 290.

— Mahaleb L. III, 28.

— Maximowiczii .ßttpr.III,
290.

— Miqueliana Max. III,
290.

— Myrobalana III, 295.

Prunus occidentalis— Pseudotsuga Douglasii.

927

Prunus occidentalis Siv.
II, 900.

— Padus L. 517, 720. —

II, 587, 596. — HI, 28. —
P. 118, 220, 221, 278,
308.

— parvula Ludw- 561.

— pennsylvanica L. II,
147. — III, 56.

— — var. saximontana
Rehder III, 56.

— persica III, 9, 295.

— Pseudo-Cerasus Lindl.

III, 290, 420.

var. hortensis Maxim.

III, 290, 420.
var. Sieboldii Maxim.

III, 290, 420
var- spontaneajliflj//,/.

III, 290, 420.

— Sargentii Rehder* III,
56.

— serotina Ehrh. II, 147.
— P. 240, 301.

— sphaerocarpa P. 279.

— spinosa L. II, 100. —
III, 9. — P. 285.

— Ssiori Schm. III, 290.

— tomentosa Ihbg. III,
290, 292.

— virginiana II, 147. —
P. 125, 240, 302.

— yedoensis III, 43.
Psalliota campestris 182.

— pedilia B. et Br. 261.

— poderes B. et Br. 261.

— trachodes Berk. 261.
I'sammotropha Echt, et

Zeyh. III, 139.
Psaroaiocaulon 597. — II, i

756.
Psaronius 597. — II, 756.

— brasiliensis 597.
Psedera Kecker II, 173.

III, 345. - N. A. II,
548.

— heptaphylla II, 173.

— hirsuta Greene II, 548.

— laciniata Greene II, 548.

— quinquefolia II, 173.

Psedera texana Greene II,
548.

— tricuspidata III, 173.

— vitacea II, 173.
Psephellus dealbatusi?o?\ss.

II, 379.
Pseudabutilon II, 190. —

III, 250.
Pseuderanthemum N. A.II,

325.
Pseudevernia 5.

— ceratea 6, 7.

— furfnracea 6, 7.

— olivetorina 6, 7.
Pseudobalsamia Ed. Fisch.

N.G. 169. 310.
Pseudobornia 619.
Pseudo - Calliergon

(Limpr.) Broth. 58.
Pseudocalyx III, 135.
Pseudocarpidium Millsp.

N. G. N. A. II, 545.
Pseudocedrela II, 898. —

N. A. II, 462.

— excelsa Dawe-Spr. II,
898.

— utilis Dawe-Spr. II,
898.

Pseudocenangium septa-
tum Jaap* 119, 310.

Pseudocommis Theae II,
848.

Pseudocycas Naih. N. G.
590.

— Dicksoni (Heer) 590.

— insignis 2Vb£A.*590,613.

— pumüio Nath* 590.

— Steenstrupi (Heer.) 590.
Pseudodiplodia Xylariae

Ferd. et Wge* 310.
Pseudodistichium Card- N.
G. 51, 79.

— austrogeorgicum Card.*
79.

Pseudo - Drepanocladus

Broth. 58.
Pseudofavolus auriculatus

Pat* 159, 310.
Pseudogaster v.HöIin. \. G.

128, 310.

Pseudogaster singularis

v. Höhn* 128, 310.
Pseudogenea Buchh. 169.

— californica 169.
Pseudographis intermedia

Rehm* 310.
Pseudohelotiurn ammoides

Sacc. 310.
PseudohexacentrisIII,136.
Pseudohydnotria 169.
Pseudohydrosme II, 242.
Pseudolarix Fortunei

Mayr II, 161. — III,

60.

— Kaempferi II, 901.
Pseudoleskea atrovirens.

var. intermedia 40.

— calocbroa Card* 79.

— lurida Card* 79.

— platyphylla Card* 79.

— strictula Card.* 79.
Pseudomonas campestris

208, 782.

— radicicola 180.
Pseudonyssa palmiformis

Kink. 561.
Pseudopatellina v. Halm.
N. G. 259, 310.

— conigena (Niessl) v.
Höhn* 310.

Pseudoperonospora cu-
bensis (B. et C) 146,
230, 231, 813, 827.

— — var. Tweriensis 230,
231.

Pseudopeziza medicaginis-
(Lib.) Sacc. 141.

— ribis Kleb. 143.

— Trifolii Fmk. 149.
Pseudophacidium Cal-

lunae Karst. 108.
PseudostegianubilosaLV/;..

145.
Pseudostrobus 558.
Pseudotragia Fax X. G.

N. A. II, 420, 421.
Pseudotsuga II, 184, 214.

— Douglasii II, 69, 104,
901. — III, 61, 65, 66,
69, 71, 679. — P. 256

928

Pseudotsuga glauca — Pterocarpus draco.

Pseudotsuga glauca III,

69.

— japonica II, 214.

— macrocarpa Mayr III,
71.

— taxifolia Britt. II, 144.

— III, 62.
Pseudovalsa irregularis

(DC.) 145.
Psidium II, 621. 622, 829.

— III, 59. — N. A. II,
466.

— Guajava L. 457. — II,
166, 621, 847. — III, 42.

— P. 133, 280, 292, 321.

— pyriferum II, 822.

— laurifolium II, 873.
Psidopodium Neck. II, 806.
Psilanthele III, 59. — N.

A. II, 325.
Psilocybe Sellae Bres- et
Mattir* 139, 310.

— tortipes Speg. 147.
Psilophyton princeps 556.
Psilotaceae II, 749, 762.
Psilotum II, 762, 786.

— nudum (L-) Griseb. II,
795.

— triquetrum Siv. 458, 654.

— II, 166, 741,758, 795,
802.

Psiloxylum III, 220.
Psorotichia 15.

— murorum Mass. 23.
Psychotria II, 621. — III,

3, 59. -- P. 309. — N. A.
II, 509.

— bacteriophila Val. III,
305.

— insularum A. Gray 458.

— montana Val. III, 305.

— samoanajg;. Schum. 458.
Psygmophyllum Holland!

Seward* 622.

— Kidstoni 623.
Psylla II, 617.
Psyllium supinum Gar-

sault II, 477.
Ptelea 799. — III, 356. —
N.A. II, 512, 513, 514.

Ptelea trifoliata 799. —

III, 356.
Pteleopsis myrtifolia

(Laivs.) Engl, et Diels II,

624.
Pteridium 328.

— aquilin um (XJiuJm 7 13.
— II, 738, 760, 770, 776,
797, 808. — III, 35. -
P. 128.

Pteridophyta 619. — II,

203. — III, 14.
Pteris II, 143, 716, 766,

804. - III, 5.

— amazonica Christ* II,
791.

— angustifolia Sic II, 790.

— aquilina L II, 147, 652,
715, 753, 754, 755, 759,
761, 785, 803, 805. —
III, 519. — P. 297.

— aquilina Nicholsonii II,
799.

— arguta Ait. II, 795.

— argyrea II, 737.

— cheilanthoides Hayata
II, 776.

— cretica II, 652, 736,
737, 798.

— ■ diniorphaCo/?e£.:i:II, 777,
815.

— ensiformisi?urm. 11,777,
784, 808.

— Finisterrae Rosenst* II,
783, 815.

— flabellata II, 737.

— gladifolia 614.

— grandifolia II, 778.

— Grevilleana Wall. II,
782.

var. ornata v. A. v. R*

II, 782.

— heteromorpha II, 777.

— indochinensisC7iWs<*II,
778, 815.

— (Litobrochia) litoralis
Rechinger* II, 784, 808,
815.

— longipinnula Wall. II.
781.

Pteris longipinnula var.
sumatrana v. A. v. R*
II, 781.

— lucida III, 57.

— moluccana II, 778.

— nana Christ II, 777.

— — var. quinquefoliata
CoyeV II, 777.

— nitida Mett. II, 795.

— opaca II, 778.

— orientalis v. Aid. v.Ros*
IL 781, 815.

— papuana II, 778.

— quadriaurita Retz. II.
795.

— rangiferina Bl. II, 781,

— semipinnata L. var.
Fauriei Christ* II, 776.

— serrulata L. 698, 699.
— II, 737, 798.

— splendens II, 766.

— Summersii II, 808.

— tremula II, 737, 798,
808.

— Treubiiy. Ald.v. Ros*H,
781, 815.

— tripartita Sic II, 777,
795.

— umbrosa II, 800, 808.

— Wallicbiana Agh- II,
784, 808.

— Warburgii Christ II,
783.

— Wimsetti II, 798.
Pterobryella 51.
Pterobryopsis subacumi-

nata Broth. et Bar. 52.

— subcrassiuscula Broth.
et Par.* 52, 79.

Pterobryum vitianum

Mut. 69.
Pterocactus decipiens

Gurke II, 124, 269.

— Kuntzei K- Schum. II,
269.

Pterocarpus 560. — II,
899.

— dalbergioides Roxb. II,
902.

— draco II, 822.

Pterocarpus eseulentus— Puocinia coronifera.

929

Pterocarpus eseulentus II,
232.

— indicus Wühl II, 902.

— melliferus P. 140, 319.

— santalinus II, 166.

— suberosus II, 822.

— tinetorius II, 899.
Pterocarya 582.

— caucasica609. — 11,154.

— denticulata Web. 561.
■ — Rehderiaua C. K. Sch?i.

III, 216.
Pterocelastrus III, 171. —

N. A. II, 358.
PterocymbiumNA.il, 530.
Pterogonidium C. Müll 59.
Pterogoniella diversifolia

Ren- et Card. 54.

— madagascariensis
(Brid) Besch. 54.

— Schimperi Besch. 54.
Pterolepis III, 252. — N. A.

II, 460.
Pterolobium lacerans II,

894.
Pterophyllum 543, 591,

613.

— blechnoides 625.

— Bronni Schenk. 543.

— giganteum Schenk 543.
Pterophyllus Leo. 174.
Pteropsiella Spruce 66.
Pterosiphoniapennata 347.
Pterosperraites 547.

— inaequifolius Sap. 63i.
Pterostemon III, 222.
Pterostylis III, 121.

— longifolia II, 260.

— nutans II, 260.
Ptoroxyleae III, 223.
Pterula pusilla Bres. 147.
Pterygium 15.
Pterygophora californica

311.
Pterygota II, 898.
Ptilium (Süll) De Not. 59
Ptilopteris II, 766.
Ptycbanthera Berterii

Decne II, 338.

— mollis Schltr. II, 338.
Botanischer Jahresbericht

Ptycbanthera oblongata

Schltr. II, 338.
Ptychocoleus polycarpus

(Nees) Trevis. 51.
Ptychodium Schimp. 59.

— plicatum var. rhaeti-
cum 40.

Ptychorhapbis Siebertiana

III, 46.
Ptychosperma Alexandrae

III, 130.

— elegans II, 166, 167.
Ptyssiglottis Halleri Val.

III, 134.

— maxima Val. III, 134.
Puccinellia Gussonei Pari.

II, 296.
Puccinia 104, 117, 152,
162, 252, 253.

— Absinthii DC. 142.

— Acetosae (Schum.) 148.

— Acroptili Syd. 100.

— Adoxae Hediv. fil 148.

— Aecidii-Brunellae 252.

— Aecidii-Melampyri
(Kze. et Schm.) Uro 252.

— Aecidii-Ranunculi-acris
(Pers.) Liro 251.

— Aecidii-Rbamni (Gmel.)
Liro 251.

— Aecidii-Thalictri-flavi
(DC) Liro 251.

— albiperidia Arth. 141,
833.

— alpina Fckl. 147.

— ambigua (Alb. et Schio.)
Lagerh. 144.

— AmphistelmaeP.üeJin.*
126, 310.

— Andropogonis Schioein.
149.

— Anemopaegmatis P.

Henn.* 311.

— angustata Peck 147.

— Anthemidis Syd. 152.

— Arenariae II, 100.

— argentata (Schultz)
Wint. 148.

— artemisiella Syd. 147.

— asarina Kze. 146.
XXXVI (1908) 3. Abt. (Gedruckt

Puccinia Asparagi DC
148, 206.

— asteris Duby 141, 143.

— Athamantbae (DC-)
Lindr. 148.

— Atragenes Hausm. 148.

— Baeumleriana Bubdk*
147, 152, 311.

— Bardanae Cda. 149.

— Belamacandaef P. Henn.)
Diet. 147.

— Betonicae DC. 149.

— Brunellarum -Moliniae
Cruchet 252.

— bubarica Jacz. 149.

— Bupleuri-falcati (DC.)
Wint. 146.

— calosperma Syd. et
Butt. 147.

— Cardui - pycnocepbali
Syd. 108.

— Carduorum Jacky 148.

— caricis (Schum.) Reb.
142, 143, 149, 253.

— caricis - asteris Arth.
143.

— caricis- erigerontis^rM.
142.

— Centaureae DC 148,
249.

— Centaureae-vallesiacae
Hasler* 248, 311.

— Cerintbes - agropyrina
(Erikss.) Tranzsch. 253.

— cbaerophyllina Syd.*
311.

— chondrillina Bubäk et
Syd. 148.

— übrysantbemi .ftozel73.

— Chrysantbemi-cbinen-
sis P. Henn. 173.

— cirsii Lasch 143, 148.

— Cirsii-lanceolati-ScÄroe*.
II, 971.

— Cnici oleracei Pers- 144.

— concolor Syd. 311.

— coronata Cda. 145,247,

251.

— coronifera Kleb 126,
247, 816.

13. 2. l?.l 59

930

Puccinia Costi— Puccinia praecox.

Puccinia Costi (P- Henn.)

Syd. 311.

— crepidicola Syd. 248.

— crepidis - acuminatae
Syd. 143.

— Crepidis - aureae Syd.
248.

— Crepidis - blattarioidis
Hasler* 248, 311.

— Crepidis - grandiflorae
Hasler* 248, 311.

— Crepidis -japonicae
(Lindr.) Diet. 311.

— Crucheti Hasler* 248.

— cnrtipes Hoive 143.

— Cyani (Schleich.) Pass.
148.

— Cynodontis Desm. 253.

— Cyperi Arth. 142.

— Dactyloctenii Pat. et
Har* 139, 311.

— deminuta Vleugel* 311.

— depauperansf Vize) Syd.
162, 252.

— Dissotidis P. Henn*
311.

— distinguenda Syd* 311.

— divergens Bubäk 148.

— Doronici Niessl 147.

— Epilobii DC 149.

— Epilobii-tetragoni (DC)
Wint. 141, 143, 146.

— Euphorbiae longipes
Syd. 141.

- Evansii P. Henn.* 139,
311.

— Falcariae (Pers.) Fehl.
146.

— farinacea Long 142.

— fraxinata (Lk.) Arth.
143.

— fusca (Reih.) Wint. 146,
147, 148.

- Grentianae (Strauss)
Link 141, 142, 162.

— Geranii-silvatici Karst.
147.

— Gresneracearum Diet*
311.

— Gonolobi Rav. 142.

graminis

Pers.

Puccinia
142.

— Helianthi Schw. 141,
149.

— hemisphaerica (Pk) E.
et E. 143.

— beterospora B. et C.
142, 147.

— Hibisci P. Henn* 311.

— Hieracii 248, 833.

— hima,\ensis(Barcl)Diet.
147.

— Horiana P. Henn. 173

— Houstoniae Syd. 142.

— Imperatoriae Jacky 143.

— involvens (Voss) Syd-
148.

— Intybi (Juel) Syd. 248.

— Inulae - phragmiticola
Tranzsch. 253.

— Ipomoeae - panduratae
(Schw.) Syd. 142.

— Iridis (DC.) Wallr. 148.

— Isiacae (Thuem.) Wint.
253.

— Jaceae Otth 248.

— Junci (Strauss) Wint.
147.

— karelica Tranzsch. 253.

— Kusanoi Diet. 250.
var- azurn a Kus*

250, 311.

— Lactucae-debilis Diet*
311.

— lagoensis P. Henn*
311.

— lateripes B. et R. 141.

— limosae Magn. 253.

— Linosyridi-Caricis Ed.
Fisch. 147.

— lippicola Pat. et Har.*
139, 311.

— Litbophragmae Hohvay
143.

— Lobeliae Ger. 141.

— longicornis Pat. et Rar.
250.

— major Diet. 248.

— Malvacearum Mont. 100,
126, 142, 149, 246, 816.

Puccinia Maydis Be'r. 126,
147, 253, 816.

— Mentbae Pers. 142.

— Menthae Americana
Burr. 141, 142.

— Merrillii P. Henn* 31 1.

— montanensis Ell. 141.

— monticola Kom. 253.

— oblongata (Lk.) Wint.
253.

— oldenlandiicolaP. Henn*
311.

— Opizii Bubäk 147.

— paraensis Diet* 311.

— Pazscbkei Diet. 108,
143.

— Peckiana Hoioe 141.

— Peckii (DeT.) Kell. 141.

— persistens Plowr. 251.

— perplexans Plowr. 145,
251.

-- Petroselini fDCJimdr.
148.

— Phlei-pratensis Erikss.
106.

— Pbragmitis (Schum.)
Koern. 148.

— Pbrymae (Halst.) Arth.
311.

— Phyllostachydis Kus*
250, 311.

— Picridis Hazsl. 148.

— PimpinellaefStfr.,) Wint.
146. — III, 370.

— Pinaropappi Syd. 142.

— Poarum 126, 816.

— poculil'ormis (Jacq.)
Wettst. 141, 142.

— Podophylli Schwein. 149.

— Polygoni (Alb- et Schw.)
147.

— Polygoni-alpini Cruch.
et Mayor* 246, 312.

— Polygoni-ampbibii Pers.
142, 148.

— Polygoni - Convolvuli
DC 146.

— Porri (Sow.) 145, 148.

— Pozzii Semadeni 143.

— praecox Bubäk 248.

Puccinia Prainiana— Pynaertia ealaensis.

931

Puccinia Prainiana Barcl.
147.

— Prenanthis 10-4.

— Prenanthis - purpureae
Lindr. 149.

— Primulae (DC.) Duby
144.

— Pruni - spinosae Pers.
99, 145, 148, 833.

— punctata Lk. 141.

— purpurea Cke. 142, 147.

— pustulata (Curt.) Arth.
142.

— Raunkiaerii Ferd. et
Winge* 312.

— retifera Lindr. 148.

— rhaetica Ed- Fischer
143.

— Ribis DC. 147.

— Romagnoliana Maire et
Sace. 147.

— Rosae Barcl. 251.

— rubella (Pers) Arth.
142.

— rubigo-vera (DC)Wint.
143.

— RübsaamenüP. Magnus
143.

— rubefacienSt/o/iaws. 143.

— Salviae Unger 148.

— Saniculae Grev. 148.

— Sasae Kus.* 250, 312.

— scandica Johans. 143.

— Scirpi DC 147, 148.

— septentrionalis Juel
143.

— Sesleriae Reich. 253.

— Sherardiana Körn. 142.

— silvatica Schroet. 146,
148.

— simplex 120.

— smilacis Schtv* 142.

— solidaginis Peck 143.

— sonchi Rob. 144, 147.

— Sorghi Schiv. 145.

— Spegazzinii De Toni
147.

— Spergulae DC. 145.

— Sphaerostigmatis Diet.
et Neg. 142.

Puccinia Taraxaci (Reb.)
Plowr. 148.

— Thesii-decurrentis
(P. Kenn.) Diet* 312

— Thlaspeos Schubert 143.

— Trailii Ploicr. 149.

— transformans E. et E.
II, 971.

— Treleasiana Pazs. 142.

— Triodiae Ell. et Barth.
142.

— triticina 120, 816.

— tuberculans E. et E.
143.

— Tulipae 104.

— universalis Arth* 312.

— uralensis Tranzsch. 147.

— Utahensis Garrett 143.

— varians Diet* 312.

— Veratri Duby 253.

— verbenicola (E- et K)
Arth. 142.

— Vernoniae Schiv. 141.

— Veronicarum DC- 147.

— vexans Farl. 143.

— Violae (Schum.) 143,
149, 162, 252.

— vulpinoideae Diet. ei
Holw- 141.

— Zauschneriae Syd. 143.
Pucciniastrum abietis-

chamaenerii Kleb. 143,
148.

— Polypodii-dryopteris
(Moug. et Nestl.) P-Magn.
148.

— pustulatum (Pers.) Diet-
141.

Pucciniopsis Caricae Earle

141.
Pueraria III, 237. — P.

231. — N. A. IT, 448.

— Thunbergiana P. 231.

— tuberosa DC. II, 851.
Puiggariella Broth. N. G.

58, 79.

— aurifolia (Mut.) Broth.
79.

— disciflora (Geh. et Hpe.)
Broth. 79.'

Pulicaria crispa II, 231.

— undulata II, 231.
Pulmonaria II, 100. —

III, 553. — N. A. II,
346.

— Kerneri X officinalis II,
346.

— mollis III, 558.

— officinalis L. 514. —
III, 558.

Pulsatilla 504. — II, 100.

- N. A. II, 483.
Pultenaea III, 55. — N. A.

II, 448.

— cinerascens II, 256.
Pulvinaria floccifera 188.
Punaria Ascochingae III,

506, 507, 508, 543.
Punica Guanatum L. II,

154, 556, 822. — III,

42, 555.
Purpusia III, 296.
Purshia 478.
Puya violacea Mez III,

78.
Pycnanthemum N. A. II,

437.

— Tullia Benth, II, 437.
Pycnanthus Kombo Ifari.

509. — II, 921. — III,

256.
Pycnocoma N. A. II, 421.
Pycnoneurum sessili-

florum in, 146, 147.
Pycnoporellus 124.
Pycnoporus 124.

— sanguineas 135.
Pycnothelia Ach. 12, 15.
Pycreus angulatus III,

79.

— latespicatus III. 79.
Pygeum N. A II, 498.

— arboreum F. Vill II,
498.

— latifolium Vidal II,
498.

Pynaertia DeWildem. N. G.
X. A. II, 462.

— ealaensis De Wilde,,/

III, 2")2.

59*

932

Pyrenoohaeta Centaureae— Quercus dilatata.

Pyrenochaeta Centaureae
Vogt* 104, 274, 312, 820.

— Phlogidis Mass. 108.
Pyronomycetae 103, 106,

115, 126, 128, 133, 140,
166, 167, 577, 838.

Pyrenopeziza Lychniclis

' (Sacc) Rehm 149.

Pyrenopsis 15.

— rocaltensis Cour der c*

27.
Pyrenophora comata (Awd.
et Niessl) Sacc 148.

— pachyasca Syd* 312.
Pyrola dentata Smith II,

476.

— dentata integra A.Gray
II, 476.

— morrisonicula II, 214.

— sparsifolia Svksdorf II,
476.

Pyronema confluens 168.
Pyropolyporus 124.

— Bakeri Murr* 312.

— caliginosus 135.

— Cedrelae Murr* 312.

— dependens Murr.' 312.

— grenadensis Murr* 312.

— pectinatus 135.

— pseudosenex Murr*
312.

— Robinsoniae Murr*
312.

— roseocinereus Murr*
312.

— subpectinatus Murr*
312.

— sublinteus Murr.* 312.

— subextensus Murr*
312.

— tenuissimus Murr.* 31 2.

— texanus Murr* 312.

— tricolor Murr* 312.

— Williamsii 135.
Pyrostria III, 55. — N. A.

II, 509.

Pyrus aria var. majestica

III, 290.

— intermedia Ehrh- II,
598.

Pyrus Pashia Buch.-Ram.

II, 556.

— sinensis Ldl III, 290.

— Tscbonoskii Maxim.

III, 290.
Pyrethrum N. A. II, 389.

— aragonense II, 389.

— arundanum Boiss- II,
389.

— Bocconi W. II, 389.

— cuartenense Deb- et
Revench. II, 389.

— flaveolum H- et Lk. II,
389.

— hispanicum II, 389.

— leucanthemifolium
Porta et Riga II, 389.

— pulverulentnm Lag. II,
389.

— radicans Cav. II, 389.

— spathulifolium Gay 11,
389.

— sulpbureum B. et R. II,
389.

Pythium II, 745.

— De ßaryanum 104, 120,
205.

— palmivorum 133. — II,
923, 924.

Pytiacystis citrophthora

272.
Pyxilla Caputavis J. Br.

II, 642.

— Jobnsoniana Grev. II,
642.

— squinaboli Forti* II,
641, 642, 645.

(|ualea N. A. II, 548.

— Glaziovii Warming IT,
621.

Quamassia esculenta
Coville II, 304.

— hyacintbina Britton II,
304.

Quamoclit N. A. II, 398.
Quassia amara III, 510.

— excelsa Sw. II, 527.
Queletia mirabilis (Iries)

105.

Quercinium 600.

— Abromeiti 599.

— anornalum 599.

— pliocaenicum Schuster*
617.

— Solerederi 599.

— Wardi 599.

Quercus 541, 547, 563,
593, 595, 614, 743, 805.

— II, 68, 100, 176, 186,
211, 213, 223, 605, 612,
626, 6!)0. — III, 44, 45,
209, 226. 264, 536, 555.

— P. 146, 263, 264, 265,
266, 285, 293, 318, 322.

- N. A. II, 421, 422.

— acuminata Sarg. III,
208.

— acuta II, 901.

— Aegilops II, 901. —
III. 264.

— agrifolia II, 901.

— alba II, 901. — III, 52.

— ambigua Micke, f. II.
422.

— armeniaca II, 154.

— bicolor II, 901.

— borealis Michx. f. II,
422.

— californica II, 901.

— castaneaefoliaJ..C.Mejy.
II, 607.

— castanoi'des Newb. 594.

— celebica Miqu. II, 422.

— Cerris II, 901. — P.
263, 265, 842.

— Championi II, 901.

— chrysolepis II, 901.

— cinerea II, 901.

— coeeifera L. 563. — II,
150, 615, 901. — III,
209.

— coccinea Wat/genh. 617.

— II, 623, 901.

var. ambigua Gray

II, 422.

— Cornea II, 901.

— euneata II, 901.

— cuspidata II, 901.

— dilatata II, 849.

Quercus Douglasii — Ramularia.

933

Quercus Douglasii II, 901.
- Edithae II, 162.

— ethymodrys Unij. 608.

— falcata Michas. II, 623.

— furcinervis Pavl. 608.

— Garryana II, 901.

— glabra II, 901.

— glauca II, 901.

— Harlandi II, 162.

— Hatcheri Kn. 581.

— heterophylla III, 387.

— Hex L 563. — II, 150,
615, 901. — III, 58. —
P. 263, 265, 278, 303,
315, 842.

— ilicifolia Wangerin II,
623.

— imbricaria Michx. II.
901. — III, 208.

— imbricaria X palustris
III, 209.

— incana II, 222, 901.

— infectoria II, 901.

— lamellosa II, 901.

— lobata II, 901.

— lusitanica II, 901.

— lyrata II, 901.
macranthera II, 155.

— macrocarpa 743, 804.

— II, 690, 901. — III,
208. — P. 264.

— marylandica III, 387.

— mediterranea JJng. 608.

— Merrillii v. Seem* III,
209.

— montana Kn 581.

— nigra L. 547. — II,
901.

— obtusiloba D. Don II.
623.

— palustris Du Roi II,
623, 901.

— palustris Moench III,
208. — P. 263, 264, 265.

— pedunculata 541, 545,
629. —II, 154, 605, 901.

— III, 28. - P. 180,
263, 264, 265, 286, 842.

— Phellos L. 547. - III,
387.

Quercus philippinensis .4.
DC. II, 422.

— pontica II, 154.
■ Pricei II, 188.

— prinos L. 547. — II,
901.

— pseudosuber II, 901.

— racemosa P. 264.

— Robur L. 494, 561. —

II, 69, 614, 901. — III,
45. — P. 145, 264, 299,
310.

— rubra II, 901. — III,
387. - P. 263, 264, 265.

— Rudkinii III, 387.

— rugosa II, 901.

— Sadleriana II, 186.

— serrata II, 901.

— sessiliflora II, 155. —

III, 28, 49. — P. 263,
265, 842.

— Skinneri II, 901.

— stellata II, 91.

- Streimii Heuff. 11, 421.

— Suber II, 149, 150, 610,
901, 902. — P. 263.

- thalassica II, 162.
Tozza II, 901. — P.

263, 264.

— ValloniaH, 901. — III,
485.

— velutina II, 901.

— virginiana Mill. 547. —
II, 901. III, 253,
453.

— Wislizenii II, 901.

tyuesnelia roseo-marginata

II, 713.
^'uiinaceae 111, 219.
Quillajeae III, 222, 223.
Quinaria hirsuta Rafines-

que II, 548.
QuintiDia serrata II, 262.

Rachiopteris aspera 557.

— corrugata II, 755.

— insignis II, 755.
Racomitrium protensum

A. Bronn 43.

Racomitrium sudeticum

Br. eur. 46.
Rad er mach era Hassk. II,

212. — III, 153. — N.

A. II, 344.
Radicites capillaceus 618.
Radiculites reticulatis 275.
Radula A. DC. III, 259.

— aquilegia (Tayl.) Nees
54.

— caledonica Steph* 89.

— lacerata Steph.* 89.

— reflexa Moni. 57.

— tenax Lindb. 63.
Radulum orbiculare Fr.

148.
Rafflesia 111, 39.
Rafflesiaceae III, 224. -

III, 285.
Raimannia odorata III,

387.
Raifsia Borneti 330.
Ramalina Ach- 3, 14, 15.
calicaris var. laciniata

Harm* 28.

— — var. odontoides
Harm* 28.

— capitata var. emplecta
fa. nuda Harm* 28.

— Ournowii Nyl- 23.

— cuspidata fa. lobulifera
Harm.* 28.

— evernioides Nyl. 11.

— farinacea (L ) Ach.
424.

f. lata* 28.

— inllata var. soredians
Merrill* 28.

— linearis forma spinulosa
Merrill* 28.

— pollinaria Ach. 23.

— — forma cucullata
Harm* 28.

— polymorpha 3.

— populina (Ehrh.) Wainio
24.

— pusilla Le Pre'v. 23.
Ramie II, 911.
Remijia N. A. II, 510.
Ramularia 273.

93 4

Ramularia Actaeae — Rapanea.

Ramularia Actaeae Ell. et
Holw. 150.

— Armoraciae Fuck. 149.

— Asteris (Plowr. et Phill)
Bubäk 152.

— Asteris-Tripolii Jaap*
144, 145, 312.

— Atropae Allesch. 149.

— Betae 273, 852.

— Butomi Lind 152.

— Coleosporii Sacc. 149.

— cylindroides Sacc 150.

— Cynarae 105.

— dubia Riess 152.

— evanida (Kuehn) Sacc.
149.

— filaris Fresen. 144.

— Galegae Sacc 145.

— lactea »Sacc. 150.

— lamiicola Massal. 149.

— Lampsanae Sacc. 150.

— Lonicerae Vogl* 104.

— Lupini Davis* 122, 312.

— Lysimachiae Thuem.
149.

— macrospora Fr es- 146.

— Narcissi Chittenden*
312.

— necator Mass- 108.

— occidentalis E. et K.
141.

— oreophila Sacc. 150.

— Paeoniae Vogl.* 104.

— Phyteumatis Sacc. et
Wint. 149, 150.

— Picridis Fautr. et Roum.
149.

— Pimpinellae Jaap* 119,
312.

— rubicunda Bres. 150.

— sambucina Sacc 150.

— Scorzonerae Jaap* 119,
312.

— Senecionis var. carnio-
Hca Jaap* 119.

— silvestris Sacc. 149.

— Smilacinae Davis* 122,
312.

— undulata Bernard* 133,
312.

Ramularia Urticae Ces. 150.
Ramulaspera salicina
(Vestergr) Lindr. 144.

— — var. tirolensis Bub.
et Rabat. 144.

Randia III, 222. — N. A.
II, 509, 510.

— clusiaefolia Chapm. II,
504.

— dunietorum Lank. II,
851.

— Graeffii Hook. fil. 458.

— insignis Val- III, 305.

— tetrasperma Benth. et
Hook. f. IL 556.

— uliginosa DC. II, 851.
Ranunculaceae 494, 501,

504, 505, 587, 619, 631.

— II, 129, 158, 200, 221,

483. — III, 42, 51, 218,
222, 223, 224, 226, 286,
547.

Ranunculus 504, 519, 609.

— II, 146, 163, 598,711.

— III, 51, 53. - - N. A.

II, 483, 484.

— acris L. II, 556, 580,
591, 598, 720. — III, 9.

— amplexicaulis L- 502.

— aquatilis L. II, 263,

484, 580. — III, 288,
567.

— arvensis II, 716. — P.
294.

— Aschersoni Freyn III,
288.

— auricomus L. II, 598,
957.

— Bauhinii II, 484.

— cardiopetalus Greene II,
172.

— bulbosus L. II, 598. —
P. 249.

— confervoides III, 288.

— c\rmbalaria II, 170. —
p/l43.

— divaricatus Schrk. 502.

— III, 288.

— dolichopodus A- Kerner

III, 288.

Ranunculus Drouetii II,

484. — III, 288.

— Eschscholtzii P. 147.

— Ficaria L. II, 598.

— flammula L. II, 263,

485, 591, 598. — III, 40,
41.

— fluitans Lam. 502. —

II, 669.

— gregarius Brot. III, 288.

— hederaceus L. 502.

— hirtipes Greene II, 172.

— hydrocharis II, 484. —

III, 288.

— intertextus II, 182.

— limoselloides F. v. Müll.

II, 483.

— Lingua L. II, 957. —

III, 35.

— macropus Boiss. et Buhse

II, 484.

— nemorosus 609.

— octopetalus Greene II,
172.

— oreophilus II, 251.

— pinguis 519, 520.

— platanifolius L. 502.

— pulchellus P. 100.

— Purshii Richardson III,
286.

— repens L- 653. — II,
591, 598, 618, 716. —

III, 9, 40, 41.

— reptans II, 485.

— Rionii Lagger III, 288.

— rudis II, 188.

— sceleratus L. II, 261,
580.

— sedunensis Rion II, 484.

— sericeus Poir. II, 483.

— sphaerospermus Boiss-et
Blanche III, 288.

— Thora P. 278, 298.

— tricbophyllus II, 484.
— III, 288.

— — var. Rionii Rouy et
Fouc. II, 484.

Rapanea Aubl. III, 260. —
P. 127, 321. — N. A. II,
465.

Rapateaceae— Rhacopilum toinentosum.

935

Rapateaceae II, 242.
Raphanistrum Gärta. HI,

193.
Raphanus L. II, 718. —

III, 193.

— niger III, 546.

— Raphanistrum L 854.

— II, 45, 596, 726.

— sativus L. 722, 723. —
III, 615.

Raphia II, 241, 820, 821,
904, 929. - - III, 529. —
N. A. II, 320.

— Laurentii De Wild. III,
123.

— MonbuttorumDrKfZell,
236, 602. — III, 123.

Raphidium angustum Ber-
nard* 384.

— tjibodensePernanT384.
Raphidophora Rassk. III,

76. — N. A. II, 282, 283.

— angustilobaPJdUI,283.
Raphionacme II, 952. —

N. A. II, 338.

— utilis Brown III, 145.

— utilis Br. et Stapf 11, 952.

- III, 145, 147.
Raphis vinifera II, 235.
Rapistrum Med. III, 193.
Raspalia microphylla

(Thbg.) Brongn. III, 1 56.
Rauia subfilamentosa

(Kiaer) Broth. 54.
Rautanenia Schinzü II,

240.
Rauwolfia P. 276. — N. A.

II, 332.
Ravenala 460. - II, 243.

— madagascariensis 459.
Ravenelia bahiensis P.

Renn* 313.

— Bakeriana Biet* 246,
313.

— expansa Diet. et Rolw.
142.

— Indigoferae Tranz. et
Diet. 142.

— Leucaenae Long 141,
142.

Ravenelia microspora

Diet* 313.
Ravensara Perrieri D.etB.

435, 459. — III, 230.
Rawsonia N. A. II, 425.
Readeriella Syd. N. G. 161,

313.

— mirabilis Syd* 313.
Reana luxurians X Zea

Mays III, 408.
Reaumuria N. A. II, 532.

— kermanensis Bornm*

II, 155. — III, 334.
Reboulia hemisphaerica

(L) var. microspora

Schiffn.* 53, 89.
Reedia spathacea III, 80.
Rehmannia angulata

Remsl. in, 321, 328.
Relbunium N. A. 11,510.
Remirea III, 81.

— maritima III, 81.
Remusatia III, 75.
Renanthera annamensis

Rolfe II, 223.
Renealmia II, 243. — III,

134. — N. A. II, 324.
Renfrewia parvula 371.
Reseda 504.

— odorata L. II, 572. —

III, 289.
Resedaceae 504, 505. —

II, 485. — III, 289.
Restio compressus Rottb.

III, 133.
Restionaceae II, 242. —

III, 133.
Retiniphyllum N. A. II,

510.
Retzia III, 222.
Reynosia texana Penhall.*

598.
Rhabdocarpus 548.
Rhabdoderma lineare 330.
— minimum Lemm* 330,

384.
Rhabdonema Thaiszii

Fant.* H, 645.
Rhabdospora Fragariae

Atk* 313.

Rhabdospora persicifihi
Speg* 129, 313.

— solanicolaP.£Tenn.*3iy.

— Taraxaci-officinalis
Atk* 313.

— Thümenia,na{ Pass.)Sacc
145.

Rhabdostigma Hook. f. IL.

510.
Rhacelopus 51.
Rhachomyces anomalus

Thaxt. 316.
Rhacomitrium anodon-

toides Card* 79.

— barbuloides Card.* 79.

— brachypodium (Besch.
Card* 79.

— carinatum Card* 79.

— Delavayi Pro*/«.* 53, 79.

— diminutum Card? 79.

— fasciculare Brid. var.
atroviride Card.* 79.

— — var. braehyphyllum
Card* 79.

var. Orientale Card*

79.

— Fauriei Card.* 79.

— heterostichoides Card*
80.

— laetum Besch* 80.

— molle Card* 80.

— nitidulum Card.* 80.

— pachydictyonCarrf.*80.

— patens Hüb. var. brachy-
dictyon Card.* 80.

— protensum Braun 70.

— striatipilum Card* 80.

— subulifolium Card.* 80.

— sudeticum Br. eur. 70.

— — var. subellipticum
Card* 80.

Rhacophyllus Berk. 174.
Rhacopilum 51.

— angustistipulaceum C.
Müll. 54.

— brevipes Broth. 56.

— mauritianum C. Müll.
54.

— tomentosum (Hedw.)
Brid- 56.

936

Rhaoopteris — Rhizophora inucronata.

Rhacopteris 618.
Rbagadioms N. A. II, 389.
Rhamnaceae 596, 614. —

II, 203, 245, 485. — III,
16, 55, 58, 219, 223, 289.

Rhamnacinium 600.

— texanum Penhall.* 598.
Rharnnodium III, 58.
Rhamnus 466. — TI, 158,

245. — III, 4, 289. —
N. A. II, 486.

— arguta II, 214.

— Cathartica L. 561, 563.

— II, 998. — III, 28.
657. — P. 316.

— costata Max. III, 289.

— crenata S. et Z. III, 289.

— cubensis Spreng. II,
485.

— Frangula £.485, 691. —

III, 289, 554, 579, 661.

— japonica vor. genuina
Max. III, 289.

— latifolia III, 289.

— Pallasii II, 154.

— Purshiana DC 485. —
II, 891. — III, 289, 661.

Rhamphidia discoidea
Bchb. fil. II, 310.

— scripta Reichb. f. II, 312.
Rhaphidophora II, 121,

122.

- australasica II, 122.

— Beccarü II, 122.

— caudata Schott II, 282.

— CunninghamiiSc/icMlI,
282.

— decursiva II, 121.

— glauca II, 121.

— grandis II, 121.

— Hookeri II, 121.

— Huegeliana Schott II,
282.

— Korthalsiana II, 282.

— Korthalsii II, 121, 122.

— lacera Hassk. II, 282.

— lancifolia II, 121.

— Lobbii II, 122.

— Lovellae Bailey II, 282.

— minor II, 122.

Rhaphidophora peepla II,
122.

— pertusa var. vitiensis
Engl. II, 282.

— pinnata Schott II, 282.

— Reineckei Engl II, 101.

— Schottii II, 121.

— vitiensis Schott II, 282.

— Wallichii Schott II, 282.
Rhaphidostegium (Br.eur.)

De Not. 59.

— Duisaboanum (Moni.)
Besch. 54.

— guineense Broth. et Bar.
56.

— laetevirens Broth. et
Par.* 56, 80.

— nivescens (C. Müll)
Broth. 56.

— obtusifolium Broth. et
Par." 56, 80.

— plumosum Tlier* 80.

— rusciforme B. S. var-
longifoliumJETamJwersc/i.*
80.

Rhaphiolepis japonica II,

166.
Rhaphiospora 10, 11, 242.

— flavovirescens (Dicks.)
Mass. 242.

Rhaponticum eriophorum
Scop. II, 367.

— serotinura Dub. II, 367.
Rhaptopetalaceae II, 248.

- III, 219, 221, 329.
Rhaptopetalum sessili-

folium Engl III, 329.
Rheedia III, 59. — N. A.

II, 434.
Rhegmatodon Brid. 59.
Rhegmatodontaceae 59.
Rhektophyllum II, 241.

— mirabile II, 236.
Rhetinophyllum viride

Karst. II, 443.
Rheum 534, 535. — III,
555, 579. — N. A. II, 480.

— inopinatum Prain* III,
279.

— officinale III, 660.

Rheum palmatum 111,660.

— — var. tanguticum III,
660.

Rhinanthaceae III, 328.
Rhinanthus II, 100. — III,
323.

— major III, 567.

— minor III, 567.
Rhinocladium olivaceum

Bres. 144.
Rhinorea Welwitschii II,

237.
Rhipidopsis 613.
Rhipidopteris II, 766.
Rhipsalis III, 160. — N. A.

II, 349.

— chloroptera Web. III,
157.

— foveolata II, 203.

— HarrisüGnr&e*III, 159.

— Houlletiana Lern. III,
157.

— tetragonaWei. III, 159.
Rhiptozamites Goepperti

Schm. 582.
Rhizina inflata (Schaeff.)

146.
Rhizinaceae 112.
Rhizobium radicicola 180.
Rhizocarpon 15.

— cinereoviridulum
Lindau* 28.

— geographicum 16.
Rhizoclonium 855, 356.

— profundum 356.

— sulfuratum Brand* 356,
385.

Rhizoctonia 216.

— Mali DC. 815.

— violacea 108, 115, 117,
120, 217.

Rhizocupressinoxylon lia-

sinum Lignier* 585.
Rhizogonium 51.

— mauritianum Hpe. 54.

— spiniforme (L-) Br. 54.
Rhizophora Mangle L. 459.

— II, 895, 896, 900.

— mucronata Lam. 457.

— II, 206, 894, 896.

Rhizophora racemosa — Rhynchoglossum.

937

Rhizophora racemosa Mey.

II, 895.
Rhizophoraceae II, 486. —

III, 289.
Rhizopus 155, 232, 233.

— nigricans Ehrbq. 152,
155, 156, 176, 194, 201.
712. — III, 621, 622.

— oligosporus 195.

— tonkiniensis 175, 184.
Rhizosolenia II, 631, 633,

637.

— delicatula Cleve IL 634.

— eriensis H- L. Smith II,
630, 640.

Rhizosphaera 822.
Rhodea 554.

— japonica II, 957.
Rhodites bicolor II, 626.
Rhodobryum leptoroseum

(C Müll.) Par. 56.

— roseum Limpr. 69.
Rhodochytrium Spilanthi-

dis Lagh, 361.
Rhododendron 696. — II,
42, 161, 212, 225, 592,
593, 594. — III, 5, 34,
57, 201, 202. — N. A. II,
410.

— albiflorum II, 146.

— arboreurn Sm. II, 557.

— brachycarpum II, 214.

— cuneifolium Stapf II,
410.

— dahuric um rar. semper-
virens III, 202.

— dilatatum Miq. III, 200.

— ferrugineum L. 716. —

II, 580, 649. — III, 28.

— hirsutum L. 716. — II,
649.

— indicum var. Kaempferi
Max. III, 200, 201.

— javanicum 716.

— kamtschaticum Pall-

III, 49, 200.

— lapponicum Wahlbg.
515, 516. — II, 592, 595.

— Maddeni var. obtusi-
folium mäch. III, 200.

Rhododendron Mariesii
Hemsl. et Wils. III, 200.

— Metternichi S. et Z. III,
200.

— micranthum Turcz. III,
200.

— molle S. et Z. III. 203.

— ponticum L. II, 154.

— racemosum Franeh. II,
82. - III, 202.

— — var. rigidum Franeh.
III, 202.

— rhombicum III, 201.

— rigidum Franeh. III,
202.

— siamense II, 223.

— sinense Siveet III, 200,
303.

- Ungeri II, 154.
Rhodoleia III, 225.
Rhodomonas 366.

— pelagica Lohm* 333,
385.

Rhodophaga rosaria H.

Low II, 626.
Rhodophyceae 337, 339,

340, 349, 372. — II, 270.
Rhodophyllis 373.

— acanthocarpa J.Ag.'&Td.

— Gunnii Harv. 373.

— lacerata Harv. 373.

— Laingii Cotton* 373,
385.

— membranacea Harv.
373.

Rhodophyta III, 14.
Rhodora II, 174.
Rhodospatha P. et Enal-

II, 121, 122. — III, 76.

- N. A. II, 283.

— blanda Schott II, 283.

— — var. Melinonii Engl.

II, 282.
Rhodosphaerium diffluens

Xadson* 380, 385.
Rhodotypus 478, 480.
Rhodymeniaceae 328.
Rhoeadales III, 15.
Rhoea discolor II, 980. —

III, 79.

Rhoicosphenia curvata

(Kiitz.) Grün. II, 635.
Rhopala brasiliensis P.

307.
Rhopalobrachium Schltr. et

K. Krause N. G. N. A.

II, 510.
Rhopalodia gibba II, 634.

— ventricosa (Ehrenb.)
0. Müller II, 638, 645.

Rhopalomyia II, 623, 625.

— baccarum II, 626.

— Giraldii K. et T. II,
625.

- Herbstii Kieff. II, 612.
Rhopalostylis sapida II,

262, 263.
Rhopographus Nke. 115.

— clavisporus (C. et P.)
Sacc. 115.

— (Rhopographella) Ta-
quarae Rehm* 313.

Rhus II, 96, 626. — III,
4, 140, 218, 220. — N.A.

II, 328.

— abyssinica II, 894.

— antillana Eggers II,
527.

— coriaria II, 154, 896.

— III, 140, 471.

— Cotinus L. II, 154. —

III, 471.

— glabra L. II, 172. —
III, 140, 471.

— metopium L- II, 328.
900. - III, 471.

— quereifolia Goepp. 561.

— radicans II, 257. —
III, 140, 648.

— simarubifolia A. Gr.
457.

— succedanea L. II, 820.

- III, 653.

— Toxicodendron L. III,
139, 140. — P. 316.

— venenata III, 648.

— vernix II i, 648.
Rhynchanthus Johnianus

Schlechter II, 223.
Rhyrichoglossurii III, 212.

938

Rhynchogoniopsis— Ribes cereum.

Rhynchogoniopsis 593.
Rhyncholacis 448.

— divaricata Matth* III,
274.

— macrocarpa Tut. III,
274, 275.

— penicillata Matth* 449,
III, 274.

Rhynchomyces Willk. 268.
Rhynchophoromyces
Thaxt. N. G. 313.

— denticulatus Thaxt*
313.

— elephantinus Thaxt*
313.

Rhynchosia III, 58. — N.

A. II, 448, 449.
Rhynchosphaeria chaeto-

sporioides Behm* 313.
Rhynchospora N. A. II,

291.

— aberrans III, 80.

— alba L. III, 80, 81.

— albiceps III, 80.

— araazonica III, 80.

— armerioides III, 80.

— aureaeformis III, 80.

— Barteri III, 80.

— Candida III, 80.

— cephalotes Wahl. II,
837.

— chinensis III, 80.

— ciliata III, 80.
-- ciliolata III, 80.

— cyperoides III, 80.

— dissitiflora III, 80.

— divergens III, 80.

— elatior III, 80.

— exserta III, 80.

— eximia III, 80.

- fusca L. III, 80.

— gigantea III, 80.

— glauca III, 80.

— gracillima III, 80.

— Griffithii III, 80.

- hemicephala III, 80.

— hirta III, 80.

— hirsuta III, 80.

— hispidula III, 80.

— Hookeri III, 80.

Rbynchospora junciformis
III, 80.

— Lindenii III, 80.

— longisetis III, 80.

— longispicata III, 80.

— lunata III, 80.

— macrochaeta III, 80.

— Malasica III, 80.

— micrantha III, 80.

— monostachya III, 80.

— oligantha III, 80.

— Paraensis III, 80.

— patuligluma III, 80.

— polyphylla III, 80.

— prolifera III, 80.

— pterocarpa III, 80.

— pterochaeta III, 80.

— pusilla III, 80.

— racemosa III, 80.

— rigida III, 80.

— scaberrima III, 80.

— scirpioi'des III, 80.

— scutellata III, 80.

— Sikkimensis III, 80.

— subplumosa III, 80.

— tenella III, 80.

— tenerrima III, 80.

— tenuifolia III, 80.
- thyrsoides III, 80.

— triflora III, 80.

— Trichocbaeta III, 80.

— variflora II, 175.

— viridi-lutea III, 80.

— Wallichiana III, 80.

— Wightiana III, 80.
Rbynchostegiella Jacqui-

nü Limpr. 69.

— santalensis Par. et Broth.*

52, 80.

— sinensis Broth. et Par*

53, 80.

— tenella (Dicks) Limpr.
38, 54.

Rhynchostegium 47.

— hercynicum (Hpe.) var.
Gogelanura Podp. 47.

— megapolitanum (Brid.)
Br. eur. 155.

var. piliferum Rth*

39.

Rhynchostegium murale
(Neck.) Br. eur. 54.

— rusciforme Br. eur.
55.

— vagans Jaeg. 69.
Rhynchostoma brasiliense

v. Höhn* 128, 313.
Rhynchostylis retusa Bl-

III, 111.
Rhysotheca Geranii (Pech)

Wilson 142.

— Halstedii (Farl.) Wilson
141, 142.

Rhytachne N. A. II, 299.
Rhytidiadelphus (Lindb.)

Warnst. 59.
Rhytidiopsis Broth. N. G.

59, 80.

— robusta (Hook.) Broth.*
80.

Rhytidium (Süll) Kindb.

59.
Rhytidopeziza Balansae

Speg. 132.
Rhytisma acerinum Fr.

108, 202, 838.

— amphigenum (Wallr.)
P. Magnus 144.

— Ulmi Engelh.* 560.
Ribes 498, 759, 765. — II,

127, 143, 168, 188, 574.
598. — III, 5, 222, 316,
318, 412. - P. 134.
N.A. II, 519, 520.

— alpinum L. P. 116.

— amarum Mac Clatchie

II, 519.

— amictum var. cruentum

III, 316.

— atropurpureum P. 116.

— aureum Pursh P. 116,
235, 274, 852.

— Bethmonti 498. — II,
574.

— binominatum Heller II,
519.

— bracteosum III, 318.

— californicum H. et A.
II, 519.

— cereum 498. — II, 574.

Ribes cognatum— Rinodina sophodes.

939

Ribes cognatum Greene
II, 518.

— crnentum Greene II,
519.

— Culverwelli 498. — II.
574.

— curvatum Small II,
518.

— divaricatum Dougl. II,
518.

floridum II, 147.
futurum 498.

— Greeneianum Heller II,
519.

— Gordonianum 498. —

II, 574.

— Grantii Heller" III, 318.

— Grossularia L. 498, 691.

— II, 576, 598. — III,
318. — P. 99, 116, 235,
274, 280, 852.

— Grossularia X nigrum

III, 49.

— hesperium Mac Clatchie
II, 519.

— Hystrix Eastic. II, 519.

— inebrians 498. — II,
574.

— inerme Rydb. II, 519.

— irriguum Dougl- II, 518.

— lacustre II, 147.

— lasianthum Greene II,
518.

— leptanthum A. Gray II,
518.

— Lobbii A. Gray II, 519.

— III, 316.

— inadrense Cor. et Rose

II, 519.

— mandschuricum P. 119.

— Marsh allii Greene II,
519. - - III, 316.

— Menziesii Pursh II,
519.

— — var. subvestitum

III, 316.

— microphyllum H. B. K-
II, 518.

— missouriense Nutt. II,
518.

Ribes nigrum L. 808. —

II, 596. P. 99, 116,
235.

— occidentale III, 316.

— oxyacanthoides II, 147.

— Parishii Heller II, 518.

— petraeum Wulf. II,
602.

— pinetorum Greene II,
519.

— prostratum II, 147.

■ — purpurascens Heller*

III, 318.

— quercetorum Greene II,
518.

— robustum 498.

— Koezli Regel II, 519.

— rotundifolium Michx.H,
518.

— rubrum L- II, 147, 576,
598. — P. 99, 104, 116,
235, 274.

— sanguineum 498.

— sanguineum floribun-
dum II, 574.

— Schneiden Maurer III,
49.

— sericeum Easticood II,
519.

— setosum Lindl. II, 518.

— speciosum Purshll,ö\9.

— velutinum Greene II,
518.

— Victoris Greene II, 519.

— Watsonianum Kähne
II, 519.

Ricasolia 15, 16.
Riccardia incurvata Lindb.
65.

— latifrons Lindb. 65.

— pinguis (L.) Gray 47,
48.

— sinuata (Dicks.) Trev.
65.

— — var. stenoclada
Schffn* 65.

Riccia bifurca Hoffm. 44.

— ciliata Hoffm. 44.

— cornmutata var. acro-
tricha 39.

Riccia crystallina 42.

— echinatispora Schffn*
65, 89.

— glauca 42.

— Gougetiana 35, 36.

— Henriquesii Lev. 54.

— Huebeneriana Ldbg. 44.

— lamellosa Raddi 54.

— Lescuriana 42.

— macrocarpa Lev. 47.

— natans 35.

— ochrospora Moni, et
Nees 65.

— papulosa Moris 54.

— Parisiana Steph* 56,
89.

— Raddiana Jack et Lev.
47.

— sorocarpa Bisch. 42, 44.
46.

— subbifurca Warnst. 47.
var. eutricha Schffn."

89.

— synspora Schfln* 65,
89.

— Warnstorfii Limpr. 44.
Richardsonia N. A. II, 510.

— scabra II, 891.
Richteriella botryoides

361.
Richthofenia siamensis II,

223.
Ricinodendron africanum

Midl.Arg. II. 898.

— Heudelotii II, 921.
Ricinus 742. — II, 821,

823, 825, 988.

— communis L. 651, 738,
740. — III, 640.

— sanguineus III, 536.
Riedelia N. A. II, 324.
Riella 33, 56, 64.

— bialata Trabut* 89.
Riessia Fres. 269.
Rigidosporus surinamensis

135.
Rinodina 15.

— Hallii Tuch. 22.

— pyrina (Ach.) Am. 24.

— sophodes (Ach.) 11.

940

Rinorea gracilipes— Rosellinia caespitosa.

Rinorea gracilipes Engl.

III, 343.
Ritehiea N. A. II, 353.

— immersa De Wild. III.
165.

— Pyrnaerti De Wild. III,
165.

— Laurentii De Wild. 111,
165.

Rivea N. A. II, 398.

— bracteata Hallier f. II,
396.

— corymbosa Haller II,
621.

Rivina humilis P. 312.

— octandra P. 315.
Rivulariaceae 346.
Robinia 541, 765. — III,

53. — N. A. II, 449.

— Holdtii III, 242.

— Ke\seji Hutch. III, 231,
232.

— neomexicana III, 242.

— Pseudacacia 541, 686.

- II, 686. — III, 342,
433. — P. 317.

Robinioxylon Zuriensis

Falqui* 562.
Robinsonia II, 265.
Roccella DC 13. — III,

678, 688.
Rochefortia III, 39. — N.

A. II, 346.
Rodgersia III, 319.

- podophylla III, 319.

— tabularis III, 318.
Rodospatha Tuerckheimii

II, 122.
Roestelia 833.

— cornuta 250.

— fimbriata Arth. 249.

— flaviformis Underiv. et
Earle 249.

— interveniens Peck 129.

— Nelsoni Arth. 141.

- penicillata (Pers.) 249.

— pyrata (Schw.) 249.

— solenoidesDid.255,833.

— solitaria Miyabe 255,
833.

Rollinia N. A. II, 330.
Romulea II, 243, 260. —
III, 97, 98, 99. - N. A.

II, 301.

— Bachmanni Be'g* III,
99.

— bulbocodioides Balc III,
99.

— — var. minor Be'g* HI,
99.

— Bulbocodium Seb. et
Maur. III, 99, 100.

var. pygmaea Be'g*

III, 99.

— — var. syriaca Be'g*
III, 99.

— cruciata II, 259, 260,
846.

LeichtlinianaHeüdr. III,
99.

— ochroleuca Baker II,
301.

— rosea Eckt. II, 260. —
III, 99.

— — rar. hirsuta Be'g*
III, 99.

— Zabnii Heldr. II, 301.
Rondeletia II, 503. — III,

59. — N. A. II, 510.

— strigosa Benth- II, 582.
Roripa Armoracia Hitchc

II, 404.

— sphaerocarpa Britton
II, 404.

Rosa 478, 480, 481, 504,
759. — II, 81, 100, 138.
— III, 28, 53, 291, 294,
295, 296, 304, 385. — P.
282, 283, 315. — N. A.

II, 499, 500.

— acicularis P. 251, 306.

— alpina III, 293.

— anserinifolia II, 157.

— arvensis X gallica II,
500.

— Aschersoniana III, 293.

— blanda II, 147, 175. —

III, 293.

— canina III, 10, 53, 304.

— centifolia P. 145, 287.

Rosa cinnamomea 111,293.

— Freundiana II, 81. —
III, 293.

— gallica III, 558.

— glauca var. wippraensis
Wein.* III, 299.

— glauca X stylosa II,
500. •

— bispida Moench II, 500.

— humilis III, 293.

— Jundzillii III, 293.

— Lamberti RouyIII, 295.

— lucida II, 147.

— macrophylla Lindl. II,
626.

— moschata MM. II, 556.

— moschata X gallica III,
293.

— multiflora P. 134, 319.

— Nutkana var. hispida
Fernald II, 500.

— opaca III, 292.

— persica 478.

— Polliniana Spreng. II,
500.

— rubiginosa III, 293.

— rugosa III, 293.

— sericea Lindl. II, 555,
626.

— — var. pteracantha
Franch. III, 290.

— stylosa X glauca III,
295.

— viridiflora III, 408, 409.

— Wichuriana Cre'p. HI,
294.

— Willmottiae Remsl. III,
291.

Rosaceae 504. — II, 169,
194, 250, 252, 486, 554.
— III, 4, 16, 58, 219,
222, 223, 224, 225, 289.

Rosellinia 131.

— aspera Razsl. 11.

— Bambusae P. Renn*
313.

— Bresadolae Theiss* 313.
var. minor Theiss*

313.

— caespitosa Starb. 131.

Eosellinia Cocues — Kubus rnucronatiforinis.

941

Eosellinia Cocoes P.Henn*
313.

— Desmazierii (B. et Br.)
Sacc. var. acutispora
Theiss.* 313.

— Desmodii P. Herrn*
313.

— echinata 211.

— emergens (B.etBr-)Sacc.
var. bambusicola Theiss*
313.

— hyalospora Theiss* 3 1 3.

— mamma Pass- 146.

— meta,chroaFerdetWge*
313.

— (Dematophora) necatrix
(Hart.) Berl. 219.

— nectrioides Rehm* 313.

— nitens Ces. 242.

— perusensis P. Herrn*
313.

— Pepo Pat* 159, 313.

— radiciperda Massee 219.

— II, 848.

— similis Sacc* 313.

— St. Cruciana Ferd- et
Wge* 313.

— tricolor Theiss* 314.

— Victoriae 8yd.* 314.
Rosenbergia Oerst. II, 192.

- III, 278. — N. A. II,
478.

Rosmarinus 38.

— officinalis L. III, 536.
Rotala II, 124. — N. A. II,

454.
Rotang II, 902.
Rottboellia N. A. II, 299.

— exaltata II, 839.
Roumegueria Ichnanthi

P. Herrn.* 314.
Rourea II, 168. — III, 58,
185. — N. A. II, 394.

— glabra Gris. II, 394.

— orientalis H. Bn. 433. —
II, 227.

— — var. madagascari-
ensis II, 227.

Roydsieae III, 220.
Royena II, 625.

Roylea elegans Wall. II,

557.
Rubia II, 204.
- — transalaica 0. et B.

Fedtsch. III, 305.
Rubiaceae II, 166, 196,

200, 250, 252, 266, 503.

— III, 4, 16, 51, 59,
221, 222, 304.

Rubidgea Mackayi 622.
Rubus 478, 479, 504. —

II, 100, 221, 224. — III,
4, 5, 39, 291, 293, 294,
294, 296, 385, 412. — P.
266, 284. — P. II, 971.

— N. A. II, 500, 501,
502.

— affinis W. N. III, 291.

— alleghaniensis III, 292.

— amblyphyllus N- Bold.

III, 291. "

— arcticus P. 252.

— arcticus X Idaeus II,
501.

— Arrhenii Lge. III, 291.

— arrhenianthus K. Frid.
III, 291.

— axillaris PJ.M. III, 291.

— ßakeri Lees III, 291.

— biflorusPMScÄ.-fiam.II,
556.

— bifrons X caesius II, 501 .

— brachythyrsoides Sud.
III, 291.

— brachythyrsus Sud. III.
291.

— caesius II, 576.

— caesius X corymbosus

II, 500.

— calviioliusSwtf.111,291.

— canadensis II, 147. —

III, 292.

— candicans P. 306.

— carpinifolius Wh- III,
291.

— castoreus P. 306.

— cbaerophyllus S. et Seh.
III, 291.

— Cbamaemorus L. II,
147. - 111,291.

Rubus eblorothyrsus /•'.
III, 291.

— eimbricus F. III, 291.

— clethrophilus Gener. III,
291.

- conformis X ulmifolius

II, 500.

— danicus F. III, 291.

— emergens B. et M. III,
291.

— erythranthus Sud. III,
291.

- fallens Sud. III, 291.

— fissus Ldl. III, 291.

— flagelliflorus III, 57.

— fucatus Sud. III, 291.

— Gerhardtii Figert* III,
293.

— glandulosus III, 298.

— glaucinus Mueller II,
500.

— gratus F. III, 291.

— hebetipes Sud. III, 291.

— hemistemonP J.MTil,
291.

— holerythrus F. III, 291.

— borridisepalus Sud. III,
291.

— hypomalacoides Siuh

III, 291.

— hypomalacusP.111,291.

— Idaeus 595.

— IdaeusXph°enic°lasms
III, 371.

— Idaeus X saxatilis II,
501.

— immutabilis Sud. HI,
291.

— innominatus III, 57.

— integribasis M. III, 291.

— lasiocarpus Sm. II, 556.

— latifolius Bab. 111,291.

— Leyi F. III, 291.

— LoretianusSfod.111,291.

— Maassii Focke III, 291.

— mercitus Bagn. HI, 291.

— niacensis Laurent* 584.

— moluccanus II, 847.

— mucronatiformis III.
291.

1)42

Rubus Mueateri— Rnssiüa foetens.

Rubus Muenteri Mars. III,
291.

- myricae Focke III, 291.

- nigrobaccus Bailey III,
292.

var. albinus Bailey

- III, 501. - - P. 843.
var. Gravesii Fer-

nald II, 502.

— Ninckii Sud. III, 291.

— nitidus W. N. III, 291.

— occidentalis P. 240, 306.

— oligodenesjSttrf.nl, 291.

— opacus Focke III, 291.

— orbifoliatus Sud. III,
291.

— orthocladus A. Ley III,
291.

— orthosepalus 77a?. III,
291.

— oxyanchu.SjSttd.111,291.

— Paxii Focke* III, 292,
371.

— pectinellus II, 162.

— pergratus III, 292.

— pervagus Sud. III, 291.

— PfuhlianusSpri6t7£e*III,
297.

— phoenicolasiusXldaeus
IIT, 292.

— platybelus Sud. III, 291.

— plicatus TF. iV. III, 291.

— porphyracanthus Focke
III, 291.

— Questieri L. M. 111,291.

— reflexus 477, 479.

— repetinus Sud- III, 291.

— ßogersii Hin*. III, 291.

— rotundatus P. J. M. III,
291.

— Salteri Bab. III, 291.

— saltuivagus Sud. III,
291.

— saxatilis P. 252. — 306.

— Scheutzn Lindg. 111,291.

- sciocharis Sud- III, 291.

— Selmeri Lindg. 111,291.

- senticosus Koehl. III,
291.

— similis Sud. III, 291.

Rubus sollingiacus F.Krt.

III, 291.
■ — spectabilis III, 298.
- Sprengelii Wh. III, 291.

— stenoacanthus M. L-
III, 291."

— strigosus Michx. II,
147, 501.

— subcalvus Sud. III, 291.

— suberectus .Awrfers. II,
596. — III, 291.

■ — subglaucus Sttrf. III,
291.

— subnitens Sttrf. III, 291.

— sulcatus Vest. III, 291.

— tarnensis Sud. III, 291.

— teretipes Sttrf. III, 291.

— teretiramus Sttrf. III,
291.

— tereticaulis X conden-
satus II, 501.

— tbyrsoideus P. 306.

— trifidus II, 162. — III,
295.

— triflorus II, 147.

— urticifolius P. 294, 321.

— variidens S. et B. III,
291.

— viridicatus Sttrf. III, 291.

— villosus II, 147, 501,
605.

— var. albinus Bailey II,
501.

— vulgaris W. N. III, 291.
Rudbeckia N. A. II, 389.

— hirta II, 605.

— Sullivanti Boynton et
Beadle II, 389.

Rudgea N. A. II, 510.
Ruellia N. A. II, 325.

— ciliosa Pursh III, 541.

— flagelliformis Boxb. III,
134.

— napifera Zoll. III, 134.

— sororia Th. Fr. 17.

— tuberosa II, 822.
Ruellieae III, 135.
Rubmora Raddi II, 766.
Rumex II, 151, 823, 829.

N. A. II, 480.

Rumex Acetosa L. II, 626,
957.

— acetosella L. II, 261.

— alpinus X Silvester II,
480.

— arifolius P. 250, 320.

— britannicus 681.

— conglomeratus III, 9.

— crispus L. II, 147, 614.

— crispus X obtusifolius
X sanguineus II, 480.

— III. 172, 410.

— bymenosepalus II, 821.

— mexicanus II, 170. —
III, 172.

— nervosus II, 894.

— obtusifolius L. 647. —

II, 261. — III, 9.

— occidentalis II, 172.

— pallidus Bigelow II, 170.

— III, 172.

— Patientia II, 175.

— persicarioides II, 170.

— salicifolius II, 170. —

III, 172.

— sanguineus II, 147.

— thyrsiflorus II, 480.

— wippraensis Wein* III,
172, 410.

Rungia Blunieana Val- III,
134.

— salaccensisFaZ. III, 134.

— sannen tosa Val. III, 134.
Ruppia II, 240. — III, 132.

— maritima L. II, 261. —
III, 131, 590.

Ruscus aculeatus L- 474,
545.

— niacensis Laurent* 584.
Russula 161, 163, 174,256,

260.

— alutacea Pers. 106, 256.

— amoena Que'l. 256.

— Clusii Fr. 256.

— cutifracta Cooke 256.

— cyanoxantha Que'l. 256.

— delica 181, 182.

— emetica Que'l. 180, 256.

— expallens Gil. 256.

— foetens 182.

Russula fragilis— Salisbnrya adiantoides.

943

Russula fragilis Fers. 256.

— furcata Fr. 256.

— graminicolor Quel. 256.

— heterophylla Quel. 256.

— lilacea Quel. 256.

— mitis W. G. Sm* 314.

— olivacea Schaeff. 256.

— Queletii Fr. 256.

— pseudopectinata P.
Herrn* 138, 314.

— pusilla Peck 125.

— rosacea Fr. 256.

— rosea Quel- 256.

— rubicunda Quel. 256.

— rubra 174, 651.

— rubra (Krombh.) Eres.
107.

— rubra Quel. 256.

— sardonia Fr- 256.

— subfoetens W. G. Sm*
314

— vesca Eres. 256.

— xerampelina Schaef.
256

Rutaceae 428. — II, 166,
224, 250, 511. — III,
23, 219, 222, 223, 224,
307.

Ruten bergia madagassa
Geh. et Hpe. 54.

Ryssopteris ovata Turcz.
II, 455.

Sabal 468, 587, 596. — U,
196. — III, 130. — N. A.
II, 320.

— Haeringiana TJnq. 596.

— major 564.

— Palmetto III, 253, 453.
Sabia 467. — III, 308. —

N. A. II, 514.

— japonica P. 300.
Sabiaceae 467. — II, 514.

— III, 308.
Sabicea N. A. II, 510.
Sabina N. A. II, 279.

— megalocarpa (Sudiv)
Cook. II, 183.

— sabinoides P. 249.

— virginiana P. 249.

Sabulina austriaca Rchb.
II, 356.

— banatica Heuff. II, 355.

— Gerardi Rchb. II, 356.

— setacea Rchb. II, 3~i~>.
Saccardaea Cav. 270.
Saccardinula Usteriana

Speg.k 314.
Sacciolepis N. A. II, 299.
Saccogyna Dum. 66.

— antarctica Steph.* 89.

— asperrima Steph.* 89.

— ligulata Steph* 89.

— trilobata Steph.* 89.
Saccolabium III, 121, 122.

— N. A. II, 317.
Saccoloma inaequale (Kze.)
Mett. II, 791.

— — var. caudata Hieron.*
II, 791.

— moluccanum (Bl.)Mett.
II, 783.

Saccbaromyces 172, 175,
188.

— apiculatus 182.

— capsularis II, 969.

— Carlsbergensis ifßnserc*
189, 314.

— Cerevisiae 172, 188.

— disporus 186.

— ellipsoideus 103, 182.

— fragrans 186.

— javanicus Kruyff' 191,
314.

— Monacensis Hansen*
189, 314.

— muciparus 186.

— rosaceus 709.
Saccbaromycopsis capsu-
laris 171.

Saccbarum P. 130, 300. —
N. A. II, 299.

— officinarum L- 458. —
II, 841, 873.

— spoutaneum II, 220.
Sadleria cyatheoides II,

755.
Sagedia 15.
Sagenopteris 579, 613.

— Phillipsi 591.

Sageretia N. A. II, 486.
Sagina 454. — N. A. II,
356.

— apetala II, 261.

— procumbens £,. II, 598.

— procumbens Xsubulata
III, 170.

— Reuteri III, 170.
var. glabra Ingh. et

Wheld* III, 170.
-- subulata (Sw.) Presl II,

591.
Sagittaria II, 115. — N. A.

II, 279.

— arifolia Null II, 181.

— calycina var. maxima
Engelm. II, 279.

— chilensis II, 116.

— gracilis Pursh II, 279.

— bastata Pursh II, 279.

— neterophylla Pursh III,
73.

— — var. iscana Hieru:L

III, 73.

— lancifolia L. II, 978.

— sagittifolia L. 513. —
II, 211, 559.

— variabilis II, 279, 978.

— — var- diversifolia
Engelm. II, 279.

var. obtusa Engelm.

II, 279.
Sagittipetalum Merrill N.

G. N. A. II, 486.
Sakersia N. A. II, 460.
Salacia III, 59. — N. A.

II, 434.

— Dusenii Loes. III, 215.
Saldinia N. A. II, 510.
Salep III, 555.
Salicaceae 598, 614. — II,

514. — III, 15, 220, 222,
308.
Salicinoxylon Lignicr N. <J.
585.

— biradiatum IAgnier
585.

Salicornia 667.
Salisburya adiantoides
Ung. 608.

944

Salisburya Pracacoinü— Salvia Verbenaoea var. amplifrons.

Salisburya Pracaccinii

Mass. 608.
Salix 545, 577, G91, 759.

— II, 44, 100, 158, 598.

— III, 34, 53, 310, 311.

— P. 289. — N. A. II,
314, 515, 516.

— alba L. III, 28, 309. —
P. 582.

— >alba X fragilis II, 515.

— ambigua Ehrh. II, 515.

— ambigua Kras- II, 515.

— angustifolia X aurita II,
510.

— anomala Wo*/1* III, 311.

— aurita L. II, 598.
III, 311.

— aurita X repens II, 515.

— babylonica X vitellina

II, 516.

— Bakeri III, 58.

— Bonplandiana H. B. K-

III, 58.

— Caprea L. 652, 653,
686. — II, 598, 626. —
III, 28, 309, 311. — P.
252.

— cinerea III, 311.

— coluteoides II, 232.

— daphnoides Vill- III,
309, 311.

— denticulata Heer 561.

— elegans Wall. II, 557.

— excelsior Host 11, 515.
var. discolor A. Kern.

II, 515.

var. viridis A. Kern.

II, 515.

— fragilis III, 28, 311,
485. — P. 117, 308.

— var. viridis Wimm. II,
515.

— fragilis X alba II, 515.

— glaucescens Host TI,
515.

— herbacea L. II, 598.

— incana II, 175.

— KomarowiWoZ/11, 143.

— Lapponum L. II, 100,
598.

Salix linearifolia Wolf II,
143.

— macrostachya Wolf II,
143.

— margaritifera Wolf II,
143.

— nigricans III, 311.

— — var. glaucescens
Kern- II, 515.

var. parvifolia

Wimm- II, 515.

— opaca Anders. III, 309.

— ovata Host II, 515.

— oxycarpa Anders. II,
557.

— pentandra L. II, 619.

— III, 311.

— persica III, 58.

— phylieifolia L. 653. —
II, 515, 598.

— — var. microphylla
Gaud. II, 515.

var. ovata Gaud. II,

515.

— polaris 575.

— pseudalba Wolf II,
143.

— purpurea L. 562. — III,
309.

— repens L. II, 135, 598.

— III, 309, 311.

— repens X aurita II,
515.

— retusa 575.

— rubens Schrk. II, 515.

— Safsaf Forst. II, 151,
231. — III, 308.

— senegalensis Mert. II,
249.

— serrulatifolia Wolf II,
143.

— silesiaca II, 100.

— sitchensis II, 143.

— Thunbergiana Bl. III,
309.

— triandra III, 309, 31 J.

— Urbaniana v. Seem. III,
309.

— viminalis III, 311.
Salpinga N. A. II, 460.

Salpingoeca amphoridium
J. Clark II, 636.

— Balatonis (Stein) 342.
Salsola N. A. II, 359.

— aphylla L. II, 620.

— Kali L. II, 261.
Salvadora oleoides II, 927.

— persica II, 231.
Salvadoraceae III, 222,

311.
Salvia 534. — III, 5. —
N. A. II, 437, 438.

— angustifolia Cav. III,
56.

— apiana II, 188.

— californica Jepson II,
188, 438.

— clandestina Benth. III,
229.

— clandestina L. III, 229.

— cleistogama II, 585.

— controversa Ten. III,
229.

— dichroa III, 228.

— hirsuta Jacq. III, 56.

— horminoides Gr. et
Godr. III, 229.

— borminoides Pourr- III,
229.

— involucrata 678.

— lanata Roxb. II, 557.

— leptostaehys Bnth. III,
56.

— oblongifolia Vahl III,
229.

— officinalis L. III, 536.

— pallidiflora St. III, 229.

— praecox Savi III, 229,
438.

— pratensis L- 522. —
III, 228.

— prineeps III, 57.

— scapiformis II, 214.

— Sclarea III, 227.

— splendens 719.

— verbenacea Benth. II,
438. — III, 229.

— Verbenacea L. 111,229.
var. amplifrons Briq.

II, 438. - - III, 229.

Salvia Verbenacea var. olandestina — Sarcotaxus olivaeformis.

945

Salvia Verbenacea var.
clandestina Briq. II, 438.

— III, 229.

— — var. controversa
Briq. III, 229.

— — var. horminoides
Briq. III, 229.

— — var. incisa Benth.
III, 229.

— — var. muitifida Vis.

II, 438. — 111, 229.
var. typica III, 229.

— Wiedemanni II, 151.
Salvinia Mich. 564. — II,

786.

— auriculata 565.

— natans II, 759.

— oligocaenica Staub 596.

— Zeilleri 565.
Samadera indica Gaertn.

III, 510. 583.
Samaropsis parvula 582.

— ulmifolia 618.
Sambucus 534. — II, 135.

— III, 167, 221.

— canadensis II, 147.

— Ebulus L. 278. — III,
9. — P. 152.

— nigra L. 681. — II,
576, 587. — III, 9, 54,
539, 657.

— pubens II, 147.

— racemosa L. III, 166.
Samolus 655. — N. A. II,

482.

— Valerandi L. II, 269.
Samuela carnerosana II,

916, 917.
Samyda III, 59. — X. A.

II, 425.

Sanchezia N. A. II, 325.
Sanguinaria canadensis L.

442. — III, 270, 426.
Sanguisorba 478, 479. —

III, 296. - N. A. II,
502.

— dodecandra II, 95.

— myriopbylla A. Br. et
Pouche II, 498.

— officinalis P. 145.

Sanionia Loeske 58.
Sansevieria II. 904.
— gaineensis 434.

II.

904, 905.
Santalaceae II, 516. —

III, 15, 221, 222.
Santalum album 516. —

III, 324.
Santiriopsis II, 899.

— Klaineana II, 898.
Santolina N. A. II, 389.
Sapindaceae 507, 614. —

II, 206, 516. — III, 55,
58, 224, 312.

Sapindus Mukurossi II,
166.

— Saponaria L. II, 900.

III, 530.

— trifoliatus III, 530.
Sapium II, 192, 418, 937,

938, 939. — III, 207.
— N. A. II, 421.

— anadenum Pitt. III,
204.

— aucuparium Jacq. II,
938.

— cuneatum Griseb. II,
899.

— hippoman e G- F. M- Mey.
II, 621.

— Jenmani Hemsl. II, 938.

— unexicanum Hemsl. III,
204.

— oblongifolium II, 236.

— oligoneurum Schum. et
Pitt. III, 204.

— pacbystacbys Schum. et
Pitt III, 204.

— paucinervum Hemsl. II,
938.

— pedicellatum Huber III,
205.

— Pittieri Huber III, 205.

— pleiostacbys Schum. et
Pitt. III, 205.

— sebiferum Roxb. II,
557.

— tbelocarpum Schum. et
Pitt. III, 205.

Saponaria 504.

Saponaria bellidifolia II.
99.

— officinalis L. III, 472,
530.

Sapobaceae 614. — II, 200,
517. — III, 59, 221, 312.

Saprolegnia 233. — II,
968, 970. — III, 610.

— hypogyna 172.

— mixta 172.

— monoica 167, 233. —

II, 967.
Saprolegniaceae 164, 167,

172.
Sarcanthus III, 121, 122.
Sarcina flava 710.

— lutea 709.
Sarcinella Sacc. 269.
Sarcinia sizygiifolia III,

213.
Sarcocaulon III, 535.

— Currali Hechel* III, 535.
Sarcocephalus N. A. II,

510.

— pacificus Reinecke 458.
Sarcochilus N. A. [1, 317.
Sarcochlaena N. A. II, 359.
Sarcocolla II, 986.

— squamosa (L-) Kunth

III, 271.
Sarcogyne 15.
Sarcomenia 328.
Sarconeurum II, 267.
Sarcophrynium II, 244.
Sarcopyranais N. A. II,

460.
Sarcoscypha floccosa

(Schw.) Cke. 146.
Sarcosoma 138.

— tetraspora v. Holm*
128, 314.

— Wettsteinii v. Höhn.*
128, 314.

Sarcostemma N. A. II, 338,

— implicatum III, 146
147.

— viminale III, 146.
Sarcotaxus angulosus 548.

— avellana 548.

— olivaeformis 548.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt lti. 2. 12-1

60

946

Sorothaninus scoparius— Saxifraga nivalis.

Sorothamnus scoparius
Koch 769. — II, 556,
617. III, 231, 242,

432. — P. 158.

Sarracenia L. II, 119. —
III, 313, 314, 388. —
N. A. II, 518.

— cantabrigiensis III, 314.

— Catesbaei Small II, 518.

— Chelsoni III, 314.

— Courtii III, 314.

— Drummondii II, 119.

— III, 388.

— Drummondii X vario-
laris III, 314.

— flava 715. — II, 119,
649, 985. — III, 388.

— — var. crispata Mast.

II, 518.

— Gronovii var. alata
Wood II, 518.

— illustrata III, 314.

— minor II, 119. — III,
388.

— ■ psittacina II, 119. —

III, 388.

— purpurea U, 111, 119,
985. — III, 314, 388.

— rubra II, 119.

— Williamsi III, 314.
Sarraceniaceae 447. — II,

119, 518, 579. — III,

218, 224, 313.
Sarsaparilla III, 601.
Sasa borealis P. 250, 312.

— kurilensis Mak. et Shib.
III, 87.

— ramosa P. 250, '■> 1 1 .
Sassafras 564. — II, 176.

— III, 3, 230.
Satureja II, 155. — III,

227, 365, 366. — N. A.

II, 438.

- arkansana Briq. II, 438.

— calamintha 111, 9.

- hortensis II, 138. —

III, 365, 360.

— Pitardii Bornm. II, 437.

— vulgaris 521*.
Satyria N. A. II, 410.

Satyrinae II, 244.
Satyrium coriifolium P.

320.
Saundersia mirabilis II,

199.
Saurauia III, 221. — N. A.

II, 406.
Sauraujeae III, 221.
Sauromatum II, 242. —

III, 75.
Saururaceae III, 314.
Saururus Loureiri III, 271.
Saussurea II, 159. — N. A.

II, 390.

— deltoidea C. B. Gl. II,
555.

— diversifolia Wall. IL
555.

— pamirica II, 159.

— uniflora Wall. IL 555.
Saxegothea 453. — III, 70.

— conspicua Ldl. 453. —

III, 68, 69.
Saxifraga 504, 757. — II,

100, 143, 146, 598, 599.
— III, 218, 319. — P.
298. — N. A. II, 520.

— aizoides L. II, 599.

— Aizoon II, 587. — III,
33.

— ambigua DC III, 318.

— Bertolonii Sünderm. III,
318.

— Borisii Kellerer III, 318.

— Brunoniana Wall- III,
316.

— Burnati Sund. III, 318.

— Burseriana III, 56.

— Burseriana minor X Fer-
dinandi - Coburgi, III,
318.

— Burseriana X margi-
nata III, 318.

— Burseriana X Roche-
liana III, 318.

— Burseriana X sancta
III, 318.

— caesia III, 33.

— carpathica II, 100.

— cernua II, 100.

Saxifraga cochlearis X
Aizoon III, 318.

— corymbosa H. f. et Th.
III, 218.

— Cotyledon 670. — III,
56.

— Cymbalaria III, 319.

— diversifolia Wall. IL
555. — III, 218.

— Elizabethae Sund. III,
318.

— endoxiana Kell. III,
318.

— exarata Hooker II, 1 46,
520.

— Ferdinandi - Coburgii
III, 318.

— Ferdinandi-Coburgii X
sancta III, 318.

— Freibergii Ruppert* III,
319.

— Friderici - Angusti X
Burseriana II, 520. —
III, 320.

— granulata L. IL 554.
- III, 316.

— granulata X decipiens
II, 520. — III, 319.

— Griesebachi III, 56.

— groenlandica L. II, 146.

— hederacea III, 319.

— hederacea X Huetiana
II, 520. — III, 316.

— heucheraefolia II, 100.

— Huetiana III, 319.

— hypnoides L. II, 591,
598.

— Kellereri Sünderm.* III,
320.

— Kyrillii Kell. III, 318.

— ligulata Wall. II, 556.

— longifolia P. 108.

— luteoviridis II, 100.

— marginata III, 318.

— marginata X Ferdi-
nandi-Coburgii III, 318.

— media X aretioides III,
318.

— mixta Lapeyr. II, 520.

— nivalis L. II, 591, 598.

Saxifraga Obristi— Schizostachyuni.

947

Saxifraga Obristi Sund.
III, 318.

— oppositifolia L. II, 596.
— III, 33.

— Paulinae Sund. III, 318.

— Petraschii Sund. III,
318.

— porophylla III, 5(5.

— retusa III, 33.

— Rocbeliana II, 100.

— Rudolphiana III, 33.

— Salomonii Sund. III,
318.

— Sibthorpii III. 319.

— sponhemica II. ."»20.

— stellaris L. II, 591, 599.

— tellimoides III, 318.

— thessalicaXparophylla
III, 318.

— tombeanensis X Rocbe-
liana III, 318.

— umbrosa L. II, 599.

— Vandellii III, 318.

— Vetteriana III, 316.
Saxifragaceae 504, 505. —

II, 518. — III, 219,221,
222, 223, 316.
Scabiosa 517. — II, 153.
- III, 5. — N. A. II,
407.

— tartarica III, 57.
Scalia Hookeri (Smith) 48.
Scaevola 540. — N. A. II,

431.

— angulata 540.

— crassifolia 540.

— Lobelia 540.

— novae - zelandiae A-
Cunn. II. 546.

— revoluta II, 255.

— sericea II, 166.

— suaveolens 540.
Scammonium III, 473.
Scandix Antbriscus L. II,

537.

— pecten-Veneris L. Il'
255.

Scapania nemorosa (L.)
Dum. 47.

— — var. a lata (Kadi) 44.

Scapania obscura (Arn. et

Jens.) Schffn. 65.
-- paludosa C. Müll. 65.

— — var. rubigiaosa K.
Müll. 44.

— resupinata Dum. 44.

— uliginosa Dum. 70.

— undulata Dum. 70.
Scaphopetalum III, 59. —

N. A. II, 530.
Scapbyglottis N. A. II,

317.
Sceletonema II, 635.
Sceura marina Forsk. II,

542.
Schaefferia III, 58. — N. A.

II, 358.
Schefflera II, 208. — III,

145. — N. A. II, 334,

335.

— actinopbylla Harms II,
208.

— acuminatissima Merr.

II, 334.

— venulosa Merr. II, 334.
Scheucbzeria palustris L.

n, 176, 580, 715. -

III, 519.
Schiffneria Steph. 66.

— viridis Steph.* 89.
Schima Walchii II, 613.
Scbinus II, 622. — P. 299.

— N. A. IL 329.
Schistidium apocarpumi?r.
eur. 70.

— confertum var. pruino-
sum 40.

— gracile Schi. var. irro-
ratum Hammersch* 80.

— teretinerve Limpr- 60.
Scbistocbeila Lauterbacbii

Steph-* 89.
Schibtomitrium 51.

— Oopelandii Broth* 80.
Scbistostega osmundacea

Schpr. 699.
Scbizacbyriura \. A. II,

299.
Scbizaea pectinata Sm. II,

797, 808.

Scbizaeaceae II, 7.").").
Schizantheae 111, 50.
SchizeUema Domin N. ö.

III, 341. - N. A. II,

538, 539.

— Mülleri Domin II, 539.
Schizochilus II, 244.
Schizochlamys 361.

— gelatinosa A. Br. 361.
Schizocodon soldanel-

loides Sieb, et Zucc. II,

405, 406.
Scbizodium II, 244.
Schizoglossum X. A. II,

338.
Schizolepis Moelleri

Seward* 622.
Scbizoloma (Euscb.) coria-

ceum v. Aid. v. Ros.* II,

781, 815.

— ensifolium {Sw.) J. Sm.
II, 794.

Scbizomyia incerta II, 613.

— indica Kieff* II, 613.
Schizomycetes 336, 825.
Scbizoneura 574, 622, 623.

— Carrerei Zeill. 574.

— gondwanensis Feistm.
582.

— boerensis 574, 612.
-- lanigera II, 619.

— Meriani 574.

— Populi Gillette* II, 611.
Scbizonotus III, 296.

— argenteus II, 502.

var. griseus O.Ktee.

II, 502.

— — var. intermedius
0. Ktze. II, 502.

Scbizopbyceae 329, 330,
336, 337, 340, 343, 345,
347, 350.

Schizophyllum alueum
226.

— commune 171, 260.
Schizopbyta III, 14.
Schizosiphon aponinus

381.
Scbizostachyum II, 211.
-P.295. — N.A. 11,299.
60

948

Schizostege — Scirpus polystaohyus.

Schizostege Hillebr. II,

766.
Schizothrix lateritia 341.
Schizoxylon Unger 552.

— taeniatum 552.
Schlechtendalia sinensis

Licht. II, 626.
Schlegelia 718.
Sckleichera trijuga Willd.

II, 852.
Schlotheimia 51.

— densifolia Thfr.* 80.

— japonica.BescA. et Card*
80.

— japonica Besch- rar.
sulcata Card- et The'r*
80.

- latifolia Card, et The'r."
80.

— PobeguhüPar.et Broth*
55, 56, 80.

— purpurascens Par* 52,
80.

— speciosissima Broth*
80.

Schmaltzia illinoensis

Greene II, 328.
Schmidelia bantamensis

Bl II, 516.

— Cobbe Wight II, 516.

— fulvinervis Bl. II, 516.

— glahnxHook.f.et Thomps.
II, 516.

— glabrata Griseb. II, 516.

— littoralis Bl. II, 516.

— serrata Wight II, 516.
Schoenolaena III, 341.
Schoenoplectus supinusL

II, 290.
Schoenoxiphium Ecklonii

III, 81.

— rufum III, 81.

— Sickmannianum III, 81.
Schoenus arundinaceus

III, 80.

— axillaris III, 80.

— calostachyus III, 80.

— comosus III, 80.

— cruentus III, 80.

— curvifolius III, 80.

Schoenus grandiflorus III,
80.

— Hornei III, 80.

— odontocarpus III, 80.

— pauciflorus III, 80.

— pleiostemoneus III, SO.

— sculptus III, 80.

— tenuissimus III, 80.
Schoepfia N. A. II, 469.
Schradera N. A. II, 510.
Schraderella C. Müll. 59.
Schrebera alata Welw. HI,

265.
Schroeteriaster alpinus

(Schroet) P. Magn. 143,

148.
Schumannianthus III, 108.
Schwetschkea Brotheri

Dase'n 56. .

— Courtoisi Par. et Broth*
53, 80.

— sublaxa Broth. et Par.*
52, 80.

Sciadophyllum III, 59.
Sciadopytis 463, 533. —

III, 3.
Sciaphila N. A. II, 323.

— Olemensae Hemsl. II,
213.

Sciaromium Mitt. 58.

— maritimum Card* 80.
Scilla P. 238, 239. — N. A.

II, 307.

— bifolia L. HI, 283.

- cilicica Siehe* III, 108.

— esculenta Ker. II, 304.

— Ludwigü Baker II,
307.

— sibirica P. 238.

— sicula II, 957.

— verna Huds. II, 591.
Scindapsus Schott- II, 121,

122. — III, 76. — N. A.
II, 282.

— caudatus Schott II, 282.

— Forsten Endl. II, 282.

— hederaceus II, 121,
122.

— medius Zoll, et Mor.
II, 121. — III, 75.

Scindapsus officinalis II,
121, 122.

— perakensis II, 122.

— pictus II, 121.

— pinnatifidus Schott II,
282.

— pinnatus Schott II, 282.

— Scortechinii II, 121.

— siamensis Engl. II, 282.
Scirpodendrum costatum

III, 81.
Scirpus 519. — III, 9, 55,

81. — N. A. II, 291.
— " arenarius III, 80.

— articulatus III, 80.

— australis L. II, 291.
basilaris III, 80.

— blepharolepis III, 80.

— capillifolius III, 80.

— Caricis var. sikkimensis
III, 80.

— chinensis II, 166.

— Ulintoni III, 80.

— compactus Kr. II, 291.

— costatus III, 80.

— criniger III, 80.

— cubensis III, 80.

— cyperoides L. II,

— erectus III, 80.

— filiformis Reich.
291.

— frondosus III, 80.
- gross us III, 80.

— hakonensis Franch. et
Sav. II, 290.

— Hudsonianus (Mchx.)
lemald II, 175.

— humillimus III, SO.

— Isolepis III, 80.

— lacustris L. 620, 718.

— littoralis III, 80.

— macranthus III, 80.

— macrostachys Willd. II,
291.

— membranaceus III, 80.

— nanus III, 80.

— Parlatorii Biv. II, 291.

— petasatus Maxim. II,
290.

— polystachyus III, 80.

289.

II,

Scirpus quinquefarius— Scoparia dulcis.

949

Scirpus quinquefarius III,
80.

— romanus L. II, 291.

— infus II, 172.

— semisubterraneus III,
80.

— sororius III, 80.

— spadiceus III, 80.

— spathaceus III, 80.

— squarrosus III, 80.

— subcapitans III, 80.

— supinus III, 80.

— Tabernaemontani 718.
— II, 291.

— Ternatensis III, 80.

— triqueter III, 80.

— varius III, 80.

— Wichurai Franch.et Sav.
II, 290.

Scirrhia Xke. 115.

— luzonensis P. Henn*
314.

Scitaminaceae III, 16, 133.
Scleranthus -454. — X. A.
II, 356.

— perennis L. III, 321.

— uncinatus II, 99.
Scleria III, 81.

— angusta III, 81.

— biflora III, 81.

— bulbifera III, 81.

— catophylla III, 81.

— corymbosa III, 81.

— cymosa III, 81.
■ — distans 111, 81.

— flaccida III, 81.

— Hookeriana III, 81.

— latifolia III, 81.

— Liebmanni III, 81.

— üthosperma III, 81.

— Mackaviensis III, 81.

— Merkeliana III, 81.

— mitis III, 81.

— Motleyi III, 81.

— multifoliata III, 81.

— myriocarpa III, 81.

— pauciflora III, 81.

— pergracilis III, 81.

— Purdiaei III, 81.

— racemosa III, 81.

Scleria Ridleyi III, 81.
- Roxburghii III, 81.

— stipularis III, 81.

— sumatrensis III, 81.

— testacea III, 81.

— verrucosa III, 81.
Sclerocecis Chre'tienN. GL II,

607.

— pulverosella Chretietv*
II, 607.

Sclerochloa dura P. 116,

320.
Scleroderma leptopodium

Rat. et Rar* 139, 314.

— verrucosum 263.
S.lerolobium N. A. II, 449.

— paniculatum II, 200.
Scleropodiurn Br. cur. 59.

— illecebrum 39.
Scleropteris 591.
Sclerosperma II, 241.
Sclerospora 830.
Sclerotinia 111, 239, 240,

837.

— alni Maul 143.

— Amelanchieris Reade*
240, 314.

— angustior Reade" 240,
314.

— baccarumf Schrat )Rehm
107, 239, 242.

— ßetulae Woron 146, 838.

— bulbornm Wakker 238.

— cinerea III, 621.

— Corni Reade* 240, 314.

— Crataegii P Magn. 240.

— echinophila Rehm 236.

— fructigena Norton 235,
240, 241. — III, 621.

— Galanthi Ludw. 239.

— Soh.nson\i(E-etE.)Rehin
240.

— Libertiana Ruck. 121.

— Mespili Woron. 140.

— Polycodii Reade* 240,
314.

— sclerotiorum 825.

— Seaveri Reh»i 240.

— Tiliae Reade* 240, 314.

— Trifoliorum Erikss- 837.

Sclerotinia tuberosa
iHcdw) Fuck. 229, 837.

— Vaccinii-corymbosi
Reade* 240, 314.

— vesicaria Giesenh.* 314.

— Wisconsinensis Rehm'
314.

Sclerotites brandonianus

275.
Sclerotium 219.

— asarinum Klebahn 239.

— rbizodes Awd. 145.

— Tuliparum Klebahn*
238.

Scolecosporium Fagi Lib.

145.
Scolecotrichum Anacardii

P Henn* 314.

— Dalbergiae P. Heu.
314.

Scolopendrium Adans. II,
806.

— vulgare Sic. II, 652,
737, 738, 739, 748, 760,
768, 797, 808.

Scolopia III, 153, 209, 332.

— N. A. II, 425.

— acuminata III, 209.

— buxifolia III, 209.

— chinensis III, 209.

— — var. Oldhami II L.
209.

— Closii Gagn* III, 209.

— dasyanthera III, 209.

— Gaertneri III, 209.

— rhinantbera III, 209.

— Roxburghii III, 209.
Scolymus arenariusIl,S47.

— maculatus L- II. 256.
Scoparia L. II, 131, 521.

— III, 322. 323. — N. A.

II, 524.

— Aemilii Chod. III. 322.

— annua Cham. III, 322.

— brasiliensis Chod. III,
323.

— divaricata R. E. Fries

III, 323.

— dulcis L. II, 890. —
III. :J22.

950

Scoparia elliptica — Selaginellites.

Scoparia elliptica Cham.
III, 323.

— ericaceae Cham, et
Schldl. III, 323.

— flava var. pinnatifida
Chod. II, 524.

— Hassleriana Chod. III,
323.

— mexicanaü E.Fries III,
322.

— millefoliata II, 524.

— montevidensis R. E.
Fries III, 323.

— neglecta II, 524.

— nudicaulisC'/iorf.III, 322.

— pinnatifida Benth. II,
524.

— pinnatifida Cham- III,
323.

Scopolia III, 479, 557, 584.

— atropoides III, 526.

— carniolica III, 526.
Scopulariopsis communis

Bainier 108.
Scorias paulensis P. Kenn*

314.
Scor^idmm(Schimp)Broth.

58.

— scorpioides 634.
Scorpiurium Schimp. 59.
Scorzonera aristata P. 312.
Scottellia N. A. II, 425.
Scrophularia II, 148. —

III, 59, 328. — N. A. II,
525.

— Bourgaeanai^e.11,525.

— canina II, 617. — P.
158.

— crithmifolia Boiss. II,
525.

— Herminiii/ejmV/. 11,525

— hirta Lowe II, 525.

— — var. ambigua Men.
II, 525.

— hirta X Scorodonia II,
526.

— longifolia.BenM.11,526.

— nodosa L. P. 278.

— oblonga Lowe II, 526.

— provincialis.ß(wii/II,525.

Scrophularia Schousboei

Lge. II, 525.
Scrophulariaceae II, 148,

224, 251, 520. — 111,59,

222, 229.
Scutellaria N. A. II, 438.

— galericulata L. 770. —
III, 35.

— indica var. japonica P.
276.

— linearis Benth. II, 557.

— luzonica II, 162.
Scutinanthe N. A. II, 347.
Scyphellandra Pierrei

Boissieu;* III, 343.
Scyphocephalium Kombo

Warb. II, 929.
Scytopetalaceae II, 250,

527. — III, 329.
Scytosiphon 369.

— lomentarius 347. 369.
Scytothamnus 370.

— australis 370.

— fasciculatus 370.

— rugulosus 370.
Sebacina 107.

— subg. Bourdotia Bres*
314.

— Galzinii Bres* 314.
Sebaea III, 211. - N. A.

II, 428.
Sebastiania III, 208. —

N. A. II, 421.
Seeale 733. — II, 670.

— Cereale L. 650, 745.
— II, 50, 656, 990.

— cornutum III, 432, 612.
Secamone II, 226. — III,

146. — N. A. II, 338.

— bicolor Decne III, 145.

— braehystigma III, 147.

— ligustrifolia III, 146.

— petiolata III, 147.
Sechium edule Sw. III, 820,

821. — III, 197.
Secotium (Elasmomyces)

krjukowense Buchh. II,

100.
Securidaca 560. — N. A. II,

479.

Securidaca longepedun-
culata Fresen. II, 250,
914. — III, 278.

— tertiana Engelh* 560.
Seddera III, 186. — N. A.

II, 398.

Sedum 504. — II, 161. —

III, 5, 189. — N. A. II,
399, 400.

— adenotrichum Wall. II,
556.

— album L. II, 580, 587.

— linearifolium II, 159.

— Rhodiola DC II, 591.

— villosum L. II, 591.
Seetzenia orientalis II,

231.
Seguieria N. A. II, 474.
Selaginella P. B. 573, 574.

— II, 167, 742, 747, 749,

750, 752, 786, 787, 798,

806.

— apus II, 743.

— denticulata II, 743, 744.

— Emiliana aurea II, 799,
808.

— gallica Laurent* 584.

— helvetica Sprg. II, 743,
744.

— inaequifolia II, 750.

— imbricata (Forsk.)
Spring II, 796.

— Kraussiana A. Br. II,
743, 744, 769.

- Martensii II, 743. 744,
750, 759.

— pilifera II, 743.

— Poulteri II, 743, 744.

— rupestris II, 743.

— scandens (P. B) Spring
II, 796.

— selaginoides Link 577.

— spinulosa _R. Br. II,
743, 744.

— uncinata Sprg. II, 784.

— yemensis (Sw.) Spring
II, 796.

Selaginellaceae II, 749.
Selaginellites 573, 619,
574.

Selaginellites elongatus — Septoria foetida.

951

Selaginellites elongatus

Gold. 574.
Selaginoides Boehmer II,

806.
Seligeria brevifolia Lindb.

48.
Selinum Candollii DC- II,

555.
Selliguea Feei II, 754, 766.

— coraiensis Christ* II,
776, 815.

Sematophyllaceae 59.
Sematophyllum (Mitt.)
Jaeg. 59.

— brevicuspidatum Jaeg.
69.

— LaosianumPar.ef.BroM.
52, 80.

Semecarpus Anacardium
L. 508. — II, 225, 852.

— rostrata Val. III, 139.

— Thorelii fl". Lecomte III,
139.

Semele N. A. II, 307.

— androgjoia (X.j Kunth
III, 106. — P. 278.

— — var. laciniata Bornm.
LH, 106.

Semibegoniella C'.DC. N. (J.

II, 265. — III, 149. —
N. A. II, 342.

Semonvillea Gray III, 139.
Sempervivum 504, 697. —

III, 29.

— arboreum II, 957.

— holochrysum III, 187.
Senebiera coronopus II,

261,
Senecio II, 172, 247. —
III, 5, 176, 179, 414. —
N. A. II, 390.

— aconitifolius Turcz. II,
626.

— alatus Wall. II, 555.

— alpester (Hoppe) DC IT,
390.

— arcticus Rupr. III, 174.

— articulatus III, 36.

— balsamitae Muhl. II,
172.

Senecio brachycbaetus

DC II, 390.
■— clivorum III, 57.

— (Jrawfordiae Britton II,
172.

— crepidineus Greene II,
172.

— densiflorus II, 223.

— dileptiifolius Greene II,
172.

— dispar P. 308.

— elegans II, 255.

- ellipticus DC. II, 621.

— incanus III, 56.

— Jacobaea X Eversii II,
390.

— Kirkii II, 262.

— Kleinia III, 36.

— longifolius L. II, 390.

— Mannii III, 181.

— Martinensis Dus. III,
174.

— ■ micanioides II, 255.

— monanthos II, 214.

— multicorymbosus III,
181.

— nudicanlis Buch.-Uam.
II, 55t.

— Petasitis 678.

— prionophyllus Greene

II, 172.

— pseudo-arnicaiess. III,
174.

— rubiginosa Eimer II,
383.

— tenuifolius Burm. II,
390.

— tetranthus DC. II, 555.

— thermarum Bolus III,
174.

— vernalis TT. et K- III,
35.

— Wilsonianus III, 57.

— xanthocephalus Dus.

III, 174.
Senega III, 534.
Senftenbergia II, 762.
Senna III, 555.

— alexandrina Gars. II,
443.

Septobasidium coffeicola
P. Kenn* 139, 315.

— (Noackia) scopiforme
Bat. 159.

Septocylindrium aspidii
Bres. 144.

— bellocense C Mass*
315.

Septogloeum hirudini-
sporum Speg* 315.

— Lycopersici Speg. 107.
Septoria 208, 847.

— Aderholdi Vogl* 104,
274, 315, 820.

— Azaleae 111, 846.

— baccharidicola Speg*
315.

— betulina Passer. 146.

— Bornmülleri Syd* 315.

— Bromi Sacc. 150.

— Brunellae E. et R~. 150.

— bnlgarica Bub. et Malk*
152, 315.

— Bupleuri-falcati Died.
149.

— Cerastii Roh. et Desm.
142.

— chrysanthemella Sacc
146, 847.

— Chrysanthemi AUesch.
847. *

— Chrysanthemi-rotundi-
folii Nmki* 119, 315.

— Cirrosae Sacc* 315.

— Cucurbitacearum Sacc
146.

— cumulata Syd* 315.

— czarnahorica Nmki*
119, 315.

— Dianthi Desm. 145.

— diervillicola E. et E.
142.

— drymidicola Speg* 315.

— dryophila Sacc* 315.

— Eriobotryae Maffei*
103, 315.

— evonymella Passer. 150.

— exotica Speg. 150.

— Fici-indicae Vogl. 315.

— foetida Vogl* 104, 315.

952

Septoria Gei— Shortia.

Septoria Gei Bob. et Desm.
141.

— Hederae Desm- 150.

— Heliantbi E. et K. 141.

— Hellebori Thüm. 150.

— bydrocotylicola Speg*
315.

— ipirangae Speg* 315.

— kalmicola(Sc/iwJ B.etC
122.

— Lamii Passer. 150.

— Leucanthemi 104.

— Limnanthemi Vogl*
104, 315.

— longispora Vogl* 104,
315.

— Lycopersici Speg. 142,
846.

— Muscari 104.

— nigerrima 237.

— Opuntiae Vogl* 104,
315.

— Oryzae Catt. var. bra-
siliensis Speg* 315.

— oxyspora Penz. et Sacc
150.

— piricola Desm. 209, 237,
846.

— polygonorum Desm.
141, 142.

— Populi Desm. 145, 150.

— Rajkoffii Bub. 145.

— Rivirtae Pat* 159, 315.

— rosarnm West- var. lep-
tosperma Speg* 315

— Rubi West. 141.

— rumicis Ellis 142.

— sambucina Peck 141.

— scabiosicola Desm. 150.

— Senecionis "PPesi. 149.

— Stellariae 104.

— syriaca Kab. et Bub*
118, 145, 315.

— Tbeae Cavara 218. —
II, 848.

— Tomates Speg* 315.

— urens Passer 150.
Septosporium Cda- 269.
Sequoia 463, 533, 558, 596.

- III, 3.

Sequoia albertensis Penh*
599.

— brevifolia 556.

— Couttsiae 556.

— gigantea 463, 464, 566.

— Langsdorffii Brongn-
561, 596.

— pectinata Hr. 594.

— sempervirens 463, 566,
683. — III, 62, 69.

— Sternbergü 556.
Serapias III, 117.

N. A. II, 317.

— Alberti III, 111.

— ambigua III, 111.

— cordigera L. II, 317.

— III, 111.

— intermedia III, 111.

— Laramberguei III, 111.

— lingua L. II, 317. —
III, 111.

— longipetala Poll- II,
317. — III, 111.

— meridianalis III, 111.

— micropbylla Ehrh. II,
314.

— neglecta De Not. II,
317. — III, 111.

— neglecta X lingua III,
111.

— occulata III, 111.

— olbia III, 112.

— parviflora Pari II, 317.
Serapiastrum III, 117. —

- N. A. II, 317.
Sericotheca Baf. III, 296.

— N. A. II, 502.
Serjanea II, 621.

— communis Camb. II,
621.

— inscripta Badlk. II, 621.

— leptocarpa Badlk. II,
621.

Serratula III, 5. — N. A.
II, 390.

— coronata II, 575.
Sesamum II, 245. — N. A.

II, 473.

— angolense Wehe III,
271.

Sesamum indicum II, 924..

— Orientale P. 213.
Seseli N. A. II, 539.

— austriacum Wohlf. III,
342.

— Beckii Seefried* III,
342.

— elatum L. II, 539.

— glaueum Beck III, 342.

— glaueum L- II, 539.

— Gouani Koch II, 539.
Seselinia austriaca Beck

III, 342.
Sesbania cassioides G.Don.
III, 56.

— grandiflora II, 831.
Sesleria II, 42. — N. A. II,

299.

— confusa Coincy II, 298.
Sesuvium L- III, 139,

282.
Setaria N. A. II, 299.

— aurea A. Br. III, 87.
— P. 139, 321.

— flava II, 207.

— glauca P. B. II, 852.

— macrostacbya II, 255.

— verticillata P. B. II,.
299.

Seuratia coffeicola II, 848.
Seynesia brasiliensis Speg*
316.

— pulchella Bomm .Bouss.
et Sacc. 144.

Sezannella 631. — III,
333.

— major III, 333.

— minor III, 333.
Shaeria Buxi Engelh* 560.
Shepberdia II, 146. — N.

A. II, 408.
Sherardia N. A. II, 511.
Shima Noronboe II, 166,
Shorea II, 898, 928.

— Gbysbertiana II, 921.

— hypoebra II, 820.

— Pinanga Sehe ff. II, 921.

— robusta Gaertn. II, 224,
849, 851.

Sbortia N. A. II, 405.

Nhortia uniflora — Sisyuibriuni Vaseyi.

953

Shortia uniflora III, 2S4.
Sibbaldia 479, .104, 505. —
III, 296, 299.

— erecta Pursh II, 489.
vor. parviflora Bunge

II, 489."

— procumbens II, 214,
591.

Sibbaldiopsis III, 296.

Sibiraea 478.

Sida II, 190, 852. — III,

58, 251. — N. A. H, 456,

457.

— cordifolia P. 281.

— rbombifolia L. 457. —
II, 166, 904.

Sideritis N. Ä. II, 438.

— montaua II, 140.
Sideroxylon II, 610, 898.

— N. A. II, 518.

— brevipes Bak. II, 898.

— costatum II, 262.

— ferrugineum II, 166.

— novo-zelandicumi/ejHsi.
II, 264. — III, 313.

Siebera Billardieri var.

cuneata ßenth. II, 539.
Sieglingia decumbens (L.)

II, 578. — III, 93.
Sieversia N. A. II, 503.

— montana P. 309.
Sigillaria 558, 573, 578,

620.

— Boblayi 568.

— camptotaenia 618.

— elegans Brongn. 580.

— mamillaris Brongn. 580.

— Schlotheimi 611, 638.

— scutellata Brongn. 544,
580.

Sigillariopsis sulcata Scott

544.
Sigillariostrobus Gaudryi

618.
Sigmatostalix X. A. II,

317.
Sigmoidionvyces 233.
Süene 454, 504. — II, 42,

159. —III, 168. — X. A.

II, 356.

Silene acaulis L. II, 356,
591.

— — var. vulgaris II, 356.

— annulata Thore II, 356.

— flammulaefolia II, 251.

— inflata Sw. III, 170.

— lazica II, 154.

— linicola II, 140.

— longiscapa A. Kern. II,
356.

— nutaas L. II, 568. —
III, 35, 169.

— pendula III, 168.

— — var. compacta III,
168.

— quinquevulnera II, 261.

— rubella Suffren II, 356.
Silicoflagellata 346, 347.
Siliquamomum III, 134.
Silphion III, 178.
Silphium Hornemanni 681 .

— perfoliatum II, 575.
Silvianthus III, 221.
Simaba valdivia III, 510.
Simaruba III, 330.

— amara II, 822. — III,
510.

— glauca DG. II, 822, 899.
Simarubaceae 428. — II,

527. - III, 217, 219.
223, 330.
Simarubinium 600.

— crystallophorum 599.

— Engelhardti 599.
Simblum flavescens 262.

— gracile 262.

— ■ periphragmoides
Klotzsch 135.

— sphaerocephalum 261.

— texense 262.
Simbuleta X. A. II. 526.
Sinapis 432, 722. — III,

193.

— alba L. 722, 723, 715.

— erecta berbacea II, 352.

— juncea 11, 139.

— nigra II, 138.
Sincoraea Ule X. 0. II,

284. — III, 78. — X. A.
II, 285.

Sinningia Regina Sprague
II, 199. — III, 212.

— Scbiffneri Fritsch III,
53.

Sinowilsonia Hemsl. N. G.

II, 162.
Siolmatra N. A. II, 405.
Siparuna II, 621. - X. A.

II, 462.

— Aplosyce Mart. II, 621.
Sipba polygoni Schout. II,

617.
Sipboneae 328, 357, 380.
Siphonodon III, 223. —

X. A. II, 958.

— celastrinus Griff. III,
168, 442.

Sipbonoglossa X. A. II, 325.

— peruviana Lindau* III,
134.

Siphonostegia II, 165. —

III, 325.

Siphula delicata Elenk*

28.
Sirodesmieae Lindau 268,

269.
Sirodesmium De Not. 269.
Sisymbrium III, 192. —

X. A. II, 404.

— ampbibium Miller II,
404.

— anceps Wahlbg. II, 404.

— Columnae Jacq. II, 404.

— — var. leiocarpum DG.
II, 404.

— flexicaule i»»s. III. 190.

— islandicum Oeder II,
404.

— leptocarpum P. 129.

— longisiliquosum Willk.
II, 404.

— officinale Scop III, 191.

— palustre Foll. II, 4i>4.

— Sopbia L. P. 253.

— strictissimum III. 191.

— subhastatum La<j. II.
4(14.

— terrestre With. II, 404.

— Vaseyi (Coult.) Wals.
II, 183. — III, 193.

9f)4

Sisyrinchiura— Solidago tenuifolia.

Sisyrinchium 445. — III,
99. - - N. A. II, 302.

— alatum 4-45.

— anceps 445.

— angustifolium 445. —

II, 175.

— californicum 445, 446.

— grandiflorum 445.

— montanum 445.

— xerophyllum 445.
Sium longifolium Pursh II,

538.

— Matsumurae H- de
Boissieu II, 538.

Skeletonema II, 637.
Skimmia japonica Thbg.

III, 307.

— Laureola Hook. f. II,
.">.->( >.

Skottsbergia Card. N. 6-
51, 80.

— paradoxa Card* 80.
Sloanea II, 190.

— jamaicensis Hook. II,
899.

Smeringomyces Thaxt. N.
G. 316.

— anomalus Thaxt* 316.
Smilacina P. 312.

— amplexicaulis Nutt. II.
979. — III, 104.

— bifolia II, 147. — III,
584.

— racemosa III, 584.
Smilax II, 223, 242, 821.

— III, 601. — P. 128,
281, 302.

— aspera L. III, 534.

— laevis II, 162.

— Sieboldi P. 280.
- vicaria P. 311.

Smithia N. A. II, 449.
Smodingium argutum III,

140.
Smyrnium perfoliatum III,

340.
Sobralia N. A. II, 317.

— macrantba III, 121.
Soja II, 820.

— hispida Moench 111, 433,
640.

Solanaceae II, 160, 163,
196, 250, 527. — III,
330, 547.

Solandra L. III, 340.

Solanum 458, 499, 503,
504, 743, 805. — II, 140,
161, 201, 570, 610, 621,
625. - III, 5, 59, 331,
332, 413. — P. 293, 309,
313. — N. A. II, 528,
529.

— anodontum Le'v.etVan*

II, 163. — III, 332.

— argenteum 11, 621.

— Aubingense III, 413.

— citrullifolium A. B. III,
332.

— Commersonii Dun. II,
38, 861. — III, 330, 332,
333.

— Dulcamara L. II, 576.

— III, 680.

— etuberosum Lindl- III,
330.

— grandiflorum P. 288.

— jasminoides II, 191.

— latifolium Griseb. II,
529.

— Lycopersicum L. 651,

— II, 570, 620, 859. —

III, 331, 379, 413.

— Maglia Schlecht. III,
330, 331, 332, 374.

— melongena P. 104.

— miniatum II, 137.

— nigrum L. II, 137, 570.

— III, 379, 413.

— nigrum X lycopersicum

II, 529.

— paniculatum P. 277.

— pseudocaspicum L. II,
570.

— Sabini deWild. III, 330.

— Sodomaeum II, 846. —

III, 471.

— tuberosum L. 686, 743,
795, 796, 797, 798, 804.

— II, 13, 14, 37, 38, 52,
662. 684, 690, 861, 862,

957. — III, 330, 331,
471, 683. — P. 203, 206,
209, 210, 211, 214, 217.
218, 220, 855.
Solanum tubingense III,
332.

— vescum II, 255.

— violaceum var. album
II, 255.

— xanthocarpum Schrad.
et Wendl II, 557.

Solaria miersioides P. 321.
Soldanella II, 100. — III,
282.

— hungarica II, 100.
Solea stricta Spreng. II,

546.
Solenia pallido-cinerescens

P. Henn* 138, 316.
Solenophora 380. — N. A.

II, 430.
Solenopora 612.

— compacta Bill. 612.

— gotlandicR Rothpl.* 612.

— jurassica Broivn 612.
Solenoporella Rothpl. N. G.

380, 612.
Solenopsis fugax Ltr. 596.
Solidago P. 297. — N. A.

II, 390, 391.

— alpestris Porter II, 390.

— alpicola Rouy II, 391.

— aspera III, 176.

— bicolor var. lanata Gray
II, 390.

— canadensis L. II, 391.

— Hartmanniana Rouy II,
391.

— lanceolata var. minor
Michoc. II, 391.

— lanata Hook. II, 390.

— lapponica Withering II,
391.

— minuta L. II, 391.

— procera Axt. II, 391.

— puberula var. monticola
Porter II, 391.

— rugosa II, 605.

— serotina Ait. II, 140.

— tenuifolia Pursh II, 391.

Solidago trinervata— Sphaerella Bupleuri.

95c

Solidago trinervata P. 143.

— villosa Pursh II, 391.

— Virga-aurea L. II, 213,
390, 391.

Solorina 15.

— bispora Nyl. 16.

— saccata Ach. 23.
Sommera N. A. II, 511.
Somphoxjdon N. A. II, 462.
Sonchus N. A. II, 391.

— maritimus III, 21.

— oleraceus L. II, 557.
Sonderella 328.
Sophora N. A. II, 449.

— japonica II, 685, 686.

— III, 243, 432.

— platycarpa Maxim. III,
232.

■ — tetraptera II, 262.

— tomentosa II. 220. —
[II, 547.

Sophro-Cattleya III, 112.
Sopubia II, 214.
Sorastrum indicum Ber-
nard* 385.
Sorbana 478, 479.

— assurgens Rehder* III,
56.

— sorbifolia R. Br- II,
626.

Sorbus 504, 799. — II,
100, 157, 582. — III,
356. — P. 161. - N. A.

II, 503.

— Aria Crtz. II, 499. —

III, 377. — P. 247.

— Aucuparia L. 715, 799.

— II, 587, 614. — III,
28, 292, 546. - P. 247,
282.

— chamaemespilus III,
377. — P. 247.

— domestica II, 138.

— hybrida P. 247.

— sambucifolia II, 146.

— torminalis Crtz. III, 28,
293. — P. 247.

Sordaria decipiens Wint.
266.

— vestita Zopf 266.

Sorghum 742. — II, 40,
820, 827, 835, 840, 845,
853, 858, 920. — P.
244.
- fulvum II, 839.

— halepense Pers. II, 829.

— plumosum II, 839.

— saccharatum II, 25.
Sorindeia N. A. II, 32!).
Sorokina Uleana Rehm

147.
Sorosphaera II, 848.

— Tbeae Speschn* 219.

— Veronicae Schroet. 229.
Sorosporium conf'usum

Jackson* 244, 316.

— Ellisii Wint. 244.

— ilagellatum Sgd. et Butl
147.

— Scabies Berk. 825.

— Tembuti P. Henn* 139.
Soulameeae III, 223.
Souroubea III, 251. —

N. A. II, 457.
Southbya 39.
Spadiciflorae III, 16.
Spanantbe III, 341.
Sparganium II, 627.

— affine 594.

— americanum II, 175.

— diversifolium II, 175.

— eurycarpum II, 172.

— ramosum P. 299.
Spartina III, 242.

— brasiliensis Raddi II,
832.

— stricta III, 242.

— Townsendii 111,95,242.
Sparfcium 111, 238.

— junceum L- II, 44. —
III, 432, 547, 601.

— scoparium III, 28.
Spathicarpa 531, 532.
Spathiphyllum Schott II,

121, 122. — III, 76. —
N. A. II, 284.

— cannifolium II, 122.

— commutatum II, 122.

— Friedrichsthalii Engl.
II, 284.

Spathiphyllum lanceola-

tura C. Koch II, 284.
Spathoglottis N. A. II, 317.

— aurea III, 114.

— Colmani III, 114.
Spatholobus III, 24.

— Roxburghii II, 225.
Spathularia 122.
Spathyoma 532.
Specularia II, 585.

— perfoliata II, 583, 584,
585.

— Speculum II, 351.
Spegazzinia Coffeae P.

Renn* 139, 316.
Speira Cda. 269.
Spelaeopogon Sommieri

Borzi* 338, 385.
Spencerites 583, 630. —

II, 763.
Spennera martinicensis

Naud. II, 457.
Spergula arvensis L- 454.

— II, 137, 598.
Spergularia 454. — III, 22.

— Dillenii Lebet II, 626.
Spermatochnus 329.
Spermatoloncha Speg. N. 0.

130, 316.

— maticola Speg* 316.
Spermolepis N. A. II, 539.
Sphacelaria 369.

— fusca 330.
Sphaceloma ampelinum

214, 821.
Sphacelotheca 134.

— inflorescentiae (Trel.)
Jaap 144.

— Polygoni-alpini Cruch*
246, 316.

— Reiliana (Kuehn) Clint.
244, 831.

— Sorghi (Lk.) Clint, 244,
831.

Sphaeralcea N. A. II, 457.
Sphaerantbera lichenoides

378.
Sphaeranthus N. A. II, 391.
Sphaerella Bupleuri Rota-

Rossi* 316.

950

Sphaerella Cydoniae — Sphagnuin tumidukun.

Sphaerella Cydoniae Vogl*
104.

— Fragariae Sacc. II, 79.
- frenumbensis Speg*

316.

— Iridis Aiod. 148.

— latebrosa Cke. 148.

— mutisiicola Speg* 310.

— Polypodii luch 108.

— Populi Awd. US.

— rhoina Sacc" 148, 316.

— sentina 237.

— Usteriana Speg* 316.

— Vogelii Syd.* 148, 316.
Sphaeria barbirostris Duf-

258.

— cooptera 822.

— ■ malorum Berk. 267.

— riccioides Bolt. 107.
Sphaeriaceaell3, 119, 123,

138.
Sphaerites carbonarius

Schuster" 617.
Sphaerobolaceae 123.
Sphaerobolus stellatusllO.
Sphaerocodium 612.

— Bornemanni Rothpl.
380, 612.

— gotlandicumEo///pL380.
612.

Sphaerocreas javanicum

v. Höhn*- 258, 316.
Sphaerocystis Schroeteri

339.
Sphaeromyces rnaticola

Speg* 316.
Sphaeronema flavo-viride

Fuck 259.

— Senecionis Syd. 149.
sphaerophorus 15.
Sphaeropsideae 113, 119,

126, 128, 133, 138, 140,
161, 266, 815, 846.
Sphaeropsis 846.

— Caryae C. et E. 141.

— fuscescens (Fr.) Starb.
271.

— Mali (West.) Sacc. 142.

— malorum Berk. 209,
266, 267, 272, 846.

Sphaeropsis Malorum Beck
782.

— Pandani P. Herrn* 316.

— Puttemansii P. Henn*
316.

— Visci Sacc. 150.
Sphaerosoma Janczevv-

skianum Rouppert* 316.
Sphaerospermum 548.
Sphaerostilbe coccophila

Tut. 200. — II, 848.

— Cordiae Rehm* 146,
316.

— intermedia Ferd. et
Wge* 316.

— repens Berk. et Br.
138.

Sphaerostigma IT, 186.
Sphaerotheca 209, 265.

— Castagnei Le'v. 145, 815.
- II, 79.

— Euphorbiae 841.

— Humuli (DC) Burr.
141, 235, 241, 838, 839,
843.

— Humuli fuliginea
(Schlecht.) Salm. 141,142.

— mors-uvae Berk. 100,
114, 116, 119, 136, 202,
207, 211, 235, 236, 813,
840, 841, 842.

var. japonica Salm*

136, 316.

— phytoptophila III, 337.
Sphaerotilus natans II,

964.
Sphaerulina paulistana
Speg* 316.

— plantaginea Rehnv'' 146,
316.

— Pehmiana Jaap* 144.

— yerbae Speg* 316.
Sphagnaceae 36, 42, 43,

49.
Sphagnum 45, 51, 67,
573, 594, 621, 641. —
II T, 35.

— acutifolium Ehrh- 69.

— affine Ren. et Card.
47.

Sphagnum Aloysiae
Sabaudiae Negri* 89.

— Apollinairei Bar. et
Warnst* 90.

— auriculatum Schpr. 70.

— bavaricum 41.

— ceylonicum Mut. 69.

— connectens Warnst, et
Card* 90.

— contortum 67.

— cuspidatum Ehrh. 69.

— falcifolium Roth* 90.

— fallax v. Klinggr. 41.

— Faxoni Wamst* 48,
67, 90.

— Gedeanum Dz. et Mlk.
69.

— Gravetü Russ. 67.
■ — inundatum 67.

— javanicum Warnst * 90.

— livonicum (Russ.) Roth.
90.

— Mehneri Warnst* 90.

— molle Sidl, 40.

— obesum Warnst. 69.

— platyphyllum 67.

— pseudocontortum Roll
67.

— pseudorecurvum Roll*
90.

— Pylaiei 67.

— quinquefarium 68.

— riparioides Warnst* 90.

— Roellii (Schlieph.) Roth
90.

— Rothii Roll* 90.

— rubellum Wils. 47.

— rufescens Br. germ. 47.

— ruppinense Warnst* 90.

— ruwenzorense Negri*
90.

— Salvanii Warnst* 90.

— Setchellii Warnst.'* 90.

— subbalticum Warnst.*
90.

— subsecundum 67.

— tenellum Schpr. 47.

— teres 48.

— tosaense Warnst* 90.

— tumidulum Beseh. 53.

Sphaleroruyces Latonae— Spiranthes aestivalis.

957

Sphaleromyces Latonae

Thaxt.* 317.
Sphenasterophyllites Ster-

zel N. G. 625.

— Diersburgensis Sterzel*
625.

Sphenolobus exectus
(Schmid.) Steph. 69.

var. spectahilis Schffn.

69.

— Hellerianus(JVecs)£>7ej9/t.
69.

— — var. compactus
Lindb 69.

— Michauxii (Web. fil.)
steph. 69.

— politus (Nees) Steph. 69.
■ — — var. medelpadicus

Arn. 69.

— — var. riparium Bryhn
69.

— — fa- intermedia 69.

— saxicolus (Schrad.)Steph.
69.

Sphenopeltis N. A. II, 300.

— nitida snbsp. glabra
Senk II, 300.

— obtusata subsp. lobata
Scribn. II, 300.

— — subsp. pubescens
Scribn. II, 300.

— pallens subsp- major
Scribn. II, 300.

Sphenophyllum 556, 586,
613, 630, 637.

— emarginatum 618.

— fertile 619.

— Gehleri Zalessky* l>37.

— majus II, 758.

— myriophyllum 568.

— Kageli 638.

— oblongifolium 625, 638.

— saxifragaefolium 637.

— Schlotheimi 638.

— tenerrimum 610, 611,
637.

— Tboni Mohr 638.

— trichomatosum610, •>:!?.
Sphenopteridae 613.
Sphenopteridium 613.

Sphenopteris 545, 557,
55S, f)S2. 607, 608, 613.
636.

— Andraeana 546.

— bermudensiformis 546.
1507.

— Bobdano\vicziifa/.; 638.

— Baeumleri 546, 638.

— Condrusorum 611.

— Corneti 610.

— divaricata 576.

— Dumonti 610.

— elegans 545, 607.

— Falkenhaini 546.

— flaccida 611.

— fragilis 546.

— germanica 569, 61 S.

— Hoeninghausi 546, 557,
608, 625.

— Larischi 546, 638.

— Linkii 546.

— latifolia 572.

— Laurenti 546.

— Mantelli 607.

— myriophyllum 638.

— obtusiloba 546.

— Sauveuri 556, 638.
Schillingsii 572.

— subdivaricata Sterzel*
625.

— subelegans Sterzel* 625.

— sublanceolata Sterzel*
625.

— Teiliana Kidst. 543.

— trifoliolata 546, 572.

— trigonophylla Behrcnd*
546.

Sphenostigma N. A. II, 302.
Sphenozamites 579, 613.
Sphinctacanthus N. A. II,

325.
Sphinctrina microeepbala

Nyl. 23.
Spigelia N. A. II, 451.

— marylandicaL.III, 541,
648. "

Spilan thes 361, 527. — II,
130. — III, 179.

— oleracea Jacq. 527. —
III, 184, 662.

Spilonema 15.

Spinacia II, 656. — N. A.

II, 35!).

— oleracea III, 172, 359.
— P. 253.

Spinalia 233.

Spinellus 232.

Spiraea 478. — II, 488. —

III, 296, 298.

— Aitchisoni III, 299.

— americana Steud. II,
488.

— argentea L. f. II, 502.

— arguta III, 299.

— Aruncus var. herma-
phrodita Mich. II, 488.

— bracteata III, 299.

— Bumalda III, 299.

— canescens D. Don II,
556.

— cantoniensis P. 282.

— chamaedryfolia P. 117,
278.

— discolor Pursh II, 502.

— — var. dumosa S.
Wats. II, 502.

— filipendula L. P. 305.

— glutinosa (Rydb.) II,
489.

— Hendersonii Piper II,
497.

— japonica III, 299.

— lanceolata P. 286.

— Lindleyana III, 296.

— lucida X Menziesii III,
294.

— parvifolia 480.

— pyramidata III, 294.

— salicifolia III, 296.

— sorbifolia 694. — II,
706.

Spiraeanthemum X. A. II,
405.

— samoense A- Gray 458.

— II, 616.
Spirangium 612.
Spiranthes Richard II, 5S2.

— III, 118. — X. A. II,
318.

— aestivalis III, 1 12.

958

Spiranthes anioena — Stagmatopbora ceanothiella.

Spiranthes amoena Spreng.
II, 318.

— australis Lindl. 164. —
II, 318.

— var. pudica Lindl.
II, 318.

— autumnalis III, 112.

— crispata Zoll- et Morren
II, 318.

— densa A. Rieh. II, 318.

— flexuosa Lindl. II, 318.

— gracilis II, 170.

— longispicata A-Riclt. II,
318.

— Novae-Zelandiae Hook,
f. II, 318.

— parviflora Lindl. II,
318.

— pudica Lindl. II, 318.

— RomanzowianaIII,112.

— strateumaticaÜMdMI,
308.

— Wrightiana Lindl. II,
318.

Spiridens 51.
Spirillum II, 965.

— giganteum II, 964, 965.
Spirochaeta Balbianii II,

964. 965.

— buccalis II, 964, 965.
Spirodela polyrrhiza II,

242.
Spirogyra 333, 355, 362,
363, 667, 733, 786. —
II, 665. — III, 591, 592.

— communis 362.

- exilis West* 385.

— jugalis 362.

— nitida 335, 363.

— orientalis West* 385.

— quadrata 362.

— triformis 363.

— varians 335.
Spironemafragrans 11,559.

— III, 78. "
Spirorbynchus II, 156.
spirotaenia raphidioides

Bernard* 385.
Splachnobryum ro Stratum
Broth. et Par. 56.

Splachnum ampullaceum

47.
Spondias lutea L- II, 102,

899.

— purpurea II, 822.
Spondylocladium Mart-

268.

— atrovirens Harz 108,
122, 852.

— xylogenum A. L. Sm*
108, 317.

Spongipellis luzonensis
135.

— stramineus Pat* 140,
317.

Spongospora Scabies
Massee 202.

— Solani Brunch. 267, 825.
Sporidesmium hypoder-

mium Niessl 822.

— putrefaciens 120, 273.

— Solani 825.
Sporledera palustris Hpe.

47.
Sporobolus N. A. II, 300.

— airoides II, 839.

— centrifugus Nees III,
87.

— festivus Höchst, var.
stuppeus Stapf III, 87.

— fimbriatus Nees III, 87.

— indicus R. Br. III, 87.

- Lindleyi II, 839.

— octenoclados II, 838.

— pectinatus Hack. II, 253.

— — var. coloratus Hack*
II, 253.

- pulchellus II, 838.

— pungens Kth- III, 87.

— Rehmanni Hack. III,
87.

— subtilis Kth. III, 87.
Sporocybe Fries 270.

— philippinensis P.Henn*
317.

Sporodesmium Link 269.
Sporodinia 232, 233.

— grandis 231.
Sporonema Robiniae Sacc*

317.

Sporoschisma Berk. et Br.
268.

— Juniperi Lind* 317.
Sporoschismeae 268.
Sporotrichum anthophi-

lum 272.

— Beurmanni 151.

— fumosellum Bres* 119,
317.

— globuliferum Speg. 199.

— Poae Peck 272.

— quereuumf Thihn.)Shear
142.

Spraguea III, 281.
Spumaria alba (Bull.) DC-

143, 230, 824.
Squamaria 15.
Squamirliumbiformefi/^e^

Broth. 54.
Stachannularia tubercu-

lata 618.
Stachylidium bicolor Link

266.
Stachyphrynium III, 108.
Stachyotaxus Nath. N. G.

592, 593.

— elegans Nath* 593.
Stachys N. A. II, 438, 439.

— annua L. 593.

— densiflora Benth- II,
439.

■ — officinalis III, 9.

— palustris L. II, 559. —
— III, 25, :::».

— silvatica L. 521. —
III, 9.

Stacbytarpheta III, 59. —
P. 281. — N.A. II, 545.

— indica Vahl. 458.
Stachyuraceae III, 333.
Stackhousia III, 219.
Staganospora Crini Bub.

et Kab* 118, 145, 317.

— Desmonci P. Henn*
317.

— Fragariae Br. et Har.
150.

— yerbae Speg* 317.
Stagmatophora ceanothi-
ella Cosens* II, 608.

Stahlianthus— Stenopteris.

959

Stahlianthus 111, 134.

— Thorein III, 134.
Stangeria 453.

— paradoxa 453. — II,
240.

Stanhopea II, 583. — P.
283, 284, 308.

— oculata Lindl. II, 583.
— III, 113.

Stapelia II, 247, 250.
III, 146. — N. A. II,
338.

— Bayfieldii III, 146.

— bella III, 146.

— flaviformis III, 146.

— gigantea III. 29, 146.

— glabriflora III, 146.

— Hanburyana III, 146.

— hirsutarar.unguipetala
III, 146.

var. depressa III,

146.

— longidens III, 146.

— olivacea III, 146.

— Pillansii III, 146.
Staphylea Bumalda S.etZ-

III, 333.

— colchica II, 154.

— pliocenica Kink* 561.
Staphyleaceae III, 219,

223, 333.
Statice N. A. II, 477, 478.

— arborea II, 149. — III,
274.

— arbuscula II, 166.

— Armeria Hook- II, 477.

— Preauxii III, 274.

— sibirica Ledeb. II, 477.
Stauntonia III, 230.
Staurastrum 350.

— armatum Play fair* 364,
385.

— aureolatum Playfair*
364, 385.

— Burkillii West* 385.

— calodermum West* 385.

— capitellatum WesV* 385.

— compacturn West* 385.

— conipsobrachiatuui
West* 385.

Staurastrum diengianum
Bernard:''' 385.

— disparatum West* 385.

— Elyanum Bernard* 385.

— Ernstii Bernard* 385.

— Evermanni Clark* 385.

— fontense Play fair- 364,
385.

— f ormosum Bernard* 385.

— inflatum Bernard* 385.

— Joshuae Bernard* 385.

— gyratum West* 385.

— mansangense West*
385.

— monticulosiforme West*
385.

— parallelum West* 385.

— Prainii West* 385.

— protectum West* 385.

— subindentatum West*
385.

— tjiomenseI?eraard*385.
Staurochaete 128.
Stauroneis anceps Ehrby.

II, 630, 641.

— legumen Kütz. 11,641.

— phoenicenteron Ehrby.
II, 630, 635, 640.

Staurophoma v.Höhn. N. G.
128, 317.

— Panici v. Höhn* 128,
317.

Stauropsis N. A. II, 318.
Stauropteris Binney 549,
550.

— Burntislandica Bertr*
550, 620.

— Oldhamia 549, 630.
Staurothele Ambrosiana

var. orbicularis Mass. 17.
Stegia fenestrata (Rob.)

Rehm 144.
Steiniella Bernard N. 6.

348.

— Graevenitzii Bernard*
385.

Stelis N. A. II, 318.
Stellaria 454. — II, 14:).
- III, 82, 169. - N. A.
II, 357.

Stellaria graminea L. II,
598. — III, 9.

- Holostea L. II, 598.

- Jamesi Torr. III, 169.

— Kotschyana P. 321.

— longipes Goldie III,
169.

— media Cyr. II, 261, 556,
587, 598, 601. — III,
168, 170.

— nemorosum L- 521.
pubera Mchx. III, 169.

— subvestita Greene II,
172.

■ — uliginosa Murr. II, 591.

— umbellata Turcz. III,
169.

Stellariopsis III, 296, 299.
Stellera Chamaejasme II,

214.
Steloxylon Ludwigii

Stenzel 552.
Stemodiopsis N. A. II,

526.
Stemonitis f usca Rotli 143.

— maxima Schwein. 125.
Stemonurus N. A. II, 435.
Stemphylium Wallr. 269.
Stenocarpidium C. Müll.

59.
Stenochlaena II, 766, 792.

— (Lomaiiopsis) dubia
v. Aid. v. Ros.* II, 781,
815.

— guineensis (Kuhn)
Undertv. II, 794.

— latiuscula Maxon* II,
790, 815.

— sorbifolia II, 790.
Stenocline II, 227.
Stenomesson X. A. II, 281.
Stenospermatinm Schott

II, 121, 122. — HI, 76.
- X. A. II, 2S4.

— angustifolium 11, 122.
Stenolobium III, 153. —

N. A. II, 344.
Stenophyllus LH, 81.

N. A. II, 291
Stenopteris 622

960

Steiiotaphrum glabrum — Stilbella Theae.

Stenotaphrum glabrum II,
836.

— subulatum II, 207.
Stephanandra flexuosa

842. — P. 134, 316.
Stephania III, 252, 253.
Stephanodiscus astraea II,

633.

— Hantzschii var. pusillus
Grün. II, 636, 640.

— Niagarae Ehrbg. II,
630.

Stephanosphaera 360.
Stephanotis floribunda
Brongn. III, 147, 148.
Stephegyne III, 575.
Stephodiplosis Tav. N. Gr.

II, 624.

— Lanneae Tav* II, 624.
Sterculia II, 190,621,622,

899, 904. — N. A. II,
530.

— acuminata P. B. III,
429.

— Alexandri III, 333.

— Barteri II, 905.

— cinerea II, 234.

— colorata II, 224.

— diversifolia II, 851.

— platanifolia L. III, 333.

— tragacantha II, 235.
Sterculiaceae 428. — II,

190, 200, 250, 529. —

III, 55, 58, 218, 225,
333.

Stereocaulon Schreb. 13,
15.

— alpinum Laur. 23.

— antarcticum Wa?m'o 21.

— condensatumPZo/fm.23.

— nanum Ach. 23.

— tomentosura Fr. 23.
Stereochlaena Hackel N.G.

N. A. II, 300.
Stereodon (Brid.) Mitt.
51, 59.

— arcuatus Lindb. 577.
■ — clarescens Mitt. 76.

— cupressiformis (L.)
Brid. 54.

Stereodon denticulifolius
(C Müll.) Broth. 53.

— luzonensis Broth* 80.

— micro-alaris Broth. et
Par.* 52, 80.

— Mayrii Broth. 76.

— piligerus Broth- et Par*
52, 81.

— tonkinensis Broth. et
Par:" 52, 81.

Stereodonteae 59.
Stereohypnum (Hpe-) 59.
Stereophyllum 51.

— guineense Par. et Broth.
56.

— Pobegaini Broth.et Par.*
56, 81.

— rhynckostegioides
Broth. et Par* 56, 81.

Stereospermum pinnatum
Rolfe II, 344.

— qnadripinnatum Rolfe
II, 344.

Stereum 107, 118.

— bicolor Fr. 147.

— campaniformePa£.*140,
317.

— candidum Seim-. 147.

— hirsutum (Willd.) 145.

— Lepra B. et Br. 259,
277.

— rugosum Pers. 111, 836.

— spadiceum Fr. 141.

— sparsum Berk. 259.

— sparsum B. et Br. 259.

— venosulum P Kenn*
138, 317.

— versicolor (Swartz) Fr-
141.

Sterigmatocystis 690.

— carbonaria 201.

— fusca Bainier 201.

— insueta Bain* 266, 317.

— lutea Bainier 201, 853.

— nigra v. Tiegh. 183, 201,
270.

— subfusca Johan- Olsen
201.

Steriphoma paradoxa II,
82. - III, 166.

Sterzelia Steinmanni

(Sterzel) Handlirsch 625.
Stevia N. A. II, 391.

— grandidentata Seh. Bip.
II, 391.

— Rebaudiana Bernd. II,
204.

Stewartia monadelpha S.

et Z III, 334.
Stiburus alopecuroides

Stapf III, 87.
Sticbogloea 348.
Sticta 15, 16.

— anthraspis Ach. 22.

— (Stictina) Elmeri
A. Zahlbr* 28.

Stictideae 127.
Stictina 15.
Stictis bambusella
v. Höhn.* 128, 317.

— fimbriata Schw- 149.

— Panizzei De Not. 105.
Stictodiscus quadrigonus

Pant* II, 645.

— Paxii Pant.* II, 645.
Stifftia chrysantba III,

175.
Stigmaria 555, 634, 635,
637.

— fieoides 635. 639.
Stigmatea Mespili 846.

— Robertiani Fr. 146.

— Rumicis (Desm.) Schroet.
148.

Stigmatidium crassum

Duby 24.
Stigmatocalyx radicans P.

301.
Stigmatodendron 622.
Stigmella Le'v. 269.
Stigonema 340.
Stilbaceae 269.
Stilbella Lindau 259, 269.

— Heveae II, 944.

— Melastomataceae P
Renn* 317.

-- pezizoidea P. Renn*
317.

— Theae Bernard* 133,
317. — II, 848.

Stilbocarpa— Styrax.

961

Stilbocarpa 519.

— polaris III, 141.
Stilbohypoxylon 131.

— Rehmii Theiss* 317.

Strelitzia 459, 460, 468. —

II, 243.
— angusta Thbq. 459. —

III, 108.

130, 317.

— yerbae Speg* 317.
Stilb um Tode 269.

— Heveae Zimm. 135.

— leucocephalum Berk. et
Curt. 292.

— nanum Massee 219. —
II, 848.

— sphaerocephalum Mass.
108.

— ström ati cum Berk. 128,
317.

Stillingia II, 418. — III,
208. — N. A. II, 421.

— acutifolia P. 309.

— eglandulosa A. Eich.
II, 418.

— — var. microphylla II,
418.

— sebifera II, 820, 821.
Stilophora 329.
Stimpsonia C. Wright II,

157. — III, 284.

— chaemaedryoides C.
Wright III, 284.

Stipa II, 839. — N. A. II,
300.

— Dregeana Steud. III, 87.

— hirtiflora Hack. III, 87.

— humilis II, 103.

— hystriciana II, 841.

— leptostachya II, 841.
Stipularia N. A. II, 511.
Stixis III, 165.
Stokesia cyanea L'He'rit

III, 183.
Stokesiella hemm. N.

342.
Strasburges III, 222.
Stratiotes II, 627.

— aloides L. 454
35, 97.

— elegans Reid* 609.
•Streblonema stilophorae

Crouan 345.

Stilbopeziza Speg. N. G. Strempeliopsis III, 59. —

N. A. II, 332.

— arborea Urb. II, 899.
Streptanthus N. A. II, 404.
Streptocalyx N. A. II, 285.

— angustifolius II, 200.
Streptocarpus Cooperi

Clarke III, 212.

— Wendlandii 766.
Streptolirion III, 4. —

N. A. II, 285.
Streptotheca tbamensis

Shrubsole II, 634.
Striatella interrupta

(Ehrbg.) Heiberg II, 641.
Strickeria mate Speg.* 317.
Striga N. A. II, 526.

— orobanchoides Benth.
II, 526.

Striphnodendron Barbati-
anum P. 289.

Strobilantbes N. A. II, 325,
326.

— pentstemonoidesilnrfers.

II, 555.
Strobilites 622.
Strobilomyces 124.
Stromatographium v.Höhn.

N. G. 128, 317.

— stromaticum (Berk.) v-
Höhn* 317.

Stromatopteris II, 767.
Strongylodon N. A. II,

459.
Strophanthus II, 892. —

III, 141, 506, 533, 578,'
579, 621. — N. A. II,
332.

— Eminii Asch, et Pax
III, 141.

— hispidus DC II, 233.
— III, 506.

— Kombe II, 892.
Stropharia Fries 124.

— bilamellata Peck 125.

— peronata Massee* 317.

li

III,

Stropharia umbonata

Massee* 317.
Struthantus N. A. II, 453.

— III, 247.

— marginatus II, 847.
Struthiopteris II, 765.

— fragilis II, 737.

— germanica II, 739, 755,
788, 799, 808.

— pennsylvanica II, 755.
Strychnos 441. — II, 332.

— III, 59, 245, 456,
465, 555. — P. 288. —
N. A. II, 451.

— aculeata Soler. III, 535.

— Bakanko II, 715. —
III, 456, 564.

— Ignatii Berg III, 564.

— nux-vomica L. III, 564.

— potatorum L. III, 564.

— spinosa III, 564.
Stuartia Malachodendron

III, 334.

— virgiuica Cav. III, 49.
Stylidiaceae 449. — II,

120, 530, 580.
Stylidium II, 120, 580. —
N. A. II, 531, 532.

— breviscapum II, 532.

— debile var. paniculatum
II, 256.

— Lehmannianum Sond.
II, 531.

— maitlandianum II, 255.

— reduplicatum Benth. II,
531.

— rupestre Benth. II, 531.

— rupestre Pritzel II, 531.

— setigerum DC. II, 531.
Stylisma II, 170.
Stylobasium 479. — III,

222.
Stylochiton II, 242.
Stylogyne A. DC III,

259.
Stypocaulon 369.
Styracajeae II, 532. —

III, 221, 222, 334.
Styrax II, 224, 820. — 1X1,

221.

Botanischer Jahresbericht XXXVI (1908) 3. Abt. [Gedruckt 19.2. 12.)

61

962

Styrax Obasia — Synalissa.

Styrax Obasia S. et Z. III,

419.
Stysanus microsporus Sacc.

144.

— Stemonitis (Pers.) Cda.
203.

— yerbae Speg.* 317.
Suaeda 667.

— maritima (L) Dum- P.
306.

Sublepidophloios Sterzel
N. G. 625.

— Hagenbachensis Sterzel*
625.

— lepidodendroides Ster-
zel" 625.

Subularia II, 130.

— aquatica L. II, 580.
Succisa pratensis Mnch.

II, 591.
Succowia L. III, 193.
Surianeae III, 223.
Surirella 349. — II, 639.

— anceps Lew. II, 640.

— bifrons (Ehrenb.) Kütz.
II, 638, 645.

— biseriata (Ehrbg.) Breb.
II, 630, 641.

— calcarata Pfitzer II,
637.

— CarnegieiPa?i£.*II,645.

— granulata Oestrup* II,
638, 645.

— elongata Lemm. II, 637.
- gemma II, 637.

— gracilis Grün. II, 640.

— lanicostata Oestrup* II,
638, 645.

— ovalis II, 630.

— pseudocruciata M. P.

II, 641.

— spiralis Kütz. II, 630,
640.

— striatula II, 637.

— tenera Greg. II, 630.
.Sutera grandiflora Hiern.

III, 321.

— stenophylla Hiern. III,
321.

Suttonia III, 260.

Suttonia divaricata II,

262.
Swartzia II, 622. — III,

58, 234. — N. A. II, 449.

— decipiens III, 601.

— inclinata 43.

— montana (Lam.) Lindb.
577.

— stipulifera Harms II,
622.

— triphylla Griseb. 11,449.
Sweetia III, 234. — N. A.

II, 449.
Swertia N. A. II, 428.

— bimaculata Hook. f. et
Thoms. II, 555.

— Chirata Buch. II, 555.

— purpurascens II, 225.

— tonglinensis II, 225.
Swietenia Mahagoni L.

II, 67, 900.
Swietenieae III, 223.
Swintonia N. A. II, 329.
Swynnertonia Moore N. G.

N. A. 338, 339.

— cardinea III, 145.
Symbiezidium laceratum

Evans* 89.
Symmeria II, 622.
Sympbogyna Aloysii Sa-

baudiae Gola* 89.

— Sellae Gola" 89.
Symphonia 541.

— clusioides Rah. 541. —
II, 921.

— fasciculata Baill. 541.

— II, 921.

— globulifera L. f. 541. —
II, 921.

var. africana II, 236,

898.
Symphoricarpus II, 353.

— III, 167.

— orbiculata P. 117, 278.

— racemosa L. III, 458.

— P. 118, 278.
Sympbosira Preuss 269.
Symphyostemon N. A. II,

302.
Symphytum N. A. II, 34(1.

Symphytum asperrimum
II, 40. — P. 281.

— officinale L. 681, 682.

II, 137, 617.

— officinale X tuberosum
II, 346.

— tuberosum II, 558.
Symplectromyces Thaxt.

N. G. 318.

— vulgaris Thaxt.* 318.
Symplocaceae II, 210, 532.

— III, 219, 221, 334.
Symplocarpus II, 123.

— foetidus II, 123. — III,
76.

Symplocos II, 210. — N. A.
II, 532.

— adenophylla II, 210.

— Ahernii II, 210.

— ciliata II, 210.

— confusa II, 210.

— crataegoides Harn. III,.
334.

— Cumingiana II, 210.

— depauperata II, 210.

— ferruginea II, 210.

— floridissima II, 210.

— Foxwortbyi II, 210.

— japonica.DC 111,334. •
P. 134, 290.

— luzoniensis II, 210.

— montana II, 210.

— myrtacea S. et Z- III,
334.

— neriifolia S- et Z- III,
334.

— oblongifolia II, 210.

— palawanensis II, 210.

— patens II, 210.

— polyandra II, 210.

— prunifolia S. et Z. III,
334.

— pseudospicata II, 210.

— racemosa Roxb. II, 210.

— spicata Roxb. II, 210.

- III, 334.

— theaeformis L. II, 613.

— Villarsii II, 210.
Synandrae III, 16.
Synalissa 15.

SyDaplocarpus — Tapesia hydrophila.

963

Svnaplocarpus Saiisb. III,

76.
Syncardia Unger 552
Syncephalastrum 233.
Syncephalis 233.
Synchytrium 171. — II,

969.

— aureum Schroet- 100.

— decipens Farlow 141,
171.

— Phegopteridis JuellöO.

— Puerariae Miyabe 231,
829.

— taraxaci De By. et Wor.
144.

Svnedra IT, 631, 635, 640.

— acus Kütz. II, 630, 633,
634. 635, 636, 640.

— capitata Ehrbg. II, 630,
634.

— delicatissimaTT. Sm. II,
634. 640.

— lunaris Ehrbg. II, 640.

— radiansÄete.11,635,640.

— revaliensis Lemm. II,
640.

— tenera W. Sm. var. lan-
ceolata Oestrup* II, 638,
645.

— ulna (Nitzsch .) Ehrbg. II,
630, 633, 635, 638, 640.

— — var. danica Kütz. II,
646.

— Vaucheriae var. pusilla
Kütz. II, 640.

Svngonanthus III, 85. —

N. A. II, 292.
Syngramma II, 766.

— angusta Copel.* II, 782,
815.

— (Dictyogramme) Boer-
lageana v. Aid. v. Ros* II,
781, 808, 815.

— cartilagidens (Bah.)
Diels. II, 781.

Synnema N. A. II, 326.
Synura uvella 367.
Syringa 692, 759. — II,
962. — III, 404.

— affinis III, 265.

Syringa amurensis Uupr.
III, 265.

— chinensis 541. — III, R.

— Bretschneideri III, 265.

— Josikaea III, 265.

— villosa III, 265.

— vulgaris L. 641, 646,
691. - II, 596. — III,
265. — P. 302.

Syringodendron 558.
SyriDgothecium Mut- 59.
Syrrbopodon 51.

— apertifolius Besch. 54.

— Banksii C- Müll. var.
compactus The'r* 81.

— Ühenagoni Ren. et Card
54.

— glaucophylhis Ren. et
Card 54.

— mauritianus C. Müll. 54.

— pulvinarisPar.e£.Bro£Ä.*
55, 81.

— rubrotomentosus Card*
81.

— tristichus Nees 69.
Systegium macrophyllum

Rar. et Broth* 53, 81.

Tabebuia III, 59 - N. A.

II, 344, 345.
Tabellaria II, 635, 636,

638, 640.

— fenestrata (Lynghci.)
Kütz. 338. - II, 629,
630, 633, 634, 640.

— flocculosa Ktz. II, 635,
640.

var. ventricosa Grün.

II, 635.

— flocculosa Roth II, 640.
Tabernaemontana III, 59.

_ N. A. II, 332.

— Berterii A.DC. II, 332.

— Berterii Säur. II, 332.

— citrifolia 4. ßc/i6. 11,332.

— coronaria II, 613.

— discolor Griseb. IT, 332.

— elliptica Blanco 11,331.
Tacazzea venosa (Höchst.)

Decne III, 145.

Tacca II, 820.

— integrifolia II, 243.

— piimatii'ida II, 243.
Taccaceae II, 240, 243.
Tachiadenus N. A. II, 428.
Tachigalia N. A. II, 449.
Tacsonia Van Volxemii

Hook. II, 715. — III, 57.
Taeniophyllum III, 121.
Taeniopteris 613, 622, 639.

— blechnoi'des 559.

— crispissima Dus* 559.

— tenuinervis 612.
Taenitis drymoglossoidus

Copel* II, 782, 808, 815.
Tagetes II, 892.

— patula L. III, 632.
Tainiophyllum N. A. 11,318.
Taiwania cryptomerioides

II, 214.

Talauma N. A. II, 455.
Talinum III, 281.

— cuneifolium Willd- III,
280.

Tamaricaceae II, 532. —

III, 219, 224, 334.'
Tamarindus II, 232, 233.

234, 610.

— indica II, 232, 899.
Tamarix III, 100.

— africana Desf. II, 894,
896. — 111, 471.

— africana Poir. II, 62<i.

— articulata 11, 253.

— indica II. 103.

— senegalensis DC. III,
334.

Tamus communis L. III,

458.
Tanacetum vulgare P.301.
Taonurus 553, 558.

— ultimus s,ijj. 553.
Tapeinochilus 111, 134. —

N. A. II, 324.
Tapeinosperma Hook. /'■

III, 258.
Tapesia epicladotricha

Sacc* 318.

— bydrophila (Karst.)
Rehm 146.

■61H

964

Tapbridium umbelliferarum — Terminalia arjuna.

Taphridium umbellifera-
rum (Itostr.) v. Lagerh.
fa. heraclei 143.

Taphrina 137, 166, 243.

— Alni - incanae Knchn
243. 837.

— aurea (Pers.) 145.

— Bussei v. Faber* 137.

— lutescens Rostr. 144.
Tapioca II, 861.
Tapura P. 275.
Taraktogenos III, 153. —

N. A. II, 425.
Taraxacum 761. — II, 146,
165, 191. — III, 174,
175, 176, 183, 185, 283.
— N. A. II, 391, 392,
393.

— balticum Dahlst- III,
174.

— dens leonis II, 147.

— dovrense Dahlst. III,
174, 175.

— hyparcticum Dahlst. II,
146.

— laeticolor Dahlst. III,
175.

— magellanicum II, 191.

— melanostylum III, 176.

— mongolicum II, 159.

— officinale Web. 653. —

II, 46, 557, 576, 587. —

III, 40, 174. P. 313.

— paludosum III, 21.

— palustre III, 175.
var. concolor Dahlst.

III, 174.

— pumilum Dahlst. II,
146.

— Reichenbachi (Hut.)
Dahlst. III, 174, 175.

— salinum III, 21.

— tornense III, 176.
Taraxia N. A. II, 472.
Tarchonanthus camphora-

tus L. II, 838.
Tarrietia javanica Blume
II, 213, 902.

— sylvatica Merr. II, 902.
Taxithelium Spruce 51, 59.

Taxithelium alare Broth*
81.

— laetum Ren. et Card.
54.

— Voeltzkowii Broth* 54,
81.

Taxodioxylon Credneii
600.

— sequoiauum (Merckl.)
Goth. 566.

— Taxodii Goth. 566.
Taxodium 533, 588, 59G.

— II, 984.

— distichum Rieh. 561,
566, 588, 596, 609. —
III, 61.

— heteropbyllum Bronqn
III, 61.

— imbricarium III, 61.
Taxospermum 548.

— angulosum 548.
Taxus 463, 464, 593, 611,

618, 652, 700. — III,
539.

— baccata L 629. — II,
147, 573, 619, 711, 716.

— III, 520, 536, 539,
564.

— brevifolia II, 144.
Teclea II, 511.
Tecoma II, 622. — III, 59.

— N. A. III, 345.

— Brittonü Urb. II, 899.

— lepidopbylla Gris. var.
reticulata Gris. II, 345.

— leueoxylon Mart. II,
900.

— stans Juss. II, 900. —
P. II, 971.

Tectaria Cavan. II, 806.

— crenata Cav- II, 779,
808.

— martinicensis (Spreng.)
Maxon II, 790.

— plantaginea (Jacq.)
Maxon II, 790.

— Pur dia ei (Jeum.) Maxon
II, 790.

Tecticornia cinerea II, 209.
Tectona grandis II, 222.

Teesdalea II, 130.
Teichosperma Renner N. G.
611.

— spadiciflorum Renner*
611.

Telantbera olivacea Urb.
II, 327.

— serpyllifolia (Poir.) Urb.
II, 327.

Telaranea nematodes

Hoive 69.
Telekia speciosa III, 56.
Telephium II, 149.

— Barbeyanum II, 151.

— Imperati 454. — II,
149.

— oppositifolium II, 149.

— sphaerospermumll, 149.
Telosma N. A. II, 339.
Templetonia retusa II,

614.
Tenagocharis latifolia II,

240.
Teniostoma III, 3.
Tepbritis plantaginisffafa/Z.

II, 611.
Tephrosia II, 584. — III,

532. — P. 277. — N. A.

II, 449.

— confertiflora II, 209.

— heterantba Gris. II,
584, 585.

— pogonostigma II, 332.

— toxicaria III, 532.

— Vogelii III, 531.
Teratomyces vulgaris

Thaxt. 318.
Terebinthaceae 220, 223,

225. — III, 16, 218.
Terebinthus III, 52. — N.

A. II, 329.

— Brownii Jacq. II, 328.

— maxima Sloane II, 328.
Terfezia 169.

— rosea (Tut) Torrend
105.

Terfeziaceae 168, 235.
Terfeziopsis 169.
Terminalia II, 622, 899.

— arjuna II, 897.

Terminalia belerica — Thea.

965

Terminalia belerica Roxb.
II, 852.

— Catappa L. 457. — II,
1G6, 220, 899. — P. 306.

— Chebula Fetz. II, 852,
897.

— crenulata Roth II, 622.

— glabra R. Br. IT, 622.

— glaucescens Planck. II,
625.

— latifolia Sic II, 899.

— macroptera II, 232.

— sericea Burch. II, 625.

— spinosa Engl. II, 625.

— Tanibouca Sm. II, 837.

— velutina Rolfe II, 898.
Terniola 848.
Ternstroemia III, 335.
Ternstroemiaceae III, 219,

221, 222, 223, 225.
Testudinaria II, 243.
Tetracentrum III, 225.
Tetracera alnifolia Willd.

II, 232. — III, 198.
Tetracyclus lacustris

Ralfs II, 640.
. — rhomboideus Lingelsh*

595.
Tetradiclis III, 223.
Tetraedron platyisthmum

G. West* 353, 385.
Tetragonia L. III. 139.
Tetrameleae III, 222.
Tetramerista III, 219.
Tetranthera 560.

— laurifolia II, 820.

— polyantha var. citrata
Nees III, 230, 467.

Tetranychus 808.
Tetraploa Berk. et Br. 269.
Tetrardixia Mez III, 258.
Tetraria circinalis III, 80.

— compar III, 80.

— crinifolia III, 80.

— cuspidata III, 80.

— eximia III, 80.

— fimbriolata III, 80.

— Mac-Owanii III, 80.

— picta III, 80.

— puncto ria III, 80.

Tetraria robusta III, 80.

— Rottboellii III, 80.

— secans III, 80.

— sylvatica III, SO.

— tbermalis III, 80.

— Thuarii III, 80.
Tetrariopsis octandra III,

80.
Tetraspora 361.

— bogoriensis Bernard-'
385.

Tetrastichium 57.
Tetrathylacium macro-

phyllum Poepp. et Endl.

II, 622.
Tetrazygia III, 59. — N. A.

II, 460.
Tetrorchidium rubriveni-

um Poepp- et Endl. II,
900.
Teucrium III, 230, 407. —
N. A. II, 439.

— algarviense P. Cout- III,
229.

— castrense Verguin* III.
230, 407.

— Haenseleri Boiss- III,
229.

— littorale Bichiell II,
439.

— Luisieri Samp- HI, 229.

— montanum III. 407.

— montanum X Polium

III, 230, 407.

— petiolare Balfour fil. II,
439.

— polium III, 229.

— prostratum Balfour fil.
II, 439.

— ßoyleanum Wall. II,
557.

— scordium III, 40, 41.
Thalassiosira II, 637, 639.

— decipiens(6rnmJJoer<7.
II, 639.

— gravi da Cleve II, 632.

— nana Lohmann* II, 631,
633, 646.

— Nordenskiöldii Cleve II,
632.

Thalassiosira saturni Loh-
mann*- II, 631, 633, 646.
Thalassiothrix II, 636, 637.

— Frauenfeldii var- java-
nica Grün. II, 637.

— nitzschioides Gran II,
634, 635.

Thalia II, 244.

— geniculata L. II, 837.
Thalictrum 443, 444, 445,

504, 505. — II, 163. —
III, 224. - P. 300, 301.
— N. A. II, 485.

— angustifolium II, 485.

— angustissimum Cr. II,
485.

— aquilegifolium L. 521,
522.

— flavum II, 485.

— glandulosum Lecoy II,
485.

— nigricans DC II, 485.

— rotundifolium DC- II,
225.

Thamnidiaceae 232.
Thamnidium 232, 233. -
III, 610.

— elegans III, 621.
Thamnium Lemani

(Schnetzler) Amann 59.

— minutum Broth. et Par.
56.

— Molleri C. Müll 56.
Thamnolia Ach. 13.

— vermicularis 1 1 .
Thamnopteris Schlechten-

dalii Eichwald 573. —
II. 756.
Thapsia garganica L. III.
46.

— villosa L. III, 46.
Thaumasiodendron ande-

gavense 554.
Thaumatococcus II, 244.
Thaumatopteris Brauniana

590.

— Schenki Nath. 590.
Thea II, 884. — III, 478.

— P. 218, 818. — II.
848.

966

Thea assainica— Thyrsopteris prisca.

Thea assamica P. 132, 293,
317, 818, 822. — II,
848.

— caudata II, 214.

- japonica II, 223.

— sasaquana Nois. II, 821.

— III, 334.
Theaceae 47"). — II, 532.

— III, 334.
Thecaphora aterrima Tul.

144.

— hyalina Fingerh- 148.

— Galii (Link) De Toni
148.

Thecopsora Vacciniorum

Karst. 149.
Thelephora 107.

— crustacea Schum. 259.

— Hoehneliana .Bres.* 128,
318.

— - maculaet'ormis Fr. 260.

— penicillata (Pers-) Fr.
259.

— spadicea Bres* 128,
318.

Thelephoraceae 101, 123,
128, 166, 174, 224.

Thelidium 15.

Thelopsis suliporinellajN^.
24.

var. grisella 28.

Theloschistes 5, 14.

— lychneus III, 643.

- parietinus III, 643.
Thelotrema 15.
Thelypodium N. A. II, 404.
Themeda N. A. II, 300.

— Forskalii P. 320.
var. vulgaris Hack.

II, 300.
Theobroma II, 530, 622,
820. — 111, 478. — P.
303.

— Üacao L. 45S. — II,
822, 829, 881. — P. 130,
137, 138, 204, 283. —
II, 882, 883.

— lougiflora P. 302.
Theophrastaceae II, 533.

— Hl, 59.

Theriophormm III, 75.
Thermomyces lanugino-

sus 689.
Thermopsis N. A. II, 449.
Thesium N. A. II, 516.
Thespesia carnpylosiphon

Vidal II, 455.

— Lampas II, 893.

— populnea II, 904.

— populnea Corr- 457.

— populnea Solana II,
900.

Thibaudia III, 59. — N. A.

II, 410.

Thielavia basicola Zopf
122, 204, 782. — II,
888.

Thielaviopsis etbaceticus
212, 844.

— paradoxa (de Seyn.)
v. Höhn. 145.

Thinnfeldia 618, 622.
Thismia II, 244.
Thlaspi 504. — N. A. II,
404.

— alpestre L. II, 556.

— arvense L. P. 253.

— glaucum P. 143.

— perfoliatum L. II, 152.
Tbomassetia III, 222.
Thonningia sanguinea II,

236.
Thoracostachyum Banca-
num III, 81.

— floribundum III, 81.

— hypolytroides III. 81.
Thottea borneensis Vol.

III, 145.

Tbrinax II, 196. — III,

130. — N. A. II, 320.
Tbrixspermum III, 121.
Thuarea involuta II, 207.
Tbuidieae 58.
Thuidium Br. eur. 51, 58.

— abietinum Br. eur. 60.

— aculeo-serratum R. et C
54.

— Bonianurn Besch. 52.

— cymlnfoliumDz.d AZ7A;.
52.

Thuidium glaucinoides
Broth. 52.

— gratum (P. B.) Jaeg.
56.

— hygrophilum Glow.* 45,
81.

— Konkowa.ePar.etBroth.
56.

— pycnangiellum Broth.
et Par* 81.

— pycnangiellum C.Müll.
56.

— spurioinvolvens Broth.
et Par* 56.

— trachypodon Mut. 52.
Thuites 556.

Thuja 463, 642. — II,
143, 983. - III, 60, 67.

— gigantea Nutt. III, 62,
478.

— occidentalis L. II, 983.
— III, 62, 454.

— plicata Don II, 146. —
III, 62, 436, 478.

— Saviana 556.
Thunbergia III, 135. —

X. A. II, 326.

— grandiflora II, 224.
Thunbergiopsis III, 136.
Thuyopsis dolabrata 663.
Thymelaeaceae II, 166,

203, 533. — III, 55, 221,
335.
Thymus III, 228, 229. -
N. A. II, 439.

— citriodorusDC. 111,228.

— heterotrichos III, 56.

— inodorus Duf. III, 228.

— montanus X Polium
II, 439.

— Serpyllum L. II, 172,
557, 591, 596. III.
429.

— vulgaris III, 429.
Thyridium yerbae Speg*

318.
Thyrsopteris Ahnerti
Krass* 582.

— Maakiana Heer 582.

— prisca Heer 582.

Tibonohina— Tomentella Trigonosperina.

967

Tibouchina II, 622. — III,
251. — P. 309. — N. A.
IL 460. 461.

— granulosa Cogn. II,
622.

— Hieronymi Cogn. II,
622.

— nobilis Rech. III, 251.
Tiedemannia III, 59. —

N. A. II, 539.

— rigida var. anibigua II,
538.

Tilachlidium Preuss 269.
Tilia 547, 558, 576, 580,

686. — II, 68, 996. —

III, 28, 335.

— alba 518, 720.

— americana L. 547. —

II, 608, 623. — III, 3.

— P. 240, 314.

— argentea III, 601.

— grandifolia 518, 684,
720.

— heterophylla Vent 547.

— III, 3.

— parvifolia II, 154.

— platyphyllos Scop. 575,
627, 636. — II, 154. —

III, 335.

— pubescens AU. III, 3.

— silvestris III, 601.
Tiliaceae 428, 596. — II,

190, 250, 533. — III, 58,

220, 335.
Tiliaepbyllum dubium

Xewb. 547.
Tillandsia II, 915. - N. A.

II, 285.

— (Anaplopbyton) argen-
tina II, 268.

— Balbisiana II, 191.

— Blokii Hemsl. III, 78.

— brachycanlos II, 191.

— circinalis III, 78.

— usneoides L. II, 102.
Tületia 830.

— Belgradensis P. Magn*
244, 245, 318.

— controversa ./. Kuekn
147.

Tületia decipiens (Pers.)
Koern. 117.

— borrida Tale. II. 857.

— laevis 814.

— striaeformis (West) 145.

— Velenovskyi £«6^244.
Timmia naegapolitana

Hedw. 44.
Timmiella 51.

— grosseserrata Schffn.*
53, 81.

— Merrillii Broth. 81.
Timonius N. A. II, 511.
Tinomiscium III, 252, 253.
Tinospora III, 252, 253.
Tirania III, 165.
Tirmania 169.

Tissa media II, 261.
Titania miniata Guillemin

II, 316.
Titanopbyllum 618.
Titbonia Des f. II, 194. —

III, 183. — N. A. II, 393.

— diversifolia III, 174.

— tagetiflora Dsf. III, 56.

— tubaeformis II, 194.

— Vilmoriniana II, 194.
Titbymalus N. A. II, 421 .
Tmesipteris 578, 586, 654.

— II, 758.

— lanceolataZ)aw^. II, 758,
808.

— tannensis Bernh. 11,758,
808.

Toceyna bullata Mart. II,

622.
Tococa II, 622. — N. A.

II, 461.

— juruensis Pilger II, 622.

— setifera Pilger II, 622.

— ulei Pilger II, 622.
Toddalia nobilis Hook. II,

898.
Toddaliinae III, 223.
Todea II, 745. 755, 762,

797.

— barbara II, 754, 797.

— Fraseri Hk. et Grev.
643. — II. 101, 745, 784,
785, 799. 808.

Todea Fraseri var. Wilkt-
siana Christ II, 784, SOS.

— hymenophylloides 643,

— superba II, 799.
Todites Williamsoni 628.
Tofieldia III, 5. — N. A. II,

307.
Togaria W. G. Sm. N. G.

109, 318.
Tolubalsam III, 477, 47S,

512.
Tolypella 352.

— intricata 353.

— nidifica (Müll.) Leonh.
353.

Tolypellopsis 353.
Tolyposporella Brunkii

(E. et G.) Clint. 142.
Tolypotbrix 340.
Tomentella 118.

— aurantiaca Pat.: 159,
318.

— cinerascens (Karst.) r.
Höhn, et Litsch. 144.

— elaeodes (Bres.) v. H.
et L. 113.

— cinerascens (Karst.) v.
H. et L. 113.

— epimyces (Bres) v. B.
et L. 113, 144.

— ferruginosa v. H. et L.
112.

— fusca (Pers.) Schwel 260.

— fusca (Pers.) v. Höhn-
et Litsch. 144.

var. umbrina (Quel.)

144.

— Jaapii Bres. 113.

— microspora (Karst) v.
H. et L. 112.

— microspora (Karst.) v.
II. 113.

— nigra u. Höhn, et Litsch:'
118, 318.

— papillata v. Höhn, et
Litsch* 112, 318.

— subfusca (Karst.) v- H.
et L. 112, 260.

— Trigonosperma (Bres.)
v. H. et L. 113, 318.

968

Tomentella zygodesinoides— Tracya Hydrooharides .

Tomentella zygodes-
raoides (Ell) v. H- et L.

113.
Tomentelliaa 118.
Tonduzia Pittier III, 142.

— N. G. II, 196.

— stenophylla Pitt. III,
141.

Tonellia 111, 50.
Toninia 15.

— hercegovinicaA-Zahlbr*
28.

Tonkabohne III, 484.
Toona N. A. II, 462.
Torenia III, 322. — N. A.

II, 526.
Toricellia III, 221.
Torilis 491. - - III, 669.

— Anthriscus Grtn. II,
537.

— infesta Koch 490.

III, 342, 669.
Torrendia pulchella Bres.

105, 262.
Torreya 531, 611. — III,
66.

— californica 685.

— nucifera Sieb, et Zucc.
560, 685. — III, 66.

Tortella 38.

— inclinata var. densa 40.

— tortuosa (L) Müll. 39.

— tortuosa Limpr. 70.
Tortula 35.

— aciphylla (Br. eur.)
Hartm. 45, 81.

— astoma Schffn.* 53, 81.

— brachyclada Card''" 81.

— Cavallü Negri* 81.

— demawendica Schffn.*
53, 81.

— excelsa Card.* 81.

— fusco viridis Card.* 81.

— grossiretis Card.* 81.

— monoica Card* 81.

— montana Lindb. 70.

— pseudolatifolia Card*
81.

— robustula Card* 81.

- ruralis (L.) Ehrh. .777,

Tortula ruralis var. atricha
46.

— saxicola Card* 81.
Torula 153, 154, 176, 184,

195, 196, 199, 200, 209.

— abbreviata Corda 144.

— Donacis P. Henn*
318.

— epizoa 200.

— lichenicola var- cerinae
B. de Lesd.* 28.

— licbenopsis v. Höhn*
128, 318.

— saccharinaüeaM et Pool*
267.

— spongicola Du f. 108.
Torulinium confertum III,

79.

— Micbauxianum 111, 79.
Tournefortia III, 59. — P.

321. — N. A. II, 346.

— argentea II, 166, 220.
Tournonia III, 281.
Tovaria III, 4.
Townsendia N. A. II,

393.

— sericea var. leptotes
Gray II, 393.

Toxocarpus N. A. II, 339.

— ankarensis III, 147.

— Schimperianus Hemsl.
II, 229.

— sulfureus III, 147.

— tomentosus III, 147.
Trabutia guarapiensis

Rehm 131.
Tracbelomonas acuminata
347, 386.

— fluviatilis Lemm* 347,
385.

— Scbauinslandii Lemm*
347, 386.

— volgensis Lemm* 347,
386.

Trachelospermum N. A. II,

421.
Trachylejeunea dilatata

Evans* 89.
Trachylia microspora

Barm. 11.

Trachylobium mossambi-
cense Kl. II, 930. — III,
495.

— verrucosum (Gärtn.)
Oliv. II, 103, 229, 930.

— III, 243, 495.
Trachymene III, 339, 341.

— N. A. II, 539.

— Billardieri III, 340.

— cirrhosa III, 339.

— commutata III, 339.

— compressa III, 339.

— crassifolia III, 340.

— cuneata III, 340.

— deflexa III, 340.

— Eatoniae III, 339.

— effusa III, 339.

— ericoides III, 340.

— filiformis III, 339.

— haplosciadia III, 339.

— heterophylla III, 339.

— juncea III, 339.

— linearifolia III, 340.

— linearis Sprgl. II, 539.

— pendula III, 339.

— platyptera Bunge II,
539.

— ramosissima III, 339.

— Stephensonii III, 340.

— striata III, 339.

— tenuissima III, 339.

— teres III, 339.

— valia III, 340.

— xerophila III, 339.
Trachyphyllum fabronioi-

des (C. Müll.) Gepp* 54,
81.

— — var. comorense
Broth 54.

— Ferriezii (Marie) Gepp
54.

— inf lexurn (Harv.) A. Gepp
52.

Tracbyphrynium II, 244.
Trachypogon montufari

II, 201.
Trachypteris II, 766.
Trachypus 51.
Tracya Hydrocharidis

Lagh. 120, 147.

Tradescantia — Tricholoma venenatum.

969

Tradescantia 511. — II,
967. — III, 567.

— discolor III, 79.

— floridana II, 191.

— geniculata 512.

— virginica L. 460, 670.

— II, 569, 720, 985. —
- III, 79.

— viridis 686. — II, 654.

— zebrina 670.
Traganum nudatum Del

III, 172.
Tragia II, 420. — N. A.

II, 421.
Tragopogon III, 371.

— dubius III, 371.

■ — gracilis DC II, 557.

— hortensis III, 371.

— phaeus III, 371.

— porrifolius III, 371.
Tragus muricatus Moench.

III, 94.

— racemosus..4iZ. 111,87, 94.
Trametes 107, 822, 836.

— caespitosa 135.

— conglobata Murrill*
318.

— Daedalea Speg. 147.

— insularis Murrill* 318.

— luzonensis 135.

— Pini Fr. 175, 698.

— suaveolens Fr. 187.

— Tbeae Zimm. 219. —
II, 848.

Tranzschelia punctata

(Pers.) Arth. 141.
Trapa borealis 589.

— natans L. 575, 609, 627.

— II, 225.
Traunsteinera globosa III,

112.
Trautvetteria III, 287.

— palmata Fisch. 501.
Treculia II, 245. — N. A. II,

464.

— africana II, 236.
Trema amboinensis Blume

458. — II, 206.

— guineensis Schum. III,
336.

Trema orientalis II, 166.

— taitensis Schauer 458.
Tremandraceae III, 336.
Trematanthera III, 221.
Trematosphaeria Erythri-

nae P. Renn." 126, 318.

— IschnosiphonisP.flenr».*
318.

Tremella aurantia 260.

— clavarioides 260.

— encephala (Willd.) Brev.
vor. Steidleri Bres* 318.

— juniperina 249.

— reticulata Farl. 260.

— sakanensis P. Henri*
138, 318.

Tremellaceae 119, 140, 165.
Tremellodendron auran-

tium Atk* 318.
Trematodon 51.

— ambiguus Hedw. 47.

— tonkinensis Besch. 52.
Trenomyces Chatton et

Picard N. G. 235, 318.

— histophthorus Chatt. et
Pic* 235, 318.

Trentepohlia 682.
Treubaria Bernard N. G.
348.

— triappendiculata Ber-
nard* 348, 386.

Triadenum virginicum II,

606.
Triadica cochinchinensis

II, 820.
Trianea 669.

— bogotensis II, 666.
Trianthema Sauv. III, 139.

— peltandrum L. III, 137.

— Portulacastrum P. 235,
277.

Triaspis 434. — III, 248.
Triathera americana Desv.
II, 294.

— juncea P. B- II, 294.
Tribulus cistoideus L. III,

55.

— terrestris L. II, 839.
Tricera fasciculata Gris.

II, 347.

Tricera laevigata Orts- II,

347.
Triceratium exiguum W.

Sm. II, 636.

— favus II, 637.

— Heliandi Tempere* II,.
646.

— orbiculatum Shadb. var.
elongata (Grün) Per.*

II, 646.

Tricaljsia N. A. II, 511.
Trichaegum Cda. 269.
Trichaptum 124.
Trichia contorta Rost. var.
alpina R. E. Fr. 120.

— persimilisiiarsM25, 143.

— vraria Pers. 143.
Tricbilia III, 52, 58. —

N. A. II, 462.

— emetica II, 921.

— retusa Oliv. III, 252.
Tricbobelonium albo-suc-

cineum Rehm 146.

— distinguendum Syd*
149, 318.

Tricbocladus ellipticus

Eckt, et Zeyh. III, 214.
Trichocline argentea Gris.

III, 507, 508.
Tricbocentrum albopurpu-

reum III, 112.
Tricbodesma indicum R.

Br. II, 557.
Trichoglossum 122.
Trichoglottis III, 122.
Trichohleria Sacc N.G. 160,

319.

— quadrigellensis Flay.
et Sacc* 319.

Tricholaena rosea II, 829,

839.
Tricholoma pallidum Peck

222.

— Russula 180.

— subgambosum Ces. 258.

— terreum 180.

— transmutans 180.

— tigrinum 222.

— Aenenatum Atk.* 222,
319.

970

Trichoraanes — Trilooularia.

Trichomanes II, 798, 799.

— (Goniocormus)alagense
Christ* II, 779, 815.

— Chevalieri Christ* LI,
796, 815.

— cuspidatum Willd. II,
793.

— Hookeri Presl II, 793.

— humile Forst. II, 783.
javanicum Bl. II, 7*4.

808.

— Ivraussii II, 977.

— Kurzii Bedä. II, 796.

— Mannii Sooft. II, 793.

— maximum Bl. II, 784.

— — rar. grandiflora
Rosenst* II, 784.

— melanotrichumSc/t/ec/itf.
II, 793.

— mindorense Christ' II,
779, 815.

— Motleyi r. </. Bosch II,
793.

— nanum (V. d. .BJ II,
796.

— neilgherrense Bedd. II,
779.

— pallidum JSL II, 785.

— Prieurii II, 755.

— pyxidiferum L. II, 796.

— rigidum Sw. var. pecti-
natum Mett. II, 79:5.

— savaiense Lauterb.* II,
785, 815.

— stenosiphon Christ* II,
776, 815.

— subsessile Mett. II, 793.

— sumatranum r. ^4/rZ.
t>. ßos.* II, 781, 816.

— Teysmanni v. d. B. II,
779.'

— Werneri Rosenst* II,
783, 816.

Trichomonas denticula
Lemm. 342.

— hominis Prowazek 342.
Trichonema ochroleucum

Ker. II, 301.
Trichoon N. A. II, 300.

— Karka Roth II, 300.

Trichosanthes tricuspidaba

II, 220.
Trichosphaeria Sacchari

212.
Trichosporium 153.

— Staritzii Bres* 319.
Trichosporum in, 212. —

N. A. II, 430.
Trichosteleum^Me^ Jaeg.
51, 59.

— Ferriei Card. e£ TVieV.*
81.

— subcucullifolium Bar.
et Broth* 52, 81.

— Vieillardi (Dub.) Card*
81.

Trichostema lanatum II,
188.

— Parishii Vasey II, 188.
Trichostephanus (?% N. G.

N. A. II, 425.
Trichostomum Barbula
Schiv. 40.

— calymperaceum Broth.
et Bar. 55.

— circinnatulum Broth.*

54, 81.

— crispulum i?»\ 69.

— Esquiroli The'r* 81.

— flavovirens Bruch 38,
69.

— litorale Mitt. 55.

— lorifolium Broth. et Bar.

55, 56.

— pallidisetum H. M- 47.
Trichothecium roseum III,

622.
TriclisiasubcordataII,233.
Tricoccae III, 15.
Tricomariopsis II, 228.
Tricostularia Nessii var.

elatior III, 80.

— pauciflora III, 80.
Tricuspidaria II, 268.

— dependens II, 268.
Trientalis europaea L. P.

253.
Trifolium 504, 708. — II,
39, 651. — N. A. II, 449,
450.

Trifolium angustifolium
LI, 255.

— arvense L. II, 261.

— Aucheri Boiss. II, 449.

— bithynicum Boiss. II,
449.

— filiforme L. III, 243,
433.

- hybridum L. II, 601.

— incarnatum L. 111, 433.

— medium P. 301.

— — var. majus Boiss.

II, 449.

— micranthum Viv. III,
243.

— minus III, 243.

— parviflorum II, 255.

— pratense L. 642. — II,
3, 22, 53, 138, 601.

III, 243, 356, 385, 395,
433.

— repens L- 653. — II,
39, 261, 556, 591. — III,
395, 433.

— subterraneum II, 263.
Triglochin II, 240, 254,

581. — III, 20.

— maritimum L. II, 175,
176, 580, 715. — III,
519.

— palustre L. 644. — II,
580, 715. — III, 519.

— turrifera II, 255.
Trigonella II, 824.

— foenum-graecum III,
242, 432, 555.

Trigona II, 859. — P. 309.
Trigonium Campechiana

Grün. II, 646.
Trigonocarpus 594.

— curvipes Schlecht. III,
269.

- Oliven Scott* 619.

— Parkinsoni Bronqn. 619.

— subhexagonus Sterzel*
625.

Trillium III, 101, 104.

— undulatum 645. — III,
104.

Trilocularia III, 225.

Triuieria — Tuberculina Davisiana .

971

Trimeria III, 220. — N. A.

II, 425.

Trimmatostioma Lirio-

deodri Ath* 311).
Trinia N. A. II, 540.

— pumila Rchb. II, 540.
Triodia pulchella H. B. K.

III, 56.
Triosteum III, 222.

— perfoliatum L. 474.
Trioza Centrantbi II, 611.

— (Jerastiiif. Loew. 11,026.

— Rumicis L. II, 626.
Tripblebia II, 766.

■ — pinnata II, 766.
Triphragmiura Ulmariae

(Schum.) Wint. 146. —

IL 971.
Triplaris purpurea (Walt.)

Chapm. II, 557.

— SchomburgkianaZ>e>(/A.
II, 622.

Tripleura pallida Lindl. II,

308.
Triplochiton N. A. II, 530.
Triposporium Cda- 269.

— Gardneri II, 847.
Tripteris N. A. II, 393.

— Loordii II, 393.
Trirapbis mollis II, 839.

— Rehmanni Hack. III,
87.

Trisetum 733. — II, 100.
— III, 94. — N. A. II,
300.

— lobatum JWw. II, 300.
-- subspicatum II, 213.
Trismegista (C. Müll)

Broth. 59.
Trismeria II, 766.
Tristania N. A. II, 4615.
Tristemma N. A. II, 461.
Tristichia 448.

— alternifolia Tul. III,
274.

— bypnoides 448. — II,
191. — III, 277.

— ramosissima III, 277.
Tristiriopsis Ridleyi Hemsl.

II, 206.

Triteleia (laudichaudiana

P. 321.
Triticum 733. — II, 128,

666, 670, 70'.i, 827, 853.

— III, 388, 391, 396,
461. - - P. 203.

— aegilopoides II, 128.

— dicoccoides Kcke. II,

128, 129. — III, 95.

— dicoccum II, 129.

— durum P. S14.

— hibernum III, 461.

— junceum 522.

— moDOcoccum II, - 128,

129. — III, 461.

— repensll,618.— P.247.

— sativum II, 35, 50, 990.

— P. 301, 856.

— turgidum III, 98.

— vulgare 745. — II, 656.
Triumfetta II, 190. - III,

58. — N. A. III, 534.

— angulata Hook. f. II,
534.

— cordifolia III, 335.

— grossularifolia Griseb.

II. 534.

— procumbens Merr. II,
534.

— semitriloba Hiern. II,
535, 904.

— subpalmata Solana. II,
534.

Triuridaceae II, 128, 323.

— III, 133.
Trizeuxis falcata III, 112.
Trocbodendrum III, 225.

— aralioides II, 214.
Trogia crispa 260.
Trollius II, 598.

— europaeus L. II, 598.

— III, 536.
Tropaeolaceae II, 535. — ■

III, 218, 336.
Tropaeolum 726. — III,

622. - - X. A. II, 535.

— Karsten ii II, 198.
III, 336.

— majus L. 719. — LH,
57, 022.

Trophis americana L. II,

215, 900.
Tropidia III, 121, 122. —

N. A. II, 318.

— Eatonii Arnes II, 318.
Tryblidiella Balansae Speg.

132.

— guaraniticaf.S/jer/ .) Rehm
132.

— mindanaoensis P.Henn*
319.

— Prosopidis Rehm 132.

— rufula (Spreng.) Sacc
132.

Tryblidium Elasticae 824.
Trypanosoma Hylae (Lar.

et Mesnil) 342.
Trypethelium anomalum

Mont. 21.
Trypbane Gerardi Rchb. 11.

356.
Tryptomene ericaea II,

255.
Tsuga III, 63.

— Albertiana II, 901.

— Brunoniana II, 901.

— canadensis III, 422. —
P. 255, 290, 319.

— Caroliniana II, 901.

— diversifolia Max. II,
214. — III, 00.

— formosana Hayata III,
60.

— heterophylla II, 144,
146.

— Mertensiana II, 140.

— Sieboldi Carr. II, 901.
— III, 60.

Tuber 223.

— melanosporutn 227.

— michailowskjanum Bu-
choltz* 100, 319.

— ruf um Pico 111.
Tuberaceae 106. 115, 100.

168, 169.
Tubercularia vulgaris Tode

15(1.
Tuberculariaceae 138, 20 '.
Tuberculina Davisian.i

Sacc. et Trav. 141.

972

Tuberculina luaxiui — Ulinus pubescens.

Tubereulina maxim Bostr.
252.

— microstigma Sacc* 149,
319.

Tubicaulis Cotta 552, 553.

— solenites Cotta 552.
Tubiiera ferruginosa

(Batsch.) Macbr. 125.
Tubiflorae III, 16.
Tubulina cylindrica (Bull.)

DC 143.
Tulbaghia III, 101. — N.

A. II, 307.
- Simmleri Beauverd* III,

101.
Tulasnella 118.

— hyalina v. H. et L.*
260.

— Tulasnei (Pat)Juel 144.
Tulipa 505, 672. — II, 153,

658. — III, 104, 107, 108.
— P. 238. — N. A. II,
307.

— arvensis III, 390.

— Gesneriana L. 652. —
II, 957, 961.

— saxatilis III, 106.
Tullia pycnanthemoides

Leavenw. II, 437.
Tumboa II, 238, 239.

— Bainesii Hook. II, 240,
253. — III, 73.

Tunica 504. — N. A. II,
357.

— armerioides Ser. II,
357.

— ochroleuca (S. et Sm.)

II, 357.

— Sibthorpii Boiss. II,
357.

Turanga II, 124.
Turnera leptosperma P.
289.

— stenopbylla II, 201.

— surinamensis P. 289.
Turneraceae II, 535. —

III, 220, 336.
Turpinia occidentalis G.

Don II, 900.

— pomifera DC III, 333.

Turraea II, 252, 462. —
N. A. II, 462.

— Laurentii III, 252.

— vogelioides Bagshaioe*
III, 252.

Tussilago Farfara L. 590.

II, 162.
Tutcheria Dünn N. 6. N. A.

II, 533.
Tylenchus 151. — 11,619.

— acutocaudatus Zimm.
II, 848.

— Coffeae II, 848.

— devastator II, 618.
Tylophora N. A. II, 339.

— Bojeriana III, 146, 147.
Tynnanthus II, 345. — III,

153. — N. A. II, 345.
Typha 561, 589. — II,
115, 240, 581.

— angustifolia L. 545.

— domingensis II, 837.

— latifolia L. II, 147, 573.

— moenana Kink* 561.
Typbonium III, 75.
Typhonodorum II, 241.
Typhula 165.

— castaneopes Atk* 319.

— cylindrospora,4iÄ:.*319.

— gyrans (Batsch) Fr. 144.
Tyrimnus leucographusll,

575.
Tyromyces (Polyporus)
caesiosimulans Atk* 31 9.

— Elmeri 135.

— (Polyporus) fumidiceps
Atk.* 319.

— Merrittii Murrill* 319.

— subchioneus Murrill*
319.

— (Polyporus) subpen-
dulus Atk* 319.

— unguliformis Murrill*
319.

Uapaca N. A. II, 421.

— Bossenge De Wild. III,
205.

— ealaensis De Wild. III,
205.

Uapaca Pynaerti De Wild.
III, 205.

— SeretiDe Wild. 111,205.
Udotea Desfontainii 333.
Ulearum N. A. II, 284.
Ulex europaeus L. II, 596.

— III, 243, 432.
üllucus III, 281.
Ulmaceae 546, 614. — II,

116, 535. — III, 336.
Ulmannia Bronni 618.

— frumentaria 618.
Ulmaria 478.

— rubra P. II, 971.
Ulmoxylon Braunii Heer

562.

— Lovisatoi Falqui* 562.

— palaeomontana Sap. et
Mar. 562.

— protociliata Sap. et Mar.
562.

— Simrothi 599.
Ulmus 598, 600. — III,

28, 337. — P. 161, 285.

— alata Mchx. 547. — II,
901. — III, 3.

— americana L- II, 168,
605, 901. - III, 3, 337.

— campestris L. 562. —

II, 617, 901. — III, 56.

— P. 239.

— — var. vulgaris Planck.

III, 336.

— crassifolia II, 901.

— fulva Mchx. II, 901. —
III, 3, 337.

— glabra Huds. III, 56.

— glabra Mill. III, 56.

— lancifolia II, 901.

— longifolia üng. 561.

— mexicana II, 901.

— montana With. 514. —

II, 587.

— — var. laciniata Trautv.

III, 336.

— minuta Goepp. 561.

— parviflora II, 901.

— pedunculata II, 901.

— pubescens Walt. III,
337.

Ulmiis racemosa — Uroniyces Caricis-sempervirentis.

973

Ulmus racemosa Thom. II,
901. — III, 3.

— scabra II, 901.

— Wallichiana II, 901.
Ulodendron 619.

Ulota crispula Bruch 70.

— japonica (S. et L.) Mut.
var. stenocarpa Card*
82.

Ulothrix 330.

— limnetica 338.
ülva II, 270.

— latissima 354.
rivopteris Schuster N. G.

617.

— Amraomis Schuster* 6 1 7.
Umbelliferae 504, 512. —

II, 200, 535. — III, 16,
59, 221, 337, 547, 670.
Utnbilicaria 15.

— Mühlenbergii Ach. 19.

— pustulata (L.) Hoffm.
24.

— semitensis Tuch: 20.
Umbilicariaceae 18.
Uncaria N. A. II, 51 1.
Uncinnla incrassataSaZm.*

140, 319.

— Salicis (DC)Wint. 142.

— simulans Salm* 136,
319.

Ungulina annosa 213.
Unona N. A. II, 330.

— odorata Dun. II, 933.

— odoratissima Steud. II,
933.

Unonopsis N. A. II, 330.
Uragoga N. A. II, 511.
Urandra N. A. II, 435.
Urbanodoxa Muschler N. G.

N. A. II, 404, 405.
Urbanosciadium TTo^ N. G.

N. A. II, 540.
Urceolaria 15.

— actinostoma Pers. 23.
Urceolus alenitzini 367.
Uredineae 106, 113, 119,

121, 126, 133, 134, 138,
140, 162, 168, 175, 245,
831.

Uredinopsis ülic'mh(Messl)
P Magn. 148, 268.

— struthiopteridis (Rostr.)
Stornier 144, 268. — II,
203.

Uredo 155, 168.

— Abri P. Hernie 319.

— agnostoica Speg* 319.

— Airae-flexuosae Liro*
250, 319.

— alpestris Schroet. 162.

— Apocynaceae P. Kenn*
319.

— Arthraxonis-ciliaris P
Henn* 319.

— autumnalis Diet. 173.

— bonariensis Speg. 147.

— Canavaliae P. Henn*
319.

— Carinae P. 289.

■ — Castaneae P Henn*
319.

— cencbricola P. Henn*
319.

— Coleanthi P Har* 106,
320.

— Copaiferae P. Henn*
320.

— Crepidis-japonicae
Lindr. 311.

— Erythrinae P. Henn*
320.

— GossypiiLa9Ä.142,212.
— II, 910.

— ignobilis Syd. 148.

— Knoxiae P Henn.* 320.

— Laurentii P Henn* 320.

— margine-incrassata P
Henn. 246.

— Moraceae P Henn* 320.

— mucunicola P. Henn*
320.

— Mucunae P Henn. 320.

— pallidiusculaSpe*?.* 320.

— paulistana Speg* 320.

— Persicae Speg* 320.

— Satyrii Massee* 320.

— Sclerochloae P. Har*
106, 320.

— Themedae Diet* 320.

Uredo Thesii-decurrentis
P Henn. 312.

— Vernoniae P. Henn.*
320.

— Viticis-polygamae P
Henn. 148.

Uredopeltis P flew». N. G.
138, 320.

— congensis P. fie«».*
320.

Urelytrum N. A. II, 300.
ürena lobata II, 904, 912.
Urera baccifera II, 984.
ürginea P. 139, 276.
Urobotrya N. A. II. 472.
Urococcus tropicus West*

347, 386.
LTrocystisAgropyrifPre«ssj

Schroet- 147.

— Anemones (Pers.)
Schroet. 143, 146, 147.

— Cepulae 831.

— Colchici (Schlt.) Wint.
146.

— sorosporioides Körn.
143.

— Violae 831.
Uromyces 104, 127, 833.

— HI, 369.

— Aconiti-Lycoctonif DC )
Wint. 148.

- acuminatus Arth. 142.

— Alchemillae ( Pers.) Le'v.
252.

— Alchemillae Schrot.
149.

— ambiguus (DC.) Fehl
142.

— apiosporus Hazslinszky
143.

— astragali löpiz) Sacc
143.

— Bäumlerianus Bubäh
118, 320.

— Betae 120, 126, 816.

— borealis Liro* 250, 320.

— Briardi P Hariot* 106,
320.

— Caricis-sempervirentis
M- Fisch. 253.

974

Uroinyces Chenopodii — Usnea rubiginea.

Uromjxes Chenopodii
(Duby) Schroet. 100, 148.

— Commelinae Cke. 142.

— decoratus Syd. 147.

— Desmodii-leiocarpi
P. Henn* 127, 320.

— elatus Syd* 320.

— eriogoni Ell. et Hark.
143.

— Ervi (Wallr.) West. 148.

— euphorbiae Cke. et. Pk-
143, 147.

— Fabae (Pers.) De By.
148.

— ■ Flemmingiae P. Senn*
320.

— formosus Syd* 320.

— fulgens Bubak 149.

— Gageae G. Beck 148.

— gaurinus (Pk) Long.
141.

— Geranii (DC) Otth et
Wartm. 142, 147.

— Glycyrrhizae (Rabh.)
Magn. 143.

— hedysari-obscuri (DO
Carest. et Pico. 144.

— Hedysari-paniculati
(Schw.) Farl 127.

— inaecpaialtus Lasch 148.

— ingicola P. Henn.* 127,
320.

— jatrophicola P. Henn*
320.

— Junci (Desm.) Tut. 141,
143.

— Kabatianus Bubäk 149.

— Laserpitii-graminis Ed.
Fisch. 147.

- leptodermus Syd. 147.

— Lespedezae (Schw.) Pk.
141, 142.

— Lilii Clint. II, 971.

■ Liraonii (DC) Lev. 148.

— Lucumae Diet.* 320.

- lupinicolus Bubäk 147.

— Manihotis-catingae
P. Henn* 320.

— montanus Arth. 141.

— Myrsines Diet. 127.

Uromyces Onobrychidis
(Desm.) Lev. 148.

— Ononidis Pass. 148.

— ovirensis Jaap* 119,
143, 145, 321.

— persicus Syd* 321.

— pianhyensis P. Henn*
321.

— Pisi (Pers.) 145.

— plumbarius Pk. 143.

— Poae Rabh. 249.

— Primulae - integrifoliae
(DG) Niessl 147.

— proeminens Leu. 149.

— Reicbei Diet* 321.

— fthapaneae P. Henn*
127, 321.

— Rumicis (Sclnim.) Wint.
148.

— Schinzianus P. Henn*
321.

— Seillarum (Grev.) Wint.
148.

— Scirpi (Gast) Burr. II,
971.

— scrophulariae (DC)
Fuckel 144.

— Silphii (Syd) Arth. 143,
833.

— Solariae Diet.* 321.

— speciosus Holw. 141.

— Stellariae Syd* 321.

— striatus Schroet. 142.

— Tbapsi (Opiz) Bubäk
148.

— Tournefortiae P.Henn*
321.

— Trifolii (Hediv.) Lev.
142, 145.

— Valerianae (Schurn.)
Wint. 146.

— Veratri 248.

— Usterianus Diet* 321.

— Usterii Speg* 321.

— vestitus Diet* 321.

— Wulff iae- stenoglossae
Diet* 321.

Urophyllum II, 511.

— sublanense Eimer II,
511.

Uropyxis Amorphae (Gurt.)
Schroet. 142.

— petalostemonis (Farl.)
De Toni 142.

— Texana (Hol. et Lg.)
Arth. 141.

Urospora 330, 357.

— elongata 357.

— mirabilis 357.

— Wormskioldii 357.
Urostigma III, 253, 453.
Ursinia N. A. II, 393.
Urtica P. 280.

— australis II, 263.

— cannabina 526, 527. —
11, 984.

— cellulosa Spreng. II,
541.

— crenulata Sw- II, 541.

— cuneifolia Sw. II, 541.
- dioica L. 526. — II,

576, 587, 601, 984, 991.

— III, 35. — P. 253.

— gracilis P. 143.

— pilulifera 526, 527. —
II, 984.

— urens L. 527. — II,
137, 615.

Urticaceae II, 252, 540.

— III, 4, 15, 342.
Usnea Dill. 13, 15. — III,

688.

— arthroclada Fee var.
ruvidescens 28.

— ceratina Ach. 16, 23.

— dasypoga Nyl. 23.

— — var. plicata fa. sore-
diata A. Zahlbr* 28.

— florida Hoffm. 23.

— — var. hapalotera
Harm.* 28.

— — var. sorediifera^lrw.
22.

— hirta Hoffm. 23.

— melaxantha Ach. 21.

— — var. sorediifera
(Crombiej Hue 21.

— mollis var- subelegans
(Wainio) A. Zahlbr. 20.

— rubiginea Herre 23.

Usnea strigosella — Valsa (Euvalsa) amphibola.

975

Usnea strigosella fa. fur-
furosula .4. Zahlbr* 28.

— trichodea Ach. 22.
Usneaceae 18.
üstulina 131.

— brasiliensis Speg. 131.

— pyrenocrata TJieiss*
321.

— vulgaris Tul 131.

— zonata (Lev) Sacc. 131.
Ustilagineae 113, 119, 120.

126, 133, 134, 140, 243,

829.
üstilaginoidea Oryzae

Bref. II, 857.
Ustilago 115, 134, 830.

— anomala J. Kze. 147.

— aristidicola P. Henn*
321.

— Arundinellae Bref. 147.

— Avenae 120.

— betonicae Beck 113.

— bicornis P. Renn. 147.

— Boutelouae K.et S. 142.

— bromivora (Tut) Fisch,
de Wald. 126, 147, 165,
816.

— Cynodontis P. Henn.
147.

— echinata Schroet. 148.

— Elionuri P. Henn.* 139,
321.

— Euchlaenae Arcang.
126, 816.

— Evansii P. Henn* 139,
321.

— grandis 165.

— Hordei (Pers.) Kell et
Sic 126, 143, 244. 245,
816, 830.

— hypogaea Ttd- 120.

— intermedia Schroet- 148.

— Jensenii 120, 126, 816.

— longissima (Soic.) Tul
147.

— Lorentziana Thuem.
143.

— major Schroet. 148.

— marginalis (DC.)Mag))i<s
144.

Ustilago Maydis 126, 206,
811).

— nuda (Jens.) Kellerm.
et Sic. 143, 244, 245, 830.

— olivacea (DG.) Tul. 147.

— oxalidis Ell. et Tracy
142.

— Panici-miliacei (Pers.)
14.-..

— Saccbari Rabh. 147.

— Sacchari-ciliaris Bref.
147.

— scabiosae (Soiv.) Wint.
144.

— Sorghi (Lk.) Pass. 147.

— spermophora Berk- et
Curt. 147.

— Treubii Sohns 831.

— Tritici 126, 816.

— utriculosa (Nees) Tul.
141.

Utricularia II, 177. — N. A.
II, 450.

— elachista II, 583, 584.

— Humboldtii III, 244.
Uvaria 494. - III, 140

- N. A. II, 330.

— ebracteolata Presl II,
330.

— rufa P. 276.

— tripetala Blanco II, 330.
Uvularia nitida III, 107.

— puberula III, 107.

— sessilifolia III, 107.
Vaccinium 769. — II, 42,

176, 212, 594. — N. A.

II, 410.

— acberonticum Ung. 561.

— bracteatum II, 166. —

III, 200.

— canadense II, 147.

— corymbosum P. 240,
301, 315.

— denticulatum Heer 561.

— Dobbini II, 177.

— Leschenaultii II, 223.

— macrocarpum II, 147.

— membranaceum Dougl-
II, 146, 410.

— myrtiiloides III, 201.

Vaccinium myrtiiloides
macrophylla Hook. II,
410.

— Myrtillus L. 516. — 11,
63, 592, 593, 594, 595.

— III, 28, 39. 204, 588,
605. — P. 107.

— ovalifolium II, 146, 223.

— Oxycoccus L. 516. —

II, 147, 410, 592, 593,
594, 598. - III, 204,
605.

— pennsylvanicum Lam.

III, 201.

— stamineum II, 171.

— uliginosum L. 516. —
II, 147, 592, 594, 595.

— III, 204, 588. — P.
291.

— Vitis-Idaea L. 516. —

II, 147, 591, 592, 593,
594, 595. - III, 204,
605.

Vabea II, 332.
Valeriana 535. — III, 555,
558. — N. A. II, 542.

— arizonica III, 342.

— capensis Vahl III, 342.

— excelsa Poir. II, 542.

— officinalis L- 534. —

— II, 596. — P. 253.

— — vor- integrifolia
Ledeb. II, 542.

— — var. simplicifolia
Ledeb. II, 542.

— sitchensis II, 143.

— Wallichii DG. II, 556.
Valerianaceae II, 542. —

III, 222. 342.
Valerianella carinata II,

152.

— dentata III, 9.

— olitoria P. 253.
Vallisneria 670. — II,

660.
Valonia maerophysa 333.
Valsa ambiens (Pers.) Fr.

147.

— (Euvalsa) amphibola
Sacc.* 321.

^76

Valsa Guayavae — Voronica Buxbaumii.

Valsa Guayavae P. Renn*
321.

— leucostoma 115, 217.

— yerbae Speg* 321.
Valsaria clavatiasca Speg*

321.
Vancouveria Franch. III,

150.
Vanda 468. —III, 121. —

N. A. II, 318.

— coerulea III, 114.

— coerulea Charlesworthi
III, 112.

— Denisoniana Benson et
Rchb. f. III, 121.

— pumila III, 112.

— Watsoni III, 113, 114.
Vandellia III, 322. — N. A.

II, 526.

— nummularifolia II, 583,
584.

Vanderystiella P. Renn.

N. G. 138, 321.
— leopoldvilleanaP.ifew».*

321.
Vanguiera II, 625. — N. A.

II, 511.
Vanhouttea N. A. II, 430.
Vanilla II, 820, 828, 889.

— III, 650. — P. 133,

302.
Vanillosmopsis II, 622. —

N. A. II, 393.
Van Romburghia sil vestris

Rolterm. 258.
Vanvoorstia 328.
Vatairea guianensis P.

281.
Vaucheria 332, 333, 357,

358, 669. — III, 591,

592. — P. 151.
arrhyncba Reidinger*

358, 386.

— geminata 358.

— globulifera West* 386.

— Orientalis West* 386.

— pachyderma 357.

— repens 358.

— terrestris 358.

— Thuretii 357.

Vauquelinia II, 496. — III,

296. - N. A. II, 503.
Velaea N. A. II, 540.
Velleia 539.

— lyrata 540.

— macrophylla 540.

— paradoxa 539.

— spathulata 540.
Vellozia II, 102, 201, 243.

— P. 296.
Velloziaceae 468. — II,

243. — III, 133.
VentenatiaglaucaP..Beaw.

II, 422.
Ventilago N. A. II, 486.

— leiocarpa Benth. III,
289.

— viminalis II, 851.
Venturia Alcbemillae

(Grev.) B. et Br. 148.

— Dieckii (B- et Br.) Ces.
et De Not. 146.

— Hariotiana Speg* 321.

— missionum Speg* 321.

— Spescbnewii Sacc. II,
848.

— Usteriana Speg* 321.
Veratrum 693. — III, 547.
Verbasceae III, 50.
Verbascum 535. — II,

155, 582, 617. — III, 50,
321, 329. N. A. II,

527.

— Blattaria III, 400.

— leianthum Benth. III,
321.

— Lychnitis III, 329.
nigrum L. III, 329. —

P. 158, 315.

— nigrum X thapsus III,
329.

— pblomoides L. III, 329.

— thapsiforme Schrad. II,
552. — III, 329.

— Thapsus L. III, 329. -
P. 158.

Verbena III, 59, 343. —
N. A. II, 545.

— bonariensis L. III, 343.

— chamaedryfolia 770.

Verbena ciliata 674.

— officinalis L. III, 343,
455, 520.

— triphylla II, 725. —
III, 466.

Verbenaceae II, 166, 266,

542. — III, 59, 342.
Verbesina N. A. II, 394.

— alternifolia II, 605.

— diversifolia IIT, 174.

— encelioides Bth. et Rook.
III, 56.

Vermicularia Cataseti v.
Röhn* 128, 322.

— Dematium Fr- 150.

— samaricola Sacc- 149.
Vernonia II, 227, 622. —

P. 320. — N. A. II, 394.

— Andersoni II, 214.

— Baumii O. Roffm. III,
174.

— cinerea Less. II, 557.

— novoboracensis II, 605.

— Tweediana Baker II,
622.

Veronica 693. — II, 100,
132, 264, 649. — III,
222, 324, 385.

— agrestis 642. — II, 132,
255, 580. — III, 326, 327,
385.

— alpina L- II, 596.

— americana II, 170.

— Anagallis L. II, 580.
— III, 321, 326.

— anagallis X aquatica
III, 321.

— aquatica Bernh. III,
321, 326.

— arvensis P. 253.

— Astoni Petrie* III,
328.

— Aucheri Boiss. III, 326,
327.

— Beccabunga B. II, 580,
591, 596.

— Benthami 519.

— biloba L. II, 557.

— Buxbaumii Ten. III,
326.

Veronica ceratooarpa— Viburnum tomentunum var. plicatum.

977

Veronica ceratocarpa CA. Verrucaria 15.

Mey. III, 327.
Chamaedrys L. II, 59(5.
— III, 326, 327.

— crista-galli Stev. III,
326.

- cymbalaria Bertol. III,
326, 328.

— cynabalarioides Blanche
III, 326.

— didyma Ten. III, 326.

— filiformis Sm. III, 326,
327.

— Griffithii III, 326.

— hederifolia L. III, 326,
328.

— lue vis II, 262.

- latifolia 521.

— macroura Hook. /'. II,
263.

— officinalis L. II, 591,
596.

— opaca Fr- III, 326; 327,
385.

— panormitana Guss. III,
326.

— peregrina Gmss. 715,
716, 717. — 11,269, 619.

— polita Fr. III, 326, 327,
385.

- pulchella Bast. III, 326.

— salicifolia III, 329.

— scutellata L. II, 596.
— III, 40, 41.

— serpyllifolia L. II, 5!»6.

— siaretensis Lehmann*
II, 155. — III, 327.

— sibthorpioides Debeaux
et Degen III, 326.

— sinensis Fries III, 326.

— spicata L. III, 3">.
Tournefortii III, 326,

327, 385.

— Traversi III, 328.

— triloba Opiz III, 326.

— triphyllos L. III, 321.

— verna L. III, 321.

— violifoliajBTocÄstlII,326,
327.

Veroniceae III, 50.

— amphibola Nyl. 24.

— brachyspora Arn. 23.

— cerasi Schratt. 23.

— halophila 3.

— maura 3.

— mnralis Ach. 1 1.

— nigrescens 11.

- rupestris DC. 22.

— — var. hypophaea
Stnr. et Zahlbr* 22.

— spaerospora Amt 11.
Verrucidens Card. N- 6. 51,

82.

— turpis Card* 82.
Vesicularia C. Müll. 59.

— samoana Broth* 82.
Vesiculariopsis Broth.

X. (J. 59, 82.

— spirifolium( Dus.) Broth.*
82.

Vexillum Desglandei

Rouault 608.
Vibrio aquatilis 370.

— cholerae 370.
Vibrissea 122.

— foliorum Thaxt* 122,
322.

Viburnum II, 158, 354. —
III. 10, 167, 221. —
N. A. II, 353.

— alnifolium 699.

— betulifolium Batal. III,
166.

— üarlesii III, 166.

— cassinoides II, 147.

— cordifolium Wall- III,
166.

— cotinifolium D- Don II,
556.

— cuspidatum Thimbg. II,
354.

— cylindricum Hamilt. III,
166.

— dasyanthum Eehd. III,
166.

— dentatum Thimbg. II,
354, 605.

— dilatatum rar. formo-
sanum Maxim. II, 353.

Botanischer Jahesbericht XXXV] (1908) 3. Abt. [Gedruckt 21.2. 12.]

Viburnum erosum Hem*l

II, 353.

var. formosanum

Hance II, :r>: t.
var. sutchuense

Gräbner II, 354.

— foetens Decne II, 556.

— furcatum Bi. III, 166.
ichangense Be/td IM,

166.

— lantanoides 699. — II,
147.

— lobophyllum Grab. III,
166.

— iuzonicum Rolfe III,
.166.

— Opulus L. II, 147. —

III, 166.

— — var. pygmaeum III,
167.

— phlebotrichum Hemsl.

II, 353.

— phlebotrichum 8. et Z.

III, 166.

— pliacatum Thunbg. 11,
354.

var. dilatatum Lindl-

II, 354.

— — var. plenum Miq. II,
354.

var. parvifolium

Miq. II, 354.

— pulchellum Buch-Emit.

II, 556.

— pyramidatum Be/fo". III,
166.

— rugosum Pers- III, 166.

— shensianum Maxim. I II,
166.

— sempervirens Ä'. A'oc/i

III, 166.

— sympodiale Grab. MI,
166.

— Tinus L. 697. — III,
58, 475.

— tomentosum III, 6, 54.
var. cuspidatum

Max. II. 354.

var. plicatum Max.

II, 354.
12.1 62

978

Vibnrnum tomentosum var. sterile— Viscnui.

Viburnum tomentosum Victoria regia Linäl. II,

var. sterile Zabel II, 354. I 204. - - III, 262.
— urceolatum S- et Z- III, Vidalia 564.

166.
- utile Remsl II, 161. —

III, 166.
Vicia 504. - II, 143, 573,

663. — III, 237, 243. —

N. A. II, 450.
— alba III, 433.

Vigna II, 829. — III, 83.
N. A. II, 450.

— üatjang II, 843.

— sinensis II, 907. — III.
238.

— unguiculata II, 843. —
III, 237.

— amphicarpa II, 583, 584. Villarsialacunosaymi.il,

— angustifolia Roth III, 428.

432, 433. Vinca minor C III, 142.

— Bertolonii Cav. III, 233. — rosea II, 209.

— Cracca L. P. 106. Vincentia anceps III, 80.

- dasycarpa Ten. 111,233. — Deplanchoi III, 80.

- dumetorum L. III, 433. — riparium var. crassa III,

elegantissima Shuttl.
III, 232, 233, 450.
— Faba L. 697, 734, 738,
740, 741, 742, 745, 754,

80.

Vincetoxicum III, 559.
- carnosum Benth. II,
337.

761. II, 39, 54, 573, Viola 644. — II, 107, 583,
086, 687, 707, 709. — 584, 585, 605. — III, 53,

III, 238, 395, 396, 685.

— P. 850.

— hirsuta Koch II, 852.

— macrocarpa Bertol. III,
432.

— monosperma Thompson
II, 450.

— narbonensis L. II, 128.

— III, 432.

— pinetorum Shuttl II,
450.

— pseudocracca Berf. III,
232, 233.

- sativa L. 722, 723, 745.

II, 573. — P. 828.

— sepium L. II, 573.

— stigmatica Henry et
Thal. II, 450.

— varia Host. III, 233.

— villosa Roth II, 10. —

III, 233, 433.
Viciaceae II, 194, 242.
Vicoa auriculata Cass. II,

557.
Vi ctoria II, 203.

— Cruziana d'Orb. II, 203,
204.

343, 360, 374. — N. A.
II, 547.

— arvensis Murr. III, 344.

— aurea venosa S. Wats.
II, 547.

— biflora L. 521. — II,
587. - P. 162.

— canescens Wall. II, 556.

— canina L. 644. — III,

344. - - P. 252.

— canina oxycera»S'. Wats.
II, 547.

— chinensis II, 170.

— cucullata II, 170.

— cyanea Cel. III, 344,
368.

— Dehnhardtii Ten- III,
344.

— gracillima St. Hill. II,
202. — III, 343.

— birta var. japonica
Maxim. II, 547.

— hirta X odorata II, j
547. — III, 368,

— birta X odorata X
saepincola III, 344, 368

— javanica II, 217.

Viola Lacaitaeana Becker*
III, 343.

— lactea X Riviniana II,
547.

— linearifolia Vahl II, 540.

— mirabilis II, 584.

- nebrodensis X splen-
dida II, 547. — III,
343.

— neoburgensis Erdner*
III, 344, 368.

— Nuttallii venosa 8.
Wats. II, 547.

— odorata L. P. 253.

— odorata X collina II,
547.

— odorata X saepincola
III, 308.

■ Patrinii DC. II, 556.

— permixta Jord. III, 368.

— permixta X saepincola

II, 547. — III. 344.

— polyehroma Kerner HI,
344.

— praemorsa Dougl. II,
547.

— praemorsa venosa ,4.
Gray II, 547.

— Riviniana P. 253.

— rupestris P. 252.

— sagittata II, 170.

— serpens Wall. II, 556.

— — var- macrantba
Iranch. II, 547.

— silvestris 693.

— stricta Pers. II, 546.

— tricolor L. 645, 696,
770. — III, 344, 489,
685. - - P. 252.

Violaceae 504, 505. — II,
201, 221, 250, 546. —

III, 59, 219, 220, 343.
Virola Gardneri 509.
Viscaria 504.
Viscophyllum Miqueli

Qeyl. et Kink. 561.
Viscum 811. — II, 105,
229, 245, 996. — III,
246. — N. A. II, 453,
4f,4.

Viseum alltuni — Wedelia.

979

\ iscum album L. 4li4, 510,
311, 811. — II, 105,582,
588, 844. - - LH. 39, 246,
247, 499, 566, 653.

— cruciatum Lieb. III, 246,
247.

— elegans II, 105.

— japonicum Thunbg. II.
557.

— minimum Harvey 513.

II, 105.
moniliforme Thwait.il,
105.

— salicornioides A. Cunn.

II, 105.

— tenue Engl. II, 105.
Vismia N. A. II, 434.

— guiauensis Choisy II,
837.

— Mocanera L. f. III, 334.
Vitaceae II, 233, 547. — I

III, 344.

Vitex II, 199. — 111,343. |

— agnus-cartus N. A. II, >
546.

— negundo II, 220.

— polygamaC'Aam. II, 837.

— — var. holosericea II,
837.

— rufescens Juss. II, 837.

— umbrosa Sic II, 899.
Vitis 765. — II, 84, 896.

— III, 345. — P. 283.

— flexuosa rar. AVilsoni
III, 57.

— gongylodes III, 344.

— llenryana 111, 57.

— pliocenica Kink.* 561.

— Ponziana Gaud. 561.

— (juinijuefolia II, 548.
rotundifolia Michx. 561 .

— sphaerocarpa Kink*
561.

— trifolia II, 220.

— vinifera L. 510, 511.
545, 609, 650, 681, 682.
686, 715, 759, 760, 787,
791, 794. - - II, 83, 155,
607, 869. - III, 28. -
F. 181,211, 214,215-301.

Vittaria 11, 790, 79:!.

— Bensei v. Aid. v. Ros*
II, 781, 808, 816.

— boninensis II, 166.

— elongata Sw. II, 795.

— ensata Christ* II, 778, ]
816.

— pusilla El. II, 782.

— remota Fee II, 778.

— sulcata (Mett.) Kuhn II,
782.

Voacanga N. A. II, 332.

- obbusa Schum. II, 898.
Voandzeia subterranea II,

561.
Vochysia N. A. II, 548.

— grandis II, 200.
Vochysiaceae II, 266, 548.

— III, 219.
Völkelia refracta Goepp.

552.
Voeltzkowiella P. Herrn-

N. G. 138, 322.

madagascariensis

P.

Henri* 138, 322.

Voharanga II, 226. —

-III,

472.

— madagascariensis

HI,

472.
Voltzia 613.
Volutella 846.

— fructi Steve»* et Hall.
142, 846.

— Jaapii Bres. 144, 145,
322.

Volvaria 155, 177, 258.

— esculenta Massee1-' 322.

— ilicicola Speg* 322.

— Loveiana (Bert-) 177.
Volvocineae 346, 348.
Volvox 359.

— aurens 359.

— globator 359.

— perglobator Powers* 359,
386.

— spermatosphaera Po-
werS :559. 386.

— tertius B59.

— weismannia Potcer*359,
386.

Vrydaggynea III, 121.

Vuilleminia 118.

Vulpia Myuros Gmel- HI,

87.

Wachendorfia II, 242.
Wahlenbergia III, 59. —
N. A. II, 351.

— hercegovina Maly II,
350.

Walafrida geniculata II,

838.
Walchia 613.

— filiciformis 618.

— piniforinis 618, 625.
Waldsteinia 479.
Wallenia Swartz III, 59,

259. - - N. A. II, 46:..
Waltheria II, 190. — N. A.

II, 345.
Wangerinia III, 281.
Warburgiella C- Müll. 59.
Warnstorfia Loeske 58.
Warpuria Stapf 'N. ö. N. A.

II, 326.
Washingtonia II, 186. -

III, 130.

— gracilis 652.
Watsonia O'Brieni III, 99.

— corymbosa III, 99.

— meriana rar. iridifolia
II, 255.

Wawelia Nmki. N. G. 240,
322.

— regia Nmki* 119, 240,
322.

Webera annotina vor.
Rothii (Corr.) Dismier
58.

— elongnta Schivgr- 7<>.

— erecta (Roth) Correns
58.

— pentasticha Schfj'n. 53,
82.

— polymorpha Schpr- 41.

— Rothii Correns 43.

— tenuifolia Limpr. 58.

— Zoddae Rth. 39, 82.
Webera subsessilis II. 16t>.
Wedelia P. 321.

62'

980

Wedelia glabrata — Xanthophyllum oxcelsuui.

Wedelia glabrata II, 209.
Weddellinia III, 277.

- squamulosa 448.
Weichselia 622.

— Mantelü 593.
Weigelia rosea Lindl. II,

570. - III, 166, 167.
Weigeltia A. DG. III, 259.
Weihea africana Benth.

III, 289.
Woingaertneria canescens

Beruh. III, 35.
Weinmannia N. A- II, 405.

— Hildebrandtii Baill- III,
197.

— silvicola II, 262.
Weissia 38.

— rostellata 42.
Welwitschia II, 253. —

III, 73.

— mirabilis Hook. f. III,
73.

Wendlandia N. A. II, 511.

— exserta DC. II, 556.
Wettsteinia Schffn. 66.
Whitfordia Murrill N. G.

134, 322.

— WarburgianafP. Herrn.)
Murrill* 322.

Whitlavia grandiflora 670.
Wiborgia III, 241.
Wickstroemia foetida A.
Gray 458.

- retusa II, 166.

— tenuiramis Miq. III,
451.

Widdringtonia 463, 613.
Widdringtonites 556.

— liasinus 613.
Wierzbickia laricifolia

Rchb. II, 356.

— liniflora Fourr. II, 356.
Wiesneria Schweinfurthii

II, 240.
Wiesnerina v. Höhn. N. G.
128, 322.

— borrida v. Höhn* 128,
322.

Wiesneriomyces Koorders
N. G. 134.

Wiesneriomyces javani-
cus Koorders* 134.

De Wildemania 0. Hoffm.
II, 383.

Williamsia Merrill N. G.
N. A. II, 511.

Williamsonia 547, 586,591.

— gigas (L. et H) Carr.
586, 636.

Willughbeia II, 332.

— firma II, 949.
Winterella yerbae Speg*

322.
Winteria snbcoerulescens

(Nyl.) Behm 143.
Winterina peltigeraephila

Behm* 322.
Wissadnla II, 190. -- III,

250.

— contracta IL 190.

— periplocifolia II, 190.

— spicata II, 190.
Wistaria II, 996.

— chinensis 510.

— frutescens DG. III, 432,
Wittia K. Seh. N. G. II,

349.
Wolffia II, 242.

— arrhiza II, 242.

— cylindracea II, 242.
Woodfordia florihunda

Salisb. II, 556, 892.
Woodsia II, 765.

— Burgessiana Gerr. II,
796.

— Oathcartiana Bobinson*
11, 786, 816.

— eriosora Christ* II, 776,
816.

— frondosa CÄm** 11,776,
816.

— ilvensis IT, 738. 739,
772.

— nivalis Pirotta* II, 796,
816.

— oregana II, 786.

— scopulina II, 786.
Woodsieae II, 765.
Woodwardia Harlamli II,

777.

Woodwardia Kempii
Copel* II, 777, 816.

— radicans II, 799.

— paradoxa II, 799.

— virginica (L.) 8m. II,
787.

Wormia N. A. II, 406.
Wormskioldia lobata Urb.

III, 336.
Woroninia dichotoma 357.
Wrightia N. A. II, 333.
Wulfenia II, 130, 147. —

111, 322.

— Baldaccii II, 130.

— carinthiaca II, 130.

— orientalis II, 130.
Wulffia stenoglossa P.321.
Wunschmannia Urb. N. G.

III, 59. - - N. A. II, 345.
Wynnea americana 123.

Xanthidium Burkillii West*
386.

— orbiculare Bernard*
386.

— sexmarnillatum West*
386.

— tropicum Bernard* 386.
Xanthium II, 576. — III,
184, 358. — N. A. II,
394.

— echinatum Murray II,
139. — III, 184.

— italicum Mor. II, 139.
— III, 358.

— Orientale L. II, 139. —
III, 184.

— spinosum L. II, 253. —
III, 358.

Xanthoceras sorbifolia II.

654.
Xanthochrous fusco-velu-

tinus Pal* 159, 322.

— LudovicianusPrt^.* 159,
322.

— Rickii Pat* 159, 322.
Xanthocbymus Hk. /'. 541.
Xanthophyllum III, 279.

— excelsum Bl. III, 168,
438.

Xantboiia — Zalesskya diploxylon.

981

Xanthoria 5, 15.

— ljchnea III, 643.

- modesta A. Zahlbr* 28.

— parietina L. 4, 11, 22.

III, (543, 688.

Xanthorrhoea Preissii II,

920.
Xanthorrhiza 501.

— apiifolia L'Herit. III,
286, 426.

Xanthosia III, 341.

— silvatica II, 255.
Xantbosoma N. A. II, 284.

— cordatum II, 198.
Xanthostemon verdugoni-

anus II, 902.
Xanthoxylaceae III, 24.
Xanthoxylum II, 898. —

N. A. II, 514.

— ailanthoides II, 166.

— Buagei Planch. 111,307.

— Nashii Wilson* III, 308.
Xenoxylon phylloclado-

ides Goth. 567.
Xeranthemnm annuurn II,

575.
Xiraenia II, 233

— americana II, 220, 232,
927.

— ferox Poiret II, 549.
Xolisma foliosiflora Small

II, 409.

— ligustrina(XJPn^.547.
Xylaria 131, 132, 258,845.

— P. 287.

— Airesii Berk. 131.

— (Xyloglossa) albopunc-
tulata Rehm* 322.

- allantoidea Berk. 131.

— (Xyloglossa) appendi-
culatii Ferd. et Wge.* 322.

— arenicola Welw. et Cv/rr.
var. brasiliensis Tlieis*
322.

— aristata Mont. rar. hir-
suta Theiss.* 322.

— barbata Starb. 131.

— bataanensis P. Heut/.
322.

— collabens Moni. 131.

Xylaria eoinosa Mont. 131,

— Cookei 175, 698.

— Copelandü P. Herrn*
322.

— cornifonnis Fr. var.
macrospora Bres-' 322.

— encepbalia Sacc et Penz-
131.

— i'urcata 258.

— heloidea P. et S. 147.

— Hypoxylon Pers. 175,
698.

— Laurentii P. Herrn*
322.

— (X3'loglossa) lignosa
Ferd. et Wge* 322.

— liraav. Höhn.* 128, 322,

— raauritiensis P. Herrn*
138. 322.

— nigripes Kl. 258.

— obtusissima(PerÄ\>.Sacc
131.

— polymorpba Grev. 149.
— P. 128, 299.

— Phyllocbaris Mont. var.
hirtella Theiss.* 323.

— ramuligera Starb. 131.

— Rickii Theiss:*- 323.

— riograndensis Tlieiss.*
323.

- (Xyloglossa) sessilis
Ferd. et Wge.* 323.

— siphonia Fr. 131.

— strobiliformis P. Henn*
138, 323.

— subinvoluta f. Höhn*
128. 323.

— tigrina Speg. 131.

— transiens Theiss.* 323.

— tuberoides Itehm 147.
Xylariaceae 132.
Xylariodiseus P.Henn. 132.
Xylia N. A. II, 450.

— dolabriformis III, 544.
Xylinabaria li'eynaudi II,

829.
Xylographa 15.
Xylopia II, 622.

— acutiflora II, 233.

— acutifolia^.p/cA [1,625.

Xylopia aethiopica II, 232.

— Emiini Engl. II, 898.
Xylosma III, 59, 153. —

N. A. II, 426.
Xylotheca N. A. II, 426.
Xyridaceae II, 127, 323.

— III, 133.

Xyris II, 202. — III, 131.
- N. A. II, 323.

— angustifolia De Wild-
et Dur. III, 131.

Xysmalobium N. A. II, 339.

Youngia dentata DC. II,

387.
Ypsilandra III, 4. — N. A.

II, 307.
Ypsilonia vagans Speg*

323.
Yrbonia II, 126.
Yucca 468. II, 191,

193, 915. - III, 39.

— aloifolia 520.

— australis Trel. II, 191,
916. - III, 107.

— decipiens II, 191.

- elephantipesJSe^. 11,917.

- EndlichianaZYeni.917.

— Hanimania II, 193.

— periculosa II, 191.

— rostrata Engelm. 1 1 ,
193, 917.

— Scbottii Jaliscensis
Trel. II, 917.

— Treculeana Corriere II,
916.

— valida Brandeg. II, 191,
916, 917. - III. KIT.

Yiiccites vogesiacus
Schimp. et Moug 543.

Zahlbrucknera III, 319.
paradoxa Rchb. II, 95.

— III, 311»
Zalepidota Riibs. N. (J. II,

621.

— piperis Hubs.- II, 621.
Zalesskya 580.

- diploxylon Kidst. et
Givynne- Vangh:: 58 1 .

£82

Zalesskya gracilis — Zythia Fragariae.

Zalesskya gracilis Eichw.

581.
Zaluzianskya maritima

Walp. III, 321.
Zamia N. A. II, 277.

— integrifolia III, 72.
Zamioculcas II, 242.
Zamiostrobus 593.
Zamites 543, 613, 628.

- Buchiarms Ettings]i.6\'2.

— grandis Arber* 543.

- Weberi Seivard* 622.
Zannichellia II, 240. —

III, 132.

— palustris L. II, 261, 580.
Zantedeschia II, 241.
Zanthoxylon II, 622.

X. A. II, 514.

— alatum Roxb. III, 307.

— Bungei Planch. III, 426.
caribaeum Laut. II,

900.

Clava-Herculis L III,
426.

martinicense DC- II,
900.

— schinifolium P. et Z.
III, 307.

— senegalense 11, 899.

- texanum Bttckley II,
511.

Zauschneria Garrettii P.

143.

Zea II, 820, 853, 854. 855.

Mays L 738, 761, 810.

II, 51, 656, 822, 844,

990. - III, 93. 360, 073.

P. 830.

Zelkowa acuminatall, 901.

- crenata II, 154, 901.
Zellera Boekii Sluiter*

351, 386.
Zephyranthes N. A. II, 281.

- aurea III, 74.
Zeugites N. A. II, 300.
Zeuxinc bracteata Wight

11. 308.
brevifolia Wighi 11,308.

Zeuxine integerrima
Lindl. II, 308.

— membranaceaLmdZ. II,
308.

procumbens Blume II,
308.

— robusta Wight II, 308.

- sulcata Lindl. II, 308.

- tripleura Lindl. II, 308.
Zeyra montana P. 281.
Zignoella anceps<Sacc.*323.

- yerbae Speg.* 323.
Zilla macroptera Coss- II,

102, 231.

— myagroides II, 231.
Ziugiber N. A. II, 324.

— Eberhardtii III, 134.

- leptostachyum Val- III,
134.

— officinale II, 243, 822.
Zingiberaceae II, 166, 223,

243,244,323. —III, 133.
Zinnia elegans P. 282.

- Haageana II, 575.
Zizyphus 547. — III, 53,

58. — N. A. II, 486.
chloroxylon Oliv- II,
I 899.

- Lotus II, 231.

I — nucifera Ludw- 561.

— nummularisTT. et A. II,
851.

sativa Gaertn 495. —
III, 289.

- vulgaris II, 993.
Zoddaea viridis Bzi- 338.
Zonaria gymnosora 351.

— variegata 351.
Zoochlorellae 367.
Zoopsis Hook. 66.
Zooxanthella 362
Zornia III, 234. - - N. A.

II, 450.

Zostera 330. - II, 240. —

III, 132.

- marina L. II, 580.
III, 132.

— nana L. II, 261.

Zukalia paraensis P.IZm«.*
147, 323.

— Usteri Speg.' 323.

— vagans Speg* 323. —
P. 323.

— var. brachycarpa
Speg* 323.
Zwackhia N. A. II, 346.

— aurea Sendtn. II, 340.
Zygalchemilla Bydb. III.

296. — N. A. II, 503.
Zyganthera II, 242.
Zygnema 354.

— stellinum Vauch. 354.
Zygodon conoideus

(Dicks.) H. et T. 55.
- gracilis Wils- 48.

— hirsutum Negri* 82.

— Nowellii Seh. 48.

— Roccatii Negri* 82.

— rupestris Lindb. 48.

— Sullivantii L. et J. 48.

— viridissimus (Dicks.)
Brown 47, 48.

Zygomyceten 164, 165.
Zygopetalum Mackayi III,

115.
Zygophyllaceae II, 548.

— III, 218, 219, 345.
Zygophyllum 670. — II,

141, 997. - III, 35. —

N. A. II, 550.

— coccineumö71. — 11,588.

— macropterum III, 345.
Zygophyta III, 14.
Zygopterideae 550.
Zygopteris Cda. 549, 55(1,

553, 630. — II, 755.

— Bibractensis 549.

— scandens 549.
Zygorhynchus 154, 178.

— Moelleri Vuill 178,757.
Zygosaccharomyces java-

nicus Kruyff* 191, 323.
Zythia coeruleo-atra
v. Höhn* 259, 323.

— Fragariae T.aibacJi1 208,
323.

□

MHI. WHOI LIBRARY

H 1ÖZU .

^H-iy*

*%■ Jr

AT

*-. -*<

^mf.

,wf

H.A.. ^

*\ *~%

•*&

'v^W*-*'' ^~

f*«Oi

«'■S

•*r^

;*-*.

**w -- $Ä

-vf^** '•■

|

'■'Hol

■ k Hm
Erln'

$£; ^l*p

\^-r-f

rCf

p** r v. „y*

/* ^- f

'^IT

•* '1 v

V^v^

WH. rh-L^^ '^k. <